【実施例4】
【0147】
PPI−1009を調製するための別の方法
【0148】
【化21】
【0149】
合成スキーム:
【0150】
【化22】
【0151】
反応ステップ:
【0152】
【化23】
【0153】
手順:化合物1(2.0Kg、15.15mol、Alfa Aesar社製)の10%NaOH溶液(10.0L)中の溶液を80℃で1時間撹拌し、TBAB(992.0g、3.03mol、Rajdhani scientific社製)を加え、15分間撹拌した。臭化セチル(5.5kg、18.18mol、Alfa Aesar社製)を徐々に加え、反応混合物を80℃で20時間撹拌した。(少量のアリコットを水で希釈し、酢酸エチルで抽出し、分析用シリカゲルTLCプレートにスポットし(石油エーテル中30%の酢酸エチル)、Mo染色液及びKMnO
4溶液を使用して、個々のスポットを可視化することにより、反応の進行を監視した)。下記は、混合物の成分のR
fである:化合物1(0.1)、化合物2(0.7)。反応混合物を室温に冷却し、CH
2Cl
2(3×3.0L)で抽出した。合わせたCH
2Cl
2層をNaHCO
3溶液(1.0L)、水(2×2.0L)、ブライン溶液(1.0L)で洗浄し、無水Na
2SO
4上で乾燥させ、濃縮して、粗製の化合物2(2.9Kg、粗製)を淡黄色の液体として得、これを、次のステップで使用した。
【0154】
反応ステップ:
【0155】
【化24】
【0156】
手順:化合物2(2.9Kg、81.23mol)の20%HCl水溶液(14.5L)中の溶液を85℃で16時間撹拌した。(少量のアリコットを水で希釈し、酢酸エチルで抽出し、分析用シリカゲルTLCプレートにスポットし(石油エーテル中40%の酢酸エチル)、Mo染色液を使用して、スポットを可視化することにより、反応の進行を監視した)。下記は、混合物の成分のR
fである:化合物2(0.8)、化合物3(0.2)。反応混合物を室温に冷却し、CH
2Cl
2(3×4.0L)で抽出した。合わせた有機層をNaHCO
3溶液(1.0L)、水(2×2.0L)、ブライン溶液(1.0L)で洗浄し、無水Na
2SO
4上で乾燥させ、濃縮して、粗製化合物を得、これを、石油エーテル中5%の酢酸エチル(2×1.0L)と共に摩砕し、乾燥させて、化合物3(2.0Kg、2ステップで42%)を得たが、これはオフホワイト色の固体として得られた。
【0157】
反応ステップ:
【0158】
【化25】
【0159】
手順:冷却されている化合物3(1.0Kg、3.16mol)のDMF(640.0mL)及びCH
2Cl
2(400.0mL)中の溶液に0℃で、DMAP(38.6g、0.32mol)を、続いてトリエチルアミン(735.0g、7.27mol、Rankem社製)を加えた。添加の後に、反応混合物を0℃で30分間撹拌し、TBSCl(572.0g、3.79mol、Fluoro chem社製3.0kg)を等量のポーション(3ポーション)で1時間で加え、反応混合物を室温で20時間撹拌した(少量のアリコットを水でクエンチし、CH
2Cl
2で抽出し、分析用シリカゲルTLCプレートにスポットし(石油エーテル中20%の酢酸エチル)、Mo染色液及びKMnO
4を使用して、スポットを可視化することにより、反応の進行を監視した)。下記は、混合物の成分のR
fである:化合物3(0.15)、化合物4(0.7)。反応混合物をCH
2Cl
2(2.0L)で希釈し、水(3×3.0L)、ブライン溶液(1.0L)で洗浄し、無水Na
2SO
4上で乾燥させ、濃縮した。得られた粗製化合物をカラムクロマトグラフィー(シリカゲル100〜200メッシュ)により、溶離剤として石油エーテル中5%の酢酸エチルを使用して精製して、化合物4(850g、90%)を得たが、これは、淡黄色のオイルとして得られた。
【0160】
反応ステップ:
【0161】
【化26】
【0162】
手順:冷却されている化合物4(734g、1.706mol)のDMF(2.5L)溶液に0℃で、60%NaH(204.0g、5.12mol)を少量ずつ30分間で加えた。添加の後に、反応混合物を0℃でさらに30分間撹拌し、臭化ベンジル(438.0g、2.56mol、S.D fine chemicals社製)を1時間で滴加した。室温にした反応混合物を20時間撹拌した。(少量のアリコットを水でクエンチし、EtOAcで抽出し、分析用シリカゲルTLCプレートにスポットし(石油エーテル中5%の酢酸エチル)、Mo染色液及びKMnO
4を使用して、スポットを可視化することにより、反応の進行を監視した)。下記は、混合物の成分のR
fである:化合物4(0.2)、化合物5(0.5)。反応混合物をメタノール(250mL)、冷水(1500mL)でクエンチし、酢酸エチル(2×2.0L)を使用して抽出した。合わせた酢酸エチル層を水(3×1.0L)、ブライン溶液(1.0L)で洗浄し、無水Na
2SO
4上で乾燥させ、濃縮した。得られた粗製化合物5(887g)をさらに精製することなく、次のステップで使用した。
【0163】
反応ステップ:
【0164】
【化27】
【0165】
手順:冷たい粗製化合物5(887.0g、1.702mol)のTHF(2.0L)溶液に0℃で、TBAF(1.3Kg、5.107mol、Chemrich fine chemicals社製)のTHF(1.0L)溶液を徐々に1時間で加えた。添加の後に、反応混合物を室温で16時間撹拌した。(少量のアリコットを水でクエンチし、EtOAcで抽出し、分析用シリカゲルTLCプレートにスポットし(石油エーテル中30%の酢酸エチル)、Mo染色液及びKMnO
4溶液を使用して、スポットを可視化することにより、反応の進行を監視した)。下記は、混合物の成分のR
fである:化合物5(0.9)、化合物6(0.3)。反応混合物を酢酸エチル(2.5L)で希釈し、水(2×1.0L)、ブライン(1.0L)で洗浄し、無水Na
2SO
4上で乾燥させ、濃縮して、粗製化合物を得、これをカラムクロマトグラフィー(シリカゲル100〜200メッシュ)により、溶離剤として石油エーテル中7%の酢酸エチルを使用して精製して、化合物6(330g、2ステップで48%)を得たが、これは、淡黄色のオイルとして得られた。
【0166】
反応ステップ:
【0167】
【化28】
【0168】
手順:冷たいN−アセチルカルニテン8(239.0g、1.177mol、Molecula life Sciences社製)のCH
2Cl
2(500.0mL)及びDMF(5.0mL)中の溶液に0℃で、塩化オキサリル(179.4g、1.412mol)を徐々に30分間で加え、室温で4時間撹拌した。反応混合物から溶媒を減圧下での蒸留により除去し、痕跡量の塩化オキサリルをCH
2Cl
2との共蒸留により除去した。得られた粗製化合物9(250g)をCH
2Cl
2(500.0mL)に溶かし、冷たい化合物6(334.0g、0.823mol)のCH
2Cl
2(500.0mL)溶液に0℃で、N
2ガスを気泡導入しながら徐々に加えた。添加の後に、反応混合物を、N
2の気泡導入を継続しながら室温で20時間撹拌した(少量のアリコットを水でクエンチし、CH
2Cl
2で抽出し、分析用シリカゲルTLCプレートにスポットし(クロロホルム中25%のMeOH)、Mo染色液及びKMnO
4を使用して、スポットを可視化することにより、反応の進行を監視した)。下記は、混合物の成分のR
fである:化合物6(0.8)及び化合物10(0.3)。反応混合物をCH
2Cl
2(2.0L)で希釈し、ブライン溶液(250mL)で洗浄し、無水Na
2SO
4上で乾燥させ、濃縮して、粗製化合物を得、これをカラムクロマトグラフィー(シリカゲル100〜200メッシュ)により、溶離剤としてクロロホルム中5%のMeOHを使用して精製して、化合物10(153.0g、31.5%)を得たが、これは、淡黄色のオイルとして得られた。
【0169】
反応ステップ:
【0170】
【化29】
【0171】
簡単な手順:10%Pd/C(40.0g、25%w/w、AlfaAesar社製)のエタノール(1.2L)懸濁液に、化合物10(150g、0.298mol)を加え、室温で20時間水素化した(H
2、圧力40psi)。(分析用シリカゲルTLCプレートにスポットし(クロロホルム中25%のMeOH)、Mo染色液及びニンヒドリン溶液を使用して、スポットを可視化することにより、反応の進行を監視した)。下記は、混合物の成分のR
fである:化合物10(0.4)、化合物11(0.2)。反応混合物をセライト床で濾別し、ケークをエタノール(2×200mL)で洗浄し、合わせた濾液を濃縮して、粗製化合物を得、これをカラムクロマトグラフィー(シリカゲル100〜200メッシュ)により、溶離剤としてクロロホルム中10%のメタノールを使用して精製して、化合物11(75g、60%)を得たが、これは、淡黄色のオイルとして得られた。
【0172】
反応ステップ:
【0173】
【化30】
【0174】
簡単な手順:冷却されている化合物5(48.0g、0.146mol、Nu-Chek-Prep Inc社製)、DMF(1.0mL)のCH
2Cl
2(300.0mL)中の溶液に0℃で、塩化オキサリル(22.3g、0.175mol、Molecula Lifesciences社製)を徐々に30分間で加えた。添加の後に、反応混合物を26℃で4時間撹拌した。(少量のアリコットをMeOHでクエンチし、分析用シリカゲルTLCプレートにスポットし(石油エーテル中10%の酢酸エチル)、KMnO
4溶液を使用して、スポットを可視化することにより、反応の進行を監視した)。下記は、混合物の成分のR
fである:化合物12(0.3)、化合物13(0.8)。反応混合物をN
2雰囲気下で濃縮して、粗製化合物6(57g、粗製)を得た。
【0175】
反応ステップ:
【0176】
【化31】
【0177】
簡単な手順:0℃に冷却されている化合物11(50.0g、0.102mol)のTHF(1.0L)溶液に、ピリジン(32.3g、0.409mol)を、続いて、DMAP(12.5g、0.102mol)を加え、10分間撹拌した。粗製化合物13(57.0g、0.163mol)のトルエン(1.0mL)溶液を15分間で加えた。添加の後に、反応混合物を室温で20時間撹拌した。(少量のアリコットを水でクエンチし、EtOAcで抽出し、分析用シリカゲルTLCプレートにスポットし(クロロホルム中20%のメタノール)、Mo染色液及びニンヒドリン溶液を使用して、スポットを可視化することにより、反応の進行を監視した)。下記は、混合物の成分のR
fである:化合物11(0.2)及びPPI−1009(0.5)。反応混合物を酢酸エチル(2.0L)で希釈し、0.5NのHCl(250mL)、ブライン溶液(250.0mL)で洗浄し、無水Na
2SO
4上で乾燥させ、濃縮して、粗製化合物を得、これをカラムクロマトグラフィー(シリカゲル100〜200メッシュ)により、溶離剤としてクロロホルム中20%のメタノールを使用して精製して、化合物PPI−1009(27g、33.3%)を得たが、これは、淡黄色オイルとして得られた。
【実施例7】
【0193】
プラスマローゲン前駆体を用いてのインビトロでの膜タンパク質発生量のモジュレーション
下記の研究により、膜在住タンパク質の発生量の変化におけるプラスマローゲン前駆体(1−アルキル−2アシルグリセロール)の有効性を証明する。化合物の細胞での効果を、野生型細胞で、さらに、人工的に高められた膜コレステロールの条件下で証明する。
【0194】
野生型細胞において、アミロイド前駆体タンパク質(APP)をモジュレートする酵素ADAM10及びコレステロールエステル化タンパク質SOAT1の上昇が、プラスマローゲン前駆体濃度の上昇に伴って観察された。同様の効果が、コレステロール負荷モデルにおいて観察された。加えて、別のAPPプロセシング酵素、BACE1が、コレステロール負荷細胞においてのみ、発生量の低下を示した。理論に拘束されることは望まないが、この証拠は、アルツハイマー病の状況においてアミロイド負荷を低減し、同時に、系の膜コレステロール含分を再平衡させて、アルツハイマー病に加えてアテローム硬化症及び高コレステロール血症などの疾患の治療において有望な利益をもたらす方法を支持するものである。
【0195】
APPは主に、γ−セクレターゼ(プレセニリン1/2遺伝子によりコードされる)及びα−セクレターゼ(ADAM10によりコードされる)による連続分解からなる古典的経路によりプロセシングされる。このAPPの非病的プロセシングは、神経栄養(neutotrophic)ペプチド(sAPPα)の形成をもたらし、これは、グルタメート毒性及び低血糖に対する保護を示す(Araki W, Kitaguchi N, Tokushima Y, Ishii K, Aratake H, Shimohama S, Nakamura S and Kimura J (1991) Trophic effect of beta-amyloid precursor protein on cerebral cortical neurons in culture. Biochem Biophys Res Commun 181:265-271、Mattson MP, Cheng B, Culwell AR, Esch FS, Lieberburg I and Rydel RE (1993) Evidence for excitoprotective and intraneuronal calcium-regulating roles for secreted forms of the beta-amyloid precursor protein. Neuron 10:243-254、Postina R, Schroeder A, Dewachter I, Bohl J, Schmitt U, Kojro E, Prinzen C, Endres K, Hiemke C, Blessing M, Flamez P, Dequenne A, Godaux E, van Leuven F and Fahrenholz F (2004) A disintegrin-metalloproteinase prevents amyloid plaque formation and hippocampal defects in an Alzheimer disease mouse model. J Clin Invest 113:1456-1464、Fahrenholz F (2007) Alpha-secretase as a therapeutic target. Curr Alzheimer Res 4:412-417)。別のAPPプロセシング経路こそが、アルツハイマー病を症状発現させ、その場合、APPは、コレステロールリッチな脂質ラフトにおいてγ−及びβ−セクレターゼにより分離される。この「非古典的」経路は、38〜43アミノ酸長さのAβペプチドの形成をもたらし、これは凝集して、ADのホールマークである細胞外基質におけるプラークになる傾向がある(Selkoe DJ (2002) Alzheimer's disease is a synaptic failure. Science 298:789-791、Selkoe DJ (2003) Folding proteins in fatal ways. Nature 426:900-904、Meyer-Luehmann M, Spires-Jones TL, Prada C, Garcia-Alloza M, de Calignon A, Rozkalne A, Koenigsknecht-Talboo J, Holtzman DM, Bacskai BJ and Hyman BT (2008) Rapid appearance and local toxicity of amyloid-beta plaques in a mouse model of Alzheimer's disease. Nature 451:720-724)。早発性家族性ADは、APP又はAPPプロセシング酵素(PSEN1/2、BACE、ADAM)における遺伝的病変により説明されており、遅発性散発性AD(非病原性プロセシングから病原性APPプロセッシングへのスイッチ)のベースにある原因は未だ解明されていない。
【0196】
ADの病因におけるコレステロールホメオスタシスの重要性が、ヒトにおいて(Corder EH, Saunders AM, Strittmatter WJ, Schmechel DE, Gaskell PC, Small GW, Roses AD, Haines JL and Pericak-Vance MA (1993) Gene dose of apolipoprotein E type 4 allele and the risk of Alzheimer's disease in late onset families. Science 261:921-923、Saunders AM, Strittmatter WJ, Schmechel D, George-Hyslop PH, Pericak-Vance MA, Joo SH, Rosi BL, Gusella JF, Crapper-MacLachlan DR, Alberts MJ and et al. (1993) Association of apolipoprotein E allele epsilon 4 with late-onset familial and sporadic Alzheimer's disease. Neurology 43:1467-1472、Blacker D, Haines JL, Rodes L, Terwedow H, Go RC, Harrell LE, Perry RT, Bassett SS, Chase G, Meyers D, Albert MS and Tanzi R (1997) ApoE-4 and age at onset of Alzheimer's disease: the NIMH genetics initiative. Neurology 48:139-147、Hofman A, Ott A, Breteler MM, Bots ML, Slooter AJ, van Harskamp F, van Duijn CN, Van Broeckhoven C and Grobbee DE (1997) Atherosclerosis, apolipoprotein E, and prevalence of dementia and Alzheimer's disease in the Rotterdam Study. Lancet 349:151-154)及び動物モデルにおいて(Joyce CW, Amar MJ, Lambert G, Vaisman BL, Paigen B, Najib-Fruchart J, Hoyt RF, Jr., Neufeld ED, Remaley AT, Fredrickson DS, Brewer HB, Jr. and Santamarina-Fojo S (2002) The ATP binding cassette transporter A1 (ABCA1) modulates the development of aortic atherosclerosis in C57BL/6 and apoE-knockout mice. Proc Natl Acad Sci U S A 99:407-412、Singaraja RR, Fievet C, Castro G, James ER, Hennuyer N, Clee SM, Bissada N, Choy JC, Fruchart JC, McManus BM, Staels B and Hayden MR (2002) Increased ABCA1 activity protects against atherosclerosis. J Clin Invest 110:35-42、Van Eck M, Singaraja RR, Ye D, Hildebrand RB, James ER, Hayden MR and Van Berkel TJ (2006) Macrophage ATP-binding cassette transporter A1 overexpression inhibits atherosclerotic lesion progression in low-density lipoprotein receptor knockout mice. Arterioscler Thromb Vasc Biol 26:929-934、Wahrle SE, Jiang H, Parsadanian M, Kim J, Li A, Knoten A, Jain S, Hirsch-Reinshagen V, Wellington CL, Bales KR, Paul SM and Holtzman DM (2008) Overexpression of ABCA1 reduces amyloid deposition in the PDAPP mouse model of Alzheimer disease. J Clin Invest 118:671-682)調査されてきた。形質膜のコレステロール含分の変化は、膜在住タンパク質の機能に影響を及ぼすことが判明している(Scanlon SM, Williams DC and Schloss P (2001) Membrane cholesterol modulates serotonin transporter activity. Biochemistry 40:10507-10513、Lange Y, Ye J and Steck TL (2004) How cholesterol homeostasis is regulated by plasma membrane cholesterol in excess of phospholipids. Proc Natl Acad Sci U S A 101:11664-11667)。脳コレステロールの上昇が、ADを有する対象で判明し(Mori T, Paris D, Town T, Rojiani AM, Sparks DL, Delledonne A, Crawford F, Abdullah LI, Humphrey JA, Dickson DW and Mullan MJ (2001) Cholesterol accumulates in senile plaques of Alzheimer disease patients and in transgenic APP(SW) mice. J Neuropathol Exp Neurol 60:778-785)、コレステロールリッチな食餌を給餌されたウサギは、脳においてプラークを進展させることが判明している(Ghribi O, Larsen B, Schrag M and Herman MM (2006) High cholesterol content in neurons increases BACE, beta-amyloid, and phosphorylated tau levels in rabbit hippocampus. Exp Neurol 200:460-467)。インビトロデータは、プラスマローゲン欠乏細胞は、膜中での遊離コレステロールの上昇を有することを示し、ヒトでは、血清−プラスマローゲン欠乏は、認識状態の減退と関連することが示されている(Goodenowe DB, Cook LL, Liu J, Lu Y, Jayasinghe DA, Ahiahonu PW, Heath D, Yamazaki Y, Flax J, Krenitsky KF, Sparks DL, Lerner A, Friedland RP, Kudo T, Kamino K, Morihara T, Takeda M, Wood PL (2007) Peripheral ethanolamine plasmalogen deficiency: a logical causative factor in Alzheimer's disease and dementia. J Lipid Res. 48:2485-98)。これらの観察に基づき、我々は、コレステロールとプラスマローゲンとの相互作用を調査し、それら2つのバランスが、分泌されるAβに関して測定されるADの病理学的症状発現にどのように影響を及ぼすのかを同定した。
【0197】
提案される作用機序:膜脂質モジュレーションを介してのAPPプロセシングの変化
ヒト胎児由来腎臓(HEK293)細胞はAPP及びAPPをプロセシングするために必要な膜結合機構を発現するので、これは、APPプロセシングを研究するための良好なモデルとなっている。本インビトロ調査は、先行する研究を確証するものであったが、ここでは、コレステロール負荷及び/又はプラスマローゲン前駆体追加を介して膜流動性をモジュレートして、細胞外Aβ42含分を変化させた。HEK293細胞にコレステロールを負荷すると、48時間のインキュベーション期間の後に、細胞中において遊離コレステロールの量が17%(対照と比較して)上昇する。この上昇は、対照と比較して、調整培地中でのAβ42含分の並行する重要な増大(p<0.05)を随伴する。アミロイドの65%上昇は主に、β−セクレターゼ濃度の22%上昇により(
図18A、レーン2);基礎APPレベルは、コレステロール負荷を伴っても変化しないままである。コレステロール負荷されたHEK293系をプラスマローゲン前駆体PPI−1005で処理すると、細胞膜の遊離コレステロール含分が著しく低下した(p<0.05)。調整培地中のAβ42含分は20μM濃度で、コレステロール負荷されたレベルから70%低下し(p=0.0001)、調整培地中のsAPPα含分は上昇した。APPプロセシングに対する効果は、APP発現の変化によるようではなく、むしろ、APPプロセシング酵素の発生量の変化によるAPPプロセシング経路の変化によるようである。β−セクレターゼは、20μM濃度のPPI−1005で正常レベルに回復し、sAPPα種の73%上昇が、調整培地中で検出された。この上昇は、sAPPα形成をもたらす酵素であるADAM10の63%上昇により説明された(
図18A、レーン3)。
【0198】
プラスマローゲン追加後の細胞のコレステロールプロファイルの変化は、プラスマローゲン濃度を上昇させることで、遊離コレステロールのエステル化をもたらす酵素であるSOAT1が、約25%アップレギュレーションされる(コレステロール負荷された状態と比較して)(
図18A、レーン5)という観察により説明され得る。
【0199】
別の研究では、PPI−1005の効果を、コレステロールを負荷されていない野生型HEK293細胞で調査した。
図18Bは、ADAM10(35%)及びSOAT1(50%)の発生量の濃度依存性上昇を示しており、BACE1又はAPP発生量に変化は観察されなかった。プラバスタチンによるHMGCoAレダクターゼ阻害により、HEK293細胞からコレステロールが枯渇するが、ADAM10及びSOAT1タンパク質レベルは一定なままであった(
図18C)。プラスマローゲン及びプラバスタチン処理は両方とも、細胞中の遊離コレステロールの割合を著しく低下させる一方で、細胞中のADAM10及びSOATレベルを変えるのは、プラスマローゲン処理のみである。このことは、ADAM10及びSOAT1発生量に対する効果は、膜コレステロール含分ではなく膜プラスマローゲン含分の効果であることを示唆している。
【0200】
したがって、膜在住タンパク質の発生量を、細胞プラスマローゲン含分をモジュレーションすることによりインビトロで変化させることができ、これは、本明細書に記載されているプラスマローゲン前駆体で細胞を処理することにより達成される。
【0201】
材料及び方法
コレステロール負荷
DMEM中、10%FBS、37℃、5%CO
2で培養されたHEK293細胞を、処理の前日に播種した。翌日、細胞膜に、外生コレステロールを10μg/培地mlの濃度で、記載の通りにコレステロールを送達するための担体としてメチル−β−シクロデキストリンを使用して負荷した(Rong JX, Shapiro M, Trogan E and Fisher EA (2003) Transdifferentiation of mouse aortic smooth muscle cells to a macrophage-like state after cholesterol loading. Proc Natl Acad Sci U S A 100:13531-13536)。
【0202】
コレステロールアッセイ
細胞をプラスマローゲン前駆体PPI−1005で、又は対照としてのエタノールで処理した。細胞をVersene:TryPLe expressカクテルを使用して48時間後に収集し、PBSで洗浄した。脂質を1%Triton X-100を含有するクロロホルムで抽出した。有機フラクションを回収し、窒素流下で乾燥させた。乾燥させた脂質をコレステロール反応緩衝液(Biovision社製、Mountain View、CA)に再懸濁させ、コレステロールの全フラクション、遊離フラクション、及びエステル化フラクションを、コレステロール定量化キット(Biovision社製、Mountain View、CA)を製造者の推奨により使用して定量化した。コレステロールを初めに、μg/細胞100万として算出し、各実験で対照条件に対するパーセンテージとして報告した。
【0203】
アミロイドアッセイ
HEK293細胞に、上記の通りの外生コレステロールを負荷し、PPI1005で、又は対照としてのエタノールで処理した。処理細胞からの調整培地を48時間のインキュベーション期間の終了時に集めた。Aβ
1−42含分をアッセイするために、調整培地を、Amicon超遠心フィルターデバイス(Millipore社製、Billerica、MA)を使用して濃縮し、その後、マイクロプレートに負荷した。ELISAを製造者の推奨(Covance Labs社、Princeton、NJ)により実施した。反応を、基質を加えた25分後にクエンチし、吸光度を495nmで読み取った。実験を三重に実施した。値をpg/調整培地mlとして算出し、未処理のコレステロール負荷された対照HEK293細胞からの調整培地中で検出されたAβの量に対して正規化した。
【0204】
免疫ブロット法及び免疫沈降
HEK293細胞をアミロイドアッセイにおいて記載された通りに処置した。細胞ペレットをPBSで洗浄し、プロテアーゼ阻害剤カクテル(Sigma社製、St. Louis、MI)を含有するRIPA緩衝液中で溶解させた。細胞溶解産物中のタンパク質を、Bio-Radタンパク質アッセイ(Bio-Rad社製、Hercules、CA)を使用して定量化した。下記の抗体をウエスタン分析のために使用した:APP(Calbiochem社製、Darmstadt、Germany)、BACE1及びADAM10(Millipore社製、Temecula、CA)、sAPPα(IBL社製、Gunma、Japan)、SOAT1(Santa Cruz Biotechnology Inc.社製、CA)及びβ−アクチン(Sigma社製、St. Louis、MI)。免疫沈降を実施して、調整培地中のsAPPαを推定した。簡単には、sAPPαに対する抗体を調整培地に加え、4℃で16時間インキュベーションした。IPを、タンパク質A/Gアガロースビーズと共に4℃で6時間インキュベーションすることにより実施した。ビーズをPBSで洗浄し、溶離したタンパク質を免疫ブロット法により抗sAPPα抗体を用いて検出した。バンド強度を、Image Processing and AnalysisをJava(ImageJ)ソフトウェア(National Institutes of Health製、Bethesda、MD)で使用して定量化した。
【0205】
統計学的分析
データの統計学的分析を、Microsoft(商標) Office Excel 2007及びJMPバージョン8を使用して行った。多重比較Dunnett試験を適用して、処理と対照との間の差違を分析した。
【0206】
請求項に定義されている本発明の範囲から逸脱することなく、いくつかの変化及び変更を行うことができることは、当業者には明らかであろう。
【0207】
下記の参考文献、さらに、上記で示された参考文献は、参照により本明細書に援用される。
【0208】
(参照文献)
1. Calderini G, Bonetti AC, Battistella A, Crews FT, Toffano G (1983) Biochemical changes of rat brain membranes with aging. Neurochem Res. 8:483-92
2. Hashimoto M, Hossain S, Masumura S (1999) Effect of aging on plasma membrane fluidity of rat aortic endothelial cells. Exp Gerontol. 34:687-98
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