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(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】公開特許公報(A)
(11)【公開番号】P2022012236
(43)【公開日】2022-01-17
(54)【発明の名称】殺菌・ウイルス不活性化組成物
(51)【国際特許分類】
A01N 31/02 20060101AFI20220107BHJP
A01P 1/00 20060101ALI20220107BHJP
A01P 3/00 20060101ALI20220107BHJP
【ＦＩ】
A01N31/02
A01P1/00
A01P3/00
【審査請求】未請求
【請求項の数】6
【出願形態】ＯＬ
(21)【出願番号】P 2020113914
(22)【出願日】2020-07-01
(71)【出願人】
【識別番号】000190736
【氏名又は名称】株式会社ニイタカ
(74)【代理人】
【識別番号】110000914
【氏名又は名称】特許業務法人 安富国際特許事務所
(72)【発明者】
【氏名】野口 博章
(72)【発明者】
【氏名】守屋 貴弘
【テーマコード（参考）】
4H011
【Ｆターム（参考）】
4H011AA02
4H011AA04
4H011BA02
4H011BB03
4H011BC04
4H011BC09
4H011BC10
4H011DA13
4H011DF04
(57)【要約】
【課題】 充分な殺菌効果及びウイルス不活性化効果を示し、使用対象や人の皮膚を傷つけにくい殺菌・ウイルス不活性化組成物を提供する。
【解決手段】 低級アルコールと、酸解離定数（ｐＫａ）が９．０以上のアミン化合物とを含むことを特徴とする殺菌・ウイルス不活性化組成物。
【選択図】 なし
【解決手段】 低級アルコールと、酸解離定数（ｐＫａ）が９．０以上のアミン化合物とを含むことを特徴とする殺菌・ウイルス不活性化組成物。
【選択図】 なし
【特許請求の範囲】
【請求項1】
低級アルコールと、
酸解離定数（ｐＫａ）が９．０以上のアミン化合物とを含むことを特徴とする殺菌・ウイルス不活性化組成物。
酸解離定数（ｐＫａ）が９．０以上のアミン化合物とを含むことを特徴とする殺菌・ウイルス不活性化組成物。
【請求項2】
前記低級アルコールは、蒸気圧が５０Ｐａ以上である請求項１に記載の殺菌・ウイルス不活性化組成物。
【請求項3】
前記低級アルコールは、エタノール、ｎ－プロピルアルコール及びイソプロピルアルコールからなる群から選択される少なくとも１種である請求項１又は２に記載の殺菌・ウイルス不活性化組成物。
【請求項4】
前記アミン化合物は、蒸気圧が５０Ｐａ以上である請求項１～３のいずれかに記載の殺菌・ウイルス不活性化組成物。
【請求項5】
前記アミン化合物は、アミノエタノール、アミノプロパノール、アミノブタノール、メチルエタノールアミン、エチルエタノールアミン、ブチルエタノールアミン、ジメチルアミノエタノール、アミノメチルプロパノール、アミノブチルプロパノール、エチレンジアミン、ジエチレントリアミン、トリエチレンテトラミン、ピペリジン、ピロリジン、ピペラジン、ベンジルアミン、アミノメチルベンジルアミン、アミノエチルベンジルアミン及びアミノエトキシベンジルアミンからなる群から選択される少なくとも１種である請求項１～４のいずれかに記載の殺菌・ウイルス不活性化組成物。
【請求項6】
トイレ用である請求項１～５のいずれかに記載の殺菌・ウイルス不活性化組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、殺菌・ウイルス不活性化組成物に関する。
【背景技術】
【0002】
黄色ブドウ球菌や、サルモネラ菌等の細菌は、食中毒を引き起こす原因菌として知られている。これらの細菌による食中毒を防ぐために、低級アルコールや四級アンモニウム化合物等の殺菌組成物を用いてこれらの細菌を殺菌することは従来より行われている。
【0003】
また、近年、ノロウイルス等のウイルスによる感染性胃腸炎あるいは食中毒の発生が一年を通じて多発しており、特に１１～３月が発生のピークとなっている。特にノロウイルスは、カリシウイルス科、ノロウイルス属に分類されるエンベロープを持たないＲＮＡウイルス（以下、「ノロウイルス等」と記載する）であり、アルコール（エタノール、イソプロパノール等）、熱、酸性（胃酸等）、又は、乾燥等に対して強い抵抗力を有する。潜伏期間は１～２日であると考えられており、嘔気、嘔吐、下痢の主症状が出るが、腹痛、頭痛、発熱、悪寒、筋痛、咽頭痛、倦怠感等を伴うこともある。
【0004】
細菌やウイルスによる食中毒を防ぐための組成物として、特許文献１には、低級アルコールと、アルカリ剤と、カチオン界面活性剤を含む組成物が開示されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0005】
【特許文献1】特開２００８－１８９６４５号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0006】
特許文献１に記載の組成物は、カチオン界面活性剤やアルカリ剤を含む。引用文献１に記載の組成物を使用すると、カチオン界面活性剤やアルカリ剤が使用対象の表面に長時間留まることがあり、これが原因となり使用対象が損傷するという問題が生じることがあった。また、カチオン界面活性剤やアルカリ剤が使用対象の表面に長時間留まるので、人の皮膚に触れやすくなる。カチオン界面活性剤やアルカリ剤が、人の皮膚に触れると、人の皮膚が荒れる等の問題が生じることがあった。
これは、カチオン界面活性剤やアルカリ剤の揮発性が低く、自然に蒸発しないことが原因と考えられた。
これは、カチオン界面活性剤やアルカリ剤の揮発性が低く、自然に蒸発しないことが原因と考えられた。
【0007】
本発明は、上記問題点を解決するためになされた発明であり、本発明の目的は、充分な殺菌効果及びウイルス不活性化効果を示し、使用対象や人の皮膚を傷つけにくい殺菌・ウイルス不活性化組成物を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【0008】
すなわち、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物は、低級アルコールと、酸解離定数（ｐＫａ）が９．０以上のアミン化合物とを含むことを特徴とする。
【0009】
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物は、酸解離定数（ｐＫａ）が９．０以上のアミン化合物を含む。このようなアミン化合物は、低級アルコールと組み合わされることにより低級アルコールの殺菌効果及びウイルス不活性化効果を向上させることができる。
なお、本明細書におけるアミン化合物のｐＫａは、２５℃におけるｐＫａを意味する。
なお、本明細書におけるアミン化合物のｐＫａは、２５℃におけるｐＫａを意味する。
【0010】
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物は、上記低級アルコールは、蒸気圧が５０Ｐａ以上であることが好ましい。
低級アルコールの蒸気圧が５０Ｐａ以上であると揮発性が高いので、使用後に成分が残りにくい。
なお、本明細書に低級アルコールの蒸気圧は、２０℃における蒸気圧を意味する。
また、本明細書において「蒸気圧」とは、Ａｎｔｏｉｎｅ式による値を意味する。
低級アルコールの蒸気圧が５０Ｐａ以上であると揮発性が高いので、使用後に成分が残りにくい。
なお、本明細書に低級アルコールの蒸気圧は、２０℃における蒸気圧を意味する。
また、本明細書において「蒸気圧」とは、Ａｎｔｏｉｎｅ式による値を意味する。
【0011】
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物では、上記低級アルコールは、エタノール、ｎ－プロピルアルコール、イソプロピルアルコールからなる群から選択される少なくとも１種であることが好ましい。
これらの低級アルコールは、殺菌及びウイルス不活性化効果が高く揮発性も高い。
これらの低級アルコールは、殺菌及びウイルス不活性化効果が高く揮発性も高い。
【0012】
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物では、前記アミン化合物は、蒸気圧が５０Ｐａ以上であることが好ましい。
アミン化合物の蒸気圧が５０Ｐａ以上であると揮発性が高いので、使用後に成分が残りにくい。
なお、本明細書におけるアミン化合物の蒸気圧は、２０℃における蒸気圧を意味する。
アミン化合物の蒸気圧が５０Ｐａ以上であると揮発性が高いので、使用後に成分が残りにくい。
なお、本明細書におけるアミン化合物の蒸気圧は、２０℃における蒸気圧を意味する。
【0013】
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物では、上記アミン化合物は、アミノエタノール、アミノプロパノール、アミノブタノール、メチルエタノールアミン、エチルエタノールアミン、ブチルエタノールアミン、ジメチルアミノエタノール、アミノメチルプロパノール、アミノブチルプロパノール、エチレンジアミン、ジエチレントリアミン、トリエチレンテトラミン、ピペリジン、ピロリジン、ピペラジン、ベンジルアミン、アミノメチルベンジルアミン、アミノエチルベンジルアミン及びアミノエトキシベンジルアミンからなる群から選択される少なくとも１種であることが好ましい。
これらのアミン化合物は、揮発性が高く、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物の殺菌効果及びウイルス不活性化効果を高くすることができる。
これらのアミン化合物は、揮発性が高く、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物の殺菌効果及びウイルス不活性化効果を高くすることができる。
【0014】
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物は、トイレ用であることが好ましい。
トイレは細菌感染や、ウイルス感染のリスクが高いことが分かっており、高い殺菌及びウイルス不活性化効果が求められている。
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物をトイレの便器や便座、床、壁等に用いることにより、好適に殺菌・ウイルス不活性化を行うことができる。
また、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物は、使用対象である、便器や便座、床、壁等を痛めにくい。また、人の皮膚に付着したとしても人の皮膚を傷つけにくい。
そのため、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物をトイレに用いた際に、便器や便座に本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物が残留しており、次に便器を利用する者の皮膚に本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物が付着したとしても、その者の皮膚を傷つけにくい。
トイレは細菌感染や、ウイルス感染のリスクが高いことが分かっており、高い殺菌及びウイルス不活性化効果が求められている。
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物をトイレの便器や便座、床、壁等に用いることにより、好適に殺菌・ウイルス不活性化を行うことができる。
また、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物は、使用対象である、便器や便座、床、壁等を痛めにくい。また、人の皮膚に付着したとしても人の皮膚を傷つけにくい。
そのため、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物をトイレに用いた際に、便器や便座に本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物が残留しており、次に便器を利用する者の皮膚に本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物が付着したとしても、その者の皮膚を傷つけにくい。
【発明の効果】
【0015】
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物では、酸解離定数（ｐＫａ）が９．０以上のアミン化合物を含む。このようなアミン化合物は、低級アルコールと組み合わされることにより低級アルコールの殺菌効果及びウイルス不活性化効果を向上させることができる。
【発明を実施するための形態】
【0016】
以下、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物について具体的な実施形態を示しながら説明する。しかしながら、本発明は、以下の実施形態に限定されるものではなく、本発明の要旨を変更しない範囲において適宜変更して適用することができる。
【0017】
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物は、低級アルコールと、酸解離定数（ｐＫａ）が９．０以上のアミン化合物とを含むことを特徴とする。
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物の各構成について以下に説明する。
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物の各構成について以下に説明する。
【0018】
（低級アルコール）
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物では、低級アルコールの濃度は２０．００ｗｔ％以上であることが好ましく、２５．００～８５．７０ｗｔ％であることがより好ましく、３０．００～７０．００ｗｔ％であることがさらに好ましい。
低級アルコールの濃度が２０．００ｗｔ％以上であると、優れた殺菌効果及びウイルス不活性化効果を奏する。
なお、低級アルコールの濃度が８５．７０ｗｔ％を超える場合、ウイルス不活性化効果が低下する。
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物では、低級アルコールの濃度は２０．００ｗｔ％以上であることが好ましく、２５．００～８５．７０ｗｔ％であることがより好ましく、３０．００～７０．００ｗｔ％であることがさらに好ましい。
低級アルコールの濃度が２０．００ｗｔ％以上であると、優れた殺菌効果及びウイルス不活性化効果を奏する。
なお、低級アルコールの濃度が８５．７０ｗｔ％を超える場合、ウイルス不活性化効果が低下する。
【0019】
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物では、低級アルコールは、蒸気圧が５０Ｐａ以上であることが好ましく、１０００Ｐａ以上であることがより好ましい。
低級アルコールの蒸気圧が５０Ｐａ以上であると揮発性が高いので、使用後に成分が残りにくい。
低級アルコールの蒸気圧が５０Ｐａ以上であると揮発性が高いので、使用後に成分が残りにくい。
【0020】
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物では、上記低級アルコールは、エタノール、ｎ－プロピルアルコール、イソプロピルアルコールからなる群から選択される少なくとも１種であることが好ましい。これらの中では、エタノールであることがより好ましい。
これらの低級アルコールは、殺菌及びウイルス不活性化効果が高く揮発性も高い。
なお、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物には、１種の低級アルコールのみ含まれていてもよく、２種以上の低級アルコールが含まれていてもよい。
これらの低級アルコールは、殺菌及びウイルス不活性化効果が高く揮発性も高い。
なお、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物には、１種の低級アルコールのみ含まれていてもよく、２種以上の低級アルコールが含まれていてもよい。
【0021】
（アミン化合物）
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物では、アミン化合物のｐＫａは、９．０以上である。また、アミン化合物のｐＫａは、９．１５ｐＫａ以上であることがより好ましく、９．３ｐＫａ以上であることがより好ましい。
アミン化合物のｐＫａが９．０以上であると、アミン化合物は、低級アルコールと組み合わされることにより低級アルコールの殺菌効果及びウイルス不活性化効果を向上させることができる。
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物では、アミン化合物のｐＫａは、９．０以上である。また、アミン化合物のｐＫａは、９．１５ｐＫａ以上であることがより好ましく、９．３ｐＫａ以上であることがより好ましい。
アミン化合物のｐＫａが９．０以上であると、アミン化合物は、低級アルコールと組み合わされることにより低級アルコールの殺菌効果及びウイルス不活性化効果を向上させることができる。
【0022】
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物では、アミン化合物の濃度は０．２～１０ｗｔ％であることが好ましく、０．５～５ｗｔ％であることがより好ましい。
アミン化合物の濃度が０．２ｗｔ％未満であると、殺菌効果及びウイルス不活性化効果が充分になりにくくなる。
アミン化合物の濃度が１０ｗｔ％を超えると、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物の使用後に使用対象にアミン化合物が残りやすくなる。
アミン化合物の濃度が０．２ｗｔ％未満であると、殺菌効果及びウイルス不活性化効果が充分になりにくくなる。
アミン化合物の濃度が１０ｗｔ％を超えると、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物の使用後に使用対象にアミン化合物が残りやすくなる。
【0023】
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物では、アミン化合物は、蒸気圧が５０Ｐａ以上であることが好ましく、１００Ｐａ以上であることがより好ましく、２００Ｐａ以上であることがより好ましい。
アミン化合物の蒸気圧が５０Ｐａ以上であると揮発性が高いので、使用後に成分が残りにくい。
アミン化合物の蒸気圧が５０Ｐａ以上であると揮発性が高いので、使用後に成分が残りにくい。
【0024】
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物では、アミン化合物は、アミノエタノール、アミノプロパノール、アミノブタノール、メチルエタノールアミン、エチルエタノールアミン、ブチルエタノールアミン、ジメチルアミノエタノール、アミノメチルプロパノール、アミノブチルプロパノール、エチレンジアミン、ジエチレントリアミン、トリエチレンテトラミン、ピペリジン、ピロリジン、ピペラジン、ベンジルアミン、アミノメチルベンジルアミン、アミノエチルベンジルアミン及びアミノエトキシベンジルアミンからなる群から選択される少なくとも１種であることが好ましい。
これらの中では、モノイソプロパノールアミン及びメチルエタノールアミンが好ましい。
なお、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物には、１種のアミン化合物のみ含まれていてもよく、２種以上のアミン化合物が含まれていてもよい。
これらの中では、モノイソプロパノールアミン及びメチルエタノールアミンが好ましい。
なお、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物には、１種のアミン化合物のみ含まれていてもよく、２種以上のアミン化合物が含まれていてもよい。
【0025】
（その他の成分）
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物には、上記の成分以外に界面活性剤、キレート剤、可溶化剤、溶剤、増粘剤、酵素等が含まれていてもよい。
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物には、上記の成分以外に界面活性剤、キレート剤、可溶化剤、溶剤、増粘剤、酵素等が含まれていてもよい。
【0026】
界面活性剤としては、特に限定されず、アニオン界面活性剤、ノニオン界面活性剤、両性界面活性剤等を用いることができる。
これらの中では、例えば、直鎖アルキルベンゼンスルホン酸塩、アルキル硫酸エステル塩、アルキルエーテル硫酸エステル塩、アルカンスルホン酸ナトリウム、α－オレフィンスルホン酸ナトリウム、脂肪酸塩、アルキルベタイン、アルキルアミンオキシド、アルキルグルコシド、ポリオキシアルキレンアルキルエーテル等が挙げられる。
これらの中では、例えば、直鎖アルキルベンゼンスルホン酸塩、アルキル硫酸エステル塩、アルキルエーテル硫酸エステル塩、アルカンスルホン酸ナトリウム、α－オレフィンスルホン酸ナトリウム、脂肪酸塩、アルキルベタイン、アルキルアミンオキシド、アルキルグルコシド、ポリオキシアルキレンアルキルエーテル等が挙げられる。
【0027】
キレート剤としては、特に限定されないが、ニトリロ三酢酸三ナトリウム、エチレンジアミン四酢酸四ナトリウム、エチレンジアミン四酢酸二ナトリウム、メチルグリシン二酢酸ナトリウム、エチレンジアミンテトラメチレンホスホン酸ナトリウム、ホスホノブタントリカルボン酸ナトリウム、クエン酸ナトリウム等が挙げられる。
なお、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物では、これらキレート剤を１種類だけ含んでいてもよく、複数種類含んでいてもよい。
なお、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物では、これらキレート剤を１種類だけ含んでいてもよく、複数種類含んでいてもよい。
【0028】
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物のｐＨは、１０～１３であることが好ましい。
このようなｐＨであると、抗ウイルス不活性化効果が向上する。
なお、殺菌・ウイルス不活性化組成物のｐＨが１３を超えると、手荒れが生じたり、使用対象物が劣化しやすくなる。
このようなｐＨであると、抗ウイルス不活性化効果が向上する。
なお、殺菌・ウイルス不活性化組成物のｐＨが１３を超えると、手荒れが生じたり、使用対象物が劣化しやすくなる。
【0029】
次に、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物の用途を説明する。
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物は、手洗い液、中性洗剤、消臭剤に加えてもよい。
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物を含む手洗い液、中性洗剤、消臭剤等は、ポンプボトルやスプレーボトルに詰められていてもよい。
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物は、手洗い液、中性洗剤、消臭剤に加えてもよい。
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物を含む手洗い液、中性洗剤、消臭剤等は、ポンプボトルやスプレーボトルに詰められていてもよい。
【0030】
また本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物を、衛生資材に用いてもよい。
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物は、殺菌効果及びウイルス不活性化効果を奏するので、このような殺菌・ウイルス不活性化組成物を含む衛生資材を用いることにより、感染症を防ぐことができる。
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物は、殺菌効果及びウイルス不活性化効果を奏するので、このような殺菌・ウイルス不活性化組成物を含む衛生資材を用いることにより、感染症を防ぐことができる。
【0031】
衛生資材としては、特に限定されるものではないが、例えば、マスク、使い捨て手袋、使い捨て布巾、ティッシュペーパー、ウエットティッシュ等があげられる。
【0032】
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物の使用場所は特に限定されず、例えば、硬質表面全般に使用できるが、トイレに使用されることが好ましい。
なお、本明細書において「トイレに使用される」とは、トイレの便器や便座、床、壁等、トイレの中に存在するものに使用することを意味する。
なお、本明細書において「トイレに使用される」とは、トイレの便器や便座、床、壁等、トイレの中に存在するものに使用することを意味する。
【0033】
トイレは細菌感染や、ウイルス感染のリスクが高いことが分かっており、高い殺菌及びウイルス不活性化効果が求められている。
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物をトイレの便器や便座、床、壁等に用いることにより、好適に殺菌・ウイルス不活性化を行うことができる。
本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物をトイレの便器や便座、床、壁等に用いることにより、好適に殺菌・ウイルス不活性化を行うことができる。
【0034】
また、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物は、使用対象である、便器や便座、床、壁等を痛めにくい。また、人の皮膚に付着したとしても人の皮膚を傷つけにくい。
そのため、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物をトイレに用いた際に、便器や便座に本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物が残留しており、次に便器を利用する者の皮膚に本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物が付着したとしても、その者の皮膚を傷つけにくい。
そのため、本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物をトイレに用いた際に、便器や便座に本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物が残留しており、次に便器を利用する者の皮膚に本発明の殺菌・ウイルス不活性化組成物が付着したとしても、その者の皮膚を傷つけにくい。
【実施例0035】
（実施例１～１９）及び（比較例１～１３）
表１及び２に記載の配合により実施例１～１９及び比較例１～１３に係る殺菌・ウイルス不活性化組成物を作製した。
なお、表１及び２における組成の数値は、「ｗｔ％」を意味する。
表１及び２に記載の配合により実施例１～１９及び比較例１～１３に係る殺菌・ウイルス不活性化組成物を作製した。
なお、表１及び２における組成の数値は、「ｗｔ％」を意味する。
【0036】
【表1】
【0037】
【表2】
【0038】
（ネコカリシウイルス不活化効果）
（１）ネコカリシウイルスを、ネコ腎由来株化細胞であるＣＲＦＫ細胞（ＡＴＣＣ ＣＣＬ－９４）に感染させて細胞を培養した。
（２）次に、ネコカリシウイルスが感染したかどうかを細胞変性効果（Ｃｙｔｏｐａｔｈｉｃ ｅｆｆｅｃｔ：ＣＰＥ）により確認した。
細胞変性効果を確認した後、培養細胞の凍結融解を繰り返すことにより、培養細胞を破砕した。
（３）培養細胞破砕液を遠心分離し、上清を回収しウイルス溶液とした。
（４）各実施例及び各比較例に係る殺菌・ウイルス不活性化組成物と、ウイルス溶液とを９：１の割合（容量）で混合し、室温で３０秒経過後、ＯＰＴＩ－ＭＥＭ培地で１００倍希釈することにより、各殺菌・ウイルス不活性化組成物のウイルスに対する作用を停止させた。
この工程により得られた溶液を殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液とする。
（５）ＯＰＴＩ－ＭＥＭ培地と、ウイルス溶液とを９：１の割合（容量）で混合した直後、ＯＰＴＩ－ＭＥＭ培地で１００倍希釈することにより、得られた溶液を殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液とした。
（６）殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液、殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液を、それぞれ、ＯＰＴＩ－ＭＥＭ培地により１０倍段階希釈した。ＣＲＦＫ細胞を培養した９６ｗｅｌｌマイクロプレートの培地を捨て、段階希釈液を１００μＬずつ加えた。
（７）殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液及び殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液の段階希釈液が加えられたＣＲＦＫ細胞を３７℃、５％ＣＯ２の条件で、４日間培養した。
（８）培養したＣＲＦＫ細胞のＣＰＥを指標にＴＣＩＤ５０（Ｔｉｓｓｕｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ Ｄｏｓｅ ５０％）により各ウイルス溶液のウイルス感染力価（対数）を定量した。
（９）上記（１）～（８）の工程を３回独立に行い、殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液を用いて算出されたウイルス感染力価の平均値を、作用時間０秒におけるウイルス感染力価とし、殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液を用いて算出されたウイルス感染力価の平均値を、作用時間３０秒におけるウイルス感染力価の値とした。
評価基準は以下の通りである。結果を表１及び２に示す。
○：３．０以上の感染力価の減少
×：３．０未満の感染力価の減少
（１）ネコカリシウイルスを、ネコ腎由来株化細胞であるＣＲＦＫ細胞（ＡＴＣＣ ＣＣＬ－９４）に感染させて細胞を培養した。
（２）次に、ネコカリシウイルスが感染したかどうかを細胞変性効果（Ｃｙｔｏｐａｔｈｉｃ ｅｆｆｅｃｔ：ＣＰＥ）により確認した。
細胞変性効果を確認した後、培養細胞の凍結融解を繰り返すことにより、培養細胞を破砕した。
（３）培養細胞破砕液を遠心分離し、上清を回収しウイルス溶液とした。
（４）各実施例及び各比較例に係る殺菌・ウイルス不活性化組成物と、ウイルス溶液とを９：１の割合（容量）で混合し、室温で３０秒経過後、ＯＰＴＩ－ＭＥＭ培地で１００倍希釈することにより、各殺菌・ウイルス不活性化組成物のウイルスに対する作用を停止させた。
この工程により得られた溶液を殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液とする。
（５）ＯＰＴＩ－ＭＥＭ培地と、ウイルス溶液とを９：１の割合（容量）で混合した直後、ＯＰＴＩ－ＭＥＭ培地で１００倍希釈することにより、得られた溶液を殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液とした。
（６）殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液、殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液を、それぞれ、ＯＰＴＩ－ＭＥＭ培地により１０倍段階希釈した。ＣＲＦＫ細胞を培養した９６ｗｅｌｌマイクロプレートの培地を捨て、段階希釈液を１００μＬずつ加えた。
（７）殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液及び殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液の段階希釈液が加えられたＣＲＦＫ細胞を３７℃、５％ＣＯ２の条件で、４日間培養した。
（８）培養したＣＲＦＫ細胞のＣＰＥを指標にＴＣＩＤ５０（Ｔｉｓｓｕｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ Ｄｏｓｅ ５０％）により各ウイルス溶液のウイルス感染力価（対数）を定量した。
（９）上記（１）～（８）の工程を３回独立に行い、殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液を用いて算出されたウイルス感染力価の平均値を、作用時間０秒におけるウイルス感染力価とし、殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液を用いて算出されたウイルス感染力価の平均値を、作用時間３０秒におけるウイルス感染力価の値とした。
評価基準は以下の通りである。結果を表１及び２に示す。
○：３．０以上の感染力価の減少
×：３．０未満の感染力価の減少
【0039】
（マウスノロウイルス不活化効果）
（１）マウスノロウイルスを、マウスのマクロファージ由来細胞株であるＲＡＷ ２６４．７細胞（ＡＴＣＣ ＴＩＢ－７１）に感染させて細胞を培養した。
（２）次に、マウスノロウイルスが感染したかどうかを細胞変性効果（Ｃｙｔｏｐａｔｈｉｃ ｅｆｆｅｃｔ：ＣＰＥ）により確認した。
細胞変性効果を確認した後、培養細胞の凍結融解を繰り返すことにより、培養細胞を破砕した。
（３）培養細胞破砕液を遠心分離し、上清を回収しウイルス溶液とした。
（４）各実施例及び各比較例に係る殺菌・ウイルス不活性化組成物と、ウイルス溶液とを９：１の割合（容量）で混合し、室温で３０秒経過後、１０％牛胎児血清含有ＤＭＥＭ培地で１００倍希釈することにより、各殺菌・ウイルス不活性化組成物のウイルスに対する作用を停止させた。
この工程により得られた溶液を殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液とした。
（５）１０％牛胎児血清含有ＤＭＥＭ培地と、ウイルス溶液とを９：１の割合（容量）で混合した直後、１０％牛胎児血清含有ＤＭＥＭ培地で１００倍希釈することにより、得られた溶液を殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液とした。
（６）殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液及び殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液を、それぞれ、１０％牛胎児血清含有ＤＭＥＭ培地により、１０倍段階希釈した。１ウェルにＲＡＷ ２６４．７細胞を５０μＬずつ分注した９６ｗｅｌｌマイクロプレートに、各段階希釈液を５０μＬずつ加えた。
（７）殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液及び殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液の段階希釈液が加えられたＲＡＷ ２６４．７細胞を３７℃、５％ＣＯ２の条件で、４日間培養した。
（８）培養したＲＡＷ ２６４．７細胞のＣＰＥを指標にＴＣＩＤ５０（Ｔｉｓｓｕｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ Ｄｏｓｅ ５０％）により各ウイルス溶液のウイルス感染力価（対数）を定量した。
（９）上記（１）～（８）の工程を３回独立に行い、殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液を用いて算出されたウイルス感染力価の平均値を、作用時間０秒におけるウイルス感染力価とし、殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液を用いて算出されたウイルス感染力価の平均値を、作用時間３０秒におけるウイルス感染力価の値とした。
評価基準は以下の通りである。結果を表１及び２に示す。
○：３．０以上の感染力価の減少
×：３．０未満の感染力価の減少
（１）マウスノロウイルスを、マウスのマクロファージ由来細胞株であるＲＡＷ ２６４．７細胞（ＡＴＣＣ ＴＩＢ－７１）に感染させて細胞を培養した。
（２）次に、マウスノロウイルスが感染したかどうかを細胞変性効果（Ｃｙｔｏｐａｔｈｉｃ ｅｆｆｅｃｔ：ＣＰＥ）により確認した。
細胞変性効果を確認した後、培養細胞の凍結融解を繰り返すことにより、培養細胞を破砕した。
（３）培養細胞破砕液を遠心分離し、上清を回収しウイルス溶液とした。
（４）各実施例及び各比較例に係る殺菌・ウイルス不活性化組成物と、ウイルス溶液とを９：１の割合（容量）で混合し、室温で３０秒経過後、１０％牛胎児血清含有ＤＭＥＭ培地で１００倍希釈することにより、各殺菌・ウイルス不活性化組成物のウイルスに対する作用を停止させた。
この工程により得られた溶液を殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液とした。
（５）１０％牛胎児血清含有ＤＭＥＭ培地と、ウイルス溶液とを９：１の割合（容量）で混合した直後、１０％牛胎児血清含有ＤＭＥＭ培地で１００倍希釈することにより、得られた溶液を殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液とした。
（６）殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液及び殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液を、それぞれ、１０％牛胎児血清含有ＤＭＥＭ培地により、１０倍段階希釈した。１ウェルにＲＡＷ ２６４．７細胞を５０μＬずつ分注した９６ｗｅｌｌマイクロプレートに、各段階希釈液を５０μＬずつ加えた。
（７）殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液及び殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液の段階希釈液が加えられたＲＡＷ ２６４．７細胞を３７℃、５％ＣＯ２の条件で、４日間培養した。
（８）培養したＲＡＷ ２６４．７細胞のＣＰＥを指標にＴＣＩＤ５０（Ｔｉｓｓｕｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ Ｄｏｓｅ ５０％）により各ウイルス溶液のウイルス感染力価（対数）を定量した。
（９）上記（１）～（８）の工程を３回独立に行い、殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液を用いて算出されたウイルス感染力価の平均値を、作用時間０秒におけるウイルス感染力価とし、殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液を用いて算出されたウイルス感染力価の平均値を、作用時間３０秒におけるウイルス感染力価の値とした。
評価基準は以下の通りである。結果を表１及び２に示す。
○：３．０以上の感染力価の減少
×：３．０未満の感染力価の減少
【0040】
（インフルエンザウイルス不活化効果）
（１）インフルエンザウイルスを、イヌ腎臓尿細管上皮細胞由来株化細胞であるＭＤＣＫ細胞に感染させて細胞を培養した。
（２）次に、インフルエンザウイルスが感染したかどうかを細胞変性効果（Ｃｙｔｏｐａｔｈｉｃ ｅｆｆｅｃｔ：ＣＰＥ）により確認した。
細胞変性効果を確認した後、培養細胞の凍結融解を繰り返すことにより、培養細胞を破砕した。
（３）培養細胞破砕液の遠心分離し、上清を回収してウイルス溶液とした。
（４）各実施例及び各比較例に係る殺菌・ウイルス不活性化組成物と、ウイルス溶液とを９：１の割合（容量）で混合し、室温で３０秒経過後、２μｇ／ｍＬトリプシン（牛脾臓由来結晶）を含むＥＭＥＭ培地（以下、トリプシン含有ＥＭＥＭ培地）で１００倍希釈することにより、各殺菌・ウイルス不活性化組成物のウイルスに対する作用を停止させた。
この工程により得られた溶液を殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液とした。
（５）トリプシン含有ＥＭＥＭ培地と、ウイルス溶液とを９：１の割合（容量）で混合した直後、トリプシン含有ＥＭＥＭ培地で１００倍希釈することにより、得られた溶液を殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液とした。
（６）殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液、殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液を、それぞれ、トリプシン含有ＥＭＥＭ培地により１０倍段階希釈した。ＭＤＣＫ細胞を培養した９６ｗｅｌｌマイクロプレートの培地を捨て、段階希釈液を１００μＬずつ加えた。
（７）殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液及び殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液の段階希釈液が加えられたＭＤＣＫ細胞を３７℃、５％ＣＯ２の条件で、４日間培養した。
（８）培養したＭＤＣＫ細胞のＣＰＥを指標にＴＣＩＤ５０（Ｔｉｓｓｕｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ Ｄｏｓｅ ５０％）により各ウイルス溶液のウイルス感染力価（対数）を定量した。
（９）上記（１）～（８）の工程を３回独立に行い、殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液を用いて算出されたウイルス感染力価の平均値を、作用時間０秒におけるウイルス感染力価とし、殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液を用いて算出されたウイルス感染力価の平均値を、作用時間３０秒におけるウイルス感染力価の値とした。
評価基準は以下の通りである。結果を表１及び２に示す。
○：３．０以上の感染力価の減少
×：３．０未満の感染力価の減少
（１）インフルエンザウイルスを、イヌ腎臓尿細管上皮細胞由来株化細胞であるＭＤＣＫ細胞に感染させて細胞を培養した。
（２）次に、インフルエンザウイルスが感染したかどうかを細胞変性効果（Ｃｙｔｏｐａｔｈｉｃ ｅｆｆｅｃｔ：ＣＰＥ）により確認した。
細胞変性効果を確認した後、培養細胞の凍結融解を繰り返すことにより、培養細胞を破砕した。
（３）培養細胞破砕液の遠心分離し、上清を回収してウイルス溶液とした。
（４）各実施例及び各比較例に係る殺菌・ウイルス不活性化組成物と、ウイルス溶液とを９：１の割合（容量）で混合し、室温で３０秒経過後、２μｇ／ｍＬトリプシン（牛脾臓由来結晶）を含むＥＭＥＭ培地（以下、トリプシン含有ＥＭＥＭ培地）で１００倍希釈することにより、各殺菌・ウイルス不活性化組成物のウイルスに対する作用を停止させた。
この工程により得られた溶液を殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液とした。
（５）トリプシン含有ＥＭＥＭ培地と、ウイルス溶液とを９：１の割合（容量）で混合した直後、トリプシン含有ＥＭＥＭ培地で１００倍希釈することにより、得られた溶液を殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液とした。
（６）殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液、殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液を、それぞれ、トリプシン含有ＥＭＥＭ培地により１０倍段階希釈した。ＭＤＣＫ細胞を培養した９６ｗｅｌｌマイクロプレートの培地を捨て、段階希釈液を１００μＬずつ加えた。
（７）殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液及び殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液の段階希釈液が加えられたＭＤＣＫ細胞を３７℃、５％ＣＯ２の条件で、４日間培養した。
（８）培養したＭＤＣＫ細胞のＣＰＥを指標にＴＣＩＤ５０（Ｔｉｓｓｕｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ Ｄｏｓｅ ５０％）により各ウイルス溶液のウイルス感染力価（対数）を定量した。
（９）上記（１）～（８）の工程を３回独立に行い、殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液を用いて算出されたウイルス感染力価の平均値を、作用時間０秒におけるウイルス感染力価とし、殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液を用いて算出されたウイルス感染力価の平均値を、作用時間３０秒におけるウイルス感染力価の値とした。
評価基準は以下の通りである。結果を表１及び２に示す。
○：３．０以上の感染力価の減少
×：３．０未満の感染力価の減少
【0041】
（ヒトコロナウイルス不活化効果）
（１）ヒトコロナウイルスを、ヒト正常二倍体線維芽細胞であるＭＲＣ－５細胞に感染させて細胞を培養した。
（２）次に、ヒトコロナウイルスが感染したかどうかを細胞変性効果（Ｃｙｔｏｐａｔｈｉｃ ｅｆｆｅｃｔ：ＣＰＥ）により確認した。
細胞変性効果を確認した後、培養細胞の凍結融解を繰り返すことにより、培養細胞を破砕した。
（３）培養細胞破砕液の遠心分離し、上清を回収してウイルス溶液とした。
（４）各実施例及び各比較例に係る殺菌・ウイルス不活性化組成物と、ウイルス溶液とを９：１の割合（容量）で混合し、室温で３０秒経過後、５％ＦＢＳ（ウシ胎児血清）を含むＭＥＭ培地（以下、ＦＢＳ含有ＭＥＭ培地）で１００倍希釈することにより、各殺菌・ウイルス不活性化組成物のウイルスに対する作用を停止させた。
この工程により得られた溶液を殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液とした。
（５）ＦＢＳ含有ＭＥＭ培地と、ウイルス溶液とを９：１の割合（容量）で混合した直後、ＦＢＳ含有ＭＥＭ培地で１００倍希釈することにより、得られた溶液を殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液とした。
（６）殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液、殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液を、それぞれ、ＦＢＳ含有ＭＥＭ培地により１０倍段階希釈した。ＭＲＣ－５細胞を培養した９６ｗｅｌｌマイクロプレートの培地を捨て、段階希釈液を１００μＬずつ加えた。
（７）殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液及び殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液の段階希釈液が加えられたＭＲＣ－５細胞を３５℃、５％ＣＯ２の条件で、５日間培養した。
（８）培養したＭＲＣ－５細胞のＣＰＥを指標にＴＣＩＤ５０（Ｔｉｓｓｕｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ Ｄｏｓｅ ５０％）により各ウイルス溶液のウイルス感染力価（対数）を定量した。
（９）上記（１）～（８）の工程を３回独立に行い、殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液を用いて算出されたウイルス感染力価の平均値を、作用時間０秒におけるウイルス感染力価とし、殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液を用いて算出されたウイルス感染力価の平均値を、作用時間３０秒におけるウイルス感染力価の値とした。
評価基準は以下の通りである。結果を表１及び２に示す。
○：３．０以上の感染力価の減少
×：３．０未満の感染力価の減少
（１）ヒトコロナウイルスを、ヒト正常二倍体線維芽細胞であるＭＲＣ－５細胞に感染させて細胞を培養した。
（２）次に、ヒトコロナウイルスが感染したかどうかを細胞変性効果（Ｃｙｔｏｐａｔｈｉｃ ｅｆｆｅｃｔ：ＣＰＥ）により確認した。
細胞変性効果を確認した後、培養細胞の凍結融解を繰り返すことにより、培養細胞を破砕した。
（３）培養細胞破砕液の遠心分離し、上清を回収してウイルス溶液とした。
（４）各実施例及び各比較例に係る殺菌・ウイルス不活性化組成物と、ウイルス溶液とを９：１の割合（容量）で混合し、室温で３０秒経過後、５％ＦＢＳ（ウシ胎児血清）を含むＭＥＭ培地（以下、ＦＢＳ含有ＭＥＭ培地）で１００倍希釈することにより、各殺菌・ウイルス不活性化組成物のウイルスに対する作用を停止させた。
この工程により得られた溶液を殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液とした。
（５）ＦＢＳ含有ＭＥＭ培地と、ウイルス溶液とを９：１の割合（容量）で混合した直後、ＦＢＳ含有ＭＥＭ培地で１００倍希釈することにより、得られた溶液を殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液とした。
（６）殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液、殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液を、それぞれ、ＦＢＳ含有ＭＥＭ培地により１０倍段階希釈した。ＭＲＣ－５細胞を培養した９６ｗｅｌｌマイクロプレートの培地を捨て、段階希釈液を１００μＬずつ加えた。
（７）殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液及び殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液の段階希釈液が加えられたＭＲＣ－５細胞を３５℃、５％ＣＯ２の条件で、５日間培養した。
（８）培養したＭＲＣ－５細胞のＣＰＥを指標にＴＣＩＤ５０（Ｔｉｓｓｕｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ Ｄｏｓｅ ５０％）により各ウイルス溶液のウイルス感染力価（対数）を定量した。
（９）上記（１）～（８）の工程を３回独立に行い、殺菌・ウイルス不活性化組成物０秒作用ウイルス溶液を用いて算出されたウイルス感染力価の平均値を、作用時間０秒におけるウイルス感染力価とし、殺菌・ウイルス不活性化組成物３０秒作用ウイルス溶液を用いて算出されたウイルス感染力価の平均値を、作用時間３０秒におけるウイルス感染力価の値とした。
評価基準は以下の通りである。結果を表１及び２に示す。
○：３．０以上の感染力価の減少
×：３．０未満の感染力価の減少
【0042】
（殺菌効果の評価）
（１）大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＮＢＲＣ３９７２）、黄色ブドウ球菌（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ ＮＢＲＣ１２７３２）及び緑膿菌（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ ＮＢＲＣ１３２７５）を、それぞれ、普通ブイヨン培地に接種し、３５℃で２４時間培養し菌液とした。
（１）大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＮＢＲＣ３９７２）、黄色ブドウ球菌（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ ＮＢＲＣ１２７３２）及び緑膿菌（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ ＮＢＲＣ１３２７５）を、それぞれ、普通ブイヨン培地に接種し、３５℃で２４時間培養し菌液とした。
【0043】
（２）各実施例及び各比較例の殺菌・ウイルス不活性化組成物と菌液とを９９：１の割合（容量）で混合し、室温で３０秒経過後、ＳＣＤＬＰ培地に１白金耳移植し、３５℃で４８時間培養後、菌の生死を判定した。
【0044】
（３）ＳＣＤＬＰ培地に濁りが見られた場合、菌が死滅しなかったと判断し、濁りが見られない場合菌が死滅したと判断した。
【0045】
また、１０倍に希釈した各実施例及び各比較例の殺菌・ウイルス不活性化組成物を用い上記（１）～（３）と同様の操作を繰り返し、菌の生死を判定した。
【0046】
結果を表１及び２に示す。評価基準は以下の通りである。
［大腸菌について］
○：大腸菌が死滅した。
×：大腸菌が死滅しなかった。
［黄色ブドウ球菌について］
○：黄色ブドウ球菌が死滅した。
×：黄色ブドウ球菌が死滅しなかった。
［緑膿菌について］
○：緑膿菌が死滅した。
×：緑膿菌が死滅しなかった。
［大腸菌について］
○：大腸菌が死滅した。
×：大腸菌が死滅しなかった。
［黄色ブドウ球菌について］
○：黄色ブドウ球菌が死滅した。
×：黄色ブドウ球菌が死滅しなかった。
［緑膿菌について］
○：緑膿菌が死滅した。
×：緑膿菌が死滅しなかった。
【0047】
表１及び２より、実施例に係る殺菌・ウイルス不活性化組成物は優れた殺菌効果及びウイルス不活性化効果を奏することが判明した。
特に、殺菌・ウイルス不活性化組成物が水により希釈されたとしても、充分な殺菌効果を奏することが判明した。
特に、殺菌・ウイルス不活性化組成物が水により希釈されたとしても、充分な殺菌効果を奏することが判明した。