特開 2022-93202 細胞培養基材、細胞培養用樹脂薄膜、および細胞培養方法

(19)【発行国】日本国特許庁(JP)

(12)【公報種別】公開特許公報(A)

(11)【公開番号】P2022093202

(43)【公開日】2022-06-23

(54)【発明の名称】細胞培養基材、細胞培養用樹脂薄膜、および細胞培養方法

(51)【国際特許分類】

   C12M 1/00 20060101AFI20220616BHJP

   C12N 5/00 20060101ALI20220616BHJP

【ＦＩ】

C12M1/00 C

C12N5/00

【審査請求】未請求

【請求項の数】13

【出願形態】ＯＬ

(21)【出願番号】P 2020206366

(22)【出願日】2020-12-11

(71)【出願人】

【識別番号】000125369

【氏名又は名称】学校法人東海大学

(74)【代理人】

【識別番号】110001807

【氏名又は名称】特許業務法人磯野国際特許商標事務所

(72)【発明者】

【氏名】木村 啓志

(72)【発明者】

【氏名】福田 篤

(72)【発明者】

【氏名】岡村 陽介

(72)【発明者】

【氏名】喜多 理王

(72)【発明者】

【氏名】大友 麻子

(72)【発明者】

【氏名】張 宏

【テーマコード（参考）】

4B029

4B065

【Ｆターム（参考）】

4B029BB11

4B029CC02

4B029HA06

4B065AA90X

4B065BC41

4B065BC45

4B065BC50

4B065CA46

(57)【要約】

【課題】足場依存性を有する細胞の培養に広く使用することができ、光学観察に好適な細胞培養基材を提供する。
【解決手段】ガラスからなる基材２と、基材２の培養面側を被覆する樹脂薄膜３と、を備える細胞培養基材１であって、載置した細胞の光学観察における光の波長の１／２よりも樹脂薄膜３の厚さが小さいことを特徴とする。
【選択図】図１

【特許請求の範囲】

【請求項1】

ガラスからなる基材と、前記基材の培養面側を被覆する樹脂薄膜と、を備える細胞培養基材であって、
載置した細胞の光学観察における光の波長の１／２よりも前記樹脂薄膜の厚さが小さいことを特徴とする細胞培養基材。

【請求項2】

前記光は可視光であり、
前記樹脂薄膜の厚さは、可視光の波長域の下限の１／２よりも小さい請求項１に記載の細胞培養基材。

【請求項3】

前記樹脂薄膜の厚さは、前記光学観察に使用される光学顕微鏡の光源が照射する光の波長の１／２よりも小さい請求項１または請求項２に記載の細胞培養基材。

【請求項4】

ガラスからなる基材と、前記基材の培養面側を被覆する厚さ２００ｎｍ以下の樹脂薄膜と、を備えることを特徴とする細胞培養基材。

【請求項5】

前記樹脂薄膜は、ポリスチレン、ポリメチルメタクリレート、ポリエチレンテレフタラート、ポリジメチルシロキサン、ポリカーボネート、ポリテトラフルオロエチレン、シクロオレフィン樹脂のいずれかからなる請求項１乃至請求項４のいずれか一項に記載の細胞培養基材。

【請求項6】

前記樹脂薄膜は、アニール処理が施されている請求項１乃至請求項５のいずれか一項に記載の細胞培養基材。

【請求項7】

前記樹脂薄膜は、表面改質処理が施されている請求項１乃至請求項６のいずれか一項に記載の細胞培養基材。

【請求項8】

前記樹脂薄膜の表面改質処理は、プラズマ照射、紫外線照射、またはシランカップリング処理である請求項７に記載の細胞培養基材。

【請求項9】

前記樹脂薄膜上に、細胞外マトリクスを備える請求項１乃至請求項８のいずれか一項に記載の細胞培養基材。

【請求項10】

基材の培養面側を被覆して細胞培養基材とする細胞培養用樹脂薄膜であって、
前記細胞培養基材上の細胞の光学観察における光の波長の１／２よりも厚さが小さいことを特徴とする細胞培養用樹脂薄膜。

【請求項11】

ポリスチレン、ポリメチルメタクリレート、ポリエチレンテレフタラート、ポリジメチルシロキサン、ポリカーボネート、ポリテトラフルオロエチレン、シクロオレフィン樹脂のいずれかからなる請求項１０に記載の細胞培養用樹脂薄膜。

【請求項12】

ガラスからなる基材を樹脂薄膜で被覆した細胞培養基材の前記樹脂薄膜側の面上に細胞を播種する播種工程と、
前記細胞を増殖させる培養工程と、
前記細胞を前記細胞培養基材上において光学的に観察する観察工程と、を行う細胞培養方法であって、
前記細胞培養基材は、前記樹脂薄膜の厚さが、前記観察工程における光の波長の１／２よりも小さいことを特徴とする細胞培養方法。

【請求項13】

前記播種工程の前に、前記細胞培養基材の前記樹脂薄膜側の面上に細胞外マトリクスを被覆する接着基質準備工程を行う請求項１２に記載の細胞培養方法。

【発明の詳細な説明】

【技術分野】

【0001】

本発明は、細胞培養基材、細胞培養用樹脂薄膜、および細胞培養方法に関する。

【背景技術】

【0002】

一般的な足場依存性を有する細胞の培養において、拡大培養を目的とする場合には、表面改質処理の容易なポリスチレン（ＰＳ）等のプラスチック製の細胞培養基材を使用したり、ポリリジンやコラーゲン等の生体分子からなる細胞外マトリクス（ＥＣＭ）を接着基質として表面にコーティングした細胞培養基材を使用したりする（例えば、非特許文献１）。一方、イメージングを目的として細胞を培養するための細胞培養基材は、培養した細胞を載置した状態で光学顕微鏡による観察を行うために、光学特性に優れたガラス製のものが多く使用されている。ところが、一般的に、多くの株化細胞、初代培養細胞、および胚性幹（ＥＳ）細胞や人工多能性幹（ｉＰＳ）細胞等は、ガラス表面に接着し難い。また、播種した細胞がガラス表面に接着したとしても、分裂の際には接着面から離れるので、その後にガラス表面に再度接着できずに剥がれてしまって死に至り、増殖し難い。そこで、シクロオレフィン樹脂（ＣＯＰ）のような光学特性に優れたプラスチック製の細胞培養基材が開発されている（例えば、特許文献１、非特許文献２）。

【先行技術文献】

【特許文献】

【0003】

【特許文献1】特許第４３９１５２３号公報

【非特許文献】

【0004】

【非特許文献1】谿口征雅、関口 清俊、“幹細胞用培養基質の開発：現状と課題”、生物工学、９２巻、９号、ｐ．４９１－４９４、２０１４年

【非特許文献2】Aurora Microplatesカタログ、ワケンビーテック株式会社、［２０２０年１２月１日検索］、インターネット〈URL:https://www.wakenbtech.co.jp/wp/wp-content/uploads/2016/03/1604-Aurora_Catalog-J-1.pdf〉

【発明の概要】

【発明が解決しようとする課題】

【0005】

一部の株化細胞や、神経細胞および肝細胞等の初代培養細胞の培養においては、最適化された細胞外マトリクスをコーティングすることにより、ガラス基材を使用することができる。一方、再生医療分野で研究に利用されているヒトＥＳ／ｉＰＳ細胞およびその分化細胞に対しては、ガラス基材では細胞接着性が不十分であり、増殖し難い。また、シクロオレフィン樹脂は、自家蛍光等の光学特性がガラスに及ばず、共焦点レーザー顕微鏡等による光学観察には不十分である。したがって、接着性の低いヒトＥＳ／ｉＰＳ細胞およびその分化細胞を安定して培養しながら光学的な観察を継続するためには、ガラス基材と同等の光学特性を有しつつ、プラスチック基材のような細胞接着性能を有する細胞培養基材が必要である。

【0006】

本発明は、前記問題点に鑑みてなされたものであり、ヒトやマウス等の哺乳動物由来のＥＳ／ｉＰＳ細胞を始めとする足場依存性を有する細胞の培養に広く使用することができ、光学観察に好適な細胞培養基材、および細胞培養方法を提供することを課題とする。

【課題を解決するための手段】

【0007】

前記課題を解決するため、本発明に係る細胞培養基材は、ガラスからなる基材と、前記基材の培養面側を被覆する樹脂薄膜と、を備え、載置した細胞の光学観察における光の波長の１／２よりも前記樹脂薄膜の厚さが小さい構成とする。また、本発明に係る細胞培養用樹脂薄膜は、基材の培養面側を被覆して細胞培養基材とするものであって、前記細胞培養基材上の細胞の光学観察における光の波長の１／２よりも厚さが小さい構成とする。かかる構成により、光学特性に優れたガラスを基材としつつ、表面を被覆する樹脂により、ガラスの光学特性を損なうことなくガラス基材に細胞の接着性を付与することができる。

【0008】

前記課題を解決するため、本発明に係る細胞培養方法は、ガラスからなる基材を樹脂薄膜で被覆した細胞培養基材の前記樹脂薄膜側の面上に細胞を播種する播種工程と、前記細胞を増殖させる培養工程と、前記細胞を前記細胞培養基材上において光学的に観察する観察工程と、を行い、前記細胞培養基材の樹脂薄膜の厚さが、前記観察工程における光の波長の１／２よりも小さいとする。かかる手順により、細胞培養方法は、光学観察に好適な細胞培養基材で足場依存性を有する細胞を培養することができる。

【発明の効果】

【0009】

本発明によれば、足場依存性を有する細胞の多くを培養することができると共に、光学観察が容易となる。

【図面の簡単な説明】

【0010】

【図1】本発明の実施形態に係る細胞培養基材の構成を説明する模式図である。

【図2】本発明の実施形態に係る細胞培養基材の製造方法を説明するフローチャートである。

【図3】本発明の実施形態に係る細胞培養用樹脂薄膜の構成を説明する模式図である。

【図4】本発明の実施形態に係る細胞培養方法を説明するフローチャートである。

【図5】本発明に係る細胞培養基材の実施例と比較例の各供試材を使用してヒトＥＳ細胞を培養した写真であり、（ａ）は実施例（ＳＰＬ１）、（ｂ）はポリスチレン基材の参考例（ＳＰＬ２）、（ｃ）は樹脂薄膜のないガラス基材の比較例（ＳＰＬ３）である。

【図6】本発明に係る細胞培養基材の実施例と比較例の各供試材を使用してヒトｉＰＳ細胞を培養した写真であり、（ａ）は実施例（ＳＰＬ１）、（ｂ）はポリスチレン基材の参考例（ＳＰＬ２）、（ｃ）は樹脂薄膜のないガラス基材の比較例（ＳＰＬ３）である。

【図7】本発明に係る細胞培養基材の実施例（ＳＰＬ１）、参考例（ＳＰＬ２）および比較例（ＳＰＬ３）によるヒトＥＳ細胞を培養した細胞数を示すグラフである。

【図8】本発明に係る細胞培養基材の実施例（ＳＰＬ１）、参考例（ＳＰＬ２）および比較例（ＳＰＬ３）によるヒトｉＰＳ細胞を培養した細胞数を示すグラフである。

【図9】本発明に係る細胞培養基材の実施例と比較例の各供試材上のヒトＥＳ細胞についてのＲＮＡ－ＦＩＳＨ解析の共焦点顕微鏡写真であり、（ａ）は実施例（ＳＰＬ１）、（ｂ）はシクロオレフィン樹脂基材の比較例（ＳＰＬ４）、（ｃ）は樹脂薄膜のないガラス基材の参考例（ＳＰＬ３）である。

【図10】本発明に係る細胞培養基材の実施例と比較例の各供試材上のヒトＥＳ細胞についてのＲＮＡ－ＦＩＳＨ解析における、ＤＡＰＩの蛍光輝度の分布図である。

【発明を実施するための形態】

【0011】

本発明に係る細胞培養基材および細胞培養方法を実施するための形態について、図を参照して説明する。図面に示す細胞培養基材およびその要素は、説明を明確にするために、大きさや位置関係等を誇張していることがあり、また、形状を単純化していることがある。

【0012】

〔細胞培養基材〕
本発明の実施形態に係る細胞培養基材１は、図１に示すように、ガラスからなる基材２と基材２の片面（上面）を被覆する樹脂薄膜３とを備える。細胞培養基材１は、単層培養に使用され、樹脂薄膜３を設けた側の面を細胞の培養面として、組織から単離された細胞等を播種される。以下、各要素について詳細に説明する。

【0013】

（基材）
基材２は、細胞培養基材１の主たる部材である。基材２は、材料が光学観察に使用可能なガラスであり、高倍率光学顕微鏡や蛍光顕微鏡等による光学観察に使用可能な形状に加工されている。光学観察に使用できれば、基材２のガラスの材料、形状は特に限定されない。また、基材２は、光学観察用に市販されているガラス製のスライドやカバースリップ等を流用してもよい。基材２は、光学観察の種類に対応した光学特性（高透過率、低複屈折性、低自家蛍光等）を有し、例えば、ホウケイ酸ガラスや石英ガラス等が適用され、平板状であることが好ましく、矩形や円形等、所望の平面視形状とすることができる。そして、基材２は、樹脂薄膜３、またはさらに細胞外マトリクスを支持するための強度を有しつつ、光学観察に対応した厚さとする。具体的には、基材２の厚さは、０．０８ｍｍ以上が好ましく、０．１２ｍｍ以上がより好ましく、０．１５ｍｍ以上がさらに好ましい。また、低倍率観察には１ｍｍ以下、高倍率観察には０．２０ｍｍ以下が好ましい。特に基材２が１ｍｍ未満の厚さである細胞培養基材１は、ディッシュ（シャーレ）やウェルプレート等の蓋付きの培養容器に収容可能なサイズとしたり、後記するように、プラスチック製の枠体等に底板として貼り合わされたりすることが好ましい。

【0014】

（樹脂薄膜）
樹脂薄膜３は、細胞培養基材１の培養面に設けられる。樹脂薄膜３は、基材２の一面を被覆することにより、培養しようとする細胞が接着し易くなって伸展するようにする。樹脂薄膜３は、単層培養に使用される一般的なプラスチック製のディッシュやウェルプレート等に適用されるような、無毒性、耐久性、および透明性を有する樹脂で形成される。具体的には、ポリスチレン（ＰＳ）、ポリメチルメタクリレート（ＰＭＭＡ）、ポリエチレンテレフタラート（ＰＥＴ）、ポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）、ポリカーボネート（ＰＣ）、ポリテトラフルオロエチレン（ＰＴＦＥ）、またはシクロオレフィン樹脂（ＣＯＰ）等のいずれかの樹脂を適用することができ、ポリスチレンが特に好ましい。あるいは、前記樹脂のいずれかを親水性基含有モノマーとの共重合体として、表面が親水性の樹脂薄膜３とすることもできる。樹脂薄膜３は、細胞接着性を付与するために、厚さが５ｎｍ以上であり、１０ｎｍ以上が好ましく、２０ｎｍ以上がより好ましく、５０ｎｍ以上がさらに好ましい。一方、基材２への被覆方法等にもよるが、厚過ぎると基材２への密着性が低下して剥離する虞があるので、厚さが３００ｎｍ以下が好ましく、２００ｎｍ以下がより好ましい。

【0015】

また、細胞培養基材１上の細胞を光学顕微鏡または目視で光学観察に供する場合には、樹脂薄膜３は、ガラスからなる基材２よりも光学特性が劣るので影響を与えないようにするために、より薄いことが好ましく、光の波長の１／２よりも小さい厚さとする。光の波長の１／２よりも小さいとは、例えば、励起波長３７０ｎｍの蛍光顕微鏡による観察であれば、１８５ｎｍ未満を指す。複数の単波長光源（例えば、４０５ｎｍ、４８８ｎｍ、５４６ｎｍ、６３３ｎｍ）を使用する共焦点レーザー顕微鏡等での観察であれば、最短波長の単波長光源の４０５ｎｍの１／２よりも小さい２０２．５ｎｍ未満を指す。また、可視光のような波長域（例えば、３８０～７８０ｎｍ）を有する光での観察であれば、短波長である紫色の波長帯（３８０～４３０ｎｍ）の中心波長の４０５ｎｍの１／２よりも小さい２０２．５ｎｍ未満を指し、好ましくは波長帯における下限の３８０ｎｍの１／２よりも小さい１９０ｎｍ未満である。また、波長７００～１１００ｎｍの近赤外レーザー光源を使用する走査型多光子レーザー顕微鏡による観察であれば、１０００～１１００ｎｍの波長域の光で観察可能とするように、１０００ｎｍの１／２よりも小さい５００ｎｍ未満を指し、好ましくは下限の７００ｎｍの１／２よりも小さい３５０ｎｍ未満である。言い換えると、樹脂薄膜３の厚さの２倍を超える波長域の光による観察を、樹脂薄膜３による光学的影響を受けずにすることができる。樹脂薄膜３は、細胞培養基材１に汎用性を持たせるために、また、基材２との密着性を確保するために、厚さ２００ｎｍ以下であることが特に好ましい。なお、樹脂薄膜３は、細胞培養基材１の上面全体を被覆していなくてもよく、少なくとも細胞を伸展させたい領域に設けられていればよく、例えば、平面視で周縁部を被覆しない構成とすることができる。

【0016】

樹脂薄膜３は、基材２との密着性を得るために、後記の細胞培養基材の製造方法で説明するように、アニール処理を施されていることが好ましい。また、樹脂薄膜３は、必要に応じて表面改質処理が施されている。前記のポリスチレンやポリエチレンテレフタラート等の樹脂は、疎水性であるので、細胞や細胞外マトリクスとの親和性が低い場合があり、細胞によっては接着性が不十分である虞がある。そのため、細胞培養基材１は、このような細胞を培養する場合には、樹脂薄膜３が、表面改質処理によって表面に親水性官能基を導入されて適度な親水性を付与されていることが好ましい。親水性を付与するための処理には、プラズマ照射、紫外線照射による活性酸素曝露、またはグラフト重合等を適用することができる。または、樹脂薄膜３は、シランカップリング処理によってアミノ基を修飾し、さらにグルタルアルデヒドを修飾していてもよく、このような処理により、様々な細胞外マトリクスを強固に架橋することができる。シランカップリング処理には、公知のカップリング剤を使用することができる。なお、樹脂薄膜３は、表面全体が表面改質されていなくてもよく、少なくとも細胞を伸展させたい領域が表面改質されていればよい。

【0017】

（細胞外マトリクス）
培養する細胞によっては、培養面に接着基質（足場）を必要とするので、このような細胞を培養するための細胞培養基材１は、樹脂薄膜３上に細胞外マトリクスが被覆されていてもよい（図示省略）。細胞外マトリクスは、培養する細胞に対応した生体分子からなり、例えば、フィブロネクチン、ラミニン、ビトロネクチン、コラーゲン、ポリ－Ｄ－リジン、ならびにこれらを調製したCorning Matrigel（登録商標）等が適用される。

【0018】

（細胞培養基材の製造方法）
細胞培養基材１は、図２に示すように、樹脂薄膜３を基材２上に形成する樹脂薄膜形成工程Ｓ１を行って製造され、その後に必要に応じて、樹脂薄膜３を表面改質する表面改質処理工程Ｓ２や、樹脂薄膜３上に細胞外マトリクスを被覆する接着基質被覆工程Ｓ３ａを行う。樹脂薄膜形成工程Ｓ１は、樹脂薄膜３の材料や膜厚に対応した公知の方法を適用することができ、一例として、樹脂の有機溶媒溶液を基材２上に均一な厚みに塗布し、乾燥して溶媒を揮発させて、所望の厚さの樹脂薄膜３を形成する塗布工程Ｓ１１を行う。溶液の塗布方法は、スピンコート法、ディップコート法、スプレー法等が挙げられる。樹脂薄膜形成工程Ｓ１は、塗布工程Ｓ１１の後に、樹脂薄膜３に材料に応じた条件でアニール処理を施すアニール工程Ｓ１２を行うことが好ましい。

【0019】

表面改質処理工程Ｓ２は、樹脂薄膜形成工程Ｓ１の後、また、接着基質被覆工程Ｓ３ａを行う場合にはその前に行い、樹脂薄膜３の材料と、培養する細胞やそのために使用する細胞外マトリクスとに応じた表面改質処理を行う。表面改質処理工程Ｓ２は、一般的なプラスチック製のディッシュ等に施される方法と同様の表面改質処理方法を適用することができる。親水性を付与するためには、プラズマ照射、紫外線照射による活性酸素曝露、またはグラフト重合等を適用する。シランカップリング処理は、公知のカップリング剤を使用することができる。接着基質被覆工程Ｓ３ａは、細胞外マトリクスを被覆した一般的なプラスチック製のディッシュ等と同様に、樹脂薄膜３上に細胞外マトリクスを被覆する。

【0020】

細胞培養基材１は、ポリスチレン等のプラスチック製のディッシュやウェルプレート等の培養容器に組み合わせて使用することもできる。具体的には、ガラスボトムディッシュのように、底面に孔が形成されたプラスチック製の本体と本体の底面に貼り合わされて孔を塞ぐガラス板とから構成されているものについて、ガラス板を細胞培養基材１に置き換えることができる。このような構成により、細胞培養基材１を培養容器と一体として細胞を培養することができると共に、細胞培養基材１（基材２）の厚さが小さくても細胞や培地を支持することができ、さらに、培養した細胞を細胞培養基材１と共に培養容器から取り出さずに観察することができる。

【0021】

〔細胞培養用樹脂薄膜〕
次に、細胞培養用樹脂薄膜について説明する。本発明の実施形態に係る細胞培養用樹脂薄膜３Ａは、図３に示すように、基材２Ａの培養面側を被覆して細胞培養基材とするシート状の部材であり、得られた細胞培養基材は、単層培養に使用される。特に、細胞培養基材１の基材２と同じ構成のガラス製の基材２Ａを被覆することにより、前記実施形態に係る細胞培養基材１と同様に光学観察が可能となる。すなわち、細胞培養用樹脂薄膜３Ａは、細胞培養基材１の樹脂薄膜３と同じ構成であり、単体で形成されるように構成されている。したがって、細胞培養用樹脂薄膜３Ａは、単層培養に使用される一般的なプラスチック製のディッシュやウェルプレート等に適用されるような、無毒性、耐久性、および透明性を有する樹脂で形成される。具体的には、ポリスチレン（ＰＳ）、ポリメチルメタクリレート（ＰＭＭＡ）、ポリエチレンテレフタラート（ＰＥＴ）、ポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）、ポリカーボネート（ＰＣ）、ポリテトラフルオロエチレン（ＰＴＦＥ）、またはシクロオレフィン樹脂（ＣＯＰ）等のいずれかの樹脂を適用することができ、ポリスチレンが特に好ましい。 あるいは、前記樹脂のいずれかを親水性基含有モノマーとの共重合体として、表面が親水性の細胞培養用樹脂薄膜とすることもできる。また、細胞培養用樹脂薄膜３Ａは、破損等しないように十分な強度を得るために、厚さが５０ｎｍ以上であることが好ましい。また、細胞培養用樹脂薄膜は、後記するように接着剤等を介在せずに基材に貼付するために、厚さが２００ｎｍ以下であることが好ましい。

【0022】

（細胞培養用樹脂薄膜の製造方法）
細胞培養用樹脂薄膜３Ａは、シリコン等からなる基板上に形成した後、基板から剥離して製造される。基板上に細胞培養用樹脂薄膜を形成する方法は、前記細胞培養基材の製造方法における塗布工程Ｓ１１と同様である。細胞培養用樹脂薄膜３Ａを形成する樹脂の有機溶媒溶液を塗布する前に、前記有機溶媒溶液の有機溶媒に不溶、かつ前記樹脂を不溶な溶媒（水性溶媒）に溶解する材料を剥離剤として、その溶液を基板上に塗布工程Ｓ１１と同様に塗布して皮膜を形成することが好ましい。剥離剤となる材料として、ポリアクリル酸（ＰＡＡ）、ポリメタクリル酸、およびポリアクリルアミドのようなアクリル酸系水溶性ポリマー、ポリスチレンスルホン酸（ＰＳＳ）、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、ポリビニルアルコール（ＰＶＡＬ）、ならびに、デンプンやセルロースアセテート等の多糖類の非イオン性の水溶性高分子が挙げられる。剥離剤は、厚さが０．０１～１０μｍであることが好ましい。基板上に剥離剤を介在して細胞培養用樹脂薄膜３Ａを形成した後、基板ごと水性溶媒（例えば、水）に浸漬することにより、剥離剤を溶解して、細胞培養用樹脂薄膜３Ａを基板から剥離する。そして、細胞培養用樹脂薄膜３Ａを水性溶媒から掬い上げて乾燥させる。なお、細胞培養用樹脂薄膜３Ａは、基板に貼り付けた状態で保管、流通するように構成されていてもよい。この場合、基板は厚さが小さいことが好ましく、数ｍｍ以下が好ましく、１ｍｍ以下がより好ましく、一方、１０μｍ以上が好ましい。

【0023】

細胞培養用樹脂薄膜３Ａは、基材２Ａに、その培養面側と接触させることにより貼付される。細胞培養用樹脂薄膜３Ａは、２００ｎｍ程度以下の厚さであれば高密着性を発現し、ファンデルワールス力や静電相互作用等の物理吸着のみにより基材２Ａに貼付される。また、基材２Ａを被覆した細胞培養用樹脂薄膜３Ａは、基材２Ａとの密着性を得るために、アニール処理を施されることが好ましい。アニール処理方法は、前記細胞培養基材の製造方法におけるアニール工程Ｓ１２と同様である。細胞培養用樹脂薄膜３Ａを被覆した基材２Ａは、細胞培養基材１と同様に使用することができる。

【0024】

〔細胞培養方法〕
本発明の実施形態に係る細胞培養基材を使用した細胞培養方法について説明する。本発明の実施形態に係る細胞培養方法は、図４に示すように、前記実施形態に係る細胞培養基材の樹脂薄膜側の面上に細胞を播種する播種工程Ｓ４と、前記細胞を増殖させる培養工程Ｓ５と、前記細胞を前記細胞培養基材上において光学的に観察する観察工程Ｓ６と、を行い、前記細胞培養基材の樹脂薄膜の厚さが、観察工程Ｓ６における光の波長の１／２よりも小さいことを特徴とする。細胞培養方法は、さらに必要に応じて、播種工程Ｓ４の前に、前記細胞培養基材の前記樹脂薄膜側の面上に細胞外マトリクスを被覆する接着基質準備工程Ｓ３ｂを行う。工程Ｓ３ｂ，Ｓ４，Ｓ５は、公知の単層培養と同様に行うことができる。

【0025】

本実施形態に係る細胞培養方法で培養する細胞は、ポリスチレン等のプラスチック製のディッシュやプレートで単層培養が可能なものであれば特に限定されず、また、細胞培養基材上に載置（接着）した状態で、共焦点レーザー顕微鏡や超解像顕微鏡等による光学観察に供される場合に好適である。特に足場依存性によりガラス上での培養が困難なものが好適である。具体的には、初代培養細胞、マウスやヒト等の動物のＥＳ／ｉＰＳ細胞およびその分化細胞、ならびに各種株化細胞等が挙げられる。

【0026】

（接着基質準備工程）
接着基質準備工程Ｓ３ｂは、細胞培養基材１の樹脂薄膜３上に細胞外マトリクスを塗布する。接着基質準備工程Ｓ３ｂは、細胞培養基材１が予め細胞外マトリクスを被覆されておらず、接着基質の必要な細胞を培養する場合に行う。

【0027】

（播種工程）
播種工程Ｓ４は、細胞培養基材１の培養面に培養する細胞を播種すると共に、培地を供給する。このとき、所定の播種密度となるように、細胞培養基材１の面積に応じた数の細胞を播種する。培地は、細胞を播種する前に細胞培養基材１に供給してもよいし、細胞を培地に懸濁させてから播種してもよい。

【0028】

（培養工程）
培養工程Ｓ５は、細胞を播種した細胞培養基材１をインキュベーター（培養器）等に格納して、所定の環境（温度、湿度、ＣＯ₂濃度等）に曝露する。また、必要に応じて、所定の時間が経過した時に培地を添加または交換する。培養工程Ｓ５は、最長で、細胞が細胞培養基材１の培養面（樹脂薄膜３や細胞外マトリクスで被覆された領域）全体に伸展するまでの時間とする。

【0029】

（観察工程）
観察工程Ｓ６は、培養した細胞を細胞培養基材１上に載置したまま、光学顕微鏡で観察する。光学顕微鏡は、共焦点顕微鏡、全反射顕微鏡、誘導放出抑制（ＳＴＥＤ）顕微鏡等である。また、必要に応じて、細胞を染色する。細胞培養基材１が培養容器に収容されて培養した場合は、細胞培養基材１を細胞と共に培養容器から取り出して、光学顕微鏡のステージに載置する。

【0030】

以上、本発明に係る細胞培養基材および細胞培養方法を実施するための実施形態につい説明したが、以下に、本発明の効果を確認した実施例について説明する。なお、本発明はこの実施例および前記実施形態に限定されるものではなく、請求項に示した範囲で種々の変更が可能である。

【実施例0031】

〔細胞培養実験〕
細胞接着性を評価するために、足場依存性の細胞であるヒトＥＳ細胞およびヒトｉＰＳ細胞の単層培養を行い、細胞の伸展状態および細胞数を観察した。

【0032】

（供試材）
厚さ０．１７ｍｍ、１８ｍｍ×１８ｍｍ（培養面積３．２４ｃｍ²）のカバーガラスZeiss，#0109030091（ZEISS社製）を基材とし、その片面に、分子量２６００００のポリスチレン（Acros Organics社製、３０ｍｇ／ｍＬ）のトルエン溶液を、４０００ｒｐｍ、６０ｓのスピンコートにより塗布し、乾燥器で１００℃、１晩（約８ｈｒ）のアニール処理を施して、厚さ１６０ｎｍのポリスチレンからなる樹脂薄膜を形成して、本発明の実施例に係る供試材（ＳＰＬ１）を作製した。また、参考例として、ポリスチレン製、径３５ｍｍ（培養面積９．６２ｃｍ²）のウェルプレート（６ｗｅｌｌ、表面処理なし）（#353046、FALCON社製）を供試材ＳＰＬ２とした。一方、比較例として、供試材ＳＰＬ１のカバーガラスを供試材ＳＰＬ３とした。さらに供試材ＳＰＬ１，ＳＰＬ３は、供試材ＳＰＬ２と同じウェルプレートに収容した。ヒトＥＳ細胞、ヒトｉＰＳ細胞それぞれの培養用に、各供試材を３ｗｅｌｌ準備した。

【0033】

（播種、培養）
供試材の片面全体（ＳＰＬ１は樹脂薄膜側、ＳＰＬ２は底面全体）に、細胞外マトリクスとして、Corning Matrigel（登録商標）#354277を塗布した。さらにその上に培地として、StemFlex #A3349401（Thermo Fisher Scientific製）を、Rock inhibitor +を添加して塗布し、ヒトＥＳ細胞またはヒトｉＰＳ細胞を播種した。ヒトＥＳ細胞（SEES1）は、播種密度５．２×１０³ｃｅｌｌｓ／ｃｍ²で、各供試材に播種した。また、ヒトｉＰＳ細胞（ADSC-iPS）は、播種密度１．０×１０³ｃｅｌｌｓ／ｃｍ²で、各供試材に播種した。供試材に播種した細胞は、３７℃、５％ＣＯ₂、９５％Ａｉｒ、ｈｕｍｉｄｉｔｙ１００％に調整した培養器で培養した。培養開始から２４時間後、Rock inhibitor -を添加した培地に交換し、さらに９日間培養した。

【0034】

（評価）
計１０日間の培養後、供試材上の細胞をCrystal violetで染色し、目視で観察した。また、面積あたりの細胞数の指標として、ＩｍａｇｅＪ（https://imagej.nih.gov/ij/）により染色部分の信号強度を定量して、培養面積あたりの値を算出した。染色したヒトＥＳ細胞の写真を図５（ａ）、（ｂ）、（ｃ）に示し、ヒトｉＰＳ細胞の写真を図６（ａ）、（ｂ）、（ｃ）に示す。供試材上の色の濃い部分が、染色された細胞である。また、ヒトＥＳ細胞の細胞数のグラフを図７に、ヒトｉＰＳ細胞の細胞数のグラフを図８に示す。

【0035】

本発明の実施例に係る細胞培養基材である供試材ＳＰＬ１を使用することにより、図５（ａ）、（ｂ）および図６（ａ）、（ｂ）に示すように、ポリスチレン製の供試材ＳＰＬ２と同様に、培養面に細胞が伸展して増殖した。さらに、図７および図８に示すように、実施例（供試材ＳＰＬ１）は、供試材ＳＰＬ２と同等に細胞を培養できることが確認された。これに対して、図５（ｃ）および図６（ｃ）に示すように、ガラスのみからなる供試材ＳＰＬ３（比較例）は、播種した細胞がほとんど伸展せず、増殖しなかった。このことから、ヒトＥＳ／ｉＰＳ細胞に対して、表面のポリスチレン製の薄膜だけで、かつ表面改質処理なしで、十分な接着性を付与できることが確認された。

【実施例0036】

〔光学顕微鏡による観察〕
光学特性を評価するために、細胞の状態が接着性に影響されないように、供試材に播種した細胞を、分裂し始める前に観察した。

【0037】

（供試材）
本発明の実施例に係る細胞培養基材として実施例１で使用した供試材ＳＰＬ１、および参考例として同供試材ＳＰＬ３（カバーガラス）を準備した。また、比較例に係る供試材（ＳＰＬ４）として、光学測定用に市販されている、底板に厚さ０．１ｍｍのシクロオレフィン樹脂を設けた特殊ポリマーボトムシャーレBC-SFTD27（株式会社バイオメディカルサイエンス製）を準備した。

【0038】

（播種）
実施例１のヒトＥＳ細胞の培養と同様に、供試材の片面全体に、細胞外マトリクスとして、Corning Matrigel（登録商標）#354277を塗布し、その上に、培地として、StemFlex #A3349401（Thermo Fisher Scientific製）を、Rock inhibitor +を添加して塗布し、ヒトＥＳ細胞（SEES1）を、播種密度５．２×１０⁴ｃｅｌｌｓ／ｃｍ²で播種した。各供試材に播種した細胞は、実施例１と同様に調整した培養器で短時間（２ｈｒ）曝露後、光学観察に供した。

【0039】

（評価）
供試材上の細胞をＤＡＰＩ（4',6-diamidino-2-phenylindole）で青色に染色し、ＲＮＡ－ＦＩＳＨ（Fluorescence in situ Hybridization）解析を行った。光学観察として、共焦点レーザー顕微鏡ZEISS LSM 880 with Airyscan（#LSM880）（ZEISS社製）を、対物レンズ：×１００で使用した。共焦点レーザー顕微鏡のレーザー光源は、４０５ｎｍ（青紫色）、４８８ｎｍ（青色）、５４６ｎｍ（緑色）、６３３ｎｍ（赤色）である。ヒトｉＰＳ細胞の共焦点顕微鏡写真を図９（ａ）、（ｂ）、（ｃ）に示す。また、図９（ａ）、（ｂ）、（ｃ）に白い破線で表す１個の細胞を横切る直線上におけるＤＡＰＩの蛍光輝度の分布を図１０に示す。

【0040】

図９（ａ）、（ｃ）に示すように、本発明の実施例に係る細胞培養基材である供試材ＳＰＬ１を使用することにより、ガラスのみからなる供試材ＳＰＬ３と同様に細胞組織を観察することができた。なお、顕微鏡像では、紫みの青色に染色された歪な楕円形の細胞内に、明るい青色に染色された核、緑色のＸＡＣＴ ＲＮＡ、および赤色のユビキチンリガーゼＨＵＷＥ１が、それぞれ点状に観察された。これに対して、図９（ｂ）に示すように、光学特性を向上させた樹脂製の供試材ＳＰＬ４（比較例）では、光吸収により明瞭な像が得られず、細胞が低コントラストで辛うじて視認される程度であり、細胞内の核等は視認が困難であった。また、図１０に示すように、蛍光輝度が、実施例（供試材ＳＰＬ１）は供試材ＳＰＬ３と同等であるのに対し、これらと比較して供試材ＳＰＬ４は大幅に低かった。