(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】公開特許公報(A)
(11)【公開番号】P2024056873
(43)【公開日】2024-04-23
(54)【発明の名称】ＣＤ１９標的キメラ抗原受容体およびその使用
(51)【国際特許分類】
C12N 15/62 20060101AFI20240416BHJP
C12N 15/12 20060101ALI20240416BHJP
C12N 15/13 20060101ALI20240416BHJP
C12N 15/85 20060101ALI20240416BHJP
C12N 5/0783 20100101ALI20240416BHJP
C12N 5/10 20060101ALI20240416BHJP
A61P 35/00 20060101ALI20240416BHJP
A61P 35/02 20060101ALI20240416BHJP
A61K 35/17 20150101ALI20240416BHJP
A61K 39/395 20060101ALI20240416BHJP
【ＦＩ】
C12N15/62 Z ZNA
C12N15/12
C12N15/13
C12N15/85 Z
C12N5/0783
C12N5/10
A61P35/00
A61P35/02
A61K35/17
A61K39/395 N
A61K39/395 T
【審査請求】有
【請求項の数】18
【出願形態】ＯＬ
(21)【出願番号】P 2024020263
(22)【出願日】2024-02-14
(62)【分割の表示】P 2021564892の分割
【原出願日】2020-12-14
(31)【優先権主張番号】201911301518.8
(32)【優先日】2019-12-17
(33)【優先権主張国・地域又は機関】CN
(31)【優先権主張番号】202011274810.8
(32)【優先日】2020-11-16
(33)【優先権主張国・地域又は機関】CN
(71)【出願人】
【識別番号】521477042
【氏名又は名称】合源生物科技（天津）有限公司
【氏名又は名称原語表記】ＪＵＶＥＮＴＡＳ ＣＥＬＬ ＴＨＥＲＡＰＹ ＬＴＤ．
(74)【代理人】
【識別番号】100115255
【弁理士】
【氏名又は名称】辻丸 光一郎
(74)【代理人】
【識別番号】100201732
【弁理士】
【氏名又は名称】松縄 正登
(74)【代理人】
【識別番号】100154081
【弁理士】
【氏名又は名称】伊佐治 創
(72)【発明者】
【氏名】王 建祥
(72)【発明者】
【氏名】王 敏
(72)【発明者】
【氏名】呂 ▲路▼▲路▼
(72)【発明者】
【氏名】石 琳
(72)【発明者】
【氏名】安 娜
(72)【発明者】
【氏名】王 瑞
(72)【発明者】
【氏名】▲劉▼ 芸
(57)【要約】 （修正有）
【課題】ＣＤ１９標的キメラ抗原受容体およびその使用を提供する。
【解決手段】特定のアミノ酸配列を含む、キメラ抗原受容体を提供する。前記キメラ抗原受容体をコードする核酸、前記核酸を含むベクター、前記キメラ抗原受容体、前記核酸分子および／または前記ベクターを含む免疫エフェクター細胞、前記免疫エフェクター細胞を調製する方法、前記免疫エフェクター細胞を含む組成物、ならびに前記キメラ抗原受容体の使用も提供する。
【選択図】なし
【解決手段】特定のアミノ酸配列を含む、キメラ抗原受容体を提供する。前記キメラ抗原受容体をコードする核酸、前記核酸を含むベクター、前記キメラ抗原受容体、前記核酸分子および／または前記ベクターを含む免疫エフェクター細胞、前記免疫エフェクター細胞を調製する方法、前記免疫エフェクター細胞を含む組成物、ならびに前記キメラ抗原受容体の使用も提供する。
【選択図】なし
【特許請求の範囲】
【請求項1】
配列番号１に示されるアミノ酸配列を含むキメラ抗原受容体。
【請求項2】
請求項１記載のキメラ抗原受容体をコードする単離された核酸分子。
【請求項3】
配列番号２に記載の核酸配列を含むキメラ抗原受容体をコードする単離された核酸分子。
【請求項4】
請求項２または３記載の核酸分子を含むベクター。
【請求項5】
請求項１記載のキメラ抗原受容体、請求項２または３記載の核酸分子、および／または請求項４記載のベクターを含む免疫エフェクター細胞。
【請求項6】
前記免疫エフェクター細胞がＴリンパ球およびナチュラルキラー細胞からなる群から選択される請求項５記載の免疫エフェクター細胞。
【請求項7】
請求項１記載のキメラ抗原受容体が前記免疫エフェクター細胞の表面上に発現される請求項５または６記載の免疫エフェクター細胞。
【請求項8】
請求項４記載のベクターを免疫エフェクター細胞に形質導入する工程を含む免疫エフェクター細胞を調製する方法。
【請求項9】
前記免疫エフェクター細胞がＴリンパ球およびナチュラルキラー細胞からなる群から選択される請求項８記載の方法。
【請求項10】
請求項５から７のいずれか一項に記載の免疫エフェクター細胞を含む組成物。
【請求項11】
医薬の製造における、請求項１記載のキメラ抗原受容体、請求項２または３記載の核酸分子、請求項４記載のベクターおよび／または請求項５から７のいずれか一項に記載の免疫エフェクター細胞の使用であって、前記医薬はＣＤ１９発現に関連する疾病または疾患の治療に有用である使用。
【請求項12】
ＣＤ１９発現に関連する前記疾病または疾患が非固形腫瘍を含む請求項１１記載の使用。
【請求項13】
前記非固形腫瘍が白血病および／またはリンパ腫を含む請求項１２に記載の使用。
【請求項14】
ＣＤ１９発現に関連する前記疾病または疾患が急性リンパ芽球性白血病および／またはＢ細胞リンパ腫を含む請求項１１記載の使用。
【請求項15】
前記急性リンパ芽球性白血病が成人における急性リンパ芽球性白血病および／または小児における急性リンパ芽球性白血病を含む請求項１４記載の使用。
【請求項16】
前記医薬が０．２５×１０８～０．５×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の投与量で投与される請求項１５に記載の使用。
【請求項17】
前記Ｂ細胞リンパ腫が非ホジキンリンパ腫を含む請求項１４に記載の使用。
【請求項18】
前記医薬が１×１０８～２×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の投与量で投与される請求項１７に記載の使用。
【請求項19】
請求項１記載のキメラ抗原受容体、請求項２または３記載の核酸分子、請求項４記載のベクター、および／または請求項５～７のいずれか一項に記載の免疫エフェクター細胞を投与する工程を含むＣＤ１９発現に関連する疾病または疾患を治療する方法。
【請求項20】
ＣＤ１９発現に関連する前記疾病または疾患が非固形腫瘍を含む請求項１９に記載の方法。
【請求項21】
前記非固形腫瘍が白血病および／またはリンパ腫を含む請求項２０に記載の方法。
【請求項22】
ＣＤ１９発現に関連する前記疾病または疾患が急性リンパ芽球性白血病および／またはＢ細胞リンパ腫を含む請求項１９に記載の方法。
【請求項23】
前記急性リンパ芽球性白血病が成人における急性リンパ芽球性白血病および／または小児における急性リンパ芽球性白血病を含む請求項２２記載の方法。
【請求項24】
前記投与工程において０．２５×１０８～０．５×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の投与量で投与される請求項２３に記載の方法。
【請求項25】
前記Ｂ細胞リンパ腫が非ホジキンリンパ腫を含む請求項２２に記載の方法。
【請求項26】
前記投与工程において、１×１０８～２×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の投与量で投与される請求項２５に記載の方法。
【請求項27】
ＣＤ１９発現に関連する前記疾病または疾患の治療に使用する請求項１記載のキメラ抗原受容体、請求項２または３記載の核酸分子、請求項４記載のベクター、および／または請求項５～７のいずれか一項に記載の免疫エフェクター細胞。
【請求項28】
ＣＤ１９発現に関連する前記疾病または疾患が非固形腫瘍を含む請求項２７記載のキメラ抗原受容体、核酸分子、ベクターおよび／または免疫エフェクター細胞。
【請求項29】
前記非固形腫瘍が白血病および／またはリンパ腫を含む請求項２８記載のキメラ抗原受容体、核酸分子、ベクターおよび／または免疫エフェクター細胞。
【請求項30】
ＣＤ１９発現に関連する前記疾病または疾患が急性リンパ芽球性白血病および／またはＢ細胞リンパ腫を含む請求項２７記載のキメラ抗原受容体、核酸分子、ベクターおよび／または免疫エフェクター細胞。
【請求項31】
前記急性リンパ芽球性白血病が成人における急性リンパ芽球性白血病および／または小児における急性リンパ芽球性白血病を含む請求項３０記載のキメラ抗原受容体、核酸分子、ベクターおよび／または免疫エフェクター細胞。
【請求項32】
０．２５×１０８～０．５×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の投与量で投与を行う請求項３１記載のキメラ抗原受容体、核酸分子、ベクターおよび／または免疫エフェクター細胞。
【請求項33】
前記Ｂ細胞リンパ腫が非ホジキンリンパ腫を含む請求項３０記載のキメラ抗原受容体、核酸分子、ベクターおよび／または免疫エフェクター細胞。
【請求項34】
１×１０８～２×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の投与量で投与を行う請求項３３記載のキメラ抗原受容体、核酸分子、ベクターおよび／または免疫エフェクター細胞。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本開示は、生物医学の分野に関する。より具体的には、本開示は、ＣＤ１９標的キメラ抗原受容体およびその使用に関する。
【背景技術】
【0002】
現在、急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）、慢性リンパ性白血病（ＣＬＬ）、およびＢ細胞性リンパ腫に対する臨床治療として、主に化学療法、幹細胞移植、および生物学的療法などが行われている。このような治療法は一定の有効性を実現することができるが、再発性または難治性の白血病は未だ取り組むことが困難な大きな問題として残されている。新しい治療戦略として、腫瘍の細胞免疫療法は、最近の研究において注目の話題となっている。ＣＤ１９はほとんどすべてのＢ細胞腫瘍細胞の表面に広く発現しているが、他の実質細胞や造血幹細胞にはほとんど発現していない。
【0003】
腫瘍細胞は、様々な経路、例えば、Ｔ細胞認識および抗原応答に関与する分子の発現を下方制御すること、または免疫原性を低下させることにより免疫逃避を産生することができるため、生物の免疫系が効果的に腫瘍を除去できないようにする。キメラ抗原受容体Ｔ細胞（ＣＡＲ－Ｔ細胞）は腫瘍細胞表面の抗原を認識し、前記腫瘍細胞を特異的に殺傷することができるため、腫瘍の治療に有用であることが研究で明らかになっている。
【発明の概要】
【0004】
本開示は、配列番号１に示されるアミノ酸配列を含むキメラ抗原受容体を提供する。本開示は、さらに、前記キメラ抗原受容体をコードする核酸、前記核酸を含むベクター、前記キメラ抗原受容体、前記核酸分子および／または前記ベクターを含む免疫エフェクター細胞、前記免疫エフェクター細胞を調製する方法、前記免疫エフェクター細胞を含む組成物、および前記キメラ抗原受容体の使用を提供する。
【0005】
本開示のキメラ抗原受容体は、以下の発明の効果のうちの少なくとも１つを含む：
（１）高発現レベルでの免疫細胞（Ｔ細胞など）表面での安定した発現、
（２）ＣＤ１９陽性標的細胞を殺傷する強い能力、
（３）免疫細胞がサイトカインを分泌するのを促進する能力、例えば、Ｔ細胞がサイトカイン（ＩＮＦ－γまたはＩＬ－６）を少なくとも１回、２回または３回分泌する能力を増強する能力、
（４）非溶血性で、溶血または赤血球の凝集を誘発しにくいこと、
（５）血管刺激性がなく、投与後に局所的または全身的な異常を生じないこと、
（６）発がん性がなく、ｉｎ ｖｉｖｏまたはｉｎ ｖｉｔｒｏで非発がん性であること、
（７）がん患者の生存期間を延長する能力、
（８）がん（成人の急性リンパ芽球性白血病、小児の急性リンパ芽球性白血病および／または非ホジキンリンパ腫など）の重症度を効果的に改善する能力、および
（９）副作用（例えば、サイトカイン放出症候群またはＣＡＲ－Ｔ細胞関連脳症症候群）を誘発するリスクが低く、より高い安全性性能を示す能力。
（１）高発現レベルでの免疫細胞（Ｔ細胞など）表面での安定した発現、
（２）ＣＤ１９陽性標的細胞を殺傷する強い能力、
（３）免疫細胞がサイトカインを分泌するのを促進する能力、例えば、Ｔ細胞がサイトカイン（ＩＮＦ－γまたはＩＬ－６）を少なくとも１回、２回または３回分泌する能力を増強する能力、
（４）非溶血性で、溶血または赤血球の凝集を誘発しにくいこと、
（５）血管刺激性がなく、投与後に局所的または全身的な異常を生じないこと、
（６）発がん性がなく、ｉｎ ｖｉｖｏまたはｉｎ ｖｉｔｒｏで非発がん性であること、
（７）がん患者の生存期間を延長する能力、
（８）がん（成人の急性リンパ芽球性白血病、小児の急性リンパ芽球性白血病および／または非ホジキンリンパ腫など）の重症度を効果的に改善する能力、および
（９）副作用（例えば、サイトカイン放出症候群またはＣＡＲ－Ｔ細胞関連脳症症候群）を誘発するリスクが低く、より高い安全性性能を示す能力。
【0006】
本開示の１つの態様は、配列番号１に示されるアミノ酸配列を含むキメラ抗原受容体を提供する。
【0007】
本開示の別の態様は、本明細書に記載のキメラ抗原受容体をコードする単離された核酸分子を提供する。
【0008】
本開示の別の態様は、配列番号２に示される核酸配列を含む前記キメラ抗原受容体をコードする単離された核酸分子をさらに提供する。
【0009】
本開示の別の態様は、本明細書に記載の核酸分子を含むベクターをさらに提供する。
【0010】
本開示の別の態様は、本明細書に記載のキメラ抗原受容体、核酸分子および／またはベクターを含む免疫エフェクター細胞をさらに提供する。
【0011】
特定の実施形態において、前記免疫エフェクター細胞は、Ｔリンパ球およびナチュラルキラー細胞からなる群から選択される。
【0012】
特定の実施形態において、前記キメラ抗原受容体が免疫エフェクター細胞の表面上に発現される。
【0013】
本開示の別の態様は、本明細書に記載のベクターを免疫エフェクター細胞に形質導入する工程を包む免疫エフェクター細胞を調製する方法をさらに提供する。
【0014】
特定の実施形態において、前記免疫エフェクター細胞は、Ｔリンパ球およびナチュラルキラー細胞からなる群から選択される。
【0015】
本開示の別の態様は、さらに、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞を含む組成物を提供する。
【0016】
本開示の別の態様は、さらに、ＣＤ１９発現に関連する疾病または疾患の治療に有用である医薬の製造における、前記キメラ抗原受容体、核酸分子、ベクターおよび／または免疫エフェクター細胞の使用を提供する。
【0017】
本開示の別の態様は、前記キメラ抗原受容体、核酸分子、ベクターおよび／または免疫エフェクター細胞を適用する工程を含む、ＣＤ１９発現に関連する疾病または疾患を治療する方法をさらに提供する。
【0018】
本開示の別の態様は、さらに、ＣＤ１９発現に関連する疾病または疾患の治療において使用するキメラ抗原受容体、核酸分子、ベクターおよび／または免疫エフェクター細胞を提供する。
【0019】
特定の実施形態において、ＣＤ１９発現に関連する前記疾病または疾患は非固形腫瘍を含む。
【0020】
特定の実施形態において、非固形腫瘍は白血病および／またはリンパ腫を含む。
【0021】
特定の実施形態において、ＣＤ１９発現に関連する前記疾病または疾患は、急性リンパ芽球性白血病および／またはＢ細胞リンパ腫を含む。
【0022】
特定の実施形態において、前記急性リンパ芽球性白血病は、成人における急性リンパ芽球性白血病および／または小児における急性リンパ芽球性白血病を含む。
【0023】
特定の実施形態において、前記急性リンパ芽球性白血病を治療するための医薬は、０．２５×１０８～０．５×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の投与量で投与される。
【0024】
特定の実施形態において、前記Ｂ細胞リンパ腫は、非ホジキンリンパ腫を含む。
【0025】
特定の実施形態において、前記非ホジキンリンパ腫を治療するための医薬は１×１０８～２×１０８ＣＡＲ陽性Ｔ細胞の投与量で投与される。
【0026】
当業者は、以下の詳細な説明から本開示の他の態様および利点を容易に理解することができる。以下の詳細な説明では、本開示の例示的な実施形態を示し、説明しているにすぎない。当業者が認識するように、本開示の内容は、当業者が本開示の発明の精神および範囲から逸脱することなく、本明細書に開示される特定の実施形態に修正を加えることを可能にする。同様に、本開示の説明における図面および例示は、限定的ではなく、例示的なものにすぎない。
【図面の簡単な説明】
【0027】
本開示に含まれる特定の特徴は、添付の特許請求の範囲に示される。本明細書に含まれる開示の特徴および利点は、以下に詳細に記載される例示的な実施形態および添付の図面を参照することによって、より良く理解することができる。図面の簡単な説明は以下の通りである：
【発明を実施するための形態】
【0028】
以下の具体例は、本開示の特定の実施形態を例示する。本技術に精通する者は本明細書に開示される内容から、本開示の他の利点および効果を容易に理解することができる。
【0029】
以下、本開示をさらに説明する。本開示によれば、特に明記しない限り、本明細書で使用される科学用語および技術用語は当業者によって一般に理解される意味を有する。さらに、本明細書中で使用されるタンパク質および核酸化学、分子生物学、細胞および組織培養、微生物学、ならびに免疫学の関連する用語および実験手順は、すべて、対応する分野において広く使用される用語および日常的手順である。ここで、本開示をより良く理解するために、関連する用語の定義および説明を以下に示す。
【0030】
本明細書中で使用される場合、「キメラ抗原受容体」（ＣＡＲ）という用語は通常、抗原に結合可能な細胞外ドメインおよび少なくとも１つの細胞内ドメインを含む融合タンパク質をいう。ＣＡＲはキメラ抗原受容体Ｔ細胞（ＣＡＲ－Ｔ）のコア成分であり、これは、標的化部分（例えば、腫瘍関連抗原（ＴＡＡ）に結合する部分）、ヒンジ領域、膜貫通領域、および細胞内ドメインを含んでもよい。本開示において、ＣＡＲは、抗体の抗原特異性に基づいて、Ｔ細胞受容体活性化細胞内ドメインと組み合わせてもよい。ＣＡＲを発現するＴ細胞は標的抗原を発現する悪性細胞を特異的に認識し、除去することができる。
【0031】
本明細書中で使用される場合、「単離された」という用語は通常、天然の状態から人工的な手段により得られるものをいう。ある「単離された」物質または構成要素が天然に存在する場合にはそれが存在する天然の環境が変化しているか、天然の環境から単離されているか、またはその両方であることを意味する。例えば、ある非単離ポリヌクレオチドまたはポリペプチドが生きている動物に天然に存在するとき、この天然の状態から単離された高純度の同じポリヌクレオチドまたはポリペプチドを、単離されたものと呼ぶ。「単離された」という用語は人工的または合成的な物質と混合される機会を排除するものではなく、物質の活性を損なわない他の不純物の存在を排除するものでもない。
【0032】
本明細書中で使用される場合、「免疫エフェクター細胞」という用語は通常、例えば、免疫エフェクター応答を促進する細胞などの免疫応答に関与する細胞をいう。本開示において、免疫エフェクター細胞は、Ｔリンパ球およびナチュラルキラー細胞からなる群から選択してもよい。
【0033】
本明細書中で使用される場合、「特異的に結合するおよび／または特異的に認識する」という用語は通常、標的と抗体（またはＣＡＲ構造フラグメント）との間の結合など、測定可能かつ再現可能な相互作用をいい、これは分子（生体分子を含む）の不均一な細胞集団が存在する場合に標的の存在を決定することがある。例えば、標的（エピトープでもよい）に特異的に結合する抗体（またはＣＡＲ構造フラグメント）は、他の標的への結合と比較して、より簡単な方法で、および／またはより長い期間、より高い親和性および結合活性で標的に結合する抗体（またはＣＡＲ構造フラグメント）である。
【0034】
本明細書中で使用される場合、「単離された核酸分子」という用語は通常、その単離された形態において任意の長さのヌクレオチド、デオキシリボヌクレオチドもしくはリボヌクレオチド、またはそれらの天然の環境から単離されたかもしくは人工的に合成されたアナログをいう。
【0035】
本明細書中で使用される場合、「ベクター」は通常、あるタンパク質をコードするポリヌクレオチドを挿入することができ、そしてそれによって前記タンパク質を発現することができる、核酸を送達するためのツールをいう。ベクターは、保有する遺伝物質元素が宿主細胞中で発現することができるように、宿主細胞中に形質転換、形質導入、またはトランスフェクトすることができる。例えば、ベクターは、プラスミド、ファージミド、コスミド、人工染色体（酵母人工染色体（ＹＡＣ）、細菌人工染色体（ＢＡＣ）またはＰ１由来人工染色体（ＰＡＣ）など）、λファージまたはＭ１３ファージなどのファージおよび動物ウイルスなどを含む。ベクターとなる動物ウイルスの種類には、レトロウイルス（レンチウイルスを含む）、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス、ヘルペスウイルス（単純ヘルペスウイルスなど）、ポックスウイルス、バキュロウイルス、パピローマウイルス、乳頭腫空胞ウイルス（ＳＶ４０など）などがある。ベクターは、プロモーター配列、転写開始配列、エンハンサー配列、選択エレメント、およびレポーター遺伝子を含む、発現を制御する様々なエレメントを含んでもよい。また、ベクターは、複製起点を含んでもよい。ベクターは、特に限定されないが、ウイルス粒子、リポソームまたはタンパク質コートなどの、細胞への侵入を助ける成分を含んでもよい。
【0036】
本明細書中で使用される場合、「組成物」は通常、患者への投与に適した組成物をいう。例えば、本開示の組成物は、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞を含んでもよい。さらに、組成物はまた、（薬学的に有効である）キャリア、安定剤、賦形剤、希釈剤、可溶化剤、界面活性剤、乳化剤および／または保存剤の１つ以上の適切な製剤を含んでもよい。前記組成物の許容される成分は、使用される任意の用量および濃度でレシピエントに対して無毒である。本開示の組成物は、特に限定されないが、液体、および凍結または凍結乾燥組成物を含む。
【0037】
本明細書中で使用される場合、「ＣＤ１９」は通常、分化クラスター（ＣＤ）１９タンパク質をいい、これは、白血病前駆細胞上で検出され得る抗原決定基のクラスターである。ヒトおよびマウスＣＤ１９のアミノ酸および核酸配列は、公共のデータベース（ＧｅｎＢａｎｋ、ＵｎｉＰｒｏｔ、およびＳｗｉｓｓ－Ｐｒｏｔなど）に掲載されている。例えば、ヒトＣＤ１９のアミノ酸配列はＵｎｉＰｒｏｔ／Ｓｗｉｓｓ－Ｐｒｏｔ寄託番号Ｐ１５３９１でアクセスすることができ、ヒトＣＤ１９をコードするヌクレオチド配列は、寄託番号ＮＭ＿００１１７８０９８でアクセスすることができる。本開示によれば、「ＣＤ１９」は突然変異を有するタンパク質（例えば、完全長野生型ＣＤ１９の点突然変異、断片、挿入、欠失、およびスプライスバリアント）を含んでもよい。
【0038】
本明細書中で使用される場合、「被験者」という用語は通常、ヒト、またはネコ、イヌ、ウマ、ブタ、ウシ、ヒツジ、ウサギ、マウス、ラット、またはサルを含むがこれらに限定されない非ヒト動物をいう。
【0039】
本明細書中で使用される場合、「含む」という用語は通常、明示的に指定された特徴を含むことを指し、他の要素を除外するものではない。
【0040】
本明細書で使用される場合、「約」という用語は通常、記載された値より０．５％～１０％大きいかまたは小さい範囲内で変化することを指し、例えば、記載された値より０．５％、１％、１．５％、２％、２．５％、３％、３．５％、４％、４．５％、５％、５．５％、６％、６．５％、７％、７．５％、８％、８．５％、９％、９．５％、または１０％大きいかまたは小さい範囲内で変化することを指す。
【0041】
［キメラ抗原受容体、核酸、ベクター、免疫エフェクター細胞、および組成物］
本開示の１つの態様は、配列番号１に示されるアミノ酸配列を含むキメラ抗原受容体を提供する。本開示は、さらに、配列番号１に示されるアミノ酸配列と少なくとも８０％（例えば、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９１％、少なくとも９２％、少なくとも９３％、少なくとも９４％、少なくとも９５％、少なくとも９６％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、または少なくとも９９％）の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むキメラ抗原受容体を提供する。
本開示の１つの態様は、配列番号１に示されるアミノ酸配列を含むキメラ抗原受容体を提供する。本開示は、さらに、配列番号１に示されるアミノ酸配列と少なくとも８０％（例えば、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９１％、少なくとも９２％、少なくとも９３％、少なくとも９４％、少なくとも９５％、少なくとも９６％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、または少なくとも９９％）の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むキメラ抗原受容体を提供する。
【0042】
特定の実施形態において、本明細書に記載のキメラ抗原受容体は、腫瘍抗原に特異的に結合および／または認識することができる。例えば、本明細書に記載のキメラ抗原受容体は、ＣＤ１９抗原に特異的に結合することができ、そして／またはＣＤ１９抗原を認識することができる。
【0043】
特定の実施形態において、本明細書に記載のキメラ抗原受容体は、免疫エフェクター細胞がサイトカインを分泌するのを促進することができる。前記免疫エフェクター細胞は、Ｔリンパ球およびナチュラルキラー細胞からなる群から選択してもよい。前記サイトカインは、ＩＦＮ－γおよびＩＬ－６からなる群から選択されてもよい。前記免疫エフェクター細胞は、哺乳動物免疫エフェクター細胞であってもよい。前記Ｔリンパ球は、哺乳類のＴリンパ球であってもよく、前記ナチュラルキラー細胞は、哺乳類のナチュラルキラー細胞であってもよい。Ｔリンパ球はヒトＴリンパ球であってもよく、前記ナチュラルキラー細胞はヒトナチュラルキラー細胞であってもよい。
【0044】
特定の実施形態において、本明細書に記載のキメラ抗原受容体は非溶血性であり、血管刺激がない。
【0045】
特定の実施形態において、本明細書に記載のキメラ抗原受容体はｉｎ ｖｉｔｒｏで非発がん性である。
【0046】
特定の実施形態において、本明細書に記載のキメラ抗原受容体はｉｎ ｖｉｖｏで非発がん性である。
【0047】
特定の実施形態において、本明細書に記載のキメラ抗原受容体は、腫瘍を効果的に治療することができる。前記腫瘍はＣＤ１９陽性腫瘍であってもよい。例えば、本明細書に記載のキメラ抗原受容体は、ＣＤ１９陽性腫瘍患者の生存期間を効果的に延長することができる。例えば、本明細書に記載のキメラ抗原受容体は、非固形腫瘍患者の生存期間を効果的に延長することができる。例えば、本明細書に記載のキメラ抗原受容体は、リンパ腫および／または白血病の生存期間を効果的に延長することができる。別の例として、本明細書に記載のキメラ抗原受容体は、急性リンパ芽球性白血病の成人患者の生存期間を効果的に延長することができる。別の例として、本明細書に記載のキメラ抗原受容体は、急性リンパ芽球性白血病の小児患者の生存期間を効果的に延長することができる。別の例として、本明細書に記載のキメラ抗原受容体はＢ細胞リンパ腫（例えば、非ホジキンリンパ腫）患者の生存期間を効果的に延長することができる。
【0048】
特定の実施形態において、本明細書に記載のキメラ抗原受容体は、成人における急性リンパ芽球性白血病を効果的に治療することができる。
【0049】
特定の実施形態において、本明細書に記載のキメラ抗原受容体は、小児における急性リンパ芽球性白血病を効果的に治療することができる。
【0050】
特定の実施形態において、本明細書に記載のキメラ抗原受容体は、非ホジキンリンパ腫を効果的に治療することができる。
【0051】
本開示の別の態様は、本明細書に記載のキメラ抗原受容体をコードする単離された核酸分子を提供する。
【0052】
本開示の別の態様は、配列番号２に示される核酸配列を含む、キメラ抗原受容体をコードする単離された核酸分子を提供する。
【0053】
本開示の別の態様は、配列番号２に示される配列に類似する核酸配列を含み且つ前記キメラ抗原受容体をコードする核酸分子である、キメラ抗原受容体をコードする単離された核酸分子を提供する。
【0054】
特定の実施形態において、配列番号２に示される配列に類似する核酸配列は、配列番号２に示される核酸配列と少なくとも７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、または９９％の配列同一性を有する核酸配列をいう。
【0055】
特定の実施形態において、配列番号２に示される配列に類似する核酸配列は、核酸分子がキメラ抗原受容体をコードできることを意味するが、核酸コドンの３位における塩基のゆらぎ（縮重）のために、配列番号２に示される核酸配列とは異なっている。
【0056】
本開示は、１つ以上の生物学的活性を保持する遺伝子およびタンパク質の変異体（例えば、配列番号１に示されるアミノ酸配列の変異体、または本明細書に記載のような配列番号２に示される核酸配列の変異体）を含む。このようなタンパク質またはポリペプチドの変異体は、タンパク質またはポリペプチドが改変または追加の特性を有するように、組換えＤＮＡ技術を用いて改変されたかまたは改変することができるタンパク質またはポリペプチドを含み、例えば、この変異体は、血漿中の増強された安定性またはタンパク質に対する増加した活性を付与する。前記変異体は参照配列とは異なっていてもよく、例えば、天然に存在するポリヌクレオチド、タンパク質またはペプチドとは異なっていてもよい。ヌクレオチド配列レベルにおいて、天然に存在する変異体遺伝子および天然に存在しない変異体遺伝子は、代表的には参照遺伝子に対して少なくとも約５０％、より代表的には少なくとも約７０％、そしてさらにより代表的には少なくとも約８０％の同一性（９０％以上の同一性）を有する。アミノ酸配列レベルにおいて、天然に存在する変異体タンパク質および天然に存在しない変異体タンパク質は、典型的には参照タンパク質に対して少なくとも約７０％、より典型的には少なくとも約８０％、そしてさらにより典型的には少なくとも約９０％以上の同一性を有しながら、非保存領域においてより高いパーセントの非同一性領域（例えば、同一性パーセントが７０％未満、例えば、６０％未満、５０％未満、またはさらに４０％未満）を可能にする。他の実施形態において、前記配列は、参照配列と少なくとも６０％、７０％、７５％以上の同一性（例えば、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％以上の同一性）を有する。ヌクレオチドおよびアミノ酸の改変をポリヌクレオチド、タンパク質またはポリペプチドに導入する手順は当業者に公知である（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．（１９８９）を参照のこと）。
【0057】
本明細書中で使用される場合、「同一性」、「相同性」という用語およびそれらの文法的異表記は通常、配列が「整列した」場合、２つ以上の実体が同一であることを意味する。したがって、例えば、２つのポリペプチドが同一の配列を有する場合、それらは少なくとも参照領域または部分内で同一のアミノ酸配列を有する。２つのポリヌクレオチドが同一の配列を有する場合、それらは少なくとも参照領域または部分内で同一のポリヌクレオチド配列を有する。前記同一性は、配列の定義されたゾーン（領域またはドメイン）の同一性であり得る。前記同一性の「ゾーン」または「領域」は、２つ以上の参照実体の同一部分を指す。したがって、２つのタンパク質または核酸配列が１つ以上の配列ゾーンまたは領域において同一である場合、それらはその領域において同一性を有する。「整列した」配列は、参照配列と比較して補足的または追加的な塩基またはアミノ酸（ギャップ）をしばしば含むより多くのポリヌクレオチドまたはタンパク質（アミノ酸）を指す。２つの配列間の同一性（相同性）の程度は、コンピュータープログラムおよび数学的アルゴリズムを使用して判定できる。パーセント配列同一性（相同性）を算出するこのようなアルゴリズムは、通常比較される領域またはゾーンにおける配列ギャップおよびミスマッチを算出する。例えば、ＢＬＡＳＴ（例えば、ＢＬＡＳＴ２．０）検索アルゴリズム（例えば、Ａｌｔｓｃｈｕｌｅｔ ａｌ．、Ｊ．ＭｏｌＢｉｏｌ．２１５：４０３（１９９０）（ＮＣＢＩから公的に入手可能）を参照のこと）としては、ミスマッチ－２、ギャップオープニング５、ギャップエクステンション２などが例示的な検索パラメーターとして挙げられる。
【0058】
本開示によれば、核酸分子は、本明細書に記載のキメラ抗原受容体をコードすることができる限り、単離された形態において、任意の長さのヌクレオチド、デオキシリボヌクレオチドまたはリボヌクレオチド、またはそれらの天然の環境から単離されたかまたは人工的に合成されたアナログでもよい。
【0059】
本開示の別の態様は、本明細書に記載の核酸分子を含むベクターを提供する。
【0060】
本開示によれば、前記ベクターは、保有する遺伝物質元素が宿主細胞中で発現できるように、宿主細胞中に形質転換、形質導入、またはトランスフェクトすることができる。例えば、ベクターは、プラスミド、ファージミド、コスミド、人工染色体（酵母人工染色体（ＹＡＣ）、細菌人工染色体（ＢＡＣ）またはＰ１由来人工染色体（ＰＡＣ）など）、λファージまたはＭ１３ファージなどのファージおよび動物ウイルスなどを含んでもよい。ベクターとなる動物ウイルスの種類には、レトロウイルス（レンチウイルスを含む）、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス、ヘルペスウイルス（単純ヘルペスウイルスなど）、ポックスウイルス、バキュロウイルス、パピローマウイルス、乳頭腫空胞ウイルス（ＳＶ４０など）などがある。別の例として、前記ベクターは、プロモーター配列、転写開始配列、エンハンサー配列、選択的元素、およびレポーター遺伝子を含む発現を制御する種々の元素を含んでもよい。さらに、前記ベクターは、複製起点を含んでもよい。さらに、前記ベクターは、特に限定されないが、ウイルス粒子、リポソームまたはタンパク質コートのような、細胞へのその侵入を補助する成分を含んでもよい。
【0061】
本開示の別の態様は、本明細書に記載のキメラ抗原受容体、核酸分子および／またはベクターを含む免疫エフェクター細胞を提供する。
【0062】
本開示によれば、前記免疫エフェクター細胞は、Ｔリンパ球およびナチュラルキラー細胞からなる群から選択してもよい。特定の実施形態において、前記免疫エフェクター細胞は、ヒト免疫エフェクター細胞であってもよい。例えば、前記免疫エフェクター細胞は、ヒトＴリンパ球でもよい。別の例として、前記免疫エフェクター細胞は、ヒトナチュラルキラー細胞でもよい。
【0063】
本開示によれば、本明細書に記載のキメラ抗原受容体は、免疫エフェクター細胞の表面上に発現される。
【0064】
特定の実施形態において、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞は、腫瘍細胞を効果的に殺傷することができる。前記腫瘍細胞は、ＣＤ１９陽性細胞であってもよい。例えば、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞は、ＣＤ１９陽性ヒト白血病細胞株Ｎａｌｍ－６細胞の残存率をかなり低下させることができる。
【0065】
特定の実施形態において、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞は、ＣＤ１９陽性細胞と接触するサイトカイン分泌を効果的に促進することができる。前記サイトカインは、ＩＦＮ－γおよびＩＬ－６からなる群から選択してもよい。例えば、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞をＣＤ１９陽性ヒト白血病細胞株Ｎａｌｍ－６細胞と共培養すると、ＩＦＮ－γおよびＩＬ－６サイトカインの分泌が有意に増加する。
【0066】
特定の実施形態において、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞は、非溶血性であり、そして血管刺激を伴わない。例えば、ｉｎ ｖｉｔｒｏでの溶血試験において、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞は、溶血および血液凝集を誘導しない。別の例では、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞は、血管刺激を伴わない。
【0067】
特定の実施形態において、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞は、ｉｎ ｖｉｔｒｏで非発がん性である。
【0068】
特定の実施形態において、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞は、ｉｎ ｖｉｖｏで非発がん性である。
【0069】
特定の実施形態において、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞は、腫瘍を効果的に治療することができる。前記腫瘍はＣＤ１９陽性腫瘍であってもよい。例えば、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞は、ＣＤ１９陽性腫瘍患者の生存期間を効果的に延長することができる。別の例として、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞は、急性リンパ芽球性白血病の成人患者の生存期間を効果的に延長することができる。別の例として、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞は、急性リンパ芽球性白血病の小児患者の生存期間を効果的に延長することができる。別の例として、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞は、Ｂ細胞リンパ腫（非ホジキンリンパ腫など）患者の生存期間を効果的に延長することができる。
【0070】
特定の実施形態において、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞は、成人における急性リンパ芽球性白血病を効果的に治療することができる。
【0071】
特定の実施形態において、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞は、小児における急性リンパ芽球性白血病を効果的に治療することができる。
【0072】
特定の実施形態において、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞は、Ｂ細胞リンパ腫（非ホジキンリンパ腫など）を効果的に治療することができる。
【0073】
本開示の別の態様は、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞を含む組成物を提供する。
【0074】
本開示によれば、組成物は、（薬学的に有効である）キャリア、安定剤、賦形剤、希釈剤、可溶化剤、界面活性剤、乳化剤および／または防腐剤の１つ以上の適切な製剤を含んでもよい。組成物の許容される成分は、使用される任意の用量および濃度でレシピエントに対して無毒である。本開示の組成物は、特に限定されないが、液体、および凍結または凍結乾燥組成物を含む。
【0075】
特定の実施形態において、前記組成物は、非経口、経皮、管腔内、動脈内、髄腔内、および／または鼻腔内投与用の組成物でもよいし、組織への直接注射による組成物であってもよい。例えば、前記組成物は、注入または注射によって患者または被験者に投与されてもよい。他の実施形態において、前記組成物の投与を、例えば、静脈内、腹腔内、皮下、筋肉内、局所または皮内投与などの様々な方法よって行ってもよい。他の実施形態において、前記組成物は、中断なく投与することができる。中断されない（または連続的である）投与は、ＷＯ２０１５／０３６５８３に記載されるように、患者の体内への治療薬の流入を計量するために患者によって装着される小型ポンプシステムによって達成されてもよい。
【0076】
本開示によれば、組成物の投与計画は、急速注入剤の投与、時間をかけて複数回に分割した投与、または治療状況の重症度および緊急性に応じて増減可能な投与であってもよい。特定の実施形態において、治療計画は、週に１回、２週に１回、３週に１回、４週に１回、月に１回、３ヶ月に１回、または３～６ヶ月に１回管理されてもよい。特定の実施形態において、投薬計画が静脈内投与を含み、投与量が、０．１×１０８～３×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞、例えば、０．１５×１０８～２×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞、０．５×１０８～２×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞、１×１０８～２×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞、０．２×１０８～２×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞、０．２×１０８～１×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞、０．２５×１０８～１×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞、０．２５×１０８～０．５×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞、または０．５×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞、または２×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞であってもよい。
【0077】
投与量は、適応症によって異なる場合がある。特定の実施形態において、再発および難治性急性リンパ芽球性白血病の成人患者の治療のための免疫エフェクター細胞は、０．２５×１０８～０．５×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞、または０．５×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の投与量で投与されてもよく、例えば、０．３×１０８～０．５×１０８、０．４×１０８～０．５×１０８、０．２５×１０８～０．４×１０８、０．３×１０８～０．４×１０８、または０．４×１０８～０．５×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の投与量で投与されてもよい。特定の実施形態において、再発および難治性急性リンパ芽球性白血病の成人患者の治療のための免疫エフェクター細胞は、０．２５×１０８、０．２６×１０８、０．２７×１０８、０．２８×１０８、０．２９×１０８、０．３×１０８、０．３１×１０８、０．３２×１０８、０．３３×１０８、０．３４×１０８、０．３５×１０８、０．３６×１０８、０．３７×１０８、０．３８×１０８、０．３９×１０８、０．４×１０８、０．４１×１０８、０．４２×１０８、０．４３×１０８、０．４４×１０８、０．４５×１０８、０．４６×１０８、０．４７×１０８、０．４８×１０８、０．４９×１０８、または０．５×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の投与量で投与されてもよい。
【0078】
特定の実施形態において、再発および難治性急性リンパ芽球性白血病の小児患者の治療のための免疫エフェクター細胞は、０．２５×１０８～０．５×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞、または０．５×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の投与量で投与されてもよく、例えば、０．３×１０８～０．５×１０８、０．４×１０８～０．５×１０８、０．２５×１０８～０．４×１０８、０．３×１０８～０．４×１０８、または０．４×１０８～０．５×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の投与量で投与されてもよい。いくつかの実施形態において、再発および難治性急性リンパ芽球性白血病の小児患者の治療のための免疫エフェクター細胞は、０．２５×１０８、０．２６×１０８、０．２７×１０８、０．２８×１０８、０．２９×１０８、０．３×１０８、０．３１×１０８、０．３２×１０８、０．３３×１０８、０．３４×１０８、０．３５×１０８、０．３６×１０８、０．３７×１０８、０．３８×１０８、０．３９×１０８、０．４×１０８、０．４１×１０８、０．４２×１０８、０．４３×１０８、０．４４×１０８、０．４５×１０８、０．４６×１０８、０．４７×１０８、０．４８×１０８、０．４９×１０８、または０．５×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の投与量で投与されてもよい。
【0079】
他の実施形態において、再発および難治性非ホジキンリンパ腫患者の治療のための免疫エフェクター細胞は、１×１０８～２×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞、または２×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の投与量で投与されてもよく、例えば、１×１０８～１．８×１０８、１×１０８～１．５×１０８、１×１０８～１．３×１０８、１．３×１０８～２×１０８、１．３×１０８～１．５×１０８、１．５×１０８～２×１０８、１．５×１０８～１．８×１０８、または１．８×１０８～２×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の投与量で投与されてもよい。他の実施形態において、再発および難治性ホジキンリンパ腫患者の治療のための免疫エフェクター細胞は、１×１０８、１．１×１０８、１．２×１０８、１．３×１０８、１．４×１０８、１．５×１０８、１．６×１０８、１．７×１０８、１．８×１０８、１．９×１０８または２．０×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の投与量で投与されてもよい。
【0080】
[調製方法および使用]
本開示の別の態様は、本明細書に記載のベクターを免疫エフェクター細胞に形質導入する工程を含む免疫エフェクター細胞を調製する方法をさらに提供する。
本開示の別の態様は、本明細書に記載のベクターを免疫エフェクター細胞に形質導入する工程を含む免疫エフェクター細胞を調製する方法をさらに提供する。
【0081】
特定の実施形態において、前記免疫エフェクター細胞は、Ｔリンパ球およびナチュラルキラー細胞からなる群から選択される。
【0082】
本開示の別の態様は、ＣＤ１９発現に関連する疾病または疾患の治療に有用な医薬の製造におけるキメラ抗原受容体、核酸分子、ベクターおよび／または免疫エフェクター細胞の使用をさらに提供する。前記医薬の投与量は、上記のような免疫エフェクター細胞について定義された用量を援用できる。
【0083】
本開示の別の態様は、さらに、本明細書に記載のキメラ抗原受容体、核酸分子、ベクターおよび／または免疫エフェクター細胞を、それを必要とする被験体に適用する工程を含むＣＤ１９発現に関連する疾病または疾患を治療する方法を提供する。本開示によれば、組成物の投与は様々な方法、例えば、静脈内、腫瘍内、腹腔内、皮下、筋肉内、局所または皮内投与によって行ってもよい。
【0084】
別の態様において、本明細書に記載のキメラ抗原受容体、核酸分子、ベクターおよび／または免疫エフェクター細胞は、ＣＤ１９発現に関連する疾病または疾患の治療に有用である。
【0085】
本開示によれば、前記医薬は、Ｔ細胞免疫療法剤を含んでもよい。
【0086】
本開示によれば、ＣＤ１９発現に関連する前記疾病または疾患は、非固形腫瘍を含んでもよい。
【0087】
本開示によれば、ＣＤ１９発現に関連する前記疾病または疾患は、白血病および／またはリンパ腫を含んでもよい。
【0088】
特定の実施態様において、ＣＤ１９発現に関連する前記疾病または疾患は、成人急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）および／または小児急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）などの急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）を含んでもよい。
【0089】
他の実施形態において、ＣＤ１９発現に関連する前記疾病または疾患は、成人慢性リンパ性白血病（ＣＬＬ）を含んでもよい。他の実施形態において、ＣＤ１９発現に関連する前記疾病または疾患は、Ｂ細胞リンパ腫を含んでもよい。例えば、Ｂ細胞リンパ腫は、非ホジキンリンパ腫を含んでもよい。
【0090】
本開示によれば、前記被験者は、ヒトまたは非ヒト動物を含んでもよい。例えば、前記被験者は、特に限定されないが、ネコ、イヌ、ウマ、ブタ、ウシ、ヒツジ、ウサギ、マウス、ラット、またはサルを含んでもよい。
【0091】
いかなる理論にも束縛されることを望まないが、以下の実施例は本開示のキメラ抗原受容体、免疫エフェクター細胞、調製方法、および使用を例示しているに過ぎず、発明の範囲を限定するために使用されない。前記実施例は、ベクターおよびプラスミドを構築する方法、タンパク質をコードする遺伝子をこのようなベクターおよびプラスミドに挿入する方法、またはプラスミドを宿主細胞に導入する方法などの伝統的な方法の詳細な説明を含まない。このような方法は当業者に周知であり、Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｊ．，Ｆｒｉｔｓｃｈ，Ｅ．Ｆ． ａｎｄ Ｍａｎｉａｉｓ，Ｔ．（１９８９） Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｃｏｌｄ ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓを含む多くの刊行物に記載されている。
【0092】
本開示において引用される全ての特許、出願、および参考文献は、それぞれの文献が個々に参照のために組み込まれる程度まで、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。参照のために組み込まれるいずれかの資料が本明細書と矛盾するか、または一貫性がない場合、明細書は、そのような資料のいずにも優先する。
【0093】
［実施例］
［実施例１］レンチウイルスベクターの構築
本開示に記載のＣＡＲ構造を含む断片（そのアミノ酸配列およびヌクレオチド配列をそれぞれ配列番号１および配列番号２に示す）を人工的に合成し、レンチウイルスベクター（製造元：ＳＢＩ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、カタログ番号：ＣＤ５００－ＣＤ８００）に構築した。得られた発現ベクターを、発現ベクターＣＮＣＴ１９と命名し、説明書に記載された方法に従ってトランスフェクトしてレンチウイルスを得た。ウイルスのトランスフェクション力価をフローサイトメトリーで測定し、官能基レンチウイルスベクターが得られたことを確認した。
［実施例１］レンチウイルスベクターの構築
本開示に記載のＣＡＲ構造を含む断片（そのアミノ酸配列およびヌクレオチド配列をそれぞれ配列番号１および配列番号２に示す）を人工的に合成し、レンチウイルスベクター（製造元：ＳＢＩ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、カタログ番号：ＣＤ５００－ＣＤ８００）に構築した。得られた発現ベクターを、発現ベクターＣＮＣＴ１９と命名し、説明書に記載された方法に従ってトランスフェクトしてレンチウイルスを得た。ウイルスのトランスフェクション力価をフローサイトメトリーで測定し、官能基レンチウイルスベクターが得られたことを確認した。
【0094】
［実施例２］レンチウイルスベクターに感染したＴ細胞の調製
感染実験を当業者に公知の従来の方法に従って行った。感染ステップを以下に簡単に説明する。
感染実験を当業者に公知の従来の方法に従って行った。感染ステップを以下に簡単に説明する。
【0095】
１．Ｔ細胞の選別
被験者のアフェレーシス細胞から末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を単離し、次にＰＢＭＣ細胞からＴ細胞を選別した。
被験者のアフェレーシス細胞から末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を単離し、次にＰＢＭＣ細胞からＴ細胞を選別した。
【0096】
２．Ｔ細胞の活性化
単離されたＴ細胞を、完全リンパ球培養培地（Ｘｖｉｖｏ１５培地＋５％ＦＢＳ＋１００ＩＵ／ｍＬのＩＬ－２またはＸｖｉｖｏ１５培地＋５％ＦＢＳ＋２０ｎｇ／ｍＬのＩＬ－２１＋１０ｎｇ／ｍＬのＩＬ－７）と（１～２）×１０６細胞／ｍＬの最終濃度となるように再懸濁し、５～１０μＬのＣＤ３／ＣＤ２８刺激磁気ビーズを添加した。混合物をよく混合し、３７℃＋５％ＣＯ２の培養条件下で少なくとも２４時間培養用インキュベーターに入れた。
単離されたＴ細胞を、完全リンパ球培養培地（Ｘｖｉｖｏ１５培地＋５％ＦＢＳ＋１００ＩＵ／ｍＬのＩＬ－２またはＸｖｉｖｏ１５培地＋５％ＦＢＳ＋２０ｎｇ／ｍＬのＩＬ－２１＋１０ｎｇ／ｍＬのＩＬ－７）と（１～２）×１０６細胞／ｍＬの最終濃度となるように再懸濁し、５～１０μＬのＣＤ３／ＣＤ２８刺激磁気ビーズを添加した。混合物をよく混合し、３７℃＋５％ＣＯ２の培養条件下で少なくとも２４時間培養用インキュベーターに入れた。
【0097】
３．Ｔ細胞のレンチウイルス感染
活性化した培養Ｔ細胞を取り出し、最終濃度８μｇ／ｍＬのポリブレンを加え、よく混合した。レンチウイルスベクターをＭＯＩ＝２でゆっくり添加した。十分に混合した後、混合物を遠心分離機に入れ、１５００ｒｐｍで１．５時間遠心分離した。その後、３７℃＋５％ＣＯ２の培養条件下、少なくとも２４時間培養用インキュベーターに入れた。
活性化した培養Ｔ細胞を取り出し、最終濃度８μｇ／ｍＬのポリブレンを加え、よく混合した。レンチウイルスベクターをＭＯＩ＝２でゆっくり添加した。十分に混合した後、混合物を遠心分離機に入れ、１５００ｒｐｍで１．５時間遠心分離した。その後、３７℃＋５％ＣＯ２の培養条件下、少なくとも２４時間培養用インキュベーターに入れた。
【0098】
４．感染Ｔ細胞の拡大培養
感染細胞を取り出し、細胞密度をモニターし、それを（０．５～１）×１０６細胞／ｍＬに保ち、その後の実施例で使用した。得られた感染Ｔ細胞をＣＮＣＴ１９細胞（すなわち、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞）と命名した。
感染細胞を取り出し、細胞密度をモニターし、それを（０．５～１）×１０６細胞／ｍＬに保ち、その後の実施例で使用した。得られた感染Ｔ細胞をＣＮＣＴ１９細胞（すなわち、本明細書に記載の免疫エフェクター細胞）と命名した。
【0099】
［実施例３］ＣＮＣＴ１９細胞の表面上のＣＡＲ分子の発現の検出
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
（１）ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液を３００ｇで５分間遠心分離し、上清を廃棄し、シース液を添加して、生細胞密度が（０．５～１）×１０７細胞／ｍＬに達するまで再懸濁した。
（２）２本のフローサイトメトリーチューブでそれぞれの試料について採取し、チューブ１およびチューブ２と標識した。チューブ１はブランクコントロールであり、抗体を添加する必要はなく、チューブ２には１０μＬのＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標） ６４７－ヤギ抗マウスＩｇＧ Ｆ（ａｂ’）２抗体（製造元：Ｊａｃｋｓｏｎ、カタログ番号：１１５－６０５－０７２）を１０倍希釈して添加した。
（３）各チューブに１００μＬの細胞懸濁液を加え、暗所、室温で１５～２０分間反応させた。
（４）各チューブに２ｍＬの洗浄用シース液を加え、３００ｇで５分間遠心分離した。
（５）上清を廃棄し、２０μＬのＦＩＴＣ－ＣＤ３（製造元：Ｔｏｎｇｓｈｅｎｇ Ｓｈｉｄａｉ、カタログ番号：Ｚ６４１００４７－１００Ｔ）をチューブ２に添加し、暗所、室温で１５～２０分間インキュベートした。
（６）各チューブに２ｍＬの洗浄用シース液を加え、３００ｇで５分間遠心分離し、上清を廃棄し、洗浄用に各チューブに更に２ｍＬのシース液を加え、３００ｇで５分間遠心分離した。
（７）上清を廃棄し、各チューブに３００μＬのシース液を加えて再懸濁した後、フローサイトメトリーにより検出を行った。
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
（１）ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液を３００ｇで５分間遠心分離し、上清を廃棄し、シース液を添加して、生細胞密度が（０．５～１）×１０７細胞／ｍＬに達するまで再懸濁した。
（２）２本のフローサイトメトリーチューブでそれぞれの試料について採取し、チューブ１およびチューブ２と標識した。チューブ１はブランクコントロールであり、抗体を添加する必要はなく、チューブ２には１０μＬのＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標） ６４７－ヤギ抗マウスＩｇＧ Ｆ（ａｂ’）２抗体（製造元：Ｊａｃｋｓｏｎ、カタログ番号：１１５－６０５－０７２）を１０倍希釈して添加した。
（３）各チューブに１００μＬの細胞懸濁液を加え、暗所、室温で１５～２０分間反応させた。
（４）各チューブに２ｍＬの洗浄用シース液を加え、３００ｇで５分間遠心分離した。
（５）上清を廃棄し、２０μＬのＦＩＴＣ－ＣＤ３（製造元：Ｔｏｎｇｓｈｅｎｇ Ｓｈｉｄａｉ、カタログ番号：Ｚ６４１００４７－１００Ｔ）をチューブ２に添加し、暗所、室温で１５～２０分間インキュベートした。
（６）各チューブに２ｍＬの洗浄用シース液を加え、３００ｇで５分間遠心分離し、上清を廃棄し、洗浄用に各チューブに更に２ｍＬのシース液を加え、３００ｇで５分間遠心分離した。
（７）上清を廃棄し、各チューブに３００μＬのシース液を加えて再懸濁した後、フローサイトメトリーにより検出を行った。
【0100】
その結果を図１Ａおよび図１Ｂに示す。図面から分かるように、図１Ａはブランクコントロールのチューブを表し、その右上のＣＤ３＋ＣＡＲ＋象限は、細胞集団を示さない。図１Ｂは実験的検出チューブを表す。ＣＡＲＴ細胞をＩｇＧ Ｆ（ａｂ’）２およびＣＤ３抗体で標識したところ、ＣＤ３＋ＣＡＲ＋象限において、６８．６％のＣＡＲ発現率をフローサイトメトリーにより明確に検出することができた。この結果から、本開示のＣＡＲ分子がＣＮＣＴ１９細胞の表面上で良好に発現されることが分かる。
【0101】
［実施例４］ｉｎ ｖｉｔｒｏでの標的細胞に対するＣＮＣＴ１９細胞の殺傷効果の検出
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）ＣＤ１９陽性ヒト白血病細胞株Ｎａｌｍ－６（Ｓｈａｎｇｈａｉ Ｅｎｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．から購入、カタログ番号：ＣＨ１７９）およびＣＤ１９陰性ヒト白血病細胞株ＫＧ－１ａ（Ｓｈａｎｇｈａｉ Ｅｎｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．から購入、カタログ番号：ＣＣ－Ｙ１３０５）をそれぞれ腫瘍細胞（すなわち標的細胞）として選択し、ＣＤ１９ＣＡＲ－Ｔ細胞（すなわち実施例２で得られたＣＮＣＴ１９細胞）および非トランスフェクトＴ細胞（ＮＴＤで示す）をそれぞれエフェクター細胞として選択した。
２）前記標的細胞およびエフェクター細胞を、それぞれ１：２および２：１のエフェクター／標的比で混合し、２４ウェルプレートに播種した。各ウェルで共培養した細胞の総数は約１×１０６／ウェルとし、各条件について３つの並行ウェルを設定した。各ウェルに培養液を１ｍＬ補充し、プレートを３７℃、５％ＣＯ２のインキュベーターに入れて培養し、時間を記録した。
３）共培養の２４時間後、各ウェル中の細胞懸濁液を回収し、１．５ｍＬのＥＰチューブに移し、それぞれ標識した。さらに、遠心分離後、各サンプルチューブからの上清を新たな１．５ｍＬのＥＰチューブに吸引し、その後のサイトカイン検出のために－２０℃で凍結保存した（詳細については実施例６を参照のこと）。
４）腫瘍細胞の種類に応じて、対応する検出量の抗体を各ウェルの混合細胞にそれぞれ添加して標識し、抗体説明書に従って操作を行った。ＰＥ－ＣＤ１０抗体を用いてＮａｌｍ－６細胞を標識し、Ｐｅｒｃｐ－ｃｙ５．５－ＣＤ４５抗体を用いてＫＧ－１ａ細胞を標識した。
５）フローサイトメトリーを用いて、各サンプル中の異なる標的腫瘍細胞の割合の変化を検出した。
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）ＣＤ１９陽性ヒト白血病細胞株Ｎａｌｍ－６（Ｓｈａｎｇｈａｉ Ｅｎｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．から購入、カタログ番号：ＣＨ１７９）およびＣＤ１９陰性ヒト白血病細胞株ＫＧ－１ａ（Ｓｈａｎｇｈａｉ Ｅｎｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．から購入、カタログ番号：ＣＣ－Ｙ１３０５）をそれぞれ腫瘍細胞（すなわち標的細胞）として選択し、ＣＤ１９ＣＡＲ－Ｔ細胞（すなわち実施例２で得られたＣＮＣＴ１９細胞）および非トランスフェクトＴ細胞（ＮＴＤで示す）をそれぞれエフェクター細胞として選択した。
２）前記標的細胞およびエフェクター細胞を、それぞれ１：２および２：１のエフェクター／標的比で混合し、２４ウェルプレートに播種した。各ウェルで共培養した細胞の総数は約１×１０６／ウェルとし、各条件について３つの並行ウェルを設定した。各ウェルに培養液を１ｍＬ補充し、プレートを３７℃、５％ＣＯ２のインキュベーターに入れて培養し、時間を記録した。
３）共培養の２４時間後、各ウェル中の細胞懸濁液を回収し、１．５ｍＬのＥＰチューブに移し、それぞれ標識した。さらに、遠心分離後、各サンプルチューブからの上清を新たな１．５ｍＬのＥＰチューブに吸引し、その後のサイトカイン検出のために－２０℃で凍結保存した（詳細については実施例６を参照のこと）。
４）腫瘍細胞の種類に応じて、対応する検出量の抗体を各ウェルの混合細胞にそれぞれ添加して標識し、抗体説明書に従って操作を行った。ＰＥ－ＣＤ１０抗体を用いてＮａｌｍ－６細胞を標識し、Ｐｅｒｃｐ－ｃｙ５．５－ＣＤ４５抗体を用いてＫＧ－１ａ細胞を標識した。
５）フローサイトメトリーを用いて、各サンプル中の異なる標的腫瘍細胞の割合の変化を検出した。
【0102】
その結果を図２に示す。図面から分かるように、非トランスフェクトＴ細胞（すなわちＮＴＤ）との共培養と比較して、ＣＤ１９陽性腫瘍細胞Ｎａｌｍ－６とＣＡＲ－Ｔ細胞（すなわちＣＮＣＴ１９細胞）との共培養は、Ｎａｌｍ－６の残存率を有意に低下させたが、ＣＤ１９陰性腫瘍細胞ＫＧ－１ａを種々のエフェクター細胞と共培養した後のＫＧ－１ａの残存率に有意差はなかった。具体的には、エフェクター／標的比が１：２の場合、ＣＮＣＴ１９細胞とＮａｌｍ－６細胞との共インキュベーションは（２．８±１．３）％の標的細胞の残存率を導き、これは、非トランスフェクトＴ細胞とＮａｌｍ－６細胞との共インキュベーションに起因する標的細胞の残存率（（１２．１±１．２）％（Ｐ＜０．０１））よりも有意に低かった。同様に、エフェクター／標的比が２：１である場合、ＣＮＣＴ１９細胞とＮａｌｍ－６細胞との共インキュベーションは（１．１±０．１）％の標的細胞の残存率を導き、これは、非トランスフェクトＴ細胞とＮａｌｍ－６細胞との共インキュベーションに起因する標的細胞の残存率（（７．３±１．２）％（Ｐ＜０．０１））よりも有意に低かった。また、ＣＤ１９陽性腫瘍細胞に対するＣＮＣＴ１９細胞の殺傷効果は、エフェクター／標的比の増加に伴って増強した。
【0103】
［実施例５］ＣＮＣＴ１９細胞の死滅機能のリアルタイムモニタリング
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
（１）標的細胞ＣＨＯ－ＣＤ１９を取り出し、培養フラスコ内の培養液を吸引廃棄し、培養フラスコを生理食塩液で１回洗浄し、ＥＤＴＡを含むトリプシン液１ｍＬを加え、３７℃のインキュベーター内で２～６分間インキュベートした後、消化を停止した。なお、ＣＨＯ細胞は、Ｓｈａｎｇｈａｉ Ｅｎｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．よりＣＣ－Ｙ２１１０のカタログ番号のものを購入した。ＣＤ１９細胞の分子配列はＮＣＢＩ由来であり、ＣＤ１９の分子配列は分子生物学的手法によりＣＨＯ細胞に構築し、スクリーニングにより標的細胞ＣＨＯ－ＣＤ１９細胞株を得た。
（２）培養フラスコに適量の培養培地を加えて細胞懸濁液から標的細胞を作成し、ピペッティングにより細胞を均一化した。細胞懸濁液の濃度を計数板で計数した後、前記細胞懸濁液を、実験に必要とされる１×１０５細胞／ｍＬの細胞濃度にした。
（３）５０μＬの培養培地を、ＲＴＣＡ ＤＰシステムのＥプレート１６のウェルに添加した。Ｅプレート１６をＲＴＣＡステーション上に置いた。前記ＲＴＣＡシステムは、自動的にスキャン（「スキャンプレート」）して、接触が良好であったかどうかをチェックする（「接続ＯＫ」が「メッセージ」ページに表示された）。ベースライン（バックグラウンド）の検出を開始し、選択したウェルが正常に接触していることを確認した。
（４）Ｅプレート１６を取り出し、１００μＬの十分に混合された標的細胞懸濁液をウェルに１×１０４細胞／ウェルで添加した。Ｅプレート１６を、室温で３０分間、スーパークリーンベンチに置き、次いで、インキュベーター中のＲＴＣＡステーション上に置いた。前記システムが自動的にスキャン（「スキャンプレート」）した後、ステップ２を開始して、細胞増殖曲線をリアルタイムで動的に検出した。
（５）Ｅプレート１６を取り出し、前記標的細胞懸濁液およびＣＮＣＴ１９細胞懸濁液をいくつかのウェルに添加し、前記標的細胞懸濁液および非トランスフェクトＴ細胞（すなわち、ＮＴＤ）懸濁液を（コントロールとして）他のウェルに添加した。エフェクター／標的比（すなわち、標的細胞に対するエフェクター細胞の比、すなわち、ＣＮＣＴ１９細胞：標的細胞、およびＮＴＤ：標的細胞）は１：１であり、標的細胞懸濁液の体積は５０μＬとした。Ｅプレート１６検出プレートをＲＴＣＡ ＤＰ検出プラットフォーム上に６０時間リアルタイムモニタリングのために置き、標的細胞に対するＣＮＣＴ１９細胞の効果を観察した。
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
（１）標的細胞ＣＨＯ－ＣＤ１９を取り出し、培養フラスコ内の培養液を吸引廃棄し、培養フラスコを生理食塩液で１回洗浄し、ＥＤＴＡを含むトリプシン液１ｍＬを加え、３７℃のインキュベーター内で２～６分間インキュベートした後、消化を停止した。なお、ＣＨＯ細胞は、Ｓｈａｎｇｈａｉ Ｅｎｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．よりＣＣ－Ｙ２１１０のカタログ番号のものを購入した。ＣＤ１９細胞の分子配列はＮＣＢＩ由来であり、ＣＤ１９の分子配列は分子生物学的手法によりＣＨＯ細胞に構築し、スクリーニングにより標的細胞ＣＨＯ－ＣＤ１９細胞株を得た。
（２）培養フラスコに適量の培養培地を加えて細胞懸濁液から標的細胞を作成し、ピペッティングにより細胞を均一化した。細胞懸濁液の濃度を計数板で計数した後、前記細胞懸濁液を、実験に必要とされる１×１０５細胞／ｍＬの細胞濃度にした。
（３）５０μＬの培養培地を、ＲＴＣＡ ＤＰシステムのＥプレート１６のウェルに添加した。Ｅプレート１６をＲＴＣＡステーション上に置いた。前記ＲＴＣＡシステムは、自動的にスキャン（「スキャンプレート」）して、接触が良好であったかどうかをチェックする（「接続ＯＫ」が「メッセージ」ページに表示された）。ベースライン（バックグラウンド）の検出を開始し、選択したウェルが正常に接触していることを確認した。
（４）Ｅプレート１６を取り出し、１００μＬの十分に混合された標的細胞懸濁液をウェルに１×１０４細胞／ウェルで添加した。Ｅプレート１６を、室温で３０分間、スーパークリーンベンチに置き、次いで、インキュベーター中のＲＴＣＡステーション上に置いた。前記システムが自動的にスキャン（「スキャンプレート」）した後、ステップ２を開始して、細胞増殖曲線をリアルタイムで動的に検出した。
（５）Ｅプレート１６を取り出し、前記標的細胞懸濁液およびＣＮＣＴ１９細胞懸濁液をいくつかのウェルに添加し、前記標的細胞懸濁液および非トランスフェクトＴ細胞（すなわち、ＮＴＤ）懸濁液を（コントロールとして）他のウェルに添加した。エフェクター／標的比（すなわち、標的細胞に対するエフェクター細胞の比、すなわち、ＣＮＣＴ１９細胞：標的細胞、およびＮＴＤ：標的細胞）は１：１であり、標的細胞懸濁液の体積は５０μＬとした。Ｅプレート１６検出プレートをＲＴＣＡ ＤＰ検出プラットフォーム上に６０時間リアルタイムモニタリングのために置き、標的細胞に対するＣＮＣＴ１９細胞の効果を観察した。
【0104】
結果を図３に示す。図中、線１はＮＴＤコントロール群の曲線を表し、線２はＣＮＣＴ１９治療群の曲線を表す。線１と線２を比較することにより、腫瘍細胞（すなわち、標的細胞）の増殖が時間とともにＣＮＣＴ１９細胞によって阻害されたことが分かる。具体的には、非トランスフェクトＴ細胞との共インキュベーション後の前記標的細胞は増殖傾向に有意な変化を示さなかった（線１）。一方、ＣＮＣＴ１９細胞との共インキュベーション後の標的細胞は増殖減少傾向を有意に示し、それらの数の減少さえ示し始めた（線２）。このことから、ＣＮＣＴ１９が標的細胞に対して強力な殺傷能力を有することが分かる。
【0105】
［実施例６］ＣＮＣＴ１９細胞と標的細胞との共培養後の分泌サイトカインの検出
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）実施例４の各ウェルにおける混合培養物からの上清サンプル（すなわち、ステップ３で得られたサンプル）を－２０℃の冷蔵庫から取り出し、室温で溶融した。
２）ＬＥＧＥＮＤｐｌｅｘ（商標）キット（製造業者：Ｂｉｏｌｅｇｎｅｄ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．、カタログ番号：７４００１３）を使用して、説明書に従って各サンプルを処理した。
３）各サンプル中の異なるサイトカインのレベルを、フローサイトメトリーによって検出した。
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）実施例４の各ウェルにおける混合培養物からの上清サンプル（すなわち、ステップ３で得られたサンプル）を－２０℃の冷蔵庫から取り出し、室温で溶融した。
２）ＬＥＧＥＮＤｐｌｅｘ（商標）キット（製造業者：Ｂｉｏｌｅｇｎｅｄ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．、カタログ番号：７４００１３）を使用して、説明書に従って各サンプルを処理した。
３）各サンプル中の異なるサイトカインのレベルを、フローサイトメトリーによって検出した。
【0106】
その結果を図４Ａおよび４Ｂに示す。非トランスフェクトＴ細胞（すなわちＮＴＤ）と比較して、ＣＡＲ－Ｔ細胞（すなわちＣＮＣＴ１９細胞）とＮａｌｍ－６細胞（ＣＤ１９＋）との共培養は、ＣＡＲ－Ｔ細胞によるサイトカインＩＦＮ－γおよびＩＬ－６の分泌を有意に増加させた。具体的には、エフェクター／標的比２：１で標的細胞と２４時間共培養した後のＣＮＣＴ１９細胞は標的細胞によって刺激されて（６１８６．３７±８６１．１３）ｐｇ／ｍＬの量のＩＮＦ‐γを分泌したが、これは非トランスフェクトＴ細胞によって分泌されたＩＮＦ‐γの量（２０９６．８５±２２８．１６ｐｇ／ｍＬ、Ｐ＜０．０５）よりも有意に高く、ＣＮＣＴ１９細胞によって分泌されたＩＬ‐６の量（３２．２２±１．４６ｐｇ／ｍＬ）は非トランスフェクトＴ細胞によって分泌された量（１２．２３±４．３７ｐｇ／ｍＬ、Ｐ＜０．０５）よりも有意に高かった。
【0107】
［実施例７］ＣＮＣＴ１９細胞の溶血および刺激の検出
７．１．ＣＮＣＴ１９細胞のｉｎ ｖｉｔｒｏ溶血試験
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）合計７本のガラス試験管を使用し、１～７の番号を付け、各試験管に２．５ｍＬの２％のウサギ赤血球懸濁液（ニュージーランドウサギから採取し、品質承認番号：１１４００５０００３２４２５として国家食品医薬品監督管理局によって製造された）を添加した。
２）異なる用量（０．５～０．１ｍＬ）のＣＮＣＴ１９細胞を、１×１０７細胞／ｍＬ（Ｔ細胞の総数に基づく）の濃度で、すでに異なるの用量（２．０～２．４ｍＬ）の塩化ナトリウム注射薬を含む試験管１～５に添加した。一方、２．５ｍＬの塩化ナトリウム注射薬（ネガティブコントロール）および２．５ｍＬの注射用滅菌水（ポジティブコントロール）を、それぞれ試験管６および試験管７に加えた。
３）各試験管の総容積は５．０ｍＬであった。試験管を３７℃±０．５℃のインキュベーターに入れ、３時間インキュベートした。試験管をインキュベーターに入れてから１５分後、３０分後、４５分後、１時間後、２時間後および３時間後に赤血球が溶解または凝集したかどうかについて観察した。
７．１．ＣＮＣＴ１９細胞のｉｎ ｖｉｔｒｏ溶血試験
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）合計７本のガラス試験管を使用し、１～７の番号を付け、各試験管に２．５ｍＬの２％のウサギ赤血球懸濁液（ニュージーランドウサギから採取し、品質承認番号：１１４００５０００３２４２５として国家食品医薬品監督管理局によって製造された）を添加した。
２）異なる用量（０．５～０．１ｍＬ）のＣＮＣＴ１９細胞を、１×１０７細胞／ｍＬ（Ｔ細胞の総数に基づく）の濃度で、すでに異なるの用量（２．０～２．４ｍＬ）の塩化ナトリウム注射薬を含む試験管１～５に添加した。一方、２．５ｍＬの塩化ナトリウム注射薬（ネガティブコントロール）および２．５ｍＬの注射用滅菌水（ポジティブコントロール）を、それぞれ試験管６および試験管７に加えた。
３）各試験管の総容積は５．０ｍＬであった。試験管を３７℃±０．５℃のインキュベーターに入れ、３時間インキュベートした。試験管をインキュベーターに入れてから１５分後、３０分後、４５分後、１時間後、２時間後および３時間後に赤血球が溶解または凝集したかどうかについて観察した。
【0108】
その結果を図５Ａおよび図５Ｂに示す。図５Ａは３時間振盪する前の各試験管の観察結果を示し、図５Ｂは３時間振盪した後の各試験管の観察結果を示す。ネガティブコントロール管（Ｎｏ．６）では、上澄み液が無色透明であり、試験管の底部に赤血球が沈み、振盪後、均一に分散し、溶血も凝集もないと判断された。ポジティブコントロール管（Ｎｏ．７）では、溶液は透明で赤色であり、分離層はなく、試験管の底部に赤血球残留物はなく、完全な溶血があったと判断された。異なる投与量のＣＮＣＴ１９細胞を添加した各試験管を３時間観察すると、各試験管中の上澄み液は無色透明であり、赤血球は試験管の底に沈み、振盪後、均一に分散し、溶血も凝集もなかったと判断された。
【0109】
７．２．ＣＮＣＴ１９細胞の静脈内注入による血管刺激性試験
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）検疫検査に合格し注射部位に異常がなかったニュージーランドウサギ６匹（雄３匹、雌３匹）を選抜した。自己コントロール法を使用し、凍結保存したＣＡＲ－Ｔ細胞（すなわち、ＣＮＣＴ１９細胞）およびネガティブコントロール（塩化ナトリウム注射）を、それぞれ、各動物の右耳および左耳に静脈内注入した。
２）右耳辺縁静脈から注入したＣＡＲ－Ｔ細胞は１×１０７細胞／ｍＬであり、１×１０７細胞／ｋｇ（Ｔ細胞の総数に基づく）の投与量であった。左耳辺縁静脈から感染させた塩化ナトリウム注射薬を、ネガティブコントロールとして用いた。静脈内投与量は、左右耳縁静脈ともに１ｍＬ／ｋｇとした。
３）静脈内投与後、一般観察、注射部位の観察、動物の病理学的検査を行った。
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）検疫検査に合格し注射部位に異常がなかったニュージーランドウサギ６匹（雄３匹、雌３匹）を選抜した。自己コントロール法を使用し、凍結保存したＣＡＲ－Ｔ細胞（すなわち、ＣＮＣＴ１９細胞）およびネガティブコントロール（塩化ナトリウム注射）を、それぞれ、各動物の右耳および左耳に静脈内注入した。
２）右耳辺縁静脈から注入したＣＡＲ－Ｔ細胞は１×１０７細胞／ｍＬであり、１×１０７細胞／ｋｇ（Ｔ細胞の総数に基づく）の投与量であった。左耳辺縁静脈から感染させた塩化ナトリウム注射薬を、ネガティブコントロールとして用いた。静脈内投与量は、左右耳縁静脈ともに１ｍＬ／ｋｇとした。
３）静脈内投与後、一般観察、注射部位の観察、動物の病理学的検査を行った。
【0110】
その結果を図６Ａおよび図６Ｂに示す。図６ＡはＣＡＲ－Ｔ細胞投与後の注射部位の顕微鏡写真（ＨＥ染色、１０×対物レンズ）、図６Ｂは塩化ナトリウム注射後の注射部位の顕微鏡写真（ＨＥ染色、１０×対物レンズ）である。凍結保存したＣＡＲ－Ｔ細胞を静脈内注入したところ、ネガティブコントロール側と比較して、動物の全身または局所の症状および病理学的異常は認められなかったことが分かる。
【0111】
［実施例８］ＣＮＣＴ１９細胞のｉｎ ｖｉｔｒｏにおける発がん性の実験
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）２人のドナーからのＣＡＲ－Ｔ細胞（すなわち、ＣＮＣＴ１９細胞）を、それぞれ軟寒天培地中でインキュベートした。２人のドナーは、それぞれドナー１（健康なヒトドナーＴ細胞、ロット番号：ＴＣ２０１８０６１３０１５）およびドナー２（健康なヒトドナーＴ細胞、ロット番号：ＴＣ２０１８０６１３０１６）であった。また、ネガティブコントロールとしてヒト胚性肺線維芽細胞株ＭＲＣ－５を、ポジティブコントロールとしてヒト子宮頸がん細胞株Ｈｅｌａを設定した。
２）６ウェル培養プレートを実験に使用した。各ウェル中の細胞数は約１×１０３であり、各群について３つの並行ウェルを設定した。培養プレートをＣＯ２インキュベーターに入れ、３週間観察した。
３）培養プレートを１週間毎に取り出し、クローンの形成の有無を顕微鏡で観察し、写真を撮った。実験は、ポジティブコントロール群において明らかなクローンが形成されるまで停止した。
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）２人のドナーからのＣＡＲ－Ｔ細胞（すなわち、ＣＮＣＴ１９細胞）を、それぞれ軟寒天培地中でインキュベートした。２人のドナーは、それぞれドナー１（健康なヒトドナーＴ細胞、ロット番号：ＴＣ２０１８０６１３０１５）およびドナー２（健康なヒトドナーＴ細胞、ロット番号：ＴＣ２０１８０６１３０１６）であった。また、ネガティブコントロールとしてヒト胚性肺線維芽細胞株ＭＲＣ－５を、ポジティブコントロールとしてヒト子宮頸がん細胞株Ｈｅｌａを設定した。
２）６ウェル培養プレートを実験に使用した。各ウェル中の細胞数は約１×１０３であり、各群について３つの並行ウェルを設定した。培養プレートをＣＯ２インキュベーターに入れ、３週間観察した。
３）培養プレートを１週間毎に取り出し、クローンの形成の有無を顕微鏡で観察し、写真を撮った。実験は、ポジティブコントロール群において明らかなクローンが形成されるまで停止した。
【0112】
その結果を図７に示す。ポジティブコントロール細胞（Ｈｅｌａ）は培地中でクローンを形成し、クローンの大きさは時間と共に有意に増加したことが分かる。観察２３日目において、異なるドナー由来のＣＡＲ－Ｔ細胞およびネガティブコントロール細胞（ＭＲＣ－５）はクローン性増殖を示さず、それらは全て死滅し、ｉｎ ｖｉｔｒｏでの不死化増殖を特徴としなかった。
【0113】
［実施例９］ＣＮＣＴ１９細胞のｉｎ ｖｉｖｏにおける腫瘍形成性の実験
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）ＢＡＬＢ／ｃヌードマウスに、２人のドナーからの凍結保存されたＣＡＲ－Ｔ細胞（すなわち、ＣＮＣＴ１９細胞）および対応する非トランスフェクトＴ細胞（すなわち、ＮＴＤ）をそれぞれ皮下接種した。２人のドナーは、ドナー２（健康なヒトドナーＴ細胞、ロット番号：ＴＣ２０１８０６１３０１６）およびドナー３（健康なヒトドナーＴ細胞、ロット番号：ＴＣ２０１８０８０８０１９）であった。
２）ＣＡＲ－Ｔ細胞の接種は、１×１０７細胞／マウス（Ｔ細胞の総数に基づく）で行った。ネガティブコントロール群にはマウスあたり１×１０７のヒト胚肺線維芽細胞系ＭＲＣ－５細胞を接種し、ポジティブコントロール群にはマウスあたり１×１０６のヒト子宮頸がん細胞系Ｈｅｌａ細胞を接種した。
３）体重の変化の有無、結節の発生の有無、結節が誘発されて腫瘍性結節となるか否かを検出するため、連続観察を１６週間実施した。その結果を陰性細胞群、陽性細胞群と比較した。
４）観察後、肉眼解剖を行った。各器官を秤量し、器官係数を計算した。接種部位および症状の疑いのある組織または器官を病理組織学的検査に供した。
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）ＢＡＬＢ／ｃヌードマウスに、２人のドナーからの凍結保存されたＣＡＲ－Ｔ細胞（すなわち、ＣＮＣＴ１９細胞）および対応する非トランスフェクトＴ細胞（すなわち、ＮＴＤ）をそれぞれ皮下接種した。２人のドナーは、ドナー２（健康なヒトドナーＴ細胞、ロット番号：ＴＣ２０１８０６１３０１６）およびドナー３（健康なヒトドナーＴ細胞、ロット番号：ＴＣ２０１８０８０８０１９）であった。
２）ＣＡＲ－Ｔ細胞の接種は、１×１０７細胞／マウス（Ｔ細胞の総数に基づく）で行った。ネガティブコントロール群にはマウスあたり１×１０７のヒト胚肺線維芽細胞系ＭＲＣ－５細胞を接種し、ポジティブコントロール群にはマウスあたり１×１０６のヒト子宮頸がん細胞系Ｈｅｌａ細胞を接種した。
３）体重の変化の有無、結節の発生の有無、結節が誘発されて腫瘍性結節となるか否かを検出するため、連続観察を１６週間実施した。その結果を陰性細胞群、陽性細胞群と比較した。
４）観察後、肉眼解剖を行った。各器官を秤量し、器官係数を計算した。接種部位および症状の疑いのある組織または器官を病理組織学的検査に供した。
【0114】
その結果は、ＣＡＲ－Ｔ細胞がｉｎ ｖｉｖｏで腫瘍形成性でないことを示す。ネガティブコントロール群（ＭＲＣ－５細胞を接種）では、接種後９日目までに全例の液体結節が消失した。ポジティブコントロール群（ＨｅＬａ細胞を接種）では、全例の皮下結節が緩徐に増加した。病理学的検査では、これらの結節は腫瘍組織の増殖に起因し、腫瘍形成率は１００％であった。要約すると、この実験は有効であった。ＣＡＲ－Ｔ細胞（ドナー２人に由来）と非トランスフェクトＴ細胞を接種したグループでは、接種後５日目にすべての液体結節が消滅し、１１４日目に安楽死が実施される前に再び結節は形成されなかった。病理学的検査では、接種部位や転移部位に腫瘍が形成されていないことが示された。
【0115】
［実施例１０］Ｎａｌｍ－６異種移植腫瘍ＮＣＧマウスにＣＮＣＴ１９細胞を単回静脈内注射した際の毒性試験
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）６～８週齢のＮＣＧマウス（その半分は雄）を使用した。投与の３日前に、Ｎａｌｍ－６細胞懸濁液を尾静脈に２．５×１０６細胞／ｍＬの濃度および１０ｍＬ／ｋｇの投与量で注射した。
２）スクリーニングした動物を、それらの体重に応じて４つの性別バランスのとれた群（すなわち、第２群～第５群）に無作為に分割した。第２群～第５群は溶媒コントロール群、Ｔ細胞コントロール群、ＣＡＲ－Ｔ細胞低用量群およびＣＡＲ－Ｔ細胞高用量群であり、各群４０動物（雄２０、雌２０）が設定された。非担がんコントロール群（すなわち、第１群）および溶媒コントロール群（すなわち、第２群）の両方に、溶媒コントロール（すなわち、４％（Ｗ／Ｖ）ヒトアルブミンを含む生理食塩水）を与えた。Ｔ細胞コントロール群（すなわち、第３群）には、非トランスフェクトＴ細胞（すなわち、ＮＴＤ）を１×１０９細胞／ｋｇ（Ｔ細胞の総数に基づく、以下同様）の投与量で与えた。ＣＡＲ－Ｔ細胞低用量群（第４群）に１×１０８細胞／ｋｇを接種し、ＣＡＲ－Ｔ細胞高用量群（第５群）に１×１０９細胞／ｋｇを接種した。
３）各動物に対する投与量は２５ｍＬ／ｋｇとし、投与は単回静脈内注射で行い、投与速度は約１ｍＬ／分とした。
４）投与後、投与当日４時間観察を継続した。試験中、一般臨床観察は毎日朝１回、午後１回行った。詳細な臨床観察と体重および摂餌量の測定を週１回実施した。試験中、体温、臨床病理学的指標（血球数および血液生化学的指標）および免疫学的指標（Ｔリンパ球サブセット、サイトカインおよびＣ反応性蛋白質）が検出された。
５）第１群～第５群では、１０匹の動物／性別／群を２日目に安楽死させ、５匹の動物/性別／群を第１５日に安楽死させた。それらの器官を秤量し、肉眼的解剖学的観察を行った。第１群および第５群の動物の主な器官を病理組織学的検査に供した。
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）６～８週齢のＮＣＧマウス（その半分は雄）を使用した。投与の３日前に、Ｎａｌｍ－６細胞懸濁液を尾静脈に２．５×１０６細胞／ｍＬの濃度および１０ｍＬ／ｋｇの投与量で注射した。
２）スクリーニングした動物を、それらの体重に応じて４つの性別バランスのとれた群（すなわち、第２群～第５群）に無作為に分割した。第２群～第５群は溶媒コントロール群、Ｔ細胞コントロール群、ＣＡＲ－Ｔ細胞低用量群およびＣＡＲ－Ｔ細胞高用量群であり、各群４０動物（雄２０、雌２０）が設定された。非担がんコントロール群（すなわち、第１群）および溶媒コントロール群（すなわち、第２群）の両方に、溶媒コントロール（すなわち、４％（Ｗ／Ｖ）ヒトアルブミンを含む生理食塩水）を与えた。Ｔ細胞コントロール群（すなわち、第３群）には、非トランスフェクトＴ細胞（すなわち、ＮＴＤ）を１×１０９細胞／ｋｇ（Ｔ細胞の総数に基づく、以下同様）の投与量で与えた。ＣＡＲ－Ｔ細胞低用量群（第４群）に１×１０８細胞／ｋｇを接種し、ＣＡＲ－Ｔ細胞高用量群（第５群）に１×１０９細胞／ｋｇを接種した。
３）各動物に対する投与量は２５ｍＬ／ｋｇとし、投与は単回静脈内注射で行い、投与速度は約１ｍＬ／分とした。
４）投与後、投与当日４時間観察を継続した。試験中、一般臨床観察は毎日朝１回、午後１回行った。詳細な臨床観察と体重および摂餌量の測定を週１回実施した。試験中、体温、臨床病理学的指標（血球数および血液生化学的指標）および免疫学的指標（Ｔリンパ球サブセット、サイトカインおよびＣ反応性蛋白質）が検出された。
５）第１群～第５群では、１０匹の動物／性別／群を２日目に安楽死させ、５匹の動物/性別／群を第１５日に安楽死させた。それらの器官を秤量し、肉眼的解剖学的観察を行った。第１群および第５群の動物の主な器官を病理組織学的検査に供した。
【0116】
この実験の結果は単回投与に対するＣＡＲ－Ｔ細胞（すなわち、ＣＮＣＴ１９細胞）の最高耐量が、１×１０９細胞／ｋｇより大きかったことを示す。試験中、ＣＡＲ－Ｔ細胞低用量群およびＣＡＲ－Ｔ細胞高用量群のいずれの動物も死亡または瀕死は認められなかった。一般状態、詳細な臨床所見ともに異常反応は認められなかった。体重、摂餌量、体温、Ｃ反応性蛋白、血液生化学的指標に明らかな異常変動は認められなかった。病理組織学的検査では、ＣＡＲ－Ｔ細胞低用量群およびＣＡＲ－Ｔ細胞高用量群において、Ｔ細胞コントロール群と比較して明らかな異常は認められなかった。
【0117】
［実施例１１］ＣＮＣＴ１９細胞による動物の治療
１１．１．Ｎａｌｍ－６異種移植腫瘍ＮＣＧマウスに対するＣＮＣＴ１９細胞の治療効果
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）６～８週齢の雌ＮＣＧマウスを用いた。投与３日前に、５×１０５のＮａｌｍ－６細胞を尾静脈に注射したが、Ｎａｌｍ－６細胞を２．５×１０６細胞／ｍＬの生理食塩水に溶解し、それぞれのマウスに２００μＬの細胞再懸濁を注射した。
２）それぞれの実験群に、対応するＣＡＲ－Ｔ細胞（すなわち、ＣＮＣＴ１９細胞）、非トランスフェクトＴ細胞（すなわち、ＮＴＤ）または細胞保存溶液（すなわち、４％（Ｗ／Ｖ）ヒトアルブミンを含む生理食塩水）を注射した。計５つの群を以下のように分けた：ＣＡＲ－Ｔ低用量群（Ｔ細胞の総数に基づいて５×１０６細胞／マウスでＣＮＣＴ１９細胞を注射、以下同様）、ＣＡＲ－Ｔ中用量群（１×１０７細胞／マウスでＣＮＣＴ１９細胞を注射）、ＣＡＲ－Ｔ高用量群（２×１０７細胞／マウスでＣＮＣＴ１９細胞を注射）、Ｔ細胞コントロール群（２×１０７細胞／マウスで非トランスフェクトＴ細胞を注射）、および溶媒コントロール群（２００μＬ／マウスで細胞保存溶液を注射）。マウスあたりの注射容量は２００μＬであった。
３）体重を測定し、一般状態を週２回観察した。マウスの生存を記録し、生存曲線をプロットした。
１１．１．Ｎａｌｍ－６異種移植腫瘍ＮＣＧマウスに対するＣＮＣＴ１９細胞の治療効果
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）６～８週齢の雌ＮＣＧマウスを用いた。投与３日前に、５×１０５のＮａｌｍ－６細胞を尾静脈に注射したが、Ｎａｌｍ－６細胞を２．５×１０６細胞／ｍＬの生理食塩水に溶解し、それぞれのマウスに２００μＬの細胞再懸濁を注射した。
２）それぞれの実験群に、対応するＣＡＲ－Ｔ細胞（すなわち、ＣＮＣＴ１９細胞）、非トランスフェクトＴ細胞（すなわち、ＮＴＤ）または細胞保存溶液（すなわち、４％（Ｗ／Ｖ）ヒトアルブミンを含む生理食塩水）を注射した。計５つの群を以下のように分けた：ＣＡＲ－Ｔ低用量群（Ｔ細胞の総数に基づいて５×１０６細胞／マウスでＣＮＣＴ１９細胞を注射、以下同様）、ＣＡＲ－Ｔ中用量群（１×１０７細胞／マウスでＣＮＣＴ１９細胞を注射）、ＣＡＲ－Ｔ高用量群（２×１０７細胞／マウスでＣＮＣＴ１９細胞を注射）、Ｔ細胞コントロール群（２×１０７細胞／マウスで非トランスフェクトＴ細胞を注射）、および溶媒コントロール群（２００μＬ／マウスで細胞保存溶液を注射）。マウスあたりの注射容量は２００μＬであった。
３）体重を測定し、一般状態を週２回観察した。マウスの生存を記録し、生存曲線をプロットした。
【0118】
その結果を図８に示す。図面から分かるように、いずれの投与量でもＣＮＣＴ１９細胞は生存期間の延長に有意な影響を及ぼし、これらの影響は明らかに投与量依存的である。具体的には、生理食塩液コントロール群の生存期間中央値は２４日、ＮＴＤコントロール群の生存期間中央値は２３日、ＣＮＣＴ１９低用量群の生存期間中央値は４０日であったのに対し、ＣＮＣＴ１９中用量群およびＣＮＣＴ１９高用量群の実験動物はいずれも観察期間終了時まで生存した。生理食塩液群およびＮＴＤコントロール群と比較して、ＣＮＣＴ１９の全用量群で白血病動物の生存期間を１６日以上延長することができる。
【0119】
１１．２．動物におけるＣＮＣＴ１９細胞の分布
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）６～８週齢のＮＣＧマウス（その半分は雄）を使用した。Ｎａｌｍ－６異種移植腫瘍モデルを、実施例１１．１の方法によって確立した。
２）担がん動物および非担がん動物の両方に、５×１０６細胞／マウス（Ｔ細胞の総数に基づく）の投与量でＣＡＲ－Ｔ細胞（すなわち、ＣＮＣＴ１９細胞）の単回尾静脈注射を行った。
３）担がん群の動物を、投与後２４時間（すなわち、Ｄ２）、７２時間（すなわち、Ｄ４）、１６８時間（すなわち、Ｄ８）、３３６時間（すなわち、Ｄ１５）、５０４時間（すなわち、Ｄ２２）、および６７２時間（すなわち、Ｄ２９）にそれぞれ計画通りに安楽死させた。非担がん群の動物を、投与後それぞれ２４時間（すなわち、Ｄ２）、１６８時間（すなわち、Ｄ８）、および３３６時間（すなわち、Ｄ１５）に計画通りに安楽死させた。動物全血（ＥＤＴＡ抗凝固療法）、脳、脊髄（頸部セグメント）、骨格筋、生殖腺（卵巣、精巣および精巣上体）、膀胱、胃、小腸、腸間膜リンパ節、骨髄、肝臓、腎臓、脾臓、心臓、肺およびその他の組織または体液の順に採取した。
４）血液および種々の組織サンプル中のキメラ抗原受容体（すなわち、ＣＡＲ）の含有量を、検証されたＱ－ＰＣＲ法を用いて判定した。
この実施例の実験ステップは以下の通りである：
１）６～８週齢のＮＣＧマウス（その半分は雄）を使用した。Ｎａｌｍ－６異種移植腫瘍モデルを、実施例１１．１の方法によって確立した。
２）担がん動物および非担がん動物の両方に、５×１０６細胞／マウス（Ｔ細胞の総数に基づく）の投与量でＣＡＲ－Ｔ細胞（すなわち、ＣＮＣＴ１９細胞）の単回尾静脈注射を行った。
３）担がん群の動物を、投与後２４時間（すなわち、Ｄ２）、７２時間（すなわち、Ｄ４）、１６８時間（すなわち、Ｄ８）、３３６時間（すなわち、Ｄ１５）、５０４時間（すなわち、Ｄ２２）、および６７２時間（すなわち、Ｄ２９）にそれぞれ計画通りに安楽死させた。非担がん群の動物を、投与後それぞれ２４時間（すなわち、Ｄ２）、１６８時間（すなわち、Ｄ８）、および３３６時間（すなわち、Ｄ１５）に計画通りに安楽死させた。動物全血（ＥＤＴＡ抗凝固療法）、脳、脊髄（頸部セグメント）、骨格筋、生殖腺（卵巣、精巣および精巣上体）、膀胱、胃、小腸、腸間膜リンパ節、骨髄、肝臓、腎臓、脾臓、心臓、肺およびその他の組織または体液の順に採取した。
４）血液および種々の組織サンプル中のキメラ抗原受容体（すなわち、ＣＡＲ）の含有量を、検証されたＱ－ＰＣＲ法を用いて判定した。
【0120】
これらの結果から、５×１０６細胞／マウスの投与量で単回静脈内注射によって担がんマウスおよび非担がんマウスに投与された後、ＣＮＣＴ１９細胞が肺、肝臓、心臓、および脾臓のような大きな血流を有する全血および組織中に主に分布したことがわかる（図９参照）。これらの中で、心臓および全血は最大の分布を有し、曲線下部（ｇＤＮＡ時間におけるＣＡＲをコードする核酸分子のコピー数、ＡＵＣ）は約１５０，０００時間＊コピー数／μｇであった。肺および脊髄を追跡した結果、ＡＵＣは約４０，０００～６０，０００時間＊コピー数／μｇであった。脾臓、肝臓およびその他の組織について、ＡＵＣは約２０，０００時間＊コピー数／μｇ未満であった。
【0121】
また、これらの結果から、担がんマウスの組織中のＣＮＣＴ１９細胞含有量は、非担がんマウスに比べてやや高いことが示された（図１０参照）。担がんマウスの全血、心臓および脊髄中のＣＮＣＴ１９細胞濃度は、投与２４時間後に非担がんマウスの約３倍、６倍および５倍であった。
【0122】
その後、各組織中の薬物含量は徐々に減少し、投与２週間後には基本的に方法論的検出限界以下となった。疾病が進行するにつれて、ＣＤ１９抗原刺激の増強とともに、それに反応してマウスのＣＮＣＴ１９細胞は増殖し（図１１参照）、脳、肺、肝臓、全血、および脊髄におけるＣＮＣＴ１９細胞の濃度が１２００コピー／μｇＤＮＡ以上に増加し、３５００コピー／μｇＤＮＡにまで達した。
【0123】
［実施例１２］ＣＮＣＴ１９細胞による急性リンパ芽球性白血病の治療
１２．１．ＣＮＣＴ１９細胞の臨床使用
臨床適用プロセスを表１に示し、いくつかの段階における特定の実験ステップを以下に記載する。
１２．１．ＣＮＣＴ１９細胞の臨床使用
臨床適用プロセスを表１に示し、いくつかの段階における特定の実験ステップを以下に記載する。
【0124】
［表１］
【0125】
１．リンパ節郭清前処理
リンパ節郭清前処理を、ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液が計画通りに再注入される前に、－５日目に行う。
リンパ節郭清前処理を、ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液が計画通りに再注入される前に、－５日目に行う。
【0126】
前処理スキームは以下の通りである：
フルダラビンを３０ｍｇ／ｍ２で１日１回２～４日間連続投与し、シクロホスファミドを５００ｍｇ／ｍ２で１日１回２日間連続投与する。なお、前処理化学療法における２つの薬物の使用は、同日より開始すること。
フルダラビンを３０ｍｇ／ｍ２で１日１回２～４日間連続投与し、シクロホスファミドを５００ｍｇ／ｍ２で１日１回２日間連続投与する。なお、前処理化学療法における２つの薬物の使用は、同日より開始すること。
【0127】
２．ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液の再注入
（１）細胞の調製に成功した後、細胞を＜－１００℃の条件下で凍結保存し、使用のために同じ温度条件下で病院に輸送し、注入前に実験操作ガイドに従って回収する。
（２）細胞を再注入する方法は、以下の通りである。実験操作ガイドに従って細胞を回収し、細胞懸濁液の再注入は、回収後３０分以内に完了すること。細胞懸濁液は、輸血装置を用いて、静脈を通して被験者への単回注入として注入される。細胞懸濁液の袋が２つ以上存在する場合、それらは、各袋の再注入の間の時間間隔なしに、連続的に注入することができる。細胞再注入中は、被験者を綿密に観察する必要がある。重篤な有害事象が現れた場合は点滴を中止し、特定の有害事象に応じて対応する治療を実施すること。重篤な有害事象が現れない場合は、来院ワークフローに従って経過観察を実施することができる。
（３）細胞再注入後２４時間、被験者を綿密に観察する必要がある。重篤な有害事象が現れた場合は、特定の有害事象に応じて対応する治療を実施すること。重篤な有害事象が現れない場合は、来院ワークフローに従って経過観察を実施することができる。
（４）細胞再注入後、被験者は、１４日間、または被験者の状態を研究者が包括的に評価して決定した期間、観察のために入院し続ける必要がある。
（１）細胞の調製に成功した後、細胞を＜－１００℃の条件下で凍結保存し、使用のために同じ温度条件下で病院に輸送し、注入前に実験操作ガイドに従って回収する。
（２）細胞を再注入する方法は、以下の通りである。実験操作ガイドに従って細胞を回収し、細胞懸濁液の再注入は、回収後３０分以内に完了すること。細胞懸濁液は、輸血装置を用いて、静脈を通して被験者への単回注入として注入される。細胞懸濁液の袋が２つ以上存在する場合、それらは、各袋の再注入の間の時間間隔なしに、連続的に注入することができる。細胞再注入中は、被験者を綿密に観察する必要がある。重篤な有害事象が現れた場合は点滴を中止し、特定の有害事象に応じて対応する治療を実施すること。重篤な有害事象が現れない場合は、来院ワークフローに従って経過観察を実施することができる。
（３）細胞再注入後２４時間、被験者を綿密に観察する必要がある。重篤な有害事象が現れた場合は、特定の有害事象に応じて対応する治療を実施すること。重篤な有害事象が現れない場合は、来院ワークフローに従って経過観察を実施することができる。
（４）細胞再注入後、被験者は、１４日間、または被験者の状態を研究者が包括的に評価して決定した期間、観察のために入院し続ける必要がある。
【0128】
３．ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液の管理
ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液を厳密に管理し、使用するために、特別に割り当てられた人員によるＣＮＣＴ１９細胞懸濁液を管理する厳密なシステムが確立されている。研究用細胞懸濁液を病院部門に運搬するために特定の人員が配置され、研究用細胞懸濁液の受領および登録システムの確立のために特定の人員が配置される。注入後、細胞懸濁液のパッケージングは、薬剤管理要員によって回収され、保存／破壊される。
ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液を厳密に管理し、使用するために、特別に割り当てられた人員によるＣＮＣＴ１９細胞懸濁液を管理する厳密なシステムが確立されている。研究用細胞懸濁液を病院部門に運搬するために特定の人員が配置され、研究用細胞懸濁液の受領および登録システムの確立のために特定の人員が配置される。注入後、細胞懸濁液のパッケージングは、薬剤管理要員によって回収され、保存／破壊される。
【0129】
４．再発または難治性急性リンパ芽球性白血病の治療におけるＣＮＣＴ１９細胞懸濁液の臨床的有効性および安全性の結果
この実験は、２０１６年９月から２０２０年１０月まで行った。探究的臨床試験および第Ｉ相臨床試験中に、再発または難治性の急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）患者６３例（成人患者２３例、小児患者４０例）がＣＮＣＴによる治療を受けた。成人ＡＬＬに投与された探究投与量は、０．２５×１０８～０．５×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の範囲であった。
この実験は、２０１６年９月から２０２０年１０月まで行った。探究的臨床試験および第Ｉ相臨床試験中に、再発または難治性の急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）患者６３例（成人患者２３例、小児患者４０例）がＣＮＣＴによる治療を受けた。成人ＡＬＬに投与された探究投与量は、０．２５×１０８～０．５×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の範囲であった。
【0130】
（ａ）臨床効果のデータを表２および表３に示す。表２は、成人および小児を含む６３例の回復状況を示す。表３は、成人患者２３例の回復状況を示す。再発または難治性の急性リンパ芽球性白血病患者６３人のうち、ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液の注射および再輸注後、患者の大多数（９３．７％）が完全寛解に達し、患者の８８．９％がＭＲＤ陰性であったことが分かる。この結果は、ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液の注射および再輸注が再発または難治性急性リンパ芽球性白血病の成人患者および小児患者を効果的に治療できることを示している。
【0131】
［表２］
【0132】
［表３］
（注）表２、表３において、
ＯＲＲは全寛解率を表し、
ＭＲＤ（微小残存病変）陰性は、腫瘍細胞が（最も感度の高い方法によって）検出されないことを意味し、
ＣＲは完全寛解を表し、
Ｃｒｉは血球数の回復が不完全な形態学的完全寛解を意味する。
ＯＲＲは全寛解率を表し、
ＭＲＤ（微小残存病変）陰性は、腫瘍細胞が（最も感度の高い方法によって）検出されないことを意味し、
ＣＲは完全寛解を表し、
Ｃｒｉは血球数の回復が不完全な形態学的完全寛解を意味する。
【0133】
ｂ）予備安全性結果のデータを表４および表５に示す。表４は成人および小児患者を含む６３例の安全性結果を示し、表５は成人患者２３例の安全性結果を示す。６３例のＡＬＬ患者のうち、グレード３以上のＣＲＳおよび脳症の発生率は、それぞれ１９％と２０．６％であった。年齢群間の比較では、成人群の重症ＣＲＳの発症率（３９．１％）は小児群の発症率（７．５％）より高く、成人群の重症ＣＲＥＳの発症率（１７．４％）は小児群の発症率（２２．６％）よりわずかに低いか、またはそれに近いことが明らかになっている。これは、初期の試験ではＣＮＣＴ１９が重量部に応じて投与されており、重量部が大きい成人患者ではより高用量が投与されていたことによると考えられる。例えば、初期の試験で４６例に与えられた投与量は０．７１×１０６～４．０８×１０６／ｋｇであり、これは０．１６×１０８～２．３６×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞に相当した。初回用量探究により、ＣＮＣＴ１９製品の特性が徐々に明らかになったため、その後の臨床試験ではより安全な用量範囲を選択した。例えば、０．２×１０８～１．１×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞（中央値：０．５×１０８）の投与量を受けた患者１７例のうち、グレード≧３ＣＲＳおよびＣＲＥＳの発生率は５．９％（１／１７）に低下した。
【0134】
ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液の注射は重篤なＣＲＳまたはＣＲＥＳ副作用を引き起こす可能性が低く、その全体的な安全性は制御可能であり、したがって、ＣＮＣＴ１９は良好な安全性能を有することが分かる。ＣＮＣＴ１９の良好な安全性能は製品の品質を改善し、臨床上のリスクを低減する。
【0135】
［表４］
【0136】
［表５］
注：表４および表５において、
ＣＲＳはサイトカイン放出症候群を表し、
ＣＲＥＳはＣＡＲ－Ｔ細胞関連脳症症候群を表す。
ＣＲＳはサイトカイン放出症候群を表し、
ＣＲＥＳはＣＡＲ－Ｔ細胞関連脳症症候群を表す。
【0137】
［実施例１３］ＣＮＣＴ１９細胞を用いた再発または難治性の非ホジキンリンパ腫の治療
１３．１．ＣＮＣＴ１９細胞の臨床使用
臨床適用プロセスを表６に示し、いくつかの段階における特定の実験ステップを以下に記載する。
１３．１．ＣＮＣＴ１９細胞の臨床使用
臨床適用プロセスを表６に示し、いくつかの段階における特定の実験ステップを以下に記載する。
【0138】
［表６］
【0139】
１．リンパ節郭清前処理
リンパ節郭清前処理はＣＮＣＴ１９細胞懸濁液が計画通りに再注入される前に、－５日目に行われる。
リンパ節郭清前処理はＣＮＣＴ１９細胞懸濁液が計画通りに再注入される前に、－５日目に行われる。
【0140】
前処理スキームは以下の通りである：
フルダラビンを３０ｍｇ／ｍ２で１日１回２～４日間連続投与し、シクロホスファミドを５００ｍｇ／ｍ２で１日１回２日間連続投与する。
フルダラビンを３０ｍｇ／ｍ２で１日１回２～４日間連続投与し、シクロホスファミドを５００ｍｇ／ｍ２で１日１回２日間連続投与する。
【0141】
なお、前処理化学療法における２つの薬物の使用は、同日より開始すること。
【0142】
２．ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液の再注入
（１）細胞の調製に成功した後、細胞を＜－１００℃の条件下で凍結保存し、使用のために同じ温度条件下で病院に輸送し、注入前に実験操作ガイドに従って回収する。
（２）細胞を再注入する方法は、以下の通りである。実験操作ガイドに従って細胞を回収し、細胞懸濁液の再注入は、回収後３０分以内に完了すること。細胞懸濁液は、輸血装置を用いて静脈を通して被験者への単回注入として注入される。細胞懸濁液の袋が２つ以上存在する場合、それらは、各袋の再注入の間の時間間隔なしに、連続的に注入することができる。細胞再注入中は、被験者を綿密に観察する必要がある。重篤な有害事象が現れた場合は点滴を中止し、特定の有害事象に応じて対応する治療を実施すること。重篤な有害事象が現れない場合は、来院ワークフローに従って経過観察を実施することができる。
（３）細胞再注入後２４時間、被験者を綿密に観察する必要がある。重篤な有害事象が現れた場合は、特定の有害事象に応じて対応する治療を実施する。重篤な有害事象が現れない場合は、来院ワークフローに従って経過観察を実施することができる。
（４）細胞再注入後、被験者は、１４日間、または被験者の状態を研究者が包括的に評価して決定した期間、観察のために入院し続ける必要がある。
（１）細胞の調製に成功した後、細胞を＜－１００℃の条件下で凍結保存し、使用のために同じ温度条件下で病院に輸送し、注入前に実験操作ガイドに従って回収する。
（２）細胞を再注入する方法は、以下の通りである。実験操作ガイドに従って細胞を回収し、細胞懸濁液の再注入は、回収後３０分以内に完了すること。細胞懸濁液は、輸血装置を用いて静脈を通して被験者への単回注入として注入される。細胞懸濁液の袋が２つ以上存在する場合、それらは、各袋の再注入の間の時間間隔なしに、連続的に注入することができる。細胞再注入中は、被験者を綿密に観察する必要がある。重篤な有害事象が現れた場合は点滴を中止し、特定の有害事象に応じて対応する治療を実施すること。重篤な有害事象が現れない場合は、来院ワークフローに従って経過観察を実施することができる。
（３）細胞再注入後２４時間、被験者を綿密に観察する必要がある。重篤な有害事象が現れた場合は、特定の有害事象に応じて対応する治療を実施する。重篤な有害事象が現れない場合は、来院ワークフローに従って経過観察を実施することができる。
（４）細胞再注入後、被験者は、１４日間、または被験者の状態を研究者が包括的に評価して決定した期間、観察のために入院し続ける必要がある。
【0143】
３．ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液の管理
ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液を厳密に管理し、使用するために、特別に割り当てられた人員によるＣＮＣＴ１９細胞懸濁液を管理する厳密なシステムが確立されている。研究用細胞懸濁液を病院部門に運搬するために特定の人員が配置され、研究用細胞懸濁液の受領および登録システムの確立のために特定の人員が配置される。
ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液を厳密に管理し、使用するために、特別に割り当てられた人員によるＣＮＣＴ１９細胞懸濁液を管理する厳密なシステムが確立されている。研究用細胞懸濁液を病院部門に運搬するために特定の人員が配置され、研究用細胞懸濁液の受領および登録システムの確立のために特定の人員が配置される。
【0144】
注入後、細胞懸濁液のパッケージングは、薬剤管理要員によって回収され、保存／破壊される。
【0145】
４．再発または難治性の非ホジキンリンパ腫の治療におけるＣＮＣＴ１９細胞懸濁液の臨床的有効性および安全性の結果
この実験は、２０１６年９月から２０２０年１０月まで行った。探究的臨床試験および第Ｉ相臨床試験中に、再発または難治性の非ホジキンリンパ腫（ＮＨＬ）患者５０例にＣＮＣＴ１９細胞懸濁液を投与した。ＮＨＬ（成人のみ）の探究投与量は、１×１０８～２×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の範囲であった。
この実験は、２０１６年９月から２０２０年１０月まで行った。探究的臨床試験および第Ｉ相臨床試験中に、再発または難治性の非ホジキンリンパ腫（ＮＨＬ）患者５０例にＣＮＣＴ１９細胞懸濁液を投与した。ＮＨＬ（成人のみ）の探究投与量は、１×１０８～２×１０８のＣＡＲ陽性Ｔ細胞の範囲であった。
【0146】
（ａ）臨床効果のデータを表７に示す。表７は、５０人の患者の回復を示す。再発または難治性の非ホジキンリンパ腫患者５０人のうち、ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液の注射および再輸注後、患者の約８０％が完全寛解または部分寛解にあり、この場合、完全寛解の割合は５４％（２７例）、部分寛解の割合は２４％（１２例）であったことが分かる。これは、ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液が再発性または難治性非ホジキンリンパ腫患者を効果的に治療できることを示している。
【0147】
［表７］
注：表７において、
ＯＲＲは全寛解率を表し、
ＣＲは完全寛解を表し、
ＰＲは部分寛解を表す。
ＯＲＲは全寛解率を表し、
ＣＲは完全寛解を表し、
ＰＲは部分寛解を表す。
【0148】
ｂ）予備安全性結果のデータを表８に示す。表８は、５０人の患者についての安全性の結果を示す。ＣＮＣＴ１９細胞懸濁液の注射は重篤なＣＲＳまたはＣＲＥＳ副作用を引き起こす確率が低く、グレード３以上のＣＲＳを引き起こす確率は１０％未満で、グレード３以上のＣＲＥＳを引き起こす確率は０％であり、グレード３以上のＣＲＥＳを引き起こす確率は６％であることが分かる。したがって、ＣＮＣＴ１９は良好な安全性能を有する。
【0149】
［表８］
注：表８において、
ＣＲＳはサイトカイン放出症候群を表し、
ＣＲＥＳはＣＡＲ－Ｔ細胞関連脳症症候群を表す。
ＣＲＳはサイトカイン放出症候群を表し、
ＣＲＥＳはＣＡＲ－Ｔ細胞関連脳症症候群を表す。
【0150】
前述の詳細な説明は説明および実施例として提供されるが、添付の特許請求の範囲を限定することを意図するものではない。本開示で列挙された実施形態に対する様々な変更は当業者には明らかであり、添付の特許請求の範囲およびその同等の範囲内に保持される。
【図1】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
【図10】
【図11】
【配列表】
【手続補正書】
【提出日】2024-03-11
【手続補正1】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項1】
免疫エフェクター細胞を含む、患者への投与に適した組成物であって、
前記免疫エフェクター細胞が、下記（１）、（２）および（３）から選択される１つ以上を含み、
前記組成物が、静脈内注射である、組成物。
（１）配列番号１に示されるアミノ酸配列を含むキメラ抗原受容体、
（２）キメラ抗原受容体をコードする単離された核酸分子であって、前記キメラ抗原受容体が、配列番号１に示されるアミノ酸配列を含む、単離された核酸分子、または、
（３）キメラ抗原受容体をコードする核酸分子を含むベクターであって、前記キメラ抗原受容体が、配列番号１に示されるアミノ酸配列を含む、ベクター。
前記免疫エフェクター細胞が、下記（１）、（２）および（３）から選択される１つ以上を含み、
前記組成物が、静脈内注射である、組成物。
（１）配列番号１に示されるアミノ酸配列を含むキメラ抗原受容体、
（２）キメラ抗原受容体をコードする単離された核酸分子であって、前記キメラ抗原受容体が、配列番号１に示されるアミノ酸配列を含む、単離された核酸分子、または、
（３）キメラ抗原受容体をコードする核酸分子を含むベクターであって、前記キメラ抗原受容体が、配列番号１に示されるアミノ酸配列を含む、ベクター。
【請求項2】
前記組成物が、薬学的に有効であるキャリア、安定剤、賦形剤、希釈剤、可溶化剤、界面活性剤、乳化剤および／または保存剤の１つ以上をさらに含む、請求項１記載の組成物。
【請求項3】
前記組成物が、細胞懸濁液である、請求項１記載の組成物。
【請求項4】
前記組成物が、凍結または凍結乾燥組成物である、請求項１記載の組成物。
【請求項5】
前記組成物が、単回投与の投与剤である、請求項１記載の組成物。
【請求項6】
前記組成物が、０．２５×１０
８
～０．５×１０
８
個の免疫エフェクター細胞を含む、請求項５記載の組成物。
【請求項7】
前記組成物が、１×１０
８
～２×１０
８
個の免疫エフェクター細胞を含む、請求項５記載の組成物。
【請求項8】
前記キメラ抗原受容体をコードする核酸分子が、配列番号２に示される核酸配列を含む、請求項１記載の組成物。
【請求項9】
前記ベクターが、レンチウイルスベクターである、請求項１記載の組成物。
【請求項10】
前記免疫エフェクター細胞が、Ｔリンパ球およびナチュラルキラー細胞からなる群より選択される、請求項１記載の組成物。
【請求項11】
ＣＤ１９発現に関連する疾病または疾患の治療において使用するための、請求項１～１０のいずれか１項に記載の組成物。
【請求項12】
ＣＤ１９発現に関連する前記疾病または疾患が、非固形腫瘍を含む請求項１１記載の組成物。
【請求項13】
前記非固形腫瘍が、白血病および／またはリンパ腫を含む、請求項１２に記載の組成物。
【請求項14】
ＣＤ１９発現に関連する前記疾病または疾患が、急性リンパ芽球性白血病および／またはＢ細胞リンパ腫を含む、請求項１１記載の組成物。
【請求項15】
前記急性リンパ芽球性白血病が、成人における急性リンパ芽球性白血病および／または小児における急性リンパ芽球性白血病を含む、請求項１４記載の組成物。
【請求項16】
前記急性リンパ芽球性白血病が、成人の再発または難治性の急性リンパ芽球性白血病および／または小児の再発または難治性の急性リンパ芽球性白血病を含む、請求項１４に記載の組成物。
【請求項17】
前記Ｂ細胞リンパ腫が、非ホジキンリンパ腫を含む、請求項１４に記載の組成物。
【請求項18】
前記非ホジキンリンパ腫が、再発または難治性の非ホジキンリンパ腫を含む、請求項１７に記載の組成物。