特許 6141199 昆虫有害生物の防除

(19)【発行国】日本国特許庁(JP)

(12)【公報種別】特許公報(B2)

(11)【特許番号】6141199

(24)【登録日】2017年5月12日

(45)【発行日】2017年6月7日

(54)【発明の名称】昆虫有害生物の防除

(51)【国際特許分類】

   A01N 65/20 20090101AFI20170529BHJP

   A01P 7/04 20060101ALI20170529BHJP

   A01P 15/00 20060101ALI20170529BHJP

【ＦＩ】

   A01N65/20

   A01P7/04

   A01P15/00

【請求項の数】10

【全頁数】59

(21)【出願番号】特願2013-553747(P2013-553747)

(86)(22)【出願日】2012年2月21日

(65)【公表番号】特表2014-510051(P2014-510051A)

(43)【公表日】2014年4月24日

(86)【国際出願番号】AU2012000160

(87)【国際公開番号】WO2012113017

(87)【国際公開日】20120830

【審査請求日】2015年2月20日

(31)【優先権主張番号】2011900586

(32)【優先日】2011年2月21日

(33)【優先権主張国】AU

(73)【特許権者】

【識別番号】513207895

【氏名又は名称】イノヴェイト エイジー プロプライエタリー リミテッド

【氏名又は名称原語表記】Ｉｎｎｏｖａｔｅ Ａｇ Ｐｔｙ Ｌｉｍｉｔｅｄ

(74)【代理人】

【識別番号】110001302

【氏名又は名称】特許業務法人北青山インターナショナル

(72)【発明者】

【氏名】メンサー，ロバート

【審査官】 村守 宏文

(56)【参考文献】

【文献】 特表平０６−５１０１９７（ＪＰ，Ａ）

【文献】 米国特許第０５５３８５２５（ＵＳ，Ａ）

【文献】 特開平０４−２４７００４（ＪＰ，Ａ）

【文献】 国際公開第００／０５７８８８（ＷＯ，Ａ１）

【文献】 特開２００７−１１２９３１（ＪＰ，Ａ）

【文献】 Mathew, Nisha et al.，Larvicidal activity of Saraca indica, Nyctanthes arbor-tristis, and Clitoria ternatea extracts against three mosquito vector species，Parasitology Research，２００８年１１月２８日，vol.104 no.5，pp.1017-1025

【文献】 Poth, Aaron G. et al.，Discovery of an unusual biosynthetic origin for circular proteins in lugumes，Proceedings of the National Academy of Sciences，２０１１年，vol.108 no.25，pp.10127-10132

(58)【調査した分野】（Int.Cl.，ＤＢ名）

Ａ０１Ｎ ２５／−００−６５／４８

ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩＩ）

(57)【特許請求の範囲】

【請求項1】

水、メタノール、エタノール、ヘキサン、カノーラ油、綿実油、ポリエチレングリコール、またはそれらの組み合わせからなる群から選択される溶剤中のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の葉由来の抽出物を含む組成物であって、前記抽出物が、殺虫活性を有し、および／または、昆虫有害生物を忌避し、および／または、昆虫有害生物の産卵を抑止し、および／または、昆虫有害生物の産卵場所に作用し、および／または、昆虫有害生物の植物への摂食を抑止し、前記組成物が一又はそれ以上の乳化剤と、任意によりキャリアを含むことを特徴とする組成物。

【請求項2】

請求項１に記載の組成物において、１種以上の農学的に許容可能な賦形物をさらに含むことを特徴とする組成物。

【請求項3】

請求項１に記載の組成物において、前記キャリアが非極性溶剤または油であることを特徴とする組成物。

【請求項4】

請求項３に記載の組成物において、前記溶剤がカノーラ油または綿実油であることを特徴とする組成物。

【請求項5】

請求項１に記載の組成物において、前記溶剤が水、メタノール、エタノール、ヘキサン、カノーラ油、綿実油、ポリエチレングリコールの２種以上の組み合わせであることを特徴とする組成物。

【請求項6】

請求項１に記載の組成物において、前記溶剤がエタノールであることを特徴とする組成物。

【請求項7】

請求項１に記載の組成物において、前記チョウマメが開花前段階であることを特徴とする組成物。

【請求項8】

請求項１に記載の組成物において、前記抽出物がチョウマメの全体由来の抽出物であることを特徴とする組成物。

【請求項9】

昆虫有害生物の外寄生による被害を受ける植物もしくはこのような外寄生を受けやすい植物を、請求項１に記載の組成物で処理するステップを具えることを特徴とする、植物の昆虫有害生物を防除する方法。

【請求項10】

植物の１種以上の昆虫有害生物を防除する方法において、昆虫有害生物の外寄生による被害を受ける植物もしくはこのような外寄生を受けやすい植物を、水、メタノール、エタノール、ヘキサン、カノーラ油、綿実油、ポリエチレングリコール、またはそれらの組み合わせから選択される溶剤中のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の葉由来の抽出物で処理するステップを含み、前記抽出物が殺虫活性を有し、および／または、前記昆虫有害生物を忌避し、および／または、前記昆虫有害生物の産卵を抑止し、および／または、前記昆虫有害生物の産卵場所に作用し、および／または、前記昆虫有害生物の植物への摂食を抑止することを特徴とする方法。

【発明の詳細な説明】

【技術分野】

【0001】

本発明は、昆虫有害生物の防除のためのチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の使用に関し、より具体的には、一般に殺虫活性を介したガおよびその幼虫ならびに咀嚼型もしくは吸汁型昆虫の防除、および／または、昆虫有害生物の忌避、および／または、昆虫有害生物の産卵の抑止、および／または、産卵場所への作用、および／または、昆虫有害生物の農作物または他の植物に対する摂食の抑止のためのチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の使用に関する。特に、本発明は、農作物および他の植物に係る昆虫有害生物の防除のためのチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）由来の抽出物の使用、より具体的には、農作物および他の植物に係るガおよびその幼虫ならびに咀嚼型もしくは吸汁型昆虫の防除のためのチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）由来の抽出物の使用に関する。

【背景技術】

【0002】

オーストラリアにおける綿産業では、作物中の有害生物の管理は、未だ合成有害生物防除剤の反復的な適用に依存している。現在では、殺虫剤耐性、有益な種の撹乱、高い生産コスト、および、環境への影響に関連する付随する問題により、ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）を管理するための代替的な戦略の研究が必要とされている。これらとしては（これらに限定されないが）、バチルスチューリンゲンシス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｔｈｕｒｉｎｇｉｅｎｓｉｓ）（Ｂｔ）の殺虫性タンパク質および他の宿主植物耐性を含有する遺伝子組み換え綿作物、バイオ農薬、有益な種のよりよい管理、誘引作物、間作および混植、ならびに、有害生物および益虫の行動の操作が挙げられる。現在、オーストラリアおよび多くの国々においては鱗翅類有害生物の防除に遺伝子組み換え（トランスジェニック）作物が栽培されており、これらの導入によってこれらの有害生物に対する合成殺虫剤の使用は低減されてきている。しかしながら、例えば吸収型有害生物といった他の有害生物に対するトランスジェニック植物における毒素の効果はない。また、毒素に耐性を示すことが可能である３期から後期ヘリコベルパ属（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ）の幼虫は、トランスジェニック綿作物と従来の綿作物との両方において、その防除のための合成殺虫剤の使用を増加させた。それ故、これらの有害生物を管理するための新たなアプローチの開発の必要性に重要性が認められている。

【0003】

綿などの大規模作物における昆虫有害生物を管理する革命的な方法に係る可能性が高いアプローチの一つは、天然の植物化学化合物または植物抽出物を用いることである。天然植物抽出物または二次植物化合物（ＳＰＣ）は普通、昆虫の「関心」を刺激するキューとして機能することにより昆虫の行動に作用するか、または、特定の宿主植物への昆虫の外寄生を抑止することが可能である（Ｒｈｏａｄｅｓ ａｎｄ Ｃｏａｔｅｓ １９７６）。多くのＳＰＣが、有害生物の外寄生から植物を実際に保護するために植物において作られている（Ｒｈｏａｄｅｓ ａｎｄ Ｃｏａｔｅｓ １９７６）。これにより、作物植物に適用された際の有害生物による被害を低減するための植物性殺虫剤として用いられるＳＰＣの例が複数ある。非宿主植物から抽出され、宿主植物に噴霧されるいくつかのＳＰＣは特にガといった有害生物の行動を変えることが可能であり、これらの有害生物はその後この宿主植物を回避することとなる（Ｔｉｎｇｌｅ ａｎｄ Ｍｉｔｃｈｅｌｌ １９８４）。有害生物管理に係る研究の数多くが、有害生物の行動を変えさせる化合物よりも有害生物を殺す化学化合物に焦点を当てている（Ｔｉｎｇｌｅ ａｎｄ Ｍｉｔｃｈｅｌｌ １９８４，Ｍｅｎｓａｈ ａｎｄ Ｍｏｏｒｅ，１９９９）。従って、新規な製品をもたらす可能性のあるより複雑な作用機構を有する潜在的に有用な化合物は看過されてきた（Ｍｅｎｓａｈ ａｎｄ Ｍｏｏｒｅ，１９９９）。このような化合物は、相当の距離にわたって有害生物を誘引もしくは忌避するか、または、接触後に摂食および産卵の両方を刺激もしくは抑止する。抑制化合物は昆虫による産卵および摂食を直接的に抑え（Ｍｅｎｓａｈ，１９９６，Ｍｅｎｓａｈ ｅｔ ａｌ．２０００）、これらは刺激物質よりも重要であると考えられており、実際には、ＳＰＣにおいては抑止効果がより一般的に注目される（Ｂｅｒｎａｙｓ ａｎｄ Ｃｈａｐｍａｎ １９９４）。抑止剤の効力は、プッシュ・プルストラテジー（ｐｕｓｈ−ｐｕｌｌ ｓｔｒａｔｅｇｙ）（Ｐｙｋｅ ｅｔ ａｌ．１９８７）における価値のない作物に適用される誘引剤／刺激物質と組み合わされて用いられた場合に高められる可能性が高い（Ｍｉｌｌｅｒ ａｎｄ Ｃｏｗｌｅｓ，１９９０）。従って、昆虫有害生物の産卵行動および／または摂食行動を改変させるツールが農作物における有害生物管理に対する新規なアプローチであり、これにより潜在的にきわめて顕著な有益性がもたらされる。

【発明の概要】

【0004】

一態様において、本発明は、殺虫活性を有し、および／または、昆虫有害生物を忌避し、および／または、昆虫有害生物の産卵を抑止し、および／または、産卵場所に作用し、および／または、昆虫有害生物の植物への摂食を抑止するＳＰＣを含むチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）由来の抽出物を含み、任意によりキャリアを含む昆虫有害生物防除用組成物を提供する。

【0005】

さらなる態様において、本発明は、１種以上の昆虫有害生物を防除する方法において、殺虫活性を有し、および／または、昆虫有害生物を忌避し、および／または、昆虫有害生物の産卵を抑止し、および／または、産卵場所に作用し、および／または、昆虫有害生物の植物への摂食を抑止し、ならびに、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）に由来するＳＰＣで対象箇所を処理するステップを含む方法を提供する。

【図面の簡単な説明】

【0006】

【図1】図１は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）からの固体相抽出（ＳＰＥ）画分のＨＰＬＣクロマトグラムをＵＶスペクトルと共に示す。

【図2】図２は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分で処理した綿葉に対するオオタバコガ（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ａｒｍｉｇｅｒａ）の３令幼虫の摂食応答を図示する（強制テスト）。

【図3】図３は、４８時間後に死亡をもたらす、２令オオタバコガ（Ｈ．ａｒｍｉｇｅｒａ）に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分の抗菌効果を図示する。

【図4】図４は、葉消費重量に係るルメイン（Ｌｕ Ｍｅｉｎ）の葉（摂食誘引剤）へのチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）Ｆ２のマスキング効果に対する２令オオタバコガ（Ｈ．ａｒｍｉｇｅｒａ）の強制摂食応答を示す。

【図5】図５は、２令オオタバコガ（Ｈ．ａｒｍｉｇｅｒａ）の幼虫の重量に係るルメイン（Ｌｕ Ｍｅｉｎ）の葉に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分２番の強制マスキング効果を示す（３回の実験の集計）。

【図6】図６は、ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の綿植物への産卵に対するヘキサン中に配合された組み合わされたチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の効力を示すグラフである。

【図7】図７は、ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の綿植物への産卵に対するヘキサン中に配合された異なる濃度のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の効力を示す。

【図8】図８は、商業用の従来の綿畑で記録されたヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の卵および幼虫の数／ｍ／サンプル日に対するヘキサン中に配合された異なる濃度のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の効力を示す。

【図9】図９は、人工餌料における、２令幼虫から蛹化までのヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の幼虫に対する、（１）綿実油（２）粗綿実油および（３）カノーラ油中に配合したチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の効力を示す。

【図10】図１０は、カノーラ油との接触による開花前段階（花またはさやを含まない）のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）植物原料由来のＳＰＣを含む組成物のメタノール抽出のＵＶ２１０ｎｍでのＨＰＬＣプロファイルである。このプロファイルはＡｇｉｌｅｎｔ １１００ ＬＣＭＳＤをＰｈｅｎｏｍｅｘ Ｌｕｎａ Ｃ１８カラムと共に、４０℃で、以下の溶剤勾配条件により用いて得た。移動相：Ａ＝０．０５％トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）−水Ｂ＝０．０５％ＴＦＡ−アセトニトリル

【0007】

【発明を実施するための形態】

【0008】

本発明は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）由来のＳＰＣを用いる１種以上の昆虫有害生物の防除に関する。

【0009】

本明細書において用いられるところ、ＳＰＣもしくは二次植物性化合物とは、植物によって合成される、その植物にとって生存に必須ではない化学化合物である。本ＳＰＣは、殺虫活性を有し、および／または、昆虫有害生物を忌避し、および／または、昆虫有害生物の産卵を抑止し、および／または、産卵場所に作用し、および／または、昆虫有害生物の植物への摂食を抑止させる。

【0010】

一実施形態において、昆虫有害生物は植物有害生物であって、本方法は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）由来の抽出物を植物またはその周囲に適用するステップを含む。

【0011】

本発明の実施形態は、昆虫外寄生を限定するか防止するために、作物の処理に用いられることが可能である。本発明は、商業的規模で収穫または栽培される植物を指す農業経済学的に重要な植物に特に好適である。

【0012】

このような農学的植物（または作物）の例は、コムギ、オオムギ、ライ麦、カラスムギ、イネ、トウモロコシまたはモロコシなどの穀類；テンサイまたは飼料用ビートなどのビート；リンゴ、セイヨウナシ、セイヨウスモモ、プルーン、モモ、アーモンド、サクランボ、または、例えばイチゴ、ラズベリーもしくはブラックベリーといった液果類などの例えば仁果、石果および軟果といった果実；インゲン、レンズマメ、エンドウまたはダイズなどのマメ科植物；セイヨウアブラナ、マスタード、ケシ、オリーヴ、ヒマワリ、ココナツ、トウゴマ、カカオまたはピーナッツなどの油作物；カボチャ、キュウリまたはメロンなどの西洋カボチャ科；綿、亜麻、アサまたはジュートなどの繊維植物；オレンジ、レモン、グレープフルーツまたはタンジェリンなどの柑橘類；ホウレンソウ、レタス、アスパラガス、キャベツ、ニンジン、タマネギ、シマトウガラシ、トマト、ジャガイモまたはトウガラシなどの野菜；アボカド、シナモンまたは樟脳などのクスノキ科；ならびに、タバコ、堅果（クルミなど）、コーヒー、ナス、サトウキビ、チャ、コショウ、ブドウ、ホップ、バショウ科、ラテックス植物および観賞用植物である。また、牧草およびマメ科植物などの飼料作物もまた重要である。

【0013】

一実施形態において、植物は、繊維植物、雑穀類、マメ科作物、しゅく穀、野菜および果実を含み、より具体的には、綿、トウモロコシ、モロコシ、ヒマワリ、アルファルファ、種々のマメ科植物、特にダイズ、キマメ、リョクトウおよびヒヨコマメ、トマト、オクラ、ならびに、同様の植物を含む。

【0014】

一実施形態において、植物は観賞植物を含む。一例として、これらの観賞植物は、ラン、バラ、チューリップ、高木、潅木、ハーブ、芝生および芝草、球根、つる植物、多年草、多肉植物、鉢植え植物であり得る。

【0015】

一実施形態において、昆虫有害生物は動物の有害生物であり、本方法は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）由来の抽出物を動物に適用するステップを含む。一実施形態において、動物は、イヌ、ネコ、ウシ、ヒツジ、ウマ、ヤギ、ブタ、ニワトリ、テンジクネズミ、ロバ、カモ、トリ、水バッファロー、ラクダ、トナカイ、ガチョウ、ラマ、アルパカ、ゾウ、シカ、ウサギ、ミンク、チンチラ、ハムスター、キツネ、エミュー、ダチョウであり得る。

【0016】

一実施形態において、方法は、生息地を処理するステップを含む。

【0017】

本発明は、油、水またはいずれかのキャリア生成物中のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）抽出物を、有害生物によって影響を受ける植物もしくはその周囲に、または、有害生物によって影響を受ける動物に適用するステップを含む。処理は、油性配合物、水性配合物、残存配合物、水和剤等の使用を含むことが可能である。いくつかの実施形態において、異なる配合物タイプの有益性を達成するために、配合物の組み合わせを採用することが可能である。抽出物はキャリアに添加されてもよく、または、液体配合物の場合には、例えばカノーラ油といったキャリアを用いてチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）からＳＰＣを抽出してもよい。

【0018】

一実施形態において、配合物は、界面活性剤をさらに含んでいてもよい油性配合物である。

【0019】

一実施形態において、配合物は油性配合物であり、油はＣ１９〜Ｃ２７炭化水素である。

【0020】

一実施形態において、配合物は、アルコール、ケトン、アルデヒドまたはスルホキシドなどの極性溶剤中のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）由来の抽出物を含む。特に、配合物は、アルコール中のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）由来の抽出物であり得る。

【0021】

一実施形態において、配合物は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）由来のメタノール抽出物を含む。一実施形態において、配合物は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）由来のエタノール抽出物を含む。一実施形態において、配合物は、粗および精製綿実油またはカノーラ油などの低分子量油中のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）由来の抽出物を含む。他の油としては、園芸産業において公知である、ホワイト油、ＤＣ Ｔｒｏｎ ｏｉｌ（ｎＣ２１およびｎＣ２４油）、Ｃａｎｏｐｙ ｏｉｌ（ｎＣ２７油）、Ｂｉｏｐｅｓｔ ｏｉｌ（ｎＣ２４油）、ドーマントオイルまたはサマーオイルが挙げられる。これらの油のほとんどがｎＣ１９〜ｎＣ２７であるが、許容可能な毒性を有する他の炭化水素も用いられ得る。本発明と共に用いるのに好適なこのような製品が市場に複数ある。これらは、Ｓｕｎｓｐｒａｙ ｏｉｌ、ティーツリーオイル、Ｓｕｎｓｐｒａｙ Ｕｌｔｒａ ｆｉｎｅ（Ｓｕｎ Ｒｅｆｉｎｉｎｇ ａｎｄ Ｍａｒｋｅｔｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ製）である。

【0022】

石油系散布油は、好適な農業経済学的に許容可能な希釈剤および／またはキャリアと併せて、ならびに、乳化剤、湿潤剤、界面活性剤、安定化剤、拡展剤等などの技術分野において一般的な他の添加剤と共に用いられ得る。

【0023】

一実施形態において、配合物は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）由来の水性抽出物を含む。

【0024】

一実施形態において、配合物は、ヘキサンなどの低級炭化水素溶剤中のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）由来の抽出物を含む。

【0025】

一実施形態において、配合物は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）由来の粗抽出物の画分を含む。

【0026】

一実施形態において、配合物は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）由来の粗抽出物の画分の混合物を含む。

【0027】

本明細書において用いられるところ、「キャリア」という用語は、無機もしくは有機であり、および、合成もしくは天然由来であることが可能である液体または固体材料を意味し、有効化合物は、処理されるべき対象箇所に適用される本発明の組成物もしくはチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）から得られたＳＰＣの適用を容易とするよう、または、その保管、輸送および／もしくは取り扱いを容易とするようこのキャリアと共に混合もしくは配合される。普通、殺虫剤の配合に慣習的に採用される材料のいずれもが好適である。

【0028】

本明細書において用いられるところ、「対象箇所」という用語は、本発明の組成物またはチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）由来のＳＰＣが適用される場所を指す。個別の植物、植物および／またはその周囲などの植物の一群、個別もしくは一群の動物、および、植物が植えられているか動物が集まる可能性のある領域への適用が含まれ、ならびに、１匹もしくは複数の昆虫および／またはこれらが位置する近辺への直接的な適用が含まれる。

【0029】

本発明の組成物は、単独で、または、固体および／もしくは液体分散性キャリアビヒクルおよび／もしくは、有害生物防除剤、もしくは、所望の場合には殺ダニ剤、殺線虫剤、殺菌・殺カビ剤、殺菌剤、殺鼠剤、除草剤、肥料、成長調節剤等などの他の公知の適合性の活性薬剤との混合物の形態で、または、これらから形成され、特異的な適用のための特定の投与調製物であって、溶液、エマルジョン、懸濁液、粉末、ペーストおよび顆粒などのそのまま用いられる投与調製物の形態で採用されることが可能である。

【0030】

所望の場合には、本発明の組成物は、例えば、溶液、エマルジョン、懸濁液、乳化性濃縮物、噴霧粉末、ペースト、可溶性粉末、散粉剤、顆粒もしくはフォームの形態の従来の分散性キャリアビヒクルといった従来の有害生物防除剤において用いられることが可能であるタイプの従来の不活性殺虫剤希釈剤もしくは増量剤と配合または混合されることが可能である。

【0031】

本発明の組成物における使用に好適であり得る典型的な乳化剤としては、これらに限定されないが、軽分子量油（例えば、カノーラ、綿実、落花生、コーン、はい芽、オリーヴ、ヒマシおよびゴマ油）、ならびに、非アニオン性、アニオン性およびカチオン性界面活性剤が挙げられる。上記乳化剤のいずれかのブレンドもまた本発明の組成物において用いられ得る。

【0032】

典型的なノニオン性界面活性剤としては、エトキシル化ラウリルアルコール、エトキシル化イソトリデカノール、エトキシル化セチルアルコール、エトキシル化ステアリルアルコールなどの、特にエトキシル化脂肪族アルコールおよびエトキシル化オキソアルコールといったエトキシル化アルカノール、ならびに、アセテートなどのこれらのエステル；エトキシル化ノニルフェニル、エトキシル化ドデシルフェニル、エトキシル化イソトリデシルフェノールならびに例えば酢酸アルキルグルコシドおよび酢酸アルキルポリグルコシドといったそのエステル、エトキシル化アルキルグルコシドなどのエトキシル化アルキルフェノール；グリセリンモノステアレート、グリセリンモノオレエート、ソルビタンモノラウレート、ソルビタンモノパルミテート、ソルビタンモノステアレート、ソルビタンモノオレエート、ソルビタントリステアレート、ソルビタントリオレエートなどの、エトキシル化脂肪族アミン、エトキシル化脂肪酸、脂肪酸とグリセリンもしくはソルビタンとのモノ−、ジ−およびトリエステルなどの部分エステル；ポリオキシエチレングリセリンモノステアレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート、ソルビタンモノパルミテート、ポリオキシエチレンソルビタンモノステアレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート、ポリオキシエチレンソルビタントリステアレート、ポリオキシエチレンソルビタントリオレエートなどの脂肪酸とグリセリンもしくはソルビタンとのエトキシル化エステル；エトキシル化コーン油、エトキシル化ヒマシ油、エトキシル化獣脂油などの植物油または動物性脂肪のエトキシレート；脂肪族アミン、脂肪族アミドもしくは脂肪酸ジエタノールアミドのエトキシレートが挙げられる。

【0033】

典型的なアニオン性界面活性剤としては、ラウリルスルホネート、イソトリデシルスルホネートなどのアルキルスルホネート、ラウリルスルフェート、イソトリデシルスルフェート、セチルスルフェートなどの特に脂肪族アルコールスルフェートといったアルキルスルフェート、ナフチルスルホネート、ジブチルナフチルスルホネートなどのステアリルスルフェート−アリール−およびアルキルアリールスルホネート、ドデシルジフェニルエーテルスルホネートなどのアルキルジフェニルエーテルスルホネート、クミルスルホネート、ノニルベンゼンスルホネートおよびドデシルベンゼンスルホネートなどのアルキルベンゼンスルホネートスルホネート；脂肪酸のスルホン酸エステルおよび脂肪酸エステル；脂肪酸の硫酸エステルおよび脂肪酸エステル；エトキシル化ラウリルアルコールの硫酸エステルなどのエトキシル化アルカノールの硫酸エステル；アルコキシル化アルキルフェノールの硫酸エステル；アルキルリン酸エステルおよびジアルキルリン酸エステル；ジオクチルスルホスクシネートなどのスルホコハク酸のジアルキルエステル、アシルサルコシン、ステアリン酸などの脂肪酸、アシルグルタメート、リグニスルホン酸、ナフタレンスルホン酸またはフェノールスルホン酸とホルムアルデヒドおよび任意により尿素との低分子量縮合物の、特にナトリウム、カリウムカルシウムまたはアンモニウム塩といった塩が挙げられる。

【0034】

典型的なカチオン性界面活性剤としては、第４級アンモニウム化合物、特にアルキルトリメチルアンモニウム塩およびジアルキルジメチルアンモニウム塩、例えばハロゲン化物、硫酸エステルおよびアルキル硫酸エステルが挙げられる。

【0035】

いくつかの実施形態において、昆虫防除組成物は、１種以上の合成殺虫剤または有害生物防除剤と組み合わされることが可能である。一実施形態において、殺虫剤または有害生物防除剤は、エンドスルファン、ジコホル、クロルピリホス、ジメトエート、ジスルホトン、オメトエート、パラチオン、ホレート、プロフェノホス、スルプロホス、チオメトン、アルジカルブ、カルバリル、β−シフルトリン、デルタメトリン、エスフェンバレレート、フェンバレレート、フルバリネート、λ−シハロトリン、クロルフルアズロン、ピペロニルブトキシドおよび石油散布油の１種以上から選択される。他の実施形態において、有害生物防除剤は、有害生物の摂食阻害物質として知られる核多角ウイルスおよび／または植物抽出物から選択される生物学的有害生物防除剤である。さらに他の実施形態において、殺虫剤または有害生物防除剤はラベルに記載の使用量よりも少ない量で使用される。例えば、殺虫剤または有害生物防除剤は、ラベルに記載の使用量の半分もしくは三分の一で用いられ得る。

【0036】

本発明の組成物は、宿主を直接的に処理することにより、または、宿主が位置されることとなる領域を処理することにより、昆虫を防除するために用いられることが可能である。例えば、宿主は、個々の植物に、または、農作物などの一群の植物に適用されることが可能である噴霧配合物を用いることによって、直接的に処理されることが可能である。

【0037】

本発明の配合物は、農芸化学配合物の技術分野において公知である他の配合助剤を慣習的な量でさらに含んでいてもよい。このような助剤としては、これらに限定されないが、不凍剤（特にこれらに限定されないが、グリセリン、エチレングリコール、プロピレングリコール、モノプロピレングリコール、ヘキシレングリコール、１−メトキシ−２−プロパノール、シクロヘキサノールなど）、緩衝剤（特にこれらに限定されないが、水酸化ナトリウム、リン酸など）、防腐剤（特にこれらに限定されないが、１，２−ベンズイソチアゾリン−３−オンの誘導体、安息香酸、ソルビン酸、ホルムアルデヒド、メチルパラヒドロキシベンゾエートとプロピルパラヒドロキシベンゾエートとの組み合わせなど）、安定化剤（特にこれらに限定されないが、ドデシルベンゼンスルホン酸、酢酸、プロピオン酸またはブチルヒドロキシルトルエン、ブチルヒドロキシルアニソールなどの好ましくは有機酸といった酸など）、増粘剤（特にこれらに限定されないが、ヘテロポリサッカライドおよびデンプンなど）、ならびに、消泡剤（特にこれらに限定されないが、シリコーン系のもの、特にポリジメチルシロキサンなど）が挙げられる。このような助剤は市販されていると共に、技術分野において公知である。

【0038】

一実施形態において、本発明は、油および乳化剤中に配合されたチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の画分、有効化合物および粗抽出物を綿有害生物の防除に用いる。

【0039】

好ましくは、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）抽出物および配合物は、昆虫を殺すために好適である。植物もしくは昆虫に適用されると、水中の抽出物もしくは配合物は、昆虫の角皮層に浸透するかもしくは経口摂取されて昆虫を殺すか、または、植物上の抽出物の残留物は昆虫を忌避するか、もしくは、昆虫の産卵もしくは摂食を抑止することが可能である。配合物は、産卵または摂食する昆虫を、昆虫または標的作物への適用から３〜４日間以内に殺すことまたは抑止することが可能である。

【0040】

一実施形態において、油中のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）抽出物、画分、粗化合物または有効化合物は、水の中に溶解されて、標的昆虫によって外寄生されている作物に適用される。本発明の組成物の適用量は、典型的には、１ヘクタール当たり、１〜５００リットルの水、好ましくは６０〜１００リットルの水に溶解した１〜２リットルの油配合抽出物または有効化合物である。一実施形態において、この適用量は、１ヘクタールの植物当たり、約１００リットルの水に溶解した約２リットルの油配合抽出物である。代替的な実施形態において、適用量は約２リットルの油配合物である。典型的には、処理は、１４〜２８日の間隔をあけた少なくとも４回の噴霧を含み得る。

【0041】

あるいは、この方法は、特に処理されるべき面積が小さい場合には、油配合抽出物または有効化合物を水中に溶解させることなく、１ヘクタールの植物当たり、１〜３０００ｍｌ、好ましくは１０００〜２０００ｍｌの油配合抽出物または有効化合物を適用するステップを含んでいてもよい。例えば、温室中の植物が処理される場合がこれに該当する。

【0042】

理論に束縛されることは望まないが、本発明は、有害生物の忌避、産卵の抑制、摂食の抑止および昆虫を殺す植物抽出物の直接的な接触作用によってガおよびその幼虫ならびに咀嚼型もしくは吸汁型有害生物を防除すると考えられている。生息地の処理を介して、他の非標的有害生物を防除し、および、ガおよびその幼虫ならびに咀嚼型もしくは吸汁型有害生物の天敵を保護する方法もあり得る。

【0043】

一実施形態において、用いられるチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）構造部は、葉、茎、根、さや、種子および植物部位のいずれかの組み合わせである。これらは、低分子量および高分子量油もしくは水またはいずれかの他のキャリアなどの配合物中の画分または粗抽出物として、ガおよびその幼虫ならびに咀嚼型もしくは吸汁型有害生物の防除に忌避剤の作用、産卵の抑制、摂食の抑止および直接的な接触作用を介して用いられ得る。

【0044】

植物学上チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）は、マメ科およびマメ亜科に属する。マメ科は、一年生植物から熱帯雨林樹木までの広範な生活型を含む約１２，０００種を擁する大きな科である。チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）は、熱帯および温帯地域に広く生息していると共に多くの経済的に重要な食用植物、飼料作物、観賞用植物、ひき材種および雑草源であり、まだらな多毛性の葉であって、通常は５枚の小葉を有する攀縁性の多年生植物である。花は５ｃｍと大きく、単独もしくは対であり、青くて中心に黄色の斑を有し、４月〜６月の間に咲く。オーストラリアでは、Ｋｉｍｂｅｒｌｅｙ全体の入り江の岸および泉周辺；また、ＰｉｌｂａｒａおよびＧａｓｃｏｙｎｅにおける海岸沿いの入植地周辺に帰化した園芸由来の有害種である。また、ｎｏｒｔｈ ＱＬＤの大部分においては飼料作物としても用いられている。汎熱帯性であり、おそらくは南アメリカを原産とする。

【0045】

簡便性の目的のために、「昆虫」という用語、または、「殺虫性」などのその均等物もしくは派生語が本出願において用いられる；しかしながら、「昆虫」という用語は、昆虫のみならず、その幼体形態および幼虫をも指すと理解されるべきである。

【0046】

当業者は、すべての化合物がすべての昆虫に対して等しく効果的であるわけではないことを認識するであろう。実施形態において、組成物は、経済的に重要な農学的、森林、温室、苗床、観賞用植物、食品および繊維、公衆衛生および家畜衛生、居住用構造物、商業用構造、家屋、ならびに、貯蔵された生産物に係る有害生物を含み得る昆虫有害生物に対して活性を示す。昆虫有害生物は、鞘翅目、双翅目、膜翅目、鱗翅目、食毛目、同翅目、半翅目、直翅目、総翅目、革翅目、等翅目、シラミ目、ノミ目、トビケラ目等、特に鞘翅目および鱗翅目から選択される昆虫を含む。

【0047】

鱗翅目の幼虫としては、これらに限定されないが、スポドプテラフルギペルダ（Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ ＪＥ Ｓｍｉｔｈ）（ツマジロクサヨトウ）；Ｓ．エクシグア（Ｓ．ｅｘｉｇｕａ Ｈｕｅｂｎｅｒ）（シロイチモジヨトウ）；ハスモンヨトウ（Ｓ．ｌｉｔｕｒａ Ｆａｂｒｉｃｉｕｓ）（ハスモンヨトウ（ｔｏｂａｃｃｏ ｃｕｔｗｏｒｍ，ｃｌｕｓｔｅｒ ｃａｔｅｒｐｉｌｌａｒ））；ベルタアワヨトウ（Ｍａｍｅｓｔｒａ ｃｏｎｆｉｇｕｒａｔａ Ｗａｌｋｅｒ）（バーサアーミーワーム）；ヨトウガ（Ｍ．ｂｒａｓｓｉｃａｅ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（ヨトウガ）；タマナヤガ（Ａｇｒｏｔｉｓ ｉｐｓｉｌｏｎ Ｈｕｆｎａｇｅｌ）（タマナヤガ）；Ａ．オルトゴニア（Ａ．ｏｒｔｈｏｇｏｎｉａ Ｍｏｒｒｉｓｏｎ）（ウェスタンカットワーム）；Ａ．サブテラネア（Ａ．ｓｕｂｔｅｒｒａｎｅａ Ｆａｂｒｉｃｉｕｓ）（グラニュレートカットワーム）；アラバマアルギラシア（Ａｌａｂａｍａ ａｒｇｉｌｌａｃｅａ Ｈｕｅｂｎｅｒ）（ヤガの幼虫）；イラクサギンウワバ（Ｔｒｉｃｈｏｐｌｕｓｉａ ｎｉ Ｈｕｅｂｎｅｒ）（イラクサキンウワバ）；シュードプルシアインクルデンス（Ｐｓｅｕｄｏｐｌｕｓｉａ ｉｎｃｌｕｄｅｎｓ Ｗａｌｋｅｒ）（ソイビーンルーパー（ｓｏｙｂｅａｎ ｌｏｏｐｅｒ））；アンチカルシアゲマタリス（Ａｎｔｉｃａｒｓｉａ ｇｅｍｍａｔａｌｉｓ Ｈｕｅｂｎｅｒ）（ベルベットビーンキャタピラー）；ヒペナスカブラ（Ｈｙｐｅｎａ ｓｃａｂｒａ Ｆａｂｒｉｃｉｕｓ）（グリーンクローバワーム）；ニセアメリカタバコガ（Ｈｅｌｉｏｔｈｉｓ ｖｉｒｅｓｃｅｎｓ Ｆａｂｒｉｃｉｕｓ）（オオタバコガ）；シューダレチアウニプンクタ（Ｐｓｅｕｄａｌｅｔｉａ ｕｎｉｐｕｎｃｔａ Ｈａｗｏｒｔｈ）（アーミーワーム）；アテチスミンダラ（Ａｔｈｅｔｉｓ ｍｉｎｄａｒａ Ｂａｒｎｅｓ ａｎｄ Ｍｃｄｕｎｎｏｕｇｈ）（ラフスキンドカットワーム）；ユーキソアメッソリア（Ｅｕｘｏａ ｍｅｓｓｏｒｉａ Ｈａｒｒｉｓ）（ダークサイデッドカットワーム）；ミスジアオリンガ（Ｅａｒｉａｓ ｉｎｓｕｌａｎａ Ｂｏｉｓｄｕｖａｌ）（ミスジアオリンガ）；Ｅ．ビッテラ（Ｅ．ｖｉｔｔｅｌｌａ Ｆａｂｒｉｃｉｕｓ）（クサオビリンガ）；オオタバコガ（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ａｒｍｉｇｅｒａ Ｈｕｅｂｎｅｒ）（オオタバコガ（Ａｍｅｒｉｃａｎ ｂｏｌｌｗｏｒｍ））；Ｈ．ジア（Ｈ．ｚｅａ Ｂｏｄｄｉｅ）（オオタバコガ（ｃｏｒｎ ｅａｒｗｏｒｍ）またはオオタバコガ（ｃｏｔｔｏｎ ｂｏｌｌｗｏｒｍ））；メランクラピクタ（Ｍｅｌａｎｃｈｒａ ｐｉｃｔａ Ｈａｒｒｉｓ）（ゼブラキャタピラー）；エギラ（キシロミゲス）クリアリス（Ｅｇｉｒａ（Ｘｙｌｏｍｙｇｅｓ）ｃｕｒｉａｌｉｓ Ｇｒｏｔｅ）（シトラスカットワーム）といったヤガ科のアーミーワーム、根切虫、ルーパーおよびタバコガ類：ヨーロッパアワノメイガ（Ｏｓｔｒｉｎｉａ ｎｕｂｉｌａｌｉｓ Ｈｕｅｂｎｅｒ）（アワノメイガ）；アミエロイストランシテラ（Ａｍｙｅｌｏｉｓ ｔｒａｎｓｉｔｅｌｌａ Ｗａｌｋｅｒ）（ネーブルオレンジワーム）；スジコナマダラメイガ（Ａｎａｇａｓｔａ ｋｕｅｈｎｉｅｌｌａ Ｚｅｌｌｅｒ）（スジコナマダラメイガ）；スジマダラメイガ（Ｃａｄｒａ ｃａｕｔｅｌｌａ Ｗａｌｋｅｒ）（スジマダラメイガ）；ニカメイガ（Ｃｈｉｌｏ ｓｕｐｐｒｅｓｓａｌｉｓ Ｗａｌｋｅｒ）（ニカメイガ）；Ｃ．パルテルス（Ｃ．ｐａｒｔｅｌｌｕｓ）（ソルガムボーラー）；ガイマイツヅリガ（Ｃｏｒｃｙｒａ ｃｅｐｈａｌｏｎｉｃａ Ｓｔａｉｎｔｏｎ）（ガイマイツヅリガ）；ハムシモドキ（Ｃｒａｍｂｕｓ ｃａｌｉｇｉｎｏｓｅｌｌｕｓ Ｃｌｅｍｅｎｓ）（ハムシモドキ）；シバツトガ（Ｃ．ｔｅｔｅｒｒｅｌｌｕｓ Ｚｉｎｃｋｅｎ）（シバツトガ）；コブノメイガ（Ｃｎａｐｈａｌｏｃｒｏｃｉｓ ｍｅｄｉｎａｌｉｓ Ｇｕｅｎｅｅ）（コブノメイガ）；デスミアフネラリス（Ｄｅｓｍｉａ ｆｕｎｅｒａｌｉｓ Ｈｕｅｂｎｅｒ）（グレープリーフフォルダー）；ジアファニアヒアリナタ（Ｄｉａｐｈａｎｉａ ｈｙａｌｉｎａｔａ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（メロンワーム）；Ｄ．ニチダリス（Ｄ．ｎｉｔｉｄａｌｉｓ Ｓｔｏｌｌ）（ピックルワーム）；ジアトラエアグランジオセラ（Ｄｉａｔｒａｅａ ｇｒａｎｄｉｏｓｅｌｌａ Ｄｙａｒ）（サウスウェスタンコーンボーラー）、Ｄ．サッカラリス（Ｄ．ｓａｃｃｈａｒａｌｉｓ Ｆａｂｒｉｃｉｕｓ）（シュガーケーンボーラーボーラー）；エオレウマロフチニ（Ｅｏｒｅｕｍａ ｌｏｆｔｉｎｉ Ｄｙａｒ）（メキシカンライスボーラー）；チャマダラメイガ（Ｅｐｈｅｓｔｉａ ｅｌｕｔｅｌｌａ Ｈｕｅｂｎｅｒ）（タバコ（カカオ）モス）；ハチノスツヅリガ（Ｇａｌｌｅｒｉａ ｍｅｌｌｏｎｅｌｌａ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（オオハチミツガ）；クロオビクロノメイガ（Ｈｅｒｐｅｔｏｇｒａｍｍａ ｌｉｃａｒｓｉｓａｌｉｓ Ｗａｌｋｅｒ）（ソッドウェブワーム）；ホモエオソマエレクテルム（Ｈｏｍｏｅｏｓｏｍａ ｅｌｅｃｔｅｌｌｕｍ Ｈｕｌｓｔ）（サンフラワーモス）；モロコシマダラメイガ（Ｅｌａｓｍｏｐａｌｐｕｓ ｌｉｇｎｏｓｅｌｌｕｓ Ｚｅｌｌｅｒ）（レッサーコーンストークボーラー）；コハチノスツヅリガ（Ａｃｈｒｏｉａ ｇｒｉｓｅｌｌａ Ｆａｂｒｉｃｉｕｓ）（コハチノスツヅリガ）；ヘリキスジノメイガ（Ｌｏｘｏｓｔｅｇｅ ｓｔｉｃｔｉｃａｌｉｓ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（ヘリキスジノメイガ）；オルサガシリサリス（Ｏｒｔｈａｇａ ｔｈｙｒｉｓａｌｉｓ Ｗａｌｋｅｒ）（ティーツリーウェブガ）；マメノメイガ（Ｍａｒｕｃａ ｔｅｓｔｕｌａｌｉｓ Ｇｅｙｅｒ）（マメノメイガ）；ノシメマダラメイガ（Ｐｌｏｄｉａ ｉｎｔｅｒｐｕｎｃｔｅｌｌａ Ｈｕｂｎｅｒ）（ノシメマダラメイガ）；イッテンオオメイガ（Ｓｃｉｒｐｏｐｈａｇａ ｉｎｃｅｒｔｕｌａｓ Ｗａｌｋｅｒ）（イエローステムボーラー）；ウデアルビガリス（Ｕｄｅａ ｒｕｂｉｇａｌｉｓ Ｇｕｅｎｅｅ）（セロリリーフティアー）といったメイガ科のボーラー、ツツミノガ類、ウェブワーム、コームワームおよびスケルトナイザ；ならびに、アクレリスグロベラナ（Ａｃｌｅｒｉｓ ｇｌｏｖｅｒａｎａ Ｗａｌｓｉｎｇｈａｍ）（ウェスターンブラックヘッデッドバッドワーム（Ｗｅｓｔｅｒｎ ｂｌａｃｋｈｅａｄｅｄ ｂｕｄｗｏｒｍ））；Ａ．バリアナ（Ａ．ｖａｒｉａｎａ Ｆｅｒｎａｌｄ）（イースタンブラックヘデッドバッドワーム）；アルキプスアルギロスピラ（Ａｒｃｈｉｐｓ ａｒｇｙｒｏｓｐｉｌａ Ｗａｌｋｅｒ）（果樹ハマキムシ）；Ａ．ロサナ（Ａ．ｒｏｓａｎａ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（セイヨウハマキ）といったハマキガ科のハマキムシ、芽を食害する害虫、種子を食害する害虫および果実を食害する害虫；ならびに、リンゴコカクモンハマキ（Ａｄｏｘｏｐｈｙｅｓ ｏｒａｎａ Ｆｉｓｃｈｅｒ ｖｏｎ Ｒｏｓｓｌｅｒｓｔａｍｍ）（リンゴコカクモンハマキ）；コキリスホスペス（Ｃｏｃｈｙｌｉｓ ｈｏｓｐｅｓ Ｗａｌｓｉｎｇｈａｍ）（バンデッドサンフラワーモス）；シディアラチフェレアナ（Ｃｙｄｉａ ｌａｔｉｆｅｒｒｅａｎａ Ｗａｌｓｉｎｇｈａｍ）（フィルバートワーム）；コドリンガ（Ｃ． ｐｏｍｏｎｅｌｌａ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（コドリンガ）；プラチノタフラベダナ（Ｐｌａｔｙｎｏｔａ ｆｌａｖｅｄａｎａ Ｃｌｅｍｅｎｓ）（バリエゲーテッドリーフローラー）；Ｐ．スツルタナ（Ｐ．ｓｔｕｌｔａｎａ Ｗａｌｓｉｎｇｈａｍ）（オムニボラスリーフローラー）；ホソバヒメハマキ（Ｌｏｂｅｓｉａ ｂｏｔｒａｎａ Ｄｅｎｉｓ ＆ Ｓｃｈｉｆｆｅｒｍｉｉｌｌｅｒ）（ホソバヒメハマキ）；リンゴシロヒメハマキ（Ｓｐｉｌｏｎｏｔａ ｏｃｅｌｌａｎａ Ｄｅｎｉｓ ＆ Ｓｃｈｉｆｆｅｒｍｉｉｌｌｅｒ）（リンゴシロヒメハマキ）；エンドピザビテアナ（Ｅｎｄｏｐｉｚａ ｖｉｔｅａｎａ Ｃｌｅｍｅｎｓ）（グレープベリーモス）；ブドウホソハマキ（Ｅｕｐｏｅｃｉｌｉａ ａｍｂｉｇｕｅｌｌａ Ｈｕｅｂｎｅｒ）（ブドウホソハマキ）；ボナゴタサルブリコラ（Ｂｏｎａｇｏｔａ ｓａｌｕｂｒｉｃｏｌａ Ｍｅｙｒｉｃｋ）（ブラジリアンアップルリーフローラ）；ナシヒメシンクイ（Ｇｒａｐｈｏｌｉｔａ ｍｏｌｅｓｔａ Ｂｕｓｃｋ）（ナシヒメシンクイ）；ヒマワリハマキガ（Ｓｕｌｅｉｍａ ｈｅｌｉａｎｔｈａｎａ Ｒｉｌｅｙ）（ヒマワリハマキガ）；アルギロタエニア属の一種（Ａｒｇｙｒｏｔａｅｎｉａ ｓｐｐ．）；コリストネウラ属の一種（Ｃｈｏｒｉｓｔｏｎｅｕｒａ ｓｐｐ．）といった他のハマキ種が挙げられる。

【0048】

鱗翅目において選択される他の農学的に有害な生物としては、これらに限定されないが、アルソフィラポメタリア（Ａｌｓｏｐｈｉｌａ ｐｏｍｅｔａｒｉａ Ｈａｒｒｉｓ）（フォールカンカーワーム）；モモキバガ（Ａｎａｒｓｉａ ｌｉｎｅａｔｅｌｌａ Ｚｅｌｌｅｒ）（モモキバガ）；アニソタセナトリア（Ａｎｉｓｏｔａ ｓｅｎａｔｏｒｉａ Ｊ．Ｅ．Ｓｍｉｔｈ）（オレンジストライプドオークワーム）；サクサン（Ａｎｔｈｅｒａｅａ ｐｅｒｎｙｉ Ｇｕｅｒｉｎ−Ｍｅｎｅｖｉｌｌｅ）（チャイニーズオークタッサーモス）；カイコ（Ｂｏｍｂｙｘ ｍｏｒｉ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（カイコ）；ブツクラトリクススベリエラ（Ｂｕｃｃｕｌａｔｒｉｘ ｔｈｕｒｂｅｒｉｅｌｌａ Ｂｕｓｃｋ）（コットンリーフパーホレータ）；コリアスユリテム（Ｃｏｌｉａｓ ｅｕｒｙｔｈｅｍｅ Ｂｏｉｓｄｕｖａｌ）（アルファルファキャタピラー）；ダタナインテゲリマ（Ｄａｔａｎａ ｉｎｔｅｇｅｒｒｉｍａ Ｇｒｏｔｅ ＆ Ｒｏｂｉｎｓｏｎ）（ウォールナッツキャタピラー）；デンドロリムスシビリクス（Ｄｅｎｄｒｏｌｉｍｕｓ ｓｉｂｉｒｉｃｕｓ Ｔｓｃｈｅｔｗｅｒｉｋｏｖ）（シベリアンシルクモス）、エノモススブシグナリア（Ｅｎｎｏｍｏｓ ｓｕｂｓｉｇｎａｒｉａ Ｈｕｅｂｎｅｒ）（エルムスパンワーム）；エランニスチリアリア（Ｅｒａｎｎｉｓ ｔｉｌｉａｒｉａ Ｈａｒｒｉｓ）（リンデンルーパー）；ユープロクティスクリソロエア（Ｅｕｐｒｏｃｔｉｓ ｃｈｒｙｓｏｒｒｈｏｅａ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（ブラウンテールモス）；ハリシナアメリカナ（Ｈａｒｒｉｓｉｎａ ａｍｅｒｉｃａｎａ Ｇｕｅｒｉｎ−Ｍｅｎｅｖｉｌｌｅ）（グレープリーフスケルトナイザ）；ヘミロイカオリビアエ（Ｈｅｍｉｌｅｕｃａ ｏｌｉｖｉａｅ Ｃｏｃｋｒｅｌｌ）（レンジキャタピラー）；アメリカシロヒトリ（Ｈｙｐｈａｎｔｒｉａ ｃｕｎｅａ Ｄｒｕｒｙ）（アメリカシロヒトリ）；ケイフェリアリコペルシセラ（Ｋｅｉｆｅｒｉａ ｌｙｃｏｐｅｒｓｉｃｅｌｌａ Ｗａｌｓｉｎｇｈａｍ）（トマトピンワーム）；ラムブジナフィセラリアフィセラリア（Ｌａｍｂｄｉｎａ ｆｉｓｃｅｌｌａｒｉａ ｆｉｓｃｅｌｌａｒｉａ Ｈｕｌｓｔ）（イースタンヘムロックルーパー）；Ｌ．フィセラリアルグボロサ（Ｌ．ｆｉｓｃｅｌｌａｒｉａ ｌｕｇｕｂｒｏｓａ Ｈｕｌｓｔ）（ウェスターンヘムロックルーパー）；ヤナギドクガ（Ｌｅｕｃｏｍａ ｓａｌｉｃｉｓ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（スタインモス）；マイマイガ（Ｌｙｍａｎｔｒｉａ ｄｉｓｐａｒ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（マイマイガ）；マンズカクインケマクラタ（Ｍａｎｄｕｃａ ｑｕｉｎｑｕｅｍａｃｕｌａｔａ Ｈａｗｏｒｔｈ）（ファイブスポテッドホークモス、トマトホーンワーム）；タバコスズメガ（Ｍ．ｓｅｘｔａ Ｈａｗｏｒｔｈ）（トマトホーンワーム、タバコホーンワーム）；オペロフテラブルマタ（Ｏｐｅｒｏｐｈｔｅｒａ ｂｒｕｍａｔａ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（ナミスジフユナミシャク）；パレアクリタベルナタ（Ｐａｌｅａｃｒｉｔａ ｖｅｒｎａｔａ Ｐｅｃｋ）（スプリングカンカーワーム）；クレスフォンテスタスキアゲハ（Ｐａｐｉｌｉｏ ｃｒｅｓｐｈｏｎｔｅｓ Ｃｒａｍｅｒ）（クレスフォンテスタスキアゲハ、オレンジドッグ）；フリガニジアカリホルニカ（Ｐｈｒｙｇａｎｉｄｉａ ｃａｌｉｆｏｒｎｉｃａ Ｐａｃｋａｒｄ）（カリフォルニアオークワーム）；ミカンコハモグリ（Ｐｈｙｌｌｏｃｎｉｓｔｉｓ ｃｉｔｒｅｌｌａ Ｓｔａｉｎｔｏｎ）（ミカンコハモグリ）；フィロノリクテルブランカルデラ（Ｐｈｙｌｌｏｎｏｒｙｃｔｅｒ ｂｌａｎｃａｒｄｅｌｌａ Ｆａｂｒｉｃｉｕｓ）（スポッテッドテンチフォームリーフマイナー）；オオモンシロチョウ（Ｐｉｅｒｉｓ ｂｒａｓｓｉｃａｅ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（オオモンシロチョウ）；モンシロチョウ（Ｐ．ｒａｐａｅ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（モンシロチョウ）；エゾスジグロシロチョウ（Ｐ．ｎａｐｉ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（エゾスジグロシロチョウ）；プラティプチリアカルズイダクチラ（Ｐｌａｔｙｐｔｉｌｉａ ｃａｒｄｕｉｄａｃｔｙｌａ Ｒｉｌｅｙ）（アーティチョークプルームモス）；コナガ（Ｐｌｕｔｅｌｌａ ｘｙｌｏｓｔｅｌｌａ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（コナガ）；ワタアカミムシガ（Ｐｅｃｔｉｎｏｐｈｏｒａ ｇｏｓｓｙｐｉｅｌｌａ Ｓａｕｎｄｅｒｓ）（ワタアカミムシ）；ポンチアプロトジス（Ｐｏｎｔｉａ ｐｒｏｔＯＤＩｃｅ Ｂｏｉｓｄｕｖａｌ ＆ Ｌｅｃｏｎｔｅ）（サウザンキャベッジワーム）；サブロデスアエグロタタ（Ｓａｂｕｌｏｄｅｓ ａｅｇｒｏｔａｔａ Ｇｕｅｎｅｅ）（オムニボロスルーパー）；シズラコンシンナ（Ｓｃｈｉｚｕｒａ ｃｏｎｃｉｎｎａ Ｊ．Ｅ．Ｓｍｉｔｈ）（レッドハンプドキャタピラー）；バクガ（Ｓｉｔｏｔｒｏｇａ ｃｅｒｅａｌｅｌｌａ Ｏｌｉｖｉｅｒ）（バクガ）；タウメトポエアピチオカムパ（Ｔｈａｕｍｅｔｏｐｏｅａ ｐｉｔｙｏｃａｍｐａ Ｓｃｈｉｆｆｅｒｍｕｌｌｅｒ）（パインプロセッショナリーキャタピラー）；コイガ（Ｔｉｎｅｏｌａ ｂｉｓｓｅｌｌｉｅｌｌａ Ｈｕｍｍｅｌ）（ウェビングクロスモス）；トマトキバガ（Ｔｕｔａ ａｂｓｏｌｕｔａ Ｍｅｙｒｉｃｋ）（トマトリーフマイナー）；イポノメウタパデラ（Ｙｐｏｎｏｍｅｕｔａ ｐａｄｅｌｌａ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（エルミンモス）；ヘリオチススブフレクサ（Ｈｅｌｉｏｔｈｉｓ ｓｕｂｆｌｅｘａ Ｇｕｅｎｅｅ）；マラコソマ属の一種（Ｍａｌａｃｏｓｏｍａ ｓｐｐ．）およびオルギア属の一種（Ｏｒｇｙｉａ ｓｐｐ．）が挙げられる。注目すべきは、ヒゲナガゾウムシ科、マメゾウムシ科およびゾウムシ科のゾウムシ（特にこれらに限定されないが：メキシコワタミゾウムシ（Ａｎｔｈｏｎｏｍｕｓ ｇｒａｎｄｉｓ Ｂｏｈｅｍａｎ）（ワタミゾウムシ）；イネミズゾウムシ（Ｌｉｓｓｏｒｈｏｐｔｒｕｓ ｏｒｙｚｏｐｈｉｌｕｓ Ｋｕｓｃｈｅｌ）（イネミズゾウムシ）；オサゾウムシ（Ｓｉｔｏｐｈｉｌｕｓ ｇｒａｎａｒｉｕｓ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（オサゾウムシ）；Ｓ．オリザエ（Ｓ．ｏｒｙｚａｅ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（ココクゾウムシ）；オオタコゾウムシ（Ｈｙｐｅｒａ ｐｕｎｃｔａｔａ Ｆａｂｒｉｃｉｕｓ）（オオタコゾウムシ）；シリンドロコプツルスアドスペルスス（Ｃｙｌｉｎｄｒｏｃｏｐｔｕｒｕｓ ａｄｓｐｅｒｓｕｓ ＬｅＣｏｎｔｅ）（サンフラワーステムウィービル）；スミクロニクスグルブス（Ｓｍｉｃｒｏｎｙｘ ｆｕｌｖｕｓ ＬｅＣｏｎｔｅ）（レッドサンフラワーシードウィービル）；Ｓ．ソルジズス（Ｓ．ｓｏｒｄｉｄｕｓ ＬｅＣｏｎｔｅ）（グレイサンフラワーシードウィービル）；スフェノホルスマイジス（Ｓｐｈｅｎｏｐｈｏｒｕｓ ｍａｉｄｉｓ Ｃｈｉｔｔｅｎｄｅｎ）（メイズビルバグ）を含む）；ハムシ科におけるノミハムシ、ウリハムシ、ネクイムシ、ハムシ、イモハムシおよびリーフマイナー（特にこれらに限定されないが：コロラドハムシ（Ｌｅｐｔｉｎｏｔａｒｓａ ｄｅｃｅｍｌｉｎｅａｔａ Ｓａｙ）（コロラドハムシ）；ウェスタンコーンルートワーム（Ｄｉａｂｒｏｔｉｃａ ｖｉｒｇｉｆｅｒａ ｖｉｒｇｉｆｅｒａ ＬｅＣｏｎｔｅ）（ウェスタンコーンルートワーム）；Ｄ．バルベリ（Ｄ．ｂａｒｂｅｒｉ Ｓｍｉｔｈ ＆ Ｌａｗｒｅｎｃｅ）（ノーザンコーンルートワーム）；Ｄ．ウンデシムプンクタタホワルジ（Ｄ．ｕｎｄｅｃｉｍｐｕｎｃｔａｔａ ｈｏｗａｒｄｉ Ｂａｒｂｅｒ）（サウザンコーンルートワーム）；カエトクネマプリカリア（Ｃｈａｅｔｏｃｎｅｍａ ｐｕｌｉｃａｒｉａ Ｍｅｌｓｈｅｉｍｅｒ）（コーンフリービートル）；フィロトレタクルシフェラエ（Ｐｈｙｌｌｏｔｒｅｔａ ｃｒｕｃｉｆｅｒａｅ Ｇｏｅｚｅ）（コーンフリービートル）；コラスピスブルンネア（Ｃｏｌａｓｐｉｓ ｂｒｕｎｎｅａ Ｆａｂｒｉｃｉｕｓ）（グレープコラスピス）；クビアカクビボソハムシ（Ｏｕｌｅｍａ ｍｅｌａｎｏｐｕｓ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（クビアカクビボソハムシ）；ジゴグラムマエクソクラマチオニス（Ｚｙｇｏｇｒａｍｍａ ｅｘｃｌａｍａｔｉｏｎｉｓ Ｆａｂｒｉｃｉｕｓ）（サンフラワービートル）を含む）；テントウムシ科のビートル（特にこれらに限定されないが：インゲンテントウ（Ｅｐｉｌａｃｈｎａ ｖａｒｉｖｅｓｔｉｓ Ｍｕｌｓａｎｔ）（インゲンテントウ）を含む）；コガネムシ科のコガネムシおよび他のビートル（特にこれらに限定されないが：マメコガネ（Ｐｏｐｉｌｌｉａｊａｐｏｎｉｃａ Ｎｅｗｍａｎ）（マメコガネ）；シクロセファラボレアリス（Ｃｙｃｌｏｃｅｐｈａｌａ ｂｏｒｅａｌｉｓ Ａｒｒｏｗ）（ノーザンマスクドチェーファー、ホワイトグラブ）；Ｃ．イムマクラタ（Ｃ．ｉｍｍａｃｕｌａｔａ Ｏｌｉｖｉｅｒ）（サウザンマスクドチェーファー、ホワイトグラブ）；リゾトログスマジャリス（Ｒｈｉｚｏｔｒｏｇｕｓ ｍａｊａｌｉｓ Ｒａｚｏｕｍｏｗｓｋｙ）（ヨーロピアンコガネムシ）；フィロファガクリニタ（Ｐｈｙｌｌｏｐｈａｇａ ｃｒｉｎｉｔａ Ｂｕｒｍｅｉｓｔｅｒ）（ホワイトグラブ）；リギルスギボスス（Ｌｉｇｙｒｕｓ ｇｉｂｂｏｓｕｓ Ｄｅ Ｇｅｅｒ）（キャロットビートル）を含む）、カツオブシムシ科のカツオブシムシ；エラテダエ科（Ｅｌａｔｅｈｄａｅ）のコメツキムシ、エレオデス属の一種（Ｅｌｅｏｄｅｓ ｓｐｐ．）、マレノツス属の一種（Ｍｅｌａｎｏｔｕｓ ｓｐｐ．）；コノデルス属の一種（Ｃｏｎｏｄｅｒｕｓ ｓｐｐ．）；リモニウム属の一種（Ｌｉｍｏｎｉｕｓ ｓｐｐ．）；アグリオテス属の一種（Ａｇｒｉｏｔｅｓ ｓｐｐ．）；クテニセラ属の一種（Ｃｔｅｎｉｃｅｒａ ｓｐｐ．）；アエオルス属の一種（Ａｅｏｌｕｓ ｓｐｐ．）；キクイムシ科のキクイムシおよびゴミムシダマシ科のビートルを含む鞘翅目の幼虫および成虫である。

【0049】

リーフマイナーといったアグロミザパルビコルニス（Ａｇｒｏｍｙｚａ ｐａｒｖｉｃｏｒｎｉｓ Ｌｏｅｗ）（コーンブロッチリーフマイナー）；ミジ（特にこれらに限定されないが：コンタリニアソルギコラ（Ｃｏｎｔａｒｉｎｉａ ｓｏｒｇｈｉｃｏｌａ Ｃｏｑｕｉｌｌｅｔｔ）（ソルガムミジ）；ヘシアンバエ（Ｍａｙｅｔｉｏｌａ ｄｅｓｔｒｕｃｔｏｒ Ｓａｙ）（コムギタマバエ）；ムギアカタマバエ（ＳｉｔＯＤＩｐｌｏｓｉｓ ｍｏｓｅｌｌａｎａ Ｇｅｈｉｎ）（ウィートミジ）；ネオラシオプテラムルトフェルトチアナ（Ｎｅｏｌａｓｉｏｐｔｅｒａ ｍｕｒｔｆｅｌｄｔｉａｎａ Ｆｅｌｔ）、（サンフラワーシードミジ）を含む）；ショウジョウバエ（ミバエ科）オスキネラフリツ（Ｏｓｃｉｎｅｌｌａ ｆｒｉｔ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（キモグリバエ）；ウジ（特にこれらに限定されないが：タネバエ（Ｄｅｌｉａ ｐｌａｔｕｒａ Ｍｅｉｇｅｎ）（シードコーンマゴット）；Ｄ．コアルクタタ（Ｄ．ｃｏａｒｃｔａｔａ Ｆａｌｌｅｎ）（ウィートバルブフライ）；ならびに、他のデリア属の一種（Ｄｅｌｉａ ｓｐｐ．）、メロミザアメリカナ（Ｍｅｒｏｍｙｚａ ａｍｅｒｉｃａｎａ Ｆｉｔｃｈ）（ムギキモグリバエ）；イエバエ（Ｍｕｓｃａ ｄｏｍｅｓｔｉｃａ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（イエバエ）；ヒメイエバエ（Ｆａｎｎｉａ ｃａｎｉｃｕｌａｒｉｓ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）、Ｆ．フェモラリエ（Ｆ．ｆｅｍｏｒａｌｉｅ Ｓｔｅｉｎ）（ヒメイエバエ）；サシバエ（Ｓｔｏｍｏｘｙｓ ｃａｌｃｉｔｒａｎｓ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（サシバエ）を含む）；フェースフライ、ノサシバエ、クロバエ、オビキンバエ属の一種（Ｃｈｒｙｓｏｍｙａ ｓｐｐ．）；クロキンバエ属の一種（Ｐｈｏｒｍｉａ ｓｐｐ．）；ならびに、他のイエバエ（ｍｕｓｃｏｉｄ ｆｌｙ）有害生物、アブといったアブ属の一種（Ｔａｂａｎｕｓ ｓｐｐ．）；ヒツジバエといったガストロフィラス属の一種（Ｇａｓｔｒｏｐｈｉｌｕｓ ｓｐｐ．）；ヒツジバエ属の一種（Ｏｅｓｔｒｕｓ ｓｐｐ．）；ウシバエといったウシバエ属の一種（Ｈｙｐｏｄｅｒｍａ ｓｐｐ．）；メクラアブといったメクラアブ属の一種（Ｃｈｒｙｓｏｐｓ ｓｐｐ．）；ヒツジシラミバエ（Ｍｅｌｏｐｈａｇｕｓ ｏｖｉｎｕｓ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（シラミバエ）；ならびに、他の短角類、蚊といったヤブカ属の一種（Ａｅｄｅｓ ｓｐｐ．）；ハナダラカ属の一種（Ａｎｏｐｈｅｌｅｓ ｓｐｐ．）；イエカ属の一種（Ｃｕｌｅｘ ｓｐｐ．）；ブユといった、プロシムリウム属の一種（Ｐｒｏｓｉｍｕｌｉｕｍ ｓｐｐ．）；ブユ属の一種（Ｓｉｍｕｌｉｕｍ ｓｐｐ．）；クロヌカカ、サシチョウバエ、シアド（ｓｃｉａｈｄ）および他の長角類を含む双翅目の成体および幼体に注目すべきである。注目される昆虫としては、特にこれらに限定されないが、カサアブラムシ科のカサアブラムシ、カスミカメムシ科のカスミカメムシ、セミ科のセミ、ヨコバイ科のヨコバイ、エムポアスカ属の一種（Ｅｍｐｏａｓｃａ ｓｐｐ．）、ヒシウンカ科、アオバハゴロモ科、ビワハゴロモ上科、マルウンカ科およびウンカ科のウンカ、ツノゼミ科のツノゼミ、キジラミ科のキジラミ、コナジラミ科のコナジラミ、アブラムシ科のアブラムシ、ネアブラムシ科のネアブラムシ、コナカイガラムシ科のイボタムシ、フサカイガラムシ科、カタカイガラムシ科、コチニールカイガラムシ科、マルカイガラムシ科、フクロカイガラムシ科、ハカマカイガラムシ科、ホエニココシダエ科およびワタフキカイガラムシ科のカイガラムシ、グンバイムシ科のアワダチソウグンバイ、カメムシ科のカメムシ、ヒメコガネナガカメムシ、ブリサス属の一種（Ｂｌｉｓｓｕｓ ｓｐｐ．）；ならびに、ナガカメムシ科の他のコバネナガカメムシ、コガシラアワフキ科のアワフキ、ヘリカメムシ科のヘリカメムシ、ならびに、ホシカメムシ科のアカホシカメムシおよびホシカメムシなどの半翅目および同翅目の成体および若虫が含まれる。

【0050】

同翅目の農業経済学的に重要なメンバーは、これらに限定されないが：エンドウヒゲナガアブラムシ（Ａｃｙｒｔｈｉｓｉｐｈｏｎ ｐｉｓｕｍ Ｈａｒｒｉｓ）（エンドウヒゲナガアブラムシ）；マメアブラムシ（Ａｐｈｉｓ ｃｒａｃｃｉｖｏｒａ Ｋｏｃｈ）（マメアブラムシ）；マメクロアブラムシ（Ａ．ｆａｂａｅ Ｓｃｏｐｏｌｉ）（マメクロアブラムシ）；ワタアブラムシ（Ａ．ｇｏｓｓｙｐｉｉ Ｇｌｏｖｅｒ）（ワタアブラムシ）；Ａ．マイジラジシス（Ａ．ｍａｉｄｉｒａｄｉｃｉｓ Ｆｏｒｂｅｓ）（コーンルートアフィド）；Ａ．ポミ（Ａ．ｐｏｍｉ Ｄｅ Ｇｅｅｒ）（リンゴアブラムシ）；ユキヤナギアブラムシ（Ａ．ｓｐｉｒａｅｃｏｌａ Ｐａｔｃｈ）（スピレアアフィド）；ジャガイモヒゲナガアブラムシ（Ａｕｌａｃｏｒｔｈｕｍ ｓｏｌａｎｉ Ｋａｌｔｅｎｂａｃｈ）（ジャガイモヒゲナガアブラムシ）；イチゴケナガアブラムシ（Ｃｈａｅｔｏｓｉｐｈｏｎ ｆｒａｇａｅｆｏｌｉｉ Ｃｏｃｋｅｒｅｌｌ）（イチゴケナガアブラムシ）；ジウラフィスノキシア（Ｄｉｕｒａｐｈｉｓ ｎｏｘｉａ Ｋｕｒｄｊｕｍｏｖ／Ｍｏｒｄｖｉｌｋｏ）（ロシアコムギアブラムシ）；オオバコアブラムシ（Ｄｙｓａｐｈｉｓ ｐｌａｎｔａｇｉｎｅａ Ｐａａｓｅｒｉｎｉ）（バラリンゴアブラムシ）；リンゴワタムシ（Ｅｒｉｏｓｏｍａ ｌａｎｉｇｅｒｕｍ Ｈａｕｓｍａｎｎ）（リンゴワタムシ）；ダイコンアブラムシ（Ｂｒｅｖｉｃｏｒｙｎｅ ｂｒａｓｓｉｃａｅ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（キャベツアブラムシ）；モモコフキアブラムシ（Ｈｙａｌｏｐｔｅｒｕｓ ｐｒｕｎｉ Ｇｅｏｆｆｒｏｙ）（モモコフキアブラムシ）；ニセダイコンアブラムシ（Ｌｉｐａｐｈｉｓ ｅｒｙｓｉｍｉ Ｋａｌｔｅｎｂａｃｈ）（ニセダイコンアブラムシ）；ムギウスイロアブラムシ（Ｍｅｔｏｐｏｌｏｐｈｉｕｍ ｄｉｒｒｈｏｄｕｍ Ｗａｌｋｅｒ）（シリアルアフィド）；チューリップヒゲナガアブラムシ（Ｍａｃｒｏｓｉｐｈｕｍ ｅｕｐｈｏｒｂｉａｅ Ｔｈｏｍａｓ）（チューリップヒゲナガアブラムシ）；モモアカアブラムシ（Ｍｙｚｕｓ ｐｅｒｓｉｃａｅ Ｓｕｌｚｅｒ）（モモアカアブラムシ）；レタスヒゲナガアブラムシ（Ｎａｓｏｎｏｖｉａ ｒｉｂｉｓｎｉｇｒｉ Ｍｏｓｌｅｙ）（レタスアブラムシ）；ペムフィグス属の一種（Ｐｅｍｐｈｉｇｕｓ ｓｐｐ．）（ルートアフィドおよびガルアフィド）；トウモロコシアブラムシ（Ｒｈｏｐａｌｏｓｉｐｈｕｍ ｍａｉｄｉｓ Ｆｉｔｃｈ）（トウモロコシアブラムシ）；ムギクビレアブラムシ（Ｒ．ｐａｄｉ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（ムギクビレアブラムシ）；ムギミドリアブラムシ（Ｓｃｈｉｚａｐｈｉｓ ｇｒａｍｉｎｕｍ Ｒｏｎｄａｎｉ）（ムギミドリアブラムシ）；サイファフラバ（Ｓｉｐｈａ ｆｌａｖａ Ｆｏｒｂｅｓ）（イエローシュガーケーンアフィッド）；ムギヒゲナガアブラムシ（Ｓｉｔｏｂｉｏｎ ａｖｅｎａｅ Ｆａｂｒｉｃｉｕｓ）（ムギヒゲナガアブラムシ）；マダラアルファルファアブラムシ（Ｔｈｅｒｉｏａｐｈｉｓ ｍａｃｕｌａｔａ Ｂｕｃｋｔｏｎ）（マダラアルファルファアブラムシ）；コミカンアブラムシ（Ｔｏｘｏｐｔｅｒａ ａｕｒａｎｔｉｉ Ｂｏｙｅｒ ｄｅ Ｆｏｎｓｃｏｌｏｍｂｅ）（コミカンアブラムシ）；ならびに、Ｔ．シトリシダ（Ｔ．ｃｉｔｒｉｃｉｄａ Ｋｉｒｋａｌｄｙ）（ミカンクロアブラムシ）；アデルゲス属の一種（Ａｄｅｌｇｅｓ ｓｐｐ．）（カサアブラムシ）；ブドウネアブラムシ（Ｐｈｙｌｌｏｘｅｒａ ｄｅｖａｓｔａｔｒｉｘ Ｐｅｒｇａｎｄｅ）（ペカンネアブラムシ）；タバココナジラミ（Ｂｅｍｉｓｉａ ｔａｂａｃｉ Ｇｅｎｎａｄｉｕｓ）（タバココナジラミ（ｔｏｂａｃｃｏ ｗｈｉｔｅｆｌｙ、ｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ ｗｈｉｔｅｆｌｙ））；シルバーリーフコナジラミ（Ｂ．ａｒｇｅｎｔｉｆｏｌｉｉ Ｂｅｌｌｏｗｓ ＆ Ｐｅｒｒｉｎｇ）（シルバーリーフコナジラミ）；ミカンコナジラミ（Ｄｉａｌｅｕｒｏｄｅｓ ｃｉｔｒｉ Ａｓｈｍｅａｄ）（ミカンコナジラミ）；トリアレウロデスアブチロネウス（Ｔｒｉａｌｅｕｒｏｄｅｓ ａｂｕｔｉｌｏｎｅｕｓ）（バンデッドウィングドホワイトフライ）およびオンシツコナジラミ（Ｔ．ｖａｐｏｒａｒｉｏｒｕｍ Ｗｅｓｔｗｏｏｄ）（オンシツコナジラミ）；ジャガイモヒメヨコバイ（Ｅｍｐｏａｓｃａ ｆａｂａｅ Ｈａｒｒｉｓ）（ジャガイモヒゲヨコバイ）；ヒメトビウンカ（Ｌａｏｄｅｌｐｈａｘ ｓｔｒｉａｔｅｌｌｕｓ Ｆａｌｌｅｎ）（ヒメトビウンカ）；フタテンヨコバイ（Ｍａｃｒｏｌｅｓｔｅｓ ｑｕａｄｒｉｌｉｎｅａｔｕｓ Ｆｏｒｂｅｓ）（フタテンヨコバイ）；ツマグロヨコバイ（Ｎｅｐｈｏｔｅｔｔｉｘ ｃｉｎｔｉｃｅｐｓ Ｕｈｌｅｒ）（ツマグロヨコバイ）；クロスジツマグロヨコバイ（Ｎ．ｎｉｇｒｏｐｉｃｔｕｓ Ｓｔａｌ）（クロスジツマグロヨコバイ）；トビイロウンカ（Ｎｉｌａｐａｒｖａｔａ ｌｕｇｅｎｓ Ｓｔａｌ）（トビイロウンカ）；トウモロコシウンカ（Ｐｅｒｅｇｒｉｎｕｓ ｍａｉｄｉｓ Ａｓｈｍｅａｄ）（トウモロコシウンカ）；セジロウンカ（Ｓｏｇａｔｅｌｌａ ｆｕｒｃｉｆｅｒａ Ｈｏｒｖａｔｈ）（セジロウンカ）；イネウンカ（Ｓｏｇａｔｏｄｅｓ ｏｒｉｚｉｃｏｌａ Ｍｕｉｒ）（イネウンカ）；シロリンゴヨコバイ（Ｔｙｐｈｌｏｃｙｂａ ｐｏｍａｒｉａ ＭｃＡｔｅｅ）（シロリンゴヨコバイ）；エリスロネオウラ属の一種（Ｅｒｙｔｈｒｏｎｅｏｕｒａ ｓｐｐ．）（チマダラヒメヨコバイ）；ジュウシチネンゼミ（Ｍａｇｉｃｉｃａｄａ ｓｅｐｔｅｎｄｅｃｉｍ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（ジュウシチネンゼミ）；ワタフキカイガラムシ（Ｉｃｅｒｙａ ｐｕｒｃｈａｓｉ Ｍａｓｋｅｌｌ）（イセリアカイガラムシ）；ナシマルカイガラムシ（Ｑｕａｄｒａｓｐｉｄｉｏｔｕｓ ｐｅｒｎｉｃｉｏｓｕｓ Ｃｏｒｎｓｔｏｃｋ）（サンホゼカイガラムシ）；ミカンコナジラミ（Ｐｌａｎｏｃｏｃｃｕｓ ｃｉｔｒｉ Ｒｉｓｓｏ）（ミカンコナカイガラムシ）；シュードコッカス属の一種（Ｐｓｅｕｄｏｃｏｃｃｕｓ ｓｐｐ．）（他のコナカイガラムシ群）；フタホシナシキジラミ（Ｃａｃｏｐｓｙｌｌａ ｐｙｒｉｃｏｌａ Ｆｏｅｒｓｔｅｒ）（ヨーロッパナシキジラミ）；カキキジラミ（Ｔｒｉｏｚａ ｄｉｏｓｐｙｒｉ Ａｓｈｍｅａｄ）（カキキジラミ）をさらに含む。

【0051】

半翅目の注目すべき農業経済学的に重要な種としては、これらに限定されないが：アクロステルナムヒラレ（Ａｃｒｏｓｔｅｒｎｕｍ ｈｉｌａｒｅ Ｓａｙ）（アオクサカメムシ）；アナサトリスチス（Ａｎａｓａ ｔｒｉｓｔｉｓ Ｄｅ Ｇｅｅｒ）（ヘリカメムシ）；アメリカコバネナガカメムシ（Ｂｌｉｓｓｕｓ ｌｅｕｃｏｐｔｅｒｕｓ ｌｅｕｃｏｐｔｅｒｕｓ Ｓａｙ）（コバネナガカメムシの一種）；コリスカゴシピイ（Ｃｏｒｙｔｈｕｃａ ｇｏｓｓｙｐｉｉ Ｆａｂｒｉｃｉｕｓ）（コットンレースバグ）；シルトペルチスモデスタ（Ｃｙｒｔｏｐｅｌｔｉｓ ｍｏｄｅｓｔａ Ｄｉｓｔａｎｔ）（トマトバグ）；ジスデルクススツレルス（Ｄｙｓｄｅｒｃｕｓ ｓｕｔｕｒｅｌｌｕｓ Ｈｅｒｒｉｃｈ−Ｓｃｈａｆｆｅｒ）（ホシカメムシ）；エウスキスツスセルブス（Ｅｕｓｃｈｉｓｔｕｓ ｓｅｒｖｕｓ Ｓａｙ）（茶色のカメムシの一種）；Ｅ．バイイオァフィウス（Ｅ．ｖａｉｉｏｌａｆｉｕｓ Ｐａｌｉｓｏｔ ｄｅ Ｂｅａｕｖｏｉｓ）（イッテンカメムシ）；グラプトステツス属の一種（Ｇｒａｐｔｏｓｔｅｔｈｕｓ ｓｐｐ．）（ヒメマダラカメムシ）；レプトグロッススコルクルス（Ｌｅｐｔｏｇｌｏｓｓｕｓ ｃｏｒｃｕｌｕｓ Ｓａｙ）（マツノミヘリカメムシ）；リグスリネオラリス（Ｌｙｇｕｓ ｌｉｎｅｏｌａｒｉｓ Ｐａｌｉｓｏｔ ｄｅ Ｂｅａｕｖｏｉｓ）（ミドリヘリカメムシ）；ツヤクロゴケグモ（Ｌ．Ｈｅｓｐｅｒｕｓ Ｋｎｉｇｈｔ）（ウェスタンターニッシュドプラントバグ）；キバナノレンリソウ（Ｌ．ｐｒａｔｅｎｓｉｓ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（コモンミドウバグ）；マキバカスミカメ（Ｌ．ｒｕｇｕｌｉｐｅｎｎｉｓ Ｐｏｐｐｉｕｓ）（マキバカスミカメ）；ナガミドリカスミカメ（Ｌｙｇｏｃｏｒｉｓ ｐａｂｕｌｉｎｕｓ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（コモングリーンカプシッド）；ミナミアオカメムシ（Ｎｅｚａｒａ ｖｉｒｉｄｕｌａ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（ミナミアオカメムシ）；オエバルスプグナクス（Ｏｅｂａｌｕｓ ｐｕｇｎａｘ Ｆａｂｒｉｃｉｕｓ）（イネカメムシ）；オンコペルツスファスシアツス（Ｏｎｃｏｐｅｌｔｕｓ ｆａｓｃｉａｔｕｓ Ｄａｌｌａｓ）（ラージミルクウィードバグ）；ワタノミハムシ（Ｐｓｅｕｄａｔｏｍｏｓｃｅｌｉｓ ｓｅｒｉａｔｕｓ Ｒｅｕｔｅｒ）（ワタノミハムシ）が挙げられる。

【0052】

さらに、本発明の実施形態は、カロコリスノルベギクス（Ｃａｌｏｃｏｒｉｓ ｎｏｒｖｅｇｉｃｕｓ Ｇｍｅｌｉｎ）（ストロベリーバグ）；オルソプスカムペストリス（Ｏｒｔｈｏｐｓ ｃａｍｐｅｓｔｒｉｓ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）；プレシオコリスルギコリス（Ｐｌｅｓｉｏｃｏｒｉｓ ｒｕｇｉｃｏｌｌｉｓ Ｆａｌｌｅｎ）（アップルカプシッド）；シルトペルチスモデスツス（Ｃｙｒｔｏｐｅｌｔｉｓ ｍｏｄｅｓｔｕｓ Ｄｉｓｔａｎｔ）（トマトバグ）；シルトペルチスノタツス（Ｃｙｒｔｏｐｅｌｔｉｓ ｎｏｔａｔｕｓ Ｄｉｓｔａｎｔ）（サックフライ）；スパナゴニクスアルボファシアツス（Ｓｐａｎａｇｏｎｉｃｕｓ ａｌｂｏｆａｓｃｉａｔｕｓ Ｒｅｕｔｅｒ）（ホワイトマークドフリーホッパー）ジアホノコリスクロリオニス（Ｄｉａｐｈｎｏｃｏｒｉｓ ｃｈｌｏｒｉｏｎｉｓ Ｓａｙ）（ハニーロクストプラントバグ）；ラボピジコラアリイ（Ｌａｂｏｐｉｄｉｃｏｌａ ａｌｌｉｉ Ｋｎｉｇｈｔ）（オニオンプラントバグ）；ワタノミハムシ（Ｐｓｅｕｄａｔｏｍｏｓｃｅｌｉｓ ｓｅｒｉａｔｕｓ Ｒｅｕｔｅｒ）（ワタノミハムシ）；アデルホコリスラピズス（Ａｄｅｌｐｈｏｃｏｒｉｓ ｒａｐｉｄｕｓ Ｓａｙ）（ラピッドプラントバグ）；ポエシロカプスス（Ｐｏｅｃｉｌｏｃａｐｓｕｓ ｌｉｎｅａｔｕｓ Ｆａｂｒｉｃｉｕｓ）（フォーラインドプラントバグ）；ニシウスエリカエ（Ｎｙｓｉｕｓ ｅｒｉｃａｅ Ｓｃｈｉｌｌｉｎｇ）（フォールスチンクバグ）；ニシウスラファヌス（Ｎｙｓｉｕｓ ｒａｐｈａｎｕｓ Ｈｏｗａｒｄ）（フォールスチンクバグ）；ミナミアオカメムシ（Ｎｅｚａｒａ ｖｉｒｉｄｕｌａ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（ミナミアオカメムシ）；エウリガステル属の一種（Ｅｕｒｙｇａｓｔｅｒ ｓｐｐ．）；コレイダエ属の一種（Ｃｏｒｅｉｄａｅ ｓｐｐ．）；ピロコリダエ属の一種（Ｐｙｒｒｈｏｃｏｒｉｄａｅ ｓｐｐ．）；チニダエ属の一種（Ｔｉｎｉｄａｅ ｓｐｐ．）；ブロストマチダエ属の一種（Ｂｌｏｓｔｏｍａｔｉｄａｅ ｓｐｐ．）；レズビイダエ属の一種（Ｒｅｄｕｖｉｉｄａｅ ｓｐｐ．）；およびシミシダエ属の一種（Ｃｉｍｉｃｉｄａｅ ｓｐｐ．）などの半翅目に対して有効であり得る。

【0053】

また、アセリアトシケラ（Ａｃｅｒｉａ ｔｏｓｉｃｈｅｌｌａ Ｋｅｉｆｅｒ）（ウィートカールマイト）；ホモノハダニ（Ｐｅｔｒｏｂｉａ ｌａｔｅｎｓ ＭＯｌｌｅｒ）（ホモノハダニ）；ハダニ科におけるハダニおよびアカダニ、リンゴハダニ（Ｐａｎｏｎｙｃｈｕｓ ｕｌｍｉ Ｋｏｃｈ）（リンゴハダニ）；ナミハダニ（Ｔｅｔｒａｎｙｃｈｕｓ ｕｒｔｉｃａｅ Ｋｏｃｈ）（ナミハダニ）；（Ｔ．マクダニエリ（Ｔ．ｍｃｄａｎｉｅｌｉ ＭｃＧｒｅｇｏｒ）（マクダニエルダニ）；Ｔ．シナバリヌス（Ｔ．ｃｉｎｎａｂａｒｉｎｕｓ Ｂｏｉｓｄｕｖａｌ）（ニセナミハダニ）；Ｔ．ツルケスタニ（Ｔ．ｔｕｒｋｅｓｔａｎｉ Ｕｇａｒｏｖ ＆ Ｎｉｋｏｌｓｋｉ）（ストロベリースパイダーマイト）；ヒメハダニ科におけるヒメハダニ、ブドウヒメハダニ（Ｂｒｅｖｉｐａｌｐｕｓ ｌｅｗｉｓｉ ＭｃＧｒｅｇｏｒ）（カンキツヒメハダニ）；エホフィイダエ科におけるサビダニおよびフシダニ、ならびに、他の食葉性ダニ、および、ヒトおよび動物の健康に重要なダニ、すなわちチリダニ科におけるヒョウダニ、ニキビダニ科におけるニキビダニ、ニクダニ科におけるムギコナダニ、マダニ目におけるマダニ、クロアシマダニ（Ｉｘｏｄｅｓ ｓｃａｐｕｌａｒｉｓ Ｓａｙ）（シカダニ）；イクソデスホロシクルス（Ｉｘｏｄｅｓ ｈｏｌｏｃｙｃｌｕｓ Ｎｅｕｍａｎｎ）（オーストラリアマダニ）；アメリカイヌカクマダニ（Ｄｅｒｍａｃｅｎｔｏｒ ｖａｒｉａｂｉｌｉｓ Ｓａｙ）（カクマダニ）；アムブリオンマアメリカヌム（Ａｍｂｌｙｏｍｍａ ａｍｅｒｉｃａｎｕｍ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（ローンスターチック）；ならびに、キュウセンダニ科、シラミダニ類およびヒゼンダニ科におけるキュウセンダニおよびヒゼンダニなどのダニ目（ダニ）の成体および幼虫もまた含まれる。セイヨウシミ（Ｌｅｐｉｓｍａ ｓａｃｃｈａｒｉｎａ Ｌｉｎｎａｅｕｓ）（セイヨウシミ）；マダラシミ（Ｔｈｅｒｍｏｂｉａ ｄｏｍｅｓｔｉｃａ Ｐａｃｋａｒｄ）（マダラシミ）などのシミ目の昆虫有害生物に注目すべきである。

【0054】

一実施形態において、昆虫は、オオタバコガ（ｃｏｔｔｏｎ ｂｏｌｌｗｏｒｍ）、ネイティブバドワーム、グリーンミリド、アブラムシ、ミナミアオカメムシ、アップルディンプリングバグ、アザミウマ（プラークトリプス、タバコトリプス、ネギアザミウマ、ミカンキイロアザミウマ）、コナジラミおよびツースポッテドマイトから選択される。一実施形態において、動物の昆虫有害生物としては、ノミ、シラミ、蚊、ハエ、ツェツェバエ、アリ、マダニ、ダニ、セイヨウシミおよびツツガムシが挙げられる。

【0055】

昆虫有害生物は、例えば、幼虫または他の幼体形態として早期成長段階で実施形態の組成物の殺虫活性に対してテストされ得る。昆虫は、約２０℃〜約３０℃および約３０％〜約７０％相対湿度で完全な暗中に飼育され得る。昆虫幼虫の飼育法およびバイオアッセイの実施方法は技術分野における当業者に周知である。

【0056】

いくつかの実施形態において、殺虫効果は、組成物での処理により、露出された昆虫の少なくとも約１０％が殺されることとなる効果である。いくつかの実施形態において、殺虫効果は、組成物での処理により、昆虫の少なくとも約２５％が殺されることとなる効果である。いくつかの実施形態において、殺虫効果は、組成物での処理により、露出された昆虫の少なくとも約５０％が殺されることとなる効果である。いくつかの実施形態において、殺虫効果は、組成物での処理により、露出された昆虫の少なくとも約７５％が殺されることとなる効果である。いくつかの実施形態において、殺虫効果は、組成物での処理により、露出された昆虫の少なくとも約９０％が殺されることとなる効果である。

【0057】

本発明によって保護されることが可能である益虫としては、（１）捕食性のビートル（表１１を参照のこと）であって、ハルモニアアルクアタ（Ｈａｒｍｏｎｉａ ａｒｃｕａｔａ）（Ｆａｂｒｉｃｉｕｓ）の成虫、ジオムスノテセンス（Ｄｉｏｍｕｓ ｎｏｔｅｓｃｅｎｓ）（Ｂｌａｃｋｂｕｒｎ）の成虫、コシネラレパンダ（Ｃｏｃｃｉｎｅｌｌａ ｒｅｐａｎｄａ）（Ｔｈｕｎｂｅｒｇ）の成虫、ジクラノラウイスベルルス（Ｄｉｃｒａｎｏｌａｕｉｓ ｂｅｌｌｕｌｕｓ）（Ｇｕｅｒｉｎ）；（２）ゲオコリスルブラ（Ｇｅｏｃｏｒｉｓ ｌｕｂｒａ）（ｋｉｒｋａｌｄｙ）の成虫、セルマツルスナサリス（Ｃｅｒｍａｔｕｌｕｓ ｎａｓａｌｉｓ）（Ｗｅｓｔｗｏｏｄ）の成虫、ナビスカプシホルミス（Ｎａｂｉｓ ｃａｐｓｉｆｏｒｍｉｓ）（Ｇｅｒｍａｒ）などの捕食性のバグ、（３）クモ、特にハエトリグモ科、オニグモ属の一種（Ａｒａｎｅｕｓ ｓｐｐ．）、オキシペス属の一種（Ｏｘｙｐｅｓ ｓｐｐ．）および（捕食寄生）プテロコルムスプロミソリウス（Ｐｔｅｒｏｃｏｒｍｕｓ ｐｒｏｍｉｓｓｏｒｉｕｓ）（Ｅｒｉｃｈｓｏｎ）、ヘテロペルマスカポスム（Ｈｅｔｅｒｏｐｅｌｍａ ｓｃａｐｏｓｕｍ）（Ｍｏｒｌｅｙ）、ネテリアプロズクタ（Ｎｅｔｅｌｉａ ｐｒｏｄｕｃｔａ）（Ｂｒｕｌｌｅ）が挙げられる。

【0058】

本発明の実施形態はまた、複合剤における１種以上の画分を特定することにより、本明細書に開示の方法を用いて１種以上の画分をスクリーニングすることにより、および、標的昆虫に対する潜在的な活性に対する正または負の効果を有する１種以上の画分を特徴づけることにより向上した昆虫防除剤を形成する方法に関する。

【0059】

いくつかの実施形態において、複合剤中の１種以上の画分（例えば、精油など）は、例えば、作動溶剤抽出、分留、分別結晶化、分別凍結、乾燥分別、洗剤分別、溶剤抽出、超臨界ＣＯ_２分別、減圧蒸留、カラムクロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、高圧液体クロマトグラフィー等を含む分別技術を用いて単離されることが可能である。これらの方法は当業者に公知である。

【0060】

採用が比較的単純であり、および、溶剤の使用を必要としないために、減圧蒸留が好ましい。

【0061】

いくつかの実施形態において、複合剤の１種以上の画分は、シリカまたはアルミナ固体支持体を用いるカラムクロマトグラフィーにより単離されることが可能である。例えば、ヘキサンおよび石油エーテルなどのアルカン、トルエン、塩化メチレン（または他のハロゲン化炭化水素）、ジエチルエーテル、酢酸エチル、アセトン、アルコール、酢酸等を含む有機溶剤は、単独で、もしくは、組み合わされて、カラム溶剤もしくは移動相として用いられることが可能である。いくつかの実施形態において、複合剤は、濃度が高められる極性溶剤を溶出溶剤として用いるカラムクロマトグラフィーによって分別される。カラムクロマトグラフィー法およびこれに用いられるのに一般的な溶剤は技術分野において周知である。

【0062】

いくつかの実施形態において、ＳＰＣは溶剤抽出によって単離されることが可能である。例えば、精油は、例えば、メタノール、酢酸、アセトン、アセトニトリル、ベンゼン、１−ブタノール、２−ブタノール、２−ブタノン、ｔ−ブチルアルコール、四塩化炭素、クロロベンゼン、クロロホルム、シクロヘキサン、１、２−ジクロロエタン、ジエチルエーテル、ジエチレングリコール、ジグリム（ジエチレングリコールジメチルエーテル）、１、２−ジメトキシ−エタン（グリム、ＤＭＥ）、ジメチルエーテル、ジメチル−ホルムアミド（ＤＭＦ）、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、ジオキサン、エタノール、酢酸エチル、エチレングリコール、グリセリン、ヘプタン、ヘキサメチルホスホルアミド（ＨＭＰＡ）、ヘキサメチルリン酸トリアミド（ＨＭＰＴ）、ヘキサン、メチルｔ−ブチルエーテル（ＭＴＢＥ）、塩化メチレン、ＪＶ−メチル−２−ピロリジノン（ＮＭＰ）、ニトロメタン、ペンタン、石油エーテル（リグロイン）、１−プロパノール、２−プロパノール、ピリジン、テトラヒドロフラン（ＴＨＦ）、トルエン、トリエチルアミン、水、重水、ｏ−キシレン、ｍ−キシレンおよび／または−キシレンなどの有機溶剤を含む有機溶剤と組み合わされることが可能である。当業者に公知である他の有機溶剤もまた採用されることが可能である。ＳＰＣと有機溶剤との混合物を、次いで、例えば水、エタノールおよびメタノールを含む有機溶剤中で混和性ではない抽出溶剤と組み合わせることが可能である。この組み合わせを分離漏斗などのガラス容器の中で数分間激しく振盪し、次いで、別々の相に分かれるまで数分間静置する。次いで、下方のより高密度の相を分離漏斗から排出する。次いで、有機相を抽出溶剤で反復して再抽出して、抽出溶剤に可溶性の化合物を有機相からさらに分離することが可能である。次いで、有機相の体積および抽出相を、ロータリー蒸発を用いて低減して、ＳＰＣの個別の２つの画分を得ることが可能である。

【0063】

いくつかの実施形態において、標的昆虫に対する向上した薬剤を特定する方法は、複合剤または複合剤の個別の単離された画分中に存在する化合物の特定、および、活性に係る処方化合物のスクリーニングを含むことが可能である。化合物の特定は、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）、または、質量分光測定（ＭＳ）と組み合わされたガスクロマトグラフィー（ＧＣ）により複合剤またはその単離した画分を分析することによって実施されることが可能である。処方化合物はまた、先ず、個別の処方成分を、例えば、作動溶剤抽出、分留、減圧蒸留、分別結晶化、分別凍結、乾燥分別、洗剤分別、溶剤抽出、超臨界ＣＯ２分別、カラムクロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、高圧液体クロマトグラフィー等を含む技術を用いて均質になるまで富化または精製することにより特定されることが可能である。富化または精製した成分は、例えば、赤外（ＩＲ）分光法、ラマン分光法、核磁気共嗚分光法（ＭＲ）等を含む分光技術を用いて特定されることが可能である。

【0064】

いくつかの実施形態は、特定された化学物質の化学誘導体または類似体を用いた標的昆虫に対する向上した薬剤の生成に関する。特定された化学物質の化学誘導体は、無機または有機官能基を伴って誘導された化合物を含むことが可能である。いくつかの実施形態において、化学誘導体は、有機官能基を伴って誘導された化合物である。いくつかの実施形態において、有機官能基はアルキル基であることが可能である。いくつかの実施形態において、有機官能基は、メチル、エチル、プロピル、ブチル、セリル、デシル、ヘプチル、ヘキシル、ミリシル、ミリスチル、ノニル、オクチル、パルミチル、ペンチル、ステアリル、イソプロピル、イソブチル、リグノセリル、ペンタコシル、ヘプタコシル、モンタニル、ノナコシル、ペンタン−２−イル、イソペンチル、３−メチルブタン−２−イル、ｔ−ペンチル、ネオペンチル、ウンデシル、トリデシル、ペンタデシル、マルガリル、ノナデシル、アラキジル、ヘニコシル、ベヘニル、トリコシル、シクロブチル、シクロプロピル基等であることが可能である。いくつかの実施形態において、有機官能基はアリール基であることが可能である。いくつかの実施形態において、有機官能基はフェニルまたはビフェニル−４−イル基であることが可能である。

【0065】

いくつかの実施形態において、標的昆虫に対する向上した薬剤としては、特定された化合物のハロゲン化誘導体である化学誘導体が挙げられる。いくつかの実施形態において、化学誘導体は、フッ素化、塩素化、臭素化またはヨウ化誘導体である。

【0066】

いくつかの実施形態においては、標的昆虫に対する向上した薬剤として、化合物のアルケニル化誘導体である化学誘導体が挙げられる。いくつかの実施形態において、化学誘導体は、オレイル化、アリル化、イソプロペンチル化、ビニル化、プレニル化またはフィチル化誘導体である。

【0067】

いくつかの実施形態においては、標的昆虫に対する向上した薬剤として、特定された化合物のヒドロキシル化誘導体である化学誘導体が挙げられる。

【0068】

いくつかの実施形態においては、標的昆虫に対する向上した薬剤として、特定された化合物のチオール化誘導体である化学誘導体が挙げられる。

【0069】

いくつかの実施形態においては、標的昆虫に対する向上した薬剤として、特定された化合物のカルボキシル化誘導体である化学誘導体が挙げられる。

【0070】

いくつかの実施形態においては、標的昆虫に対する向上した薬剤として、特定された化合物のアミド化誘導体である化学誘導体が挙げられる。

【0071】

いくつかの実施形態においては、標的昆虫に対する向上した薬剤として、特定された化合物のエステル化誘導体である化学誘導体が挙げられる。

【0072】

いくつかの実施形態においては、標的昆虫に対する向上した薬剤として、特定された化合物のアシル化誘導体である化学誘導体が挙げられる。

【0073】

いくつかの実施形態においては、標的昆虫に対する向上した薬剤として、特定された化合物のスルホン化誘導体である化学誘導体が挙げられる。

【0074】

いくつかの実施形態においては、標的昆虫に対する向上した薬剤として、置換基の同族体を導入することにより誘導された化学誘導体が挙げられる。

【0075】

いくつかの実施形態においては、標的昆虫に対する向上した薬剤として、置換基を環の周囲の異なる位置に動かすことにより誘導された化学誘導体が挙げられる。

【0076】

本発明のいくつかの実施形態において、テスト組成物の効力は、昆虫を用いた研究を実施することにより判定可能である。例えば、昆虫を殺し、昆虫の摂食または産卵等に係る傾向を変えるテスト組成物の効力は、昆虫がテスト組成物に露出される制御下での実験を用いて研究可能である。いくつかの実施形態において、昆虫に対するテスト組成物の毒性は、昆虫がテスト組成物に露出される制御下での実験を用いて研究可能である。

【0077】

いくつかの実施形態において、配合物は、溶解性が高く、ならびに、水および有害生物防除特性をも有し得る「キャリア」油中の全配合物の安定なエマルジョンの形成能が高い乳化剤から構成される。好ましい「キャリア」油はエステル化植物性油である。

【実施例】

【0078】

綿有害生物を防除するための商業綿システムにおいて、誘引または避難作物として用いることが可能である植物を特定するための研究を実施した。本研究において、アルファルファ、キマメ、モロコシ、スウィートコーンおよびチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）および綿ゲノタイプなどの広範な植物を、商業上の綿畑に、１２メートルの畝に植えた。特にヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）といったこれらの作物における有害生物の遷移、卵および幼虫の計数を綿の季節を通じて２週間毎に実施した。試験の結果から、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）に外寄生するヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）および他の綿有害生物は、綿および他の避難作物におけるものよりも顕著に少なかったことが明らかになった。それ故、植物は、昆虫有害生物を殺すかその行動を変え得るいくらかのＳＰＣを含有していると考えられた。チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）はＳＰＣの特定および有害生物を防除するためのこれらのＳＰＣの使用という観点では過去に注目を集めてはいなかったため、この植物のバイオアッセイによる分別により、過去において知られていない生物学的有害生物防除用の化合物または画分が明らかにされ得ることが予期された。

【0079】

実施例１ チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）：毒性摂食実験
ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）および他の綿有害生物のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）に対する外寄生はテストした綿および他の避難作物のものよりも顕著に低いことが明らかにされた圃場試験の結果に基づいて、これに係る可能性のある理由および関与するＳＰＣの調査を行った。この研究では、毒性化合物を含有し得る植物構造部の位置、および、農作物における有害生物を管理するための配合生成物としてのチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の使用をも確認した。

【0080】

ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の１令および２令幼虫に対する植物構造部の毒性
チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の構造部または部分（すなわち、新しい葉、中間の葉、古い葉、−完全なさやおよび切断したさや；未成熟（未熟）の種子、成熟した種子；粉砕した未熟な種子および粉砕した成熟した種子）を準備し、直径１２ｍｍのペトリ皿中の１００μＬの蒸留水で湿らせたろ紙の上に個々に置いた。ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の２令幼虫１匹を各ペトリ皿中の植物構造部の各々の上に置き、シールした。各処理を４回繰り返した。次いで、ペトリ皿を、２５℃（±２℃）、１４時間の明時間／１０時間の暗時間としたＬａｂｅｃインキュベータ中に置き、９日目まで毎日死亡を確認した。各処理に係る死亡率を１〜２日目、３〜４日目および５〜９日目で計算した。

【0081】

データの分析
実験データのすべてを、Ｉｎｓｔａｔ，ｖｅｒｓｉｏｎ ２．０３（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｉｎｃ．，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ，ＵＳＡ）でＡＮＯＶＡ法を用いて分析した。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較検定を用いて平均を分けた。

【0082】

結果
表１は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）（チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ））の異なる部分に対するヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の死亡率を表す。結果は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）中の毒素はすべての植物部位に存在しており、葉が最も多かったことを示す。Ｈ．プンクチゲラ（Ｈ．ｐｕｎｃｔｉｇｅｒａ）は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）中の毒素に対してオオタバコガ（Ｈ．ａｒｍｉｇｅｒａ）の幼虫よりも影響されやすいことが見いだされた。

【0083】

実施例２ チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の粗抽出
溶剤および抽出法の選択
抽出に用いた極性の異なる３種の溶剤は水（高極性）、メタノール（中間極性）およびヘキサン（無極性）であった。本研究の早期の段階において表面のすすぎと均質化の両方を行った。洗浄プロセスでは、葉を溶剤の中で３０秒間振盪し、１ｍＬ当たり１ｇの新しい葉の重量と同等の濃度となる体積にまで溶剤を蒸発させた。葉を溶剤中に一晩浸してから工業用ワーリングブレンダー中で１０分間混ぜることによりホモジェネートを調製した。次いで、ブレンドした葉原料をろ過し、表面洗浄に係る調節した体積と同じになるまで蒸発させた。ヘキサン抽出の場合には、分離漏斗を用いてすべての水性相を排除し、ヘキサンを適切な体積にまで蒸発させた。

【0084】

メタノールおよびヘキサン抽出物はロータリーエバポレータを用いて濃縮し、水抽出物は凍結乾燥機を用いて濃縮した。

【0085】

メタノール抽出
ＳＰＥ分別およびバイオアッセイ用の画分の後の供給のためのメタノール抽出物の調製については、凍結乾燥した植物原料を用いた。各々が約４５ｇ以下の植物原料を含有する１２個以下の容器を一定の重量となるまで乾燥させた（２４〜３０時間）。凍結乾燥した重量は一般に湿潤重量の２５％〜３０％であった。

【0086】

凍結乾燥した原料（重量）を２〜３ｍｍに切断し１５０ｍＬビーカ中に計量した。ＨＰＬＣ−グレードメタノール５０ｍＬを加え、サンプルを２０分間超音波処理した。溶剤をろ過し、植物塊を組み合わせた濾液で同様にさらに３回処理し、次いで、ロータリエバポレータを用いて乾燥するまで蒸発させた。水浴温度は４０℃に維持した。

【0087】

エタノール抽出
５００ｇの空気乾燥し、粉末化した植物原料を熱エタノールを用いて完全に抽出した。ソックスレー抽出器を２４時間操作し、溶剤を蒸発させたところ、８０ｇの抽出物（１６％）が得られた。比較のために、他のサンプルについて常温のエタノールおよび２４時間超の浸漬を用いて別途抽出を行った。このプロセスでは、最初の浸漬で２５ｇの抽出物（５％）が得られた。抽出は反復しなかった。

【0088】

抽出物の分別
固体相抽出（ＳＰＥ）を用いて抽出物を分別し、および、４０μｍ／１２０μｍの不定形状の酸洗浄シリカ（６０Å平均間隙率）を三官能性オクタデシル結合官能基と共に含むＣ１８疎水性シリカ系固体相ＳＰＥカートリッジ（Ｖａｒｉａｎ Ｂｏｎｄ Ｅｌｕｔｅ（Ｐａｒｔ Ｎｏ．１２２５６００１）またはＰｈｅｎｏｍｅｎｅｘ Ｓｔｒａｔａ Ｃ１８−Ｅ（Ｐａｒｔ Ｎｏ．８Ｂ−Ｓ００１−ＪＣＨ））を用いて、昆虫に対する生物学的アッセイ用の画分を得た。すべてのカートリッジをＡｌｌｔｅｃｈ Ｖａｃｕｕｍマニホルド（Ｐａｒｔ Ｎｏ．２１０３５１））で同時に処理した。ＳＰＥカートリッジを用いて、１．５のｇ湿潤重量の凍結乾燥した植物原料を収容したところ、コンディショニングしたカートリッジに固体として加える前に、乾燥した抽出物をセライトろ過助剤（Ｍｅｒｃｋ Ｃｅｌｉｔｅ ５４５，０．０２〜０．１ｍｍ）上に分散させた場合に、より良好に分画されたバンドが得られた。この目的のために、パスツールピペットの球状の端部を用いて（ピペットの首にあるくびれで計量（約０．２ｇ））、ロータリーエバポレータに取り付けた予め計量した小さいバイアルにすすぎながら移した残りの９ｍＬのサンプルに、一定量のセライトを６回入れた。セライトを完全に混合した後、バイアルの内容物をＮ_２下でペースト状になるまで乾燥させ、次いで、ロータリーエバポレータを用いて完全に乾燥させた。ＳＰＥカートリッジを５ｍＬのメタノール、続いて、５ｍＬの水のほとんどすべてを通すことによりコンディショニングをした。乾燥させたサンプル／セライト残留物の六分の一を６つのコンディショニングしたＳＰＥカートリッジの各々にスパチュラで移した。次いで、基本手順としてカラムに５ｍＬ水、続いて、メタノール／水混合物のアリコート、精製メタノール、次いで、アセトンを通し、すべての溶出液を回収した。

【0089】

ＨＰＬＣ分析
ダイオードアレイデテクタを備えるＡｇｉｌｅｎｔ １１００機器を分析用クロマトグラフィーに用いた。カラムは、３０℃で保持したシリカ系Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ Ｌｕｎａ ５μｍ Ｃ１８（２）、１５０ｍｍ×４．６ｍｍであった。通常は２０μＬである様々な体積のろ過したサンプルを、２０分間で５％ＭｅＯＨから１００％ＭｅＯＨとし、２８分まで保持し、３０分までに５％ＭｅＯＨに戻し、３７分まで保持して平衡化する酸性化メタノール／水勾配溶離プログラムを用いて分析した。移動相の両方の成分が０．５％酢酸を含有する。流量は通常１ｍＬ／ｍｉｎとした。フォトダイオード−アレイデテクタで、データを２５４ｎｍ、２８０ｎｍ、３６０ｎｍ、４３０ｎｍおよび４５０ｎｍで集めた。以下に図示したすべてのクロマトグラムは、２８０ｎｍで得たものである。

【0090】

結果
チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）のメタノール抽出物からのＳＰＥ画分の化学および構造分析が図１に示されている。一番上のトレースが、凍結乾燥植物原料の粗メタノール抽出物のものである。その下のものは、溶剤の極性を高めてＳＰＥカートリッジから連続して溶出した種々の画分（１〜６）を表す。予期していたとおり、ＳＰＥ分別およびＨＰＬＣ分析の両方に共通の逆相分離プロセスでは、より長い滞留時間で後期の画分に現れる、固定相に対してより高い親和性を示す化学成分がもたらされる。

【0091】

実施例３ メッシュハウスにおける綿植物へのヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の産卵に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分の効力（強制テスト）
この実験は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）から単離した画分の産卵抑止作用を判定するために実施した。テストしたチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分は、（１）画分１、（２）画分２、（３）画分３、（４）画分４、（５）画分５および（６）画分６、および（７）未処理（対照）であった。各処理を完全ランダム化法で４回反復した。実験に用いた植物は黒色土（圃場由来）中の直径８ｃｍのポットに植え、週に３回灌水した。植物に一度だけ施肥した。ポットに植えた植物を、自然環境への露出を増やすと共に、有害生物外寄生の可能性から保護することが可能であるメッシュハウスの中で保持および維持した。一旦植物が本葉４枚の段階に達したら、各処理の０．２５ｍＬの抽出物を葉の各々に載せ（１つのポットで１ｍＬ）、表面全体に均一に塗った。次いで、植物に覆いをかけ、３匹の交尾済みの（羽化後５日目）雌のガをケージ内に放った。処理から３日後に卵を計数した。産卵抑制指数（ＯＤＩ）を以下のとおり算出した：ＯＤＩ＝１００×（Ｃ−Ｔ）／（Ｃ＋Ｔ）（式中、Ｃ＝対照における合計産卵数；Ｔ＝処理したろ紙における卵の合計）。

【0092】

データの分析
実験データのすべてを、Ｉｎｓｔａｔ，ｖｅｒｓｉｏｎ ２．０３（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｉｎｃ．，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ，ＵＳＡ）でＡＮＯＶＡ法を用いて分析した。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較検定を用いて平均を分けた。

【0093】

結果
オオタバコガ（Ｈ．ａｒｍｉｇｅｒａ）雌成体を用いて実験用条件下で実施した強制テストでは、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分３および画分４（表２）は、テストした他のすべての画分（表２）よりも、植物当たりの産卵数が顕著に少ない（Ｐ＜０．００１）ことが確認された。それ故、これらの２種の画分は産卵抑止化合物を含有する可能性がある。

【0094】

実施例４ 実験室における、ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の２令幼虫の綿植物の葉ディスクへの摂食に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分の効力（強制テスト）
この実験は、強制テストにおいて綿葉を用いて実施した。オオタバコガ（Ｈ．ａｒｍｉｇｅｒａ）の２令幼虫を摂食バイオアッセイに用いた。テストしたチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分は、（１）画分１、（２）画分２、（３）画分３、（４）画分４、（５）画分５、（６）画分６、および（７）水処理（対照）であった。各処理を完全ランダム化法で４回反復した。ガラス温室内で栽培していた植物から採った３日目の綿葉を研究に用いた。葉を、各処理の１ｍＬの抽出物で処理した。抽出物に対する選好性または忌避性を防ぐために、葉面の各々の面に０．５ｍＬを適用した。葉をドラフト中で１時間かけて空気乾燥させた。

【0095】

一旦空気乾燥し、処理した葉の各々から２５ｍｍのディスクを切り出し、これを計量し、５５ｍｍのペトリ皿に置いた。ろ紙を１００μＬの蒸留水で湿らせて、ディスクの乾燥を防いだ。１匹の所望のサイズの幼虫を計量し、ペトリ皿の各々に入れた。次いで、ペトリ皿を、２５℃（±２℃）、１４時間の明時間／１０時間の暗時間としたＬａｂｅｃインキュベータに４８時間入れた。

【0096】

次いで、処理から４８時間後に葉ディスクおよび幼虫の両方を計量した。実験の前後での葉ディスクおよび幼虫の両方の重量差を各処理および対照について算出して、処理に何らかの摂食阻害効果があるかを判定した。

【0097】

データの分析
実験データのすべてを、Ｉｎｓｔａｔ，ｖｅｒｓｉｏｎ ２．０３（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｉｎｃ．，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ，ＵＳＡ）でＡＮＯＶＡ法を用いて分析した。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較検定を用いて平均を分けた。

【0098】

結果
チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の画分ならびにオオタバコガ（Ｈ．ａｒｍｉｇｅｒａ）の２令および３令幼虫を用いて実施した強制バイオアッセイにおいて、テストした他の画分および対照と比して、画分２、４および６で処理した葉は消費量が少なく、結果として幼虫の体重の増加も小さかった（図２ａ）。画分２は、２令幼虫の重量が低減するほどに、画分４および６よりも強い抑止効果を有していることが明らかである（図２ｂ）。

【0099】

実施例５ 実験室におけるヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の２令幼虫の毒性に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分の効力（強制テスト）
この実験は、強制テストにおいて綿葉を用いて実施した。オオタバコガ（Ｈ．ａｒｍｉｇｅｒａ）の２令幼虫を摂食バイオアッセイに用いた。テストしたチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分は、（１）画分１、（２）画分２、（３）画分３、（４）画分４、（５）画分５、（６）画分６、および（７）水処理（対照）であった。各処理を完全ランダム化法で４回反復した。ガラス温室内で栽培していた植物から採った３日目の綿葉を研究に用いた。葉を、各処理の１ｍＬの抽出物で処理した。抽出物に対する選好性または忌避性を防ぐために、葉面の各々の面に０．５ｍＬを適用した。葉をドラフト中で１時間かけて空気乾燥させた。

【0100】

一旦空気乾燥し、１匹の２令幼虫を、１００μＬの蒸留水で湿らせたろ紙上に直径２５ｍｍの葉ディスクを入れたペトリ皿に入れ、シールした。次いで、ペトリ皿を２５℃（±２℃）、１４時間の明時間／１０時間の暗時間としたＬａｂｅｃインキュベータに入れ、３日間にわたって幼虫の死亡率を毎日チェックした。

【0101】

データの分析
実験データのすべてを、Ｉｎｓｔａｔ，ｖｅｒｓｉｏｎ ２．０３（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｉｎｃ．，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ，ＵＳＡ）でＡＮＯＶＡ法を用いて分析した。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較検定を用いて平均を分けた。

【0102】

結果
この研究の結果はまたチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分は、２令オオタバコガ（Ｈ．ａｒｍｉｇｅｒａ）の幼虫に対して抗菌効果を有していたことを示した。この実験は、画分２、３および４は、これらの処理における４８時間後の死亡率が対照よりも高いことから、幼虫に有害な化合物を含有することを示した（図３）。この図は、４８時間後には、テストに供した１０匹中７匹の幼虫が４８時間の期間のうちに死んだことを示す。

【0103】

実施例６ 抵抗力の低い綿ゲノタイプ（ルメイン（Ｌｕｍｅｉｎ））の葉に適用したチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分２の摂食抑止作用
マスキング実験を実施して、ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の幼虫摂食を刺激することで知られている綿ゲノタイプに対するヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の２令幼虫の摂食応答効果または摂食阻害効果を観察および定量化した。ＡＣＲＩで、実験室においてオオタバコガ（Ｈ．ａｒｍｉｇｅｒａ）の２令幼虫を用いてテストを実施して、特定されている摂食刺激物資（ルメイン（Ｌｕ Ｍｅｉｎ）画分３）と摂食抑止剤（チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分２）との組み合わせを用いた相互作用の効果を判定した。

【0104】

この実験においては、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分２をルメイン（Ｌｕ Ｍｅｉｎ）と呼ばれる綿ゲノタイプの葉ディスクに適用した。第２の葉ディスクを水で処理した。一旦空気乾燥し、１匹の２令幼虫を、１００μＬの蒸留水で湿らせたろ紙上に直径２５ｍｍの葉ディスクを入れたペトリ皿に入れ、シールした。この実験を、完全乱塊法で１０回反復した。次いで、ペトリ皿を２５℃（±２℃）、１４時間の明時間／１０時間の暗時間としたＬａｂｅｃインキュベータに入れた。幼虫を４８時間摂食させ、消費された葉の重量および幼虫の重量を算出し、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分２で処理した葉ディスクと水処理葉ディスクとの間で、消費された葉、および、重量の低減または増加の差を分析した。

【0105】

データの分析
実験データのすべてを、Ｉｎｓｔａｔ，ｖｅｒｓｉｏｎ ２．０３（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｉｎｃ．，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ，ＵＳＡ）でＡＮＯＶＡ法を用いて分析した。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較テストを用いて平均を分けた。

【0106】

結果
この研究の結果は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分２はルメイン（Ｌｕ Ｍｅｉｎ）の葉の摂食刺激効果をマスクし、水処理されたものと比して１匹の幼虫によって消費される葉の量を低減させることを示した（図４）。これは、結果として、対照と比して幼虫の重量の増加を低減させた（図５）。

【0107】

実施例７ ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の綿植物への産卵に対するヘキサン中に配合されたチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分の効果。
メッシュハウスにおけるヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の産卵を判定する研究のために、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分２、３および４を組み合わせ、ヘキサン中に配合した。植物が本葉６枚の段階にある時に、１つのメッシュケージ（１００ｃｍ×５０ｃｍ×７０ｃｍ）において３回の実験を実施した。チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物の０（対照）、２０％ｖ／ｖ、１５％ｖ／ｖおよび１０％ｖ／ｖの濃度を表す４回の処理を用いた。１０本の綿植物を処理の各々に無作為に割り当て、メッシュケージ中に囲った。各処理では、小型の手持ち式噴霧器を用いて流出点まで適用した。対照植物には水を噴霧した。各処理は、異なるケージ中において、完全ランダム化法で４回反復した。２０匹の交尾済みの雌ガを各ケージ中に放して処理した植物に産卵させた。処理の３日後に、処理の各々における植物当たりの卵の数を計数し、植物当たりの卵の数を算出した。データは、卵の数／植物／処理として表記した。

【0108】

データの分析
実験データのすべてを、反復測定ＡＮＯＶＡ（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｉｎｃ．，ｖ２．０３，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ，ＵＳＡ）を用いて分析した。処理およびサンプル日は独立した可変要素とした。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較検定を用いて平均を分けた。

【0109】

結果
この研究の結果は、１０％、１５％および２０％ｖ／ｖで組み合わせたチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分で処理した綿植物で記録された卵の数／ｍは、実施した３回の実験のすべてにおいて未処理（対照）植物よりも顕著に少ないことを示した（Ｐ＜０．００１）（図６ａ、および図７）。チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）濃度間において顕著な差異（Ｐ＞０．０５）は認められず、１０％ｖ／ｖ濃度は１５および２０％ｖ／ｖ濃度と同様に効果的であることが示された（図６Ａ、Ｂおよび図７）。ヘキサン配合物は綿植物に有害であり、葉に焼けを生じさせたこともまた観察された。

【0110】

実施例８ チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分による圃場実験−ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の綿植物への産卵に対するヘキサン中に配合した組み合わせたチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分の効果
チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物２、３および４をヘキサン中に配合し、圃場試験のために、ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）に対して従来の綿作物に用いた。この試験は商業用の従来の綿作物で実施した。チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物を、ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の卵および幼虫に対する効力について、３種の異なる濃度（１）２０％ｖ／ｖ（２）１５％ｖ／ｖ（３）１０％ｖ／ｖおよび（４）対照（未噴霧）で評価した。各処理を完全乱塊法で４回反復した。各反復試験または処理試験区は、全長１００メートルおよび全幅６メートルまたは畝で計測した。配合したチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分の異なる薬量での葉面処理を、１５リットルの水に入れて、２４日間の間隔をあけて試験中に２回適用した。ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の卵および幼虫を、１メートルの畝の無作為に選択した綿植物で視覚的に査定した。処理適用の１日前に処理前の計数を行い、処理後の計数を、処理の７、１４、２１および２８日後に行った。データは、ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の卵および幼虫の数／ｍ／サンプル日と表記した。

【0111】

データの分析
実験データのすべてを、反復測定ＡＮＯＶＡを用いて分析した（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｉｎｃ．，ｖ２．０３，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ，ＵＳＡ）。処理およびサンプル日は独立した可変要素とした。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較検定を用いて平均を分けた。

【0112】

結果
顕著な差異（Ｐ＜０．００１）がチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）画分で処理した綿植物および未処理（対照）植物間で見出された（図８）。しかしながら、産卵抑止作用においては、顕著な差異（Ｐ＞０．０５）は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の濃度間では認められなかった（図８）。

【0113】

異なる濃度のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）で処理した試験区で記録した、ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）のきわめて小さいおよび小さい（１令〜３令）幼虫の数／ｍ／サンプル日は、未処理（対照）試験区よりも顕著に少なかった（Ｐ＜０．００１）（図７）。しかしながら、顕著な差異（Ｐ＞０．０５）は、テストした異なる濃度のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）生成物間では見出されなかった（図８）。

【0114】

実施例９ メッシュハウスにおける綿植物へのオオタバコガ（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ａｒｍｉｇｅｒａ）の雌の産卵に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物の効力
カノーラ油および粗綿実油中の異なる濃度のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）で処理したポットに植えた綿植物に対する交尾済みのヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の産卵応答を評価した。この研究において用いた植物はポットに植えた同齢のさく果を形成している綿植物であった。この実験は強制条件下で実施した。評価した処理は、（１）カノーラ油中の１％チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）、（２）カノーラ中の２％チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）、（３）粗綿実油中の１％チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）、（４）粗綿実油中の２％チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）および（５）対照（水）であった。各処理は、１０本の植物を含む処理の各々で８回反復した。各処理を、それぞれの綿植物に流出点まで適用した。１０本の植物の各処理の反復試験を４匹の交尾済みのオオタバコガ（Ｈ．ａｒｍｉｇｅｒａ）雌を含むプラスチックケージ中に囲って植物に産卵をさせた。処理の４日後に、各植物上の卵を計数し、記録した。データは卵の数／植物と表記した。

【0115】

データの分析
実験データのすべてを、Ｉｎｓｔａｔ，ｖｅｒｓｉｏｎ ２．０３（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｉｎｃ．，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ，ＵＳＡ）でＡＮＯＶＡ法を用いて分析した。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較検定を用いて平均を分けた。

【0116】

結果
卵の数／植物における顕著な差異は、異なるチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物で処理した植物間では認められなかった（表３）。しかしながら、卵の数／植物における顕著な差異は、処理した植物と対照植物との間では認められた（表３）。顕著に多い（Ｐ＜０．０００１）卵／植物が、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）油配合物と比して、対照植物において記録された（表３）。

【0117】

実施例１０ 実験室におけるオオタバコガ（Ｈ．ａｒｍｉｇｅｒａ）の幼虫の死亡率に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物の効果
この研究は、ＡＣＲＩで、実験室において人工餌料で飼育したヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）で実施した。この実験の最中、実験室は、２５℃の温度および５５〜６０％の相対湿度に維持した。評価した処理は、（１）綿実油中の１％ｖ／ｖチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）、（２）粗綿実油中の１％ｖ／ｖチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）、（３）カノーラ油中の１％ｖ／ｖチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）および（４）対照（水）であった。各濃度について、本発明者は、合計で４８匹の２令幼虫（１２匹の幼虫／反復試験）に流出点まで噴霧した。噴霧適用の後、各処理からの幼虫を移し、各処理と個々に混合したダイズ系人工餌料を含む３５ｍＬの透明なプラスチック容器（Ｐ１０Ｍ；Ｓｏｌｏ，Ｕｒｂａｎａ，Ｉｌｌｉｏｎｉｓ，ＵＳＡ）中に移し、保持した。各処理を４回反復した。対照におけるすべての幼虫が蛹化した処理の１４日後に、死亡した幼虫の数を計数し、各処理において記録した。

【0118】

データの分析
実験データのすべてを、Ｉｎｓｔａｔ，ｖｅｒｓｉｏｎ ２．０３（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｉｎｃ．，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ，ＵＳＡ）でＡＮＯＶＡ法を用いて分析した。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較検定を用いて平均を分けた。

【0119】

結果
１４ＤＡＴでは、死亡した幼虫の数は粗綿実油中の１％ｖ／ｖチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）において最も多く、続いて、カノーラおよび綿実油中の１％ｖ／ｖチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）において多かった（図９）。水（対照）においては、幼虫の死亡は記録されなかった（図９）。また、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）処理試験区において死亡していない幼虫のほとんどは病化しており、不活発であった（図９）。対照において病化した幼虫はなく、すべての幼虫が蛹化した。総合的に、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）処理した幼虫の成長は、対照と比して平均で４日遅延された。

【0120】

実施例１１ 従来の綿における有害生物および益虫に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）油配合物の効力
この研究は、商業用の従来の綿作物の後期において実施した。試験はいずれかの特定の有害生物を標的とはしておらず、処理を綿作物に適用して、Ｎａｍｏｉ下流領域における綿期間中に作物にいたすべての有害生物および捕食性昆虫に対する効力を評価した。評価した処理は、（１）カノーラ油中の１％ｖ／ｖチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）、（２）カノーラ油中の２％ｖ／ｖチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）、（３）粗綿実油中の１％ｖ／ｖチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）、（４）粗綿実油中の２％ｖ／ｖチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）、（５）未噴霧（対照）であった。各処理は完全乱塊法で３回反復した。各反復試験は、全長１００メートルおよび全幅６畝またはメートルで計測した。

【0121】

各処理の葉面処理を第１日目に行った。以下の有害生物：グリーンミリド（クレオンチアデスジルツス（Ｃｒｅｏｎｔｉａｄｅｓ ｄｉｌｕｔｕｓ））、コットンルーパー（ワタアカキリバ（Ａｎｏｍｉｓ ｆｌａｖａ））、ミナミアオカメムシ（ミナミアオカメムシ（Ｎｅｚａｒａ ｖｉｒｉｄｕｌａ））およびアップルディンプリングバグ（カムピロムマリエブクネクチ（Ｃａｍｐｙｌｏｍｍａ ｌｉｅｂｋｎｅｃｈｔｉ））、ならびに、各処理における試験期間では研究サイトにおいて大量に存在していた捕食性昆虫（捕食性のビートル、バグ、クサカゲロウおよびクモ）の視認による計数を、処理の２４時間前、ならびに、処理の３、５および７日後に行った。計数は、各処理の反復試験における２本の無作為に選択した全長１メートルの綿の畝、すなわち、合計で６メートル／処理で行った。計数は、種々の有害生物および捕食虫に分けた。益虫は、捕食性のビートル、バグ、クサカゲロウおよびクモにグループ化した。データは数／ｍと表記した。

【0122】

データの分析
実験データのすべてを、反復測定ＡＮＯＶＡを用いて分析した（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｉｎｃ．，ｖ２．０３，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ，ＵＳＡ）。処理およびサンプル日は独立した可変要素とした。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較検定を用いて平均を分けた。

【0123】

結果
試験期間中の試験サイトにおける主たる有害生物はグリーンミリド、コットンルーパー、ミナミアオカメムシおよびアップルディンプリングバグであった。ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）は試験サイトに存在していなかった。従って、ここで記録したデータは、テスト期間中に大量に存在していたこれらの有害生物に対するものである。

【0124】

グリーンミリドに対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の効果
研究試験区において記録したグリーンミリドの数／ｍは、０．１７〜０．３３匹／ｍの範囲であった（表４）。３ＤＡＴでは、すべてのチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）処理試験区においてミリドは記録されず、一方で、未噴霧試験区では０．３３匹／ｍと記録された（表４）。５ＤＡＴでは、２％ｖ／ｖチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）で処理した試験区において記録されたミリドの数／ｍは未噴霧試験区とは顕著に異なっていた（Ｐ＜０．０１）が、１％ｖ／ｖチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）で処理した試験区とは顕著に異なっていなかった（Ｐ＞０．０５）（表４）。１％ｖ／ｖチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）で処理した試験区で記録されたグリーンミリドの数は、５ＤＡＴでは未噴霧（対照）試験区とは顕著に異なっていなかった（表４）。７ＤＡＴでは、処理済みおよび対照試験区で記録されたグリーンミリドの数／ｍは、顕著に異なっていなかった（表４）。これは、植物に処理前に産卵されたミリドの卵の孵化のため、また、激しく繁茂した実綿のために植物の多くを除去したことによる生成物の適用度が低くなってしまったためであり得る。

【0125】

コットンルーパー対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の効果
これらは、試験中において、研究サイトの綿作物に最も大量に存在していた昆虫種であった。この研究は、対照と比して、顕著に少ない（Ｐ＜０．０５）コットンルーパー／ｍがチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）処理試験区において記録されたことを示した（表５）。３ＤＡＴでは、コットンルーパー死亡率は、粗綿実油中の２％チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）で処理した試験区で最も高く（５８．９％）、次いで、粗綿実油中の１％チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）が高かった（４７．２％）（表５）。カノーラ種子油中の１％および２％チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）は、それぞれ、２６．６および４２．９％死亡率をもたらした（表５）。未噴霧試験区では、同時にコットンルーパー個体群の１０％の増加が記録された（表５）。

【0126】

アップルディンプリングバグに対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の効果
異なる濃度のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物は、３ＤＡＴで、研究サイト中のＡＤＢ個体群に顕著な効果を有していた（表６）。最も多いＡＤＢの死亡数は、３ＤＡＴの時点では、粗綿実油中の２％チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）で処理した試験区において記録され（６５．９％）、次いで、カノーラ油中の２％チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）で記録された（６４．０％）（表６）。カノーラおよび粗綿実油中の１％チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）では、それぞれ５６．８および５２．１％の死亡率が３ＤＡＴに記録された（表６）。

【0127】

益虫
処理試験区で同定された益虫は主に捕食虫であり、これらは捕食性のビートル、バグ、クサカゲロウおよびクモを含む（表７）。

【0128】

処理および対照間で、捕食性のビートル（表８）、バグ（表９）、クサカゲロウ（表１０）およびクモ（表１１）の数に顕著な差異は認められなかった。これは、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）生成物は綿における益虫に効果を有していないことを示す。

【0129】

実施例１２ 綿有害生物に対する実験室での試験用のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の配合物
チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）原料を、異なる成長段階で、異なる３箇所で収穫した。抽出物を、加熱乾燥し、８０℃水浴中に１時間かけて植物を浸軟（各溶剤で３０ｇ）することにより形成した。２４時間後にろ過および蒸発を行った。溶液を４００℃の減圧下で蒸発させ、一方で、水溶液の蒸発を水浴を用いて行った。この溶液を分別化濃縮物が得られるまで蒸発させた。分別化濃縮物を、界面活性剤（Ｃ１２〜Ｃ１５エトキシレートおよびＴｅｒｉｃ（登録商標）（Ｈｕｎｔｓｍａｎ）、乳化剤（Ｔｅｒｍｕｌ（登録商標）３０００）、ならびに、粗綿実油、精製綿実油およびカノーラ油などの低分子量油中に配合した。減圧および圧力を加えて、ろ過を効率化した。

【0130】

綿有害生物および益虫に対する実験室および圃場バイオアッセイにおいて用いるために、４種の配合物を用意した。配合物は以下のとおりである：
（１）乳化剤を伴わない油中のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物（配合物Ａ）、
（２）乳化剤を伴うがチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）を伴わない配合物（配合物Ｂ）、
（３）乳化剤を伴うチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物（配合物Ｃ）および
（４）乳化剤を伴うチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物（配合物Ｄ）

【0131】

実験室におけるグリーンミリドの死亡率に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の異なる薬量の効果
２５℃の温度および５５〜６０％の相対湿度の実験室において、４種の配合物を０．５％、１．０％、１．５％および２．０％（ｖ／ｖ）で評価した。水を対照として用いた。各配合物に対して、１処理当たりインゲン上の合計で６匹（３組）の雌および雄の成体ミリド（１組反復試験）に流出点まで噴霧した。追加的に、インゲンも各処理において６０秒浸漬させた。処理適用後、１組のグリーンミリド（雄および雌）を、３５ｍＬの透明なプラスチック容器（Ｐ１０１Ｍ；Ｓｏｌｏ，Ｕｒｂａｎａ，Ｉｌｌｉｏｎｉｓ，ＵＳＡ）中に移し、別々に保持した浸漬済みのインゲンの上に放した。各処理を３回反復した。死亡したミリド成体の数を計数し、最も効果的な処理においてすべての昆虫が死亡するまで毎日記録した。対照を基準として死亡率を算出した。

【0132】

データの分析
実験データのすべてを、反復測定ＡＮＯＶＡを用いて分析した（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ ａｎｄ Ｐｒｉｓｍ Ｓｏｆｔｗａｒｅ，Ｉｎｃ．ｖ．２．０３，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ，ＵＳＡ）。処理およびサンプル日は独立した可変要素とした。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較検定を用いて平均を分けた。

【0133】

結果
顕著な差異（Ｐ＜０．０１）が処理間で認められた（表１２）。チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）を０．５％ｖ／ｖで適用した場合にはミリドの死亡数は減少した。適用量の増加に伴って、死亡したグリーンミリドの数が顕著に増加した（表１２）。配合物Ａは、グリーンミリド成体に対して、テストしたすべての薬量で最も高い死亡率をもたらした（表１２）。１％ｖ／ｖ薬量では、配合物Ａは５５．７％の死亡率がもたらされたのに比して、配合物Ｃおよび配合物Ｄでは、それぞれ、４４．３％であった（表１２）。生成物を２％ｖ／ｖ薬量で適用した場合、最も高い死亡率は、配合物Ａ（１００％）、配合物Ｃ（８９％）および配合物Ｄ（１００％）によりもたらされた（表１２）。チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）を含有していなかった配合物Ｂによりもたらされたグリーンミリドに対する死亡率は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）を含有する他の配合物よりも顕著に低く（Ｐ＜０．０１）、水（対照）で処理した昆虫とは顕著に異なっていなかった（表１２）。

【0134】

実施例１３ グリーンミリド成体の生存に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の直接適用および残留物の組み合わせの効力。
チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物である、配合物Ａ、配合物Ｃおよび配合物Ｄを、２５℃の温度および６０〜７０％ＲＨの実験室において、１および２Ｌ／ｈａで評価した。対照として水を用いた。各配合物に対して、１処理当たり合計で６匹（３組）の雌および雄の成体ミリド（１組／反復試験）にインゲン上で流出点まで噴霧した。また、インゲンを各配合物に６０秒浸漬し、３５ｍＬの透明なプラスチック容器（Ｐ１０１Ｍ；Ｓｏｌｏ，Ｕｒｂａｎａ，Ｉｌｌｉｏｎｉｓ，ＵＳＡ）中に移し、別々に保持した。その後、１匹の雄および雌グリーンミリド（１組）をプラスチック容器中のインゲンに放した。各処理を３回反復した。死亡したミリド成体（雄および雌）の数を計数し、処理の３、５、７、９および１１日後に記録し、対照を基準として死亡率を算出した。

【0135】

データの分析
実験データのすべてを、反復測定ＡＮＯＶＡを用いて分析した（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ ａｎｄ Ｐｒｉｓｍ Ｓｏｆｔｗａｒｅ，Ｉｎｃ．ｖ．２．０３，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ，ＵＳＡ）。処理およびサンプル日は独立した可変要素とした。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較検定を用いて平均を分けた。

【0136】

結果
グリーンミリド雄成体の死亡率に対する効力
３ＤＡＴでは、３３．３％の死亡率をもたらした２Ｌ／ｈａ配合物Ａを除き、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）処理のいずれもグリーンミリド雄成体を死亡させていなかった（表１３）。５ＤＡＴでは、２Ｌ／ｈａで適用した配合物Ｄおよび配合物Ａは３３．３％の死亡率をもたらしたが、一方で、より低薬量では、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）生成物はミリドを全く殺さなかった。１Ｌ／ｈａ薬量では、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）生成物は３３．３％のグリーンミリドの死亡率を７ＤＡＴでもたらしたが、一方で、２Ｌ／ｈａ薬量では６６．７％がもたらされた（表１３）。９および１１ＤＡＴでは、２Ｌ／ｈａ配合物Ａおよび配合物Ｄはミリドを１００％死亡させたが、一方で、１Ｌ／ｈａ薬量および２Ｌ／ｈａ配合物Ｃは６６．７％を死亡させた（表１３）。

【0137】

実施例１４ グリーンミリド雌成体の死亡率に対する効力
３ＤＡＴでのグリーンミリド雌成体の死亡率はゼロであったが、５ＤＡＴでは３３．３％であった（表１４）。雌成体およびインゲンを２Ｌ／ｈａ配合物Ａおよび配合物Ｄで処理した場合の死亡率は７ＤＡＴで６６．７％であるのに比して、１Ｌ／ｈａ配合物Ｄおよび配合物Ａで処理した場合は３３．３％であった（表１４）。１Ｌ／ｈａ配合物Ｃで処理した昆虫のいずれも７ＤＡＴでは死亡しておらず、わずかに３３．３％が９および１１ＤＡＴに死亡した。対照的に、２Ｌ／ｈａ配合物Ａおよび配合物Ｄの適用では雌成体のすべてが９ＤＡＴで死亡し、一方で、２Ｌ／ｈａ配合物Ｃでは昆虫の７７．７％が、ならびに、１Ｌ／ｈａ配合物Ｄおよび配合物Ａでは昆虫の６６．７％が死亡した。１１ＤＡＴでは、わずかに３３．３および６６．７％がそれぞれ死亡した１Ｌ／ｈａ配合物Ｃおよび１Ｌ／ｈａ配合物Ｄで処理した昆虫を除いて、すべての処理された昆虫が死亡した（表１４）。

【0138】

実施例１５ 実験室における、インゲンでのグリーンミリド成体に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の産卵抑止作用：
合計産卵数に対する効果
２５℃の温度および４０％ＲＨの実験室において、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物である配合物Ａ、配合物Ｂ、配合物Ｃおよび配合物Ｄを、０．５％、１．０％、１．５％および２．０％（ｖ／ｖ）で評価した。対照として水を用いた。各配合物に対して、１処理当たり合計で６匹（３組）のグリーンミリドの雌および雄の成体ミリド（１組／反復試験）に、ろ紙上で流出点まで噴霧した。インゲンを各配合物中に６０秒浸漬し、次いで、３５ｍＬの透明なプラスチック容器（Ｐ１０１Ｍ；Ｓｏｌｏ，Ｕｒｂａｎａ，Ｉｌｌｉｏｎｉｓ，ＵＳＡ）の中に移し、別々に保持した。３組の処理したグリーンミリド成体を各プラスチック容器中の処理したインゲンの上に放した。各処理を４回反復した。卵の数を双眼顕微鏡で計数し、処理の１つにおけるすべての昆虫が死亡した処理の９日後まで毎日記録した。データを産卵数／雌と表記し、処理間で比較した。

【0139】

データの分析
実験データのすべてを、反復測定ＡＮＯＶＡ（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ ａｎｄ Ｐｒｉｓｍ Ｓｏｆｔｗａｒｅ，Ｉｎｃ．ｖ．２．０３，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ，ＵＳＡ）を用いて分析した。処理およびサンプル日は独立した可変要素とした。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較検定を用いて平均を分けた。

【0140】

結果
インゲンへのグリーンミリドの産卵数は、配合物Ａで処理した昆虫において、他の処理および対照よりもすべての濃度で顕著に少なかった（Ｐ＜０．００１）（表１５）。０．５％ｖ／ｖチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）抽出物では、１．１７個の卵／雌が配合物Ａで処理したインゲンに産卵されたのに比して、配合物Ｃおよび配合物Ｄで処理した植物においては、それぞれ、８．５８および７．２５個／雌であった（表１５）。配合物Ｂおよび未噴霧のインゲンは、それぞれ、１１および１２．４２個の卵／雌を有していた（表１５）。１．０％ｖ／ｖでは、配合物Ｄで処理した昆虫およびインゲンに係る産卵数／雌は配合物Ａ、配合物Ｂおよび配合物Ｃと同じであったが、配合物Ａは合物Ｂおよび配合物Ｃとは異なっていた。配合物Ａおよび配合物Ｄで処理した植物における記録された卵の数／雌は、対照よりも顕著に少なかった（Ｐ＜０．０００９）（表１５）。１．５および２Ｌ／ｈａ薬量では、配合物Ａ、配合物Ｃおよび配合物Ｄで処理した昆虫およびインゲンにおいて卵の数／雌に顕著な差異は認められなかった。しかしながら、配合物Ａで処理した昆虫およびインゲンにおける卵の数／雌は、配合物Ｂおよび未噴霧（対照）よりも顕著に少なかった（Ｐ＜０．００５およびＰ＜０．０１）（表１５）。

【0141】

実施例１６ 実験室における、インゲンにおけるグリーンミリド雌成体に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）の産卵抑止作用：処理後の日数および雌成体による産卵。
２５℃の温度および４０〜５５％ＲＨの実験室において、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物である、配合物Ｃ、配合物Ｄおよび配合物Ａを、１および２Ｌ／ｈａで評価した。水を対照として用いた。各配合物に対して、１処理当たり合計で６匹の成体ミリド雌および雄（３組）（１組／反復試験）にろ紙上で流出点まで噴霧した。３本のインゲンを各処理または配合物において６０秒浸漬した。各処理からの各ミリド組および処理したインゲンを、３５ｍＬの透明なプラスチック容器（Ｐ１０１Ｍ Ｓｏｌｏ，Ｕｒｂａｎａ，Ｉｌｌｉｏｎｉｓ，ＵＳＡ）に移し、別々に保持した。各処理を３回反復した。各処理におけるグリーンミリドの産卵数／雌を、処理の３、５、７、９および１１日後に双眼顕微鏡で計数した。卵の数／雌／処理を算出し、処理および対照間で比較した。

【0142】

データの分析
実験データのすべてを、反復測定ＡＮＯＶＡを用いて分析した（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ ａｎｄ Ｐｒｉｓｍ Ｓｏｆｔｗａｒｅ，Ｉｎｃ．ｖ．２．０３，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ，ＵＳＡ）。処理およびサンプル日は独立した可変要素とした。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較検定を用いて平均を分けた。

【0143】

結果
グリーンミリド雌成体は、３〜１１ＤＡＴでは、２Ｌ／ｈａ配合物Ａで処理したインゲンに産卵をしなかった（表１６）。１Ｌ／ｈａ配合物Ａで処理したインゲンは３ＤＡＴでは産卵が記録されなかったが、５〜１１ＤＡＴでは、１Ｌ／ｈａ配合物Ａで処理したインゲンにおいて記録された卵の数は０．６７〜２．００個／雌の範囲であった（表１６）。３ＤＡＴでの１Ｌ／ｈａ配合物Ｃ、配合物Ｄおよび水で処理したインゲンにおける産卵数は、それぞれ、０．３３、０．６７および２．００個／雌であった（表１６）。同じ期間で、２Ｌ／ｈａ配合物Ｃおよび配合物Ｄで処理したインゲンのそれぞれにおいて産卵は記録されなかった（表１６）。５ＤＡＴでは、１Ｌ／ｈａ配合物Ｃおよび配合物Ｄで処理したインゲンはそれぞれ１０および８．６７個の卵／雌を有しており、対照は５．３３個／雌を有していた。配合物Ｃおよび配合物Ｄの施用量を２Ｌ／ｈａに２倍にした場合、産卵数／雌は４．００個（配合物Ｃ）および６．００個（配合物Ｄ）に低減され、これは、１Ｌ／ｈａ薬量とは顕著に異なっていた（Ｐ＜０．０１）（表１６）。７〜１１ＤＡＴでは、２Ｌ／ｈａ配合物Ｃおよび配合物Ｄで処理したインゲンにおける産卵数は１Ｌ／ｈａ薬量および対照とは顕著に異なっていなかった（Ｐ＞０．０５）（表１６）。

【0144】

実施例１７ 綿有害生物に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物の効力
試験を、ＮａｒｒａｂｒｉのＡｕｓｔｒａｌｉａｎ Ｃｏｔｔｏｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅの圃場での商業用の従来のかんがい綿作物で実施した。一条のヒマワリを圃場の片側に植えて、グリーンミリドおよび他の綿有害生物および益虫を高密度とした。

【0145】

以下の処理を、綿有害生物、特にグリーンミリドに対して評価した：（１）１Ｌ／ｈａ配合物Ｃ、（２）１Ｌ／ｈａ配合物Ｄ、（３）１Ｌ／ｈａ配合物Ａ、（４）１Ｌ／ｈａ配合物Ｂ、（５）従来の殺虫剤（６２．５ｍｌ／ｈａ Ｆｉｐｒｏｎｉｌおよび０．８０Ｌ／ｈａ Ｓｔｅｗａｒｄ）および（６）未噴霧（未処理）対照。処理試験区を、４回の反復試験／処理を伴う完全乱塊法で設定した。各反復試験区は幅８ｍおよび長さ１００メートルであった。

【0146】

各処理の葉面処理を３ヶ月の期間にわたって行った。処理を適用する決定は、ＩＰＭ ＧｕｉｄｅｌｉｎｅｓおよびＣｏｔｔｏｎＬｏｇｉｃによって推奨される０．５グリーンミリド／ｍの経済的閾値に基づいて行った。合計で、シーズンを通して各処理を３回適用した。

【0147】

綿植物上のグリーンミリド成体および若虫、ミナミアオカメムシ、アップルディンプリングバグ、アザミウマ、ジャシッドおよびアブラムシなどの非標的節足動物の処理前の計数を視覚的に行った。処理後の計数を処理の適用から３、７および１４日後に行った。各計数において、各処理の反復試験の無作為に選択した長さ２メートルの２本の畝、すなわち、１回の処理で、合計で８メートルを試験した。データを、各噴霧適用に係る各処理について数／ｍおよび数／ｍ／シーズンの終了時のサンプル日と表記した。

【0148】

データの分析
実験データのすべてを、反復測定ＡＮＯＶＡを用いて分析した（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ ａｎｄ Ｐｒｉｓｍ Ｓｏｆｔｗａｒｅ，Ｉｎｃ．ｖ．２．０３，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ，ＵＳＡ）。処理およびサンプル日は独立した可変要素とした。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較検定を用いて平均を分けた。

【0149】

結果
商業用の綿におけるヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）油系配合物の効力
およそ等しいヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の卵の数／ｍ／サンプル日が従来の殺虫剤で処理した試験区（２．２２±０．２６個）で見つかったのに比して、１．６４、１．７１および１．５７個が、１Ｌ／ｈａ配合物Ｃ（１．６４個）、１Ｌ／ｈａ配合物Ｄ（１．７１個）および１Ｌ／ｈａ配合物Ａで見つかった（表１７）。１Ｌ／ｈａ配合物Ｂ（チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）、すなわち、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）キャリアを伴わない配合物）で処理した試験区で見つかったヘリコベルパ属（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ）の卵の数／ｍ／サンプル日は、他のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物よりも顕著に高い（Ｐ＜０．０００１）が、従来の殺虫剤で処理した試験区と同じであった（表１７）。未噴霧試験区（３．９０／ｍ）では、すべての他の処理より最も多いヘリコベルパ属（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ）の卵の数／ｍ／サンプル日が記録された（表１７）。従来の殺虫剤処理試験区での卵の死亡率（４３．１％）は、配合物Ｃ（５８．０％）、配合物Ｄ（５６．２％）および配合物Ａ（５９．７％）−処理試験区よりも顕著に低かった（Ｐ＜０．００１）（表１）。配合物Ｂ処理試験区では、ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）の卵は２６．２％死亡率であった（表１７）。

【0150】

ＶＳ＋Ｓ幼虫の数は、従来の殺虫剤（１．１９匹）において同じであるのに比して、配合物Ｃ（１．７０匹）、配合物Ｄ（１．６５匹）および配合物Ａ（１．４６匹）処理試験区では１．７０、１．６５および１．４６匹であった（表１７）。配合物Ｂで処理した試験区では、ヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）のＶＳ＋Ｓ幼虫の数は、他のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物および従来の殺虫剤で処理した他の試験区よりも顕著に多かった（Ｐ＜０．０００１）（表１７）。未噴霧試験区では、ＶＳ＋Ｓ幼虫の数が処理中最多であったが、これは、配合物Ｂ処理試験区とは顕著に異なっていなかった（Ｐ＞０．０５）（表１７）。従来の殺虫剤処理試験区におけるＶＳ＋Ｓ幼虫の死亡率（５３．９％）は、配合物Ｃ（３４．１％）、配合物Ｄ（３６．１％）および配合物Ａ（４３．４％）よりも高かった（表１７）。配合物Ｂ（１０．１％）処理試験区でのＶＳ＋Ｓ幼虫の死亡率は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物中で最低であった。

【0151】

従来の殺虫剤試験区において見つかったヘリコベルパ属の一種（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．）のＭ＋Ｌ幼虫の数（０．３０匹）は、配合物Ｃ（０．４５匹）、配合物Ｄ（０．４６匹）および配合物Ａ（０．２６匹）処理試験区と同じであった（表１７）。配合物Ｂ処理試験区で見出されたＭ＋Ｌ幼虫の数／ｍ／サンプル日（０．７０匹）は、未噴霧試験区と同じであったが、他のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物よりも顕著に多かった（表１７）。従来の殺虫剤試験区でのＭ＋Ｌ幼虫の死亡率（６８．１％）は、配合物Ａ処理試験区（７３．３％）より低かった。配合物Ｃ（５２．１％）および配合物Ｄ（５１．１％）で処理した試験区でのＭ＋Ｌ幼虫の死亡率は、配合物Ａ試験区（７３．３％）より低いが、配合物Ｂ処理試験区（２５．５％）より高かった（表１７）。

【0152】

実施例１８ 商業用の綿における吸収型有害生物に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）油系配合物の効力
グリーンミリド
グリーンミリドの数／ｍ／サンプル日は、従来の殺虫剤（０．３３匹）と同じであるのに比して、配合物Ｃ（１．０７匹）、配合物Ｄ（１．０９匹）および配合物Ａ（０．７７匹）処理試験区では１．０７、１．０９および０．７７匹であった（表１８）。配合物Ｂで処理した試験区では、グリーンミリドの数／ｍ／サンプル日は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物および従来の殺虫剤で処理した他の試験区より顕著に多かった（Ｐ＜０．０００１）（表１８）。未噴霧試験区では、グリーンミリドの数／ｍ／サンプル日はすべての処理中最多であったが、配合物Ｂ処理試験区とは顕著に異なっていなかった（Ｐ＞０．０５）（表１８）。従来の殺虫剤処理試験区におけるグリーンミリドの死亡率（８１．５％）は、配合物Ｃ（３９．９％）、配合物Ｄ（３８．８％）および配合物Ａ（５６．７％）よりも高かった（表１８）。配合物Ｂ処理試験区におけるグリーンミリドの死亡率（３２．６％）は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物中で最低であった（表１８）。

【0153】

ミナミアオカメムシ
ミナミアオカメムシの数／ｍ／サンプル日は従来の殺虫剤と同じ（０．１９匹）であるのに比して、配合物Ｃ（０．４４匹）、配合物Ｄ（０．３５匹）、配合物Ａ（０．１７匹）および配合物Ｂ（０．５４匹）処理試験区では０．４４、０．３５および０．１７匹であった（表１８）。配合物Ｂで処理した試験区（０．５４匹）では、ミナミアオカメムシの数／ｍ／サンプル日は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物および従来の殺虫剤で処理した他の試験区よりも顕著に多かった（Ｐ＜０．０００１）（表１８）。未噴霧試験区では、ミナミアオカメムシの数／ｍ／サンプル日はすべての処理中最多であったが、配合物Ｂ処理試験区とは顕著に異なっていなかった（Ｐ＞０．０５）（表１８）。従来の殺虫剤処理試験区におけるミナミアオカメムシの死亡率（８１．５％）は、配合物Ｃ（３９．９％）、配合物Ｄ（３８．８％）および配合物Ａ（５６．７％）よりも高かった（表１８）。配合物Ｂ処理試験区におけるミナミアオカメムシの死亡率（３２．６％）は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物中で最低であった（表１８）。

【0154】

アブラムシ
およそ等しいワタアブラムシの数／ｍ／サンプル日が従来の殺虫剤で処理した試験区（１．２０匹）で見つかったのに比して、２．０９、２．０６、０．１７および２．６２匹が、配合物Ｃ（２．０９匹）、配合物Ｄ（２．０６匹）、配合物Ａ（１．３６匹）および配合物Ｂ（２．６２匹）処理試験区で見つかった（表１８）。配合物Ｂで処理した試験区（２．６２匹）では、ワタアブラムシの数／ｍ／サンプル日は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物および従来の殺虫剤で処理した他の試験区より顕著に多かった（Ｐ＜０．０００１）（表１８）。未噴霧試験区では、ワタアブラムシの数／ｍ／サンプル日はすべての処理中最多であったが、配合物Ｂ処理試験区とは顕著に異なっていなかった（Ｐ＞０．０５）（表１８）。従来の殺虫剤処理試験区におけるワタアブラムシの死亡率（６３．４％）は、配合物Ｃ（３６．３％）、配合物Ｄ（３７．２％）および配合物Ａ（５８．５％）よりも高かった（表１８）。配合物Ｂ処理試験区におけるアブラムシの死亡率（２０．１％）は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物中で最低であった（表１８）。

【0155】

アップルディンプリングバグ
従来の殺虫剤で処理した試験区で見つかったアップルディンプリングバグの数／ｍ／サンプル日（２．０３匹）は、配合物Ｃ（３．５９匹）、配合物Ｄ（３．８８匹）、配合物Ａ（２．７０匹）および配合物Ｂ（４．３２匹）（表１９）で処理した試験区よりも低かった。配合物Ｂで処理した試験区（４．３２匹）では、アップルディンプリングバグの数／ｍ／サンプル日は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物および従来の殺虫剤で処理した他の試験区より顕著に多かった（Ｐ＜０．０００ｌ）（表１９）。未噴霧試験区（４．５７匹）では、アップルディンプリングバグの数／ｍ／サンプル日はすべての処理中最多であったが、配合物Ｂ処理試験区とは顕著に異なっていなかった（Ｐ＞０．０５）（表１９）。従来の殺虫剤処理試験区におけるアップルディンプリングバグの死亡率（５５．６％）は、配合物Ｃ（２１．４％）、配合物Ｄ（１５．１％）および配合物Ａ（４０．９％）よりも高かった（表１９）。配合物Ｂ処理試験区におけるアップルディンプリングバグの死亡率（５．５％）は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物中で最低であった（表１９）。

【0156】

グリーンジャシッド
従来の殺虫剤で処理した試験区で見つかったグリーンジャシッドの数／ｍ／サンプル日（２．０３匹）は、配合物Ｃ（２．９３匹）、配合物Ｄ（２．８８匹）、配合物Ａ（２．１６匹）および配合物Ｂ（３．１３匹）で処理した処理試験区のものと同じであった（表１９）。配合物Ａで処理した試験区（２．１６）では、グリーンジャシッドの数／ｍ／サンプル日は、配合物Ｂで処理した試験区（３．１３匹）よりも顕著に少なかった（Ｐ＜０．０００２）。配合物Ｂで処理した試験区では、グリーンジャシッドの数／ｍ／サンプル日は、配合物Ｃ、配合物Ｄで処理した試験区および未噴霧試験区（３．７８）と同じであった（表１９）。従来の殺虫剤処理試験区でのグリーンジャシッドの生存率（２８．６％）は配合物Ａ（４２．９％）で処理した試験区よりも低かった。配合物Ｃおよび配合物Ｄ処理におけるグリーンジャシッドの死亡率は、配合物Ｂで処理した試験区（１７．２）とほぼ同じであった（表１９）。

【0157】

アザミウマ
およそ等しいアザミウマの数／ｍ／サンプル日が従来の殺虫剤で処理した試験区（１１．０６匹）で見つかったが、これに比して、配合物Ｃ（１０．００匹）、配合物Ｄ（１０．１９匹）、配合物Ａ（１０．６２匹）、配合物Ｂ（１１．０４匹）処理試験区および対照試験区（１２．２２匹）であった（表１９）。配合物Ａで処理した試験区（１０．６２）では、アザミウマの数／ｍ／サンプル日は、配合物Ｂで処理した試験区と同じであった（１１．０４）。配合物Ａおよび配合物Ｂの両方で処理した試験区では、アザミウマの数／ｍ／サンプル日は、配合物Ｃ、配合物Ｄ、従来の殺虫剤および未噴霧試験区で処理した試験区と同じであった（１２．２２）（表１９）。従来の殺虫剤処理試験区におけるアザミウマの死亡率（９．５％）は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物である配合物Ａで処理した試験区と同じであった（表１９）。

【0158】

実施例１９ 重要な益虫に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物の効果
試験を、ＮａｒｒａｂｒｉのＡｕｓｔｒａｌｉａｎ Ｃｏｔｔｏｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅの圃場での商業用の従来のかんがい綿作物で実施した。一条のヒマワリを圃場の片側に植えて、グリーンミリドおよび他の綿有害生物ならびに益虫を高密度とした。

【0159】

以下のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物を綿作物の益虫に対して評価した：（１）１Ｌ／ｈａ配合物Ｃ、（２）１Ｌ／ｈａ配合物Ｄ、（３）１Ｌ／ｈａ配合物Ａ、（４）１Ｌ／ｈａ配合物Ｂ、（５）従来の殺虫剤（６２．５ｍｌ／ｈａ Ｆｉｐｒｏｎｉｌおよび０．８０Ｌ／ｈａ Ｓｔｅｗａｒｄ）および（６）未噴霧（未処理）対照。処理試験区を、４回の反復試験／処理を伴う完全乱塊法で設定した。各反復試験区は幅８ｍおよび長さ１００メートルであった。

【0160】

各処理の葉面処理を３ヶ月の期間にわたって行った。処理を適用する決定は、ＩＰＭ ＧｕｉｄｅｌｉｎｅｓおよびＣｏｔｔｏｎＬｏｇｉｃによって推奨される０．５の捕食虫に対する前比に基づいて行った。合計で、シーズンを通して各処理を３回適用した。

【0161】

綿植物上の捕食性のビートル、捕食性のバグ、捕食性クサカゲロウおよびクモなどの益虫の処理前の計数を視覚的に行った。処理後の計数を処理の適用から３、７および１４日後に行った。各計数において、各処理の反復試験の無作為に選択した長さ２メートルの２本の畝、すなわち、１回の処理で、合計で８メートルを試験した。データを、各噴霧適用に係る各処理について数／ｍ、および、数／ｍ／シーズンの終了時の各処理に係るサンプル日と表記した。

【0162】

データの分析
実験データのすべてを、反復測定ＡＮＯＶＡを用いて分析した（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ ａｎｄ Ｐｒｉｓｍ Ｓｏｆｔｗａｒｅ，Ｉｎｃ．ｖ．２．０３，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ，ＵＳＡ）。処理およびサンプル日は独立した可変要素とした。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較検定を用いて平均を分けた。

【0163】

結果
処理試験区から同定した捕食性昆虫は、捕食性のビートル、バグ、クサカゲロウおよびクモであった（表７を参照のこと）。

【0164】

捕食性ビートル
チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物で処理した試験区および対照（未噴霧）試験区において記録された捕食性のビートルの数／ｍ／サンプル日に顕著な差異（Ｐ＞０．０５）はなかった（表２０）。しかしながら、従来の殺虫剤で処理した試験区とチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物で処理した試験区との間には顕著な差異が見出された（表２０）。従来の殺虫剤で処理した試験区では、１．５１匹の捕食性のビートル／ｍ／サンプル日であったのに比して、配合物Ｃ（２．２５匹）、配合物Ｄ（２．１９匹）、配合物Ａ（２．００匹）、配合物Ｂ（２．２０匹）および対照（２．５１匹）試験区では２．２５、２．１９、２．００、２．２０および２．５１匹であった（表２０）。

【0165】

捕食性バグ
最も多数の捕食性のバグの数／ｍ／サンプル日が対照試験区において記録された（１．７８匹）が、これは、配合物Ｂ（１．６５匹）、配合物Ａ（１．２５匹）、配合物Ｃ（１．１６匹）および配合物Ｄ（１．２５匹）で処理した試験区とは顕著に異なっていなかった（Ｐ＞０．０５）（表２０）。従来の殺虫剤で処理した綿作物では、捕食性バグの数は最少であった（Ｐ＜０．０００１）（表２０）。

【0166】

捕食性クサカゲロウ
捕食性クサカゲロウの数／ｍ／サンプルに、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物で処理した試験区および従来の殺虫剤処理試験区では、顕著な差異（Ｐ＞０．０５）は見出されなかった（表２０）。最多のクサカゲロウの数／ｍは未噴霧試験区（１．０１）において記録されたが、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物で処理した試験区とは顕著に異なっていなかった（Ｐ＞０．０５）（表２０）。対照的に、最少のクサカゲロウの数／ｍは従来の殺虫剤処理試験区で記録され、これは、対照試験区とは顕著に異なっていた（Ｐ＜０．０３）（表２０）。

【0167】

クモ
クモの数／ｍ／サンプル日（３．２８匹）が未噴霧（対照）試験区で記録されたのに比して、２．５２、３．１０、２．７８、２．７３および２．１３匹が、配合物Ｃ（２．５２匹）、配合物Ｄ（３．１０匹）、配合物Ａ（２．７８匹）、配合物Ｂ（２．７３匹）および従来の殺虫剤（２．１３匹）試験区で記録された（表２０）。対照試験区で見出されたクモの数／ｍ／サンプル日間の差異は、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物で処理した試験区とは顕著に異なっていなかった（Ｐ＞０．０５）が、従来の殺虫剤処理試験区とは異なっていた（Ｐ＜０．０００３）（表２０）。従来の殺虫剤処理試験区で記録されたクモの数は、配合物Ｄ処理試験区を除き、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物で処理した試験区とは顕著に異なっていなかった（Ｐ＞０．０５）（表２０）。

【0168】

実施例２０ シルバーリーフコナジラミに対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物の効力
以下のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物を、タバココナジラミ（Ｂｅｍｉｓｉａ ｔａｂａｃｉ）−ｂ−バイオタイプ（シルバーリーフコナジラミ）の成虫および若虫に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）生成物の効力を判定する試験において用いた：これらは、
（１）配合物Ａ（乳化剤を伴わない油中のチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物）、
（２）配合物Ｄ（乳化剤を伴うチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）配合物）

【0169】

Ｗｅｅ Ｗａａに近いＭｅｒａｈ ｎｏｒｔｈの商業用の綿作物におけるタバココナジラミ（Ｂｅｍｉｓｉａ ｔａｂａｃｉ）に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）抽出物の効果
この試験は、Ｗｅｅ Ｗａａに近いＭｅｒａｈ ｎｏｒｔｈの商業用の綿圃場における従来のかんがい綿作物において実施した。２種類の試験を２週間にわたって実施した。評価した処理は、（１）２Ｌ／ｈａ配合物Ａ（２）２Ｌ／ｈａ配合物Ｄ（３）未噴霧（未処理）対照であった。処理試験区を、３回の反復試験／処理を伴う完全乱塊法で設定した。各反復試験区は幅２４ｍ、長さ１００ｍであった。

【0170】

各処理の葉面処理を第１日目に行った。各処理において、処理前の計数を、綿植物の葉の下面のタバココナジラミ（Ｂ．ｔａｂａｃｉ）の成体および若虫について視覚的に行った。処理後の計数を処理の適用から３、７および１４日後に行った。各サンプル日においては、各処理の反復試験からの二十（２０）本の植物を無作為に選択し、各植物の頂端の下方５番目の節の葉（早朝（９〜１０ａｍ））におけるタバココナジラミ（Ｂ．ｔａｂａｃｉ）の成体を葉を裏返して注意深く視覚的に計数し、存在する個別の成体の数を計数した。

【0171】

若虫の場合、２０本の植物の各々の頂端下方の５番目の節の１枚の葉を切除し、別々に注意深くプラスチックバッグの中に入れた。個別の葉を含むプラスチックバッグを実験室に持ち帰り、タバココナジラミ（Ｂ．ｔａｂａｃｉ）の若虫を双眼顕微鏡で計数した。成体および若虫の両方のデータを、各処理について数／葉として表記した。

【0172】

データの分析
実験データのすべてを、反復測定ＡＮＯＶＡを用いて分析した（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ ａｎｄ Ｐｒｉｓｍ Ｓｏｆｔｗａｒｅ，Ｉｎｃ．ｖ．２．０３，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ，ＵＳＡ）。処理およびサンプル日は独立した可変要素とした。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較検定を用いて平均を分けた。

【0173】

結果
研究サイトに存在するタバココナジラミ（Ｂ．ｔａｂａｃｉ）の型は、主にｂ−バイオタイプであった。配合物Ａおよび配合物Ｄで処理した試験区において記録されたタバココナジラミ（Ｂ．ｔａｂａｃｉ）の成体の数／葉は、未噴霧試験区よりも顕著に低かった（３ＤＡＴでＰ＜０．０１、７ＤＡＴでＰ＜０．０５、および、１４ＤＡＴでＰ＜０．０００１）（表２１）。３ＤＡＴでは、２Ｌ／ｈａ配合物Ｄで処理した試験区で記録されたタバココナジラミ（Ｂ．ｔａｂａｃｉ）の成体の死亡率は７４．５％であるのに比して、２Ｌ／ｈａ配合物Ａ処理試験区では５４．８であった（表２１）。しかしながら、７および１４ＤＡＴでは、配合物Ａ処理試験区の死亡率は、それぞれ、７７．３および７３．４％に増加したが、一方で、配合物Ｄ試験区では、それぞれ、対照を基準として６０．４および７３．２％であった（表２１）。

【0174】

タバココナジラミ（Ｂ．ｔａｂａｃｉ）の若虫／葉の場合、３、７および１４ＤＡＴでは、配合物Ａおよび配合物Ｄ処理した試験区間では顕著な差異（Ｐ＞０．０５）は見出されなかったが、未噴霧対照とは顕著に異なっていた（Ｐ＜０．０００ｌ）（表２２）。しかしながら、３ＤＡＴでの配合物Ｄ処理試験区でのタバココナジラミ（Ｂ．ｔａｂａｃｉ）の若虫の死亡率（７４．９％）は、対照を基準として、配合物Ａ（２８．２％）処理試験区よりも顕著に高かった（表２２）。７および１４ＤＡＴでは、配合物Ａ処理試験区で記録された死亡率は７３．６および５５．６％に増加したが、一方で、配合物Ｄ処理試験区での死亡率は、それぞれ、対照を基準として７５．３および６７．０％であった（表２２）。

【0175】

実施例２１ 商業用の綿作物におけるタバココナジラミ（Ｂｅｍｉｓｉａ ｔａｂａｃｉ）に対するチョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）抽出物および従来の殺虫剤の効果
この試験は、綿圃場における従来のかんがい綿作物において実施した。以下の処理を、タバココナジラミ（Ｂ．ｔａｂａｃｉ）−ｂ−バイオタイプの成体および若虫に対して評価した：（１）２Ｌ／ｈａ配合物Ａ、（２）２Ｌ／ｈａ配合物Ｄ、（３）Ｍｅｒａｈ ｎｏｒｔｈで０．８０Ｌ／ｈａジアフェンチウロン（従来の殺虫剤）、および、（４）未噴霧（対照）。処理試験区を３回の反復試験／処理を伴う完全乱塊法で設定した。各反復試験区は幅２４ｍ、長さ１００ｍであった。

【0176】

各処理の葉面処理を２週間にわたって行った。各処理において、処理前の計数を、綿植物の葉の下面のタバココナジラミ（Ｂ．ｔａｂａｃｉ）の成体および若虫について視覚的に行った。処理後の計数を処理の適用から３、７および１４日後に行った。成体および若虫の両方のデータは、各処理について数／葉として表記した。

【0177】

データの分析
実験データのすべてを、反復測定ＡＮＯＶＡを用いて分析した（Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｉｎｓｔａｔ ａｎｄ Ｐｒｉｓｍ Ｓｏｆｔｗａｒｅ，Ｉｎｃ．ｖ．２．０３，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ，ＵＳＡ）。処理およびサンプル日は独立した可変要素とした。Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ多重比較検定を用いて平均を分けた。

【0178】

結果
研究サイトに存在するタバココナジラミ（Ｂ．ｔａｂａｃｉ）型は主にｂ−バイオタイプであった。およそ等しいタバココナジラミ（Ｂ．ｔａｂａｃｉ）の成体の数／葉が、３ＤＡＴに、従来の殺虫剤で処理した試験区（１５．３３匹）で見つかったのに比して、配合物Ｄ、配合物Ａおよび未噴霧試験区では１８．００、１１．３３および２５．００匹であった（表２３）。７ＤＡＴでは、配合物Ａ処理試験区で記録された成体の数／葉は、配合物Ｄおよび従来の殺虫剤試験区と同じであったが、対照試験区とは顕著に異なっていた（Ｐ＜０．０００１）（表２３）。対照的に、配合物Ｄおよび従来の殺虫剤試験区で見出されたタバココナジラミ（Ｂ．ｔａｂａｃｉ）の成体の数／葉は、対照試験区とは顕著に異なっていなかった（Ｐ＞０．０５）（表２３）。１４ＤＡＴでは、処理および対照試験区間で顕著な差異（Ｐ＞０．０５）は記録されなかった（表２３）。しかしながら、３ＤＡＴで、配合物Ｄ処理試験区（５４．７％）でのタバココナジラミ（Ｂ．ｔａｂａｃｉ）の成体の死亡率は、配合物Ａ試験区（２８．０％）および従来の殺虫剤試験区（３８．７％）よりも高かった（表２３）。７ＤＡＴでは、タバココナジラミ（Ｂ．ｔａｂａｃｉ）の成体の死亡率（６６．７％）は、対照を基準として、配合物Ｄ（３８．９％）および従来の殺虫剤（３２．２％）よりも高かった（表２３）。対照的に、１４ＤＡＴでは、処理間の死亡率における差異は、対照を基準としておよそ同じであった（表２３）。

【0179】

３ＤＡＴでは、配合物Ａおよび配合物Ｄで処理した試験区で見出されたタバココナジラミ（Ｂ．ｔａｂａｃｉ）の若虫の数／葉は顕著に異なっていなかった（Ｐ＞０．０５）が、従来の殺虫剤および未噴霧試験区とは顕著に異なっていた（Ｐ＜０．０６）（表２４）。３ＤＡＴでは、処理した従来の殺虫剤と未噴霧試験区との間に、有意差（Ｐ＞０．０５）は認められなかった（表２４）。７ＤＡＴで処理および対照間に顕著な差異（Ｐ＞０．０５）は見出されなかったが、チョウマメ（Ｃｌｉｔｏｒｉａ ｔｅｒｎａｔｅａ）処理試験区と、従来と、未噴霧試験区との間では顕著な差異が見出された（表２４）。死亡率の観点では、配合物Ａおよび配合物Ｄ処理試験区では、タバココナジラミ（Ｂ．ｔａｂａｃｉ）の若虫の５３．３および３６．４％死亡率が比較されたが、これと比して、従来の殺虫剤処理試験区では、対照試験区より若虫の１２パーセントの増加が記録された（表２４）。７ＤＡＴでは、配合物Ｄ処理試験区では４７．５パーセント死亡率であるのに比して、配合物Ａ（２８．８％）および従来の殺虫剤（２２．１％）であった。１４ＤＡＴでは、個別の処理によってもたらされた死亡率は、７７．２パーセント（配合物Ａ）、７９．５％（配合物Ｄ）および６０．６％（従来の殺虫剤）に増加した（表２４）。

【0180】

文献
以下の書面による開示が本明細書において参照により援用されている。
１ Ｂｅｒｎａｙｓ，Ｅ．Ａ．ａｎｄ Ｃｈａｐｍａｎ，Ｒ．Ｆ．（１９９４）．Ｈｏｓｔ Ｐｌａｎｔ Ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ ｂｙ Ｐｈｙｔｏｐｈａｇｏｕｓ Ｉｎｓｅｃｔｓ．Ｃｈａｐｍａｎ ａｎｄ Ｈａｌｌ．Ｌｏｎｄｏｎ．
２ Ｍｅｎｓａｈ，Ｒ．Ｋ．，Ｖｅｒｎｅａｕ，Ｓ．ａｎｄ Ｆｒｅｒｏｔ，Ｂ．（２０００）．Ｄｅｔｅｒｒｅｎｃｅ ｏｆ ｏｖｉｐｏｓｉｔｉｏｎ ｏｆ ａｄｕｌｔ Ｏｓｔｒｉｎｉａ ｎｕｂｉｌａｌｉｓ（Ｈｕｂｎｅｒ）ｂｙ ａ ｎａｔｕｒａｌ ｅｎｅｍｙ ｆｏｏｄ ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ Ｅｎｖｉｒｏｆｅａｓｔ＊ ｏｎ ｍａｉｚｅ ｉｎ Ｆｒａｎｃｅ．Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｅｓｔ Ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ ４６（１），４９−５３
３ Ｍｅｎｓａｈ，Ｒ．Ｋ．（１９９６）．Ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ ｓｐｐ．ｏｖｉｐｏｓｉｔｉｏｎ ｂｙ ｕｓｅ ｏｆ ｎａｔｕｒａｌ ｅｎｅｍｙ ｆｏｏｄ ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ“Ｅｎｖｉｒｏｆｅａｓｔ”．Ａｕｓｔｒａｌｉａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｅｎｔｏｍｏｌｏｇｙ，３５，３２３−３２９．
４ Ｍｅｎｓａｈ，Ｒ．ａｎｄ Ｍｏｏｒｅ，Ｃ．Ｊ．（１９９９）．Ａ Ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ Ｂｅｈａｖｉｏｕｒ Ｍｏｄｉｆｙｉｎｇ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ ｉｎ Ｒｅｌａｔｉｏｎ ｔｏ Ｐｅｓｔ Ｈｏｓｔ Ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ ａｎｄ Ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ ｏｎ Ａｕｓｔｒａｌｉａｎ Ｃｏｔｔｏｎｓ．ＣＲＤＣ．
５ Ｍｉｌｌｅｒ，Ｊ．Ｒ．ａｎｄ Ｃｏｗｌｅｓ，Ｒ．Ｓ．（１９９０）．Ｓｔｉｍｕｌｏ−ｄｅｔｅｒｒｅｎｔ ｄｉｖｅｒｓｉｏｎ：ａ ｃｏｎｃｅｐｔ ａｎｄ ｉｔｓ ｐｏｓｓｉｂｌｅ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｔｏ ｏｎｉｏｎ ｍａｇｇｏｔ ｃｏｎｔｒｏｌ．Ｊ．Ｃｈｅｍ．Ｅｃｏｌ．１６：３１９７−３２１２．
６ Ｐｙｋｅ，Ｂ．，Ｒｉｃｅ，Ｍ．，Ｓａｂｉｎｅ，Ｇ．ａｎｄ Ｚａｌｕｃｋｉ，Ｍ．（１９８７）．Ｔｈｅ ｐｕｓｈ−ｐｕｌｌ ｓｔｒａｔｅｇｙ−ｂｅｈａｖｉｏｕｒａｌ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ Ｈｅｌｉｏｔｈｉｓ．Ａｕｓｔｒａｌｉａｎ Ｃｏｔｔｏｎ Ｇｒｏｗｅｒ ９：７−９．
７ Ｒｈｏａｄｅｓ，Ｄ．Ｆ．ａｎｄ Ｃｏａｔｅｓ，Ｒ．Ｈ．（１９７６）．Ｔｏｗａｒｄｓ ａ ｇｅｎｅｒａｌ ｔｈｅｏｒｙ ｏｆ ｐｌａｎｔ ａｎｔｉ−ｈｅｒｂｉｖｏｒｅ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ．Ｉｎ：Ｊ．Ｗ．Ｗａｌｌａｃｅ ａｎｄ Ｌ．Ｍａｎｓｅｌｌ，ｅｄｓ．Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ Ｂｅｔｗｅｅｎ Ｉｎｓｅｃｔｓ ａｎｄ Ｐｌａｎｔｓ．Ｐｐ．１６８−２１３．Ｐｌｅｎｕｍ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ．
８ Ｔｉｎｇｌｅ，Ｆ．Ｃ．ａｎｄ Ｍｉｔｃｈｅｌｌ，Ｅ．Ｒ．（１９８４）．Ａｑｕｅｏｕｓ ｅｘｔｒａｃｔｓ ｆｒｏｍ ｉｎｄｉｇｅｎｏｕｓ ｐｌａｎｔｓ ａｓ ｏｖｉｐｏｓｉｔｉｏｎ ｄｅｔｅｒｒｅｎｔｓ ｆｏｒ Ｈｅｌｉｏｔｈｉｓ ｖｉｒｅｓｃｅｎｓ．Ｊ．Ｃｈｅｍ．Ｅｃｏｌｏｇｙ １０：１０１−１１３

【図1】

【図2】

【図3】

【図4】

【図5】

【図6】

【図7】

【図8】

【図9】

【図10】