特開 2022-132249 多能性幹細胞の中腸内胚葉細胞への分化

(19)【発行国】日本国特許庁(JP)

(12)【公報種別】公開特許公報(A)

(11)【公開番号】P2022132249

(43)【公開日】2022-09-07

(54)【発明の名称】多能性幹細胞の中腸内胚葉細胞への分化

(51)【国際特許分類】

   C12N 5/073 20100101AFI20220831BHJP

   C12N 5/071 20100101ALI20220831BHJP

   A61K 35/545 20150101ALI20220831BHJP

   A61P 3/10 20060101ALI20220831BHJP

【ＦＩ】

C12N5/073

C12N5/071

A61K35/545

A61P3/10

【審査請求】有

【請求項の数】1

【出願形態】ＯＬ

【外国語出願】

(21)【出願番号】P 2022094028

(22)【出願日】2022-06-10

(62)【分割の表示】P 2020084976の分割

【原出願日】2020-05-14

(31)【優先権主張番号】62/322,636

(32)【優先日】2016-04-14

(33)【優先権主張国・地域又は機関】US

(71)【出願人】

【識別番号】509087759

【氏名又は名称】ヤンセン バイオテツク，インコーポレーテツド

(74)【代理人】

【識別番号】100092783

【弁理士】

【氏名又は名称】小林 浩

(74)【代理人】

【識別番号】100095360

【弁理士】

【氏名又は名称】片山 英二

(74)【代理人】

【識別番号】100093676

【弁理士】

【氏名又は名称】小林 純子

(74)【代理人】

【識別番号】100120134

【弁理士】

【氏名又は名称】大森 規雄

(74)【代理人】

【識別番号】100196966

【弁理士】

【氏名又は名称】植田 渉

(72)【発明者】

【氏名】リーク，セバスチャン

(72)【発明者】

【氏名】レザニア，アリレザ

【テーマコード（参考）】

4B065

4C087

【Ｆターム（参考）】

4B065AA93X

4B065AC12

4B065BA25

4B065BC12

4B065BD39

4B065CA44

4B065CA46

4C087AA01

4C087AA02

4C087AA03

4C087BB65

4C087CA04

4C087NA14

4C087ZC35

(57)【要約】      （修正有）

【課題】中腸内胚葉細胞の細胞集団、及び腸管内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現している細胞を発生させる方法を提供する。また、糖尿病などの状態を治療する方法も提供する。
【解決手段】ヒト多能性幹細胞を培地中で培養し、中腸内胚葉細胞への分化を誘導することを含み、実質的に中腸内胚葉細胞の細胞集団が産生される、中腸内胚葉細胞集団の産生方法とする。
【選択図】図１Ａ

【特許請求の範囲】

【請求項1】

ヒト多能性幹細胞を培地中で培養し、中腸内胚葉細胞への分化を誘導することを含み、
実質的に中腸内胚葉細胞の細胞集団が産生される、中腸内胚葉細胞集団の産生方法。

【請求項2】

ヒト多能性幹細胞を培地中で培養し、中腸内胚葉細胞への分化を誘導することを含み、
前記分化細胞が中腸内胚葉細胞であり、前記中腸内胚葉細胞が単層を形成し、前記単層と
して維持する、中腸内胚葉細胞集団の産生方法。

【請求項3】

前記方法が、
ａ．ＧＤＦ－８及びＧＳＫ３β阻害化合物を含む第１の培地中で前記ヒト多能性幹細胞
を培養し、胚体内胚葉細胞にする工程と、
ｂ．アスコルビン酸及びＦＧＦ７を含む第２の培地中で前記胚体内胚葉細胞を培養し、
原始腸管細胞にする工程と、
ｃ．レチノイン酸及びＢＭＰ２又はＢＭＰ４を含む第３の培地中で原始腸管細胞を培養
し、中腸内胚葉細胞にする工程と、を含む、請求項１又は請求項２に記載の方法。

【請求項4】

前記中腸内胚葉細胞がＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２を発現する、請求項１又は請求項２に記
載の方法。

【請求項5】

前記中腸内胚葉細胞が、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５及びＨＯＸＣ５からなる群から
選択される転写因子を発現する、請求項１又は請求項２に記載の方法。

【請求項6】

前記中腸内胚葉細胞が、ＳＯＸ２、ＡＬＢ、ＰＴＦ１Ａ、ＨＯＸＡ１３及びＬＧＲ５か
らなる群から選択される転写因子を発現しない、請求項１又は請求項２に記載の方法。

【請求項7】

前記中腸内胚葉細胞が、培地中で単層を形成し、前記単層を維持する、請求項１に記載
の方法。

【請求項8】

前記細胞集団が間葉細胞を含まない、請求項１又は請求項２に記載の方法。

【請求項9】

前記細胞集団がＨＡＮＤ１を発現しない、請求項１又は請求項２に記載の方法。

【請求項10】

前記分化がｉｎ ｖｉｔｒｏで誘導される、請求項１又は請求項２に記載の方法。

【請求項11】

ヒト多能性幹細胞を中腸内胚葉細胞に分化させる工程と、前記分化細胞を患者に移植す
る工程と、を含む、糖尿病に罹っている、又は糖尿病発症のリスクがある患者の治療方法
。

【請求項12】

前記移植された中腸内胚葉細胞をｉｎ ｖｉｖｏで分化させることを更に含む、請求項
１１に記載の方法。

【請求項13】

前記糖尿病が１型又は２型である、請求項１１に記載の方法。

【請求項14】

前記中腸内胚葉細胞が、ｉｎ ｖｉｖｏで腸内分泌細胞に更に分化し、前記腸内分泌細
胞がインクレチンホルモンを分泌する、請求項１２に記載の方法。

【請求項15】

前記インクレチンホルモンがＧＬＰ１及びＧＩＰである、請求項１４に記載の方法。

【請求項16】

前記中腸内胚葉細胞がＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２を発現する、請求項１１に記載の方法。

【請求項17】

前記中腸内胚葉細胞が、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５及びＨＯＸＣ５からなる群から
選択される転写因子を発現する、請求項１１に記載の方法。

【請求項18】

前記中腸内胚葉細胞が、ＳＯＸ２、ＡＬＢ、ＰＴＦ１Ａ、ＨＯＸＡ１３及びＬＧＲ５か
らなる群から選択される転写因子を発現しない、請求項１１に記載の方法。

【請求項19】

培養液中の胚体内胚葉細胞の原始腸管細胞への分化を誘導することを含み、前記胚体内
胚葉細胞をアスコルビン酸及びＦＧＦ７を含む培地中で培養する、中腸内胚葉細胞の産生
方法。

【請求項20】

前記原始腸管細胞を、レチノイン酸及びＢＭＰ２又はＢＭＰ４を含む培地中で培養し、
中腸内胚葉細胞に分化させる、請求項１９に記載の方法。

【請求項21】

前記培地が酸性である、請求項１９に記載の方法。

【請求項22】

前記中腸内胚葉細胞が、培地中で単層を形成し、前記単層を維持する、請求項１９に記
載の方法。

【発明の詳細な説明】

【技術分野】

【0001】

本発明は、糖尿病などの状態のための細胞療法の分野に関する。特に、本発明は、中腸
内胚葉細胞集団を発生させるための、ヒト多能性幹細胞の分化誘導などの細胞分化に関す
る。本発明は、中腸内胚葉に特徴的なマーカーを発現している細胞又は細胞集団、及びそ
れらの産生方法を提供する。

【背景技術】

【0002】

幹細胞及び内分泌細胞の両方のステージにおける、インクレチンホルモンの作用機構に
対する知識の増加は、腸への分化の理解の増加と連動して、生着に適するインクレチンホ
ルモン産生細胞源の開発への興味をもたらしている。１つのアプローチは、ヒト胚性幹細
胞（「ｈＥＳＣ」）又は人工多能性幹細胞（「ｉＰＳ」）などの多能性幹細胞からの、機
能性腸内分泌Ｌ－又はＫ－細胞の発生である。

【0003】

腸Ｌ細胞からのグルカゴン様ペプチド１（ＧＬＰ－１）、又は、腸Ｋ細胞からのグルコ
ース依存性インスリン分泌ポリペプチド（ＧＩＰ）の産生／分泌は、糖尿病の治療に有益
な効果を有する。インクレチンホルモンは、糖尿行（１型及び２型）の治療に有益な全身
作用を有する（Ｕｎｇｅｒ，Ｊ．，Ｃｕｒｒ Ｄｉａｂ Ｒｅｐ．，２０１３；１３（５
）：６６３～６６８）。利点として、多くの性状のベータ（β）細胞機能及び数の増大、
グルカゴン分泌の抑制、末梢代謝組織のインスリン感受性の増加、肝糖新生の低下、及び
食欲の低下を挙げることができる。糖尿病の治療には、２種類のインクレチン系治療薬が
確認されている（ＧＬＰ－１受容体アゴニスト及びジペプチジルペプチダーゼ４（ＤＰＰ
－４）阻害剤）。しかし現在、改善されかつ効率的なＧＬＰ１系糖尿病治療のための、内
因性及び細胞性の指標を包含するインクレチン系細胞治療の選択肢がない。更に、現在の
インクレチン系治療は循環血糖値により調節されていないため、非生理学的に制御された
ＧＬＰ産生がもたらされる。

【0004】

脊椎動物の胚発生では、多能性細胞は、原腸形成として知られるプロセスにおいて３つ
の胚葉（外胚葉、中胚葉、及び内胚葉）から構成される細胞群を生じる。間葉組織は中胚
葉由来であり、遺伝子の中でも、ｈｅａｒｔ ａｎｄ ｎｅｕｒａｌ ｃｒｅｓｔ ｄｅ
ｒｉｖａｔｉｖｅｓ ｅｘｐｒｅｓｓｅｄ １（ＨＡＮＤ１）、ｆｏｒｋｈｅａｄ ｂｏ
ｘ Ｆ１（ＦＯＸＦ１）を特徴とする。例えば、甲状腺、胸腺、膵臓、腸、及び肝臓など
の組織は、内胚葉から中間ステージを経て発達する。このプロセスにおける中間ステージ
は、胚体内胚葉の形成である。原腸形成の終了までに、内胚葉は、内胚葉の前方前腸、後
方前腸、中腸、及び後腸領域を特異的に示す一連の因子の発現によって認識することがで
きる、前方－後方ドメインに分割される。

【0005】

Ｇｒａｐｉｎ－Ｂｏｔｔｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ，２０００；
１６（３）：１２４～１３０に記載されるように、特定の転写因子（「ＴＦ」）の発現レ
ベルを用いて組織の同一性を表記できる。ＦＯＸＡ２は、内胚葉全体を前後軸に沿って特
徴付ける。原腸管への胚体内胚葉の形質転換中に、腸管は、制限された遺伝子発現パター
ンにより分子レベルで観察することができる広いドメインに領域化される。前方前腸は、
ＳＯＸ２の高発現によって広範囲に特徴付けられ、甲状腺、肺、食道などの臓器ドメイン
を包含する。中腸（十二指腸、回腸、空腸を含む）及び後腸（結腸を含む）は、ｃａｕｄ
ａｌ ｔｙｐｅ ｈｏｍｅｏｂｏｘ ２（ＣＤＸ２）の高発現によって特徴付けられる。
ＳＯＸ２－ＣＤＸ２の境界は後方前腸内に発生し、その内部で更なるＴＦが、特定の臓器
ドメインを特徴付ける。後方前腸内で領域化された膵臓ドメインは、ＰＤＸ１の非常に高
い発現並びにＣＤＸ２及びＳＯＸ２の非常に低い発現を示す。ＰＴＦ１Ａは、膵臓組織で
高度に発現する。高ＣＤＸ２発現と共に、低ＰＤＸ１発現は十二指腸ドメインの特徴であ
る。腸内胚葉は、特定のホメオボックス（ＨＯＸ）遺伝子によってパターン化される。例
えば、ＨＯＸＣ５は、中腸内胚葉細胞に優先的に発現される。また、ＨＯＸＡ１３及びＨ
ＯＸＤ１３の発現は、後腸内胚葉細胞に限定される。ＡＬＢ遺伝子、つまりアルブミン１
タンパク質は、後方前腸内胚葉中の最初期肝前駆細胞の特徴である（Ｚａｒｅｔ ｅｔ
ａｌ．，Ｃｕｒｒ Ｔｏｐ Ｄｅｖ Ｂｉｏｌ，２０１６；１１７：６４７～６６９）。

【0006】

ヒト多能性幹細胞から腸内胚葉細胞を発生させるためのプロトコールの改善において、
進歩がなされている。例えば、以下の公表文献（Ｓｐｅｎｃｅ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕ
ｒｅ，２０１１；４７０（７３３２）：１０５～１０９；Ｗａｔｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，
Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，２０１４；２０（１１）：１３１０～１３１４；及び
Ｋａｕｆｆｍａｎ ｅｔ ａｌ．，Ｆｒｏｎｔ Ｐｈａｒｍａｃｏｌ，２０１３；４（７
９）：１～１８）は、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）－４、Ｗｉｎｇｌｅｓｓ－ｔｙｐｅ
ＭＭＴＶ ｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎ ｓｉｔｅファミリー、３Ａ（ＷＮＴ３Ａ）、Ｃｈ
ｉｒｏｎ ９９０２１、又はレチノイン酸（ＲＡ）のいずれかを用いる分化プロトコール
と、ＣＤＸ２^＋／ＦＯＸＡ２^＋内胚葉集団だけではなく、かなりの間葉系ＣＤＸ２^＋細胞
集団を含む中腸／後腸スフェロイドが発生する、胚体内胚葉ステージでのＦＧＦ７染色に
ついて概説している。これらｈＥＳＣ由来の中腸／後腸スフェロイドから腸内分泌細胞を
分化する工程は、非常に非効率で、長い期間が必要であり、絨毛間領域及び絨毛領域の全
ての種類の腸細胞を発生させるように識別化されずに誘導される。

【発明の概要】

【発明が解決しようとする課題】

【0007】

細胞治療用の腸内分泌細胞を高効率で産生できるための、実質的に間葉細胞が混在する
ことがない、中腸内胚葉細胞を発生させる手法の必要性が依然として存在している。

【課題を解決するための手段】

【0008】

具現化され十分に説明されるように、本発明は、細胞、細胞集団及び、ヒト多能性幹細
胞を分化させることによるその細胞の発生方法を提供する。特に、本発明は、中腸内胚葉
細胞、より具体的には中腸内胚葉細胞の内胚葉単層を発生させるヒト多能性幹細胞の分化
誘導を特徴とする。

【0009】

本発明の一態様は、培地中でヒト多能性幹細胞を培養することを含む、中腸内胚葉細胞
集団を産生する方法である。実施形態では、この方法は、ヒト多能性幹細胞を中腸内胚葉
細胞への分化を誘導することを含む。いくつかの実施形態では、中腸内胚葉細胞集団が産
生される。いくつかの実施形態では、実質的に中腸内胚葉細胞集団が産生される。本発明
の実施形態では、中腸内胚葉細胞は、培地中で単層を形成し、単層として安定である。実
施形態では、分化細胞の５０％超が中腸内胚葉に特徴的なマーカーを発現し、好ましくは
分化細胞の６０％超が中腸内胚葉に特徴的なマーカーを発現し、より好ましくは７０％超
、８０％超、及び９０％超が中腸内胚葉に特徴的なマーカーを発現する。実施形態では、
中腸内胚葉に特徴的なマーカーを発現する分化細胞は、中腸内胚葉細胞である。実施形態
では、中腸内胚葉細胞は、ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２を発現する。全ての実施形態では、中
腸内胚葉細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５及びＨＯＸＣ５から選択される転写因子
を発現する。実施形態では、中腸内胚葉細胞は、ＳＯＸ２、ＡＬＢ、ＰＴＦ１Ａ、ＨＯＸ
Ａ１３及びＬＧＲ５から選択される転写因子を発現しない。

【0010】

本発明の実施形態では、ヒト多能性幹細胞は、ａ）ＭＣＸ化合物などのＧＤＦ－８及び
ＧＳＫ３β阻害剤を含む第１の培地中でヒト多能性幹細胞を培養し、胚体内胚葉細胞への
分化を誘導する工程と、ｂ）アスコルビン酸及びＦＧＦ７を含む第２の培地中で胚体内胚
葉細胞を培養し、原始腸管細胞への分化を誘導する工程と、ｃ）酸性条件下でレチノイン
酸及びＢＭＰ２又はＢＭＰ４を含む第３の培地中で原始腸管細胞を培養し、中腸内胚葉細
胞への分化を誘導する工程と、を含む工程によって、中腸内胚葉細胞に分化させる。特定
の実施形態では、酸性条件とはＢＬＡＲ培地での培養である。酸性培地のｐＨは、６．８
～７．２の範囲であってよい。本発明の実施形態では、中腸内胚葉細胞は培地中で単層を
形成する。実施形態では、中腸内胚葉細胞の単層は培養中維持される。

【0011】

本発明の別の実施形態は、ヒト多能性幹細胞を中腸内胚葉細胞に分化させることと、分
化した中腸内胚葉細胞を糖尿病患者に投与することと、を含む、糖尿病に罹っている、又
は糖尿病発症のリスクがある患者を治療する方法である。実施形態では、糖尿病は１型又
は２型である。実施形態では、細胞の投与は、治療部位への直接的又は間接的移植、注入
、ないしは別の投与方法であってよい。いくつかの実施形態では、中腸内胚葉細胞は、皮
下腔、網膜、肝臓、腎臓などの体内に移植される。更なる実施形態は、マクロ又はマイク
ロ封入デバイスによる封入などの、細胞の封入化送達を包含する。

【0012】

本発明の更なる実施形態は、培養液中の胚体内胚葉細胞の原始腸管細胞への分化を誘導
することを含む、中腸内胚葉細胞を産生する方法である。実施形態では、胚体内胚葉細胞
を、アスコルビン酸及びＦＧＦ７を含む培地中で培養する。更なる実施形態では、原始腸
管細胞は、レチノイン酸及びＢＭＰ２又はＢＭＰ４を含む培地中で培養される。原始腸管
細胞は、中腸内胚葉細胞に分化する。いくつかの実施形態では、原始腸管細胞は、酸性条
件下（酸性培地）で中腸内胚葉細胞に分化する。特定の実施形態では、酸性条件とはＢＬ
ＡＲ培地での培養である。酸性培地のｐＨは、６．８～７．２の範囲であってよい。実施
形態では、中腸内胚葉細胞は、培地中で単層を形成し、その単層を維持する。

【0013】

上記実施形態のそれぞれにおいて、ヒト多能性幹細胞は、ヒト胚性幹細胞又は人工多能
性幹細胞である。上記実施形態のそれぞれにおいて、中腸内胚葉細胞は、ＣＤＸ２及びＦ
ＯＸＡ２を発現する。全ての実施形態では、中腸内胚葉細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、Ｋ
ＬＦ５及びＨＯＸＣ５から選択される転写因子を発現する。実施形態では、中腸内胚葉細
胞は、ＳＯＸ２、ＡＬＢ、ＰＴＦ１Ａ、ＨＯＸＡ１３及びＬＧＲ５から選択される転写因
子を発現しない。上記実施形態では、中腸内胚葉細胞は、ＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＳＯＸ
９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５及びＨＯＸＣ５を発現する。上記実施形態では、中腸内胚葉細胞
は、ＳＯＸ２、ＡＬＢ、ＰＴＦ１Ａ、ＨＯＸＡ１３及びＬＧＲ５を発現しない。実施形態
では、分化細胞の５０％超が中腸内胚葉に特徴的なマーカーを発現し、好ましくは分化細
胞の６０％超が中腸内胚葉に特徴的なマーカーを発現し、より好ましくは７０％超、８０
％超、及び９０％超が中腸内胚葉に特徴的なマーカーを発現する。実施形態では、中腸内
胚葉に特徴的なマーカーを発現する分化細胞は、中腸内胚葉細胞である。実施形態では、
中腸内胚葉細胞は、ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２を発現する。全ての実施形態では、中腸内胚
葉細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５及びＨＯＸＣ５から選択される転写因子を発現
する。実施形態では、中腸内胚葉細胞は、ＳＯＸ２、ＡＬＢ、ＰＴＦ１Ａ、ＨＯＸＡ１３
及びＬＧＲ５から選択される転写因子を発現しない。実施形態では、中腸内胚葉細胞は、
ＨＡＮＤ１を発現しない。

【0014】

上記実施形態では、中腸内胚葉細胞集団は、実質的に中腸内胚葉細胞である。いくつか
の実施形態では、中腸内胚葉細胞の集団は、７０％超の中腸内胚葉細胞、好ましくは８０
％超、９０％超、及び９５％超の中腸内胚葉細胞を含む。いくつかの実施形態では、中腸
内胚葉細胞の集団は、２０％未満、好ましくは１５％未満、より好ましくは１０％未満、
５％未満、２％未満、１％未満、０．５％未満の間葉細胞を含む。実施形態では、中腸内
胚葉細胞は、ＨＡＮＤ１の発現を欠いている。

【0015】

上記本発明のいくつかの実施形態では、分化はｉｎ ｖｉｔｒｏで誘導される。他の実
施形態では、中腸内胚葉細胞は、ｉｎ ｖｉｖｏで更に分化する。別の実施形態は、ｉｎ
ｖｉｖｏで更に腸内分泌細胞に分化する、中腸内胚葉細胞に関する。腸内分泌細胞は、
インクレチンホルモンを発現又は分泌する。実施形態では、インクレチンホルモンは、Ｇ
ＬＰ１及びＧＩＰである。

【0016】

更なる実施形態では、中腸内胚葉細胞は、中腸内胚葉細胞の、最初に腸内分泌前駆細胞
へ、最終的にはインクレチンを発現又は分泌する腸内分泌細胞へのｉｎ ｖｉｔｒｏ分化
を高い効率で促進する小分子を同定するための出発物質として働く。

【図面の簡単な説明】

【0017】

【図1A】中腸内胚葉細胞の分化方法を示す。図１Ａは、各ステージで添加される培地成分、成長因子及び小分子、並びに、中腸内胚葉細胞の分化の主要なステージ特異的マーカー（ＦＯＸＡ２、ｆｏｒｋｈｅａｄ ｂｏｘ Ａ２；ＣＤＸ２、ｃａｕｄａｌ ｔｙｐｅ ｈｏｍｅｏｂｏｘ ２；ＫＬＦ５、クルッペル様転写因子５；ＳＯＸ９、ＳＲＹ（性決定領域Ｙ）－ｂｏｘ ９；ＰＤＸ１、ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ ａｎｄ ｄｕｏｄｅｎａｌ ｈｏｍｅｏｂｏｘ １；ＬＯ、低発現かつ低タンパク質量）を含む、分化方法の概要である。Ｓ２Ｄ２と記される中性ｐＨ（７．３５±０．０４）と比べて、細胞をステージ３の間に、ＢＬＡＲ培地（「ＢＬＡＲ酸性培地」と互換的に使用される）中で、ＢＬＡＲ培地中の重炭酸ナトリウム濃度を低下させてわずかに酸性条件にしたものに曝した（ｐＨ；Ｓ３Ｄ１、６．９８±０．０５；Ｓ３Ｄ２、７．０２±０．０４；Ｓ３Ｄ５、７．１８±０．０３）（図１Ｂ）。図１Ｃは、Ｓ３Ｄ５単層（左）及びヒト結腸腺癌上皮細胞株（「Ｃａｃｏ－２」）（右）（分化の特徴の基準として使用した）の代表的な位相差画像を示す。Ｓ３Ｄ５における均一な形態が一貫して観察された。Ｎｕｃｌｅｏｃｏｕｎｔｅｒ（登録商標）ＮＣ－１００（Ｃｈｅｍｏｍｅｔｅｃ（Ａｌｌｅｒｏｅｄ，Ｄｅｎｍａｒｋ）、カタログ番号９００－００４）を用いて細胞数を確認すると、１つのｈＥＳＣが、４．５６±２．６０個のＳ３Ｄ５中腸内胚葉細胞に分化したことを示す（図１Ｄ）。

【図1B】中腸内胚葉細胞の分化方法を示す。図１Ａは、各ステージで添加される培地成分、成長因子及び小分子、並びに、中腸内胚葉細胞の分化の主要なステージ特異的マーカー（ＦＯＸＡ２、ｆｏｒｋｈｅａｄ ｂｏｘ Ａ２；ＣＤＸ２、ｃａｕｄａｌ ｔｙｐｅ ｈｏｍｅｏｂｏｘ ２；ＫＬＦ５、クルッペル様転写因子５；ＳＯＸ９、ＳＲＹ（性決定領域Ｙ）－ｂｏｘ ９；ＰＤＸ１、ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ ａｎｄ ｄｕｏｄｅｎａｌ ｈｏｍｅｏｂｏｘ １；ＬＯ、低発現かつ低タンパク質量）を含む、分化方法の概要である。Ｓ２Ｄ２と記される中性ｐＨ（７．３５±０．０４）と比べて、細胞をステージ３の間に、ＢＬＡＲ培地（「ＢＬＡＲ酸性培地」と互換的に使用される）中で、ＢＬＡＲ培地中の重炭酸ナトリウム濃度を低下させてわずかに酸性条件にしたものに曝した（ｐＨ；Ｓ３Ｄ１、６．９８±０．０５；Ｓ３Ｄ２、７．０２±０．０４；Ｓ３Ｄ５、７．１８±０．０３）（図１Ｂ）。図１Ｃは、Ｓ３Ｄ５単層（左）及びヒト結腸腺癌上皮細胞株（「Ｃａｃｏ－２」）（右）（分化の特徴の基準として使用した）の代表的な位相差画像を示す。Ｓ３Ｄ５における均一な形態が一貫して観察された。Ｎｕｃｌｅｏｃｏｕｎｔｅｒ（登録商標）ＮＣ－１００（Ｃｈｅｍｏｍｅｔｅｃ（Ａｌｌｅｒｏｅｄ，Ｄｅｎｍａｒｋ）、カタログ番号９００－００４）を用いて細胞数を確認すると、１つのｈＥＳＣが、４．５６±２．６０個のＳ３Ｄ５中腸内胚葉細胞に分化したことを示す（図１Ｄ）。

【図1C】中腸内胚葉細胞の分化方法を示す。図１Ａは、各ステージで添加される培地成分、成長因子及び小分子、並びに、中腸内胚葉細胞の分化の主要なステージ特異的マーカー（ＦＯＸＡ２、ｆｏｒｋｈｅａｄ ｂｏｘ Ａ２；ＣＤＸ２、ｃａｕｄａｌ ｔｙｐｅ ｈｏｍｅｏｂｏｘ ２；ＫＬＦ５、クルッペル様転写因子５；ＳＯＸ９、ＳＲＹ（性決定領域Ｙ）－ｂｏｘ ９；ＰＤＸ１、ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ ａｎｄ ｄｕｏｄｅｎａｌ ｈｏｍｅｏｂｏｘ １；ＬＯ、低発現かつ低タンパク質量）を含む、分化方法の概要である。Ｓ２Ｄ２と記される中性ｐＨ（７．３５±０．０４）と比べて、細胞をステージ３の間に、ＢＬＡＲ培地（「ＢＬＡＲ酸性培地」と互換的に使用される）中で、ＢＬＡＲ培地中の重炭酸ナトリウム濃度を低下させてわずかに酸性条件にしたものに曝した（ｐＨ；Ｓ３Ｄ１、６．９８±０．０５；Ｓ３Ｄ２、７．０２±０．０４；Ｓ３Ｄ５、７．１８±０．０３）（図１Ｂ）。図１Ｃは、Ｓ３Ｄ５単層（左）及びヒト結腸腺癌上皮細胞株（「Ｃａｃｏ－２」）（右）（分化の特徴の基準として使用した）の代表的な位相差画像を示す。Ｓ３Ｄ５における均一な形態が一貫して観察された。Ｎｕｃｌｅｏｃｏｕｎｔｅｒ（登録商標）ＮＣ－１００（Ｃｈｅｍｏｍｅｔｅｃ（Ａｌｌｅｒｏｅｄ，Ｄｅｎｍａｒｋ）、カタログ番号９００－００４）を用いて細胞数を確認すると、１つのｈＥＳＣが、４．５６±２．６０個のＳ３Ｄ５中腸内胚葉細胞に分化したことを示す（図１Ｄ）。

【図1D】中腸内胚葉細胞の分化方法を示す。図１Ａは、各ステージで添加される培地成分、成長因子及び小分子、並びに、中腸内胚葉細胞の分化の主要なステージ特異的マーカー（ＦＯＸＡ２、ｆｏｒｋｈｅａｄ ｂｏｘ Ａ２；ＣＤＸ２、ｃａｕｄａｌ ｔｙｐｅ ｈｏｍｅｏｂｏｘ ２；ＫＬＦ５、クルッペル様転写因子５；ＳＯＸ９、ＳＲＹ（性決定領域Ｙ）－ｂｏｘ ９；ＰＤＸ１、ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ ａｎｄ ｄｕｏｄｅｎａｌ ｈｏｍｅｏｂｏｘ １；ＬＯ、低発現かつ低タンパク質量）を含む、分化方法の概要である。Ｓ２Ｄ２と記される中性ｐＨ（７．３５±０．０４）と比べて、細胞をステージ３の間に、ＢＬＡＲ培地（「ＢＬＡＲ酸性培地」と互換的に使用される）中で、ＢＬＡＲ培地中の重炭酸ナトリウム濃度を低下させてわずかに酸性条件にしたものに曝した（ｐＨ；Ｓ３Ｄ１、６．９８±０．０５；Ｓ３Ｄ２、７．０２±０．０４；Ｓ３Ｄ５、７．１８±０．０３）（図１Ｂ）。図１Ｃは、Ｓ３Ｄ５単層（左）及びヒト結腸腺癌上皮細胞株（「Ｃａｃｏ－２」）（右）（分化の特徴の基準として使用した）の代表的な位相差画像を示す。Ｓ３Ｄ５における均一な形態が一貫して観察された。Ｎｕｃｌｅｏｃｏｕｎｔｅｒ（登録商標）ＮＣ－１００（Ｃｈｅｍｏｍｅｔｅｃ（Ａｌｌｅｒｏｅｄ，Ｄｅｎｍａｒｋ）、カタログ番号９００－００４）を用いて細胞数を確認すると、１つのｈＥＳＣが、４．５６±２．６０個のＳ３Ｄ５中腸内胚葉細胞に分化したことを示す（図１Ｄ）。

【図2A】骨形成タンパク質－４（ＢＭＰ４）を利用する、転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の両方を含む、単層の中腸内胚葉細胞を発生させる分化方法を示す。図２Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様に、９０．０±５．８５パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。逆に、胚体内胚葉（ＤＥ－Ｓ１Ｄ３）細胞は、ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２が共存していなかった（２．３±１．２）。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図２Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図２Ｃ）ことが示される。図２Ｄは、ＦＯＸＡ２陽性の原始腸内胚葉ステージであるＳ２Ｄ２（図２Ｄ－ｉ）の樹立後に、Ｓ３Ｄ２（図２Ｄ－ｉｉ）の間に徐々に増加し、Ｓ３Ｄ５（図２Ｄ－ｉｉｉ）において、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）に見られるのと同様のレベルに達するように、ＣＤＸ２タンパク質レベルが誘導され、ＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質が共存することを示す。ＣＤＸ２タンパク質は下列に示され、ＦＯＸＡ２タンパク質は上列に示される。各画像は、定量分析が可能になるように同一のパラメータを用いて撮影された。タンパク質発現をＦＡＣＳによって評価し、遺伝子発現をｑＰＣＲによって評価した。

【図2B】骨形成タンパク質－４（ＢＭＰ４）を利用する、転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の両方を含む、単層の中腸内胚葉細胞を発生させる分化方法を示す。図２Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様に、９０．０±５．８５パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。逆に、胚体内胚葉（ＤＥ－Ｓ１Ｄ３）細胞は、ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２が共存していなかった（２．３±１．２）。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図２Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図２Ｃ）ことが示される。図２Ｄは、ＦＯＸＡ２陽性の原始腸内胚葉ステージであるＳ２Ｄ２（図２Ｄ－ｉ）の樹立後に、Ｓ３Ｄ２（図２Ｄ－ｉｉ）の間に徐々に増加し、Ｓ３Ｄ５（図２Ｄ－ｉｉｉ）において、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）に見られるのと同様のレベルに達するように、ＣＤＸ２タンパク質レベルが誘導され、ＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質が共存することを示す。ＣＤＸ２タンパク質は下列に示され、ＦＯＸＡ２タンパク質は上列に示される。各画像は、定量分析が可能になるように同一のパラメータを用いて撮影された。タンパク質発現をＦＡＣＳによって評価し、遺伝子発現をｑＰＣＲによって評価した。

【図2C】骨形成タンパク質－４（ＢＭＰ４）を利用する、転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の両方を含む、単層の中腸内胚葉細胞を発生させる分化方法を示す。図２Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様に、９０．０±５．８５パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。逆に、胚体内胚葉（ＤＥ－Ｓ１Ｄ３）細胞は、ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２が共存していなかった（２．３±１．２）。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図２Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図２Ｃ）ことが示される。図２Ｄは、ＦＯＸＡ２陽性の原始腸内胚葉ステージであるＳ２Ｄ２（図２Ｄ－ｉ）の樹立後に、Ｓ３Ｄ２（図２Ｄ－ｉｉ）の間に徐々に増加し、Ｓ３Ｄ５（図２Ｄ－ｉｉｉ）において、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）に見られるのと同様のレベルに達するように、ＣＤＸ２タンパク質レベルが誘導され、ＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質が共存することを示す。ＣＤＸ２タンパク質は下列に示され、ＦＯＸＡ２タンパク質は上列に示される。各画像は、定量分析が可能になるように同一のパラメータを用いて撮影された。タンパク質発現をＦＡＣＳによって評価し、遺伝子発現をｑＰＣＲによって評価した。

【図2D】骨形成タンパク質－４（ＢＭＰ４）を利用する、転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の両方を含む、単層の中腸内胚葉細胞を発生させる分化方法を示す。図２Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様に、９０．０±５．８５パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。逆に、胚体内胚葉（ＤＥ－Ｓ１Ｄ３）細胞は、ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２が共存していなかった（２．３±１．２）。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図２Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図２Ｃ）ことが示される。図２Ｄは、ＦＯＸＡ２陽性の原始腸内胚葉ステージであるＳ２Ｄ２（図２Ｄ－ｉ）の樹立後に、Ｓ３Ｄ２（図２Ｄ－ｉｉ）の間に徐々に増加し、Ｓ３Ｄ５（図２Ｄ－ｉｉｉ）において、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）に見られるのと同様のレベルに達するように、ＣＤＸ２タンパク質レベルが誘導され、ＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質が共存することを示す。ＣＤＸ２タンパク質は下列に示され、ＦＯＸＡ２タンパク質は上列に示される。各画像は、定量分析が可能になるように同一のパラメータを用いて撮影された。タンパク質発現をＦＡＣＳによって評価し、遺伝子発現をｑＰＣＲによって評価した。

【図3A】継続的な中腸内胚葉誘導を構成する追加の転写因子（ＴＦ）の転写レベル及びタンパク質レベルであるＳ３Ｄ５による誘導を示し、正しく中腸内胚葉が達成された。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共発現に加えて、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５（ホメオボックスＣ５）の共発現も示すが、ＳＯＸ２（ＳＲＹ－ｂｏｘ２）、ＡＬＢ（アルブミン）、ＰＴＦ１Ａ（膵臓特異的転写因子１ａ）、及びＬＧＲ５（ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５）は発現していない。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図３Ｂ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、免疫蛍光（ＩＦ）分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図３Ｆ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５±０．１５がＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図３Ｐ）。遺伝子発現はｑＰＣＲによって評価した。

【図3B】継続的な中腸内胚葉誘導を構成する追加の転写因子（ＴＦ）の転写レベル及びタンパク質レベルであるＳ３Ｄ５による誘導を示し、正しく中腸内胚葉が達成された。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共発現に加えて、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５（ホメオボックスＣ５）の共発現も示すが、ＳＯＸ２（ＳＲＹ－ｂｏｘ２）、ＡＬＢ（アルブミン）、ＰＴＦ１Ａ（膵臓特異的転写因子１ａ）、及びＬＧＲ５（ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５）は発現していない。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図３Ｂ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、免疫蛍光（ＩＦ）分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図３Ｆ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５±０．１５がＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図３Ｐ）。遺伝子発現はｑＰＣＲによって評価した。

【図3C】継続的な中腸内胚葉誘導を構成する追加の転写因子（ＴＦ）の転写レベル及びタンパク質レベルであるＳ３Ｄ５による誘導を示し、正しく中腸内胚葉が達成された。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共発現に加えて、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５（ホメオボックスＣ５）の共発現も示すが、ＳＯＸ２（ＳＲＹ－ｂｏｘ２）、ＡＬＢ（アルブミン）、ＰＴＦ１Ａ（膵臓特異的転写因子１ａ）、及びＬＧＲ５（ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５）は発現していない。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図３Ｂ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、免疫蛍光（ＩＦ）分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図３Ｆ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５±０．１５がＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図３Ｐ）。遺伝子発現はｑＰＣＲによって評価した。

【図3D】継続的な中腸内胚葉誘導を構成する追加の転写因子（ＴＦ）の転写レベル及びタンパク質レベルであるＳ３Ｄ５による誘導を示し、正しく中腸内胚葉が達成された。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共発現に加えて、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５（ホメオボックスＣ５）の共発現も示すが、ＳＯＸ２（ＳＲＹ－ｂｏｘ２）、ＡＬＢ（アルブミン）、ＰＴＦ１Ａ（膵臓特異的転写因子１ａ）、及びＬＧＲ５（ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５）は発現していない。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図３Ｂ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、免疫蛍光（ＩＦ）分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図３Ｆ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５±０．１５がＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図３Ｐ）。遺伝子発現はｑＰＣＲによって評価した。

【図3E】継続的な中腸内胚葉誘導を構成する追加の転写因子（ＴＦ）の転写レベル及びタンパク質レベルであるＳ３Ｄ５による誘導を示し、正しく中腸内胚葉が達成された。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共発現に加えて、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５（ホメオボックスＣ５）の共発現も示すが、ＳＯＸ２（ＳＲＹ－ｂｏｘ２）、ＡＬＢ（アルブミン）、ＰＴＦ１Ａ（膵臓特異的転写因子１ａ）、及びＬＧＲ５（ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５）は発現していない。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図３Ｂ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、免疫蛍光（ＩＦ）分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図３Ｆ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５±０．１５がＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図３Ｐ）。遺伝子発現はｑＰＣＲによって評価した。

【図3F】継続的な中腸内胚葉誘導を構成する追加の転写因子（ＴＦ）の転写レベル及びタンパク質レベルであるＳ３Ｄ５による誘導を示し、正しく中腸内胚葉が達成された。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共発現に加えて、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５（ホメオボックスＣ５）の共発現も示すが、ＳＯＸ２（ＳＲＹ－ｂｏｘ２）、ＡＬＢ（アルブミン）、ＰＴＦ１Ａ（膵臓特異的転写因子１ａ）、及びＬＧＲ５（ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５）は発現していない。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図３Ｂ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、免疫蛍光（ＩＦ）分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図３Ｆ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５±０．１５がＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図３Ｐ）。遺伝子発現はｑＰＣＲによって評価した。

【図3G】継続的な中腸内胚葉誘導を構成する追加の転写因子（ＴＦ）の転写レベル及びタンパク質レベルであるＳ３Ｄ５による誘導を示し、正しく中腸内胚葉が達成された。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共発現に加えて、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５（ホメオボックスＣ５）の共発現も示すが、ＳＯＸ２（ＳＲＹ－ｂｏｘ２）、ＡＬＢ（アルブミン）、ＰＴＦ１Ａ（膵臓特異的転写因子１ａ）、及びＬＧＲ５（ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５）は発現していない。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図３Ｂ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、免疫蛍光（ＩＦ）分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図３Ｆ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５±０．１５がＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図３Ｐ）。遺伝子発現はｑＰＣＲによって評価した。

【図3H】継続的な中腸内胚葉誘導を構成する追加の転写因子（ＴＦ）の転写レベル及びタンパク質レベルであるＳ３Ｄ５による誘導を示し、正しく中腸内胚葉が達成された。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共発現に加えて、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５（ホメオボックスＣ５）の共発現も示すが、ＳＯＸ２（ＳＲＹ－ｂｏｘ２）、ＡＬＢ（アルブミン）、ＰＴＦ１Ａ（膵臓特異的転写因子１ａ）、及びＬＧＲ５（ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５）は発現していない。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図３Ｂ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、免疫蛍光（ＩＦ）分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図３Ｆ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５±０．１５がＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図３Ｐ）。遺伝子発現はｑＰＣＲによって評価した。

【図3I】継続的な中腸内胚葉誘導を構成する追加の転写因子（ＴＦ）の転写レベル及びタンパク質レベルであるＳ３Ｄ５による誘導を示し、正しく中腸内胚葉が達成された。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共発現に加えて、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５（ホメオボックスＣ５）の共発現も示すが、ＳＯＸ２（ＳＲＹ－ｂｏｘ２）、ＡＬＢ（アルブミン）、ＰＴＦ１Ａ（膵臓特異的転写因子１ａ）、及びＬＧＲ５（ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５）は発現していない。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図３Ｂ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、免疫蛍光（ＩＦ）分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図３Ｆ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５±０．１５がＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図３Ｐ）。遺伝子発現はｑＰＣＲによって評価した。

【図3J】継続的な中腸内胚葉誘導を構成する追加の転写因子（ＴＦ）の転写レベル及びタンパク質レベルであるＳ３Ｄ５による誘導を示し、正しく中腸内胚葉が達成された。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共発現に加えて、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５（ホメオボックスＣ５）の共発現も示すが、ＳＯＸ２（ＳＲＹ－ｂｏｘ２）、ＡＬＢ（アルブミン）、ＰＴＦ１Ａ（膵臓特異的転写因子１ａ）、及びＬＧＲ５（ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５）は発現していない。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図３Ｂ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、免疫蛍光（ＩＦ）分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図３Ｆ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５±０．１５がＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図３Ｐ）。遺伝子発現はｑＰＣＲによって評価した。

【図3K】継続的な中腸内胚葉誘導を構成する追加の転写因子（ＴＦ）の転写レベル及びタンパク質レベルであるＳ３Ｄ５による誘導を示し、正しく中腸内胚葉が達成された。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共発現に加えて、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５（ホメオボックスＣ５）の共発現も示すが、ＳＯＸ２（ＳＲＹ－ｂｏｘ２）、ＡＬＢ（アルブミン）、ＰＴＦ１Ａ（膵臓特異的転写因子１ａ）、及びＬＧＲ５（ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５）は発現していない。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図３Ｂ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、免疫蛍光（ＩＦ）分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図３Ｆ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５±０．１５がＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図３Ｐ）。遺伝子発現はｑＰＣＲによって評価した。

【図3L】継続的な中腸内胚葉誘導を構成する追加の転写因子（ＴＦ）の転写レベル及びタンパク質レベルであるＳ３Ｄ５による誘導を示し、正しく中腸内胚葉が達成された。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共発現に加えて、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５（ホメオボックスＣ５）の共発現も示すが、ＳＯＸ２（ＳＲＹ－ｂｏｘ２）、ＡＬＢ（アルブミン）、ＰＴＦ１Ａ（膵臓特異的転写因子１ａ）、及びＬＧＲ５（ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５）は発現していない。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図３Ｂ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、免疫蛍光（ＩＦ）分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図３Ｆ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５±０．１５がＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図３Ｐ）。遺伝子発現はｑＰＣＲによって評価した。

【図3M】継続的な中腸内胚葉誘導を構成する追加の転写因子（ＴＦ）の転写レベル及びタンパク質レベルであるＳ３Ｄ５による誘導を示し、正しく中腸内胚葉が達成された。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共発現に加えて、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５（ホメオボックスＣ５）の共発現も示すが、ＳＯＸ２（ＳＲＹ－ｂｏｘ２）、ＡＬＢ（アルブミン）、ＰＴＦ１Ａ（膵臓特異的転写因子１ａ）、及びＬＧＲ５（ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５）は発現していない。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図３Ｂ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、免疫蛍光（ＩＦ）分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図３Ｆ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５±０．１５がＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図３Ｐ）。遺伝子発現はｑＰＣＲによって評価した。

【図3N】継続的な中腸内胚葉誘導を構成する追加の転写因子（ＴＦ）の転写レベル及びタンパク質レベルであるＳ３Ｄ５による誘導を示し、正しく中腸内胚葉が達成された。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共発現に加えて、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５（ホメオボックスＣ５）の共発現も示すが、ＳＯＸ２（ＳＲＹ－ｂｏｘ２）、ＡＬＢ（アルブミン）、ＰＴＦ１Ａ（膵臓特異的転写因子１ａ）、及びＬＧＲ５（ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５）は発現していない。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図３Ｂ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、免疫蛍光（ＩＦ）分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図３Ｆ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５±０．１５がＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図３Ｐ）。遺伝子発現はｑＰＣＲによって評価した。

【図3O】継続的な中腸内胚葉誘導を構成する追加の転写因子（ＴＦ）の転写レベル及びタンパク質レベルであるＳ３Ｄ５による誘導を示し、正しく中腸内胚葉が達成された。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共発現に加えて、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５（ホメオボックスＣ５）の共発現も示すが、ＳＯＸ２（ＳＲＹ－ｂｏｘ２）、ＡＬＢ（アルブミン）、ＰＴＦ１Ａ（膵臓特異的転写因子１ａ）、及びＬＧＲ５（ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５）は発現していない。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図３Ｂ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、免疫蛍光（ＩＦ）分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図３Ｆ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５±０．１５がＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図３Ｐ）。遺伝子発現はｑＰＣＲによって評価した。

【図3P】継続的な中腸内胚葉誘導を構成する追加の転写因子（ＴＦ）の転写レベル及びタンパク質レベルであるＳ３Ｄ５による誘導を示し、正しく中腸内胚葉が達成された。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共発現に加えて、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５（ホメオボックスＣ５）の共発現も示すが、ＳＯＸ２（ＳＲＹ－ｂｏｘ２）、ＡＬＢ（アルブミン）、ＰＴＦ１Ａ（膵臓特異的転写因子１ａ）、及びＬＧＲ５（ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５）は発現していない。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図３Ｂ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、免疫蛍光（ＩＦ）分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図３Ｆ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５±０．１５がＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図３Ｐ）。遺伝子発現はｑＰＣＲによって評価した。

【図3Q】継続的な中腸内胚葉誘導を構成する追加の転写因子（ＴＦ）の転写レベル及びタンパク質レベルであるＳ３Ｄ５による誘導を示し、正しく中腸内胚葉が達成された。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共発現に加えて、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５（ホメオボックスＣ５）の共発現も示すが、ＳＯＸ２（ＳＲＹ－ｂｏｘ２）、ＡＬＢ（アルブミン）、ＰＴＦ１Ａ（膵臓特異的転写因子１ａ）、及びＬＧＲ５（ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５）は発現していない。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図３Ｂ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、免疫蛍光（ＩＦ）分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図３Ｆ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５±０．１５がＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図３Ｐ）。遺伝子発現はｑＰＣＲによって評価した。

【図4A】分化しているＳ３Ｄ５細胞の増殖プロファイルの特徴である。図４Ａは、ＣＤＸ２タンパク質陽性細胞のほとんどの細胞周期が活性化されている（ＫＩ６７タンパク質との共発現によって示される）Ｃａｃｏ－２細胞（左）及び、経時的に減少したステージ３中のＨ１－ｈＥＳＣ由来細胞の増殖指標（Ｓ３Ｄ２－中；Ｓ３Ｄ５－右）を示す。ＣＤＸ２（上列）及びＫＩ６７（下列）のタンパク質レベルは、単一チャネル画像として示される。ＦＡＣＳによって評価された、総Ｓ３Ｄ５細胞中のＫＩ６７タンパク質陽性細胞の割合（総細胞は、＞９０％がＣＤＸ２陽性）は、Ｓ１Ｄ３（９７．３±１．３）及びＣａｃｏ－２細胞（９９．２±０．２）とは対称的に、１６．８±３．１２であった（図４Ｂ）。

【図4B】分化しているＳ３Ｄ５細胞の増殖プロファイルの特徴である。図４Ａは、ＣＤＸ２タンパク質陽性細胞のほとんどの細胞周期が活性化されている（ＫＩ６７タンパク質との共発現によって示される）Ｃａｃｏ－２細胞（左）及び、経時的に減少したステージ３中のＨ１－ｈＥＳＣ由来細胞の増殖指標（Ｓ３Ｄ２－中；Ｓ３Ｄ５－右）を示す。ＣＤＸ２（上列）及びＫＩ６７（下列）のタンパク質レベルは、単一チャネル画像として示される。ＦＡＣＳによって評価された、総Ｓ３Ｄ５細胞中のＫＩ６７タンパク質陽性細胞の割合（総細胞は、＞９０％がＣＤＸ２陽性）は、Ｓ１Ｄ３（９７．３±１．３）及びＣａｃｏ－２細胞（９９．２±０．２）とは対称的に、１６．８±３．１２であった（図４Ｂ）。

【図5A】ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２タンパク質が共存している中腸内胚葉細胞の単層を達成するための、ステージ３中のＢＭＰ４の代替としてのＢＭＰ２の使用を示す。図５Ａは、各ステージで添加された培地成分、成長因子及び小分子、並びに、中腸内胚葉細胞の分化のステージ特異的マーカー（ＦＯＸＡ２、ＣＤＸ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、及びＰＤＸ１^ＬＯ）を含む、分化方法の概要である。Ｓ２Ｄ２と記される中性ｐＨ（７．３５±０．０４）と比べて、細胞をステージ３全体の間に、ＢＬＡＲ培地中で、ＢＬＡＲ培地中の重炭酸ナトリウム濃度を低下させてわずかに酸性条件にしたものに曝した（ｐＨ；Ｓ３Ｄ１、６．９２；Ｓ３Ｄ２、７．０１；Ｓ３Ｄ５、７．２２）（図５Ｂ）。図５Ｃは、Ｓ３Ｄ５単層（左）及びＣａｃｏ－２細胞（右）の代表的な位相差画像を示し、Ｓ３Ｄ５における均一な形態が観察された。

【図5B】ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２タンパク質が共存している中腸内胚葉細胞の単層を達成するための、ステージ３中のＢＭＰ４の代替としてのＢＭＰ２の使用を示す。図５Ａは、各ステージで添加された培地成分、成長因子及び小分子、並びに、中腸内胚葉細胞の分化のステージ特異的マーカー（ＦＯＸＡ２、ＣＤＸ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、及びＰＤＸ１^ＬＯ）を含む、分化方法の概要である。Ｓ２Ｄ２と記される中性ｐＨ（７．３５±０．０４）と比べて、細胞をステージ３全体の間に、ＢＬＡＲ培地中で、ＢＬＡＲ培地中の重炭酸ナトリウム濃度を低下させてわずかに酸性条件にしたものに曝した（ｐＨ；Ｓ３Ｄ１、６．９２；Ｓ３Ｄ２、７．０１；Ｓ３Ｄ５、７．２２）（図５Ｂ）。図５Ｃは、Ｓ３Ｄ５単層（左）及びＣａｃｏ－２細胞（右）の代表的な位相差画像を示し、Ｓ３Ｄ５における均一な形態が観察された。

【図5C】ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２タンパク質が共存している中腸内胚葉細胞の単層を達成するための、ステージ３中のＢＭＰ４の代替としてのＢＭＰ２の使用を示す。図５Ａは、各ステージで添加された培地成分、成長因子及び小分子、並びに、中腸内胚葉細胞の分化のステージ特異的マーカー（ＦＯＸＡ２、ＣＤＸ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、及びＰＤＸ１^ＬＯ）を含む、分化方法の概要である。Ｓ２Ｄ２と記される中性ｐＨ（７．３５±０．０４）と比べて、細胞をステージ３全体の間に、ＢＬＡＲ培地中で、ＢＬＡＲ培地中の重炭酸ナトリウム濃度を低下させてわずかに酸性条件にしたものに曝した（ｐＨ；Ｓ３Ｄ１、６．９２；Ｓ３Ｄ２、７．０１；Ｓ３Ｄ５、７．２２）（図５Ｂ）。図５Ｃは、Ｓ３Ｄ５単層（左）及びＣａｃｏ－２細胞（右）の代表的な位相差画像を示し、Ｓ３Ｄ５における均一な形態が観察された。

【図6A】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6B】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6C】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6D】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6E】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6F】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6G】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6H】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6I】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6J】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6K】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6L】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6M】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6N】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6O】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6P】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6Q】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6R】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6S】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6T】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図6U】転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞の発生を示す。ＩＦ画像については、全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネル画像として示す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様又はそれより多く、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、Ｓ３Ｄ５において誘導される、ＣＤＸ２タンパク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）と同様のレベルに達していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞にＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。Ｃａｃｏ－２細胞（図６Ｆ）で見られるレベルまでのＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導、及び、ＩＦ分析によって評価されるタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。中腸／後腸内胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）とは異なり、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５が、Ｓ３Ｄ５細胞内で誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【図7】分化しているＳ３Ｄ５細胞の増殖プロファイルの特徴である。ＣＤＸ２タンパク質陽性細胞のほとんどの細胞周期が活性化されている（ＫＩ６７タンパク質との共発現によって示される）Ｃａｃｏ－２細胞（左）と比較して、ステージ３中のＨ１－ｈＥＳＣ由来細胞の増殖指標が減少した（Ｓ３Ｄ５－右）。ＣＤＸ２（上列）及びＫＩ６７（下列）のタンパク質レベルは、単一チャネル画像として示される。ＦＡＣＳによって評価された、総Ｓ３Ｄ５細胞中のＫＩ６７タンパク質陽性細胞の割合（総細胞は、＞９０％がＣＤＸ２陽性）は、Ｓ１Ｄ３（９７．３±１．３）及びＣａｃｏ－２細胞（９９．２±０．２）とは対称的に、１４．１パーセントであった。

【図8A】ＣＤＸ２^＋細胞の不均一集団の誘導を示す。図８Ａは、各ステージで添加される培地成分、成長因子及び小分子、並びに、中腸／後腸内胚葉細胞の分化の主要なステージ特異的マーカー（ＨＡＮＤ１）を含む、分化方法の概要である。図８Ｂは、Ｈ１－ｈＥＳＣ細胞（上列、左）、５００ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ４及び３μＭのＣｈｉｒｏｎ９９０２１で２日間コンディショニングしたステージ１後の細胞（上列、中）、５００ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ４及び５００ｎｇ／ｍＬのＷＮＴ３Ａで２日間コンディショニングしたステージ１後の細胞（上列、右）、ＲＡ／ＢＭＰ４でコンディショニングしたＳ３Ｄ５単層（下列、左）、及び、ＲＡ／ＢＭＰ２でコンディショニングしたＳ３Ｄ５単層（下列、右）の、位相差画像を示す。２日間のコンディショニング後の遺伝子発現の誘導が、ＣＤＸ２については低レベルで示され（図８Ｃ）、内胚葉マーカーであるＦＯＸＡ２については維持され（図８Ｄ）、中胚葉／間葉マーカーであるＨＡＮＤ１については誘導される（図８Ｆ）。ＫＬＦ５は誘導されなかった（図８Ｅ）。

【図8B】ＣＤＸ２^＋細胞の不均一集団の誘導を示す。図８Ａは、各ステージで添加される培地成分、成長因子及び小分子、並びに、中腸／後腸内胚葉細胞の分化の主要なステージ特異的マーカー（ＨＡＮＤ１）を含む、分化方法の概要である。図８Ｂは、Ｈ１－ｈＥＳＣ細胞（上列、左）、５００ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ４及び３μＭのＣｈｉｒｏｎ９９０２１で２日間コンディショニングしたステージ１後の細胞（上列、中）、５００ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ４及び５００ｎｇ／ｍＬのＷＮＴ３Ａで２日間コンディショニングしたステージ１後の細胞（上列、右）、ＲＡ／ＢＭＰ４でコンディショニングしたＳ３Ｄ５単層（下列、左）、及び、ＲＡ／ＢＭＰ２でコンディショニングしたＳ３Ｄ５単層（下列、右）の、位相差画像を示す。２日間のコンディショニング後の遺伝子発現の誘導が、ＣＤＸ２については低レベルで示され（図８Ｃ）、内胚葉マーカーであるＦＯＸＡ２については維持され（図８Ｄ）、中胚葉／間葉マーカーであるＨＡＮＤ１については誘導される（図８Ｆ）。ＫＬＦ５は誘導されなかった（図８Ｅ）。

【図8C】ＣＤＸ２^＋細胞の不均一集団の誘導を示す。図８Ａは、各ステージで添加される培地成分、成長因子及び小分子、並びに、中腸／後腸内胚葉細胞の分化の主要なステージ特異的マーカー（ＨＡＮＤ１）を含む、分化方法の概要である。図８Ｂは、Ｈ１－ｈＥＳＣ細胞（上列、左）、５００ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ４及び３μＭのＣｈｉｒｏｎ９９０２１で２日間コンディショニングしたステージ１後の細胞（上列、中）、５００ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ４及び５００ｎｇ／ｍＬのＷＮＴ３Ａで２日間コンディショニングしたステージ１後の細胞（上列、右）、ＲＡ／ＢＭＰ４でコンディショニングしたＳ３Ｄ５単層（下列、左）、及び、ＲＡ／ＢＭＰ２でコンディショニングしたＳ３Ｄ５単層（下列、右）の、位相差画像を示す。２日間のコンディショニング後の遺伝子発現の誘導が、ＣＤＸ２については低レベルで示され（図８Ｃ）、内胚葉マーカーであるＦＯＸＡ２については維持され（図８Ｄ）、中胚葉／間葉マーカーであるＨＡＮＤ１については誘導される（図８Ｆ）。ＫＬＦ５は誘導されなかった（図８Ｅ）。

【図8D】ＣＤＸ２^＋細胞の不均一集団の誘導を示す。図８Ａは、各ステージで添加される培地成分、成長因子及び小分子、並びに、中腸／後腸内胚葉細胞の分化の主要なステージ特異的マーカー（ＨＡＮＤ１）を含む、分化方法の概要である。図８Ｂは、Ｈ１－ｈＥＳＣ細胞（上列、左）、５００ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ４及び３μＭのＣｈｉｒｏｎ９９０２１で２日間コンディショニングしたステージ１後の細胞（上列、中）、５００ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ４及び５００ｎｇ／ｍＬのＷＮＴ３Ａで２日間コンディショニングしたステージ１後の細胞（上列、右）、ＲＡ／ＢＭＰ４でコンディショニングしたＳ３Ｄ５単層（下列、左）、及び、ＲＡ／ＢＭＰ２でコンディショニングしたＳ３Ｄ５単層（下列、右）の、位相差画像を示す。２日間のコンディショニング後の遺伝子発現の誘導が、ＣＤＸ２については低レベルで示され（図８Ｃ）、内胚葉マーカーであるＦＯＸＡ２については維持され（図８Ｄ）、中胚葉／間葉マーカーであるＨＡＮＤ１については誘導される（図８Ｆ）。ＫＬＦ５は誘導されなかった（図８Ｅ）。

【図8E】ＣＤＸ２^＋細胞の不均一集団の誘導を示す。図８Ａは、各ステージで添加される培地成分、成長因子及び小分子、並びに、中腸／後腸内胚葉細胞の分化の主要なステージ特異的マーカー（ＨＡＮＤ１）を含む、分化方法の概要である。図８Ｂは、Ｈ１－ｈＥＳＣ細胞（上列、左）、５００ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ４及び３μＭのＣｈｉｒｏｎ９９０２１で２日間コンディショニングしたステージ１後の細胞（上列、中）、５００ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ４及び５００ｎｇ／ｍＬのＷＮＴ３Ａで２日間コンディショニングしたステージ１後の細胞（上列、右）、ＲＡ／ＢＭＰ４でコンディショニングしたＳ３Ｄ５単層（下列、左）、及び、ＲＡ／ＢＭＰ２でコンディショニングしたＳ３Ｄ５単層（下列、右）の、位相差画像を示す。２日間のコンディショニング後の遺伝子発現の誘導が、ＣＤＸ２については低レベルで示され（図８Ｃ）、内胚葉マーカーであるＦＯＸＡ２については維持され（図８Ｄ）、中胚葉／間葉マーカーであるＨＡＮＤ１については誘導される（図８Ｆ）。ＫＬＦ５は誘導されなかった（図８Ｅ）。

【図8F】ＣＤＸ２^＋細胞の不均一集団の誘導を示す。図８Ａは、各ステージで添加される培地成分、成長因子及び小分子、並びに、中腸／後腸内胚葉細胞の分化の主要なステージ特異的マーカー（ＨＡＮＤ１）を含む、分化方法の概要である。図８Ｂは、Ｈ１－ｈＥＳＣ細胞（上列、左）、５００ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ４及び３μＭのＣｈｉｒｏｎ９９０２１で２日間コンディショニングしたステージ１後の細胞（上列、中）、５００ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ４及び５００ｎｇ／ｍＬのＷＮＴ３Ａで２日間コンディショニングしたステージ１後の細胞（上列、右）、ＲＡ／ＢＭＰ４でコンディショニングしたＳ３Ｄ５単層（下列、左）、及び、ＲＡ／ＢＭＰ２でコンディショニングしたＳ３Ｄ５単層（下列、右）の、位相差画像を示す。２日間のコンディショニング後の遺伝子発現の誘導が、ＣＤＸ２については低レベルで示され（図８Ｃ）、内胚葉マーカーであるＦＯＸＡ２については維持され（図８Ｄ）、中胚葉／間葉マーカーであるＨＡＮＤ１については誘導される（図８Ｆ）。ＫＬＦ５は誘導されなかった（図８Ｅ）。

【発明を実施するための形態】

【0018】

本発明は、特定の方法、試薬、化合物、組成物、又は生物学的システムに限定されるも
のではなく、これらは無論のこと変更可能であることは理解されるはずである。また、本
明細書において使用される用語は、あくまで特定の実施形態を説明することを目的とした
ものに過ぎず、限定的なものではない点も理解されるはずである。

【0019】

本発明は、中腸内胚葉細胞の発生に関する。細胞は、特定の培養順を用いて発生された
。したがって、本発明は、多能性幹細胞由来の細胞を、中腸内胚葉細胞系統に特徴的なマ
ーカー、例えばＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２を発現している細胞に分化するための、ｉｎ ｖ
ｉｔｒｏ細胞培養法を提供する。本発明は更に、ｉｎ ｖｉｔｒｏ細胞培養法によって、
かかる細胞を単層で得て、維持するための方法を提供する。特定の実施形態では、本発明
は、レチノイン酸及びＢＭＰ４又はＢＭＰ２又はそれらの類似体を含めると、中腸内胚葉
細胞への分化を促進するために、分化している細胞中でＣＤＸ２を誘導し、ＦＯＸＡ２タ
ンパク質の発現を維持するように作用するという発見に基づいている。ＣＤＸ２は、胚体
内胚葉（ステージ１）又は原始腸管（ステージ２）においてはタンパク質レベルで発現し
ていない。したがって、本発明は、多能性幹細胞を分化し、ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２を発
現する中腸内胚葉を発生させる方法を提供する。

【0020】

定義
特に断らない限り、本明細書において使用される全ての技術用語及び科学用語は、本発
明が属する技術分野における当業者によって一般的に理解されているものと同じ意味を有
する。本明細書に述べられるものと同様又は同等の任意の方法及び材料を本発明の試験を
実施するために使用することができるが、本明細書では好ましい材料及び方法について述
べる。本発明を説明及び特許請求する上で以下の用語が用いられる。

【0021】

幹細胞は、単一細胞の、自己複製する能力、並びに自己複製前駆細胞、非複製前駆細胞
、及び最終分化細胞を含む子孫細胞を産生するために分化する能力の双方によって定義さ
れる、未分化細胞である。幹細胞はまた、ｉｎ ｖｉｔｒｏで複数の胚葉（内胚葉、中胚
葉及び外胚葉）から様々な細胞系統の機能細胞に分化する能力によって、並びに、移植後
に複数の胚葉組織を生じさせる能力、及び胚盤胞内への注入後に、全部ではないが実質的
にほとんどの組織に寄与する能力によっても、特徴付けられる。

【0022】

幹細胞は、その発生能に応じて、（１）全能性、（２）多分化能性、（３）複能性、（
４）少能性、及び（５）単能性に分類される。全能細胞は、全ての胚細胞型及び胚体外細
胞型を生じさせることが可能である。多能性細胞は、全ての胚細胞型を生じさせることが
可能である。複能性細胞は、細胞系統のサブセットを生じさせることが可能であるが、全
てが、特定の組織、器官、又は生理系の範囲内であるものを含む（例えば、造血幹細胞（
ＨＳＣ）は、ＨＳＣを含む子孫（自己複製）、血球に制限された少能性前駆細胞、並びに
血液の正常成分である全ての細胞型及び要素（例えば、血小板）を産生することができる
）。少能性の細胞は、複能性幹細胞よりも制限された、細胞系統のサブセットを生じさせ
ることができ、単能性の細胞は、単一の細胞系統を生じさせることができる（例えば、精
原幹細胞）。

【0023】

幹細胞はまた、それらの幹細胞を得ることができる供給源に基づいても分類される。成
体幹細胞は、全般的には、複数の分化細胞型を含む組織内に見出される、多分化能性の未
分化細胞である。成体幹細胞は、自己複製することができる。通常の状況下では、成体幹
細胞はまた、その細胞が起源とする組織の、特殊化した細胞型、また恐らくは他の組織型
を産生するように、分化することもできる。誘導された多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）は、
多能性幹細胞に変換された成熟細胞である（Ｔａｋａｈａｓｈｉ ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌ
ｌ，２００６；１２６（４）：６６３～６７６；Ｔａｋａｈａｓｈｉ ｅｔ ａｌ．，Ｃ
ｅｌｌ，２００７；１３１：１～１２）。胚幹細胞は、胚盤胞期の胚の内部細胞塊からの
、多能性細胞である。胎生幹細胞は、胎児組織又は胎膜を起源とする幹細胞である。

【0024】

胚組織は、典型的には、胚（ヒトの場合、受精から、約６週間の発達までの期間を指す
）を起源とする組織として定義される。胎児組織は、ヒトでは約６週間の発達から分娩ま
での期間を指す、胎児に由来する組織を指す。胚体外組織は、胚又は胎児に関連するが、
胚又は胎児を起源とはしない組織である。胚体外組織としては、胚体外膜（絨毛膜、羊膜
、卵黄嚢、及び尿膜）、臍帯、並びに胎盤（それ自体は、絨毛膜及び母体基底脱落膜から
形成される）が挙げられる。

【0025】

分化は、特殊化されていない（「コミットされていない」）細胞、又は比較的特殊化さ
れていない細胞が、例えば、腸管細胞又は膵臓細胞などの、特殊化細胞の特徴を獲得する
プロセスである。分化した細胞は、細胞の系統の範囲内で、より特殊化した（「コミット
された」）状態を呈している細胞である。コミットされたという用語は、分化のプロセス
に適用される場合、通常の状況下では、特定の細胞型又は細胞型のサブセットへと分化を
継続して、通常の状況下では、異なる細胞型へと分化することも、又はより未分化の細胞
型に復帰することもできない地点まで、分化経路が進行している細胞を指す。脱分化とは
、細胞が、細胞の系統の範囲内で、比較的特殊化されて（又はコミットされて）いない状
態に復帰するプロセスを指す。本明細書で使用するとき、細胞の系統は、その細胞の遺伝
性、即ち、その細胞がどの細胞に由来するか、またその細胞がどのような細胞を生じさせ
ることができるかを規定する。細胞の系統は、発達及び分化の遺伝スキームの範囲内で、
その細胞を位置付けるものである。

【0026】

広義には、前駆細胞は、それ自体よりも分化した子孫を作り出す能力を有し、かつ前駆
細胞のプールを補充する能力を更に保持する細胞である。その定義によれば、幹細胞自体
もまた、より直接的な、最終分化細胞への前駆体であるため、前駆細胞である。より狭義
には、前駆細胞は、分化経路での中間体である細胞として定義される場合が多く、即ち、
前駆細胞は、幹細胞から生じるものであり、成熟細胞型又は細胞型のサブセットを産生す
る際の中間体である。この型の前駆細胞は、全般的には、自己複製が不可能である。した
がって、このタイプの細胞が本明細書で言及される場合には、その細胞は、非複製前駆細
胞、又は中間的前駆細胞若しくは中間的前駆細胞と称される。

【0027】

本明細書で使用するとき「マーカー」とは、対象とする細胞で差異的に発現される核酸
又はポリペプチド分子である。これに関して、差異的発現とは、未分化細胞と比べて、陽
性マーカーについては増殖したレベルを意味し、陰性マーカーについては減少したレベル
を意味する。マーカー核酸又はポリペプチドの検出限界は、他の細胞と比較して対象とす
る細胞において充分に高いか又は低いことから、当該技術分野において知られる各種方法
のいずれを用いても対象とする細胞を他の細胞から識別及び区別することが可能である。

【0028】

本明細書で使用するとき、細胞は、特異的マーカーが細胞内で十分に検出されたとき、
特異的マーカー「について陽性」又は「陽性」である。同様に、細胞は、特異的マーカー
が細胞内で十分に検出されないとき、特異的マーカー「について陰性」又は「陰性」であ
る。とりわけ、蛍光活性フローサイトメトリー（「ＦＡＣＳ」）による陽性は通常２％を
超えるが、ＦＡＣＳによる陰性閾値は通常１％を下回る。

【0029】

本明細書で使用するとき、リアルタイムＰＣＲ（ＲＴ－ＰＣＲ）による陽性は、２８サ
イクル（Ｃｔｓ）未満であり、Ｔａｑｍａｎ（登録商標）Ｌｏｗ Ｄｅｎｓｉｔｙ Ａｒ
ｒａｙ（ＴＬＤＡ）を用いると、３３Ｃｔｓ未満であり、一方、Ｏｐｅｎ Ａｒｒａｙ（
登録商標）による陰性は、２８．５サイクルを超え、ＴＬＤＡによる陰性は３３．５Ｃｔ
ｓを超える。

【0030】

静的ｉｎ ｖｉｔｒｏ細胞培養において、多能性幹細胞を機能的中腸内胚葉細胞に分化
するため、分化プロセスは、連続ステージを通じて進行すると見られる場合が多い。この
とき、中腸内胚葉への分化工程は３つのステージで発生する。この段階的進行では、「ス
テージ１」は、分化プロセスの第１の工程、多能性幹細胞の、胚体内胚葉細胞に特徴的な
マーカーを発現している細胞（以下、代替的に「ステージ１細胞」と称する）への分化を
指す。「ステージ２」は、第２の工程、胚体内胚葉細胞に特徴的なマーカーを発現してい
る細胞の、原始腸管細胞に特徴的なマーカーを発現している細胞（以下、代替的に「ステ
ージ２細胞」と称する）への分化を指す。「ステージ３」は、第３の工程、腸管細胞に特
徴的なマーカーを発現している細胞の、中腸内胚葉細胞に特徴的なマーカーを発現してい
る細胞（以下、代替的に「ステージ３細胞」と称する）への分化を指す。

【0031】

しかしながら、特定集団の全ての細胞がこれらのステージを同じ速度で進行するとは限
らないことに留意されたい。結論として、ｉｎ ｖｉｔｒｏ細胞培養において、特に後期
分化ステージでは、集団に存在する細胞の大半よりも分化経路を進行していなかったり、
大半よりも進行しいていたりする細胞の存在を検出することは稀ではない。本発明を例証
する目的で、上で特定されたステージと関連した様々な細胞型の特徴が本明細書に記載さ
れる。

【0032】

本明細書で使用するとき、「胚体内胚葉細胞」は、原腸形成中、胚盤葉上層から生じ、
胃腸管及びその誘導体を形成する細胞の特徴を保有している細胞を指す。胚体内胚葉細胞
は、以下のマーカー、すなわち、ＦＯＸＡ２（肝細胞核因子３－β（「ＨＮＦ３－β」）
としても知られる）、ＧＡＴＡ４、ＳＯＸ１７、ＣＸＣＲ４、ブラキュリ、ケルベロス、
ＯＴＸ２、グースコイド、Ｃ－Ｋｉｔ、ＣＤ９９、及びＭＩＸＬ１のうちの少なくとも１
つを発現する。胚体内胚葉細胞に特徴的なマーカーには、ＣＸＣＲ４、ＦＯＸＡ２、及び
ＳＯＸ１７が挙げられる。したがって、胚体内胚葉細胞は、ＣＸＣＲ４、ＦＯＸＡ２、及
びＳＯＸ１７の発現で特徴付けられ得る。加えて、細胞がステージ１に留まることができ
る時間の長さに応じて、ＨＮＦ４αにおける増加が観察され得る。

【0033】

「原始腸管細胞」は、本明細書で使用するとき、胚体内胚葉由来の、肺、肝臓、膵臓、
胃、及び腸などの全ての内胚葉器官を生じ得る内胚葉細胞を指す。原始腸管細胞は、胚体
内胚葉細胞によって発現されたものに対するＨＮＦ４αの実質的に増加した発現で特徴付
けられ得る。

【0034】

「前腸内胚葉細胞」は、本明細書で使用するとき、食道、肺、胃、肝臓、膵臓、膀胱、
及び十二指腸の最も前方の部分を生じる内胚葉細胞を指す。前腸内胚葉細胞は、とりわけ
、ＳＯＸ２、ＰＤＸ１、ＡＬＢ、ＳＯＸ１７及びＦＯＸＡ２の発現で特徴付けられ得る。

【0035】

「中腸内胚葉細胞」は、本明細書で使用するとき、小腸を生じる内胚葉細胞を指す。中
腸内胚葉細胞は、ＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２の発現、及びＰＤＸ１の低発現（ＰＤＸ１^ＬＯ）
で特徴付けられ得る。特定のＨＯＸ遺伝子の発現により、中腸内胚葉と後腸内胚葉との差
を区別できる。例えば、ＨＯＸＣ５は、中腸内胚葉細胞に優先的に発現される。

【0036】

「後腸内胚葉細胞」は、本明細書で使用するとき、大腸を生じる内胚葉細胞を指す。後
腸内胚葉細胞は、ＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＨＯＸＡ１３及びＨＯＸＤ１３の発現で特徴付
けられ得る。

【0037】

本明細書で使用するとき、「間葉細胞」は、骨、軟骨、リンパ管、及び循環系などの結
合組織を生じる中胚葉細胞を指す。ＨＡＮＤ１及びＦＯＸＦ１の発現は、間葉細胞を決定
する。

【0038】

「患者」又は「対象」又は「宿主」という用語は、組成物、つまり医薬組成物で治療さ
れる、又は本明細書で説明される方法に従って治療される、哺乳類などの動物、好ましく
はヒトを指す。

【0039】

用語「有効量」又はその同等用語は、ヒト多能性幹細胞の、分化した細胞集団、例えば
、胚体内胚葉、前腸内胚葉、中腸内胚葉、後腸内胚葉、膵内胚葉などに促進かつ分化する
のに十分な、成長因子が挙げられるがこれらに限定されない薬剤又は化合物の量を指す。

【0040】

用語「投与する」及び「投与」は、本明細書で代替的に使用され、細胞が、治療部位に
直接的又は間接的に移植（implanted）、注入、移植（transplanted）、ないしは別の方
法で投与され得ることを意味する。細胞が半固体又は固体デバイス中で投与されるとき、
移植、特に、皮下腔、網膜、肝臓、腎臓（腎被膜）などの体内の正確な位置への外科的移
植が好適な送達手段である。液体又は流体医薬組成物は、より一般的な位置に投与しても
よい。

【0041】

本明細書及び添付の「特許請求の範囲」において使用するところの単数形「ａ」、「ａ
ｎ」及び「ｔｈｅ」は、その内容について特に明らかに断らない限り、複数の指示対象を
含むものである。したがって、例えば、「細胞（a cell）」という言及には、２つ以上の
細胞の組み合わせ、及びこれに類するものなどを含む。

【0042】

本明細書で使用するとき、量、時間の長さなどの測定可能な値に関して使用する「約」
という用語は、指定値から±２０％～±０．１％、好ましくは±２０％又は±１０％、よ
り好ましくは±５％、更により好ましくは±１％、いっそうより好ましくは±０．５％、
±０．１％の変動を包含することを意味する。このような、特定の値から０．０５％又は
０．０１％の変動は、開示される方法を実施するうえで適切なものである。

【0043】

以下の略語は、明細書及び特許請求の範囲全体で使用され得る。
ＡＢＣＧ２－ＡＴＰ結合カセット、サブファミリーＧ、メンバー２；
ＡＬＢ－アルブミン；
ＢＭＰ－骨形成タンパク質；
ＣＤＸ２－ｃａｕｄａｌ ｔｙｐｅ ｈｏｍｅｏｂｏｘ ２；
ＣＸＣＲ４－Ｃ－Ｘ－Ｃケモカイン受容体４型：
ＦＡＦ－ＢＳＡ－脂肪酸を含まないウシ血清アルブミン
ＦＧＦ－線維芽細胞増殖因子；
ＦＯＸＡ２－Ｆｏｒｋｈｅａｄ Ｂｏｘ Ａ２；
ＧＡＴＡ４－ＧＡＴＡ結合タンパク質４；
ＧＤＦ－増殖分化因子；
ＧＩＰ－グルコース依存性インスリン分泌ポリペプチド；
ＧＬＰ－１－グルカゴン様ペプチド１；
ＧＳＫ３Ｂ－グリコーゲン合成酵素キナーゼ３β；
ＨＡＮＤ１－ｈｅａｒｔ ａｎｄ ｎｅｕｒａｌ ｃｒｅｓｔ ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅ
ｓ ｅｘｐｒｅｓｓｅｄ １；
ＨＯＸ－ホメオボックス；
ｈＴＥＲＴ－ヒトテロメラーゼ逆転写酵素；
ＫＬＦ－クルッペル様転写因子；
ＬＧＲ５－ロイシンリッチリピート含有Ｇタンパク質共役型受容体５；
ＭＩＸＬ１－Ｍｉｘ Ｐａｉｒｅｄ様ホメオボックス－１；
ＯＣＴ４－オクタマー結合転写因子４；
ＯＴＸ２－ｏｒｔｈｏｄｅｎｔｉｃｌｅ ｈｏｍｅｏｂｏｘ ２；
ＰＤＸ１－ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ ａｎｄ ｄｕｏｄｅｎａｌ ｈｏｍｅｏｂｏｘ １
；
ＰＴＦ１Ａ－膵臓特異的転写因子１ａ；
ＳＯＸ－性決定領域Ｙ（ＳＲＹ）－ｂｏｘ；
ＴＲＡ１－６０－Ｔ細胞受容体α－１－６０；
ＵＴＦ１－未分化胚細胞転写因子１；
ＷＮＴ３Ａ－ｗｉｎｇｌｅｓｓ－ｔｙｐｅ ＭＭＴＶ ｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎ ｓｉ
ｔｅファミリー、メンバー３Ａ；及び
ＺＦＰ４２－ジンクフィンガータンパク質４２。

【0044】

詳細な説明
多能性幹細胞は、内胚葉、中胚葉、及び外胚葉組織の３胚葉の全ての細胞に分化する能
力を有している。使用が可能な多能性幹細胞の例示の種類としては、妊娠期間中の任意の
時期（必ずしもではないが、通常は妊娠約１０～１２週よりも前）に採取した前胚性組織
（例えば胚盤胞など）、胚性組織又は胎児組織を含む、多能性細胞の樹立株が挙げられる
。非限定的な例は、ヒト胚性幹細胞又はヒト胚生殖細胞の樹立株であり、例えば、ヒト胚
性幹細胞株Ｈ１、Ｈ７、及びＨ９（ＷｉＣｅｌｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｉｎｓｔｉｔｕｔ
ｅ，Ｍａｄｉｓｏｎ，ＷＩ，ＵＳＡ）などである。フィーダー細胞の非存在下で既に培養
された多能性幹細胞集団から採取した細胞も好適である。ＯＣＴ４、ＮＡＮＯＧ、ＳＯＸ
２、ＫＬＦ４、及びＺＦＰ４２など多数の多能性に関係する転写因子の強制発現を使用し
て、成体体細胞から誘導されるｉＰＳ、つまり再プログラム化された多能性細胞（ＡａＡ
ｎｎｕ Ｒｅｖ Ｇｅｎｏｍｉｃｓ Ｈｕｍ Ｇｅｎｅｔ ２０１１，１２：１６５～１
８５；更に、ｉＰＳ，Ｃｅｌｌ，１２６（４）：６６３～６７６も参照）も使用できる。
本発明の方法で使用されるヒト胚性幹細胞もまた、Ｔｈｏｍｓｏｎらによって記載される
ように調製され得る（米国特許第５，８４３，７８０号、Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９９８，２
８２：１１４５～１１４７；Ｃｕｒｒ Ｔｏｐ Ｄｅｖ Ｂｉｏｌ １９９８，３８：１
３３～１６５；Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ Ｕ．Ｓ．Ａ．１９９５，９２：
７８４４～７８４８）。ＢＧ０１ｖ（ＢｒｅｓａＧｅｎ，Ａｔｈｅｎｓ，Ｇａ．）などの
変異体ヒト胚性幹細胞株、又はＴａｋａｈａｓｈｉ ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ １３１：
１～１２（２００７）に開示されている細胞などのヒト成体細胞に由来する細胞を使用す
ることもできる。ある特定の実施形態では、本発明での使用に好適な多能性幹細胞は、Ｌ
ｉ ｅｔ ａｌ．（Ｃｅｌｌ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ ４：１６～１９，２００９）；Ｍａ
ｈｅｒａｌｉ ｅｔ ａｌ．（Ｃｅｌｌ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ １：５５～７０，２００
７）；Ｓｔａｄｔｆｅｌｄ ｅｔ ａｌ．（Ｃｅｌｌ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ ２：２３０
～２４０）；Ｎａｋａｇａｗａ ｅｔ ａｌ．（Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ
２６：１０１～１０６，２００８）；Ｔａｋａｈａｓｈｉ ｅｔ ａｌ．（Ｃｅｌｌ １
３１：８６１～８７２，２００７）；及び米国特許出願公開第２０１１／０１０４８０５
号に記載され得方法に従って誘導され得る。ある特定の実施形態において、多能性幹細胞
は、非胎生起源であり得る。これらの参考文献、特許、及び特許出願の全ては、とりわけ
それらが多能性細胞の単離、培養、増殖、及び分化に関するため、参照によりそれら全体
が本明細書に組み込まれる。

【0045】

多能性幹細胞は、様々なステージを通じて分化し、各々が特定のマーカーの存在又は非
存在で特徴付けられ得る。これらのステージへの細胞の分化は、培養培地に添加されるあ
る特定の因子の存在又は欠失を含む、特異的培養条件によって達成される。一般に、この
分化は、本明細書でステージ１と称する、多能性幹細胞の胚体内胚葉細胞への分化を含み
得る。次に、これらの胚体内胚葉細胞は、本明細書でステージ２と称する、原始腸管細胞
へと更に分化し得る。続いて、原始腸管細胞は、本明細書でステージ３と称する、中腸内
胚葉細胞へと分化し得る。

【0046】

多能性幹細胞の、中腸内胚葉細胞に特徴的なマーカーを発現している細胞への分化
多能性幹細胞の特性は当業者には周知であり、多能性幹細胞の更なる特性が引き続き同
定されている。多能性幹細胞のマーカーとして、例えば、ＡＢＣＧ２、Ｃｒｉｐｔｏ、Ｆ
ＯＸＤ３、ＣＯＮＮＥＸＩＮ４３、ＣＯＮＮＥＸＩＮ４５、ＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ＮＡＮ
ＯＧ、ｈＴＥＲＴ、ＵＴＦ１、ＺＦＰ４２、ＳＳＥＡ－３、ＳＳＥＡ－４、ＴＲＡ－１－
６０、及びＴＲＡ－１－８１のうち１つ又は２つ以上の発現が挙げられる。

【0047】

例示的な多能性幹細胞として、ヒト胚性幹細胞株Ｈ１（ＮＩＨコード：ＷＡ０１）、ヒ
ト胚性幹細胞株Ｈ９（ＮＩＨコード：ＷＡ０９）、ヒト胚性幹細胞株Ｈ７（ＮＩＨコード
：ＷＡ０７）、及びヒト胚性幹細胞株ＳＡ００２（Ｃｅｌｌａｒｔｉｓ，Ｓｗｅｄｅｎ）
が挙げられる。また、多能性細胞に特徴的な以下のマーカー、すなわち、ＡＢＣＧ２、Ｃ
ｒｉｐｔｏ、ＣＤ９、ＦＯＸＤ３、ＣＯＮＮＥＸＩＮ４３、ＣＯＮＮＥＸＩＮ４５、ＯＣ
Ｔ４、ＳＯＸ２、ＮＡＮＯＧ、ｈＴＥＲＴ、ＵＴＦ１、ＺＦＰ４２、ＳＳＥＡ－３、ＳＳ
ＥＡ－４、ＴＲＡ－１－６０、及びＴＲＡ－１－８１のうちの少なくとも１つを発現する
細胞も好適である。

【0048】

胚体内胚葉系統に特徴的なこれらのマーカーのうちの少なくとも１つを発現する細胞も
また、本発明における使用に適している。本発明の一実施形態では、胚体内胚葉系統に特
徴的なマーカーを発現している細胞は、原始線条前駆体細胞である。別の実施形態では、
胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現している細胞は、中内胚葉細胞である。別の実
施形態では、胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現している細胞は、胚体内胚葉細胞
である。

【0049】

中腸内胚葉系統に特徴的なこれらのマーカーのうちの少なくとも１つを発現する細胞も
また、本発明における使用に適している。本発明の一実施形態では、中腸内胚葉系統に特
徴的なマーカーを発現している細胞は、細胞がＦＯＸＡ２及びＣＤＸ２を発現している中
腸内胚葉細胞である。いくつかの実施形態では、細胞は、ＳＯＸ２、ＡＬＢ、ＰＴＦ１Ａ
、ＨＯＸＡ１３又はＬＧＲ５を発現していない。実施形態では、中腸内胚葉系統に特徴的
なマーカーを発現している細胞は、細胞がＦＯＸＡ２、ＣＤＸ２、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、
ＫＬＦ５及びＨＯＸＣ５の各々を発現している中腸内胚葉細胞である。実施形態では、中
腸内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現している細胞は、細胞がＳＯＸ２、ＡＬＢ、ＰＴ
Ｆ１Ａ、ＨＯＸＡ１３及びＬＧＲ５をいずれも発現していない中腸内胚葉細胞である。

【0050】

本発明は、細胞培養条件及び培地を使用する、多能性幹細胞の、中腸内胚葉細胞への段
階的な分化誘導を提供する。本発明の実施形態では、中腸内胚葉細胞に特徴的なマーカー
を発現している細胞に到達するため、多能性幹細胞、例えば胚性幹細胞及び人工多能性細
胞から始めるプロトコールが採用される。このプロトコールは、以下のステージを含む。
ステージ１：細胞培養株から得られる胚性幹細胞などの多能性幹細胞を、胚体内胚葉細
胞に特徴的なマーカーを発現している細胞への分化を誘導するように適切な因子で処理す
る。
ステージ２：ステージ１から得た細胞を、原始腸管細胞に特徴的なマーカーを発現して
いる細胞への更なる分化を誘導するように適切な因子で処理する。
ステージ３：ステージ２から得た細胞を、中腸内胚葉細胞に特徴的なマーカーを発現し
ている細胞への更なる分化を誘導するように適切な因子で処理する。

【0051】

培養又は単離された細胞中のタンパク質及び核酸マーカーの発現を評価する方法は、当
技術分野にて標準的である。これらの方法としては、ＲＴ－ＰＣＲ、ノーザンブロット、
ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション（例えば、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ
ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ（Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．，ｅｄｓ
．２００１ ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ）参照）、及びイムノアッセイ（例えば、材料切片の
免疫組織化学的分析）、ウェスタンブロット、並びに無傷細胞内でアクセス可能なマーカ
ーの場合、ＦＡＣＳ（例えば、Ｈａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｌａｎｅ，Ｕｓｉｎｇ Ａｎｔｉ
ｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ：Ｃｏｌｄ
Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ（１９９８）参照）
が挙げられる。分化の効率は、処理した細胞集団を、対象とする細胞型に特徴的なマーカ
ーを発現している細胞によって発現されるタンパク質マーカーを特異的に認識する作用剤
（例えば、抗体など）に暴露することにより測定することができる。

【0052】

１．多能性幹細胞の、胚体内胚葉細胞に特徴的なマーカーを発現している細胞への分化
多能性幹細胞は、当技術分野において既知の任意の方法により、又は本発明で提案され
る任意の好適な方法により、胚体内胚葉細胞に特徴的なマーカーを発現している細胞に分
化され得る。本発明の一実施形態では、多能性幹細胞を、ＧＤＦ８及びＧＳＫ３β阻害剤
などの因子（例えば、その全体が参照することにより本明細書に組み込まれる、米国特許
出願公開第２０１０／００１５７１１号に開示される、環状アニリン－ピリジノトリアジ
ン化合物）を添加したＭＣＤＢ－１３１培地（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｃ
ａｒｌｓｂａｄ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ）などの培地で処理し、胚体内胚葉細胞に特徴的
なマーカーを発現している細胞への分化を誘導する。スタウロスポリンなど広範なＧＳＫ
３β阻害剤、好ましいＧＳＫ３β阻害剤（本明細書で「ＭＣＸ化合物」と称される、１４
－プロパ－２－エン－１－イル－３，５，７，１４，１７，２３，２７－ヘプタアザテト
ラシクロ［１９．３．１．１～２，６～．１～８，１２～］ヘプタコサ－１（２５），２
（２７），３，５，８（２６），９，１１，２１，２３－ノナエン－１６－オン）が存在
する。処理は、多能性幹細胞を、約１０ｎｇ／ｍＬ～１０００ｎｇ／ｍＬ、好ましくは５
０ｎｇ／ｍＬ～約１５０ｎｇ／ｍＬ、代替的に約７５ｎｇ／ｍＬ～約１２５ｎｇ／ｍＬ、
代替的に約１００ｎｇ／ｍＬのＧＤＦ８を添加した培地と接触させることを含み得る。こ
の処理はまた、細胞を、約０．１～１０μＭ、好ましくは０．１～５μＭ、代替的に約０
．５～約２．５μＭ、好ましくは約１．５μＭ又は約１．０μＭのＭＣＸ化合物と接触さ
せることも含み得る。その他培地の構成成分として、約２．７ｇ／１０００ｍＬ～３．６
ｇ／１０００ｍＬ、好ましくは２．７ｇ／１０００ｍＬの重炭酸ナトリウム；約０．１％
～２．０％、好ましくは約０．５％のＦＡＦ－ＢＳＡ；１：１００（「１×濃度」）に希
釈したＧｌｕｔａＭＡＸ（商標）（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｃｏｒｐｏｒ
ａｔｉｏｎ，Ｃａｒｌｓｂａｄ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ）；及び、１０ｍＭ濃度のＤ－グ
ルコースを得るための、約２ｍＭ～２０ｍＭの範囲の濃度、好ましくは４．５ｍＭのＤ－
グルコースを含んでよい。

【0053】

多能性細胞は、胚体内胚葉細胞への分化を促進するため、約２～５日間、好ましくは３
～４日間培養されてよい。一実施形態では、多能性細胞は、有効量のＴＧＦβシグナル伝
達分子及び／又はＧＳＫ３β阻害剤の存在下、例えば、有効量のＧＤＦ８及びＭＣＸ化合
物の存在下で１日培養され、続いてＧＤＦ８及びより低い濃度のＭＣＸ化合物の存在下で
１日培養され、続いてＧＤＦ８の存在下、ＭＣＸ化合物の非存在下で１日培養される。具
体的には、細胞は、ＧＤＦ８及び約１．５μＭのＭＣＸ化合物の存在下で１日培養され、
続いてＧＤＦ８及び約０．１μＭのＭＣＸ化合物の存在下で１日培養され、続いてＧＤＦ
８の存在下、ＭＣＸ化合物の非存在下で１日培養されてよい。代替的な実施形態では、細
胞は、ＧＤＦ８及び約１．５μＭのＭＣＸ化合物の存在下で１日培養され、続いてＧＤＦ
８及び約０．１μＭのＭＣＸ化合物の存在下で１日培養されてよい。

【0054】

胚体内胚葉細胞に特徴的なマーカーを発現している細胞の発生は、以下の特定のプロト
コールの前後に、マーカーの存在に関して試験することにより決定することができる。多
能性幹細胞は、一般にかかるマーカーを発現しない。したがって、多能性細胞の分化は、
細胞が胚体内胚葉細胞に特徴的なマーカー、例えばＣＸＣＲ４、ＦＯＸＡ２及びＳＯＸ１
７を発現し始めた際に検出され得る。実施形態では、胚体内胚葉細胞に特徴的なマーカー
を発現している細胞は、胚体内胚葉細胞である。

【0055】

２．胚体内胚葉細胞に特徴的なマーカーを発現している細胞の、原始腸管細胞に特徴的
なマーカーを発現している細胞への分化
胚体内胚葉細胞に特徴的なマーカーを発現している細胞は、原始腸管細胞に特徴的なマ
ーカーを発現している細胞に更に分化され得る。一実施形態では、原始腸管細胞に特徴的
なマーカーを発現している細胞の形成は、胚体内胚葉細胞に特徴的なマーカーを発現して
いる細胞を、ＦＧＦ７を含有するＭＣＤＢ－１３１などの培地で培養し、これらの細胞を
分化させることを含む。例えば、培養培地は、約１０ｎｇ／ｍＬ～１００ｎｇ／ｍＬ、好
ましくは約２５ｎｇ／ｍＬ～約７５ｎｇ／ｍＬ、代替的に約３０ｎｇ／ｍＬ～約６０ｎｇ
／ｍＬ、代替的に約５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７を含んでよい。細胞は、これらの条件下で
約２～３日間、好ましくは約２日間培養され得る。

【0056】

別の実施形態では、原始腸管細胞に特徴的なマーカーを発現している細胞への分化は、
胚体内胚葉細胞に特徴的なマーカーを発現している細胞を、ＦＧＦ７及びアスコルビン酸
（ビタミンＣ）と共に培養することを含む。ＭＣＤＢ－１３１などの培地は、約０．１ｍ
Ｍ～約１．０ｍＭのアスコルビン酸、好ましくは約０．１ｍＭ～約１．０ｍＭ、代替的に
は約０．２ｍＭ～約０．４ｍＭ、代替的には約０．２５ｍＭのアスコルビン酸を含んでよ
い。また培地は、約１０ｎｇ／ｍＬ～１００ｎｇ／ｍＬ、好ましくは約１０ｎｇ／ｍＬ～
約５０ｎｇ／ｍＬ、代替的に約１５ｎｇ／ｍＬ～約３０ｎｇ／ｍＬ、代替的に約５０ｎｇ
／ｍＬ、又は約２５ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７も含んでよい。例えば、培地は、約０．２５ｍ
Ｍのアスコルビン酸及び約５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７を含んでよい。その他培地の構成成
分として、約２．７ｇ／１０００ｍＬ～３．６ｇ／１０００ｍＬ、好ましくは２．７ｇ／
１０００ｍＬの重炭酸ナトリウム；約０．１％～２．０％、好ましくは約０．５％のＦＡ
Ｆ－ＢＳＡ；１：１００（「１×濃度」）に希釈したＧｌｕｔａＭＡＸ（商標）；及び、
１０ｍＭ濃度のＤ－グルコースを得るための、約２ｍＭ～２０ｍＭの範囲の濃度、好まし
くは４．５ｍＭのＤ－グルコースを含んでよい。一実施形態では、胚体内胚葉細胞に特徴
的なマーカーを発現している細胞は、ＦＧＦ７及びアスコルビン酸で２日間処理される。
胚体内胚葉細胞の分化は、細胞が原始腸管細胞に特徴的なマーカーの発現、例えばＦＯＸ
Ａ２の発現及びＨＮＦ４αの発現増加を始めた際に検出され得る。実施形態では、原始腸
管細胞に特徴的なマーカーを発現している細胞は、原始腸管である。

【0057】

３．原始腸管細胞に特徴的なマーカーを発現している細胞の、中腸内胚葉細胞に特徴的
なマーカーを発現している細胞への分化
原始腸管細胞に特徴的なマーカーを発現している細胞を、中腸内胚葉細胞に特徴的なマ
ーカーを発現している細胞へと更に分化できる。一実施形態では、原始腸管細胞を、レチ
ノイン酸及びＢＭＰ４又はＢＭＰ２を添加したＢＬＡＲ培地（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌ
ｏｇｉｅｓ，Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ｃａｒｌｓｂａｄ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ）など
の培地中で培養することにより、中腸内胚葉細胞に更に分化させる。好ましい実施形態で
は、培地に、約０．５μＭ～約５μＭのレチノイン酸、好ましくは約１μＭと、約１０ｎ
ｇ／ｍＬ～約１００ｎｇ／ｍＬのＢＭＰ４又はＢＭＰ２、好ましくは約５０ｎｇ／ｍＬの
ＢＭＰ４又はＢＭＰ２を添加する。培地へのその他の添加成分として、約０．１％～２．
０％、好ましくは約０．５％のＦＡＦ－ＢＳＡ；ＧｌｕｔａＭＡＸ（商標）；及び、１０
ｍＭ濃度のＤ－グルコースを得るための、約２ｍＭ～２０ｍＭの範囲の濃度、好ましくは
４．５ｍＭのＤ－グルコースを含んでよい。一実施形態では、原始腸管細胞に特徴的なマ
ーカーを発現している細胞は、ＢＭＰ４又はＢＭＰ２及びレチノイン酸で、３～５日間、
好ましくは５日間処理される。培地のｐＨは、５日間のステージ３コンディショニング期
間中、６．８～７．２の範囲であってよい（７．３以上であるＳ２Ｄ２での通常ｐＨと比
べて）。

【0058】

本発明は、中腸内胚葉細胞を発生させるために選択された培地中でヒト多能性幹細胞を
培養することによる、中腸内胚葉細胞集団の産生方法に関する。実施形態では、この方法
は、ヒト多能性幹細胞の、段階的プロセスでの中腸内胚葉細胞への分化を誘導する。実施
形態では、中腸内胚葉細胞集団が産生される。いくつかの実施形態では、実質的に中腸内
胚葉細胞集団が産生される。実施形態では、中腸内胚葉細胞は、平面培養において単層を
形成し、その単層を維持する。実施形態では、中腸内胚葉細胞は、培地中で単層として安
定である。本明細書で、単層として安定、又は単層として安定のままである細胞とは、培
養液中でスフェロイドを形成しない単層細胞を指す。

【0059】

実施形態では、分化細胞の５０％超が、中腸内胚葉に特徴的なマーカーを発現する。実
施形態では、分化細胞の６０％超、７０％超、８０％超、９０％超、又は９５％超が、中
腸内胚葉に特徴的なマーカーを発現する。実施形態では、中腸内胚葉に特徴的なマーカー
を発現する分化細胞は、中腸内胚葉細胞である。実施形態では、中腸内胚葉細胞は、ＦＡ
ＣＳ分析及びｑＰＣＲによって測定するとき、ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２を発現する。いく
つかの実施形態では、中腸内胚葉細胞は、ＩＦ分析及びｑＰＣＲによって測定するとき、
ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５及びＨＯＸＣ５から選択される転写因子を発現する。実施
形態では、中腸内胚葉細胞は、ＩＦ分析及びｑＰＣＲによって測定するとき、ＳＯＸ２、
ＡＬＢ、ＰＴＦ１Ａ、並びにｑＰＣＲによって測定するとき、ＨＯＸＡ１３及びＬＧＲ５
から選択される転写因子を発現しない。

【0060】

本発明の更なる実施形態は、培養液中の胚体内胚葉細胞の原始腸管細胞への分化を誘導
することを含む、中腸内胚葉細胞を産生する方法である。実施形態では、胚体内胚葉細胞
は、アスコルビン酸及びＦＧＦ７を含む培地中で培養される。更なる実施形態では、原始
腸管細胞は、レチノイン酸及びＢＭＰ２又はＢＭＰ４を含む培地中で培養される。原始腸
管細胞は、中腸内胚葉細胞に分化する。いくつかの実施形態では、原始腸管細胞は、酸性
条件下（酸性培地）で中腸内胚葉細胞に分化する。特定の実施形態では、酸性条件とはＢ
ＬＡＲ培地中での培養である。酸性培地のｐＨは、原始腸管細胞から中腸内胚葉細胞への
５日間の分化コンディショニング期間中、６．８～７．２の範囲であってよい（７．３以
上であるＳ２Ｄ２での通常ｐＨと比べて）。実施形態では、中腸内胚葉細胞は、培地中で
単層を形成し、その単層を維持する。

【0061】

本明細書に記載される実施形態のそれぞれにおいて、ヒト多能性幹細胞は、ｈＥＳＣ又
はｉＰＳ細胞である。上記かつ本明細書に記載される実施形態のそれぞれにおいて、中腸
内胚葉細胞は、ＦＡＣＳ分析及びｑＰＣＲによって測定するとき、ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ
２を発現する。全ての実施形態では、中腸内胚葉細胞は、ＩＦ分析及びｑＰＣＲによって
測定するとき、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５及びＨＯＸＣ５から選択される転写因子を
発現する。上記かつ本明細書に記載される実施形態では、中腸内胚葉細胞は、ＩＦ分析及
びｑＰＣＲによって測定するとき、ＳＯＸ２、ＡＬＢ、ＰＴＦ１Ａ、並びにｑＰＣＲによ
って測定するとき、ＨＯＸＡ１３及びＬＧＲ５から選択される転写因子を発現しない。上
記かつ本明細書に記載される実施形態では、中腸内胚葉細胞は、ＩＦ分析及びｑＰＣＲに
よって、ＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５及びＨＯＸＣ５を発現す
る。実施形態のそれぞれにおいて、中腸内胚葉細胞は、ＩＦ分析及びｑＰＣＲによって測
定するとき、ＳＯＸ２、ＡＬＢ、ＰＴＦ１Ａを、並びにｑＰＣＲによって測定するとき、
ＨＯＸＡ１３及びＬＧＲ５を発現しない。

【0062】

上記かつ本明細書に記載される分化プロトコールの結果として、特定の培地成分及び培
養条件、特に、ＢＬＡＲ培地中での培養などの酸性培養条件を用いて、中腸内胚葉細胞の
マーカーを発現している培養細胞が産生され、ｑＰＣＲによって測定するとき、この細胞
は、中胚葉／間葉細胞系統のマーカーであるＨＡＮＤ１の発現を欠いている。多能性幹細
胞を中腸／後腸内胚葉系統に誘導するための分化プロトコールを、例えば原始腸管細胞ス
テージ２ではなく胚体内胚葉ステージ１において幹細胞を誘導するように変更すると、ｑ
ＰＣＲによって測定するときＨＡＮＤ１を発現している、内胚葉－間葉ＣＤＸ２＋中腸／
後腸細胞の混合集団が得られる。

【0063】

特定の実施形態では、中腸内胚葉細胞集団は、実質的に中腸内胚葉細胞である。いくつ
かの実施形態では、中腸内胚葉細胞の集団は、７０％超の中腸内胚葉細胞、好ましくは８
０％超、９０％超、及び９５％超の中腸内胚葉細胞を含む。いくつかの実施形態では、中
腸内胚葉細胞の集団は、２０％未満、好ましくは１５％未満、より好ましくは１０％未満
、５％未満、２％未満、１％未満、０．５％未満の間葉細胞を含む。実施形態では、中腸
内胚葉細胞は、ＨＡＮＤ１の発現を欠いている。

【0064】

分化した中腸内胚葉細胞の使用
本発明の別の実施形態では、分化した中腸内胚葉細胞を単独で、又は分化した、つまり
成熟した内分泌細胞、例えば腸内分泌細胞と組み合わせて、糖尿病に罹っている、又は糖
尿病発症のリスクがある患者の治療に使用できる。かかる実施形態では、分化した中腸内
胚葉細胞又はそれらの混合物を、糖尿病、例えば１型又は２型糖尿病の患者に投与しても
よい。実施形態では、中腸内胚葉細胞は、腸内分泌細胞に分化して成熟する。実施形態で
は、中腸内胚葉細胞は、腸内分泌細胞に分化して成熟し、腸内分泌細胞はインクレチン型
ホルモンを発現又は分泌する。実施形態では、インクレチンホルモンとして、ＧＬＰ１及
びＧＩＰが挙げられる。細胞の投与は、体内への移植又は注入、特に皮下腔、網膜、肝臓
、腎臓などへの移植によるものであってよい。

【0065】

上記本発明のいくつかの実施形態では、中腸内胚葉細胞の分化がｉｎ ｖｉｔｒｏで誘
導される。他の実施形態では、中腸内胚葉細胞は、ｉｎ ｖｉｖｏで更に分化し成熟する
。別の実施形態は、ｉｎ ｖｉｖｏで腸内分泌細胞に、又はｉｎ ｖｉｖｏで腸内分泌細
胞の混合物に更に分化する、中腸内胚葉細胞に関する。かかる腸内分泌細胞は、インクレ
チンホルモンを発現又は分泌する。実施形態では、腸内分泌細胞が分泌するインクレチン
ホルモンは、ＧＬＰ１及びＧＩＰである。

【0066】

更なる実施形態では、中腸内胚葉細胞は、中腸内胚葉細胞型の、最初に腸内分泌前駆細
胞へ、次にインクレチンを発現又は分泌する腸内分泌細胞へのｉｎ ｖｉｔｒｏ分化を高
い効率で促進する小分子を同定するための出発物質として働く。

【0067】

細胞及び細胞集団及び本明細書に記載されるものなどの混合物をマイクロ又はマクロ封
入化した後、哺乳類の宿主に移植してもよい。封入細胞又は細胞単独を、皮下又は体内の
いずれかの場所に移植（投与）することができ、それによって細胞は、ｉｎ ｖｉｖｏで
血管形成され、分化した成熟することができる。

【実施例0068】

本発明は、以下の非限定的な実施例を考察することによって更に理解され得る。

【0069】

（実施例１）
ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２が共存／共発現している中腸内胚葉細胞集団の産生方法
以下の実施例は、ヒト胚性幹細胞（「ｈＥＳＣ」）から中腸内胚葉細胞を発生させるた
めの分化誘導法について記載する。「中腸内胚葉」は、マウスの発生中の胎生期約８．５
日（「Ｅ８．５」）、又は、ヒト胚発生中の約３～４週の時点で存在するＣＤＸ２陽性か
つＦＯＸＡ２陽性の内胚葉細胞である、対応するｉｎ ｖｉｖｏ又はｉｎ ｓｉｔｕ細胞
型タイプを指す。

【0070】

材料及び方法
細胞培養：ＥＺ８培地（カタログ＃Ａ１５１６９０１ Ｇｉｂｃｏ，Ｔｈｅｒｍｏ Ｆ
ｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）で培養した、継代数２８のヒト胚性幹細胞株Ｈ１細
胞（「Ｈ１－ｈＥＳＣ」）（ＷＡ０１細胞、ＷｉＣｅｌｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｉｎｓｔ
ｉｔｕｔｅ，Ｍａｄｉｓｏｎ，Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ）を、０．０９４×１０^６個／ｃｍ^２
の単一細胞として、１：３０希釈のＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）（Ｃｏｒｎｉｎｇ Ｉｎｃ
ｏｒｐｏｒａｔｅｄ，Ｃｏｒｎｉｎｇ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、カタログ＃３５６２３１）を
コーティングしたディッシュで、以下を含むダルベッコ変性イーグル培地栄養素混合液Ｆ
－１２（「ＤＭＥＭ－Ｆ１２」）（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｃｏｒｐｏｒ
ａｔｉｏｎ，Ｃａｒｌｓｂａｄ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ、カタログ番号１１３３０－０３
２）中に播種した。

【0071】

【表1】

【0072】

播種から４８時間後、培養物を不完全ＰＢＳ（マグネシウム又はカルシウムを含まない
リン酸緩衝生理食塩水）（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｃａｒｌｓｂａｄ，Ｃ
ａｌｉｆｏｒｎｉａ、カタログ番号１４１９０）で洗浄した。Ｒｏｃｋ阻害剤Ｙ－２７６
３２（Ｙ化合物）は、培養の最初の２４時間のみ使用した。

【0073】

分化：以下のプロトコールを用いて培養物を分化させた。プロトコールのステージ１～
３の間、培養物を平面付着培養上で維持した。ただし、その全体が参照することにより本
明細書に組み込まれる米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号などの他のもので
は、懸濁培養を用いる分化について記載されており、本明細書に記載されるプロトコール
を変更し、大規模製造の可能性をもたらす懸濁で実施することができる。以下の表記であ
るＳ＃Ｄ＃は、ステージ１～３の間の実際の時点を示す。例えば、Ｓ１Ｄ３は、１ステー
ジの３日目である。簡潔に言えば、各ステージは、胚体内胚葉（ステージ１）、原始腸管
（ステージ２）、及び中腸内胚葉（ステージ３）への分化と定義する。

【0074】

ａ．ステージ１（３日間）：細胞を、以下のステージ１培地で１日間培養した。

【0075】

【表2】

【0076】

続いて翌日は、細胞を以下の培地で培養した。

【0077】

【表3】

【0078】

続いて翌日は、細胞をＭＣＸ化合物を含まない２日目と同じ培地中で培養した。

【0079】

ｂ．ステージ２（２日間）：細胞を以下の培地で２日間処理した。

【0080】

【表4】

【0081】

ｃ．ステージ３（５日間）：細胞をＢＬＡＲ００１特注培地で５日間処理した。

【0082】

【表5】

【0083】

図１Ａ～４Ｂ（ＢＭＰ４）、図５Ａ～７（ＢＭＰ２）に示されるように、ＢＭＰ４又は
ＢＭＰ２のいずれかを本発明の方法のステージ３の間に用いて、ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２
タンパク質が共存している単層の中腸内胚葉細胞を実現できる。

【0084】

【表6】

【0085】

分化細胞の定量：共局在化して存在しているタンパク質の定量には、Ｓ３Ｄ５細胞を回
収し、ＦＡＣＳにより分析した。ＦＡＣＳ染色は、表ＩＩに記載される抗体を用いて、そ
の全体が参照することにより本明細書に組み込まれるＮａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏ
ｌｏｇｙ，２０１４（３２）１１，１１２１～１１３３に記載されるように実施した。簡
潔に言うと、分化細胞をＴｒｙｐＬＥ（商標）Ｅｘｐｒｅｓｓ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏ
ｌｏｇｉｅｓ，Ｃａｒｌｓｂａｄ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ、カタログ番号１２６０４）中
で５～１０分間３７℃でインキュベートし、単一細胞懸濁液へと放出した後、それらを０
．２％ ＢＳＡを含有するＰＢＳの染色緩衝液（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｓａｎ
Ｊｏｓｅ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ、カタログ番号５５４６５７）で２回洗浄した。細胞
内抗体染色は、ＬＩＶＥ／ＤＥＡＤ紫色蛍光反応染料（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉ
ｅｓ，Ｃａｒｌｓｂａｄ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ、カタログ番号Ｌ３４９５５）を４℃で
３０分間用いて、続いて冷ＰＢＳで１回洗浄することによって達成した。細胞の固定は、
３００μＬのＣｙｔｏｆｉｘ／Ｃｙｔｏｐｅｒｍ緩衝液（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ
，Ｓａｎ Ｊｏｓｅ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ、カタログ番号５５４７２３）と、続いてＰ
ｅｒｍ／Ｗａｓｈ緩衝液（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｓａｎ Ｊｏｓｅ，Ｃａｌｉ
ｆｏｒｎｉａ、カタログ番号５５４７２２）で２回洗浄することにより行った。続いて、
細胞を適切な抗体と共に４℃で３０分間（非結合抗体）又は１時間（結合抗体）インキュ
ベートした後、２回洗浄し、その後、獲得される事象を少なくとも３０，０００にしてＢ
Ｄ ＦＡＣＳ Ｄｉｖａソフトウェアを用い、ＢＤ ＦＡＣＳ Ｃａｎｔｏ ＩＩで分析
した。ＦＡＣＳ分析中、非生細胞は除外し、ゲーティングはアイソタイプ抗体（「ＩｇＧ
」）を用いて決定した。ＩｇＧ ＦＡＣＳデータは、示される各ＦＡＣＳ実験で上側の図
として示す。抗体の特異性は、Ｃａｃｏ－２細胞などの陽性対照、又はＳ１Ｄ３胚体内胚
葉（「ＤＥ」）細胞などの陰性対照を用いて検査した。

【0086】

【表7】

【0087】

様々なステージにおけるタンパク質の共局在化の定量には、Ｃａｃｏ－２、Ｓ２Ｄ２、
Ｓ３Ｄ２及びＳ３Ｄ５細胞を単層として回収し、免疫蛍光法（「ＩＦ」）により分析した
。ＩＦ像で見られる形態は、付着培養の単層の細胞を掻き取る方法が原因であることに留
意されたい。Ｈ１－ｈＥＳＣ由来細胞を、表ＩＩＩに記載される抗体を用いて、Ｎａｔｕ
ｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２０１４（３２）１１，１１２１～１１３３に記載
されるように調製し、染色した。凍結切片作製のため、細胞をＰＢＳで洗浄した後、４℃
の４％ＰＦＡ（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，Ｍｉｓｓｏｕｒｉ、カ
タログ番号１５８１２７）中で一晩固定した。固定後、４％ＰＦＡを除去し、細胞をＰＢ
Ｓで２回洗浄して、４℃の３０％スクロース溶液（Ａｍｒｅｓｃｏ，Ｓｏｌｏｎ，Ｏｈｉ
ｏ、カタログ番号０３３５）中で一晩インキュベートした。これらのサンプルを試料は、
ＯＣＴ溶液（Ｓａｋｕｒａ Ｆｉｎｅｔｅｋ ＵＳＡ Ｉｎｃ．，Ｔｏｒｒａｎｃｅ，Ｃ
ａｌｉｆｏｒｎｉａ、カタログ番号４５８３）中で凍結保存し、５μｍの切片を、Ｓｕｐ
ｅｒｆｒｏｓｔ ｐｌｕｓスライド（ＶＷＲ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ，ＬＬＣ，Ｒ
ａｄｎｏｒ，ＰＡ、カタログ番号４８３１１～７０３）に置いた。ＩＦ染色には、一次抗
体を適切に希釈して４℃で一晩加え、一方二次抗体は室温で３０分間加えた後に、ＰＢＳ
で洗浄し、ＤＡＰＩを含むＶｅｃｔａｓｔａｉｎ封入試薬（Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａ
ｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｃ．，Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ、カタログ番号
Ｈ－１２００）を加えた。Ｎｉｋｏｎ Ｔｉ蛍光顕微鏡（Ｎｉｋｏｎ Ｉｎｓｔｒｕｍｅ
ｎｔｓ，Ｉｎｃ．，Ｍｅｌｖｉｌｌｅ，ＮＹ）を用いて切片を可視化した。

【0088】

【表8】

【0089】

様々なステージにおける遺伝子発現の定量には、Ｃａｃｏ－２、Ｈ１－ｈＥＳＣ、Ｓ１
Ｄ３、Ｓ２Ｄ２、Ｓ３Ｄ２及びＳ３Ｄ５細胞を、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏ
ｇｙ，２０１４（３２）１１，１１２１～１１３３に記載されるように回収した。簡潔に
言えば、遺伝子発現を、特注のＴａｑｍａｎ（登録商標）アレイ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉ
ｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｆｏｓｔｅｒ Ｃｉｔｙ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ）を用いて細胞内で
評価するものであるが、Ｏｐｅｎ Ａｒｒａｙ（登録商標）（ＯＡ）は、ＣＤＸ２、ＦＯ
ＸＡ２、ＳＯＸ２、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＡＬＢ、ＰＴＦ１Ａに使用し、Ｔａｑｍａｎ（
登録商標）低密度アレイ（ＴＬＤＡ）は、ＫＬＦ５、ＨＯＸＣ５、及びＬＧＲ５に使用し
、ハウスキーピング遺伝子であるＧＡＰＤＨは両方で使用した。配列検出用ソフトウェア
（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｆｏｓｔｅｒ Ｃｉｔｙ，Ｃａｌｉｆｏｒｎ
ｉａ）を用いてデータを解析し、ΔΔＣｔ法を用いて、未分化Ｈ１－ｈＥＳＣに対してハ
ウスキーピング遺伝子としてのＧＡＰＤＨを用いて補正した。プライマーの詳細は、表Ｉ
Ｖに示す。

【0090】

【表9】

【0091】

結果
各ステージで添加された重要な培地成分、成長因子及び小分子、並びに、中腸内胚葉細
胞の分化の主要なステージ特異的マーカー（ＦＯＸＡ２、ＣＤＸ２、ＫＬＦ５、ＳＯＸ９
、及びＰＤＸ１^ＬＯ）を含む、分化方法の概要を図１Ａに示す。Ｓ２Ｄ２と記される中性
ｐＨ（７．３５±０．０４）と比べて、細胞をステージ３全体の間に、ＢＬＡＲ培地中で
、ＢＬＡＲ培地中の重炭酸ナトリウム濃度を低下させてわずかに酸性条件にしたものに曝
した（ｐＨ；Ｓ３Ｄ１、６．９８±０．０５；Ｓ３Ｄ２、７．０２±０．０４；Ｓ３Ｄ５
、７．１８±０．０３）（図１Ｂ）。ステージ３の５日間の間、培養液のｐＨは約６．８
～７．２の範囲であってよい。図１Ｃは、Ｓ３Ｄ５単層（左）及びヒト結腸腺癌上皮細胞
株（「Ｃａｃｏ－２」）（右）（分化の特徴の基準として使用した）の代表的な位相差画
像を示す。Ｓ３Ｄ５における均一な形態が観察された。Ｎｕｃｌｅｏｃｏｕｎｔｅｒ（登
録商標）ＮＣ－１００（Ｃｈｅｍｏｍｅｔｅｃ（Ａｌｌｅｒｏｅｄ，Ｄｅｎｍａｒｋ）、
カタログ番号９００－００４）を用いて細胞数を確認すると、１つのｈＥＳＣが、４．５
６±２．６０個のＳ３Ｄ５後腸内胚葉細胞に分化したことを示す（図１Ｄ）。

【0092】

ＢＭＰ４を利用する分化方法は、転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２及びＦＯ
ＸＡ２の両方をそれぞれ含む、単層の中腸内胚葉細胞を効率的に発生させ、維持する。図
２Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で観察される割合（８６．０±６．６７）と同様に、９
０．０±５．８５パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の
両方が共存していたことを示す。逆に、胚体内胚葉（ＤＥ－Ｓ１Ｄ３）細胞は、ＣＤＸ２
及びＦＯＸＡ２が共存していなかった（２．３±１．２）。遺伝子発現解析により、ステ
ージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（図２Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図２Ｃ）こと
が示される。図２Ｄは、ＦＯＸＡ２陽性の原始腸内胚葉ステージであるＳ２Ｄ２（図２Ｄ
－ｉ）の樹立後に、Ｓ３Ｄ２（図２Ｄ－ｉｉ）の間に徐々に増加し、Ｓ３Ｄ５（図２Ｄ－
ｉｉｉ）において、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）に見られるのと同様のレベルに達
するように、ＣＤＸ２タンパク質レベルが誘導され、ＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質が
共存することを示す。ＣＤＸ２タンパク質は下列に示され、ＦＯＸＡ２タンパク質は上列
に示される。

【0093】

継続的な中腸内胚葉誘導を構成する、追加のＴＦの転写レベル及びタンパク質レベルは
、Ｓ３Ｄ５において見られる。図３Ａ～３Ｐは、正常な中腸内胚葉が得られたことを示す
。ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２の共存に加え、Ｓ３Ｄ５細胞は、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ
５、ＨＯＸＣ５の共存も示したが、ＳＯＸ２、ＡＬＢ、ＰＴＦ１Ａ、及びＬＧＲ５は発現
しなかった。全てのＴＦのタンパク質の存在が、別々の単一チャネル画像に示される。図
３Ａ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９８．７±０．２５パーセントの細胞にＣＤＸ２及び
ＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。ＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導は、Ｃａｃｏ
－２細胞で観察されるのと匹敵するレベルであり（図３Ｂ）、ＩＦ分析によって評価され
るタンパク質の存在が観察された（図３Ｃ）。６９．４±１４．２パーセントの細胞が、
ＣＤＸ２及びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図３Ｄ－下）。ＰＤＸ１遺伝子発現は、
膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（例えば、米国特許出願公開第２０１４／０２４２６９３号）
（図３Ｅ）と比較して低いレベルで誘導され、ＩＦ分析での低レベル～存在しないタンパ
ク質を反映した（図３Ｆ）。

【0094】

Ｓ３Ｄ５細胞は、前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２を発現せず、Ｓ３Ｄ５細胞の１．４５
±０．１５のみがＳＯＸ２及びＣＤＸ２の共存を示し（図３Ｇ－下；図３Ｉ）、遺伝子発
現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（図３Ｈ）に見られるレベルより低かった。後腸内
胚葉の正常な発達に必須であるＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で上方制御されていた
（図３Ｊ）。Ｓ３Ｄ５において、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察
された（図３Ｋ）。ＡＬＢ遺伝子の発現（図３Ｌ）及びタンパク質の存在（図３Ｍ）は、
Ｓ３Ｄ５細胞で観察されなかった。同様に、膵臓系列のマーカーであるＰＴＦ１Ａの遺伝
子発現は、膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図３Ｎ）と比較して、Ｓ３Ｄ５細胞では誘導され
なかった。胚性中腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５は、Ｓ３
Ｄ５細胞内で強く誘導された（図３Ｏ）。図３Ｐは、マウスの妊娠中期に見られ始める胚
性腸管内胚葉マーカーであるＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（
図３Ｐ）。図３Ｑは、後腸内胚葉のマーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導
されなかったことを示す（図３Ｐ）。

【0095】

図４Ａ～４Ｂは、分化しているＳ３Ｄ５細胞の増殖プロファイルを示す。図４Ａは、Ｃ
ＤＸ２タンパク質陽性細胞のほとんどの細胞周期が活性化されている（ＫＩ６７タンパク
質との共発現によって示される）Ｃａｃｏ－２細胞（左）及び、経時的に減少したステー
ジ３中のＨ１－ｈＥＳＣ由来細胞の増殖指標（Ｓ３Ｄ２－中；Ｓ３Ｄ５－右）を示す。Ｃ
ＤＸ２（上列）及びＫＩ６７（下列）のタンパク質レベルは、単一チャネル画像として示
される。ＦＡＣＳによって評価された、総Ｓ３Ｄ５細胞中のＫＩ６７タンパク質陽性細胞
の割合（総細胞は、＞９０％がＣＤＸ２陽性）は、Ｓ１Ｄ３（９７．３±１．３）及びＣ
ａｃｏ－２細胞（９９．２±０．２）とは対称的に、１６．８±３．１２であった（図４
Ｂ）。

【0096】

ＢＭＰ２は、ＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２タンパク質が共存している中腸内胚葉細胞の単層
を産生するための本発明の方法におけるステージ３中で、ＢＭＰ４の代替として使用でき
る。図５Ａは、各ステージで添加された培地成分、成長因子及び小分子、並びに、中腸内
胚葉細胞の分化の主要なステージ特異的マーカー（ＦＯＸＡ２、ＣＤＸ２、ＫＬＦ５、Ｓ
ＯＸ９、及びＰＤＸ１^ＬＯ）を含む、分化方法の概要を示す。Ｓ２Ｄ２と記される中性ｐ
Ｈ（７．３５±０．０４）と比べて、細胞をステージ３全体の間に、ＢＬＡＲ培地中で、
ＢＬＡＲ酸性培地中の重炭酸ナトリウム濃度を低下させてわずかに酸性条件にしたものに
曝した（ｐＨ；Ｓ３Ｄ１、６．９２；Ｓ３Ｄ２、７．０１；Ｓ３Ｄ５、７．２２）（図５
Ｂ）。図５Ｃは、Ｓ３Ｄ５単層（左）及びＣａｃｏ－２細胞（右）の代表的な位相差画像
を示す。Ｓ３Ｄ５における均一な形態が観察された。

【0097】

この分化方法は、転写レベル及びタンパク質レベルでＣＤＸ２、ＦＯＸＡ２、ＫＬＦ５
、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１^ＬＯ及びＨＯＸＣ５をそれぞれ含む、単層の正常な中腸内胚葉細胞
を発生させ、維持する。全てのＴＦタンパク質レベルを単一チャネルのＩＦ画像として示
す。図６Ａ（下）は、Ｃａｃｏ－２細胞で見られる割合（８６．０±６．６７）と同様に
、９４パーセントのＳ３Ｄ５細胞に、ＣＤＸ２及びにＦＯＸＡ２タンパク質の両方が共存
していたことを示す。遺伝子発現解析により、ステージ３の間に、ＣＤＸ２が誘導され（
図６Ｂ）、ＦＯＸＡ２が維持された（図６Ｃ）ことが示される。図６Ｄは、ＣＤＸ２タン
パク質レベルとＣＤＸ２／ＦＯＸＡ２タンパク質の完全な共存が、Ｓ３Ｄ５において誘導
され（図６Ｄ）、これが、Ｃａｃｏ－２細胞（図２Ｄ－ｉｖ）で観察されるレベルに匹敵
していることを示す。図６Ｅ（下）は、Ｓ３Ｄ５において、９９．８パーセントの細胞に
ＣＤＸ２及びＳＯＸ９の両方が共存していたことを示す。ＳＯＸ９遺伝子発現の強い誘導
は、Ｃａｃｏ－２細胞と同様のレベルで観察され（図６Ｆ）、ＩＦ分析によって評価され
るタンパク質の存在が観察された（図６Ｇ）。４５．５パーセントの細胞が、ＣＤＸ２及
びＰＤＸ１の両方に共陽性であった（図６Ｈ－下）。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｉ
）と比較して、ＰＤＸ１遺伝子発現は低いレベルで誘導され、ＩＦ分析では、低レベル～
存在しないタンパク質が反映された（図６Ｊ）。前方内胚葉ＴＦであるＳＯＸ２は、Ｓ３
Ｄ５細胞において観察されず、Ｓ３Ｄ５細胞の０．８パーセントがＳＯＸ２及びＣＤＸ２
の共存を示し（図６Ｋ－下；図６Ｍ）、遺伝子発現は、ｈＥＳＣ及びＣａｃｏ－２細胞（
図６Ｌ）に見られるレベルより低かった。後腸内胚葉の正常な発達に必須のマーカーであ
るＫＬＦ５の遺伝子発現は、Ｓ３Ｄ５で強く上方制御されていた（図６Ｎ）。Ｓ３Ｄ５に
おいて、ＣＤＸ２陽性細胞内でＫＬＦ５タンパク質の共存が観察された（図６Ｏ）。ＡＬ
Ｂ遺伝子の発現（図６Ｐ）及びタンパク質の存在（図６Ｑ）は、Ｓ３Ｄ５細胞で観察され
なかった。膵臓に偏ったＳ４Ｄ３細胞（図６Ｒ）と比較するとき、Ｓ３Ｄ５細胞では、膵
臓系列に割り当てられるＴＦであるＰＴＦ１Ａの遺伝子発現は誘導されなかった。胚性中
腸内胚葉中に存在するホメオボックス遺伝子であるＨＯＸＣ５は、Ｓ３Ｄ５細胞内で強く
誘導された（図６Ｓ）。図６Ｔは、妊娠中期に見られ始める胚性腸管内胚葉マーカーであ
るＬＧＲ５が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す。図６Ｕは、後腸内胚葉のマ
ーカーであるＨＯＸＡ１３が、Ｓ３Ｄ５細胞で誘導されなかったことを示す（図６Ｕ）。

【0098】

図７は、分化しているＳ３Ｄ５細胞の増殖プロファイルの特徴であり、ＣＤＸ２タンパ
ク質陽性細胞のほとんどの細胞周期が活性化されている（ＫＩ６７タンパク質との共発現
によって示される）Ｃａｃｏ－２細胞（左）と比較して、ステージ３中のＨ１－ｈＥＳＣ
由来細胞の増殖指標が減少した（Ｓ３Ｄ５－右）。ＣＤＸ２（上列）及びＫＩ６７（下列
）のタンパク質レベルは、単一チャネル画像として示される。ＦＡＣＳによって評価され
た、総Ｓ３Ｄ５細胞中のＫＩ６７タンパク質陽性細胞の割合（総細胞は、＞９０％がＣＤ
Ｘ２陽性）は、Ｓ１Ｄ３（９７．３±１．３）及びＣａｃｏ－２細胞（９９．２±０．２
）で見られる割合とは対称的に、１４．１であった（図７、４Ｂ）。

【0099】

（実施例２）
胚体内胚葉から開始し、ＦＧＦ４及びＷＮＴアゴニストを使用する腸管培養は、ＣＤＸ
２＋中腸／後腸細胞の内胚葉－間葉混合物を産生する
この実施例は、胚体内胚葉ステージで開始し、ＦＧＦ４及びＷＮＴアゴニストを使用す
る、腸管培養から産生される内胚葉－間葉混合品質のＣＤＸ２＋中腸／後腸細胞を実証す
る（Ｓｐｅｎｃｅ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，２０１１；４７０：１０５～１０９；
Ｗａｔｓｏｎ ｅｔ ａｌ．Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｄ，２０１４；１１：１３１０～１３１
４）。Ｓｐｅｎｃｅら（以下）に記載される中腸／後腸内胚葉細胞への誘導を調べるため
、以下のプロトコールを用いてｈＥＳＣを分化させた。この実施例で概説される分化条件
は、（ｉ）腸管状態の開始点が胚体内胚葉で始まる、（ｉｉ）ＲＡ及びＢＭＰ４又はＢＭ
Ｐ２とは異なる成長因子及び小分子を用いる、及び（ｉｉｉ）酸性培養条件を使用しない
点において、実施例１とは異なることに留意されたい。

【0100】

材料及び方法
細胞培養：Ｈ１－ｈＥＳＣ細胞を、実施例１に記載されるように培養し、維持した。

【0101】

分化：以下のプロトコールを用いて培養物を分化させた。

【0102】

ステージ１－ミミック（３日間）：細胞を、以下のステージ１培地で１日間培養した。

【0103】

【表10】

【0104】

続いて翌日は、細胞を以下の培地で培養した。

【0105】

【表11】

【0106】

続いて翌日は、細胞を以下の培地で培養した。

【0107】

【表12】

【0108】

ステージ１後（２日間）：例えば、ｐＳ１ｄ１は、ステージ１後１日目、ｐＳ１ｄ２は
、ステージ１後２日目である。細胞を、地下のステージ１後培地で２日間培養した。

【0109】

【表13】

【0110】

定量化：位相差撮像及び遺伝子発現の定量化は、実施例１の手順に従った。

【0111】

結果
各ステージで添加される培地成分、成長因子及び小分子、並びに、中腸／後腸内胚葉細
胞の分化のサイン、つまり主要なステージ特異的マーカー（ＨＡＮＤ１）を含む、分化方
法の概要を図８Ａに示す。腸管状態（ステージ１後）は、５００ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ４、
及び、３μＭのＣｈｉｒｏｎ９９０２１（Ｗａｔｓｏｎｅｔ ａｌ．）、又は５００ｎｇ
／ｍＬのＷｎｔ３Ａ（Ｓｐｅｎｃｅ ｅｔ ａｌ．）のいずれかと共に、胚体内胚葉ステ
ージで開始した。用語「ステージ１－ミミック」は、実施例１に記載されるステージ１の
コンディショニングを指す「Ｓ１Ｄ３－オリジナル」とは異なる、本実施例の胚体内胚葉
の分化プロトコールを指す。図８Ｂは、Ｈ１－ｈＥＳＣ細胞（上列、左）、５００ｎｇ／
ｍＬのＦＧＦ４及び３μＭのＣｈｉｒｏｎ９９０２１で２日間コンディショニングしたス
テージ１後の細胞（上列、中）、５００ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ４及び５００ｎｇ／ｍＬのＷ
ｎｔ３Ａで２日間コンディショニングしたステージ１後の細胞（上列、右）と共に、ＲＡ
／ＢＭＰ４でコンディショニングしたＳ３Ｄ５単層（下列、左）、及び、ＲＡ／ＢＭＰ２
でコンディショニングしたＳ３Ｄ５単層（下列、右）（実施例１」）の、位相差画像を示
す。

【0112】

ＣＤＸ２遺伝子発現の誘導は、２日間のコンディショニング後に達成されたが、ＲＡ／
ＢＭＰ２又はＲＡ／ＢＭＰ４のＳ３Ｄ５に比べてはるかに低いレベルであった（図８Ｃ）
。しかし、内胚葉マーカーであるＦＯＸＡ２の遺伝子発現は維持され（図８Ｄ）、中胚葉
／間葉マーカーであるＨＡＮＤ１は強く誘導された（図８Ｆ）。また、ＲＡ／ＢＭＰ４及
びＲＡ／ＢＭＰ２によるコンディショニングとは異なり、２日間の時点でＫＬＦ５は誘導
されなかった（図８Ｅ）。図８Ｆに最終的に示されるように、この遺伝子発現パターンは
、Ｗａｔｓｏｎ ｅｔ ａｌ．及びＳｐｅｎｃｅ ｅｔ ａｌ．で見られる、ＣＤＸ２^＋
ＦＯＸＡ２^＋内胚葉集団だけではなく、かなりの間葉系ＣＤＸ２^＋細胞集団も含む、不均
一な細胞集団を反映している。対称的に、ＲＡ／ＢＭＰ４又はＲＡ／ＢＭＰ２のステージ
２後（原始腸管細胞）のコンディショニングは、中胚葉／間葉マーカーであるＨＡＮＤ１
を誘導せず、内胚葉ＣＤＸ２^＋ＦＯＸＡ２^＋集団のみが誘導された。

【0113】

本発明及び本発明の様々な実施形態を説明する際に、明瞭化のために特定の用語が用い
られる。しかしながら、本発明は、選択された特定の用語に限定されるように意図されて
いない。関連分野の当業者であれば、他の同等の構成要素を使用することができ、また、
本発明の広い概念から逸脱することなく他の方法を開発することができることを認識する
であろう。本明細書のいずれかにおいて引用される全ての参照文献は、それぞれが個別に
組み込まれているかのように参照により組み込まれる。

【図1A】

【図1B】

【図1C】

【図1D】

【図2A】

【図2B】

【図2C】

【図2D】

【図3A】

【図3B】

【図3C】

【図3D】

【図3E】

【図3F】

【図3G】

【図3H】

【図3I】

【図3J】

【図3K】

【図3L】

【図3M】

【図3N】

【図3O】

【図3P】

【図3Q】

【図4A】

【図4B】

【図5A】

【図5B】

【図5C】

【図6A】

【図6B】

【図6C】

【図6D】

【図6E】

【図6F】

【図6G】

【図6H】

【図6I】

【図6J】

【図6K】

【図6L】

【図6M】

【図6N】

【図6O】

【図6P】

【図6Q】

【図6R】

【図6S】

【図6T】

【図6U】

【図7】

【図8A】

【図8B】

【図8C】

【図8D】

【図8E】

【図8F】

【手続補正書】

【提出日】2022-07-04

【手続補正1】

【補正対象書類名】特許請求の範囲

【補正対象項目名】全文

【補正方法】変更

【補正の内容】

【請求項1】

本願図面に記載の発明。

【手続補正2】

【補正対象書類名】明細書

【補正対象項目名】０１１３

【補正方法】変更

【補正の内容】

【0113】

本発明及び本発明の様々な実施形態を説明する際に、明瞭化のために特定の用語が用い
られる。しかしながら、本発明は、選択された特定の用語に限定されるように意図されて
いない。関連分野の当業者であれば、他の同等の構成要素を使用することができ、また、
本発明の広い概念から逸脱することなく他の方法を開発することができることを認識する
であろう。本明細書のいずれかにおいて引用される全ての参照文献は、それぞれが個別に
組み込まれているかのように参照により組み込まれる。

本発明の様々な実施形態を以下に示す。
１．ヒト多能性幹細胞を培地中で培養し、中腸内胚葉細胞への分化を誘導することを含み、が産生される、中腸内胚葉細胞集団の産生方法。
２．ヒト多能性幹細胞を培地中で培養し、中腸内胚葉細胞への分化を誘導することを含み、前記分化細胞が中腸内胚葉細胞であり、前記中腸内胚葉細胞が単層を形成し、前記単層として維持する、中腸内胚葉細胞集団の産生方法。
３．前記方法が、
ａ．ＧＤＦ－８及びＧＳＫ３β阻害化合物を含む第１の培地中で前記ヒト多能性幹細胞を培養し、胚体内胚葉細胞にする工程と、
ｂ．アスコルビン酸及びＦＧＦ７を含む第２の培地中で前記胚体内胚葉細胞を培養し、原始腸管細胞にする工程と、
ｃ．レチノイン酸及びＢＭＰ２又はＢＭＰ４を含む第３の培地中で原始腸管細胞を培養し、中腸内胚葉細胞にする工程と、を含む、上記１又は上記２に記載の方法。
４．前記中腸内胚葉細胞がＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２を発現する、上記１又は上記２に記載の方法。
５．前記中腸内胚葉細胞が、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５及びＨＯＸＣ５からなる群から選択される転写因子を発現する、上記１又は上記２に記載の方法。
６．前記中腸内胚葉細胞が、ＳＯＸ２、ＡＬＢ、ＰＴＦ１Ａ、ＨＯＸＡ１３及びＬＧＲ５からなる群から選択される転写因子を発現しない、上記１又は上記２に記載の方法。
７．前記中腸内胚葉細胞が、培地中で単層を形成し、前記単層を維持する、上記１に記載の方法。
８．前記細胞集団が間葉細胞を含まない、上記１又は上記２に記載の方法。
９．前記細胞集団がＨＡＮＤ１を発現しない、上記１又は上記２に記載の方法。
１０．前記分化がｉｎ ｖｉｔｒｏで誘導される、上記１又は上記２に記載の方法。
１１．ヒト多能性幹細胞を中腸内胚葉細胞に分化させる工程と、前記分化細胞を患者に移植する工程と、を含む、糖尿病に罹っている、又は糖尿病発症のリスクがある患者の治療方法。
１２．前記移植された中腸内胚葉細胞をｉｎ ｖｉｖｏで分化させることを更に含む、上記１１に記載の方法。
１３．前記糖尿病が１型又は２型である、上記１１に記載の方法。
１４．前記中腸内胚葉細胞が、ｉｎ ｖｉｖｏで腸内分泌細胞に更に分化し、前記腸内分泌細胞がインクレチンホルモンを分泌する、上記１２に記載の方法。
１５．前記インクレチンホルモンがＧＬＰ１及びＧＩＰである、上記１４に記載の方法。
１６．前記中腸内胚葉細胞がＣＤＸ２及びＦＯＸＡ２を発現する、上記１１に記載の方法。
１７．前記中腸内胚葉細胞が、ＳＯＸ９、ＰＤＸ１、ＫＬＦ５及びＨＯＸＣ５からなる群から選択される転写因子を発現する、上記１１に記載の方法。
１８．前記中腸内胚葉細胞が、ＳＯＸ２、ＡＬＢ、ＰＴＦ１Ａ、ＨＯＸＡ１３及びＬＧＲ５からなる群から選択される転写因子を発現しない、上記１１に記載の方法。
１９．培養液中の胚体内胚葉細胞の原始腸管細胞への分化を誘導することを含み、前記胚体内胚葉細胞をアスコルビン酸及びＦＧＦ７を含む培地中で培養する、中腸内胚葉細胞の産生方法。
２０．前記原始腸管細胞を、レチノイン酸及びＢＭＰ２又はＢＭＰ４を含む培地中で培養し、中腸内胚葉細胞に分化させる、上記１９に記載の方法。
２１．前記培地が酸性である、上記１９に記載の方法。
２２．前記中腸内胚葉細胞が、培地中で単層を形成し、前記単層を維持する、上記１９に記載の方法。

【外国語明細書】