知財求人 - 知財ポータルサイト「IP Force」
▶ ザ リージェンツ オブ ザ ユニバーシティ オブ カリフォルニアの特許一覧
(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】公開特許公報(A)
(11)【公開番号】P2024012529
(43)【公開日】2024-01-30
(54)【発明の名称】インスリンの経口送達のためのウイルス様ナノカプシド
(51)【国際特許分類】
A61K 38/28 20060101AFI20240123BHJP
A61K 9/51 20060101ALI20240123BHJP
A61K 31/7088 20060101ALI20240123BHJP
A61K 48/00 20060101ALI20240123BHJP
A61K 49/00 20060101ALI20240123BHJP
A61K 49/14 20060101ALI20240123BHJP
A61K 51/08 20060101ALI20240123BHJP
A61K 47/64 20170101ALI20240123BHJP
A61P 3/10 20060101ALI20240123BHJP
A61K 51/12 20060101ALI20240123BHJP
【ＦＩ】
A61K38/28
A61K9/51
A61K31/7088
A61K48/00
A61K49/00
A61K49/14
A61K51/08 200
A61K47/64
A61P3/10
A61K51/12
【審査請求】有
【請求項の数】16
【出願形態】ＯＬ
【外国語出願】
(21)【出願番号】P 2023189679
(22)【出願日】2023-11-06
(62)【分割の表示】P 2020548984の分割
【原出願日】2019-03-13
(31)【優先権主張番号】62/642,356
(32)【優先日】2018-03-13
(33)【優先権主張国・地域又は機関】US
(71)【出願人】
【識別番号】506115514
【氏名又は名称】ザ リージェンツ オブ ザ ユニバーシティ オブ カリフォルニア
【氏名又は名称原語表記】Ｔｈｅ Ｒｅｇｅｎｔｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ
(74)【代理人】
【識別番号】100084995
【弁理士】
【氏名又は名称】加藤 和詳
(72)【発明者】
【氏名】チェン、アール． ホラント
(72)【発明者】
【氏名】チェン、チュン チエ
(72)【発明者】
【氏名】バイコグリ、モハンマド アリ
(57)【要約】 （修正有）
【課題】インスリンを標的化送達する組成物を提供する。
【解決手段】（ａ）Ｅ型肝炎ウイルス（ＨＥＶ）オープンリーディングフレーム２（ＯＲＦ２）タンパク質の少なくとも一部を含み、且つＨＥＶウイルス様粒子（ＶＬＰ）を形成可能である改変されたカプシドタンパク質、及び（ｂ）前記改変されたカプシドタンパク質により形成された前記ＨＥＶ ＶＬＰ内に封入されたインスリンタンパク質又はインスリンタンパク質をコードする核酸を含む、組成物とする。
【選択図】図１
【解決手段】（ａ）Ｅ型肝炎ウイルス（ＨＥＶ）オープンリーディングフレーム２（ＯＲＦ２）タンパク質の少なくとも一部を含み、且つＨＥＶウイルス様粒子（ＶＬＰ）を形成可能である改変されたカプシドタンパク質、及び（ｂ）前記改変されたカプシドタンパク質により形成された前記ＨＥＶ ＶＬＰ内に封入されたインスリンタンパク質又はインスリンタンパク質をコードする核酸を含む、組成物とする。
【選択図】図１
【特許請求の範囲】
【請求項1】
（ａ）Ｅ型肝炎ウイルス（ＨＥＶ）オープンリーディングフレーム２（ＯＲＦ２）タンパク質の少なくとも一部を含み、且つＨＥＶウイルス様粒子（ＶＬＰ）を形成可能である改変されたカプシドタンパク質、及び
（ｂ）前記改変されたカプシドタンパク質により形成された前記ＨＥＶ ＶＬＰ内に封入されたインスリンタンパク質又はインスリンタンパク質をコードする核酸
を含む、組成物。
（ｂ）前記改変されたカプシドタンパク質により形成された前記ＨＥＶ ＶＬＰ内に封入されたインスリンタンパク質又はインスリンタンパク質をコードする核酸
を含む、組成物。
【請求項2】
前記改変されたカプシドタンパク質は、ＨＥＶ ＯＲＦ２タンパク質の全長未満であり、配列番号１、２、３、４、５、又は６のＨＥＶ ＯＲＦ２タンパク質の４５２～６０６番目のセグメントを含み、且つＨＥＶ ＯＲＦ２タンパク質の前記部分に配列番号１、２、３、４、５、又は６の４８３～４９０番目、５３０～５３５番目、５５４～５６１番目、５７３～５７７番目、５８２～５９３番目、又は６０１～６０３番目のセグメント内で挿入された異種ポリペプチド配列を含む、請求項１に記載の組成物。
【請求項3】
前記異種ポリペプチド配列は、配列番号１、２、３、４、５、又は６の残基Ｙ４８５の直後に挿入されている、請求項２に記載の組成物。
【請求項4】
前記異種ポリペプチドは、ＲＧＤペプチド又は環状ＲＧＤペプチドである、請求項２又は請求項３に記載の組成物。
【請求項5】
前記改変されたカプシドタンパク質は、酸及びタンパク質分解に対し安定なＨＥＶ ＶＬＰを形成可能であり、且つ化学的に誘導体化されていてもよいシステイン又はリシンで置換された配列番号１、２、３、４、５、又は６のＹ４８５、Ｔ４８９、Ｓ５３３、Ｎ５７３、又はＴ５８６のうちの少なくとも１つの残基を有する、請求項１に記載の組成物。
【請求項6】
前記システイン又はリシンがアルキル化、アシル化、アリール化、サクシニル化、酸化、又は検出可能な標識若しくは肝細胞標的化リガンドと結合されている、請求項４に記載の組成物。
【請求項7】
前記検出可能な標識が蛍光色素分子、超常磁性標識、ＭＲＩ造影剤、陽電子放出同位体、又は原子番号が２０より大きい第３～１８族の元素のクラスターを含む、請求項６に記載の組成物。
【請求項8】
前記検出可能な標識が金ナノクラスターを含む、請求項７に記載の組成物。
【請求項9】
前記肝細胞標的化リガンドがＲＧＤペプチド又は環状ＲＧＤペプチドである、請求項６に記載の組成物。
【請求項10】
医薬的に許容可能な非薬効成分（excipient）をさらに含む、請求項９に記載の組成物。
【請求項11】
経口投与用に処方されている、請求項９に記載の組成物。
【請求項12】
肝細胞を請求項１～請求項１１のいずれか一項に記載の組成物と接触させることを含む、インスリンの標的化送達方法。
【請求項13】
前記肝細胞は患者の体内にあり、前記接触させる工程が請求項１に記載の組成物を前記患者へ投与することを含む、請求項１２に記載の方法。
【請求項14】
前記投与は経口投与である、請求項１２に記載の方法。
【請求項15】
前記改変されたカプシドタンパク質が金ナノクラスターに結合したシステイン又はリシンを含む、請求項１３に記載の方法。
【請求項16】
前記患者は糖尿病と診断された患者である、請求項１３に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
関連出願
本発明は、２０１８年３月１３日に出願された米国特許出願第６２／６４２，３５６号に対する優先権を主張し、その内容の全体があらゆる目的で参照により本明細書に取り込まれる。
本発明は、２０１８年３月１３日に出願された米国特許出願第６２／６４２，３５６号に対する優先権を主張し、その内容の全体があらゆる目的で参照により本明細書に取り込まれる。
【0002】
連邦政府による資金提供を受けた研究開発のもとで行われた発明に対する権利に関する記載
本発明は、国立衛生研究所及び米国農務省認可の国立食品農業研究所により与えられた契約番号ＡＩ０９５３８２、ＥＢ０２１２３０、及びＣＡ１９８８８０に基づく政府支援により行われた。政府は発明において一定の権利を有する。
本発明は、国立衛生研究所及び米国農務省認可の国立食品農業研究所により与えられた契約番号ＡＩ０９５３８２、ＥＢ０２１２３０、及びＣＡ１９８８８０に基づく政府支援により行われた。政府は発明において一定の権利を有する。
【背景技術】
【0003】
ウイルス様粒子（ＶＬＰ）は、ＤＮＡ／ＲＮＡ及び様々な化学療法などの診断レジメ及び治療レジメの標的化送達のためのナノキャリアとして働くことができる。Ｅ型肝炎ウイルス（ＨＥＶ）は、ヒトにおける急性肝炎を引き起こす、経腸的に伝播されるウイルスである。ＨＥＶウイルス様粒子（ＨＥＶ ＶＬＰ）は、真核生物発現系において主要カプシドタンパク質であるＨＥＶオープンリーディングフレーム２（ＯＲＦ２）の発現により生成され得る、二十面体のかごのカプシドタンパク質である。ＨＥＶ ＶＬＰは酸性及びタンパク質分解性の環境において安定であり、ＨＥＶの自然感染経路において必要な特徴である。したがって、ＨＥＶ ＶＬＰは、例えば、治療剤、造影剤、又はワクチンの送達に利用され得る有望なナノキャリアである。
【0004】
治療のためにナノキャリアが検討されてきた病気の１つが糖尿病であり、これは、特に先進国において非常に蔓延している疾患である。糖尿病を治療するために非常に多くの他の薬が開発されてきたにも関わらず、インスリンは１型糖尿病（Ｔ１Ｄ）及び進行した２型糖尿病（Ｔ２Ｄ）を治療するための第１選択薬のままである。糖尿病患者の罹患率及び死亡率はインスリンによって大幅に減少したが、患者の６０％は依然として長期のグルコース制御を獲得できていない［１］。それはおそらく、インスリン投与における典型的な針の使用に関係する不快感及び傷痕によるものであろう。むしろ、インスリンの経口投与は患者の服薬遵守（compliance）の最も高い、便利で、費用対効果が高く、好ましい投与方法であると考えられる。加えて、経口経路は、肝門静脈を通る膵臓から肝臓への内因性のインスリン分泌経路を模倣しており、よりよいグルコース恒常性が達成される［２－４］。経口インスリン送達の進歩は、タンパク質としての胃腸（ＧＩ）管における分解によるインスリンの生体利用効率が低いこと、及び腸上皮を通じての透過性が低いことによって損なわれてきた［４、５］。特に、現実的な可能性として、かつて好ましいとされた肺経路の展望がなくなったことから［６］、それでもなお、経口送達は未だに針での注射を上回る魅力的な代替方法である。
【0005】
錠剤、カプセル、腸パッチ、ハイドロゲル、マイクロ粒子、及びナノ粒子などのプラットフォームを介し、回腸及び結腸を通じた傍細胞輸送及び／又は経細胞輸送を用いたいくつかの経口インスリン送達の薬剤学が提案されてきた。それらの経口インスリン開発の状況及び異なる段階の臨床試験の進歩はいくつかの総説において論評されている［４、７－１０］。それらの中で、イスラエルのＯｒａｍ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ社は特許されたＰｒｏｔｅｉｎ Ｏｒａｌ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ（ＰＯＤ（登録商標））技術を所有しており、カプセル化、プロテアーゼ阻害剤、及びキレート剤からなる３方面からのアプローチを採用している。Ｔ１Ｄ患者及びＴ２Ｄ患者の両方におけるその臨床試験が進行中である。デンマークのＮｏｖｏ Ｎｏｒｄｉｓｋ社は、腸溶性のゲルカプセル内の油脂及び界面活性剤又は脂肪酸誘導体の混合物の微乳濁液に基づく経口インスリン錠を用いた第一相臨床試験及び第二相臨床試験を行った。臨床試験における予備的な成功にも関わらず、Ｎｏｖｏ Ｎｏｒｄｉｓｋ社は２０１６年の終わりに、システムの効率性が低いことから、経口インスリン開発計画の中断という難しい決定を下した。これらの先駆者の開発による技術や経験に基づき、本発明者らは、充分な生体利用効率、並びに食事依存的な吸収率の理解及び経口インスリン送達システムの大量生産に関するインスリンの再現可能な吸収など、いくつかの費用対効果の高い要因に取り組もうとしている。
【0006】
インスリン遺伝子がクローニングされ培養細胞中で発現された１９７０年代の終わりから、遺伝子治療の開発はまた糖尿病の有望な治療として提案されてきた［１１］。米国ウィスコンシン州マディソンを拠点とするスタートアップ企業であるＩｎｓｕｌｅｔｅ社は患者の肝細胞にインスリン産生を誘導する遺伝子治療の商業化を目指している。彼らは、その再生能力から、膵臓の代わりに肝臓を標的にしている。事前の動物試験において、裸のインスリンＤＮＡプラスミドの単回投与により、最長６週間にわたって血糖管理が可能となった［１２］。しかしながら、そのシステムは効果的な治療のために未だ対処する必要がある特定の組織／細胞標的への送達に欠けている。したがって、糖尿病治療における新規の効果的なインスリン送達手段を開発することについては確かなニーズがある。本発明は、このニーズ及び他の関連するニーズを満たすものである。
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【0007】
本発明は、インスリンの標的化送達を目的としたＨＥＶ ＶＬＰ及びそのようなＨＥＶ
ＶＬＰを用いたインスリンの送達方法を提供する。
ＶＬＰを用いたインスリンの送達方法を提供する。
【0008】
第１の態様では、本発明は、（ａ）Ｅ型肝炎ウイルス（ＨＥＶ）オープンリーディングフレーム２（ＯＲＦ２）タンパク質の少なくとも一部を含み、且つＨＥＶウイルス様粒子（ＶＬＰ）を形成可能である改変されたカプシドタンパク質、及び（ｂ）前記改変されたカプシドタンパク質により形成された前記ＨＥＶ ＶＬＰ内に封入されたタンパク質又はポリヌクレオチドをコードする配列の形のインスリンを含む組成物を提供する。通常、改変されたＯＲＦ２タンパク質は野生型のタンパク質の全長未満である（例えば、配列番号１～６に示されるいずれか１つ）。ＯＲＦ２タンパク質の特定の改変は、本発明者らにより示された以前の開示物、例えば、米国特許第８，９０６，８６２号及び同８，９０６，８６３号、国際公開第２０１５／１７９３２１号に記載されるものであってもよい。
【0009】
いくつかの実施形態では、改変されたカプシドタンパク質は、ＨＥＶ ＯＲＦ２タンパク質の全長未満であり、配列番号１、２、３、４、５、又は６のＨＥＶ ＯＲＦ２タンパク質の４５２～６０６番目のセグメントを含み、且つＨＥＶ ＯＲＦ２タンパク質の前記部分に配列番号１、２、３、４、５、又は６の４８３～４９０番目、５３０～５３５番目、５５４～５６１番目、５７３～５７７番目、５８２～５９３番目、又は６０１～６０３番目のセグメント内で挿入された異種ポリペプチド配列を含む。いくつかの実施形態では、異種ポリペプチド配列は、配列番号１、２、３、４、５、又は６の残基Ｙ４８５の直後に挿入されている。いくつかの実施形態では、異種ポリペプチドは、インスリン送達のための肝細胞標的化に関与していてもよく、例えば、インテグリンｖｂ３及びｖｂ５と強い親和性を示す、最も広く用いられるホーミングペプチドであるＲＧＤ（Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ）ぺプチド若しくは環状ＲＧＤペプチド［１］、又はＨＣＣを特異的に標的化し、ＴＴＰＲＤＡＹ［２］、ＦＱＨＰＳＦＩ（ＨＣＢＰ１）［３］、ＳＦＳＩＩＨＴＰＩＬＰＬ（ＳＰ９４）［４］、ＲＧＷＣＲＰＬＰＫＧＥＧ（ＨＣ１）［５］、ＡＧＫＧＴＰＳＬＥＴＴＰ（Ａ５４）［６］、ＫＳＬＳＲＨＤＨＩＨＨＨ（ＨＣＣ７９）［７］、及びＡＷＹＰＬＰＰ［８］を含むホーミングペプチドであってもよい。
【0010】
いくつかの実施形態では、改変されたカプシドタンパク質は酸及びタンパク質分解に対して安定なＨＥＶ ＶＬＰを形成することが可能であり、且つ化学的に誘導体化されていてもよいシステイン又はリシンで置換された配列番号１、２、３、４、５、又は６のＹ４８５、Ｔ４８９、Ｓ５３３、Ｎ５７３、又はＴ５８６のうちの少なくとも１つの残基を有する。いくつかの実施形態では、システイン又はリシンは、アルキル化、アシル化、アリール化、サクシニル化、酸化、又は検出可能な標識若しくは肝細胞標的化リガンドと結合されている。例えば、検出可能な標識は、蛍光色素分子、超常磁性標識、ＭＲＩ造影剤、陽電子放出同位体、又は原子番号が２０より大きい第３～１８族の元素のクラスターを含んでいてもよい。いくつかの実施形態では、検出可能な標識は金ナノクラスターを含む。他の例において、肝細胞標的化リガンドは異種ポリペプチドであり、異種ポリペプチドは、インスリン送達のための肝細胞標的化に関与していてもよく、例えば、最も広く用いられるホーミングペプチドであるＲＧＤ（Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ）ペプチド若しくは環状ＲＧＤペプチド［１］、又はＨＣＣを特異的に標的化し、ＴＴＰＲＤＡＹ［２］、ＦＱＨＰＳＦＩ（ＨＣＢＰ１）［３］、ＳＦＳＩＩＨＴＰＩＬＰＬ（ＳＰ９４）［４］、ＲＧＷＣＲＰＬＰＫＧＥＧ（ＨＣ１）［５］、ＡＧＫＧＴＰＳＬＥＴＴＰ（Ａ５４）［６］、ＫＳＬＳＲＨＤＨＩＨＨＨ（ＨＣＣ７９）［７］、及びＡＷＹＰＬＰＰ［８］を含むホーミングペプチドであってもよい。
【0011】
いくつかの実施形態では、組成物は医薬的に許容可能な非薬効成分（excipient）をさらに含んでいてもよく、又は、例えば、糖尿病患者の治療のため、経口投与用に処方されていてもよい。
【0012】
第２の態様では、本発明は、肝細胞へのインスリンの標的化送達方法を提供し、この方法は肝細胞を上記及び本明細書に記載の任意の種類の組成物、特にＲＧＤ（環状ＲＧＤ）ペプチド［１］などの肝細胞標的化リガンドと接触させる工程を含む。
【0013】
いくつかの実施形態では、肝細胞は患者の体内にあり、前記接触させる工程は、上記及び本明細書に記載の有効量のＨＥＶ ＶＬＰを含む組成物を患者へ投与することを含む。いくつかの実施形態では、投与は経口投与である。いくつかの実施形態では、改変されたカプシドタンパク質は、金ナノクラスターに結合したシステイン又はリシンを含む。いくつかの実施形態では、患者は糖尿病と診断された患者である。いくつかの実施形態では、患者は動物、特にヒトを含む霊長類などの哺乳動物である。
【図面の簡単な説明】
【0014】
【図1】インスリンを封入したＨＥＶＮＰを示す図である（左パネル）。インスリンを封入したＨＥＶＮＰの経口送達経路を示し、ＨＥＶＮＰは胃腸管を通り、肝門静脈を経由して肝臓へ向かう（右パネル）。
【図2】（Ａ）インスリンのＴＥＭ顕微鏡写真を示す。（Ｂ）インスリンを封入したＨＥＶＮＰのＴＥＭ顕微鏡写真を示す。（Ｃ）ＴＥＭ観察下におけるインスリンを封入したＨＥＶＮＰのサイズ分布を示し、大部分が５２ｎｍ程度の大きさを有する。（Ｄ）インスリンを封入したＨＥＶＮＰのＴＥＭ画像を示す。バーの長さは１００ｎｍである。
【図3】（Ａ）ペプシン処理なしの対照としてのインスリンを封入したＨＥＶＮＰのＴＥＭ顕微鏡写真、（Ｂ）ｐＨ３、３７℃で５分間のペプシン（３８Ｕ／ｍｌ）処理後のインスリンを封入したＨＥＶＮＰのＴＥＭ顕微鏡写真、（Ｃ）ｐＨ４、３７℃で５分間のペプシン（３８Ｕ／ｍｌ）処理後のインスリンを封入したＨＥＶＮＰのＴＥＭ顕微鏡写真を示す。バーの長さは１００ｎｍである。
【図4】ＨＥＶＮＰのインスリン封入：ＨＥＶＮＰ中へのインスリン封入の効率を高めるためのパッケージング条件の最適化を示す。
【図5】ＨＥＶＮＰのインスリン封入：ブラッドフォード法及びＥＬＩＳＡにより試験された、ＨＥＶＮＰ中へのインスリン封入の効率を高めるためのパッケージング条件の最適化を示す。超音波による積載量の増大を示す（下パネル）。
【図6】サイズ排除カラム分析：ＥＬＩＳＡに示されるように、（条件＃１６～＃３２の＋記号により示される）インスリン及びＨＥＶＮＰの重複した明確なピークを示す。
【図7】ＨＥＶＮＰのインスリン封入：低温電子顕微鏡の構造に基づくインスリンパッケージングの最適化に続き、インスリンパッケージングの３Ｄモデリング及びパッケージング機構のコンピュータによる検証、並びにＨＥＶＮＰ－インスリンの３Ｄ描写を再構成するための電子顕微鏡の断層撮影の連続傾斜像データ収集を示す。
【図8】高い安定性及び保存期間：ＨＥＶＮＰ－インスリン試料を４℃で１年以上保存し低温電子顕微鏡で観察した結果を示す。顕微鏡写真は、保存条件に対して高い安定性を示す損傷のない粒子を示している。
【図9】ＡｕＮＣによるＨＥＶＮＰの安定性の向上：ＣｒｙｏＡｒｍ ３００ｋＶ顕微鏡法、及びカプシド表面調節に基づくクラスター化した金属元素により安定性が向上されたＨＥＶＮＰの３Ｄ画像の再構成を示す。高解像度の構造決定はＨＥＶＮＰの粘膜送達を最適化するための鍵である。
【発明を実施するための形態】
【0015】
定義
本明細書及び添付の特許請求の範囲で用いられる単数形「１つの（ａ）」、「１つの（ａｎ）」、及び「その（ｔｈｅ）」は、文脈上明白な指示がない限り、複数への言及を含む。
本明細書及び添付の特許請求の範囲で用いられる単数形「１つの（ａ）」、「１つの（ａｎ）」、及び「その（ｔｈｅ）」は、文脈上明白な指示がない限り、複数への言及を含む。
【0016】
「Ｅ型肝炎ウイルス」又は「ＨＥＶ」はウイルス、ウイルス型、又はウイルスクラスを言い、ｉ）水媒介感染性肝炎を引き起こし、ｉｉ）血清学的特徴からＡ型肝炎ウイルス（ＨＡＶ）、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）、Ｃ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）、又はＤ型肝炎ウイルス（ＨＤＶ）とは区別され、ｉｉｉ）Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ
Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）に受入番号６７７１７として保管されている大腸菌株中に導入されたプラスミドであるｐＴＺＫＦ１（ＥＴ１．１）に挿入されている１．３３ｋｂのｃＤＮＡと相同的な遺伝子領域を含む。
Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）に受入番号６７７１７として保管されている大腸菌株中に導入されたプラスミドであるｐＴＺＫＦ１（ＥＴ１．１）に挿入されている１．３３ｋｂのｃＤＮＡと相同的な遺伝子領域を含む。
【0017】
ＨＥＶに関連して、「カプシドタンパク質」及び「改変されたカプシドタンパク質」という用語は、成熟した、又は改変された（例えば、切断された、組み換え技術により変異された、又は化学的に誘導体化された）ＨＥＶオープンリーディングフレーム２（ＯＲＦ２）ポリペプチドを言う。本明細書で用いられる場合、そのようなＯＲＦ２ポリペプチド又はＯＲＦ２タンパク質への言及は、全長のポリペプチド及びその断片を含むこと、及びＯＲＦ２タンパク質に対する任意の置換、欠失、挿入、又は他の改変も含むことを意味する。カプシドタンパク質はウイルス様粒子（ＶＬＰ）を形成可能でなければならない。カプシドタンパク質は、ＶＬＰ形成を抑制することがない限りは、様々な付加的な置換、欠失、又は挿入を許容し得るが、典型的に、カプシドタンパク質は少なくともＨＥＶ ＯＲＦ２の１１２～６０８番目の残基を含む。
【0018】
ある実施形態において、「改変されたカプシドタンパク質」という用語は、付加、欠失、置換のうちの１又は複数などの改変は存在するが、結果として得られた改変されたカプシドタンパク質はＶＬＰを形成する能力を維持しているカプシドタンパク質又はその一部（すなわち、カプシドタンパク質の全長未満）を言う。これらの改変には、米国特許第８，９０６，８６２号及び同第８，９０６，８６３号、国際公開第２０１５／１７９３２１号に記載されたものが含まれる。例えば、異種ポリペプチドが、カプシドタンパク質又はその一部に、４８３～４９０番目、５３０～５３５番目、５５４～５６１番目、５７３～５７７番目、５８２～５９３番目、又は６０１～６０３番目のセグメント内、又は残基Ｙ４８５の直後などの位置で挿入されていてもよい（米国特許第８，９０６，８６２号及び同第８，９０６，８６３号参照）。他の例として、国際公開第２０１５／１７９３２１号には、ＨＥＶ ＯＲＦ２のＰドメインの表面可変ループが、野生型のカプシドタンパク質配列には存在しない１又は複数のシステイン又はリシンを組み込むように改変されている、改変されたカプシドタンパク質の他の例が記載される。あるいは、又はさらに、「改変されたカプシドタンパク質」という用語は、ＨＥＶ ＯＲＦ２のＣ末端（例えば、６０８番目の位置）が、野生型のカプシドタンパク質配列には存在しない１又は複数のシステイン又はリシンを組み込むように改変されたカプシドタンパク質又はその一部を言う。あるいは、又はさらに、「改変されたカプシドタンパク質」という用語は、システイン又はリシン（例えば、ＨＥＶ ＯＲＦ２のＰドメインの表面可変ループのシステイン又はリシン、又は６０８の位置に組み換え技術により導入されたシステイン／リシン）が化学的に誘導体化され、タンパク質が少なくとも１つの異種原子又は分子と共有結合しているカプシドタンパク質又はその一部を言う。システイン又はリシンは、ＨＥＶ ＯＲＦ２タンパク質の長さが増大するように挿入されてもよく、Ｐドメインの表面可変ループ及び／又はＣ末端の１又は複数の残基を置換していてもよい。
【0019】
一般的に、改変されたカプシドタンパク質はＨＥＶ ＶＬＰを形成する能力を保持している。いくつかの場合、前記１又は複数のシステイン又はリシンは生物活性剤（例えば、ペプチドＬＸＹ３０などの細胞標的リガンド）と結合されている。Ｐドメインの表面可変ループは、例えば、ＨＥＶ ＯＲＦ２（配列番号１、２、３、４、５、又は６）の４７５～４９３番目の残基、５０２～５３５番目の残基、５３９～５６９番目の残基、５７２～５７９番目の残基、及び５８１～５９５番目の残基のうちの１又は複数を含む。Ｐドメインの表面可変ループは、配列番号１、２、３、４、５、又は６のうちの１又は複数と少なくとも約８０％、８５％、９０％、９５％、９９％、又はそれ以上の同一性があり、且つ配列番号１、２、３、４、５、又は６の４７５～４９３番目の残基、５０２～５３５番目の残基、５３９～５６９番目の残基、５７２～５７９番目の残基、及び５８１～５９５番目の残基のうちの１又は複数に対応するアミノ酸配列を含むポリペプチド残基をさらに含む。
【0020】
本明細書で用いられる「ウイルス様粒子」（ＶＬＰ）という用語は、カプシドタンパク質により形成される二十面体の殻（例えば、Ｔ１又はＴ３）を言う。ＶＬＰはウイルスゲノムを欠くため感染性はない。「ＶＬＰ」は、Ｅ型肝炎ウイルスのカプシドタンパク質ＨＥＶ ＯＲＦ２又はその一部に由来する、複製しない二十面体のウイルス殻を言う。ＶＬＰは適切な発現系におけるタンパク質の組み換え発現により自発的に形成することができる。いくつかの実施形態において、ＶＬＰは改変されたカプシドタンパク質、例えば、ＨＥＶ ＯＲＦ２又はその一部の表面可変ループに１又は複数のシステイン残基／リシン残基を含むカプシドタンパク質から形成される。ＨＥＶ ＶＬＰは改変されたＨＥＶ ＯＲＦ２タンパク質及び／又は改変されていないＨＥＶ ＯＲＦ２タンパク質の混合物を含むことができる。
【0021】
ＨＥＶ ＶＬＰの文脈中の「酸及びタンパク質分解に対して安定」という用語は、哺乳類の消化系の酸性及びタンパク質分解性の環境に対して耐性があるＨＥＶ ＶＬＰを言う。酸及びタンパク質分解に対する安定性を評価する方法は２０１３年のＪａｒｉｙａｐｏｎｇ ｅｔ ａｌ．に記載されており、該方法としては、ＨＥＶ ＶＬＰを酸環境（例えば、ｐＨ６、５．５、５、４．５、４、３．５、３、２．５、又は２、又はｐＨ約６、５．５、５、４．５、４、３．５、３、２．５、又は２）及び／又はタンパク質分解性環境（例えば、トリプシン及び／又はペプシン）におき、接触したＨＥＶ ＶＬＰを電子顕微鏡法、ゲル濾過クロマトグラフィー、又は他の適切な方法により観察し、ＨＥＶ ＶＬＰの四次構造（例えば、Ｔ＝１、Ｔ＝３、二十面体、十二面体など）が保持されるかどうかを判断することが挙げられるが、これらに限定されない。（例えば、改変された又は改変されていない）ＨＥＶ ＶＬＰの集団を酸性及び／又はタンパク質分解性の条件下で適切な時間（例えば、少なくとも１、２、３、４、５、１０、１５、２０、３０、４５、又は６０分間、又は少なくとも約１、２、３、４、５、１０、１５、２０、３０、４５、又は６０分間）インキュベートした後に試験をして、四次構造保持の程度を判断することができる。この文脈では、酸及びタンパク質分解に対して安定な改変されたＨＥＶ ＶＬＰとは、ＶＬＰの割合として酸性及び／又はタンパク質分解性の条件下でＶＬＰの集団としてインキュベートし電子顕微鏡法で評価した場合に、ＶＬＰの集団の少なくとも１０％、２５％、５０％、７５％、９０％、９５％、９９％、又は１００％が四次構造を保持している改変されたＨＥＶ ＶＬＰを言う。
【0022】
あるいは、ＨＥＶ ＶＬＰは経口経路にて対象物へ送達され、送達効率は（ｉ）ＨＥＶ
ＶＬＰ内の抗原への免疫応答、（ｉｉ）ＨＥＶ ＶＬＰに結合された、ＨＥＶ ＶＬＰに組み換え技術により導入された、又はＨＥＶ ＶＬＰにより封入された検出可能な標識、又は（ｉｉｉ）ＨＥＶ ＶＬＰと結合された（例えば、ＨＥＶ ＶＬＰに組み換え技術により導入された、ＨＥＶ ＶＬＰと結合された、又はＨＥＶ ＶＬＰにより封入された）生物活性剤の細胞への送達による生物学的反応を検出及び／又は定量することにより評価され得る。この文脈では、酸及びタンパク質分解に対して安定な改変されたＨＥＶ ＶＬＰとは、非改変のＨＥＶ ＶＬＰの経口送達効率及び／又は細胞侵入活性の少なくとも１０％、２５％、５０％、７５％、９０％、９５％、９９％、又は１００％を保持する改変されたＨＥＶ ＶＬＰを言う。
ＶＬＰ内の抗原への免疫応答、（ｉｉ）ＨＥＶ ＶＬＰに結合された、ＨＥＶ ＶＬＰに組み換え技術により導入された、又はＨＥＶ ＶＬＰにより封入された検出可能な標識、又は（ｉｉｉ）ＨＥＶ ＶＬＰと結合された（例えば、ＨＥＶ ＶＬＰに組み換え技術により導入された、ＨＥＶ ＶＬＰと結合された、又はＨＥＶ ＶＬＰにより封入された）生物活性剤の細胞への送達による生物学的反応を検出及び／又は定量することにより評価され得る。この文脈では、酸及びタンパク質分解に対して安定な改変されたＨＥＶ ＶＬＰとは、非改変のＨＥＶ ＶＬＰの経口送達効率及び／又は細胞侵入活性の少なくとも１０％、２５％、５０％、７５％、９０％、９５％、９９％、又は１００％を保持する改変されたＨＥＶ ＶＬＰを言う。
【0023】
２つの要素の相対的位置を説明する文脈において用いられる「異種の」という用語は、天然では同じ相対的位置において見られない核酸（例えば、プロモーター又はタンパク質をコードする配列）又はタンパク質（例えば、ＨＥＶ ＯＲＦ２タンパク質又はその一部、又は改変されたカプシドタンパク質及び他のタンパク質）などの２つの要素を言う。よって、遺伝子の「異種プロモーター」とは、その遺伝子と天然で機能可能には連結されていないプロモーターを言う。同様に、ＨＥＶ ＶＬＰ又はＨＥＶカプシドタンパク質の文脈における「異種ポリペプチド」又は「異種核酸」は非ＨＥＶ起源由来のものを言う。
【0024】
Ｅ型肝炎ウイルス（ＨＥＶ）は深刻な急性肝不全を引き起こすことで知られている。ＨＥＶはヘペウイルス科のヘペウイルス属に属する。ＨＥＶは約７．２ｋｂの一本鎖プラス鎖ＲＮＡ分子を含む。ＲＮＡは３′ポリアデニル化され、３つのオープンリーディングフレーム（ＯＲＦ）を含む。ＯＲＦ１はウイルスの非構造タンパク質をコードしており、ゲノムの５′側の半分に位置している。ＯＲＦ２はウイルスカプシドを形成するタンパク質をコードしており、ゲノムの３′末端に位置している。ＯＲＦ３は１３．５ｋＤａのタンパク質をコードしており、ＯＲＦ１のＣ末端及びＯＲＦ２のＮ末端と重複している。ＯＲＦ３は膜及び細胞骨格画分と結合している。
【0025】
本明細書で用いられる「封入」又は「封入された」という用語は、異種核酸又は異種タンパク質、化学療法剤、造影剤、フェライトナノ粒子などの異種物質を、本明細書で定義されるＶＬＰ内に包むことを言う。
【0026】
「生物活性剤」という用語は、特定の生物学的位置を標的化する（標的薬剤）、及び／又はインビボ又はインビトロで実証され得るいくつかの局所性又は全身性の生理学的作用又は薬理学的作用を与える、任意の化学物質、薬物、化合物、又はそれらの混合物を言う。非限定的な例としては、薬物、ホルモン、ワクチン、抗体、抗体断片、ビタミン及び補因子、多糖類、炭水化物、ステロイド、脂質、脂肪、タンパク質、ペプチド、ポリペプチド、ヌクレオチド、オリゴヌクレオチド、ポリヌクレオチド、及び核酸（例えば、ｍＲＮＡ、ｔＲＮＡ、ｓｎＲＮＡ、ＲＮＡｉ、ＤＮＡ、ｃＤＮＡ、アンチセンスコンストラクト、リボザイムなど）を含む。
【0027】
「医薬的に許容可能な」又は「薬理学的に許容可能な」物質とは、生物学的に有害でない又は望ましくないものではない物質であり、すなわち、該物質は、望ましくない生物学的作用を引き起こさずに、カプシドタンパク質、ＨＥＶ ＶＬＰ、又は本発明の組成物と共にヒトに投与され得る。その物質は、それが含まれる組成物のいずれの成分とも有害な様式で相互作用しない。
【0028】
「非薬効成分（excipient）」という用語は、本発明の組成物の最終投薬形態に存在し得る、任意の本質的に補助的な物質のことを言う。例えば、「非薬効成分」という用語は、溶媒（vehicle）、結合剤、崩壊剤、賦形剤（希釈剤）、滑沢剤、滑剤（流動促進剤）、圧縮補助剤、色素、甘味料、保存料、懸濁剤／分散剤、フィルム形成剤／コーティング剤、香味料、及び印刷用インクを含む。
【0029】
「アジュバント」という用語は、抗原と共に投与された場合、抗原に対する免疫応答を増強するが、単独で投与された場合には抗原に対する免疫応答を生じない化合物のことを言う。アジュバントは、リンパ球の動員、Ｂ細胞及び／又はＴ細胞の刺激、及びマクロファージの刺激を含む様々なシステムにより、免疫応答を増強することができる。
【0030】
抗原又は組成物に対する「免疫原性応答」は、対象における、目的の組成物中に存在する抗原に対する液性免疫応答及び／又は細胞性免疫応答の発達である。本開示の目的のため、「液性免疫応答」は抗体分子を介する免疫応答を言い、「細胞性免疫応答」はＴリンパ球及び／又は他の白血球を介するものを言う。細胞性免疫の１つの重要な態様には、細胞傷害性Ｔ細胞（「ＣＴＬ」）による抗原特異的応答が関与している。ＣＴＬは主要組織適合遺伝子複合体（ＭＨＣ）にコードされたタンパク質に関連して提示され、細胞表面で発現されるペプチド抗原に対する特異性を有する。ＣＴＬは細胞内微生物の破壊、又はそのような微生物に感染された細胞の溶解の誘導及び促進を助ける。細胞性免疫の他の態様には、ヘルパーＴ細胞による抗原特異的反応が関与している。ヘルパーＴ細胞は、細胞表面のＭＨＣ分子に関連してペプチド抗原を提示する細胞に対する非特異的なエフェクター細胞の機能を刺激すること、及びその活性を集中させることを助ける役割を果たす。「細胞性免疫応答」はまた、ＣＤ４＋Ｔ細胞及びＣＤ８＋Ｔ細胞に由来する細胞を含む活性化Ｔ細胞及び／又は他の白血球により産生されるサイトカイン、ケモカイン、及び他のそのような分子の産生を言う。したがって、免疫応答は、Ｂ細胞による抗体産生、及び／又は目的の組成物若しくはワクチンに存在する１種類の抗原又は複数種類の抗原を特異的に指向するサプレッサーＴ細胞及び／又はγΔＴ細胞の活性化の効果のうちの１又は複数を含んでいてもよい。これらの反応は、感染力を中和すること、及び／又は免疫された宿主を防御するために抗体・補体又は抗体依存性細胞毒性（ＡＤＣＣ）を介在することに役立ち得る。そのような反応は、当技術分野で周知の標準的な免疫測定法及び中和測定法を用いて判断することができる。
【0031】
「標識」、「検出可能な標識」、又は「検出可能な部分」は、分光学的手段、光化学的手段、生化学的手段、免疫化学的手段、化学的手段、又は他の物理的手段によって検出可能な組成物である。例えば、有用な標識としては、３２Ｐ、蛍光染料、高電子密度試薬、（例えば、一般にＥＬＩＳＡに用いられるような）酵素、ビオチン、ジゴキシゲニン、又はハプテン、及び、例えば、ペプチド中に放射性成分を組み込むことにより検出可能とすることができるか、又はペプチドに特異的に反応する抗体を検出するために用いることができるタンパク質が挙げられる。通常、検出可能な標識は、プローブ又は明確な結合特性を有する分子（例えば、既知の結合特異性を有するポリペプチド、又はポリヌクレオチド）に結合した異種の部分であり、プローブ／分子（したがって、その結合標的）の存在が容易に検出可能となる。検出可能な標識に結合したプローブ／分子が天然に存在する組成物を構成しないように、標識の異種な性質により、それが標識するプローブ又は分子とは異なる起源を有することが確実になる。
【0032】
本出願で用いられる「治療する」又は「治療」という用語は、関連する疾患の任意の症状の除去、低減、軽減、改善、予防、又は開始若しくは再発の遅延をもたらす行為を表す。言い換えると、疾患の「治療」は、疾患に対する治療的介入及び予防的介入の両方を含む。
【0033】
本明細書で用いられる「有効量」という用語は、望ましい効果をもたらすために量的に十分な所定の物質の量を言う。例えば、インスリンを封入しているＨＥＶナノ粒子（ＨＥＶＮＰ）の有効量は、治療目的でＨＥＶＮＰを投与されている患者において、標的となる病気（例えば、糖尿病）の症状、重症度、及び／又は再発の可能性が低減される、元に戻される、除去される、予防される、又はその開始を遅らせるような、検出可能な効果を達成するためのＨＥＶＮＰの量である。これを達成するのに適当な量を「治療効果のある用量」として定義する。投薬範囲は投与される治療剤の性質、並びに投与経路及び患者の疾患の重症度などの他の要因によって変わる。
【0034】
本明細書で用いられる「患者」という用語は、脊椎動物、例えば、鳥類種又は哺乳類種、特に、チンパンジー、サル、又はヒトなどの霊長類を含む哺乳類（例えば、雄牛／雌牛、豚、羊／山羊、馬、兎、げっ歯類、犬、猫、狐など）のことを言う。
【0035】
Ａ．序論
本開示は、インスリンの経口送達のための、化学的に安定かつ胃腸管内の酵素活性に対して耐性を示すウイルス由来ナノカプシドに関する。患者の服薬遵守が低いことを含む糖尿病の治療における一定の制限は、インスリン投与のための針による注射の一般的な使用に関連する不快感及び弊害によるものであることはよく知られている。経口送達はインスリンの最も好ましい送達経路であるが、分子量が５．８ｋＤａのタンパク質では、タンパク質分解酵素及び厳しい酸性の生理的条件による胃腸管における分解、並びに吸収後の送達効率及び腸上皮を通じての透過性を含む課題に直面する。インスリンの経口送達システムがいくつか開発され、臨床試験が認可されてきたが、低い生体利用効率の改善、再現可能な吸収の達成、及び食事依存的な吸収率の理解の獲得、及び経口投与インスリン送達システムの大量生産の必要性を含む、費用に関連する多数の要因に取り組む必要がある。
本開示は、インスリンの経口送達のための、化学的に安定かつ胃腸管内の酵素活性に対して耐性を示すウイルス由来ナノカプシドに関する。患者の服薬遵守が低いことを含む糖尿病の治療における一定の制限は、インスリン投与のための針による注射の一般的な使用に関連する不快感及び弊害によるものであることはよく知られている。経口送達はインスリンの最も好ましい送達経路であるが、分子量が５．８ｋＤａのタンパク質では、タンパク質分解酵素及び厳しい酸性の生理的条件による胃腸管における分解、並びに吸収後の送達効率及び腸上皮を通じての透過性を含む課題に直面する。インスリンの経口送達システムがいくつか開発され、臨床試験が認可されてきたが、低い生体利用効率の改善、再現可能な吸収の達成、及び食事依存的な吸収率の理解の獲得、及び経口投与インスリン送達システムの大量生産の必要性を含む、費用に関連する多数の要因に取り組む必要がある。
【0036】
Ｅ型肝炎ウイルスナノ粒子（ＨＥＶＮＰ）は自己集合性かつ非感染性のナノカプシドに由来する。ＨＥＶＮＰは酸性環境下で安定であり、かつタンパク質消化に対して耐性があるため、経口送達の媒体として大きな利点を有する。ＨＥＶＮＰは経口で投与され、その後、ＨＥＶの自然感染経路に従って、小腸、及び最終的に肝臓へ輸送され得る。インビトロでの分解／再構築（disassembly/reassembly）の能力により、ＨＥＶＮＰは薬物又は核酸を封入して、それらを胃腸管内の消化システムを通過して送達することができる。遺伝子操作又は化学的結合により、特定の標的化リガンド（例えば、肝臓への送達を標的化するリガンド）をＨＥＶＮＰの突起したドメインに結合することができる。経口送達した薬物（例えば、インスリン）のよりよい生体利用効率のため、ＨＥＶＮＰ構造を単分散の金ナノクラスター（ＡｕＮＣ）との結合させることにより安定化することができる［１８］。
【0037】
本開示及び本発明者らによる先の公表文献（例えば、米国特許第８，９０６，８６２号及び同８，９０６，８６３号、国際公開第２０１５／１７９３２１号参照）における特定の態様は、ＨＥＶＮＰの産生、並びに表面改変の方法及び応用、インスリンの肝臓への経口送達のための封入、及び膵臓から肝臓への生理学的な分泌経路の模倣についての概要を説明している。
【0038】
経口インスリン送達カプセルとして安定化されたＨＥＶＮＰの構造により、以下の利益がもたらされる。（１）針、関連する危険、及び処分の必要性の除去、（２）ポリペプチド又は配列自身をコードするポリヌクレオチドとしてのインスリンをＨＥＶＮＰ構造中にインビトロで容易に封入し、標的リガンドなしでも肝臓へ送達し得る。しかしながら、治療の標的化リガンドはインスリン（例えば、インスリン遺伝子）の特に膵臓への送達を可能にし、増強することになる、（３）カプシドタンパク質からなるＨＥＶＮＰは、毒性学的な懸念はほとんどなく、タンパク質分解経路を通じて生分解され得る。
【0039】
インスリンを封入したＨＥＶＮＰの様々な型の組み合わせを、糖尿病患者における血糖値のよりよい制御のための集学的治療として用いることができる。ＨＥＶＮＰの拡大生産及び発現は、治療計画の費用分析のため、動物試験に続いて行われることになる。
【0040】
Ｂ．改変されたカプシドタンパク質の生産及び精製並びにＶＬＰ形成
本発明のある態様は、カプシドタンパク質及びそれに由来するＶＬＰの生産及び精製方法に関する（Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ａｎｄ ｓｅｌｆ－ａｓｓｅｍｂｌｙ ｏｆ ｅｍｐｔｙ ｖｉｒｕｓ－ｌｉｋｅ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ ｏｆ ｈｅｐａｔｉｔｉｓ Ｅ ｖｉｒｕｓ．Ｌｉ ＴＣ，Ｙａｍａｋａｗａ Ｙ，Ｓｕｚｕｋｉ Ｋ，Ｔａｔｓｕｍｉ Ｍ，Ｒａｚａｋ ＭＡ，Ｕｃｈｉｄａ Ｔ，Ｔａｋｅｄａ Ｎ，Ｍｉｙａｍｕｒａ Ｔ．，Ｊ Ｖｉｒｏｌ．１９９７ Ｏｃｔ；７１（１０）：７２０７－１３．Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｅｌｅｍｅｎｔｓ ｏｆ ｔｈｅ ｃａｐｓｉｄ ｐｒｏｔｅｉｎ ｆｏｒ ｓｅｌｆ－ａｓｓｅｍｂｌｙ ｉｎｔｏ ｅｍｐｔｙ ｖｉｒｕｓ－ｌｉｋｅ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ ｏｆ ｈｅｐａｔｉｔｉｓ Ｅ ｖｉｒｕｓ．Ｌｉ ＴＣ，Ｔａｋｅｄａ Ｎ，Ｍｉｙａｍｕｒａ Ｔ，Ｍａｔｓｕｕｒａ Ｙ，Ｗａｎｇ ＪＣ，Ｅｎｇｖａｌｌ Ｈ，Ｈａｍｍａｒ Ｌ，Ｘｉｎｇ Ｌ，Ｃｈｅｎｇ ＲＨ．Ｊ Ｖｉｒｏｌ．２００５ Ｏｃｔ；７９（２０）：１２９９９－３００６．Ｎｉｉｋｕｒａ Ｍ ｅｔ ａｌ，Ｃｈｉｍｅｒｉｃ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ｈｅｐａｔｉｔｉｓ Ｅ ｖｉｒｕｓ－ｌｉｋｅ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ ａｓ ａｎ ｏｒａｌ ｖａｃｃｉｎｅ ｖｅｈｉｃｌｅ ｐｒｅｓｅｎｔｉｎｇ ｆｏｒｅｉｇｎ ｅｐｉｔｏｐｅｓ．Ｖｉｒｏｌｏｇｙ ２００２；２９３：２７３－２８０参照）。ある実施形態において、カプシドタンパク質は改変されたカプシドタンパク質であり、それに由来するＶＬＰはシステイン／リシン改変されたＨＥＶ ＶＬＰである。例えば、改変されたカプシドタンパク質は、ＨＥＶ ＯＲＦ２又はその一部の表面可変ループ中に、１又は複数のシステイン残基／リシン残基を含む。
本発明のある態様は、カプシドタンパク質及びそれに由来するＶＬＰの生産及び精製方法に関する（Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ａｎｄ ｓｅｌｆ－ａｓｓｅｍｂｌｙ ｏｆ ｅｍｐｔｙ ｖｉｒｕｓ－ｌｉｋｅ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ ｏｆ ｈｅｐａｔｉｔｉｓ Ｅ ｖｉｒｕｓ．Ｌｉ ＴＣ，Ｙａｍａｋａｗａ Ｙ，Ｓｕｚｕｋｉ Ｋ，Ｔａｔｓｕｍｉ Ｍ，Ｒａｚａｋ ＭＡ，Ｕｃｈｉｄａ Ｔ，Ｔａｋｅｄａ Ｎ，Ｍｉｙａｍｕｒａ Ｔ．，Ｊ Ｖｉｒｏｌ．１９９７ Ｏｃｔ；７１（１０）：７２０７－１３．Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｅｌｅｍｅｎｔｓ ｏｆ ｔｈｅ ｃａｐｓｉｄ ｐｒｏｔｅｉｎ ｆｏｒ ｓｅｌｆ－ａｓｓｅｍｂｌｙ ｉｎｔｏ ｅｍｐｔｙ ｖｉｒｕｓ－ｌｉｋｅ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ ｏｆ ｈｅｐａｔｉｔｉｓ Ｅ ｖｉｒｕｓ．Ｌｉ ＴＣ，Ｔａｋｅｄａ Ｎ，Ｍｉｙａｍｕｒａ Ｔ，Ｍａｔｓｕｕｒａ Ｙ，Ｗａｎｇ ＪＣ，Ｅｎｇｖａｌｌ Ｈ，Ｈａｍｍａｒ Ｌ，Ｘｉｎｇ Ｌ，Ｃｈｅｎｇ ＲＨ．Ｊ Ｖｉｒｏｌ．２００５ Ｏｃｔ；７９（２０）：１２９９９－３００６．Ｎｉｉｋｕｒａ Ｍ ｅｔ ａｌ，Ｃｈｉｍｅｒｉｃ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ｈｅｐａｔｉｔｉｓ Ｅ ｖｉｒｕｓ－ｌｉｋｅ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ ａｓ ａｎ ｏｒａｌ ｖａｃｃｉｎｅ ｖｅｈｉｃｌｅ ｐｒｅｓｅｎｔｉｎｇ ｆｏｒｅｉｇｎ ｅｐｉｔｏｐｅｓ．Ｖｉｒｏｌｏｇｙ ２００２；２９３：２７３－２８０参照）。ある実施形態において、カプシドタンパク質は改変されたカプシドタンパク質であり、それに由来するＶＬＰはシステイン／リシン改変されたＨＥＶ ＶＬＰである。例えば、改変されたカプシドタンパク質は、ＨＥＶ ＯＲＦ２又はその一部の表面可変ループ中に、１又は複数のシステイン残基／リシン残基を含む。
【0041】
本発明のカプシドタンパク質の発現には様々な発現系を用いることができる。本発明のウイルス様粒子の生産に有用な発現系の例としては細菌発現系（例えば、大腸菌）、昆虫細胞、酵母細胞、及び哺乳細胞が挙げられるが、これらに限定されない。本発明の好ましい発現系としては昆虫細胞を用いたバキュロウイルスの発現系が挙げられる。例えば、バキュロウイルスベクター及びバキュロウイルスＤＮＡの操作及び調製の一般的な方法、並びに昆虫細胞の培養手順は、Ａ Ｍａｎｕａｌ ｏｆ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｆｏｒ Ｂａｃｕｌｏｖｉｒｕｓ Ｖｅｃｔｏｒｓ ａｎｄ Ｉｎｓｅｃｔ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ
Ｐｒｏｃｅｄｕｒｅｓに概要が説明されている。
Ｐｒｏｃｅｄｕｒｅｓに概要が説明されている。
【0042】
本発明のカプシドタンパク質をバキュロウイルスベクターにクローン化し、適切な宿主細胞に感染させるのに用いることができる（例えば、Ｏ’Ｒｅｉｌｌｙらの「Ｂａｃｕｌｏｖｉｒｕｓ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｖｅｃｔｏｒｓ：Ａ Ｌａｂ Ｍａｎｕａｌ，」
Ｆｒｅｅｍａｎ＆Ｃｏ．１９９２．参照）。昆虫細胞株（例えば、Ｓｆ９又はＴｎ５）を本発明のカプシドタンパク質をコードするポリ核酸を含む導入ベクターで形質転換することができる。導入ベクターとしては、例えば、線形化したバキュロウイルスＤＮＡ及び所望のポリヌクレオチドを含むプラスミドが挙げられる。組み換え型バキュロウイルスを作るために、宿主細胞株を線形化したバキュロウイルスＤＮＡとプラスミドで同時形質移入してもよい。
Ｆｒｅｅｍａｎ＆Ｃｏ．１９９２．参照）。昆虫細胞株（例えば、Ｓｆ９又はＴｎ５）を本発明のカプシドタンパク質をコードするポリ核酸を含む導入ベクターで形質転換することができる。導入ベクターとしては、例えば、線形化したバキュロウイルスＤＮＡ及び所望のポリヌクレオチドを含むプラスミドが挙げられる。組み換え型バキュロウイルスを作るために、宿主細胞株を線形化したバキュロウイルスＤＮＡとプラスミドで同時形質移入してもよい。
【0043】
本発明のウイルス様粒子の精製は、当技術分野の標準的な技術に従って行うことができる（Ｌｉ ＴＣ，ｅｔ ａｌ．，Ｊ Ｖｉｒｏｌ．１９９７ Ｏｃｔ；７１（１０）：７２０７－１３．Ｌｉ ＴＣ，ｅｔ ａｌ．，Ｊ Ｖｉｒｏｌ．２００５ Ｏｃｔ；７９（２０）：１２９９９－３００６．Ｎｉｉｋｕｒａ Ｍ ｅｔ ａｌ，Ｖｉｒｏｌｏｇｙ ２００２；２９３：２７３－２８０参照）。次に精製されたＶＬＰは、適切な緩衝液に再懸濁される。
【0044】
いくつかの実施形態において、改変されたカプシドタンパク質又はそれに由来するＶＬＰは１又は複数の生物活性剤に化学的に結合することができる。例えば、当技術分野で周知の方法を用いて、カプシドタンパク質の１又は複数のシステイン残基／リシン残基をアシル化、アルキル化、アリール化、サクシニル化、又は酸化することができる。いくつかの場合、１又は複数のシステイン残基／リシン残基は、生物活性剤と共有結合しているマレイミド官能基を用いて、システインのチオール部分又はリシンと結合させることができる。いくつかの場合、クリックケミストリーを用いてマレイミド官能基を導入するように生物活性剤を改変することができる。例えば、生物活性剤のアルキン誘導体を硫酸銅及びアスコルビン酸の存在下でマレイミドアジドと接触させてマレイミド生物活性剤を生産することができる。次に、このマレイミドを改変されたカプシドタンパク質の１又は複数のシステイン／リシンと接触させて２つの分子を共有結合させることができる。いくつかの場合、ＶＬＰとして集合していないカプシドタンパク質上で結合が行われる（例えば、ＥＤＴＡ、ＥＧＴＡ、及び／又はＤＴＴ又はβ－メルカプトエタノールなどの還元剤の存在下）。いくつかの場合、ＶＬＰとして集合したカプシドタンパク質上で結合が行われる。
【0045】
Ｃ．生物活性剤の封入
本発明の他の態様は、１又は複数の生物活性剤のＨＥＶウイルス様粒子（例えば、システイン／リシン改変されたＨＥＶ ＶＬＰ）への封入に関する（ＤＮＡ ｖａｃｃｉｎｅ－ｅｎｃａｐｓｕｌａｔｅｄ ｖｉｒｕｓ－ｌｉｋｅ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ ｄｅｒｉｖｅｄ ｆｒｏｍ ａｎ ｏｒａｌｌｙ ｔｒａｎｓｍｉｓｓｉｂｌｅ ｖｉｒｕｓ ｓｔｉｍｕｌａｔｅ ｍｕｃｏｓａｌ ａｎｄ ｓｙｓｔｅｍｉｃ ｉｍｍｕｎｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｂｙ ｏｒａｌ ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ，Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ２００４．１１，６２８－６３５．Ｓ Ｔａｋａｍｕｒａ，Ｍ Ｎｉｉｋｕｒａ，Ｔ－Ｃ Ｌｉ，Ｎ Ｔａｋｅｄａ，Ｓ Ｋｕｓａｇａｗａ，Ｙ Ｔａｋｅｂｅ，Ｔ Ｍｉｙａｍｕｒａ ａｎｄ Ｙ Ｙａｓｕｔｏｍｉ参照）。当技術分野の標準的な技術を用いて、異種の核酸、タンパク質、ポリペプチド、化学療法剤、造影剤、及びナノ粒子などを本発明のＶＬＰに封入することができる。例示的な生物活性剤は、タンパク質の形態又は核酸の形態のインスリンである。一般的な手順には、（１）本発明のカプシドタンパク質により形成されたＶＬＰを分解すること、及び（２）生物活性剤の存在下でＶＬＰを再構成することが含まれる。当業者には、封入手順の前にＶＬＰを精製することが好ましいと理解されよう。封入手順の前に、任意の望ましくない物質（例えば、核酸）をＶＬＰから除去、又は実質的に除去することが特に好ましい。
本発明の他の態様は、１又は複数の生物活性剤のＨＥＶウイルス様粒子（例えば、システイン／リシン改変されたＨＥＶ ＶＬＰ）への封入に関する（ＤＮＡ ｖａｃｃｉｎｅ－ｅｎｃａｐｓｕｌａｔｅｄ ｖｉｒｕｓ－ｌｉｋｅ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ ｄｅｒｉｖｅｄ ｆｒｏｍ ａｎ ｏｒａｌｌｙ ｔｒａｎｓｍｉｓｓｉｂｌｅ ｖｉｒｕｓ ｓｔｉｍｕｌａｔｅ ｍｕｃｏｓａｌ ａｎｄ ｓｙｓｔｅｍｉｃ ｉｍｍｕｎｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｂｙ ｏｒａｌ ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ，Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ２００４．１１，６２８－６３５．Ｓ Ｔａｋａｍｕｒａ，Ｍ Ｎｉｉｋｕｒａ，Ｔ－Ｃ Ｌｉ，Ｎ Ｔａｋｅｄａ，Ｓ Ｋｕｓａｇａｗａ，Ｙ Ｔａｋｅｂｅ，Ｔ Ｍｉｙａｍｕｒａ ａｎｄ Ｙ Ｙａｓｕｔｏｍｉ参照）。当技術分野の標準的な技術を用いて、異種の核酸、タンパク質、ポリペプチド、化学療法剤、造影剤、及びナノ粒子などを本発明のＶＬＰに封入することができる。例示的な生物活性剤は、タンパク質の形態又は核酸の形態のインスリンである。一般的な手順には、（１）本発明のカプシドタンパク質により形成されたＶＬＰを分解すること、及び（２）生物活性剤の存在下でＶＬＰを再構成することが含まれる。当業者には、封入手順の前にＶＬＰを精製することが好ましいと理解されよう。封入手順の前に、任意の望ましくない物質（例えば、核酸）をＶＬＰから除去、又は実質的に除去することが特に好ましい。
【0046】
ＶＬＰの分解は当技術分野の標準的な技術を用いて行うことができる。再構成されたウイルス様粒子は生理的条件下で生産することができる（米国特許出願公開第２００８／０１３１９２８号参照）。ウイルス様粒子の分解にはしばしば、還元剤又はキレート剤など、ＶＬＰの集合を崩壊させる試薬が必要となる（米国特許出願公開第２００４／０１５２１８１号参照）。当業者には、集合及び分解に影響する要因及び条件が、特に、ｐＨ、イオン強度、ウイルスカプシドタンパク質の翻訳後修飾、ジスルフィド結合、及び２価陽イオン結合を含むことを理解されよう。例えば、ポリオーマウイルス（Ｂｒａｄｙ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ，２３：７１７－７２４，１９７７）及びロトウイルス（Ｇａｊａｒｄｏ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ，７１：２２１１－２２１６，１９９７）について、ビリオンの完全性の維持における陽イオン結合、特にカルシウムの重要性が示されてきた。また、ポリオーマウイルス（Ｗａｌｔｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒ Ｓｙｍｐ．Ｑｕａｎｔ．Ｂｉｏｌ，３９：２５５－２５７，１９７５； Ｂｒａｄｙ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ，２３：７１７－７２４，１９７７）及びＳＶ４０ウイルス（Ｃｈｒｉｓｔａｎｓｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ，２１：１０７９－１０８４，１９７７）の安定化に、ジスルフィド結合が重要であるようだ。また、ｐＨ及びイオン強度などの要因が、おそらく静電相互作用に影響することにより、ポリオーマウイルスのカプシドの安定性に影響を与えることが知られている（Ｂｒａｄｙ ｅｔ
ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ，２３：７１７－７２４，１９７７；Ｓａｌｕｎｋｅ ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ，４６：８９５－９０４，１９８６；Ｓａｌｕｎｋｅ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｊ，５６：８８７－９００，１９８０）。また、例えば、糖鎖付加、リン酸化、及びアセチル化など、いくつかのウイルスカプシドタンパク質の翻訳後修飾が、カプシドの安定性及び集合に影響することも知られている（Ｇａｒｃｅａ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８０：３６１３－３６１７，１９８３；Ｘｉ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｇｅｎ．Ｖｉｒｏｌ，７２：２９８１－２９８８，１９９１）。よって、カプシドの安定性、集合、及び分解に影響する多くの相関因子が存在している。
ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ，２３：７１７－７２４，１９７７；Ｓａｌｕｎｋｅ ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ，４６：８９５－９０４，１９８６；Ｓａｌｕｎｋｅ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｊ，５６：８８７－９００，１９８０）。また、例えば、糖鎖付加、リン酸化、及びアセチル化など、いくつかのウイルスカプシドタンパク質の翻訳後修飾が、カプシドの安定性及び集合に影響することも知られている（Ｇａｒｃｅａ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８０：３６１３－３６１７，１９８３；Ｘｉ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｇｅｎ．Ｖｉｒｏｌ，７２：２９８１－２９８８，１９９１）。よって、カプシドの安定性、集合、及び分解に影響する多くの相関因子が存在している。
【0047】
好ましくは、本発明のＶＬＰはカルシウムイオンの除去により分解される（Ｔｏｕｚｅ
Ａ，Ｃｏｕｒｓａｇｅｔ Ｐ．Ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｇｅｎｅ ｔｒａｎｓｆｅｒ ｕｓｉｎｇ ｈｕｍａｎ ｐａｐｉｌｌｏｍａｖｉｒｕｓ－ｌｉｋｅ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ．Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ １９９８；２６：１３１７－１３２３；Ｔａｋａｍｕｒａ ｅｔ ａｌ．，ＤＮＡ ｖａｃｃｉｎｅ－ｅｎｃａｐｓｕｌａｔｅｄ ｖｉｒｕｓ－ｌｉｋｅ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ ｄｅｒｉｖｅｄ ｆｒｏｍ ａｎ ｏｒａｌｌｙ
ｔｒａｎｓｍｉｓｓｉｂｌｅ ｖｉｒｕｓ ｓｔｉｍｕｌａｔｅ ｍｕｃｏｓａｌ ａｎｄ ｓｙｓｔｅｍｉｃ ｉｍｍｕｎｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｂｙ ｏｒａｌ ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ．Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ２００４；１１：６２８－６３５参照）。本発明によると、還元剤又はキレート剤、又はその両方を用いてＶＬＰを分解する。様々な還元剤を用いることができる。還元剤の好ましい実施形態としてはジチオスレイトール（ＤＴＴ）が挙げられるが、これに限定されない。様々なキレート剤、例えばエチレングリコール四酢酸（ＥＧＴＡ）又はエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）を用いることができる。ＶＬＰの分解の条件の例としては、５０ｍＭのＴｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ７．５）、１５０ｍＭのＮａＣｌ、１ｍＭのＥＧＴＡ、及び２０ｍＭのジチオスレイトールを含む緩衝液での３０分間のインキュベートにより精製されたＶＬＰを崩壊させることが挙げられるが、これらに限定されない。
Ａ，Ｃｏｕｒｓａｇｅｔ Ｐ．Ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｇｅｎｅ ｔｒａｎｓｆｅｒ ｕｓｉｎｇ ｈｕｍａｎ ｐａｐｉｌｌｏｍａｖｉｒｕｓ－ｌｉｋｅ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ．Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ １９９８；２６：１３１７－１３２３；Ｔａｋａｍｕｒａ ｅｔ ａｌ．，ＤＮＡ ｖａｃｃｉｎｅ－ｅｎｃａｐｓｕｌａｔｅｄ ｖｉｒｕｓ－ｌｉｋｅ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ ｄｅｒｉｖｅｄ ｆｒｏｍ ａｎ ｏｒａｌｌｙ
ｔｒａｎｓｍｉｓｓｉｂｌｅ ｖｉｒｕｓ ｓｔｉｍｕｌａｔｅ ｍｕｃｏｓａｌ ａｎｄ ｓｙｓｔｅｍｉｃ ｉｍｍｕｎｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｂｙ ｏｒａｌ ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ．Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ２００４；１１：６２８－６３５参照）。本発明によると、還元剤又はキレート剤、又はその両方を用いてＶＬＰを分解する。様々な還元剤を用いることができる。還元剤の好ましい実施形態としてはジチオスレイトール（ＤＴＴ）が挙げられるが、これに限定されない。様々なキレート剤、例えばエチレングリコール四酢酸（ＥＧＴＡ）又はエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）を用いることができる。ＶＬＰの分解の条件の例としては、５０ｍＭのＴｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ７．５）、１５０ｍＭのＮａＣｌ、１ｍＭのＥＧＴＡ、及び２０ｍＭのジチオスレイトールを含む緩衝液での３０分間のインキュベートにより精製されたＶＬＰを崩壊させることが挙げられるが、これらに限定されない。
【0048】
当業者には、好ましくはあるものの、生物活性剤を封入するためにＶＬＰの完全な分解は必要とされないことが理解されよう。また、当業者には、その他の場合には、ＶＬＰの部分分解が好ましいことも理解されよう。本発明によると、ＶＬＰの部分分解の条件は、生物活性剤が依然として効率的に封入されるよう制御することができる。ＶＬＰの部分分解は、還元剤のみ（例えば、２０ｍＭのＤＴＴ）でのＶＬＰの処理によって達成することができる（Ｓａｐｐ ｅｔ ａｌ，Ｊ．Ｇｅｎ．Ｖｉｒｏｌ．，７６：２４０７－２４１２，１９９５．）。本発明によると、ＶＬＰを完全に又は部分的に分解すると、生物活性剤の存在下でＶＬＰを再構築することで、生物活性剤の封入を行うことができる。いくつかの場合、封入を増強するために、正味の負電荷を有する生物活性剤を使用することが有利である。例えば、核酸は正味の負電荷を有し、正電荷を有する、又は電荷が中性の化合物と比較して、優先的に封入され得る。
【0049】
本発明のいくつかの実施形態において、ＶＬＰの再構築は崩壊したＶＬＰへのカルシウムイオンの再補充により達成される。あるいは、ＶＬＰの再構築は還元剤又はキレート剤の除去により達成される。任意に、ｐＨ及びイオン強度などの要因、並びに本発明で説明した他の要因を調節してＶＬＰの効率的な再構築及び生物活性剤の効率的な封入を達成することができる。
【0050】
いくつかの実施形態において、封入は以下のように行われる。室温で３０分間インキュベートした後、５０ｍＭのＴｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．５）及び１５０ｍＭのＮａＣｌ中の生物活性剤を崩壊したＶＬＰ調製物に添加する。次に崩壊したＶＬＰ調製物は、最終濃度５ｍＭまでＣａＣｌ２の濃度を上げて１時間インキュベーションすることにより、リフォールドされる。超遠心によりＶＬＰをペレットとし、１０ｍＭのカリウムＭＥＳ緩衝液（ｐＨ６．２）に再懸濁させる。封入された剤の量を見積もるため、リフォールドされ精製されたＶＬＰを任意の未封入の生物活性剤から精製し、ＥＧＴＡ（１ｍＭ）を用いて崩壊させる。上清の吸光度、又は他の適切な方法を生物活性剤の検出に用いることができる。
【0051】
いくつかの実施形態において、封入される生物活性剤（例えば、インスリンタンパク質又はインスリンをコードする核酸）又は造影剤はカプシド形成シグナルと結合される。例えば、ＨＥＶオープンリーディングフレーム１のコドン３５～５９に相当するＲＮＡエレメントは、本明細書で説明される切断型及び／又はシステイン／リシン改変型のＨＥＶ ＯＲＦ２ ＶＬＰを含む、ＨＥＶカプシドタンパク質とインビトロでの特異的な相互作用を可能にする、強力なカプシド形成シグナルである。ＶＬＰを治療剤又は造影剤の担体として用いるため、カプシドの自己集合の前に、薬剤（例えば、化学療法剤）に前述のＲＮＡエレメントのようなＨＥＶカプシド形成シグナルをタグ付けする化学リンカー（例えば、ＬＣ－ＳＰＤＰ又はアプタマー、テロデンドリマー）を用いることができる。
【0052】
いくつかの実施形態において、検出可能な標識（造影剤）が封入される。検出可能な標識は、それが結合した分子を化学的、酵素的、免疫学的、又は放射線学的な手段を含む様々なメカニズムで検出可能な状態にする部分であり得る。検出可能な標識の例としては、蛍光発光又は酵素により触媒される化学反応産物に基づく検出を可能とする、蛍光分子（フルオレセイン、ローダミン、テキサスレッド、及びフィコエリスリンなど）及び酵素分子（西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、及びβガラクトシダーゼなど）が挙げられる。オートラジオグラフィーのような放射線を記録する任意の適切な方法により検出できるように、３Ｈ、１２５Ｉ、３５Ｓ、１４Ｃ、又は３２Ｐなどの様々な同位体を含む放射性標識を適切な分子に結合させることも可能である。例えば、Ｔｉｊｓｓｅｎの「Ｐｒａｃｔｉｃｅ ａｎｄ Ｔｈｅｏｒｙ ｏｆ Ｅｎｚｙｍｅ Ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙｓ，」 Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ｉｎ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｂｕｒｄｏｎ ａｎｄ ｖａｎ Ｋｎｉｐｐｅｎｂｅｒｇ Ｅｄｓ．，Ｅｌｓｅｖｉｅｒ（１９８５），ｐｐ．９２０．を参照のこと。標識の導入、標識の手順、及び標識の検出はまた、Ｐｏｌａｋ ａｎｄ Ｖａｎ Ｎｏｏｒｄｅｎ，Ｉｎｔｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｔｏ Ｉｍｍｕｎｏｃｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，２ｄ Ｅｄ．，Ｓｐｒｉｎｇｅｒ Ｖｅｒｌａｇ，ＮＹ（１９９７）；ａｎｄ ｉｎ Ｈａｕｇｌａｎｄ，Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ Ｐｒｏｂｅｓ ａｎｄ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ，ａ ｃｏｍｂｉｎｅｄ ｈａｎｄｂｏｏｋ ａｎｄ ｃａｔａｌｏｇｕｅ ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ ｂｙ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ，Ｉｎｃ．（１９９６）にも見ることができる。他の検出可能な標識としては、超常磁性標識（例えば、フェライト）、コントラスト増強試薬（例えば、ＭＲＩ造影剤）、原子クラスター（例えば、金のクラスター）などが挙げられるが、これに限定されない。改変されたカプシドタンパク質上、例えば、改変されたカプシドタンパク質中の人工的に導入されたシステイン残基／リシン残基を含むシステイン残基／リシン残基上への、単分散の金のクラスターの結合は、当技術分野で周知でありかつ様々な出版物に記載の方法に従って行うことができる［１８］。
【0053】
いくつかの実施形態では、生物活性剤は封入される。いくつかの場合、生物活性剤は化学療法剤である。適切な化学療法剤としては、細胞毒性薬があるが、これに限定されない。本発明において用いられ得る細胞毒性薬の例としては、シクロホスファミド、イホスファミド、クロラムブシル、メルファラン、ブスルファン、ロムスチン、カルムスチン、クロルメチン（ムスチン）、エストラムスチン、トレオサルファン、チオテパ、ミトブロニトールなどのアルキル化剤；ドキソルビシン、エピルビシン、アクラルビシン、イダルビシン、ダウノルビシン、ミトキサントロン（ミトザントロン）、ブレオマイシン、ダクチノマイシン、及びマイトマイシンなどの細胞傷害性抗生物質；メトトレキサート、カペシタビン、シタラビン、フルダラビン、クラドリビン、ゲムシタビン、フルオロウラシル、ラルチトレキセド（トムデックス）、メルカプトプリン、テガフール、及びチオグアニンのような代謝拮抗剤；ビンブラスチン、ビンクリスチン、ビンデシン、ビノレルビン、及びエトポシドなどのビンカアルカロイド；アムサクリン、アルテタルミン、クリサンタスパーゼ、ダカルバジン、及びテモゾロミド、ヒドロキシカルバミド（ヒドロキシ尿素）、ペントスタチン、カルボプラチン、シスプラチン、及びオキサリプラチンを含む白金化合物、ポルフィマーナトリウム、プロカルバジン、ラゾキサンなどの他の抗腫瘍薬；ドセタキセル及びパクリタキセルを含むタキサン；イノテカン及びトポテカンを含むトポイソメラーゼＩ阻害剤、トラスツズマブ、及びトレチノインが挙げられる。いくつかの場合、前述の造影剤及び／又は生物活性剤、又はそれらの組み合わせのうちの１又は複数を、追加で又は代わりに、チオール結合を介して、Ｐドメインの表面可変ループ又はＣ末端のシステイン又はリシン（例えば、組み換え技術により導入されたシステイン又はリシン）と結合することができる。いくつかの場合、前述の造影剤及び／又は生物活性剤、又はそれらの組み合わせのうちの１又は複数を、追加で又は代わりに、チオール結合を介して、Ｐドメインの表面可変ループ又はＣ末端の第２のシステイン又はリシン（例えば、組み換え技術により導入されたシステイン又はリシン）と結合することができる。
【0054】
いくつかの実施形態では、インスリンは本発明のＨＥＶ ＶＬＰ構成物に封入される生物活性剤である。生物学的に活性のあるポリペプチド（糖鎖付加、ＰＥＧ化、又はＤ－アミノ酸を含む１又は複数の人工アミノ酸類似体の置換など、任意に翻訳後修飾を含んでいてもよい）の形態でのインスリンが用いられることがあるが、インスリンはインスリン及び／又はプロインスリンタンパク質をコードするポリヌクレオチド配列（例えば、ｃＤＮＡ）の形態であることもあり、例えば、インスリンをコードする核酸は、ＴＡ１ｍベクター中のヒトインスリン遺伝子発現構成物である［１２］。インスリンタンパク質は組み換え型であっても、天然源から単離されたものであってもよい。ヒトインスリン、又はウシ、ブタ、ネコ、若しくはイヌ科の動物などの他の動物に由来するものであってもよい。プロインスリンであってもよい。異なる形態のインスリン、すなわち即効型（アスパルト（ノボログ）、グルリジン、アピドラ、リスプロ（ヒューマログ））、短時間作用型（レギュラー（ヒューマリン）、ヒューマリンＲ、ノボリン）、中間作用型（ＮＰＨ（ヒューマリンＮ）、ノボリンＮ）、中間－長時間作用型（デテミル）、長時間作用型（例えば、グラルギン）を用いることができる。さらに、生物活性剤は、レベミル（Levemir）という商品名で販売されている商用のインスリン類似体などのインスリンの類似体、又は長時間作用型の基礎インスリン類似体でランタスという商品名で販売されているインスリングラルギンであってもよい。また、生物活性剤はインスリンとグルカゴン様ペプチド（ＧＬＰ－１）受容体又は他の薬物との組み合わせであってもよい。ＧＬＰ－１受容体アゴニストの例としては、リラグルチド（ビクトーザ、サクセンダ）、リキシセナチド（リキスミア）、アルビグルチド（タンゼウム）、デュラグルチド（トルリシティ）、及びセマグルチド（オゼンピック）が挙げられる。インスリンの適切な形態又は組み合わせとしては、インスリングラルギン、インスリンリスプロ、インスリンアスパルト、インスリンデテミル、インスリン（ヒト）、インスリンアスパルト＋インスリンアスパルトプロタミン、インスリングルリジン、インスリン（ヒト）＋イソフェンインスリン［国際一般名］、インスリンアスパルト＋インスリンデグルデク、インスリンアスパルト＋イソフェンインスリン［国際一般名］、インスリンデグルデク＋リラグルチド、インスリングラルギン＋リキシセナチド、ヒトインスリン＋イソフェンインスリン［国際一般名］、イソフェンインスリン［国際一般名］＋中性インスリン、ヒトイソフェンインスリン［国際一般名］＋ヒトインスリン、インスリン（ウシ）、インスリンデグルデク、ヒトインスリン亜鉛、イソフェンインスリン［国際一般名］、ヒトイソフェンインスリン［国際一般名］、中性インスリン、ヒトインスリン＋ヒトイソフェンインスリン［国際一般名］、中性インスリン＋イソフェンインスリン［国際一般名］、インスリン（ブタ）、インスリン 中性、インスリンプロタミン亜鉛、インスリン、インスリントレゴピル［国際一般名］、ヒトインスリン＋ヒトプロインスリン、インスリングラルギン＋インスリンリスプロ、ヒトインスリン＋酢酸プラムリンタイド、デュラグルチド、デュラグルチド＋インスリングラルギン、エキセナチド＋インスリンリスプロ、インスリングラルギン＋リラグルチド、インスリンリスプロ＋プラムリンタイド、エフペグレナチド［国際一般名］、ヒトインスリン＋プラムリンタイド、エキセナチド＋ヒトインスリン、インスリンリスプロ＋インスリンリスプロプロタミン、クリオキノール［国際一般名］＋ヒトインスリン、インスリングラルギン＋インスリングルリジン、及びインスリンＩ １３１が挙げられるが、これらに限定されない。さらに、Ｎａｎｋａｒら（Ｄｒｕｇ Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ Ｔｏｄａｙ，Ｖｏｌｕｍｅ １８，Ｉｓｓｕｅｓ １５－１６，Ａｕｇｕｓｔ ２０１３，Ｐａｇｅｓ ７４８－７５５）に記載されるような様々なペプチジルインスリン類似物及び非ペプチジルインスリン類似物をＨＥＶ ＶＬＰに封入する生物活性剤として用いてもよい。
【0055】
異なる構成のカプシドタンパク質を用いると、ＶＬＰの大きさが変化し得る。例えば、カプシドタンパク質のＮ－末端部分を調整してＶＬＰの大きさ及び封入容量を増加又は減少させることができる。本発明のいくつかの実施形態において、ＨＥＶ ＶＬＰを構築する際に、ＨＥＶ ＯＲＦ２タンパク質の一部のＮ－末端に融合したＨＥＶ ＯＲＦ３タンパク質の一部がＶＬＰの大きさを調整するために用いられる。通常、ＨＥＶ ＶＬＰは、ＨＥＶ ＯＲＦ２の１１２～６０８番目の残基を少なくとも有するＨＥＶ ＯＲＦ２の一部から形成される。
【0056】
Ｄ．医薬組成物、処方、及び投与
本発明はまた、タンパク質又は核酸の形態のインスリンなどの生物活性剤を封入する改変されたカプシドタンパク質により形成されるＨＥＶ ＶＬＰを含む医薬組成物又は生理的組成物を提供する。そのような医薬組成物又は生理的組成物はまた、１又は複数の医薬的に又は生理学的に許容可能な非薬効成分又は担体を含む。本発明の医薬組成物は様々な薬物送達システムでの使用に適している。本発明における使用に適した処方は、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ，Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ＰＡ，１７ｔｈ ｅｄ．（１９８５）に見られる。薬物送達の方法の簡潔な説明としては、Ｌａｎｇｅｒ，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４９：１５２７－１５３３（１９９０）を参照のこと。
本発明はまた、タンパク質又は核酸の形態のインスリンなどの生物活性剤を封入する改変されたカプシドタンパク質により形成されるＨＥＶ ＶＬＰを含む医薬組成物又は生理的組成物を提供する。そのような医薬組成物又は生理的組成物はまた、１又は複数の医薬的に又は生理学的に許容可能な非薬効成分又は担体を含む。本発明の医薬組成物は様々な薬物送達システムでの使用に適している。本発明における使用に適した処方は、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ，Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ＰＡ，１７ｔｈ ｅｄ．（１９８５）に見られる。薬物送達の方法の簡潔な説明としては、Ｌａｎｇｅｒ，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４９：１５２７－１５３３（１９９０）を参照のこと。
【0057】
本発明の組成物は非薬効成分と共に宿主へ投与することができる。本発明に有用な非薬効成分としては、溶媒、結合剤、崩壊剤、賦形剤（希釈剤）、滑沢剤、滑剤（流動促進剤）、圧縮補助剤、色素、甘味料、保存料、懸濁剤／分散剤、フィルム形成剤／コーティング剤、香味料、及び印刷用インクが挙げられるが、これらに限定されない。
【0058】
本発明の１つの利点は、本発明の組成物が経口送達に適していることである。本発明のＨＥＶ ＶＬＰは肝細胞を標的化することができるため、インスリンの部位特異的な送達を効率的に達成することができる。また、カプシドタンパク質の改変の結果として、本発明のＨＥＶ ＶＬＰは酸性環境下で安定であり、かつ胃腸管における消化に対して耐性があり、インスリンの経口送達に適している。システイン残基又はリシン残基に結合した金ナノクラスター、特に、本発明のいくつかの実施形態における改変されたカプシドタンパク質の表面を改変したものは、ＨＥＶ ＶＬＰの安定性、生体利用効率、及び送達効率をさらに高める。よって、本発明の組成物の経口送達は、Ｉ型糖尿病又はＩＩ型糖尿病及び関連する症状など、インスリン欠乏疾患又はインスリン調節異常疾患を患う患者に、治療的有用性を効率的に提供することができる。日常生活の中で消費するための身近な食品又は飲料品の栄養補助食品として用いることができるように、本発明のＨＥＶ ＶＬＰを固体（例えば、粉末）又は液体の形で処方してもよい。
【0059】
また、本発明の組成物は、鼻粘膜を含む、頬粘膜又は口唇粘膜又は気道粘膜への送達などの粘膜送達のために処方してもよい。
【0060】
本発明の医薬組成物は、例えば、経口、皮下、経皮、皮内、筋肉内、静脈内、又は腹腔内など様々な経路により投与することができる。医薬組成物の好ましい投与経路は、約０．０１～５０００ｍｇ、好ましくは５～５００ｍｇのＨＥＶ ＶＬＰの１日投与量での経口送達である。経口投与は好ましい投与の方法であり、適切な量を錠剤、カプセルの形態で、又は食品及び飲料品の栄養補助食品として、１日１回の服用量で、又は適切な間隔をあけての分割用量、例えば１日あたり２、３、４、又はそれ以上に分割用量で投与してもよい。
【0061】
本発明の医薬組成物を調製するために、不活性かつ医薬的に許容可能な担体が用いられる。薬剤の担体は固体若しくは液体のどちらでもよい。固形製剤としては、例えば、粉末、錠剤、分散性顆粒剤、カプセル剤、カシェ剤、及び座薬が挙げられる。固形担体は、希釈剤、香味剤、可溶化剤、滑沢剤、懸濁剤、結合剤、又は錠剤の崩壊剤としても作用し得る１又は複数の物質であり得、封入する物質であってもよい。
【0062】
粉末において、担体は一般的に、微粉化された活性成分、例えば、封入された核酸を有するキメラウイルス様粒子との混合物である、微粉化された固体である。錠剤において、活性成分（封入された核酸を有するキメラウイルス様粒子）は必要な結合特性を有する担体と適切な割合で混合され、所望の形及び大きさに圧縮される。
【0063】
座薬の形態の医薬組成物を調製するため、まず脂肪酸グリセリドとココアバターの混合物などの低融点ワックスが融解され、例えば撹拌により、活性成分をその中に分散させる。次に、溶かされた均一な混合物を適当な大きさの型に注ぎ込み、冷やして固形化させる。
【0064】
粉末及び錠剤は、約５重量％～約７０重量％の活性成分を含むことが好ましい。適切な担体としては、例えば、炭酸マグネシウム、ステアリン酸マグネシウム、タルク、乳糖、砂糖、ペクチン、デキストリン、でんぷん、トラガカント、メチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウム、低融点ワックス、及びココアバターなどが挙げられる。
【0065】
医薬組成物は、活性成分（他の担体の有無にかかわらず）が担体に取り囲まれているカプセルを提供する担体として、封入材料を有する活性化合物の処方を含むことができ、それにより担体は化合物と結合する。同様の方法で、カシェ剤を含むこともできる。錠剤、粉末、カシェ剤、及びカプセルは経口投与に適した固体の投薬形態として用いることができる。
【0066】
液体の医薬組成物としては、例えば、経口投与又は非経口投与に適した溶液、懸濁液、及び経口投与に適した乳濁液がある。活性成分（例えば、封入された核酸を有するキメラウイルス様粒子）の滅菌水溶液、又は水、緩衝用水、生理食塩水、ＰＢＳ、エタノール、若しくはプロピレングリコールを含む溶媒中の活性成分の滅菌溶液が非経口投与に適している液体組成物の例である。組成物は、ｐＨ調整剤、緩衝剤、等張化剤、湿潤剤、及び洗浄剤などの、生理的条件に近づけるために必要とされるような医薬的に許容可能な補助物質を含んでいてもよい。また、ＨＥＶ ＶＬＰは、市販されているように、予め梱包された粉末における錠剤／カプセルの形態、又は濃縮液の形態であってもよいことが予想される。これは、患者により水を含む食品又は飲料品に追加で加えられた後、その患者に摂取されることになる。また、ＨＥＶ ＶＬＰは液体の形態であり、さらなる希釈なしで直接摂取することもできる。
【0067】
滅菌溶液は、所望の溶媒系に活性成分（例えば、封入された核酸を有するキメラウイルス様粒子）を懸濁した後、滅菌のために得られた溶液をメンブランフィルターに通すことにより、あるいは、滅菌条件下で、予め滅菌した溶媒中に滅菌した化合物を溶解することにより、調製することができる。得られた水溶液はそのまま使用するために梱包してもよく、又は凍結乾燥してもよく、凍結乾燥した調製物は投与前に滅菌済の水性担体と組み合わせられる。調製物のｐＨは通常、３～９であり、より好ましくは５～８であり、最も好ましくは６～７であろう。
【0068】
本発明の医薬組成物は、予防的療法及び／又は治療的療法のために投与することができる。治療的適用において、疾患の症状及びその合併症を予防する、治療する、回復させる、又は少なくとも部分的に遅らせる又は抑えるのに十分な量の組成物が、既に疾患を患っている患者に投与される。これを達成するのに十分な量を「治療的有効量」と定義する。この使用に有効な量は、病気又は疾患の重症度、及び患者の体重及び全身状態に依存するが、一般的には７０ｋｇの患者に対して、１日あたり約０．１ｍｇ～約２０００ｍｇの組成物の範囲であり、より一般的に用いられるのは、７０ｋｇの患者に対して、１日あたり約５ｍｇ～約５００ｍｇの組成物の投薬量である。
【0069】
予防的適用において、本発明の医薬組成物は、糖尿病などの病気又は疾患になりやすい、又は発生する恐れがある患者に、症状の開始を遅らせる又は予防するのに十分な量が投与される。そのような量を「予防的有効量」と定義する。この使用でも、組成物の正確な量は、患者の健康状態及び体重に依存するが、一般的には、７０ｋｇの患者に対して、１日あたり約０．１ｍｇ～約２０００ｍｇの阻害剤の範囲であり、より一般的には、７０ｋｇの患者に対して、１日あたり約５ｍｇ～約５００ｍｇである。
【0070】
組成物の単回投与又は複数回投与は、治療する医師により選択される用量レベル及びパターンで行うことができる。いずれにしても、製剤処方は、治療的又は予防的に、患者において意図された効果を達成するのに十分な本発明の組成物の量で提供されるべきである。
【実施例0071】
以下の実施例は、例示のためだけに提供されるものであり、限定を目的とするものではない。当業者は、本質的に同一又は同様の結果を生じるように変更又は改変することができる様々な重要でないパラメータを容易に理解するであろう。
【0072】
実施例１：ＨＥＶＮＰによる経口インスリン送達
Ｉ．背景
過去８０年間、皮下（ＳＣ）注射は、糖尿病の治療としてのインスリン投与について、最適以下のインスリン分泌を補充するために用いられる主要な経路であった。この方法は効果的であるが、ＳＣ注射は痛みを伴い、不便であり、患者の服薬遵守を低下させる高い感染の恐れを有している。非感染性のＥ型肝炎ウイルスカプシドからなる、インスリンが封入されたＥ型肝炎ウイルスナノ粒子（ＨＥＶＮＰ）は、摂取後にインスリンを胃腸（ＧＩ）管から肝臓へ送達することが期待される。ＨＥＶＮＰは、患者の服薬遵守が最も高く最も好ましい薬物送達の経路である、インスリン経口投与のための効果的及び効率的な手段の長期の調査の答えとなり得る。
Ｉ．背景
過去８０年間、皮下（ＳＣ）注射は、糖尿病の治療としてのインスリン投与について、最適以下のインスリン分泌を補充するために用いられる主要な経路であった。この方法は効果的であるが、ＳＣ注射は痛みを伴い、不便であり、患者の服薬遵守を低下させる高い感染の恐れを有している。非感染性のＥ型肝炎ウイルスカプシドからなる、インスリンが封入されたＥ型肝炎ウイルスナノ粒子（ＨＥＶＮＰ）は、摂取後にインスリンを胃腸（ＧＩ）管から肝臓へ送達することが期待される。ＨＥＶＮＰは、患者の服薬遵守が最も高く最も好ましい薬物送達の経路である、インスリン経口投与のための効果的及び効率的な手段の長期の調査の答えとなり得る。
【0073】
ＩＩ．インスリンの経口送達のための構造的に安定化されたＨＥＶＮＰ
生理学的な視点から、経口で投与されるインスリンは、内因性のインスリン分泌経路を模倣する能力により、肝臓のグルコース産生の管理において治療的な利点を有する［４］。ＨＥＶの自然感染の経路に従って、ＨＥＶＮＰに封入されたインスリンは胃腸管を通り、門脈を通って肝臓に移行することができる（図１）。対照的に、非経口のインスリン又は吸入されたインスリンは、肝抽出を回避することによって末梢循環へ直接吸収され、それにより門脈末梢インスリン勾配及び生理的な肝臓のインスリン処置を元の状態に戻すことができない。さらに、これらの経路により末梢の標的は肝臓と比較してより高いインスリン濃度にさらされ、患者が低血糖症となる危険性が高くなり、高インスリン血症の悪影響を受けやすくなる［４］。
生理学的な視点から、経口で投与されるインスリンは、内因性のインスリン分泌経路を模倣する能力により、肝臓のグルコース産生の管理において治療的な利点を有する［４］。ＨＥＶの自然感染の経路に従って、ＨＥＶＮＰに封入されたインスリンは胃腸管を通り、門脈を通って肝臓に移行することができる（図１）。対照的に、非経口のインスリン又は吸入されたインスリンは、肝抽出を回避することによって末梢循環へ直接吸収され、それにより門脈末梢インスリン勾配及び生理的な肝臓のインスリン処置を元の状態に戻すことができない。さらに、これらの経路により末梢の標的は肝臓と比較してより高いインスリン濃度にさらされ、患者が低血糖症となる危険性が高くなり、高インスリン血症の悪影響を受けやすくなる［４］。
【0074】
Ｅ型肝炎ウイルス（ＨＥＶ）カプシドタンパク質の改変された形に由来するＥ型肝炎ウイルスナノ粒子（ＨＥＶＮＰ）は、ウイルスゲノムが欠失しており、且つ細胞への結合及び侵入が可能な非感染性で自己集合性のカプシドである。ＨＥＶは経口での粘膜伝達のために進化したため、集合したカプシドタンパク質は、タンパク質分解及び酸性の粘膜条件において、同じように安定である［１３］。高収率のＨＥＶＮＰ産生はバキュロウイルスベクターによる昆虫細胞発現系により達成された。そのタンパク質分解への安定性のため、自己集合したＨＥＶＮＰは細胞上清から直接的に抽出及び精製することができ、これにより、必要な精製工程が実質的に減少される。さらに、ＨＥＶＮＰは、安定な正二十面体の基礎に柔軟なヒンジを介して結合している、表面に露出した突起ドメイン（Ｐドメイン）を有している。Ｐドメインは、遺伝子操作［１３］又は化学的結合［１４］により外来ペプチドを挿入することで、基礎となる二十面体構造を損なうことなく改変することができる。オープンリーディングフレーム２（ＯＲＦ２）によりコードされる、Ｐドメイン上の３つの十分に露出された表面可変ループ、及びＨＥＶカプシドタンパク質（ＣＰ）のＣ末端は、少なくとも１又は複数の生物活性剤のための遺伝子操作部位及び／又は化学的結合部位としてデザインされる［１４、１５］。
【0075】
特定の臓器及び細胞区画への標的化された薬物送達は、非特異的な臓器／細胞への副作用を減少させるために提案されてきた。ＨＥＶＮＰは、その表面に露出したシステイン残基又はリシン残基が、組織標的化のための合成リガンドを用いることができることから、細胞を標的化する送達システムとして提案されてきた［１４、１５］。経口的に遺伝子を送達できるその能力は、インスリン及び／又はプロインスリンの一過性発現のために、ＨＥＶＮＰがプラスミドｃＤＮＡを小腸上皮細胞へ経口的に送達した場合の先行研究において証明されてきた［１６、１７］。遠赤外（ＦＩＲ）撮像を用いたマウスモデルにおけるＨＥＶＮＰのインビボでの生体分布アッセイにより（データ示さず）、経口送達されたＨＥＶＮＰが、特異的な肝臓標的化リガンドなしでも、肝臓に蓄積することが示された。
【0076】
ＨＥＶＮＰによる封入は、負に帯電した核酸及びナノサイズのタンパク質／小分子を治療的適用のためにパッケージングし得るような、電荷相互作用に基づく。ＨＥＶＮＰは、商用のインスリン類似体、すなわち、約５２ｎｍの大きさであるレベミル（ウェブサイト：ｌｅｖｅｍｉｒ．ｃｏｍ）によるインスリンデテミルを封入することができる（図３）。ＨＥＶＮＰの薬品毒性学を考慮すれば、それは単一のカプシドタンパク質ＯＲＦ２の複製物からなり、生分解性である。加えて、ＨＥＶＮＰは、経口遺伝子送達のために、インスリン又はプロインスリンのｃＤＮＡを封入することができる。膵臓β細胞及び／又は肝臓を標的化する能力は、一晩の化学的結合又は時間がかかるが費用対効果の高い遺伝子操作によって、特定の細胞を標的化するリガンドをＨＥＶＮＰの突起したドメインへ挿入することにより、付加することができる。ＨＥＶＮＰの組織を標的化する能力により、インスリン遺伝子を膵臓及び／又は肝臓へ輸送するための好都合な経口送達担体となり、その場でのインスリン発現が可能となる。
【0077】
経口送達担体としてＨＥＶＮＰを用いる概念は、前述の先行の研究により証明されていないだけでなく、インビトロでの安定性研究によっても支持されていなかった。異なるｐＨ及びペプシン消化試験によるインビトロでの安定性評価（非公表データ）は、インスリンが封入されたＨＥＶＮＰが、ｐＨ３の環境における５分間のペプシン消化において生存し得ることを示している（図２）。ＨＥＶＮＰは、国際公開第２０１５／１７９３２１号、米国特許第８，９０６，８６２号、及び米国特許第８，９０６，８６３号に記載された１又は複数の改変を有する、改変されたＯＲＦ２カプシドタンパク質を含む。封入されたインスリンの生体利用効率は、胃の中の過酷な消化環境を避けるため、食事前に飲むことでさらに保証され得る。その上、生体利用効率は、ＨＥＶＮＰの５回対称領域上に単分散の金ナノクラスター（ＡｕＮＣ）を化学的に結合することにより、安定化することができる［１８］。さらに、ＡｕＮＣは、深部組織を貫通することができる、そのＦＩＲ検出可能なシグナルにより、インビボの造影剤として提案されてきた［１９］。インスリンの封入、インスリン／プロインスリンのｃＤＮＡの封入、及び表面結合能による組織／細胞標的化を含む、ＨＥＶＮＰの機能の組み合わせにより、糖尿病を治療するためのインスリン自身又はインスリン遺伝子の理想的な経口送達システムとなる。送達システムは、針の使用を排除することにより患者の服薬遵守を改善する。
【0078】
本発明は、（１）吸収を高めるために表面に結合した組織／細胞標的リガンド（特に、ＨＥＶＮＰを肝細胞へ特異的に指向させることが可能なリガンド）、及び（２）薬物／遺伝子送達のため内部に封入されたインスリン（インスリンポリペプチド又はインスリンをコードするポリヌクレオチド配列のいずれかの形）を有するＨＥＶＮＰプラットフォームに属する。ＨＥＶＮＰは、米国特許第８，９０６，８６２号、米国特許第８，９０６，８６３号、及び国際公開第２０１５／１７９３２１号を含む、本発明者らによる先行する開示物に従って構成されている。
【0079】
ＩＩＩ．概要
ウイルス感染性が欠乏しているＨＥＶに由来するナノカプセルであるＨＥＶＮＰは、胃腸での安定性、標的細胞への結合、及び細胞への侵入を含むＨＥＶの本質的な特徴を保持している。インビトロでの分解／再構築能力と合わせて、ＨＥＶＮＰは飲用での魅力的な経口送達ナノカプセルとして提案されてきた。ＨＥＶＮＰによる封入は、負に帯電した核酸及びナノサイズのタンパク質／小分子を治療的適用のためにパッケージングすることができるような、積載物とカプシドタンパク質との静電相互作用である。胃腸管を経由した肝臓への経口送達のためのインスリンの封入に加え、インスリン遺伝子も封入され得る。必要ならば、膵臓β細胞及び／又は肝臓を標的化する能力は、特定の細胞を標的化するリガンドを一晩の化学的結合又は時間がかかるが費用対効果の高い遺伝子操作によって、ＨＥＶＮＰの突起したドメインへ挿入することにより、付加することができる。よって、ＨＥＶＮＰは、インスリン遺伝子を膵臓へ送達し、その場でインスリンを一過性発現することができる、細胞を標的化する遺伝子送達担体となる能力が備わっている。インスリンを封入したＨＥＶＮＰは、好ましい薬物投与の経路である経口投与により、胃腸管から肝臓へインスリンを送達することが期待される。
ウイルス感染性が欠乏しているＨＥＶに由来するナノカプセルであるＨＥＶＮＰは、胃腸での安定性、標的細胞への結合、及び細胞への侵入を含むＨＥＶの本質的な特徴を保持している。インビトロでの分解／再構築能力と合わせて、ＨＥＶＮＰは飲用での魅力的な経口送達ナノカプセルとして提案されてきた。ＨＥＶＮＰによる封入は、負に帯電した核酸及びナノサイズのタンパク質／小分子を治療的適用のためにパッケージングすることができるような、積載物とカプシドタンパク質との静電相互作用である。胃腸管を経由した肝臓への経口送達のためのインスリンの封入に加え、インスリン遺伝子も封入され得る。必要ならば、膵臓β細胞及び／又は肝臓を標的化する能力は、特定の細胞を標的化するリガンドを一晩の化学的結合又は時間がかかるが費用対効果の高い遺伝子操作によって、ＨＥＶＮＰの突起したドメインへ挿入することにより、付加することができる。よって、ＨＥＶＮＰは、インスリン遺伝子を膵臓へ送達し、その場でインスリンを一過性発現することができる、細胞を標的化する遺伝子送達担体となる能力が備わっている。インスリンを封入したＨＥＶＮＰは、好ましい薬物投与の経路である経口投与により、胃腸管から肝臓へインスリンを送達することが期待される。
【0080】
集学的治療計画において、糖尿病患者は、血糖値の制御を改善する２つ以上の糖尿病治療法にて治療される。送達されたインスリンの異なるインビボ動態を達成するため、インスリン／プロインスリンポリペプチドの形態のインスリンとインスリン／プロインスリンｃＤＮＡの形態のインスリンとの間で積載物を交換することにより、糖尿病治療の複数の療法がＨＥＶＮＰにより提供され得る。療法の他の段階は、ＨＥＶＮＰの突起したドメイン上の異なる組織／細胞標的リガンドの結合によりもたらされる。ＨＥＶＮＰに封入されたインスリン、及び／又はインスリン／プロインスリンｃＤＮＡを含むＨＥＶＮＰを経口的に送達することによって、これらの多様な治療の組み合わせは糖尿病治療の針での注射の代替法となり得る。
【0081】
ＩＶ．材料及び方法
１． インスリンのＨＥＶＮＰ封入
１．１． ＨＥＶＮＰの分解
１．１．１． ２０ｍＭのＤＴＴ、１０ｍＭのＥＤＴＡ中で、４℃で一晩、ＨＥＶＮＰを分解する。
１．１．２． ５０ｍＭのＴｒｉｓ（ｐＨ７．５）、１５０ｍＭのＮａＣｌにて、室温で１時間以上、分解されたＨＥＶＮＰを透析する。
１．１．３． ＴＥＭによる検査、分光測定法によるタンパク質濃度測定。
１． インスリンのＨＥＶＮＰ封入
１．１． ＨＥＶＮＰの分解
１．１．１． ２０ｍＭのＤＴＴ、１０ｍＭのＥＤＴＡ中で、４℃で一晩、ＨＥＶＮＰを分解する。
１．１．２． ５０ｍＭのＴｒｉｓ（ｐＨ７．５）、１５０ｍＭのＮａＣｌにて、室温で１時間以上、分解されたＨＥＶＮＰを透析する。
１．１．３． ＴＥＭによる検査、分光測定法によるタンパク質濃度測定。
【0082】
１．２．インスリンのＨＥＶＮＰへの封入
１．２．１． 分解されたＨＥＶＮＰを、５０ｍＭのＴｒｉｓ（ｐＨ７．５）、１５０ｍＭのＣａＣｌ２中でインスリンと混合し、最終濃度が２～５ｍＭとなるようにＣａＣｌ２を加える。４℃で一晩。
１．２．２． 遊離のインスリンを除去するため、サイズ排除カラムに通す。
１．２．３． 画分を収集し、分光光度計によりタンパク質濃度を測定する。
１．２．４． ＴＥＭによりインスリンが封入されたＨＥＶＮＰを検査する。
１．２．１． 分解されたＨＥＶＮＰを、５０ｍＭのＴｒｉｓ（ｐＨ７．５）、１５０ｍＭのＣａＣｌ２中でインスリンと混合し、最終濃度が２～５ｍＭとなるようにＣａＣｌ２を加える。４℃で一晩。
１．２．２． 遊離のインスリンを除去するため、サイズ排除カラムに通す。
１．２．３． 画分を収集し、分光光度計によりタンパク質濃度を測定する。
１．２．４． ＴＥＭによりインスリンが封入されたＨＥＶＮＰを検査する。
【0083】
２． ＨＥＶＮＰの特性評価
２．１． 分光光度計を用いて、２８０ｎｍの吸光度の測定値及び２６０ｎｍの吸光度／２８０ｎｍの吸光度の比を記録する。ＨＥＶＮＰ ＯＲＦ２のモル吸光係数は６０２８０であり、これは２８０ｎｍにおけるタンパク質の吸光度の値の１．０１９倍に相当する。これは１：１に近いので、ＨＥＶＮＰの濃度は、分光光度計による２８０ｎｍの吸光度のタンパク質濃度測定により表すことができる。ＨＥＶＮＰの構成要素である、ＯＲＦ２の分子量が５３．３１８ｋＤａであることを考慮すれば、以下のようである。
例：２８０ｎｍでの分光光度計の測定から、１ｍｇ／ｍＬのＨＥＶＮＰ濃度は１８．８μＭのＯＲＦ２に相当する（各ＯＲＦ２は化学的結合のための１つのシステイン部位及び１つのリシン部位を含む）。
２．１． 分光光度計を用いて、２８０ｎｍの吸光度の測定値及び２６０ｎｍの吸光度／２８０ｎｍの吸光度の比を記録する。ＨＥＶＮＰ ＯＲＦ２のモル吸光係数は６０２８０であり、これは２８０ｎｍにおけるタンパク質の吸光度の値の１．０１９倍に相当する。これは１：１に近いので、ＨＥＶＮＰの濃度は、分光光度計による２８０ｎｍの吸光度のタンパク質濃度測定により表すことができる。ＨＥＶＮＰの構成要素である、ＯＲＦ２の分子量が５３．３１８ｋＤａであることを考慮すれば、以下のようである。
【数1】
例：２８０ｎｍでの分光光度計の測定から、１ｍｇ／ｍＬのＨＥＶＮＰ濃度は１８．８μＭのＯＲＦ２に相当する（各ＯＲＦ２は化学的結合のための１つのシステイン部位及び１つのリシン部位を含む）。
【0084】
２．２． 取扱説明書１４に従い、１．０ｍｍ、１７ウェルの４～１２％のＳＤＳ－ＰＡＧＥビス－Ｔｒｉｓタンパク質ゲルを調製する。
２．２．１． ６μＬのタンパク質試料に２μＬの４×ローディングバッファーを加える。タンパク質を変性させるために、試料混合物をヒートブロックで１００℃、１０分間インキュベートする。タンパク質試料をＮｕＰＡＧＥゲルのセットアップにロードする。
２．２．２． 直流電源を１００Ｖで１０分間、その後、試料がゲルの底部から約１ｃｍ上に達するまで、１５０Ｖで４５分間に設定してＳＤＳ－ＰＡＧＥを泳動する。
２．２．３． ＳＤＳ－ＰＡＧＥゲルをクーマシーブルー（０．２５％（ｗ／ｖ）クーマシーブリリアントブルーＲ２５０、３０％（ｖ／ｖ）メタノール、１０％（ｖ／ｖ）酢酸）で１時間染色する。
２．２．４． 染色操作後、クーマシーブルー染色を除去し、室温で１２時間以上、脱染バッファー（３０％（ｖ／ｖ）メタノール、１０％（ｖ／ｖ）酢酸）をタンパク質ゲルにアプライする。
２．２．５． ５２ｋＤａのバンドにＨＥＶＮＰ ＯＲＦ２の存在を確認するため、白色光下でゲルを記録する。
２．２．１． ６μＬのタンパク質試料に２μＬの４×ローディングバッファーを加える。タンパク質を変性させるために、試料混合物をヒートブロックで１００℃、１０分間インキュベートする。タンパク質試料をＮｕＰＡＧＥゲルのセットアップにロードする。
２．２．２． 直流電源を１００Ｖで１０分間、その後、試料がゲルの底部から約１ｃｍ上に達するまで、１５０Ｖで４５分間に設定してＳＤＳ－ＰＡＧＥを泳動する。
２．２．３． ＳＤＳ－ＰＡＧＥゲルをクーマシーブルー（０．２５％（ｗ／ｖ）クーマシーブリリアントブルーＲ２５０、３０％（ｖ／ｖ）メタノール、１０％（ｖ／ｖ）酢酸）で１時間染色する。
２．２．４． 染色操作後、クーマシーブルー染色を除去し、室温で１２時間以上、脱染バッファー（３０％（ｖ／ｖ）メタノール、１０％（ｖ／ｖ）酢酸）をタンパク質ゲルにアプライする。
２．２．５． ５２ｋＤａのバンドにＨＥＶＮＰ ＯＲＦ２の存在を確認するため、白色光下でゲルを記録する。
【0085】
２．３． ＴＥＭを用いたＨＥＶＮＰの観察
２．３．１． ＴＥＭでの画像化のために、１０ｍＭのＭＥＳ（ｐＨ６．２）を用いてＨＥＶＮＰ試料を０．５～２ｍｇ／ｍＬに調製又は希釈する。
２．３．２． ４０ｍＡのグロー放電にて３０秒間、炭素被覆グリッドをイオン化して親水性の炭素表面を生成する。グロー放電装置はＥＭＳグロー放電器であってもよい。グリッドの親水性の炭素表面はグロー放電処理の後、３０分間しか持続されない。
２．３．３． ピンセットで押さえ、グリッドに２μＬのＨＥＶＮＰ試料を添加し、１５～３０秒間待ち、ろ紙を用いて拭き取る。
２．３．４． 脱イオン蒸留水を用いて直ちにグリッドを洗浄し、ろ紙を用いて拭き取る。
２．３．５． ２μＬの２％酢酸ウラニルを直ちにグリッドに添加し、１５秒待ち、その後、ろ紙を用いて拭き取る。電子除湿乾燥キャビネット中に置くことにより、試料のグリッドを一晩乾燥する。
２．３．６． 透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）にグリッドを移し、１０Ｋから８０Ｋの拡大率で撮像する。ウイルスＲＮＡが存在しないため、ＨＥＶＮＰはＴＥＭ中で直径が約２７ｎｍの空の二十面体のタンパク質のように見える。
２．３．１． ＴＥＭでの画像化のために、１０ｍＭのＭＥＳ（ｐＨ６．２）を用いてＨＥＶＮＰ試料を０．５～２ｍｇ／ｍＬに調製又は希釈する。
２．３．２． ４０ｍＡのグロー放電にて３０秒間、炭素被覆グリッドをイオン化して親水性の炭素表面を生成する。グロー放電装置はＥＭＳグロー放電器であってもよい。グリッドの親水性の炭素表面はグロー放電処理の後、３０分間しか持続されない。
２．３．３． ピンセットで押さえ、グリッドに２μＬのＨＥＶＮＰ試料を添加し、１５～３０秒間待ち、ろ紙を用いて拭き取る。
２．３．４． 脱イオン蒸留水を用いて直ちにグリッドを洗浄し、ろ紙を用いて拭き取る。
２．３．５． ２μＬの２％酢酸ウラニルを直ちにグリッドに添加し、１５秒待ち、その後、ろ紙を用いて拭き取る。電子除湿乾燥キャビネット中に置くことにより、試料のグリッドを一晩乾燥する。
２．３．６． 透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）にグリッドを移し、１０Ｋから８０Ｋの拡大率で撮像する。ウイルスＲＮＡが存在しないため、ＨＥＶＮＰはＴＥＭ中で直径が約２７ｎｍの空の二十面体のタンパク質のように見える。
【0086】
３． ビオチン、組織／細胞標的化リガンド、及び蛍光色素分子とＨＥＶＮＰの化学的結合
３．１． ＨＥＶＮＰとマレイミド結合型ビオチンの一段階結合
３．１．１． バッファー交換：ＨＥＶＮＰをミニ透析ユニットに入れ、製造業者の手順に従い、０．０１ＭのＰＢＳ（ｐＨ７．４）にて室温で１時間透析する（Ｚｅｂａ Ｓｐｉｎ脱塩カラム、４０Ｋ ＭＷＣＯ、０．５ｍＬ）。ＨＥＶＮＰを１．５ｍＬチューブに移し、分光光度計を用いて２８０ｎｍでのタンパク質濃度を測定する。
３．１．２． １８．８μＭのシステイン反応部位（詳細は工程２．２．４を参照）に相当する１ｍｇ／ｍＬのＨＥＶＮＰを、等容量の０．０１Ｍ ＰＢＳ（ｐＨ７．４中）中のマレイミド－ビオチン（１００μＭ）とモル比が１：５になるように混合し、４℃で一晩反応させる。製造業者の手順に従い、４０Ｋ ＭＷＣＯ Ｓｐｉｎ脱塩カラム操作で、未結合のマレイミド－ビオチンを除去する（Ｚｅｂａ Ｓｐｉｎ脱塩カラム、４０Ｋ ＭＷＣＯ、０．５ｍＬ）。
３．１．３． 標準的な還元ＳＤＳ－ＰＡＧＥを用いて試料を分析する（工程３．１）。
３．１．４． ＨＲＰ結合型ストレプトアビジンによる化学発光法によるウェスタンブロットを用意する。Ｘ線フィルムにより化学発光シグナルを捕捉する（図２）。
３．１． ＨＥＶＮＰとマレイミド結合型ビオチンの一段階結合
３．１．１． バッファー交換：ＨＥＶＮＰをミニ透析ユニットに入れ、製造業者の手順に従い、０．０１ＭのＰＢＳ（ｐＨ７．４）にて室温で１時間透析する（Ｚｅｂａ Ｓｐｉｎ脱塩カラム、４０Ｋ ＭＷＣＯ、０．５ｍＬ）。ＨＥＶＮＰを１．５ｍＬチューブに移し、分光光度計を用いて２８０ｎｍでのタンパク質濃度を測定する。
３．１．２． １８．８μＭのシステイン反応部位（詳細は工程２．２．４を参照）に相当する１ｍｇ／ｍＬのＨＥＶＮＰを、等容量の０．０１Ｍ ＰＢＳ（ｐＨ７．４中）中のマレイミド－ビオチン（１００μＭ）とモル比が１：５になるように混合し、４℃で一晩反応させる。製造業者の手順に従い、４０Ｋ ＭＷＣＯ Ｓｐｉｎ脱塩カラム操作で、未結合のマレイミド－ビオチンを除去する（Ｚｅｂａ Ｓｐｉｎ脱塩カラム、４０Ｋ ＭＷＣＯ、０．５ｍＬ）。
３．１．３． 標準的な還元ＳＤＳ－ＰＡＧＥを用いて試料を分析する（工程３．１）。
３．１．４． ＨＲＰ結合型ストレプトアビジンによる化学発光法によるウェスタンブロットを用意する。Ｘ線フィルムにより化学発光シグナルを捕捉する（図２）。
【0087】
３．２． ＨＥＶＮＰ表面の露出したシステインへの二段階での組織標的化リガンド（ＲＧＤペプチド）の結合
３．２．１． バッファー交換：ＨＥＶＮＰをミニ透析ユニットにアプライし、０．０１ＭのＰＢＳ（ｐＨ７．４）にて室温で１時間透析する。ＨＥＶＮＰを１．５ｍＬチューブに移し、分光光度計を用いて２８０ｎｍでのタンパク質濃度を測定する。
３．２．２． ６５０μＭのマレイミドアジド及び６５０μＭのアルキン化リガンドＸを２００μＭのＣｕＳＯ４及び１ｍＭのアスコルビン酸を含む０．０１ＭのＰＢＳ（ｐＨ７．４）に添加して、６５０μＭのマレイミド結合型リガンドＸ（Ｍａｌ－ＬｉｇａｎｄＸ）を形成する。混合物を４℃で一晩インキュベートする。
３．２．３． １８．８μＭのシステイン反応部位（詳細は工程２．２．４を参照）に相当する１ｍｇ／ｍＬのＨＥＶＮＰを、約１０％容量の０．０１Ｍ ＰＢＳ（ｐＨ７．４）中のＭａｌ－ＬｉｇａｎｄＸ（６５０μＭ）とモル比が１：３になるように混合し、４℃で一晩反応させる。比較的高濃度のマレイミド結合型ＬＸＹ３０に起因して、ＨＥＶＮＰへの損傷を避けるため、ＣｕＳＯ４などの反応物質の最終濃度は混合後に約１０分の１低減される。他の選択肢としては、銅が含まれていない結合方法がある１５。
３．２．４． 製造業者の手順に従い、４０Ｋ ＭＷＣＯ Ｓｐｉｎ脱塩カラムを用いて、未結合のマレイミドクリックリガンドＸを除去する（材料の表）。ＬＸＹ３０結合型ＨＥＶＮＰ（ＬＸＹ３０－ＨＥＶＮＰ）を４℃に保つ。
３．２．１． バッファー交換：ＨＥＶＮＰをミニ透析ユニットにアプライし、０．０１ＭのＰＢＳ（ｐＨ７．４）にて室温で１時間透析する。ＨＥＶＮＰを１．５ｍＬチューブに移し、分光光度計を用いて２８０ｎｍでのタンパク質濃度を測定する。
３．２．２． ６５０μＭのマレイミドアジド及び６５０μＭのアルキン化リガンドＸを２００μＭのＣｕＳＯ４及び１ｍＭのアスコルビン酸を含む０．０１ＭのＰＢＳ（ｐＨ７．４）に添加して、６５０μＭのマレイミド結合型リガンドＸ（Ｍａｌ－ＬｉｇａｎｄＸ）を形成する。混合物を４℃で一晩インキュベートする。
３．２．３． １８．８μＭのシステイン反応部位（詳細は工程２．２．４を参照）に相当する１ｍｇ／ｍＬのＨＥＶＮＰを、約１０％容量の０．０１Ｍ ＰＢＳ（ｐＨ７．４）中のＭａｌ－ＬｉｇａｎｄＸ（６５０μＭ）とモル比が１：３になるように混合し、４℃で一晩反応させる。比較的高濃度のマレイミド結合型ＬＸＹ３０に起因して、ＨＥＶＮＰへの損傷を避けるため、ＣｕＳＯ４などの反応物質の最終濃度は混合後に約１０分の１低減される。他の選択肢としては、銅が含まれていない結合方法がある１５。
３．２．４． 製造業者の手順に従い、４０Ｋ ＭＷＣＯ Ｓｐｉｎ脱塩カラムを用いて、未結合のマレイミドクリックリガンドＸを除去する（材料の表）。ＬＸＹ３０結合型ＨＥＶＮＰ（ＬＸＹ３０－ＨＥＶＮＰ）を４℃に保つ。
【0088】
３．３． ＬＸＹ３０結合型ＨＥＶＮＰ（ＬｉｇａｎｄＸ－ＨＥＶＮＰ）とＣｙ５．５ ＮＨＳエステル（ＮＨＳ－Ｃｙ５．５）との一段階結合
３．３．１． １８．８μＭのシステイン反応部位（詳細は工程２．２．４を参照）に相当する１ｍｇ／ｍＬのリガンドＸ結合型ＨＥＶＮＰ（ＬｉｇａｎｄＸ－ＶＬＰ）を、等容量の０．０１Ｍ ＰＢＳ（ｐＨ７．４）中のＣｙ５．５ ＮＨＳエステル（ＮＨＳ－Ｃｙ５．５ １００μＭ）とモル比が１：５になるように混合し、４℃で一晩反応させる。
３．３．２． 製造業者の手順に従い、４０Ｋ ＭＷＣＯ Ｓｐｉｎ脱塩カラム操作で、未結合のＣｙ５．５－ＮＨＳを除去する（Ｚｅｂａ Ｓｐｉｎ脱塩カラム、４０Ｋ ＭＷＣＯ、０．５ｍＬ）。ＲＧＤ、Ｃｙ５．５結合型ＨＥＶＮＰ（ＲＧＤ－ＨＥＶＮＰ－Ｃｙ５．５）を４℃に保つ。
３．３．１． １８．８μＭのシステイン反応部位（詳細は工程２．２．４を参照）に相当する１ｍｇ／ｍＬのリガンドＸ結合型ＨＥＶＮＰ（ＬｉｇａｎｄＸ－ＶＬＰ）を、等容量の０．０１Ｍ ＰＢＳ（ｐＨ７．４）中のＣｙ５．５ ＮＨＳエステル（ＮＨＳ－Ｃｙ５．５ １００μＭ）とモル比が１：５になるように混合し、４℃で一晩反応させる。
３．３．２． 製造業者の手順に従い、４０Ｋ ＭＷＣＯ Ｓｐｉｎ脱塩カラム操作で、未結合のＣｙ５．５－ＮＨＳを除去する（Ｚｅｂａ Ｓｐｉｎ脱塩カラム、４０Ｋ ＭＷＣＯ、０．５ｍＬ）。ＲＧＤ、Ｃｙ５．５結合型ＨＥＶＮＰ（ＲＧＤ－ＨＥＶＮＰ－Ｃｙ５．５）を４℃に保つ。
【0089】
実施例２：インビボでの研究
Ｉ．ＨＥＶＮＰ封入デザイン
処方において、ＨＥＶＮＰは、錠剤、カプセル、スプリンクルパウダー（sprinkle powder）、又は飲料品に含ませる液体として処方することができる。ＨＥＶＮＰのサブコンポーネントはヒト及び動物にとって安全なワクチンであることが証明されてきた。他に提案されている経口インスリン投与の増進剤とは対照的に、ＨＥＶＮＰカプセルは、経口経路を通じたインスリンのようなタンパク質積載物に対する生体利用効率が増強された、粘膜集中的な送達システムとして使用可能である。四次構造に基づく積載物は、使用可能な保持時間を延ばすための巨大分子特性を利用するようにデザインされる。
Ｉ．ＨＥＶＮＰ封入デザイン
処方において、ＨＥＶＮＰは、錠剤、カプセル、スプリンクルパウダー（sprinkle powder）、又は飲料品に含ませる液体として処方することができる。ＨＥＶＮＰのサブコンポーネントはヒト及び動物にとって安全なワクチンであることが証明されてきた。他に提案されている経口インスリン投与の増進剤とは対照的に、ＨＥＶＮＰカプセルは、経口経路を通じたインスリンのようなタンパク質積載物に対する生体利用効率が増強された、粘膜集中的な送達システムとして使用可能である。四次構造に基づく積載物は、使用可能な保持時間を延ばすための巨大分子特性を利用するようにデザインされる。
【0090】
インスリンの封入効率を最適化するために、最適条件を調べるための複数の評価を行った。図４に示すように、ＨＥＶＮＰ中へのインスリンの封入は、封入の間及び封入後はＴｒｉｓ緩衝液中で最も高い安定性及び構造均一性を示した。最適な封入条件は、中性のｐＨの範囲における、１０～５０ｍＭのＴｒｉｓ、０～１５０ｍＭのＮａＣｌに絞り込まれた。ＰＢＳ緩衝液は高度の沈殿を生成したが、対照的に、ＭＥＳ緩衝液は、積載物の封入に最も好ましくない条件を与えた。Ｔｒｉｓ緩衝液は溶液中で、安定で単分散のタンパク質の積載物を有するＨＥＶＮＰを提供したため、封入の最も高い収率は、Ｔｒｉｓ緩衝液を用いた条件であることがさらに特定された。
【0091】
封入のために、ＨＥＶＮＰサブユニットは、系中に加えられたＣａＣｌ２とともに徐々にカプセルを集合させるため、対応するモル比のインスリンのようなタンパク質の積載物とともにインキュベートされる。インスリン封入の効率は以下のように測定し、評価した。
【0092】
１．塩化セシウム密度勾配分離；ＨＥＶＮＰ及びインスリンの共存は、（ＨＥＶ及びインスリンに対する）ＥＬＩＳＡによって示される（図５）
２．サイズ排除カラム分離；ＨＥＶＮＰ及びインスリンの共存は、（ＨＥＶ及びインスリンに対する）ＥＬＩＳＡによって示される（図６）。
２．サイズ排除カラム分離；ＨＥＶＮＰ及びインスリンの共存は、（ＨＥＶ及びインスリンに対する）ＥＬＩＳＡによって示される（図６）。
【0093】
ＩＩ．密度評価を用いたＨＥＶＮＰ封入
緩衝液の最適化において、塩化セシウム勾配は、ＨＥＶＮＰ中へのインスリン封入の効率を説明するためのＥＬＩＳＡ測定値の単一のピーク内にインスリン及びＨＥＶＮＰの共存を明確に示す。「＋」はＥＬＩＳＡからの陽性の計測値及び画分６～１３におけるＨＥＶとインスリンの共存を示している。
緩衝液の最適化において、塩化セシウム勾配は、ＨＥＶＮＰ中へのインスリン封入の効率を説明するためのＥＬＩＳＡ測定値の単一のピーク内にインスリン及びＨＥＶＮＰの共存を明確に示す。「＋」はＥＬＩＳＡからの陽性の計測値及び画分６～１３におけるＨＥＶとインスリンの共存を示している。
【0094】
大きさの評価により、インスリンの積載物を有するＨＥＶＮＰの新規の構造が特定される。
【0095】
ＥＬＩＳＡに示されるように、ＳＥＣはインスリン及びＨＥＶＮＰの重複した明確なピークを示す（画分＃１６～＃３２の＋記号により示される）。
【0096】
第１のピーク（赤のピーク）に示されるように、インスリン及びＨＥＶＮＰカプセルの共存を特定するためのさらなる根拠が、抗インスリン抗体及び抗ＨＥＶＮＰ抗体それぞれの特異性に従うＥＬＩＳＡ評価により検証された。ＨＥＶＮＰの新たな形態（図５の下パネル）、すなわち、単一のピーク（３５を超える異常値の画分を除く）への超音波を介した積載物の最適化をさらに特定するため、さらなる封入が体系的に測定され、インスリンとＨＥＶの両方を有する一体化したピークとして示された（ＥＬＩＳＡにより検証、４９２ｎｍの吸光度の測定値）。
【0097】
ＩＩＩ．長期化したＨＥＶＮＰの保存期間
効果的な薬物送達システムのために、製品の高い安定性及び保存期間は重要な意味を持つ。ＨＥＶＮＰ－インスリン試料を４℃で１年以上保存し、低温電子顕微鏡で観察した。顕微鏡写真は、保存条件に対して高い安定性を示す損傷のない粒子を示している。図８に示すように、低温電子顕微鏡法は、封入されたインスリンデテミルを有するＨＥＶＮＰ粒子を観察するために用いられた。
効果的な薬物送達システムのために、製品の高い安定性及び保存期間は重要な意味を持つ。ＨＥＶＮＰ－インスリン試料を４℃で１年以上保存し、低温電子顕微鏡で観察した。顕微鏡写真は、保存条件に対して高い安定性を示す損傷のない粒子を示している。図８に示すように、低温電子顕微鏡法は、封入されたインスリンデテミルを有するＨＥＶＮＰ粒子を観察するために用いられた。
【0098】
ＩＶ．ＨＥＶＮＰ－インスリンの構造特性評価
電子顕微鏡法によりインスリンの封入を示す結果が得られてきた。しかしながら、これらのナノ粒子の２次元の分布及び３次元の構造的な特徴は未だ十分に特性評価がなされていない。自社の手順と市販の画像処理パッケージを併用して、１）粒子分布を統計的に分析、及び２）インスリンが封入されたＨＥＶＮＰの高解像度３Ｄ構造を判断するために、大規模データセットが収集及び分析されてきた。
電子顕微鏡法によりインスリンの封入を示す結果が得られてきた。しかしながら、これらのナノ粒子の２次元の分布及び３次元の構造的な特徴は未だ十分に特性評価がなされていない。自社の手順と市販の画像処理パッケージを併用して、１）粒子分布を統計的に分析、及び２）インスリンが封入されたＨＥＶＮＰの高解像度３Ｄ構造を判断するために、大規模データセットが収集及び分析されてきた。
【0099】
ＴＥＭ画像の評価は、以前に出願した我々の第１世代のＨＥＶＮＰの直径（２７ｎｍ）より約２倍大きい直径約４５ｎｍで作成されたＨＥＶＮＰ－インスリンの新規の立体構造を示す。これらのＨＥＶＮＰ内において、新規の形状及び大きさは視覚的に理解しやすい六量体のノードの突出したストランドを有するインスリン積載物を運ぶのに最適であるようだ。構造に基づくインスリンパッケージング効率の最適化を達成するため、低温電子顕微鏡により、さらなる３Ｄ体積特性評価を行った。この新世代のＨＥＶＮＰ立体構造は、前負荷によるパッケージングを完全にするためのコンピュータによるモデリングにより実現された。ＨＥＶＮＰ－インスリンの３Ｄ描写を再構成するために収集された連続傾斜データを用いた電子３Ｄ断層撮影をデジタルセグメンテーションと共に行い、－６０度から＋６０度まで１度増分で２００ｋＶ電子顕微鏡（ＪＥＯＬ ２１００Ｆ）を用いてパッケージングシステムを分析した。図７において、同時逐次再構成法を用いて３Ｄ再構成を行い、これによりＨＥＶＮＰから突出したインスリンのセグメント化されたストランドが明確に示された。
【0100】
Ｖ．大型動物モデル及び小型動物モデルにより検証されたＨＥＶＮＰ封入
マウスは２つの治療群のうちの１つに無作為に割り当てられ、インスリン耐性試験を以下のように行った。
Ａ．マウスあたり（ＨＥＶＮＰで封入された）インスリン０．１Ｕを経口投与 Ｂ．マウスあたり（ＨＥＶＮＰで封入された）インスリン１Ｕを経口投与
マウスは２つの治療群のうちの１つに無作為に割り当てられ、インスリン耐性試験を以下のように行った。
Ａ．マウスあたり（ＨＥＶＮＰで封入された）インスリン０．１Ｕを経口投与 Ｂ．マウスあたり（ＨＥＶＮＰで封入された）インスリン１Ｕを経口投与
【0101】
経口インスリン投与後の血糖濃度の減少が平均２５％であるのに対して腹腔内インスリン投与後の血糖濃度の減少を５０％と仮定し、標準偏差１５％、望ましいαエラー５％、及び検出力８０％を用い、群間の有意差を検出するため、マウスの１０％のサブグループを設けた。
【0102】
軽いイソフルラン麻酔及び柔軟な強制経口針を用いて、強制的に経口送達を行う。腹腔内注射には２６ゲージ針を用いる。インスリン及び／又はＨＥＶＮＰを０．９％生理食塩水に溶解する。経口のインスリン処方が粘膜を介して吸収されると、期待される血糖値の減少が達成される。
【0103】
加えて、８～１０匹の糖尿病性疾患モデルのイヌが、「患者」としてグルコースモニタリング測定のための試験を受けた。
【0104】
ＶＩ．封入された積載物を追跡するための動物全体の撮像
シアニン５．５（Ｃｙ５．５）で標識されたＨＥＶＮＰを用いたインビボでのマウスの光学的撮像は、Ｃｈｅｎらの“Ｃｈｅｍｉｃａｌｌｙ ａｃｔｉｖａｔａｂｌｅ ｖｉｒａｌ ｃａｐｓｉｄ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｉｚｅｄ ｆｏｒ ｃａｎｃｅｒ ｔａｒｇｅｔｉｎｇ．” Ｎａｎｏｍｅｄｉｃｉｎｅ １１，ｎｏ．４（２０１６）：３７７－３９０で以前に実証されており、ここでは、乳癌標的化分子（ＬＸＹ３０）が、改変されたシステインアーム及び露出したリシン残基に連結されたＣｙ５．５に結合された。動物全体の撮像により、ＬＸＹ３０を有するＨＥＶＮＰが腫瘍部位に集積することになることが実証された。ここでは、インスリンを封入したＨＥＶＮＰの表面が、Ｃｙ５．５ ＮＨＳエステル（ルミプローブ）と３００：１（Ｃｙ５．５：ＨＥＶＮＰ）のモル比で、０．０１ＭのＰＢＳ（ｐＨ７．２）を含む緩衝液中で室温にて２時間、続いて４℃で一晩のインキュベートにより改変される。次に、遊離のＣｙ５．５ ＮＨＳエステルは、７０００ＭＷＣＯの脱塩カラム（Ｚｅｂａ Ｓｐｉｎ脱塩カラム、Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）により除去される。Ｃｙ５．５は６８２ｎｍで励起極大を、７０２ｎｍで発光極大を、及び２５０，０００ｃｍ－１Ｍ－１のモル吸光係数を有する。
シアニン５．５（Ｃｙ５．５）で標識されたＨＥＶＮＰを用いたインビボでのマウスの光学的撮像は、Ｃｈｅｎらの“Ｃｈｅｍｉｃａｌｌｙ ａｃｔｉｖａｔａｂｌｅ ｖｉｒａｌ ｃａｐｓｉｄ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｉｚｅｄ ｆｏｒ ｃａｎｃｅｒ ｔａｒｇｅｔｉｎｇ．” Ｎａｎｏｍｅｄｉｃｉｎｅ １１，ｎｏ．４（２０１６）：３７７－３９０で以前に実証されており、ここでは、乳癌標的化分子（ＬＸＹ３０）が、改変されたシステインアーム及び露出したリシン残基に連結されたＣｙ５．５に結合された。動物全体の撮像により、ＬＸＹ３０を有するＨＥＶＮＰが腫瘍部位に集積することになることが実証された。ここでは、インスリンを封入したＨＥＶＮＰの表面が、Ｃｙ５．５ ＮＨＳエステル（ルミプローブ）と３００：１（Ｃｙ５．５：ＨＥＶＮＰ）のモル比で、０．０１ＭのＰＢＳ（ｐＨ７．２）を含む緩衝液中で室温にて２時間、続いて４℃で一晩のインキュベートにより改変される。次に、遊離のＣｙ５．５ ＮＨＳエステルは、７０００ＭＷＣＯの脱塩カラム（Ｚｅｂａ Ｓｐｉｎ脱塩カラム、Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）により除去される。Ｃｙ５．５は６８２ｎｍで励起極大を、７０２ｎｍで発光極大を、及び２５０，０００ｃｍ－１Ｍ－１のモル吸光係数を有する。
【0105】
次に、ＨＥＶＮＰ－インスリンの分布を追跡するため、光学的撮像用のＩＶＩＳスペクトル（約２０μｍ～５ｍｍの分解能）及び高解像ＣＴ用のＭｉｃｒｏＸＣＴ－２００（約１～２０μｍの分解能）を用いて動物全体の撮像を行う。経口のインスリン送達経路は、胃を通過した後、胃腸管の粘膜内層を通り、肝門静脈を経由して肝臓へ向かう。したがって、ナノ粒子がインスリンを放出する肝臓に集積する。
【0106】
ＶＩＩ．電子顕微鏡法により説明される分子の特徴
細胞レベルでのＨＥＶＮＰ分布を研究するため、高圧凍結法及び凍結固定を用いて包埋した組織の肝臓の生検を行う。抽出組織はホルムアルデヒドで弱く固定された後、試料ホルダーに置かれる。次に凍結された組織は、樹脂ブロック内で固定され、ウルトラミクロトームを用いて薄片化され、透過電子顕微鏡法（ＴＥＭ）を用いて検査される。ＨＥＶＮＰは金原子クラスター又は１０ｎｍのフェライト酸化物粒子のいずれかによってコントラストを加えることにより確認される。電子密度の高いＨＥＶＮＰ粒子は、ＴＥＭによりＩＤ付けされるのに十分なコントラストを与える。
細胞レベルでのＨＥＶＮＰ分布を研究するため、高圧凍結法及び凍結固定を用いて包埋した組織の肝臓の生検を行う。抽出組織はホルムアルデヒドで弱く固定された後、試料ホルダーに置かれる。次に凍結された組織は、樹脂ブロック内で固定され、ウルトラミクロトームを用いて薄片化され、透過電子顕微鏡法（ＴＥＭ）を用いて検査される。ＨＥＶＮＰは金原子クラスター又は１０ｎｍのフェライト酸化物粒子のいずれかによってコントラストを加えることにより確認される。電子密度の高いＨＥＶＮＰ粒子は、ＴＥＭによりＩＤ付けされるのに十分なコントラストを与える。
【0107】
高圧凍結及びＴＥＭ調製により、例えば、Ｐａａｖｏｌａｉｎｅｎらの“Ｃｏｍｐｅｎｓａｔｉｏｎ ｏｆ ｍｉｓｓｉｎｇ ｗｅｄｇｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｗｉｔｈ ｓｅｑｕｅｎｔｉａｌ ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ ｒｅｃｏｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎ ｉｎ ｅｌｅｃｔｒｏｎ ｔｏｍｏｇｒａｐｈｙ．” ＰｌｏＳ ｏｎｅ ９，ｎｏ．１０（２０１４）：ｅ１０８９７８、Ｓｏｏｎｓａｗａｄらの“Ｐｅｒｍｅａｂｉｌｉｔｙ ｃｈａｎｇｅｓ ｏｆ ｉｎｔｅｇｒｉｎ－ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ ｍｕｌｔｉｖｅｓｉｃｕｌａｒ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ ｔｒｉｇｇｅｒｅｄ ｂｙ ｐｉｃｏｒｎａｖｉｒｕｓ ｅｎｔｒｙ．” ＰｌｏＳ ｏｎｅ ９，ｎｏ．１０（２０１４）：ｅ１０８９４８、及びＳｏｏｎｓａｗａｄらの“Ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｏｆ ｇｌｙｃｏｐｒｏｔｅｉｎ ａｓｓｅｍｂｌｙ ｉｎ ｃｅｌｌｕｌａｒ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｃｏｍｐａｒｔｍｅｎｔｓ ｐｒｉｏｒ ｔｏ Ａｌｐｈａｖｉｒｕｓ ｂｕｄｄｉｎｇ．”
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｖｉｒｏｌｏｇｙ ８４，ｎｏ．２１（２０１０）：１１１４５－１１１５１に記載されるように、ＪＥＭ２１００Ｆ電子顕微鏡を用いて、細胞レベルの超微細構造の高解像３Ｄ画像を得ることができる。
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｖｉｒｏｌｏｇｙ ８４，ｎｏ．２１（２０１０）：１１１４５－１１１５１に記載されるように、ＪＥＭ２１００Ｆ電子顕微鏡を用いて、細胞レベルの超微細構造の高解像３Ｄ画像を得ることができる。
【0108】
本出願で引用される、ＧｅｎＢａｎｋの受入番号を含む、全ての特許、特許出願、及び他の出版物は、その全体があらゆる目的のため参照により取り込まれる。
【0109】
参照
１．Ｓａａｄｄｉｎｅ ＪＢ，Ｃａｄｗｅｌｌ Ｂ，Ｇｒｅｇｇ ＥＷ，Ｅｔ Ａｌ．Ｉｍｐｒｏｖｅｍｅｎｔｓ ｉｎ ｄｉａｂｅｔｅｓ ｐｒｏｃｅｓｓｅｓ ｏｆ ｃａｒｅ ａｎｄ ｉｎｔｅｒｍｅｄｉａｔｅ ｏｕｔｃｏｍｅｓ：Ｕｎｉｔｅｄ ｓｔａｔｅｓ，１９８８－２００２．Ａｎｎａｌｓ ｏｆ Ｉｎｔｅｒｎａｌ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ １４４（７），４６５－４７４（２００６）．
２．Ｈｏｆｆｍａｎ Ａ，Ｚｉｖ Ｅ．Ｐｈａｒｍａｃｏｋｉｎｅｔｉｃ ｃｏｎｓｉｄｅｒａｔｉｏｎｓ ｏｆ ｎｅｗ ｉｎｓｕｌｉｎ ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎｓ ａｎｄ
ｒｏｕｔｅｓ ｏｆ ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ．Ｃｌｉｎｉｃａｌ ｐｈａｒｍａｃｏｋｉｎｅｔｉｃｓ ３３（４），２８５－３０１（１９９７）．
３．Ｏｗｅｎｓ ＤＲ．Ｎｅｗ ｈｏｒｉｚｏｎｓ－－ａｌｔｅｒｎａｔｉｖｅ ｒｏｕｔｅｓ ｆｏｒ ｉｎｓｕｌｉｎ ｔｈｅｒａｐｙ．Ｎａｔｕｒｅ ｒｅｖｉｅｗｓ．Ｄｒｕｇ ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ １（７），５２９－５４０（２００２）．
４．Ａｒｂｉｔ Ｅ，Ｋｉｄｒｏｎ Ｍ．Ｏｒａｌ Ｉｎｓｕｌｉｎ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ
ｉｎ ａ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃ Ｃｏｎｔｅｘｔ：Ｒｅｖｉｅｗ．Ｊ Ｄｉａｂｅｔｅｓ Ｓｃｉ Ｔｅｃｈｎｏｌ １１（４），８２５－８３２（２０１７）．
５．Ｃａｒｉｎｏ ＧＰ，Ｍａｔｈｉｏｗｉｔｚ Ｅ．Ｏｒａｌ ｉｎｓｕｌｉｎ ｄｅｌｉｖｅｒｙ１Ａｂｂｒｅｖｉａｔｉｏｎｓ：ＧＩ，ｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ；ＩＤＤＭ，ｉｎｓｕｌｉｎ－ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｄｉａｂｅｔｅｓ ｍｅｌｌｉｔｕｓ；ＩＵ，ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ ｕｎｉｔｓ；ＮＩＤＤＭ，ｎｏｎ－ｉｎｓｕｌｉｎ－ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｄｉａｂｅｔｅｓ ｍｅｌｌｉｔｕｓ；ＰＩＮ，ｐｈａｓｅ
ｉｎｖｅｒｓｉｏｎ ｎａｎｏｅｎｃａｐｓｕｌａｔｉｏｎ；ＺＯＴ，ｚｏｎａ ｏｃｃｌｕｄｅｎｓ ｔｏｘｉｎ．１．Ａｄｖａｎｃｅｄ ｄｒｕｇ ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｒｅｖｉｅｗｓ ３５（２），２４９－２５７（１９９９）．
６．Ｈｅｉｎｅｍａｎｎ Ｌ．Ｎｅｗ ｗａｙｓ ｏｆ ｉｎｓｕｌｉｎ ｄｅｌｉｖｅｒｙ． Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｃｌｉｎｉｃａｌ ｐｒａｃｔｉｃｅ．Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ ｄｏｉ：１０．１１１１／ｊ．１７４２－１２４１．２０１０．０２５７７．ｘ（１７０），３１－４６（２０１１）．
７．Ｆｏｎｔｅ Ｐ，Ａｒａｕｊｏ Ｆ，Ｒｅｉｓ Ｓ，Ｓａｒｍｅｎｔｏ Ｂ．Ｏｒａｌ ｉｎｓｕｌｉｎ ｄｅｌｉｖｅｒｙ：ｈｏｗ ｆａｒ ａｒｅ ｗｅ？ Ｊ Ｄｉａｂｅｔｅｓ Ｓｃｉ Ｔｅｃｈｎｏｌ ７（２），５２０－５３１（２０１３）．
８．Ｚｉｊｌｓｔｒａ Ｅ，Ｈｅｉｎｅｍａｎｎ Ｌ，Ｐｌｕｍ－Ｍｏｒｓｃｈｅｌ Ｌ．Ｏｒａｌ ｉｎｓｕｌｉｎ ｒｅｌｏａｄｅｄ：ａ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｄ ａｐｐｒｏａｃｈ． Ｊ Ｄｉａｂｅｔｅｓ Ｓｃｉ Ｔｅｃｈｎｏｌ ８（３），４５８－４６５（２０１４）．
９．Ｚａｙｋｏｖ ＡＮ，Ｍａｙｅｒ ＪＰ，Ｄｉｍａｒｃｈｉ ＲＤ．Ｐｕｒｓｕｉｔ ｏｆ ａ ｐｅｒｆｅｃｔ ｉｎｓｕｌｉｎ．Ｎａｔｕｒｅ ｒｅｖｉｅｗｓ．Ｄｒｕｇ ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ １５（６），４２５－４３９（２０１６）．
１０．Ｗｏｎｇ ＣＹ，Ｍａｒｔｉｎｅｚ Ｊ，Ｄａｓｓ ＣＲ．Ｏｒａｌ ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｏｆ ｉｎｓｕｌｉｎ ｆｏｒ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｏｆ ｄｉａｂｅｔｅｓ：ｓｔａｔｕｓ ｑｕｏ，ｃｈａｌｌｅｎｇｅｓ ａｎｄ ｏｐｐｏｒｔｕｎｉｔｉｅｓ． Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｐｈａｒｍａｃｙ ａｎｄ ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ６８（９），１０９３－１１０８（２０１６）．
１１．Ｓａｍｓｏｎ ＳＬ，Ｃｈａｎ Ｌ．Ｇｅｎｅ ｔｈｅｒａｐｙ ｆｏｒ ｄｉａｂｅｔｅｓ：ｒｅｉｎｖｅｎｔｉｎｇ ｔｈｅ ｉｓｌｅｔ．Ｔｒｅｎｄｓ Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ Ｍｅｔａｂ １７（３），９２－１００（２００６）．
１２．Ａｌａｍ Ｔ，Ｗａｉ Ｐ，Ｈｅｌｄ Ｄ，Ｖａｋｉｌｉ ＳＴ，Ｆｏｒｓｂｅｒｇ Ｅ，Ｓｏｌｌｉｎｇｅｒ Ｈ．Ｃｏｒｒｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｄｉａｂｅｔｉｃ Ｈｙｐｅｒｇｌｙｃｅｍｉａ ａｎｄ Ａｍｅｌｉｏｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｅｔａｂｏｌｉｃ Ａｎｏｍａｌｉｅｓ ｂｙ Ｍｉｎｉｃｉｒｃｌｅ ＤＮＡ Ｍｅｄｉａｔｅｄ Ｇｌｕｃｏｓｅ－Ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ Ｈｅｐａｔｉｃ Ｉｎｓｕｌｉｎ Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ．ＰｌｏＳ ｏｎｅ ８（６），ｅ６７５１５（２０１３）．
１３．Ｊａｒｉｙａｐｏｎｇ Ｐ，Ｘｉｎｇ Ｌ，Ｖａｎ Ｈｏｕｔｅｎ ＮＥ ｅｔ ａｌ．Ｃｈｉｍｅｒｉｃ ｈｅｐａｔｉｔｉｓ Ｅ ｖｉｒｕｓ－ｌｉｋｅ ｐａｒｔｉｃｌｅ ａｓ ａ ｃａｒｒｉｅｒ ｆｏｒ ｏｒａｌ－ｄｅｌｉｖｅｒｙ．Ｖａｃｃｉｎｅ ３１（２），４１７－４２４（２０１３）．
１４．Ｃｈｅｎ ＣＣ，Ｘｉｎｇ Ｌ，Ｓｔａｒｋ Ｍ ｅｔ ａｌ．Ｃｈｅｍｉｃａｌｌｙ ａｃｔｉｖａｔａｂｌｅ ｖｉｒａｌ ｃａｐｓｉｄ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｉｚｅｄ ｆｏｒ ｃａｎｃｅｒ ｔａｒｇｅｔｉｎｇ．Ｎａｎｏｍｅｄｉｃｉｎｅ（Ｌｏｎｄ）１１（４），３７７－３９０（２０１６）．
１５．Ｃｈｅｎｇ ＲＨ，Ｘｉｎｇ Ｌ，Ｃｈｅｎ ＣＣ，Ｓｔａｒｋ ＭＣ：ＷＯ／２０１５／１７９３２１（２０１５）．
１６．Ｔａｋａｍｕｒａ Ｓ，Ｎｉｉｋｕｒａ Ｍ，Ｌｉ ＴＣ ｅｔ ａｌ．ＤＮＡ ｖａｃｃｉｎｅ－ｅｎｃａｐｓｕｌａｔｅｄ ｖｉｒｕｓ－ｌｉｋｅ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ ｄｅｒｉｖｅｄ ｆｒｏｍ ａｎ ｏｒａｌｌｙ ｔｒａｎｓｍｉｓｓｉｂｌｅ ｖｉｒｕｓ ｓｔｉｍｕｌａｔｅ ｍｕｃｏｓａｌ ａｎｄ ｓｙｓｔｅｍｉｃ ｉｍｍｕｎｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｂｙ ｏｒａｌ ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ．Ｇｅｎｅ
ｔｈｅｒａｐｙ １１（７），６２８－６３５（２００４）．
１７．Ｃｈｅｎｇ ＲＨ，Ｘｉｎｇ Ｌ：ＵＳ８９０６８６３（２０１４）．
１８．Ｓｔａｒｋ ＭＣ，Ｂａｉｋｏｇｈｌｉ ＭＡ，Ｌａｈｔｉｎｅｎ Ｔ ｅｔ ａｌ．Ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｉｔｅ－ｍｏｄｉｆｉｅｄ ｎａｎｏｃａｐｓｉｄ ｗｉｔｈ ｍｏｎｏｄｉｓｐｅｒｓｅｄ ｇｏｌｄ ｃｌｕｓｔｅｒｓ．Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ ｒｅｐｏｒｔｓ ７（１），１７０４８（２０１７）．
１９．Ｌｉ Ｗ，Ｃｈｅｎ Ｘ．Ｇｏｌｄ ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅｓ ｆｏｒ ｐｈｏｔｏａｃｏｕｓｔｉｃ ｉｍａｇｉｎｇ．Ｎａｎｏｍｅｄｉｃｉｎｅ １０（２），２９９－３２０（２０１５）．
１．Ｓａａｄｄｉｎｅ ＪＢ，Ｃａｄｗｅｌｌ Ｂ，Ｇｒｅｇｇ ＥＷ，Ｅｔ Ａｌ．Ｉｍｐｒｏｖｅｍｅｎｔｓ ｉｎ ｄｉａｂｅｔｅｓ ｐｒｏｃｅｓｓｅｓ ｏｆ ｃａｒｅ ａｎｄ ｉｎｔｅｒｍｅｄｉａｔｅ ｏｕｔｃｏｍｅｓ：Ｕｎｉｔｅｄ ｓｔａｔｅｓ，１９８８－２００２．Ａｎｎａｌｓ ｏｆ Ｉｎｔｅｒｎａｌ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ １４４（７），４６５－４７４（２００６）．
２．Ｈｏｆｆｍａｎ Ａ，Ｚｉｖ Ｅ．Ｐｈａｒｍａｃｏｋｉｎｅｔｉｃ ｃｏｎｓｉｄｅｒａｔｉｏｎｓ ｏｆ ｎｅｗ ｉｎｓｕｌｉｎ ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎｓ ａｎｄ
ｒｏｕｔｅｓ ｏｆ ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ．Ｃｌｉｎｉｃａｌ ｐｈａｒｍａｃｏｋｉｎｅｔｉｃｓ ３３（４），２８５－３０１（１９９７）．
３．Ｏｗｅｎｓ ＤＲ．Ｎｅｗ ｈｏｒｉｚｏｎｓ－－ａｌｔｅｒｎａｔｉｖｅ ｒｏｕｔｅｓ ｆｏｒ ｉｎｓｕｌｉｎ ｔｈｅｒａｐｙ．Ｎａｔｕｒｅ ｒｅｖｉｅｗｓ．Ｄｒｕｇ ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ １（７），５２９－５４０（２００２）．
４．Ａｒｂｉｔ Ｅ，Ｋｉｄｒｏｎ Ｍ．Ｏｒａｌ Ｉｎｓｕｌｉｎ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ
ｉｎ ａ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃ Ｃｏｎｔｅｘｔ：Ｒｅｖｉｅｗ．Ｊ Ｄｉａｂｅｔｅｓ Ｓｃｉ Ｔｅｃｈｎｏｌ １１（４），８２５－８３２（２０１７）．
５．Ｃａｒｉｎｏ ＧＰ，Ｍａｔｈｉｏｗｉｔｚ Ｅ．Ｏｒａｌ ｉｎｓｕｌｉｎ ｄｅｌｉｖｅｒｙ１Ａｂｂｒｅｖｉａｔｉｏｎｓ：ＧＩ，ｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ；ＩＤＤＭ，ｉｎｓｕｌｉｎ－ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｄｉａｂｅｔｅｓ ｍｅｌｌｉｔｕｓ；ＩＵ，ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ ｕｎｉｔｓ；ＮＩＤＤＭ，ｎｏｎ－ｉｎｓｕｌｉｎ－ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｄｉａｂｅｔｅｓ ｍｅｌｌｉｔｕｓ；ＰＩＮ，ｐｈａｓｅ
ｉｎｖｅｒｓｉｏｎ ｎａｎｏｅｎｃａｐｓｕｌａｔｉｏｎ；ＺＯＴ，ｚｏｎａ ｏｃｃｌｕｄｅｎｓ ｔｏｘｉｎ．１．Ａｄｖａｎｃｅｄ ｄｒｕｇ ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｒｅｖｉｅｗｓ ３５（２），２４９－２５７（１９９９）．
６．Ｈｅｉｎｅｍａｎｎ Ｌ．Ｎｅｗ ｗａｙｓ ｏｆ ｉｎｓｕｌｉｎ ｄｅｌｉｖｅｒｙ． Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｃｌｉｎｉｃａｌ ｐｒａｃｔｉｃｅ．Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ ｄｏｉ：１０．１１１１／ｊ．１７４２－１２４１．２０１０．０２５７７．ｘ（１７０），３１－４６（２０１１）．
７．Ｆｏｎｔｅ Ｐ，Ａｒａｕｊｏ Ｆ，Ｒｅｉｓ Ｓ，Ｓａｒｍｅｎｔｏ Ｂ．Ｏｒａｌ ｉｎｓｕｌｉｎ ｄｅｌｉｖｅｒｙ：ｈｏｗ ｆａｒ ａｒｅ ｗｅ？ Ｊ Ｄｉａｂｅｔｅｓ Ｓｃｉ Ｔｅｃｈｎｏｌ ７（２），５２０－５３１（２０１３）．
８．Ｚｉｊｌｓｔｒａ Ｅ，Ｈｅｉｎｅｍａｎｎ Ｌ，Ｐｌｕｍ－Ｍｏｒｓｃｈｅｌ Ｌ．Ｏｒａｌ ｉｎｓｕｌｉｎ ｒｅｌｏａｄｅｄ：ａ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｄ ａｐｐｒｏａｃｈ． Ｊ Ｄｉａｂｅｔｅｓ Ｓｃｉ Ｔｅｃｈｎｏｌ ８（３），４５８－４６５（２０１４）．
９．Ｚａｙｋｏｖ ＡＮ，Ｍａｙｅｒ ＪＰ，Ｄｉｍａｒｃｈｉ ＲＤ．Ｐｕｒｓｕｉｔ ｏｆ ａ ｐｅｒｆｅｃｔ ｉｎｓｕｌｉｎ．Ｎａｔｕｒｅ ｒｅｖｉｅｗｓ．Ｄｒｕｇ ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ １５（６），４２５－４３９（２０１６）．
１０．Ｗｏｎｇ ＣＹ，Ｍａｒｔｉｎｅｚ Ｊ，Ｄａｓｓ ＣＲ．Ｏｒａｌ ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｏｆ ｉｎｓｕｌｉｎ ｆｏｒ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｏｆ ｄｉａｂｅｔｅｓ：ｓｔａｔｕｓ ｑｕｏ，ｃｈａｌｌｅｎｇｅｓ ａｎｄ ｏｐｐｏｒｔｕｎｉｔｉｅｓ． Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｐｈａｒｍａｃｙ ａｎｄ ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ６８（９），１０９３－１１０８（２０１６）．
１１．Ｓａｍｓｏｎ ＳＬ，Ｃｈａｎ Ｌ．Ｇｅｎｅ ｔｈｅｒａｐｙ ｆｏｒ ｄｉａｂｅｔｅｓ：ｒｅｉｎｖｅｎｔｉｎｇ ｔｈｅ ｉｓｌｅｔ．Ｔｒｅｎｄｓ Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ Ｍｅｔａｂ １７（３），９２－１００（２００６）．
１２．Ａｌａｍ Ｔ，Ｗａｉ Ｐ，Ｈｅｌｄ Ｄ，Ｖａｋｉｌｉ ＳＴ，Ｆｏｒｓｂｅｒｇ Ｅ，Ｓｏｌｌｉｎｇｅｒ Ｈ．Ｃｏｒｒｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｄｉａｂｅｔｉｃ Ｈｙｐｅｒｇｌｙｃｅｍｉａ ａｎｄ Ａｍｅｌｉｏｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｅｔａｂｏｌｉｃ Ａｎｏｍａｌｉｅｓ ｂｙ Ｍｉｎｉｃｉｒｃｌｅ ＤＮＡ Ｍｅｄｉａｔｅｄ Ｇｌｕｃｏｓｅ－Ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ Ｈｅｐａｔｉｃ Ｉｎｓｕｌｉｎ Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ．ＰｌｏＳ ｏｎｅ ８（６），ｅ６７５１５（２０１３）．
１３．Ｊａｒｉｙａｐｏｎｇ Ｐ，Ｘｉｎｇ Ｌ，Ｖａｎ Ｈｏｕｔｅｎ ＮＥ ｅｔ ａｌ．Ｃｈｉｍｅｒｉｃ ｈｅｐａｔｉｔｉｓ Ｅ ｖｉｒｕｓ－ｌｉｋｅ ｐａｒｔｉｃｌｅ ａｓ ａ ｃａｒｒｉｅｒ ｆｏｒ ｏｒａｌ－ｄｅｌｉｖｅｒｙ．Ｖａｃｃｉｎｅ ３１（２），４１７－４２４（２０１３）．
１４．Ｃｈｅｎ ＣＣ，Ｘｉｎｇ Ｌ，Ｓｔａｒｋ Ｍ ｅｔ ａｌ．Ｃｈｅｍｉｃａｌｌｙ ａｃｔｉｖａｔａｂｌｅ ｖｉｒａｌ ｃａｐｓｉｄ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｉｚｅｄ ｆｏｒ ｃａｎｃｅｒ ｔａｒｇｅｔｉｎｇ．Ｎａｎｏｍｅｄｉｃｉｎｅ（Ｌｏｎｄ）１１（４），３７７－３９０（２０１６）．
１５．Ｃｈｅｎｇ ＲＨ，Ｘｉｎｇ Ｌ，Ｃｈｅｎ ＣＣ，Ｓｔａｒｋ ＭＣ：ＷＯ／２０１５／１７９３２１（２０１５）．
１６．Ｔａｋａｍｕｒａ Ｓ，Ｎｉｉｋｕｒａ Ｍ，Ｌｉ ＴＣ ｅｔ ａｌ．ＤＮＡ ｖａｃｃｉｎｅ－ｅｎｃａｐｓｕｌａｔｅｄ ｖｉｒｕｓ－ｌｉｋｅ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ ｄｅｒｉｖｅｄ ｆｒｏｍ ａｎ ｏｒａｌｌｙ ｔｒａｎｓｍｉｓｓｉｂｌｅ ｖｉｒｕｓ ｓｔｉｍｕｌａｔｅ ｍｕｃｏｓａｌ ａｎｄ ｓｙｓｔｅｍｉｃ ｉｍｍｕｎｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｂｙ ｏｒａｌ ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ．Ｇｅｎｅ
ｔｈｅｒａｐｙ １１（７），６２８－６３５（２００４）．
１７．Ｃｈｅｎｇ ＲＨ，Ｘｉｎｇ Ｌ：ＵＳ８９０６８６３（２０１４）．
１８．Ｓｔａｒｋ ＭＣ，Ｂａｉｋｏｇｈｌｉ ＭＡ，Ｌａｈｔｉｎｅｎ Ｔ ｅｔ ａｌ．Ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｉｔｅ－ｍｏｄｉｆｉｅｄ ｎａｎｏｃａｐｓｉｄ ｗｉｔｈ ｍｏｎｏｄｉｓｐｅｒｓｅｄ ｇｏｌｄ ｃｌｕｓｔｅｒｓ．Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ ｒｅｐｏｒｔｓ ７（１），１７０４８（２０１７）．
１９．Ｌｉ Ｗ，Ｃｈｅｎ Ｘ．Ｇｏｌｄ ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅｓ ｆｏｒ ｐｈｏｔｏａｃｏｕｓｔｉｃ ｉｍａｇｉｎｇ．Ｎａｎｏｍｅｄｉｃｉｎｅ １０（２），２９９－３２０（２０１５）．
【0110】
【表1】
【0111】
【表2】
【0112】
【表3】
【0113】
【表4】
【図1】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
【配列表】
【外国語明細書】