【実施例5】
【0092】
インビボモデルでの哺乳動物におけるmiR−33アンチセンスによるABCA1レベルの操作
miR−33アンチセンスアプローチによるABCA1レベルの操作もまた、インビボモデルでの哺乳動物において増大したHDLコレステロールレベルを生じる。尾静脈注射を、PBS(ビヒクル)、LNA−miR−33aアンチセンス、又はLNA対照オリゴヌクレオチドを用いる処置の6週間前の間、及び処置の間、西洋型食餌(すなわち、乳脂肪から42%kcalを補足した)を与えたマウスに実施した。血液を、治療の開始前にコレステロール/トリグリセリドプロファイルのために実験用マウスから顎下腺出血により得た。注射を行うために、20mg/kg/日のmiR−33−LNA又は対照LNAをPBS(全体積200μl)に溶解し、各日、同時間に毎日の尾静脈注射を介して3日連続投与した。マウスを、最後の尾静脈注射から48時間後に屠殺した。5日にわたる注射後、マウスを屠殺し、血清を以下のように回収した。屠殺の際に、総量1mLの血液を右側脳質穿刺によってマウスから得た。血液を5分間8,000rpmにて遠心分離して血清を得、−80℃にて凍結した。血清コレステロール、トリグリセリド、グルコース、アラニンアミノトランスフェラーゼ(ALT)及びアスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ(AST)の全てを、マサチューセッツジェネラルホスピタル、比較医学のためのセンター、診断研究所においてHeska Dri−Chem 4000 Chemistry Analyzer(Heska,Loveland,CO)によってmiR−33−LNA又は対照−LNAでの処置前後に測定した。プールした血清のFPLC分析を記載(Hyogo Hら,(2002)J.Biol.Chem.277:34117)されるように実施した。血漿HDL−コレステロール濃度は、LNA−対照で処置したマウスと比較して、LNA−miR−33aアンチセンスで処置した動物において著しく増加した(
図10A、B及び表2)。対照的に、LDL−コレステロール、トリグリセリド、又はグルコースレベルの血漿濃度で有意な効果は存在しなかった(
図10B〜D及び表2)。これらの実験において、肝毒性(血漿AST/ALT)も見られなかった(
図10E、F及び表2)。LNA−miR−33aアンチセンス処置に応答して血漿HDL−コレステロールにおいて観察された増加は、インビボでのmiR−33aによるABCA1依存性コレステロール流出の調節と一致する。
【0093】
これらの結果により更に、コレステロール生成及び脂肪合成遺伝子の重要な調節因子である、哺乳動物のSREBPファミリーの転写因子が、脊椎動物において細胞内コレステロールレベル及びコレステロール恒常性を決定するSREBP宿主遺伝子産物と協調して機能する、保存されたmiRNA(miR−33a/b)に対する宿主であることが確認される。
図10は、miR−33及びその宿主遺伝子産物SREBPによるコレステロール恒常性の協調した調節についてのモデルを示す。miR−33は、その3’UTRを標的とすることによってABCA1翻訳を抑制する。このステップは、コレステロール産生遺伝子のトランス活性化を介してコレステロール生合成及び取り込みを活性化する、SREBPの発現と協調する。コレステロール蓄積は、SREBP経路を阻害し、ABCA1の発現を活性化する。そのABCA1は、細胞膜に移行し、apoA−I及びHDLへのコレステロール流出を媒介する。
【0094】
【表2】
表2.ロックド核酸(LNA)−miR−33aアンチマー(antimer)を有する西洋型食餌を与えたマウスの処置。血清コレステロール(A)、血漿トリグリセリド(B)、グルコース(C)、AST(D)、及びALT(E)の全てを、PBS(ビヒクル)、マウスmiR−33aに向けられたLNA−アンチセンスオリゴヌクレオチド、及びスクランブルLNA対照(LC)オリゴヌクレオチドの注入前後に西洋型食餌を与えたマウスにおいて測定した。
【0095】
これらの実施例に示すように、コレステロール生成及び脂肪合成遺伝子の重要な調節因子である、哺乳動物のSREBPファミリーのメンバーの転写因子は、脊椎動物において細胞内コレステロールレベル及びコレステロール恒常性を決定するSREBP宿主遺伝子産物と協調して機能する、保存されたmiRNA(miR−33a/b)に対する宿主である。miR−33は、インビトロでのコレステロール輸送及びインビボでのHDL合成にとって重要な結果を有する、ABCA1コレステロール輸送体の転写後制御に影響を及ぼす。
【0096】
(予測実施例6)
miR−33によるNPC1の標的化
ニーマンピックCI型タンパク質(NPC1)は、トランス−ゴルジネットワーク(TGN)を介して、後期のエンドソーム/リソソームから形質膜までのコレステロール/脂質の動員において重要な役割を果たす。このプロセスは、発生期のHDLを生成するためにABCA1を介して行われる細胞表面におけるapoA−I及び他のアポリポタンパク質に対するリン脂質及びコレステロールの動因と協調すると考えられる。NPC1の3’UTRは、1つの予測されるmiR−33標的部位を保有する(7−mer;TargetScan 4.2)。細胞内コレステロール輸送のその既知の役割並びに最近のABCA1及びコレステロール流出に対する機能的関連のために、そのNPC1の3’UTRはmiR−33に対する候補標的である。
【0097】
第1に、miRNAプロセシング酵素のドローシャ及びダイサーを標的とするsiRNAの使用によって、miRNAが、上記の3つの細胞株においてNPC1レベルを制御するか否かを決定する。第2に、Pre−miR−33及び抗miR−33オリゴヌクレオチドを、NPC1調節におけるmiR−33の特定の役割を扱うためにこれらの細胞株に導入する。NPC1タンパク質レベルを、対照としてβ−チューブリンを用いる免疫ブロット法によって決定する。NPC1 mRNAレベルに対するmiR−33操作の何らかの効果をqRT−PCRにより評価する。NCP1タンパク質及び/又はmRNAレベルに対する効果をmiR−33操作後に観察した場合、予測されるmiR−33標的配列を保有するNPC1 3’UTRを、pMIR−REPORTベクター内にクローニングし、その後、ABCA1に関して本明細書で上記したようにmiR−33標的部位を変異し、ルシフェラーゼ発現分析を行う。コレステロール輸送/流出におけるNPC1の潜在的な役割を確立するために、J774マウスマクロファージ細胞株におけるNPC1のsiRNA標的化の効果を、ABCA1に関して上記した方法を用いて試験する。
【0098】
前述の説明から、変更及び修飾が種々の用途及び状態を採用するために本明細書に記載される本発明に対してなされ得ることは明らかである。かかる実施形態はまた、添付の特許請求の範囲内である。本明細書の可変物の任意の定義における要素の記載の列挙は、記載した要素の任意の単一の要素又は組合せ(又は部分的組合せ)として可変のものの定義を含む。本明細書の実施形態の列挙は、任意の単一の実施形態又は任意の他の実施形態若しくはその一部と組み合わせた実施形態を含む。
【0099】
参考文献
本出願に記載した全ての特許、特許出願、データベース登録、及び刊行物は、各々の独立した特許、データベース登録、及び刊行物が、参照として組み込まれている具体的かつ個々に示されるものと同程度まで本明細書に参照として組み込まれている。本明細書に参照として組み込まれるものとしては、限定されないが、以下のものが挙げられる。
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【0100】
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