▶ バイオサイエンス サービシーズ エス．アール．エル．の特許一覧
(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B2)
(11)【特許番号】
(24)【登録日】2021-12-23
(45)【発行日】2022-01-18
(54)【発明の名称】固形腫瘍の発症の前駆的遺伝子状態を探索および特定する方法
(51)【国際特許分類】
C12Q 1/6809 20180101AFI20220111BHJP
C12Q 1/6827 20180101ALI20220111BHJP
C12Q 1/6869 20180101ALI20220111BHJP
C12M 1/00 20060101ALI20220111BHJP
C12M 1/34 20060101ALI20220111BHJP
G01N 33/53 20060101ALI20220111BHJP
G01N 33/574 20060101ALI20220111BHJP
【ＦＩ】
C12Q1/6809 Z
C12Q1/6827 Z
C12Q1/6869 Z
C12M1/00 A
C12M1/34 Z
G01N33/53 M
G01N33/574 Z
【請求項の数】
17
(21)【出願番号】P 2019555004
(86)(22)【出願日】2017-07-13
(65)【公表番号】
(43)【公表日】2020-06-25
(86)【国際出願番号】 IB2017054231
(87)【国際公開番号】W WO2018197934
(87)【国際公開日】2018-11-01
【審査請求日】2020-07-01
(31)【優先権主張番号】102017000045353
(32)【優先日】2017-04-26
(33)【優先権主張国・地域又は機関】IT
(73)【特許権者】
【識別番号】519357615
【氏名又は名称】バイオサイエンス サービシーズ エス．アール．エル．
(74)【代理人】
【識別番号】100091683
【弁理士】
【氏名又は名称】▲吉▼川 俊雄
(74)【代理人】
【識別番号】100179316
【弁理士】
【氏名又は名称】市川 寛奈
(72)【発明者】
【氏名】ムッチ，ジュゼッペ
【審査官】福澤 洋光
(56)【参考文献】
【文献】国際公開第２０１６／１７９０４９（ＷＯ，Ａ１）
【文献】国際公開第２０１６／１２７９４４（ＷＯ，Ａ１）
【文献】米国特許出願公開第２０１３／０１４３７４７（ＵＳ，Ａ１）
【文献】米国特許出願公開第２０１６／０１３０６４８（ＵＳ，Ａ１）
【文献】特表２０１６－５１６３９５（ＪＰ，Ａ）
【文献】米国特許出願公開第２０１６／０１０２３５８（ＵＳ，Ａ１）
【文献】Namlos, H.M. et.al.，Use of liquid biopsies to monitor disease progression in a sarcoma patient: a case report，BMC cancer，2017年01月06日，Vol.17:29，pp.1-6
(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)
Ｃ１２Ｍ １／００－３／１０
Ｃ１２Ｑ １／００－３／００
ＣＡ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＢＩＯＳＩＳ（ＳＴＮ）
ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩＩ）
ＰｕｂＭｅｄ
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
健康な対象者の固形腫瘍の発症の前駆的遺伝子状態を探索および識別する方法であって、遺伝子安定性または不安定性状態の評価のための評価サイクルおよび少なくともこのような評価の１つの繰り返しサイクルを含み、前記繰り返しサイクルが前記対象者に対し定期的に実施され、各サイクルが、－前記対象者から採取された生体物質の試料からＤＮＡを単離し、前記単離ＤＮＡを増幅および塩基配列決定するステップ、
－前記試料の所定の遺伝子セット中で選択された変異の存在を検証するステップであって、前記遺伝子セットおよび変異セットが固形腫瘍の発症に関連しているステップ、
－前記所定の遺伝子セットおよび選択される変異が、対象者の既往歴を考慮して決定されるステップ、
－前記所定の遺伝子セットが、１つまたは複数の固形腫瘍に関連する遺伝子もしくはホットスポットのパネルのサブセット、または固形腫瘍に関連する遺伝子の全パネルを含むステップ、
－各遺伝子および各評価サイクルについて検出された変異の頻度を検証するステップであって、前記変異が、上述の選択変異から選択されるステップ、
－各遺伝子または遺伝子群およびそれらの頻度に対し検出された変異を記録するステップ、
－各繰り返しサイクルで、検出された変異の頻度に基づいておよび変異の頻度の増加を基準にして、前記対象者の全体の総遺伝子不安定性指数（ＩＴ）または単一の遺伝子に対する遺伝子不安定性指数（ＩＧ）を決定または更新するステップであって、前記遺伝子不安定性指数（ＩＴ、ＩＧ）がまた、１つまたは複数の以前の評価サイクルに対して変異の頻度の増加を基準にすることによっても決定されるステップ、
－各繰り返しサイクルで、前記遺伝子不安定性指数（ＩＴ、ＩＧ）が、各単一遺伝子または遺伝子群に対し決定された閾値（ＩＴＳ、ＩＧＳ）を超えることを基準にして、前記対象者の、１つまたは複数の固形腫瘍または固形腫瘍群の発症の前駆的遺伝子状態への移行を評価するステップ、
を含むことを特徴とする、方法。
【請求項2】
前記総遺伝子不安定性指数（ＩＴ）が、各遺伝子に対する観察された変異の増加に応答する値（ΔＦｋ）と監視された総遺伝子群を考慮して評価される遺伝子の数との間の関係の合計として定義される、請求項１に記載の方法。
【請求項3】
前記単一遺伝子不安定性指数（ＩＧ）が、各ホットスポットに対する観察された変異の増加に応答する値（ΔＦｊ）と監視された総ホットスポット群を考慮して評価されるホットスポットの数との間の関係の合計として定義される、請求項１に記載の方法。
【請求項4】
前記生体物質の試料が、リキッドバイオプシーからなり、前記所定の遺伝子セット中の変異の存在の前記検証段階が、前記リキッドバイオプシーから単離されたＤＮＡ試料に対して実施され、その後、増殖および配列決定される、請求項１に記載の方法。
【請求項5】
前記リキッドバイオプシーが末梢血である、請求項４に記載の方法。
【請求項6】
前記リキッドバイオプシーが尿または髄液である、請求項４に記載の方法。
【請求項7】
一部のｃｆＤＮＡが解析されるＤＮＡ試料中で探索され、変異の存在が前記ｃｆＤＮＡ画分中で検証される、請求項４～６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項8】
リキッドバイオプシーから単離されたｃｔＤＮＡが同様に、解析されるＤＮＡ試料中で探索される、請求項４～６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項9】
循環ｃｔＤＮＡの特定後、アドレス指定情報が早期検出システム（Ｅａｒｌｙ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ）に送られる、請求項８に記載の方法。
【請求項10】
解析される前記ＤＮＡ試料中のｃｔＤＮＡの特定後に、前記リキッドバイオプシー中のＣＴＣ（「循環腫瘍細胞」）の存在が探索される、請求項８に記載の方法。
【請求項11】
前記所定の遺伝子セットおよび選択される変異が、特定のタイプの腫瘍に対するそれらの関連性を考慮して決定される、請求項１に記載の方法。
【請求項12】
前記繰り返し期間が、現在のサイクルで計算された前記不安定性指数（ＩＴ、ＩＧ）の値および１回または複数回の前のサイクルで計算された同指数の値に応じて各繰り返しサイクル後に再計算される、請求項１に記載の方法。
【請求項13】
１回または複数回の前のサイクルで計算された不安定性指数（ＩＴ、ＩＧ）の値に対して、同指数（ＩＴ、ＩＧ）の前記計算値の増加後に、監視遺伝子または遺伝子パネルに関連してより高い解析感度が、各繰り返しサイクルで設定される、請求項１に記載の方法。
【請求項14】
前記評価および繰り返しサイクルのそれぞれにおいて、生殖細胞ＤＮＡも同様に単離および配列決定され、ｃｆＤＮＡ中にのみ存在し、前記生殖細胞ＤＮＡ中には存在しない変異がその後の不安定性指数の計算に対し考慮される、請求項１に記載の方法。
【請求項15】
前記生殖細胞ＤＮＡが、前述のｃｆＤＮＡの塩基配列決定と同じ読み深さで配列決定される、請求項１４に記載の方法。
【請求項16】
前記生殖細胞ＤＮＡが、前述のｃｆＤＮＡが採取されたのと同じリキッドバイオプシー由来である、請求項１４に記載の方法。
【請求項17】
健康な対象者の固形腫瘍の発症の前駆的遺伝子状態を探索および特定するためのシステムであって、遺伝子安定性または不安定性状態の評価サイクル、および請求項１の記載に従い定義された少なくとも１つの前記評価の繰り返しサイクルを実施することを目的とするコンピュータープログラムの命令セットを含む、システム。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は一般に、癌予防の分野、より詳細には、固形腫瘍予防の分野に関する。
【0002】
特に、本発明は、個体における固形腫瘍の発症の前駆的な遺伝子状態を探索および特定し、危険にさらされていると見なされる個体のこのような腫瘍に罹患する有意な可能性の存在の統計的予測を行う方法を含む。
【背景技術】
【0003】
固形腫瘍は、腫瘍細胞および間質からなる１つまたは複数の組織塊（さらには、異なる種類の細胞および細胞外マトリックスからなる）から構成され、異常で、無制御増殖を特徴とし、これは、いくつかの事例では、全身性症状を引き起こし得る。
【0004】
腫瘍は、遺伝子異常により引き起こされる病態であり、それらは、時間的に連続した様々なステップで発生し、そこでは、一連の引き続いて起こる変異が１つまたは複数の細胞の遺伝形質中に蓄積する。
【0005】
対象者の遺伝子異常の増加に付随する遺伝子不安定性状態は、特定の腫瘍形成リスクのマーカーである。これらの遺伝子異常は、キャリア細胞が腫瘍細胞株を生じるリスクを高める。
【0006】
このプロセスは、結腸直腸癌に関して、十分に研究されてきた。これらの腫瘍の発生段階では、第１の変異は、遺伝子安定性の制御に関与するゲートキーパー／ケアテイカーと呼ばれる遺伝子を必要とし、正常な上皮細胞の増殖における選択優位性をもたらし、第一の変異を周囲細胞より優位にし、微視的なクローンにする。
【0007】
結腸において最もよく知られたゲートキーパー遺伝子は、ＡＰＣ遺伝子である。
【0008】
ほとんど全て（約８０％）の結腸直腸腫瘍は、ＡＰＣ遺伝子の変異を特徴とする。この変異により引き起こされる微小腺腫は極めてゆっくり増殖するが、別の遺伝子、例えば、ＫＲＡＳ遺伝子（または、ＡＴＫ１など）に第２の変異が起こると、関与する細胞の数の増大を引き起こすクローン増殖の新たな段階に発展する。ＡＰＣ変異のみを有する細胞は、腺腫中に留まることができるが、両方（またはより多く）の遺伝子の変異を伴う細胞についてはそれらの数は少ない。
【0009】
連続的変異のこのプロセスは、その後にクローン増殖が生じ、続いてＰＩＫ３ＣＡ、ＳＭＡＤ４およびＴＰ５３などの他の遺伝子が変異し、高い確率で悪性新生物を生成し、下層の基底膜を通過して広がり、通常は最初に局所リンパ節、その後肝臓または肺などの遠隔器官に転移することがある。
【0010】
最近の１０年間で、網羅的な塩基配列決定により、ヒト癌の最も頻度の高い形態のゲノムの全景が開示された。多くの腫瘍のゲノムの塩基配列決定は、何千もの変異およびその他のゲノム異常に関連する情報をもたらした。現時点では、１万種を超える腫瘍ゲノムが配列決定され、塩基配列決定コストは徐々に低下してきていることに伴い、多くの他の腫瘍ゲノムが、近い将来に特徴付けられることになろう。
【0011】
腫瘍ゲノムの塩基配列決定により、種々の「ドライバー変異を有する遺伝子」の分類が可能とされてきており、さらに、多くの他の分類が可能となるであろう。ドライバー変異は、増殖の点で大きな優位性をもたらす遺伝子内の変異である。
【0012】
現在までに実施された研究で、約１４０種の遺伝子が特定され、これらは、変異が起こると、発癌を促進する、または「ドライブする」。典型的な腫瘍は、一般に、「ドライバー遺伝子」中に２個から８個の変異を含む。残りの変異は、一過性と見なされ、それらは、細胞増殖に何らの優位性ももたらさない。
【0013】
ドライバー遺伝子は多くの場合、重要な細胞の分子経路に関与し、種々の形態およびモードで、３つの主要細胞プロセス：細胞分化、生存（アポトーシス促進性または抗アポトーシス性シグナルを介して）および維持、を調節する。現時点では、基礎的癌研究における最も差し迫った必要性の１つは、このような異なる経路の深い理解である。しかし、腫瘍ゲノムの構造においてこれまでに到達された理解の程度であっても、いくつかの現在の治療法選択の指針となるのに十分であり、癌の罹患率および死亡率を低減するより多くの効果的手法の開発が行われてきた。
【0014】
スクリーニングおよび初期診断プログラムは、癌患者の健康な生存の改善および死亡率の低減において重要な役割を果たす。初期診断のための非侵襲的手法は、患者の協力を促進する一因となるので、それらをスクリーニングおよび予防プログラムに含めることが望ましいことは明らかである。
【0015】
腫瘍病理の分子論的発症機序の知識の増加および分子分析の新技術の急速な発展は、体液中の初期分子異常の特定と分析法の開発および達成に寄与している。細胞外ＤＮＡ（「セルフリーＤＮＡ」または「ｃｆＤＮＡ」）を、血清、血漿、尿および他の体液中で見つけることができる。従って、ｃｆＤＮＡのサンプリングおよび分子解析は、一種の「リキッドバイオプシー」であり、種々の特殊な病状の一種の「循環像（ｃｉｒｃｕｌａｔｉｎｇ ｉｍａｇｅ）」と見なすことができる。
【0016】
血液では、アポトーシスが、ｃｆＤＮＡを生成する最も高頻度のプロセスであると思われるが、癌患者では、壊死プロセスにより得られる部分も完全には無視できない。ステージ４結腸直腸癌に罹患した３２人の患者の血漿由来のｃｆＤＮＡを分析する興味深い研究では、患者の３４．４％で、採取されたＤＮＡは、２種の大きさ（１６６ｂｐおよび３３２ｂｐ）を有したことが示された。
【0017】
Ｓｔｒｏｕｎらは、種々の癌の異常が患者のｃｆＤＮＡにおいて特定できることを記載している。その後刊行された種々文献では、ｃｆＤＮＡは、腫瘍細胞に直接帰することができる特定の遺伝子の変異、メチル化およびコピー数の変化（「コピー数多型」またはＣＮＶ）などの、腫瘍の存在に相関する特定の異常を含み、従って、循環腫瘍ＤＮＡ（ｃｔＤＮＡ）の存在を確証していることが確認された。
【0018】
種々の研究が、選択組織および血漿試料の相関を示すことを目的とし、循環ｃｆＤＮＡの分析を診断用手段として使用できることを確認するために実施されてきた。
【0019】
転移性乳腺腫瘍の１７人の患者由来の６０種の腫瘍組織試料および３１種の血漿試料中の２，８００種のＣＯＳＭＩＣ変異（Ｃａｔａｌｏｇｕｅ Ｏｆ Ｓｏｍａｔｉｃ Ｍｕｔａｔｉｏｎｓ Ｉｎ Ｃａｎｃｅｒ－ｈｔｔｐ：／／ｃａｎｃｅｒ．ｓａｎｇｅｒ．ａｃ．ｕｋ／ｃｏｓｍｉｃ）を包含する５０種の腫瘍遺伝子に対して実施されたＮＧＳ（次世代シーケンシング）を用いた評価は、組織と血漿との間の７６％の一致を明らかにした。これらのデータから、著者は、血漿は、転移生検の代わりとして、腫瘍のスクリーニングのために採用した生物試料と見なすことができるという結論に至った。
【0020】
上述の結果は、１８種の異なるタイプの腫瘍に罹患している３４人の患者群で確認された。この分析では、組織および血漿試料中の４６種の遺伝子を含み、６，８００種のＣＯＳＭＩＣ変異を包含した。３４人の患者の内の２７人は、組織試料中で見つかった変異と、ｃｔＤＮＡ中で見つかった変異との間で９７％の一致を示した。従って、ｃｔＤＮＡベースのＮＧＳ分析は、治癒または転移の可能性のある癌病態に罹患している患者の管理を根底から変えてしまう可能性がある。
【0021】
特許文献１は、疾患の分子および特に癌の分子マーカーの分類の方法を記載している。方法は、血液試料から得られる遺伝子パネルの分析を含む。合成したｍＲＮＡまたはｃＤＮＡは試料から得られ、パネルの遺伝子の変異状態が決定される。特定のパネル中の特定の遺伝子内の特定の変異状態の存在は、（ａ）患者が癌を有していた、および／または（ｂ）患者はその特定の癌を有している、ことを示す。特許文献１で記載の方法により、既に癌を有する人、およびさらには、特定の癌を有している人を見つけることを目的として、スクリーニングが実施される。患者は既に疾患を発症していて、進行段階でさえある。特許文献１は、遺伝子不安定性指数も、１つまたは複数の以前の評価サイクルに対して、変異の頻度の増加を基準にして同様に決定できることを提示しておらず、また、この文献は、所定の遺伝子セットおよび選択された変異を対象者の既往歴を考慮して決定できることを示唆してもいない。特許文献１の方法により、変異が発生している遺伝子型は、どの腫瘍が見つかったかを決定し、進行中の病理学的過程の実際の真の診断が得られる。健康な対象者における固形腫瘍の発症の前駆的遺伝子状態ではない。
【0022】
特許文献２は、複数の遺伝子マーカーと種々の異なる癌の発癌リスクとの間の有意な統計的関連性を特定することにより、個々の対象者の異なるタイプの癌を発症するリスクを評価する方法を開示している。特に、特許文献２で開示の発明は、対象者の核酸試料から、複数の二対立遺伝子多型遺伝子座での遺伝子型を決定することにより、対象者のための個別化された発癌リスクレポートを生成する方法を提供している。リスクは、それぞれの複数の二対立遺伝子多型遺伝子座について決定された遺伝子型に基づいて計算される。
【0023】
非特許文献１の論文は、例えば、血球減少症の患者を診断および管理するための方法を開示している。方法は、患者の末梢血血漿または血清からセルフリーＤＮＡ試料を得ること、選択遺伝子パネル上でセルフリーＤＮＡ試料の変異解析を実施すること、および血液系腫瘍の管理のために患者に治療を行うことを含む。
【0024】
また、ＧＡＧＡＮらにより開示された方法は、既に発症した疾患の治療に関し、健康な対象者の固形腫瘍の発症の前駆的状態を検出することを教示するものでも、示唆するものでもない。
【0025】
非特許文献２の論文は、リキッドバイオプシーの分析に基づく癌の診断を開示しているが、一方、非特許文献３の論文は、腫瘍ゲノムを非侵襲的に探査し、腫瘍量を定量する方法を開示している。また、これらの文献では、開示された方法は、既に発症した疾患の治療に関するものであり、健康な対象者の固形腫瘍の発症の前駆的状態の検出に対しては、何らの教示もまたは示唆も与えられていない。
【0026】
特許文献３は、骨髄異形成症候群およびその他の血液系腫瘍を治療、管理、診断および監視する方法を開示している。これらの方法は、末梢血血漿または血清由来のセルフリーＤＮＡに対して行われる配列解析を含む。特許文献３で記載の方法により、診断および診断後治療が、既に癌を有する人を見つけることおよび治療することを目的として実施される。健康な対象者の固形腫瘍の発症の前駆的状態の検出に対しては、何らの教示もまたは示唆も与えられていない。
【0027】
技術的な問題
リスク状態の評価は、試験手順および遺伝子解析の不可欠な要素である。極めて近い将来に、癌病態の評価の前に、このタイプの手法が系統的に実施されることになる可能性が高い。
リスク状態の評価は、試験手順および遺伝子解析の不可欠な要素である。極めて近い将来に、癌病態の評価の前に、このタイプの手法が系統的に実施されることになる可能性が高い。
【0028】
他方では、「健康な」人が、深刻な病態に対する素因に関して、または前病理学的状態の検出のために、遺伝子検査を受けることを依頼する頻度がますます高くなる。また、この理由のために、医師は、定型的経過観察プログラム中に、リスクの決定および管理のための、および確実にまたは極めて可能性の高い前病理学的状態を特定するための技術を導入しなければならない。
【0029】
遺伝的リスクは、決められた病態－特に本開示に関しては、癌病態－に特に関連し、この病態を実際に発症する変異の個々の保有者の可能性を意味する。他方では、前病理学的状態または病態の発症の前駆的状態の特定は、経時的に、その後の変化により、確実にまたは極めて高い可能性で、病態の発症を起こし得る、遺伝子不安定性状況を示す生体分子シグナルの検出に関する。
【0030】
本明細書で既に数回指摘したように、発癌は、環境要因および遺伝的素因の両方により影響を受け、特定の異常と関連する遺伝的背景は、この特定の異常に相関するリスクの決定にかなりの影響を与える。
【0031】
Ｗａｎｇ Ｅ．らによれば、一連の（ネットワーク）特性要素に基づくアルゴリズムは、腫瘍の主要要素の遺伝的モデルの生成のために、および変異遺伝子型を臨床的表現型と結びつけるために採用できる。このパターン（および他の類似の）の使用は、患者ゲノム配列の個々のプロファイルを基準にして、可能な腫瘍治療標的、再発の可能性および腫瘍の発症のリスクの予測のための戦略を例示する。
【0032】
まとめると、特性要素のネットワークに基づくモデルから引き出される予測法は、癌病態プログラムの診断および管理の最適化ならびに予防に使用できる。
【0033】
正常細胞におけるゲノム不安定性は、遺伝的およびエピジェネティックな変化の蓄積を通して発生し、数年から数十年の範囲の様々な期間にわたり起こることが示されている（Ｇｅｒｌｉｎｇｅｒ ｅｔ ａｌ．，２０１２；Ｌｅｎｇａｕｅｒ，Ｋｉｎｚｌｅｒ， ＆ Ｖｏｇｅｌｓｔｅｉｎ， １９９８；Ｙａｔｅｓ ｅｔ ａｌ．，２０１５；Ｚｈａｎｇ ｅｔ ａｌ．，２０１４）。
【0034】
ゲノム不安定性特性を得た大多数の正常細胞は、免疫系により除去されると考えられるが、最小限の部分は、最終的に進行し、癌を生ずる可能性がある（Ｎａｋａｄ ＆ Ｓｃｈｕｍａｃｈｅｒ，２０１６）。
【0035】
癌の発生時には、特定のゲノム異常を特定して、特異的治療選択肢のための論理的根拠を提供するために使用できる。従って、ゲノム不安定性の監視は、癌を発症するより高いリスクに関連する初期変異イベントを特定するために極めて重要であり得るが、従来の組織ベースの手法を使用することは、実際問題として多くの場合実施可能ではない。対照的に、リキッドバイオプシーは、初期ゲノム異常を検出し、癌細胞の変化を理解する可能性を提供し得、長期的におよび低侵襲で癌細胞の探索を可能とする。リキッドバイオプシーは、最も一般的には血液であるが、唾液、尿およびその他の体液も含む、非固体生体組織のサンプリングを意味する広義の用語である。興味深いことに、癌患者は通常、健常者に比べて、高レベルの総循環ｃｆＤＮＡ（セルフリーＤＮＡ）を示す（Ａｌｉｘ－Ｐａｎａｂｉｅｒｅｓ ＆ Ｐａｎｔｅｌ，２０１６；Ｂｅｔｔｅｇｏｗｄａ ｅｔ ａｌ．，２０１４）。
【0036】
循環中のｃｆＤＮＡおよびｃｔＤＮＡ（循環腫瘍ＤＮＡ）を含む大部分のＤＮＡ断片は、１８０～２００ヌクレオチドの大きさである。この観察は、生理学的組織リモデリングイベントに関連する細胞死が、血流中で認められる大部分のＤＮＡ断片を生成する可能性があることを示唆している。逆に、ｃｔＤＮＡは、アポトーシスまたは壊死を受けている腫瘍細胞由来であり、総循環ｃｆＤＮＡのわずかな比率（０．１～１０％未満）を示すに過ぎない。ｃｆ／ｃｔＤＮＡ分析の典型的出力は、多くの場合、デジタルＰＣＲまたは次世代シーケンシング（ＮＧＳ）などの感度の高い技術を用いることによる、明確な癌関連遺伝子の評価により生成される（Ｇｏｏｗｉｎ：２０１６会計年度）。ｃｔＤＮＡ解析は、療法に対する反応を監視するために、微小残存病変を検出するために、および療法に対する耐性の発生を評価するために適用されてきた（Ｄｉａｚ ｅｔ ａｌ．，２０１２；Ｓｉｒａｖｅｇｎａ ｅｔ ａｌ．，２０１５；Ｔｏｋｕｄｏｍｅ ＆ Ｈａｙｅｓ，２０１３）。
【0037】
現在では、最もよくあるリキッドバイオプシーの臨床使用は、治療法の決定に情報を提供するための、療法に応答した腫瘍量の監視および耐性に関連する遺伝子異常の特定である（Ａｚａｄ ｅｔ ａｌ．，２０１５；Ｆｒｉｂｂｅｎｓ ｅｔ ａｌ．，２０１６；Ｍｉｓａｌｅ ｅｔ ａｌ．，２０１２；Ｗｅｉｇｅｌｔ ｅｔ ａｌ．，２０１７）。
【0038】
分子バーコードの導入は、極端に高いレベルのシークエンシング深度（すなわち、約２５，０００カバレッジ）が求められることから追加のコストの代償を払って、塩基配列決定法の感度をかなり高めた（０．０１％の変異アレル頻度まで下げた）（Ｋｉｎｄｅ，Ｗｕ，Ｐａｐａｄｏｐｏｕｌｏｓ，Ｋｉｎｚｌｅｒ，＆ Ｖｏｇｅｌｓｔｅｉｎ，２０１１；Ｎｅｗｍａｎ ｅｔ ａｌ．，２０１６；Ｓｃｈｍｉｔｔ ｅｔ ａｌ．，２０１２）。
【0039】
この、およびさらなる技術的進歩を利用して、多くの研究が、臨床的に意義のある、１ミリリットルの血漿当たり１個未満までもの変異体テンプレート分子の感度で、初期段階の癌の患者における遺伝子異常を記述している（Ａｂｂｏｓｈ ｅｔ ａｌ．，２０１７；Ａｒａｖａｎｉｓ，Ｌｅｅ，＆ Ｋｌａｕｓｎｅｒ，２０１７；Ｂｅｔｔｅｇｏｗｄａ ｅｔ ａｌ．，２０１４；Ｃｏｈｅｎ ｅｔ ａｌ．，２０１７；２０１８）。
【0040】
の患者および健康な対照がこのような試験手法に必要とされる感度および特異性を確立するのに必要であることから、上記進歩があるにもかかわらず、ｃｔＤＮＡ解析の潜在的臨床適用の中で、早期発見は、最も高い目標のままである（Ｄｅ Ｍａｔｔｏｓ－Ａｒｒｕｄａ ｅｔ ａｌ．，２０１４）。
【0041】
さらに、無症候性患者における加齢関連クローン性造血もまた、擬陽性の結果の発生源の可能性があり（Ｃｏｈｅｎ ｅｔ ａｌ．，２０１８）、一般集団において完全には理解されていない現象であるが、血液癌血液癌から生存した（すなわち、臨床的に治癒したと見なされる）患者では確率されている（Ｃｒｅｅ ｅｔ ａｌ．，２０１７；Ｇｅｎｏｖｅｓｅ ｅｔ ａｌ．，２０１４）。
【0042】
重要なのは、健常者における全体ゲノム不安定性の監視が、早期アクセススクリーニング予防プログラムに参加しうる亜集団の特定に繋がり得ることである。それにもかかわらず、健常者のｃｆＤＮＡの回収およびキャラクタリゼーションは、ｃｆＤＮＡがこれらの患者で量が少ないこと、および健康な対照におけるｃｆＤＮＡ解析を記載した研究はほんの僅かであることを考慮すると、難易度の高いものである可能性がある（Ｃｏｈｅｎ ｅｔ ａｌ．，２０１８；Ｃｒｅｅ ｅｔ ａｌ．，２０１７）。従って、上述したモデルは、健常者から単離したｃｆＤＮＡの抽出および解析が技術的に行い得ることが実証された適切な技術的検証の後でのみ成功し得ると言うことが、直感的にわかる。原理研究の我々の証拠としてこの目的を達成するために、我々は、採血時に臨床的健常者（すなわち、何らの顕在化した病状により影響を受けていない者）の採集物でｃｆＤＮＡを探索できるかを調査した。第１に、我々は、組織学的に確定診断された乳腺癌または肺癌の患者から得たｃｆＤＮＡ試料を解析することにより、我々の試験戦略の信頼性を評価した。特に、我々は、対応する組織と血漿供試体における変異状態の一致を評価した。次に、我々は、１～１０年以内（平均＝８．３９年、表１）の追跡調査で何らの腫瘍を発症しなかった個体ならびに、追跡調査期間中に良性の新生物または癌を発症した個体の両方を含む健康なドナーの一群を解析した。全体として、我々の調査は、ゲノム異常を調査するために健常者のｃｆＤＮＡを分子バーコード化ウルトラディープシークエンシングにより抽出および解析する技術的可能性を実証している。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0043】
【文献】米国特許出願公開第２０１３／１４３７４７号明細書
【文献】米国特許出願公開第２０１６／０１０２３５８号明細書
【文献】米国特許出願公開第２０１６／０１３０６４８号明細書
【非特許文献】
【0044】
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【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0045】
本発明の目的
本発明の主目的は、臨床的に健康な個体の、１つの形態の固形腫瘍の発症の前駆的遺伝子状態、すなわち、遅かれ早かれ、ほぼ確実に監視されている腫瘍の形態をその個体に発症させることになる状態への移行の評価を得ることができる監視方法を提供することである。
本発明の主目的は、臨床的に健康な個体の、１つの形態の固形腫瘍の発症の前駆的遺伝子状態、すなわち、遅かれ早かれ、ほぼ確実に監視されている腫瘍の形態をその個体に発症させることになる状態への移行の評価を得ることができる監視方法を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【0046】
この目的および他の目的は、健康な個体における、脳腫瘍を除く固形腫瘍の発症の前駆的な遺伝子状態の探索および特定方法（アルゴリズムおよび関連データベースに基づく）に関する本発明により達成される。本方法は、前述の固形腫瘍の発症に関連する遺伝子から選択される遺伝子パネルに関連する変異頻度に関する一連の定期的評価サイクルに基づき上述の状態を規定する。
【0047】
前記方法は、個体から生物試料（体液、例えば、血液、尿または髄液により構成される）を採取すること、ＤＮＡを単離することおよび増幅することならびにその塩基配列決定をすることを含む。その後の解析ステップは、監視遺伝子のための既知変異リストから選択される前述の遺伝子パネルに関連し、腫瘍性細胞の形成に向けた変化を示す、１つまたは複数の変異の存在の評価を含む。
【0048】
特に、ＮＧＳ技術（次世代シーケンシング）を用いた評価が、５０種の遺伝子、およびＣＯＳＭＩＣデータベース（Ｃａｔａｌｏｇｕｅ Ｏｆ Ｓｏｍａｔｉｃ Ｍｕｔａｔｉｏｎｓ Ｉｎ Ｃａｎｃｅｒ－ｈｔｔｐ：／／ｃａｎｃｅｒ．ｓａｎｇｅｒ．ａｃ．ｕｋ／ｃｏｓｍｉｃ）で分類された合計２，８００種の変異に対し実施される。
【0049】
全ての監視遺伝子に対し、全ての評価サイクルは、既知のホットスポット（癌患者で高頻度で変異する位置）で発生する変異に対する特別の注意を払って、監視遺伝子に関連する変異の存在を検出する。変異の場合には、この検出変異が以前の評価サイクルで既に見つかっているかどうか、およびどのレベル（変異パーセンテージまたは比率－アレル頻度）で見つかっているかどうかをチェックする。以前に見つかっていない場合には、この遺伝子に関連する新規変異が登録され、アルゴリズムにより変異頻度で経時的に示される傾向を示す値が計算される。この値は、システムの「重要リスク指標」となる。この傾向は、数値で表され、変異頻度の最後の値と、以前の評価サイクルで得られた値との間の関係を計算することにより得られ、また、その傾向は、ダイアグラムで表され、遺伝子安定性または不安定性のレベルの指標を与える。
【0050】
変異に頻度に対して決定された閾値レベルを超えたことが検出されると、本発明の特定方法に従って、遺伝子不安定性コースへの移行に関してレポートが発行され、その間、さらなる変異は、確実にまたは極めて高確率で、時間経過に伴い個体に固形腫瘍を発症させることになる。
【0051】
全ての評価サイクルに対し考慮された遺伝子パネルおよびそれらの変異は、ここでも、全範囲の５０種の固形腫瘍の発症に関連する遺伝子を含むことができ、またはいくつかの遺伝子のみおよび１つまたは複数の選択した腫瘍のみに関連するホットスポットを含むこともできる。
【0052】
特に、不安定性が１種の腫瘍タイプのみまたは単一の腫瘍ファミリーのみの発症に関連する、個体の遺伝的状況を監視することができる。この場合には、解析される遺伝子の数は、その腫瘍またはその腫瘍グループに直接に関連するものに限定される。
【0053】
本発明によると、解析されるべき遺伝子および変異のパネルは、家族歴調査により得られた対象者の既往歴に基づいて選択できる。
【0054】
検出された変異の頻度が、所与の変異に対し、アレル頻度（上記で定義したものによる）の数の増大である所定の値、例えば、１０％（数値は、数年にわたり蓄積されることになるデータに応じて、どのようにも更新できる）を超えて増大する傾向を示す（例えば、ＡＰＣ遺伝子の変異のアレル頻度はその後の試験の繰り返しで０．１％～５％を超える）場合、監視システムは、変異の増加に関与する遺伝子に関して、検査されるパネルに関連する感度を１００％まで高める（すなわち、システムは、今度は、第１のレベルの試験に比べて、より高い感度および解析的特異性を有する異なるパネルを用いて、試験を再度行うかを患者に尋ねる）。
【0055】
方法は、選択した遺伝子パネルの解析サイクルの繰り返し頻度および解析される遺伝子に関連する感度などの評価パラメーターの連続的な更新を含む。特に、繰り返し頻度は、安定性指数を基準にして決定され、さらに正確には、不安定性指数のより高い値に対応して、より多い頻度で試験が繰り返される。理由は、不安定性状況は、自然に増加する傾向があり、新規の影響のある変異をより急速に有する確率が高くなることが想定されているためである。
【0056】
本発明では、各評価サイクルに対し解析されるＤＮＡに関連する全ての生データおよび得られた結果は、その後のサイクル中に記録され、処理されて、利用可能なデータの量が増加するのに伴い、評価の精度が改善される。
【0057】
可能な限り少ない侵襲で、リスク状態の評価および予測を行うために、解析されるＤＮＡを単離するために個体から採取された生物試料は、リキッドバイオプシー（既に本明細書で定義したとおり）により構成される。本発明の好ましい実施形態では、リキッドバイオプシーは、末梢血試料である。
【0058】
本発明の一実施形態では、リキッドバイオプシーは、尿である。
【0059】
生物試料から単離され、リスク状態の評価および予測のために使用されるＤＮＡは、ｃｆＤＮＡ（セルフリーＤＮＡ）である。
【0060】
本発明の一実施形態では、ｃｆＤＮＡは、末梢血試料から分離された血漿から単離される。
【0061】
本発明の別の実施形態では、ｃｆＤＮＡは、末梢血試料から分離された血漿から単離される。
【0062】
本発明による方法は、収集されたリキッドバイオプシー中のｃｔＤＮＡ（循環腫瘍ＤＮＡ）を探索することも含む。
【0063】
ｃｔＤＮＡが検出されると、リスクの評価および予測方法は、そのタスクの実施を実質的に停止する。理由は、それが、少なくとも１つの変異株が新生細胞の形成を生じたことを意味するためである。この時点で、リスク評価および予測のためのシステムは、個体の管理を、例えば、本出願者により開発され、使用されている、ＳＣＥＤシステム（固形癌早期検出（Ｓｏｌｉｄ Ｃａｎｃｅｒ Ｅａｒｌｙ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ））などの早期検出システムに移すことを目的とした情報を発行する。
【0064】
特許請求の範囲から明らかとなる本発明の特徴は、添付図面に関連して、次の詳細説明で示される。
【図面の簡単な説明】
【0065】
【図1】本発明の一般的実施形態により固形腫瘍の発症の前駆的遺伝子状態を探索および特定する方法のフローチャーチを示す図である。
【図2】本発明の方法に従って、遺伝子安定性状態または不安定性状態を規定する変異の評価に関与する遺伝子パネルのリストを示す。
【発明を実施するための形態】
【0066】
本発明は、前記状態への移行の可能性に関連して、個体の遺伝子安定性の傾向の変化を基準にして、個体の経時的監視のために、健康な個体の脳腫瘍を除く固形腫瘍の発症の前駆的遺伝子状態を探索および識別する方法に関する。
【0067】
脳腫瘍は通常、本発明による固形腫瘍の発症の前駆的遺伝子状態を探索および特定する方法に使用される手法から除外される。現時点では、この手法を脳腫瘍に対しても使用可能とする科学的証拠は、十分ではない。このタイプの腫瘍の発症に関連する遺伝子セットは、現時点では、まだ、適切に特定されておらず、それらは、その配列の特定の変異ではなく、ＤＮＡメチル化状態に主に関連していると思われる。実際に、提案されたパネルは、ＤＮＡメチル化状態の評価に向いていない。さらに、Ｂｅｔｔｅｇｏｗｄａ，Ｃ．らにより既に記載されているように（Ｂｅｔｔｅｇｏｗｄａ，Ｃ．ｅｔ ａｌ．Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ ｏｆ ｃｉｒｃｕｌａｔｉｎｇ ｔｕｍｏｒ ＤＮＡ ｉｎ ｅａｒｌｙ－ ａｎｄ ｌａｔｅ－ｓｔａｇｅ ｈｕｍａｎ ｍａｌｉｇｎａｎｃｉｅｓ．Ｓｃｉｅｎｃｅ ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎａｌ ｍｅｄｉｃｉｎｅ ６，２２４ｒａ２２４，ｄｏｉ：１０．１１２６／ｓｃｉｔｒａｎｓｌｍｅｄ．３００７０９４－２０１４）、血液脳関門が全身循環中のｃｆＤＮＡの存在をかなり減らすフィルターを形成している可能性が高いことを明記する必要がある。従って、現在の抽出およびその後の解析技術は、腫瘍リスクの解析のために使用されるのに十分に強力なデータを提供できない。
【0068】
本方法は、前述の固形腫瘍の発症に関連する遺伝子から選択される遺伝子パネルに関連する変異頻度の一連の定期的評価サイクルを、所定の間隔で実施することを含む。図１は、後ほど記載する方法のステップの可能なワークフローを例として示す。本発明の範囲から逸脱することなしに、ワークフローの基本的な変更は可能ではない。
【0069】
別に定める場合を除き、本治療で使用される技術用語は、当業者に一般的におよび明確に既知の意味を有する（例えば、「リキッドバイオプシー」、「ＤＮＡ単離」、「ＤＮＡ増幅」、「ＤＮＡ塩基配列決定法」、「ｃｔＤＮＡ」、「ｃｆＤＮＡ」、「循環腫瘍細胞」、など）。また、本発明による方法を実施するために使用されると言及され、そのように意図されている分子生物学遺伝子工学の技術（例えば、「ＮＧＳ－次世代シークエンシング」）は、実際によく使用される標準的技術であり、また、当業者によく知られている。
【0070】
固形腫瘍の発症の前駆的遺伝子状態の探索および特定の各サイクルで、本発明により提案される方法は、個体からの生物試料を採取すること、生物試料からＤＮＡを単離すること、およびその後、ＤＮＡの該当画分を適切に増幅した後で、好ましくはＮＧＳ技術を用いてその塩基配列決定を行うことを含む。
【0071】
可能な限り少ない侵襲で、リスク状態の評価および予測を行うために、ＤＮＡを単離して解析するために個体から採取された生物試料は、リキッドバイオプシーから構成される。リキッドバイオプシーは、個体内を循環している液体または半液体生体物質により実質的に形成され、実質的に体液の分泌または排泄により生成される。
【0072】
本発明の好ましい実施形態では、リキッドバイオプシーは、末梢血試料であり、これは、採取され、処理されて、必要があれば、その後の使用に応じて、血漿または血清に分離される。
【0073】
本発明の別の実施形態では、リキッドバイオプシーは、尿である。
【0074】
本発明では、生物試料から単離され、リスク状態の評価および予測のために使用されるＤＮＡは、ｃｆＤＮＡ（セルフリーＤＮＡ）である。
【0075】
循環遊離ＤＮＡ、ｃｆＤＮＡ（セルフリーＤＮＡ）は、ＭｅｎｄｅｌおよびＭｅｔｉｓにより、約７０年前に初めて示された。上述のＤＮＡは、壊死細胞（成熟前の死）および／またはアポトーシス細胞（プログラム死）に由来し、通常、全ての種類の細胞により放出される。ｃｆＤＮＡの発見の約４０年後、Ｓｔｒｏｕｎらは、特定の発癌性異常がｃｆＤＮＡ中にも同様に特定され得ることを示した。その後、腫瘍に関連する特定の異常を研究することにより、循環腫瘍ＤＮＡ（ｃｔＤＮＡ）の存在を確証するいくつかの論文が刊行された。従って、Ｂｅｔｔｅｇｏｗｄａ，Ｃ．ら（Ｂｅｔｔｅｇｏｗｄａ，Ｃ．ｅｔ ａｌ．Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ ｏｆ ｃｉｒｃｕｌａｔｉｎｇ ｔｕｍｏｒ ＤＮＡ ｉｎ ｅａｒｌｙ－ ａｎｄ ｌａｔｅ－ｓｔａｇｅ ｈｕｍａｎ ｍａｌｉｇｎａｎｃｉｅｓ．Ｓｃｉｅｎｃｅ ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎａｌ ｍｅｄｉｃｉｎｅ ６，２２４ｒａ２２４，ｄｏｉ ：１０．１１２６／ｓｃｉｔｒａｎｓｌｍｅｄ．３００７０９４－２０１４）により既に記載されたように、ｃｔＤＮＡは、総ｃｆＤＮＡの一部であり、極めて初期段階の０．０１％～１％から進行段階での４０％までであると推定されている。
【0076】
既に述べたように、血液では、アポトーシスは、ｃｆＤＮＡを生成する最も高頻度のプロセスであると思われるが、癌患者では、壊死プロセスにより得られる部分も完全には無視できない。
【0077】
血清および血漿中のｃｆＤＮＡの量および変動性は、健康な対照より病気の患者で、特に、初期段階よりも進行段階の症例で、かなり大きいと思われる。
【0078】
ｃｆＤＮＡの量は、炎症過程などの生理病理学的条件によっても影響を受け、また、ｃｆＤＮＡは安定性が極めて低く（１５分から最大数時間まで）、従って、結果の信頼性および一貫性は必ずしも保証されるとは限らないことを考慮すべきである。この場合、試験の定期的繰り返しに基づく手法は、偽陰性の発生率が低いという利点がある。
【0079】
６０種の固形腫瘍および３１種の血液腫瘍中の２，８００種の変異（ＣＯＳＭＩＣ）をカバーする癌に関与する５０種の遺伝子（図２参照）を評価できるＮＧＳパネルを用いた調査により、乳腺転移性腫瘍の１７人の患者を解析し、組織と血漿との間の７６％の一致が推定されている。これらのデータから、著者は、血漿は、転移生検の代わりとして、腫瘍のスクリーニングのために採用した生物試料と見なすことができるという結論に至った。
【0080】
本発明の一実施形態では、ｃｆＤＮＡは、個体から採取した末梢血試料から分離された血漿から単離される。
【0081】
本発明の別の実施形態では、ｃｆＤＮＡは、個体から採取した末梢血試料から分離された血清から単離される。
【0082】
既知技術に従って、血漿中に存在するｃｆＤＮＡは、シリカまたはシリコーン樹脂で被覆された磁気ビーズを用いて単離できる。両方の場合において、ｐＨが７．５近傍の高濃度のカオトロピック塩の存在下で、ＤＮＡ（負に帯電している）のシリカ（正に帯電している）と結合する能力が活用される（Ｃｈｅｎ ａｎｄ Ｔｈｏｍａｓ，１９８０；Ｍａｒｋｏ ｅｔ ａｌ．１９８２；Ｂｏｏｍ ｅｔ ａｌ．１９９０）。ＤＮＡのシリカへの結合は、カオトロピック塩により、および弱い静電反発力と競合する水素結合の形成により誘導された脱水により誘導される（Ｍｅｌｚａｋ ｅｔ ａｌ．１９９６）。その後に、過剰塩、タンパク質、炭水化物、代謝物およびその他の混入物質は、アルコール溶液による反復洗浄により除去される。最終的に、精製ＤＮＡが低イオン強度溶液（ＴＥ－バッファーまたは水などの）により溶出される。
【0083】
本発明によるリスクの評価および予測方法の次のステップは、選択したホットスポット群に特別な注意を払った、選択した遺伝子パネル（図１）の解析からなり、このステップは、監視遺伝子のための既知変異リストから選択される前述の遺伝子パネルに関連し、腫瘍性細胞の形成に向けた変化を示す、１つまたは複数の変異の存在の評価を含む。
【0084】
例えば、米国および欧州の肺腫瘍（非小細胞型）を罹患している患者の約１０％が、遺伝子の観点からＥＧＦＲ遺伝子の変異により特徴付けられる（Ｌｙｎｃｈ ｅｔ ａｌ ２００４ ；．Ｐａｅｚ ｅｔ ａｌ ２００４ ；．Ｐａｏ ｅｔ ａｌ．，２００４）。これらの変異は、主に、ＥＧＦＲエキソン１８～２１内で発生し、これはＥＧＦＲのチロシンキナーゼドメインの一部をコード化している。エキソン１９に関連するこれらの変異の約９０％は、欠失であるか、またはエキソン２１ではＳＮＶである（変異Ｌ８５８Ｒと同様）（Ｌａｄａｎｙｉ ａｎｄ Ｐａｏ ２００８）。これらの変異は、ＥＧＦＲタンパク質のチロシンキナーゼ活性を高め、腫瘍細胞の生存を亢進させる細胞経路の過剰活性化を促す（Ｓｏｒｄｅｌｌａ ｅｔ ａｌ．２００４）。民族起源に関係なく、ＥＧＦＲ遺伝子の変異は、腺癌型組織を有する非喫煙女性患者（患者の全人生の間に１００本未満のシガレット）でより高頻度に認められる（Ｌｙｎｃｈ ｅｔ ａｌ．２００４）。しかし、ＥＧＦＲ遺伝子に関連するこれらの変異は、他の肺癌患者、すなわち喫煙者のサブグループでも見つけることができる。「健康な」ように見える患者のｃｆＤＮＡ中の上述の変異の存在は、腫瘍塊の存在を評価するために、必然的に監視および一連の完全な検査により追跡されなければならないという明白な警鐘である。
【0085】
特に、ｃｆＤＮＡは、現時点で２，８００種のＣＯＳＭＩＣ変異（Ｃａｔａｌｏｇｕｅ Ｏｆ Ｓｏｍａｔｉｃ Ｍｕｔａｔｉｏｎｓ Ｉｎ Ｃａｎｃｅｒ）をカバーする図２で与えられるリストの５０種の遺伝子に対し、ＮＧＳ技術（次世代シーケンシング）で評価される。
【0086】
本発明の目的に関して、この分野ならびに利用可能な最近の塩基配列決定および解析技術の集中的研究により、１つまたは複数の固形腫瘍形態の発癌に関与する新規遺伝子、新規ホットスポットまたは新規変異の特定に至り得ることから、評価される遺伝子リストおよび変異のリストの両方は、変化しないものと考えるべきではないことは理解されよう。
【0087】
各評価サイクルは、各監視遺伝子に対し、既知のホットスポットで発生する変異に特別の注意を払って、それに関連する変異（ＥＧＦＲの上記例を参照）を探索する。有意な変異が存在する場合、これは、方法の計算処理ステップを実行するように物理的に指示されているコンピューター化システムの記憶領域に記録される（図１）。
【0088】
各繰り返し試験サイクル、すなわち、最初のサイクル後の各サイクルでは、検出された変異が以前の評価サイクルで既に検出されているかどうかがチェックされる。以前に見つかっていない場合には、この遺伝子に関連する新規変異が登録され、アルゴリズムにより変異頻度が経時的に示す傾向を示す値が計算される。この値は、システムの「重要リスク指標」となる。
【0089】
この傾向は、数値で表され、変異の最後の頻度値と、以前の評価サイクルで得られた値との間の関係を計算することにより得られ、また、その傾向は、ダイアグラムで表され、遺伝子安定性または不安定性のレベルの指標を与える。
【0090】
本発明による方法の非制限的実施形態では、２つのチェック間の比較は、式（数１）による総遺伝子不安定性指数ＩＴにより合計できる。式（数１）中、ｎはチェックが実施される遺伝子の数である。
【0091】
【数1】
【0092】
この場合、総不安定性指数ＩＴは、全体の状況を表し、特定の遺伝子の変化の間の区別はしないことに留意されたい。
【0093】
同様にして、式（数２）に従って、特定の遺伝子の不安定性指数ＩＧを定義できる。式（数２）中、ｎ：チェックが実施される遺伝子の評価されたホットスポットの数である。
【0094】
【数2】
【0095】
全ての評価サイクルに対し考慮された遺伝子パネルおよびそれらの変異は、ここでも、全範囲の５０種の固形腫瘍（図２）の発症に関連する遺伝子を含むことができ、またはいくつかの遺伝子のみおよび１つまたは複数の選択した腫瘍のみに関連するホットスポットを含むこともできる。
【0096】
特に、不安定性が１種の腫瘍タイプのみまたは単一腫瘍ファミリーのみの発症のリスクを監視することができる。この場合には、解析される遺伝子の数は、その腫瘍またはその腫瘍グループに直接に関連するものに限定される。
【0097】
いずれの場合でも、上記のプロセスによる不安定性指数の定義は、予め固定された探索標的に応じて、単一遺伝子、特定の腫瘍または腫瘍ファミリーの発症に関連する遺伝子セットからなるパネル、または一般的固形腫瘍の発症に関連する５０種の遺伝子（現時点で、または将来的に他の遺伝子が特定される場合には、より多くの遺伝子）からなる総パネルを含むことができる。
【0098】
本発明によると、解析されるべき遺伝子および変異のパネルは、家族歴調査により得られた対象者の既往歴に基づいて選択できる。
【0099】
評価サイクルにより検出された変異の頻度が、測定された変異に対し、アレル頻度の数の増大である所定の値、例えば、１０％（数値は、数年にわたり蓄積されることになるデータに応じて更新できる）を超えて増大する傾向を表す（例えば、ＡＰＣ遺伝子の変異のアレル頻度はその後の試験の繰り返しで０．１％～５％を超える）場合、監視システムは、変異の増加に関与する遺伝子に関して、検査されるパネルに関連する感度を１００％まで高める（すなわち、システムは、今度は、第１のレベルの試験に比べて、より高い感度および解析的特異性を有する異なるパネルを用いて、試験を再度行うかを患者に尋ねる）。
【0100】
例えば、パネルおよび市販の技術「Ｏｎｃｏｍｉｎｅ（登録商標）ｃｆＤＮＡ」を用いて、０．０５％の極めて低い検出レベルが得られる。これは、システムが、第１のレベルのスクリーニングとは異なる特定の化学（「Ｏｎｃｏｍｉｎｅ（登録商標）ＴａｇＳｅｑｕｅｎｃｉｎｇ」）に基づいて、解析したＤＮＡ試料のわずかに０．０５％で存在する変異を特定することができることを意味する。
【0101】
方法は、選択した遺伝子パネルの解析サイクルの繰り返し頻度および解析される遺伝子に関連する感度などの評価パラメーターの連続的な更新を含む。特に、繰り返し頻度は、安定性指数（いくつかの遺伝子のパネルが解析されるか、または単一の遺伝子が解析されるかに応じて、ＩＴまたはＩＧ）を基準にして決定され、さらに正確には、不安定性指数の低い値は、試験の基準繰り返し頻度を示すものであり、これは、例えば、１年に１回の試験であり得る。このような指数値の中等度の増加であっても、繰り返し頻度の増加を提案できる。理由は、不安定性状況は自然に増加する傾向があり、より短い時間で、新規の有意な変異のより大きな可能性を意味するためである。不安定性指数ＩＴ、ＩＧの特定の閾値ＩＴＳ、ＩＧＳの超過は、監視されている腫瘍または腫瘍群の発症時の前駆的遺伝子状態における変異の配列の変化と見なされ、すなわち、確実にまたは極めて高い確率で、上述の腫瘍、またはいずれの場合でも、監視腫瘍の少なくとも１種を発症するように個体を誘導する進路にあると見なされる。不安定性指数の閾値は、例えば、０．１に設定され得る。
【0102】
本発明では、特定の変異が発生し、腫瘍形成の進行を示す場合、試験の繰り返し頻度の段階的に増加することで、個体の状況の最良の監視および理解が可能である。
【0103】
本発明では、各評価サイクルに対し解析されるＤＮＡに関連する全ての生データおよび得られた結果は、その後のサイクル中に記録され、修正されて、利用可能なデータの量が増加するのに伴い、評価の精度が改善される。
【0104】
本発明の方法の別の特徴によると、体細胞変異の研究のためのｃｆＤＮＡの塩基配列決定は生殖細胞変異の解析と組み合わせられる。このために、既に記載されたことに従って、ホットスポット癌パネル（ＨＳＣＰ）を有するｃｆＤＮＡが単離および配列決定され、１％の感度で、腫瘍形成過程に関与する５０種の遺伝子中の２，８００種の変異の調査を可能とする。
【0105】
さらに、個体の生殖細胞ＤＮＡ、例えば、リンパ球ＤＮＡ、が単離および配列決定され、上述のＤＮＡ中の同じ変異の存在がチェックされる。本発明の目的に関しては、個体のリンパ球ＤＮＡは、同じリキッドバイオプシーから未分化で誘導でき、それから、ｃｆＤＮＡを採取および単離された、または別の最近のもしくは遙かに古い生検材料から単離された。理由は、リンパ球ＤＮＡ中に存在する生殖細胞変異は、個体の遺伝形質の一部を形成するためである。
【0106】
リンパ球ＤＮＡは、好ましくは、直接に比較できる結果を得るために、ｃｆＤＮＡ塩基配列決定と同じ読み深さで配列決定がなされる。
【0107】
従って、変異は、それがｃｆＤＮＡ解析で存在し、同じ読み深さで配列決定されたリンパ球ＤＮＡで存在しない場合、明確に体細胞性である。従って、次の変異セットが定義される：
セットＡ：ｃｆＤＮＡ中に見出される変異からなる；
セットＢ：ｃｆＤＮＡで使用されたのと同じパネルにより解析されたリンパ球ＤＮＡ中に見出される変異からなる；
セットＣ：ｃｆＤＮＡ中に存在するが、リンパ球中には存在しない変異として定義される体細胞変異からなる。
セットＡ：ｃｆＤＮＡ中に見出される変異からなる；
セットＢ：ｃｆＤＮＡで使用されたのと同じパネルにより解析されたリンパ球ＤＮＡ中に見出される変異からなる；
セットＣ：ｃｆＤＮＡ中に存在するが、リンパ球中には存在しない変異として定義される体細胞変異からなる。
【0108】
体細胞変異が特定される（すなわち、解析で、セットＣが空ではない）場合、このような体細胞変異が主に見出された組織は、既知の操作技術を用いて、ＣＯＳＭＩＣデータベースにより評価される。
【0109】
次のステップは、この場合にも同様に既知の操作技術を用いて、生殖細胞系列の解析から、これらの組織の腫瘍を発症するより高い確率があるかどうかを調査することである。上述の手法は、カスタマイズされたパネルにより実施され、そのパネルの定義は、見つかった体細胞変異または複数体細胞変異の関数であり、ｃｆＤＮＡ中の変異遺伝子（または複数変異遺伝子）を基準にして特定の腫瘍に対する個体の感受性の評価を可能とする。
【0110】
さらに、当該体細胞変異が肺、結腸または乳腺に関与する場合、循環ＤＮＡは、例えば、市販のパネルＯｎｃｏｍｉｎｅ（登録商標）により、および市販の技術Ｔａｇ＿Ｓｅｑ（登録商標）を用いて、より高い感度（最大０．１％）で解析される。
【0111】
これらの第１の解析が完了すると、評価は終了し、結果を説明し、評価し、個体を監視する新しい試験を計画するための腫瘍学的コンサルテーションの提案が行われる。
【0112】
本発明による方法は、遺伝子安定性の評価および腫瘍形成の前駆期の特定を完結する追加の機能として、採取されたリキッドバイオプシー中のｃｔＤＮＡ（循環腫瘍ＤＮＡ）を探索することも含む。このような作業は、図１に示すように、計算された不安定性指数が予め固定した閾値ＩＴＳ、ＩＧＳを超える場合のみに実施できるか、または不安定性指数の値がこの閾値未満である場合に、予防策として実施できる。
【0113】
ｃｔＤＮＡが検出されると、遺伝子安定性の評価および腫瘍形成の前駆期の特定の方法は、その機能を終了する。理由は、それが、少なくとも１つの変異株が新生細胞の形成を生じたことを意味するためである。この時点で、遺伝子状態の評価のためのシステムは、個体の管理を、例えば、本出願者により開発され、使用されている、ＳＣＥＤシステム（固形癌早期検出（Ｓｏｌｉｄ Ｃａｎｃｅｒ Ｅａｒｌｙ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ））などの早期検出システムに移すための情報を提供する。
【0114】
いくつかの用途は、単一固形腫瘍または固形腫瘍ファミリー、特に、肺、乳腺および卵巣、ならびに結腸直腸腫瘍に関連する遺伝子安定性の評価および腫瘍形成の前駆期の特定に重点を置いて、例として以下に記載される。
【0115】
実施例１：肺腫瘍
本発明の一実施形態では、遺伝子安定性の評価および腫瘍形成の前駆期の特定方法は、肺腫瘍の発症に関連する遺伝子状態の監視に適用される。
本発明の一実施形態では、遺伝子安定性の評価および腫瘍形成の前駆期の特定方法は、肺腫瘍の発症に関連する遺伝子状態の監視に適用される。
【0116】
肺腫瘍の発症に関する最も深刻なリスク因子は、シガレット喫煙である。喫煙者により吸入された煙の量とこのような腫瘍に罹患する確率の増加との間には、明確な対応関係が広く実証されており、既に事実と見なされている。
【0117】
いくつかの調査は、肺腫瘍に罹患するリスクは非喫煙者より喫煙者で１４倍高いことを報告している（１日当たり２０本を超えるシガレットのヘビースモーカーでは、最高２０倍まで）。シガレットの煙は、肺腫瘍１０症例中８／９症例の原因であるが、環境汚染、このタイプの癌に対する家族的素因、および他の肺疾患の存在が腫瘍に罹患する可能性を高め得る。
【0118】
肺腫瘍に関連する特定の遺伝子の特定の変異およびこのような変異の数と頻度が、将来的に腫瘍細胞を生じうる個人的リスクの定量化を基準にして、監視されている人に、適切な信頼性で、発生が検出されるかどうか、およびどの進展段階に達したかを知る可能性が提供される。
【0119】
本方法では、この場合の腫瘍発症の前駆的状態の定義は、肺腫瘍に直接的に関与する１１種の遺伝子、特に１６９種の種々のホットスポットの変異に関連付けられている。表１は、評価されるパネルを構成する遺伝子およびホットスポットのリストを示す。
【0120】
健康な個体に対する肺腫瘍に関連するパネルに関する遺伝子不安定性の評価法の適用が例として記載される。
【0121】
４５歳の男性患者から１０ｃｃの末梢血を採取し；血液を遠心分離して、血球成分（リンパ球および赤血球）から血漿を分離する（循環遊離ＤＮＡを含有）。この患者では、４ｍｌの血漿から出発して、１４μＬのｃｆＤＮＡが２．３６ｎｇ／μＬの濃度で抽出される。２０ｎｇのｃｆＤＮＡを用いて、いわゆる、「ＮＧＳライブラリー」、すなわち、明確に供試体を規定するバーコード（合成ＤＮＡ配列）に関連付けられた一連のＤＮＡ断片を作製する。読み取り濃度（３３９０ｐＭ）を基準にして、このようなライブラリーは、その他の供試体（これらのそれぞれは異なるバーコードを有する）から得られたライブラリーと混合（プーリング）される。ｃｆＤＮＡの配列が決定され、表１（肺）の遺伝子およびホットスポットパネルが解析され；ＫＲＡＳ遺伝子の変異ｐ．Ｇ１２Ｄが０．４９％で見つかる。
【0122】
６ヶ月後、同じ解析を繰り返し、ＫＲＡＳ遺伝子の同じ変異ｐ．Ｇ１２Ｄが１．０５％で見つかり、不安定性指数が式（数３）を用いて計算され、値０．０４７が得られる。指数値は０．１の閾値未満なので、６ヶ月後に試験が繰り返されることが推奨される。
【0123】
【数3】
【0124】
【表1】
【0125】
実施例２：乳腺および卵巣腫瘍
本発明による方法を実施する遺伝子安定性の評価および腫瘍形成の前駆期の特定の試験は、特殊な方法で、ホルモン補充療法、避妊、または卵巣刺激を受けた、または過去に受けたことがある女性に適用される。
本発明による方法を実施する遺伝子安定性の評価および腫瘍形成の前駆期の特定の試験は、特殊な方法で、ホルモン補充療法、避妊、または卵巣刺激を受けた、または過去に受けたことがある女性に適用される。
【0126】
さらに、他の特定の監視および予防、例えば、子宮または卵巣腫瘍を発症する高いリスクを有する遺伝性ＢＲＣＡ １｜２変異を有する女性に対する予防プログラムの事例で有利に使用できる。
【0127】
この場合に使用された遺伝子および変異パネルは、表にリストされた１０種の遺伝子および１５９種のホットスポットを含む（表２参照）。
【0128】
乳腺－卵巣腫瘍に関連するパネルに関する遺伝子不安定性の評価方法の健康な個体に対する適用が例として記載される。
【0129】
５７歳の女性患者から１０ｃｃの末梢血を採取し；血液を遠心分離して、血球成分（リンパ球および赤血球）から血漿を分離する（循環遊離ＤＮＡを含有）。この患者では、４ｍｌの血漿から出発して、１４μＬのｃｆＤＮＡが１．７１ｇ／μＬの濃度で抽出される。２０ｎｇのｃｆＤＮＡを用いて、いわゆる、「ＮＧＳライブラリー」、すなわち、明確に供試体を規定するバーコード（合成ＤＮＡ配列）に関連付けられた一連のＤＮＡ断片を作製する。読み取り濃度（３２４０ｐＭ）を基準にして、このようなライブラリーは、その他の供試体（これらのそれぞれは異なるバーコードを有する）から得られたライブラリーと混合（プーリング）される。ｃｆＤＮＡの配列が決定され、表２（乳腺および卵巣）の遺伝子およびホットスポットパネルが解析され；ＰＩＫ３ＣＡ遺伝子の変異ｐ．Ｈ１０４７Ｒが０．５７％で見つかる。
【0130】
６ヶ月後、同じ解析を繰り返し、ＰＩＫ３ＣＡ遺伝子の変異ｐ．Ｈ１０４７Ｒが１．７５％で見つかり、さらに、ＴＰ５３遺伝子の新規変異ｐ．Ｒ１７５Ｈが０．３４％で見つかり、不安定性指数が式（数４）で計算され、値０．１５２が得られる。指数値は０．１の閾値を超えるので、３ヶ月後に試験が繰り返されることが推奨される。
【0131】
【数4】
【0132】
【表2】
【0133】
実施例３：結腸および直腸腫瘍
結腸および直腸腫瘍のカテゴリーに関連する遺伝子安定性の評価および腫瘍形成の前駆期の特定は、それぞれのホットスポットに現時点で関連する全ての遺伝子をリストしている表３に示すように、１４遺伝子および２４６ホットスポットの定期的解析を含む。
結腸および直腸腫瘍のカテゴリーに関連する遺伝子安定性の評価および腫瘍形成の前駆期の特定は、それぞれのホットスポットに現時点で関連する全ての遺伝子をリストしている表３に示すように、１４遺伝子および２４６ホットスポットの定期的解析を含む。
【0134】
結腸直腸系に関連する腫瘍は、腸内粘膜中の大腸腺腫症などの良性病変の進展として発症する場合が多い。
【0135】
腫瘍の形成は、肥満症またはカロリーおよび脂肪に富む食事、および低繊維、または遺伝的因子、例えば、病態の家族歴などのいくつかのリスク因子により促進され得る。さらに、年齢、慢性腸内炎症性病態およびポリープの病歴は同様に、腫瘍の発症の一因となり、発症の確率を高め得る。
【0136】
良性新生物が悪性になるのに要する時間は、多くの場合極めて長く（７～１５年）、このような変化は、本発明の方法により提供される定期的試験の適用およびその結果のリスク状態の評価で有利に追跡できる。
【0137】
結腸直腸腫瘍に関連するパネルに関する遺伝子不安定性の評価方法の健康な個体に対する適用が例として記載される。
【0138】
６５歳の男性患者から１０ｃｃの末梢血を採取し；血液を遠心分離して、血球成分（リンパ球および赤血球）から血漿を分離する（循環遊離ＤＮＡを含有）。この患者では、４ｍｌの血漿から出発して、１４μＬのｃｆＤＮＡが１．４９ｇ／μＬの濃度で抽出される。２０ｎｇのｃｆＤＮＡを用いて、いわゆる、「ＮＧＳライブラリー」、すなわち、明確に供試体を規定するバーコード（合成ＤＮＡ配列）に関連付けられた一連のＤＮＡ断片を作製する。読み取り濃度（８１３０ｐＭ）を基準にして、このようなライブラリーは、その他の供試体（これらのそれぞれは異なるバーコードを有する）から得られたライブラリーと混合（プーリング）される。ｃｆＤＮＡの配列が決定され、表１（肺）の遺伝子およびホットスポットパネルが解析され；ＡＰＣ遺伝子の変異ｐ．Ｒ１４５０Ｔｅｒが０．１５％で見つかる。
【0139】
６ヶ月後、同じ解析を繰り返し、ＡＰＣ遺伝子の同じ変異ｐ．Ｒ１４５０＊が１．０５％で見つかり、不安定性指数が式（数５）を用いて計算され、値０．０２６が得られる。指数値は０．１の閾値未満なので、６ヶ月後に試験が繰り返されることが推奨される。
【0140】
【数5】
【0141】
【表3】
【0142】
上記は、単なる非限定例として記載されてきたことは理解されよう。従って、本発明のあり得る変更および変種は、上述のおよび以下で請求された、本方法に許諾された保護範囲内であると見なされる。
【0143】
実施例４ 方法の基本的事項に関する一般的研究
ｃｆＤＮＡ抽出
血液試料を、ＥＤＴＡ中にまたはＳｔｒｅｃｋ（登録商標）ＤＮＡチューブに採集した。血漿画分は、２回連続での、室温下、１６００ｘｇで３０分の遠心分離により分離した。収集した血漿を一定分量に分割し、－８０℃で使用するまで貯蔵した。ＭａｇＭａｘセルフリー全核酸単離キット（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いて、製造者の説明書に従って、０．４～５．５ｍｌの範囲の体積のｃｆＤＮＡを血漿から抽出した。ｃｆＤＮＡの量をｄｓＤＮＡ ＨＳアッセイキットを用いて、ＱｕＢｉｔ ２．０蛍光光度計（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ）により評価した。ｃｆＤＮＡの品質を、Ａｇｉｌｅｎｔ Ｈｉｇｈ Ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ Ｄ１０００ ＳｃｒｅｅｎＴａｐｅ Ｓｙｓｔｅｍ（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を用いて評価した。１４０～２００ｂｐの明確な断片サイズピークを有するｃｆＤＮＡ（補足ダイアグラム１）試料のみを解析用に選択した。
ｃｆＤＮＡ抽出
血液試料を、ＥＤＴＡ中にまたはＳｔｒｅｃｋ（登録商標）ＤＮＡチューブに採集した。血漿画分は、２回連続での、室温下、１６００ｘｇで３０分の遠心分離により分離した。収集した血漿を一定分量に分割し、－８０℃で使用するまで貯蔵した。ＭａｇＭａｘセルフリー全核酸単離キット（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いて、製造者の説明書に従って、０．４～５．５ｍｌの範囲の体積のｃｆＤＮＡを血漿から抽出した。ｃｆＤＮＡの量をｄｓＤＮＡ ＨＳアッセイキットを用いて、ＱｕＢｉｔ ２．０蛍光光度計（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ）により評価した。ｃｆＤＮＡの品質を、Ａｇｉｌｅｎｔ Ｈｉｇｈ Ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ Ｄ１０００ ＳｃｒｅｅｎＴａｐｅ Ｓｙｓｔｅｍ（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を用いて評価した。１４０～２００ｂｐの明確な断片サイズピークを有するｃｆＤＮＡ（補足ダイアグラム１）試料のみを解析用に選択した。
【0144】
ＮＧＳライブラリー作製
Ｏｎｃｏｍｉｎｅ（登録商標）肺ｃｆＤＮＡアッセイ、Ｏｎｃｏｍｉｎｅ（登録商標）乳腺ｃｆＤＮＡ研究アッセイｖ２およびＯｎｃｏｍｉｎｅ（登録商標）汎癌セルフリーアッセイ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）にそれぞれ基づいて、ＨｅｌｉＳｍｏｋｅｒ、ＨｅｌｉＧｙｎおよびＨｅｌｉＳａｆｅのワークフロー（Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅにより特許化）に従って、２．５～１０５．５ｎｇのｃｆＤＮＡからＮＧＳライブラリーを作製した。手短に説明すると、６４℃～５８℃の範囲で、２サイクルマルチプレックスタッチダウンＰＣＲ反応を総体積３０μｌで実施して、標的部位を増幅し、固有の分子識別子をＰＣＲ産物に導入した。次に、得られた１００～１４０ｂｐ長さのタグ付きアンプリコンをＡｍｐｕｒｅＸＰビーズ（Ａｇｅｎｃｏｕｒｔ）を用いて、１．５Ｘのビーズの試料に対する比率で洗浄し、精製産物を２４μｌの低ＴＥバッファーで溶出した。第２ラウンドのＰＣＲ（１８サイクル）を総体積５０μｌで実施して精製アンプリコンを増幅し、試料特異的バーコードを含むＩｏｎ Ｔｏｒｒｅｎｔ（登録商標）タグシーケンシングアダプターを導入した。得られた標的ＤＮＡ断片のライブラリーを、ＡｍｐｕｒｅＸＰビーズ（Ａｇｅｎｃｏｕｒｔ）を用いて、それぞれ１．１５Ｘおよび１．０Ｘのビーズの試料に対する比率で２段階洗浄を行うことにより精製した。その後、精製ライブラリーを１：１０００に希釈し、Ｉｏｎ Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｏｎキット（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いてｑＰＣＲにより定量化した。その後、下流のテンプレート作製のために、定量化したストックライブラリーを１００ｐＭに希釈した。
Ｏｎｃｏｍｉｎｅ（登録商標）肺ｃｆＤＮＡアッセイ、Ｏｎｃｏｍｉｎｅ（登録商標）乳腺ｃｆＤＮＡ研究アッセイｖ２およびＯｎｃｏｍｉｎｅ（登録商標）汎癌セルフリーアッセイ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）にそれぞれ基づいて、ＨｅｌｉＳｍｏｋｅｒ、ＨｅｌｉＧｙｎおよびＨｅｌｉＳａｆｅのワークフロー（Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅにより特許化）に従って、２．５～１０５．５ｎｇのｃｆＤＮＡからＮＧＳライブラリーを作製した。手短に説明すると、６４℃～５８℃の範囲で、２サイクルマルチプレックスタッチダウンＰＣＲ反応を総体積３０μｌで実施して、標的部位を増幅し、固有の分子識別子をＰＣＲ産物に導入した。次に、得られた１００～１４０ｂｐ長さのタグ付きアンプリコンをＡｍｐｕｒｅＸＰビーズ（Ａｇｅｎｃｏｕｒｔ）を用いて、１．５Ｘのビーズの試料に対する比率で洗浄し、精製産物を２４μｌの低ＴＥバッファーで溶出した。第２ラウンドのＰＣＲ（１８サイクル）を総体積５０μｌで実施して精製アンプリコンを増幅し、試料特異的バーコードを含むＩｏｎ Ｔｏｒｒｅｎｔ（登録商標）タグシーケンシングアダプターを導入した。得られた標的ＤＮＡ断片のライブラリーを、ＡｍｐｕｒｅＸＰビーズ（Ａｇｅｎｃｏｕｒｔ）を用いて、それぞれ１．１５Ｘおよび１．０Ｘのビーズの試料に対する比率で２段階洗浄を行うことにより精製した。その後、精製ライブラリーを１：１０００に希釈し、Ｉｏｎ Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｏｎキット（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いてｑＰＣＲにより定量化した。その後、下流のテンプレート作製のために、定量化したストックライブラリーを１００ｐＭに希釈した。
【0145】
塩基配列決定
ＮＧＳライブラリーを、半導体シーケンシング技術を用いて、Ｉｏｎ Ｓ５（登録商標）装置（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）で配列を決定した。手短に説明すると、塩基配列決定の実行をＴｏｒｒｅｎｔ Ｓｕｉｔｅ Ｓｏｆｔｗａｒｅ（登録商標）ｖ５．８で計画し、ライブラリーをプールし、Ｉｏｎ Ｃｈｅｆ（登録商標）装置（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いて、Ｉｏｎ ５４０（登録商標）チップにロードした。次に、ロードしたチップを初期化したＩｏｎ Ｓ５（登録商標）装置に挿入し、標準的サンバフロー順の５００フローを用いて配列を決定した。生データをＴｏｒｒｅｎｔ Ｓｅｒｖｅｒ（登録商標）上で自動的に処理し、基準ｈｇ１９ゲノムに整列させた。次の基準値に基づき各サンプルについてＱＣをマニュアルで実施した：試料当たりのリード数＞２，５００，００（Ｏｎｃｏｍｉｎｅ（登録商標）肺ｃｆＤＮＡアッセイライブラリーに対し）、＞４，０００，０００（Ｏｎｃｏｍｉｎｅ（登録商標）乳腺ｃｆＤＮＡ研究アッセイｖ２ライブラリーに対し）、＞１５，０００，０００（Ｏｎｃｏｍｉｎｅ（登録商標）汎癌セルフリーアッセイライブラリー）、オンターゲットリード＞９０％、リードの均一性＞９０％、分子カバレッジ中央値＞５００ｘ、リードカバレッジ中央値＞１５，０００。その後、ＱＣ合格試料の塩基配列決定データを、バリアントコールおよびアノテーションのために、ＢＡＭフォーマットでＩｏｎ Ｒｅｐｏｒｔｅｒ（登録商標）Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｓｅｒｖｅｒにアップロードした。
ＮＧＳライブラリーを、半導体シーケンシング技術を用いて、Ｉｏｎ Ｓ５（登録商標）装置（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）で配列を決定した。手短に説明すると、塩基配列決定の実行をＴｏｒｒｅｎｔ Ｓｕｉｔｅ Ｓｏｆｔｗａｒｅ（登録商標）ｖ５．８で計画し、ライブラリーをプールし、Ｉｏｎ Ｃｈｅｆ（登録商標）装置（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いて、Ｉｏｎ ５４０（登録商標）チップにロードした。次に、ロードしたチップを初期化したＩｏｎ Ｓ５（登録商標）装置に挿入し、標準的サンバフロー順の５００フローを用いて配列を決定した。生データをＴｏｒｒｅｎｔ Ｓｅｒｖｅｒ（登録商標）上で自動的に処理し、基準ｈｇ１９ゲノムに整列させた。次の基準値に基づき各サンプルについてＱＣをマニュアルで実施した：試料当たりのリード数＞２，５００，００（Ｏｎｃｏｍｉｎｅ（登録商標）肺ｃｆＤＮＡアッセイライブラリーに対し）、＞４，０００，０００（Ｏｎｃｏｍｉｎｅ（登録商標）乳腺ｃｆＤＮＡ研究アッセイｖ２ライブラリーに対し）、＞１５，０００，０００（Ｏｎｃｏｍｉｎｅ（登録商標）汎癌セルフリーアッセイライブラリー）、オンターゲットリード＞９０％、リードの均一性＞９０％、分子カバレッジ中央値＞５００ｘ、リードカバレッジ中央値＞１５，０００。その後、ＱＣ合格試料の塩基配列決定データを、バリアントコールおよびアノテーションのために、ＢＡＭフォーマットでＩｏｎ Ｒｅｐｏｒｔｅｒ（登録商標）Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｓｅｒｖｅｒにアップロードした。
【0146】
データ解析
バリアントコールをＩｏｎ Ｒｅｐｏｒｔｅｒ（登録商標）Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｓｏｆｔｗａｒｅ ｖ５．６で、Ｏｎｃｏｍｉｎｅ ＴａｇＳｅｑ 汎癌リキッドバイオプシー ｗ２．０およびＯｎｃｏｍｉｎｅ ＴａｇＳｅｑ 乳腺 ｖ２ リキッドバイオプシー ｗ２．０ワークフローを用いて実施した。アライメントパイプラインはまた、シグナル伝達処理、ベースコーリング、品質スコア割り付け、アダプタートリミング、ＰＣＲ重複除去およびマッピング品質管理を含んだ。ローカルリアライメント、重複除去および品質ベーススコア再較正も、Ｇｅｎｏｍｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｔｏｏｌｋｉｔ（ＧＡＴＫ）を用いて同様に実施した（ＭｃＫｅｎｎａ ｅｔ ａｌ．，２０１０）。Ｃｏｖｅｒａｇｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｐｌｕｇｉｎソフトウェアｖ５．６．１（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を実施することにより、各アンプリコンに対するカバレッジ基準値を得た。特定されたバリアントは、バリアントが少なくとも３の分子カバレッジを有し、そのバリアントが３つの独立したテンプレート分子中で検出されたことを示す場合にのみ考慮した。この戦略は、特定の体細胞変異を０．０１％までの分子アレル比率までコールすることを可能とする。最終的に、全ての候補変異は、Ｉｎｔｅｇｒａｔｉｖｅ Ｇｅｎｏｍｉｃｓ Ｖｉｅｗｅｒ（Ｔｈｏｒｖａｌｄｓｄｏｔｔｉｒ，Ｒｏｂｉｎｓｏｎ，＆ Ｍｅｓｉｒｏｖ，２０１３）を用いて、マニュアルで再調査された。
バリアントコールをＩｏｎ Ｒｅｐｏｒｔｅｒ（登録商標）Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｓｏｆｔｗａｒｅ ｖ５．６で、Ｏｎｃｏｍｉｎｅ ＴａｇＳｅｑ 汎癌リキッドバイオプシー ｗ２．０およびＯｎｃｏｍｉｎｅ ＴａｇＳｅｑ 乳腺 ｖ２ リキッドバイオプシー ｗ２．０ワークフローを用いて実施した。アライメントパイプラインはまた、シグナル伝達処理、ベースコーリング、品質スコア割り付け、アダプタートリミング、ＰＣＲ重複除去およびマッピング品質管理を含んだ。ローカルリアライメント、重複除去および品質ベーススコア再較正も、Ｇｅｎｏｍｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｔｏｏｌｋｉｔ（ＧＡＴＫ）を用いて同様に実施した（ＭｃＫｅｎｎａ ｅｔ ａｌ．，２０１０）。Ｃｏｖｅｒａｇｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｐｌｕｇｉｎソフトウェアｖ５．６．１（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を実施することにより、各アンプリコンに対するカバレッジ基準値を得た。特定されたバリアントは、バリアントが少なくとも３の分子カバレッジを有し、そのバリアントが３つの独立したテンプレート分子中で検出されたことを示す場合にのみ考慮した。この戦略は、特定の体細胞変異を０．０１％までの分子アレル比率までコールすることを可能とする。最終的に、全ての候補変異は、Ｉｎｔｅｇｒａｔｉｖｅ Ｇｅｎｏｍｉｃｓ Ｖｉｅｗｅｒ（Ｔｈｏｒｖａｌｄｓｄｏｔｔｉｒ，Ｒｏｂｉｎｓｏｎ，＆ Ｍｅｓｉｒｏｖ，２０１３）を用いて、マニュアルで再調査された。
【0147】
結果：
血漿体積およびｃｆＤＮＡ量は、バリアントコールのためのＬＯＤを決定する。
最初に、我々は、健常者または癌患者の血漿からｃｆＤＮＡの抽出のための堅牢なワークフローを確立することを試みた。表４は、解析したコホート特性をまとめたものである。標準的ＥＤＴＡ、または有核細胞の溶解を防止することにより細胞ＤＮＡによるｃｆＤＮＡの汚染を防止できる保存剤溶液を含む市販の容器を用いて末梢全血の収集後、我々は、材料と方法セクションで詳細に記載の磁気ビーズベースのキットを用いてＤＮＡ抽出を行った。使用した血漿の量は、健常者で０．４～２．０ｍｌ、および癌患者で１．５～５．５ｍｌの間で変動した（ダイアグラム１）。通常、癌患者コホートでは、２ｘ１０ｍｌの全血が各患者で収集されたので、さらに多くの血漿が解析用に利用可能である。逆に、健常者からは１ｘ１０ｍｌのみの全血が採取され、その一部がその他の解析に使用された。以前に観察されたように（最初は１９７７年に、（Ｌｅｏｎ，Ｓｈａｐｉｒｏ，Ｓｋｌａｒｏｆｆ，＆ Ｙａｒｏｓ，１９７７））、血漿中の総ｃｆＤＮＡ濃度は、健康な対象者に比べて癌患者において有意に高かった（ｐ＝０．０００６、ダイアグラム１Ａ）。血漿入力とｃｆＤＮＡ収量との間の有意な相関が、健康なドナー（ｒ＝０．２４４、ｐ＝０．００８９、ダイアグラム１Ｂ）および癌患者（ｒ＝０．５８７、ｐ＜０．０００１、ダイアグラム１Ｃ）から収集した試料中で観察された。次に、我々は、健康なおよび癌ドナー試料の処理中に生じた解析前の変数を比較した。最初に、我々は、ｃｆＤＮＡ入力に対する濃度として表されたライブラリー出力の量を相関付けることを目的とした。ＮＧＳライブラリー濃度は、健康なおよび癌試料の両方で、ｃｆＤＮＡ入力により有意に影響を受けた（それぞれ、ｒ＝０．３４８、ｐ＝０．００８８およびｒ＝０．６９９、ｐ＜０．０００１、ダイアグラム２Ａ～Ｂ）。特に、健常者は通常、癌患者に比べて、より低いレベルのｃｆＤＮＡを有するので（ダイアグラム１Ａ）、限られたＤＮＡ入力をライブラリー作製に使用し、多くの場合、最小限の製造業者の推奨量（すなわち１０ｎｇ）未満であった。固有のテンプレートＤＮＡテンプレートＤＮＡ分子数の増加で、一定した量のマップされたリードが得られるため、ｃｆＤＮＡの量が多いことで直接的に分子カバレッジがより高くなった（ダイアグラム２Ｅ～Ｆ）。逆に、使用した解析法で確実に検出できる最低の変異アレル頻度を示す検出限界（ＬＯＤ）は、癌患者で有意に低かった（ダイアグラム２Ｇ）。我々は、健常者および癌患者の両方でＬＯＤは明確にｃｆＤＮＡ存在量により影響を受け（ダイアグラム２Ｃ～Ｄ）、これらの２つの変数間で逆相関があることを示す。従って、我々のデータは、ｃｆＤＮＡの量は、塩基配列決定性能およびＬＯＤに直接影響することを示す。
血漿体積およびｃｆＤＮＡ量は、バリアントコールのためのＬＯＤを決定する。
最初に、我々は、健常者または癌患者の血漿からｃｆＤＮＡの抽出のための堅牢なワークフローを確立することを試みた。表４は、解析したコホート特性をまとめたものである。標準的ＥＤＴＡ、または有核細胞の溶解を防止することにより細胞ＤＮＡによるｃｆＤＮＡの汚染を防止できる保存剤溶液を含む市販の容器を用いて末梢全血の収集後、我々は、材料と方法セクションで詳細に記載の磁気ビーズベースのキットを用いてＤＮＡ抽出を行った。使用した血漿の量は、健常者で０．４～２．０ｍｌ、および癌患者で１．５～５．５ｍｌの間で変動した（ダイアグラム１）。通常、癌患者コホートでは、２ｘ１０ｍｌの全血が各患者で収集されたので、さらに多くの血漿が解析用に利用可能である。逆に、健常者からは１ｘ１０ｍｌのみの全血が採取され、その一部がその他の解析に使用された。以前に観察されたように（最初は１９７７年に、（Ｌｅｏｎ，Ｓｈａｐｉｒｏ，Ｓｋｌａｒｏｆｆ，＆ Ｙａｒｏｓ，１９７７））、血漿中の総ｃｆＤＮＡ濃度は、健康な対象者に比べて癌患者において有意に高かった（ｐ＝０．０００６、ダイアグラム１Ａ）。血漿入力とｃｆＤＮＡ収量との間の有意な相関が、健康なドナー（ｒ＝０．２４４、ｐ＝０．００８９、ダイアグラム１Ｂ）および癌患者（ｒ＝０．５８７、ｐ＜０．０００１、ダイアグラム１Ｃ）から収集した試料中で観察された。次に、我々は、健康なおよび癌ドナー試料の処理中に生じた解析前の変数を比較した。最初に、我々は、ｃｆＤＮＡ入力に対する濃度として表されたライブラリー出力の量を相関付けることを目的とした。ＮＧＳライブラリー濃度は、健康なおよび癌試料の両方で、ｃｆＤＮＡ入力により有意に影響を受けた（それぞれ、ｒ＝０．３４８、ｐ＝０．００８８およびｒ＝０．６９９、ｐ＜０．０００１、ダイアグラム２Ａ～Ｂ）。特に、健常者は通常、癌患者に比べて、より低いレベルのｃｆＤＮＡを有するので（ダイアグラム１Ａ）、限られたＤＮＡ入力をライブラリー作製に使用し、多くの場合、最小限の製造業者の推奨量（すなわち１０ｎｇ）未満であった。固有のテンプレートＤＮＡテンプレートＤＮＡ分子数の増加で、一定した量のマップされたリードが得られるため、ｃｆＤＮＡの量が多いことで直接的に分子カバレッジがより高くなった（ダイアグラム２Ｅ～Ｆ）。逆に、使用した解析法で確実に検出できる最低の変異アレル頻度を示す検出限界（ＬＯＤ）は、癌患者で有意に低かった（ダイアグラム２Ｇ）。我々は、健常者および癌患者の両方でＬＯＤは明確にｃｆＤＮＡ存在量により影響を受け（ダイアグラム２Ｃ～Ｄ）、これらの２つの変数間で逆相関があることを示す。従って、我々のデータは、ｃｆＤＮＡの量は、塩基配列決定性能およびＬＯＤに直接影響することを示す。
【0148】
癌患者のｃｆＤＮＡプロファイリングおよび組織との一致
合成ＤＮＡプロファイリングを採用する場合、以前の研究で、固有の分子識別子（ＵＭＩ）（Ｋｉｎｄｅ ｅｔ ａｌ．，２０１１；Ｋｉｖｉｏｊａ ｅｔ ａｌ．，２０１１；Ｓｃｈｍｉｔｔ ｅｔ ａｌ．，２０１２）の使用による高い分析感度を実証した。ここで、我々は、対応する検出バリアントの観点から、同じ患者の原発腫瘍または転移由来の循環ｃｆＤＮＡと対応するＦＦＰＥ組織との間の一致を調査することを試みた。この目的を達成するために、我々は、８人の乳癌患者から得たｃｆＤＮＡをＨｅｌｉＧｙｎプロトコル（Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅにより開発され、Ｏｎｃｏｍｉｎｅ ｃｆＤＮＡ Ｂｒｅａｓｔ ｖ２ Ａｓｓａｙに基づく）を用いて、および３０人の非小細胞肺癌（ＮＳＣＬＣ）患者から得たｃｆＤＮＡをＨｅｌｉＳｍｏｋｅｒプロトコル（Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅにより開発され、Ｏｎｃｏｍｉｎｅ ｃｆＤＮＡ Ｌｕｎｇ Ａｓｓａｙに基づく）を用いて解析し、好適なＯｎｃｏｍｉｎｅ Ａｓｓａｙを用いて、それを塩基配列決定ＦＦＰＥ組織により得られた結果と順次比較した（使用した遺伝子パネルに関する詳細は補足の表４に示す）。我々は、分子バーコード化ウルトラディープシークエンシング（Ｔａｇ Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇバーコード）を使用して、我々のリキッドバイオプシー試料のプロファイリングを行った。ｃｆＤＮＡおよび組織に対し使用したパネルの遺伝子の内容は、完全には重なり合っていなかったので、我々は、ｃｆＤＮＡおよび組織パネルの両方に包含される臨床的に意味のある変異にのみ焦点を絞った（補足の表４）。我々のデータは、ｃｆＤＮＡと組織の生成変異プロファイル間で実質的レベルの一致（７１％）を明確に示している（ダイアグラム３Ａ）。このことは、ｃｆＤＮＡ解析が組織ゲノムの特徴を確実に模倣するものであることを示唆している。一致の結果を示す２６％の試料に対し、追加の臨床的に意味のある変異（ダイアグラム３Ｄ、例えば、ＥＧＦＲ中のＴ７９０Ｍ）をリキッドバイオプシーにより検出した（ダイアグラム３Ａ、「プラス臨床的有用性」）。最も高頻度に報告されたバリアントは、乳癌に対するＰＩＫ３ＣＡ（考慮した全変異の３３％）およびＮＳＣＬＣ供試体に対するＥＧＦＲ（考慮した全変異の７０％）のコード領域内で発生する変異であった（ダイアグラム３Ｄ）。検出された全ての変異は、一致行列にまとめられている（補足ダイアグラム２Ａ～Ｂ、それぞれ、乳癌および肺癌試料に関して）。組織と採血との間の時間間隔は、０～７０ヶ月間の範囲であり、腫瘍の進展が、組織とリキッドバイオプシー解析との間の不一致の根底にある理由であり得、腫瘍不均一性のみが理由ではないことを示唆している（補足ダイアグラム２Ｃ）。血漿のみで検出された変異の中で、Ｔ７９０Ｍ耐性変異は、最も高頻度であった（血漿で検出され、組織ＮＧＳ解析で検出されなかった全変異の３２％、ダイアグラム３Ｄ）。これらのデータは、特に、獲得療法耐性に関連する変異を検出するための、ならびに我々の試験戦略の有効性を見出すための、組織生検と並行したリキッドバイオプシー使用の潜在的臨床的価値を確証する。
合成ＤＮＡプロファイリングを採用する場合、以前の研究で、固有の分子識別子（ＵＭＩ）（Ｋｉｎｄｅ ｅｔ ａｌ．，２０１１；Ｋｉｖｉｏｊａ ｅｔ ａｌ．，２０１１；Ｓｃｈｍｉｔｔ ｅｔ ａｌ．，２０１２）の使用による高い分析感度を実証した。ここで、我々は、対応する検出バリアントの観点から、同じ患者の原発腫瘍または転移由来の循環ｃｆＤＮＡと対応するＦＦＰＥ組織との間の一致を調査することを試みた。この目的を達成するために、我々は、８人の乳癌患者から得たｃｆＤＮＡをＨｅｌｉＧｙｎプロトコル（Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅにより開発され、Ｏｎｃｏｍｉｎｅ ｃｆＤＮＡ Ｂｒｅａｓｔ ｖ２ Ａｓｓａｙに基づく）を用いて、および３０人の非小細胞肺癌（ＮＳＣＬＣ）患者から得たｃｆＤＮＡをＨｅｌｉＳｍｏｋｅｒプロトコル（Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅにより開発され、Ｏｎｃｏｍｉｎｅ ｃｆＤＮＡ Ｌｕｎｇ Ａｓｓａｙに基づく）を用いて解析し、好適なＯｎｃｏｍｉｎｅ Ａｓｓａｙを用いて、それを塩基配列決定ＦＦＰＥ組織により得られた結果と順次比較した（使用した遺伝子パネルに関する詳細は補足の表４に示す）。我々は、分子バーコード化ウルトラディープシークエンシング（Ｔａｇ Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇバーコード）を使用して、我々のリキッドバイオプシー試料のプロファイリングを行った。ｃｆＤＮＡおよび組織に対し使用したパネルの遺伝子の内容は、完全には重なり合っていなかったので、我々は、ｃｆＤＮＡおよび組織パネルの両方に包含される臨床的に意味のある変異にのみ焦点を絞った（補足の表４）。我々のデータは、ｃｆＤＮＡと組織の生成変異プロファイル間で実質的レベルの一致（７１％）を明確に示している（ダイアグラム３Ａ）。このことは、ｃｆＤＮＡ解析が組織ゲノムの特徴を確実に模倣するものであることを示唆している。一致の結果を示す２６％の試料に対し、追加の臨床的に意味のある変異（ダイアグラム３Ｄ、例えば、ＥＧＦＲ中のＴ７９０Ｍ）をリキッドバイオプシーにより検出した（ダイアグラム３Ａ、「プラス臨床的有用性」）。最も高頻度に報告されたバリアントは、乳癌に対するＰＩＫ３ＣＡ（考慮した全変異の３３％）およびＮＳＣＬＣ供試体に対するＥＧＦＲ（考慮した全変異の７０％）のコード領域内で発生する変異であった（ダイアグラム３Ｄ）。検出された全ての変異は、一致行列にまとめられている（補足ダイアグラム２Ａ～Ｂ、それぞれ、乳癌および肺癌試料に関して）。組織と採血との間の時間間隔は、０～７０ヶ月間の範囲であり、腫瘍の進展が、組織とリキッドバイオプシー解析との間の不一致の根底にある理由であり得、腫瘍不均一性のみが理由ではないことを示唆している（補足ダイアグラム２Ｃ）。血漿のみで検出された変異の中で、Ｔ７９０Ｍ耐性変異は、最も高頻度であった（血漿で検出され、組織ＮＧＳ解析で検出されなかった全変異の３２％、ダイアグラム３Ｄ）。これらのデータは、特に、獲得療法耐性に関連する変異を検出するための、ならびに我々の試験戦略の有効性を見出すための、組織生検と並行したリキッドバイオプシー使用の潜在的臨床的価値を確証する。
【0149】
健常者のｃｆＤＮＡプロファイリング
最後に、我々は、血液採取の時点で（上記で定義のように）健康な個体のｃｆＤＮＡをプロファイリングすることを試みた。我々の患者コホートは、対照スクリーニングマモグラフィー検査を受け、定期的に１０年後まで追跡調査されたｎ＝１０６人の女性から構成された（表４）。血液をマモグラフィースクリーニングと同時に収集した。この調査のために、我々は、健常者を追跡調査時に臨床状態に基づいて４つの群に分類した。群１（ｎ＝２５）に属する個体は、追跡調査期間中に乳癌または他の悪性病変を何ら発症しなかった。群２では、個体（ｎ＝５２）は、追跡調査期間中に、線維腺腫および過形成などの乳房の線維嚢胞性変化を経験した。群３（ｎ＝１５）に割付けられた個体は、乳癌を発症し、群４（ｎ＝１４）では、個体は、乳癌以外の固形腫瘍を発症した。プロファイリングの結果をダイアグラム４に要約する。最初の段落で報告したように、我々は、全ての血漿試料からのｃｆＤＮＡ抽出をうまく達成し、ｃｆＤＮＡの値は、１．７～３０．８ｎｇ／ｍｌの範囲であった（ダイアグラム１Ａ）。回収率およびｃｆＤＮＡの品質（補足ダイアグラム１、物質および方法セクションに記載）に基づいて、我々は、さらなる分析のために５５種の試料を選択し（群Ｉ＝１２／２４；群ＩＩ＝２３／５２；群ＩＩＩ＝１１／１５；群ＩＶ＝９／１４；合計＝５５／１０６）、０．０４～０．３４の範囲のＬＯＤを得た（ダイアグラム２Ｃ、補足ダイアグラム１Ｄ）。我々は、ＨｅｌｉＧｙｎワークフロー（補足の表４）を用いて単離ｃｆＤＮＡを配列決定し、我々は、ＨｅｌｉＳａｆｅプロトコル（Ｏｎｃｏｍｉｎｅ ｃｆＤＮＡ汎癌Ａｓｓａｙ、補足の表４に基づいて。詳細は材料と方法に記載）を用いて、より広範囲の変異解析のために６種の試料を選択した。ほとんどの健常者（８４％）のｃｆＤＮＡ中で遺伝子異常は見つからなかった（ダイアグラム４Ａ）。しかも、解析した５５症例の内の７症例で、我々は、臨床的に意味のある遺伝子変異、特に、４０％を超えるアレル頻度の６種の既知生殖系列バリアントおよび４種の既知の癌ホットスポット変異を検出した（ダイアグラム４Ｄ、Ｅ）。重要なのは、血漿中のｃｆＤＮＡ濃度または達成された分子カバレッジを含む、解析前の変数に関して、４つの群間で有意差が認められなかったことである（ダイアグラム４Ｂ～Ｃ）。結論として、我々の結果は、ｃｆＤＮＡを解析することにより、健常者で遺伝子異常が検出できるという証拠を提供する。
最後に、我々は、血液採取の時点で（上記で定義のように）健康な個体のｃｆＤＮＡをプロファイリングすることを試みた。我々の患者コホートは、対照スクリーニングマモグラフィー検査を受け、定期的に１０年後まで追跡調査されたｎ＝１０６人の女性から構成された（表４）。血液をマモグラフィースクリーニングと同時に収集した。この調査のために、我々は、健常者を追跡調査時に臨床状態に基づいて４つの群に分類した。群１（ｎ＝２５）に属する個体は、追跡調査期間中に乳癌または他の悪性病変を何ら発症しなかった。群２では、個体（ｎ＝５２）は、追跡調査期間中に、線維腺腫および過形成などの乳房の線維嚢胞性変化を経験した。群３（ｎ＝１５）に割付けられた個体は、乳癌を発症し、群４（ｎ＝１４）では、個体は、乳癌以外の固形腫瘍を発症した。プロファイリングの結果をダイアグラム４に要約する。最初の段落で報告したように、我々は、全ての血漿試料からのｃｆＤＮＡ抽出をうまく達成し、ｃｆＤＮＡの値は、１．７～３０．８ｎｇ／ｍｌの範囲であった（ダイアグラム１Ａ）。回収率およびｃｆＤＮＡの品質（補足ダイアグラム１、物質および方法セクションに記載）に基づいて、我々は、さらなる分析のために５５種の試料を選択し（群Ｉ＝１２／２４；群ＩＩ＝２３／５２；群ＩＩＩ＝１１／１５；群ＩＶ＝９／１４；合計＝５５／１０６）、０．０４～０．３４の範囲のＬＯＤを得た（ダイアグラム２Ｃ、補足ダイアグラム１Ｄ）。我々は、ＨｅｌｉＧｙｎワークフロー（補足の表４）を用いて単離ｃｆＤＮＡを配列決定し、我々は、ＨｅｌｉＳａｆｅプロトコル（Ｏｎｃｏｍｉｎｅ ｃｆＤＮＡ汎癌Ａｓｓａｙ、補足の表４に基づいて。詳細は材料と方法に記載）を用いて、より広範囲の変異解析のために６種の試料を選択した。ほとんどの健常者（８４％）のｃｆＤＮＡ中で遺伝子異常は見つからなかった（ダイアグラム４Ａ）。しかも、解析した５５症例の内の７症例で、我々は、臨床的に意味のある遺伝子変異、特に、４０％を超えるアレル頻度の６種の既知生殖系列バリアントおよび４種の既知の癌ホットスポット変異を検出した（ダイアグラム４Ｄ、Ｅ）。重要なのは、血漿中のｃｆＤＮＡ濃度または達成された分子カバレッジを含む、解析前の変数に関して、４つの群間で有意差が認められなかったことである（ダイアグラム４Ｂ～Ｃ）。結論として、我々の結果は、ｃｆＤＮＡを解析することにより、健常者で遺伝子異常が検出できるという証拠を提供する。
【0150】
考察：
癌診断の分野では、最近、リキッドバイオプシーがかなりの注目を集めている。増え続けている多数の証拠は、費用対効果が大きく、高い感受性がある組織分子プロファイリングに対する補完的なツールとして、癌関連ホットスポット変異のｃｔＤＮＡベース解析を支持している（Ｆｏｒｓｈｅｗ ｅｔ ａｌ．，２０１２；Ｋｉｍｕｒａ ｅｔ ａｌ．，２００６；Ｌａｎｍａｎ ｅｔ ａｌ．，２０１５；Ｎａｒａｙａｎ ｅｔ ａｌ．，２０１２；Ｎｅｗｍａｎ ｅｔ ａｌ．，２０１６）。現在、早期癌検出法（すなわち、癌関連症状が発生する前の方法）として、リキッドバイオプシーの実施にむけて意欲的な努力が行われており、既に、初期段階腫瘍における検出変異に対し適用されている（Ａｂｂｏｓｈ ｅｔ ａｌ．，２０１７；Ｃｏｈｅｎ ｅｔ ａｌ．，２０１７；２０１８；Ｐｈａｌｌｅｎ ｅｔ ａｌ．，２０１７）。早期診断は、可能性としては、より良好な疾患転帰に匹敵するが、しかし、リキッドバイオプシーの適用の全潜在能力および限界をより良く理解するには、大規模検証試験が必要である（Ｃｒｅｅ ｅｔ ａｌ．，２０１７）。無症候性個体の前癌病変のスクリーニングは、いくつかの難題により妨げられる。すなわち、血漿中に存在する変異体ｃｔＤＮＡ分子の数は、腫瘍量にほぼ比例し（Ｂｅｔｔｅｇｏｗｄａ ｅｔ ａｌ．，２０１４）、限局的な癌の患者および健常者における検出を特に問題があるものにする。別の課題は、腫瘍発生の分子的機序に関する知識の欠如によるものである。いくつかの研究は、年齢および組織増殖速度（Ｙｉｚｈａｋ ｅｔ ａｌ．，２０１８）に関連する健康な組織中の体細胞変異および関連クローン増殖の検出（Ａｇｈｉｌｉ，Ｆｏｏ，ＤｅＧｒｅｇｏｒｉ，＆ Ｄｅ，２０１４；Ｂｅａｎｅ ｅｔ ａｌ．，２０１７；Ｋｒｉｍｍｅｌ ｅｔ ａｌ．，２０１６；Ｍａｒｔｉｎｃｏｒｅｎａ ｅｔ ａｌ．，２０１５）を報告している。これらの変異のいくつかは、癌発症のリスクを高めることが示された（Ｇｅｎｏｖｅｓｅ ｅｔ ａｌ．，２０１４；Ｊａｉｓｗａｌ ｅｔ ａｌ．，２０１４）。前癌ゲノムアトラスは、初期腫瘍段階形成における我々の前癌病変の役割の理解を大きく改善し、早期検出スクリーニングの特異性を改善するであろう。リキッドバイオプシーを低侵襲検出法として使用して、健康なボランティアの長期にわたる調査により、正常組織から癌発症への進行のイベントを特徴付けることができる。現在のリキッドバイオプシーは、主に、進行癌患者で使用されているが、しかし、健常者および初期段階腫瘍患者における循環セルフリーゲノムアトラス（ＣＣＧＡ）試験（ＧＲＡＩＬ）およびＣａｎｃｅｒＳＥＥＫとしての初期スクリーニング方法の開発は、健常者および初期段階腫瘍患者のｃｆＤＮＡ試験のための道を開いている。我々の研究は、健常者のスクリーニングのためにリキッドバイオプシーの使用の技術的可能性を調査することにより、この分野への寄与すること目的としたものである。我々のコホートは、採血時に臨床的に健康な１１４人の個体、ならびに乳癌または胃癌と診断された６３人の患者から構成される。予想通り、ｃｆＤＮＡ濃度は、癌患者に比べて健常者で有意に低く（ダイアグラム１Ａ）、健常者で血漿中に１～１６ｎｇ・ｍｌ －１ の範囲のｃｆＤＮＡ濃度であり（３０ｎｇ・ｍｌ －１ の濃度の１つの試料を除く）、以前に発表された結果（Ｍｏｕｌｉｅｒｅ，Ｍｅｓｓａｏｕｄｉ，Ｐａｎｇ，Ｄｒｉｔｓｃｈｉｌｏ，＆ Ｔｈｉｅｒｒｙ，２０１４；Ｍｏｕｌｉｅｒｅ ｅｔ ａｌ．，２０１１）と一致した。低入力物質に関連する課題および低頻度変異の検出を可能とするという課題を克服するために、我々は、分子バーコード付与およびウルトラディープシークエンシングを実施した（Ｋｉｎｄｅ ｅｔ ａｌ．，２０１１；Ｋｉｖｉｏｊａ ｅｔ ａｌ．，２０１１；Ｎｅｗｍａｎ ｅｔ ａｌ．，２０１６；Ｓｃｈｍｉｔｔ ｅｔ ａｌ．，２０１２、Ｓａｌｋ，Ｓｃｈｍｉｔｔ，＆ Ｌｏｅｂ，２０１８で概説されている）。我々は、組織および血漿試料のマッチングさせたゲノム解析により我々の方法の信頼性および精度を確証した（乳癌および肺癌患者の我々のコホートに対し、７１％の一致、ダイアグラム３Ａ）。予想通り、組織採取と血液採取の発生する時間間隔により腫瘍組織の不均一性がさらに増大するのと同じ理由で、我々は、完全な一致を観察するに至らなかった（補足ダイアグラム３Ｃ）。これらの結果は、６５％と９８％の感度を報告している以前の試験と一致する（Ｏｘｎａｒｄ ｅｔ ａｌ．，２０１６；Ｓａｃｈｅｒ ｅｔ ａｌ．，２０１６；Ｓｃｈｉａｖｏｎ ｅｔ ａｌ．，２０１５；Ｔｈｉｅｒｒｙ ｅｔ ａｌ．，２０１４、Ｗａｎ ｅｔ ａｌ．，２０１７で概説されている）。我々は、ｃｆＤＮＡの単離に成功し、僅か０．９ｍＬの血漿から機能的ＮＧＳライブラリーを作製し得たが、しかし、我々は、癌患者のｃｆＤＮＡのより高い利用可能性により、癌患者と比べて、健康なドナーでより高いＬＯＤ（ダイアグラム２Ｇ）を観察した。健常者は、癌患者に比べてより低いレベルのｃｆＤＮＡを示す（ダイアグラム１Ａ）ので、我々は、健康なドナー由来のｃｆＤＮＡ解析に対しては、より多い量の血漿を使用することを推奨した。重要なのは、これが、低アレル頻度のバリアントの検出を可能にすることであり、これは初期ゲノム不安定性イベントの存在を発見するために特に重要であり得る（我々が特定した４種の癌ホットスポット変異により示されるように、ダイアグラム４Ｄ）。我々の解析により、我々は、リキッドバイオプシーの時点では臨床的に健康であると見なされた、評価可能ｃｆＤＮＡを有する５５人の対象者の内の７人で遺伝子異常を検出した。これらの変異の内で、我々は、６種の生殖系列バリアントおよび４種の癌ホットスポット変異を見つけた。生殖系列バリアントの観察は、我々のｃｆＤＮＡ解析の副産物である。興味深いことに、我々の調査で検出された多くの生殖系列バリアントは、ＴＰ５３コード領域中の変異である。これらの患者は、遺伝カウンセリングを受けるように推奨され得、経験のある認定遺伝学者の判断の際には、初期予防プログラム受けるように推奨され得る。検出された４種の癌ホットスポット変異は、頻発する遺伝子異常であり、臨床的には、病原性またはおそらく病原性として分類される。我々は、９年後までに、および０．０８～０．５２％の範囲のアレイ頻度で、良性の乳疾患（グループＩＩ）または乳癌（グループＩＩＩ）と診断された個体で癌ホットスポットバリアントを検出した（ダイアグラム４Ｄ）。健康なドナーのｃｆＤＮＡ中のこれらの変異の観察は、ＰＩＫ３ＣＡ ｐ．Ｈ１０４７Ｒバリアントに対し示されたように（Ｍｉｌｌｅｒ，２０１２）、ゲノム不安定性の間接的証拠と見なされ得る。しかし、病原性ＴＰ５３変異が、腫瘍の反乱との相関なく、健康な対照のｃｆＤＮＡ中で検出できることも観察された（Ｆｅｒｎａｎｄｅｚ－Ｃｕｅｓｔａ ｅｔ ａｌ．，２０１６）。従って、これらの知見の解釈は当然注意が必要であり、何らかの結論を出す前に、注意深く考慮する必要がある
長期の追跡調査時間および癌を発症した個体について利用可能な組織標本を用いた追加の大規模な前向き研究が、早期癌検出のためのツールとしてのリキッドバイオプシーの特異性および感度に取り組むために必要とされるであろう。結論として、この研究で、我々は、ゲノム異常を試験するために、我々に、健常者由来のｃｆＤＮＡのデータを照会することを可能とする、迅速で、０．０４％もの低いアレル頻度の検出限界を備えた、信頼性の高いワークフローを確立した。健常者の血液由来のｃｆＤＮＡの照会は、ゲノム不安定性の徴候を検出し、腫瘍形成の初期イベントをより良く理解するための、期待が持てるツールであることを証明し得る。
癌診断の分野では、最近、リキッドバイオプシーがかなりの注目を集めている。増え続けている多数の証拠は、費用対効果が大きく、高い感受性がある組織分子プロファイリングに対する補完的なツールとして、癌関連ホットスポット変異のｃｔＤＮＡベース解析を支持している（Ｆｏｒｓｈｅｗ ｅｔ ａｌ．，２０１２；Ｋｉｍｕｒａ ｅｔ ａｌ．，２００６；Ｌａｎｍａｎ ｅｔ ａｌ．，２０１５；Ｎａｒａｙａｎ ｅｔ ａｌ．，２０１２；Ｎｅｗｍａｎ ｅｔ ａｌ．，２０１６）。現在、早期癌検出法（すなわち、癌関連症状が発生する前の方法）として、リキッドバイオプシーの実施にむけて意欲的な努力が行われており、既に、初期段階腫瘍における検出変異に対し適用されている（Ａｂｂｏｓｈ ｅｔ ａｌ．，２０１７；Ｃｏｈｅｎ ｅｔ ａｌ．，２０１７；２０１８；Ｐｈａｌｌｅｎ ｅｔ ａｌ．，２０１７）。早期診断は、可能性としては、より良好な疾患転帰に匹敵するが、しかし、リキッドバイオプシーの適用の全潜在能力および限界をより良く理解するには、大規模検証試験が必要である（Ｃｒｅｅ ｅｔ ａｌ．，２０１７）。無症候性個体の前癌病変のスクリーニングは、いくつかの難題により妨げられる。すなわち、血漿中に存在する変異体ｃｔＤＮＡ分子の数は、腫瘍量にほぼ比例し（Ｂｅｔｔｅｇｏｗｄａ ｅｔ ａｌ．，２０１４）、限局的な癌の患者および健常者における検出を特に問題があるものにする。別の課題は、腫瘍発生の分子的機序に関する知識の欠如によるものである。いくつかの研究は、年齢および組織増殖速度（Ｙｉｚｈａｋ ｅｔ ａｌ．，２０１８）に関連する健康な組織中の体細胞変異および関連クローン増殖の検出（Ａｇｈｉｌｉ，Ｆｏｏ，ＤｅＧｒｅｇｏｒｉ，＆ Ｄｅ，２０１４；Ｂｅａｎｅ ｅｔ ａｌ．，２０１７；Ｋｒｉｍｍｅｌ ｅｔ ａｌ．，２０１６；Ｍａｒｔｉｎｃｏｒｅｎａ ｅｔ ａｌ．，２０１５）を報告している。これらの変異のいくつかは、癌発症のリスクを高めることが示された（Ｇｅｎｏｖｅｓｅ ｅｔ ａｌ．，２０１４；Ｊａｉｓｗａｌ ｅｔ ａｌ．，２０１４）。前癌ゲノムアトラスは、初期腫瘍段階形成における我々の前癌病変の役割の理解を大きく改善し、早期検出スクリーニングの特異性を改善するであろう。リキッドバイオプシーを低侵襲検出法として使用して、健康なボランティアの長期にわたる調査により、正常組織から癌発症への進行のイベントを特徴付けることができる。現在のリキッドバイオプシーは、主に、進行癌患者で使用されているが、しかし、健常者および初期段階腫瘍患者における循環セルフリーゲノムアトラス（ＣＣＧＡ）試験（ＧＲＡＩＬ）およびＣａｎｃｅｒＳＥＥＫとしての初期スクリーニング方法の開発は、健常者および初期段階腫瘍患者のｃｆＤＮＡ試験のための道を開いている。我々の研究は、健常者のスクリーニングのためにリキッドバイオプシーの使用の技術的可能性を調査することにより、この分野への寄与すること目的としたものである。我々のコホートは、採血時に臨床的に健康な１１４人の個体、ならびに乳癌または胃癌と診断された６３人の患者から構成される。予想通り、ｃｆＤＮＡ濃度は、癌患者に比べて健常者で有意に低く（ダイアグラム１Ａ）、健常者で血漿中に１～１６ｎｇ・ｍｌ －１ の範囲のｃｆＤＮＡ濃度であり（３０ｎｇ・ｍｌ －１ の濃度の１つの試料を除く）、以前に発表された結果（Ｍｏｕｌｉｅｒｅ，Ｍｅｓｓａｏｕｄｉ，Ｐａｎｇ，Ｄｒｉｔｓｃｈｉｌｏ，＆ Ｔｈｉｅｒｒｙ，２０１４；Ｍｏｕｌｉｅｒｅ ｅｔ ａｌ．，２０１１）と一致した。低入力物質に関連する課題および低頻度変異の検出を可能とするという課題を克服するために、我々は、分子バーコード付与およびウルトラディープシークエンシングを実施した（Ｋｉｎｄｅ ｅｔ ａｌ．，２０１１；Ｋｉｖｉｏｊａ ｅｔ ａｌ．，２０１１；Ｎｅｗｍａｎ ｅｔ ａｌ．，２０１６；Ｓｃｈｍｉｔｔ ｅｔ ａｌ．，２０１２、Ｓａｌｋ，Ｓｃｈｍｉｔｔ，＆ Ｌｏｅｂ，２０１８で概説されている）。我々は、組織および血漿試料のマッチングさせたゲノム解析により我々の方法の信頼性および精度を確証した（乳癌および肺癌患者の我々のコホートに対し、７１％の一致、ダイアグラム３Ａ）。予想通り、組織採取と血液採取の発生する時間間隔により腫瘍組織の不均一性がさらに増大するのと同じ理由で、我々は、完全な一致を観察するに至らなかった（補足ダイアグラム３Ｃ）。これらの結果は、６５％と９８％の感度を報告している以前の試験と一致する（Ｏｘｎａｒｄ ｅｔ ａｌ．，２０１６；Ｓａｃｈｅｒ ｅｔ ａｌ．，２０１６；Ｓｃｈｉａｖｏｎ ｅｔ ａｌ．，２０１５；Ｔｈｉｅｒｒｙ ｅｔ ａｌ．，２０１４、Ｗａｎ ｅｔ ａｌ．，２０１７で概説されている）。我々は、ｃｆＤＮＡの単離に成功し、僅か０．９ｍＬの血漿から機能的ＮＧＳライブラリーを作製し得たが、しかし、我々は、癌患者のｃｆＤＮＡのより高い利用可能性により、癌患者と比べて、健康なドナーでより高いＬＯＤ（ダイアグラム２Ｇ）を観察した。健常者は、癌患者に比べてより低いレベルのｃｆＤＮＡを示す（ダイアグラム１Ａ）ので、我々は、健康なドナー由来のｃｆＤＮＡ解析に対しては、より多い量の血漿を使用することを推奨した。重要なのは、これが、低アレル頻度のバリアントの検出を可能にすることであり、これは初期ゲノム不安定性イベントの存在を発見するために特に重要であり得る（我々が特定した４種の癌ホットスポット変異により示されるように、ダイアグラム４Ｄ）。我々の解析により、我々は、リキッドバイオプシーの時点では臨床的に健康であると見なされた、評価可能ｃｆＤＮＡを有する５５人の対象者の内の７人で遺伝子異常を検出した。これらの変異の内で、我々は、６種の生殖系列バリアントおよび４種の癌ホットスポット変異を見つけた。生殖系列バリアントの観察は、我々のｃｆＤＮＡ解析の副産物である。興味深いことに、我々の調査で検出された多くの生殖系列バリアントは、ＴＰ５３コード領域中の変異である。これらの患者は、遺伝カウンセリングを受けるように推奨され得、経験のある認定遺伝学者の判断の際には、初期予防プログラム受けるように推奨され得る。検出された４種の癌ホットスポット変異は、頻発する遺伝子異常であり、臨床的には、病原性またはおそらく病原性として分類される。我々は、９年後までに、および０．０８～０．５２％の範囲のアレイ頻度で、良性の乳疾患（グループＩＩ）または乳癌（グループＩＩＩ）と診断された個体で癌ホットスポットバリアントを検出した（ダイアグラム４Ｄ）。健康なドナーのｃｆＤＮＡ中のこれらの変異の観察は、ＰＩＫ３ＣＡ ｐ．Ｈ１０４７Ｒバリアントに対し示されたように（Ｍｉｌｌｅｒ，２０１２）、ゲノム不安定性の間接的証拠と見なされ得る。しかし、病原性ＴＰ５３変異が、腫瘍の反乱との相関なく、健康な対照のｃｆＤＮＡ中で検出できることも観察された（Ｆｅｒｎａｎｄｅｚ－Ｃｕｅｓｔａ ｅｔ ａｌ．，２０１６）。従って、これらの知見の解釈は当然注意が必要であり、何らかの結論を出す前に、注意深く考慮する必要がある
長期の追跡調査時間および癌を発症した個体について利用可能な組織標本を用いた追加の大規模な前向き研究が、早期癌検出のためのツールとしてのリキッドバイオプシーの特異性および感度に取り組むために必要とされるであろう。結論として、この研究で、我々は、ゲノム異常を試験するために、我々に、健常者由来のｃｆＤＮＡのデータを照会することを可能とする、迅速で、０．０４％もの低いアレル頻度の検出限界を備えた、信頼性の高いワークフローを確立した。健常者の血液由来のｃｆＤＮＡの照会は、ゲノム不安定性の徴候を検出し、腫瘍形成の初期イベントをより良く理解するための、期待が持てるツールであることを証明し得る。
【0151】
【表4】
【0152】
ダイアグラム１．
健康なドナーまたは癌患者由来の血漿試料の総ｃｆＤＮＡ収量。Ａ．癌患者と比較した健常者の血漿中のｃｆＤＮＡ濃度（マン・ホイットニー ｐ＝０．０００６）。中央値、四分位間範囲および最小／最大がボックスプロットで示されている。Ｂ．健康なドナーの血漿体積と総ｃｆＤＮＡ出力との相関（ｎ＝１１４、スピアマンｒ＝０．２４４、ｐ＝０．００８９）。Ｃ．癌患者の血漿体積と総ｃｆＤＮＡ出力との相関（ｎ＝６３、スピアマンｒ＝０．５８７、ｐ＝０．０００１）。
【0153】
ダイアグラム２．
健康なおよび癌ドナー試料由来の解析前変数の比較。Ａ～Ｂ．健常者（ｎ＝５５、スピアマンｒ＝０．３４８、ｐ＝０．００８８）および癌患者（ｎ＝４０、スピアマンｒ＝０．６９９、ｐ＜０．０００１）のライブラリー濃度とｃｆＤＮＡ入力との相関。Ｃ～Ｄ．健康なドナー（ｎ＝５５、スピアマン相関ｒ＝－０．５５１、ｐ＜０．０００１）および癌ドナー（ｎ＝４０、スピアマン相関ｒ＝０．７９０、ｐ＜０．０００１）のＬＯＤとｃｆＤＮＡ入力との相関。Ｅ．健康なおよび癌ドナー由来の試料のマップされたリード（Ｆ）（マン・ホイットニー ｐ＝０．１４２２）。Ｆ～Ｇ．健康なおよび癌ドナーの分子量カバレッジ中央値（マン・ホイットニー ｐ＜０．０００１）およびＬＯＤ（マン・ホイットニー ｐ＜０．０００１）。中央値、四分位間範囲および最小／最大がボックスプロットで示されている。
【0154】
ダイアグラム３．
癌患者の液体および組織生検材料の一致解析。Ａ．マッチングさせた組織およびリキッドバイオプシーの全体一致のパーセンテージの図。「＋臨床的有用性」は、組織生検ではなく、リキッドバイオプシー（次のセクションの「血漿のみ」を参照）のＮＧＳ解析により検出された臨床的に意味のある追加の変異を意味する。２９％の試料で一致が観察されなかったが、一方、７１％の一致試料の内の２６％は、血漿のみにより検出された臨床的に意味のある変異を有していた（＋臨床的有用性）。Ｂ～Ｃ．乳癌（Ｂ）および肺癌（Ｃ）試料に対し、観察されたバリアントの数。組織および血漿ＮＧＳパネルの両方に含まれる臨床的に意味のあるバリアントのみを解析用として考慮した。Ｄ．血漿のＮＧＳ解析により検出され、組織中には検出されなかった異常の分布。リキッドバイオプシーのＮＧＳ解析により検出され、組織生検では検出されなかった臨床的に意味のある変異の中で、最も高頻度（３２％）なのは、ＥＧＦＲ中のＴ７９０Ｍである。
【0155】
ダイアグラム４．
健常者のｃｆＤＮＡ中で検出された遺伝子異常。Ａ．アッセイした試料の８４％で遺伝子異常が検出されなかったが、しかし、我々は、７種の異なる試料中で、６種の生殖系列バリアントおよび４種のホットスポットバリアントを検出した。Ｂ～Ｃ．血漿中のｃｆＤＮＡ濃度（Ｂ）としてのおよび４つの群の健康なドナーの分子カバレッジ中央値（Ｃ）としての解析前変数（それぞれ、クラスカルワリス検定ｐ＝０．９２２３およびｐ＝０．７７２１）。群Ｉ：追跡調査期間での健常者；群ＩＩ：追跡調査期間での良性の乳腺疾患患者；群ＩＩＩ：跡調査期間での乳癌患者；群ＩＶ：跡調査期間での乳癌以外の固形腫瘍患者。中央値、四分位間範囲および最小／最大がボックスプロットで示されている。Ｄ．４つの群に属する健常者で検出されたバリアントを示す変異行列。各行は、患者を表す。黄色正方形はホットスポットバリアントを表し、灰色正方形は生殖系列バリアントを表す。Ｅ．健常者で検出されたホットスポットをまとめた表である。
【0156】
補足ダイアグラム１．
健常者および癌患者のｃｆＤＮＡのサイズ分布。Ａ．健康なドナー（黄色、赤色、青色、緑色の線）と比較した癌患者（紫色の線）のｃｆＤＮＡのサイズ分布。Ｂ．１９１および３６６ｂｐの位置に明瞭な断片サイズピークを有する健康なドナー（ｃｆＤＮＡ健康１、Ａの赤色の線）のｃｆＤＮＡプロファイル。Ｃ．ｃｆＤＮＡの予測された範囲に断片サイズピークを有さない健康なドナー（ｃｆＤＮＡ健康４、Ａの緑色の線）のｃｆＤＮＡプロファイル。１４０～２００ｂｐの明確な断片サイズピークを有するｃｆＤＮＡのみの試料をＮＧＳ解析用に選択した。
【0157】
補足ダイアグラム２．
乳癌および肺癌患者由来のマッチングさせた血漿および組織試料の一致解析。Ａ～Ｂ．乳癌（Ａ）および肺癌（Ｂ）試料の一致行列で、各行は患者を表す。青色正方形は血漿のみで検出されたバリアントを表し、緑色の正方形は組織のみで検出されたバリアントを表し、黄色の正方形は血漿および組織の両方で検出されたバリアントを表す。Ｃ．採血と組織収集との間の時間間隔（ｎ＝２９、クラスカルワリス検定ｐ＝０．４３２５；３８試料の内の９試料で数値の欠損、一致群に対する中央値＝３．８ヶ月、プラス臨床的有用性の群に対する中央値＝１２ヶ月、一致なし群に対する中央値＝９ヶ月）。中央値および最小／最大は、プロットで表される。
【0158】
補足の表１：ｃｆＤＮＡおよび組織解析のために使用したＯｎｃｏｍｉｎｅ ＮＧＳパネルの遺伝子の内容。
【表5】
【図1】
【図2】