特許 6203708 検体中の測定対象成分の測定方法

(19)【発行国】日本国特許庁(JP)

(12)【公報種別】特許公報(B2)

(11)【特許番号】6203708

(24)【登録日】2017年9月8日

(45)【発行日】2017年9月27日

(54)【発明の名称】検体中の測定対象成分の測定方法

(51)【国際特許分類】

   C12Q 1/28 20060101AFI20170914BHJP

   C12Q 1/44 20060101ALI20170914BHJP

   C12Q 1/60 20060101ALI20170914BHJP

   G01N 21/78 20060101ALI20170914BHJP

   C07H 13/06 20060101ALN20170914BHJP

【ＦＩ】

   C12Q1/28

   C12Q1/44

   C12Q1/60

   G01N21/78 Z

   !C07H13/06

【請求項の数】6

【全頁数】13

(21)【出願番号】特願2014-512510(P2014-512510)

(86)(22)【出願日】2013年4月18日

(86)【国際出願番号】JP2013061530

(87)【国際公開番号】WO2013161677

(87)【国際公開日】20131031

【審査請求日】2016年1月29日

(31)【優先権主張番号】特願2012-103258(P2012-103258)

(32)【優先日】2012年4月27日

(33)【優先権主張国】JP

(31)【優先権主張番号】特願2012-119584(P2012-119584)

(32)【優先日】2012年5月25日

(33)【優先権主張国】JP

【前置審査】

(73)【特許権者】

【識別番号】000162478

【氏名又は名称】協和メデックス株式会社

(74)【代理人】

【識別番号】100107984

【弁理士】

【氏名又は名称】廣田 雅紀

(72)【発明者】

【氏名】桑田 英之

(72)【発明者】

【氏名】荒武 知子

(72)【発明者】

【氏名】金城 健太

【審査官】 福間 信子

(56)【参考文献】

【文献】 特表２０１１−５２８１２２（ＪＰ，Ａ）

【文献】 特開昭５８−０４１３５７（ＪＰ，Ａ）

【文献】 国際公開第２００８／０８７８９６（ＷＯ，Ａ１）

【文献】 特開平０３−２２８６９９（ＪＰ，Ａ）

【文献】 特開２００６−０８１４７１（ＪＰ，Ａ）

【文献】 特開平０９−２２４６９７（ＪＰ，Ａ）

【文献】 臨床検査機器・試薬，１９９０年，Vol.13, No.4，p.729-733

【文献】 日本臨床検査自動化学会会誌，１９８４年，Vol.9, No.2，p.550-553

(58)【調査した分野】（Int.Cl.，ＤＢ名）

Ｃ１２Ｑ １／００−７０

ＣＡｐｌｕｓ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＥＭＢＡＳＥ／ＢＩＯＳＩＳ（ＳＴＮ）

ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩＩ）

(57)【特許請求の範囲】

【請求項1】

検体中の低密度リポ蛋白中のコレステロール(LDL-C)を、コレステロールエステル加水分解酵素及びコレステロール酸化酵素を用いる酵素反応により過酸化水素に導き、生成した過酸化水素をペルオキシダーゼの存在下、酸化発色型色原体と反応させ、呈色した反応液の吸光度を測定することによりLDL-Cを測定する方法において、検体と脂肪酸若しくはその塩とをコレステロールエステル加水分解酵素及びコレステロール酸化酵素の非存在下に反応させた後、当該反応の反応液にコレステロールエステル加水分解酵素及びコレステロール酸化酵素を添加し、検体中のLDL-Cとコレステロールエステル加水分解酵素及びコレステロール酸化酵素とを反応させることを特徴とする、LDL-Cの測定方法。

【請求項2】

脂肪酸が、炭素数８〜２４の飽和又は不飽和脂肪酸である請求項１記載の測定方法。

【請求項3】

炭素数８〜２４の飽和又は不飽和脂肪酸が、オクタン酸、デカン酸、ラウリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、ステアリン酸、オレイン酸、リノール酸、リノレン酸、エイコサトリエン酸、アラキドン酸、イコサン酸、エイコサテトラエン酸、エイコサペンタエン酸、ドコサン酸、ドコサヘキサエン酸、テトラドコサン酸、及び、テトラコサペンタエン酸からなる群より選ばれる脂肪酸である請求項２記載の測定方法。

【請求項4】

検体中の低密度リポ蛋白中のコレステロール(LDL-C)を、コレステロールエステル加水分解酵素及びコレステロール酸化酵素を用いる酵素反応により過酸化水素に導き、生成した過酸化水素をペルオキシダーゼの存在下、酸化発色型色原体と反応させ、呈色した反応液の吸光度を測定することによりLDL-Cを測定する方法に用いるキットにおいて、脂肪酸若しくはその塩を含有する第１試薬と、コレステロールエステル加水分解酵素及びコレステロール酸化酵素を含有する第２試薬とを含むことを特徴とする、LDL-C測定用キット。

【請求項5】

脂肪酸が、炭素数８〜２４の飽和又は不飽和脂肪酸である請求項４記載の測定用キット。

【請求項6】

炭素数８〜２４の飽和又は不飽和脂肪酸が、オクタン酸、デカン酸、ラウリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、ステアリン酸、オレイン酸、リノール酸、リノレン酸、エイコサトリエン酸、アラキドン酸、イコサン酸、エイコサテトラエン酸、エイコサペンタエン酸、ドコサン酸、ドコサヘキサエン酸、テトラドコサン酸、及び、テトラコサペンタエン酸からなる群より選ばれる脂肪酸である請求項５記載の測定用キット。

【発明の詳細な説明】

【技術分野】

【0001】

本発明は、検体中の測定対象成分の測定方法、及び、検体中の測定対象成分の測定用試薬に関する。

【背景技術】

【0002】

血清等の生体試料中の測定対象成分を、酸化酵素を用いて過酸化水素を生成させ、生成した過酸化水素を測定することにより測定対象成分を測定する臨床検査が日常的に行われている。とりわけ、生成した過酸化水素をペルオキシダーゼ存在下、酸化発色型色原体と反応させて色素を生成させ、生成した色素を含む呈色した反応液の吸光度を測定することにより、生体試料中の測定対象成分を測定する比色分析が臨床検査において日常的に使用されている。

【0003】

この過酸化水素測定に基づく比色分析において、生体試料中に含まれるアスコルビン酸、ビリルビン等の妨害物質の影響がしばしば問題となる。特に、ビリルビンは、ペルオキシダーゼ存在下での過酸化水素と酸化発色型色原体との反応に影響を及ぼし、その還元作用により負の影響を与えるという問題がある。

【0004】

この問題を解決する方法としては、これまでにフェロシアン化物イオンを用いる方法（特許文献１参照）、EDTA鉄錯体を用いる方法（特許文献２参照）、フェロシアン化物イオン及びアルブミンを用いる方法（特許文献３参照）、カチオン性界面活性剤及び／又は両性界面活性剤を用いる方法（特許文献４参照）、両性界面活性剤を用いる方法（特許文献５参照）、両性界面活性剤及びフェロシアン化物を用いる方法（特許文献６参照）、HLB13以上のポリオキシエチレンアルキルエーテル及びフェロシアン化イオンを用いる方法（特許文献７参照）、鉄錯体及びステロイド化合物を用いる方法（特許文献８参照）、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル縮合物を用いる方法（特許文献９参照）等が知られている。

【先行技術文献】

【特許文献】

【0005】

【特許文献1】特開昭４９−０５０９９１号公報

【特許文献2】特開昭５７−０７１３９８号公報

【特許文献3】特開昭６０−２２８９６３号公報

【特許文献4】特開平３−０１０６９６号公報

【特許文献5】特開平７−０３９３９４号公報

【特許文献6】特開平７−１５５１９６号公報

【特許文献7】特開平１１−１０３８８８号公報

【特許文献8】特開平１１−２４３９９３号公報

【特許文献9】特開２００４−０３７４３１号公報

【発明の概要】

【発明が解決しようとする課題】

【0006】

本発明の目的は、ビリルビンの影響が抑制された、検体中の測定対象成分の測定方法、及び、検体中の測定対象成分の測定用試薬を提供することにある。

【課題を解決するための手段】

【0007】

本発明者らは本課題を解決すべく鋭意検討を重ねた結果、検体中の測定対象成分を酵素反応により過酸化水素に導き、生成した過酸化水素をペルオキシダーゼの存在下、酸化発色型色原体と反応させ、呈色した反応液の吸光度を測定することにより測定対象成分を測定する方法において、脂肪酸若しくはその塩を共存させることにより、ビリルビンの影響が抑制されるという知見を見出し、本発明を完成させた。すなわち、本発明は、以下の［１］〜［６］に関する。
［１］ 検体中の測定対象成分を酵素反応により過酸化水素に導き、生成した過酸化水素をペルオキシダーゼの存在下、酸化発色型色原体と反応させ、呈色した反応液の吸光度を測定することにより測定対象成分を測定する方法において、脂肪酸若しくはその塩を共存させることを特徴とする、測定対象成分の測定方法。
［２］ 脂肪酸が、炭素数８〜２４の飽和又は不飽和脂肪酸である［１］記載の測定方法。
［３］ 炭素数８〜２４の飽和又は不飽和脂肪酸が、オクタン酸、デカン酸、ラウリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、ステアリン酸、オレイン酸、リノール酸、リノレン酸、エイコサトリエン酸、アラキドン酸、イコサン酸、エイコサテトラエン酸、エイコサペンタエン酸、ドコサン酸、ドコサヘキサエン酸、テトラドコサン酸、及び、テトラコサペンタエン酸からなる群より選ばれる脂肪酸である［２］記載の測定方法。
［４］ 検体中の測定対象成分を酵素反応により過酸化水素に導く成分、ペルオキシダーゼ、酸化発色型色原体、及び、脂肪酸若しくはその塩を含む、検体中の測定対象成分の測定用試薬。
［５］ 脂肪酸が、炭素数８〜２４の飽和又は不飽和脂肪酸である［４］記載の測定用試薬。
［６］ 炭素数８〜２４の飽和又は不飽和脂肪酸が、オクタン酸、デカン酸、ラウリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、ステアリン酸、オレイン酸、リノール酸、リノレン酸、エイコサトリエン酸、アラキドン酸、イコサン酸、エイコサテトラエン酸、エイコサペンタエン酸、ドコサン酸、ドコサヘキサエン酸、テトラドコサン酸、及び、テトラコサペンタエン酸からなる群より選ばれる脂肪酸である［５］記載の測定用試薬。

【発明の効果】

【0008】

本発明により、ビリルビンの影響が抑制された検体中の測定対象成分の測定方法、及び、測定用試薬が提供される。

【発明を実施するための形態】

【0009】

本発明の検体中の測定対象成分の測定方法は、検体中の測定対象成分を酵素反応により過酸化水素に導き、生成した過酸化水素をペルオキシダーゼの存在下、酸化発色型色原体と反応させ、呈色した反応液の吸光度を測定することにより測定対象成分を測定する方法において、脂肪酸若しくはその塩を共存させることを特徴とする方法である。

【0010】

本発明における脂肪酸は、本発明の測定方法を可能とする脂肪酸であれば特に制限はなく、例えば炭素数８〜２４の飽和又は不飽和脂肪酸が挙げられ、炭素数８〜１８の飽和又は不飽和脂肪酸が好ましい。炭素数８〜２４の飽和又は不飽和脂肪酸としては、例えばオクタン酸、デカン酸、ラウリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、ステアリン酸、オレイン酸、リノール酸、リノレン酸、エイコサトリエン酸、アラキドン酸、イコサン酸、エイコサテトラエン酸、エイコサペンタエン酸、ドコサン酸、ドコサヘキサエン酸、テトラドコサン酸、テトラコサペンタエン酸等が挙げられる。また、本発明における脂肪酸は塩であってもよく、塩としては例えばリチウム塩、ナトリウム塩、カリウム塩、アンモニウム塩、カルシウム塩、マグネシウム塩等が挙げられる。本発明においては、脂肪酸を二種以上組み合わせて使用することもできる。本発明の測定方法における脂肪酸の濃度は、本発明の測定方法を可能とする濃度であれば特に制限はなく、通常、0.1〜15 mmol/Lであり、0.2〜10 mmol/Lが好ましい。

【0011】

本発明における検体は、本発明の測定方法を可能とする検体であれば特に制限はなく、例えば全血、血漿、血清等が挙げられ、血漿及び血清が好ましい。

【0012】

本発明における測定対象成分は、酵素反応によって導かれる過酸化水素を測定することにより、測定される測定対象成分であれば特に制限はなく、例えば総コレステロール(TC)、高密度リポ蛋白中のコレステロール(HDL-C)、低密度リポ蛋白中のコレステロール(LDL-C)、超低密度リポ蛋白中のコレステロール(VLDL-C)、レムナント様リポ蛋白中のコレステロール(RLP-C)、グルコース、尿酸、トリグリセリド(TG)、リン脂質、コリン、クレアチン、クレアチニン、乳酸、ピルビン酸等の基質の他、コリンエステラーゼ、グアナーゼ等の酵素等が挙げられる。

【0013】

本発明において、測定対象成分は酵素反応により過酸化水素に導かれるが、測定対象成分と、測定対象成分を酵素反応により過酸化水素に導く成分との組み合わせとしては、例えば以下の組み合わせが挙げられる。
・TC, HDL-C, LDL-C, VLDL-C, RLP-C：コレステロールエステル加水分解酵素、及び、コレステロール酸化酵素
・グルコース：グルコース酸化酵素
・尿酸：ウリカーゼ
・TG：リポプロテインリパーゼ、グリセロールキナーゼ、及び、グリセロール−３−リン酸酸化酵素
・リン脂質：ホスホリパーゼD、及び、コリン酸化酵素
・コリン：コリン酸化酵素
・クレアチン：クレアチナーゼ、及び、ザルコシン酸化酵素
・クレアチニン：クレアチニナーゼ、クレアチナーゼ、及び、ザルコシン酸化酵素
・乳酸：乳酸酸化酵素
・ピルビン酸：ピルビン酸酸化酵素
・コリンエステラーゼ：2,4-ジメトキシベンゾイルコリン、及び、コリン酸化酵素
・グアナーゼ：グアニン、キサンチンオキシダーゼ、及び、ウリカーゼ

【0014】

本発明におけるペルオキシダーゼは、本発明の測定方法を可能とするペルオキシダーゼであれば特に制限はなく、例えば動物、植物、微生物由来のペルオキシダーゼの他、遺伝子工学的手法により作製されたペルオキシダーゼ等が挙げられる。本発明の測定方法におけるペルオキシダーゼの濃度としては、通常、1〜100 kU/Lである。

【0015】

本発明における酸化発色型色原体は、本発明の測定方法を可能とする酸化発色型色原体であれば特に制限はなく、例えばロイコ型色原体、酸化カップリング発色型色原体等が挙げられる。ロイコ型色原体は、過酸化水素及びペルオキシダーゼの存在下、単独で色素へ変換される物質であり、テトラメチルベンジジン、o-フェニレンジアミン、10-N-カルボキシメチルカルバモイル-3,7-ビス（ジメチルアミノ）-10H-フェノチアジン(CCAP)、10-N-メチルカルバモイル-3,7-ビス（ジメチルアミノ）-10H-フェノチアジン(MCDP)、N-（カルボキシメチルアミノカルボニル）-4,4’-ビス（ジメチルアミノ）ジフェニルアミン ナトリウム塩(DA-64)、10-N-（カルボキシメチルアミノカルボニル）-3,7-ビス（ジメチルアミノ）-10H-フェノチアジン ナトリウム塩(DA-67)、4,4’-ビス（ジメチルアミノ）ジフェニルアミン、ビス〔3-ビス（4-クロロフェニル）メチル-4-ジメチルアミノフェニル〕アミン(BCMA)等が挙げられる。

【0016】

酸化カップリング発色型色原体は、過酸化水素及びペルオキシダーゼの存在下、２つの化合物が酸化的カップリングして色素を生成する物質である。２つの化合物の組み合わせとしては、カプラーとアニリン類との組み合わせ、カプラーとフェノール類との組み合わせ等が挙げられる。

【0017】

カプラーとしては、例えば4-アミノアンチピリン(4-AA)、3-メチル-2-ベンゾチアゾリノンヒドラゾン等が挙げられる。

【0018】

アニリン類としては、N-（3-スルホプロピル）アニリン、N-エチル-N-（2-ヒドロキシ-3-スルホプロピル）-3-メチルアニリン(TOOS)、N-エチル-N-（2-ヒドロキシ-3-スルホプロピル）-3,5-ジメチルアニリン(MAOS)、N-エチル-N-（2-ヒドロキシ-3-スルホプロピル）-3,5-ジメトキシアニリン(DAOS)、N-エチル-N-（3-スルホプロピル）-3-メチルアニリン(TOPS)、N-（2-ヒドロキシ-3-スルホプロピル）-3,5-ジメトキシアニリン(HDAOS)、N,N-ジメチル-3-メチルアニリン、N,N-ジ（3-スルホプロピル）-3,5-ジメトキシアニリン、N-エチル-N-（3-スルホプロピル）-3-メトキシアニリン、N-エチル-N-（3-スルホプロピル）アニリン、N-エチル-N-（3-スルホプロピル）-3,5-ジメトキシアニリン、N-（3-スルホプロピル）-3,5-ジメトキシアニリン、N-エチル-N-（3-スルホプロピル）-3,5-ジメチルアニリン、N-エチル-N-（2-ヒドロキシ-3-スルホプロピル）-3-メトキシアニリン、N-エチル-N-（2-ヒドロキシ-3-スルホプロピル）アニリン、N-エチル-N-（3-メチルフェニル）-N’-サクシニルエチレンジアミン(EMSE)、N-エチル-N-（3-メチルフェニル）-N’-アセチルエチレンジアミン、N-エチル-N-（2-ヒドロキシ-3-スルホプロピル）-4-フルオロ-3,5-ジメトキシアニリン(F-DAOS)等が挙げられる。

【0019】

フェノール類としては、フェノール、4-クロロフェノール、3-メチルフェノール、3-ヒドロキシ-2,4,6-トリヨード安息香酸(HTIB)等が挙げられる。

【0020】

本発明の測定方法における酸化発色型色原体の濃度は、過酸化水素の測定に適した濃度であれば特に制限はないが、通常、0.01〜10 g/Lである。

【0021】

本発明における測定対象成分の測定は、通常、pH4.0〜10.0の水性媒体中で行われ、pH6.0〜8.0の水性媒体中で行われることが好ましい。水性媒体としては、例えば脱イオン水、蒸留水、緩衝液等が挙げられ、緩衝液が好ましい。緩衝液としては、例えばリン酸緩衝液、クエン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、炭酸緩衝液、グッド緩衝液等が挙げられる。グッド緩衝液に使用される緩衝剤としては、例えば2−モルホリノエタンスルホン酸(MES)、トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン(Tris)、ビス（2−ヒドロキシエチル）イミノトリス（ヒドロキシメチル）メタン(Bis-Tris)、N−（2−アセトアミド）イミノ二酢酸(ADA)、ピペラジン−N,N’−ビス（2−エタンスルホン酸）(PIPES)、N−（2−アセトアミド）−2−アミノエタンスルホン酸(ACES)、N,N−ビス（2−ヒドロキシエチル）−2−アミノエタンスルホン酸(BES)、3−モルホリノプロパンスルホン酸(MOPS)、N−〔トリス（ヒドロキシメチル）メチル〕−2−アミノエタンスルホン酸(TES)、2−〔4−（2−ヒドロキシエチル）−1−ピペラジニル〕エタンスルホン酸(HEPES)、ピペラジン−N,N’−ビス（2−ヒドロキシプロパンスルホン酸）(POPSO)、N−〔トリス（ヒドロキシメチル）メチル〕グリシン(Tricine)、N,N−ビス（２−ヒドロキシエチル）グリシン(Bicine)、N−トリス（ヒドロキシメチル）メチル−3−アミノプロパンスルホン酸(TAPS)、N−シクロヘキシル−2−アミノエタンスルホン酸(CHES)、N−シクロヘキシル−3−アミノプロパンスルホン酸(CAPS)等が挙げられる。

【0022】

また、本発明の測定方法においては、界面活性剤、防腐剤等を共存させてもよい。界面活性剤としては、例えば非イオン性界面活性剤、陽イオン性界面活性剤、陰イオン性界面活性剤、両性界面活性剤等が挙げられる。防腐剤としては、例えばアジ化物、キレート剤、バイオエース(BioAce)等が挙げられる。アジ化物としては、例えばアジ化ナトリウム等が挙げられる。キレート剤としては、例えばエチレンジアミン四酢酸(EDTA)もしくはその塩等が挙げられる。塩としては、例えばナトリウム塩、カリウム塩等が挙げられる。この他、ビリルビンの影響抑制剤として知られているフェロシアン化物やウシ血清アルブミン(BSA)等の蛋白質を共存させてもよい。

【0023】

本発明の検体中の測定対象成分の測定用試薬は、本発明の測定方法に使用される試薬であり、測定対象成分、測定対象成分を酵素反応により過酸化水素に導く成分、ペルオキシダーゼ、酸化発色型色原体、及び、脂肪酸若しくはその塩を含む。測定対象成分、測定対象成分を酵素反応により過酸化水素に導く成分、ペルオキシダーゼ、酸化発色型色原体、及び、脂肪酸若しくはその塩としては、例えばそれぞれ、前述の測定対象成分、測定対象成分を酵素反応により過酸化水素に導く成分、ペルオキシダーゼ、酸化発色型色原体、及び、脂肪酸若しくはその塩等が挙げられる。

【0024】

本発明の測定用試薬は、凍結乾燥状態でも液状でもよく、凍結乾燥状態の試薬の場合には、水性媒体で溶解して測定に使用することができる。水性媒体としては、例えば前述の水性媒体等が挙げられる。また、本発明の測定用試薬は、キットの形態を取ることもでき、キットとしては、例えば２試薬系キット、３試薬系キット等が挙げられる。

【0025】

本発明の測定用試薬において、脂肪酸は、本発明の測定方法が可能となる濃度となる含量で含まれていれば特に制限はなく、水性媒体で溶解された状態での濃度が、通常、0.1〜60 mmol/Lとなる含量で含まれ、0.2〜40 mmol/Lとなる含量で含まれることが好ましい。

【0026】

本発明の測定用試薬において、ペルオキシダーゼは、本発明の測定方法が可能となる濃度となる含量で含まれていれば特に制限はなく、水性媒体で溶解された状態での濃度が、通常、0.01〜40 g/Lとなる含量で含まれる。

【0027】

本発明の測定用試薬において、酸化発色型色原体は、本発明の測定方法が可能となる濃度となる含量で含まれていれば特に制限はなく、水性媒体で溶解された状態での濃度が、通常、0.01〜40 g/Lとなる含量で含まれる。

【0028】

本発明の測定用試薬には、前述の界面活性剤、防腐剤等が含まれていてもよい。この他、ビリルビンの影響抑制剤として知られているフェロシアン化物やウシ血清アルブミン(BSA)等の蛋白質が含まれていてもよい。

【0029】

以下、実施例により本発明をより詳細に説明するが、これらは本発明の範囲を何ら限定するものではない。尚、本実施例、比較例及び試験例においては、下記メーカーの試薬及び酵素を使用した。

【0030】

ＭＯＰＳ（同仁化学研究所社製）、酢酸ナトリウム・３水和物（関東化学社製）、ＥＭＳＥ（ダイトーケミックス社製）、４−ＡＡ（アクテック社製）、ホウ酸（和光純薬工業社製）、アジ化ナトリウム（和光純薬工業社製）、ノニオンＨＳ−２１０（日油社製）、ＥＤＴＡ・２Ｎａ（同仁化学研究所社製）、デキストラン硫酸ナトリウム（分子量５０万）（ＰＫケミカルズ社製）、硫酸ナトリウム（関東化学社製）、ＢＳＡ（ミリポア社製）、エマルゲンＬ−４０（花王社製）、プルロニックＬ１２１（ＡＤＥＫＡ社製）、フェロシアン化カリウム（ＦＣＫ；関東化学社製）、テトラデシルトリメチルアンモニウム クロリド（和光純薬工業社製）、オクタン酸ナトリウム（東京化成社製）、デカン酸ナトリウム（東京化成社製）、ラウリン酸ナトリウム（東京化成社製）、オレイン酸ナトリウム（東京化成社製）、リノール酸ナトリウム（東京化成社製）、リノレン酸（東京化成社製）、ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ；和光純薬工業社製）、ペルオキシダーゼ（ＰＯＤ；東洋紡績社製）、アスコルビン酸オキシダーゼ（ＡＯＤ；旭化成社製）、ウリカーゼ（東洋紡績社製）、ＬＰＬ３１１（リポプロテインリパーゼ；東洋紡績社製）、ＣＨＯ−ＣＥ（コレステロールオキシダーゼ；キッコーマン社製）。

【実施例1】

【0031】

以下の第１試薬及び第２試薬からなる尿酸測定用キット（キットA1〜A6）を調製した。
第１試薬
ＭＯＰＳ（ｐＨ７．０） 20 mmol/L
酢酸ナトリウム・３水和物 15 g/L
ＥＭＳＥ 0.2 g/L
ホウ酸 0.1 g/L
アジ化ナトリウム 0.2 g/L
ノニオンＨＳ−２１０ 1 g/L
ＰＯＤ 5 kU/L
ＡＯＤ 3 kU/L
脂肪酸（第１表参照）
第２試薬
ＭＯＰＳ（ｐＨ７．０） 20 mmol/L
酢酸ナトリウム・３水和物 12.5 g/L
４−ＡＡ 0.35 g/L
ＥＤＴＡ・２Ｎａ 0.5 g/L
ノニオンＨＳ−２１０ 0.5 g/L
アジ化ナトリウム 0.2 g/L
ＰＯＤ 10 kU/L
ウリカーゼ 0.75 kU/L

【0032】

［比較例１］
以下の第１試薬及び第２試薬からなる尿酸測定用キット（キットa1）を調製した。
第１試薬
ＭＯＰＳ（ｐＨ７．０） 20 mmol/L
酢酸ナトリウム・３水和物 15 g/L
ＥＭＳＥ 0.2 g/L
ホウ酸 0.1 g/L
アジ化ナトリウム 0.2 g/L
ノニオンＨＳ−２１０ 1 g/L
ＰＯＤ 5 kU/L
ＡＯＤ 3 kU/L
第２試薬
ＭＯＰＳ（ｐＨ７．０） 20 mmol/L
酢酸ナトリウム・３水和物 12.5 g/L
４−ＡＡ 0.35 g/L
ＥＤＴＡ・２Ｎａ 0.5 g/L
ノニオンＨＳ−２１０ 0.5 g/L
アジ化ナトリウム 0.2 g/L
ＰＯＤ 10 kU/L
ウリカーゼ 0.75 kU/L

【0033】

［比較例２］
以下の第１試薬及び第２試薬からなる尿酸測定用キット（キットa2）を調製した。
第１試薬
ＭＯＰＳ（ｐＨ７．０） 20 mmol/L
酢酸ナトリウム・３水和物 15 g/L
ＥＭＳＥ 0.2 g/L
ホウ酸 0.1 g/L
アジ化ナトリウム 0.2 g/L
ノニオンＨＳ−２１０ 1 g/L
ＰＯＤ 5 kU/L
ＡＯＤ 3 kU/L
ＳＤＳ 1 mmol/L
第２試薬
ＭＯＰＳ（ｐＨ７．０） 20 mmol/L
酢酸ナトリウム・３水和物 12.5 g/L
４−ＡＡ 0.35 g/L
ＥＤＴＡ・２Ｎａ 0.5 g/L
ノニオンＨＳ−２１０ 0.5 g/L
アジ化ナトリウム 0.2 g/L
ＰＯＤ 10 kU/L
ウリカーゼ 0.75 kU/L

【実施例2】

【0034】

実施例１のキットA1を用いて、以下の手順により、検体中の尿酸を測定した。
（１）検量線の作成
標準液として生理食塩水（尿酸濃度：0 mg/dL）及び液状コントロール血清ＩＩワコー（尿酸濃度：9.4 mg/dL；和光純薬工業社製）を、キットとして実施例１のキットA1を用いて、日立7170S形自動分析装置により以下の反応を行い、当該反応により得られた２つの吸光度(E1及びE2)を基に、尿酸濃度と「吸光度」（E2からE1を差し引いて得られた値）との間の関係を示す検量線を作成した。

【0035】

反応セルへ標準液(3.1μL)と第１試薬(0.15 mL)とを添加し37℃で5分間加温し、反応液の吸光度(E1)を主波長600 nm、副波長700 nmで測定し、次いで、この反応液に第２試薬(0.05 mL)を添加しさらに37℃で5分間加温し、反応液の吸光度(E2)を主波長600 nm、副波長700 nmで測定した。

【0036】

（２）測定用検体の調製
生化学コントロール血清「QAPトロール2X」（シスメックス社製）220μLにビリルビン濃度500 mg/dLの干渉チェック・Aプラス−ビリルビンＣ（シスメックス社製）30μLを混合し、ビリルビン濃度60 mg/dLのビリルビン添加検体を調製した。同様に、ビリルビン濃度500 mg/dLの干渉チェック・Aプラス−ビリルビンＣの代わりに、干渉チェック・Aプラス−ビリルビンＣ（ブランク）（シスメックス社製）を用いてビリルビン濃度0 mg/dLの対照検体を調製した。

【0037】

（３）検体と実施例１の各キットとの反応による当該検体における「吸光度」の測定
上記（１）の検量線の作成において用いた標準液の代わりに、上記（２）で調製した測定用検体、すなわち、ビリルビン添加検体及び対照検体の各検体を用いる以外は（１）の「吸光度」の算出方法と同様の方法により、当該検体に対する「吸光度」を測定した。

【0038】

（４）測定用検体中の尿酸濃度の決定
上記（３）で測定した「吸光度」と、上記（１）で作成した検量線とから、各検体中の尿酸濃度を決定した。対照検体中の尿酸濃度を100としたときのビリルビン添加検体中の尿酸濃度の相対値を第１表に示す。

【0039】

キットとして、キットA1の代わりにキットA2〜A6の各キットを用いる以外は上記（１）〜（４）と同様の方法により、ビリルビン添加検体中の尿酸濃度の相対値を決定した。結果を第１表に示す。

【0040】

［比較例３］
実施例２のキットA1の代わりに比較例１のキットa1を用いる以外は実施例２と同様の方法により、ビリルビン添加検体中の尿酸濃度の相対値を決定した。結果を第１表に示す。

【0041】

［比較例４］
実施例２のキットA1の代わりに比較例２のキットa2を用いる以外は実施例２と同様の方法により、ビリルビン添加検体中の尿酸濃度の相対値を決定した。結果を第１表に示す。

【0042】

【表1】

【0043】

尿酸濃度の相対値は、対照検体中の尿酸濃度を100とした場合のビリルビン添加検体中の尿酸濃度を示し、値が低い程、ビリルビンの影響を受けていることになる。第１表に、キットaを用いた場合の尿酸濃度の相対値を基準にしたときの、各キットにおける尿酸濃度の相対値の差をΔ相対値として示した。第１表から明らかなように、脂肪酸の代わりに、脂肪酸と同様に陰イオン性の基を有するＳＤＳを含むキットを用いた場合には、ＳＤＳ及び脂肪酸を含まないキットを用いた場合よりもビリルビンの影響を受けるのに対して、ＳＤＳを含まず、脂肪酸を含むキットを用いた場合には、ＳＤＳ及び脂肪酸を含まないキットを用いた場合よりもビリルビンの影響を受け難かった。この結果から、脂肪酸を用いる本発明の測定方法は、ビリルビンの影響が抑制された方法であることが分かる。

【実施例3】

【0044】

以下の第１試薬及び第２試薬からなるＬＤＬ−Ｃ測定用キット（キットB1〜B3）を調製した。
第１試薬
ＭＯＰＳ（ｐＨ７．０） 20 mmol/L
デキストラン硫酸ナトリウム（分子量５０万） 0.5 g/L
硫酸ナトリウム 2 g/L
ＥＭＳＥ 0.3 g/L
ＢＳＡ 4.5 g/L
ＰＯＤ 10 kU/L
脂肪酸（第２表参照）
第２試薬
ＭＯＰＳ（ｐＨ７．０） 20 mmol/L
エマルゲンＬ４０ 7 g/L
プルロニックＬ１２１ 3 g/L
テトラデシルトリメチルアンモニウム クロリド 0.06g/L
４−ＡＡ 0.5 g/L
ＢＳＡ 4.5 g/L
ＦＣＫ 0.02 g/L
ＰＯＤ 20 kU/L
ＬＰＬ３１１ 1.5 kU/L
ＣＨＯ−ＣＥ 1 kU/L

【0045】

［比較例５］
以下の第１試薬及び第２試薬からなるＬＤＬ−Ｃ測定用キット（キットb）を調製した。
第１試薬
ＭＯＰＳ（ｐＨ７．０） 20 mmol/L
デキストラン硫酸ナトリウム 0.5 g/L
硫酸ナトリウム 2 g/L
ＥＭＳＥ 0.3 g/L
ＢＳＡ 4.5 g/L
ＰＯＤ 10 kU/L
第２試薬
ＭＯＰＳ（ｐＨ７．０） 20 mmol/L
エマルゲンＬ４０ 7 g/L
プルロニックＬ１２１ 3 g/L
テトラデシルトリメチルアンモニウム クロリド 0.06g/L
４−ＡＡ 0.5 g/L
ＢＳＡ 4.5 g/L
ＦＣＫ 0.02 g/L
ＰＯＤ 20 kU/L
ＬＰＬ３１１ 1.5 kU/L
ＣＨＯ−ＣＥ 1 kU/L

【実施例4】

【0046】

実施例３のキットB1を用いて、以下の手順により、検体中のＬＤＬ−Ｃを測定した。
（１）検量線の作成
標準液として生理食塩水（ＬＤＬ−Ｃ濃度：0 mg/dL）及びデタミナー標準血清ＨＤＬ・ＬＤＬ−Ｃ測定用（協和メデックス社製）を、キットとして実施例３のキットB1を用いて、日立7170S形自動分析装置により以下の反応を行い、当該反応により得られた２つの吸光度(E1及びE2)を基に、ＬＤＬ−Ｃ濃度と「吸光度」（E2からE1を差し引いて得られた値）との間の関係を示す検量線を作成した。

【0047】

反応セルへ標準液(3.0μL)と第１試薬(0.15 mL)とを添加し37℃で5分間加温し、反応液の吸光度(E1)を主波長600 nm、副波長700 nmで測定し、次いで、この反応液に第２試薬(0.05 mL)を添加しさらに37℃で5分間加温し、反応液の吸光度(E2)を主波長600 nm、副波長700 nmで測定した。

【0048】

（２）測定用検体の調製
プール血清352μLにビリルビン濃度500 mg/dLの干渉チェック・Aプラス−ビリルビンＣ（シスメックス社製）48μLを混合し、ビリルビン濃度60 mg/dLのビリルビン添加検体を調製した。同様に、ビリルビン濃度500 mg/dLの干渉チェック・Aプラス−ビリルビンＣの代わりに、干渉チェック・Aプラス−ビリルビンＣ（ブランク）（シスメックス社製）を用いてビリルビン濃度0 mg/dLの対照検体を調製した。

【0049】

（３）検体と実施例１の各キットとの反応による当該検体における「吸光度」の測定
上記（１）の検量線の作成において用いた標準液の代わりに、上記（２）で調製した測定用検体、すなわち、ビリルビン添加検体及び対照検体の各検体を用いる以外は（１）の「吸光度」の算出方法と同様の方法により、当該検体に対する「吸光度」を測定した。

【0050】

（４）測定用検体中のＬＤＬ−Ｃ濃度の決定
上記（３）で測定した「吸光度」と、上記（１）で作成した検量線とから、各検体中のＬＤＬ−Ｃ濃度を決定した。対照検体中のＬＤＬ−Ｃ濃度を100としたときのビリルビン添加検体中のＬＤＬ−Ｃ濃度の相対値を第２表に示す。

【0051】

キットとして、キットB1の代わりにキットB2〜B3の各キットを用いる以外は上記（１）〜（４）と同様の方法により、ビリルビン添加検体中のＬＤＬ−Ｃ濃度の相対値を決定した。結果を第２表に示す。

【0052】

［比較例６］
実施例３のキットB1の代わりに比較例5のキットbを用いる以外は実施例４と同様の方法により、ビリルビン添加検体中のＬＤＬ−Ｃ濃度の相対値を決定した。結果を第２表に示す。

【0053】

【表2】

【0054】

ＬＤＬ−Ｃ濃度の相対値は、対照検体中のＬＤＬ−Ｃ濃度を100とした場合のビリルビン添加検体中のＬＤＬ−Ｃ濃度を示し、値が低い程、ビリルビンの影響を受けていることになる。第２表に、キットbを用いた場合のＬＤＬ−Ｃ濃度の相対値を基準にしたときの、各キットにおけるＬＤＬ−Ｃ濃度の相対値の差をΔ相対値として示した。第２表から明らかなように、脂肪酸を含むキットを用いた場合には、脂肪酸を含まないキットの場合によりもビリルビンの影響を受け難かった。この結果から、脂肪酸を用いる本発明の測定方法は、ビリルビンの影響が抑制された方法であることが分かる。

【産業上の利用可能性】

【0055】

本発明により、ビリルビンの影響が抑制された、検体中の測定対象成分の測定方法、及び、検体中の測定対象成分の測定用試薬が提供される。本発明の測定方法、及び、測定用試薬は臨床診断に有用である。