【実施例】
【0096】
以下の実施例は本発明をさらに例証する。しかしながら、実施例が限定ではなく例示のために記載され、様々な修飾が当業者によって行えることは理解される。
【0097】
実施例1
抗体の産生
この実施例の抗体Iは2つの重鎖および2つの軽鎖を含み、各々の重鎖は配列番号9によって与えられるアミノ酸配列を有し、各々の軽鎖は配列番号10によって与えられるアミノ酸配列を有する。抗体Iを作製し、以下の通り精製することができる。適切な宿主細胞(HEK293またはCHO等)は、最適な所定のHC:LCベクター比、または重鎖(配列番号9)および軽鎖(配列番号10)の両方をコードする単一ベクターシステムを使用して、抗体を分泌するための発現システムにより一過性にまたは安定的にトランスフェクションする。一般的に使用される技法のうちのいずれかを使用して、抗体が分泌された清澄培地を精製する。例えば、培地は、好都合には、適合性のある緩衝液(リン酸緩衝生理食塩水(pH7.4)等)により平衡化されたプロテインAまたはプロテインGのカラムへ適用することができる。カラムを洗浄して非特異的結合成分を除去する。結合した抗体は、例えばpH勾配(0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液pH6.8から0.1Mクエン酸ナトリウム緩衝液pH2.5等)によって溶出される。抗体画分を中和し(例えばpH8.0の1M TRISの1/10の体積の添加によって)、検出し(SDS−PAGEによって等)、次いでプールする。意図される使用に依存して、さらなる精製はオプションである。抗体は通常の技法を使用して濃縮および/または滅菌濾過することができる。可溶性の凝集物およびマルチマーは、サイズ排除クロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィーまたはハイドロキシアパタイトクロマトグラフィーが含まれる通常の技法によって効果的に除去することができる。これらのクロマトグラフィー工程後の抗体の純度は99%を超える。産物は直ちに−70℃で凍結または凍結乾燥することができる。
【0098】
表面プラズモン共鳴による親和結合測定(BIAcore)
ヒト、カニクイザルまたはウサギのIL−23への抗体親和性(K
D)は、物質移動モデルの1:1結合によるBIAcore Biosensor 2000およびBIAevaluationソフトウェアを使用して決定される。捕捉タンパク質(プロテインA、Calbiochem)は、N−エチル−N−(ジメチルアミノプロピル)−カルボジイミド(EDC)およびN−ヒドロキシスクシンイミド(NHS)の混合物を使用して、CM4バイオセンサーチップのフローセル1および2上のカルボキシル基へ遊離アミン基経由でカップルされる。フローセルは、0.01M HEPES(pH7.4、150mM NaCl)、0.005%界面活性剤P20を含有する緩衝液を使用して、80μL/分の流速でモニターする。抗体Iをフローセル2上で捕捉して、合計40〜60反応単位(RU)を得る。次いでIL−23を、濃度を増加させる複数のサイクルでフローセル1および2の上に注入し(ヒトおよびサルのIL−23について0.62nM〜30nMおよびウサギIL−23について30nM〜240nM)、各々のサイクルの間にはグリシンHCl(pH1.5)を使用する再生工程が続く。フローセル1を対照として使用してIL−23の非特異的結合をモニターし、データはフローセル1を引いたフローセル2を反映する。各々のサイクルは抗体捕捉工程、続いて30分の解離期間による1つの濃度でのIL−23の注入、次いで再生を含む。緩衝液がIL−23の代わりに注入される2つのサイクルはベースラインサブトラクションのための対照として役立ち、プロテインA表面からの抗体Iの解離と関連したドリフトについて補正する。親和性を37℃で測定する。アッセイはヒト、サルまたはウサギのIL−23により2回行う。抗体Iは、333nMでマウスIL−23、200nMでラットIL−23、333nMでヒトIL−12、500nMでヒトIL−27または833nMでヒトIL−35により各々2回試験する。
【0099】
各々の抗原についての結合速度(k
on)および離脱速度(k
off)は物質移動モデルの1:1結合を使用して評価する。親和性(K
D)は、関係性K
D=k
off/k
onに従う結合動態から計算される。
【表3】
【0100】
抗体Iは、この方法を使用してヒト、カニクイザルおよびウサギのIL−23により濃度依存的結合応答を生じる。IL−23の結合の飽和は、チップ表面上で捕捉された80〜100反応単位の抗体Iを使用して30nM(ヒトおよびサル)および240nM(ウサギ)の濃度で達成される。試験された条件下で、抗体Iへのヒト、サルまたはウサギのIL−23の結合親和性(K
D)は、それぞれ21、55または53,000pMである(表1)。マウスIL−23、ラットIL−23、ヒトIL−12、ヒトIL−27またはヒトIL−35は、これらの条件下で抗体Iへ結合しない。
【0101】
IL−23受容体へのIL−23結合のインビトロ阻害
組換えヒトIL−23R/Fcは、N−エチル−N−(ジメチルアミノプロピル)−カルボジイミド(EDC)およびN−ヒドロキシスクシンイミド(NHS)の混合物を使用して、CM4バイオセンサーチップのフローセル2上のカルボキシル基へ遊離アミン基経由でカップルされる。組換えヒトIgG
1Fc(R&D Systems,Inc.)は同じ方法を使用して同じチップのフローセル1へカップリングされる。マウス抗6×HIS抗体(R&D Systems,Inc.)は同じ方法を使用して同じチップのフローセル4へカップリングされる。マウス抗6×HISを使用して、HISタグを含有するヒトIL−12Rβ1/Fc(R&D Systems,Inc.)を前捕捉する。フローセルは、0.01M HEPES(pH7.4、150のmM NaCl)、0.005%界面活性剤P20を含有する緩衝液を使用して、30μL/分の流速でモニターする。組換えヒトIL−23は、16倍モル過剰の抗体Iの添加の有りまたは無しで90分間プレインキュベーションする。各々の組み合わせを150μLの全体積でフローセル1、2および4の上に注入し、各々の試験の間にはグリシンHCl(pH1.5)を使用する再生工程が続く。フローセル1を対照として使用してチップへのIL−23の非特異的結合をモニターする。BIAevaluationソフトウェアを使用して個別の結合センサーグラムのオーバーレイを作成する。
【0102】
抗体Iはインビトロの機能アッセイを使用して、ヒトIL−23を中和する。さらに、抗体IはIL−23R/FcへのIL−23の結合を防止する。表3中のデータは、
(A)IL−23はIL−23R/Fcへ結合する;
(B)抗体I/IL−23複合体はIL−23R/Fcへ結合しない;
(C)IL−23はIL−12Rβ1/Fcへ結合する;および
(D)抗体I/IL−23複合体はIL−12Rβ1/Fcへ結合する
ことを示す。
【表4】
【0103】
したがって、抗体IがIL−23RサブユニットへのIL−23の結合を阻害するので、抗体IはIL−23を中和する。加えて、抗体IはIL−12Rβ1サブユニットへのIL−23の結合を阻害しない。
【0104】
マウス脾細胞における抗体IによるヒトまたはカニクイザルのIL−23のインビトロ中和
抗体Iの評価のために、IL−17の最大産出のおよそ50%を与えるヒトまたはカニクイザルのIL−23の濃度を使用する(16pM)。800,000〜4.4pMの範囲の抗体Iの用量応答を評価する。抗体IまたはIgG
4対照抗体は、細胞への添加の前に分離したウェル中でヒトまたはカニクイザルのIL−23と37℃で90分間組み合わせる(前インキュベーション混合)。
【0105】
IL−23およびIL−2により刺激されたC57BL/6マウスからの脾細胞は、IL−17を産生する(Aggarwal,S.et al.、「Interleukin−23 Promotes a Distinct CD4 T Cell Activation State Characterized by the Production of Interleukin−17」、Journal of Biological Chemistry,278(3):1910−1914 2003)。マウス脾細胞を、アッセイ培地(10%FBS、1%非必須アミノ酸、1mMピルビン酸ナトリウム、100U/mLペニシリン、100μg/mlストレプトマイシン、0.00035%2−メルカプトエタノール、50ng/mLヒトIL−2を含有するL−グルタミン入りRPMI1640)中で5×10
6WBC/mLで再懸濁し、96ウェル培養プレートの中へ1ウェルあたり体積100μLで分注する。抗体I/IL−23の前インキュベーション混合物を1ウェルあたり100μLとして分注し、5%CO
2中で37℃でインキュベーションする。48時間後に、培養上清は、各々の希釈で二重でウェルを使用してキット中の説明書に従ってR&D Systemsからの商業的なELISAキット(DY421)を使用して、mIL−17について試験する。IC
50はデータの4パラメーター曲線フィッティングを使用して決定する。
【0106】
マウス脾細胞はヒトまたはカニクイザルのIL−23に応答してIL−17を産生する。抗体IはヒトまたはカニクイザルのIL−23を中和する。計算されたIC
50はヒトについて82±11pMおよびカニクイザルIL−23について120±14pMであり、各々についてn=2である(表4)。これらの結果は抗体IがインビトロでヒトまたはカニクイザルのIL−23を中和できることを実証する。
【表5】
【0107】
ヒトIL−23の中和:急性、局所的
動物(C57BL/6メス、Jackson Labsからの8週齢)を収容し(到着後最小72時間)、実験の前および研究の継続の間に正常に給餌する。体毛を電気バリカンによりマウスの背から除去し、3日後にマウス(1群あたりn=10)に抗体IまたはIgG
4アイソタイプ対照抗体(1マウスあたり0.54mg)を皮下注射する。その後の2日間、背の1つの側面上の1つの場所においてヒトIL−23(50μL中の1μgを滅菌生理食塩水により希釈した)を、29ゲージ針を使用してマウスに皮内注射する。滅菌生理食塩水を背の他の側面上で賦形剤対照として使用する。最後のヒトIL−23注射の24時間後にマウスを屠殺し、皮膚サンプルを、体毛の境界から少なくとも5mm離して、IL−23を注射した側面および滅菌生理食塩水を注射した側面から摘出する。皮膚サンプルはmRNA研究のために液体窒素中で直接凍結する。
【0108】
全RNAは、Lysing Matrix Aシェーカーチューブ(Qbiogene Inc./Bio101 Systems)中でのホモジナイゼーション、続いてRNeasyミニキットクリーンアップ(Qiagen,Inc.)によって凍結皮膚組織から単離する。RNA濃度は260nmでの分光測光吸収から決定する。RNAはHigh−Capacity cDNA Reverse Transcription Kit(PE Applied Biosystems)を使用してcDNAへと逆転写する。すべての反応はABI Prism 7900HT(PE Applied Biosystems)上で三重で行って、アッセイしたmRNAの相対的存在量を決定する。マウスIL−17A(Mm00439618_m1)、マウスIL−17F(Mm00521423_m1)およびマウスケラチン−16(Mm00492979_g1)についてのプライマープローブセットは、PE Applied Biosystemsから得る。18SおよびGAPDの両方を内因性の対照として測定して、遺伝子発現レベルにおける変動性を正規化する。発現データはデルタ(Δ−Δ)Ct方法を使用して分析する。個別のCt値は三重測定の平均として計算される。実験は2回行う。非対合t検定は必要に応じて使用する。P<0.05は統計的に有意であると判断される。
【0109】
抗体Iの全身投与がヒトIL−23への局所的反応を中和できるかどうか調査するために、ヒトIL−23タンパク質をマウスへ皮内注射して皮膚のIL−23曝露の下流の帰結を調査する。毎日生理食塩水で処理した野生型マウスからの皮膚は検出可能なレベルのマウスIL−17AまたはマウスIL−17Fを示さない。
【0110】
しかしながら、ヒトIL−23の注射はマウスIL−17AおよびマウスIL−17FのmRNA発現を誘導する(表5)。抗体Iによる処理はヒトIL−23誘導性のIL−17AおよびIL−17FのmRNA発現を無効にしたが、アイソタイプ対照抗体ではそのようなことはなかった。
【表6】
【0111】
さらに、ヒトIL−23注射はケラチン−16(増殖関連性サイトケラチン)の発現増加と関連した表皮肥厚を誘導する。ケラチン−16の誘導は抗体Iの投与によって有意に阻害される(マウスケラチン−16が何倍誘導されたかは、アイソタイプ対照抗体について5.21±2.72vs抗体Iについて1.23±0.72である;p=0.0003)。
【0112】
総合すると、これらの結果は、抗体Iが急性の局所的なインビボのアッセイにおいてヒトのIL−23誘導性のマウスIL−17A、IL−17Fおよびケラチン−16のmRNA産生を効果的に阻害することを示す。
【0113】
網膜組織の交差反応性:免疫組織化学によるインビトロ分析
新鮮な凍結したヒトおよびカニクイザルの網膜組織(5〜7μm厚)の切片をクライオスタット上で切断する。切片は室温でおよそ10分間アセトン中で固定し、室温で一晩乾燥させ、使用までおよそ−80℃で保存する。続いてアセトン固定したスライドをフリーザーから取り出し、室温で一晩乾燥させる。以下の工程は室温で行う。スライドを1×Morphosave(商標)中でおよそ15分間インキュベーションして形態を維持する。スライドを1×PBS中で10分間洗浄し、次いで1×PBS中の0.3%H
2O
2中で室温でおよそ20分間インキュベーションして内因性のペルオキシダーゼ活性をクエンチングする。インキュベーション後に、スライドを1×PBS中でおよそ5分間2回洗浄する。内因性のビオチンを、アビジン溶液およびビオチン溶液中での連続的なインキュベーション(各々およそ15分)によってブロックする。ビオチン中でのインキュベーションに後続して、組織切片をブロッキング抗体溶液により30分間ブロックする。抗体Iまたは対照ヒトIgG
4を最適濃度(2.5μg/mLまたは5μg/mL)または最適濃度の5倍(25μg/mL)で切片へ適用し、室温で1時間インキュベーションする。次いでスライドをリンスし、ビオチン化マウス抗ヒトIgG
4抗体(2.5μg/mL)により30分間インキュベーションする。結合した一次抗体/二次抗体複合体は、ストレプトアビジン−ビオチン−ホースラディシュペルオキシダーゼコンジュゲートおよびジアミノベンジジンクロモゲン基質により検出する。
【0114】
ヒトIL−23によりトランスフェクションしたCHO細胞をすべての実験において陽性対照サンプルとして使用する。親CHO(トランスフェクションしなかった)細胞を陰性対照サンプルとして使用し、染色しなかった。結合は、アイソタイプ対照抗体(ヒトIgG
4)により染色した連続切片において観察されない。抗体Iは観察可能に網膜組織に結合しない。
【0115】
抗体Iについてのエピトープマッピング:アラニンスキャニング
酵母ディスプレイ抗原を使用するエピトープマッピングに対する背景
エピトープマッピング研究を行って、抗体I結合のために必要とされるヒトIL−23 p19サブユニット(配列番号15)中の特異的アミノ酸を決定する。抗体Iのエピトープマッピングは、酵母ディスプレイプラットフォームと併用したアラニンスキャニングの利用によって行う。
【0116】
ヒトIL−23のp19サブユニットの曝露されるアミノ酸位置はPyMOLにおける分析によって同定する。IL−23のp19サブユニットの曝露される位置または部分的に曝露される位置を表6中で示す。曝露されないことが決定された位置はこの研究から省略される(すなわち、曝露されるかまたは部分的に曝露されるヒトIL−23のp19サブユニットのアミノ酸位置のみが変異された)。したがって、すべての位置が調査されるとは限らない。
【0117】
エピトープマッピングはIL−23のp19サブユニット上のみで行われるが(抗体Iに関してIL−23のp40サブユニット上で行われたエピトープマッピングは、p40サブユニットへ検出可能に結合しない)、ヒトIL−23のp19サブユニットおよびp40サブユニットの両方は、酵母ディスプレイプラットフォーム中で共発現されなくてはならない。
【0118】
エピトープを同定するために、単一酵母にディスプレイされたヒトIL−23のp19サブユニットのアラニン変異体を構築し、抗体結合を決定する。酵母にディスプレイされた野生型抗原に比較した変異体の抗体への親和性を測定することによって、抗体結合へのアミノ酸側鎖のエネルギー的寄与を決定することは可能である。
【0119】
変異体ライブラリー構築
p40遺伝子は、可溶性発現プラスミドpYKY(ウラシル選択マーカーを有する)の中へクローン化される。p19サブユニット遺伝子は、酵母ディスプレイプラスミドpEMD3(N末でのトリプトファン選択マーカーおよびV5タグならびにトリプトファン選択可能なマーカー下で酵母の表面上でディスプレイされるC末でのGPDL2アンカータンパク質を含有する)の中へクローン化される。クローニングのために使用される制限部位は、それぞれpYKYプラスミド中のXhoIおよびBamHIならびにpEMD3プラスミド中のAvrIIおよびXmaIである。
【0120】
アラニン変異をすべての曝露される位置で導入し、V5抗体および抗体Iにより二重陽性染色について試験する。p19アラニン変異体のパネルは、部位特異的変異誘発(Kunkel変異誘発)を使用してpEMD3プラスミドにおいて構築する。簡潔には、CJ236(New England Biolabs)の中への形質転換後に、pEMD3ベクターのウラシル含有ssDNAが産生される。形質転換した単一コロニーを一晩増殖させ、M13K07ヘルパーファージ(New England Biolabs)による感染後にssDNAをレスキューし、QIAprep spin M13 kitを使用してssDNAを精製する。アラニン変異をコードするオリゴヌクレオチドは、85℃で5分間変性させ、1時間にわたって55℃へ上昇させ、55℃で5分間維持し、次いで氷上で冷却することによって、ウラシルテンプレートへ20:1モル比でアニールさせる。次いで第2の鎖合成は、T4ポリメラーゼ、T4リガーゼおよびdNTPs(Invitrogen)により行う。反応物をTop10大腸菌(Invitrogen)の中へエレクトロポレーションし、単一コロニーをピックアップし、dsDNAをQIAprepミニプレップキット(Qiagen)を使用して調製し、変異をシーケンシングによって確認する。次いで、p19変異体をp40 pYKYプラスミドと共にBJ5464酵母(ATCC)に共形質転換し、トリプトファンおよびウラシルなしの完全最少培地中で増殖させる。
【0121】
抗原結合の損失についての変異抗原ライブラリーの選択
抗体エピトープを同定するために、変異抗原ライブラリーをフローサイトメトリーによって抗体結合の損失について選択する。酵母細胞を、2つの抗体(そのうちの1つのはマッピングされ、そのうちの1つはされない)により染色する。酵母にディスプレイされた抗原変異体は、第1の抗体への結合は損失しているが第2の抗体への結合は保持していることについて選択する。第2の抗体の結合が保持されていることは、変異体がエピトープ中の変異に基づいて選択されており、折畳まれないかまたは提示が不十分である変異体を選択しているのではないことを保証する。
【0122】
本分析のために、第1の抗体(すなわちそのエピトープがマッピングされる抗体)は抗体Iであり、第2の抗体は抗V5の抗体である。酵母は、初めに抗V5抗体(Invitrogen)および抗体I、続いて抗V5抗体(発現/ディスプレイ)を検出するために二次ヤギ抗マウスIgG
2a(Invitrogen、Alexa Fluor(登録商標)647)および抗体Iを検出するためにヤギ抗ヒトκRPE(Southern Biotech)により染色する。酵母はBecton Dickinson LSRII上でのフローサイトメトリーによって分析し、光散乱(V5/Alexa647および抗体I/PE染色)による細胞のゲーティングに基づいて50,000イベントを収集する。各々の抗体Iおよび抗V5の抗体の結合についてのデータ解析は、FACSDiva v6.1.2ソフトウェア(二重染色された酵母細胞のパーセンテージを計算する)を使用して行う。
【0123】
結果
提示されたタンパク質分割に起因して、最もよい時で酵母の50%がIL−23 p19をディスプレイするだろう。二重陽性酵母細胞の検出は、調査中のアミノ酸位置がIL−23への抗体Iの結合と関連しないことを実証する。V5染色のみの検出は、タンパク質が発現されて酵母の表面にディスプレイされ、かつ調査中のアミノ酸位置が抗体Iの結合のために重要であることを実証する。隣接した残基に比較して二重陽性染色において>50%の減少を実証した残基が、結合のために重要であると決定する。これらの残基は表7中で強調される。いくつかの位置はV5および抗体Iの結合の両方の欠如を実証し、アミノ酸残基はタンパク質立体配座について必要かもしれないことを示唆する。IL−23 p19サブユニット(配列番号15)中の各々の曝露されるかまたは部分的に曝露されるアミノ酸位置の体系的調査は、V5および抗体Iの結合についての二重陽性染色の量の減少に基づいて、位置94P、95S、97L、98P、99D、123W、130S、133Pおよび137WがヒトIL−23へ抗体I結合のために重要であることを実証する(表7)。
【0124】
エピトープマッピングは水素−重水素交換を使用しても行う。この水素−重水素交換エピトープマッピングの結果は、抗体IのエピトープがヒトIL−23の残基81〜99および115〜140(配列番号15)内の立体配座的エピトープであることを例証する。
【表7-1】
【表7-2】
【表8】
【0125】
IL−23抗体の物理化学的特性
抗体Iは医薬的に許容可能な可溶性、化学的安定性および物理的安定性を有する。
A.可溶性
十分に高い可溶性が好都合な用量を可能にするために所望される。例えば、100kgの患者への1.0mL注射によって投与される1mg/kgの用量は、100mg/mLの可溶性を必要とするだろう。加えて、高濃度で高分子量(HMW)凝集なしにモノマー状態で抗体を維持することも所望される。
【0126】
抗体Iは、生理的な緩衝液(PBS、pH7.4)中で、2つの薬剤製品製剤条件(10mMクエン酸塩、pH6、150mM NaCl有りおよび無し)下でおよそ1mg/mLで製剤化される。抗体をAmicon Ultra 30kDa分子量フィルター(Millipore、UFC803204)を介して2000×Gで遠心分離して、同じ緩衝液条件を維持しながら抗体を濃縮する。装置の溶解限度または最小のホールドアップ体積が達成されるまで、遠心分離を継続する。100mg/mLを超える可溶性が3つのすべての条件下で達成される。
【0127】
サイズ排除クロマトグラフィー(SEC)を使用して、高分子量(HMW)ポリマーの増加が100mg/mLを超える抗体製剤の濃度に後続して起こったかどうかを査定する。出発の抗体溶液および濃縮された抗体溶液を、12mMリン酸塩、500mM NaCl、pH7.4からなる移動相を使用してTSK3000 SWXLカラム(TOSOH Bioscience)の上に注入する。可溶性ポリマーの大きな増加は試験された任意の製剤条件下で観察されない(SECによって<0.6%のHMWポリマー)。
【0128】
B.化学的安定性
抗体Iを10mM緩衝液(pH4、5、6および7について10mMクエン酸塩;pH8について10mM TRIS)中の1mg/mLで製剤化し、4、25または40℃で4週間インキュベーションする。化学的安定性は、SEC(上述の方法を参照)、陽イオン交換クロマトグラフィー[CEX;ダイオネックス、緩衝液A(20mMリン酸ナトリウム(pH5.8)および0.36%CHAPS)と緩衝液B(20mMリン酸ナトリウム(pH5.8)、0.36%CHAPS、200mM塩化ナトリウム)との間の勾配を使用して]、CE−SDS(Agilent Bioanalyzer、還元条件下でタンパク質230チップによる)および酵素消化された材料のLC−MS特徴づけによって、モニターする。
【0129】
抗体Iは、40℃で4週間後でさえpH5〜8にわたりポリマー形成(SEC)に対して安定的である。pH4では、有意なポリマーは25℃で観察されないが40℃で観察される(4週間)。予想されるペプチド結合の加水分解または短縮は、CE−SDSによってpH4(40℃)で明白である。pH4.0での分解レベルはIgG
4抗体に特有である。pH4より上(pH5〜8)では、レベルは低く時間とともに一貫して変化せず、したがって恐らくバックグラウンドノイズを表わす。
【0130】
この仮説は、pH6で短縮を検出しないがpH4で典型的なレベルの抗体短縮を測定するLC−MS分析と一致する。チャージしたバリアントにおける変化をCEXによってモニターする。出発材料は、このアッセイの解像力を最小化にする3つの有意な主要なピークからなる。一般に、25℃および40℃でストレスをかけたサンプルは4℃対照よりも高いが、レベルはインキュベーション時間と共に増加しなかった(実際に多くの事例において減少した)。pH6.0でのパーセント変化(4週間の25℃対照マイナス4℃対照)は2.5%である。LC−MS分析から、大部分の修飾がCDR領域の外部であり他のIgG4抗体に特有なレベルであることが示される。CDR内の3つの分解部位が同定され、1%未満で変化する(pH6;4週間の25℃対照マイナス4℃対照)。CDR内の分解部位の欠如は、pH4、6、または8のいずれかでの40℃の4週間のインキュベーション後に、BIACore親和性または化学量論において有意な変化がないこととも一致する。
【0131】
C.物理的安定性
i)凍解安定性
抗体Iは以下の条件下で製剤化される。
a)10mMクエン酸塩(pH6.0)中で1mg/mL;
b)10mMクエン酸塩(pH6.0)、0.02%ツイーン80中で1mg/mL;
c)10mMクエン酸塩(pH6.0)、150mM NaCl中で1または50mg/mL;および
d)10mMクエン酸塩(pH6.0)、150mM NaCl、0.02%ツイーン80中で1または50mg/mL。
【0132】
これらの製剤を1℃/分で制御される凍結コンテナ(Nalgene、5100−0001)中に配置し、−80℃で少なくとも8時間フリーザー中で凍結し、次いで取り出し、少なくとも室温で8時間融解する。この凍結/融解サイクルを最大3回反復する。サンプルを1回および3回の凍結融解サイクル後に取り出し、SEC(上述のパートA中で記載されるSEC方法を参照)によってHMWポリマーおよびHIAC粒子計数器(低体積アタッチメントを備えたPacific Scientificモデル9703)によって不溶性の粒子形成について分析する。HMWポリマー形成における有意な増加は、試験された任意の条件下での3回の凍結融解サイクル後に観察されない。1mg/mlの製剤について、HIAC粒子カウントにおける有意な増加がツイーン80非含有製剤中でのみ観察される。50mg/mlで、粒子カウントは他のよく動作するIgG
4抗体に特有なものであり、粒子カウント(>10ミクロン)はツイーン80なしでおよそ1500カウント/mLで、ツイーン80ありでおよそ280へ低下した。
【0133】
ii)高濃度での静的保持
抗体は以下の条件下で50mg/mLの製剤である。
a)10mMクエン酸塩(pH6.0)、150mM NaCl;および
b)10mMクエン酸塩(pH6.0)、150mM NaCl、0.02%ツイーン80。
【0134】
これらの製剤を4℃および25℃で4週間静的に保持する。HIAC粒子カウントにおける変化(低体積アタッチメントを備えたPacific Scientificモデル9703)を4週間後に25℃で測定する。
【0135】
Tween含有製剤についてのHIAC粒子カウント(>10ミクロン)は平均290カウント/mL(270および310)であり、Tweenなしの製剤について804カウント/mL(728および880)と中程度に高い。これらの結果は良好な物理的安定性を示す他のIgG
4抗体に特有である。これらの2つの製剤を標準プラスチックエッペンドルフチューブの代わりにガラス中でも保存した。ガラス中で保存されたサンプルについての粒子カウントは4〜8倍低い(Tweenの存在および非存在下で、それぞれの平均で35および191カウント/mL)。
配列表
重鎖CDR
配列番号1 gykftryvmh
配列番号2 yinpynDgtnynekfkg
配列番号3 ARnwdtgl
軽鎖CDR
配列番号4 kasdhilkFlT
配列番号5 gatslEt
配列番号6 qmywstpft
重鎖可変領域
配列番号7(抗体I)
QVQLVQSGAEVKKPGSSVKVSCKASGYKFTRYVMHWVRQAPGQGLEWMGYINPYNDGTNYNEKFKGRVTITADKSTSTAYMELSSLRSEDTAVYYCARNWDTGLWGQGTTVTVSS
軽鎖可変領域
配列番号8(抗体I)
DIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCKASDHILKFLTWYQQKPGKAPKLLIYGATSLETGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQMYWSTPFTFGGGTKVEIK
完全な重鎖
配列番号9(抗体I)
qvqlvqsgaevkkpgssvkvsckasgykftryvmhwvrqapgqglewmgyinpynDgtnynekfkgrvtitadkststaymelsslrsedtavyycarnwdtglwgqgttvtvssastkgpsvfplapcsrstsestaalgclvkdyfpepvtvswnsgaltsgvhtfpavlqssglyslssvvtvpssslgtktytcnvdhkpsntkvdkrveskygppcppcpapeaaggpsvflfppkpkdtlmisrtpevtcvvvdvsqedpevqfnwyvdgvevhnaktkpreeqfnstyrvvsvltvlhqdwlngkeykckvsnkglpssiektiskakgqprepqvytlppsqeemtknqvsltclvkgfypsdiavewesngqpennykttppvldsdgsfflysrltvdksrwqegnvfscsvmhealhnhytqkslslslg
完全な軽鎖
配列番号10(抗体I)
diqmtqspsslsasvgdrvtitckasdhilkFlTwyqqkpgkapklliygatslEtgvpsrfsgsgsgtdftltisslqpedfatyycqmywstpftfgggtkveikrtvaapsvfifppsdeqlksgtasvvcllnnfypreakvqwkvdnalqsgnsqesvteqdskdstyslsstltlskadyekhkvyacevthqglsspvtksfnrgec
ヌクレオチド配列
重鎖可変領域
配列番号11(抗体I)
CAGGTGCAGCTGGTGCAGTCTGGGGCTGAGGTGAAGAAGCCTGGGTCCTCGGTGAAGGTCTCCTGCAAGGCTTCTGGATATAAATTCACTCGTTATGTTATGCACTGGGTGCGACAGGCCCCTGGACAAGGGCTTGAGTGGATGGGATATATTAATCCTTACAATGATGGTACTAACTACAATGAGAAGTTCAAAGGCAGAGTCACGATTACCGCGGACAAATCCACGAGCACAGCCTACATGGAGCTGAGCAGCCTGAGATCTGAGGACACGGCCGTGTATTACTGTGCGAGAAACTGGGACACAGGCCTCTGGGGCCAAGGCACCACTGTCACAGTCTCCTCA
ヌクレオチド配列
軽鎖可変領域
配列番号12(抗体I)
GACATCCAGATGACCCAGTCTCCATCCTCCCTGTCTGCATCTGTAGGAGACAGAGTCACCATCACTTGCAAGGCAAGTGACCACATTCTCAAATTTTTAACTTGGTATCAGCAGAAACCAGGGAAAGCCCCTAAGCTCCTGATCTATGGTGCAACCAGTTTGGAAACTGGGGTCCCATCAAGGTTCAGTGGCAGTGGATCTGGGACAGATTTCACTCTCACCATCAGCAGTCTGCAACCTGAAGATTTTGCAACTTACTACTGTCAAATGTATTGGAGTACTCCGTTCACGTTCGGAGGGGGGACCAAGGTGGAAATAAAA
ヌクレオチド配列
完全な重鎖
配列番号13(抗体I)
CAGGTGCAGCTGGTGCAGTCTGGGGCTGAGGTGAAGAAGCCTGGGTCCTCGGTGAAGGTCTCCTGCAAGGCTTCTGGATATAAATTCACTCGTTATGTTATGCACTGGGTGCGACAGGCCCCTGGACAAGGGCTTGAGTGGATGGGATATATTAATCCTTACAATGATGGTACTAACTACAATGAGAAGTTCAAAGGCAGAGTCACGATTACCGCGGACAAATCCACGAGCACAGCCTACATGGAGCTGAGCAGCCTGAGATCTGAGGACACGGCCGTGTATTACTGTGCGAGAAACTGGGACACAGGCCTCTGGGGCCAAGGCACCACTGTCACAGTCTCCTCAGCCTCCACCAAGGGCCCATCGGTCTTCCCGCTAGCGCCCTGCTCCAGGAGCACCTCCGAGAGCACAGCCGCCCTGGGCTGCCTGGTCAAGGACTACTTCCCCGAACCGGTGACGGTGTCGTGGAACTCAGGCGCCCTGACCAGCGGCGTGCACACCTTCCCGGCTGTCCTACAGTCCTCAGGACTCTACTCCCTCAGCAGCGTGGTGACCGTGCCCTCCAGCAGCTTGGGCACGAAGACCTACACCTGCAACGTAGATCACAAGCCCAGCAACACCAAGGTGGACAAGAGAGTTGAGTCCAAATATGGTCCCCCATGCCCACCCTGCCCAGCACCTGAGGCCGCCGGGGGACCATCAGTCTTCCTGTTCCCCCCAAAACCCAAGGACACTCTCATGATCTCCCGGACCCCTGAGGTCACGTGCGTGGTGGTGGACGTGAGCCAGGAAGACCCCGAGGTCCAGTTCAACTGGTACGTGGATGGCGTGGAGGTGCATAATGCCAAGACAAAGCCGCGGGAGGAGCAGTTCAACAGCACGTACCGTGTGGTCAGCGTCCTCACCGTCCTGCACCAGGACTGGCTGAACGGCAAGGAGTACAAGTGCAAGGTCTCCAACAAAGGCCTCCCGTCCTCCATCGAGAAAACCATCTCCAAAGCCAAAGGGCAGCCCCGAGAGCCACAGGTGTACACCCTGCCCCCATCCCAGGAGGAGATGACCAAGAACCAGGTCAGCCTGACCTGCCTGGTCAAAGGCTTCTACCCCAGCGACATCGCCGTGGAGTGGGAAAGCAATGGGCAGCCGGAGAACAACTACAAGACCACGCCTCCCGTGCTGGACTCCGACGGCTCCTTCTTCCTCTACAGCAGGCTAACCGTGGACAAGAGCAGGTGGCAGGAGGGGAATGTCTTCTCATGCTCCGTGATGCATGAGGCTCTGCACAACCACTACACACAGAAGAGCCTCTCCCTGTCTCTGGGT
ヌクレオチド配列
完全な軽鎖
配列番号14(抗体I)
GACATCCAGATGACCCAGTCTCCATCCTCCCTGTCTGCATCTGTAGGAGACAGAGTCACCATCACTTGCAAGGCAAGTGACCACATTCTCAAATTTTTAACTTGGTATCAGCAGAAACCAGGGAAAGCCCCTAAGCTCCTGATCTATGGTGCAACCAGTTTGGAAACTGGGGTCCCATCAAGGTTCAGTGGCAGTGGATCTGGGACAGATTTCACTCTCACCATCAGCAGTCTGCAACCTGAAGATTTTGCAACTTACTACTGTCAAATGTATTGGAGTACTCCGTTCACGTTCGGAGGGGGGACCAAGGTGGAAATAAAACGAACTGTGGCTGCACCATCTGTCTTCATCTTCCCGCCATCTGATGAGCAGTTGAAATCTGGAACTGCCTCTGTTGTGTGCCTGCTGAATAACTTCTATCCCAGAGAGGCCAAAGTACAGTGGAAGGTGGATAACGCCCTCCAATCGGGTAACTCCCAGGAGAGTGTCACAGAGCAGGACAGCAAGGAC AGCACCTACAGCCTCAGCAGCACCCTGACGCTGAGCAAAGCAGACTACGAGAAACACAAAGTCTACGCCTGCGAAGTCACCCATCAGGGCCTGAGCTCGCCCGTCACAAAGAGCTTCAACAGGGGAGAGTGC
タンパク質配列
成熟ヒトIL−23 p19サブユニットアミノ酸配列
配列番号15
RAVPGGSSPAWTQCQQLSQKLCTLAWSAHPLVGHMDLREEGDEETTNDVPHIQCGDGCDPQGLRDNSQFCLQRIHQGLIFYEKLLGSDIFTGEPSLLPDSPVGQLHASLLGLSQLLQPEGHHWETQQIPSLSPSQPWQRLLLRFKILRSLQAFVAVAARVFAHGAATLSP
本発明は以下を提供する。
[1]
軽鎖および重鎖を含む、ヒトIL−23のp19サブユニットへ結合する抗体であって、軽鎖が軽鎖可変領域(LCVR)を含み、重鎖が重鎖可変領域(HCVR)を含み、LCVRがアミノ酸配列LCDR1、LCDR2およびLCDR3を含み、HCVRがアミノ酸配列HCDR1、HCDR2およびHCDR3を含み、LCDR1が配列番号4であり、LCDR2が配列番号5であり、LCDR3が配列番号6であり、HCDR1が配列番号1であり、HCDR2が配列番号2であり、HCDR3が配列番号3である、抗体。
[2]
前記軽鎖が軽鎖可変領域(LCVR)を含み、前記重鎖が重鎖可変領域(HCVR)を含み、該LCVRのアミノ酸配列が配列番号8であり、該HCVRのアミノ酸配列が配列番号7である、請求項1に記載の抗体。
[3]
2つの軽鎖可変領域(LCVR)および2つの重鎖可変領域(HCVR)を含み、各々のLCVRのアミノ酸配列が配列番号8であり、各々のHCVRのアミノ酸配列が配列番号7である、請求項2に記載の抗体。
[4]
前記軽鎖のアミノ酸配列が配列番号10であり、前記重鎖のアミノ酸配列が配列番号9である、請求項1または2に記載の抗体。
[5]
2つの軽鎖および2つの重鎖を含み、各々の軽鎖のアミノ酸配列が配列番号10であり、各々の重鎖のアミノ酸配列が配列番号9である、請求項4に記載の抗体。
[6]
アミノ酸配列の配列番号10を有する軽鎖ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む、DNA分子。
[7]
アミノ酸配列の配列番号9を有する重鎖ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む、DNA分子。
[8]
請求項1〜5のいずれか一項に記載の抗体をコードする、単離されたポリヌクレオチド。
[9]
前記重鎖可変領域(HCVR)が配列番号11によってコードされ、前記軽鎖可変領域(LCVR)が配列番号12によってコードされる、請求項8に記載の単離されたポリヌクレオチド。
[10]
前記重鎖が配列番号13によってコードされ、前記軽鎖が配列番号14によってコードされる、請求項8または9に記載の単離されたポリヌクレオチド。
[11]
前記ポリヌクレオチドが発現制御配列へ作動可能に連結される、請求項8〜10のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド。
[12]
請求項11に記載のポリヌクレオチドを含むベクター。
[13]
請求項6に記載のDNA分子および請求項7に記載のDNA分子を含む組換え宿主細胞であって、その細胞が重鎖および軽鎖を含む抗体を発現でき、該重鎖がアミノ酸配列番号9を含み、該軽鎖がアミノ酸配列の配列番号10を含む、組換え宿主細胞。
[14]
請求項8〜10のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドにより形質転換された組換え宿主細胞であって、その細胞が重鎖および軽鎖を含む抗体を発現でき、該重鎖のアミノ酸配列が配列番号9であり、該軽鎖のアミノ酸配列が配列番号10である、組換え宿主細胞。
[15]
前記宿主細胞が、CHO細胞、NS0細胞、HEK293細胞およびCOS細胞からなる群から選択される哺乳動物宿主細胞である、請求項13または請求項14に記載の組換え宿主細胞。
[16]
重鎖および軽鎖を含む、ヒトIL−23のp19サブユニットへ結合する抗体を産生するプロセスであって、該重鎖はアミノ酸配列の配列番号9を含み、該軽鎖はアミノ酸配列の配列番号10を含み、
a)前記抗体が発現されるような条件下で請求項13〜15のいずれか一項に記載の組換え宿主細胞を培養する工程と、
b)前記宿主細胞から発現された抗体を回収する工程と
を含む、プロセス。
[17]
重鎖および軽鎖を含む、ヒトIL−23のp19サブユニットへ結合する抗体を産生するプロセスであって、該重鎖のアミノ酸配列が配列番号9であり、該軽鎖のアミノ酸配列が配列番号10であり、
a)配列番号9によって与えられるポリペプチド配列をコードする第1のポリヌクレオチド配列および配列番号10によって与えられたポリペプチド配列をコードする第2のポリヌクレオチド配列を含む組換え宿主細胞を、該ポリペプチド配列が発現されるような条件下で、培養する工程と、
b)重鎖および軽鎖を含み、該重鎖のポリペプチド配列が配列番号9によって与えられ、該軽鎖のポリペプチド配列が配列番号10によって与えられる抗体を前記宿主細胞から回収する工程と
を含む、プロセス。
[18]
請求項16または請求項17に記載のプロセスによって産生される抗体。
[19]
請求項1〜5および請求項18のいずれか一項に記載の抗体ならびに1つまたは複数の薬学的に許容される担体、希釈剤または賦形剤を含む、医薬組成物。
[20]
請求項1〜5および請求項18のいずれか一項に記載の抗体の効果的な量をそれを必要とする患者へ投与することを含む患者における自己免疫性病態または炎症性病態を治療または予防する方法であって、該病態が、多発性硬化症、関節リウマチ、乾癬、炎症性腸疾患、強直性脊椎炎、移植片対宿主病、狼瘡およびメタボリックシンドロームからなる群から選択される、方法。
[21]
請求項1〜5および請求項18のいずれか一項に記載の抗体の効果的な量をそれを必要とする患者へ投与することを含む、患者における癌を治療または予防する方法。
[22]
前記癌が、メラノーマ、結腸癌、卵巣癌、頭頸部癌、肺癌、乳癌または胃癌である、請求項21に記載の患者における癌を治療する方法。
[23]
治療法における使用のための請求項1〜5および請求項18のいずれか一項に記載の抗体。
[24]
前記病態が、多発性硬化症、関節リウマチ、乾癬、炎症性腸疾患、強直性脊椎炎、移植片対宿主病、狼瘡およびメタボリックシンドロームからなる群から選択される、自己免疫性病態または炎症性病態の治療における使用のための請求項1〜5および請求項18のいずれか一項に記載の抗体。
[25]
癌の治療における使用のための請求項1〜5および請求項18のいずれか一項に記載の抗体。
[26]
前記癌が、メラノーマ、結腸癌、卵巣癌、頭頸部癌、肺癌、乳癌または胃癌である、請求項25に記載の使用のための抗体。