特許 6773507 バイオセンサ、その製造方法、グルコース又はラクテートの濃度測定方法及び濃度測定システム

(19)【発行国】日本国特許庁(JP)

(12)【公報種別】特許公報(B2)

(11)【特許番号】6773507

(24)【登録日】2020年10月5日

(45)【発行日】2020年10月21日

(54)【発明の名称】バイオセンサ、その製造方法、グルコース又はラクテートの濃度測定方法及び濃度測定システム

(51)【国際特許分類】

   G01N 27/327 20060101AFI20201012BHJP

   G01N 27/416 20060101ALI20201012BHJP

   G01N 27/26 20060101ALI20201012BHJP

【ＦＩ】

   G01N27/327 353R

   G01N27/416 338

   G01N27/416 336G

   G01N27/26 371A

【請求項の数】11

【全頁数】16

(21)【出願番号】特願2016-193783(P2016-193783)

(22)【出願日】2016年9月30日

(65)【公開番号】特開2018-54555(P2018-54555A)

(43)【公開日】2018年4月5日

【審査請求日】2019年5月13日

(73)【特許権者】

【識別番号】000141897

【氏名又は名称】アークレイ株式会社

(74)【代理人】

【識別番号】110000040

【氏名又は名称】特許業務法人池内アンドパートナーズ

(72)【発明者】

【氏名】兼田 悠

【審査官】 櫃本 研太郎

(56)【参考文献】

【文献】 国際公開第２００５／０４３１４６（ＷＯ，Ａ１）

【文献】 特開平０２−２３４６９７（ＪＰ，Ａ）

【文献】 国際公開第２０１５／０６０１５０（ＷＯ，Ａ１）

【文献】 特表平０５−５０５４５９（ＪＰ，Ａ）

【文献】 特開２０１３−０８３６３４（ＪＰ，Ａ）

【文献】 特表２００８−５２１００２（ＪＰ，Ａ）

【文献】 特表２０１５−５１７３０２（ＪＰ，Ａ）

【文献】 特開２０１３−０８３６３７（ＪＰ，Ａ）

【文献】 特開２０１３−１６４４２６（ＪＰ，Ａ）

(58)【調査した分野】（Int.Cl.，ＤＢ名）

Ｇ０１Ｎ ２７／００−２７／４９

ＣＡｐｌｕｓ（ＳＴＮ）

(57)【特許請求の範囲】

【請求項1】

絶縁性基板、前記基板上に配置された作用極及び対極を有する電極系、及び、前記電極系上に配置された試薬層を備え、
前記試薬層は、酸化還元酵素及び１−メトキシ−５−メチルフェナジニウムエチルサルフェート（１−ｍ−ＰＥＳ）を含み、
測定対象が、グルコース又はラクテートである、バイオセンサ。

【請求項2】

前記酸化還元酵素は、グルコースオキシダーゼ、グルコースデヒドロゲナーゼ、ラクテートオキシダーゼ及びラクテートデヒドロゲナーゼからなる群から選択される、請求項１記載のバイオセンサ。

【請求項3】

前記試薬層は、ルテニウム化合物をさらに含む、請求項１又は２に記載のバイオセンサ。

【請求項4】

前記ルテニウム化合物は、下記式で表されるルテニウム化合物である、請求項３記載のバイオセンサ。
［Ｒｕ（ＮＨ₃）₅Ｘ］ⁿ⁺
前記式において、
Ｘは、ＮＨ₃、ハロゲンイオン、ＣＮ、ピリジン、ニコチンアミド、又はＨ₂Ｏであり、
ｎ＋は、Ｘの種類により決定される酸化型ルテニウム(III)錯体の価数を表す。

【請求項5】

試料中のグルコース又はラクテートの濃度を測定する方法であって、
前記試料と酸化還元酵素とを接触させること、及び、前記試料中のグルコース又はラクテートと前記酵素との反応を１-メトキシ-５-メチルフェナジニウムエチルサルフェートを介して電気化学的に測定することを含む、
グルコース又はラクテートの濃度測定方法。

【請求項6】

前記電気化学的測定は、前記試料中のグルコース又はラクテートと前記酸化還元酵素との反応を１-メトキシ-５-メチルフェナジニウムエチルサルフェート及びルテニウム化合物を介して行うことを含む、請求項５記載の測定方法。

【請求項7】

請求項１から４のいずれかに記載のバイオセンサを用いて行う、請求項５又は６に記載の測定方法。

【請求項8】

前記試料と酸化還元酵素との接触後に前記バイオセンサの電極系に電圧を印加すること、前記印加により放出される応答電流値を測定すること、及び、前記応答電流値に基づいて前記試料中のグルコース又はラクテートの濃度を算出することを含む、請求項７記載の測定方法。

【請求項9】

絶縁性基板に配置された作用極及び対極を有する電極系上に、酸化還元酵素及び１-メトキシ-５-メチルフェナジニウムエチルサルフェートを含む試薬層を形成することを含む、グルコース又はラクテートを測定するためのバイオセンサの製造方法。

【請求項10】

前記試薬層の形成において、酸化還元酵素、１-メトキシ-５-メチルフェナジニウムエチルサルフェート及びルテニウム化合物を含む試薬層を形成することを含む、請求項９記載の製造方法。

【請求項11】

請求項１から４のいずれかに記載のバイオセンサと、
前記バイオセンサの電極系に電圧を印加する手段と、
前記電極系における電流を測定するための手段とを含む、試料中のグルコース又はラクテートの濃度を測定するための濃度測定システム。

【発明の詳細な説明】

【技術分野】

【0001】

本開示は、バイオセンサ、特にグルコース又はラクテートの測定に利用可能なバイオセンサ、その製造方法、グルコース又はラクテートの濃度測定方法及び濃度測定システムに関する。

【背景技術】

【0002】

簡易バイオセンサの多くは、電気化学的測定法が用いられている。グルコースセンサでは、酵素及びメディエータを主成分とした試薬を電極上に配置し、電極にメディエータの酸化電位以上の電位を印加することによって、そこで得られる電流値をグルコース値換算している。
特許文献１は、バイオセンサに関し、メディエータの一例としてフェナジンメトサルフェート（ＰＭＳ）が使用できることを開示する。
特許文献２は、グルコースセンサに関し、アスペルギルス・オリゼ型ＦＡＤ−ＧＤＨを用いたグルコースセンサにおいて、メディエータとしてルテニウム化合物とＰＭＳとを組み合わせて使用するによって、グルコース濃度に依存した電流値を効率よく測定できること、いずれか一方ではそのような測定ができないことを開示する。

【先行技術文献】

【特許文献】

【0003】

【特許文献1】特開平７−８３８７１号公報（特許３１０２６１３号）

【特許文献2】特開２０１３−８３６３４号公報（特許５５８４７４０号）

【発明の概要】

【発明が解決しようとする課題】

【0004】

ＰＭＳは光に対して非常に不安定であるという問題がある。このため、ＰＭＳに替えて、ＰＭＳよりも高い光耐性を有する１−メトキシ−５−メチルフェナジニウムメチルサルフェート（１−ｍ−ＰＭＳ）を使用することが提案されている。しかしながら、１−ｍ−ＰＭＳは湿度耐性が低いという問題がある。グルコースセンサやラクテートセンサといったバイオセンサは、高温、多湿等といった様々な条件下で保存されるため、保存安定性が求められるが、１−ｍ−ＰＭＳをドライ系のバイオセンサに使用した場合、耐湿度性の点に問題があることが見出された。

【0005】

本開示は、耐湿度性が向上されたバイオセンサ、とくにグルコースセンサ又はラクテートセンサとして利用可能なバイオセンサ、その製造方法、グルコース又はラクテートの濃度測定方法及び濃度測定システムを提供する。

【課題を解決するための手段】

【0006】

本開示は、一態様において、絶縁性基板、前記基板上に配置された作用極及び対極を有する電極系、及び、前記電極系上に配置された試薬層を備え、前記試薬層は、酸化還元酵素及び１-メトキシ-５-メチルフェナジニウムエチルサルフェート（１−ｍ−ＰＥＳ）を含み、測定対象が、グルコース又はラクテートであるバイオセンサ（「本開示のバイオセンサ」ともいう）に関する

【0007】

本開示は、その他の態様として、試料中のグルコース又はラクテートの濃度を測定する方法であって、前記試料と酸化還元酵素とを接触させること、及び、前記試料中のグルコース又はラクテートと前記酵素との反応を１-メトキシ-５-メチルフェナジニウムエチルサルフェートを介して電気化学的に測定することを含むグルコース又はラクテートの濃度測定方法に関する。

【0008】

本開示は、その他の態様として、絶縁性基板に配置された作用極及び対極を有する電極系上に、酸化還元酵素、及び１−メトキシ−５−メチルフェナジニウムエチルサルフェートを含む試薬層を形成することを含む、グルコース又はラクテートを測定するためのバイオセンサの製造方法に関する

【0009】

本開示は、その他の態様として、本開示のバイオセンサと、前記バイオセンサの電極系に電圧を印加する手段と、電極系における電流を測定するための手段とを含む、試料中のグルコース又はラクテートの濃度を測定するための濃度測定システムに関する。

【発明の効果】

【0010】

本開示によれば、一態様において、耐湿度性が向上されたバイオセンサ、その製造方法、グルコース又はラクテートの濃度測定方法及び濃度測定システムを提供できる。

【図面の簡単な説明】

【0011】

【図1】図１Ａ〜Ｆは、バイオセンサの構成及び製造方法の一例を説明する模式図である。

【図2】図２は、バイオセンサの構成の一例を説明する模式図である。

【図3】図３Ａは実施例２及び参考例３のグルコースセンサで得られたグルコース濃度と、市販のグルコースアナライザーで測定したグルコース濃度との関係の一例を示すグラフであり、図３Ｂは実施例２及び参考例３のグルコースセンサの再現性の一例を示すグラフである。

【図4】図４Ａ〜Ｃは、実施例２及び参考例３のグルコースセンサの湿度暴露評価試験の結果の一例を示すグラフである。

【図5】図５は、実施例３及び参考例４のラクテートセンサの湿度暴露評価試験の結果の一例を示すグラフである。

【発明を実施するための形態】

【0012】

本開示は、一態様において、メディエータとしてメチルフェナジニウムエチルサルフェート（ＰＥＳ）を使用してバイオセンサを作製することによって、メチルフェナジニウムメチルサルフェート（ＰＭＳ）を使用したバイオセンサと比較して、グルコースセンサ及びラクテートセンサの耐湿度性を向上できるという知見に基づく。
本開示は、一態様において、メディエータとして１−メトキシ−５−メチルフェナジニウムエチルサルフェート（１−ｍ−ＰＥＳ）を使用することによって、１−メトキシ−５−メチルフェナジニウムメチルサルフェート（１−ｍ−ＰＭＳ）を使用したバイオセンサと比較して、耐湿度性が向上されたグルコースセンサ及びラクテートセンサが得られるという知見に基づく。

【0013】

本開示のバイオセンサによれば、高い耐湿度性を有することから、一又は複数の実施形態において、高温多湿の条件下で放置された場合でもセンサ性能が劣化し難く、また高温多湿な環境下でも安定な測定が可能になりうるという効果を奏しうる。

【0014】

［バイオセンサ］
本開示は、一態様において、絶縁性基板、前記基板上に配置された作用極及び対極を有する電極系、及び、前記電極系上に配置された試薬層を備えるバイオセンサに関する。本開示のバイオセンサは、測定対象が、グルコース又はラクテートであり、グルコースセンサ又はラクテートセンサとして使用できる。

【0015】

試薬層は、酸化還元酵素（単に「酵素」という場合もある）及び１−メトキシ−５−メチルフェナジニウムエチルサルフェートを含む。

【0016】

本開示のバイオセンサにおいて、酸化還元酵素は、一又は複数の実施形態において、グルコース又はラクテートと反応可能な酸化還元酵素が挙げられる。酸化還元酵素としては、一又は複数の実施形態において、従来又は今後開発されるグルコースセンサ又はラクテートセンサに使用される酸化還元酵素が使用できる。酸化還元酵素としては、一又は複数の実施形態において、グルコースオキシダーゼ（ＧＯＤ）、グルコースデヒドロゲナーゼ（ＧＤＨ）、ラクテートオキシダーゼ（ＬＯＤ）又はラクテートデヒドロゲナーゼ（ＬＤＨ）が挙げられる。ＧＤＨの一例としては、ＰＱＱ（ピロロキノリンキノン）−ＧＤＨ、ＦＡＤ（フラビンアデニンジヌクレオチド）−ＧＤＨ、ＮＡＤ（ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド）−ＧＤＨ、ＮＡＤＰ（ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン）−ＧＤＨなど様々な補酵素を含むＧＤＨが使用可能である。

【0017】

バイオセンサ１枚当たりの酵素の含有量は、従来又は今後開発されるグルコースセンサ又はラクテートセンサに配置される量であってよく、生産性（コスト）及び検出感度の維持の観点から、０．１〜１０Ｕが好ましく、より好ましくは０．２〜６Ｕ、さらに好ましくは０．５〜４Ｕである。なお、本開示においてＵは酵素単位であり、酵素が至適温度において、１分間で１μｍｏｌの基質と反応する酵素量である。酵素がＦＡＤ−ＧＤＨである場合、酵素単位１Ｕは、ＦＡＤ−ＧＤＨが１μｍｏｌのグルコースを３７℃１分で酸化する酵素量である。

【0018】

本開示において「バイオセンサ１枚あたりの含有量」とは、一又は複数の実施形態において、作用極及び対極を有する電極系１つあたりに使用される量をいい、さらなる一又は複数の実施形態において、１つの電極系上に配置される試薬層に含まれる量をいい、さらなる一又は複数の実施形態において、試料が添加された時（使用時）に反応系に含まれるように配置される量をいう。また、本開示において「バイオセンサ１枚あたりの含有量」と言う時のバイオセンサは、一又は複数の実施形態において、血液試料に対して使用される通常のサイズのものをいう。前記サイズは、一又は複数の実施形態において、添加される血液試料が例えば０．２〜１．０μＬ又は０．２〜０．４μＬのもの、或いは、血液試料が試薬層と接触して形成する反応系の容量が例えば０．２〜１．０μＬのものをいう。したがって、「グルコースセンサ１枚あたりの含有量」は、一又は複数の実施形態において、電極系の数、及び／又は、試料若しくは反応系の容量に応じ、本明細書に開示する範囲を適宜調節できる。

【0019】

酵素がＧＤＨである場合、バイオセンサ１枚当たりの酵素の含有量は、生産性（コスト）及び検出感度の維持の観点から、０．２〜１０Ｕが好ましく、より好ましくは０．３〜６Ｕ、さらに好ましくは０．３〜４Ｕである。

【0020】

試薬層は、１−ｍ−ＰＥＳを含む。バイオセンサ１枚あたりの１−ｍ−ＰＥＳの含有量は、生産性（コスト）及び検出感度の観点から、３０〜１０００ｐｍｏｌが好ましく、より好ましくは４０〜８００ｐｍｏｌ、さらに好ましくは５０〜５００ｐｍｏｌである。

【0021】

バイオセンサがＦＡＤ−ＧＤＨを含むグルコースセンサである場合において、グルコースセンサ１枚あたりの１−ｍ−ＰＥＳの含有量が２００ｐｍｏｌとした場合、ＦＡＤ−ＧＤＨの含有量は、一又は複数の実施形態において、０．２〜１０Ｕである。

【0022】

本開示は、本開示にかかる一又は複数の実施形態において、１−ｍ−ＰＥＳに替えて若しくは１−ｍ−ＰＥＳと共にＰＥＳを含む実施形態を含みうる。

【0023】

試薬層は、一又は複数の実施形態において、ルテニウム化合物をさらに含んでもよい。ルテニウム化合物としては、一又は複数の実施形態において、従来又は今後開発されるグルコースセンサやバイオセンサにメディエータに使用されるルテニウム化合物を使用できる。ルテニウム化合物は、一又は複数の実施形態において、酸化型のルテニウム錯体として反応系に存在し得るものであることが好ましい。ルテニウム錯体としては、メディエータ（電子伝達体）として機能すればその配位子の種類はとくに限定されない。酸化型ルテニウム錯体としては、一又は複数の実施形態において、下記化学式で示されるものが好ましい。
［Ｒｕ（ＮＨ₃）₅Ｘ］ⁿ⁺
前記化学式におけるＸとしては、一又は複数の実施形態において、ＮＨ₃、ハロゲンイオン、ＣＮ、ピリジン、ニコチンアミド、又はＨ₂Ｏが挙げられ、ＮＨ₃又はハロゲンイオン（例えば、Ｃｌ^-、Ｆ^-、Ｂｒ^-、I^-）が好ましい。化学式におけるｎ＋は、Ｘの種類により決定される酸化型ルテニウム(III)錯体の価数を表す。

【0024】

ルテニウム化合物のバイオセンサ１枚あたりの含有量は、一又は複数の実施形態において、従来又は今後開発されるグルコースセンサ又はラクテートセンサに配置される量であってよく、生産性（コスト）及び検出感度の観点から、５〜５０μｇが好ましく、より好ましくは１０〜４０μｇ、さらに好ましくは１５〜２５μｇである。

【0025】

バイオセンサがＦＡＤ−ＧＤＨを含むグルコースセンサである場合において、グルコースセンサ１枚あたりの１−ｍ−ＰＥＳの含有量が２００ｐｍｏｌとした場合、酵素含有量は、一又は複数の実施形態において、０．２〜１０Ｕであり、ルテニウム化合物の含有量は、一又は複数の実施形態において、１０〜４０μｇである。

【0026】

［試薬層に含まれるその他の成分］
試薬層は、一又は複数の実施形態において、測定感度向上の観点から、層状無機化合物、界面活性剤、又は緩衝剤などがさらに含有されてもよい。

【0027】

層状無機化合物としては、一又は複数の実施形態において、従来又は今後開発されるグルコースセンサ又はラクテートセンサに使用されるものが使用でき、同様の観点から、イオン交換能を有する膨潤性粘土鉱物が好ましく、ベントナイト、スメクタイト、バーミキュライト、合成フッ素雲母などがより好ましく、合成ヘクトライトや合成サポナイト等の合成スメクタイト；合成フッ素雲母等の膨潤性合成雲母；Ｎａ型雲母等の合成雲母（天然の雲母は、通常、非膨潤性の粘土鉱物である）などがさらにより好ましい。これらの層状無機化合物は、単独で使用してもよいし、２種以上を併用してもよい。

【0028】

界面活性剤としては、従来又は今後開発されるグルコースセンサ又はラクテートセンサに使用されるものが使用でき、制限されない一又は複数の実施形態において、非イオン性、アニオン性、カチオン性、又は両性の界面活性剤を適宜使用し得る。これらの中でも、測定感度向上の観点からは、両性界面活性剤が好ましい。両性界面活性剤としては、一又は複数の実施形態において、カルボキシベタイン、スルホベタイン、又はホスホベタイン等が挙げられ、同様の観点からスルホベタインが好ましい。スルホベタインとしては、例えば、ＣＨＡＰＳ（３−［（３−コールアミドプロピル］）ジメチルアンモニオ］プロパンスルホネート）、ＣＨＡＰＳＯ（３−［（３−コールアミドプロピル）ジメチルアンモニオ］−２−ヒドロキシ−１−プロパンスルホネート）、又はアルキルヒドロキシスルホベタイン等が挙げられ、同様の点からＣＨＡＰＳが好ましい。

【0029】

緩衝剤としては、従来又は今後開発されるグルコースセンサ又はラクテートセンサに使用されるものが使用でき、制限されない一又は複数の実施形態において、測定感度向上の観点から、アミン系緩衝剤及びカルボキシル基を有する緩衝剤が好ましい。アミン系緩衝剤としては、同様の観点から、Ｔｒｉｓ、ＡＣＥＳ、ＣＨＥＳ、ＣＡＰＳＯ、ＴＡＰＳ、ＣＡＰＳ、Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ、ＴＡＰＳＯ、ＴＥＳ、Ｔｒｉｃｉｎｅ又はＡＤＡ等が好ましく、より好ましくはＡＣＥＳ又はＴｒｉｓ、さらに好ましくはＡＣＥＳである。カルボキシル基を有する緩衝剤としては、同様の観点から、酢酸−酢酸Ｎａ緩衝剤、リンゴ酸−酢酸Ｎａ緩衝剤、マロン酸−酢酸Ｎａ緩衝剤、コハク酸−酢酸Ｎａ緩衝剤等が好ましく、コハク酸−酢酸Ｎａ緩衝剤がより好ましい。これらの緩衝剤は、１種類でもよいし２種類以上を併用してもよい。

【0030】

試薬層は、一又は複数の実施形態において、全ての試薬を含む単層構造であってもよく、１又は２以上の試薬が個別の層に配置された多層の積層構造であってもよい。多層の積層構造としては、一又は複数の実施形態において、層状無機化合物を含む無機ゲル層の上に、酵素を含む酵素層が形成された積層構成の試薬層が挙げられる。１−ｍ−ＰＥＳは、一又は複数の実施形態において、無機ゲル層及び酵素層の少なくとも一方に含有される。
１−ｍ−ＰＥＳのみを用いたシングルメディエータの場合、一又は複数の実施形態において、１−ｍ−ＰＥＳは、無機ゲル層及び酵素層の少なくとも一方に含有され、好ましくは酵素層に含有される。１−ｍ−ＰＥＳとルテニウム化合物とを用いたダブルメディエータの場合、一又は複数の実施形態において、ルテニウム化合物及び１−ｍ−ＰＥＳは、それぞれ独立して無機ゲル層及び酵素層の少なくとも一方に含有され、好ましくはルテニウム化合物は無機ゲル層に含有され、１−ｍ−ＰＥＳは酵素層に含有される。

【0031】

試薬層は、保存安定性の観点から、電極系上に乾燥状態で配置されることが好ましい。

【0032】

本開示のバイオセンサは、絶縁性基板、作用極及び対極を有する電極系、及び試薬層を備える。電極系は、一又は複数の実施形態において、参照極を有してもよい。電極系を構成する電極は、一又は複数の実施形態において、従来又は今後開発されるグルコースセンサ又はラクテートセンサで使用されるものが使用できる。作用極及び対極としては、限定されない一又は複数の実施形態において、カーボン電極を用いてもよいし、白金、金、銀、ニッケル、パラジウムなどの金属電極を用いてもよい。参照極としては、特に限定されるものではなく、電気化学実験において一般的なもの及び今後開発されるものを適用することができる、一又は複数の実施形態において、飽和カロメル電極、銀−塩化銀などが挙げられる。

【0033】

電極系は絶縁性基板上に形成されている。絶縁性基板上に電極を形成する方法としては、一又は複数の実施形態において、フォトリゾグラフィ技術や、スクリーン印刷、グラビア印刷、フレキソ印刷などの印刷技術等が挙げられる。

【0034】

絶縁性基板の素材としては、従来又は今後開発されるグルコースセンサ又はラクテートセンサで使用されるものが使用でき、限定されない一又は複数の実施形態において、シリコン、ガラス、ガラスエポキシ、セラミック、ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）、ポリスチレン、ポリメタクリレート、ポリプロピレン、アクリル樹脂、ポリ塩化ビニル、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリエステル、及びポリイミド等が挙げられる。

【0035】

本開示のバイオセンサの一実施形態について、図１及び図２に基づいて説明する。図１（Ａ）〜（Ｆ）は、本実施形態のバイオセンサを製造する一連の工程を示した斜視図である。図２は、図１（Ｆ）に示すバイオセンサのＩ−Ｉ方向断面図である。図１（Ａ）〜（Ｆ）及び図２において、同一箇所には同一符号を付している。

【0036】

図１（Ｆ）及び図２に示すように、本実施形態のバイオセンサは、基板１１、リード部１２ａを有する作用極１２とリード部１３ａを有する対極１３とから構成された電極系、絶縁層１４、層状無機化合物を含む無機ゲル層１６、酵素を含む酵素層１７、開口部を有するスペーサー１８、及び貫通孔２０を有するカバー１９を備えている。１−ｍ−ＰＥＳは、無機ゲル層１６及び酵素層１７の少なくとも一方に含有される。

【0037】

図１（Ｂ）に示すように、基板１１の一方の端部（両図において右側）上には、検出部１５が設けられており、検出部１５には、作用極１２と対極１３とが、基板１１の幅方向に並行して配置されている。作用極１２と対極１３の一端はそれぞれリード部１２ａ，１３ａ（両図において左側）となり、これらと検出部１５における他端とが、垂直となるように配置されている（図１（Ａ））。また、作用極１２と対極１３との間は、絶縁部となっている。このような電極系を備えた基板１１の上には、図１（Ｂ）に示すように、リード部１２ａ，１３ａ及び検出部１５を除いて、絶縁層１４が積層されており、絶縁層１４が積層されていない前記検出部１５上には、無機ゲル層１６及び酵素層１７がこの順序で積層されている。そして、絶縁層１４の上には、図１（Ｅ）に示すように、検出部１５に対応する箇所が開口部になったスペーサー１８が配置されている。さらにスペーサー１８の上には、前記開口部に対応する一部に貫通孔２０を有するカバー１９が配置されている（図１（Ｆ））。前記開口部の空間部分において、酵素層１７及び絶縁層１４とカバー１９とに挟まれた部分が、キャピラリー構造の試料供給部２１となる。そして、貫通孔２０が、試料を毛管現象により吸入するための空気孔となる。

【0038】

本実施形態のバイオセンサは、一又は複数の実施形態において、ある一定の時間で所定の電圧を加える手段、バイオセンサから伝達される電気信号を測定する手段、及び電気信号を測定対象物濃度に演算する演算手段等の種々の手段を備えた測定機器と組み合わせて使用できる。

【0039】

本実施形態のバイオセンサの使用の一例について説明する。

【0040】

まず、全血試料をバイオセンサの開口部（試料供給部２１）の一端に接触させる。試料供給部２１は、前述のようにキャピラリー構造となっており、その他端に対応するカバー１９に空気孔２０が設けられているため、毛管現象によって前記試料が試料供給部２１の内部に吸引される。吸引された試料は、検出部１５上に設けられた酵素層１７に浸透し、酵素層１７中の酵素を溶解して、さらに酵素層１７の下層である無機ゲル層１６表面に達する。そして、表面に達した試料中の測定対象物（グルコース又はラクテート）と、酵素と、１−ｍ−ＰＥＳとが反応する。

【0041】

バイオセンサがシングルメディエータ（１−ｍ−ＰＥＳのみ）の場合、測定対象物は酵素により酸化され、その酸化反応により移動した電子が１−ｍ−ｐＰＥＳを介して無機ゲル層１６の下に位置する電極に伝えられ、これによって測定対象物の濃度が測定されうる。
バイオセンサがダブルメディエータ（例えば、１−ｍ−ＰＥＳと酸化型ルテニウム化合物）の場合、測定対象物は酵素により酸化され、その酸化反応により移動した電子が１−ｍ−ｐＰＥＳを介して酸化型ルテニウム化合物に伝えられ、還元型ルテニウム（ＩＩ）錯体が形成される。そして、この還元型ルテニウム（ＩＩ）錯体と、無機ゲル層１６の下に位置する電極との間で、電子授受が行われ、これによって測定対象物の濃度が測定されうる。

【0042】

本実施形態では、試薬層が無機ゲル層１６及び酵素層１７の２層構造の形態を例にとり説明したが、本開示はこれに限定されるものではなく、例えば、１層構造の形態であってもよい。

【0043】

［試料］
本開示のバイオセンサにおける試料は、一又は複数の実施形態において、血液、体液、尿などの生体試料であってもよく、その他の液体試料であってもよい。

【0044】

［バイオセンサの製造方法］
本開示は、その他の態様において、絶縁性基板に配置された作用極及び対極を有する電極系上に、酸化還元酵素と、１−ｍ−ＰＥＳとを含む試薬層を形成することを含む、バイオセンサの製造方法（「本開示の製造方法」ともいう）に関する。本開示の製造方法により得られたバイオセンサは、グルコースセンサ又はラクテートセンサとして使用できる。本開示の製造方法において、絶縁性基板、電極系、及び試薬層の構成並びに含有量等は、上述の通りである。

【0045】

［グルコース又はラクテートの濃度測定方法］
本開示は、その他の態様において、試料と酸化還元酵素とを接触させること、及び、前記試料中のグルコース又はラクテートと前記酵素との反応を１−ｍ−ＰＥＳを介して電気化学的に測定することを含む、グルコース又はラクテートの濃度を測定する方法（「本開示の測定方法」ともいう）に関する。本開示の測定方法において、酸化還元酵素は上述の通りである。

【0046】

本開示において「電気化学的に測定する」とは、電気化学的な測定手法を適用する測定することをいい、一又は複数の実施形態において、電流測定法、電位差測定法、電量分析法等が挙げられる。電流測定法としては、一又は複数の実施形態において、還元された電子伝達物質を電圧の印加により酸化される際に生ずる電流値を測定する方法が挙げられる。

【0047】

本開示の測定方法の一実施形態として、試料、酵素、及び１−ｍ−ＰＥＳを含む反応系を直接、絶縁性基板上に配置された作用極及び対極を有する電極系に配置することが挙げられる。その他の実施形態として、電極系の上に無機ゲル層を配置し、その上に試料及び酵素を含む反応系を配置してもよい。この態様の場合、１−ｍ−ＰＥＳは無機ゲル層及び反応系の少なくとも一方に存在させればよい。
１−ｍ−ＰＥＳとルテニウム化合物とを用いたダブルメディエータの場合、前者の実施形態では、ルテニウム化合物は、１−ｍ−ＰＥＳとともに電極系に配置すればよい。後者の実施形態では、ルテニウム化合物は１−ｍ−ＰＥＳと独立して無機ゲル層及び反応系の少なくとも一方に存在させればよく、好ましくは１−ｍ−ＰＥＳを反応系に存在させ、ルテニウム化合物を無機ゲル層に存在させる。

【0048】

本開示の測定方法の好ましい実施形態としては、本開示のバイオセンサを用いたグルコース又はラクテートの濃度を測定する方法が挙げられる。

【0049】

本開示の測定方法は、その他の実施形態において、試料と酵素との接触後にバイオセンサの電極系に電圧を印加すること、印加により放出される応答電流値を測定すること、及び、応答電流値に基づいて試料中のグルコース又はラクテートの濃度を算出することを含んでもよい。印加する電圧としては特に制限されるものではないが、一又は複数の実施形態において、１０〜７００ｍＶ、５０〜５００ｍＶ、又は５０〜４００ｍＶである。

【0050】

本開示の測定方法は、その他の実施形態において、試料と酵素との接触後所定の時間非印加の状態で保持した後に電極系に電圧を印加してもよいし、接触と同時に電極系に電圧を印加してもよい。非印加の状態で保持する時間としては、一又は複数の実施形態において、０秒を超え３０秒以下、又は０秒を超え１０秒以下である。

【0051】

本開示のバイオセンサ及び本開示の測定方法における、電極系への電圧の印加、応答電流値の測定、及び、グルコース又はラクテートの濃度の算出は、従来又は今後開発されるグルコース又はラクテートの濃度測定装置等を用いて適宜行うことができる。

【0052】

［グルコース又はラクテートの濃度測定システム］
本開示は、その他の態様として、本開示のバイオセンサと、前記バイオセンサの電極系に電圧を印加する手段と、電極系における電流を測定するための手段とを含む、試料中のグルコース又はラクテートの濃度を測定するためのグルコース又はラクテートの濃度測定システムに関する。

【0053】

印加手段としては、バイオセンサの電極系と導通し、電圧を印加可能であれば特に制限されるものではなく、公知又は今後開発される印加手段が使用できる。印加手段としては、一又は複数の実施形態においてバイオセンサの電極系と接触可能な接触子、及び直流電源等の電源等を含みうる。

【0054】

測定手段は、電圧印加時に生じた電極系における電流を測定するためのものであって、一又は複数の実施形態においてバイオセンサの試薬層の１−ｍ−ＰＥＳ、場合によってはルテニウム化合物から放出された電子の量に相関する応答電流値を測定可能なものであればよく、従来又は今後開発されるバイオセンサで使用されているものが使用できる。

【0055】

本開示のバイオセンサ、グルコース又はラクテートの濃度測定方法及びグルコース又はラクテートの濃度測定システムは、医療分野、及び／又は、医療を目的としない医学、生化学、生物学等の学術分野で有用である。

【0056】

本開示は、以下の一又は複数の実施形態に関しうる。
〔１〕 絶縁性基板、前記基板上に配置された作用極及び対極を有する電極系、及び、前記電極系上に配置された試薬層を備え、
前記試薬層は、酸化還元酵素及び１−メトキシ−５−メチルフェナジニウムエチルサルフェート（１−ｍ−ＰＥＳ）を含み、
測定対象が、グルコース又はラクテートである、バイオセンサ。
〔２〕 前記酸化還元酵素は、グルコースオキシダーゼ、グルコースデヒドロゲナーゼ、乳酸オキシダーゼ及び乳酸デヒドロゲナーゼからなる群から選択される、〔１〕記載のバイオセンサ。
〔３〕 前記試薬層は、ルテニウム化合物をさらに含む、〔１〕又は〔２〕記載のバイオセンサ。
〔４〕 前記ルテニウム化合物は、下記式で表されるルテニウム化合物である、〔３〕記載のバイオセンサ。
［Ｒｕ（ＮＨ₃）₅Ｘ］ⁿ⁺
前記式において、
Ｘは、ＮＨ₃、ハロゲンイオン、ＣＮ、ピリジン、ニコチンアミド、又はＨ₂Ｏであり、
ｎ⁺は、Ｘの種類により決定される酸化型ルテニウム(III)錯体の価数を表す。
〔５〕 試料中のグルコース又はラクテートの濃度を測定する方法であって、
前記試料と酸化還元酵素とを接触させること、及び、前記試料中のグルコース又はラクテートと前記酸化還元酵素との反応を１-メトキシ-５-メチルフェナジニウムエチルサルフェートを介して電気化学的に測定することを含む、グルコース又はラクテートの濃度測定方法。
〔６〕 前記電気化学的測定は、前記試料中のグルコース又はラクテートと前記酸化還元酵素との反応を１-メトキシ-５-メチルフェナジニウムエチルサルフェート及びルテニウム化合物を介して行うことを含む、〔５〕記載の測定方法。
〔７〕 〔１〕から〔４〕のいずれかに記載のバイオセンサを用いて行う、〔５〕又は〔６〕に記載の測定方法。
〔８〕 前記試料と酸化還元酵素との接触後に前記バイオセンサの電極系に電圧を印加すること、前記印加により放出される応答電流値を測定すること、及び、前記応答電流値に基づいて前記試料中のグルコース又はラクテートの濃度を算出することを含む、〔７〕記載の測定方法。
〔９〕 絶縁性基板に配置された作用極及び対極を有する電極系上に、酸化還元酵素及び１-メトキシ-５-メチルフェナジニウムエチルサルフェートを含む試薬層を形成することを含む、
グルコース又はラクテートを測定するためのバイオセンサの製造方法。
〔１０〕 前記試薬層の形成において、酵素、１-メトキシ-５-メチルフェナジニウムエチルサルフェート及びルテニウム化合物を含む試薬層を形成することを含む、〔９〕記載の製造方法。
〔１１〕 〔１〕から〔４〕のいずれかに記載のバイオセンサと、
前記バイオセンサの電極系に電圧を印加する手段と、
前記電極系における電流を測定するための手段とを含む、試料中のグルコース又はラクテートの濃度を測定するための濃度測定システム。

【0057】

以下に、実施例及び参考例を用いて本開示をさらに説明する。但し、本開示は以下の実施例に限定して解釈されない。

【実施例】

【0058】

［実施例１］
以下のようにして、図１（Ａ）〜（Ｆ）及び図２の模式図と同様の構造のグルコースセンサを作製した。

【0059】

まず、絶縁性基板１１として、ＰＥＴ製基板（長さ５０ｍｍ、幅６ｍｍ、厚み２５０μｍ）を準備し、その一方の表面にリード部をそれぞれ有する作用極１２及び対極１３からなるカーボン電極系をスクリーン印刷によって形成した。

【0060】

次に、絶縁層１４を形成した。絶縁層１４は、絶縁性樹脂ポリエステルを、濃度７５重量％になるように溶媒カルビトールアセテートに溶解させて絶縁性ペーストを調製し、これを電極系を形成した絶縁性基板１１上にスクリーン印刷し、９０℃で６０分間加熱処理することにより形成した。なお、作用極１２及び対極１３の一部及びリード部１２ａ，１３ａにはスクリーン印刷を行わず絶縁層１４を形成しなかった。絶縁層１４を形成しなかった作用極１２及び対極１３を検出部１５とした。

【0061】

続いて、検出部１５に無機ゲル層１６を形成した。合成スメクタイト（商品名「ルーセンタイトＳＷＮ」、コープケミカル社製）、酢酸ナトリウム、及びコハク酸を含む無機ゲル形成液（ｐＨ７．５）を調製した。この無機ゲル形成液を、検出部１５に分注し、３０℃で乾燥させることにより無機ゲル層１６を形成した。

【0062】

さらに、無機ゲル層１６上に酵素層１７を形成した。ＧＯＤ（商品名「Ａｍａｎｏ“ＧＯ”ＡＭ、［ＧＯ−ＡＭ］)」、天野エンザイム社製）、１−ｍ−ＰＥＳ、ＡＣＥＳ緩衝液（ｐＨ７．５）を含む酵素液を調製した。この酵素液を、無機ゲル層１６上に分注し、３０℃で乾燥させて酵素層１７を形成した。

【0063】

最後に、開口部を有するスペーサー１８を絶縁層１４上に配置し、その上に空気孔となる貫通孔を有するカバー１９を配置することによってグルコースセンサを作製した。カバー１９と絶縁層１４とに挟まれたスペーサー１８の開口部の空間がキャピラリー構造となるため、この部分を試料供給部２１とした。

【0064】

実施例１のグルコースセンサ１枚あたりの含有量は、ＧＯＤ２Ｕ、１−ｍ−ＰＥＳ８０ｎｍｏｌであった。酵素単位１Ｕは、ＧＯＤが１μｍｏｌのグルコースを３７℃、１分で酸化する酵素量を意味する。

【0065】

［参考例１］
酵素層１７の形成において、１−ｍ−ＰＥＳを含まない酵素液を使用し、無機ゲル層１６の形成において、ルテニウム化合物（［Ｒｕ（ＮＨ₃）₆］Ｃｌ₃）をさらに含む無機ゲル形成液を使用した以外は、実施例１と同様にしてグルコースセンサを作製した。
参考例１のグルコースセンサ１枚あたりの含有量は、ＧＯＤ２Ｕ、ルテニウム化合物３０ｎｍｏｌであった。

【0066】

［参考例２］
ルテニウム化合物の含有量を、参考例１の２倍である６０ｎｍｏｌとした以外は、参考例１と同様にしてグルコースセンサを作製した。

【0067】

［湿度暴露評価試験１］
実施例１並びに参考例１及び２のグルコースセンサを、水をはった密閉容器内に水と触れないように静置し、それを７０℃のオーブンで４日間暴露した。
暴露したグルコースセンサを、ポテンショスタットを用い、５秒２００ｍＶ連続印加で電圧を印加して電流値を測定した。検体試料としては、グルコース濃度を６００又は８００ｍｇ／ｄＬに調整した静脈全血（Ｈｃｔ４２％、ｐＯ₂７０ｍｍｇＨｇ）を使用した。その結果を表１に示す。
上記の湿度暴露を行わない（未暴露の）実施例１並びに参考例１及び２のグルコースセンサについても、同様の測定を行った。

【0068】

【表1】

【0069】

表１は、暴露後のグルコースセンサの平均電流値（電圧印加０．４秒後、μＡ）を示す（ｎ＝５）。表１に示すように、実施例１のグルコースセンサは、参考例１及び２のグルコースセンサと比較して、４日暴露後の平均電流値（表１）が高かった。参考例１及び２では、グルコース濃度による電流値の差がないが、実施例１ではグルコース濃度によって異なる電流値を示した。また未暴露のグルコースセンサの平均電流値からの電流低下率が低かった。したがって、実施例１のグルコースセンサは、参考例１及び２のグルコースセンサと比較して耐湿度性が高いことが確認できた。
また、表１に示すように、実施例１のグルコースセンサは、４日暴露後であっても検体試料中のグルコース濃度に依存した電流値が測定できるといえる。

【0070】

［実施例２］
無機ゲル層１６の形成において、ルテニウム化合物（［Ｒｕ（ＮＨ₃）₆］Ｃｌ₃）をさらに含む無機ゲル形成液を使用し、酵素層１７の形成において、ＧＯＤに替えてＦＡＤ−ＧＤＨ（商品名「Glucose dehydrogenase(FAD-dependent)(GLD-351)」、東洋紡社製）を使用した以外は、実施例１と同様にしてグルコースセンサを作製した。
実施例２のグルコースセンサ１枚あたりの含有量は、ＦＡＤ−ＧＤＨ３Ｕ、１−ｍ−ＰＥＳ８０ｎｍｏｌ、ルテニウム化合物６０ｎｍｏｌであった。酵素単位１Ｕは、ＦＡＤ−ＧＤＨが１μｍｏｌのグルコースを３７℃、１分で酸化する酵素量を意味する。

【0071】

［参考例３］
１−ｍ−ＰＥＳに替えて１−ｍ−ＰＭＳを使用した以外は、実施例２と同様にしてグルコースセンサを作製した。
参考例３のグルコースセンサ１枚あたりの含有量は、ＦＡＤ−ＧＤＨ３Ｕ、１−ｍ−ＰＭＳ８０ｎｍｏｌ、ルテニウム化合物６０ｎｍｏｌであった。

【0072】

［再現性確認実験］
実施例２及び参考例３のグルコースセンサを、ポテンショスタットを用い、５秒２００ｍＶ連続印加で電圧を印加して電流値を測定した。検体試料としては、グルコース濃度を６７、１３４、３３６、８００又は１０００ｍｇ／ｄＬに調整した静脈全血（Ｈｃｔ４２％、ｐＯ₂７０ｍｍＨｇ）を使用した。その結果を図３Ａ及びＢに示す。

【0073】

［湿度暴露評価試験２］
実施例２及び参考例３のグルコースセンサを秤量皿の上に並べ、４０℃８０％ＲＨの恒温工室槽内で、１、４、８又は２４時間静置して暴露した。
暴露したグルコースセンサ及び未暴露のグルコースセンサを、ポテンショスタットを用い、５秒２００ｍＶ連続印加で電圧を印加して電流値を測定した。検体試料としては、グルコース濃度を６７、１３４又は３３６ｍｇ／ｄＬに調整した静脈全血（Ｈｃｔ４２％、ｐＯ₂７０ｍｍＨｇ）を使用した。その結果を図４Ａ〜Ｃに示す。

【0074】

図３Ａは、実施例２及び参考例３のグルコースセンサで得られたグルコース濃度と、グルコース／ラクテート・アナライザー（商品名：ＹＳＩ ２３００、ワイエスアイジャパン株式会社製）で測定したグルコース濃度との相関関係を示すグラフ（ｎ＝１０）の一例であり、図３Ｂは、実施例２及び参考例３のグルコースセンサの再現性を示すグラフ（ｎ＝１０）の一例である。図４Ａ〜Ｃは、未暴露のグルコースセンサの電流値とのバイアス（％）（｛（暴露したグルコースセンサの電流値）−（未暴露のグルコースセンサの電流値）｝／（未暴露のグルコースセンサの電流値）＊１００）と、暴露時間との関係を示すグラフの一例である（ｎ＝１０）。図４Ａ〜Ｃは、湿度暴露評価試験２の結果であり、それぞれ順にグルコース濃度が６７、１３４又は３３６ｍｇ／ｄＬの結果である。
図３Ａに示すように、実施例２のグルコースセンサは、参考例３のグルコースセンサと同程度のレベルでグルコース濃度を測定できた。図３Ｂに示すように、実施例２のグルコースセンサは、参考例３のグルコースセンサと同程度の再現性を示した。
図４Ａ〜Ｃに示すように、実施例２のグルコースセンサは、参考例３のグルコースセンサと比較して、電流値からの低下を抑制できた。図４Ｃに示すように、特に、グルコース濃度が高い検体試料の場合、その効果は顕著であった。上述の通り、実施例２には１−ｍ−ＰＥＳが添加され、参考例３に１−ｍ−ＰＭＳが添加されている以外は、同じ処方である。図４Ａ〜Ｃに示した湿度暴露評価試験の結果から、１−ｍ−ＰＥＳは１−ｍ−ＰＭＳと比較して、良好な耐湿度性を備えるといえる。また、ルテニウム化合物を添加したダブルメディエータ処方であっても、１−ｍ−ＰＥＳは、良好な耐湿度性を備えるといえる。

【0075】

［実施例３］
無機ゲル層１６及び酵素層１７を以下のようにして形成した以外は、実施例１と同様にしてラクテートセンサを作製した。
無機ゲル層１６は、合成スメクタイト（商品名「ルーセンタイトＳＷＮ」、コープケミカル社製）、ルテニウム化合物（［Ｒｕ（ＮＨ₃）₆］Ｃｌ₃）、酢酸ナトリウム、及びコハク酸を含む無機ゲル形成液（ｐＨ７．５）を調製し、この無機ゲル形成液を、検出部１５に分注し、３０℃で乾燥させることにより形成した。
酵素層１７は、ＬＯＤ（商品名「ＬＯＤ−２０１」、東洋紡社製）、１−ｍ−ＰＥＳ、ＡＣＥＳ緩衝液（ｐＨ７．５）を含む酵素液を調製した。この酵素液を、無機ゲル層１６上に分注し、３０℃で乾燥させて形成した。
実施例３のラクテートセンサ１枚あたりの含有量は、ＬＯＤ２Ｕ、１−ｍ−ＰＥＳ８０ｎｍｏｌ、ルテニウム化合物６０ｎｍｏｌであった。酵素単位１Ｕは、ＬＯＤが１μｍｏｌのグルコースを３７℃、１分で酸化する酵素量を意味する。

【0076】

［参考例４］
１−ｍ−ＰＥＳに替えて、１−ｍ−ＰＭＳを使用した以外は、実施例３と同様にしてラクテートセンサを作製した。参考例４のラクテートセンサ１枚あたりの含有量は、ＬＯＤ３Ｕ、１−ｍ−ＰＭＳ８０ｎｍｏｌ、ルテニウム化合物６０ｎｍｏｌであった。

【0077】

実施例３のラクテートセンサは、参考例４のラクテートセンサと同程度のレベルでラクテート濃度の測定できることを確認した。また、実施例３のラクテートセンサは、参考例４のラクテートセンサと同程度の再現性を示した。

【0078】

［湿度暴露評価試験３］
実施例３及び参考例４のラクテートセンサを秤量皿の上に並べ、５０℃８０％ＲＨの恒温工室槽内で、２又は３時間静置して暴露した。
暴露したラクテートセンサ及び未暴露のラクテートセンサを、ポテンショスタットを用い、７秒２００ｍＶ連続印加で電圧を印加して電流値を測定した。検体試料としては、ラクテート濃度を１０ｍｍｏｌ／Ｌに調整した静脈全血（Ｈｃｔ４２％、ｐＯ₂７０ｍｍＨｇ）を使用した。その結果を図５に示す。

【0079】

図５は、未暴露のラクテートセンサの電流値とのバイアス（％）（＝｛（暴露したラクテートセンサの電流値）−（未暴露のラクテートセンサの電流値）｝／（ラクテートセンサの電流値）＊１００）と、暴露時間との関係を示すグラフの一例である（ｎ＝５）。図５に示すように、実施例３のラクテートセンサは、参考例４のラクテートセンサと比較して、電流値からの低下を大幅に抑制できた。

【図1】

【図2】

【図3】

【図4】

【図5】