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(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】公開特許公報(A)
(11)【公開番号】P2022039504
(43)【公開日】2022-03-10
(54)【発明の名称】キノコ菌糸体を用いた発酵プラセンタエキス
(51)【国際特許分類】
C12P 21/00 20060101AFI20220303BHJP
C12N 1/14 20060101ALI20220303BHJP
A23L 31/00 20160101ALI20220303BHJP
A23L 33/18 20160101ALI20220303BHJP
A61K 8/98 20060101ALI20220303BHJP
A61K 8/9728 20170101ALI20220303BHJP
A61Q 19/02 20060101ALI20220303BHJP
A61Q 19/00 20060101ALI20220303BHJP
A61Q 19/08 20060101ALI20220303BHJP
A61Q 19/06 20060101ALI20220303BHJP
【ＦＩ】
C12P21/00 A
C12N1/14 E
C12N1/14 B
A23L31/00
A23L33/18
A61K8/98
A61K8/9728
A61Q19/02
A61Q19/00
A61Q19/08
A61Q19/06
【審査請求】有
【請求項の数】5
【出願形態】ＯＬ
(21)【出願番号】P 2020144573
(22)【出願日】2020-08-28
(11)【特許番号】
(45)【特許公報発行日】2021-02-24
(71)【出願人】
【識別番号】593206894
【氏名又は名称】スノーデン株式会社
(74)【代理人】
【識別番号】100139594
【弁理士】
【氏名又は名称】山口 健次郎
(74)【代理人】
【識別番号】100090251
【弁理士】
【氏名又は名称】森田 憲一
(72)【発明者】
【氏名】明壁 義蔵
(72)【発明者】
【氏名】川島 順市
(72)【発明者】
【氏名】大石 真己
(72)【発明者】
【氏名】手計 雅彦
(72)【発明者】
【氏名】西塚 俊雄
(72)【発明者】
【氏名】鈴木 琴絵
【テーマコード（参考）】
4B018
4B064
4B065
4C083
【Ｆターム（参考）】
4B018MD20
4B018MD22
4B018MD91
4B018ME06
4B018MF13
4B064AG01
4B064CA07
4B064CC12
4B064CD20
4B064CE02
4B064DA10
4B064DA20
4B065AA71X
4B065AC14
4B065BA30
4B065BB19
4B065BC05
4B065BD01
4B065CA24
4B065CA41
4B065CA50
4C083AA031
4C083AA071
4C083CC02
4C083EE12
4C083EE16
(57)【要約】
【課題】本発明の目的は、健康維持、アンチエイジング、又は美容などに有効な成分を多く含むプラセンタエキスを提供することである。
【解決手段】前記課題は、本発明のプラセンタエキスを担子菌の菌糸体によって発酵することにより得られる発酵物によって、解決することができる。
【選択図】なし
【解決手段】前記課題は、本発明のプラセンタエキスを担子菌の菌糸体によって発酵することにより得られる発酵物によって、解決することができる。
【選択図】なし
【特許請求の範囲】
【請求項1】
液体培地でプラセンタを担子菌の菌糸体によって発酵培養する方法であって、酸素を含む気体を液体培地中に供給しながら培養する、発酵培養方法。
【請求項2】
酸素の供給量が、１容量部の液体培地に対して、０．０１～１容量部／分である、請求項１に記載の発酵培養方法。
【請求項3】
前記担子菌が、ハラタケ目の担子菌である、請求項１又は２に記載の発酵培養方法。
【請求項4】
請求項１～３のいずれか一項に記載の発酵培養方法により得られる発酵物。
【請求項5】
請求項４に記載の発酵物を含む化粧料組成物。
【請求項6】
請求項４に記載の発酵物を含む食品組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、発酵物及び発酵培養方法に関する。本発明の発酵物は、優れたＯＨラジカル消去能、及び過酸化脂質生成抑制能を示す。
【背景技術】
【0002】
プラセンタエキスは、有用成分を多く含み、健康維持、アンチエイジング、又は美容などに広く用いられている。例えば、プラセンタエキスを含む化粧料が報告されている（特許文献１及び２）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0003】
【特許文献1】特開２０１５－７１５８０号公報
【特許文献2】特開２０１０－３０９４６号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0004】
しかしながら、健康維持、アンチエイジング、又は美容などに有効な成分を多く含むプラセンタエキスの開発が期待されている。
従って、本発明の目的は、健康維持、アンチエイジング、又は美容などに有効な成分を多く含むプラセンタエキスを提供することである。
従って、本発明の目的は、健康維持、アンチエイジング、又は美容などに有効な成分を多く含むプラセンタエキスを提供することである。
【課題を解決するための手段】
【0005】
本発明者は、健康維持、アンチエイジング、又は美容などに有効な成分を多く含むプラセンタエキスについて、鋭意研究した結果、驚くべきことに、プラセンタエキスを担子菌の菌糸体によって発酵することにより、有効成分を豊富に含むプラセンタエキス発酵物が得られることを見出した。
本発明は、こうした知見に基づくものである。
従って、本発明は、
［１］液体培地でプラセンタを担子菌の菌糸体によって発酵培養する方法であって、酸素を含む気体を液体培地中に供給しながら培養する、発酵培養方法、
［２］酸素の供給量が、１容量部の液体培地に対して、０．０１～１容量部／分である、［１］に記載の発酵培養方法、
［３］前記担子菌が、ハラタケ目の担子菌である、［１］又は［２］に記載の発酵培養方法、
［４］［１］～［３］のいずれかに記載の発酵培養方法により得られる発酵物、
［５］［４］に記載の発酵物を含む化粧料組成物、及び
［６］［４］に記載の発酵物を含む食品組成物、
に関する。
本発明は、こうした知見に基づくものである。
従って、本発明は、
［１］液体培地でプラセンタを担子菌の菌糸体によって発酵培養する方法であって、酸素を含む気体を液体培地中に供給しながら培養する、発酵培養方法、
［２］酸素の供給量が、１容量部の液体培地に対して、０．０１～１容量部／分である、［１］に記載の発酵培養方法、
［３］前記担子菌が、ハラタケ目の担子菌である、［１］又は［２］に記載の発酵培養方法、
［４］［１］～［３］のいずれかに記載の発酵培養方法により得られる発酵物、
［５］［４］に記載の発酵物を含む化粧料組成物、及び
［６］［４］に記載の発酵物を含む食品組成物、
に関する。
【発明の効果】
【0006】
本発明の発酵物は、優れたＯＨラジカル消去能及び／又は過酸化脂質生成抑制能を有する。
【図面の簡単な説明】
【0007】
【図1】本発明の発酵培養方法に用いる培養槽の１つの実施態様を、模式的に示した図である。
【図2】本発明の発酵培養方法に用いる培養槽の１つの実施態様を、上方から模式的に示した図である。
【図3】本発明の発酵培養方法によって得られたまりも状の菌糸体の写真である。
【発明を実施するための形態】
【0008】
［１］発酵培養方法
本発明の発酵培養方法は、液体培地でプラセンタを担子菌の菌糸体によって発酵培養する方法であって、酸素を含む気体を液体培地中に供給しながら培養する。限定されるものではないが、本発明の発酵培養方法によって、本発明の発酵物を得ることができる。
本発明の発酵培養方法は、液体培地でプラセンタを担子菌の菌糸体によって発酵培養する方法であって、酸素を含む気体を液体培地中に供給しながら培養する。限定されるものではないが、本発明の発酵培養方法によって、本発明の発酵物を得ることができる。
【0009】
《プラセンタ》
本発明の発酵培養方法で用いられるプラセンタは、特に限定されるものでなく、哺乳動物の胎盤、臍帯、及び羊膜の３つを含んだものでもよく、胎盤、臍帯、又は羊膜を単独で用いてもよく、それらの２つを混合したものでもよい。
発酵培養方法においては、プラセンタを、そのまま発酵培養に用いてもよいが、塩酸又はタンパク質分解酵素を用いて加水分解した分解物（抽出物）、又は臨界抽出などによって得られる抽出物を、発酵培養に用いてもよい。このような分解物又は抽出物を、本明細書では、プラセンタエキスと称することがある。
プラセンタエキスは、哺乳動物のプラセンタを塩酸又はタンパク質分解酵素を用いて加水分解したものでもよく、更に遠心分離もしくは濾過等によって不溶成分を分離除去したものでもよい。また、プラセンタを臨界抽出し、プラセンタエキスを得ることもできる。前記哺乳動物も特に限定されるものではないが、例えばブタ、ウシ、ヒツジ、ウマ、又はヒトなどが挙げられる。プラセンタには、ビタミン、アミノ酸、ミネラル、酵素並びに成長因子及びその誘導因子などが含まれている。
プラセンタを担子菌の菌糸体で発酵することにより、プラセンタ中の特定の成分から、ＯＨラジカル消去能又は過酸化脂質生成抑制能を有する成分が形成されると考えられる。
本発明の発酵培養方法で用いられるプラセンタは、特に限定されるものでなく、哺乳動物の胎盤、臍帯、及び羊膜の３つを含んだものでもよく、胎盤、臍帯、又は羊膜を単独で用いてもよく、それらの２つを混合したものでもよい。
発酵培養方法においては、プラセンタを、そのまま発酵培養に用いてもよいが、塩酸又はタンパク質分解酵素を用いて加水分解した分解物（抽出物）、又は臨界抽出などによって得られる抽出物を、発酵培養に用いてもよい。このような分解物又は抽出物を、本明細書では、プラセンタエキスと称することがある。
プラセンタエキスは、哺乳動物のプラセンタを塩酸又はタンパク質分解酵素を用いて加水分解したものでもよく、更に遠心分離もしくは濾過等によって不溶成分を分離除去したものでもよい。また、プラセンタを臨界抽出し、プラセンタエキスを得ることもできる。前記哺乳動物も特に限定されるものではないが、例えばブタ、ウシ、ヒツジ、ウマ、又はヒトなどが挙げられる。プラセンタには、ビタミン、アミノ酸、ミネラル、酵素並びに成長因子及びその誘導因子などが含まれている。
プラセンタを担子菌の菌糸体で発酵することにより、プラセンタ中の特定の成分から、ＯＨラジカル消去能又は過酸化脂質生成抑制能を有する成分が形成されると考えられる。
【0010】
《担子菌》
担子菌は、キノコのうち担子菌門に属するものを示す。本発明に用いられる担子菌は、特に限定されるものではないが、ハラタケ目、ヒダナシタケ目、ホコリタケ目、ヒメノガステル目、又はキクラゲ目が挙げられ、好ましくはハラタケ目である。
担子菌は、キノコのうち担子菌門に属するものを示す。本発明に用いられる担子菌は、特に限定されるものではないが、ハラタケ目、ヒダナシタケ目、ホコリタケ目、ヒメノガステル目、又はキクラゲ目が挙げられ、好ましくはハラタケ目である。
【0011】
ハラタケ目としては、ハラタケ科、キシメジ科、ヒラタケ科、スエヒロタケ科、イグチ科、オウギタケ科、オニイグチ科、オキナタケ科、テングタケ科、ナヨタケ科、フウセンタケ科、カンゾウタケ科、ヌメリガサ科、ベニタケ科、モエギタケ科、又はイッポンシメジ科等が挙げられ、好ましくはハラタケ科、ヒラタケ科、又はスエヒロタケ科である。
ヒダナシタケ目としては、マンネンタケ科、サンゴハリタケ科、カノシタ科、多孔菌科、サルノコシカケ科、ミヤマトンビマイタケ科、シロソウメンタケ科、エゾハリタケ科、又はハナビラタケ科等、ホコリタケ目としては、ホコリタケ科等、ヒメノガステル目としては、ショウロ科等、キクラゲ目としては、ヒメキクラゲ科等が挙げられる。
ヒダナシタケ目としては、マンネンタケ科、サンゴハリタケ科、カノシタ科、多孔菌科、サルノコシカケ科、ミヤマトンビマイタケ科、シロソウメンタケ科、エゾハリタケ科、又はハナビラタケ科等、ホコリタケ目としては、ホコリタケ科等、ヒメノガステル目としては、ショウロ科等、キクラゲ目としては、ヒメキクラゲ科等が挙げられる。
【0012】
ハラタケ科として、ハラタケ、シロオオハラタケ、ツクリタケ、ザラエノハラタケ、ウスキモリノカサ、又はタヌキノチャブクロ（以上、ハラタケ属）、ササクレヒトヨタケ（ササクレヒトヨタケ属）、カラカサタケ（カラカサタケ属）、又はオニタケ（キツネノカラカサタケ属）が挙げられる。キシメジ科として、ハタケシメジ、又はホンシメジ（シメジ属）、ブナシメジ（シロタモギタケ属）、マツタケ、ミネシメジ、アイシメジ、シロシメジ、ケショウシメジ、又はシモフリシメジ（キシメジ属）、シイタケ（シイタケ属）、エノキタケ（エノキタケ属）、ホテイシメジ、カヤタケ、又はヒメシロタモギタケ（カヤタケ属）、ナラタケ、キツブナラタケ、ナラタケモドキ、オニナラタケ、又はクロゲナラタケ（ナラタケ属）、スギエダタケ（スギエダタケ属）、フチドリツエタケ（ツエタケ属）、モリノカレバタケ、又はアマタケ（モリノカレバタケ属）、カワムラフウセンタケ、又はムラサキアブラシメジモドキ（フウセンタケ属）、オドタケ（ヒメヒロヒダタケ属）、カクミノシメジ（シメジ属）、マツカサシメジ（マツカサキノコ属）、又はヌメリツバタケモドキ（ツエタケ属）が挙げられる。ヒラタケ科として、ヒラタケ、タモギタケ、エリンギ、オオヒラタケ、クロアワビタケ、ヒマラヤヒラタケ、又はタマシロノタケ（ヒラタケ属）が挙げられる。スエヒロタケ科として、スエヒロタケ（スエヒロタケ属）が挙げられる。イグチ科として、オオウラベニイロガワリ、又はムラサキヤマドリタケ（ヤマドリタケ属）が挙げられる。オウギタケ科として、オウギタケ（オウギタケ属）が挙げられる。オニイグチ科として、オオキノボリイグチ（キクバナイグチ属）が挙げられる。オキナタケ科としては、ヤナギマツタケ、ツチナメコ、又はフミヅキタケ（フミヅキタケ属）が挙げられる。テングタケ科としては、ガンタケ、又はカバイロツルタケ（テングタケ属）が挙げられる。ナヨタケ科として、ムササビタケ、又はイタチタケ（以上、ナヨタケ属）、ヒトヨタケ（以上、ヒトヨタケ属）、又はササクレヒトヨタケ（ササクレヒトヨタケ属）が挙げられる。フウセンタケ科として、ショウゲンジ（フウセンタケ属）、ナガエノスギタケ（ワカフサタケ属）が挙げられる。カンゾウタケ科として、カンゾウタケ（カンゾウタケ属）が挙げられる。ヌメリガサ科として、アカヤマタケ（アカヤマタケ属）、サクラシメジ（ヌメリガサ属）、又はオトメノカサ（オトメノカサ属）が挙げられる。ベニタケ科として、アイタケ（ベニタケ属）、又はアカモミタケ（チチタケ属）が挙げられる。モエギタケ科として、サケツバタケ（モエギダケ属）、ナメコ、又はヌメリスギタケモドキ（スギタケ属）、又はクリタケ（クリタケ属）が挙げられる。イッポンシメジ科としてウラベニホテイシメジ（イッポンシメジ属）が挙げられる。好ましくは、スエヒロタケ科（例えば、スエヒロタケ（スエヒロタケ属））、ハラタケ科（例えば、ササクレヒトヨタケ（ササクレヒトヨタケ属））、又はヒラタケ科（例えば、タモギタケ（ヒラタケ属））である。
【0013】
《菌糸体》
担子菌は、通常、糸状の細胞列である菌糸からなる菌糸体と呼ばれる構造を有している。本発明で使用される担子菌は、菌糸体の状態で発酵に用いられる。一方、担子菌は、胞子を作るときに複数の菌糸が寄り集まって複雑な構造を作ることがある。これは、いわゆる「キノコ」と呼ばれるものであり、この複雑な構造となったものは子実体と呼ばれる。本発明の発酵においては、子実体でなく、菌糸体が用いられる。
菌糸体は、直径数μｍ、長さ数ｍｍ～数ｃｍの繊維状である。自然界では、菌糸体は外力を受けない場所で発育する。また、好気的条件を好み酸素要求性が高い。液体培養する場合には、せん断力がかからないようにしながら、酸素を溶存させる必要がある。
担子菌は、通常、糸状の細胞列である菌糸からなる菌糸体と呼ばれる構造を有している。本発明で使用される担子菌は、菌糸体の状態で発酵に用いられる。一方、担子菌は、胞子を作るときに複数の菌糸が寄り集まって複雑な構造を作ることがある。これは、いわゆる「キノコ」と呼ばれるものであり、この複雑な構造となったものは子実体と呼ばれる。本発明の発酵においては、子実体でなく、菌糸体が用いられる。
菌糸体は、直径数μｍ、長さ数ｍｍ～数ｃｍの繊維状である。自然界では、菌糸体は外力を受けない場所で発育する。また、好気的条件を好み酸素要求性が高い。液体培養する場合には、せん断力がかからないようにしながら、酸素を溶存させる必要がある。
【0014】
《発酵》
本明細書において、「発酵」とは、微生物が嫌気的にエネルギーを得る狭義の発酵ではなく、微生物が発酵食品など人間に有益な有機物を生成する過程全般を意味し、好気的発酵及び嫌気的発酵を含むが、担子菌の菌糸体による発酵は好気的発酵である。
本明細書において、「発酵」とは、微生物が嫌気的にエネルギーを得る狭義の発酵ではなく、微生物が発酵食品など人間に有益な有機物を生成する過程全般を意味し、好気的発酵及び嫌気的発酵を含むが、担子菌の菌糸体による発酵は好気的発酵である。
【0015】
《液体培地》
液体培地は、炭素源及び窒素源を含む限りにおいて、特に限定されるものではない。炭素源及び／又は窒素源を含む成分は、培地に完全に溶解している必要はなく、固体の状態で培地に含まれてもよい。
発酵における炭素源（炭水化物源）は、担子菌が炭素源として使用できる限りにおいて、特に限定されるものではないが、ブドウ糖、黒糖、デンプン、米、麦、芋、トウモロコシ、米麹、胚芽、玉葱、ショ糖、果糖、ラムノース、ラフィノース、キシロース、アラビノース、ラクトース、ガラクトース、麦芽糖、トレハロース、キシラン、デキストリン、ソルビトール、サリシン、イノシトール、マンニトール、グリセロール、イヌリン、リボース、ソルボース、マルトース、セロビオース、フラクトース、又はマンノースが挙げられる。
発酵における炭素源の濃度は、特に限定されるものではないが、例えば１～１００ｇ／Ｌであり、好ましくは５～６０ｇ／Ｌであり、より好ましくは１０～４５ｇ／Ｌであり、最も好ましくは１５～４０ｇ／Ｌである。前記の濃度であることにより、優れたＯＨラジカル消去能、又は過酸化脂質生成抑制能を有する発酵物を得ることができる。
液体培地は、炭素源及び窒素源を含む限りにおいて、特に限定されるものではない。炭素源及び／又は窒素源を含む成分は、培地に完全に溶解している必要はなく、固体の状態で培地に含まれてもよい。
発酵における炭素源（炭水化物源）は、担子菌が炭素源として使用できる限りにおいて、特に限定されるものではないが、ブドウ糖、黒糖、デンプン、米、麦、芋、トウモロコシ、米麹、胚芽、玉葱、ショ糖、果糖、ラムノース、ラフィノース、キシロース、アラビノース、ラクトース、ガラクトース、麦芽糖、トレハロース、キシラン、デキストリン、ソルビトール、サリシン、イノシトール、マンニトール、グリセロール、イヌリン、リボース、ソルボース、マルトース、セロビオース、フラクトース、又はマンノースが挙げられる。
発酵における炭素源の濃度は、特に限定されるものではないが、例えば１～１００ｇ／Ｌであり、好ましくは５～６０ｇ／Ｌであり、より好ましくは１０～４５ｇ／Ｌであり、最も好ましくは１５～４０ｇ／Ｌである。前記の濃度であることにより、優れたＯＨラジカル消去能、又は過酸化脂質生成抑制能を有する発酵物を得ることができる。
【0016】
発酵における窒素源（タンパク質源）としては、プラセンタが使用される。プラセンタの濃度は、限定されるものではないが、窒素濃度として、例えば０．５～５０ｇ／Ｌであり、好ましくは１～４０ｇ／Ｌであり、より好ましくは２～３０ｇ／Ｌであり、更に好ましくは３～２０ｇ／Ｌであり、最も好ましくは４～１５ｇ／Ｌである。前記の濃度であることにより、優れたＯＨラジカル消去能、又は過酸化脂質生成抑制能を有する発酵物を得ることができる。発酵においては、プラセンタに加えて、他の窒素源を添加してもよい。他の窒素源としては、例えばペプトン、イーストエクストラクト、又はアミノ酸が挙げられる。
【0017】
《培養槽》
培養槽は、酸素を供給できる限りにおいて、特に限定されるものではないが、下方から酸素を供給し、液体培地を穏やかに対流により攪拌できることから、例えば円筒形の縦型タンクが好ましい。
培養槽は、酸素供給手段を有する。酸素供給手段は、下方から酸素を供給し、気泡によって下方から上方への対流を形成することが好ましい。例えば、図１に示すように、液体培地中に、酸素供給管を挿入し、下方から酸素を液体培地中に供給することができる。酸素供給管は、培養槽の下方又は中央の側壁から液体中に挿入することもできるが、液体培地の漏れ等を防ぐために、図１のように上方から挿入するのが好ましい。
また、酸素の吹き出し口の向きは、限定されるものではないが下方が好ましい。吹き出し口が、上方又は側方を向いている場合、菌糸体が吹き出し口で増殖し、目詰まりを起こすことがあるからである。
吹き出し口の数は、特に限定されるものではないが、少なすぎると１つの吹き出し口から供給される気体の量が多くなり、対流が強くなるために菌糸体を損傷させることがある。また、吹き出し口が少なすぎると、１つの吹き出し口から供給される気体の量が少なくなり、対流が弱くなる。従って、菌糸体が下方に堆積し、増殖の効率が低下する。従って、例えば１００Ｌの液体培地に対して、１０～２０の吹き出し口が好ましい。
吹き出し口の口径は、特に限定されるものではないが、例えば１～１０ｍｍでありが、好ましくは１．５～８ｍｍである。
更に、図２に示すように、吹き出し口を縦型タンクの外側に配置することによって、吹き出し口の周囲に液体培地の上昇対流が形成され、縦型タンクの中央部に液体培地の下降対流が形成される。このような対流が形成されることによって、効率的に菌糸体が発酵培養される。
また、縦型タンクの直径に対する高さの比は特に限定されるものではないが、好ましくは１：１～１：４であり、より好ましく１：２～１：３である。
培養槽は、酸素を供給できる限りにおいて、特に限定されるものではないが、下方から酸素を供給し、液体培地を穏やかに対流により攪拌できることから、例えば円筒形の縦型タンクが好ましい。
培養槽は、酸素供給手段を有する。酸素供給手段は、下方から酸素を供給し、気泡によって下方から上方への対流を形成することが好ましい。例えば、図１に示すように、液体培地中に、酸素供給管を挿入し、下方から酸素を液体培地中に供給することができる。酸素供給管は、培養槽の下方又は中央の側壁から液体中に挿入することもできるが、液体培地の漏れ等を防ぐために、図１のように上方から挿入するのが好ましい。
また、酸素の吹き出し口の向きは、限定されるものではないが下方が好ましい。吹き出し口が、上方又は側方を向いている場合、菌糸体が吹き出し口で増殖し、目詰まりを起こすことがあるからである。
吹き出し口の数は、特に限定されるものではないが、少なすぎると１つの吹き出し口から供給される気体の量が多くなり、対流が強くなるために菌糸体を損傷させることがある。また、吹き出し口が少なすぎると、１つの吹き出し口から供給される気体の量が少なくなり、対流が弱くなる。従って、菌糸体が下方に堆積し、増殖の効率が低下する。従って、例えば１００Ｌの液体培地に対して、１０～２０の吹き出し口が好ましい。
吹き出し口の口径は、特に限定されるものではないが、例えば１～１０ｍｍでありが、好ましくは１．５～８ｍｍである。
更に、図２に示すように、吹き出し口を縦型タンクの外側に配置することによって、吹き出し口の周囲に液体培地の上昇対流が形成され、縦型タンクの中央部に液体培地の下降対流が形成される。このような対流が形成されることによって、効率的に菌糸体が発酵培養される。
また、縦型タンクの直径に対する高さの比は特に限定されるものではないが、好ましくは１：１～１：４であり、より好ましく１：２～１：３である。
【0018】
《酸素供給量》
酸素の供給量は、担子菌の菌糸体が発酵培養できる限りにおいて、特に限定されるものではないが、例えば液体培地１容量部に対して０．０１～１容量部／分であり、好ましくは０．０２～０．４容量部／分であり、より好ましくは０．０３～０．２容量部であり、更に好ましくは０．０４～０．１６容量部／分であり、最も好ましくは０．０６～０．１４容量部／分である。
酸素を含む期待としては、空気が挙げられる。気体として空気を使用する場合は、例えば液体培地１容量部に対して０．０５～５容量部／分であり、好ましくは０．１～２容量部／分であり、より好ましくは０．１５～１容量部であり、更に好ましくは０．２～０．８容量部／分であり、最も好ましくは０．３～０．７容量部／分である。前記範囲であることにより、培養により菌糸体が破壊されずに、効率的に発酵物を得ることができる。
酸素を含む気体としては、空気以外に、不活性ガスを用いることができ、例えば窒素、アルゴンなどを用いることができる。
酸素の供給量は、担子菌の菌糸体が発酵培養できる限りにおいて、特に限定されるものではないが、例えば液体培地１容量部に対して０．０１～１容量部／分であり、好ましくは０．０２～０．４容量部／分であり、より好ましくは０．０３～０．２容量部であり、更に好ましくは０．０４～０．１６容量部／分であり、最も好ましくは０．０６～０．１４容量部／分である。
酸素を含む期待としては、空気が挙げられる。気体として空気を使用する場合は、例えば液体培地１容量部に対して０．０５～５容量部／分であり、好ましくは０．１～２容量部／分であり、より好ましくは０．１５～１容量部であり、更に好ましくは０．２～０．８容量部／分であり、最も好ましくは０．３～０．７容量部／分である。前記範囲であることにより、培養により菌糸体が破壊されずに、効率的に発酵物を得ることができる。
酸素を含む気体としては、空気以外に、不活性ガスを用いることができ、例えば窒素、アルゴンなどを用いることができる。
【0019】
本発明の発酵培養方法においては、限定されるものではないが、担子菌の菌糸体が、図３に示すように、まりも状の菌糸体を形成することが好ましい。まりも状の菌糸体を形成すると、菌糸体の損傷が少ないと考えられる。前記の酸素供給量の範囲であることにより、最適な対流が得られ、まりも状の菌糸体が形成されると考えられる。
【0020】
《抽出》
本発明の発酵培養方法で得られた発酵物は、有効成分を抽出してもよい。抽出方法は、本分野で通常用いられている方法を制限なく使用することができる。例えば、菌糸体を培養液中で、チョッパー、又はミキサーなどの破砕機を用いて破砕し、加温抽出することができる。抽出温度は、特に限定されるものではないが、例えば０～１００℃であり、好ましくは３０～９５℃であり、より好ましくは６０～９０℃である。抽出時間も特に限定されるものではないが、例えば１分～２４時間であり、より好ましくは２分～５時間であり、更に好ましくは３分～１時間であり、更に好ましくは５～３０分である。例えば、菌糸体を培養液中で、チョッパー、又はミキサーなどの破砕機を用いて破砕し、加温抽出することができる。抽出温度は、特に限定されるものではないが、例えば０～１００℃であり、好ましくは３０～９５℃であり、より好ましくは６０～９０℃である。抽出時間も特に限定されるものではないが、例えば１分～２４時間であり、より好ましくは２分～５時間であり、更に好ましくは３分～１時間であり、更に好ましくは５～３０分である。
抽出の溶媒として、水性の培養液をそのまま用いてもよいが、有機溶媒（例えば、アルコール）を用いて、特定の有効成分を抽出してもよい。
本発明の発酵培養方法で得られた発酵物は、有効成分を抽出してもよい。抽出方法は、本分野で通常用いられている方法を制限なく使用することができる。例えば、菌糸体を培養液中で、チョッパー、又はミキサーなどの破砕機を用いて破砕し、加温抽出することができる。抽出温度は、特に限定されるものではないが、例えば０～１００℃であり、好ましくは３０～９５℃であり、より好ましくは６０～９０℃である。抽出時間も特に限定されるものではないが、例えば１分～２４時間であり、より好ましくは２分～５時間であり、更に好ましくは３分～１時間であり、更に好ましくは５～３０分である。例えば、菌糸体を培養液中で、チョッパー、又はミキサーなどの破砕機を用いて破砕し、加温抽出することができる。抽出温度は、特に限定されるものではないが、例えば０～１００℃であり、好ましくは３０～９５℃であり、より好ましくは６０～９０℃である。抽出時間も特に限定されるものではないが、例えば１分～２４時間であり、より好ましくは２分～５時間であり、更に好ましくは３分～１時間であり、更に好ましくは５～３０分である。
抽出の溶媒として、水性の培養液をそのまま用いてもよいが、有機溶媒（例えば、アルコール）を用いて、特定の有効成分を抽出してもよい。
【0021】
［２］発酵物
本発明の発酵物は、本発明の発酵培養方法により得られる。
本発明の発酵物は、本発明の発酵培養方法により得られる。
【0022】
《化粧料組成物》
本発明の化粧料組成物は、本発明の発酵物を含む。本発明の発酵物を含むことにより、優れたＯＨラジカル消去能及び／又は過酸化脂質生成抑制能を示す。前記発酵物は、プラセンタエキスを含んでおり、抗炎症作用、脱顆粒抑制作用、及びチロシナーゼ阻害作用を示す。発酵物は、更にヒドロキシラジカル消去能を示す。従って、効果的な美白作用を示す。
また、本発明の発酵物はプラセンタエキスを含んでおり、繊維芽細胞賦活作用、及びコラーゲン合成促進作用を示す。更にヒドロキシラジカル消去能を示す。従って、効果的なシワの予防効果を示す。
本発明の化粧料組成物は、本発明の発酵物を含む。本発明の発酵物を含むことにより、優れたＯＨラジカル消去能及び／又は過酸化脂質生成抑制能を示す。前記発酵物は、プラセンタエキスを含んでおり、抗炎症作用、脱顆粒抑制作用、及びチロシナーゼ阻害作用を示す。発酵物は、更にヒドロキシラジカル消去能を示す。従って、効果的な美白作用を示す。
また、本発明の発酵物はプラセンタエキスを含んでおり、繊維芽細胞賦活作用、及びコラーゲン合成促進作用を示す。更にヒドロキシラジカル消去能を示す。従って、効果的なシワの予防効果を示す。
【0023】
本発明の化粧料組成物における発酵物の含有量は、本発明の効果が得られる限りにおいて、特に限定されるものではないが、発酵液として、例えば０．１～１００重量％であり、好ましくは１～１００重量％であり、より好ましくは５０～１００重量％である。
【0024】
本発明の化粧料組成物は、本発明の効果を阻害しない限りにおいて、保湿剤（例えば、トリメチルグリシン、塩化Ｎ－［２－ヒドロキシ－３－（トリメチルアンモニオ）プロピル］加水分解コムギたん白液、ヒアルロン酸、ピロリドンカルボン酸ナトリウム、ベタイン、ホホバ油、加水分解ケラチン）、着色剤（例えば、顔料、又は色素）、粘度調整剤（例えば、メチルセルロース）、乳化剤（例えば、モノステアリン酸グリセリン）、パール光沢付与剤（例えば、ジステアリン酸グリコール、又はジステアリン酸エチレングリコール）、塩類（例えば、塩化ナトリウム）、植物エキス類、防腐剤、ビタミン剤、香料、紫外線吸収剤、抗酸化剤、湿潤剤、キレート剤、ｐＨ調整剤（例えば、クエン酸、又は酒石酸）水を含むことができる。
【0025】
《食品組成物》
本発明の食品組成物は、本発明の発酵物を含む。本発明の発酵物を含むことにより、優れたＯＨラジカル消去能及び／又は過酸化脂質生成抑制能を示す。前記発酵物は、プラセンタエキスを含んでおり、抗炎症作用、脱顆粒抑制作用、チロシナーゼ阻害作用、繊維芽細胞賦活作用、及びコラーゲン合成促進作用を示す。本発明の発酵物は、更にヒドロキシラジカル消去能を示す。すなわち、本発明の食品組成物は、多様な作用を示すことができる。
本発明の食品組成物は、本発明の発酵物を含む。本発明の発酵物を含むことにより、優れたＯＨラジカル消去能及び／又は過酸化脂質生成抑制能を示す。前記発酵物は、プラセンタエキスを含んでおり、抗炎症作用、脱顆粒抑制作用、チロシナーゼ阻害作用、繊維芽細胞賦活作用、及びコラーゲン合成促進作用を示す。本発明の発酵物は、更にヒドロキシラジカル消去能を示す。すなわち、本発明の食品組成物は、多様な作用を示すことができる。
【0026】
食品としては、具体的には、サラダなどの生鮮調理品；ステーキ、ピザ、ハンバーグなどの加熱調理品；野菜炒めなどの炒め調理品；トマト、ピーマン、セロリ、ニガウリ、ニンジン、ジャガイモ、アスパラガスなどの野菜及びこれら野菜を加工した調理品；クッキー、パン、ビスケット、乾パン、ケーキ、煎餅、羊羹、プリン、ゼリー、アイスクリーム類、チューインガム、クラッカー、チップス、チョコレート及び飴等の菓子類；うどん、パスタ、及びそば等の麺類；かまぼこ、ハム、及び魚肉ソーセージ等の魚肉練り製品；チーズ、クリーム、及びバターなどの乳製品；みそ、しょう油、ドレッシング、ケチャップ、マヨネーズ、スープの素、麺つゆ、カレー粉、みりん、ルウ等の調味料類；豆腐などの大豆食品；並びにこんにゃくなどを挙げることができる。食品は、好ましくは、乳製品、大豆食品、プリン、ゼリー、アイスクリーム、レトルト食品、即席ルウ、調味料、シーズニング、カレーパウダー、又はスープである。
【0027】
飲料としては、例えばコーヒー飲料；ココア飲料；前記の野菜から得られる野菜ジュース；グレープフルーツジュース、オレンジジュース、ブドウジュース、及びレモンジュース等の果汁飲料；緑茶、紅茶、煎茶、及びウーロン茶等の茶飲料；ビール、ワイン（赤ワイン、白ワイン、又はスパークリングワインなど）、清酒、梅酒、発泡酒、ウィスキー、ブランデー、焼酎、ラム、ジン、及びリキュール類等のアルコール飲料；乳飲料；豆乳飲料；流動食；並びにスポーツ飲料などを挙げることができる。飲料は、好ましくは、コーヒー飲料、果汁飲料、緑茶飲料、煎茶、ウーロン茶、コーヒー飲料、ココア飲料、ビール、ワイン、清酒、梅酒、発泡酒、ウィスキー、ブランデー、焼酎、流動食、又はスポーツ飲料である。
【0028】
本発明の食品組成物は、例えば粉末状、顆粒状、固形状、液状、カプセル状、ペースト状、ゲル状、又は錠剤状であることができる。
【0029】
これらの食品又は飲料には、所望により、酸化防止剤、香料、酸味料、着色料、乳化剤、保存料、調味料、甘味料、香辛料、ｐＨ調整剤、安定剤、酸化防止剤、植物油、動物油、糖及び糖アルコール類、ビタミン、有機酸、果汁エキス類、野菜エキス類、穀類、豆類、野菜類、肉類、魚介類等の食品添加物及び食品素材を単独で又は２種以上組み合わせて配合することができる。これらの食品素材及び食品添加物の配合量は、本発明の目的を損なわない範囲内で適宜決定することができる。
【0030】
食品及び飲料には、機能性食品（飲料）、健康食品（飲料）、又は特定保健用食品が含まれる。本明細書において「健康食品（飲料）」とは、健康に何らかの効果を与えるか、あるいは、効果を期待することができる食品又は飲料を意味し、「機能性食品（飲料）」とは、前記「健康食品（飲料）」の中でも、前記の種々の生体調節機能（すなわち、消化器系、循環器系、内分泌系、免疫系、又は神経系などの生理系統の調節機能）を充分に発現することができるように設計及び加工された食品又は飲料を意味する。「特定保健用食品」とは、生理学的機能などに影響を与える保健機能成分を含む食品で、消費者庁長官の許可を得て特定の保健の用途に適する旨を表示できる食品である。本発明の食品組成物は、好ましくは健康食品（飲料）であり、更に好ましくは機能性食品（飲料）又は特定保健用食品である。
【実施例0031】
以下、実施例によって本発明を具体的に説明するが、これらは本発明の範囲を限定するものではない。
【0032】
《実施例１》
本実施例では、スエヒロタケの菌糸体を用いてプラセンタエキスの発酵物を作製した。
日本産のブタ胎盤２ｋｇを含む水溶液に、蛋白分解酵素を添加し、加水分解により、胎盤酵素分解液（プラセンタエキス）を得た。得られた胎盤酵素分解液の総窒素量はおよそ５．０ｍｇ／ｍＬであった。前記胎盤酵素分解液１０００ｍＬに、ブドウ糖（林純薬工業）２０ｇを溶解し、乳酸（藤井薬品；食品添加物９０％水溶液）を用いてｐＨ４．０に調整した。得られた液体培地をオートクレーブにて滅菌した。
本実施例では、スエヒロタケの菌糸体を用いてプラセンタエキスの発酵物を作製した。
日本産のブタ胎盤２ｋｇを含む水溶液に、蛋白分解酵素を添加し、加水分解により、胎盤酵素分解液（プラセンタエキス）を得た。得られた胎盤酵素分解液の総窒素量はおよそ５．０ｍｇ／ｍＬであった。前記胎盤酵素分解液１０００ｍＬに、ブドウ糖（林純薬工業）２０ｇを溶解し、乳酸（藤井薬品；食品添加物９０％水溶液）を用いてｐＨ４．０に調整した。得られた液体培地をオートクレーブにて滅菌した。
【0033】
スエヒロタケ（commune；独立行政法人製品評価技術基盤機構バイオテクノロジーセンターより分譲されたＮＢＲＣ３０７４９株）の菌糸体を、サブロー寒天培地（栄研化学）に播種し、２５℃にて静置培養した。シャーレ全面に菌糸体が蔓延したものを、直径５ｍｍのディスクに刳り貫き、プラセンタエキスを含む液体培地１０００ｍＬに、１０ディスクを植菌した。
発酵タンクは、直径１２ｃｍ、高さ２０ｃｍの高密度ポリエチレン製ボトル（２０００ｍＬ）に、空気供給口および排気口を有する蓋を取り付けた。空気供給口には、内径８ｍｍのシリコンチューブをつけボトル内に底面から３ｃｍまでたらし、液体培地に空気を送り込めるように調整した。空気はインラインフィルターにて無菌化した。
２５℃に調整した室内にて、液体培地１０００ｍＬに対し、無菌化した空気を５００ｍＬ／ｍｉｎで送風し、酸素を供給した。シリコンチューブ先端にはステンレス製の重りをつけ、底面からの距離を一定に保った。
発酵タンクは、直径１２ｃｍ、高さ２０ｃｍの高密度ポリエチレン製ボトル（２０００ｍＬ）に、空気供給口および排気口を有する蓋を取り付けた。空気供給口には、内径８ｍｍのシリコンチューブをつけボトル内に底面から３ｃｍまでたらし、液体培地に空気を送り込めるように調整した。空気はインラインフィルターにて無菌化した。
２５℃に調整した室内にて、液体培地１０００ｍＬに対し、無菌化した空気を５００ｍＬ／ｍｉｎで送風し、酸素を供給した。シリコンチューブ先端にはステンレス製の重りをつけ、底面からの距離を一定に保った。
【0034】
発酵培養により、まりも状の菌糸体塊が形成された。７日後に１％相当のブドウ糖を追加し、１４日後に、培養液を回収した。
菌糸体に含まれる成分を抽出するために、破砕機（チョッパー）を用いて菌糸体を粉砕した。破砕した菌糸体から６０℃、３０分間の加温抽出行い、菌糸体等を除去して発酵液を得た。
菌糸体に含まれる成分を抽出するために、破砕機（チョッパー）を用いて菌糸体を粉砕した。破砕した菌糸体から６０℃、３０分間の加温抽出行い、菌糸体等を除去して発酵液を得た。
【0035】
《実施例２》
本実施例では、１０，０００ｍＬの発酵培養を行った。
空気供給口および排気口を有する、直径３０ｃｍ高さ３０ｃｍのステンレス製タンク（２０Ｌ）を用いたことを除いては、実施例１の操作をくりかえして、培養液を回収した。プラセンタエキスを含む液体培地１０，０００ｍＬに５０ディスクを植菌し、液体培地１０，０００ｍＬに対し無菌化した空気１５００ｍＬ／ｍｉｎを分岐して送風した。
本実施例では、１０，０００ｍＬの発酵培養を行った。
空気供給口および排気口を有する、直径３０ｃｍ高さ３０ｃｍのステンレス製タンク（２０Ｌ）を用いたことを除いては、実施例１の操作をくりかえして、培養液を回収した。プラセンタエキスを含む液体培地１０，０００ｍＬに５０ディスクを植菌し、液体培地１０，０００ｍＬに対し無菌化した空気１５００ｍＬ／ｍｉｎを分岐して送風した。
【0036】
《実施例３》
本実施例では、１５０，０００ｍＬの発酵培養を行った。
空気供給口および排気口を有する、直径５７ｃｍ高さ９０ｃｍのステンレス製タンク（２００Ｌ）を用いたことを除いては、実施例１の操作をくりかえして、培養液を回収した。実施例２の１０，０００ｍＬの発酵培養方法にてプレ培養を行い、１５０，０００ｍＬの種菌とした。液体培地１５０，０００ｍＬに対し無菌化した空気を８０００ｍＬ／ｍｉｎを分岐して送風した。
本実施例では、１５０，０００ｍＬの発酵培養を行った。
空気供給口および排気口を有する、直径５７ｃｍ高さ９０ｃｍのステンレス製タンク（２００Ｌ）を用いたことを除いては、実施例１の操作をくりかえして、培養液を回収した。実施例２の１０，０００ｍＬの発酵培養方法にてプレ培養を行い、１５０，０００ｍＬの種菌とした。液体培地１５０，０００ｍＬに対し無菌化した空気を８０００ｍＬ／ｍｉｎを分岐して送風した。
【0037】
《ＯＨラジカル消去能の測定》
実施例１で得られた発酵液のＯＨラジカル消去能を測定した。コントロールとして、実施例１の胎盤酵素分解液の沈殿物を除去した液（比較例１）を用いた。試験条件を揃えるために、各液を濃縮・凍結乾燥をして総窒素量を測定した。そして、総窒素量が１０．０ｍｇ／ｍＬになるように精製水で溶解して用いた。
発酵液（実施例１）および胎盤酵素分解液（比較例１）をサンプル希釈液で、１０％、１％、０．１％、及び０．０１％に希釈した。１．５ｍＬチューブに希釈した発酵液（５０μＬ）または希釈した胎盤酵素分解液（５０μＬ）、及び５０μＬの１．５ｍＬ過酸化水素を加えた。また、ブランクには１．５ｍＭ Ｈ２Ｏ２の代替として精製水を用いた。ボルテックスミキサーを用いて溶液を混合し、３７℃で２０分間インキュベートした。前記溶液（１０μＬ）を、１．４９ｍＬの１００ｍｍｏｌ／ＬのＤＡ－６４及び０．５％ＴｒｉｔｏｎＸ－１００含有０．１ｍｏｌ／ＬＰＩＰＥＳ緩衝液を加えた５ｍＬチューブに加え、ボルテックスミキサーを用いて溶液を混合した。３７℃で５分間インキュベートした後に、９６穴マイクロプレートに溶液２００μＬを加え、マイクロプレートリーダーを用いて７２７ｎｍの吸光度を測定した。実施例および比較例の吸光度からＯＨラジカル消去率を次式により算出した。
消去率（％）＝｛（Ｃ－ＣＢ）－（Ｓ－ＳＢ）｝／（Ｃ－ＣＢ）×１００
Ｃ：対照の吸光度
ＣＢ：対照のブランク吸光度
Ｓ：試験品の吸光度
ＳＢ：試験品のブランク吸光度
比較例１の従来のプラセンタエキスと比較し、実施例１の発酵液には有意なＯＨラジカル消去能が認められた。
実施例１で得られた発酵液のＯＨラジカル消去能を測定した。コントロールとして、実施例１の胎盤酵素分解液の沈殿物を除去した液（比較例１）を用いた。試験条件を揃えるために、各液を濃縮・凍結乾燥をして総窒素量を測定した。そして、総窒素量が１０．０ｍｇ／ｍＬになるように精製水で溶解して用いた。
発酵液（実施例１）および胎盤酵素分解液（比較例１）をサンプル希釈液で、１０％、１％、０．１％、及び０．０１％に希釈した。１．５ｍＬチューブに希釈した発酵液（５０μＬ）または希釈した胎盤酵素分解液（５０μＬ）、及び５０μＬの１．５ｍＬ過酸化水素を加えた。また、ブランクには１．５ｍＭ Ｈ２Ｏ２の代替として精製水を用いた。ボルテックスミキサーを用いて溶液を混合し、３７℃で２０分間インキュベートした。前記溶液（１０μＬ）を、１．４９ｍＬの１００ｍｍｏｌ／ＬのＤＡ－６４及び０．５％ＴｒｉｔｏｎＸ－１００含有０．１ｍｏｌ／ＬＰＩＰＥＳ緩衝液を加えた５ｍＬチューブに加え、ボルテックスミキサーを用いて溶液を混合した。３７℃で５分間インキュベートした後に、９６穴マイクロプレートに溶液２００μＬを加え、マイクロプレートリーダーを用いて７２７ｎｍの吸光度を測定した。実施例および比較例の吸光度からＯＨラジカル消去率を次式により算出した。
消去率（％）＝｛（Ｃ－ＣＢ）－（Ｓ－ＳＢ）｝／（Ｃ－ＣＢ）×１００
Ｃ：対照の吸光度
ＣＢ：対照のブランク吸光度
Ｓ：試験品の吸光度
ＳＢ：試験品のブランク吸光度
【表1】
【0038】
《過酸化脂質生成抑制の測定》
実施例１で得られた発酵液の過酸化脂質の生成抑制を測定した。コントロールとして、実施例１の胎盤酵素分解液（プラセンタエキス）（以下、比較例１と称します）を用いた。試験条件を揃えるために、各液を濃縮・凍結乾燥をして総窒素量を測定した。そして、総窒素量が１０．０ｍｇ／ｍＬになるように精製水で溶解して用いた。
発酵液（実施例１）および胎盤酵素分解液（比較例１）をサンプル希釈液で、１０％、１％、０．１％、及び０．０１％に希釈した。１．５ｍＬチューブに、１．２ｍＬの０．２６μリノール酸含有１０ｍＭＳｏｄｉｕｍ Ｄｏｄｅｃｙｌ Ｓｕｌｆａｔｅ溶液、希釈した発酵液（１５μＬ）または希釈した胎盤酵素分解液（１５μＬ）１５μＬを加え、ソニケーションにより溶液を混合した。また、ブランクにはＰＢＳを用いた。１．５ｍＬチューブに６μＬの０．２％２，２－Ａｚｏｂｉｓ（２－ｍｅｔｈｙｌｐｒｏｐｉｏｎａｍｉｄｉｎｅ）Ｄｉｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ（ＡＡＰＨ）溶液を加え、ソニケーションとボルテックスミキサーにより溶液を混合した。紫外線透過型９６ウェルマイクロプレートに、２００μＬ分取し、マイクロプレートリーダーを用いて、２３３ｎｍの吸光度を測定した。プレートシールによりマイクロプレートを密封し、５０℃で９０分間インキュベートした。９０分後、マイクロプレートを２７０ｒｐｍで３０秒間振とうした後、マイクロプレートリーダーを用いて２３３ｎｍの吸光度を測定した。実施例１および比較例１の吸光度から過酸化脂質生成抑制率を次式により算出した。
過酸化脂質生成抑制率（％）＝｛（Ｃ－ＣＢ）－（Ｓ－ＳＢ）｝／（Ｃ－ＣＢ）×１００
Ｃ：対照の吸光度
ＣＢ：対照のブランク吸光度
Ｓ：試験品の吸光度
ＳＢ：試験品のブランク吸光度
比較例１の従来のプラセンタエキスと比較し、実施例１の発酵液には有意な過酸化脂質生成抑制が認められた。
実施例１で得られた発酵液の過酸化脂質の生成抑制を測定した。コントロールとして、実施例１の胎盤酵素分解液（プラセンタエキス）（以下、比較例１と称します）を用いた。試験条件を揃えるために、各液を濃縮・凍結乾燥をして総窒素量を測定した。そして、総窒素量が１０．０ｍｇ／ｍＬになるように精製水で溶解して用いた。
発酵液（実施例１）および胎盤酵素分解液（比較例１）をサンプル希釈液で、１０％、１％、０．１％、及び０．０１％に希釈した。１．５ｍＬチューブに、１．２ｍＬの０．２６μリノール酸含有１０ｍＭＳｏｄｉｕｍ Ｄｏｄｅｃｙｌ Ｓｕｌｆａｔｅ溶液、希釈した発酵液（１５μＬ）または希釈した胎盤酵素分解液（１５μＬ）１５μＬを加え、ソニケーションにより溶液を混合した。また、ブランクにはＰＢＳを用いた。１．５ｍＬチューブに６μＬの０．２％２，２－Ａｚｏｂｉｓ（２－ｍｅｔｈｙｌｐｒｏｐｉｏｎａｍｉｄｉｎｅ）Ｄｉｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ（ＡＡＰＨ）溶液を加え、ソニケーションとボルテックスミキサーにより溶液を混合した。紫外線透過型９６ウェルマイクロプレートに、２００μＬ分取し、マイクロプレートリーダーを用いて、２３３ｎｍの吸光度を測定した。プレートシールによりマイクロプレートを密封し、５０℃で９０分間インキュベートした。９０分後、マイクロプレートを２７０ｒｐｍで３０秒間振とうした後、マイクロプレートリーダーを用いて２３３ｎｍの吸光度を測定した。実施例１および比較例１の吸光度から過酸化脂質生成抑制率を次式により算出した。
過酸化脂質生成抑制率（％）＝｛（Ｃ－ＣＢ）－（Ｓ－ＳＢ）｝／（Ｃ－ＣＢ）×１００
Ｃ：対照の吸光度
ＣＢ：対照のブランク吸光度
Ｓ：試験品の吸光度
ＳＢ：試験品のブランク吸光度
【表2】
【産業上の利用可能性】
【0039】
本発明の発酵物は、化粧料組成物または食品組成物の原料として有用に用いることができる。
【符号の説明】
【0040】
１・・・培養槽；
２・・・液体培地；
３・・・酸素供給管；
４・・・カプラー；
５・・・吹き出し口；
６・・・気泡；
７・・・エアコンプレッサー；
８・・・流量計；
９・・・中空糸フィルター；
２・・・液体培地；
３・・・酸素供給管；
４・・・カプラー；
５・・・吹き出し口；
６・・・気泡；
７・・・エアコンプレッサー；
８・・・流量計；
９・・・中空糸フィルター；
【図1】
【図2】
【図3】
【手続補正書】
【提出日】2020-12-17
【手続補正1】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項1】
液体培地でプラセンタを担子菌門ハラタケ目スエヒロタケ科スエヒロタケ（スエヒロタケ属）の菌糸体によって発酵培養する方法であって、酸素を含む気体を液体培地中に供給しながら培養する、発酵培養方法。
【請求項2】
酸素の供給量が、１容量部の液体培地に対して、０．０１～１容量部／分である、請求項１に記載の発酵培養方法。
【請求項3】
請求項１又は２に記載の発酵培養方法により得られる発酵物。
【請求項4】
請求項３に記載の発酵物を含む化粧料組成物。
【請求項5】
請求項３に記載の発酵物を含む食品組成物。