特開 2023-12529 試験のための改良された培養方法と装置

(19)【発行国】日本国特許庁(JP)

(12)【公報種別】公開特許公報(A)

(11)【公開番号】P2023012529

(43)【公開日】2023-01-25

(54)【発明の名称】試験のための改良された培養方法と装置

(51)【国際特許分類】

   C12M 3/00 20060101AFI20230118BHJP

   C12Q 1/02 20060101ALI20230118BHJP

【ＦＩ】

C12M3/00 A

C12Q1/02

【審査請求】有

【請求項の数】28

【出願形態】ＯＬ

(21)【出願番号】P 2022177177

(22)【出願日】2022-11-04

(62)【分割の表示】P 2018510703の分割

【原出願日】2016-05-09

(31)【優先権主張番号】62/158,583

(32)【優先日】2015-05-08

(33)【優先権主張国・地域又は機関】US

(71)【出願人】

【識別番号】517390649

【氏名又は名称】ウィルソン ウォルフ マニュファクチャリング

【氏名又は名称原語表記】ＷＩＬＳＯＮ ＷＯＬＦ ＭＡＮＵＦＡＣＴＵＲＩＮＧ

(74)【代理人】

【識別番号】110000394

【氏名又は名称】弁理士法人岡田国際特許事務所

(72)【発明者】

【氏名】ウィルソン，ジョン・アール

(72)【発明者】

【氏名】ウェルチ，ダニエル・ピー

(57)【要約】      （修正有）

【課題】フィーディングのための介入の回数を減らしたり、細胞密度を高めたり、細胞の分泌物により勾配を形成したり、有機体の移動性について研究したり、がん細胞を発見および死滅させるＴ細胞の能力を評価したりするために利用することができる、独自の形状を有する細胞培養装置を提供する。
【解決手段】少なくとも２つの区画と、少なくとも１つの開口部とを備え、その区画はそれぞれ気体透過性の底部を含み、培地を保持するよう構成され、開口部は少なくとも２つの区画の底部を接続しており、培地攪拌機や、培地かん流機や、気体ポンプ装置を含まないことを特徴とする細胞培養装置とする。
【選択図】なし

【特許請求の範囲】

【請求項1】

細胞培養装置であって、
少なくとも２つの区画と、少なくとも１つの開口部とを備え、その区画はそれぞれ気体透過性の底部を含み、培地を保持するよう構成され、前記開口部は少なくとも２つの区画の底部を接続しており、培地攪拌機や、培地かん流機や、気体ポンプ装置を含まないことを特徴とする細胞培養装置。

【請求項2】

請求項１の細胞培養装置であって、気体透過性の底部がシリコーンからなることを特徴とする細胞培養装置。

【請求項3】

請求項１の細胞培養装置であって、取り外し可能な蓋を含むことを特徴とする細胞培養装置。

【請求項4】

請求項１の細胞培養装置であって、少なくとも１つの区画がマトリクスを含むことを特徴とする細胞培養装置。

【請求項5】

請求項４の細胞培養装置であって、マトリクスが底部に付着していることを特徴とする細胞培養装置。

【請求項6】

請求項４の細胞培養装置であって、マトリクスが固形物質ではないことを特徴とする細胞培養装置。

【請求項7】

請求項１の細胞培養装置であって、少なくとも１つの区画の少なくとも１つの壁が着色されていることを特徴とする細胞培養装置。

【請求項8】

請求項１の細胞培養装置であって、少なくとも１つの区画の底部が着色されていることを特徴とする細胞培養装置。

【請求項9】

請求項１の細胞培養装置であって、培地体積の底面積に対する比が２～１５であることを特徴とする細胞培養装置。

【請求項10】

請求項１の細胞培養装置であって、少なくとも１つの区画の底部が正方形であることを特徴とする細胞培養装置。

【請求項11】

Ｔ細胞を評価する方法であって、
Ｔ細胞と、がん細胞と、培地とを細胞培養装置に加えるステップを備えており、
前記装置は、少なくとも２つの区画を備え、この区画は気体透過性の底部を含み、培地を保持するように構成され、少なくとも１つの開口部が少なくとも２つの区画の底部を接続しており、培地攪拌機や、培地かん流機や、気体ポンプ装置を含まず、Ｔ細胞が加えられる区画とは異なる区画にがん細胞が加えられることを特徴とする方法。

【請求項12】

請求項１１の方法であって、気体透過性の底部がシリコーンからなることを特徴とする方法。

【請求項13】

請求項１１の方法であって、少なくとも１つの区画がマトリクスを含み、がん細胞がその区画に加えられることを特徴とする方法。

【請求項14】

請求項１３の方法であって、マトリクスが底部に付着していることを特徴とする方法。

【請求項15】

請求項１１の方法であって、Ｔ細胞が加えられた後のある時点で、Ｔ細胞ががん細胞の位置まで移動することを特徴とする方法。

【請求項16】

請求項１１の方法であって、少なくとも１つの区画の少なくとも１つの壁が着色されていることを特徴とする方法。

【請求項17】

請求項１１の方法であって、少なくとも１つの区画の底部が着色されていることを特徴とする方法。

【請求項18】

請求項１１の方法であって、培地体積の底面積に対する比が２～１５であることを特徴とする方法。

【請求項19】

請求項１１の方法であって、少なくとも１つの区画の底部が正方形であることを特徴とする方法。

【請求項20】

請求項１１の方法であって、少なくとも１つの区画の底部が長方形であることを特徴とする方法。

【発明の詳細な説明】

【技術分野】

【0001】

関連出願
本出願は２０１５年５月８日に出願した米国仮出願第６２／１５８，５８３号の利益を主張するとともに、参照によりその全体を本明細書に援用する。

【0002】

本願発明の技術分野は一般に細胞培養装置に関する。より具体的には、本発明は、独自の形状を提供することによって、細胞間の相互作用のインビトロにおける研究のための能力を向上する方法および装置を対象とするものである。当該形状は、フィーディングのための介入の回数を減らしたり、細胞密度を高めたり、細胞の分泌物により勾配を形成したり、有機体の移動性について研究したり、がん細胞を発見および死滅させるＴ細胞の能力を評価したりするために利用することができる。

【背景技術】

【0003】

高密度で存在する細胞を培養したり評価したりするために用いられる現在の静置式インビトロ細胞培養装置は、細胞に栄養分を供給するための培地交換を頻繁にすることなくしては、長期間の培養プロセスを可能とすることはできない。このことは、様々な細胞分泌シグナルの濃度を高い頻度で変化させるという悪影響を有する。

【0004】

現存する装置のデザインがいかに問題であるかの一例がＴ細胞治療の分野にある。Ｔ細胞治療の分野には、細胞傷害性Ｔ細胞がどのように腫瘍型の環境まで移動し、がん細胞を攻撃し、攻撃を継続することができるかを理解したいという願いがある。現在のところ、インビトロにおける典型的なアプローチは、がん細胞を従来型のマルチウェルプレートに播種することである。がん細胞はこのマルチウェルプレートでがん細胞を高密度で増殖させることができる何らかの形状の三次元マトリクスの中に沈降する。その後、がん細胞を死滅させることのできるタイプのＴ細胞をマルチウェルプレートに入れ、その中でＴ細胞のがん細胞を根絶させる能力を評価する。各ウェルで生存することになる多数の細胞は、各ウェルの非常に少量の培地に対して高い代謝要求を課す。この要求を満たすためには、培地を頻繁に交換しなければならない。このため、新鮮な培地が加わることによって、死滅させるプロセスに関与する重要な細胞シグナルが除去されたり希釈されたりしてしまう。したがって、培養条件はたびたび変化し、実験結果に影響を与えうる。さらに、がん細胞が量的に急速に増大すると、そのがん細胞の代謝要求を満たすために十分な頻度で培地を交換する能力は完全に失われ、実験期間がわずか数日に制限されてしまう。

【0005】

この問題を避けるためによく用いられる方法は、重症複合免疫不全（ＳＣＩＤ）マウスを用いることである。評価を行うには、がん細胞をマウスの体内に導入するか、マウスの体内でがん細胞を作り出す。その後、Ｔ細胞をマウスの体内に導入する。細胞の栄養要求はマウスによって従来のインビトロ装置を用いた場合よりも長い期間満たすことができ、また、インビトロの装置に特有の頻繁に起こる細胞条件の変化が回避される。しかしながら、マウスの使用が高度に制御されていても、マウス間のばらつきを予測するのは困難である。

【0006】

本願明細書に開示した実施例は、さまざまな新規の特性を統合することのできる装置を作り出すことによって、従来の装置や方法の限界を克服できるより効率的な細胞培養装置と方法とを提供する。

【先行技術文献】

【特許文献】

【0007】

【特許文献1】米国特許第９，２５５，２４３号

【発明の概要】

【0008】

長期培養をする場合や培養物内における細胞や物質を移動させたい場合、独自の形状を有するインビトロの装置が既存の装置よりも優れた代替手段となることを発見した。この新規の静置式装置および使用方法では培地攪拌機や培地かん流機や気体ポンプ装置を機能させることを要しない。

【0009】

本明細書に開示した特定の実施例は、改良された細胞培養環境を提供する。この細胞培養環境では、既存の高密度静置培養装置ほど頻繁に栄養を補給する必要はなく、がん細胞などの細胞を高密度で生育させることができる。このことは、例えば、Ｔ細胞ががん細胞を攻撃しその攻撃を持続する能力を研究するため栄養補給でその攻撃プロセスを中断させることなく既存の最先端の装置よりも長い時間継続させたいような場合に有益となり得る。まったくプロセスを中断しない可能性も含め、培養液に栄養を供給するためにプロセスを中断する頻度が少ないほど、結果を評価する際に考慮すべき変数は少なくなる。

【0010】

本明細書に開示した特定の実施例では、既存の静置細胞培養装置と比べて改良された形状について説明しており、この形状により装置内の物質や細胞を装置全体にわたって移動させることができる。この形状を変更すると、培地中の成分が区画間を移動する方法や、装置内の細胞が区画間を移動する方法を制御することができる。形状と材料を変更して栄養分と酸素の供給を増やすことによって、長期にわたって細胞を含む様々なプロセスの研究を行うことができる。

【0011】

このような実施例を用いると、細胞がシグナルを発する能力、細胞がシグナルに応答する能力、細胞がシグナル源まで移動する能力を長期的に評価することができる。例えば、高密度で培養したがん細胞はケモカインシグナルの発生源となり得る。そのシグナルは迷路のように入り組んだ区画を通って移動し、最終的に装置内のＴ細胞に到達するとＴ細胞がこれに応答し、シグナル源を発見するまでその迷路の中を移動する。一旦、がん細胞が発生源であることをＴ細胞が発見すると、Ｔ細胞はがん細胞の死滅化を開始し、これを継続することができる。このようなプロセスを、フィーディングによって妨げられたり、装置を移動することに起因し得る培地内部の物理的な力によって妨げられたりすることなく進行させられるように、形状を適切な構造とすることができる。また、この装置はそのプロセスが視覚的に観察できるような構造とすることもできる。

【0012】

そのような実施例では、遺伝子操作したＴ細胞の能力により、標的となるがん細胞を発見して標的となるがん細胞を死滅させ、標的となるがん細胞の死滅化を持続させることができる。装置の形状によって、他の遺伝子操作した特性を有するＴ細胞集団との比較を可能にする。それらは、遺伝子操作したＴ細胞が異なるタイプのがん細胞にいかに上手く応答することができるかを評価できるようにすることができる。それらはまた、天然型Ｔ細胞が腫瘍関連抗原に対してどのように応答するかということの評価も可能とする。

【0013】

そのような実施例では、興味のある物質が区画間を移動する能力を変更することができたり、その物質が移動する経路を変更することができたり、その物質が移動する経路を開閉することができたりする。

【0014】

本願明細書に開示した特定の実施例は、さまざまな新規の特性を一体化することができるより効率的な細胞培養装置を提供する。代表的な特性には、気体透過性材料の使用や、従来装置を上回る培地容量に加え、培養環境の乱れを減少させて高密度培養の長期にわたる研究を容易とすることのできる区画や、ケモカインなどの物質を含む興味のある対象物の移動を研究したり、細胞の移動について追跡したり、細胞間の相互作用を観察したりすることのできる機能などがある。

【図面の簡単な説明】

【0015】

【図1】図１は一実施例の断面図を示し、この実施例は、がん細胞を死滅させ、かつその死滅化を継続するＴ細胞の能力に関する研究を含む、様々な細胞培養の用途に有益となりうる長期培養ができるようになっている。

【図2】図２Ａ、図２Ｂ、図２Ｃは２つの区画を含む、区画化された装置の様々な図を示す。

【図3】図３Ａ、図３Ｂ、図３Ｃは上記の図２Ａ、図２Ｂ、図２Ｃで示した装置がどのように区画化され、どのように用いることができるかの一例を示す。

【図4】図４は３つの区画に区画化された装置の平面図を示す。

【図5】図５Ａ、図５Ｂ、図５Ｃはそれぞれ本願発明の６つの区画を有する装置の取り得る構造の透視図を示す。

【図6】図６はパイ形状の区画を含む本願発明の円形形状を示す。

【図7】図７はパイ形状の区画を含む本願発明の円形形状を示す。

【図8】図８は対称でない区画に細分化した装置の一実施例を示す。

【図9】図９は区画間の培地の移動を最小限にするために用いることのできる通路の形状の一つを示す。

【図10】図１０は区画間の培地の移動を最小限にするために用いることのできる通路の別の形状を示す。

【図11】図１１は特定の用途での必要に応じて区画壁を任意の形状にすることができ、任意の量の材料を区画壁から除去できることを示す。

【図12】図１２は、２８日間にわたって次第に増加する生物発光シグナルにより示される、ＳＣＩＤマウスおよび試作品において急増するがん細胞の代表例を示す。図１２Ｂでは、試作品とＳＣＩＤマウスとAlgiMatrix（登録商標）３Ｄ培養システムのプレートとでがん細胞の増殖を比較している。

【図13】図１３は従来型のAlgiMatrix（登録商標）３Ｄ培養システムのプレートで培養したがん細胞が、供給された栄養を急速に使い果たして７日目までに死滅したことを示す。

【図14】図１４は、ＣＡＲ－Ｔ細胞をＳＣＩＤマウスに投与した結果、２週間持続した腫瘍シグナルが減少したことと、本願発明の試験試作品に直接ＣＡＲ－Ｔ細胞を加えたときに同じ抗腫瘍効果が見られたことを示す。

【図15】図１５は本願発明がケモカイン勾配を装置全体にわたって形成することができるということを示す。

【図16】図１６はＣＡＲ－Ｔ細胞の第１世代と第２世代とを識別するために本願発明を利用できるということをデータが示唆していることを示す。

【発明を実施するための形態】

【0016】

図１は本願発明の一実施例の断面図を示し、培地攪拌機や培地かん流機や気体ポンプ機と統合されていない装置を示している。この装置はがん細胞を高密度で培養し、Ｔ細胞ががん細胞を死滅させてその死滅化を継続する能力を研究するために用いることができる。がん細胞１は静置細胞培養装置２の底部に存在している。上部は図示していないが、マルチウェルプレートでよく用いられるカバーのような簡単なものとすることができるし、閉じて自動アクセス用の構造としたものを含めてより高度なものとすることもできる。がん細胞培養装置２の中には培地３が入っている。装置の底部４は気体透過性材料、好ましくはシリコーンから成る。例えばテクスチャリングなどによって、細胞が区画の底部で接触する面を改変すれば、腫瘍をシミュレーションするためにがん細胞が高密度の状態で生存できるようにすることができる。表面の構造は、溝形状、ポケット形状、粗面形状などとすることができる。基本的には、底面が滑らかでない場合には、装置の底面が滑らかである場合と比べてがん細胞が接触する表面積を大きくすることができ、区画底部の１平方センチメートルあたりの細胞の増殖を促進することができる。また、細胞を高密度で培養したり、あるいは、より自然な物理的構造で細胞を培養したりするために、マトリクスを用いることもできる。一般に３次元培養といわれるものでは細胞培養するためにマトリクスが用いられることが多い。このマトリクスは底面に付着させることができるが、必ずしも底面に付着させる必要はない。またマトリクス材は、細胞がマトリクスと密接に接触できる状態で培養可能なマトリクス材や、細胞がマトリクス内部で一体化できる状態で培養可能なマトリクス材として当業者に知られているものであれば、どのような材料から構成してもよい。このような材料は、例えば、AlgiMatrix（登録商標）、コラーゲン、フィブロネクチン、プラスチック、焼結セラミックなどの天然材料または合成材料を含む、多くの選択肢から選択することができる。このような材料は、底部が気体透過性である場合、細胞が密接に接触できるようにすること（例えばがん細胞を使って腫瘍をシミュレーションする場合など）と、酸素が細胞に到達できるようにすることとを両立しなければならない。したがって、マトリクスは固形物質でないほうが好ましい。

【0017】

この実施例は、例えばAlgiMatrix（登録商標）３Ｄ培養システムの２４ウェルプレート（Ｇｉｂｃｏカタログ番号１２６８４－０２３）などの従来型のインビトロ培養装置の限界を克服する。気体透過性の底部を通して優れた酸素供給を提供するとともに大量の培地を供給することによって、Ｔ細胞を装置に加えてがん細胞を死滅させるＴ細胞の能力を長期間にわたって評価することができる。培地の底部の面積に対する体積の比率が、AlgiMatrix（登録商標）３Ｄ培養システムの２４ウェルプレートでの比率を上回るようにすることによって、後で示すように、装置はより長期にわたって多くの点で有利に機能することができる。この底部の面積は底面が滑らかであると仮定して底面積を算出することにより決定する。これにより、表面の質感や成長マトリクスや追加の面積の他の形状などを考慮に含めることを回避する。培地の底面積に対する体積の比がAlgiMatrix（登録商標）３Ｄ培養システムの２４ウェルプレートのその比を超えることが望ましい。したがって、望ましい実施例においては、底面積に対する培地体積の比は２，３，４，５，６，７，８，９，１０，１１，１２，１３，１４，１５またはこれらの間のいずれかの数値である。この底部はシリコーンからなっていることが望ましい。また、装置内でとりわけ蛍光検出によって細胞活性を評価する性能を改善するためには、少なくとも壁部は着色されるべきである。底部についても同様に着色されるのが望ましく、また壁部と底部の両方を着色することもできる。

【0018】

図２Ａは２つの区画を含む、区画化された装置１０の平面図を示す。明確にするため、上部は取り除かれている。各区画の外周は正方形して示しているが、これらはどのような形にもすることができ、さらに各区画が同じ形または面積を有する必要はない。図２ＡのＡ－Ａ間の断面図である図２Ｂに最もよく表れているように、通路１４は区画１１を隣接する区画１２に接続している。この図２Ｂでは、区画を上部１３とともに示している。その上部１３は従来型のマルチウェルプレートの最上部に類似したものとすることができる。区画の底部は気体非透過性とすることも気体透過性とすることもできる。気体透過性とする場合、その材料は望ましくは液体非透過性とするべきである。各区画の底部１５を気体透過性とすることによって、区画内に気体を送るための隙間を上部１３に設ける必要がなくなり、コンタミネーションのリスクを最小化するために上部１３を装置に密着させることができる。図２Ｂにおいて、上部１３は従来型のマルチウェルプレートの上部と同じように上に載せて示している。脚部５を用いると区画の底部を持ち上げることができる。これは一つ以上の目的で役に立つ。例えば、底部を介して（倒立顕微鏡を使うなどして）区画の内容物を評価したい場合、この脚部があれば底部が傷付くなどして評価のしやすさを損なうことがないようにすることができる。一区画以上の区画の底部に気体透過性材料を使用したい場合、脚部で底部を高い位置に上げることで、その周囲の気体が自発的に気体透過性材料に接触するのを容易にすることができる。この底部が気体透過性である場合、周囲の気体を気体透過性材料と接触させるために気体をポンプで送り込むなどして強制的に移動させたりする必要はなく、底部を周囲の気体と接触させるのがよい。周囲の気体が気体透過性材料と非積極的、非強制的に接触できるようにすると同時に気体透過材料を水平面に保持するための技術についてさらに知るためには、米国特許第９，２５５，２４３号を読むことを当業者に勧める。当該文献は、その全体を参照により本願明細書に援用する。図２Ｃは図２ＡのＢ－Ｂ断面図を示す。この図２Ｃにおいて、通路１４は隣接する区画１１と１２を分ける壁の開口部である。通路１４は、一方の区画の内容物が他方の区画と連通できるようにする開口部であればどのような開口部とすることもできる。

【0019】

図３Ａ、図３Ｂ、図３Ｃは、上述の図２Ａ、図２Ｂ、図２Ｃに示した区画化された装置１０をどのように使用することができるかの一例を示す。この装置の形状により、Ｔ細胞がケモカイン勾配を認識し、その勾配を辿り、がん細胞を発見し、がん細胞の死滅化を開始し、死滅化を継続させる能力を評価することが可能となる。図３Ａに示すように、がん細胞１６は区画１１に存在し、Ｔ細胞１８は区画１２に存在する。矢印２０はがん細胞１６から分泌されるケモカインが高濃度の場所から低濃度の場所に移動するときに通路１４を通って移動する方向を示している。図３Ｂの矢印２２は、Ｔ細胞がケモカイン源を探し求めて低濃度の場所から高濃度の場所に移動するときに通路１４を通って移動する方向を示している。図３ＣはＴ細胞ががん細胞１６を探し求めて区画１１にどのように移動したかを示す。明確にするため、培地の存在は示さなかった。この装置の形状により、Ｔ細胞がケモカイン勾配を認識し、その勾配を辿り、がん細胞を発見し、がん細胞の死滅化を開始し、死滅化を継続する能力を評価することができる。

【0020】

多様なデザインの特性を用いることによって、装置の性能を変えたり、その性能を特定の用途に最適化したりすることができる。例があれば、装置の性能を具体的な用途により良く適合させるためにデザインの特性をどのように変化させればよいかを説明する手助けとなりうる。一例として、装置の使用者ががん細胞を発見して死滅させるＴ細胞の能力を評価しようとするような用途が挙げられる。この用途における装置の重要な一側面は各区画の底部の形状である。がん細胞が存在する区画では、がん細胞は腫瘍をシミュレーションするために高密度で生育することが望ましい。装置の中の、がん細胞が存在しない場所においては、Ｔ細胞ががん細胞の位置まで移動するのを妨げない環境を作り出すことをデザインの目標としたほうがよい。したがって、Ｔ細胞が通過する表面は平らでかつざらつきのないものとしたほうがよい。滑らかな表面仕上げは、平らでかつ均一な硬さを有し、はっきりとわかるほどの突起、こぶ、ぎざぎざなどが無いものが望ましい。プラスチック技術者協会（ＳＰＥ）の表面仕上げの表面仕上げ２番がさらに望ましく、ＳＰＥ表面仕上げ１番が最も望ましい。また、装置の使用時に細胞が移動する面は概して水平であるのが望ましい。これは、細胞が坂を上ったり、重力によって坂を下ったりする可能性を最小化するためである。これらのどちらの状況であってもＴ細胞の移動が表面を水平とした場合の実際の移動よりも早かったり遅かったりしたのではないかと研究者に誤解させる可能性がある。この意図するところは、Ｔ細胞をケモカイン刺激によってがん細胞に向かって移動させて、がん細胞を発見する能力に関してＴ細胞を評価できるようにすることである。したがって、このデザインの意図は、Ｔ細胞をがん細胞の方に移動させようとする不必要な力や、がん細胞の方に移動するＴ細胞の能力を弱める不必要な力を最小化することにある。当業者であれば完全な水平面というものがありそうもないことに気が付くはずであるが、従来型のマルチウェルプレートや市販されているＧ－Ｒｅｘ（登録商標）装置によく見られる面に似たものが適している。不必要な力は重力の影響だけでなく、装置が移動するときの培地の惰力も含む。様々なデザインの通路や通路の位置によって惰力の影響を最小化する方法については、後に詳細に述べる。さらに、細胞の移動が求められる場合、細胞が移動すると予想される通路において細胞と接触すると期待される材料は、細胞の移動を促進できるように疎水性であることが望ましい。言い方を変えれば、細胞の移動が求められる場合、移動する細胞と接触する材料は、細胞が接着し得る材料にしないほうがよいということである。

【0021】

各区画の底部は細胞培養に用いられる任意の材料で作製することができ、気体透過性である必要はない。この材料には、例えば従来型のマルチウェルプレートに一般に見られる厚みのポリスチレンなどがある。しかしながら、後述するように、我々は底部に気体透過性材料を用いることで利点を生み出せることを発見した。この材料は膜やフィルムなどにすることすることができ、または例えばシリコーン、フルオロエチレンポリプロピレン、ポリオレフィン、ポリスチレンおよびエチレン酢酸ビニル共重合体などの気体透過性細胞培養装置に用いる材料とすることができる。当業者であれば理解できることであるが、気体透過性材料は、気体透過性、透湿性、細胞同士に求められる相互作用のために変化する能力、光学的透明度、物理的強度などを含む様々な特性に基づいて選択すべきである。細胞培養に用いられてきた実績のある気体透過性材料の種類について記載する情報は様々なものが存在する。シリコーンは望ましい選択である。シリコーンは酸素透過性に優れ、光学的観察が可能で、簡単には穴があかず、通常は細胞が接着せず、本願発明に適する様々な形状に容易に成形することができる。

【0022】

壁の高さによって装置内にどれくらいの量の培地が入るかを決定することができる。培地を加えることで基質源を多く供給でき、排出物溜めも大きくなる。壁の高さを高くし、区画内に入る培地の量を大きくすることにより、フィーディングの頻度を減らし培地中の溶質および物質の濃度の変化を少なくする効果を持たせることができる。また、このことは装置の底面積１平方センチメートルあたりに存在する細胞の数を増加させる効果がある。

【0023】

また、２つ以上の区画を使用したい場合があるかもしれない。図４は３つの区画に区画化された装置の平面図を示す。明確にするため、区画の境界と区画間の通路に関連しない部材は示していない。この構成は、様々な種類のがん細胞を認識する異なるＴ細胞集団の能力を評価するために用いることができる。例えば、一種類のがんに由来するがん細胞を区画化された装置２３の区画２４に配置することができる。あるＴ細胞集団を区画２５内に配置し、別のＴ細胞集団を区画２６に配置することができる。がん細胞がケモカインシグナルを分泌するとき、がん細胞に最もよく応答してがん細胞まで移動することができる種類のＴ細胞を観察することができる。このような評価は、例えば遺伝子操作によってそれぞれ異なる特性が与えられたＴ細胞集団を評価する際に有用となり得る。この構成とすれば、最も早くがん細胞に移動する遺伝子操作Ｔ細胞集団は、遺伝子操作した特性がインビボにおいてどれほど上手く機能すると予測されるかを評価するために役立つ可能性がある。

【0024】

Ｔ細胞の応答における差異がＴ細胞に起因し、区画内の形状や区画内の材料の種類に起因するものとならないようにするため、区画２５と区画２６は、同じ形状かつ同じ材料を供給することを考慮して作られるのが望ましい。したがって、区画２５と区画２６は同じ形状かつ同じ材料であることが望ましい。鍵となる特徴は区画間の通路の配置である。当業者には、区画間の通路を一つのみとする必要はないということを知っておいてほしい。この図においては、明確にするために１つの通路のみ示している。区画２５と区画２４との間の通路は、区画２６と区画２４の間の通路と同じ形状に形成されるのが望ましい。通路を設計する際に考慮すべき重要な点は、区画２４に対して同じ関係となるように通路を配置することである。例えば、図４の通路２７は区画２５を区画２４から分ける壁の中央にあり、通路２８は区画２６を区画２４から分ける壁の中央にある。がん細胞が各々の区画全体に均一に分散すると仮定すると、このことは、ケモカインシグナルがおおよそ同時におおよそ同じシグナル濃度でＴ細胞に到達することを確実にする助けとなる。

【0025】

図４に示す形状の別の用途としては、Ｔ細胞を区画２４に配置した後、２種類の異なる種類のがん細胞を区画２５と区画２６に配置することである。この構成では、異なる種類のがん細胞に対するＴ細胞の応答と異なる種類のがん細胞に向かうＴ細胞の移動とに関してＴ細胞を評価することができる。このような用途は、一以上の腫瘍関連抗原を認識するＴ細胞からなるＴ細胞集団を、がん細胞集団などの異なる種類の腫瘍を認識する能力について評価するときに、とくに有益となり得る。また、本願のいずれの実施例においても、がん細胞の認識能力と死滅化能力を評価する際に、実際の腫瘍断片をがん細胞の代わりに用いることができる。

【0026】

区画数は１，２，３，４，５，６およびそれ以上の数を用いることができる。上述したように、区画の形状は正方形または長方形に限定されない。図５Ａ，図５Ｂおよび図５Ｃはそれぞれ本願発明の６区画を有する装置の取り得る形状の斜視図を示す。個々の区画間の通路は、例えばケモカインや細胞などの移動する物質や微生物が区画間を移動できるように様々なパターンで形成することができる。図示した各形状において矢印２９は移動経路を示しており、移動は区画３０で始まって、矢印２９の矢じりが終了するところでその移動が終了する。図５Ａ，図５Ｂ，図５Ｃには通路の具体的な配置を示していないが、これは通路の位置によって区画間に様々な経路を作りだすことができるという点に焦点を絞るためである。経路によっては装置を移動させるときの培地の惰力を他の経路と比較して最小化し、装置を操作する間の液体の移動によって区画から区画へとシグナルが伝わる可能性を最小化することができる。この図において、各矢印は１箇所以上で向きを変えている。したがって、細胞が分泌するシグナルの発生源になると期待されるウェル一つと、細胞が分泌するシグナルの発生源に応答する細胞を含むと予想されるウェル一つとで装置を構成する場合、それらの個別のウェル間の通路は完全に一直線としないことが望ましい。シグナルの通路は、例えば図５Ａに示すように、少なくとも１箇所で向きを変えるものが望ましく、また例えば図５Ｂに示すように１箇所以上で向きを変えるものがより望ましく、さらに図５Ｃの例に示すようにシグナル発生源ではない区画またはシグナルの最終目的地ではない区画のそれぞれで向きを変えるものがさらに望ましい。

【0027】

図６はパイ形状の区画を含む本願発明の円形形状を示す。明確にするため、区画の輪郭および通路のみを示す。区画化された装置３２内において、区画３３は通路３７によって区画３４に接続されており、区画３４は通路３６によって区画３５に接続されており、区画３５は通路３８によって区画３３に接続されている。この構成において、各区画は通路によってそれぞれ隣接する区画と連通する。

【0028】

図７はパイ形状の区画を含む本願発明の円形形状を示す。明確にするため、区画の輪郭および通路のみを示す。区画化された装置４０内において、区画４１、区画４２、区画４３はすべて通路４４によって接続されている。これは、２以上の区画を１本の通路のみによって接続することが有益であると判断される場合にそれがどのように実現可能であるかを示す一つの例示的な実施例である。

【0029】

図８は非対称な区画に細分化された区画化装置の一実施例を示す。区画化された装置４６は区画４７、区画４８、区画４９、区画５０を含む。通路５１、通路５２、通路５３によって区画４９と区画５０の間の物質移動ができるようになっている。装置の中心点に対する通路の位置が異なり、装置の設置面積を大きくすることなく移動経路を長くすることができる。

【0030】

区画を分ける通路の形状、数および方向は性能に影響を与え得る。それらのデザインは、装置の内容物中の成分が区画から区画へと通過できるようにすることと、その成分を区画から区画へと押し進める物理的な力を最小化する必要性との間でバランスをとらなければならない。例えば、がん細胞を発見するＴ細胞の能力についてＴ細胞を観察する場合、その事象を観察するために装置を動かす行為そのものがその事象を促進してはならない。なお、区画間の通路の数を１本のみに限定する必要がないことに留意すべきである。通路の数は１本、２本、３本、４本、５本、６本等、何本でも用いることができる。ウェル間の通路のデザインもまたＴ細胞の移動に影響を及ぼし得る。例えば、装置をフローフードからインキュベーターに移動する場合に、通路を通って隣の区画に移動する培地の量を最小化することにより、培地の惰力でＴ細胞が別の区画に流れたりがん細胞が別の区画に流れたりするのを防ぐべきである。このことは、様々な方法で達成することができる。

【0031】

図９は区画間の培地の移動を最小限にするために用いることができる通路の一つの形状を示す。通路５６の壁５８と壁５９は、区画壁５５を垂直に通り抜ける経路を形成していない。他方で、通路５７の壁６０と壁６１は区画壁５５を垂直に通り抜ける経路を形成している。どちらの通路を用いることもできるが、この場合、装置を操作する間は通路５６を用いることで、培地の惰力に対する抵抗を作り出すことができる。

【0032】

図１０は、区画間の培地の移動を最小限にするために用いることができる通路の別の一つの形状を示す。通路６３は区画壁６２を垂直に通過する経路を形成していない。それどころか通路６３は区画壁６２内に２箇所の直角の曲がり角を含む。当業者は、惰力によって物質が区画壁を通過して流れるのを制限するため、通路に少なくとも１箇所の任意の角度の曲がり角を用いることができるということを認識されたい。

【0033】

図１１は、特定の用途における要求に応じて通路を任意の形状にすることができ、区画壁から任意の量の材料を除去することができることを示す。例えば、通路６５は長方形であり、通路６７は上部が円形になっている長方形であり、通路６８は三角形である。通路６６は区画壁６９を完全に突き抜ける間隙である。区画壁６９は底部７０と結合している。区画壁を底部と一体的に成型する場合、区画壁を完全に突き抜ける間隙を設けると好都合である。その後、必要があれば間隙の一部を塞ぐために２つめの部材を区画壁に取り付けることができる。この場合、区画壁は開口部を有する最初の壁と、この開口部を狭める壁部材とを含むことになる。その開口部の大きさはその壁部材によって小さくなる。当業者には、ある１つの区画壁内で１本以上の通路を用いることができ、そうする場合その各通路は所定の用途に合わせて形状や、大きさや、断面積を変えることができるということを認識されたい。

【0034】

通路は常に開けておく必要はない。通路には、区画から入ってきた内容物が壁を通過していくのを防ぐ閉じ具を設けることができる。区画の内容物を通路に通して流したい場合に閉じ具を開けることができる。

【0035】

物質や物体の蛍光を観察したい実験に関しては、区画の壁や底部を光学的に透明ではなくすることが有益となり得る。プラスチック製の場合、着色剤を材料に含めるのがよい。壁と底部の材料選択もまた検討事項である。望ましい製造方法として、壁と底部をシリコーンで製造する方法がある。さらに望ましい製造方法として、壁と底部を射出成形し、その過程で接合する方法がある。蛍光マーカーの観察を含む用途には、シリコーンに着色剤を用いることが有益となり得る。着色された区画壁にシリコーンの底部をオーバーモールドするのもまた実際的となり得る。こうすると、壁を着色する一方で、シリコーンで作った底部は光学的に透明にすることができる。

【0036】

この発明について、以下の非限定的な実施例を参照してさらに説明する。

【0037】

例１
この新規の装置は、一般によく使用される従来型のインビトロ装置やＳＣＩＤマウスと比較して、がん細胞の研究に利益をもたらす。

【0038】

本願発明の区画化された装置ががん細胞の培養に一般に用いられる標準的なインビトロ器具よりも優れた方法でがん細胞を維持できるかどうかを判断するための評価を行った。また、この評価ではＳＣＩＤマウスにおけるがん細胞のインビボ培養との比較も行った。

【0039】

区画化された装置の一実施例の試作品を作製した。がん細胞を配置したこの装置は、面積が１２ｃｍ²の正方形の底面を有し、底面は厚みが０．００８～０．０１２インチのシリコーンで形成した。区画の壁は、培地が５ｃｍの高さまで入る高さで、培地は底面の上に直接入れた。

【0040】

この新規なアプローチによって腫瘍の増殖を長期間補助できることを確認するため、このプトロタイプを、がん細胞の研究によく用いられるAlgiMatrix（登録商標）３Ｄ培養システムの２４ウェルプレート（Ｇｉｂｃｏカタログ番号１２６８４－０２３）と、ＳＣＩＤマウスと比較した。この比較を開始するにあたり、まずAlgiMatrix（登録商標）３Ｄ培養システムの２４ウェルプレートの６つのウェルそれぞれに、がん細胞株ＣＡＰＡＮ－１の細胞を１×１０⁶個入れた。約２４時間後、AlgiMatrix（登録商標）のバイオスキャフォールドにがん細胞が根付いてから、３つのバイオスキャフォールドを取り出し、３つの試作品の各々に個別に配置した。すなわち、各試作品はこのとき、がん細胞が根付いた１つのAlgiMatrix（登録商標）のバイオスキャフォールドを有していた。各試作品に６０ｍｌの培地を入れ、AlgiMatrix（登録商標）３Ｄ培養システムのプレートに残った３つのウェルそれぞれに２ｍｌずつ十分に新鮮な培地を加えた。２０匹のＳＣＩＤマウス（ｎ＝２０）のそれぞれに、がん細胞株ＣＡＰＡＮ－１の細胞を１×１０⁶個加えた。がん細胞の増殖は生物発光画像法によって観察した。図１２は、２８日間にわたって漸進的に増加した生物発光シグナルによって示される、ＳＣＩＤマウスおよび試作品の中で増殖したがん細胞の代表例を示す。また、図１２では試作品、ＳＣＩＤマウス、AlgiMatrix（登録商標）３Ｄ培養システムのプレートのそれぞれのがん細胞の増殖を比較している。試作品におけるがん細胞の増殖は、ＳＣＩＤマウスで観察されたものと似ていた。なお、対数スケールのグラフにおける小さなエラーバーが示すように、試作品の中の３つの複製物は似ていたが、一方で、ＳＣＩＤマウスにおけるがん細胞の増殖は大きくばらついた。予想通り、図１３に示すように、従来型のAlgiMatrix（登録商標）３Ｄ培養システムのプレートで培養したがん細胞は補給栄養分を急速に使い果たし、７日目までに死滅した。

【0041】

例２
新規な装置は長期にわたる抗腫瘍効果を評価することができる機能を有する。

【0042】

キメラ抗原受容体（ＣＡＲ Ｔ）細胞を含むように遺伝子操作されたＴ細胞の抗腫瘍効果を本願発明においてもＳＣＩＤマウスで得られるものと同様の感受性および選択性で測定できるかどうかを調べるため、例１の構成の３つの試作品にがん細胞株ＣＡＰＡＮ１の細胞を１×１０⁶個移植した。ＸＸ ＳＣＩＤマウスにも同様にがん細胞株ＣＡＰＡＮ－１の細胞を１×１０⁶個移植した。生着後、２０×１０⁶個のＣＡＲ Ｔ細胞を各試作品に加えるとともに、各ＳＣＩＤマウスに注入した。図１４の左側のパネルに示すように、ＣＡＲ Ｔ細胞をＳＣＩＤマウスに投与した結果、腫瘍シグナルが減少し、これが２週間持続した。このことは、注入したＣＡＲ Ｔ細胞がＣＡＰＡＮ－１株のがん細胞を死滅させ、抗腫瘍効果を生み出せたということを示唆している。図１４の右側のパネルは、ＣＡＲ Ｔ細胞を直接的に試作品に加えたときに、同じ抗腫瘍効果が見られたことを示す。これは、新規の試作品がＳＣＩＤマウスの適切な代わりとなり、研究者たちがＳＣＩＤマウスの代わりにさらに頻繁にインビトロ装置の使用に頼ることができることを実証している。

【0043】

例３
本願発明によりケモカイン勾配が装置全体に形成されるようにすることができる。

【0044】

試作品の試験装置は６つの区画で構成した。各区画の底面積は１２ｃｍ²であった。壁は、培地が各区画の底面のすぐ上側に５ｃｍの高さまで入るようにした。区画は従来の６ウェルプレートと同様のパターンで、３つの区画を１列としてこれを２列に並べて配置した。区画の個々の隣接する壁間にある小さな通路開口部によって、ケモカインが区画間を移動できるようにした。この開口部はおよそ２ｍｍ×２ｍｍの大きさで、接続される区画間の壁の中央の基底部に存在した。図１５の上部のパネルは、区画間の通路によって作り出される、予想される勾配方向を表示する矢印を示す。基本的に、このデザインは迷路のパターンであり、ケモカイン勾配を崩壊させずに装置を（例えばインキュベーターの中に）移動できるようにすることを目的としている。新規なデザインが勾配生成を補助しているかどうかを試験するため、装置の（図１５に＃１のウェルとして示した）１つの区画に２４μｇの組換え体ＭＣＰ１を加えて混合した。次に、ウェル１～６におけるケモカイン濃度を２４時間、４８時間および７２時間の時点で測定した。図１５の下側のパネルは、表示された時点における異なるウェルのＭＣＰ１の濃度を示す。予想した通り、ウェル１におけるＭＣＰ１の濃度は時間が経つにつれて漸進的に減少し、経路沿いの区画内では通路によってＭＣＰ１の濃度が増加して検出可能となった。例えば、図１５の＃２（２４時間）、＃３（４８時間）、＃４（７２時間）として指定された区画はＭＣＰ１の量が増加していることを示し、７２時間で勾配が明確に見られた。このことは、本願発明がケモカイン勾配の生成を補助できるということを示しており、この装置を用いることで離れた位置にあるウェルの中のＴ細胞に届くケモカイン勾配を生成することができることを示唆している。そして、その離れた位置にあるウェルの中のＴ細胞は、それらの応答性で評価することができる。

【0045】

例４
本願発明を用いてＣＡＲ Ｔ細胞の第一世代と第二世代とを識別することが可能であることをデータが示唆している。

【0046】

例３の試作品のデザインを用いて膵臓がん細胞を標的とする能力を評価した。６０ｍｌの培地が各ウェルに入っていた。結果を図１６に示す。ＣＡＰＡＮ－１株の蛍光がん細胞の培養物を２つの試作品の区画６でそれぞれ配置した。第一世代のＣＡＲ Ｔ細胞を一方の試作品の区画番号１に配置した。第二世代のＣＡＲ Ｔ細胞をもう一方の試作品の区画番号１に配置した。これら両方の試作品において、ＣＡＲ Ｔ細胞は、ＣＡＰＡＮ－１株のがん細胞によって伝達されたケモカイン勾配を辿ってＣＡＰＡＮ－１株のがん細胞に到達した（遊走のデータは示してない）。当初は、第一世代および第二世代のＣＡＲ Ｔ変異体ががん細胞の蛍光を小さくする能力を示していたことから、これらの変異体はＣＡＰＡＮ－１株のがん細胞を死滅させる点で同様に効果的であったことを示しており、約１２日目にはがん細胞がほとんど根絶していたように思われた。しかしながら、その後、第一世代のＣＡＲ Ｔ細胞ががん細胞を死滅させる能力を失い、がん細胞が回復した一方で、第二世代のＣＡＲ Ｔ細胞の持続性は飛躍的な向上を見せはじめ、抗腫瘍活性を持続することができた。なお、従来型のインビトロ装置では、２つの重要な理由により、これらのＣＡＲ Ｔ細胞の世代を識別することはできなかったであろうという点に留意することが重要である。第一に、従来型のインビトロ装置は遊走させることができず、がん細胞と同じ区画にＴ細胞を入れて実験を開始しなければならない。第二に、上述したように従来型のインビトロ装置では細胞が生存するための栄養が十分でないため、培養を２日以上継続させることができない（図１３参照）。したがって、死滅させる能力の決定的な経時的変化を検出するためにがん細胞に対するＴ細胞の攻撃を十分長い期間観察することはできない。従来の方法を使うのであれば、科学者たちはＳＣＩＤマウスを用いることによってしかその変化を知ることができないであろう。したがって、本願発明によって手早く安価に得られる重要な情報を得るために、科学者たちはお金と時間を浪費してしまっていることになる。なお、この例では気体透過性材料を使用することにより、少なくとも２８日間は培地交換をしなくて済むということも実証している。例３で行った実験の場合、装置内に十分な量（すなわち６つの区画に一区画あたり６０ｍｌ＝３６０ｍｌ）の培地が存在していたので、培地交換はしなかった。

【0047】

非常に短い期間で行う短い距離の細胞遊走の実験に関しては、気体透過性材料の使用や大量の培地の使用に依存しない装置を作れば費用効果を高くすることができるということを当業者には認識されたい。そのような場合、少なくとも２つの区画を有する装置は、シグナルおよび細胞が区画から区画に移動できるように、区画間に通路を備えた構成とすべきである。しかしながら、例４に示すように、気体透過性材料を使用することにより、少なくとも２８日間は培地交換をしなくて済むようにすることができる。

【0048】

当業者であれば、本開示の趣旨から逸脱することなく多くの修正を加えることが可能であることを理解できるであろう。それゆえ、図解したり説明したりした実施例に本願発明の範囲を限定することは意図していない。むしろ、本願発明の範囲は添付の請求の範囲とその均等物によって解釈すべきものである。本願明細書に記載の出版物、特許、特許出願および参考文献のそれぞれは、参照によりその全体を本明細書に援用する。

【図1】

【図2A】

【図2B】

【図2C】

【図3A】

【図3B】

【図3C】

【図4】

【図5A】

【図5B】

【図5C】

【図6】

【図7】

【図8】

【図9】

【図10】

【図11】

【図12】

【図13】

【図14】

【図15】

【図16】

【手続補正書】

【提出日】2022-11-24

【手続補正1】

【補正対象書類名】特許請求の範囲

【補正対象項目名】全文

【補正方法】変更

【補正の内容】

【特許請求の範囲】

【請求項1】

Ｔ細胞の機能的特性を評価する方法であって、
マトリクスバイオスキャフォールドを含む培養システムにがん細胞を加え、がん細胞がマトリクスバイオスキャフォールドに生着するための生着期間を与えるステップと、生着したがん細胞を含むマトリクスバイオスキャフォールドを培養システムから移動し、そのマトリクスバイオスキャフォールドを複数区画の細胞培養装置の一つの区画に配置するステップとを備え、
細胞培養装置は、第１区画と、第２区画と、第３区画とを少なくとも備え、それぞれの区画が、隣接する区画から共有する壁によって仕切られており、壁は区画の底部に結合されており、区画は底面積（ｃｍ ² ）に対する培地体積（ｃｍ ³ ）の比が少なくとも２となる体積の培地を保持するように構成されており、それぞれの区画が少なくとも一つの常開放の通路を含み、その常開放の通路は共有する壁を貫通する開口部であり、隣接する区画の底部を接続することで一方の区画の内容物を他方の区画と連通可能にしており、区画の底部は気体透過性であり、区画の底部と常開放の通路の底部とは共通の水平面において平らであり、培地攪拌機や、培地かん流機や、気体ポンプ装置を含まず、
培地を複数区画の細胞培養装置に加えるステップと、生着したがん細胞を含むマトリクスバイオスキャフォールドが配置された区画とは異なる一つの区画にＴ細胞を加えるステップと、Ｔ細胞が、がん細胞によって伝達されるケモカイン勾配をたどるための期間を与えるステップと、マトリクスバイオスキャフォールドを含む区画内におけるＴ細胞の存在を測定するステップとを備える、方法。

【請求項2】

請求項１に記載の方法であって、細胞培養装置が取り外し可能な蓋を含む、方法。

【請求項3】

請求項１に記載の方法であって、培養システムが３Ｄ培養システム２４ウェルプレートである、方法。

【請求項4】

請求項３に記載の方法であって、マトリクスバイオスキャフォールドがコラーゲンからなる、方法。

【請求項5】

請求項１に記載の方法であって、細胞培養装置の少なくとも一つの区画の少なくとも一つの壁が着色されている、方法。

【請求項6】

請求項１または５に記載の方法であって、細胞培養装置の少なくとも一つの区画の底部が着色されている、方法。

【請求項7】

請求項１に記載の方法であって、細胞培養装置の少なくとも一つの区画の底部が正方形または長方形である、方法。

【請求項8】

請求項１に記載の方法であって、細胞培養装置の底部がシリコーンである、方法。

【請求項9】

請求項８に記載の方法であって、シリコーンの厚みが０．００８～０．０１２インチである、方法。

【請求項10】

請求項１に記載の方法であって、細胞培養装置の区画の底部の表面積が１２ｃｍ ² である、方法。

【請求項11】

請求項１に記載の方法であって、細胞培養装置の壁によって、底部から真上に５ｃｍの高さの培地が入るようになっている、方法。

【請求項12】

請求項１に記載の方法であって、各区画の開口部が２ｍｍ×２ｍｍの大きさである、方法。

【請求項13】

請求項１に記載の方法であって、がん細胞が生物発光性である、方法。

【請求項14】

請求項１に記載の方法であって、Ｔ細胞がＣＡＲ－Ｔ細胞である、方法。

【請求項15】

請求項１に記載の方法であって、細胞培養装置の各区画の常開放の通路が、共有する壁に対して垂直な経路を形成しない、方法。

【請求項16】

請求項１３に記載の方法であって、追加の期間を含み、この追加の期間にＴ細胞ががん細胞の死滅化を開始し、抗腫瘍活性が、がん細胞の発光における減少によって測定される、方法。

【請求項17】

請求項１～１６のいずれか一項に記載の方法であって、がん細胞がＣＡＰＡＮ－１株のがん細胞である、方法。

【請求項18】

請求項１７に記載の方法であって、培養システムに加えられるＣＡＰＡＮ－１株の細胞数が１×１０ ⁶ 個である、方法。

【請求項19】

請求項１に記載の方法であって、生着期間が少なくとも２４時間である、方法。

【請求項20】

請求項１に記載の方法であって、当該期間が少なくとも１日である、方法。

【請求項21】

請求項１に記載の方法であって、当該期間が少なくとも３日間である、方法。

【請求項22】

請求項１６に記載の方法であって、追加の期間が３～２８日間である、方法。

【請求項23】

請求項２１または２２に記載の方法であって、追加で培地を加えない、方法。

【請求項24】

Ｔ細胞の機能的特性を評価する方法であって、
複数区画を有する細胞培養装置の一つの区画の底部に取り付けられたマトリクスバイオスキャフォールドにがん細胞を加えるステップを備え、
細胞培養装置は、第１区画と、第２区画と、第３区画とを少なくとも備え、それぞれの区画が、隣接する区画から共有する壁によって仕切られており、壁は区画の底部に結合されており、区画は底面積（ｃｍ ² ）に対する培地体積（ｃｍ ³ ）の比が少なくとも２となる体積の培地を保持するように構成されており、それぞれの区画が少なくとも一つの常開放の通路を含み、その常開放の通路は共有する壁を貫通する開口部であり、隣接する区画の底部を接続することで一方の区画の内容物を他方の区画と連通可能にしており、区画の底部は気体透過性であり、区画の底部と常開放の通路の底部とは共通の水平面において平らであり、培地攪拌機や、培地かん流機や、気体ポンプ装置を含まず、
複数区画の細胞培養装置に培地を加えるステップと、がん細胞がマトリクスバイオスキャフォールドに生着するための期間を与えるステップとを備え、
マトリクスバイオスキャフォールドが配置された区画とは異なる一つの区画にＴ細胞を加えるステップと、Ｔ細胞が、がん細胞によって伝達されるケモカイン勾配をたどるための期間を与えるステップとを備え、
マトリクスバイオスキャフォールドを含む区画内のＴ細胞の存在を測定するステップを備える、方法。

【請求項25】

請求項２４に記載の方法であって、がん細胞が生物発光性である、方法。

【請求項26】

請求項２４に記載の方法であって、Ｔ細胞がＣＡＲ－Ｔ細胞である、方法。

【請求項27】

請求項２５に記載の方法であって、追加の期間を含み、この追加の期間にＴ細胞ががん細胞の死滅化を開始し、抗腫瘍活性が、生物発光における減少によって測定される、方法。

【請求項28】

請求項２７に記載の方法であって、追加で培地を加えない、方法。