特開 2024-157356 成長促進剤、及び育成方法

(19)【発行国】日本国特許庁(JP)

(12)【公報種別】公開特許公報(A)

(11)【公開番号】P2024157356

(43)【公開日】2024-11-07

(54)【発明の名称】成長促進剤、及び育成方法

(51)【国際特許分類】

   A01K 61/10 20170101AFI20241030BHJP

   A01K 63/04 20060101ALI20241030BHJP

【ＦＩ】

A01K61/10

A01K63/04 C

【審査請求】未請求

【請求項の数】6

【出願形態】ＯＬ

(21)【出願番号】P 2023071676

(22)【出願日】2023-04-25

(71)【出願人】

【識別番号】000103769

【氏名又は名称】オリエンタル白石株式会社

(74)【代理人】

【識別番号】100120868

【弁理士】

【氏名又は名称】安彦 元

(74)【代理人】

【識別番号】100198214

【弁理士】

【氏名又は名称】眞榮城 繁樹

(72)【発明者】

【氏名】金 美貞

(72)【発明者】

【氏名】小林 俊秋

(72)【発明者】

【氏名】正司 明夫

【テーマコード（参考）】

2B104

【Ｆターム（参考）】

2B104AA01

2B104AA13

2B104BA09

2B104CA01

2B104EB05

2B104EB20

(57)【要約】

【課題】確実に水生動物の成長促進を図ることができる成長促進剤を提供する。
【解決手段】水生動物Ａの育成に用いる成長促進剤１であって、葛根湯と、葛根湯の全質量に対して０．０５～５．００質量％のダイゼインとを含むことを特徴とする。成長促進剤１を用いて水生動物Ａと植物とを育成する育成方法としては、水生動物Ａを育成する養殖槽１１内に成長促進剤１を供給する成長促進剤供給工程と、成長促進剤供給工程で供給された成長促進剤１を摂取した水生動物Ａの排泄物の生分解により分解液を生成し、植物に供給する分解液供給工程と、を備える。水生動物Ａを育成する養殖槽内の飼育水に少なくとも酸素を含む気体を吹き込んで、マイクロバブル又はナノバブルを生成する気泡生成工程をさらに備えてもよい。
【選択図】図１

【特許請求の範囲】

【請求項1】

水生動物の育成に用いる成長促進剤であって、
葛根湯と、
前記葛根湯の全質量に対して０．０５～５．００質量％のダイゼインと
を含むこと
を特徴とする成長促進剤。

【請求項2】

前記水生動物は、魚類であること
を特徴とする請求項１に記載の成長促進剤。

【請求項3】

前記ダイゼインの全質量に対して３．３～２０．０質量％のゲニステインをさらに含むこと
を特徴とする請求項１に記載の成長促進剤。

【請求項4】

請求項１～請求項３の何れかに記載の成長促進剤を用いる育成方法であって、
水生動物を育成する養殖槽内に前記成長促進剤を供給する成長促進剤供給工程を備えること
を特徴とする育成方法。

【請求項5】

前記養殖槽内の飼育水に少なくとも酸素を含む気体を吹き込んで、マイクロバブル又はナノバブルを生成する気泡生成工程をさらに備えること
を特徴とする請求項４に記載の育成方法。

【請求項6】

前記成長促進剤供給工程で供給された前記成長促進剤を摂取した前記水生動物の排泄物を、前記養殖槽内の飼育水を循環利用する水耕栽培槽において生分解することで分解液を生成し、当該分解液を前記水耕栽培槽に収容される植物に供給する分解液供給工程をさらに備えること
を特徴とする請求項４に記載の育成方法。

【発明の詳細な説明】

【技術分野】

【0001】

この発明は、水生動物の育成に用いられる成長促進剤、及び当該成長促進剤を用いる育成方法に関する。

【背景技術】

【0002】

現在、水生動物を効率よく成長させる技術について研究されている。例えば水生動物の養殖において、水生動物の成長を促進することは、出荷までの所要期間を短縮化するなどの生産効率の向上につながる。また、キャビアが採取されるチョウザメのように育成期間の長い水生動物は、順調な生育環境の維持や致死原因の対策など、生産リスクの高さが問題視されている。そのため、水生動物の成長を促進することは、生存率の低下抑制などの生産リスクの抑制を図る上でも重要な問題である。

【0003】

特許文献１には、イソフラボン配糖体を含む魚類用薬剤、又はイソフラボン配糖体と葛根等の生薬を含む魚類用薬剤が開示されている。

【先行技術文献】

【特許文献】

【0004】

【特許文献1】特開２００５－２７２３０９号公報

【発明の概要】

【発明が解決しようとする課題】

【0005】

特許文献１に開示された魚類用薬剤によれば、薬剤に含まれるイソフラボン及びイソフラボン配糖体のうち少なくとも何れかが、魚類の体重ｋｇあたり２～４ｍｇであることがとくに好ましいとされている。しかしながら、魚類を効率よく成長させるための、イソフラボンに分類される具体的な有効成分の含有量や配合比率については、記載も示唆もされていない。そのため、特許文献１に開示された魚類用薬剤では、魚類の成長促進の再現性に問題がある。

【0006】

そこで本発明は、上述した問題点に鑑みて案出されたものであり、その目的とするところは、確実に水生動物の成長促進を図ることができる成長促進剤を提供することにある。

【課題を解決するための手段】

【0007】

第１発明における成長促進剤は、水生動物の育成に用いる成長促進剤であって、葛根湯と、前記葛根湯の全質量に対して０．０５～５．００質量％のダイゼインと、を含むことを特徴とする。

【0008】

第２発明における成長促進剤は、第１発明において、前記水生動物は、魚類であることを特徴とする。

【0009】

第３発明における成長促進剤は、第１発明において、前記ダイゼインの総重量に対して３．３～２０．０質量％のゲニステインをさらに含むことを特徴とする。

【0010】

第４発明における育成方法は、第１発明～第３発明の何れかの成長促進剤を用いる育成方法であって、水生動物を育成する養殖槽内に前記成長促進剤を供給する成長促進剤供給工程を備えることを特徴とする。

【0011】

第５発明における育成方法は、第４発明において、前記養殖槽内の飼育水に少なくとも酸素を含む気体を吹き込んで、マイクロバブル又はナノバブルを生成する気泡生成工程をさらに備えることを特徴とする。

【0012】

第６発明における育成方法は、第４発明において、前記成長促進剤供給工程で供給された前記成長促進剤を摂取した前記水生動物の排泄物を、前記養殖槽内の飼育水を循環利用する水耕栽培槽において生分解することで分解液を生成し、当該分解液を前記水耕栽培槽に収容される植物に供給する分解液供給工程をさらに備えることを特徴とする。

【発明の効果】

【0013】

第１発明～第３発明によれば、成長促進剤は、葛根湯と、葛根湯の全質量に対して０．０５～５．００質量％のダイゼインとを含む。このため、水生動物の体重を効率よく増加させることができる。これにより、確実に水生動物の成長促進を図ることができる。

【0014】

特に、第３発明によれば、成長促進剤は、ダイゼインの総重量に対して３．３～２０．０質量％のゲニステインをさらに含む。このため、水生動物の体重をさらに効率よく増加させることができる。これにより、確実に水生動物のさらなる成長促進を図ることができる。

【0015】

第４発明によれば、水生動物を育成する養殖槽内に成長促進剤を供給する成長促進剤供給工程を備える。このため、水生動物の体重を効率よく増加させることができる。これにより、確実に水生動物の成長促進を図ることができる。

【0016】

第５発明によれば、養殖槽内の飼育水に少なくとも酸素を含む気体を吹き込んで、マイクロバブル又はナノバブルを生成する気泡生成工程をさらに備える。このため、水生動物の体重をさらに効率よく増加させることができる。これにより、確実に水生動物のさらなる成長促進を図ることができる。

【0017】

第６発明によれば、成長促進剤を摂取した水生動物の排泄物を水耕栽培槽において生分解することで分解液を生成し、当該分解液を水耕栽培槽に収容される植物に供給する分解液供給工程をさらに備える。このため、水生動物の体重と植物の重量とを効率よく増加させることができる。これにより、確実に水生動物と植物との成長促進を同時に図ることができる。

【図面の簡単な説明】

【0018】

【図1】図１は、第１実施形態における育成システムの一例を示す模式図である。

【図2】図２は、第１実施形態における育成システムの動作の一例を示すフローチャートである。

【図3】図３は、第２実施形態における育成システムの一例を示す模式図である。

【図4】図４は、第２実施形態における育成システムの動作の一例を示すフローチャートである。

【図5】図５は、第３実施形態における育成システムの一例を示す模式図である。

【図6】図６は、第３実施形態における育成システムの動作の一例を示すフローチャートである。

【発明を実施するための形態】

【0019】

以下、本発明の実施形態としての成長促進剤、及び成長促進剤を用いた育成方法の一例について、図面を参照しながら詳細に説明をする。なお、各図における構成は、説明のため模式的に記載されており、例えば各構成の大きさや、構成毎における大きさの対比等については、図とは異なってもよい。

【0020】

（第１実施形態：成長促進剤１）
成長促進剤１は、例えば図１に示すように、水生動物Ａに供給される。成長促進剤１は、水生動物Ａの成長促進を図るために用いられる。

【0021】

成長促進剤１は、漢方薬の一種である公知の葛根湯を含む。葛根湯は、葛根を主成分とし、タイソウ、（大棗：ナツメ）、マオウ（麻黄）、カンゾウ（甘草）、ケイヒ（桂皮）、シャクヤク（芍薬）、ショウキョウ（生姜）等を含む。

【0022】

成長促進剤１は、イソフラボン類を含む。イソフラボン類は、例えばグリコシド型（配糖体）とアグリコン型とに大別される。グリコシド型イソフラボンは、分子量が大きく生物に吸収されにくい。一方で、アグリコン型イソフラボンは、グリコシド型イソフラボンから糖が分離した状態であり、グリコシド型イソフラボンよりも分子量が小さい。そのため、アグリコン型イソフラボンを摂取した生物は、例えば抗炎症作用や抗酸化作用など、イソフラボンの各種生理作用の効果を得ることができる。成長促進剤１は、アグリコン型イソフラボンを含むため、成長促進剤１を摂取する水生動物Ａに対して、イソフラボンの各種生理作用効果が提供され得る。

【0023】

成長促進剤１は、イソフラボン類（大豆イソフラボン）の一種であるダイゼインを含む。本実施形態において好適に用いられるダイゼインの含有量は、成長促進剤１の全質量に対して０．０５～５．００質量％である。ダイゼインの含有量が成長促進剤１の全質量に対して０．０５質量％未満の場合、水生動物Ａの体重を増加させることができない。また、ダイゼインの含有量が成長促進剤１の全質量に対して５．００質量％超の場合も同様に、水生動物Ａの体重を増加させることができない。このため、ダイゼインの含有量は、成長促進剤１の全質量に対して０．０５～５．００質量％であることが好ましい。この場合、水生動物Ａの体重を効率よく増加させることができる。これにより、確実に水生動物Ａの成長促進を図ることができる。ダイゼインの質量％に応じた成長促進剤１の効用については、後述の実施例において説明する。また、水生動物Ａが魚類の場合、より確実に成長促進を図ることができる。

【0024】

また、成長促進剤１は、ダイゼインに加えて、例えばイソフラボン類の一種であるゲニステインを含んでもよい。本実施形態において好適に用いられるゲニステインの含有量は、ダイゼインの全質量に対して３．３～２０．０質量％である。ゲニステインの含有量がダイゼインの全質量に対して３．３質量％未満の場合、ゲニステインを含有しない場合と比べて、水生動物Ａの体重を増加させることができない。また、ダイゼインの含有量がダイゼインの全質量に対して２０．０質量％超の場合も同様に、水生動物Ａの体重を増加させることができない。このため、ゲニステインの含有量は、ダイゼインの全質量に対して３．３～２０．０質量％であることが好ましい。この場合、水生動物Ａの体長及び体重をさらに効率よく増加させることができる。これにより、確実に水生動物Ａのさらなる成長促進を図ることができる。ゲニステインの質量％に応じた成長促進剤１の効用については、後述の実施例において説明する。

【0025】

成長促進剤１は、イソフラボン以外の成分として、例えばカルシウム、マグネシウム、カリウム、及びリンのうち少なくとも１以上を含んでもよい。イソフラボン以外の各成分の濃度は、例えば０．００３％～０．２％である。

【0026】

水生動物Ａとしては、河川、湖沼、地下水、海洋などの水域に生息する動物が含まれる。水生動物Ａの具体例としては、例えば遊泳力に優れる遊泳動物、遊泳力のない浮遊動物、水底で生活する底生動物等が含まれる。遊泳動物は、例えば魚類（メダカ、ベステルチョウザメなど）、クジラ類、イカ類、水生昆虫などが含まれる。

【0027】

（第１実施形態：成長促進剤１を用いた育成システム１００）
図１を参照して、本発明の実施形態に係る成長促進剤１を用いた育成システム１００の一例を説明する。図１は、本実施形態に係る育成システム１００の一例を示す模式図である。

【0028】

＜育成システム１００＞
育成システム１００は、養殖槽１１を備える。育成システム１００は、例えば海上養殖に用いられてもよく、陸上養殖に用いられてもよい。育成システム１００は、天然環境から継続的に海水や淡水を養殖槽１１内の飼育水１１０として引き込むかけ流し式でもよく、養殖槽１１内の飼育水１１０を浄化しながら循環利用する閉鎖循環式でもよい。

【0029】

育成システム１００は、図示しない供給機構を介して、養殖槽１１に成長促進剤１を供給してもよい。育成システム１００は、図示しない公知の供給機構（魚用自動給餌機など）を介して、養殖槽１１に成長促進剤１と水生生物Ａの餌とを供給してもよい。

【0030】

成長促進剤１は、例えば乾燥した固形の状態で、水生動物Ａを収容する養殖槽１１に供給される。

【0031】

＜養殖槽１１＞
養殖槽１１は、飼育水１１０と水生動物Ａとを収容する。養殖槽１１は、例えば水生動物Ａを収容する生け簀や水槽等である。養殖槽１１内を遊泳する水生動物Ａは、外部から成長促進剤１が供給されるとともに、水生動物Ａが摂取するための餌が供給される。

【0032】

（第１実施形態：成長促進剤１を用いた育成方法）
図２を参照して、本発明の実施形態に係る成長促進剤１を用いた育成方法の一例を説明する。図２は、本実施形態における育成システム１００の動作の一例を示すフローチャートである。

【0033】

成長促進剤１を用いた育成方法は、成長促進剤供給工程Ｓ１１を備える。

【0034】

＜成長促進剤供給工程Ｓ１１＞
成長促進剤供給工程Ｓ１１において、育成システム１００は、水生動物Ａを育成する養殖槽１１内に成長促進剤１を供給する。この場合、水生動物Ａの体長及び体重を効率よく増加させることができる。これにより、確実に水生動物Ａの成長促進を図ることができる。養殖槽１１に供給する成長促進剤１の効用については、後述の検証実験において実験データに基づいて説明する。

【0035】

本実施形態によれば、成長促進剤１は、葛根湯と、葛根湯の全質量に対して０．０５～５．００質量％のダイゼインと、を含む。このため、水生動物Ａの体重を効率よく増加させることができる。これにより、確実に水生動物Ａの成長促進を図ることができる。

【0036】

本実施形態によれば、成長促進剤１は、ダイゼインの全質量に対して３．３～２０．０質量％のゲニステインをさらに含む。このため、水生動物Ａの体重をさらに効率よく増加させることができる。これにより、確実に水生動物Ａのさらなる成長促進を図ることができる。

【0037】

本実施形態によれば、水生動物Ａを育成する養殖槽１１内に成長促進剤１を供給する成長促進剤供給工程Ｓ１１を備える。このため、水生動物Ａの体重を効率よく増加させることができる。これにより、確実に水生動物Ａの成長促進を図ることができる。

【0038】

（第２実施形態：成長促進剤１を用いた育成システム１００）
図３を参照して、本発明の実施形態に係る成長促進剤１を用いた育成システム１００の一例を説明する。図３は、本実施形態における育成システム１００の一例を示す模式図である。本実施形態は、養殖槽１１内の飼育水１１０にマイクロバブル又はナノバブルを吹き込む点で、第１実施形態とは異なる。なお、上述の内容と同様の構成については、説明を省略する。

【0039】

＜育成システム１００＞
育成システム１００は、気泡発生装置２をさらに備える。

【0040】

＜養殖槽１１＞
養殖槽１１は、収容する飼育水１１０に少なくとも酸素を含む気体を吹き込み、マイクロバブル又はナノバブルを生成する。養殖槽１１内を遊泳する水生動物Ａは、マイクロバブル又はナノバブルが吹き込まれた飼育水１１０内において、外部から成長促進剤１が供給されるとともに、水生動物Ａが摂取するための餌が供給される。マイクロバブル又はナノバブルが生成された飼育水１１０内に供給される成長促進剤１の効用については、後述の検証実験において実験データに基づいて説明する。

【0041】

＜気泡発生装置２＞
気泡発生装置２は、養殖槽１１内の飼育水１１０にマイクロバブル又はナノバブルを生成する。気泡発生装置２は、例えば公知のマイクロバブル発生装置又はナノバブル発生装置を用いてもよい。気泡発生装置２は、養殖槽１１と接続される。気泡発生装置２は、少なくとも酸素を含む気体を飼育水１１０に吹き込むことにより、酸素ナノバブル水（酸素ナノバブル含有飼育水）を生成する。

【0042】

気泡発生装置２による酸素ナノバブル水の生成方法は、例えば酸素や空気等の気体を加圧して、飼育水１１０中に過飽和で溶解させ、急減圧により、液中にマイクロバブルとナノバブルを発生させ、マイクロバブル浮上分離後、ナノバブルのみ液中に残留させることにより実現し得る。ただし、酸素ナノバブル水は、ナノオーダー（１μｍ以下）の直径の酸素ガスの微細気泡を含有する水のことを指しており、ナノオーダーの酸素ガスの微細気泡に加え、マイクロオーダー（１～１００μｍ）の微細酸素ガスを含有するマイクロナノバブル水（酸素マイクロバブル含有飼育水）としてもよい。また、気泡発生装置２は、酸素ナノバブル又は空気ナノバブルのいずれか一方或いはその両方を含む少なくともナノサイズの微細気泡として酸素を含有する酸素ナノバブル水を生成してもよい。酸素ナノバブル水の具体例としては、直径２００ｎｍ以下の気泡のうち平均直径５０ｎｍ～１００ｎｍの気泡が９割程度含まれ、気泡の濃度が２×１０³個／ｍＬ～６×１０⁹個／ｍＬである。

【0043】

酸素ナノバブル水の生成方式としては、例えば酸素気体と水を混合し、高速で旋回させることで酸素の気泡を作る「旋回流方式」、酸素気体に圧力をかけ、水中に溶け込ませて、一気に開放することで酸素の気泡を作る「加圧溶解方式」、オリフィス等の微細孔へ酸素気体に圧力をかけて通すことで酸素の気泡を作る「微細孔方式」、超音波でキャビテーションを起こして水中の酸素気体を膨張させて酸素の気泡を作る「超音波方式」、突起物が設けられた気液流路内において気体を旋回させ粉砕して気泡を作る「スタティックミキサー式」、気液流路内に急激な圧力変化を形成して気泡を作る「エゼクター式」又は「ベンチュリ―式」等が例示される。なお、酸素ナノバブル水の生成方式は、特に限定されるものではなく、マイクロオーダー（１～１００μｍ）の微細酸素ガスを含有するマイクロナノバブル水を生成できる手段であればよい。

【0044】

飼育水１１０中にマイクロバブル又はナノバブルを生成することで、飼育水１１０中の水生生物Ａは、活動が活発になり、成長が促進される。

【0045】

（第２実施形態：成長促進剤１を用いた育成方法）
図４を参照して、本発明の実施形態に係る成長促進剤１を用いた育成方法の一例を説明する。図４は、本実施形態における育成システム１００の動作の一例を示すフローチャートである。

【0046】

成長促進剤１を用いた育成方法は、気泡生成工程Ｓ１２をさらに備える。気泡生成工程Ｓ１２と、成長促進剤供給工程Ｓ１１とは、どちらか一方が先に実施されてもよく、同時に実施されてもよい。

【0047】

＜気泡生成工程Ｓ１２＞
気泡生成工程Ｓ１２において、育成システム１００は、気泡発生装置２を介して、水生動物Ａを育成する養殖槽１１内の飼育水１１０に少なくとも酸素を含む気体を吹き込み、マイクロバブル又はナノバブルを生成する。

【0048】

＜成長促進剤供給工程Ｓ１１＞
育成システム１００は、例えばマイクロバブル又はナノバブルが生成された飼育水１１０を収容する養殖槽１１内に、成長促進剤１を供給してもよい。この場合、水生動物Ａの体重をさらに効率よく増加させることができる。これにより、確実に水生動物Ａのさらなる成長促進を図ることができる。マイクロバブル又はナノバブルを生成した飼育水１１０を収容する養殖槽１１に供給する成長促進剤１の効用については、後述の検証実験において実験データに基づいて説明する。

【0049】

上述した工程を実施し、本実施形態における育成システム１００の動作は終了する。なお、育成システム１００は、例えば上述した工程を繰り返し実施してもよい。

【0050】

本実施形態によれば、養殖槽１１内の飼育水１１０に少なくとも酸素を含む気体を吹き込んで、マイクロバブル又はナノバブルを生成する気泡生成工程Ｓ１２をさらに備える。このため、水生動物Ａの体重をさらに効率よく増加させることができる。これにより、確実に水生動物Ａのさらなる成長促進を図ることができる。

【0051】

（第３実施形態：成長促進剤１を用いた育成システム１００）
図５を参照して、本発明の実施形態に係る成長促進剤１を用いた育成システム１００の一例を説明する。図５は、本実施形態における育成システム１００の一例を示す模式図である。本実施形態は、育成システム１００が水耕栽培槽１２さらに備える点で、第１実施形態とは異なる。なお、上述の内容と同様の構成については、説明を省略する。

【0052】

＜育成システム１００＞
育成システム１００は、植物Ｂを収容する水耕栽培槽１２をさらに備える。育成システム１００は、水耕栽培槽１２において養殖槽１１内の飼育水１１０を循環利用する、閉鎖循環式である。

【0053】

育成システム１００は、飼育水１１０（後述の飼育水１１０ａを含む）を殺菌消毒する殺菌消毒装置３、を備えてもよい。育成システム１００は、養殖槽１１内の飼育水１１０を水耕栽培槽１２に供給する第１接続配管１３と、水耕栽培槽１２内の飼育水１１０を養殖槽１１とに供給する第２接続配管１４と、を備えてもよい。

【0054】

植物Ｂは、水耕栽培に対応可能な植物を指す。植物Ｂの例としては、キク科植物（リーフレタスなど）、ヒユ科植物（ホウレンソウ、スイスチャードなど）、ヒガンバナ科植物（ニラなど）、セリ科植物（パセリなど）、アブラナ科植物（クレソン、ワサビ菜など）、が含まれる。

【0055】

＜水耕栽培槽１２＞
水耕栽培槽１２は、植物Ｂを収容する。植物Ｂは、図示しない土台（スポンジ等）で水耕栽培槽１２内に固定される。水耕栽培槽１２は、養殖槽１１から第１接続配管１３を介して、成長促進剤１を摂取した水生生物Ａの排泄物が含まれる飼育水１１０ａが供給される。水耕栽培槽１２は、水生生物Ａの排泄物が含まれる飼育水１１０ａとともに、水生生物Ａの排泄物が含まれない飼育水１１０が供給されてもよい。

【0056】

水耕栽培槽１２は、槽内に収容する図示しない微生物の分解作用により、飼育水１１０ａに含まれる排泄物を生分解し、分解液１２０を生成する。水耕栽培槽１２に収容される植物Ｂは、分解液１２０が供給される。水耕栽培槽１２に収容する微生物としては、例えば硝化菌が挙げられる。

【0057】

水耕栽培槽１２は、第２接続配管１４を介して、水耕栽培槽１２内の飼育水等（飼育水１１０、飼育水１１０ａ、分解液１２０を含む）を養殖槽１１に供給する。

【0058】

＜養殖槽１１＞
養殖槽１１は、第１接続配管１３を介して、成長促進剤１を摂取した水生生物Ａの排泄物が含まれる飼育水１１０ａを供給する。養殖槽１１は、第２接続配管１４及び殺菌消毒装置３を介して、水耕栽培槽１２内の飼育水等を殺菌消毒した飼育水が供給される。

【0059】

＜殺菌消毒装置３＞
殺菌消毒装置３は、水耕栽培槽１２から排出される飼育水等を殺菌消毒する。殺菌消毒装置３は、例えば第２接続配管１４に設けられる。殺菌消毒装置３は、例えば公知の紫外線殺菌浄化装置、オゾン発生装置や次亜塩素酸水生成装置等が用いられる。

【0060】

（第３実施形態：成長促進剤１を用いた育成方法）
図６を参照して、本発明の実施形態に係る成長促進剤１を用いた育成方法の一例を説明する。図６は、本実施形態における育成システム１００の動作の一例を示すフローチャートである。

【0061】

成長促進剤１を用いた育成方法は、分解液供給工程Ｓ１３をさらに備える。分解液供給工程Ｓ１３は、成長促進剤供給工程Ｓ１１の後であれば、気泡生成工程Ｓ１２の前後で実施されてもよく、同時に実施されてもよい。成長促進剤供給工程Ｓ１１の後、養殖槽１１は、成長促進剤１を摂取した水生動物Ａの排泄物を含む飼育水１１０ａを水耕栽培槽１２に供給する。すなわち、水生動物Ａの排泄物には、成長促進剤１由来の成分が含まれ得る。

【0062】

＜分解液供給工程Ｓ１３＞
分解液供給工程Ｓ１３において、育成システム１００は、成長促進剤供給工程Ｓ１１で供給された成長促進剤１を摂取した水生動物Ａの排泄物を、水耕栽培槽１２において生分解することで分解液１２０を生成し、分解液１２０を水耕栽培槽１２に収容される植物Ｂに供給する。育成システム１００は、水耕栽培槽１２内の微生物により、水耕栽培槽１２内の飼育水１１０ａを生分解し、分解液１２０を生成する。育成システム１００は、水耕栽培槽１２内の分解液１２０の一部を水耕栽培槽１２から排出し、殺菌消毒装置３を介して養殖槽１１に供給する。この場合、水生動物Ａの体重と植物Ｂの重量とを効率よく増加させることができる。これにより、確実に水生動物Ａと植物Ｂとの成長促進を同時に図ることができる。水耕栽培槽１２に繋がれた養殖槽１１に供給する成長促進剤１の効用については、後述の検証実験において実験データに基づいて説明する。

【0063】

また、気泡生成工程Ｓ１２をさらに備えることで、水生動物Ａの体重をさらに効率よく増加させることができる。これにより、確実に水生動物Ａと植物Ｂとのさらなる成長促進を同時に図ることができる。水耕栽培槽１２に繋がれ、マイクロバブル又はナノバブルを生成した飼育水１１０を収容する養殖槽１１に供給する成長促進剤１の効用については、後述の検証実験において実験データに基づいて説明する。

【0064】

上述した工程を実施し、本実施形態における育成システム１００の動作は終了する。なお、育成システム１００は、例えば上述した工程を繰り返し実施してもよい。

【0065】

本実施形態によれば、成長促進剤１を摂取した水生動物Ａの排泄物を水耕栽培槽１２において生分解することで分解液１２０を生成し、当該分解液１２０を水耕栽培槽１２に収容される植物Ｂに供給する分解液供給工程Ｓ１３をさらに備える。このため、水生動物Ａの体重と植物Ｂの重量とを効率よく増加させることができる。これにより、確実に水生動物Ａと植物Ｂとの成長促進を同時に図ることができる。

【実施例0066】

以下に、上述した実施形態を用いた場合の本発明例及び比較例を挙げて具体的に説明する。

【0067】

＜成長促進剤１の検証実験１＞
本発明に係る、ダイゼインの質量％に応じた成長促進剤１の効用に関する検証実験について説明する。本実験では、他の物質を意図的に添加しない略純粋な葛根湯とダイゼインとを乾燥した状態で特定の重量比で混合して調製する。このため、葛根湯の総重量に対するダイゼインの重量％に応じた効果は、葛根湯の全質量に対するダイゼインの質量％に応じた効果と同等の効果を示すものといえる。

【0068】

本実験では、ダイゼインを含有しない成長促進剤１を供給した水生動物Ａの育成期間９０日の体長及び体重と、ダイゼインを含有する成長促進剤１を供給した水生動物Ａの育成期間９０日の体長及び体重と、から体長増加率及び体重増加率を算出し、特に体重増加率を基準として水生動物Ａの成長促進効果が認められるダイゼインの重量を確認した。なお、本実験では、乾燥状態の固形の成長促進剤１を、水生動物Ａを収容する養殖槽１１内に供給した。成長促進剤１に含まれる葛根湯としては、株式会社ツムラ（登録商標）製の「ツムラ漢方葛根湯エキス顆粒Ａ」を用いた。成長促進剤１に含まれるダイゼインとしては、長良サイエンス株式会社製のダイゼインを用いた。

【0069】

なお、本実験における水生動物Ａとしては、メダカとベステルチョウザメとを用いた。各実験に用いたメダカは、１試験区あたり２０匹であり、平均体長が１．０７ｃｍ、平均体重が０．０４ｇであった。各実験に用いたベステルチョウザメは、１試験区あたり１２匹であり、平均体長が２０．０ｃｍ、平均体重が１５．２ｇであった。また、その他の条件として、無調整の淡水を飼育水１１０として用いており、飼育水１１０の水温は約２５℃、飼育水１１０のｐＨは７．２～８．３、飼育水１１０の溶存酸素量は６．８ｍｇ／Ｌ～９．０ｍｇ／Ｌであった。また、餌供給率（（養殖槽１１への餌供給量－養殖槽１１内の１日後餌残存量）÷餌供給量）は、いずれも約２％であった。成長促進剤１の供給方法としては、予めダイゼインの含有量を調整した成長促進剤１を餌と混合して供給した。また、成長促進剤１の供給回数としては、メダカには１日１回ベステルチョウザメには１日３回、それぞれ供給した。

【0070】

ここで、「体長」とは、メダカの口先から尻尾までの長さを指すものとする。平均体長の測定方法としては、メダカの体長合計を物差しで計測し、養殖槽１１（ビーカー、水槽を含む）内の個体数で除して平均値を導出した。平均体重の測定方法としては、メダカ（ベステルチョウザメ）と養殖槽１１と飼育水１１０の総重量と、養殖槽１１と飼育水１１０の重量と、を電子天秤（メダカ：ＴＸ４２３Ｎ、ベステルチョウザメ：ＡＸＣ３０Ｋ０１）で測定し、総重量から養殖槽１１と飼育水１１０の重量を差し引き、その差分を養殖槽１１内の個体数で除して導出した。平均体長及び平均重量の測定方法については、以降の検証実験においても同様とする。

【0071】

また、成長促進効果が認められるダイゼインの重量を特定するために、葛根湯の乾燥重量１ｇに対して、後述の表１に示すとおり所定量のダイゼインを添加して、比較例２～３、及び本発明例１～１５の成長促進剤１を調整した。なお、比較例１の成長促進剤１としては、ダイゼイン無添加の葛根湯を用いた。なお、比較例２～３及び本発明例１～１５の体長増加率及び体重増加率は、比較例１に対する増加率を示す。

【0072】

また、体長増加率及び体重増加率に基づき成長促進効果が確認された場合、その効果の程度を低い順に「可」「良」「優」の３段階で評価した。

【0073】

本実験の結果は、表１のとおりである。

【0074】

【表1】

【0075】

本発明例１～１５では、葛根湯の乾燥重量１ｇあたりのダイゼイン重量を０．５０ｍｇ～５０．００ｍｇとした。すなわち、葛根湯の総重量に対して０．０５～５．００重量％のダイゼインを含む成長促進剤１を用いた。その結果、比較例１に対する体重増加率が０より大きい値であった。このため、水生動物Ａの成長促進を図ることができる。

【0076】

比較例２では、葛根湯の乾燥重量１ｇあたりのダイゼイン重量を０．２０ｍｇとした。すなわち、葛根湯の総重量に対して０．０５重量％未満のダイゼインを含む成長促進剤１を用いた。その結果、比較例１に対する体重増加率が０％であった。このため、比較例２では、水生動物Ａの成長を促進することができない。

【0077】

比較例３では、葛根湯の乾燥重量１ｇあたりのダイゼイン重量を７０．００ｍｇとした。すなわち、葛根湯の総重量に対して５．００重量％超のダイゼインを含む成長促進剤１を用いた。その結果、比較例１に対する体重増加率が０％であった。このため、比較例２では、水生動物Ａの成長を促進することができない。

【0078】

以上の結果から、ダイゼインの重量％に応じた成長促進剤１の効用に関する評価結果は、０．０５～５．００重量％で「可」とし、より高い効果が確認された０．５０～２．５０重量％で「良」、さらに高い効果が確認された１．７０～２．２０重量％で「優」とした。

【0079】

すなわち、水生動物Ａの成長促進を図るうえで、水生動物Ａに供給する成長促進剤１に含まれる好適なダイゼインの量は、葛根湯の総重量に対して０．０５～５．００重量％であり、より好ましくは０．５０～２．５０重量％であり、さらに好ましくは１．７０～２．２０重量％である。また、この結果を葛根湯の全質量に対する質量割合に換算すると、水生動物Ａに供給する成長促進剤１に含まれる好適なダイゼインの質量割合は、葛根湯の全質量に対して０．０５～５．００質量％であり、より好ましくは０．５０～２．５０質量％であり、さらに好ましくは１．７０～２．２０質量％である。

【0080】

＜成長促進剤１の検証実験２＞
次に、本発明に係る、ゲニステインの質量％に応じた成長促進剤１の効用に関する検証実験について説明する。本実験では、他の物質を意図的に添加しない略純粋な葛根湯とダイゼインとゲニステインとを乾燥した状態で特定の重量比で混合して調製する。このため、ダイゼインの総重量に対するゲニステインの重量％に応じた効果は、ダイゼインの全質量に対するゲニステインの質量％に応じた効果と同等の効果を示すものといえる。なお、成長促進剤１に含まれる葛根湯及びダイゼインは検証実験１と同様であり、ゲニステインとしては、長良サイエンス株式会社製のゲニステインを用いた。

【0081】

本実験では、ゲニステインを含有しない成長促進剤１を供給した水生動物Ａの育成期間９０日の体長及び体重と、少なくともゲニステインを含有する成長促進剤１を供給した水生動物Ａの育成期間９０日の体長及び体重と、から体長増加率及び体重増加率を算出し、特に体重増加率を基準として水生動物Ａの成長促進効果が認められるゲニステイン含有量を確認した。

【0082】

なお、本実験における水生動物Ａとしては、メダカを用いた。各実験に用いたメダカは、１試験区あたり３０匹であり、平均体長が１．０３ｃｍ、平均体重が０．０４ｇであった。また、その他の条件として、無調整の淡水を飼育水１１０として用いており、飼育水１１０の水温は約２５℃、飼育水１１０のｐＨは７．２～８．３、飼育水１１０の溶存酸素量は６．８ｍｇ／Ｌ～９．０ｍｇ／Ｌであった。成長促進剤１の供給方法としては、検証実験１と同様である。

【0083】

また、さらなる成長促進効果が認められるゲニステインの重量を特定するために、葛根湯の乾燥重量１ｇに対して、後述の表２に示すとおり所定量のゲニステインを添加して、成長促進剤１を調整した。本実験では、ダイゼインを含有しゲニステインを含有しない成長促進剤１を供給した例を本発明例１６、ダイゼイン及びゲニステインを含有する成長促進剤１を供給した例をダイゼインとゲニステインの重量比ごとに本発明例１７～２５、ゲニステインを含有しダイゼインを含有しない成長促進剤１を供給した例を比較例４～７とし、比較例と各本発明例との結果に基づいて体長増加率及び体重増加率を算出した。なお、本発明例１７～２５及び比較例４～７の体長増加率及び体重増加率は、本発明例１６に対する増加率を示す。

【0084】

また、体長増加率及び体重増加率に基づき成長促進効果が確認された場合、その効果の程度を低い順に「可」「良」「優」の３段階で評価した。

【0085】

本実験の結果は［表２］のとおりである。

【0086】

【表2】

【0087】

本発明例１８～２４では、成長促進剤１のダイゼイン重量１０ｍｇに対するゲニステイン重量を０．３３ｍｇ～２．００ｍｇとした。すなわち、ダイゼイン総重量に対して３．３～２０．０重量％のゲニステインを含む成長促進剤１を用いた。その結果、ゲニステインを含まない本発明例１６に対する体重増加率が０より大きい値であった。このため、水生動物Ａのさらなる成長促進を図ることができる。

【0088】

本発明例１７では、成長促進剤１のダイゼイン重量１０ｍｇに対するゲニステイン重量を０．２９ｍｇとした。すなわち、ダイゼイン総重量に対して３．３重量％未満のゲニステインを含む成長促進剤１を用いた。その結果、ゲニステインを含まない本発明例１６に対する体重増加率が０％以下であった。このため、本発明例１７では、水生動物Ａのさらなる成長促進を図ることができない。

【0089】

本発明例２５では、成長促進剤１のダイゼイン重量１０ｍｇに対するゲニステイン重量を１０ｍｇとした。すなわち、ダイゼイン総重量に対して２０．０重量％超のゲニステインを含む成長促進剤１を用いた。その結果、ゲニステインを含まない本発明例１６に対する体重増加率が０％以下であった。このため、本発明例２５では、水生動物Ａのさらなる成長促進を図ることができない。

【0090】

比較例４では、成長促進剤１のゲニステイン重量０．１０ｍｇとし、ダイゼインを含まない。その結果、ゲニステインを含まない本発明例１６に対する体重増加率が０％以下であった。また、ダイゼインを含まず、ゲニステインをそれぞれ０．５０ｍｇ、１．００ｍｇ、１．２０ｍｇ含む比較例５～７の成長促進剤１についても同様に、本発明例１６に対する体重増加率が０％以下であった。このため、比較例４～７では、水生動物Ａのさらなる成長促進を図ることができない。

【0091】

以上の結果から、ゲニステインの重量％に応じた成長促進剤１の効用に関する評価結果は、ゲニステイン無添加の場合と比べてより高い効果が確認された３．３～２０．０重量％で「良」、さらに高い効果が確認された約１０．０重量％（６．７重量％超２０．０重量％未満）で「優」とした。

【0092】

すなわち、水生動物Ａの成長促進を図るうえで、水生動物Ａに供給する成長促進剤１に含まれる好適なゲニステインの量は、成長促進剤１に含まれるダイゼインの総重量に対する重量割合が３．３～２０．０重量％であり、より好ましくは約１０．０重量％である。また、この結果をダイゼインの全質量に対する質量割合に換算すると、水生動物Ａに供給する成長促進剤１に含まれる好適なゲニステインの質量割合は、ダイゼインの全質量に対して３．３～２０．０質量％であり、より好ましくは約１０．０質量％である。

【0093】

＜成長促進剤１の検証実験３＞
次に、本発明に係る、マイクロバブル又はナノバブルを生成した飼育水１１０を収容する養殖槽１１に供給する成長促進剤１の効用に関する検証実験について説明する。

【0094】

本実験では、飼育水１１０中にバブルを生成せずに成長促進剤１を供給した水生生物Ａの０週～１２週の体長及び体重と、ナノバブルが生成された飼育水１１０内に成長促進剤１を供給した水生生物Ａの０週～１２週の体長及び体重と、から体長増加率及び体重増加率を算出し、特に体重増加率を基準として水生動物Ａの成長促進効果を確認した。

【0095】

なお、本実験における水生動物Ａとしては、メダカとベステルチョウザメとを用いた。各実験に用いたメダカは、全９０匹である。各実験に用いたベステルチョウザメは、全４８匹である。また、その他の条件として、無調整の淡水を飼育水１１０として用いており、飼育水１１０の水温は約２５℃、飼育水１１０のｐＨは７．２～８．３、餌供給率は３％であった。また、成長促進剤１に含まれるダイゼインの重量は、いずれも葛根湯の乾燥重量１ｇあたり２０ｍｇ（２．０重量％）とした。成長促進剤１の供給方法としては、検証実験１と同様である。

【0096】

本実験では、飼育水１１０中に気泡を生成せずに成長促進剤１をメダカに供給した例を本発明例２６、飼育水１１０中に空気を吹き込んでナノバブルを生成するとともに成長促進剤１をメダカに供給した例を本発明例２７、飼育水１１０中に酸素を吹き込んでナノバブルを生成するとともに成長促進剤１をメダカに供給した例を本発明例２８、飼育水１１０中に気泡を生成せずに成長促進剤１をベステルチョウザメに供給した例を本発明例２９、飼育水１１０中に空気を吹き込んでナノバブルを生成するとともに成長促進剤１をベステルチョウザメに供給した例を本発明例３０とし、各本発明例の結果に基づいて体長増加率及び体重増加率を算出した。なお、本発明例２７、２８の体長増加率及び体重増加率は本発明例２６に対する増加率を、本発明例３０の体重増加率は本発明例２９に対する増加率を、それぞれ示す。また、養殖槽１１内のナノバブルについては、メダカ及びベステルチョウザメが稚魚の間はナノバブルの濃度が標準値（２×１０³個／ｍＬ～６×１０⁹個／ｍＬ）の１／３～１／１０になるように気泡発生装置２の稼働時間を調節して調製し、成長期以降は気泡発生装置２を毎日３時間以上稼働させ、常に溶存酸素濃度が６．８ｐｐｍ以上を維持するように管理した。

【0097】

本実験の結果は［表３］及び［表４］のとおりである。

【0098】

【表3】

【0099】

【表4】

【0100】

メダカの体長増加率の実験結果は以下のとおりである。本発明例２７（空気吹き込み）においては、本発明例２６に対する体長増加率が、育成期間３週で８．８０％、育成期間６週で９．５５％、育成期間９週で１１．１７％、育成期間１２週で１０．９１％と、育成期間３週以降において継続的に０より大きい値であった。また、本発明例２８（酸素吹き込み）においては、本発明例２６に対する体長増加率が、育成期間３週で１０．４０％、育成期間６週で８．２８％、育成期間９週で５．８５％、育成期間１２週で８．６４％と、育成期間３週以降において継続的に０より大きい値であった。本発明例２７、２８を比較すると、育成期間１２週においては本発明例２７の方、すなわち飼育水１１０に空気を吹き込んでナノバブルを生成した養殖槽１１内のメダカの方が、体長増加率が大きい値であった。

【0101】

メダカの体重増加率の実験結果は以下のとおりである。本発明例２７（空気吹き込み）においては、本発明例２６に対する体重増加率が、育成期間３週で２０．００％、育成期間６週で１１．１１％、育成期間９週で１６．６７％、育成期間１２週で１２．５０％と、育成期間３週以降において継続的に０より大きい値であった。また、本発明例２８（酸素吹き込み）においては、本発明例２６に対する体重増加率が、育成期間６週～９週では０％であったが、育成期間３週で４０．００％、育成期間１２週で６．２５％と、育成期間３週及び１２週で０より大きい値であった。本発明例２７、２８を比較すると、育成期間１２週においては本発明例２７の方が、体重増加率が大きい値であった。

【0102】

ベステルチョウザメの体重増加率の実験結果は以下のとおりである。本発明例３０（空気吹き込み）においては、本発明例２９に対する体長増加率が、育成期間３０日で９．８７％、育成期間６０日で５．１８％、育成期間９０日で５．３１％と、育成期間３０日以降において継続的に０より大きい値であった。

【0103】

以上の結果から、水生生物Ａを育成する養殖槽１１内の飼育水１１０にマイクロバブル又はナノバブルを生成するとともに、養殖槽１１内に成長促進剤１を供給することで、水生生物Ａの成長促進が図られることが確認された。

【0104】

＜成長促進剤１の検証実験４＞
次に、本発明に係る、水耕栽培槽１２に繋がれ、マイクロバブル又はナノバブルを生成した飼育水１１０を収容する養殖槽１１に供給する成長促進剤１の効用に関する検証実験について説明する。

【0105】

本実験では、養殖槽１１と水耕栽培槽１２とが独立した場合の育成期間９０日目の水生動物Ａの体重と、養殖槽１１と水耕栽培槽１２とが繋がれた場合の育成期間９０日目の水生動物Ａの体重と、から算出する体重増加率に基づいて、水生動物Ａの成長促進効果を確認した。また、養殖槽１１と水耕栽培槽１２とが独立した場合の育成期間３０日目の植物Ｂの可食部平均新鮮重量と、養殖槽１１と水耕栽培槽１２とが繋がれた場合の育成期間３０日目の植物Ｂの可食部平均新鮮重量と、から算出する可食部平均新鮮重量の増加率に基づいて、植物Ｂの成長促進効果を確認した。

【0106】

なお、本実験における水生動物Ａとしては、ベステルチョウザメを用いた。各実験に用いたベステルチョウザメは、１試験区あたり３６尾ずつである。本実験における植物Ｂとしては、リーフレタスを用いた。各実験に用いたリーフレタスは、独立した水耕栽培槽１２に用いたリーフレタスが３０株、養殖槽１１と繋がれた水耕栽培槽１２に用いたリーフレタスが１５０株である。可食部平均新鮮重量の測定方法としては、全株数から選択した１０株について可食部（茎葉）新鮮重量の平均値を算出した。単独の水耕栽培槽１２では、水温を約２０±２℃とし、公知の水耕栽培装置（型番：ＵＨ－Ａ０１Ｅ）と、化学液肥ジャストワン（登録商標）とを用いた。また、その他の条件として、無調整の淡水を飼育水１１０として用いており、飼育水１１０の水温は約２０±２℃、飼育水１１０のｐＨは７．２～８．３、餌供給率は３％であった。また、成長促進剤１に含まれるダイゼインの量は、いずれも葛根湯の乾燥重量１ｇあたり２０ｍｇ、すなわち葛根湯の総重量に対して２．００重量％（全質量に対して２．００質量％）とした。成長促進剤１の供給方法としては、検証実験１と同様である。

【0107】

本実験では、独立した養殖槽１１内のベステルチョウザメに成長促進剤１を供給し、独立した水耕栽培槽１２内のリーフレタスを従来の栽培方法のみで育成した例を本発明例３１とし、水耕栽培槽１２と繋がれた養殖槽１１内のベステルチョウザメに成長促進剤１を供給し、水耕栽培槽１２内のリーフレタスを従来の栽培方法に加えてベステルチョウザメの排泄物を含む飼育水１１０ａを用いて育成した例を本発明例３２とした。また、独立した養殖槽１１内の飼育水１１０中に空気を吹き込んでナノバブルを生成するとともにベステルチョウザメに成長促進剤１を供給し、独立した水耕栽培槽１２内のリーフレタスを従来の栽培方法のみで育成した例を本発明例３３とし、水耕栽培槽１２と繋がれた養殖槽１１内の飼育水１１０中に空気を吹き込んでナノバブルを生成するとともにベステルチョウザメに成長促進剤１を供給し、水耕栽培槽１２内のリーフレタスを従来の栽培方法に加えてベステルチョウザメの排泄物を含む飼育水１１０ａを用いて育成した例を本発明例３４とした。以上の各本発明例の結果に基づいて、ベステルチョウザメの体重増加率、及びリーフレタスの可食部平均新鮮重量の増加率を算出した。なお、本発明例３２の体重増加率及び可食部平均新鮮重量増加率は本発明例３１に対する増加率を、本発明例３４の体重増加率及び可食部平均新鮮重量増加率は本発明例３３に対する増加率を、それぞれ示す。また、養殖槽１１内のナノバブルについては、検証実験３と同様の方法で調整する。また、水耕栽培槽１２内のナノバブルについては、水耕栽培槽１２内のリーフレタスが発芽から苗時の間は養殖槽１１から流入するナノバブルのみ活用し、リーフレタスの成長期以降は気泡発生装置２を毎日０．５～３．０時間以上稼働させ、ナノバブルの濃度が標準値（２×１０³～６×１０⁹個／ｍＬ）になるように気泡発生装置２の稼働時間を調整した。また、上記条件の他、発芽時から苗時の間において、ナノバブルの濃度が標準値（２×１０³～６×１０⁹個／ｍＬ）の飼育水１１０（１１０ａ）を用いてリーフレタスを種苗生産してもよい。

【0108】

本実験の結果は［表５］のとおりである。

【0109】

【表5】

【0110】

ベステルチョウザメの体重増加率の実験結果は以下のとおりである。本発明例３２においては、本発明例３１に対する育成期間９０日の体重増加率が５．７４％と、０より大きい値であった。なお、生存率については、本発明例３１、３２いずれも１００％であった。本発明例３４においては、本発明例３３に対する育成期間９０日の体重増加率が８．４１％と、０より大きい値であった。なお、生存率については、本発明例３３、３４いずれも１００％であった。また、本発明例３４の体重増加率は、本発明例３２の体重増加率よりも大きい値であった。

【0111】

リーフレタスの可食部平均新鮮重量の増加率の実験結果は以下のとおりである。本発明例３２においては、本発明例３１に対する育成開始３０日の可食部平均新鮮重量増加率が１６．９８％と、０より大きい値であった。本発明例３４においては、本発明例３３に対する育成開始３０日の可食部平均新鮮重量増加率が１７．９８％と、０より大きい値であった。また、本発明例３４の可食部平均新鮮重量増加率は、本発明例３２の可食部平均新鮮重量増加率よりも大きい値であった。

【0112】

以上の結果から、水生動物Ａを収容する養殖槽１１と、植物Ｂを収容する水耕栽培槽１２と、が繋がれた育成システム１００において、養殖槽１１に成長促進剤１を供給することで、水生生物Ａ及び植物Ｂの成長促進が図られることが確認された。また、ナノバブルが生成された飼育水等を循環する場合の、養殖槽１１と水耕栽培槽１２とが繋がれた育成システム１００においては、水生生物Ａ及び植物Ｂの成長促進がさらに図られることが確認された。

【0113】

本発明のいくつかの実施形態を説明したが、これらの実施形態は、例として提示したものであり、発明の範囲を限定することは意図していない。これら新規な実施形態は、その他の様々な形態で実施されることが可能であり、発明の要旨を逸脱しない範囲で、種々の省略、置き換え、変更を行うことができる。これら実施形態やその変形は、発明の範囲や要旨に含まれるとともに、特許請求の範囲に記載された発明とその均等の範囲に含まれる。

【符号の説明】

【0114】

１００ 育成システム
１ 成長促進剤
１１ 養殖槽
１１０ 飼育水
１１０ａ 飼育水
１２ 水耕栽培槽
１２０ 分解液
１３ 第１接続配管
１４ 第２接続配管
２ 気泡発生装置
３ 殺菌消毒装置
Ａ 水生動物
Ｂ 植物
Ｓ１１ 成長促進剤供給工程
Ｓ１２ 気泡生成工程
Ｓ１３ 分解液供給工程

【図1】

【図2】

【図3】

【図4】

【図5】

【図6】