特許 6882453 全ゲノムデジタル増幅方法

(19)【発行国】日本国特許庁(JP)

(12)【公報種別】特許公報(B2)

(11)【特許番号】6882453

(24)【登録日】2021年5月10日

(45)【発行日】2021年6月2日

(54)【発明の名称】全ゲノムデジタル増幅方法

(51)【国際特許分類】

   C12Q 1/6844 20180101AFI20210524BHJP

   C12Q 1/686 20180101ALI20210524BHJP

   C12N 15/09 20060101ALN20210524BHJP

【ＦＩ】

   C12Q1/6844 Z

   C12Q1/686 Z

   !C12N15/09 Z

【請求項の数】26

【全頁数】41

(21)【出願番号】特願2019-511849(P2019-511849)

(86)(22)【出願日】2016年8月31日

(65)【公表番号】特表2019-531714(P2019-531714A)

(43)【公表日】2019年11月7日

(86)【国際出願番号】CN2016097520

(87)【国際公開番号】WO2018039969

(87)【国際公開日】20180308

【審査請求日】2019年8月30日

(73)【特許権者】

【識別番号】507044516

【氏名又は名称】プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ

(74)【代理人】

【識別番号】100079049

【弁理士】

【氏名又は名称】中島 淳

(74)【代理人】

【識別番号】100084995

【弁理士】

【氏名又は名称】加藤 和詳

(72)【発明者】

【氏名】シエ、 シャオリャン サニー

(72)【発明者】

【氏名】シン、 トン

(72)【発明者】

【氏名】チャン、 チ−ハン

【審査官】 田中 晴絵

(56)【参考文献】

【文献】 国際公開第２０１５／２００６０９（ＷＯ，Ａ１）

【文献】 特表２０１８−５２７９４７（ＪＰ，Ａ）

(58)【調査した分野】（Int.Cl.，ＤＢ名）

Ｃ１２Ｎ １５／００−１５／９０

Ｃ１２Ｑ １／６８ −１／７０

ＣＡｐｌｕｓ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＥＭＢＡＳＥ／ＢＩＯＳＩＳ／ＷＰＩＤＳ（ＳＴＮ）

(57)【特許請求の範囲】

【請求項1】

ゲノムＤＮＡをトランスポゾンＤＮＡに結合しているトランスポザーゼの複数の二量体に接触させること、ここで前記トランスポゾンＤＮＡは、トランスポザーゼ結合部位、任意に存在してもよいバーコード配列、及びプライマー結合部位を含み、前記複数の二量体は、二本鎖である前記ゲノムＤＮＡ上の標的部位に結合し、前記トランスポザーゼは、前記ゲノムＤＮＡをゲノムＤＮＡ断片ライブラリーを表す複数の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片に切断し、各二本鎖ゲノムＤＮＡ断片はそれぞれの５′末端に前記トランスポゾンＤＮＡが結合している、
前記トランスポゾンＤＮＡと前記二本鎖ゲノムＤＮＡ断片の間のギャップについてギャップフィリングを行って各末端にプライマー結合部位を有する二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物のライブラリーを形成すること、
油相内に複数の水性液滴のサブセットを作製すること、ここで前記サブセットの水性液滴はそれぞれ、前記ライブラリーの単一の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物及び増幅試薬を含む、
前記サブセットの水性液滴のそれぞれについて、前記水性液滴内の前記二本鎖ゲノムＤＮＡ断片を増幅して前記二本鎖ゲノムＤＮＡ断片のアンプリコンを前記水性液滴内で作製すること、ここで前記サブセットの全ての水性液滴で増幅が起こる、及び
前記サブセットの前記水性液滴内から前記アンプリコンを収集すること
を含む、ゲノム核酸を増幅する方法。

【請求項2】

前記ゲノムＤＮＡが単一の細胞から得られた全ゲノムＤＮＡである、請求項１に記載の方法。

【請求項3】

前記トランスポザーゼが、Ｔｎ５トランスポザーゼ、Ｍｕトランスポザーゼ、Ｔｎ７トランスポザーゼ、又はＩＳ５トランスポザーゼである、請求項１に記載の方法。

【請求項4】

前記トランスポゾンＤＮＡはバーコード配列を含む、請求項１に記載の方法。

【請求項5】

前記トランスポゾンＤＮＡはバーコード配列を含み、その５′末端に前記プライマー結合部位を有する、請求項１に記載の方法。

【請求項6】

前記トランスポゾンＤＮＡは、二本鎖１９ｂｐ Ｔｎｐ結合部位及びオーバーハングを含み、前記オーバーハングは、その５′末端にバーコード配列及びプライマー結合部位を含む、請求項１に記載の方法。

【請求項7】

ギャップフィリング及び前記二本鎖ゲノムＤＮＡ断片の伸長の前に、結合しているトランスポザーゼが前記二本鎖ゲノムＤＮＡ断片から除去される、請求項１に記載の方法。

【請求項8】

前記トランスポザーゼが、それぞれトランスポゾンＤＮＡと複合体を形成したＴｎ５トランスポザーゼであって、前記トランスポゾンＤＮＡが二本鎖１９ｂｐ Ｔｎｐ結合部位及びオーバーハングを含み、前記オーバーハングがバーコード配列及びプライマー結合部位を含む、請求項１に記載の方法。

【請求項9】

前記サブセットの前記水性液滴内から収集された前記アンプリコンを配列決定するステップをさらに含む、請求項１に記載の方法。

【請求項10】

前記サブセットの前記水性液滴内から収集された前記アンプリコン内の一塩基変異を検出するステップをさらに含む、請求項１に記載の方法。

【請求項11】

前記サブセットの前記水性液滴内から収集された前記アンプリコン内のコピー数変異を検出するステップをさらに含む、請求項１に記載の方法。

【請求項12】

前記サブセットの前記水性液滴内から収集された前記アンプリコン内の構造変異を検出するステップをさらに含む、請求項１に記載の方法。

【請求項13】

前記ゲノムＤＮＡが、出生前細胞に由来する、請求項１に記載の方法。

【請求項14】

前記ゲノムＤＮＡが、癌細胞に由来する、請求項１に記載の方法。

【請求項15】

前記ゲノムＤＮＡが、血中循環腫瘍細胞に由来する、請求項１に記載の方法。

【請求項16】

前記ゲノムＤＮＡが、単一の出生前細胞に由来する、請求項１に記載の方法。

【請求項17】

前記ゲノムＤＮＡが、単一の癌細胞に由来する、請求項１に記載の方法。

【請求項18】

前記ゲノムＤＮＡが、単一の血中循環腫瘍細胞に由来する、請求項１に記載の方法。

【請求項19】

前記ライブラリー内の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物の存在数以上の液滴を作製するように、二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物の前記ライブラリー及び増幅試薬を含む適量の水性媒体を油と組み合わせることで前記油相内に前記複数の水性液滴が作製される、請求項１に記載の方法。

【請求項20】

前記ライブラリーの二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物の存在数以上の液滴を作製するように、二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物の前記ライブラリー及び増幅試薬を含む適量の水性媒体を油と組み合わせることで前記油相内に前記複数の水性液滴が作製され、前記複数の水性液滴は自然発生的に生成する、請求項１に記載の方法。

【請求項21】

前記ライブラリー内の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物の存在数以上の液滴を作製するように、二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物の前記ライブラリー及び増幅試薬を含む適量の水性媒体を油と組み合わせることで前記油相内に前記複数の水性液滴が作製され、前記複数の水性液滴が前記油相及び前記水性媒体を激しく混合することによって作製される、請求項１に記載の方法。

【請求項22】

前記油相内の前記複数の水性液滴の前記サブセットが、マイクロ流体チップ内で前記油相及び水性媒体を組み合わせることで作製される、請求項１に記載の方法。

【請求項23】

前記サブセットの各水性液滴内における前記二本鎖ゲノムＤＮＡ断片の増幅が、マイクロ流体チップ内で実施される、請求項１に記載の方法。

【請求項24】

前記プライマー結合部位が、特異的ＰＣＲプライマー結合部位である、請求項１に記載の方法。

【請求項25】

前記サブセットの全ての液滴内で起こる増幅が、特異的プライマー配列を使用したＰＣＲ増幅である、請求項１に記載の方法。

【請求項26】

トランスポゾンＤＮＡに結合しているトランスポザーゼの複数の二量体で水性媒体中のゲノムＤＮＡを処理すること、ここで前記トランスポゾンＤＮＡは、トランスポザーゼ結合部位及び特異的ＰＣＲプライマー結合部位を含み、前記複数の二量体は、二本鎖である前記ゲノムＤＮＡ上の標的部位に結合し、前記トランスポザーゼは、前記ゲノムＤＮＡをゲノムＤＮＡ断片ライブラリーを表す複数の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片に切断し、各二本鎖ゲノムＤＮＡ断片はそれぞれの５′末端に前記トランスポゾンＤＮＡが結合している、
前記トランスポゾンＤＮＡと前記二本鎖ゲノムＤＮＡ断片の間のギャップについてギャップフィリングを行って各末端に特異的ＰＣＲプライマー結合部位を有する二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物のライブラリーを形成すること、
前記水性媒体を油相内における多数の水性液滴へと分割すること、ここで水性液滴はそれぞれ、単一の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片を含み、増幅試薬をさらに含む、
前記水性液滴のそれぞれについて、前記水性液滴内の前記二本鎖ゲノムＤＮＡ断片を増幅して前記二本鎖ゲノムＤＮＡ断片のアンプリコンを前記水性液滴内で作製すること、ここで全ての前記水性液滴で増幅が起こる、及び
前記水性液滴の解乳化によって前記水性液滴から前記アンプリコンを収集することを含む、ゲノム核酸を増幅する方法。

【発明の詳細な説明】

【技術分野】

【0001】

政府利益の説明
本発明は、米国国立衛生研究所による５ＤＰ１ＣＡ１８６６９３の国庫支援の下でなされた。米国政府は本発明に関して一定の権利を有する。

【0002】

本発明の実施形態は、概して、単一細胞に由来するＤＮＡなど、微量なＤＮＡを、その遺伝子配列、特にその全ゲノムを決定するために増幅するための方法及び組成物に関する。

【背景技術】

【0003】

腫瘍増殖、幹細胞の初期化、胚発生などの、細胞間での差異及び集団における不均一性が重要な役割を果たす研究において、単一細胞ゲノム配列決定の実行する能力が重要となる。単一細胞ゲノム配列決定は、配列決定に供される細胞試料が貴重である、又は希少若しくは微量な場合にも重要となる。正確な単一細胞ゲノム配列決定にとって重要なことは、微量であり得るゲノムＤＮＡの最初の増幅である。

【0004】

多置換増幅（ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｄｉｓｐｌａｃｅｍｅｎｔ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ）（ＭＤＡ）は、配列決定及び他の解析に先立ち、単一細胞由来のゲノムＤＮＡに対し、当該技術分野において一般に使用される方法である。この方法では、ランダムプライマーのアニーリングの後に、強力な鎖置換活性を有するＤＮＡポリメラーゼを利用した伸長が行われる。単一細胞由来の元のゲノムＤＮＡはカスケード様式で指数関数的に増幅され、超分岐型のＤＮＡ構造が形成される。単一細胞由来のゲノムＤＮＡを増幅する別の方法として、Ｚｏｎｇ，Ｃ．，Ｌｕ，Ｓ．，Ｃｈａｐｍａｎ，Ａ．Ｒ．，ａｎｄ Ｘｉｅ，Ｘ．Ｓ．（２０１２），Ｇｅｎｏｍｅ−ｗｉｄｅ ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ ｏｆ ｓｉｎｇｌｅ−ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ ａｎｄ ｃｏｐｙ−ｎｕｍｂｅｒ ｖａｒｉａｔｉｏｎｓ ｏｆ ａ ｓｉｎｇｌｅ ｈｕｍａｎ ｃｅｌｌ，Ｓｃｉｅｎｃｅ ３３８，１６２２−１６２６に、多重アニーリング及びループ化による増幅サイクル法（Ｍｕｌｔｉｐｌｅ Ａｎｎｅａｌｉｎｇ ａｎｄ Ｌｏｏｐｉｎｇ−Ｂａｓｅｄ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｃｙｃｌｅｓ）（ＭＡＬＢＡＣ）が記載されている。当該技術分野において知られている別の方法は、縮重オリゴヌクレオチドプライム化ＰＣＲ又はＤＯＰ−ＰＣＲである。単一細胞ゲノムＤＮＡに使用されるいくつかの他の方法としては、Ｃｈｅｕｎｇ，Ｖ．Ｇ．ａｎｄ Ｓ．Ｆ．Ｎｅｌｓｏｎ，Ｗｈｏｌｅ ｇｅｎｏｍｅ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｕｓｉｎｇ ａ ｄｅｇｅｎｅｒａｔｅ ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ ｐｒｉｍｅｒ ａｌｌｏｗｓ ｈｕｎｄｒｅｄｓ ｏｆ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ ｔｏ ｂｅ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｏｎ ｌｅｓｓ ｔｈａｎ ｏｎｅ ｎａｎｏｇｒａｍ ｏｆ ｇｅｎｏｍｉｃ ＤＮＡ，Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａ，１９９６．９３（２５）：ｐ．１４６７６−９；Ｔｅｌｅｎｉｕｓ，Ｈ．， ｅｔ ａｌ．，Ｄｅｇｅｎｅｒａｔｅ ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ−ｐｒｉｍｅｄ ＰＣＲ：ｇｅｎｅｒａｌ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｔａｒｇｅｔ ＤＮＡ ｂｙ ａ ｓｉｎｇｌｅ ｄｅｇｅｎｅｒａｔｅ ｐｒｉｍｅｒ，Ｇｅｎｏｍｉｃｓ，１９９２．１３（３）：ｐ．７１８−２５；Ｚｈａｎｇ，Ｌ．，ｅｔ ａｌ．，Ｗｈｏｌｅ ｇｅｎｏｍｅ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｆｒｏｍ ａ ｓｉｎｇｌｅ ｃｅｌｌ： ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｆｏｒ ｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙｓｉｓ． Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａ，１９９２，８９（１３）：ｐ．５８４７−５１；Ｌａｏ，Ｋ．，Ｎ．Ｌ．Ｘｕ，ａｎｄ Ｎ．Ａ．Ｓｔｒａｕｓ，Ｗｈｏｌｅ ｇｅｎｏｍｅ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｕｓｉｎｇ ｓｉｎｇｌｅ−ｐｒｉｍｅｒ ＰＣＲ，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｊｏｕｒｎａｌ，２００８，３（３）：ｐ．３７８−８２；Ｄｅａｎ，Ｆ．Ｂ．，ｅｔ ａｌ．，Ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ ｈｕｍａｎ ｇｅｎｏｍｅ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｕｓｉｎｇ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｄｉｓｐｌａｃｅｍｅｎｔ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ，Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａ，２００２．９９（８）：ｐ．５２６１−６；Ｌａｇｅ，Ｊ．Ｍ．，ｅｔ ａｌ．，Ｗｈｏｌｅ ｇｅｎｏｍｅ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｇｅｎｅｔｉｃ ａｌｔｅｒａｔｉｏｎｓ ｉｎ ｓｍａｌｌ ＤＮＡ ｓａｍｐｌｅｓ ｕｓｉｎｇ ｈｙｐｅｒｂｒａｎｃｈｅｄ ｓｔｒａｎｄ ｄｉｓｐｌａｃｅｍｅｎｔ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ ａｒｒａｙ−ＣＧＨ，Ｇｅｎｏｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２００３，１３（２）：ｐ．２９４−３０７； Ｓｐｉｔｓ，Ｃ．，ｅｔ ａｌ．，Ｏｐｔｉｍｉｚａｔｉｏｎ ａｎｄ ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｉｎｇｌｅ−ｃｅｌｌ ｗｈｏｌｅ−ｇｅｎｏｍｅ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｄｉｓｐｌａｃｅｍｅｎｔ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ，Ｈｕｍａｎ Ｍｕｔａｔｉｏｎ，２００６，２７（５）：ｐ．４９６−５０３；Ｇｏｌｅ，Ｊ．，ｅｔ ａｌ．，Ｍａｓｓｉｖｅｌｙ ｐａｒａｌｌｅｌ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ｃｌｏｎｉｎｇ ａｎｄ ｇｅｎｏｍｅ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｏｆ ｓｉｎｇｌｅ ｃｅｌｌｓ ｕｓｉｎｇ ｎａｎｏｌｉｔｅｒ ｍｉｃｒｏｗｅｌｌｓ，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２０１３．３１（１２）：ｐ．１１２６−３２；Ｊｉａｎｇ，Ｚ．，ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｏｍｅ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｉｎｇｌｅ ｓｐｅｒｍ ｕｓｉｎｇ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｄｉｓｐｌａｃｅｍｅｎｔ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２００５，３３（１０）：ｐ．ｅ９１；Ｗａｎｇ，Ｊ．，ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｏｍｅ−ｗｉｄｅ Ｓｉｎｇｌｅ−Ｃｅｌｌ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ Ａｃｔｉｖｉｔｙ ａｎｄ Ｄｅ Ｎｏｖｏ Ｍｕｔａｔｉｏｎ Ｒａｔｅｓ ｉｎ Ｈｕｍａｎ Ｓｐｅｒｍ，Ｃｅｌｌ，２０１２．１５０（２）：ｐ．４０２−１２；Ｎｉ，Ｘ．，Ｒｅｐｒｏｄｕｃｉｂｌｅ ｃｏｐｙ ｎｕｍｂｅｒ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｐａｔｔｅｒｎｓ ａｍｏｎｇ ｓｉｎｇｌｅ ｃｉｒｃｕｌａｔｉｎｇ ｔｕｍｏｒ ｃｅｌｌｓ ｏｆ ｌｕｎｇ ｃａｎｃｅｒ ｐａｔｉｅｎｔｓ，ＰＮＡＳ，２０１３，１１０，２１０８２−２１０８８；Ｎａｖｉｎ，Ｎ．，Ｔｕｍｏｒ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｉｎｆｅｒｒｅｄ ｂｙ ｓｉｎｇｌｅ ｃｅｌｌ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ，Ｎａｔｕｒｅ，２０１１，４７２（７３４１）：９０−９４；Ｅｖｒｏｎｙ，Ｇ．Ｄ．，ｅｔ ａｌ．，Ｓｉｎｇｌｅ−ｎｅｕｒｏｎ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｌ１ ｒｅｔｒｏｔｒａｎｓｐｏｓｉｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｏｍａｔｉｃ ｍｕｔａｔｉｏｎ ｉｎ ｔｈｅ ｈｕｍａｎ ｂｒａｉｎ，Ｃｅｌｌ，２０１２．１５１（３）：ｐ．４８３−９６；及びＭｃＬｅａｎ，Ｊ．Ｓ．，ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｏｍｅ ｏｆ ｔｈｅ ｐａｔｈｏｇｅｎ Ｐｏｒｐｈｙｒｏｍｏｎａｓ ｇｉｎｇｉｖａｌｉｓ ｒｅｃｏｖｅｒｅｄ ｆｒｏｍ ａ ｂｉｏｆｉｌｍ ｉｎ ａ ｈｏｓｐｉｔａｌ ｓｉｎｋ ｕｓｉｎｇ ａ ｈｉｇｈ−ｔｈｒｏｕｇｈｐｕｔ ｓｉｎｇｌｅ−ｃｅｌｌ ｇｅｎｏｍｉｃｓ ｐｌａｔｆｏｒｍ，Ｇｅｎｏｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２０１３．２３（５）：ｐ．８６７−７７が挙げられる。全ゲノム増幅の態様に関する方法は、国際公開第２０１２／１６６４２５号、米国特許第７，７１８，４０３号、米国特許出願公開第２００３／０１０８８７０号、及び米国特許第７，４０２，３８６号には、報告されている。

【0005】

しかしながら、単一細胞又は少数細胞などに由来する、少量のゲノムＤＮＡの増幅法が、さらに求められている。

【発明の概要】

【課題を解決するための手段】

【0006】

本開示は、トランスポザーゼ系を使用して、プライマー結合部位を含むゲノムＤＮＡの断片を作製すること、増幅試薬と共に各断片をそれ自身の水性微小液滴内に分離すること、それ自身の水性微小液滴内の各断片を増幅して前記微小液滴内の断片のアンプリコンを作製すること、及び各微小液滴から前記アンプリコンを収集し配列決定することを含む、ゲノムＤＮＡの均一な増幅などの全ゲノム増幅など、ゲノムＤＮＡ増幅のための方法を提供する。ある態様によれば、本開示は、トランスポザーゼ系を使用して、水性媒体中でゲノムＤＮＡの断片を作製すること、特異的ＰＣＲプライマー結合部位を各断片へ挿入又は結合させること、前記水性媒体を油中における多数の水性液滴へと分割すること、ここで液滴はそれぞれ、ＰＣＲ試薬と共に単一のＤＮＡ断片を含むこと、各液滴内の飽和が起こるまで、ＰＣＲによって前記液滴内の各断片を増幅すること、全ての前記液滴の解乳化、すなわち解乳化剤を使用して前記液滴を溶解して、例えば、アンプリコンを回収又は収集すること、及び前記アンプリコンの配列決定を行うことを含む、ゲノムＤＮＡの均一な増幅などの全ゲノム増幅など、ゲノムＤＮＡ増幅のための方法を提供する。

【0007】

ある態様によれば、トランスポザーゼ系を使用して、プライマー結合部位を含むゲノムＤＮＡの断片を作製すること、ＰＣＲ増幅試薬と共に各断片をそれ自身の水性微小液滴内に油中で分離すること、それ自身の水性微小液滴内の各断片を増幅すること、前記微小液滴を解乳化してアンプリコンを得ること、及び前記アンプリコンの配列決定をすることを含む、全ゲノム増幅などのゲノムＤＮＡ増幅のための方法が提供される。

【0008】

本開示の実施形態は、単一細胞由来、同一細胞型の複数の細胞由来、又は個体若しくは基質（ｓｕｂｓｔｒａｔｅ）から得られる組織試料、体液試料、若しくは血液試料由来の１つのゲノム配列若しくは複数のゲノム配列など、少量のゲノムＤＮＡ又は限られた量のＤＮＡなどのＤＮＡを増幅する方法に関する。本開示のある態様によれば、本明細書に記載の方法は、単一の反応混合物を含んだ単一のチューブ内で行うことができる。本開示のある態様によれば、核酸試料は、単一細胞由来の未精製又は未処理の溶解物内のものであってもよい。本明細書で開示される方法に供される核酸は、本明細書に記載される種々の条件下で種々の試薬との接触させる前に、カラム精製などによる精製を行う必要がない。本明細書に記載の方法は、ハイスループット配列決定のための増幅されたＤＮＡを産生する、単一細胞のゲノム全体の十分且つ均一なカバレッジを提供することができる。

【0009】

本発明の実施形態は、概して、ＤＮＡ断片、例えば単一細胞の全ゲノムからのＤＮＡ断片を作製するための方法及び組成物に関し、前記ＤＮＡ断片は次に当業者に公知の増幅法に供されてもよい。ある態様によれば、トランスポソームの一部としてトランスポザーゼが使用され、一連の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片が作製される。各々の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片は、該二本鎖ゲノムＤＮＡ断片を増幅するために使用される試薬と共に、微小液滴などの液滴内に分離される。二本鎖ゲノムＤＮＡ断片は、例えば、ＰＣＲ増幅などの当業者に公知の方法及び本明細書に記載の方法を使用して、液滴内で増幅される。したがって、各二本鎖ゲノムＤＮＡ断片が対応する液滴内に分離され、次に増幅されてアンプリコンが作製される方法が提供される。ある態様によれば、増幅反応が飽和する程度まで、前記液滴内の各断片が増幅される。各二本鎖ゲノムＤＮＡ断片が分離されて、飽和するまで増幅されるので、前記方法により、複数の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片が同じ反応体積内で増幅される場合に生じ得る増幅バイアスが低減又は排除される。

【0010】

ある態様によれば、本明細書に記載の核酸断片作製法はトランスポザーゼを利用する。トランスポザーゼは、二本鎖トランスポザーゼ結合部位と、バーコード配列及びプライミング部位のうちの１又は複数を含む第一の核酸配列とを含むトランスポゾンＤＮＡと複合体化されて、トランスポザーゼ／トランスポゾンＤＮＡ複合体を形成する。バーコード配列は、単一細胞又は細胞群を一意的に識別する核酸配列を含む。

【0011】

第一の核酸配列は一本鎖伸長物の形態であってもよい。ある態様によれば、トランスポザーゼは、反応器内又は反応容積内に置かれた場合など、トランスポゾンＤＮＡに接触した場合、トランスポゾンＤＮＡに結合して二量体化し、トランスポソームと称されるトランスポザーゼ／トランスポゾンＤＮＡ複合体二量体を形成する能力を有する。

【0012】

ある態様によれば、各トランスポソームは２つのトランスポザーゼ及び２つのトランスポゾンＤＮＡを含む。トランスポゾンＤＮＡは、トランスポザーゼ結合部位、任意に存在してもよいバーコード、及びプライマー結合部位を含む。ある態様によれば，トランスポゾンＤＮＡは、単一のトランスポザーゼ結合部位、トランスポゾンＤＮＡにバーコード、及びプライマー結合部位を有する。各トランスポゾンＤＮＡは、トランスポザーゼ結合部位でトランスポザーゼに結合している別個の核酸である。トランスポソームは、それぞれが特有のトランスポゾンＤＮＡに結合している２つの別個のトランスポザーゼの二量体である。ある態様によれば、トランスポソームは、それぞれが特有の対応するトランスポザーゼに結合している２つの別個で個別のトランスポゾンＤＮＡを含む。ある態様によれば、トランスポソームは、トランスポザーゼを２つのみとトランスポゾンＤＮＡを２つのみ含む。ある態様によれば、トランスポソームの一部としての２つのトランスポゾンＤＮＡは、それぞれが特有の対応するトランスポザーゼに結合している別個の、個別の、又は非結合のトランスポゾンＤＮＡである。例えば、本明細書に記載の別個で個別のトランスポゾンＤＮＡは、単一のトランスポゾン結合部位、任意のバーコード、及びプライマー結合部位を有する。

【0013】

トランスポソームは、二本鎖ゲノムＤＮＡなどの二本鎖核酸上の標的部位にランダムに結合し、トランスポソーム及び二本鎖ゲノムＤＮＡを含む複合体を形成する能力を有する。トランスポソーム内のトランスポザーゼは、一方のトランスポザーゼが上側鎖を切断し、もう一方のトランスポザーゼが下側鎖を切断することにより、二本鎖ゲノムＤＮＡを切断する。トランスポソーム内のトランスポゾンＤＮＡは、切断部位において二本鎖ゲノムＤＮＡに結合する。したがって、トランスポソームは、転位、つまりトランスポゾンＤＮＡの挿入及び断片の作製に使用される。ある態様によれば、複数のトランスポザーゼ／トランスポゾンＤＮＡ複合体二量体が、例えば二本鎖ゲノムＤＮＡ上の対応する複数の標的部位に結合し、次いで二本鎖ゲノムＤＮＡを複数の二本鎖断片に切断し、各断片は二本鎖断片のそれぞれの末端に結合したトランスポゾンＤＮＡを有する。ある態様によれば、トランスポゾンＤＮＡは二本鎖ゲノムＤＮＡに結合又は二本鎖ゲノムＤＮＡ中に挿入され、ゲノムＤＮＡの一方の鎖とトランスポゾンＤＮＡの一方の鎖との間には一本鎖のギャップが存在する。ある態様によれば、ギャップの伸長が実行されてギャップが埋められ、二本鎖ゲノムＤＮＡと二本鎖トランスポゾンＤＮＡとの間に二本鎖の連結が作成される。ある態様によれば、二本鎖断片の各末端にトランスポゾンＤＮＡのトランスポザーゼ結合部位が結合している。ある態様によれば、二本鎖断片の各末端に結合しているトランスポゾンＤＮＡにトランスポザーゼが結合している。ある態様によれば、二本鎖ゲノムＤＮＡ断片の各末端に結合しているトランスポゾンＤＮＡからトランスポザーゼが除去される。

【0014】

本開示のある態様によれば、二本鎖ゲノムＤＮＡ断片のそれぞれの末端に結合したトランスポゾンＤＮＡを有するトランスポザーゼによって生成された二本鎖ゲノムＤＮＡ断片は、その後、トランスポゾンＤＮＡを鋳型として用いてギャップが埋められ伸長される。したがって、二本鎖ゲノムＤＮＡ断片、及び二本鎖ゲノムＤＮＡの各末端にプライマー結合部位を含む二本鎖トランスポゾンＤＮＡを含む、二本鎖核酸伸長産物が生成される。ある態様によれば、二本鎖ゲノムＤＮＡの各末端のプライマー結合部位は、同一の配列を有する。

【0015】

次いで、ゲノムＤＮＡ断片を含む二本鎖核酸伸長産物を、当業者に公知のエマルジョン液滴法によって、又は自然発生的に、若しくは別の方法で、微小液滴の作製のために油相を水相と混合することによって作製可能な微小液滴などの液滴中に、当業者に公知の増幅試薬と共に分離する。ある態様によれば、各液滴は、１つの二本鎖核酸伸長産物、つまり関連するプライマー結合部位を有する１つの二本鎖ゲノム核酸断片、及び増幅試薬を含み、次いで、二本鎖ゲノム核酸断片をＰＣＲなどの当業者に公知の方法を用いて増幅することにより、二本鎖ゲノム核酸断片のアンプリコンを作製してもよい。ある態様によれば、液滴溶解などによって、各液滴からのアンプリコンが放出され、当業者に公知の方法を用いた配列決定などのさらなる分析のために収集され、必要に応じて、断片配列及び関連バーコード配列が同定される。収集したアンプリコンをさらなる分析の前に精製してもよい。

【0016】

本開示の実施形態は、単一細胞由来、同一細胞型の複数の細胞由来、又は個体若しくは基質から得られる組織試料、体液試料、若しくは血液試料由来の１つのゲノム配列若しくは複数のゲノム配列など、少量のゲノムＤＮＡ又は限られた量のＤＮＡなどのＤＮＡを、本明細書に記載の方法を用いて増幅する方法に関する。本開示のある態様によれば、本明細書に記載の方法を単一チューブ内で実行することで断片を作製することができ、次に該断片は微小液滴内に分離されて該微小液滴内で増幅され、微小液滴からアンプリコンが収集されることになる。「液滴」又は「微小液滴」という用語は、本明細書では互換的に使用され得る。本明細書に記載の方法により、同一の反応混合物内で多くの断片が一緒に増幅される従来技術の増幅方法に関連する増幅バイアスが、回避、阻害、防止、又は低減される。本明細書に記載の方法は、ハイスループット配列決定のための増幅されたＤＮＡを産生する、単一細胞のゲノム全体の十分なカバレッジを提供することができる。

【0017】

さらなる態様によれば、本明細書では、当業者に公知のハイスループット配列決定プラットフォームを用いたさらなる配列決定又は解析に有用な、ゲノム内の様々な遺伝子座において高い忠実度（フィデリティ）及び増幅均一性又はカバレッジで、単一細胞の全ゲノム増幅を実行するための方法が提供される。より均一な全ゲノム増幅によって、通常は、より高い全ゲノムカバレッジがもたらされる。カバレッジは、増幅後に保存可能な単一細胞ゲノムＤＮＡの割合を表す。例えば、５０％カバレッジとは、単一細胞の全ゲノム増幅の処理中に遺伝物質の半分が失われたことを意味する。本明細書において提供される方法は、損失及び増幅バイアスを最小化し、単一細胞由来のゲノムＤＮＡのＤＮＡ配列決定の実質的に完全な又は完全なゲノムカバレッジを提供する。本明細書に記載の方法は、単一細胞由来のゲノムＤＮＡの９０％超、９５％超、９６％超、９７％超、９８％超、又は９９％超を増幅することができ、一方でゲノムＤＮＡの７０％又は７５％超を、７倍、１０倍、１５倍、又は３０倍の配列深度で、ほとんどキメラ配列がなく、極めてキメラ配列が少なく、又はキメラ配列を生じずに、配列決定することができる。

【0018】

本開示の方法の態様は、対立遺伝子ドロップアウト率（ａｌｌｅｌｅ ｄｒｏｐ−ｏｕｔ ｒａｔｅ（ＡＤＯ））を改善する。ヒトゲノムは二倍体ゲノムであり、これは２３染色体のそれぞれに２つのコピーがあること、各染色体につき１つの母性コピー及び１つの父性コピーがあることを意味する。ＡＤＯは、母性コピー及び父性コピーの不均一な増幅から生じる。ヒトの単一細胞がヘテロ接合変異を有する場合、２つの対立遺伝子のうちの一方における増幅の欠如によりＡＤＯが生じ、これは単一細胞ＳＮＶコーリングの偽陰性の主な原因となる。ＡＤＯは、単一細胞内の未検出ＳＮＶと実際のヘテロ接合性ＳＮＶの比率によって測定される。本明細書に記載のインビトロ転位及びエマルジョン液滴増幅方法は、対立遺伝子ドロップアウト率を低下させる。

【0019】

本明細書に記載の方法は、シークエンシングアーチファクト（ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ａｒｔｉｆａｃｔ）の生成を低減又は排除し、単一細胞の一塩基多型、コピー数変異、及び構造変異の高度なゲノム解析を促進する。本明細書に記載の方法は、特に、腫瘍及び神経塊などの高度に不均一な細胞集団を特徴とする生物系又は組織試料において応用されている。本明細書に記載のゲノムＤＮＡの増幅方法は、当業者に公知であり且つ本明細書に記載される次世代シーケンシング技術を用いた、そのような増幅されたＤＮＡの解析を促進する。

【0020】

本開示のＤＮＡ増幅法は、少量又は限られた量のＤＮＡの増幅に有用であり、これにより、ハイスループットスクリーニングのためのＤＮＡ試料における複数の部位の遺伝子型判定が可能になる。さらに、本方法は、任意の染色体領域のバンド特異的な彩色プローブ（ｐａｉｎｔｉｎｇ ｐｒｏｂｅ）を迅速に構築することを可能にし、また、異常核型における識別不能な染色体領域又はマーカー染色体を顕微解剖し増幅することにも使用し得る。本開示の方法は、ＤＮＡライブラリーを配列決定又は作製するための、増幅ＤＮＡの迅速なクローニングも可能にする。すなわち、前記方法は、遺伝子型解析及びハイスループットスクリーニングに役立つツールとなるだけでなく、細胞遺伝学的診断においても役立つツールとなるはずである。本明細書に記載の方法は、遺伝的に不均一な組織（例えば、癌）、希少且つ貴重な試料（例えば胚性幹細胞）、及び非分裂細胞（例えば、ニューロン）などを含む、ＤＮＡ材料の種々の供給源、並びに、当業者に公知の配列決定プラットフォーム及び遺伝子型判定法を利用することができる。

【0021】

本開示の特定の実施形態のその他の特徴及び利点は、以下の実施形態及びその図面の説明において、並びに特許請求の範囲から、より十分に理解されることになる。

【0022】

本発明の前述した特徴及びその他の特徴、並びに利点は、添付の図面と共に、具体的実施形態についての以下の詳細な説明からより十分に理解されるであろう。

【図面の簡単な説明】

【0023】

【図1】トランスポソームの形成、ゲノムＤＮＡの断片化及びトランスポゾンの挿入、並びに微小液滴の形成の概略図であり、各微小液滴は１つのゲノムＤＮＡ断片及び増幅試薬を含み、各液滴内で増幅されてアンプリコンを生成する。

【図2】バーコードを有するか又はバーコードを有しない線状の５′伸長を有するトランスポゾンＤＮＡの構造を概略的に示す。Ｔは二本鎖トランスポザーゼ結合部位であり、Ｐは伸長部の一端におけるプライミング部位であり、Ｂはバーコード配列である。

【図3】トランスポゾンＤＮＡ及びトランスポソーム形成の一実施形態の概略図である。

【図4】トランスポソームのゲノムＤＮＡへの結合、断片への分割、及びトランスポゾンＤＮＡの付加又は挿入の概略図である。

【図5】ゲノムＤＮＡを含む核酸伸長産物を形成するための、トランスポザーゼの除去、ギャップフィリング（ｇａｐ ｆｉｌｌｉｎｇ）、及び伸長の概略図である。

【図6】トランスポソーム断片化法及び微小液滴内の個々の断片それぞれの増幅により生じるＤＮＡ断片サイズ分布を示すグラフであり、その方法は本明細書では「ＤＩＡＮＴＩ」と呼ばれることがある。

【図7】トランスポソーム断片化法及び微小液滴内の個々の断片それぞれの増幅を用いて増幅された３つの単一ヒト細胞の配列決定読み取り深度データのグラフである。

【発明を実施するための形態】

【0024】

ある実施形態の実施又はある実施形態の特徴には、特に記載がない限り、当該技術分野において通常の技術範囲内にある、分子生物学、微生物学、及び組換えＤＮＡなどの従来技術が用いられてよい。そのような技術は、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｆｒｉｔｓｃｈ，ａｎｄ Ｍａｎｉａｔｉｓ，ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＣＬＯＮＩＮＧ：Ａ ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ ＭＡＮＵＡＬ，Ｓｅｃｏｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ（１９８９）， ＯＬＩＧＯＮＵＣＬＥＯＴＩＤＥ ＳＹＮＴＨＥＳＩＳ （Ｍ．Ｊ．Ｇａｉｔ Ｅｄ．，１９８４），ＡＮＩＭＡＬ ＣＥＬＬ ＣＵＬＴＵＲＥ（Ｒ．Ｉ．Ｆｒｅｓｈｎｅｙ，Ｅｄ．，１９８７），ＭＥＴＨＯＤＳ ＩＮ ＥＮＺＹＭＯＬＯＧＹシリーズ（Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．）；ＧＥＮＥ ＴＲＡＮＳＦＥＲ ＶＥＣＴＯＲＳ ＦＯＲ ＭＡＭＭＡＬＩＡＮ ＣＥＬＬＳ（Ｊ．Ｍ．Ｍｉｌｌｅｒ ａｎｄ Ｍ．Ｐ．Ｃａｌｏｓ ｅｄｓ．１９８７），ＨＡＮＤＢＯＯＫ ＯＦ ＥＸＰＥＲＩＭＥＮＴＡＬ ＩＭＭＵＮＯＬＯＧＹ，（Ｄ．Ｍ．Ｗｅｉｒ ａｎｄ Ｃ．Ｃ．Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ，Ｅｄｓ．），ＣＵＲＲＥＮＴ ＰＲＯＴＯＣＯＬＳ ＩＮ ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＢＩＯＬＯＧＹ（Ｆ．Ｍ．Ａｕｓｕｂｅｌ，Ｒ．Ｂｒｅｎｔ，Ｒ．Ｅ．Ｋｉｎｇｓｔｏｎ，Ｄ．Ｄ．Ｍｏｏｒｅ，Ｊ．Ｇ．Ｓｉｅｄｍａｎ，Ｊ．Ａ．Ｓｍｉｔｈ，ａｎｄ Ｋ．Ｓｔｒｕｈｌ，ｅｄｓ．，１９８７），ＣＵＲＲＥＮＴ ＰＲＯＴＯＣＯＬＳ ＩＮ ＩＭＭＵＮＯＬＯＧＹ （Ｊ．Ｅ．ｃｏｌｉｇａｎ，Ａ．Ｍ．Ｋｒｕｉｓｂｅｅｋ，Ｄ．Ｈ．Ｍａｒｇｕｌｉｅｓ，Ｅ．Ｍ．Ｓｈｅｖａｃｈ ａｎｄ Ｗ．Ｓｔｒｏｂｅｒ，ｅｄｓ．，１９９１）；ＡＮＮＵＡＬ ＲＥＶＩＥＷ ＯＦ ＩＭＭＵＮＯＬＯＧＹ；並びにＡＤＶＡＮＣＥＳ ＩＮ ＩＭＭＵＮＯＬＯＧＹなどの学術誌中の研究論文などの文献において十分に説明されている。本明細書において言及された前述及び後述の、全ての特許、特許出願、及び刊行物は、参照により本明細書に取り込まれる。

【0025】

本明細書で使用される核酸化学、生化学、遺伝学、及び分子生物学の用語及び符号は、当該分野においてスタンダードな論文及び教科書、例えば、Ｋｏｒｎｂｅｒｇ ａｎｄ Ｂａｋｅｒ，ＤＮＡ Ｒｅｐｌｉｃａｔｉｏｎ，Ｓｅｃｏｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ（Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１９９２）；Ｌｅｈｎｉｎｇｅｒ， Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｓｅｃｏｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ（Ｗｏｒｔｈ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１９７５）；Ｓｔｒａｃｈａｎ ａｎｄ Ｒｅａｄ，Ｈｕｍａｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ，Ｓｅｃｏｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ（Ｗｉｌｅｙ−Ｌｉｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， １９９９）；Ｅｃｋｓｔｅｉｎ，ｅｄｉｔｏｒ，Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ ａｎｄ Ａｎａｌｏｇｓ：Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ（Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１９９１）；Ｇａｉｔ，ｅｄｉｔｏｒ，Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ：Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ（ＩＲＬ Ｐｒｅｓｓ，Ｏｘｆｏｒｄ，１９８４）などの用語及び符号に従うものとする。

【0026】

本発明は、部分的には、トランスポザーゼ又はトランスポソームを使用して、各ＤＮＡ断片鋳型を対応する微小液滴内に分離し、すなわち単一のＤＮＡ断片を１つの微小液滴内に分離し、各ＤＮＡ断片鋳型を対応する微小液滴内で、すなわち他のＤＮＡフラグメント鋳型なしで、増幅することによりアンプリコンを作製する、ゲノムＤＮＡからなどのＤＮＡ断片鋳型作製法の発見に基づいている。ある態様によれば、微小液滴は、増幅のための単一のＤＮＡ断片鋳型を含む。各ＤＮＡ断片鋳型のアンプリコンは、液滴から収集され配列決定され得る。収集されたアンプリコンはゲノムＤＮＡ断片のアンプリコンのライブラリーを形成する。

【0027】

ある態様によれば、溶解した単一細胞から得られるゲノム核酸などのゲノムＤＮＡが得られる。それぞれがトランスポザーゼ結合部位及び特異的プライマー結合部位を有するトランスポゾンＤＮＡとトランスポゾンＤＮＡに結合したトランスポザーゼとの二量体である複数のトランスポソームを使用して、ゲノムＤＮＡを二本鎖断片に切断し、ここで、トランスポゾンＤＮＡは各二本鎖断片の上側鎖及び下側鎖に結合することになる。前記特異的プライマー結合部位は、各フラグメントを増幅するために単一のプライマー配列のみが必要とされるようにプライマー結合部位配列が同じである限り「特異的」である。次いで、プライマー結合部位が結合した二本鎖ＤＮＡ断片を処理してギャップを埋め、液滴形成領域を有するマイクロ流体デバイスを使用して、液滴あたり１つのＤＮＡ断片となるように増幅試薬と共に微小液滴にロードする。

【0028】

ある態様によれば、作製された液滴の数はＤＮＡ断片の数を超えているので、１つの液滴中には１つのＤＮＡ断片しか分離されない。水相の液滴を作製する方法は当業者に公知である。本開示のこの態様は、各液滴が液滴内での増幅のために単一のＤＮＡ断片を分離するので、増幅中のＤＮＡ断片間の競合が排除される。トランスポゾン結合部位及びプライミング部位を標的とする特異的プライマーをＤＮＡポリメラーゼと共に使用して、全体で全ゲノムＤＮＡに等しくなるように各断片を増幅する。増幅後、液滴は溶解され、増幅産物はさらなる分析のために集められる。

【0029】

ある態様によれば、トランスポゾン系と微小液滴増幅法との組み合わせにより、ゲノムＤＮＡ、例えば単一細胞から得られた全ゲノムの均一な増幅がもたらされる。インビトロ転位は、縮重オリゴヌクレオチドの使用を回避するためにゲノムＤＮＡ断片に特定のプライミング部位を付加するために使用される。本態様では、同じプライマー配列を用いて全ゲノムの各断片が増幅される。例示的な方法では、増幅前に微小液滴を使用して単一細胞のゲノムＤＮＡ断片を物理的に分離することによって増幅中の異なる断片間の競合を排除し、均一な全ゲノム増幅がもたらされる。

【0030】

示されるように、本明細書に記載のトランスポザーゼ法を使用して作製されたＤＮＡ断片鋳型は、当業者に公知の方法を使用して微小液滴内で増幅され得る。微小液滴は、油相と水相のエマルジョンとして形成され得る。エマルジョンは、連続油相内に水性液滴又は分離された水性体積を含み得る。エマルジョン全ゲノム増幅法は、単一細胞のゲノムの均一な増幅のために、油中で少容量の水性液滴を使用して各断片を分離することが記載されている。各断片をそれ自身の液滴又は分離された水性反応体積に分配することによって、各液滴はＤＮＡ増幅の飽和に達することが可能になる。次いで、各液滴内のアンプリコンは解乳化によって混合（ｍｅｒｇｅ）され、その結果、単一細胞の全ゲノムの全断片の均一な増幅がもたらされる。

【0031】

いくつかの態様では、ＰＣＲを用いて増幅が達成される。ＰＣＲは、上流プライマー及び下流プライマーからなる一対又は一組のプライマー、及びＤＮＡポリメラーゼ、典型的には熱安定性ポリメラーゼ酵素などの重合触媒を用いて、標的ポリヌクレオチドから複製コピーを作製する反応である。ＰＣＲ法は当該技術分野において周知であり、例えば、ＭａｃＰｈｅｒｓｏｎ ｅｔ ａｌ．（１９９１），ＰＣＲ １：Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ（ＩＲＬ Ｐｒｅｓｓ ａｔ Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ）に教示されている。Ｍｕｌｌｉｓ（米国特許第４，６８３，１９５号、同第４，６８３，２０２号、及び同第４，９６５，１８８号）による「ポリメラーゼ連鎖反応」（「ＰＣＲ」）という用語は、クローニング又は精製をせずに、標的配列のセグメントの濃度を増加させる方法を指す。この標的配列を増幅するプロセスは、所望の標的配列を有するオリゴヌクレオチドプライマー及び増幅試薬を提供し、続いてポリメラーゼ（例えばＤＮＡポリメラーゼ）の存在下で正確な一連の温度サイクルを行うことを含む。プライマーは、二本鎖標的配列の各々の鎖（「プライマー結合配列」）に相補的である。増幅を実行するために、二本鎖標的配列を変性し、次いでプライマーを標的分子内のそれらの相補的配列にアニーリングする。アニーリング後、新たな相補鎖対の形成のために、プライマーがポリメラーゼにより伸長される。変性、プライマーアニーリング、及びポリメラーゼ伸長のステップを何度も繰り返し（すなわち、変性、アニーリング、及び伸長は１つの「サイクル」を構成し、多数の「サイクル」があり得る）、所望の標的配列の高濃度に増幅されたセグメントを得ることができる。所望の標的配列の増幅セグメントの長さはお互いのプライマーの相対位置によって決定されるため、この長さは調節可能なパラメーターである。前記プロセスの反復的な態様に基づいて、前記方法は「ポリメラーゼ連鎖反応」（以後「ＰＣＲ」）と称され、標的配列は「ＰＣＲ増幅された」と言われる。二本鎖ＤＮＡ増幅産物がＤＮＡポリメラーゼの活性が阻害される量まで蓄積すると、ＰＣＲ増幅は飽和状態に達する。一旦飽和すると、ＰＣＲ増幅はプラトーに達し、さらなるＰＣＲサイクルによって増幅産物が増加することはない。

【0032】

ＰＣＲを用いて、ゲノムＤＮＡ中の単一コピーの特定の標的配列を、いくつかの種々の方法論（例えば、標識プローブを用いたハイブリダイゼーション；ビオチン化プライマーの取り込み及びそれに続くアビジン／酵素複合体の検出；ｄＣＴＰ又はｄＡＴＰなどの３２Ｐ標識デオキシヌクレオチド三リン酸の増幅セグメント内への取り込み）により、検出可能なレベルにまで増幅することが可能である。適切なプライマー分子セットを用いることで、ゲノムＤＮＡだけでなく、任意のオリゴヌクレオチド配列又はポリヌクレオチド配列が増幅可能である。特に、各微小液滴内でＰＣＲプロセス自体によって作製された増幅セグメントは、それら自体、その後のＰＣＲ増幅のための効率的な鋳型となる。ＰＣＲを実行するための方法及びキットは当該技術分野において周知である。本明細書では、ＰＣＲ又は遺伝子クローニングなど、ポリヌクレオチドの複製コピーを生成するプロセスは全て、一括して複製と称される。プライマーは、サザンブロット解析又はノーザンブロット解析などのハイブリダイゼーション反応におけるプローブとして使用することもできる。

【0033】

「増幅」又は「増幅する」という表現は、特定のポリヌクレオチドの余分な又は複数のコピーが形成されるプロセスを指す。増幅には、ＰＣＲ、ライゲーション増幅（（又はリガーゼ連鎖反応、ＬＣＲ）、及び他の増幅法などの方法が含まれる。これらの方法は当該技術分野において公知であり、広く実施されている。例えば、米国特許第４，６８３，１９５号及び同第４，６８３，２０２号、並びにＩｎｎｉｓ ｅｔ ａｌ．，“ＰＣＲ ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ：ａ ｇｕｉｄｅ ｔｏ ｍｅｔｈｏｄ ａｎｄ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ”Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｅｄ（１９９０）（ＰＣＲに関して）；及びＷｕ ｅｔ ａｌ．（１９８９）Ｇｅｎｏｍｉｃｓ ４：５６０−５６９ （ＬＣＲに関して）を参照されたい。一般に、ＰＣＲ手順は、（ｉ）ＤＮＡ試料（又はライブラリー）内の特定の遺伝子に対するプライマーの配列特異的ハイブリダイゼーション、（ｉｉ）続いて、ＤＮＡポリメラーゼを用いた、複数サイクルのアニーリング、伸長、及び変性を含む増幅、並びに、（ｉｉｉ）正しいサイズのバンドについてのＰＣＲ産物のスクリーニングから構成される遺伝子増幅法を表す。使用されるプライマーは、重合を開始させるために十分な長さ及び適切な配列を有するオリゴヌクレオチドであり、すなわち、各プライマーは、増幅されるゲノム遺伝子座の各々の鎖に相補的となるように特異的に設計されている。

【0034】

増幅反応を行うための試薬及びハードウェアは市販されている。特定の遺伝子領域からの配列を増幅するために有用なプライマーは、標的領域又はその隣接領域の配列に相補的であり、且つそれに特異的にハイブリダイズすることが好ましく、当業者に公知の方法を使用して調製可能である。増幅によって作製された核酸配列は直接配列決定することができる。

【0035】

ハイブリダイゼーションが２本の一本鎖ポリヌクレオチド間で逆平行（ａｎｔｉｐａｒａｌｌｅｌｅ）の立体配置で生じる場合、その反応は「アニーリング」とよばれ、それらのポリヌクレオチドは「相補的である」と記載される。二本鎖ポリヌクレオチドは、第一のポリヌクレオチドの一方の鎖と第二のポリヌクレオチドの一方の鎖との間でハイブリダイゼーションが起こり得る場合に、別のポリヌクレオチドに対して相補的又は別のポリヌクレオチドと相同であり得る。相補性又は相同性（あるポリヌクレオチドが別のポリヌクレオチドと相補的である程度）は、一般に認められている塩基対合規則に従って、互いに水素結合を形成すると予想される対向する鎖中の塩基の割合に関して定量化可能である。

【0036】

「ＰＣＲ産物」、「ＰＣＲ断片」、及び「増幅産物」という用語は、変性、アニーリング、及び伸長のＰＣＲステップが２サイクル以上完了した後に得られる化合物の混合物を指す。これらの用語は、１又は複数の標的配列の１又は複数のセグメントの増幅が起こった場合も包含する。本開示のある態様によれば、各微小液滴は単一の鋳型ＤＮＡ断片のＰＣＲ産物を含む。

【0037】

用語「増幅試薬」は、プライマー、核酸鋳型、及び増幅酵素以外の増幅に必要な試薬（デオキシリボヌクレオチド三リン酸、緩衝液など）を指す。通常、増幅試薬は他の反応成分と共に、反応器（試験管、マイクロウェルなど）内に添加及び含有される。増幅法には、当業者に公知のＰＣＲ法が含まれ、また、ローリングサークル増幅（Ｂｌａｎｃｏ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２６４，８９３５−８９４０，１９８９）、超分岐ローリングサークル増幅（Ｌｉｚａｒｄ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔ．Ｇｅｎｅｔｉｃｓ，１９，２２５−２３２，１９９８）、及びループ介在等温増幅（Ｎｏｔｏｍｉ ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．，２８，ｅ６３，２０００）も含まれ、それぞれの文献は参照によりその全体が本明細書に取り込まれる。

【0038】

エマルジョンＰＣＲでは、「油中水滴型」混合物を激しく振盪又は撹拌し、数百万個のミクロンサイズの水性コンパートメントを生成することにより、エマルジョンＰＣＲ反応が生じる。マイクロ流体チップは、油相及び水相を振盪又は撹拌することによってエマルジョンを作製するためのデバイスを備えていてもよい。あるいは、水性液滴は、特定の油を水相と混合すること、又は水相を油相に導入することによって、自然発生的に形成されてもよい。増幅されるＤＮＡライブラリーは、乳化前に限界希釈で混合される。コンパートメントサイズ、すなわち微小液滴サイズ、及び増幅されるＤＮＡ断片ライブラリーの限界希釈を作製する微小液滴の量の組み合わせは、平均して、単一のＤＮＡ分子を含有するコンパートメントを生成するために使用される。微小液滴形成又は乳化ステップ中に生成される水性コンパートメントのサイズに応じて、１μｌあたり最大３×１０^９回の個別のＰＣＲ反応が同一チューブ内で同時に実施可能である。本質的に、エマルジョン中の小さな水性コンパートメント微小液滴のそれぞれが微小なＰＣＲリアクタを形成する。エマルジョン中のコンパートメントの平均サイズは、乳化条件によるが、直径が１ミクロン未満から１００ミクロン超まで、１ピコリットルから１０００ピコリットルまで、１ナノリットルから１０００ナノリットルまで、１ピコリットルから１ナノリットルまで、又は１ピコリットルから１０００ナノリットルまでの範囲である。

【0039】

本開示においては、それぞれが参照により本明細書に取り込まれる、英国特許出願第ＧＢ２，２０２，３２８号及びＰＣＴ特許出願第ＰＣＴ／ＵＳ８９／０１０２５号に記載されるような他の増幅法を使用してもよい。前記英国特許出願では、ＰＣＲ様の鋳型及び酵素に依存的な合成に、「改変型」プライマーが使用されている。前記プライマーは、捕捉部分（例えば、ビオチン）及び／又は検出部分（例えば、酵素）で標識することによって改変されてもよい。前記ＰＣＴ特許出願では、過剰な標識プローブが試料に添加される。標的配列の存在下で、プローブが結合して酵素により切断される。切断後、標的配列は完全なまま遊離し、過剰なプローブに結合される。標識プローブの切断によって標的配列の存在が示される。

【0040】

その他の好適な増幅法としては、ＲＡＣＥ及び「片側ＰＣＲ（ｏｎｅ−ｓｉｄｅｄ ＰＣＲ）」（それぞれが参照により本明細書に取り込まれるＦｒｏｈｍａｎ，Ｉｎ：ＰＣＲ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ：Ａ Ｇｕｉｄｅ Ｔｏ Ｍｅｔｈｏｄｓ Ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｎ．Ｙ．，１９９０）が挙げられる。結果として生成される「ジ−オリゴヌクレオチド」の配列を有する核酸の存在下で、２つ（以上）のオリゴヌクレオチドをライゲーションすることでジ−オリゴヌクレオチドを増幅することに基づいた方法も、本開示によるＤＮＡ増幅に使用され得る（参照により本明細書に取り込まれる、Ｗｕ ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｏｍｉｃｓ ４：５６０−５６９，１９８９）。

【0041】

ある態様によれば、トランスポゾン系の例としては、Ｔｎ５トランスポザーゼ、Ｍｕトランスポザーゼ、Ｔｎ７トランスポザーゼ、又はＩＳ５トランスポザーゼなどが挙げられる。その他の有用なトランスポゾン系は当業者に公知であり、Ｔｎ３トランスポゾン系（Ｍａｅｋａｗａ，Ｔ．，Ｙａｎａｇｉｈａｒａ，Ｋ．，ａｎｄ Ｏｈｔｓｕｂｏ，Ｅ．（１９９６），Ａ ｃｅｌｌ−ｆｒｅｅ ｓｙｓｔｅｍ ｏｆ Ｔｎ３ ｔｒａｎｓｐｏｓｉｔｉｏｎ ａｎｄ ｔｒａｎｓｐｏｓｉｔｉｏｎ ｉｍｍｕｎｉｔｙ，Ｇｅｎｅｓ Ｃｅｌｌｓ １，１００７−１０１６参照）、Ｔｎ７トランスポゾン系（Ｃｒａｉｇ，Ｎ．Ｌ．（１９９１），Ｔｎ７：ａ ｔａｒｇｅｔ ｓｉｔｅ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｔｒａｎｓｐｏｓｏｎ，Ｍｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．５，２５６９−２５７３参照）、Ｔｎ１０トランスポゾン（ｔｒａｎｐｏｓｏｎ）系（Ｃｈａｌｍｅｒｓ，Ｒ．，Ｓｅｗｉｔｚ，Ｓ．，Ｌｉｐｋｏｗ，Ｋ．，ａｎｄ Ｃｒｅｌｌｉｎ，Ｐ．（２０００），Ｃｏｍｐｌｅｔｅ ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｏｆ Ｔｎ１０，Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ １８２，２９７０−２９７２参照）、ピギーバック方式（Ｐｉｇｇｙｂａｃ）トランスポゾン系（Ｌｉ，Ｘ．，Ｂｕｒｎｉｇｈｔ，Ｅ．Ｒ．，Ｃｏｏｎｅｙ，Ａ．Ｌ．，Ｍａｌａｎｉ，Ｎ．，Ｂｒａｄｙ，Ｔ．，Ｓａｎｄｅｒ，Ｊ．Ｄ．，Ｓｔａｂｅｒ，Ｊ．，Ｗｈｅｅｌａｎ，Ｓ．Ｊ．，Ｊｏｕｎｇ，Ｊ．Ｋ．，ＭｃＣｒａｙ，Ｐ．Ｂ．，Ｊｒ．，ｅｔ ａｌ．（２０１３），ＰｉｇｇｙＢａｃ ｔｒａｎｓｐｏｓａｓｅ ｔｏｏｌｓ ｆｏｒ ｇｅｎｏｍｅ ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ １１０，Ｅ２２７９−２２８７参照）、スリーピングビューティトランスポゾン系（Ｉｖｉｃｓ，Ｚ．，Ｈａｃｋｅｔｔ，Ｐ．Ｂ．，Ｐｌａｓｔｅｒｋ，Ｒ．Ｈ．，ａｎｄ Ｉｚｓｖａｋ，Ｚ．（１９９７），Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｒｅｃｏｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｓｌｅｅｐｉｎｇ Ｂｅａｕｔｙ，ａ Ｔｃ１−ｌｉｋｅ ｔｒａｎｓｐｏｓｏｎ ｆｒｏｍ ｆｉｓｈ，ａｎｄ ｉｔｓ ｔｒａｎｓｐｏｓｉｔｉｏｎ ｉｎ ｈｕｍａｎ ｃｅｌｌｓ，Ｃｅｌｌ ９１，５０１−５１０参照）、Ｔｏｌ２トランスポゾン系（Ｋａｗａｋａｍｉ，Ｋ．（２００７），Ｔｏｌ２：ａ ｖｅｒｓａｔｉｌｅ ｇｅｎｅ ｔｒａｎｓｆｅｒ ｖｅｃｔｏｒ ｉｎ ｖｅｒｔｅｂｒａｔｅｓ，Ｇｅｎｏｍｅ Ｂｉｏｌ．８ Ｓｕｐｐｌ．１，Ｓ７参照）が挙げられる。

【0042】

増幅されるＤＮＡは、単一細胞から得てもよく、細胞小集団から得てもよい。本明細書に記載の方法は、単一反応器内で実行される単一反応混合物などの反応混合物中で任意の種又は生物からＤＮＡを増幅することを可能にする。ある態様において、本明細書に記載の方法は、これらに限定はされないが、ヒトＤＮＡ、動物ＤＮＡ、植物ＤＮＡ、酵母ＤＮＡ、ウイルスＤＮＡ、真核生物ＤＮＡ、及び原核生物ＤＮＡを含む任意の供給源に由来するＤＮＡを、配列非依存的に増幅することを含む。

【0043】

ある態様によれば、それぞれがトランスポゾンＤＮＡに結合しているＴｎ５トランスポザーゼに、単一細胞由来の二本鎖ゲノムＤＮＡを接触させることを含み、ここで、前記トランスポゾンＤＮＡは、二本鎖１９ｂｐトランスポザーゼ（Ｔｎｐ）結合部位と、プライマー結合部位及び任意に存在してもよいバーコード配列のうちの１又は複数を含む第一の核酸配列とを含み、トランスポソームと呼ばれるトランスポザーゼ／トランスポゾンＤＮＡ複合体二量体を形成することを含む、単一細胞の全ゲノム増幅及び配列決定の方法が提供される。第一の核酸配列は一本鎖伸長物の形態であってもよい。ある態様によれば、第一の核酸配列は５′オーバーハングなどのオーバーハングであってもよく、該オーバーハングは、プライミング部位及び任意に存在してもよいバーコード領域を含む。オーバーハングは、必要に応じて、プライミング部位及び１つ又は複数の任意に存在してもよいバーコード領域を含むのに適した、任意の長さのものであってもよい。トランスポソームは二本鎖ゲノムＤＮＡ上の標的部位に結合し、二本鎖ゲノムＤＮＡを、Ｔｎｐ結合部位により上側鎖に結合した第一の複合体及びＴｎｐ結合部位により下側鎖に結合した第二の複合体をそれぞれ有する複数の二本鎖断片に切断する。トランスポゾン結合部位は、二本鎖断片の５′末端のそれぞれに結合している。ある態様によれば、Ｔｎ５トランスポザーゼは複合体から除去される。トランスポゾンＤＮＡに沿って二本鎖断片が伸長されて、好ましくは各末端に、プライマー結合部位を有する二本鎖伸長産物が生成される。ある態様によれば、Ｔｎ５トランスポザーゼ結合部位の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片への結合によって生じ得るギャップが埋められてもよい。二本鎖伸長産物は、増幅試薬と共に、微小液滴などの液滴増幅反応体積内に配置され、二本鎖ゲノムＤＮＡ断片が液滴内で増幅される。二本鎖ゲノムＤＮＡ断片が由来する細胞又は試料を一意的に識別するバーコード配列を含み得るアンプリコンは、例えば液滴の溶解によって収集される。次に、各液滴からの二本鎖ＤＮＡアンプリコンは、当業者に公知の、例えばハイスループット配列決定法を用いて配列決定されてもよい。

【0044】

特定の態様において、実施形態は、特定部位の提示を欠くことなく、ゲノムの実質的に全体を増幅するための方法に関する（本明細書において「全ゲノム増幅」と定義される）。特定の実施形態において、全ゲノム増幅は、ゲノムライブラリーの実質的に全ての断片又は全ての断片の増幅を含む。さらなる特定の実施形態では、「実質的に全体」又は「実質的に全て」とは、ゲノム中の全配列の約８０％、約８５％、約９０％、約９５％、約９７％、または約９９％を指す。

【0045】

ある態様によれば、ＤＮＡ試料は、ゲノムＤＮＡ、顕微解剖された染色体ＤＮＡ、酵母人工染色体（ＹＡＣ）ＤＮＡ、コスミドＤＮＡ、ファージＤＮＡ、Ｐ１由来人工染色体（ＰＡＣ）ＤＮＡ、又はバクテリア人工染色体（ＢＡＣ）ＤＮＡである。別の好ましい実施形態では、ＤＮＡ試料は、哺乳類ＤＮＡ、植物ＤＮＡ、酵母ＤＮＡ、ウイルスＤＮＡ、又は原核生物ＤＮＡである。さらに別の好ましい実施形態では、ＤＮＡ試料は、ヒト、ウシ、ブタ、ヒツジ、ウマ、げっ歯類、鳥類、魚類、エビ、植物、酵母、ウイルス、又は細菌から得られる。ＤＮＡ試料はゲノムＤＮＡであることが好ましい。

【0046】

ある特定の例示的な態様によれば、転位系を用いて、必要に応じて、増幅及び配列決定のための核酸断片が作製される。ある態様によれば、転位系を用いて、ゲノムＤＮＡが、挿入されたトランスポゾンＤＮＡを有する二本鎖ゲノムＤＮＡ断片に断片化される。ある特定の態様によれば、転位系は、単一細胞ゲノム増幅のための微小液滴増幅方法と組み合わされ、ここで、転位系によって作製されたＤＮＡ断片のライブラリーの各断片は、油相内の水性液滴のエマルジョンの単一液滴内に分離され、次いでＰＣＲなどによって各液滴内で増幅される。ある態様によれば、他のＤＮＡ断片を除いて、すなわちＤＮＡ断片ライブラリーの他のＤＮＡ断片が存在しない状態で、すなわち液滴が単一のＤＮＡ断片のみを含むように、単一のＤＮＡ断片のアンプリコンを作製する場合、液滴の使用により、コピー数変異（ＣＮＶ）の低解像度検出、及びゲノムカバレッジにさらに影響を与えるノイズの多い単一細胞配列決定データをもたらす増幅バイアスを低減又は回避する、単一細胞ゲノムＤＮＡ（ｇＤＮＡ）の高品質な増幅が有利に達成される。定義によるＰＣＲは指数関数的増幅方法であり、すなわち、新しいコピーは、前の回の増幅からのコピーに基づいて作製される。ある態様によれば、ＤＮＡ断片のライブラリーの各ＤＮＡ断片は、単独で、ライブラリーの他のメンバーの存在に関わらず増幅されるので、アンプリコン間に増幅効率の差がほとんどないか又は差がないため、増幅バイアスがほとんど又は全く生じないが、それ以外の場合には蓄積により複数サイクルの後に異なるアンプリコン間に増幅バイアスを生じさせることがある。ある態様によれば、アンプリコン間と同様に増幅バイアス効率がもたらされ得る場合、各液滴内の増幅反応を飽和状態にするために十分な数のＰＣＲサイクルが使用される。ＰＣＲ反応が飽和に達すると、異なる液滴から異なるアンプリコンが同量となるように増幅される。

【0047】

図１に示すように、トランスポザーゼを使用して何百万もの小さな断片を作製しながら、ＲＥＤ中に特異的プライミング部位を含むトランスポゾンＤＮＡが単一細胞のゲノムＤＮＡに挿入される。トランスポザーゼの除去及びギャップフィリングの後、プライマー結合部位を有するゲノムＤＮＡ断片が微小液滴にロードされる。液滴の数は、大部分の液滴が単一のＤＮＡ断片を含有することを確実にするために、断片の数を超えるようにする。次いで、特異的プライマーをＤＮＡポリメラーゼと共に使用して単一細胞の全ゲノムをＰＣＲ増幅する。

【0048】

ある態様によれば、単一細胞由来のＤＮＡなどの少量のＤＮＡを増幅する場合、増幅前に単一細胞内から得ることができる少量（約６ｐｇ）のゲノムＤＮＡを最大にするために、ＤＮＡカラム精製ステップが行われない。ＤＮＡは、細胞溶解物又はその他の不純な状態から直接増幅することができる。したがって、ＤＮＡ試料は、不純であっても、未精製であっても、未単離であってもよい。したがって、本願方法の態様により、増幅のためのゲノムＤＮＡを最大化し、精製による損失を減少させることが可能である。さらなる態様によれば、本明細書に記載の方法は、エマルジョン液滴増幅法において有用な、ＰＣＲ以外の増幅方法を利用してもよい。

【0049】

ある態様によれば、図２に示すように、トランスポゾンＤＮＡは、一端に、任意に存在してもよいバーコード領域及びプライミング部位を一端に含む一本鎖オーバーハングに、共有結合などによって連結又は結合されている、二本鎖１９ｂｐ Ｔｎ５トランスポザーゼ（Ｔｎｐ）結合部位を含むように設計されている。転移時、ＴｎｐとトランスポゾンＤＮＡは互いに結合し、二量体化してトランスポソームを形成する。

【0050】

図３に示す実施形態では、トランスポゾンＤＮＡは一本鎖オーバーハングとして示されている。トランスポザーゼは、トランスポゾンＤＮＡの二本鎖トランスポザーゼ結合部位に結合し、そのような２つの複合体は二量体化してトランスポソームを形成する。図４に示すように、トランスポソームは、二量体として標的単一細胞ゲノムＤＮＡをランダムに捕捉するか、又はそれに結合する。代表的なトランスポソームに１〜３の番号が付されている。次に、トランスポソーム内のトランスポザーゼは、一方のトランスポザーゼが上側鎖を切断し、もう一方のトランスポザーゼが下側鎖を切断することによってゲノムＤＮＡを切断し、ゲノムＤＮＡ断片を作製する。複数のトランスポソームは複数のゲノムＤＮＡ断片を作り出す。トランスポゾンＤＮＡはこのようにして単一細胞ゲノムＤＮＡにランダムに挿入され、転位／挿入部位の両端にギャップが残される。ギャップは任意の長さであってもよく、例えば９塩基ギャップが挙げられる。結果として、トランスポゾンＤＮＡ Ｔｎｐ結合部位が上側鎖の５′位に結合し、トランスポゾンＤＮＡ Ｔｎｐ結合部位が下側鎖の５′位に結合した、ゲノムＤＮＡ断片が得られる。トランスポゾンＤＮＡの結合又は挿入により生じたギャップが示されている。転位後、トランスポザーゼを除去し、ギャップ伸長を行ってギャップを埋め、図５に示すように、トランスポゾンＤＮＡにおいて元々設計されていた一本鎖オーバーハングを補完する。その結果、図５に示すように、プライマー結合部位（「プライミング部位」）配列が各ゲノムＤＮＡ断片の両端に結合する。プライマー結合部位は各断片について同じであり、トランスポソームによって作製されたすべての断片について同じである。

【0051】

特定のＴｎ５転位系が報告されており、当業者に利用可能となっている。それぞれ、全ての目的のためその全体が参照により本明細書に取り込まれる、Ｇｏｒｙｓｈｉｎ，Ｉ．Ｙ．ａｎｄ Ｗ．Ｓ．Ｒｅｚｎｉｋｏｆｆ，Ｔｎ５ ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｔｒａｎｓｐｏｓｉｔｉｏｎ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１９９８．２７３（１３）：ｐ．７３６７−７４；Ｄａｖｉｅｓ，Ｄ．Ｒ．，ｅｔ ａｌ．，Ｔｈｒｅｅ−ｄｉｍｅｎｓｉｏｎａｌ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ｔｈｅ Ｔｎ５ ｓｙｎａｐｔｉｃ ｃｏｍｐｌｅｘ ｔｒａｎｓｐｏｓｉｔｉｏｎ ｉｎｔｅｒｍｅｄｉａｔｅ．Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０００．２８９（５４７６）：ｐ．７７−８５；Ｇｏｒｙｓｈｉｎ，Ｉ．Ｙ．，ｅｔ ａｌ．，Ｉｎｓｅｒｔｉｏｎａｌ ｔｒａｎｓｐｏｓｏｎ ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ ｂｙ ｅｌｅｃｔｒｏｐｏｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｒｅｌｅａｓｅｄ Ｔｎ５ ｔｒａｎｓｐｏｓｉｔｉｏｎ ｃｏｍｐｌｅｘｅｓ．Ｎａｔｕｒｅ ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２０００．１８（１）：ｐ．９７−１００、及びＳｔｅｉｎｉｇｅｒ−Ｗｈｉｔｅ，Ｍ．，Ｉ．Ｒａｙｍｅｎｔ，ａｎｄ Ｗ．Ｓ．Ｒｅｚｎｉｋｏｆｆ，Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ／ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｉｎｓｉｇｈｔｓ ｉｎｔｏ Ｔｎ５ ｔｒａｎｓｐｏｓｉｔｉｏｎ．Ｃｕｒｒｅｎｔ ｏｐｉｎｉｏｎ ｉｎ ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ｂｉｏｌｏｇｙ，２００４．１４（１）：ｐ．５０−７を参照されたい。ＤＮＡライブラリー調製及び他の用途のための、Ｔｎ５転位系を利用したキットが知られている。それぞれ、全ての目的のためその全体が参照により明細書に取り込まれる、Ａｄｅｙ，Ａ．，ｅｔ ａｌ．，Ｒａｐｉｄ，ｌｏｗ−ｉｎｐｕｔ，ｌｏｗ−ｂｉａｓ ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｓｈｏｔｇｕｎ ｆｒａｇｍｅｎｔ ｌｉｂｒａｒｉｅｓ ｂｙ ｈｉｇｈ−ｄｅｎｓｉｔｙ ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｔｒａｎｓｐｏｓｉｔｉｏｎ．Ｇｅｎｏｍｅ ｂｉｏｌｏｇｙ，２０１０．１１（１２）：ｐ．Ｒ１１９；Ｍａｒｉｎｅ，Ｒ．， ｅｔ ａｌ．，Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ ａ ｔｒａｎｓｐｏｓａｓｅ ｐｒｏｔｏｃｏｌ ｆｏｒ ｒａｐｉｄ ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｈｏｔｇｕｎ ｈｉｇｈ−ｔｈｒｏｕｇｈｐｕｔ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｌｉｂｒａｒｉｅｓ ｆｒｏｍ ｎａｎｏｇｒａｍ ｑｕａｎｔｉｔｉｅｓ ｏｆ ＤＮＡ．Ａｐｐｌｉｅｄ ａｎｄ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２０１１．７７（２２）：ｐ．８０７１−９；Ｐａｒｋｉｎｓｏｎ，Ｎ．Ｊ．，ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｈｉｇｈ−ｑｕａｌｉｔｙ ｎｅｘｔ−ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｌｉｂｒａｒｉｅｓ ｆｒｏｍ ｐｉｃｏｇｒａｍ ｑｕａｎｔｉｔｉｅｓ ｏｆ ｔａｒｇｅｔ ＤＮＡ．Ｇｅｎｏｍｅ ｒｅｓｅａｒｃｈ，２０１２．２２（１）：ｐ．１２５−３３；Ａｄｅｙ，Ａ．ａｎｄ Ｊ．Ｓｈｅｎｄｕｒｅ，Ｕｌｔｒａ−ｌｏｗ−ｉｎｐｕｔ，ｔａｇｍｅｎｔａｔｉｏｎ−ｂａｓｅｄ ｗｈｏｌｅ−ｇｅｎｏｍｅ ｂｉｓｕｌｆｉｔｅ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ．Ｇｅｎｏｍｅ ｒｅｓｅａｒｃｈ，２０１２．２２（６）：ｐ．１１３９−４３；Ｐｉｃｅｌｌｉ，Ｓ．，ｅｔ ａｌ．，Ｆｕｌｌ−ｌｅｎｇｔｈ ＲＮＡ−ｓｅｑ ｆｒｏｍ ｓｉｎｇｌｅ ｃｅｌｌｓ ｕｓｉｎｇ Ｓｍａｒｔ−ｓｅｑ２．Ｎａｔｕｒｅ ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ，２０１４．９（１）：ｐ．１７１−８１、及びＢｕｅｎｒｏｓｔｒｏ，Ｊ．Ｄ．，ｅｔ ａｌ．，Ｔｒａｎｓｐｏｓｉｔｉｏｎ ｏｆ ｎａｔｉｖｅ ｃｈｒｏｍａｔｉｎ ｆｏｒ ｆａｓｔ ａｎｄ ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｅｐｉｇｅｎｏｍｉｃ ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ ｏｆ ｏｐｅｎ ｃｈｒｏｍａｔｉｎ，ＤＮＡ−ｂｉｎｄｉｎｇ ｐｒｏｔｅｉｎｓ ａｎｄ ｎｕｃｌｅｏｓｏｍｅ ｐｏｓｉｔｉｏｎ．Ｎａｔｕｒｅ ｍｅｔｈｏｄｓ，２０１３を参照されたい。また、その全体がそれぞれ参照により本明細書に取り込まれる、国際公開第９８／１００７７号、欧州特許第２５２７４３８号及び同第２３７６５１７号も参照されたい。市販の転位キットがＮＥＸＴＥＲＡの名で販売されており、ｌｌｕｍｉｎａ社から入手可能である。

【0052】

ある態様によれば、ＤＮＡ増幅法は、増幅ＤＮＡ産物の遺伝子型解析をさらに含む。あるいは、ＤＮＡ増幅法は、増幅ＤＮＡ産物内の一塩基多型（ＳＮＰ）などの多型性の同定をさらに含むことが好ましい。好ましい実施形態では、ＳＮＰは、ある生物のＤＮＡ内で、これらに限定はされないが、ＤＮＡ塩基配列決定法、ＰＣＲ産物の増幅及びＰＣＲ産物の配列決定、オリゴヌクレオチドライゲーションアッセイ（ＯＬＡ）、ダブルコードＯＬＡ（ｄｏｕｂｌｅｃｏｄｅ ＯＬＡ）、一塩基伸長アッセイ、対立遺伝子特異的プライマー伸長、又はミスマッチハイブリダイゼーションによるＳＮＰ同定を含む、当業者に周知のいくつかの方法によって同定され得る。同定されたＳＮＰは、疾患表現型及び望ましい表現系形質を含む、表現型と関連付けられることが好ましい。開示されるＤＮＡ増幅法を用いることで作製された増幅ＤＮＡは、これらに限定はされないが、ゲノムＤＮＡライブラリー、顕微解剖された染色体ＤＮＡライブラリー、ＢＡＣライブラリー、ＹＡＣライブラリー、ＰＡＣライブラリー、ｃＤＮＡライブラリー、ファージライブラリー、及びコスミドライブラリーを含む、ＤＮＡライブラリーの作製にも好ましく使用され得る。

【0053】

用語「ゲノム」は、本明細書で使用される場合、個体、細胞、又は細胞小器官に保有される集合的な遺伝子セットと定義される。用語「ゲノムＤＮＡ」は、本明細書で使用される場合、個体、細胞、又は細胞小器官に保有される部分的又は完全な集合的遺伝子セットを含むＤＮＡ物質と定義される。

【0054】

本明細書で使用される場合、用語「ヌクレオシド」は、プリン塩基又はピリミジン塩基がリボース糖又はデオキシリボース糖に共有結合的に連結された分子を指す。例示的なヌクレオシドとしては、アデノシン、グアノシン、シチジン、ウリジン、及びチミジンが挙げられる。さらなる例示的なヌクレオシドとしては、イノシン、１−メチルイノシン、プソイドウリジン、５，６−ジヒドロウリジン、リボチミジン、２Ｎ−メチルグアノシン、及び２，２Ｎ，Ｎ−ジメチルグアノシン（「レア」ヌクレオシドとも称される）が挙げられる。用語「ヌクレオチド」は、１又は複数のリン酸基が糖部分にエステル結合で連結されたヌクレオシドを指す。例示的なヌクレオチドとしては、ヌクレオシド一リン酸、ヌクレオシド二リン酸、及びヌクレオシド三リン酸塩が挙げられる。「ポリヌクレオチド」、「オリゴヌクレオチド」、及び「核酸分子」という用語は、本明細書では同義的に使用されており、５′炭素原子と３′炭素原子との間のホスホジエステル結合によって結合された、任意の長さの、デオキシリボヌクレオチド又はリボヌクレオチのヌクレオチドの重合体を指す。ポリヌクレオチドは、任意の三次元構造をとることができ、既知又は未知の任意の機能を果たし得る。ポリヌクレオチドの非限定的な例としては、遺伝子又は遺伝子断片（例えば、プローブ、プライマー、ＥＳＴ、又はＳＡＧＥタグ）、エクソン、イントロン、メッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）、転移ＲＮＡ、リボソームＲＮＡ、リボザイム、ｃＤＮＡ、組換えポリヌクレオチド、分岐ポリヌクレオチド、プラスミド、ベクター、任意の配列の単離ＤＮＡ、任意の配列の単離ＲＮＡ、核酸プローブ、及びプライマーが挙げられる。ポリヌクレオチドは、メチル化ヌクレオチド及びヌクレオチド類似体などの修飾ヌクレオチドを含むことができる。また、前記用語は二本鎖分子及び一本鎖分子の両方を指す。特に他に記載や必要がない限り、ポリヌクレオチドを含む本発明のいずれの実施形態も、二本鎖形態、及び二本鎖形態をつくることが知られているか又は予想される２本の相補的な一本鎖形態のそれぞれ、の両方を包含する。ポリヌクレオチドは、アデニン（Ａ）、シトシン（Ｃ）、グアニン（Ｇ）、チミン（Ｔ）の４種のヌクレオチド塩基からなる特定の配列から構成され、ポリヌクレオチドがＲＮＡである場合、チミンはウラシル（Ｕ）である。したがって、ポリヌクレオチド配列とは、ポリヌクレオチド分子のアルファベットによる表記である。このアルファベットによる表記は、中央演算処理装置を備えたコンピュータ内のデータベースに入力可能であり、機能ゲノム学及び相同性検索などのバイオインフォマティクス応用に使用可能である。

【0055】

「ＤＮＡ」、「ＤＮＡ分子」、及び「デオキシリボ核酸分子」という用語は、デオキシリボヌクレオチドのポリマーを指す。ＤＮＡは自然合成（例えばＤＮＡ複製により）することが可能である。ＲＮＡは転写後修飾が可能である。ＤＮＡは化学合成することも可能である。ＤＮＡは、一本鎖（すなわち、ｓｓＤＮＡ）又は多重鎖（例えば、二本鎖、すなわちｄｓＤＮＡ）であってもよい。

【0056】

「ヌクレオチド類似体」、「改変ヌクレオチド」、及び「修飾ヌクレオチド」という用語は、非天然のリボヌクレオチド又はデオキシリボヌクレオチドを含む、非標準的なヌクレオチドを指す。ある特定の例示的な実施形態において、ヌクレオチド類似体は、ヌクレオチドのある特定の化学的性質を変化させるが、ヌクレオチド類似体の所望の機能を実行する能力は保持するように、任意の位置で修飾される。誘導体化され得るヌクレオチドの位置の例としては、５位、例えば、５−（２−アミノ）プロピルウリジン、５−ブロモウリジン、５−プロピンウリジン、５−プロペニルウリジンなど；６位、例えば、６−（２−アミノ）プロピルウリジン；アデノシン及び／又はグアノシンの８位、例えば、８−ブロモグアノシン、８−クロログアノシン、８−フルオログアノシンなどが挙げられる。また、ヌクレオチド類似体として、デアザヌクレオチド、例えば、７−デアザ−アデノシン；Ｏ修飾ヌクレオチド及びＮ修飾ヌクレオチド（例えば、アルキル化ヌクレオチド、例えば、Ｎ６−メチルアデノシン、又はその他の当該技術分野において公知のもの）；並びに、Ｈｅｒｄｅｗｉｊｎ，Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｄｒｕｇ Ｄｅｖ．，２０００ Ａｕｇ．１０（４）：２９７−３１０に記載されるものなどの他の複素環修飾（ｈｅｔｅｒｏｃｙｃｌｉｃａｌｌｙ ｍｏｄｉｆｉｅｄ）ヌクレオチド類似体も挙げられる。

【0057】

ヌクレオチド類似体はヌクレオチドの糖部分への修飾を含んでいてもよい。例えば、２’ＯＨ基がＨ、ＯＲ、Ｒ、Ｆ、Ｃｌ、Ｂｒ、Ｉ、ＳＨ、ＳＲ、ＮＨ_２、ＮＨＲ、ＮＲ_２、ＣＯＯＲ、又はＯＲから選択される基によって置換されてもよく、ここで、Ｒは、置換又は非置換のＣ_１−Ｃ_６アルキル、アルケニル、アルキニル、アリールなどである。他の可能な修飾としては、米国特許第５，８５８，９８８号及び同第６，２９１，４３８号に記載される修飾が挙げられる。

【0058】

ヌクレオチドのリン酸基は、例えば、リン酸基の酸素の一つ若しくは複数を硫黄と置換することにより（例えば、ホスホロチオエート）、又は、例えば、Ｅｃｋｓｔｅｉｎ，Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｄｒｕｇ Ｄｅｖ．２０００ Ａｐｒ．１０（２）：１１７−２１，Ｒｕｓｃｋｏｗｓｋｉ ｅｔ ａｌ．Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｄｒｕｇ Ｄｅｖ．２０００ Ｏｃｔ．１０（５）：３３３−４５，Ｓｔｅｉｎ，Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｄｒｕｇ Ｄｅｖ．２００１ Ｏｃｔ．１１（５）：３１７−２５，Ｖｏｒｏｂｊｅｖ ｅｔ ａｌ．Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｄｒｕｇ Ｄｅｖ．２００１ Ａｐｒ．１１（２）：７７−８５、及び米国特許第５，６８４，１４３号に記載される置換など、ヌクレオチドがその所望の機能を果たすことを可能にする他の置換によって修飾されていてもよい。上記修飾のいくつか（例えば、リン酸基修飾）は、例えば、前記類似体を含むポリヌクレオチドのインビボ又はインビトロにおける加水分解速度を減少させる。

【0059】

用語「インビトロ」は、その当該技術分野において認められている意味を有し、例えば、精製された試薬、又は細胞抽出物などの抽出物を含む。用語「インビボ」も、その当該技術分野において認められている意味を有し、例えば、不死化細胞、初代細胞、細胞株、及び／又は生物内の細胞などの生細胞を含む。

【0060】

本明細書で使用される場合、「相補的」及び「相補性」という用語は、塩基対形成法則によって関連付けられるヌクレオチド配列に関して使用される。例えば、配列５′−ＡＧＴ−３′は、配列５′−ＡＣＴ−３′に対して相補的である。相補性は部分的又は全体的であり得る。部分的な相補性は、塩基対形成の法則により、１又は複数の核酸塩基が一致していない場合に生じる。核酸間の全体的又は完全な相補性は、塩基対形成の法則に基づいて、一つ一つの核酸塩基が他の塩基と一致している場合に生じる。核酸鎖間の相補性の程度は、核酸鎖間のハイブリダイゼーションの効率及び強度に対し重大な影響を及ぼす。

【0061】

用語「ハイブリダイゼーション」は、相補的核酸の対合を指す。ハイブリダイゼーション及びハイブリダイゼーションの強度（すなわち、核酸間の結合の強度）は、核酸間の相補性の程度、関連する条件のストリンジェンシー、形成されたハイブリッドのＴ_ｍ、及び核酸内のＧ：Ｃ比などの要素に影響を受ける。その構造内に相補的核酸の対合を含む単一分子は、「自己ハイブリダイズ（ｓｅｌｆ−ｈｙｂｒｉｄｉｚｅｄ）」しているといわれる。

【0062】

用語「Ｔ_ｍ」は、核酸の融解温度を指す。融解温度は、二本鎖核酸分子の集団の半分が一本鎖に解離する温度である。核酸のＴｍを算出するための式は当該技術分野において周知である。標準的な参考文献によって示されるように、Ｔ_ｍ値の単純な推定値は、核酸が１Ｍ ＮａＣｌの水溶液中に存在する場合、式：Ｔ_ｍ＝８１．５＋０．４１（％Ｇ＋Ｃ）によって算出され得る（例えば、Ａｎｄｅｒｓｏｎ ａｎｄ Ｙｏｕｎｇ，Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ Ｆｉｌｔｅｒ Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ，ｉｎ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ（１９８５）を参照）。他の参考文献には、Ｔ_ｍの算出のために配列の特徴だけでなく構造的な特徴も考慮に入れたより洗練された算出が含まれる。

【0063】

用語「ストリンジェンシー」は、核酸ハイブリダイゼーションが行われる、温度、イオン強度、及び有機溶剤などの他の化合物の存在の条件を指す。

【0064】

「低度にストリンジェントな条件」は、核酸ハイブリダイゼーションに関連して使用される場合、約５００ヌクレオチド長のプローブが使用される場合、５×ＳＳＰＥ（４３．８ｇ／ｌ ＮａＣｌ、６．９ｇ／ｌ ＮａＨ_２ＰＯ_４（Ｈ_２Ｏ）及び１．８５ｇ／ｌ ＥＤＴＡ、ｐＨはＮａＯＨで７．４に調整）、０．１％ＳＤＳ、５×デンハート試薬（５０×デンハート試薬は５００ｍｌ当たり、５ｇのフィコール（Ｔｙｐｅ ４００、Ｐｈａｒｍａｃｉａ社）、５ｇのＢＳＡ（Ｆｒａｃｔｉｏｎ Ｖ；Ｓｉｇｍａ社）を含有する）、及び１００μｇ／ｍｌ 変性サケ精子ＤＮＡからなる溶液中、４２℃での結合又はハイブリダイゼーション、並びに、その後の５×ＳＳＰＥ、０．１％ＳＤＳを含む溶液中、４２℃での洗浄と等価な条件を含む。

【0065】

「中程度にストリンジェントな条件」は、核酸ハイブリダイゼーションに関連して使用される場合、約５００ヌクレオチド長のプローブが使用される場合、５×ＳＳＰＥ（４３．８ｇ／ｌ ＮａＣｌ、６．９ｇ／ｌ ＮａＨ_２ＰＯ_４（Ｈ_２Ｏ）及び１．８５ｇ／ｌ ＥＤＴＡ、ｐＨはＮａＯＨで７．４に調整）、０．５％ＳＤＳ、５×デンハート試薬、及び１００μｇ／ｍｌ 変性サケ精子ＤＮＡからなる溶液中、４２℃での結合又はハイブリダイゼーション、並びに、その後の１．０×ＳＳＰＥ、１．０％ＳＤＳを含む溶液中、４２℃での洗浄と等価な条件を含む。

【0066】

「高度にストリンジェントな条件」は、核酸ハイブリダイゼーションに関連して使用される場合、約５００ヌクレオチド長のプローブが使用される場合、５×ＳＳＰＥ（４３．８ｇ／ｌ ＮａＣｌ、６．９ｇ／ｌ ＮａＨ_２ＰＯ_４（Ｈ_２Ｏ）及び１．８５ｇ／ｌ ＥＤＴＡ、ｐＨはＮａＯＨで７．４に調整）、０．５％ＳＤＳ、５×デンハート試薬、及び１００μｇ／ｍｌ 変性サケ精子ＤＮＡからなる溶液中、４２℃での結合又はハイブリダイゼーション、並びに、その後の０．１×ＳＳＰＥ、１．０％ＳＤＳを含む溶液中、４２℃での洗浄と等価な条件を含む。

【0067】

ある特定の例示的な実施形態では、細胞が同定された後に、単一細胞又は複数の細胞が単離される。本開示の範囲に含まれる細胞には、ＤＮＡ量を理解することが当業者に有用と見なされる、任意の細胞種が含まれる。本開示における細胞は、任意の種類の癌細胞、肝細胞、卵母細胞、胚、幹細胞、ｉＰＳ細胞、ＥＳ細胞、ニューロン、赤血球、メラニン形成細胞、星状膠細胞、生殖細胞、オリゴデンドロサイト、及び腎細胞などを包含する。ある態様によれば、本発明の方法は単一細胞由来の細胞ＤＮＡを用いて実行される。複数の細胞には、約２〜約１，０００，０００個の細胞、約２〜約１０個の細胞、約２〜約１００個の細胞、約２〜約１，０００個の細胞、約２〜約１０，０００個の細胞、約２〜約１００，０００個の細胞、約２〜約１０個の細胞、又は約２〜約５個の細胞が含まれる。

【0068】

本明細書に記載の方法により処理される核酸はＤＮＡであってもよい。前記核酸は例えばヒト試料などの、任意の有用な供給源から得られ得る。特定の実施形態では、二本鎖ＤＮＡ分子はさらに、例えばヒト由来試料由来のものなどの、ゲノムを含んでいると定義される。前記試料は、血液、血清、血漿、脳脊髄液、頬擦過標本、乳頭吸引液、生検材料、精液（射出精液と称される場合がある）、尿、糞便、毛包、唾液、汗、免疫沈降、又は物理的に単離したクロマチンなど、任意のヒト由来試料であり得る。特定の実施形態では、試料は単一細胞を含む。特定の実施形態では、前記試料は単一の細胞のみを含む。

【0069】

特定の実施形態では、試料から増幅された核酸分子から、診断情報又は予後情報が得られる。例えば、試料から調製された核酸分子は、ゲノムのコピー数及び／又は配列の情報、対立遺伝子変異の情報、癌診断、出生前診断、父子鑑別情報、疾患の診断、検出、モニタリング、及び／又は治療の情報、並びに配列情報などを与え得る。

【0070】

本明細書で使用される場合、「単一細胞」は１つの細胞を指す。本明細書に記載の方法において有用な単一細胞は、目的の組織から、又は生検材料、血液試料、若しくは細胞培養から得ることができる。さらに、特定の器官、組織、腫瘍、又は新生物などに由来する細胞は、本明細書に記載の方法において、入手及び使用が可能である。さらに、一般に、細菌又は酵母を含む原核単細胞生物又は真核単細胞生物の集団など、任意の集団由来の細胞も、前記方法において使用することができる。単一細胞懸濁液は、例えば、酵素的にトリプシン若しくはパパインを用いた組織試料中の細胞接続タンパク質の消化若しくは培養液中の接着細胞の遊離、又は試料中の細胞の機械的分離を含む、当該技術分野において公知の標準方法を用いて得ることができる。単一細胞は、単一細胞を個々に処理可能な任意の好適な反応器内に置くことができる。例えば、９６ウェルプレートでは、単一細胞のそれぞれが単一のウェル内に置かれる。

【0071】

単一細胞を操作するための方法は、当該技術分野において公知であり、例えば、蛍光標識細胞分取（ＦＡＣＳ）、フローサイトメトリー（Ｈｅｒｚｅｎｂｅｒｇ．，ＰＮＡＳ ＵＳＡ ７６：１４５３−５５ １９７９）、顕微操作及び半自動化細胞ピッキング装置（例えば、Ｓｔｏｅｌｔｉｎｇ Ｃｏ．製のＱｕｉｘｅｌｌ（商標）細胞移送系）の使用が挙げられる。個々の細胞は、例えば、位置、形態、又はレポーター遺伝子発現などの、顕微鏡観察によって検出可能な特徴に基づいて、個々に選択することができる。さらに、勾配遠心分離及びフローサイトメトリーを組み合わせて使用して、単離又は選別の効率を上げることもできる。

【0072】

所望の細胞が同定された後、当業者に公知の方法を用いて、細胞は溶解され、ＤＮＡを含む細胞内容物が放出される。細胞内容物は容器又は収集量内に含有される。本発明のいくつかの態様において、ゲノムＤＮＡなどの細胞内容物は、細胞を溶解することにより細胞から放出され得る。溶解は、例えば、細胞の加熱、又は界面活性剤若しくは他の化学的手法の使用、又はこれらの組み合わせにより、達成可能である。しかし、当該技術分野において公知のいかなる好適な溶解法も使用することができる。例えば、Ｔｗｅｅｎ−２０存在下における７２℃で２分間の細胞の加熱は、細胞を溶解するために十分である。あるいは、細胞は、水中、６５℃で１０分間（Ｅｓｕｍｉ ｅｔ ａｌ．，Ｎｅｕｒｏｓｃｉ Ｒｅｓ ６０（４）：４３９−５１（２００８））；又は、０．５％ＮＰ−４０を添加したＰＣＲ ｂｕｆｆｅｒ ＩＩ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社）中、７０℃で９０秒間（Ｋｕｒｉｍｏｔｏ ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ ３４（５）：ｅ４２ （２００６））、加熱することができ；あるいは、プロテアーゼＫなどのプロテアーゼを用いて、若しくはグアニジンイソチオシアネートなどのカオトロピック塩の使用によって、溶解は実現可能である（米国特許出願公開第２００７／０２８１３１３号）。本明細書に記載の方法によるゲノムＤＮＡの増幅は、反応混合物が細胞溶解物に添加され得るように、細胞溶解物に対し直接実行することができる。あるいは、細胞溶解物は、当業者に公知の方法を用いて、２つ以上の容器内、チューブ内、又は領域内など、２以上の量に分割することができ、細胞溶解物の一部が各々の体積の容器、チューブ、又は領域内に含有される。各々の容器、チューブ、又は領域内に含有されたゲノムＤＮＡは、次に本明細書に記載の方法又は当業者に公知の方法によって増幅され得る。

【0073】

また、本発明で使用される核酸は、天然塩基、又は非天然塩基を含み得る。これに関して、天然デオキシリボ核酸は、アデニン、チミン、シトシン、又はグアニンからなる群から選択される１又は複数の塩基を有することができ、リボ核酸は、ウラシル、アデニン、シトシン、又はグアニンからなる群から選択される１又は複数の塩基を有することができる。天然骨格を有しているか又は類似体の構造を有しているかにかかわらず、核酸内に含まれ得る例示的な非天然塩基としては、限定はされないが、イノシン、キサタニン（ｘａｔｈａｎｉｎｅ）、ヒポキサタニン（ｈｙｐｏｘａｔｈａｎｉｎｅ）、イソシトシン、イソグアニン、５−メチルシトシン、５−ヒロドキシメチルシトシン、２−アミノアデニン、６−メチルアデニン、６−メチルグアニン、２−プロピルグアニン、２−プロピルアデニン、２−チオウラシル（２−ｔｈｉｏＬｉｒａｃｉｌ）、２−チオチミン、２−チオシトシン、１５−ハロウラシル、１５−ハロシトシン、５−プロピニルウラシル、５−プロピニルシトシン、６−アゾウラシル、６−アゾシトシン、６−アゾチミン、５−ウラシル、４−チオウラシル、８−ハロアデニン若しくは８−ハログアニン、８−アミノアデニン若しくは８−アミノグアニン、８−チオールアデニン若しくは８−チオールグアニン、８−チオアルキルアデニン若しくは８−チオアルキルグアニン、８−ヒドロキシルアデニン若しくは８−ヒドロキシルグアニン、５−ハロ置換ウラシル若しくは５−ハロ置換シトシン、７−メチルグアニン、７−メチルアデニン、８−アザグアニン、８−アザアデニン、７−デアザグアニン、７−デアザアデニン、３−デアザグアニン、又は３−デアザアデニンなどが挙げられる。特定の実施形態は、米国特許第５，６８１，７０２号に一般的に記載されているように、非特異的なハイブリダイゼーションを低減する目的で、核酸内にイソシトシン及びイソグアニンを利用することができる。

【0074】

本明細書で使用される場合、用語「プライマー」には、一般に、配列決定プライマーなど、ポリヌクレオチド鋳型と二本鎖を形成する際に核酸合成の開始点として働くことが可能であり、且つ、伸長された二本鎖が形成されるように、鋳型に沿ってその３′末端から伸長させることが可能である、天然又は合成のオリゴヌクレオチドが含まれる。伸長プロセス中に付加されるヌクレオチドの順序は、鋳型ポリヌクレオチドの配列によって決定される。通常、プライマーはＤＮＡポリメラーゼによって伸長される。プライマーは通常、３〜３６ヌクレオチドの範囲内、５〜２４ヌクレオチドの範囲内、又は１４〜３６ヌクレオチドの範囲内の長さを有する。本発明の範囲内のプライマーとしては、直交性プライマー（ｏｒｔｈｏｇｏｎａｌ ｐｒｉｍｅｒ）、増幅プライマー、及び構築用プライマー（ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎｓ ｐｒｉｍｅｒ）などが挙げられる。プライマー対は、１つの目的配列に隣接させることも、あるいは一連の目的配列に隣接させることもできる。プライマー及びプローブは、縮重配列とすることも、準縮重配列とすることもできる。本発明の範囲内のプライマーは標的配列に隣接して結合する。「プライマー」は、通常、目的の試料中に存在し得る標的又は鋳型に、該標的とのハイブリダイズにより結合する遊離３′−ＯＨ基を有し、且つ、その後該標的に相補的なポリヌクレオチドの重合を促進する、短いポリヌクレオチドとみなされ得る。本発明のプライマーは、１７〜３０ヌクレオチドの範囲のヌクレオチドから構成される。ある態様において、プライマーは、少なくとも１７ヌクレオチド、少なくとも１８ヌクレオチド、少なくとも１９ヌクレオチド、少なくとも２０ヌクレオチド、少なくとも２１ヌクレオチド、少なくとも２２ヌクレオチド、少なくとも２３ヌクレオチド、少なくとも２４ヌクレオチド、少なくとも２５ヌクレオチド、少なくとも２６ヌクレオチド、少なくとも２７ヌクレオチド、少なくとも２８ヌクレオチド、少なくとも２９ヌクレオチド、少なくとも３０ヌクレオチド、少なくとも５０ヌクレオチド、少なくとも７５ヌクレオチド、又は少なくとも１００ヌクレオチドである。

【0075】

「増幅」又は「増幅する」という表現は、特定のポリヌクレオチドの余分な又は複数のコピーが形成されるプロセスを指す。

【0076】

本明細書に記載の方法により増幅されたＤＮＡは、当業者に公知の方法を用いて配列決定及び解析されてもよい。目的の核酸配列の配列決定は、当該技術分野において公知の種々の配列決定法、例えば、限定はされないが、ハイブリダイゼーションによる配列決定法（ＳＢＨ）、ライゲーションによる配列決定法（ＳＢＬ）（Ｓｈｅｎｄｕｒｅ ｅｔ ａｌ． （２００５） Ｓｃｉｅｎｃｅ ３０９：１７２８）、定量的増加的蛍光ヌクレオチド付加配列決定法（ＱＩＦＮＡＳ）、段階的なライゲーション及び切断、蛍光共鳴エネルギー転移（ＦＲＥＴ）、分子ビーコン、ＴａｑＭａｎレポータープローブ消化（、ピロシーケンス、蛍光ｉｎ ｓｉｔｕ配列決定法（（ＦＩＳＳＥＱ）、ＦＩＳＳＥＱビーズ（米国特許第７，４２５，４３１号）、ゆらぎ配列決定法（ＰＣＴ／ＵＳ０５／２７６９５）、多重配列決定法（米国特許出願１２／０２７，０３９号、２００８年２月６日出願；Ｐｏｒｒｅｃａ ｅｔ ａｌ （２００７）Ｎａｔ．Ｍｅｔｈｏｄｓ ４：９３１）、重合コロニー（ＰＯＬＯＮＹ）配列決定法（米国特許第６，４３２，３６０号、同第６，４８５，９４４号及び同第６，５１１，８０３号、並びにＰＣＴ／ＵＳ０５／０６４２５）；ナノグリッドローリングサークル配列決定法（ＲＯＬＯＮＹ）（米国特許出願第１２／１２０，５４１号、２００８年５月１４日出願）、対立遺伝子特異的オリゴライゲーションアッセイ（例えば、オリゴライゲーションアッセイ（ＯＬＡ）、連結された線形プローブ及びローリングサークル増幅（ＲＣＡ）の読み取りを利用した単一鋳型分子ＯＬＡ、連結されたパッドロックプローブ、及び／又は連結された環状パッドロックプローブ及びローリングサークル増幅（ＲＣＡ）の読み取りを利用した単一鋳型分子ＯＬＡ）などを用いて行うことができる。例えば、Ｒｏｃｈｅ ４５４プラットフォーム、Ｉｌｌｕｍｉｎａ Ｓｏｌｅｘａプラットフォーム、ＡＢ−ＳＯＬｉＤプラットフォーム、Ｈｅｌｉｃｏｓプラットフォーム、及びＰｏｌｏｎａｔｏｒプラットフォームなどのプラットフォームを用いたハイスループット配列決定法も利用できる。種々の光に基づく配列決定技術が、当該技術分野において公知である（Ｌａｎｄｅｇｒｅｎ ｅｔ ａｌ．（１９９８）Ｇｅｎｏｍｅ Ｒｅｓ．８：７６９−７６；Ｋｗｏｋ（２０００）Ｐｈａｒｍａｃｏｇｅｎｏｍｉｃｓ１：９５−１００；及びＳｈｉ（２００１）Ｃｌｉｎ．Ｃｈｅｍ．４７：１６４−１７２）。

【0077】

増幅ＤＮＡは任意の好適な方法によって配列決定することができる。具体的には、増幅ＤＮＡは、Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製のＳＯＬｉＤ配列決定技術、又はＩｌｌｕｍｉｎａ社製のＧｅｎｏｍｅ Ａｎａｌｙｚｅｒなどのハイスループットスクリーニング法を用いて配列決定することができる。本発明のある態様において、増幅ＤＮＡはショットガン法で配列決定することができる。リード数は、少なくとも１０，０００、少なくとも１，０００，０００、少なくとも１０，０００，０００、少なくとも１００，０００，０００、又は少なくとも１，０００，０００，０００であり得る。別の態様では、リード数は、１０，０００〜１００，０００、１００，０００〜１，０００，０００、１，０００，０００〜１０，０００，０００、１０，０００，０００〜１００，０００，０００、又は１００，０００，０００〜１，０００，０００，０００であり得る。「リード」とは、配列決定反応によって得られる、連続した核酸配列の長さである。

【0078】

「ショットガン配列決定法」は、非常に大量のＤＮＡ（ゲノム全体など）の配列決定に使用される方法を指す。この方法では、配列決定されるＤＮＡがまず、個々に配列決定することが可能な、より小さな断片に細断される。次に、これらの断片の配列は、重複している配列に基づいて元の順番に再構築され、これにより完全配列が得られる。ＤＮＡの「細断」は、制限酵素消化又は機械的剪断を含む種々の異なる手法を用いて行うことができる。重複配列は、通常、適切にプログラミングされたコンピュータによってアラインメントされる。ｃＤＮＡライブラリーをショットガン法で配列決定するための方法及びプログラムは当該技術分野において周知である。

【0079】

増幅及び配列決定法は、診断アッセイ、予後アッセイ、薬理ゲノミクス、及び臨床試験モニタリングを予後判定（予測的）目的に使用することで個人を予防的に治療する、予測医療の分野において有用である。したがって、本発明のある態様は、個人が障害及び／又は疾患を発症する危険性の有無を判定することを目的とした、ゲノムＤＮＡを判定するための診断アッセイに関する。このようなアッセイを、予後判定又は予測を目的に使用することで、障害及び／又は疾患の発症前に個人を予防的に治療することができる。したがって、ある特定の例示的な実施形態において、本明細書に記載の発現プロファイリング法のうちの１又は複数を用いた、１又は複数の疾患及び／又は障害を診断及び／又は予後予測する方法が提供される。

【0080】

本明細書で使用される場合、用語「生物試料」は、限定はされないが、対象、及び対象内に存在する組織、細胞、生体液から単離された、組織、細胞、体液、及びその単離物を包含することが意図される。

【0081】

ある特定の例示的な実施形態において、本明細書に記載の１又は複数のゲノムＤＮＡ配列を含む電子装置可読媒体が提供される。本明細書で使用される場合、「電子装置可読媒体」とは、直接的に電子装置による読み取り及びアクセスが可能な、データ又は情報を記憶、保持、又は格納するための、任意の好適な媒体を指す。そのような媒体としては、限定はされないが、フロッピーディスク、ハードディスク記憶媒体、及び磁気テープなどの磁気記憶媒体；コンパクトディスクなどの光学式記憶媒体；ＲＡＭ、ＲＯＭ、ＥＰＲＯＭ、及びＥＥＰＲＯＭなどの電子記憶媒体；一般的なハードディスク、及び磁気／光学式記憶媒体などのこれらのカテゴリーの複合型を挙げることができる。媒体は、本明細書に記載の１又は複数の発現プロファイルが記録されるように適合又は構成される。

【0082】

本明細書で使用される場合、用語「電子装置」は、任意の好適な演算若しくは処理装置、又はデータ若しくは情報を記憶するように構成若しくは適合された他のデバイスを包含することが意図される。本発明での使用に適した電子装置の例としては、独立型演算装置；構内ネットワーク（ＬＡＮ）、広域ネットワーク（ＷＡＮ）インターネット、イントラネット、及びエクストラネットを含むネットワーク；携帯情報端末（ＰＤＡ）、携帯電話、及びポケットベルなどの電子装置；並びに局所内処理システム及び分散処理システムが挙げられる。

【0083】

本明細書で使用される場合、「記録された」とは、情報を電子装置可読媒体上に記憶又はコード化するための処理を指す。当業者は、情報を公知の媒体上に記録して、本明細書に記載の１又は複数の発現プロファイルを含む製品を生成するための、現在知られている任意の方法を、容易に採用することができる。

【0084】

種々のソフトウェアプログラム及びフォーマットを用いて、本発明のゲノムＤＮＡ情報を電子装置可読媒体上に記憶することができる。例えば、核酸配列は、ＷｏｒｄＰｅｒｆｅｃｔ及びＭｉｃｒｏＳｏｆｔ Ｗｏｒｄなどの市販のソフトウェアでフォーマットされた文書処理テキストファイル中に、又は、ＤＢ２、Ｓｙｂａｓｅ、若しくはＯｒａｃｌｅなどのデータベースアプリケーションに記憶されたＡＳＣＩＩファイルの形式で、並びに他の形式で表すことができる。本明細書に記載の１又は複数の発現プロファイルが記録された媒体を得る又は作製するために、任意の数のデータ処理装置構築フォーマット（例えば、テキストファイル又はデータベース）も用いてよい。

【0085】

記載された本発明の実施形態が、本発明の原理の適用のいくつかの単なる例示であることを理解されたい。当業者は、本明細書に提供された教示に基づいて、本発明の趣旨及び範囲を逸脱しない範囲で、多数の変更を行ってよい。本願に引用された全ての参考文献、特許、及び特許出願公開の内容は、全ての目的においてそれらの全体が参照により本明細書に取り込まれる。

【0086】

本発明を代表するものとして以下の実施例が挙げられる。これらの実施例及び他の等価な実施形態は本開示、図面、及び添付の特許請求の範囲を考慮すれば明らかとなるため、これらの実施例は本発明の範囲を限定するものと解釈されるべきではない。

【0087】

実施例Ｉ
一般的プロトコル
以下の一般的プロトコルは全ゲノム増幅に有用である。単一細胞を溶解緩衝液中で溶解する。トランスポソームは等モルのトランスポゾンＤＮＡ及びＴｎ５トランスポザーゼを室温で１時間インキュベートすることにより形成される。トランスポゾン及び転位緩衝液を細胞溶解物に添加して十分に混合し、５５℃で１０分間インキュベートする。転位後に１ｍｇ／ｍｌのプロテアーゼを添加し、単一細胞ゲノムＤＮＡに結合したトランスポザーゼを除去する。反応混合液にＤｅｅｐ ｖｅｎｔ（ｅｘｏ−）、ＤＮＡポリメラーゼ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ社）、ｄＮＴＰ、ＰＣＲ反応緩衝液、及びプライマーを加えて、７２℃で１０分間加熱してトランスポゾン挿入により生成されたギャップを埋める。反応混合物をマイクロ流体デバイスにロードして微小液滴を形成する。単一細胞ゲノムＤＮＡ鋳型、ＤＮＡポリメラーゼ、ｄＮＴＰ、反応緩衝液及びプライマーを含む液滴をＰＣＲチューブに集める。４０〜６０サイクルのＰＣＲ反応を実施して、単一細胞ゲノムＤＮＡを増幅する。サイクル数は、液滴中の増幅反応が飽和するように選択される。液滴を溶解し、ハイスループットディープシークエンシング（配列決定）のようなさらなる解析のために、増幅産物を精製する。

【0088】

実施例ＩＩ
トランスポザーゼをトランスポゾンＤＮＡの混合
ＥＤＴＡを含有する緩衝液中で、Ｔｎ５トランスポザーゼ（Ｅｐｉｃｅｎｔｒｅ社）をトランスポゾンＤＮＡと等モル数で混合し、室温で１０〜６０分間インキュベートする。最終トランスポソーム濃度は０．１〜１０μＭである。トランスポゾンＤＮＡ構築物は、一方の末端に二本鎖１９ｂｐトランスポザーゼ結合部位を、もう一方の末端にプライミング部位を有する。一本鎖プライミング部位は、５′突出末端を形成する。長さが可変であり、配列が複雑なバーコード配列を、１９ｂｐ結合部位と前記プライミング部位との間に、必要に応じて設計することが可能である。トランスポソームは、５０％Ｔｒｉｓ−ＥＤＴＡ及び５０％グリセロール溶液中に何倍にも希釈し、−２０℃で保存してよい。

【0089】

実施例ＩＩＩ
細胞溶解
以下の通りに、レーザー解剖顕微鏡（ＬＭＤ−６５００、Ｌｅｉｃａ社）を用いて、細胞を選択し、培養皿から切り出し、チューブに分配する。細胞を膜コーティング培養皿上に播種し、１０倍対物レンズを備えた明視野顕微鏡（Ｌｅｉｃａ社）を用いて観察する。次に、個々の選択した細胞の周囲の膜を、ＰＣＲ用チューブの蓋に落下するように、ＵＶレーザーを用いて切断する。チューブを短時間遠心し、細胞をチューブの底に落す。３〜５μｌの溶解緩衝液（３０ｍＭ Ｔｒｉｓ−Ｃｌ（ＰＨ７．８）、２ｍＭ ＥＤＴＡ、２０ｍＭ ＫＣｌ、０．２％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００、５００μｇ／ｍｌ Ｑｉａｇｅｎ Ｐｒｏｔｅａｓｅ）をＰＣＲ用チューブの側面を伝って加え、スピンダウンする。次に、捕捉された細胞を、ＰＣＲ装置上で、５０℃、３時間、７５℃、３０分間の温度スケジュールを用いて熱溶解させる。あるいは、単一細胞を、ＥＤＴＡ及びＱＩＡＧＥＮ ｐｒｏｔｅａｓｅ（ＱＩＡＧＥＮ社）などのプロテアーゼを１０〜５０００μｇ／ｍＬの濃度で含有する低塩溶解緩衝液中に、マウスピペットで移す。インキュベーション条件は使用するプロテアーゼに応じて変動させる。ＱＩＡＧＥＮ ｐｒｏｔｅａｓｅの場合、インキュベーションは３７〜５５℃で１〜４時間となり得る。次に、プロテアーゼを８０℃まで熱不活化し、４−（２−アミノエチル）ベンゼンスルホニルフルオライド塩酸塩（ＡＥＢＳＦ）又はフェニルメタンスルホニルフルオライド（ＰＭＳＦ）（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ社）などの特異的なプロテアーゼ阻害剤でさらに不活化する。細胞溶解物を−８０℃で保存する。

【0090】

あるいは、ペトリ皿で培養したヒトＢＪ細胞株をトリプシン処理し、エッペンドルフ低結合チューブに集める。細胞をＰＢＳで洗浄して細胞増殖培地を除去し、１５０ｍＭ ＮａＣｌ緩衝液に再懸濁する。細胞をさらに１μｌ当たり約５細胞に希釈し、さらに膜コーティング培養皿にプレーティングする。単一細胞を、マウスピペッティングシステムにより、５μｌの細胞溶解緩衝液（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ ｐＨ８．０、２０ｍＭ ＮａＣｌ、０．２％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ‐１００、１５ｍＭ ＤＴＴ、１ｍＭ ＥＤＴＡ、１ｍｇ／ｍｌ Ｑｉａｇｅｎ ｐｒｏｔｅａｓｅ）中に採取する。次に、捕捉された細胞を、ＰＣＲ装置上で、５０℃、３時間、７０℃、３０分間の温度スケジュールを用いて熱溶解させる。溶解した細胞をトランスポゾン挿入によるデジタル増幅（ＤＩＡＮＴＩ）の前に−８０℃で保存する。

【0091】

実施例ＩＶ
転位
単一細胞溶解物及びトランスポソームを、１〜１００ｍＭ Ｍｇ^２＋及び任意に存在してもよい１〜１００ｍＭ Ｍｎ^２＋、Ｃｏ^２＋、又はＣａ^２＋を含有する緩衝系中で混合する。十分に混合し、３７〜５５℃で５〜２４０分間インキュベートする。反応体積は細胞溶解物の体積に応じて変動する。反応中に添加されるトランスポソームの量は所望の断片化サイズに応じて容易に調整可能である。転位反応は、ＥＤＴＡ及び任意に存在してもよいＥＧＴＡ又は他のイオンキレート化剤を用いてＭｇ^２＋をキレート化することにより停止させる。所望により、短い二本鎖ＤＮＡをスパイク−イン（ｓｐｉｋｅ−ｉｎ）として混合物に添加することが可能である。残渣中のトランスポソームは、３７〜５５℃、１０〜６０分間、最終濃度１〜５００μｇ／ｍＬのＱＩＡＧＥＮ ｐｒｏｔｅａｓｅなどのプロテアーゼ消化によって不活性化する。次に、プロテアーゼを熱及び／又はＡＥＢＳＦなどのプロテアーゼ阻害剤で不活性化する。

【0092】

実施例Ｖ
ギャップフィリング
転位及びトランスポザーゼの除去後、Ｍｇ^２＋、ｄＮＴＰ ｍｉｘ、プライマー、及びＤｅｅｐ Ｖｅｎｔ（ｅｘｏ−），ＤＮＡ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ社）などの熱安定性ＤＮＡポリメラーゼを含むＰＣＲ反応混合物を、適切な温度及び適切な時間で前記溶液に添加し、転位反応により残された９ｂｐのギャップが埋められる。ギャップフィリングにおけるインキュベーションの温度及び時間は、使用される特異的ＤＮＡポリメラーゼに依存する。反応後、所望によりＤＮＡポリメラーゼを加熱及び／又はＱＩＡＧＥＮ ｐｒｏｔｅａｓｅなどのプロテアーゼ処理により不活性化する。使用される場合、次に、プロテアーゼは、熱及び／又はプロテアーゼ阻害剤により不活性化される。

【0093】

実施例ＶＩ
微小液滴の生成及び分離された微小液滴中の各ＤＮＡ断片の単離及び増幅
ある態様によれば、当業者に公知の一般的な方法を使用して、各液滴内で反応が行われて液滴内のＤＮＡ断片が増幅される、ＰＣＲ増幅反応試薬の液滴を作製する。プライマー結合部位を有するＤＮＡ断片を含む上記実施例由来のギャップが埋められた二本鎖産物を水性媒体中のＰＣＲ反応試薬に添加し、次いでこれを油と混ぜ合わせると液滴が生じる。ここで、液滴の数は、単一のギャップが埋められた二本鎖産物が十分なＰＣＲ反応試薬と共に単一液滴内に分離されるように、ギャップが埋められた二本鎖産物の数を超える。次いで、液滴は、ＰＣＲ条件に供されて、各液滴内の各ＤＮＡ断片がＰＣＲ増幅される。適切なエマルジョン液滴増幅法は当業者に公知であり、それぞれ参照によりその全体が本明細書に取り込まれる、Ｍａｚｕｔｉｓ，Ｌ．，ｅｔ ａｌ．Ｓｉｎｇｌｅ−ｃｅｌｌ ａｎａｌｙｓｉｓ ａｎｄ ｓｏｒｔｉｎｇ ｕｓｉｎｇ ｄｒｏｐｌｅｔ−ｂａｓｅｄ ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃｓ，Ｎａｔｕｒｅ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ，２０１３，８，ｐ．８７０−８９１；Ｗｉｌｌｉａｍｓ，Ｒ，ｅｔ ａｌ．Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｃｏｍｐｌｅｘ ｇｅｎｅ ｌｉｂｒａｒｉｅｓ ｂｙ ｅｍｕｌｓｉｏｎ ＰＣＲ，Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｔｈｏｄｓ，２００６，３，ｐ．５４５−５５０；Ｆｕ，Ｙ，ｅｔ ａｌ．Ｕｎｉｆｏｒｍ ａｎｄ ａｃｃｕｒａｔｅ ｓｉｎｇｌｅ−ｃｅｌｌ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｅｍｕｌｓｉｏｎ ｗｈｏｌｅ−ｇｅｎｏｍｅ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ．Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａ，２０１５，１１２（３８）：ｐ．１１９２３−８；Ｓｉｄｏｒｅ，Ａ．Ｍ．，ｅｔ ａｌ．Ｅｎｈａｎｃｅｄ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｃｏｖｅｒａｇｅ ｗｉｔｈ ｄｉｇｉｔａｌ ｄｒｏｐｌｅｔ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｄｉｓｐｌａｃｅｍｅｎｔ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ．Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ．２０１５，Ｄｅｃ．２３；Ｎｉｓｈｉｋａｗａ，Ｙ，ｅｔ ａｌ．Ｍｏｎｏｄｉｓｐｅｒｓｅ ｐｉｃｏｌｉｔｅｒ ｄｒｏｐｌｅｔｓ ｆｏｒ ｌｏｗ−ｂｉａｓ ａｎｄ ｃｏｎｔａｍｉｎａｔｉｏｎ−ｆｒｅｅ ｒｅａｃｔｉｏｎｓ ｉｎ ｓｉｎｇｌｅ−ｃｅｌｌ ｗｈｏｌｅ ｇｅｎｏｍｅ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ． ＰＬｏＳ Ｏｎｅ．２０１５，Ｓｅｐｔｅｍｂｅｒ ２１；Ｒｈｅｅ，Ｍ．，ｅｔ ａｌ．Ｄｉｇｉｔａｌ ｄｒｏｐｌｅｔ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｄｉｓｐｌａｃｅｍｅｎｔ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ （ｄｄＭＤＡ）， ｆｏｒ ｗｈｏｌｅ ｇｅｎｏｍｅ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｏｆ ｌｉｍｉｔｅｄ ＤＮＡ ｓａｍｐｌｅｓ．ＰＬｏＳ Ｏｎｅ．２０１６．Ｍａｙ ４；Ｇｕｏ，Ｍ．Ｔ．，ｅｔ ａｌ． Ｄｒｏｐｌｅｔ ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃｓ ｆｏｒ ｈｉｇｈ−ｔｈｒｏｕｇｈｐｕｔ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ａｓｓａｙｓ，Ｌａｂ ｏｎ ａ Ｃｈｉｐ， ２０１２，１２，ｐ．２１４６−２１５５；Ｃｈａｂｅｒｔ，Ｍ．，ｅｔ ａｌ．Ａｕｔｏｍａｔｅｄ ｍｉｃｒｏｄｒｏｐｌｅｔ ｐｌａｔｆｏｒｍ ｆｏｒ ｓａｍｐｌｅ ｍａｎｉｐｕｌａｔｉｏｎ ａｎｄ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ｃｈａｉｎ ｒｅａｃｔｉｏｎ，Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，２００６，７８（２２），ｐ．７７２２−７７２８；Ｋｉｓｓ，Ｍ．Ｍ．，Ｈｉｇｈ−ｔｈｒｏｕｇｈｐｕｔ ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ｃｈａｉｎ ｒｅａｃｔｉｏｎ ｉｎ ｐｉｃｏｌｉｔｅｒ ｄｒｏｐｌｅｔｓ，Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，２００８，８０（２３），ｐ．８９７５−８９８１；Ｌａｎ，Ｆ．，ｅｔ ａｌ．Ｄｒｏｐｌｅｔ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｆｏｒ ｍａｓｓｉｖｅｌｙ ｐａｒａｌｌｅｌ ｓｉｎｇｌｅ−ｍｏｌｅｃｕｌｅ ｄｅｅｐ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ，Ｎａｔｕｒｅ Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ，２０１６，７（１１７８４）に記載のものを含む。適切な油相は当業者に公知であり、水相が自然発生的に水性液滴を生じるか、分離体積を生じるか、又は油相に囲まれたコンパートメンを生じる。例示的な油としては、それぞれ参照によりその全体が本明細書に取り込まれる、Ｅｖａｇｒｅｅｎ用のＱＸ２００（商標）Ｄｒｏｐｌｅｔ Ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ Ｏｉｌ（Ｂｉｏ−Ｒａｄ社）、００８−ＦｌｕｏｒｏＳｕｒｆａｃｔａｎｔ ｉｎ ＨＦＥ ７５００ （ＲＡＮ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）、Ｐｉｃｏ−Ｓｕｒｆ（商標）１ （Ｄｏｌｏｍｉｔｅ Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃｓ社）、Ｐｒｏｐｒｉｅｔａｒｙ Ｏｉｌ Ｓｕｒｆａｃｔａｎｔｓ （ＲａｉｎＤａｎｃｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）、Ｍａｚｕｔｉｓ，Ｌ．，ｅｔ ａｌ．、Ｓｉｎｇｌｅ−ｃｅｌｌ ａｎａｌｙｓｉｓ ａｎｄ ｓｏｒｔｉｎｇ ｕｓｉｎｇ ｄｒｏｐｌｅｔ−ｂａｓｅｄ ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃｓ，Ｎａｔｕｒｅ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ，２０１３，８，ｐ．８７０−８９１に記載のフッ素系界面活性剤及びフッ素化油、並びにＢａｒｅｔ，Ｊ．−Ｃ．Ｌａｂ ｏｎ ａ Ｃｈｉｐ，２０１２，１２，ｐ．４２２−４３３に記載のその他の界面活性剤及び油が挙げられる。

【0094】

単一細胞全ゲノム増幅を行うための有用なマイクロ流体デバイスは、それぞれ参照によりその全体が本明細書に取り込まれる，Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ １５０（２）：４０２−４１２（２０１２），ｄｅ Ｂｏｕｒｃｙ ＣＦＡ，ＰＬＯＳ ＯＮＥ ９（８）：ｅ１０５５８５（２０１４），Ｇｏｌｅ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ ３１ （１２）： １１２６−１１３２ （２０１３），ａｎｄ Ｙｕ ｅｔ ａｌ．，Ａｎａｌ Ｃｈｅｍ ８６ （１９）：９３８６−９３９０（２０１４），；Ｆｕ，Ｙ，ｅｔ ａｌ．Ｕｎｉｆｏｒｍ ａｎｄ ａｃｃｕｒａｔｅ ｓｉｎｇｌｅ−ｃｅｌｌ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｅｍｕｌｓｉｏｎ ｗｈｏｌｅ−ｇｅｎｏｍｅ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ． Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａ，２０１５，１１２（３８）：ｐ．１１９２３−８；Ｓｉｄｏｒｅ，Ａ．Ｍ．，ｅｔ ａｌ．Ｅｎｈａｎｃｅｄ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｃｏｖｅｒａｇｅ ｗｉｔｈ ｄｉｇｉｔａｌ ｄｒｏｐｌｅｔ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｄｉｓｐｌａｃｅｍｅｎｔ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ．Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ．２０１５，Ｄｅｃ．２３；Ｎｉｓｈｉｋａｗａ，Ｙ，ｅｔ ａｌ．Ｍｏｎｏｄｉｓｐｅｒｓｅ ｐｉｃｏｌｉｔｅｒ ｄｒｏｐｌｅｔｓ ｆｏｒ ｌｏｗ−ｂｉａｓ ａｎｄ ｃｏｎｔａｍｉｎａｔｉｏｎ−ｆｒｅｅ ｒｅａｃｔｉｏｎｓ ｉｎ ｓｉｎｇｌｅ−ｃｅｌｌ ｗｈｏｌｅ ｇｅｎｏｍｅ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ．ＰＬｏＳ Ｏｎｅ．２０１５，Ｓｅｐｔｅｍｂｅｒ ２１；Ｒｈｅｅ，Ｍ．，ｅｔ ａｌ．Ｄｉｇｉｔａｌ ｄｒｏｐｌｅｔ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｄｉｓｐｌａｃｅｍｅｎｔ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ（ｄｄＭＤＡ），ｆｏｒ ｗｈｏｌｅ ｇｅｎｏｍｅ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｏｆ ｌｉｍｉｔｅｄ ＤＮＡ ｓａｍｐｌｅｓ．ＰＬｏＳ Ｏｎｅ．２０１６．Ｍａｙ ４；Ｌａｎ，Ｆ．，ｅｔ ａｌ．Ｄｒｏｐｌｅｔ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｆｏｒ ｍａｓｓｉｖｅｌｙ ｐａｒａｌｌｅｌ ｓｉｎｇｌｅ−ｍｏｌｅｃｕｌｅ ｄｅｅｐ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ，Ｎａｔｕｒｅ Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ，２０１６，７（１１７８４）に記載されている。そのようなデバイスは、汚染を回避すること及び複数の単一分子又は単一細胞を並列でハイスループット分析することを可能にする。マイクロ流体デバイスは総反応体積（マイクロリットルからナノリットル又はピコリットル）が少ないので、反応効率が促進されるだけでなく、使用される酵素及び試薬の著しいコスト削減も可能になる。

【0095】

実施例ＶＩＩ
微小液滴内に分離されたＤＮＡ断片の増幅
上記実施例からのギャップフィリングＤＮＡ断片をマイクロ流体チップにロードして、１〜１００，０００，０００個の微小液滴を生成した。マイクロ流体チップデザインは、参照によりその全体が本明細書に取り込まれる、Ｍａｃｏｓｋｏ ｅｔ ａｌ．Ｃｅｌｌ １６１（５），２０１５によって提供されるような従来のフローフォーカシング（ｆｌｏｗ−ｆｏｃｕｓｉｎｇ）液滴生成デザインを変更したものである。前記マイクロ流体チップデザインは、マイクロチャネルによって流体連結により接続され、さらにエマルジョン液滴出口領域に流体連結により接続された、疎水性液体注入口（オイル注入口と称する）、ＤＮＡ溶液又は水相注入口、及び油相と水相とを組み合わせるための混合領域を含んでいた。水性流路に沿った表面積及び鋭角は、マイクロ流体チップデザインの表面へのＤＮＡ断片の付着を防ぐために、Ｍａｃｏｓｋｏ ｅｔ ａｌ．Ｃｅｌｌ １６１（５），２０１５のデザインと比較して最小化された。油相注入口には、正方形のフィルターなどのマイクロ流体デザインで一般的に使用されるフィルターが含まれていた。前記水相注入口には、正方形のフィルターなど、マイクロ流体デザインで一般的に使用されるフィルターも含まれていたが、水相と接触する表面積を最小にするために、正方形のフィルターの表面積を減少させた。適切な疎水性相は、水性媒体が疎水性相に導入された場合に水性液滴を生成するものである。例示的な疎水性相は、３‐エトキシパーフルオロ（２‐メチルヘキサン）などのフッ素化油など、油などの疎水性液体、及び界面活性剤を含む。界面活性剤は当業者に周知である。適切な油及び界面活性剤を含む例示的な疎水性相は、水溶液と混合しないか水溶液中の生化学反応に悪影響を及ぼさない疎水性界面活性剤含有液であり、ＥｖａＧｒｅｅｎ用のＱＸ２００（商標）Ｄｒｏｐｌｅｔ Ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ Ｏｉｌ（Ｂｉｏ−Ｒａｄ社）として市販されている。他の適切な油と界面活性剤の組み合わせは市販されているか、当業者に公知である。油相と水相が混合領域又はエマルジョン液滴出口領域で混合されると、水相は油相に囲まれた液滴を自然発生的に形成する。ある態様によれば、フラッシュ体積に必要がないために界面活性剤を含んでいなくてもよい油などの疎水性流体のフラッシュ体積は、マイクロ流体デザイン内又は水相をマイクロ流体デザイン注入するために使用される注射器若しくは注入器内のいずれかの上流において、マイクロ流体チップデザインに導入された当初の水相の損失を最小限に抑えるために、死容積を占め得る任意の水相を置き換えるために使用される。有用なマイクロ流体チップデザインは、ＡｕｔｏＣＡＤソフトウェア（Ａｕｔｏｄｅｓｋ社）を使用して作製することができ、ＣＡＤ（Ａｒｔ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ社）によってマイクロ流体製造用のフォトマスクに印刷することができる。金型又はマスターは、参照によりその全体が本明細書に取り込まれる、Ｍａｚｕｔｉｓ ｅｔ ａｌ．Ｎａｔｕｒｅ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ８（５），２０１３に記載される従来技術を使用して作製できる。マイクロ流体チップは、未硬化ポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）（Ｄｏｗ Ｃｏｒｎｉｎｇ社、Ｓｙｌｇａｒｄ １８４）を硬化させることによってマスターから作製することができ、加熱及び硬化させて溝又は回路を有する表面を作製する。入口及び出口穴が形成され、回路を有する硬化表面がスライドガラスに対して配置されて固定され、マイクロチャネル及びマイクロ流体チップが形成される。使用前に、マイクロ流体チップの内部を、マイクロ流体チップの内部の疎水性を改善するための化合物で処理し、洗浄して潜在的な汚染を除去することができる。

【0096】

本明細書で実施した実験では、各マイクロ流体チップをアクアペル（Ａｑｕａｐｅｌ）で処理して、チャネル表面を疎水性とした。各実験を開始する前に、潜在的な汚染を除去するために前記デバイスをヌクレアーゼフリーの水で洗浄し、次にＥｖａＧｒｅｅｎ用のＱＸ２００（商標）Ｂｉｏ−Ｒａｄ Ｄｒｏｐｌｅｔ Ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ Ｏｉｌなどの液滴生成オイルで洗浄した。液滴生成油は、ポリエチレンチューブを介してマイクロ流体チップの油入口に接続された注射器内に入れられる（Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｃｏｍｍｏｄｉｔｉｅｓ社、ＢＢ３１６９５−ＰＥ／２）。チップの出口は、液滴収集のためのポリエチレンチューブを介して２ｍｌのＤＮＡ ＬｏＢｉｎｄチューブに接続されている。

【0097】

ゲノムＤＮＡ（ｇＤＮＡ）溶液を死容積なしでマイクロ流体チップにロードするために、注射針を介して長さ１４０ｃｍのポリエチレンチューブに接続された１ｍｌの注射器に、３‐エトキシパーフルオロ（２‐メチルヘキサン）（「ＨＦＥオイル」）を予め満たした。次いで、（トランスポゾン挿入及びギャップフィリングから調製した）ｇＤＮＡ溶液を、死容積が生じる場合は、注射針又は注射器に触れることなくチューブに吸引した。ポリエチレンチューブ内のｇＤＮＡ溶液からＨＦＥ油（いずれも透明）を区別するために、ｇＤＮＡ溶液を吸い込む前に少量の空気をポリエチレンチューブに吸い込み、両方の種類の液体を分離した。この方法により、全てのｇＤＮＡ溶液が注射針又は注射器内に残らずにチップに注入され、溶液が、溶液と混合されないＨＦＥオイルによってチップ内に完全に押し込まれることになる。

【0098】

ｇＤＮＡ溶液及び液滴生成油がマイクロ流体デバイス内で混合されたとき、液滴は流れ回路内で自然発生的に形成された。次いで、液滴を増幅のためのサーモサイクリングのためにＰＣＲチューブに等分した。以下のスケジュールに従ってサーマルサイクラー中でＰＣＲ反応を実施した。

【0099】

【表1】

【0100】

その後、７５μｌのパーフルオロオクタノール（ＴＣＩ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ社）を各ＰＣＲチューブに添加した。手で振盪し遠心分離した後、全ての液滴を溶解し、ＤＮＡ増幅産物を含む水溶液をエッペンドルフ低結合チューブに集め、Ｚｙｍｏ Ｒｅｓｅａｒｃｈ社製のＤＮＡ Ｃｌｅａｎ＆Ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｏｒ−５により精製し、下流解析のために一緒にプールした。精製ＤＮＡ産物の濃度は、Ｑｕｂｉｔ ２．０蛍光光度計によって測定される。１０ｎｇの増幅ＤＮＡを、１つのｑＰＣＲプライマー遺伝子座に対して使用して、転位系及びエマルジョン液滴増幅法から生じる増幅収率及び増幅の均一性を決定する。

【0101】

１ｕｇの増幅されたＤＮＡ産物は、Ｉｌｌｕｍｉｎａ ＴｒｕＳｅｑ ＤＮＡ ＰＣＲフリーライブラリー調製キットを用いてＩｌｌｕｍｉｎｅ配列決定ライブラリーを作製するための入力として使用される。投入されたＤＮＡをまずＣｏｖａｒｉｓソニケーターで超音波処理し、サイズ選択を行って約３００ｂｐの長さのＤＮＡ断片を濃縮する。ヒト細胞からの３種の試料、ＳＣ２、ＳＣ３ｄ２、及びＳＣ６を、Ｉｌｌｕｍｉｎａ ＨｉＳｅｑ ４０００配列決定システムの３つのレーンにロードする。試料あたり約６０Ｇの生データが取得される。

【0102】

前記配列決定データは、Ｂｕｒｒｏｗｓ−Ｗｈｅｅｌｅｒ Ａｌｉｇｎｅｒ（ＢＷＡ）によるヒト参照ゲノムにアラインメントされる。カバレッジは、マッピング配列決定の読み取りのローレンツ曲線をプロットすることにより決定される。ＳＮＶは、ＳＡＭｔｏｏｌｓによって決定される。対立遺伝子ドロップアウト率（ＡＤＯ）は、単一細胞内の未検出ＳＮＶと実際のヘテロ接合性ＳＮＶの比率によって計算される。

【0103】

実施例ＶＩＩＩ
ＤＮＡ断片サイズ解析
ある態様によれば、種々のＤＮＡ断片サイズを得るために、Ｔｎ５トランスポソーム調製及び転位反応条件を変えることが可能である。Ｔｎ５転位効率及び挿入密度は、広い範囲内で任意に調整することができる。本明細書に記載されるように単一細胞ゲノムＤＮＡを増幅した後、増幅により１マイクログラムを超える増幅産物が生成される。産物のサイズ分布をＤＮＡ ＢｉｏＡｎａｌｙｚｅｒで精査した。その結果を図６に示す。Ｘ軸は断片サイズであり、Ｙ軸は蛍光強度が反映された任意の単位を有する相対量である。画像の両端にある２つの鋭いピークは、それぞれ３５ｂｐ及び１０３８０ｂｐのＤＮＡ断片の２つのスパイク−インである。増幅産物の平均長は、３０００ｂｐ超であった。

【0104】

下記の表１に示すように、ヒト細胞の全ゲノムにわたる８つの異なる遺伝子座のｑＰＣＲの結果は、非常に均一な増幅を示した。

【0105】

【表2】

【0106】

前述の増幅効率をさらに調べるために、Ｉｌｌｕｍｉｎａハイスループット配列決定システム上で、３種全ての単一細胞の前記増幅産物からのライブラリーを３０倍まで作製した。配列決定データは、Ｂｕｒｒｏｗｓ−Ｗｈｅｅｌｅｒ Ａｌｉｇｎｅｒ（ＢＷＡ）を用いて参照ヒトゲノムにマッピングした。下記表２に示すように、解析後、平均カバレッジ９０％の参照ヒトゲノム及び平均対立遺伝子ドロップアウト率（ＡＤＯ）３０％が達成され、これは現在市販されている単一細胞全ゲノム増幅キットを上回った（表２）。

【0107】

【表3】

【0108】

本明細書に記載の前記転位系及び液滴エマルジョン増幅技術を用いた全ゲノムが増幅された３種の単一ヒト細胞の図７に示される読み取り深度分析は、全ヒトゲノムにわたって非常に均一な増幅効率を示した。これはコピー数変異（ＣＮＶ）コーリングの分解能及び精度の改善に有用である。

【0109】

実施例ＩＸ
分離技術
増幅後、解析のために、種々の異なる長さの増幅産物を、互いから、鋳型から、及び過剰なプライマーから分離することが望ましい場合がある。

【0110】

一実施形態では、増幅産物は標準方法（Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，“Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，”Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｄ Ｅｄ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１３．７−１３．９：１９８９）を用いたアガロースゲル電気泳動、アガロース−アクリルアミドゲル電気泳動、又はポリアクリルアミドゲル電気泳動によって分離される。ゲル電気泳動法は当該技術分野において周知である。

【0111】

あるいは、クロマトグラフ法を用いて分離を達成してもよい。本開示で使用されて得る多種のクロマトグラフィー、すなわち、吸着クロマトグラフィー、分配クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、及び分子篩クロマトグラフィー、並びに、それらを用いるための、カラムクロマトグラフィー、ペーパークロマトグラフィー、薄層クロマトグラフィー、及びガスクロマトグラフィーを含む多くの特殊な技術が存在する（Ｆｒｅｉｆｅｌｄｅｒ，Ｐｈｙｓｉｃａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍｓｔｒｙ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｔｏ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，２ｎｄ ｅｄ．Ｗｍ．Ｆｒｅｅｍａｎ ａｎｄ Ｃｏ．，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，Ｎ．Ｙ．，１９８２）。さらに別の代替法は、例えば、ビオチン又は抗原で標識された核酸産物をそれぞれアビジン又は抗体を担持するビーズで捕捉することである。

【0112】

マイクロ流体法は、例えば、ＡＣＬＡＲＡ ＢｉｏＳｃｉｅｎｃｅｓ社により設計されたものなどを含む、ミクロキャピラリーなどのプラットフォーム上での分離、又は、Ｃａｌｉｐｅｒ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製のＬａｂＣｈｉｐ（商標）が挙げられる。他の分離技術がマイクロリットル体積を必要とするのとは対照的に、これらのマイクロ流体プラットフォームはナノリットル体積の試料しか必要としない。遺伝子解析に関与するいくつかプロセスの小型化はマイクロ流体デバイスを用いて達成された。例えば、参照により本明細書に取り込まれる、Ｎｏｒｔｈｒｕｐ及びＷｈｉｔｅの公開済みＰＣＴ国際公開第９４／０５４１４号には、試料からの核酸の収集及び増幅のための統合型ｍｉｃｒｏ−ＰＣＲ（商標）装置が報告されている。米国特許第５，３０４，４８７号、同第５，２９６，３７５号、及び同第５，８５６，１７４号には、核酸解析に関与する種々の処理操作及び分析操作を組み込んだ装置及び方法が記載されており、これらの米国特許は参照により本明細書に取り込まれる。

【0113】

いくつかの実施形態では、増幅されたＤＮＡを解析するための追加の、又は別の手段を与えることが望ましい場合がある。これらの実施形態では、ミクロキャピラリーアレイが解析に使用されることが企図される。ミクロキャピラリーアレイ電気泳動は、一般的に、特定の分離媒体で満たされていても満たされていなくてもよい、細いキャピラリー又はチャネルの使用を含む。キャピラリーを通じた試料の電気泳動によって、サイズに基づく分離プロファイルが試料に与えられる。ミクロキャピラリーアレイ電気泳動は、一般に、サイズに基づく配列決定、ＰＣＲ産物解析、及び制限酵素断片サイジングのための迅速な方法を提供する。これらのキャピラリーの高い比表面積は、キャピラリー全体での実質的な熱変動も無く、キャピラリー全体により高い電場を印加することを可能にし、結果的により迅速な分離を可能にする。さらに、共焦点画像解析法と組み合わされた場合、これらの方法は、放射性配列決定法の感度に匹敵するアトモル範囲の感度をもたらす。ミクロキャピラリー電気泳動デバイスを含むマイクロ流体デバイスの微細製造は、例えば、参照により本明細書に取り込まれる、Ｊａｃｏｂｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ａｎａｌ Ｃｈｅｍ，６６：１１０７−１１１３，１９９４；Ｅｆｆｅｎｈａｕｓｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ａｎａｌ Ｃｈｅｍ，６６：２９４９−２９５３，１９９４；Ｈａｒｒｉｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２６１：８９５−８９７，１９９３；Ｅｆｆｅｎｈａｕｓｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ａｎａｌ Ｃｈｅｍ，６５：２６３７−２６４２，１９９３；Ｍａｎｚ ｅｔ ａｌ．，Ｊ． Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ ５９３：２５３−２５８，１９９２；及び米国特許第５，９０４，８２４号において詳細に考察されている。通常、これらの方法は、シリカ、シリコン、又は他の結晶性の基板上又はチップ上の、ミクロンスケールのチャネルのフォトリソグラフィーエッチングを含み、本開示における使用に容易に適合することができる。

【0114】

Ｔｓｕｄａ ｅｔ ａｌ．（Ａｎａｌ Ｃｈｅｍ，６２：２１４９−２１５２，１９９０）には、円柱状のキャピラリーガラス管の代わりとなる、矩形キャピラリーが記載されている。これらの系のいくつかの利点とは、高さ幅比の大きさと、それによる比表面積の大きさに起因する効率的な熱放散、及び光学的オンカラム検出モードにおける検出感度の高さである。これらの平面的な分離チャネルは二次元的な分離を可能とし、ある力が分離チャネル全体に加えられ、多チャネルアレイ検出器の使用により試料区域が検出される。

【0115】

多くのキャピラリー電気泳動法において、キャピラリー（例えば、石英ガラスキャピラリー又は平面基板にエッチング、機械加工、若しくは成形したチャネル）は、適切な分離／ふるいマトリックスで充填される。通常、ミクロキャピラリーアレイには当該技術分野において公知の種々のふるいマトリックスが使用され得る。そのようなマトリックスの例としては、例えば、ヒドロキシエチルセルロース、ポリアクリルアミド、及びアガロースなどが挙げられる。一般的に、特定のゲルマトリックス、泳動用緩衝液、及び泳動条件は、特定の適用の分離特性、例えば、核酸断片のサイズ、必要な解像度、及び天然又は未変性の核酸分子の存在を最大にするように選択される。例えば、泳動用緩衝液は、試料中の核酸を変性させるために、変性剤、尿素などのカオトロピック剤を含む場合がある。

【0116】

質量分析は、真空中で分子をイオン化し、揮発によりそれらを「飛行」させることにより、個々の分子を「計量」する手段を提供する。電場及び磁場の組み合せの影響下で、イオンはそれらの個々の質量（ｍ）及び電荷（ｚ）に応じた軌道を描く。低分子量分子に関して、質量分析は、親分子イオンの質量の決定による、有機分子の解析及び特性決定のための、物理有機化学の通例のレパートリーの一部となっている。さらに、この親分子イオンと他の粒子（例えば、アルゴン原子）との衝突をアレンジすることより、いわゆる衝突誘起解離（ＣＩＤ）によって、分子イオンが断片化されて二次イオンが形成される。フラグメンテーションのパターン／経路は、しばしば、詳細な構造情報を導き出すことを可能にする。当該技術分野における質量分析法の他の応用は、Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，Ｖｏｌ．１９３：“Ｍａｓｓ Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ”（Ｊ．Ａ．ＭｃＣｌｏｓｋｅｙ，ｅｄｉｔｏｒ），１９９０，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋに要約されている。

【0117】

高い検出感度、質量測定の精度、ＭＳ／ＭＳ構成と併せたＣＩＤによる詳細な構造情報、及び速度、並びにコンピュータへのオンラインデータ転送の提供において、質量分析の分析上の利点が明らかであることから、核酸の構造解析への質量分析の使用にはかなりの関心があった。この分野を要約している概説としては、参照により本明細書に取り込まれる、Ｓｃｈｒａｍ，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｂｉｏｃｈｅｍ Ａｎａｌ，３４：２０３−２８７，１９９０、及びＣｒａｉｎ，Ｍａｓｓ Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ Ｒｅｖｉｅｗｓ，９：５０５−５５４，１９９０が挙げられる。質量分析を核酸に適用するまでの最大のハードルは、これらの非常に極性のある生体高分子を揮発させることが困難であることである。すなわち、「配列決定」は、親分子イオンの質量を決定し、これを通じて、既知の配列を確認することによる、又は、特に、イオン化及び揮発のために、高速原子衝撃法（ＦＡＢ質量分析）若しくはプラズマ脱離法（ＰＤ質量分析）を利用する、ＭＳ／ＭＳ構成におけるＣＩＤを介した二次イオン（断片イオン）の生成を通じて既知配列を確認することによる、低分子合成オリゴヌクレオチドに限定されていた。一例として、オリゴデオキシヌクレオチドの化学合成のための保護二量体ブロックの解析へのＦＡＢの適用が報告されている（Ｋｏｓｔｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ Ｍａｓｓ Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ １４：１１１−１１６，１９８７）。

【0118】

イオン化／脱離法として、エレクトロスプレー／イオンスプレー法（ＥＳ）及びマトリックス支援レーザー脱離イオン化法（ＭＡＬＤＩ）の２つがある。ＥＳ質量分析は、Ｆｅｎｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｐｈｙｓ．Ｃｈｅｍ．８８；４４５１−５９，１９８４；ＰＣＴ出願国際公開第９０／１４１４８号によって提唱されたものであり、その応用は総説、例えば、Ｓｍｉｔｈ ｅｔ ａｌ．，Ａｎａｌ Ｃｈｅｍ ６２：８８２−８９，１９９０、及びＡｒｄｒｅｙ，Ｅｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙ Ｍａｓｓ Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ，Ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ Ｅｕｒｏｐｅ，４：１０−１８，１９９２に要約されている。質量分析計としては、四重極型が最もよく使用されている。質量計算に使用できるイオンピークが複数存在することにより、フェムトモル量の試料における分子量の決定が非常に正確である。

【0119】

ＭＡＬＤＩ質量分析は、対照的に、飛行時間型（ＴＯＦ）の構成が質量分析計として使用されている場合に特に魅力的となり得る。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ質量分析は、（Ｈｉｌｌｅｎｋａｍｐ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｍａｓｓ Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ ｅｄｓ．Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ ａｎｄ ＭｃＣｌｏｓｋｅｙ，Ｅｌｓｅｖｉｅｒ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ，Ａｍｓｔｅｒｄａｍ，ｐｐ．４９−６０，１９９０）によって提唱された。ほとんどの場合、この方法では複数の分子イオンピークが生じないため、原理上、質量スペクトルはＥＳ質量分析と比較してよりシンプルな見た目となる。分子量４１０，０００ダルトン以下のＤＮＡ分子を脱離及び揮発することができた（Ｗｉｌｌｉａｍｓ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４６：１５８５−８７，１９８９）。より最近では、この方法における赤外レーザー（ＩＲ）の使用が（ＵＶレーザーとは対照的に）、２１８０ヌクレオチドのサイズ以下の、合成ＤＮＡ、プラスミドＤＮＡの制限酵素断片、及びＲＮＡ転写物などのより大きな核酸の質量スペクトルを与えることが示された（Ｂｅｒｋｅｎｋａｍｐ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２８１：２６０−２，１９９８）。Ｂｅｒｋｅｎｋａｍｐは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＩＲを用いた、限定的な試料精製によるＤＮＡ試料及びＲＮＡ試料の解析可能な方法も報告している。

【0120】

日本特許第５９−１３１９０９号には、電気泳動、液体クロマトグラフィー、又は高速ゲル濾過によって分離された核酸断片を検出する装置が記載されている。Ｓ、Ｂｒ、Ｉ、又はＡｇ、Ａｕ、Ｐｔ、Ｏｓ、Ｈｇなどの、ＤＮＡ内に通常は生じない原子を核酸内に組み込むことにより、質量分析検出が達成される。

【0121】

ハイブリダイゼーションオリゴヌクレオチドプローブを蛍光ラベルで標識することは、当該技術分野において周知の技術であり、プローブハイブリダイゼーションの検出を促進するための感度の高い非放射性の方法である。より最近に開発された検出法は、プローブハイブリダイゼーションの検出のために、蛍光強度を直接検出するのではなく、蛍光エネルギー移動（ＦＥＴ）のプロセスを利用している。ＦＥＴは、供与体であるフルオロフォアと受容体である色素（フルオロフォアであってもなくてもよい）との間で、一方（受容体）の吸収スペクトルが他方（供与体）の発光スペクトルと重なり、これら２つの色素がごく近接している場合に生じる。これらの特性を有する色素は、供与体／受容体色素対又はエネルギー移動色素対と称される。供与体フルオロフォアの励起状態エネルギーが、共鳴双極子誘起双極子相互作用により隣接する受容体に移動する。これにより供与体蛍光が消失する。一部の例では、受容体もフルオロフォアである場合、その蛍光強度が増強されることがある。エネルギー移動の効率は供与体と受容体の距離に高度に依存しており、これらの関係を予測する式が、Ｆｏｒｓｔｅｒ，Ａｎｎ Ｐｈｙｓ ２：５５−７５，１９４８によって開発された。エネルギー移動効率が５０％となる供与体色素と受容体色素の距離は、フェルスター距離（Ｒｏ）と呼ばれる。他の蛍光消光機構も当該技術分野において公知であり、例えば、電荷移動消光及び衝突消光が挙げられる。

【0122】

ごく近接している２つの色素の相互作用に基づいて消失を起こすエネルギー移動及び他の機構は、アッセイを均質な形式で実行し得ることから、ヌクレオチド配列の検出又は同定のための魅力的な手段である。不均質なアッセイは、通常、ハイブリダイズされた標識を遊離標識から分離するための追加のステップを必要とするので、均質なアッセイ形式は、単一のフルオロフォア標識の蛍光の検出に基づく従来のプローブハイブリダイゼーションアッセイと異なっている。ＦＥＴハイブリダイゼーションアッセイのいくつかの形式が、Ｎｏｎｉｓｏｔｏｐｉｃ ＤＮＡ Ｐｒｏｂｅ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ（Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．，ｐｇｓ．３１１−３５２，１９９２）に概説されている。

【0123】

核酸増幅の検出のためのエネルギー移動又は他の蛍光消光機構を利用する均質な方法も報告されている。Ｈｉｇｕｃｈｉ ｅｔ ａｌ．（Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １０：４１３−４１７，１９９２）には、エチジウムブロマイドの、二本鎖ＤＮＡに結合した際の蛍光の増加をモニタリングすることによる、ＤＮＡ増幅をリアルタイムで検出するための方法が開示されている。エチジウムブロマイドの結合が標的特異的でなく、バックグラウンド増幅産物も検出されてしまうことから、この方法の感度は限定的である。Ｌｅｅ ｅｔ ａｌ．（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ ２１：３７６１−３７６６，１９９３）には、二重標識された検出プローブがＰＣＲ（商標）中に標的増幅特異的に切断される、リアルタイム検出法が開示されている。Ｔａｑポリメラーゼの５′−３′エキソヌクレアーゼ活性が検出プローブを消化し、２つの蛍光色素を分離し、これらがエネルギー移動対を形成するように、検出プローブが増幅プライマーの下流にハイブリダイズされる。プローブが切断されると蛍光強度が増加する。公開済みＰＣＴ出願国際公開第９６／２１１４４号には、酵素を介した核酸の切断により蛍光の増加がもたらされる、連続的蛍光定量アッセイが開示されている。蛍光エネルギー移動の使用も提唱されているが、標的へのハイブリダイゼーションによって消失される単一蛍光標識を利用する方法との関連においてのみである。

【0124】

核酸増幅の検出において使用するための、増幅プライマーのハイブリダイゼーション部位の下流にある標的配列にハイブリダイズするシグナルプライマー又は検出プローブが報告されている（米国特許第５，５４７，８６１号）。シグナルプライマーは、増幅プライマーの伸長と同様に、ポリメラーゼによって伸長される。増幅プライマーの伸長により、標的増幅に依存的にシグナルプライマーの伸長産物が置換され、標的増幅の指標として検出され得る二本鎖二次増幅産物が生成される。シグナルプライマーから生成された二次増幅産物は、種々の標識及びレポーター基、切断されることで特徴的なサイズの断片を生成するシグナルプライマー内の制限酵素認識部位、捕捉基、並びに三重らせん体及び二本鎖ＤＮＡ結合タンパク質の認識部位などの構造的特徴によって検出され得る。

【0125】

多くの供与体／受容体色素対は、当該技術分野において公知であり、本開示で使用されてもよい。これらの例としては、限定はされないが、フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）／テトラメチルローダミンイソチオシアネート（ＴＡＬＩＣ）、ＦＩＴＣ／Ｔｅｘａｓ Ｒｅｄ（商標）（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ社）、ＦＩＴＣ／Ｎ−ヒドロキシスクシンイミジル １−ピレンブチレート（ＰＹＢ）、ＦＩＴＣ／エオシンイソチオシアネート（ＥＩＴＣ）、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミジル １−ピレンスルホネート（ＰＹＳ）／ＦＩＴＣ、ＦＩＴＣ／Ｒｈｏｄａｍｉｎｅ Ｘ、及びＦＩＴＣ／テトラメチルローダミン（ＴＡＭＲＡ）などが挙げられる。特定の供与体／受容体フルオロフォア対の選択は重要ではない。エネルギー移動消失機構においては、供与体フルオロフォアの発光波長が受容体の励起波長と重なることだけが必要とされ、すなわち、効率的なエネルギー移動、電荷移動、又は蛍光消光を可能とするには、２つの色素の間に十分なスペクトルの重なりがなくてはならない。Ｐ−（ジメチルアミノフェニルアゾ）安息香酸（ＤＡＢＣＹＬ）は、隣接するフルオロフォア、例えばフルオレセイン又は５−（２’−アミノエチル）アミノナフタレン（ＥＤＡＮＳ）からの蛍光を効果的に消光する非蛍光性受容体色素である。消光が起こる機構にかかわらず、検出核酸（ｄｅｔｅｃｔｏｒ ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ）において蛍光消光をもたらす任意の色素対が本開示の方法における使用に適している。末端標識法及び内部標識法はいずれも当該技術分野において公知であり、供与体色素及び受容体色素を検出核酸内の各々の部位で連結するために日常的に使用され得る。

【0126】

本開示では、特に、（Ｈａｃｉａ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔ，１４：４４１−４４９，１９９６）及び（Ｓｈｏｅｍａｋｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ，１４：４５０−４５６，１９９６）に記載されるようなマイクロアレイ及び／又はチップを用いたＤＮＡ技術による、増幅産物の使用又は解析が意図される。これらの技術には、多数の遺伝子を迅速且つ正確に解析するための定量法が含まれる。遺伝子をオリゴヌクレオチドでタグ付けすることにより、又は固定プローブアレイを用いることにより、チップ技術は、高密度アレイとして標的分子を分離し、これらの分子をハイブリダイゼーションに基づいてスクリーニングするために用いることができる（Ｐｅａｓｅ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ，９１：５０２２−５０２６，１９９４；Ｆｏｄｏｒ ｅｔ ａｌ，Ｎａｔｕｒｅ，３６４：５５５−５５６，１９９３）。

【0127】

また、増幅産物を定量化するために、ＢｉｏＳｔａｒ社製のＯＩＡ技術の使用も意図される。ＯＩＡは、基板としてシリコンウェハーの鏡面表面を利用する。薄膜光学コーティング及び捕捉抗体がシリコンウェハーに結合される。前記コーティングを通して反射された白色光は、金色の背景色として現れる。前記光学的分子薄膜の厚さが変化しない限り、この色は変化しない。

【0128】

前記ウェハーに陽性試料が適用されると、リガンドと抗体との間で結合が生じる。基質が添加されて質量増加が完了すると、分子薄膜の厚みの増加により、金から紫／青への対応する色の変化が生じる。この技術は、参照により本明細書に取り込まれる、米国特許第５，５４１，０５７号に記載されている。

【0129】

増幅ＤＮＡは、リアルタイムＰＣＲ技術（Ｈｉｇｕｃｈｉ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １０：４１３−４１７，１９９２）を用いて定量してもよい。同じ数のサイクルを完了し、且つ直線範囲にある増幅産物の濃度を決定することにより、元のＤＮＡ混合物中の特定の標的配列の相対濃度を決定することが可能である。リアルタイムＰＣＲ実験の目的は、試料中の全ＲＮＡ種又は全ＤＮＡ種の平均存在量に対する、特定のＲＮＡ種又はＤＮＡ種の存在量を決定することである。

【0130】

Ｌｕｍｉｎｅｘ技術は、色分けされたミクロスフェア上に固定化された核酸産物の定量化を可能にする。レポーターと呼ばれる第二の分子を用いて生体分子反応の規模が測定される。レポーター分子は、ミクロスフェア上の分子に結合することで、反応の程度を伝える。ミクロスフェア及びレポーター分子の両方が色分けされているため、デジタル信号処理により、各反応について、信号をリアルタイムの定量的なデータへ変換することが可能となる。標準的な技術は、参照により本明細書に取り込まれる、米国特許第５，７３６，３０３号及び同第６，０５７，１０７号に記載されている。

【0131】

実施例Ｘ
同定技術
標的遺伝子配列の増幅を確認するために、増幅産物を可視化してもよい。１つの典型的な可視化法は、エチジウムブロマイド又はＶｉｓｔｒａ Ｇｒｅｅｎなどの蛍光（色素でのゲルの染色、及び紫外光下での可視化を含む。あるいは、増幅産物が放射性標識ヌクレオチド又は蛍光定量的に標識されたヌクレオチドで一体的に標識されている場合、増幅産物は、Ｘ線フィルムに露光するか、又は、分離後に適切な刺激スペクトル下で可視化することができる。

【0132】

一実施形態では、可視化は核酸プローブを用いて間接的に達成される。増幅産物の分離の後、標識核酸プローブを増幅産物と接触させる。プローブは発色団に結合されていることが好ましいが、放射性標識されていてもよい。別の実施形態では、プローブは抗体又はビオチンなどの結合パートナーに結合されており、結合ペアのもう一方のメンバーが検出可能な部分を有する。他の実施形態では、プローブは蛍光色素又は蛍光標識を取り込んでいる。さらに他の実施形態では、プローブは、増幅された分子の検出に使用され得る質量標識（ｍａｓｓ ｌａｂｅｌ）を有する。他の実施形態では、ＴＡＱＭＡＮプローブ及びＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＢＥＡＣＯＮプローブの使用も意図される。さらに他の実施形態では、標準プローブと組み合わされた固相捕捉法が使用され得る。

【0133】

ＤＮＡ増幅産物内に取り込まれる標識の種類は、解析に使用される方法によって決定される。キャピラリー電気泳動分離、マイクロ流体電気泳動分離、ＨＰＬＣ分離、又はＬＣ分離を用いる場合、取り込まれた、又はインターカレートされた蛍光色素が、増幅産物の標識及び検出に使用される。標識された種が検出器を通過するときに蛍光が定量化されるという点で、試料は動的に検出される。電気泳動法、ＨＰＬＣ、又はＬＣのいずれかを分離に用いる場合、ＤＮＡに固有の性質である産物は紫外光の吸収によって検出することができるため、標識の付加を必要としない。ポリアクリルアミドゲル電気泳動又はスラブゲル電気泳動が使用される場合、増幅反応のためのプライマーは、フルオロフォア、発色団、若しくは放射性同位元素で、又は関連した酵素反応によって、標識することができる。酵素による検出は、ゲル上で増幅産物を分離した後、例えばビオチン：アビジン相互作用を介して酵素をプライマーに結合させ、ルミノールにより生じる化学発光などの化学反応によって検出することを含む。蛍光シグナルは動的にモニタリングすることができる。放射性同位元素又は酵素反応による検出は、最初のゲル電気泳動による分離の後に、ＤＮＡ分子の固相への転写（ブロット）を解析前に必要とする。ブロットが作製された場合、ブロットは、プロービングし、プローブを剥がし、再度プロービングすることにより、２回以上解析することができる。増幅産物が質量分析計を用いて分離された場合、核酸が直接検出されるので標識は必要とされない。

【0134】

いくつかの上記分離プラットフォームを連結することで、２つの異なる特性に基づいて分離を実現することができる。例えば、一部のプライマーを無修飾にしたまま、一部のＰＣＲプライマーを親和性捕捉を可能にする部分と連結することができる。修飾には、糖（レクチンカラムへの結合用）、疎水性基（逆相カラムへの結合用）、ビオチン（ストレプトアビジンカラムへの結合用）、又は抗原（抗体カラムへの結合用）が含まれ得る。試料はアフィニティークロマトグラフィーカラムに流される。フロースルー画分が集収され、結合画分が（化学的切断、塩溶出などにより）溶出される。次いで、各試料が質量などの特性に基づいてさらに分画され、個々の成分が同定される。

【0135】

実施例ＸＩ
キット
本開示の増幅法に必要な材料及び試薬はキット内に一緒にまとめることができる。本開示のキットは概して、必要に応じてプライマーセットと共に、特許請求された方法を実行するために必要な、（トランスポザーゼ酵素及びトランスポゾンＤＮＡからなる）トランスポソーム、ヌクレオチド、及びＤＮＡポリメラーゼを少なくとも含む。好ましい実施形態では、キットはＤＮＡ試料からＤＮＡを増幅するための指示書も含むことになる。例示的なキットは、全ゲノムＤＮＡの増幅での使用に適したキットである。いずれの場合でも、キットはそれぞれの試薬、酵素又、は反応物のための別個の容器を含むことが好ましいであろう。各試薬は通常、それぞれの容器に適切に分注されることになる。キットの収容手段（ｃｏｎｔａｉｎｅｒ ｍｅａｎｓ）は通常、少なくとも１つのバイアル又は試験管を含むことになる。試薬を入れ分注するためのフラスコ、ビン、及び他の収容手段も可能である。キットの個々の容器は、商業的販売のためにきつく密閉した状態で維持されることが好ましいであろう。好適な大型容器として、所望のバイアルが中に保持される、射出成形又は中空成形プラスチック製容器が挙げられ得る。キットと共に説明書が提供されることが好ましい。

【0136】

実施例ＸＩＩ
実施形態
本開示は、トランスポゾンＤＮＡに結合しているトランスポザーゼの複数の二量体で水性媒体中のゲノムＤＮＡを処理すること、ここで前記トランスポゾンＤＮＡは、トランスポザーゼ結合部位及び特異的ＰＣＲプライマー結合部位を含み、前記複数の二量体は、前記二本鎖核酸上の標的部位に結合し、前記トランスポザーゼは、前記ゲノムＤＮＡをゲノムＤＮＡ断片ライブラリーを表す複数の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片に切断し、各二本鎖ゲノムＤＮＡ断片はそれぞれの５′末端に前記トランスポゾンＤＮＡが結合している、前記トランスポゾンＤＮＡと前記ゲノムＤＮＡ断片の間のギャップについてギャップフィリングを行って各末端に特異的ＰＣＲプライマー結合部位を有する二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物のライブラリーを形成すること、前記水性媒体を油相内における多数の水性液滴へと分割すること、ここで水性液滴はそれぞれ、単一の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片を含み、増幅試薬をさらに含む、前記水性液滴のそれぞれについて、前記水性液滴内の前記二本鎖ゲノムＤＮＡ断片を増幅して前記二本鎖ゲノムＤＮＡ断片のアンプリコンを前記水性液滴内で作製すること、ここで前記サブセットの全ての液滴で増幅が起こる、及び前記水性液滴の解乳化によって前記水性液滴から前記アンプリコンを収集することを含む、ゲノム核酸を増幅する方法を提供する。

【0137】

本開示は、ゲノムＤＮＡをトランスポゾンＤＮＡに結合しているトランスポザーゼの複数の二量体に接触させること、ここで前記トランスポゾンＤＮＡは、トランスポザーゼ結合部位、任意に存在してもよいバーコード配列、及びプライマー結合部位を含み、前記複数の二量体は、前記二本鎖核酸上の標的部位に結合し、前記トランスポザーゼは、前記ゲノムＤＮＡをゲノムＤＮＡ断片ライブラリーを表す複数の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片に切断し、各二本鎖ゲノムＤＮＡ断片はそれぞれの５′末端に前記トランスポゾンＤＮＡが結合している、前記トランスポゾンＤＮＡと前記ゲノムＤＮＡ断片の間のギャップについてギャップフィリングを行って各末端にプライマー結合部位を有する二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物のライブラリーを形成すること、油相内に複数の水性液滴のサブセットを作製すること、ここで前記サブセットの水性液滴はそれぞれ、前記ライブラリーの単一の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物及び増幅試薬を含む、前記サブセットの水性液滴内のそれぞれについて、前記水性液滴内の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片を増幅して前記二本鎖ゲノムＤＮＡ断片のアンプリコンを前記水性液滴内で作製すること、ここで前記サブセットの全ての液滴で増幅が起こる、及び前記サブセットの前記水性液滴内から前記アンプリコンを収集することを含む、ゲノム核酸を増幅する方法を提供する。ある態様によれば、前記ゲノムＤＮＡは、単一の細胞から得られた全ゲノムＤＮＡである。ある態様によれば、前記トランスポザーゼは、Ｔｎ５トランスポザーゼである。ある態様によれば、前記トランスポゾンＤＮＡは、バーコード配列を含む。ある態様によれば、前記トランスポゾンＤＮＡはバーコード配列を含み、それぞれの５′末端に前記プライマー結合部位を有する。ある態様によれば、前記トランスポゾンＤＮＡは、二本鎖１９ｂｐ Ｔｎｐ結合部位及びオーバーハングを含み、前記オーバーハングは、その５′末端にバーコード配列及びプライマー結合部位を含む。ある態様によれば、ギャップフィリン及び前記二本鎖ゲノムＤＮＡ断片の伸長の前に、結合しているトランスポザーゼが前記二本鎖断片から除去される。ある態様によれば、前記トランスポザーゼが、それぞれトランスポゾンＤＮＡと複合体を形成したＴｎ５トランスポザーゼであって、前記トランスポゾンＤＮＡが二本鎖１９ｂｐ Ｔｎｐ結合部位及びオーバーハングを含み、前記オーバーハングがバーコード配列及びプライマー結合部位を含む。ある態様によれば、前記方法は、前記サブセットの前記水性液滴内から収集された前記アンプリコンを配列決定するステップをさらに含む。ある態様によれば、前記方法は、前記サブセットの前記水性液滴内から収集された前記アンプリコン内の一塩基変異を検出するステップをさらに含む。ある態様によれば、前記方法は、前記サブセットの前記水性液滴内から収集された前記アンプリコン内のコピー数変異を検出するステップをさらに含む。ある態様によれば、前記方法は、前記サブセットの前記水性液滴内から収集された前記アンプリコン内の構造変異を検出するステップをさらに含む。ある態様によれば、前記ゲノムＤＮＡは、出生前細胞に由来する。ある態様によれば、前記ゲノムＤＮＡは、癌細胞に由来する。ある態様によれば、前記ゲノムＤＮＡは、血中循環腫瘍細胞に由来する。ある態様によれば、前記ゲノムＤＮＡは、単一の出生前細胞に由来する。ある態様によれば、前記ゲノムＤＮＡは、単一の癌細胞に由来する。ある態様によれば、前記ゲノムＤＮＡは、単一の血中循環腫瘍細胞に由来する。ある態様によれば、前記ライブラリー内の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物の存在数以上の液滴を作製するように、二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物の前記ライブラリー及び増幅試薬を含む適量の水性媒体を油と組み合わせることで前記油相内に前記複数の水性液滴が作製される。ある態様によれば、前記ライブラリー内の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物の存在数以上の液滴を作製するように、二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物の前記ライブラリー及び増幅試薬を含む適量の水性媒体を油と組み合わせることで前記油相内に前記複数の水性液滴が作製され、前記複数の水性液滴は自然発生的に生成する。ある態様によれば、前記ライブラリー内の二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物の存在数以上の液滴を作製するように、二本鎖ゲノムＤＮＡ断片伸長産物の前記ライブラリー及び増幅試薬を含む適量の水性媒体を油と組み合わせることで前記油相内に前記複数の水性液滴が作製され、前記複数の水性液滴が前記油相及び前記水性媒体を激しく混合することによって作製される。ある態様によれば、前記油相内の前記複数の水性液滴の前記サブセットが、マイクロ流体チップ内で前記油相及び前記水性媒体を組み合わせることで作製される。ある様によれば、前記サブセットの各水性液滴内における前記二本鎖ゲノムＤＮＡ断片の増幅が、マイクロ流体チップ内で実施される。ある態様によれば、前記プライマー結合部位が、特異的ＰＣＲプライマー結合部位である。ある態様によれば、前記サブセットの全ての液滴内で起こる増幅は、特異的プライマー配列を使用したＰＣＲ増幅である。

【図1】

【図2】

【図3】

【図4】

【図5】

【図6】

【図7】