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特開2022-132151イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルおよびその製造方法、ならびに分散液、シートおよびパウダー
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  • 特開-イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルおよびその製造方法、ならびに分散液、シートおよびパウダー 図1
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(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】公開特許公報(A)
(11)【公開番号】P2022132151
(43)【公開日】2022-09-07
(54)【発明の名称】イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルおよびその製造方法、ならびに分散液、シートおよびパウダー
(51)【国際特許分類】
   C08B 5/00 20060101AFI20220831BHJP
   C08B 5/14 20060101ALI20220831BHJP
   D21H 11/18 20060101ALI20220831BHJP
   D21H 15/02 20060101ALI20220831BHJP
【FI】
C08B5/00
C08B5/14
D21H11/18
D21H15/02
【審査請求】未請求
【請求項の数】19
【出願形態】OL
(21)【出願番号】P 2022024931
(22)【出願日】2022-02-21
(31)【優先権主張番号】P 2021031012
(32)【優先日】2021-02-26
(33)【優先権主張国・地域又は機関】JP
(71)【出願人】
【識別番号】000122298
【氏名又は名称】王子ホールディングス株式会社
(74)【代理人】
【識別番号】110002620
【氏名又は名称】弁理士法人大谷特許事務所
(72)【発明者】
【氏名】野口 裕一
(72)【発明者】
【氏名】齊藤 真人
【テーマコード(参考)】
4C090
4L055
【Fターム(参考)】
4C090AA05
4C090BA27
4C090BB02
4C090BB12
4C090BB36
4C090BB52
4C090BB63
4C090BB64
4C090BB95
4C090BB96
4C090BC01
4C090CA38
4C090DA10
4C090DA28
4L055AA02
4L055AC06
4L055AF09
4L055AF46
4L055AG99
4L055EA05
(57)【要約】
【課題】水分散液とした場合に低粘度であり、透明性が高く、耐塩性に優れ、イオン性官能基の導入量の高いセルロースナノクリスタルおよびその製造方法を提供すること。さらに、前記セルロースナノクリスタルを含有する分散液、シート、およびパウダーを提供すること。
【解決手段】下記工程A~工程Cをこの順で含む、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの製造方法。
工程A:セルロース繊維にイオン性官能基を導入するイオン性官能基導入工程
工程B:イオン性官能基を導入したセルロース繊維を、濃度が5mol/L以上の酸性水溶液により加水分解する加水分解工程
工程C:加水分解されたイオン性官能基を導入したセルロース繊維を解繊する解繊工程
【選択図】なし
【特許請求の範囲】
【請求項1】
下記工程A~工程Cをこの順で含む、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの製造方法。
工程A:セルロース繊維にイオン性官能基を導入するイオン性官能基導入工程
工程B:イオン性官能基を導入したセルロース繊維を、濃度が5mol/L以上の酸性水溶液により加水分解する加水分解工程
工程C:加水分解されたイオン性官能基を導入したセルロース繊維を解繊する解繊工程
【請求項2】
前記イオン性官能基が、リンオキソ酸基、リンオキソ酸基に由来する基、カルボキシ基、スルホン基、硫黄オキソ酸基、硫黄オキソ酸基に由来する基、およびカチオン性官能基よりなる群から選択される少なくとも1種である、請求項1に記載の製造方法。
【請求項3】
前記イオン性官能基が、リンオキソ酸基およびリンオキソ酸基に由来する基よりなる群から選択される少なくとも1種である、請求項1または2に記載の製造方法。
【請求項4】
工程Aにおいて、セルロース繊維に対するイオン性官能基の導入量が、0.50mmol/g以上である、請求項1~3のいずれか1項に記載の製造方法。
【請求項5】
イオン性官能基導入セルロースナノクリスタル中のイオン性官能基導入量が、0.10mmol/g以上である、請求項1~4のいずれか1項に記載の製造方法。
【請求項6】
イオン性官能基導入セルロースナノクリスタル中のカルバミド基量が、0.06mmol/g以下である、請求項1~5のいずれか1項に記載の製造方法。
【請求項7】
工程Bで使用する酸性水溶液が、リン酸、硫酸、五酸化二リン、および塩酸よりなる群から選択される酸化合物の水溶液である、請求項1~6のいずれか1項に記載の製造方法。
【請求項8】
イオン性官能基導入量が0.10mmol/g以上である、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタル(ただし、セルロースの6位の炭素原子のみが酸化され、カルボキシ基が導入されているセルロースナノクリスタルを除く)。
【請求項9】
前記イオン性官能基が、リンオキソ酸基、リンオキソ酸基に由来する基、カルボキシ基、スルホン基、硫黄オキソ酸基、硫黄オキソ酸基に由来する基、およびアンモニウム基よりなる群から選択される少なくとも1種である、請求項8に記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル。
【請求項10】
前記イオン性官能基が、リンオキソ酸基およびリンオキソ酸基に由来する基よりなる群から選択される少なくとも1種である、請求項8または9に記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル。
【請求項11】
前記イオン性官能基導入量が0.50mmol/g以上である、請求項8~10のいずれか1項に記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル。
【請求項12】
セルロースの2位および3位の炭素原子の少なくともいずれか1つに前記イオン性官能基が導入されている、請求項8~11のいずれか1項に記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル。
【請求項13】
イオン性官能基導入セルロースナノクリスタル中のカルバミド基量が、0.06mmol/g以下である、請求項8~12のいずれか1項に記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル。
【請求項14】
前記イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの1.5質量%水分散液の粘度が100mPa・s以下である、請求項8~13のいずれか1項に記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル。
【請求項15】
前記イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの0.2質量%水分散液の全光線透過率が95.5%以上である、請求項8~14のいずれか1項に記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル。
【請求項16】
前記イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの0.2質量%水分散液に100mmol/Lとなるように塩化ナトリウムを添加した場合、塩化ナトリウムを添加後の全光線透過率をT、塩化ナトリウムを添加前の全光線透過率をTとしたとき、T/Tが0.98以上である、請求項8~15のいずれか1項に記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル。
【請求項17】
請求項8~16のいずれか1項に記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルを含有する、分散液。
【請求項18】
請求項8~16のいずれか1項に記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルを含有する、シート。
【請求項19】
請求項8~16のいずれか1項に記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルを含有する、パウダー。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルおよびその製造方法、ならびに、前記イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルを含有する分散液、シートおよびパウダーに関する。
【背景技術】
【0002】
近年、石油資源の代替および環境意識の高まりから、再生産可能な天然繊維を利用した材料が着目されている。天然繊維の中でも、繊維径が10μm以上50μm以下の繊維状セルロース、とくに木材由来の繊維状セルロース(パルプ)は、主に紙製品としてこれまで幅広く使用されてきた。
【0003】
特許文献1には、高濃度であっても低い粘度を有するセルロースナノファイバーを得ることを目的として、酸化剤を用いてセルロース系材料を酸化し、酸化されたセルロース系材料をセルラーゼおよび/またはヘミセルラーゼの存在下でホモジナイザーで処理し、解繊・分散してセルロースナノファイバー化する、セルロースナノファイバーの製造方法が記載されている。
非特許文献1には、未変性コットンパルプを高濃度のリン酸で加水分解してリン酸化セルロースナノクリスタルを得ることが記載されている。
また、非特許文献2には、セルロースナノクリスタルに(i)水系でのリン酸化、または(ii)溶融尿素系でのリン酸化により、リン酸基を導入することが記載されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0004】
【特許文献1】国際公開第2011/118746号
【非特許文献】
【0005】
【非特許文献1】Biomacromolecules, vol.14, 1223-1230, 2013
【非特許文献2】Carbohydrate Polymers, vol.125, 301-313, 2015
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0006】
特許文献1に記載のように短繊維化したナノセルロースファイバーでは、水分散液とした場合の低粘度化が十分ではなかった。
セルロースナノクリスタルでは、水分散液とした場合により低粘度となるが、イオン性官能基の導入量が少ないと、透明性や耐塩性が十分でないという問題があり、非特許文献1に記載の方法では、加水分解中にリン酸基を導入しているため、セルロースナノクリスタルに、十分なイオン性官能基の導入を行うことができない。また、非特許文献2に記載の方法でも、セルロースナノクリスタルにリン酸基を導入しており、(i)の方法では、十分なイオン性官能基の導入を行うことができず、(ii)の方法では、(i)に比べ、イオン性官能基は多く導入できるものの、目的外の官能基(カルバミド基)も多量に含まれると推定される。また、(i)、(ii)いずれの方法においても、セルロースナノクリスタルに対してイオン性官能基の導入を行うため、低濃度のセルロースナノクリスタル分散液に大量の試薬を用いて反応させざるを得ず、工業化の観点で改善の余地があった。
本発明の目的は、水分散液とした場合に低粘度であり、透明性が高く、耐塩性に優れ、イオン性官能基の導入量の高いセルロースナノクリスタルおよびその製造方法を提供することである。さらに、本発明は、前記セルロースナノクリスタルを含有する分散液、シート、およびパウダーを提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【0007】
本発明者等は、特定の製造方法によりセルロースナノクリスタルを製造すること、または、イオン性官能基の導入量が特定値以上であるセルロースナノクリスタルにより、上記の課題が解決されることを見出した。
本発明は、以下の<1>~<19>に関する。
<1> 下記工程A~工程Cをこの順で含む、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの製造方法。
工程A:セルロース繊維にイオン性官能基を導入するイオン性官能基導入工程
工程B:イオン性官能基を導入したセルロース繊維を、濃度が5mol/L以上の酸性水溶液により加水分解する加水分解工程
工程C:加水分解されたイオン性官能基を導入したセルロース繊維を解繊する解繊工程
<2> 前記イオン性官能基が、リンオキソ酸基、リンオキソ酸基に由来する基、カルボキシ基、スルホン基、硫黄オキソ酸基、硫黄オキソ酸基に由来する基、およびカチオン性基よりなる群から選択される少なくとも1種である、<1>に記載の製造方法。
<3> 前記イオン性官能基が、リンオキソ酸基およびリンオキソ酸基に由来する基よりなる群から選択される少なくとも1種である、<1>または<2>に記載の製造方法。
<4> 工程Aにおいて、セルロース繊維に対するイオン性官能基の導入量が、0.5mmol/g以上である、<1>~<3>のいずれか1つに記載の製造方法。
<5> イオン性官能基導入セルロースナノクリスタル中のイオン性官能基導入量が、0.1mmol/g以上である、<1>~<4>のいずれか1つに記載の製造方法。
<6> イオン性官能基導入セルロースナノクリスタル中のカルバミド基量が、0.06mmol/g以下である、<1>~<5>のいずれか1つに記載の製造方法。
<7> 工程Bで使用する酸性水溶液が、リン酸、硫酸、五酸化二リン、および塩酸よりなる群から選択される酸化合物の水溶液である、<1>~<6>のいずれか1つに記載の製造方法。
<8> イオン性官能基導入量が0.1mmol/g以上である、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタル(ただし、セルロースの6位の炭素原子のみが酸化され、カルボキシ基が導入されているセルロースナノクリスタルを除く)。
<9> 前記イオン性官能基が、リンオキソ酸基、リンオキソ酸基に由来する基、カルボキシ基、スルホン基、硫黄オキソ酸基、硫黄オキソ酸基に由来する基、およびアンモニウム基よりなる群から選択される少なくとも1種である、<8>に記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル。
<10> 前記イオン性官能基が、リンオキソ酸基およびリンオキソ酸基に由来する基よりなる群から選択される少なくとも1種である、<8>または<9>に記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル。
<11> 前記イオン性官能基導入量が0.5mmol/g以上である、<8>~<10>のいずれか1つに記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル。
<12> セルロースの2位および3位の炭素原子の少なくともいずれか1つに前記イオン性官能基が導入されている、<8>~<11>のいずれか1つに記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル。
<13> イオン性官能基導入セルロースナノクリスタル中のカルバミド基量が、0.06mmol/g以下である、<8>~<12>のいずれか1つに記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル。
<14> 前記イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの1.5質量%水分散液の粘度が100mPa・s以下である、<8>~<13>のいずれか1つに記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル。
<15> 前記イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの0.2質量%水分散液の全光線透過率が95.5%以上である、<8>~<14>のいずれか1つに記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル。
<16> 前記イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの0.2質量%水分散液に100mmol/Lとなるように塩化ナトリウムを添加した場合、塩化ナトリウムを添加後の全光線透過率をT、塩化ナトリウムを添加前の全光線透過率をTとしたとき、T/Tが0.98以上である、<8>~<15>のいずれか1つに記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル。
<17> <8>~<16>のいずれか1つに記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルを含有する、分散液。
<18> <8>~<16>のいずれか1つに記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルを含有する、シート。
<19> <8>~<16>のいずれか1つに記載のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルを含有する、パウダー。
【発明の効果】
【0008】
本発明によれば、水分散液とした場合に低粘度であり、透明性が高く、耐塩性に優れ、イオン性官能基の導入量の高いセルロースナノクリスタルおよびその製造方法を提供ができる。さらに、本発明によれば、前記セルロースナノクリスタルを含有する分散液、シート、およびパウダーを提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【0009】
図1図1は、リンオキソ酸基を有するセルロース繊維含有スラリーに対するNaOH滴下量とpHの関係を示すグラフである。
図2図2は、カルボキシ基を有するセルロース繊維含有スラリーに対するNaOH滴下量とpHの関係を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【0010】
[イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの製造方法]
本発明のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル(以下、「イオン性官能基導入セルロースナノクリスタル」を、単に「イオン性官能基導入CNC」または「CNC」ともいう)の製造方法は、下記工程A~工程Cをこの順で含む。
工程A:セルロース繊維にイオン性官能基を導入するイオン性官能基導入工程
工程B:イオン性官能基を導入したセルロース繊維を、濃度が5mol/L以上の酸性水溶液により加水分解する加水分解工程
工程C:加水分解されたイオン性官能基を導入したセルロース繊維を解繊する解繊工程
本発明の製造方法によれば、水分散液とした場合に低粘度であり、透明性が高く、耐塩性に優れ、イオン性官能基の導入量の高いセルロースナノクリスタルが提供される。
セルロースナノクリスタルは、繊維幅が1000nm以下のナノレベルまで解繊されており、かつ、酸加水分解により非晶質領域が除去され、高度に結晶化されている。
本実施形態の製造方法により、上記の効果が得られる理由としては、以下のように考えられる。従来、特許文献1に記載されているように、セルロースナノファイバーを短繊維化することにより、水分散液としたときに低粘度のナノセルロースを得る試みが行われていたが、セルロースナノファイバーの短繊維化では、水分散液とした場合に十分な低粘度化を行うことは困難であった。
水分散液とした場合に、十分な低粘度化を達成する目的で、セルロースの酸加水分解により非晶質部分を加水分解し、その後、解繊することによりセルロースナノクリスタルを製造することが行われ、この方法で得られたセルロースナノクリスタルでは、水分散液とした場合の低粘度化は達成されるものの、水分散液の透明性および耐塩性の点で問題があった。この問題を解決するために、酸加水分解および解繊により得られたセルロースナノクリスタルに、イオン性官能基を導入することが行われてきた。しかし、セルロースナノクリスタルにイオン性官能基を導入する方法では、セルロースナノクリスタル分散液の濃度が低く、高濃度での薬品処理が困難であり、反応効率が低いことから、導入できるイオン性官能基量が少なく、透明性および耐塩性を十分に向上させることができなかった。また、イオン性官能基以外の官能基が不純物として残存するという問題があった。さらに、セルロースナノクリスタルを得てからリンオキソ酸基を導入する方法では、リンオキソ酸基同士の縮合や、1分子のリンオキソ酸が複数のセルロースの水酸基と反応することにより、強酸性基と弱酸性基との導入量に差異が生じる場合があった。
本発明では、セルロース繊維にイオン性官能基を導入した後に、加水分解および解繊を行うことで、得られるセルロースナノクリスタルへのイオン性官能基の導入量を増加させることができ、その結果、透明性および耐塩性が向上したものと考えられる。また、セルロース繊維にイオン性官能基を導入した後に酸加水分解を行うことにより、イオン性官能基以外の官能基を低減することができ、より純度に優れるイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルが得られたと考えられる。さらに、イオン性官能基を導入した後に加水分解を行うことにより、リンオキソ酸基を導入した場合であっても、強酸性基と弱酸性基との導入量の差異が少ない、または差異がないイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルが得られる。
また、イオン性官能基が導入されたセルロース繊維を加水分解した後に、解繊を行うことで、加水分解されたセルロース繊維が有するイオン性官能基の電気的反発力により、解繊効率が高まり、より繊維幅が小さいセルロースナノクリスタルが得られる。
以下、本発明についてさらに詳細に説明する。
【0011】
<工程A>
工程Aは、セルロース繊維にイオン性官能基を導入するイオン性官能基導入工程である。
〔セルロース繊維〕
セルロース繊維は、セルロースを含む繊維原料であり、セルロース繊維としては、とくに限定されないが、入手しやすく安価である点からパルプを用いることが好ましい。パルプとしては、例えば木材パルプ、非木材パルプ、および脱墨パルプが挙げられる。木材パルプとしては、とくに限定されないが、例えば広葉樹クラフトパルプ(LBKP)、針葉樹クラフトパルプ(NBKP)、サルファイトパルプ(SP)、溶解パルプ(DP)、ソーダパルプ(AP)、未晒しクラフトパルプ(UKP)および酸素漂白クラフトパルプ(OKP)等の化学パルプ、セミケミカルパルプ(SCP)およびケミグラウンドウッドパルプ(CGP)等の半化学パルプ、砕木パルプ(GP)およびサーモメカニカルパルプ(TMP、BCTMP)等の機械パルプ等が挙げられる。非木材パルプとしては、とくに限定されないが、例えばコットンリンターおよびコットンリント等の綿系パルプ、麻、麦わら、竹、およびバガス等の非木材系パルプが挙げられる。脱墨パルプとしては、とくに限定されないが、例えば古紙を原料とする脱墨パルプが挙げられる。本実施態様のパルプは上記の1種を単独で用いてもよいし、2種以上混合して用いてもよい。
上記パルプの中でも、入手のしやすさという観点からは、例えば木材パルプおよび脱墨パルプが好ましい。また、木材パルプの中でも、セルロース比率が大きく解繊処理時のCNCの収率が高い観点や、パルプ中のセルロースの分解が小さいという観点から、例えば化学パルプがより好ましく、クラフトパルプ、サルファイトパルプがさらに好ましい。
セルロース繊維としては、例えばホヤ類に含まれるセルロースや、酢酸菌が生成するバクテリアセルロースを利用することもできる。
また、セルロース繊維に代えて、キチン、キトサンなどの直鎖型の含窒素多糖高分子が形成する繊維を用いることもできる。
【0012】
〔イオン性官能基〕
工程Aでは、セルロース繊維にイオン性官能基を導入する。セルロース繊維にイオン性官能基を導入することにより、解繊処理における解繊効率を高めることができ、また、得られるセルロースナノクリスタルの透明性、耐塩性を向上させることができる。
イオン性官能基としては、例えばアニオン性官能基およびカチオン性官能基のいずれか一方または双方を含むことができる。本実施形態においては、イオン性官能基としてアニオン性官能基を有することがとくに好ましい。
【0013】
イオン性官能基としてのアニオン性官能基としては、例えばリンオキソ酸基またはリンオキソ酸基に由来する基(単にリンオキソ酸基ということもある)、カルボキシ基またはカルボキシ基に由来する基(単にカルボキシ基ということもある)、硫黄オキソ酸基または硫黄オキソ酸基に由来する基(単に硫黄オキソ酸基ということもある)、ザンテート基、ホスホン基、ホスフィン基、スルホン基、カルボキシアルキル基等を挙げることができる。
イオン性官能基としてのカチオン性官能基としては、例えばアンモニウム基、ホスホニウム基、スルホニウム基等を挙げることができる。中でもカチオン性官能基はアンモニウム基であることが好ましい。
中でも、イオン性官能基は、リンオキソ酸基、リンオキソ酸基に由来する基、カルボキシ基、スルホン基、硫黄オキソ酸基、硫黄オキソ酸基に由来する基、カルボキシメチル基、カルボキシエチル基、およびカチオン性官能基よりなる群から選択される少なくとも1種であることが好ましく、リンオキソ酸基、リンオキソ酸基に由来する基、カルボキシ基、硫黄オキソ酸基、および硫黄オキソ酸基に由来する基よりなる群から選択される少なくとも1種であることがより好ましく、リンオキソ酸基およびリンオキソ酸基に由来する基よりなる群から選択される少なくとも1種であることがさらに好ましく、リンオキソ酸基であることがよりさらに好ましい。アニオン性官能基としてリンオキソ酸基を導入することにより、透明性、耐塩性に優れるセルロースナノクリスタルが得られる。
【0014】
リンオキソ酸基またはリンオキソ酸基に由来する基は、例えば下記式(1)で表される置換基である。各セルロース繊維には、下記式(1)で表される置換基が複数導入されていてもよい。この場合、複数導入される下記式(1)で表される置換基はそれぞれ同一であっても異なっていてもよい。
【0015】
【化1】
【0016】
式(1)中、a、bおよびnは自然数であり、mは任意の数である(ただし、a=b×mである)。n個あるαおよびα’のうち少なくとも1つはOであり、残りはRまたはORである。なお、各αおよびα’の全てがOであっても構わない。n個あるαは全て同じでも、それぞれ異なっていてもよい。βb+は有機物または無機物からなる1価以上の陽イオンである。
【0017】
Rは、各々、水素原子、飽和-直鎖状炭化水素基、飽和-分岐鎖状炭化水素基、飽和-環状炭化水素基、不飽和-直鎖状炭化水素基、不飽和-分岐鎖状炭化水素基、不飽和-環状炭化水素基、芳香族基、またはこれらの誘導基である。また、式(1)においては、nは1であることが好ましい。
【0018】
飽和-直鎖状炭化水素基としては、メチル基、エチル基、n-プロピル基、またはn-ブチル基等が挙げられるが、とくに限定されない。飽和-分岐鎖状炭化水素基としては、i-プロピル基、またはt-ブチル基等が挙げられるが、とくに限定されない。飽和-環状炭化水素基としては、シクロペンチル基、またはシクロヘキシル基等が挙げられるが、とくに限定されない。不飽和-直鎖状炭化水素基としては、ビニル基、またはアリル基等が挙げられるが、とくに限定されない。不飽和-分岐鎖状炭化水素基としては、i-プロペニル基、または3-ブテニル基等が挙げられるが、とくに限定されない。不飽和-環状炭化水素基としては、シクロペンテニル基、シクロヘキセニル基等が挙げられるが、とくに限定されない。芳香族基としては、フェニル基、またはナフチル基等が挙げられるが、とくに限定されない。
【0019】
また、Rにおける誘導基としては、上記各種炭化水素基の主鎖または側鎖に対し、カルボキシ基、カルボキシレート基(-COO-)、ヒドロキシ基、アミノ基およびアンモニウム基などの官能基から選択される少なくとも1種類が付加または置換した状態の官能基が挙げられるが、とくに限定されない。また、Rの主鎖を構成する炭素原子数はとくに限定されないが、20以下であることが好ましく、10以下であることがより好ましい。Rの主鎖を構成する炭素原子数を上記範囲とすることにより、リンオキソ酸基の分子量を適切な範囲とすることができ、セルロース繊維への浸透を容易にし、セルロースナノクリスタルの収率を高めることもできる。なお、式(1)中にRが複数個存在する場合やセルロース繊維に上記式(1)で表される複数種の置換基が導入される場合には、複数存在するRはそれぞれ同一であっても異なっていてもよい。
【0020】
βb+は有機物または無機物からなる1価以上の陽イオンである。有機物からなる1価以上の陽イオンとしては、有機オニウムイオンを挙げることができる。有機オニウムイオンとしては、例えば、有機アンモニウムイオンや有機ホスホニウムイオンを挙げることができる。有機アンモニウムイオンとしては、例えば、脂肪族アンモニウムイオンや芳香族アンモニウムイオンを挙げることができ、有機ホスホニウムイオンとしては、例えば、脂肪族ホスホニウムイオンや芳香族ホスホニウムイオンを挙げることができる。無機物からなる1価以上の陽イオンとしては、ナトリウム、カリウム、もしくはリチウム等のアルカリ金属のイオンや、カルシウム、もしくはマグネシウム等の2価金属のイオン、水素イオン、アンモニウムイオン等が挙げられる。なお、式(1)中にβb+が複数個存在する場合やセルロース繊維に上記式(1)で表される複数種の置換基が導入される場合には、複数存在するβb+はそれぞれ同一であっても異なっていてもよい。有機物または無機物からなる1価以上の陽イオンとしては、βb+を含むセルロース繊維を加熱した際に黄変しにくく、また工業的に利用し易いナトリウム、またはカリウムのイオンが好ましいが、とくに限定されない。
【0021】
リンオキソ酸基またはリンオキソ酸基に由来する置換基としては、より具体的には、リン酸基(-PO)、リン酸基の塩、亜リン酸基(ホスホン酸基)(-PO)、亜リン酸基(ホスホン酸基)の塩が挙げられる。また、リンオキソ酸基またはリンオキソ酸基に由来する置換基は、リン酸基が縮合した基(例えば、ピロリン酸基)、ホスホン酸が縮合した基(例えば、ポリホスホン酸基)、リン酸エステル基(例えば、モノメチルリン酸基、ポリオキシエチレンアルキルリン酸基)、アルキルホスホン酸基(例えば、メチルホスホン酸基)などであってもよい。
【0022】
また、硫黄オキソ酸基(硫黄オキソ酸基または硫黄オキソ酸基に由来する置換基)は、例えば下記式(2)で表される置換基である。各セルロース繊維には、下記式(2)で表される置換基が複数入されていてもよい。この場合、複数導入される下記式(2)で表される置換基はそれぞれ同一であっても異なっていてもよい。
【0023】
【化2】
【0024】
上記構造式中、bおよびnは自然数であり、pは0または1であり、mは任意の数である(ただし、1=b×mである)。なお、nが2以上である場合、複数あるpは同一の数であってもよく、異なる数であってもよい。上記構造式中、βb+は有機物または無機物からなる1価以上の陽イオンである。有機物からなる1価以上の陽イオンとしては、有機オニウムイオンを挙げることができる。有機オニウムイオンとしては、例えば、有機アンモニウムイオンや有機ホスホニウムイオンを挙げることができる。有機アンモニウムイオンとしては、例えば、脂肪族アンモニウムイオンや芳香族アンモニウムイオンを挙げることができ、有機ホスホニウムイオンとしては、例えば、脂肪族ホスホニウムイオンや芳香族ホスホニウムイオンを挙げることができる。無機物からなる1価以上の陽イオンとしては、ナトリウム、カリウム、もしくはリチウム等のアルカリ金属のイオンや、カルシウム、もしくはマグネシウム等の2価金属のイオン、水素イオン、アンモニウムイオン等が挙げられる。なお、繊維状セルロースに上記式(2)で表される複数種の置換基が導入される場合には、複数存在するβb+はそれぞれ同一であっても異なっていてもよい。有機物または無機物からなる1価以上の陽イオンとしては、βb+を含むセルロース繊維を加熱した際に黄変しにくく、また工業的に利用し易いナトリウム、またはカリウムのイオンが好ましいが、とくに限定されない。
【0025】
セルロース繊維に対するイオン性官能基の導入量は、例えば繊維状セルロース1g(質量)あたり0.30mmol/g以上であることが好ましく、0.50mmol/g以上であることがより好ましく、0.80mmol/g以上であることがさらに好ましく、1.00mmol/g以上であることがよりさらに好ましい。また、セルロース繊維に対するイオン性官能基の導入量は、例えば繊維状セルロース1g(質量)あたり5.20mmol/g以下であることが好ましく、3.65mmol/g以下であることがより好ましく、3.50mmol/g以下であることがさらに好ましく、3.00mmol/g以下であることがよりさらに好ましい。イオン性官能基の導入量を上記範囲内とすることにより、得られるイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの透明性および耐塩性が良好となる。
ここで、単位mmol/gにおける分母は、イオン性官能基の対イオンが水素イオン(H)であるときの繊維状セルロースの質量を示す。
【0026】
セルロース繊維および後述するイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルに対するイオン性官能基の導入量は、例えば中和滴定法、元素分析により測定することができる。中和滴定法による測定では、得られたセルロース繊維またはイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルを含有するスラリーに、水酸化ナトリウム水溶液などのアルカリを加えながらpHの変化を求めることにより、導入量を測定する。
【0027】
図1は、リンオキソ酸基を有するセルロース繊維含有スラリーに対するNaOH滴下量とpHの関係を示すグラフである。セルロース繊維に対するリンオキソ酸基の導入量は、例えば次のように測定される。なお、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルのリンオキソ酸基量についても、同様に測定される。
まず、セルロース繊維を含有するスラリーを強酸性イオン交換樹脂で処理する。なお、必要に応じて、強酸性イオン交換樹脂による処理の前に、後述の解繊処理工程と同様の解繊処理を測定対象に対して実施してもよい。
次いで、水酸化ナトリウム水溶液を加えながらpHの変化を観察し、図1の上側部に示すような滴定曲線を得る。図1の上側部に示した滴定曲線では、アルカリを加えた量に対して測定したpHをプロットしており、図1の下側部に示した滴定曲線では、アルカリを加えた量に対するpHの増分(微分値)(1/mmol)をプロットしている。この中和滴定では、アルカリを加えた量に対して測定したpHをプロットした曲線において、増分(pHのアルカリ滴下量に対する微分値)が極大となる点が二つ確認される。これらのうち、アルカリを加えはじめて先に得られる増分の極大点を第1終点と呼び、次に得られる増分の極大点を第2終点と呼ぶ。滴定開始から第1終点までに必要としたアルカリ量が、滴定に使用したスラリー中に含まれる繊維状セルロースの第1解離酸量と等しくなり、第1終点から第2終点までに必要としたアルカリ量が滴定に使用したスラリー中に含まれる繊維状セルロースの第2解離酸量と等しくなり、滴定開始から第2終点までに必要としたアルカリ量が滴定に使用したスラリー中に含まれる繊維状セルロースの総解離酸量と等しくなる。そして、滴定開始から第1終点までに必要としたアルカリ量を滴定対象スラリー中の固形分(g)で除して得られる値が、リンオキソ酸基導入量(mmol/g)となる。なお、単にリンオキソ酸基導入量(またはリンオキソ酸基量)と言った場合は、第1解離酸量のことを表す。
なお、図1において、滴定開始から第1終点までの領域を第1領域と呼び、第1終点から第2終点までの領域を第2領域と呼ぶ。例えば、リンオキソ酸基がリン酸基の場合であって、このリン酸基が縮合を起こす場合、見かけ上、リンオキソ酸基における弱酸性基量(本明細書では第2解離酸量ともいう)が低下し、第1領域に必要としたアルカリ量と比較して第2領域に必要としたアルカリ量が少なくなる。一方、リンオキソ酸基における強酸性基量(本明細書では第1解離酸量ともいう)は、縮合の有無に関わらずリン原子の量と一致する。また、リンオキソ酸基が亜リン酸基の場合は、リンオキソ酸基に弱酸性基が存在しなくなるため、第2領域に必要としたアルカリ量が少なくなるか、第2領域に必要としたアルカリ量はゼロとなる場合もある。この場合、滴定曲線において、pHの増分が極大となる点は一つとなる。
なお、上述のリンオキソ酸基導入量(mmol/g)は、分母が酸型のセルロース繊維の質量を示すことから、酸型のセルロース繊維が有するリンオキソ酸基量(以降、リンオキソ酸基量(酸型)と呼ぶ)を示している。一方で、リンオキソ酸基の対イオンが電荷当量となるように任意の陽イオンCに置換されている場合は、分母を当該陽イオンCが対イオンであるときのセルロース繊維の質量に変換することで、陽イオンCが対イオンであるセルロース繊維が有するリンオキソ酸基量(以降、リンオキソ酸基量(C型))を求めることができる。
すなわち、下記計算式によって算出する。
リンオキソ酸基量(C型)=リンオキソ酸基量(酸型)/{1+(W-1)×A/1000}
A[mmol/g]:セルロース繊維が有するリンオキソ酸基由来の総アニオン量(リンオキソ酸基の強酸性基量と弱酸性基量を足した値)
W:陽イオンCの1価あたりの式量(例えば、Naは23、Alは9)
【0028】
図2は、カルボキシ基を有するセルロース繊維に対するNaOH滴下量とpHの関係を示すグラフである。
セルロース繊維に対するカルボキシ基の導入量は、例えば次のように測定される。なお、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルのカルボキシ基量についても、同様に測定される。
まず、セルロース繊維を含有するスラリーを強酸性イオン交換樹脂で処理する。なお、必要に応じて、強酸性イオン交換樹脂による処理の前に、後述の解繊処理工程と同様の解繊処理を測定対象に対して実施してもよい。次いで、水酸化ナトリウム水溶液を加えながらpHの変化を観察し、図2に示すような滴定曲線を得る。
図2に示されるように、この中和滴定では、アルカリを加えた量に対して測定したpHをプロットした曲線において、増分(pHのアルカリ滴下量に対する微分値)が極大となる点が一つ観測される。この増分の極大点を第1終点と呼ぶ。ここで、図2における滴定開始から第1終点までの領域を第1領域と呼ぶ。第1領域で必要としたアルカリ量が、滴定に使用したスラリー中のカルボキシ基量と等しくなる。そして、滴定曲線の第1領域で必要としたアルカリ量(mmol)を、滴定対象のセルロース繊維含有スラリー中の固形分(g)で除すことで、カルボキシ基の導入量(mmol/g)を算出した。
なお、上述のカルボキシ基導入量(mmol/g)は、カルボキシ基の対イオンが水素イオン(H)であるときのセルロース繊維の質量1gあたりの置換基量(以降、カルボキシ基量(酸型)と呼ぶ)を示している。
【0029】
なお、上述のカルボキシ基導入量(mmol/g)は、分母が酸型のセルロース繊維の質量であることから、酸型のセルロース繊維が有するカルボキシ基量(以降、カルボキシ基量(酸型)と呼ぶ)を示している。一方で、カルボキシ基の対イオンが電荷当量となるように任意の陽イオンCに置換されている場合は、分母を当該陽イオンCが対イオンであるときのセルロース繊維の質量に変換することで、陽イオンCが対イオンであるセルロース繊維が有するカルボキシ基量(以降、カルボキシ基量(C型))(mmol/g)を求めることができる。
すなわち、下記計算式によって算出する。
カルボキシ基量(C型)=カルボキシ基量(酸型)/{1+(W-1)×(カルボキシ基量(酸型))/1000}
W:陽イオンCの1価あたりの式量(例えば、Naは23、Alは9)
【0030】
また、セルロース繊維およびイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルに対する硫黄オキソ酸基・スルホン基の導入量は、得られたセルロース繊維またはイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルを過塩素酸と濃硝酸を用いて湿式灰化した後に、適当な倍率で希釈してICP発光分析により硫黄量を測定する。
この硫黄量を、供試したセルロース繊維またはイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの絶乾質量で除した値を硫黄オキソ酸基量・スルホン酸基量(単位:mmol/g)とする。
【0031】
なお、滴定法による置換基量の測定においては、水酸化ナトリウム水溶液1滴の滴下量が多すぎる場合や、滴定間隔が短すぎる場合、本来より低い置換基量となるなど正確な値が得られないことがある。適切な滴下量、滴定間隔としては、例えば、0.1N水酸化ナトリウム水溶液を5~30秒間に10~50μLずつ滴定するなどが望ましい。また、セルロース繊維含有スラリーに溶解した二酸化炭素の影響を排除するため、例えば、滴定開始の15分前から滴定終了まで、窒素ガスなどの不活性ガスをスラリーに吹き込みながら測定するなどが望ましい。
【0032】
セルロース繊維は、後述するイオン性官能基導入セルロース繊維の製造工程において添加される尿素および/または尿素誘導体に由来したカルバミド基を有していてもよい。この場合、セルロース繊維におけるカルバミド基の導入量(カルバミド基量)は、例えばセルロース繊維1g(質量)あたり1.50mmol/g以下であることが好ましく、1.00mmol/g以下であることがより好ましく、0.30mmol/g以下であることがさらに好ましく、0.20mmol/g以下であることがとくに好ましい。なお、セルロース繊維におけるカルバミド基の導入量(カルバミド基量)は、0.00mmol/gであってもよい。カルバミド基とリンオキソ酸基は、セルロースの水酸基に反応して導入される基であるため、カルバミド基の導入量が多くなればなるほど、リンオキソ酸基の導入量は減少する。このため、カルバミド基の導入量を上記範囲内とすることにより、リンオキソ酸基の導入量を高め、適切な範囲とすることができる。なお、カルバミド基自体には、電気伝導性がないため、カルバミド基の導入により得られるイオン性官能基導入セルロースは得られない。このため、カルバミド基の導入量を上記範囲内とすることにより、リンオキソ酸基の導入量を高めることで、得られるイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの透明性および耐塩性を向上させることができる。
【0033】
セルロース繊維およびイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルへのカルバミド基の導入量はセルロースに共有結合した窒素量を測定することで決定する。具体的には、セルロース繊維またはイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルを含む測定対象物からイオン性窒素(アンモニウムイオン)を遊離および除去させた後に、微量窒素分析法により窒素量を測定する。イオン性窒素(アンモニウムイオン)の遊離は、実質的にセルロースに共有結合した窒素が除かれない条件で行う。例えば、リンオキソ酸基導入工程の後に、アルカリ処理によってアンモニウムイオンを遊離させ、洗浄除去してから、後述する工程Bを行ってもよいし、工程Bや工程Cの後に強酸性イオン交換樹脂によってアンモニウムイオンを吸着除去させてもよい。微量窒素分析法による窒素量の測定機としては、例えば、株式会社三菱ケミカルアナリテック製の微量全窒素分析装置TN-110を用いることができる。測定前に低温(例えば、真空乾燥器にて、40℃24時間)で絶乾状態になるまでセルロース繊維またはイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルを乾燥させる。セルロース繊維またはイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの単位質量あたりのカルバミド基の導入量(mmol/g)は、微量窒素分析で得られたセルロース繊維またはイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの単位質量あたりの窒素含有量(g/g)を窒素の原子量で除することで算出される。
【0034】
〔イオン性官能基導入工程〕
セルロース繊維にイオン性官能基を導入するためには、上述したセルロース繊維にイオン性官能基を導入するイオン性官能基導入工程を有し、工程Bの前に、さらに、洗浄工程、アルカリ処理工程をこの順で有することが好ましく、洗浄工程の代わりに、または洗浄工程に加えて、酸処理工程を有していてもよい。イオン性官能基導入工程としては、リンオキソ酸基導入工程、カルボキシ基導入工程、硫黄オキソ酸基導入工程、塩素系酸化剤による酸化工程、ザンテート基導入工程、スルホン基導入工程、カルボキシアルキル化工程、が例示される。以下、それぞれについて説明する。
【0035】
-リンオキソ酸基導入工程-
リンオキソ酸基導入工程は、セルロース繊維が有する水酸基と反応することで、リンオキソ酸基を導入できる化合物から選択される少なくとも1種の化合物(以下、「化合物A」ともいう)を、セルロース繊維に作用させる工程である。この工程により、リンオキソ酸基導入繊維が得られることとなる。
本実施形態に係るリン酸基導入工程では、セルロース繊維と化合物Aの反応を、尿素およびその誘導体から選択される少なくとも1種(以下、「化合物B」ともいう)の存在下で行ってもよい。一方で、化合物Bが存在しない状態において、セルロース繊維と化合物Aの反応を行ってもよい。
化合物Aを化合物Bとの共存下でセルロース繊維に作用させる方法の一例としては、乾燥状態または湿潤状態またはスラリー状のセルロース繊維に対して、化合物Aと化合物Bを混合する方法が挙げられる。これらのうち、反応の均一性が高いことから、乾燥状態または湿潤状態のセルロース繊維を用いることが好ましく、とくに乾燥状態のセルロース繊維を用いることが好ましい。セルロース繊維の形態は、とくに限定されないが、例えば綿状や薄いシート状であることが好ましい。化合物Aおよび化合物Bは、それぞれ粉末状または溶媒に溶解させた溶液状または融点以上まで加熱して溶融させた状態でセルロース繊維に添加する方法が挙げられる。これらのうち、反応の均一性が高いことから、溶媒に溶解させた溶液状、とくに水溶液の状態で添加することが好ましい。また、化合物Aと化合物Bはセルロース繊維に対して同時に添加してもよく、別々に添加してもよく、混合物として添加してもよい。化合物Aと化合物Bの添加方法としては、とくに限定されないが、化合物Aと化合物Bが溶液状の場合は、セルロース繊維を溶液内に浸漬し吸液させたのちに取り出してもよいし、セルロース繊維に溶液を滴下してもよい。また、必要量の化合物Aと化合物Bをセルロース繊維に添加してもよいし、過剰量の化合物Aと化合物Bをそれぞれセルロース繊維に添加した後に、圧搾や濾過によって余剰の化合物Aと化合物Bを除去してもよい。
【0036】
本実施態様で使用する化合物Aとしては、リン原子を有し、セルロースとエステル結合を形成可能な化合物であればよく、リン酸もしくはその塩、亜リン酸もしくはその塩、脱水縮合リン酸もしくはその塩、無水リン酸(五酸化二リン)などが挙げられるが、とくに限定されない。リン酸としては、種々の純度のものを使用することができ、例えば100%リン酸(正リン酸)や85%リン酸を使用することができる。亜リン酸としては、例えば99%亜リン酸(ホスホン酸)が挙げられる。脱水縮合リン酸は、リン酸が脱水反応により2分子以上縮合したものであり、例えばピロリン酸、ポリリン酸等を挙げることができる。リン酸塩、亜リン酸塩、脱水縮合リン酸塩としては、リン酸、亜リン酸または脱水縮合リン酸のリチウム塩、ナトリウム塩、カリウム塩、アンモニウム塩などが挙げられ、これらは種々の中和度とすることができる。
これらのうち、リン酸基の導入の効率が高く、低コストであり、かつ工業的に適用しやすい観点から、リン酸、リン酸のナトリウム塩、リン酸のカリウム塩、またはリン酸のアンモニウム塩が好ましく、リン酸、リン酸二水素ナトリウム、リン酸水素二ナトリウム、またはリン酸二水素アンモニウムがより好ましい。
セルロース繊維に対する化合物Aの添加量は、とくに限定されないが、例えば化合物Aの添加量をリン原子量に換算した場合において、セルロース繊維(絶乾質量)に対するリン原子の添加量が0.5質量%以上100質量%以下となることが好ましく、1質量%以上50質量%以下となることがより好ましく、2質量%以上30質量%以下となることがさらに好ましい。セルロース繊維に対するリン原子の添加量を上記範囲内とすることにより、得られるイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの透明性および耐塩性をより向上させることができる。一方で、セルロース繊維に対するリン原子の添加量を上記上限値以下とすることにより、収率向上の効果とコストのバランスをとることができる。
【0037】
本実施態様で使用する化合物Bは、上述のとおり尿素およびその誘導体から選択される少なくとも1種である。化合物Bとしては、例えば尿素、ビウレット、1-フェニル尿素、1-ベンジル尿素、1-メチル尿素、および1-エチル尿素などが挙げられる。
反応の均一性を向上させる観点から、化合物Bは水溶液として用いることが好ましい。また、反応の均一性をさらに向上させる観点からは、化合物Aと化合物Bの両方が溶解した水溶液を用いることが好ましい。
セルロース繊維(絶乾質量)に対する化合物Bの添加量は、とくに限定されないが、例えば1質量%以上500質量%以下であることが好ましく、10質量%以上400質量%以下であることがより好ましく、100質量%以上350質量%以下であることがさらに好ましい。
【0038】
セルロース繊維と化合物Aの反応においては、化合物Bの他に、例えばアミド類またはアミン類を反応系に含んでもよい。アミド類としては、例えばホルムアミド、ジメチルホルムアミド、アセトアミド、ジメチルアセトアミドなどが挙げられる。アミン類としては、例えばメチルアミン、エチルアミン、トリメチルアミン、トリエチルアミン、モノエタノールアミン、ジエタノールアミン、トリエタノールアミン、ピリジン、エチレンジアミン、ヘキサメチレンジアミンなどが挙げられる。これらの中でも、とくにトリエチルアミンは良好な反応触媒として働くことが知られている。
【0039】
リンオキソ酸基導入工程においては、セルロース繊維に化合物A等を添加または混合した後、当該セルロース繊維に対して加熱処理を施すことが好ましい。加熱処理温度としては、セルロース繊維の熱分解や加水分解反応を抑えながら、リンオキソ酸基を効率的に導入できる温度を選択することが好ましい。加熱処理温度は、例えば50℃以上300℃以下であることが好ましく、100℃以上250℃以下であることがより好ましく、130℃以上200℃以下であることがさらに好ましい。また、加熱処理には、種々の熱媒体を有する機器を利用することができ、例えば撹拌乾燥装置、回転乾燥装置、円盤乾燥装置、ロール型加熱装置、プレート型加熱装置、流動層乾燥装置、バンド型乾燥装置、ろ過乾燥装置、振動流動乾燥装置、気流乾燥装置、減圧乾燥装置、赤外線加熱装置、遠赤外線加熱装置、マイクロ波加熱装置、高周波乾燥装置を用いることができる。
【0040】
本実施形態に係る加熱処理においては、例えば薄いシート状のセルロース繊維に化合物Aを含浸等の方法により添加した後、加熱する方法や、ニーダー等でセルロース繊維と化合物Aを混練または撹拌しながら加熱する方法を採用することができる。これにより、セルロース繊維における化合物Aの濃度ムラを抑制して、セルロース繊維表面へ、より均一にリン酸基を導入することが可能となる。これは、乾燥に伴い水分子がセルロース繊維表面に移動する際、溶存する化合物Aが表面張力によって水分子に引き付けられ、同様にセルロース繊維表面に移動してしまう(すなわち、化合物Aの濃度ムラを生じてしまう)ことを抑制できることに起因するものと考えられる。
また、加熱処理に用いる加熱装置は、例えばスラリーが保持する水分および化合物Aとセルロース繊維中のセルロース等が含む水酸基等との脱水縮合(リン酸エステル化)反応に伴って生じる水分を常に装置系外に排出できる装置であることが好ましい。このような加熱装置としては、例えば送風方式のオーブン等が挙げられる。装置系内の水分を常に排出することにより、リン酸エステル化の逆反応であるリン酸エステル結合の加水分解反応を抑制できることに加えて、セルロース繊維中の糖鎖の酸加水分解を抑制することもできる。
加熱処理の時間は、例えばセルロース繊維から実質的に水分が除かれてから1秒間以上300分間以下であることが好ましく、1秒間以上1,000秒間以下であることがより好ましく、10秒間以上800秒間以下であることがさらに好ましい。本実施形態では、加熱温度と加熱時間を適切な範囲とすることにより、リンオキソ酸基の導入量を好ましい範囲内とすることができる。
【0041】
リンオキソ酸基導入工程は、少なくとも1回行えばよいが、2回以上繰り返して行うこともできる。2回以上のリンオキソ酸基導入工程を行うことにより、セルロース繊維に対して多くのリンオキソ酸基を導入することができる。本実施形態においては、好ましい態様の一例として、リンオキソ酸基導入工程を2回行う場合が挙げられる。
【0042】
セルロース繊維に対するリンオキソ酸基の導入量は、例えばセルロース繊維1g(質量)あたり0.30mmol/g以上であることが好ましく、0.50mmol/g以上であることがより好ましく、0.80mmol/g以上であることがさらに好ましく、1.00mmol/g以上であることがよりさらに好ましく、1.25mmol/g以上であることがとくに好ましい。また、セルロース繊維に対するリンオキソ酸基の導入量は、例えばセルロース繊維1g(質量)あたり5.20mmol/g以下であることが好ましく、3.65mmol/g以下であることがより好ましく、3.00mmol/g以下であることがさらに好ましい。リンオキソ酸基の導入量を上記範囲内とすることにより、得られるイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの透明性および耐塩性を向上させることができる。
【0043】
-カルボキシ基導入工程-
カルボキシ基導入工程は、セルロース繊維に対し、オゾン酸化やフェントン法による酸化、TEMPO酸化処理などの酸化処理やカルボン酸由来の基を有する化合物もしくはその誘導体、またはカルボン酸由来の基を有する化合物の酸無水物もしくはその誘導体によって処理することにより行われる。
カルボン酸由来の基を有する化合物としては、とくに限定されないが、例えばマレイン酸、コハク酸、フタル酸、フマル酸、グルタル酸、アジピン酸、イタコン酸等のジカルボン酸化合物やクエン酸、アコニット酸等のトリカルボン酸化合物が挙げられる。また、カルボン酸由来の基を有する化合物の誘導体としては、とくに限定されないが、例えばカルボキシ基を有する化合物の酸無水物のイミド化物、カルボキシ基を有する化合物の酸無水物の誘導体が挙げられる。カルボキシ基を有する化合物の酸無水物のイミド化物としては、とくに限定されないが、例えばマレイミド、コハク酸イミド、フタル酸イミド等のジカルボン酸化合物のイミド化物が挙げられる。
【0044】
カルボン酸由来の基を有する化合物の酸無水物としては、とくに限定されないが、例えば無水マレイン酸、無水コハク酸、無水フタル酸、無水グルタル酸、無水アジピン酸、無水イタコン酸等のジカルボン酸化合物の酸無水物が挙げられる。また、カルボン酸由来の基を有する化合物の酸無水物の誘導体としては、とくに限定されないが、例えばジメチルマレイン酸無水物、ジエチルマレイン酸無水物、ジフェニルマレイン酸無水物等のカルボキシ基を有する化合物の酸無水物の少なくとも一部の水素原子が、アルキル基、フェニル基等の置換基により置換されたものが挙げられる。
【0045】
カルボキシ基導入工程において、TEMPO酸化処理を行う場合には、例えばその処理をpHが6以上8以下の条件で行うことが好ましい。このような処理は、中性TEMPO酸化処理ともいう。中性TEMPO酸化処理は、例えばリン酸ナトリウム緩衝液(pH=6.8)に、セルロース繊維としてパルプと、触媒としてTEMPO(2,2,6,6-テトラメチルピペリジン-1-オキシル)等のニトロキシラジカル、犠牲試薬として次亜塩素酸ナトリウムを添加することで行うことができる。さらに亜塩素酸ナトリウムを共存させることによって、酸化の過程で発生するアルデヒドを、効率的にカルボキシ基まで酸化することができる。
また、TEMPO酸化処理は、その処理をpHが10以上11以下の条件で行ってもよい。このような処理は、アルカリTEMPO酸化処理ともいう。アルカリTEMPO酸化処理は、例えばセルロース繊維としてのパルプに対し、触媒としてTEMPO等のニトロキシラジカルと、共触媒として臭化ナトリウムと、酸化剤として次亜塩素酸ナトリウムを添加することにより行うことができる。
セルロース繊維に対するカルボキシ基の導入量は、置換基の種類によっても変わるが、例えばTEMPO酸化によりカルボキシ基を導入する場合、セルロース繊維1g(質量)あたり0.30mmol/g以上であることが好ましく、0.50mmol/g以上であることがより好ましく、0.80mmol/g以上であることがさらに好ましく、0.90mmol/g以上であることがよりさらに好ましく、1.00mmol/g以上であることがとくに好ましい。また、2.5mmol/g以下であることが好ましく、2.20mmol/g以下であることがより好ましく、2.00mmol/g以下であることがさらに好ましい。その他、置換基がカルボキシメチル基である場合、繊維状セルロース1g(質量)あたり5.8mmol/g以下であってもよい。
【0046】
-硫黄オキソ酸基導入工程-
イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの製造工程は、イオン性官能基導入工程として、例えば、硫黄オキソ酸基導入工程を含んでもよい。硫黄オキソ酸基導入工程は、セルロース繊維が有する水酸基と硫黄オキソ酸が反応することで、硫黄オキソ酸基を有するセルロース繊維(硫黄オキソ酸基導入繊維)を得ることができる。
【0047】
硫黄オキソ酸基導入工程では、上述した<リンオキソ酸基導入工程>における化合物Aに代えて、セルロース繊維が有する水酸基と反応することで、硫黄オキソ酸基を導入できる化合物から選択される少なくとも1種の化合物(以下、「化合物C」ともいう)を用いる。化合物Cとしては、硫黄原子を有し、セルロースとエステル結合を形成可能な化合物であればよく、硫酸もしくはその塩、亜硫酸もしくはその塩、硫酸アミドなどが挙げられるがとくに限定されない。硫酸としては、種々の純度のものを使用することができ、例えば96%硫酸(濃硫酸)を使用することができる。亜硫酸としては、5%亜硫酸水が挙げられる。硫酸塩または亜硫酸塩としては、硫酸塩または亜硫酸塩のリチウム塩、ナトリウム塩、カリウム塩、アンモニウム塩などが挙げられ、これらは種々の中和度とすることができる。硫酸アミドとしては、スルファミン酸などを使用することができる。硫黄オキソ酸基導入工程では、上述した<リンオキソ酸基導入工程>における化合物Bを同様に用いることが好ましい。
【0048】
硫黄オキソ酸基導入工程においては、セルロース繊維に硫黄オキソ酸、ならびに、尿素および/または尿素誘導体を含む水溶液を混合した後、当該セルロース繊維に対して加熱処理を施すことが好ましい。加熱処理温度としては、繊維の熱分解や加水分解反応を抑えながら、硫黄オキソ酸基を効率的に導入できる温度を選択することが好ましい。加熱処理温度は、100℃以上であることが好ましく、120℃以上であることがより好ましく、150℃以上であることがさらに好ましい。また、加熱処理温度は、300℃以下であることが好ましく、250℃以下であることがより好ましく、200℃以下であることがさらに好ましい。
【0049】
加熱処理工程では、実質的に水分がなくなるまで加熱をすることが好ましい。このため、加熱処理時間は、セルロース繊維に含まれる水分量や、硫黄オキソ酸、ならびに、尿素および/または尿素誘導体を含む水溶液の添加量によって、変動するが、例えば、10秒間以上10,000秒間以下とすることが好ましい。加熱処理には、種々の熱媒体を有する機器を利用することができ、例えば撹拌乾燥装置、回転乾燥装置、円盤乾燥装置、ロール型加熱装置、プレート型加熱装置、流動層乾燥装置、バンド型乾燥装置、ろ過乾燥装置、振動流動乾燥装置、気流乾燥装置、減圧乾燥装置、赤外線加熱装置、遠赤外線加熱装置、マイクロ波加熱装置、高周波乾燥装置を用いることができる。
【0050】
セルロース繊維に対する硫黄オキソ酸基の導入量は、0.05mmol/g以上であることが好ましく、0.10mmol/g以上であることがより好ましく、0.20mmol/g以上であることがさらに好ましく、0.50mmol/g以上であることがよりさらに好ましく、0.80mmol/g以上であることがよりさらに好ましく、0.90mmol/g以上であることがとくに好ましい。また、セルロース繊維に対する硫黄オキソ酸基の導入量は、5.00mmol/g以下であることが好ましく、3.00mmol/g以下であることがより好ましい。硫黄オキソ酸基の導入量を上記範囲内とすることにより、解繊性を向上させ、より繊維幅の少ないイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルを得ることが可能となる。
【0051】
-塩素系酸化剤による酸化工程(第二のカルボキシ基導入工程)-
イオン性官能基導入工程として、例えば塩素系酸化剤による酸化工程を含んでもよい。塩素系酸化剤による酸化工程では、塩素系酸化剤を湿潤あるいは乾燥状態の、水酸基を有するセルロース繊維に加えて反応を行うことで、セルロース繊維にカルボキシ基が導入される。
【0052】
塩素系酸化剤としては、次亜塩素酸、次亜塩素酸塩、亜塩素酸、亜塩素酸塩、塩素酸、塩素酸塩、過塩素酸、過塩素酸塩、二酸化塩素などが挙げられる。イオン性官能基の導入効率、ひいては得られるイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの透明性、耐塩性、コスト、取り扱いやすさの点から、次亜塩素酸ナトリウム、亜塩素酸ナトリウム、二酸化塩素が好ましい。
塩素系酸化剤は、試薬をそのままセルロース繊維に加えてもよいし、適当な溶媒に溶かして加えてもよい。
【0053】
塩素系酸化剤による酸化工程における塩素系酸化剤の溶液中濃度は、例えば有効塩素濃度に換算して、1質量%以上1,000質量%以下であることが好ましく、5質量%以上500質量%以下であることがより好ましく、10質量%以上100質量%以下であることがさらに好ましい。
塩素系酸化剤のセルロース繊維100質量部に対する添加量は、1質量部以上100,000質量部以下であることが好ましく、10質量部以上10,000質量部以下であることがより好ましく、100質量部以上5,000質量部以下であることがさらに好ましい。
【0054】
塩素系酸化剤による酸化工程における塩素系酸化剤との反応時間は、反応温度に応じて変わり得るが、例えば1分間以上1,000分間以下であることが好ましく、10分間以上500分間以下であることがより好ましく、20分間以上400分間以下であることがさらに好ましい。
反応時のpHは、5以上15以下であることが好ましく、7以上14以下であることがより好ましく、9以上13以下であることがさらに好ましい。また、反応開始時、反応中のpHは塩酸や水酸化ナトリウムを適宜添加しながら一定(例えば、pH11)を保つことが好ましい。また、反応後は濾過等により、余剰の反応試薬、副生物等を水洗・除去してもよい。
【0055】
-ザンテート基導入工程(キサントゲン酸エステル化工程)-
イオン性官能基導入工程として、例えばザンテート基導入工程(以下、ザンテート化工程ともいう。)を含んでもよい。ザンテート化工程では、二硫化炭素とアルカリ化合物を、湿潤あるいは乾燥状態の、水酸基を有するセルロース繊維に加えて反応を行うことで、セルロース繊維にザンテート基が導入される。具体的には、二硫化炭素を後述の手法でアルカリセルロース化したセルロース繊維に対して加え、反応を行う。
【0056】
≪アルカリセルロース化≫
セルロース繊維へのイオン性官能基導入に際しては、セルロース繊維が含むセルロースにアルカリ溶液を作用させ、セルロースをアルカリセルロース化することが好ましい。この処理により、セルロースの水酸基の一部がイオン解離し、求核性(反応性)を高めることができる。アルカリ溶液に含まれるアルカリ化合物は、とくに限定されず、無機アルカリ化合物であってもよいし、有機アルカリ化合物であってもよい。汎用性が高いことから、例えば水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、テトラエチルアンモニウムヒドロキシド、テトラブチルアンモニウムヒドロキシドを用いることが好ましい。アルカリセルロース化は、イオン性官能基の導入と同時に行ってもよいし、その前段として行ってもよいし、両方のタイミングで行ってもよい。
【0057】
アルカリセルロース化を始める際の溶液温度は、0℃以上50℃以下であることが好ましく、5℃以上40℃以下であることがより好ましく、10℃以上30℃以下であることがさらに好ましい。
【0058】
アルカリ溶液濃度としては、モル濃度として0.01mol/L以上4mol/L以下であることが好ましく、0.1mol/L以上3mol/L以下であることがより好ましく、1mol/L以上2.5mol/L以下であることがさらに好ましい。とくに、処理温度が10℃未満である場合は、1mol/L以上2mol/L以下であることが好ましい。
【0059】
アルカリセルロース化の処理時間は、1分間以上であることが好ましく、10分間以上であることがより好ましく、30分間以上であることがさらに好ましい。また、アルカリ処理の時間は、6時間以下であることが好ましく、5時間以下であることがより好ましく、4時間以下であることがさらに好ましい。
【0060】
アルカリ溶液の種類、処理温度、濃度、浸漬時間を上述のように調整することで、セルロースの結晶領域へのアルカリ溶液浸透を抑制でき、セルロースI型の結晶構造が維持されやすくなり、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの収率を高めることができる。
【0061】
イオン性官能基導入とアルカリセルロース化を同時に行わない場合、アルカリ処理で得られたアルカリセルロースは、遠心分離や、濾別などの一般的な脱液方法により、固液分離し、水分を除去しておくことが好ましい。これにより、次いで行われるイオン性官能基導入工程での、反応効率が向上する。固液分離後のセルロース繊維濃度は、5%以上50%以下であることが好ましく、10%以上40%以下であることがより好ましく、15%以上35%以下であることがさらに好ましい。
【0062】
-ホスホン基またはホスフィン基導入工程(ホスホアルキル化工程)-
イオン性官能基導入工程としては、ホスホン基またはホスフィン基導入工程(ホスホアルキル化工程)を含んでもよい。ホスホアルキル化工程では、必須成分として、反応性基とホスホ基またはホスフィン基とを有する化合物(化合物E)、任意成分としてアルカリ化合物、前述した尿素およびその誘導体から選択される化合物Bを、湿潤あるいは乾燥状態の、水酸基を有するセルロース繊維に加えて反応を行うことで、セルロース繊維にホスホン基またはホスフィン基が導入される。
【0063】
反応性基としては、ハロゲン化アルキル基、ビニル基、エポキシ基(グリシジル基)などが挙げられる。
化合物Eとしては、例えばビニルホスホン酸、フェニルビニルホスホン酸、フェニルビニルホスフィン酸等が挙げられる。置換基の導入効率、ひいては得られるイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの透明性や耐塩性、コスト、取り扱いやすさの点から化合物Eはビニルホスホン酸であることが好ましい。
さらに任意成分として、上述した<リンオキソ酸基導入工程>における化合物Bを同様に用いることも好ましく、添加量も前述のようにすることが好ましい。
【0064】
化合物Eを添加する際には、試薬(固形状もしくは液状)としてそのままセルロース繊維に加えてもよいし、適当な溶媒に溶かして加えてもよい。セルロース繊維は事前にアルカリセルロース化するか、反応と同時にアルカリセルロース化されることが好ましい。アルカリセルロース化の方法は、前述のとおりである。
【0065】
反応時の温度は、例えば50℃以上300℃以下であることが好ましく、100℃以上250℃以下であることがより好ましく、130℃以上200℃以下であることがさらに好ましい。
【0066】
化合物Eのセルロース繊維100質量部に対する添加量は、1質量部以上100,000質量部以下であることが好ましく、2質量部以上10,000質量部以下であることがより好ましく、5質量部以上1,000質量部以下であることがさらに好ましい。
【0067】
反応時間は、反応温度に応じて変わり得るが、例えば1分間以上1,000分間以下であることが好ましく、10分間以上500分間以下であることがより好ましく、20分間以上400分間以下であることがさらに好ましい。また、反応後は濾過等により、余剰の反応試薬、副生物等を水洗・除去してもよい。
【0068】
-スルホン基導入工程(スルホアルキル化工程)-
イオン性官能基導入工程として、例えば、スルホン基導入工程(スルホアルキル化工程)を含んでもよい。スルホアルキル化では、必須成分として、反応性基とスルホン基とを有する化合物(化合物E)と、任意成分としてアルカリ化合物、前述した、尿素およびその誘導体から選択される化合物Bを、湿潤あるいは乾燥状態の、水酸基を有するセルロース繊維に加えて反応を行うことで、セルロース繊維にスルホン基が導入される。
【0069】
反応性基としては、ハロゲン化アルキル基、ビニル基、エポキシ基(グリシジル基)などが挙げられる。
化合物Eとしては、2-クロロエタンスルホン酸ナトリウム、ビニルスルホン酸ナトリウム、p-スチレンスルホン酸ナトリウム、2-アクリルアミド-2-メチルプロパンスルホン酸等が挙げられる。中でも、置換基の導入効率、ひいては得られるイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの透明性や耐塩性、コスト、取り扱いやすさの点からビニルスルホン酸ナトリウムが好ましい。
さらに任意成分として、上述した<リンオキソ酸基導入工程>における化合物Bを同様に用いることも好ましく、添加量も前述のようにすることが好ましい。
【0070】
化合物Eは、試薬をそのままセルロース繊維に加えてもよいし、適当な溶媒に溶かして加えてもよい。セルロース繊維は事前にアルカリセルロース化するか、反応と同時にアルカリセルロース化されることが好ましい。アルカリセルロース化の方法は、前述のとおりである。
【0071】
反応時の温度は、例えば50℃以上300℃以下であることが好ましく、100℃以上250℃以下であることがより好ましく、130℃以上200℃以下であることがさらに好ましい。
【0072】
化合物Eのセルロース繊維100質量部に対する添加量は、1質量部以上100,000質量部以下であることが好ましく、2質量部以上10,000質量部以下であることがより好ましく、5質量部以上1,000質量部以下であることがさらに好ましい。
【0073】
反応時間は、反応温度に応じて変わり得るが、例えば1分間以上1,000分間以下であることが好ましく、10分間以上500分間以下であることがより好ましく、15分間以上400分間以下であることがさらに好ましい。
また、反応後は濾過等により、余剰の反応試薬、副生物等を水洗・除去してもよい。
【0074】
-カルボキシアルキル化工程(第三のカルボキシ基導入工程)-
イオン性官能基導入工程として、例えば、カルボキシアルキル化工程を含んでもよい。必須成分として、反応性基とカルボキシ基とを有する化合物(化合物E)、任意成分としてアルカリ化合物、前述した、尿素およびその誘導体から選択される化合物Bを、湿潤あるいは乾燥状態の、水酸基を有するセルロース繊維に加えて反応を行うことで、セルロース繊維にカルボキシ基が導入される。
【0075】
反応性基としては、ハロゲン化アルキル基、ビニル基、エポキシ基(グリシジル基)などが挙げられる。
化合物Eとしては、置換基の導入効率、ひいては得られるイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの透明性や耐塩性、コスト、取り扱いやすさの点からモノクロロ酢酸、モノクロロ酢酸ナトリウム、2-クロロプロピオン酸、3-クロロプロピオン酸、2-クロロプロピオン酸ナトリウム、3-クロロプロピオン酸ナトリウムが好ましい。
さらに任意成分として、上述した<リンオキソ酸基導入工程>における化合物Bを同様に用いることも好ましく、添加量も前述のようにすることが好ましい。
【0076】
化合物Eは、試薬をそのままセルロース繊維に加えてもよいし、適当な溶媒に溶かして加えてもよい。セルロース繊維は事前にアルカリセルロース化するか、反応と同時にアルカリセルロース化されることが好ましい。アルカリセルロース化の方法は、前述のとおりである。
【0077】
反応時の温度は、例えば50℃以上300℃以下であることが好ましく、100℃以上250℃以下であることがより好ましく、130℃以上200℃以下であることがさらに好ましい。
【0078】
化合物Eのセルロース繊維100質量部に対する添加量は、1質量部以上100,000質量部以下であることが好ましく、2質量部以上10,000質量部以下であることがより好ましく、5質量部以上1,000質量部以下であることがさらに好ましい。
【0079】
反応時間は、反応温度に応じて変わり得るが、例えば1分間以上1,000分間以下であることが好ましく、3分間以上500分間以下であることがより好ましく、5分間以上400分間以下であることがさらに好ましい。
また、反応後は濾過等により、余剰の反応試薬、副生物等を水洗・除去してもよい。
【0080】
-カチオン性基導入工程(カチオン化工程)-
必須成分として、反応性基とカチオン性基とを有する化合物(化合物E)、任意成分としてアルカリ化合物、前述した、尿素およびその誘導体から選択される化合物Bを、湿潤あるいは乾燥状態の、水酸基を有するセルロース繊維に加えて反応を行うことで、セルロース繊維にカチオン性基が導入される。
【0081】
反応性基としては、ハロゲン化アルキル基、ビニル基、エポキシ基(グリシジル基)などが挙げられる。
【0082】
化合物Eとしては、置換基の導入効率、ひいては得られるイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの透明性や耐塩性、コスト、取り扱いやすさの点からグリシジルトリメチルアンモニウムクロリド、3-クロロ-2-ヒドロキシプロピルトリメチルアンモニウムクロリド等が好ましい。
【0083】
さらに任意成分として、上述した<リンオキソ酸基導入工程>における化合物Bを同様に用いることも好ましい。添加量も前述のようにすることが好ましい。
【0084】
化合物Eは、試薬をそのままセルロース繊維に加えてもよいし、適当な溶媒に溶かして加えてもよい。セルロース繊維は事前にアルカリセルロース化するか、反応と同時にアルカリセルロース化されることが好ましい。アルカリセルロース化の方法は、前述のとおりである。
【0085】
反応時の温度は、例えば50℃以上300℃以下であることが好ましく、100℃以上250℃以下であることがより好ましく、130℃以上200℃以下であることがさらに好ましい。
【0086】
化合物Eのセルロース繊維100質量部に対する添加量は、1質量部以上100,000質量部以下であることが好ましく、2質量部以上10,000質量部以下であることがより好ましく、5質量部以上1,000質量部以下であることがさらに好ましい。
【0087】
反応時間は、反応温度に応じて変わり得るが、例えば1分間以上1,000分間以下であることが好ましく、5分間以上500分間以下であることがより好ましく、10分間以上400分間以下であることがさらに好ましい。
また、反応後は濾過等により、余剰の反応試薬、副生物等を水洗・除去してもよい。
【0088】
〔洗浄工程〕
本実施形態の製造方法においては、必要に応じてイオン性官能基導入繊維に対して、後述する工程Bの前に、洗浄工程を行うことができる。洗浄工程は、例えば水や有機溶媒によりイオン性官能基導入セルロース繊維を洗浄することにより行われる。また、洗浄工程は後述する各工程の後に行われてもよく、各洗浄工程において実施される洗浄回数は、とくに限定されない。
【0089】
〔アルカリ処理工程〕
工程A(イオン性官能基導入工程)と、後述する工程B(加水分解工程)との間に、イオン性官能基導入セルロース繊維に対してアルカリ処理を行ってもよい。アルカリ処理の方法としては、とくに限定されないが、例えばアルカリ溶液中に、イオン性官能基導入セルロース繊維を浸漬する方法が挙げられる。
アルカリ溶液に含まれるアルカリ化合物は、とくに限定されず、無機アルカリ化合物であってもよいし、有機アルカリ化合物であってもよい。本実施形態においては、汎用性が高いことから、例えば水酸化ナトリウムまたは水酸化カリウムをアルカリ化合物として用いることが好ましい。また、アルカリ溶液に含まれる溶媒は、水または有機溶媒のいずれであってもよい。中でも、アルカリ溶液に含まれる溶媒は、水、またはアルコールに例示される極性有機溶媒などを含む極性溶媒であることが好ましく、少なくとも水を含む水系溶媒であることがより好ましい。アルカリ溶液としては、汎用性が高いことから、例えば水酸化ナトリウム水溶液、または水酸化カリウム水溶液が好ましい。
アルカリ処理工程におけるアルカリ溶液の温度は、とくに限定されないが、例えば5℃以上80℃以下であることが好ましく、10℃以上60℃以下であることがより好ましい。アルカリ処理工程におけるイオン性官能基導入繊維のアルカリ溶液への浸漬時間は、とくに限定されないが、例えば5分間以上30分間以下であることが好ましく、10分間以上20分間以下であることがより好ましい。アルカリ処理におけるアルカリ溶液の使用量は、とくに限定されないが、例えばイオン性官能基導入繊維の絶対乾燥質量に対して100質量%以上100,000質量%以下であることが好ましく、1,000質量%以上10,000質量%以下であることがより好ましい。
アルカリ処理は、イオン性官能基導入セルロース繊維がアニオン性基を有する場合は、そのアニオン性基の中和処理・イオン交換処理であってもよい。この場合、アルカリ溶液の温度は室温であることが好ましい。
【0090】
アルカリ処理工程におけるアルカリ溶液の使用量を減らすために、イオン性官能基導入工程の後であってアルカリ処理工程の前に、イオン性官能基導入セルロース繊維を水や有機溶媒により洗浄してもよい。アルカリ処理工程の後であって工程Bの前には、取り扱い性を向上させる観点から、アルカリ処理を行ったイオン性官能基導入セルロース繊維を水や有機溶媒により洗浄することが好ましい。
【0091】
〔酸処理工程〕
イオン性官能基導入工程と、後述する加水分解工程との間に、イオン性官能基導入セルロース繊維に対して酸処理を行ってもよい。例えば、イオン性官能基導入工程、酸処理工程、アルカリ処理工程、工程Bおよび工程Cをこの順で行ってもよい。
酸処理の方法としては、とくに限定されないが、例えば酸を含有する酸性液中にイオン性官能基導入セルロース繊維を浸漬する方法が挙げられる。使用する酸性液の濃度は、とくに限定されないが、例えば10質量%以下であることが好ましく、5質量%以下であることがより好ましい。また、使用する酸性液のpHは、とくに限定されないが、例えば0以上4以下であることが好ましく、1以上3以下であることがより好ましい。酸性液に含まれる酸としては、例えば無機酸、スルホン酸、カルボン酸等を用いることができる。無機酸としては、例えば硫酸、硝酸、塩酸、臭化水素酸、ヨウ化水素酸、次亜塩素酸、亜塩素酸、塩素酸、過塩素酸、リン酸、ホウ酸等が挙げられる。スルホン酸としては、例えばメタンスルホン酸、エタンスルホン酸、ベンゼンスルホン酸、p-トルエンスルホン酸、トリフルオロメタンスルホン酸等が挙げられる。カルボン酸としては、例えばギ酸、酢酸、クエン酸、グルコン酸、乳酸、シュウ酸、酒石酸等が挙げられる。これらの中でも、塩酸または硫酸を用いることがとくに好ましい。
酸処理における酸溶液の温度は、とくに限定されないが、例えば5℃以上100℃以下が好ましく、20℃以上90℃以下がより好ましい。酸処理における酸溶液への浸漬時間は、とくに限定されないが、例えば5分間以上120分間以下が好ましく、10分間以上60分間以下がより好ましい。酸処理における酸溶液の使用量は、とくに限定されないが、例えばイオン性官能基導入セルロース繊維の絶対乾燥質量に対して100質量%以上100,000質量%以下であることが好ましく、1,000質量%以上10,000質量%以下であることがより好ましい。
酸処理は、イオン性官能基導入セルロース繊維がカチオン性基を有する場合は、そのカチオン性基の中和処理・イオン交換処理であってもよい。この場合、酸溶液の温度は室温であることが好ましい。
【0092】
<工程B>
工程Bは、イオン性官能基を導入したセルロース繊維を、濃度が5mol/L以上の酸性水溶液により加水分解する加水分解工程である。
上述した方に、イオン性官能基を導入したセルロース繊維(イオン性官能基導入セルロース繊維)は、工程Aの後、工程Bの前に、洗浄工程を有することが好ましい。
加水分解工程により、イオン性官能基導入セルロース繊維中の非晶質部分が加水分解により除去され、結晶性が向上する。また、加水分解工程により、例えば、リンオキソ酸中の縮合部分が加水分解され、得られるイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル中の第1解離量と第2解離量との差異が小さくなる、または等しくなる。
なお、加水分解工程により、セルロース繊維中の非晶質部位に導入されたイオン性官能基はセルロース繊維の加水分解とともに除去されるため、一般に、工程Aにより得られたイオン官能性基導入セルロース繊維へのイオン性官能基の導入量に比べて、工程Bおよび工程Cを経て得られたイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル中のイオン性官能基の導入量は減少する。また、セルロース繊維の非晶質部位に導入されたカルバミド基なども、加水分解工程により除去され、より純度の高いイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルが得られる。
【0093】
〔酸性水溶液〕
工程Bでは、濃度が5mol/L以上の酸性水溶液を使用する。
酸性水溶液に含まれる酸としては、例えば無機酸、およびスルホン酸、カルボン酸等の有機酸を用いることができる。
無機酸としては、例えば硫酸、硝酸、塩酸、臭化水素酸、ヨウ化水素酸、次亜塩素酸、亜塩素酸、塩素酸、過塩素酸、リン酸、ホウ酸等が挙げられる。
スルホン酸としては、例えばメタンスルホン酸、エタンスルホン酸、ベンゼンスルホン酸、p-トルエンスルホン酸、トリフルオロメタンスルホン酸等が挙げられる。カルボン酸としては、例えばギ酸、酢酸、クエン酸、グルコン酸、乳酸、シュウ酸、酒石酸等が挙げられる。
また、リン酸水溶液は、五酸化二リン水溶液であってもよ。五酸化二リンを使用することにより、高濃度の酸性水溶液を得ることができ、そして、加水分解処理に使用した後に、回収して再生五酸化二リンとして再利用できる点で好ましい。
これらの中でも、工程Bで使用する酸性水溶液としては、リン酸、硫酸、五酸化二リン、および塩酸よりなる群から選択される酸化合物の水溶液であることが好ましい。
【0094】
工程Bで使用する酸性水溶液の濃度は5mol/L以上であり、好ましくは7mol/L以上、より好ましくは9mol/L以上、さらに好ましくは10mol/L以上であり、そして、操作の容易性の観点から、好ましくは30mol/L以下、より好ましくは25mol/L以下、さらに好ましくは20mol/L以下である。
【0095】
〔加水分解工程〕
工程Bにおけるイオン性官能基導入セルロース繊維の濃度は、加水分解反応の反応性の観点から、好ましくは1質量%以上、より好ましくは1.5質量%以上であり、そして、好ましくは10質量%以下、より好ましくは7.5質量%以下、さらに好ましくは5質量%以下である。
工程Bにおける反応温度は、加水分解反応の反応性の観点から、好ましくは50℃以上、より好ましくは70℃以上、さらに好ましくは90℃以上であり、そして、好ましくは100℃以下である。
工程Bにおける反応時間は、加水分解反応の反応性の観点、および製造時間短縮の観点から、好ましくは5分間以上、より好ましくは15分間以上、さらに好ましくは30分間以上であり、そして、好ましくは12時間以下、より好ましくは6時間以下、さらに好ましくは3時間以下である。
【0096】
工程Bの後、工程Cの前に、精製工程を有することが好ましい。
精製工程では、固液分離と水への再分散とを繰り返して加水分解に使用した酸性水溶液を除去することが好ましい。
また、上記の処理の後、強塩基性イオン交換樹脂と接触させ、スラリーの電気伝導度とpHの変動がなくなるまで処理を行って、精製することが好ましい。
【0097】
<工程C>
工程Cは、工程Bで得られた、加水分解されたイオン性官能基導入繊維を解繊する、解繊工程である。
解繊工程では、工程Bで得られた加水分解されたイオン性官能基導入繊維を分散液(スラリー)とし、解繊に供することが好ましい。
【0098】
〔解繊処理工程〕
加水分解されたイオン性官能基導入セルロース繊維を解繊処理工程で解繊処理することにより、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルが得られる。
解繊処理工程においては、例えば解繊処理装置を用いることができる。解繊処理装置は、とくに限定されないが、例えば高速解繊機、グラインダー(石臼型粉砕機)、高圧ホモジナイザーや超高圧ホモジナイザー、高圧衝突型粉砕機、ボールミル、ビーズミル、ディスク型リファイナー、コニカルリファイナー、二軸混練機、振動ミル、高速回転下でのホモミキサー、超音波分散機、またはビーターなどを使用することができる。上記解繊処理装置の中でも、粉砕メディアの影響が少なく、コンタミネーションのおそれが少ない高速解繊機、高圧ホモジナイザー、超高圧ホモジナイザーを用いることがより好ましい。
【0099】
解繊処理工程においては、例えば加水分解されたイオン性官能基導入セルロース繊維を、分散媒により希釈してスラリー状にすることが好ましい。分散媒としては、水、および極性有機溶媒などの有機溶媒から選択される1種または2種以上を使用することができる。極性有機溶媒としては、とくに限定されないが、例えばアルコール類、多価アルコール類、ケトン類、エーテル類、エステル類、非プロトン極性溶媒等が好ましい。アルコール類としては、例えばメタノール、エタノール、イソプロパノール、n-ブタノール、イソブチルアルコール等が挙げられる。多価アルコール類としては、例えばエチレングリコール、プロピレングリコール、グリセリンなどが挙げられる。ケトン類としては、アセトン、メチルエチルケトン(MEK)等が挙げられる。エーテル類としては、例えばジエチルエーテル、テトラヒドロフラン、エチレングリコールモノメチルエーテル、エチレングリコールモノエチルエーテル、エチレングリコールモノn-ブチルエーテル、プロピレングリコールモノメチルエーテル等が挙げられる。エステル類としては、例えば酢酸エチル、酢酸ブチル等が挙げられる。非プロトン性極性溶媒としてはジメチルスルホキシド(DMSO)、ジメチルホルムアミド(DMF)、ジメチルアセトアミド(DMAc)、N-メチル-2-ピロリジノン(NMP)等が挙げられる。
これらの中でも、分散媒としては水が好ましい。
【0100】
解繊処理時の分散液(スラリー)の濃度は、解繊を効率よく行う観点から、好ましくは0.3質量%以上、より好ましくは1.0質量%以上、さらに好ましくは1.5質量%以上であり、そして、好ましくは10質量%以下、より好ましくは6質量%以下、さらに好ましくは3質量%以下である。
【0101】
<イオン性官能基導入セルロースナノクリスタル>
工程A~工程Cを経て得られたイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルは、イオン性官能基が導入されているとともに、高度に結晶化されている。
イオン性官能基導入セルロースナノクリスタル中のイオン性官能基の導入量は、透明性および耐塩性の観点から、好ましくは0.10mmol/g以上、より好ましくは0.20mmol/g以上、さらに好ましくは0.30mmol/g以上、よりさらに好ましくは0.40mmol/g以上、とくに好ましくは0.50mmol/g以上であり、そして、上限はとくに限定されず、例えば3.00mmol/g以下である。
【0102】
イオン性官能基導入セルロースナノクリスタル中のカルバミド基量は、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの純度を向上させる観点から、低いことが好ましく、好ましくは0.06mmol/g以下、より好ましくは0.05mmol/g以下、さらに好ましくは0.04mmol/g以下、よりさらに好ましくは0.03mmol/g以下である。下限はとくに限定されず、0.00mmol/gであってもよい。
なお、カルバミド基は、上述したように、尿素および/または尿素誘導体を使用してセルロース繊維にイオン性官能基を導入する場合に、導入される場合があり、工程Bにより、少なくともセルロース繊維の非晶質部分に導入されたカルバミド基は、該非晶質部分とともに除去される。
【0103】
イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの繊維幅は、1000nm以下である。なお、セルロースナノクリスタルの繊維幅は、例えば電子顕微鏡観察などにより測定することが可能である。
イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの繊維幅は、1,000nm以下であり、例えば2nm以上1,000nm以下であることが好ましく、2nm以上100nm以下であることがより好ましく、2nm以上50nm以下であることがさらに好ましく、2nm以上30nm以下であることがとくに好ましい。イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの繊維幅を上記範囲内とすることにより、セルロース分子として水に溶解することを抑制し、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタル分散液の低粘度化という効果をより発現しやすくすることができる。
【0104】
イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの平均繊維幅は、例えば1,000nm以下である。イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの平均繊維幅は、2nm以上1,000nm以下であることが好ましく、2nm以上100nm以下であることがより好ましく、2nm以上50nm以下であることがさらに好ましく、2nm以上30nm以下であることがとくに好ましい。イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの平均繊維幅を上記範囲内とすることにより、セルロース分子として水に溶解することを抑制し、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタル分散液の低粘度化という効果をより発現しやすくすることができる。
【0105】
セルロースナノクリスタルの平均繊維幅は、例えば電子顕微鏡を用いて以下のようにして測定される。まず、濃度0.05質量%以上0.1質量%以下のセルロースナノクリスタルの水系懸濁液を調製し、この懸濁液を親水化処理したカーボン膜被覆グリッド上にキャストしてTEM観察用試料とする。幅の広い繊維を含む場合には、ガラス上にキャストした表面のSEM像を観察してもよい。次いで、観察対象となる繊維の幅に応じて1,000倍、5,000倍、10,000倍あるいは50,000倍のいずれかの倍率で電子顕微鏡画像による観察を行う。ただし、試料、観察条件や倍率は下記の条件を満たすように調整する。
(1)観察画像内の任意箇所に一本の直線Xを引き、該直線Xに対し、20本以上の繊維が交差する。
(2)同じ画像内で該直線と垂直に交差する直線Yを引き、該直線Yに対し、20本以上の繊維が交差する。
【0106】
上記条件を満足する観察画像に対し、直線X、直線Yと交差する繊維の幅を目視で読み取る。このようにして、少なくとも互いに重なっていない表面部分の観察画像を3組以上得る。次いで、各画像に対して、直線X、直線Yと交差する繊維の幅を読み取る。これにより、少なくとも20本×2×3=120本の繊維幅を読み取る。そして、読み取った繊維幅の平均値を、セルロースナノクリスタルの平均繊維幅とする。
【0107】
また、セルロースナノクリスタルの繊維径および平均繊維幅は、原子間力顕微鏡(AFM)を用いて以下のようにして測定してもよい。まず、濃度0.0001質量%以上0.1質量%以下のセルロースナノクリスタルの水系懸濁液を調製し、この懸濁液をテープで劈開させたマイカ上にキャストしてAFM観察用試料とする。次いで、観察対象となる繊維の幅に応じて、5μm角視野、2μm角視野、1μm角視野のいずれかの倍率でAFMによる観察を行う。少なくとも互いに重なっていない表面部分の観察画像を3組以上得て、無作為に互いに重なっていない繊維を選択し、その繊維のZ軸方向の高さを読み取って、繊維幅とする。少なくとも100本の繊維幅を測定した上で、得られた繊維幅の平均値を、セルロースナノクリスタルの平均繊維幅とする。
【0108】
イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの繊維長は、とくに限定されないが、例えば30nm以上1,000nm以下であることが好ましく、40nm以上800nm以下であることがより好ましく、50nm以上500nm以下であることがさらに好ましい。繊維長を上記範囲内とすることにより、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルのスラリー粘度を適切な範囲とすることも可能となる。なお、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの繊維長は、例えばTEM、SEM、AFMによる画像解析より求めることができる。
【0109】
イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルはI型結晶構造を有していることが好ましい。ここで、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルがI型結晶構造を有することは、グラファイトで単色化したCuKα(λ=1.5418Å)を用いた広角X線回折写真より得られる回折プロファイルにおいて同定できる。具体的には、2θ=14°以上17°以下付近と2θ=22°以上23°以下付近の2箇所の位置に典型的なピークをもつことから同定することができる。
イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルに占めるI型結晶構造の割合は、例えば30%以上であることが好ましく、40%以上であることがより好ましく、50%以上であることがさらに好ましい。これにより、水分散液としたときの低粘度化が期待できる。結晶化度については、X線回折プロファイルを測定し、そのパターンから常法により求められる(Seagalら、Textile Research Journal、29巻、786ページ、1959年)。
【0110】
イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの軸比(繊維長/繊維幅)は、とくに限定されないが、例えば5以上500以下であることが好ましく、10以上250以下であることがより好ましい。軸比を上記範囲内とすることにより、溶媒分散体を作製した際に低粘度の分散液が得られやすい。
【0111】
セルロースナノクリスタルは、セルロースナノファイバーとは異なり、典型的には、針状または紡錘状の形状を有し、折り曲がりが少ない形状を有している。
これは、工程Bによる非晶質部位の加水分解により、結晶性が高まるためと考えられ、当業者によれば、形状観察からも、セルロースナノクリスタルとセルロースナノファイバーとは識別可能である。
原子間力顕微鏡で無作為に100本のセルロースナノクリスタルを観察した場合、繊維が途中で30°以上折れ曲がっているものの本数は、好ましくは20本以下、より好ましくは10本以下、さらに好ましくは5本以下、よりさらに好ましくは3本以下である。
【0112】
[イオン性官能基導入セルロースナノクリスタル]
本実施形態のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルは、イオン性官能基導入量が0.1mmol/g以上である(ただし、セルロースの6位の炭素原子のみが酸化され、カルボキシ基が導入されているセルロースナノクリスタルを除く)。
なお、本実施形態のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルは、上述のように、セルロースの6位の炭素原子のみが酸化され、カルボキシ基が導入されているセルロースナノクリスタルを除く。具体的には、TEMPO酸化により得られるカルボキシ基導入セルロースナノクリスタルでは、6位のみにカルボキシ基が導入され、2位および3位の炭素原子の少なくともいずれかにイオン性官能基を導入することができない。従って、イオン性官能基導入の自由度が低い。また、従来、TEMPO酸化によるカルボキシ基の導入では、加水分解反応および解繊処理によってセルロースナノクリスタルとした後にカルボキシ基を導入しても、比較的高い導入量が得られていた。しかし、他のイオン性官能基の場合には、十分なイオン性官能基量を導入することが困難であった。
【0113】
本実施形態のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルに導入されているイオン性官能基としては、上述したイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの製造方法で例示したイオン性官能基が例示され、好ましい範囲も同様である。
イオン性官能基としては、例えばアニオン性官能基およびカチオン性官能基のいずれか一方または双方を含むことができる。本実施形態においては、イオン性官能基としてアニオン性官能基を有することがとくに好ましい。
イオン性官能基としてのアニオン性官能基としては、例えばリンオキソ酸基またはリンオキソ酸基に由来する基(単にリンオキソ酸基ということもある)、カルボキシ基またはカルボキシ基に由来する基(単にカルボキシ基ということもある)、硫黄オキソ酸基または硫黄オキソ酸基に由来する基(単に硫黄オキソ酸基ということもある)、ザンテート基、ホスホン基、ホスフィン基、スルホン基、カルボキシアルキル基等を挙げることができる。
イオン性官能基としてのカチオン性官能基としては、例えばアンモニウム基、ホスホニウム基、スルホニウム基等を挙げることができる。中でもカチオン性官能基はアンモニウム基であることが好ましい。
中でも、イオン性官能基は、リンオキソ酸基、リンオキソ酸基に由来する基、カルボキシ基、スルホン基、硫黄オキソ酸基、硫黄オキソ酸基に由来する基、およびカチオン性官能基よりなる群から選択される少なくとも1種であることが好ましく、リンオキソ酸基、リンオキソ酸基に由来する基、カルボキシ基、硫黄オキソ酸基、および硫黄オキソ酸基に由来する基よりなる群から選択される少なくとも1種であることがより好ましく、リンオキソ酸基およびリンオキソ酸基に由来する基よりなる群から選択される少なくとも1種であることがさらに好ましく、リンオキソ酸基であることがよりさらに好ましい。アニオン性官能基としてリンオキソ酸基を導入することにより、透明性、耐塩性に優れるセルロースナノクリスタルが得られる。
【0114】
本実施形態のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルにおいて、イオン性官能基導入量は、0.20mmol/g以上であり、好ましくは0.40mmol/g以上、より好ましくは0.50mmol/g以上、さらに好ましくは0.60mmol/g以上、よりさらに好ましくは0.70mmol/g以上、よりさらに好ましくは0.80mmol/g以上、よりさらに好ましくは0.90mmol/g以上、よりさらに好ましくは1.00mmol/g以上、よりさらに好ましくは1.10mmol/g以上、よりさらに好ましくは1.20mmol/g以上である。上限はとくに限定されないが、過度な導入量はセルロース結晶の破壊と溶解をもたらすことから、好ましくは5.00mmol/g以下、より好ましくは4.00mmol/g以下、さらに好ましくは3.00mmol/g以下である。
【0115】
本実施形態のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル中のカルバミド基量は、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの純度を向上させる観点から、低いことが好ましく、好ましくは0.06mmol/g以下、より好ましくは0.05mmol/g以下、さらに好ましくは0.04mmol/g以下、よりさらに好ましくは0.03mmol/g以下である。下限はとくに限定されず、0.00mmol/gであってもよい。
なお、上述したように、尿素および/または尿素誘導体を使用してセルロース繊維にイオン性官能基を導入する場合に、導入される場合があり、上述した本実施形態のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの製造方法により製造する場合には、工程Bにより、少なくともセルロース繊維の非晶質部分に導入されたカルバミド基は、該非晶質部分とともに除去されるため、低いカルバミド基量となるため、好ましい。
【0116】
本実施形態のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルは、セルロースの6位の炭素原子に加えて、セルロースの2位および3位の炭素原子の少なくともいずれか1つにイオン性官能基が導入されていることが好ましい。
セルロースの6位の炭素原子に加えて、2位の炭素原子および3位の炭素原子よりなる群から選択される少なくともいずれか1つの炭素原子にイオン性官能基が導入されていることにより、イオン性官能基の導入量を多くすることができるとともに、イオン性官能基の導入量の自由度が向上する。
また、6位のみにイオン性官能基が導入されている場合に比べて、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルにイオン性官能基の疎密が形成され、より解離性に優れ、繊維径の小さなセルロースナノクリスタルが得られると考えられる。
2位の炭素原子および3位の炭素原子よりなる群から選択される少なくともいずれか1つの炭素原子にイオン性官能基が導入されていることは、13C NMRにより検出可能であり、例えば、13C CP/MAS NMR(Cross Polarization Magic Angle Spinning-NMR(Nuclear Magic Resonance))により検出可能である。
【0117】
本実施形態のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルは、上述した、工程A~工程Cをこの順で有する、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの製造方法により得ることが好ましい。ただし、本実施形態のイオン性官能基導入ナノクリスタルの製造方法は、これに限定されることなく、他の方法により製造してもよい。
【0118】
本実施形態のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルは、水分散液とした場合の粘度が低い。
本実施形態のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルは、1.5質量%水分散液の23℃における粘度が、好ましくは100mPa・s以下、より好ましくは50mPa・s以下、さらに好ましくは30mPa・s以下、よりさらに好ましくは15mPa・s以下である。下限はとくに限定されないが、製造容易性の観点から、好ましくは1mPa・s以上、より好ましくは2mPa・s以上である。
イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの水分散液の粘度は、実施例に記載の方法により測定される。
【0119】
本発明のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルは、透明性に優れる。具体的には、イオン性官能基含有セルロースナノクリスタルの0.2質量%水分散液の23℃における全光線透過率は、好ましくは95.5%以上、より好ましくは96.0%以上、さらに好ましくは96.5%以上であり、そして、上限はとくに限定されず、100%であってもよい。
ここで、全光線透過率は、例えばJIS K 7361-1:1997に準拠し、ヘーズメーター(株式会社村上色彩技術研究所製、HM-150)を用いて測定される値である。
【0120】
本実施形態のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルは、耐塩性に優れる。
具体的には、イオン性官能基含有セルロースナノクリスタルの0.2質量%水分散液の23℃における全光線透過率の塩化ナトリウムの添加による変化が抑制されていることが好ましく、塩化ナトリウムを添加前の全光線透過率をT、塩化ナトリウムを添加後の全光線透過率をTとしたとき、T/Tが0.98以下となる塩化ナトリウム濃度は、好ましくは100mmol/L以上、より好ましくは300mmol/L以上である。
【0121】
本実施形態のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルは、純度に優れていることが好ましく、湿式加熱による着色にて評価される。なお、カルバミド基などの含窒素構造は、着色を促進するものと考えられる。
具体的には、1質量%の分散液を95℃で10時間加熱した際の着色度を目視で判断することで評価される。
【0122】
本実施形態のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの繊維幅、繊維長の範囲は、本実施形態の製造方法で得られたイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルと同様であり、好ましい範囲も同様である。
また、上述したように、セルロースナノクリスタルは、セルロースナノファイバーとはことなり、典型的には、針状または紡錘状の形状を有し、折り曲がりが少ない形状を有している。
原子間力顕微鏡で無作為に100本のセルロースナノクリスタルを観察した場合、繊維が途中で30°以上折れ曲がっているものの本数は、好ましくは20本以下、より好ましくは10本以下、さらに好ましくは5本以下、よりさらに好ましくは3本以下である。
【0123】
[分散液]
本実施形態の分散液は、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルを含有する。
本実施形態のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルは、分散液とした場合であっても、低粘度であり、従来のセルロースナノファイバーに比べて、高濃度の分散液として使用することが可能である。
【0124】
[シート]
本実施形態のシートは、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルを含有する。
本実施形態において、シートは、例えば上述したイオン性官能基導入セルロースナノクリスタル、ならびに必要に応じて親水性高分子およびにその他の成分を含有する液状の組成物を用いて、シート化工程を実施することにより、得ることができる。
シートの製造工程は、少なくとも前記組成物を基材上に塗工する塗工工程、または当該組成物を抄紙する抄紙工程を含むことが好ましく、前記組成物を基材上に塗工する塗工工程を有することがより好ましい。これにより、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルを含有するシートが得られる。
シートの厚みはとくに限定されないが、例えば、5μm以上、より好ましくは10μm以上、さらに好ましくは20μm以上であり、そして、好ましくは500μm以下、より好ましくは300μm以下、さらに好ましくは200μm以下である。
【0125】
[パウダー]
本実施形態のパウダーは、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルを含有する。
本実施形態において、前記パウダーは、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタル分散液を乾燥させることで得られ、具体的には、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルを含有する分散液を、スプレードライヤーで噴霧乾燥する方法が例示される。
パウダーの含水率は、好ましくは50%以下、より好ましくは30%以下、さらに好ましくは25%以下であり、そして、好ましくは5%以上、より好ましくは10%以上である。
また、パウダーの粒径は、製造容易性等の観点から、好ましくは1μm以上、より好ましくは3μm以上、さらに好ましくは5μm以上であり、そして、好ましくは1000μm以下、より好ましくは300μm以下、さらに好ましくは100μm以下である。
【0126】
[イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルの用途]
本実施形態のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルは、例えば、化粧料、医療用組成物、塗料、金属表面処理剤、研磨剤、食品、ゴム、樹脂、掘削用組成物、コンクリート水和用組成物、コンクリート先行剤、歯科材料、細胞増殖促進剤、凍結抑制剤、塗膜剥離剤、殺虫剤・昆虫忌避剤、農薬、鋳型成形用組成物、潤滑剤、配管摩擦抵抗低減剤、芳香・消臭剤に関わる添加剤として使用することができる。本実施形態のイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルは、透明性および耐塩性に優れ、湿式加熱による黄変が抑制されるため、透明性、耐塩性が求められる用途や、加熱が必要とされる用途にも好適である。
また、シート状とすることにより、ディスプレイ装置、各種の太陽電池等の光学部材用に適している。さらに、電子機器の基板、電気化学素子用セパレータ、家電の部材、各種の乗り物や建物の窓材、内装材、外装材、包装用資材等の用途にも適している。
【実施例0127】
以下に実施例と比較例を挙げて、本発明の特徴をさらに具体的に説明する。以下の実施例に示す材料、使用量、割合、処理内容、処理手順等は、本発明の趣旨を逸脱しない限り適宜変更することができる。従って、本発明の範囲は以下に示す具体例により限定的に解釈されるべきものではない。
【0128】
<実施例A1>
原料パルプ(セルロース繊維)として、王子製紙株式会社製の針葉樹漂白クラフトパルプ(NBKP、固形分93質量%、坪量245g/mシート状、離解してJIS P 8121-2:2012に準じて測定されるカナダ標準濾水度(CSF)が700mL)を使用した。
この原料パルプに対してリンオキソ酸化処理を次のようにして行った。まず、上記原料パルプ100質量部(絶乾質量)に、リン酸二水素アンモニウムと尿素の混合水溶液を添加して、リン酸二水素アンモニウム45質量部、尿素120質量部、水150質量部となるように調整し、薬液含浸パルプを得た。次いで、得られた薬液含浸パルプを165℃の熱風乾燥機で250秒加熱し、パルプ中のセルロースにリン酸基を導入し、リン酸化パルプを得た。
次いで、得られたリン酸化パルプに対して洗浄処理を行った。洗浄処理は、リン酸化パルプ100g(絶乾質量)に対して10Lのイオン交換水を注いで得たパルプ分散液を、パルプが均一に分散するよう撹拌した後、濾過脱水する操作を繰り返すことにより行った。ろ液の電気伝導度が100μS/cm以下となった時点で、洗浄終点とした。
次いで、洗浄後のリン酸化パルプに対して中和処理を次のようにして行った。まず、洗浄後のリン酸化パルプを10Lのイオン交換水で希釈した後、撹拌しながら1Nの水酸化ナトリウム水溶液を少しずつ添加することにより、pHが12以上13以下のリン酸化パルプスラリーを得た。次いで、当該リン酸化パルプスラリーを脱水および洗浄して、中和処理が施されたリン酸化パルプを得た。
【0129】
得られたリン酸化パルプに、高濃度酸加水分解処理を行った。
具体的には、得られたリン酸化パルプに、85%リン酸(14.7mol/Lリン酸)を少量ずつ加え、10.7mol/Lリン酸中に、リン酸化パルプが4質量%で懸濁したスラリーを得た。この懸濁スラリーは曳糸性のある粘稠な液であった。得られた懸濁スラリーをガラス容器に入れ、撹拌しながら、95℃の温浴にて90分間加熱加水分解処理した。
得られた高濃度酸加水分解後のスラリーは、薄茶色で粘性が下がり、曳糸性は見られなかった。得られた反応後スラリーは、下記の手順で溶存成分と酸を除き、精製した。すなわち、得られた反応後スラリーを氷冷し、遠心分離(12,000G、5分)処理により固液分離を行った。遠心分離後は、上澄みを除去し、同体積のイオン交換水を加えて、沈殿物とよく練り、分散させた状態で、再度遠心分離に供試した。この操作を3回繰り返した後、沈殿物を再度イオン交換水に懸濁した状態で、強塩基性イオン交換樹脂(アンバージェット4400;オルガノ株式会社、コンディショニング済)と接触させ、スラリーの電気伝導度とpHの変動がなくなるまで処理を行った。
得られた精製後スラリーにイオン交換水を添加し、固形分濃度が2質量%のスラリーを調製し、以下の解繊処理を行った。具体的には、このスラリーを、湿式微粒化装置(株式会社美粒製、Beryu-Mini、高圧ホモジナイザー)で100MPaの圧力にて6回処理して解繊し、リン酸化セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0130】
なお、得られたリン酸化パルプおよびリン酸化セルロースナノクリスタルに対しFT-IRを用いて赤外線吸収スペクトルの測定を行った。その結果、1230cm-1付近にリン酸基のP=Oに基づく吸収が観察され、リン酸基が付加されていることが確認された。また、得られたリン酸化パルプおよびリン酸化セルロースナノクリスタルを供試して、X線回折装置にて分析を行ったところ、2θ=14°以上17°以下付近と2θ=22°以上23°以下付近の2箇所の位置に典型的なピークが確認され、セルロースI型結晶を有していることが確認された。なお、後述する〔リンオキソ酸基量の測定〕に記載の測定方法で測定されるリン酸基量(第1解離酸量)は、リン酸化パルプにおいて1.45mmol/g、リン酸化セルロースナノクリスタルにおいて0.60mmol/gであった。なお、総解離酸量はリン酸化パルプにおいて、2.45mmol/g(第2解離酸量は1.00mmol/g)、リン酸化セルロースナノクリスタルにおいて1.20mmol/g(第2解離酸量は0.60mmol/g)であった。また、セルロースナノクリスタルの繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0131】
<実施例A2>
洗浄後のリン酸化パルプに対して、さらに上記リン酸化処理、上記洗浄処理をこの順に2回ずつ行った以外は実施例A1と同様にして、リン酸化パルプおよびリン酸化セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
得られたリン酸化パルプおよびリン酸化セルロースナノクリスタルに対して、FT-IRを用いて赤外線吸収スペクトルの測定を行った。その結果、1230cm-1付近にリン酸基のP=Oに基づく吸収が観察され、リン酸基が付加されていることが確認された。X線回折により、得られたリン酸化パルプおよびリン酸化セルロースナノクリスタルがセルロースI型結晶を維持していることが確認された。後述する〔リンオキソ酸基量の測定〕に記載の測定方法で測定されるリン酸基量(第1解離酸量)は、リン酸化パルプにおいて2.00mmol/g、リン酸化セルロースナノクリスタルにおいて0.85mmol/gであった。なお、総解離酸量は、リン酸化パルプにおいて3.30mmol/g(第2解離酸量は1.30mmol/g)、リン酸化セルロースナノクリスタルにおいて1.65mmol/g(第2解離酸量は0.80mmol/g)であった。また、リン酸化セルロースナノクリスタルの繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0132】
<実施例A3>
実施例A1において、薬液含浸パルプを165℃の熱風乾燥機で250秒加熱したのを、165℃の熱風乾燥機で750秒加熱した以外は実施例A1と同様にして、リン酸化パルプおよびリン酸化セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0133】
得られたリン酸化パルプおよびリン酸化セルロースナノクリスタルに対して、FT-IRを用いて赤外線吸収スペクトルの測定を行った。その結果、1230cm-1付近にリン酸基のP=Oに基づく吸収が観察され、リン酸基が付加されていることが確認された。X線回折により、得られたリン酸化パルプおよびリン酸化セルロースナノクリスタルがセルロースI型結晶を維持していることが確認された。後述する〔リンオキソ酸基量の測定〕に記載の測定方法で測定されるリン酸基量(第1解離酸量)は、リン酸化パルプにおいて2.53mmol/g、リン酸化セルロースナノクリスタルにおいて1.25mmol/gであった。なお、総解離酸量は、リン酸化パルプにおいて4.22mmol/g(第2解離酸量は1.69mmol/g)、リン酸化セルロースナノクリスタルにおいて2.39mmol/g(第2解離酸量は1.14mmol/g)であった。また、リン酸化セルロースナノクリスタルの繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0134】
<実施例A4>
85%リン酸の代わりに、五酸化二リンを用いた以外は実施例A1と同様にして、リン酸化セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0135】
得られたリン酸化セルロースナノクリスタルに対して、FT-IRを用いて赤外線吸収スペクトルの測定を行った。その結果、1230cm-1付近にリン酸基のP=Oに基づく吸収が観察され、リン酸基が付加されていることが確認された。X線回折により、セルロースI型結晶を維持していることが確認された。後述する〔リンオキソ酸基量の測定〕に記載の測定方法で測定されるリン酸基量(第1解離酸量)は、0.60mmol/gであった。なお、総解離酸量は、1.20mmol/g(第2解離酸量は0.60mmol/g)であった。また、繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0136】
<実施例A5>
実施例A1で得られた高濃度酸加水分解後のスラリーを遠心分離して得た上澄みを回収し、105℃の熱風オーブンで一昼夜乾固させた。得られた乾燥物を650℃の熱風乾燥炉にて有機物を燃焼、除去するとともに、昇華したリン成分を回収した。得られたリン成分のX線回折パターンは市販の五酸化二リンと同様であり、再生五酸化二リンが得られたことがわかった。
この再生五酸化二リンを用いた以外は実施例A4と同様にして、リン酸化セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0137】
得られたリン酸化セルロースナノクリスタルに対して、FT-IRを用いて赤外線吸収スペクトルの測定を行った。その結果、1230cm-1付近にリン酸基のP=Oに基づく吸収が観察され、リン酸基が付加されていることが確認された。X線回折により、セルロースI型結晶を維持していることが確認された。後述する〔リンオキソ酸基量の測定〕に記載の測定方法で測定されるリン酸基量(第1解離酸量)は、0.60mmol/gであった。なお、総解離酸量は、1.20mmol/g(第2解離酸量は0.60mmol/g)であった。また、繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0138】
<実施例A6>
85%リン酸の代わりに、濃硫酸(18.7mol/L硫酸)を用いて、10.7mol/L硫酸中に、リン酸化パルプが4質量%で懸濁したスラリーを得た以外は実施例A1と同様にして、リン酸化セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0139】
得られたリン酸化セルロースナノクリスタルに対して、FT-IRを用いて赤外線吸収スペクトルの測定を行った。その結果、1230cm-1付近にリン酸基のP=Oに基づく吸収が観察され、リン酸基が付加されていることが確認された。X線回折により、セルロースI型結晶を維持していることが確認された。後述する〔リンオキソ酸基量の測定〕に記載の測定方法で測定されるリン酸基量(第1解離酸量)は、0.53mmol/gであった。なお、総解離酸量は、1.06mmol/g(第2解離酸量は0.53mmol/g)であった。また、繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0140】
<実施例A7>
85%リン酸の代わりに、濃塩酸(11.2mol/L塩酸)を用いて、10.7mol/L塩酸中に、リン酸化パルプが2質量%で懸濁したスラリーを得た以外は実施例A1と同様にして、リン酸化セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0141】
得られたリン酸化セルロースナノクリスタルに対して、FT-IRを用いて赤外線吸収スペクトルの測定を行った。その結果、1230cm-1付近にリン酸基のP=Oに基づく吸収が観察され、リン酸基が付加されていることが確認された。X線回折により、セルロースI型結晶を維持していることが確認された。後述する〔リンオキソ酸基量の測定〕に記載の測定方法で測定されるリン酸基量(第1解離酸量)は、0.66mmol/gであった。なお、総解離酸量は、1.32mmol/g(第2解離酸量は0.66mmol/g)であった。また、繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0142】
<実施例A8>
16mol/Lリン酸中に、リン酸化パルプが4質量%で懸濁したスラリーを得た以外は実施例A4と同様にして、リン酸化セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0143】
得られたリン酸化セルロースナノクリスタルに対して、FT-IRを用いて赤外線吸収スペクトルの測定を行った。その結果、1230cm-1付近にリン酸基のP=Oに基づく吸収が観察され、リン酸基が付加されていることが確認された。X線回折により、セルロースI型結晶を維持していることが確認された。後述する〔リンオキソ酸基量の測定〕に記載の測定方法で測定されるリン酸基量(第1解離酸量)は、0.48mmol/gであった。なお、総解離酸量は、0.96mmol/g(第2解離酸量は0.48mmol/g)であった。また、繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0144】
<実施例B1>
リン酸二水素アンモニウムの代わりに亜リン酸(ホスホン酸)33質量部を用いた以外は、実施例A1と同様に操作を行い、亜リン酸化パルプおよび亜リン酸化セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0145】
得られた亜リン酸化パルプおよび亜リン酸化セルロースナノクリスタルに対して、FT-IRを用いて赤外線吸収スペクトルの測定を行った。その結果、1210cm-1付近に亜リン酸基の互変異性体であるホスホン酸基のP=Oに基づく吸収が観察され、亜リン酸基(ホスホン酸基)が付加されていることが確認された。X線回折により、得られた亜リン酸化パルプおよび亜リン酸化セルロースナノクリスタルがセルロースI型結晶を維持していることが確認された。なお、後述する〔リンオキソ酸基量の測定〕に記載の測定方法で測定される亜リン酸基量(第1解離酸量)は、亜リン酸化パルプにおいて1.51mmol/g、亜リン酸化セルロースナノクリスタルにおいて0.67mmol/gであった。なお、総解離酸量は、亜リン酸化パルプにおいて1.54mmol/g(第2解離酸量は0.03mmol/g)、亜リン酸化セルロースナノクリスタルにおいて0.68mmol/g(第2解離酸量は0.01mmol/g)であった。また、亜リン酸化セルロースナノクリスタルの繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
なお、亜リン酸化パルプおよび亜リン酸化セルロースナノクリスタルにおいて、亜リン酸の僅かな酸化、非晶質のヘミセルロース由来のカルボキシ基などにより総解離酸量が第1解離酸量に比べて大きな値となっていると考えられる。
【0146】
<実施例C1>
リン酸二水素アンモニウムの代わりにアミド硫酸(スルファミン酸)38質量部を用い、加熱時間を20分間に延長した以外は、実施例A1と同様に操作を行い、硫酸化パルプおよび硫酸化セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0147】
得られた硫酸化パルプおよび硫酸化セルロースナノクリスタルに対して、FT-IRを用いて赤外線吸収スペクトルの測定を行った。その結果、1220-1260cm-1付近に硫酸エステル基のS=Oに基づく吸収が観察され、硫酸エステル基が付加されていることが確認された。X線回折により、得られた硫酸化パルプおよび硫酸化セルロースナノクリスタルがセルロースI型結晶を維持していることが確認された。なお、後述する〔硫黄オキソ酸基・スルホン基量の測定〕に記載の測定方法で測定される硫酸エステル基量は硫酸化パルプにおいて1.47mmol/g、硫酸化セルロースナノクリスタルにおいて、0.68mmol/gであった。また、硫酸化セルロースナノクリスタルの繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0148】
<実施例D1>
原料パルプとして、王子製紙株式会社製の針葉樹漂白クラフトパルプ(NBKP、未乾燥、JIS P 8121-2:2012に準じて測定されるカナダ標準濾水度(CSF)が700mL)を使用した。この原料パルプに対してアルカリTEMPO酸化処理を次のようにして行った。
まず、乾燥質量100質量部相当の上記原料パルプと、TEMPO(2,2,6,6-テトラメチルピペリジン-1-オキシル)1.6質量部と、臭化ナトリウム10質量部を、水10000質量部に分散させた。次いで、13質量%の次亜塩素酸ナトリウム水溶液を、1.0gのパルプに対して10mmolになるように加えて反応を開始した。反応中は0.5Mの水酸化ナトリウム水溶液を滴下してpHを10以上10.5以下に保ち、pHに変化が見られなくなった時点で反応終了と見なした。
次いで、得られたTEMPO酸化パルプに対して洗浄処理を行った。洗浄処理は、TEMPO酸化後のパルプスラリーを脱水し、脱水シートを得た後、5000質量部のイオン交換水を注ぎ、撹拌して均一に分散させた後、濾過脱水する操作を繰り返すことにより行った。ろ液の電気伝導度が100μS/cm以下となった時点で、洗浄終点とした。
【0149】
この脱水シートに対して、残存するアルデヒド基の追酸化処理を次のようにして行った。乾燥質量100質量部相当の上記脱水シートを、0.1mol/L酢酸緩衝液(pH4.8)10000質量部に分散させた。次いで80質量%亜塩素酸ナトリウム113質量部を加え、直ちに密閉した後、マグネチックスターラーを用いて500rpmで撹拌しながら室温で48時間反応させ、パルプスラリーを得た。
次いで、得られた追酸化済みTEMPO酸化パルプに対して洗浄処理を行った。洗浄処理は、追酸化後のパルプスラリーを脱水し、脱水シートを得た後、5000質量部のイオン交換水を注ぎ、撹拌して均一に分散させた後、濾過脱水する操作を繰り返すことにより行った。ろ液の電気伝導度が100μS/cm以下となった時点で、洗浄終点とした。
得られたTEMPO酸化パルプを用いた以外は、実施例A1と同様に高濃度酸加水分解処理以降の処理を行い、TEMPO酸化セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0150】
X線回折により、得られたTEMPO酸化パルプおよびTEMPO酸化セルロースナノクリスタルがセルロースI型結晶を維持していることが確認された。なお、後述する測定方法で測定されるカルボキシ基量は、TEMPO酸化パルプにおいて1.80mmol/g、TEMPO酸化セルロースナノクリスタルにおいて0.86mmol/gであった。また、TEMPO酸化セルロースナノクリスタルの繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0151】
<実施例E1>
[次亜塩素酸酸化]
針葉樹晒クラフトパルプ(NBKP)を抄き上げたシート(固形分濃度90質量%)を、ハンドミキサー(大阪ケミカル株式会社製、ラボミルサーPLUS)を用い、回転数20000rpmで15秒処理して綿状のフラッフィングパルプ(固形分濃度90質量%)にした。次いで、次亜塩素酸ナトリウム・5水和物をイオン交換水に加え、次亜塩素酸ナトリウムの固形分濃度を22質量%とした水溶液を準備した。綿状のフラッフィングパルプ100質量部に、22質量%の次亜塩素酸ナトリウム水溶液を9000質量部加え、温浴で30℃に調整しながら2時間反応させ、カルボキシ基導入パルプを得た。反応中は1N水酸化ナトリウム水溶液を適宜加え、pHを11に維持した。
次いで、得られたカルボキシ基導入パルプに対して洗浄処理を行った。洗浄処理は、得られたカルボキシ基導入パルプにイオン交換水を注いで得たパルプ分散液を、パルプが均一に分散するよう撹拌した後、濾過脱水する操作を繰り返すことにより洗浄を行った。ろ液の電気伝導度が100μS/cm以下となった時点で、洗浄終点とした。
得られたカルボキシ基導入パルプを用いた以外は、実施例A1と同様に高濃度酸加水分解処理以降の処理を行い、カルボキシ基導入セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0152】
X線回折により、得られたカルボキシ基導入パルプおよびカルボキシ基導入セルロースナノクリスタルがセルロースI型結晶を維持していることが確認された。なお、後述する測定方法で測定されるカルボキシ基量は、カルボキシ基導入パルプにおいて0.70mmol/g、カルボキシ基導入セルロースナノクリスタルにおいて0.33mmol/gであった。また、カルボキシ基導入セルロースナノクリスタルの繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0153】
<実施例F1>
[マレイン酸エステル化]
針葉樹晒(NBKP)を抄き上げたシート(固形分濃度90質量%)を、ハンドミキサー(大阪ケミカル株式会社製、ラボミルサーPLUS)を用い、回転数20000rpmで15秒処理して綿状のフラッフィングパルプ(固形分濃度90質量%)にした。オートクレーブに、綿状のフラッフィングパルプ100質量部と無水マレイン酸50質量部とを充填し、150℃で2時間処理して、カルボキシ基導入パルプを得た。
次いで、得られたカルボキシ基導入パルプに対して洗浄処理を行った。洗浄処理は、得られたカルボキシ基導入パルプにイオン交換水を注いで得たパルプ分散液を、パルプが均一に分散するよう撹拌した後、濾過脱水する操作を繰り返すことにより洗浄を行った。ろ液の電気伝導度が100μS/cm以下となった時点で、洗浄終点とした。
得られたカルボキシ基導入パルプを用いた以外は、実施例A1と同様に高濃度酸加水分解処理以降の処理を行い、カルボキシ基導入セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0154】
X線回折により、得られたカルボキシ基導入パルプおよびカルボキシ基導入セルロースナノクリスタルがセルロースI型結晶を維持していることが確認された。なお、後述する測定方法で測定されるカルボキシ基量は、カルボキシ基導入パルプにおいて1.22mmol/g、カルボキシ基導入セルロースナノクリスタルにおいて0.49mmol/gであった。また、カルボキシ基導入セルロースナノクリスタルの繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0155】
<実施例G1>
[カルボキシエチル化]
原料パルプとして、王子製紙株式会社製の針葉樹漂白クラフトパルプ(NBKP、固形分93質量%、坪量245g/mシート状、離解してJIS P 8121-2:2012に準じて測定されるカナダ標準濾水度(CSF)が700mL)を使用した。
この原料パルプ100質量部(絶乾質量)に、12N NaOH水溶液を250質量部と、2-クロロプロピオン酸163質量部、イオン交換水140質量部からなる薬液(合計553質量部)を加え、薬液含浸パルプを得た。次いで、得られた薬液含浸パルプを165℃の熱風乾燥機で10分加熱し、パルプ中のセルロースにカルボキシエチル基(カルボキシ基)を導入し、カルボキシ基導入パルプを得た。
次いで、得られたカルボキシ基導入パルプに対して洗浄処理を行った。洗浄処理は、得られたカルボキシ基導入パルプにイオン交換水を注いで得たパルプ分散液を、パルプが均一に分散するよう撹拌した後、濾過脱水する操作を繰り返すことにより洗浄を行った。ろ液の電気伝導度が100μS/cm以下となった時点で、洗浄終点とした。
次いで、洗浄後のカルボキシ基導入パルプに対して中和処理を次のようにして行った。まず、洗浄後のカルボキシ基導入パルプを10Lのイオン交換水で希釈した後、撹拌しながら1Nの水酸化ナトリウム水溶液を少しずつ添加することにより、pHが12以上13以下のカルボキシ基導入パルプスラリーを得た。次いで、当該カルボキシ基導入パルプスラリーを脱水および洗浄をして、中和処理が施されたカルボキシ基導入パルプを得た。
得られたカルボキシ基導入パルプを用いた以外は、実施例A1と同様に高濃度酸加水分解処理以降の処理を行い、カルボキシ基導入セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0156】
X線回折により、得られたカルボキシ基導入パルプおよびカルボキシ基導入セルロースナノクリスタルがセルロースI型結晶を維持していることが確認された。なお、後述する測定方法で測定されるカルボキシ基量は、カルボキシ基導入パルプにおいて1.41mmol/g、カルボキシ基導入セルロースナノクリスタルにおいて0.65mmol/gであった。また、カルボキシ基導入セルロースナノクリスタルの繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0157】
<実施例H1>
[カルボキシメチル化]
原料パルプとして、王子製紙株式会社製の針葉樹クラフトパルプ(固形分93質量%、坪量245g/mシート状、離解してJIS P 8121-2:2012に準じて測定されるカナダ標準濾水度(CSF)が700mL)を使用した。
この原料パルプ100質量部(絶乾質量)に、12N NaOH水溶液を83質量部と、モノクロロ酢酸ナトリウム175質量部、イオン交換水313質量部からなる薬液(合計571質量部)を加え、薬液含浸パルプを得た。次いで、得られた薬液含浸パルプをポリエチレン製の容器に入れ、95℃の温浴で60分加熱し、パルプ中のセルロースにカルボキシメチル基(カルボキシ基)を導入し、カルボキシ基導入パルプを得た。
次いで、得られたカルボキシ基導入パルプに対して洗浄処理を行った。洗浄処理は、得られたカルボキシ基導入パルプにイオン交換水を注いで得たパルプ分散液を、パルプが均一に分散するよう撹拌した後、濾過脱水する操作を繰り返すことにより洗浄を行った。ろ液の電気伝導度が100μS/cm以下となった時点で、洗浄終点とした。
得られたカルボキシ基導入パルプを用いた以外は、実施例A1と同様に高濃度酸加水分解処理以降の処理を行い、カルボキシ基導入セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0158】
X線回折により、得られたカルボキシ基導入パルプおよびカルボキシ基導入セルロースナノクリスタルがセルロースI型結晶を維持していることが確認された。なお、後述する測定方法で測定されるカルボキシ基量は、カルボキシ基導入パルプにおいて1.21mmol/g、カルボキシ基導入セルロースナノクリスタルにおいて0.41mmol/gであった。また、カルボキシ基導入セルロースナノクリスタルの繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0159】
<実施例J1>
[スルホエチル化]
原料パルプとして、王子製紙株式会社製の針葉樹漂白クラフトパルプ(NBKP、固形分93質量%、坪量245g/mシート状、離解してJIS P 8121-2:2012に準じて測定されるカナダ標準濾水度(CSF)が700mL)を使用した。
この原料パルプ100質量部(絶乾質量)に、2N NaOH水溶液を180質量部と25質量%濃度のビニルスルホン酸ナトリウム水溶液780質量部からなる薬液(合計960質量部)を加え、薬液含浸パルプを得た。次いで、得られた薬液含浸パルプを165℃の熱風乾燥機で16分加熱し、パルプ中のセルロースにスルホエチル基(スルホン基)を導入し、スルホエチル基導入パルプ(スルホン基導入パルプ)を得た。
次いで、得られたスルホエチル基導入パルプに対して洗浄処理を行った。洗浄処理は、得られたスルホエチル基導入パルプにイオン交換水を注いで得たパルプ分散液を、パルプが均一に分散するよう撹拌した後、濾過脱水する操作を繰り返すことにより洗浄を行った。ろ液の電気伝導度が100μS/cm以下となった時点で、洗浄終点とした。
得られたスルホエチル基導入パルプを用いた以外は、実施例A1と同様に高濃度酸加水分解処理以降の処理を行い、スルホエチル基導入セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0160】
X線回折により、得られたスルホエチル基導入パルプおよびスルホエチル基導入セルロースナノクリスタルがセルロースI型結晶を維持していることが確認された。なお、後述する測定方法で測定されるスルホエチル基量(スルホン基量)は、スルホエチル基導入パルプにおいて1.48mmol/g、スルホエチル基導入セルロースナノクリスタルにおいて0.71mmol/gであった。また、スルホエチル基導入セルロースナノクリスタルの繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0161】
<実施例K1>
[カチオン化処理]
原料パルプとして、王子製紙株式会社製の針葉樹漂白クラフトパルプ(NBKP、固形分93質量%、坪量245g/mシート状、離解してJIS P 8121-2:2012に準じて測定されるカナダ標準濾水度(CSF)が700mL)を使用した。
この原料パルプ100質量部(絶乾質量)に、1N NaOH水溶液を180質量部とカチオン化剤(カチオマスターG、四日市合成株式会社製、グリシジルトリメチルアンモニウムクロリド、純分73.1質量%、含水率20.2質量%)325質量部からなる薬液(合計505質量部)を加え、薬液含浸パルプを得た。次いで、得られた薬液含浸パルプを165℃の熱風乾燥機で12分加熱し、パルプ中のセルロースにカチオン基を導入し、カチオン基導入パルプを得た。
次いで、得られたカチオン基導入パルプに対して洗浄処理を行った。洗浄処理は、得られたカチオン基導入パルプにイオン交換水を注いで得たパルプ分散液を、パルプが均一に分散するよう撹拌した後、濾過脱水する操作を繰り返すことにより洗浄を行った。ろ液の電気伝導度が100μS/cm以下となった時点で、洗浄終点とした。
次いで、洗浄後のカチオン基導入パルプに対して中和処理を次のようにして行った。まず、洗浄後のカチオン基導入パルプを10Lのイオン交換水で希釈した後、撹拌しながら1Nの塩酸を少しずつ添加することにより、pHが1以上2以下のカチオン基導入パルプスラリーを得た。次いで、当該カチオン基導入パルプスラリーを脱水および洗浄をして、中和処理が施されたカチオン基導入パルプを得た。
【0162】
得られたカチオン基導入パルプに、濃塩酸(11.2mol/L塩酸)を少量ずつ加え、10.7mol/L塩酸中に、カチオン化パルプが2質量%で懸濁したスラリーを得た。この懸濁スラリーは曳糸性のある粘稠な液であった。得られた懸濁スラリーをガラス容器に入れ、撹拌しながら、95℃の温浴にて90分間加熱加水分解処理した。(高濃度酸加水分解処理)
高濃度酸加水分解処理以降の処理は、実施例A1と同様に行い、カチオン基導入セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0163】
X線回折により、得られたカチオン基導入パルプおよびカチオン基導入セルロースナノクリスタルがセルロースI型結晶を維持していることが確認された。なお、後述する測定方法で測定されるカチオン基量は、カチオン基導入パルプにおいて1.45mmol/g、カチオン基導入セルロースナノクリスタルにおいて0.71mmol/gであった。また、カチオン基導入セルロースナノクリスタルの繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0164】
<比較例1>
リン酸化パルプの代わりに、王子製紙株式会社製の針葉樹漂白クラフトパルプ(NBKP、固形分93質量%、坪量245g/mシート状、離解してJIS P 8121-2:2012に準じて測定されるカナダ標準濾水度(CSF)が700mL)を使用した以外は実施例A1と同様にして、セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
得られたセルロースナノクリスタルのリン酸基量は、0.01mmol/g未満であった。繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、10~30nmであった。
【0165】
<比較例2>
比較例1で得られたセルロースナノクリスタルを含む分散液(固形分濃度2%)に、リン酸濃度が10.7mol/Lになるまで85%リン酸を加えた後、95℃の温浴にて90分間処理を行った。得られた反応後スラリーは、下記の手順で溶存成分と酸を除き、精製した。すなわち、得られた反応後スラリーを氷冷し、遠心分離(12,000G、5分)処理により固液分離を行った。遠心分離後は、上澄みを除去し、同体積のイオン交換水を加えて、沈殿物とよく練り、分散させた状態で、再度遠心分離に供試した。この操作を3回繰り返した後、沈殿物を再度イオン交換水に懸濁した状態で、強塩基性イオン交換樹脂(アンバージェット4400;オルガノ株式会社、コンディショニング済)と接触させ、スラリーの電気伝導度とpHの変動がなくなるまで処理を行った。
得られた精製後スラリーにイオン交換水を添加し、固形分濃度が2質量%のスラリーを調製した。このスラリーを、湿式微粒化装置(株式会社美粒製、Beryu-Mini)で100MPaの圧力にて6回処理し、リン酸化セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0166】
なお、得られたリン酸化セルロースナノクリスタルに対しFT-IRを用いて赤外線吸収スペクトルの測定を行った。その結果、1230cm-1付近にリン酸基のP=Oに基づく吸収が観察され、リン酸基が付加されていることが確認された。X線回折により、セルロースI型結晶を維持していることが確認された。なお、後述する〔リンオキソ酸基量の測定〕に記載の測定方法で測定されるリン酸基量(第1解離酸量)は、0.24mmol/gであった。なお、総解離酸量は0.40mmol/g(第2解離酸量は0.16mmol/g)であった。また、セルロースナノクリスタルの繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、10~20nmであった。
【0167】
<比較例3>
比較例1で得られたセルロースナノクリスタルを含む分散液(固形分濃度2%)を、恒温恒湿室(23℃50%RH)に静置し固形分濃度42%になるまで風乾させた。得られた固形分濃度42%のセルロースナノクリスタル24質量部と、85%リン酸51質量部とを、140℃のオイルバスにセットしたガラスフラスコにて溶融させた64質量部の尿素に加えた。その後、150℃まで加温し、30分間加熱処理した。
加熱処理後に水を500質量部加えて反応後スラリーを得た。このスラリーに対して比較例2と同様の精製操作、湿式微粒化装置による処理を行い、リン酸化セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0168】
なお、得られたリン酸化セルロースナノクリスタルに対しFT-IRを用いて赤外線吸収スペクトルの測定を行った。その結果、1230cm-1付近にリン酸基のP=Oに基づく吸収が観察され、リン酸基が付加されていることが確認された。X線回折により、セルロースI型結晶を維持していることが確認された。なお、後述する〔リンオキソ酸基量の測定〕に記載の測定方法で測定されるリン酸基量(第1解離酸量)は、1.03mmol/gであった。なお、総解離酸量は1.77mmol/g(第2解離酸量は0.74mmol/g)であった。また、セルロースナノクリスタルの繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0169】
<参考例1>
比較例1で得られたセルロースナノクリスタルを含む分散液(固形分濃度2%)に対してアルカリTEMPO酸化処理を次のようにして行った。
まず、乾燥質量100質量部相当の上記セルロースナノクリスタルと、TEMPO(2,2,6,6-テトラメチルピペリジン-1-オキシル)1.6質量部と、臭化ナトリウム10質量部を、水10000質量部に分散させた。次いで、13質量%の次亜塩素酸ナトリウム水溶液を、1.0gのパルプに対して2mmolになるように加えて反応を開始した。反応中は0.5Mの水酸化ナトリウム水溶液を滴下してpHを10以上10.5以下に保ち、pHに変化が見られなくなった時点で反応終了と見なした。
得られたスラリーに対して比較例2と同様の精製操作、湿式微粒化装置による処理を行い、TEMPO酸化セルロースナノクリスタルを含む分散液を得た。
【0170】
X線回折により、得られたTEMPO酸化パルプおよびTEMPO酸化セルロースナノクリスタルがセルロースI型結晶を維持していることが確認された。なお、後述する測定方法で測定されるカルボキシ基量は、TEMPO酸化セルロースナノクリスタルにおいて0.86mmol/gであった。また、TEMPO酸化セルロースナノクリスタルの繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~20nmであった。
【0171】
<比較例4>
原料パルプとして、王子製紙株式会社製の針葉樹漂白クラフトパルプ(NBKP、固形分93質量%、坪量245g/mシート状、離解してJIS P 8121-2:2012に準じて測定されるカナダ標準濾水度(CSF)が700mL)を使用した。
この原料パルプに対してリンオキソ酸化処理を次のようにして行った。まず、上記原料パルプ100質量部(絶乾質量)に、リン酸二水素アンモニウムと尿素の混合水溶液を添加して、リン酸二水素アンモニウム45質量部、尿素120質量部、水150質量部となるように調整し、薬液含浸パルプを得た。次いで、得られた薬液含浸パルプを165℃の熱風乾燥機で250秒加熱し、パルプ中のセルロースにリン酸基を導入し、リン酸化パルプを得た。
次いで、得られたリン酸化パルプに対して洗浄処理を行った。洗浄処理は、リン酸化パルプ100g(絶乾質量)に対して10Lのイオン交換水を注いで得たパルプ分散液を、パルプが均一に分散するよう撹拌した後、濾過脱水する操作を繰り返すことにより行った。ろ液の電気伝導度が100μS/cm以下となった時点で、洗浄終点とした。
【0172】
得られた洗浄後のリン酸化パルプにイオン交換水と85%リン酸とを加え、固形分濃度が2%、リン酸濃度が1mol/Lとなるよう調整し、撹拌しながら、95℃の温浴にて90分間加熱加水分解処理した。(希薄酸加水分解処理)
【0173】
次いで、得られた加水分解後リン酸化パルプに対して洗浄処理を行った。洗浄処理は、リン酸化パルプ100g(絶乾質量)に対して10Lのイオン交換水を注いで得たパルプ分散液を、パルプが均一に分散するよう撹拌した後、濾過脱水する操作を繰り返すことにより行った。ろ液の電気伝導度が100μS/cm以下となった時点で、洗浄終点とした。
【0174】
次いで、洗浄後のリン酸化パルプに対して中和処理を次のようにして行った。まず、洗浄後のリン酸化パルプを10Lのイオン交換水で希釈した後、撹拌しながら1Nの水酸化ナトリウム水溶液を少しずつ添加することにより、pHが12以上13以下のリン酸化パルプスラリーを得た。次いで、当該リン酸化パルプスラリーを脱水および洗浄して、中和処理が施されたリン酸化パルプを得た。
得られたリン酸化パルプにイオン交換水を添加し、固形分濃度が2質量%のスラリーを調製した。このスラリーを、湿式微粒化装置(株式会社美粒製、Beryu-Mini)で100MPaの圧力にて6回処理したところ、リン酸化セルロースナノファイバーを主として含む分散液を得た。
【0175】
なお、得られたリン酸化セルロースナノファイバーに対しFT-IRを用いて赤外線吸収スペクトルの測定を行った。その結果、1230cm-1付近にリン酸基のP=Oに基づく吸収が観察され、リン酸基が付加されていることが確認された。また、得られたリン酸化セルロースナノファイバーを供試して、X線回折装置にて分析を行ったところ、2θ=14°以上17°以下付近と2θ=22°以上23°以下付近の2箇所の位置に典型的なピークが確認され、セルロースI型結晶を有していることが確認された。なお、後述する〔リンオキソ酸基量の測定〕に記載の測定方法で測定されるリン酸基量(第1解離酸量)は、0.93mmol/gであった。なお、総解離酸量は1.56mmol/g(第2解離酸量は0.63mmol/g)であった。また、セルロースナノファイバーの繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~5nmであった。
【0176】
<比較例5>
希薄酸加水分解処理と希薄酸加水分解処理後の洗浄処理とを、洗浄後のリン酸化パルプに対してではなく、リン酸化を行う前の針葉樹漂白クラフトパルプに行った以外は比較例4と同様にして、リン酸化セルロースナノファイバーを主として含む分散液を得た。
【0177】
なお、得られたリン酸化セルロースナノファイバーに対しFT-IRを用いて赤外線吸収スペクトルの測定を行った。その結果、1230cm-1付近にリン酸基のP=Oに基づく吸収が観察され、リン酸基が付加されていることが確認された。また、得られたリン酸化セルロースナノファイバーを供試して、X線回折装置にて分析を行ったところ、2θ=14°以上17°以下付近と2θ=22°以上23°以下付近の2箇所の位置に典型的なピークが確認され、セルロースI型結晶を有していることが確認された。なお、後述する〔リンオキソ酸基量の測定〕に記載の測定方法で測定されるリン酸基量(第1解離酸量)は、1.45mmol/gであった。なお、総解離酸量は2.45mmol/g(第2解離酸量は1.00mmol/g)であった。また、セルロースナノファイバーの繊維幅を、原子間力顕微鏡を用いて測定したところ、3~5nmであった。
【0178】
<比較例6>
実施例A1で得られた中和処理が施されたリン酸化パルプにイオン交換水を添加し、固形分濃度が2質量%のスラリーを調製した。このスラリーを、湿式微粒化装置(株式会社美粒製、Beryu-Mini)で100MPaの圧力にて6回処理し、リン酸化セルロースナノファイバーを含む分散液を得た。
【0179】
得られたリン酸化セルロースナノファイバー分散液に、リン酸化セルロースナノファイバー1gに対して550nkatとなるよう酵素(セルラーゼ)を添加し、温度50℃で酵素処理した(工程D)。得られた分散液の温度を100℃とし、酵素を熱失活させた。さらに、このスラリーを、湿式微粒化装置(株式会社美粒製、Beryu-Mini)で100MPaの圧力にて6回処理し、酵素処理されたリン酸化セルロースナノファイバーを含む分散液を得た。後述する〔リンオキソ酸基量の測定〕に記載の測定方法で測定されるリン酸基量(第1解離酸量)は、1.45mmol/gであった。なお、総解離酸量は、2.45mmol/gであった。
【0180】
[シートの作製]
実施例A1~A8,B1,C1,D1,E1,F1,G1,H1,J1,K1で得られた各種セルロースナノクリスタルを固形分濃度が0.6質量%となるようにイオン交換水で希釈した。シートの仕上がり坪量が70g/mになるように混合液を計量して、市販のアクリル板上に展開した。なお、所定の坪量となるようアクリル板上には堰止用の枠(内寸250mm×250mm、高さ5cm)を配置した。そのあと70℃の乾燥機で24時間乾燥し、アクリル板から剥離した。いずれのセルロースナノクリスタルからもセルロースナノクリスタルを含むシートが得られた。シートの厚みは50μmであった。
【0181】
[パウダーの作製]
実施例A1~A8,B1,C1,D1,E1,F1,G1,H1,J1,K1で得られた各種セルロースナノクリスタルの2質量%分散液を出口温度150℃にセットしたスプレードライヤーで噴霧乾燥した。いずれのセルロースナノクリスタルからもセルロースナノクリスタルを含むパウダーが得られた。パウダーの粒径は20μm以下であり、含水率は20%以下であった。
【0182】
[評価]
<リンオキソ酸基量の測定>
セルロースナノクリスタル、セルロースナノファイバー、イオン性官能基導入セルロース繊維のリンオキソ酸基量は、対象となる各種セルロース(各種セルロースとは、セルロースナノクリスタル、セルロースナノファイバーおよびイオン性官能基導入セルロース繊維の総称である)を含む分散液にイオン交換水を添加して、含有量を0.2質量%とし、イオン交換樹脂による処理を行った後、アルカリを用いた滴定を行うことにより測定した。
イオン交換樹脂による処理は、上記各種セルロースに体積で1/10の強酸性イオン交換樹脂(アンバージェット1024;オルガノ株式会社製、コンディショニング済)を加え、1時間振とう処理を行った後、目開き90μmのメッシュ上に注いで樹脂とスラリーを分離することにより行った。
また、アルカリを用いた滴定は、イオン交換樹脂による処理後の各種セルロース含有スラリーに、0.1Nの水酸化ナトリウム水溶液を5秒に10μLずつ加えながら、スラリーが示すpHの値の変化を計測することにより行った。なお、滴定開始の15分前から窒素ガスをスラリーに吹き込みながら滴定を行った。この中和滴定では、アルカリを加えた量に対して測定したpHをプロットした曲線において、増分(pHのアルカリ滴下量に対する微分値)が極大となる点が二つ観測される。これらのうち、アルカリを加えはじめて先に得られる増分の極大点を第1終点と呼び、次に得られる増分の極大点を第2終点と呼ぶ(図1)。滴定開始から第1終点までに必要としたアルカリ量が、滴定に使用したスラリー中の第1解離酸量と等しくなる。また、滴定開始から第2終点までに必要としたアルカリ量が滴定に使用したスラリー中の総解離酸量と等しくなる。なお、滴定開始から第1終点までに必要としたアルカリ量(mmol)を、滴定対象スラリー中の固形分(g)で除した値をリンオキソ酸基量(第1解離酸量)(mmol/g)とした。また、滴定開始から第2終点までに必要としたアルカリ量(mmol)を、滴定対象スラリー中の固形分(g)で除した値を総解離酸量(mmol/g)とした。また、総解離酸量から、第1解離酸量を減じた値が、第2解離酸量である。
【0183】
<カルボキシ基量の測定>
セルロースナノクリスタル、セルロースナノファイバー、およびイオン性官能基導入セルロース繊維のカルボキシ基量は、対象となる各種セルロースを含む各種セルロース分散液にイオン交換水を添加して、含有量を0.2質量%とし、イオン交換樹脂による処理を行った後、アルカリを用いた滴定を行うことにより測定した。
イオン交換樹脂による処理は、0.2質量%の各種セルロース含有スラリーに体積で1/10の強酸性イオン交換樹脂(アンバージェット1024;オルガノ株式会社製、コンディショニング済)を加え、1時間振とう処理を行った後、目開き90μmのメッシュ上に注いで樹脂とスラリーを分離することにより行った。
また、アルカリを用いた滴定は、イオン交換樹脂による処理後の繊維状セルロース含有スラリーに、0.1Nの水酸化ナトリウム水溶液を加えながら、スラリーが示すpHの値の変化を計測することにより行った。水酸化ナトリウム水溶液を加えながらpHの変化を観察すると、図2に示されるような滴定曲線が得られる。図2に示されるように、この中和滴定では、アルカリを加えた量に対して測定したpHをプロットした曲線において、増分(pHのアルカリ滴下量に対する微分値)が極大となる点が一つ観測される。この増分の極大点を第1終点と呼ぶ。ここで、図2における滴定開始から第1終点までの領域を第1領域と呼ぶ。第1領域で必要としたアルカリ量が、滴定に使用したスラリー中のカルボキシ基量と等しくなる。そして、滴定曲線の第1領域で必要としたアルカリ量(mmol)を、滴定対象の各種セルロース含有スラリー中の固形分(g)で除すことで、カルボキシ基の導入量(mmol/g)を算出した。
なお、上述のカルボキシ基導入量(mmol/g)は、カルボキシ基の対イオンが水素イオン(H)であるときの繊維状セルロースの質量1gあたりの置換基量(以降、カルボキシ基量(酸型)と呼ぶ)を示している。
【0184】
<硫黄オキソ酸基・スルホン基量の測定>
実施例C1、J1で得られたパルプ、セルロースナノクリスタルについて、硫黄オキソ酸基・スルホン基量を測定した。すなわち、得られた各種セルロースを過塩素酸と濃硝酸を用いて湿式灰化した後に、適当な倍率で希釈してICP発光分析により硫黄量を測定した。この硫黄量を、供試した各種セルロースの絶乾質量で除した値を硫黄オキソ酸基量、スルホン基量(単位:mmol/g)とした。
【0185】
<カチオン性基量の測定>
実施例K1で得られたパルプ、セルロースナノクリスタルについて、カチオン性基量を測定した。すなわち、凍結乾燥および粉砕処理後の試料を株式会社三菱ケミカルアナリテック製の微量全窒素分析装置TN-110に供試して測定した。なお、イオン性の窒素は、中和処理、洗浄処理の過程で除かれていた。各種セルロースの単位質量あたりのカチオン性基の導入量(mmol/g)は、微量窒素分析で得られた各種セルロースの単位質量あたりの窒素含有量(g/g)を窒素の原子量で除することで算出した。
【0186】
<カルバミド基量の測定>
実施例A1~A8、B1、C1、比較例3~6で得られたパルプ、セルロースナノクリスタル、セルロースナノファイバーについて、カルバミド基量を測定した。すなわち、凍結乾燥および粉砕処理後の試料を株式会社三菱ケミカルアナリテック製の微量全窒素分析装置TN-110に供試して測定した。なお、イオン性の窒素は、中和処理、洗浄処理の過程で除かれていた。各種セルロースの単位質量あたりのカルバミド基の導入量(mmol/g)は、微量窒素分析で得られた各種セルロースの単位質量あたりの窒素含有量(g/g)を窒素の原子量で除することで算出した。
【0187】
<分散液の粘度の測定>
まず、各種セルロースナノクリスタル、セルロースナノファイバーの分散液を、固形分濃度が1.5質量%となるようにイオン交換水により希釈した後に、ディスパーザーにて1500rpmで5分間撹拌した。次いで、これにより得られた分散液の粘度をB型粘度計(BLOOKFIELD社製、アナログ粘度計T-LVT)を用いて測定した。測定条件は、回転速度3rpmとし、測定開始から3分後の粘度値を当該分散液の粘度とした。また、測定対象の分散液は測定前に23℃、相対湿度50%の環境下に24時間静置した。測定時の分散液の液温は23℃であった。
【0188】
<分散液の全光線透過率の測定>
分散液の全光線透過率の測定は各種セルロース分散液をイオン交換水で0.2質量%となるように希釈した後、ヘーズメーター(株式会社村上色彩技術研究所製、HM-150)で、光路長1cmの液体用ガラスセル(株式会社藤原製作所製、MG-40、逆光路)を用いて、7361-1:1997に準拠して測定した。なお、ゼロ点測定は、同ガラスセルに入れたイオン交換水で行った。すなわち、イオン交換水のみで測定した全光線透過率を100%とした。また、測定対象の分散液は測定前に23℃、相対湿度50%の環境下に24時間静置した。測定時の分散液の液温は23℃であった。
【0189】
<耐塩性>
得られたセルロースナノクリスタル、セルロースナノファイバーの0.2質量%分散液に塩化ナトリウムを所定量加えた際の全光線透過率を測定し、塩化ナトリウムの添加により全光線透過率が変化しづらいものを、耐塩性が高いセルロースナノクリスタル、セルロースナノファイバー分散液とした。具体的には、以下の指標で評価を行った。
A:塩化ナトリウム濃度が300mmol/Lにおいて、T/Tが0.98以上である
B:塩化ナトリウム濃度が300mmol/Lにおいて、T/Tが0.98未満であるが、塩化ナトリウム濃度が100mmol/Lにおいて、T/Tが0.98以上である
C:塩化ナトリウム濃度が100mmol/Lにおいて、T/Tが0.98未満である
ただし、T:塩化ナトリウムを加えた後の全光線透過率、T:塩化ナトリウムを加える前の全光線透過率である。
また、塩化ナトリウム添加後の全光線透過率の具体的な測定手順は下記のとおりである。
(1)セルロースナノクリスタル、セルロースナノファイバーの0.2質量%分散液に塩化ナトリウムを固体のまま所定量加える
(2)塩化ナトリウムが溶解するまでテフロン(登録商標)製の棒で手撹拌を行う
(3)塩化ナトリウムを溶解後、回転ディスパーザーにて、4000rpm、1分間撹拌する
(4)<分散液の全光線透過率の測定>に記載の方法で、全光線透過率の測定を行う
【0190】
<C6位以外の変性有無>
得られたセルロースナノクリスタル、セルロースナノファイバーの分散液を凍結乾燥した試料を13C CP/MAS NMRにより分析した。比較例1の試料の結果と比べた際に、C2、C3、C5位に相当する68-80ppm、C3位に隣接するC4位に相当する80-91ppm、C2位に隣接するC1位に相当する101-109ppmのケミカルシフトにおけるピークに変化が見られた場合、C6位以外にも変性が起こっているとみなした。
【0191】
<純度>
得られたセルロースナノクリスタル、セルロースナノファイバーの純度は、イオン性官能基以外の官能基を含むか否か、および湿式加熱時の着色から判断した。
A:イオン性官能基以外の官能基を含まない、または、イオン性官能基以外の官能基を含むが、湿式加熱によりほとんど着色しない
B:イオン性官能基以外の官能基を含み、湿式加熱によりやや黄色味を帯びる
C:イオン性官能基以外の官能基を含み、湿式加熱により強い黄色~薄い茶色となる
なお、湿式加熱時の着色は、1質量%濃度のセルロースナノクリスタル、セルロースナノファイバー分散液を95℃で10時間加熱した際の着色度を目視で判断した。カルバミド基などの加水分解等によってアンモニアを遊離し得る含窒素構造は、着色構造の形成を促進すると考えられる。
【0192】
<繊維の屈曲>
原子間力顕微鏡でセルロースナノクリスタル、セルロースナノファイバーの像を撮影し、無作為に選んだ100本の繊維について、繊維が途中で1つ以上の折れ曲がり(角度30°以上)を起こしているものを数え、以下の基準で判断した。
A:折れ曲がりがある繊維が10本未満である
B:折れ曲がりがある繊維が10本以上20本未満である
C:折れ曲がりがある繊維が20本以上である
【0193】
【表1-1】
【0194】
【表1-2】
【0195】
表1-1、1-2に記載のイオン性官能基導入セルロース繊維、イオン性官能基導入セルロースナノファイバー、イオン性官能基導入セルロースナノクリスタルについて、前述した<リンオキソ酸基量の測定>によりイオン性官能基導入量を測定した場合は、当該測定結果の第1解離酸量、第2解離酸量の結果をそれぞれの欄に記載した。また、前述した<カルボキシ基量の測定>、<硫黄オキソ酸基・スルホン基量の測定>によりイオン性官能基量を測定した場合は、当該測定結果を第1解離酸量の欄に記載した。また、前述した<カチオン性基量の測定>によりイオン性官能基導入量を測定した場合は、当該測定結果をカチオン性基量の欄に記載した。
【0196】
表1-1、1-2によれば、工程A~工程Cをこの順で有する製造方法により得られたイオン性官能基導入セルロースナノクリスタルは、水分散液とした場合に低粘度であり、透明性が高く、耐塩性に優れる。また、純度が高い。
一方、比較例に示すように、イオン性官能基導入工程を有しない比較例1では、透明性および耐塩性に劣るものであった。また、比較例2および3に示すように解繊後にイオン性官能基を導入した場合には、イオン性官能基の導入量が低く、透明性および耐塩性に劣るものであるか(比較例2)、純度に劣るものであった(比較例3)。
また、比較例4および5に示すように、工程Bにおいて、加水分解に使用する酸性水溶液の濃度が5mol/L未満である場合には、水溶液とした場合の粘度が高かった。また、比較例6に示すように、工程Bを行わなかった場合には、酵素処理を行っても、水溶液とした場合の粘度が高かった。
図1
図2