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特許7006873突然変異細胞遊離遺伝子分離キット及びそれを用いた突然変異細胞遊離遺伝子分離方法
(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B2)
(11)【特許番号】
(24)【登録日】2022-01-11
(45)【発行日】2022-02-10
(54)【発明の名称】突然変異細胞遊離遺伝子分離キット及びそれを用いた突然変異細胞遊離遺伝子分離方法
(51)【国際特許分類】
C12Q 1/6886 20180101AFI20220203BHJP
C12Q 1/686 20180101ALI20220203BHJP
C12N 9/16 20060101ALI20220203BHJP
C12Q 1/6869 20180101ALI20220203BHJP
C12N 15/09 20060101ALN20220203BHJP
【ＦＩ】
C12Q1/6886 Z
C12Q1/686 Z ZNA
C12N9/16 Z
C12Q1/6869 Z
C12N15/09 Z
【請求項の数】
8
(21)【出願番号】P 2020530411
(86)(22)【出願日】2019-02-07
(65)【公表番号】
(43)【公表日】2020-12-03
(86)【国際出願番号】 KR2019001518
(87)【国際公開番号】W WO2019156475
(87)【国際公開日】2019-08-15
【審査請求日】2020-02-10
(31)【優先権主張番号】10-2018-0014478
(32)【優先日】2018-02-06
(33)【優先権主張国・地域又は機関】KR
(31)【優先権主張番号】10-2019-0013912
(32)【優先日】2019-02-01
(33)【優先権主張国・地域又は機関】KR
(73)【特許権者】
【識別番号】520049341
【氏名又は名称】ジェネッカー カンパニー リミテッド
(74)【代理人】
【識別番号】100079049
【弁理士】
【氏名又は名称】中島 淳
(74)【代理人】
【識別番号】100084995
【弁理士】
【氏名又は名称】加藤 和詳
(72)【発明者】
【氏名】イェ、スン ヒョク
【審査官】中野 あい
(56)【参考文献】
【文献】特表２０１８－５００９３７（ＪＰ，Ａ）
【文献】国際公開第２０１７／１５５４１６（ＷＯ，Ａ１）
【文献】特表２０１７－５１６５００（ＪＰ，Ａ）
【文献】国際公開第２０１７／２１８５１２（ＷＯ，Ａ１）
(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)
Ｃ１２Ｑ １／００－ ３／００
Ｃ１２Ｎ １５／００－１５／９０
ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩＩ）
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
ｉ）少なくとも１つの野生型細胞遊離遺伝子及び少なくとも１つの突然変異細胞遊離遺伝子が含まれた分離された試料内の前記野生型細胞遊離遺伝子と突然変異細胞遊離遺伝子とを、予めホスホロチオエート結合で保護された５’末端を有する５’末端が保護されたプライマーを用いて最初に増幅する段階と、ｉｉ）前記野生型細胞遊離遺伝子に特異的に結合するガイドＲＮＡ及びＣａｓタンパク質を処理して、前記増幅された野生型細胞遊離遺伝子のみを切断する段階と、
ｉｉｉ）前記突然変異細胞遊離遺伝子と、前記切断された細胞遊離遺伝子と、が存在する試料をエキソヌクレアーゼＴ７及びエキソヌクレアーゼＴで処理して、前記切断された野生型細胞遊離遺伝子のみを除去する段階と、
ｉｖ）前記試料内に残っている突然変異細胞遊離遺伝子をさらに増幅する段階と、
ｖ）前記増幅された突然変異細胞遊離遺伝子を分析する段階と、
を含む、突然変異遺伝子型分析方法。
【請求項2】
前記ｉ）少なくとも１つの野生型細胞遊離遺伝子及び少なくとも１つの突然変異細胞遊離遺伝子が含まれた分離された試料は、癌の疑い個体から分離された血液、血しょうまたは尿試料である、請求項１に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
【請求項3】
前記突然変異細胞遊離遺伝子は、癌特異的な突然変異を含むＤＮＡであり、前記突然変異細胞遊離遺伝子の分析は、癌の診断のための情報を提供する、請求項１に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
【請求項4】
前記Ｃａｓタンパク質は、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｙｏｇｅｎｅｓ Ｃａｓ９（ＳｐＣａｓ９）、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ Ｃａｓ９（ＳｔＣａｓ９）、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐａｓｔｅｕｒｉａｎｕｓ（ＳｐａＣａｓ９）、Ｃａｍｐｙｌｏｂａｃｔｅｒ ｊｅｊｕｎｉ Ｃａｓ９（ＣｊＣａｓ９）、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ（ＳａＣａｓ９）、Ｆｒａｎｃｉｓｅｌｌａ ｎｏｖｉｃｉｄａ Ｃａｓ９（ＦｎＣａｓ９）、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｃｉｎｅｒｅａ Ｃａｓ９（ＮｃＣａｓ９）、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｓ Ｃａｓ９（ＮｍＣａｓ９）Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ とＦｒａｎｃｉｓｅｌｌａ １（Ｃｐｆ１）である、請求項１に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
【請求項5】
前記ガイドＲＮＡは、ｃｒＲＮＡ及びｔｒａｃｒＲＮＡを含む二重ＲＮＡまたはｓｇＲＮＡである、請求項１に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
【請求項6】
前記増幅は、ＰＣＲで行われる、請求項１に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
【請求項7】
前記ガイドＲＮＡが、複数の野生型細胞遊離遺伝子に特異的な２以上のガイドＲＮＡを含む、請求項１に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
【請求項8】
予めホスホロチオエート結合で保護された５’末端を有する５’末端が保護されたプライマーを含む野生型細胞遊離遺伝子及び突然変異細胞遊離遺伝子増幅用組成物と、
前記野生型細胞遊離遺伝子に特異的なガイドＲＮＡと、
前記野生型細胞遊離遺伝子を切断するためのＣａｓタンパク質と、
前記野生型細胞遊離遺伝子を除去するためのエキソヌクレアーゼＴ７及びエキソヌクレアーゼＴと、
を含む、請求項１～７のいずれか１項に記載の突然変異遺伝子型分析方法に使用するための、突然変異細胞遊離遺伝子分離用キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、突然変異細胞遊離遺伝子（ｍｕｔａｎｔ ｃｅｌｌ ｆｒｅｅ ＤＮＡ）分離キット及びそれを用いた突然変異細胞遊離遺伝子分離方法に関する。より具体的に、本発明は、ＣＲＩＳＰＲ-Ｃａｓシステム及びエキソヌクレアーゼを含む突然変異細胞遊離遺伝子分離キット及び分離方法に係り、微量の細胞遊離遺伝子試料内で突然変異遺伝子を検出するためのものである。
【背景技術】
【0002】
最近、全世界的に癌疾患の早期診断重要性が大きく注目されており、したがって、癌早期診断方法についての研究比重が増加しつつある。しかし、現在のところ、癌診断方法は、組織サンプルの採取及び内視鏡検査などの侵襲的な方法が主をなしている。既存の方法は、疾病が疑われる部位の一部を摘出して顕微鏡で観察する方式でなされるために、患者が感じる煩わしさが少なくなく、傷跡が残り、回復にも時間がかかる。
【0003】
このような既存の侵襲的な診断及び検査方法の代案として、液体生体検査（Ｌｉｑｕｉｄ Ｂｉｏｐｓｙ）を利用した分子診断法が注目を浴びている。液体生体検査は、非侵襲的な（ｎｏｎ－ｉｎｖａｓｉｖｅ）方法を使用するために、検査結果、導出速度が早く、疾病の一部のみ分析することができた組織サンプルとは異なって、体液、すなわち、液体生体サンプルは、疾病に対して多角的分析を行うことができる。特に、液体生体検査は、癌の診断に卓越した効用性を発揮すると見込まれ、血液、小便などの体液検査のみで身体部位別の血液内に存在する癌細胞由来ＤＮＡを分析して、癌発生及び転移などに対する詳細な観察が可能であると予測される。
【0004】
最近、液体生体検査と関連して腫瘍から血流に放出されて、体内血液内に存在する細胞遊離ＤＮＡ（ｃｅｌｌ－ｆｒｅｅ ＤＮＡ、ｃｆＤＮＡ）についての研究が活発に進められている。血液、血しょうまたは小便などの多様な生物学的試料から由来したｃｆＤＮＡを分離し、検出する技術が発展するにつれて、液体生体検査が癌危険群患者のモニタリングにおいて、より効果的であり、信頼できるツールになる。進行性膵臓癌、卵巣癌、大腸癌、膀胱癌、胃食道癌、乳癌、黒色腫、肝細胞癌、頭頸部癌を有した患者の７５％以上、そして、腎臓、前立腺癌または甲状腺癌患者の５０％以上でｃｆＤＮＡ上の癌由来遺伝子が確認された。転移性大腸癌患者を対象とした遺伝子臨床診断でＫＲＡＳ遺伝子変異検出に対するｃｆＤＮＡの敏感度は、８７．２％であり、特異度は、９９．２％であった。
【0005】
このような研究は、ｃｆＤＮＡ分析を通じる癌診断の可能性を示すことにより、ｃｆＤＮＡ内の癌由来遺伝子は、次世代バイオマーカーとして脚光を浴びている。癌患者由来のｃｆＤＮＡから腫瘍特異的な遺伝子突然変異を確認することにより、初期段階腫瘍の診断を試みている。しかし、血液、小便など液体試料内のｃｆＤＮＡを分析し、遺伝子で発生する変異を見つけて、癌を早期診断する方法には、現在の技術としては多くの限界がある（特許文献１）。特に、小便、脳脊髄液、血しょう、血液、または体液の試料内にｃｆＤＮＡが非常に少ない濃度で存在し、ｃｆＤＮＡは、老化過程で自然な遺伝子変異が発生するが、患者血しょう内に存在するｃｆＤＮＡのほとんどは、正常体細胞由来の野生型（ｗｉｌｄ ｔｙｐｅ、ｗｔ）の遺伝子なので、現在のシーケンシング技術としては、ｃｆＤＮＡで癌細胞由来遺伝子の有無を正確に診断することは不可能に近い。したがって、初期段階の癌を微量のｃｆＤＮＡで診断するためには、正常遺伝子を除去し、癌細胞由来遺伝子を特異的に増幅させる必要がある。これにより、検出敏感度の向上及び正確な癌早期診断のための方法が切実に要求されている実情である。
【0006】
一方、最近開発された遺伝子ハサミ（ＲＮＡ－ｇｕｉｄｅｄ ＣＲＩＳＰＲ）（ｃｌｕｓｔｅｒｅｄ ｒｅｇｕｌａｒｌｙ ｉｎｔｅｒｓｐａｃｅｄ ｓｈｏｒｔ ｐａｌｉｎｄｒｏｍｅ ｒｅｐｅａｔｓ）－関連したヌクレアーゼＣａｓタンパク質に基づいた誘電体矯正（ｇｅｎｏｍｅ ｅｄｉｔｉｎｇ）は、標的ノックアウト、転写活性化及びシングルガイドＲＮＡ（ｓｉｎｇｌｅ ｇｕｉｄｅ ＲＮＡ、ｓｇＲＮＡ）（すなわち、ｃｒＲＮＡ－ｔｒａｃｒＲＮＡ融合転写体）を利用した抑制に対する画期的な技術を提供し、当該技術は、多様な遺伝子位置を標的することにより、拡張性を立証した。ＣＲＩＳＰＲ－Ｃａｓシステムは、標的する遺伝子または核酸に相補的な配列を有するガイドＲＮＡ（ｇｕｉｄｅ ＲＮＡ、ｇＲＮＡ）と標的する遺伝子または核酸を切断することができるヌクレアーゼであるＣＲＩＳＰＲ酵素とで構成され、ｇＲＮＡとＣＲＩＳＰＲ酵素は、ＣＲＩＳＰＲ複合体を形成し、該形成されたＣＲＩＳＰＲ複合体によって標的する遺伝子または核酸を切断または変形させる。ＣＲＩＳＰＲシステムは、原核生物、高細菌の免疫システムであって、最近、遺伝子ハサミの１つとしてその活用性についての研究が急増しているが（非特許文献１、非特許文献２）、それをゲノムシーケンシングにおいて、使われる塩基配列捕獲方法及び疾病診断に活用しようとする試みはなかった。
【0007】
これにより、本発明者らは、ｃｆＤＮＡ上で突然変異遺伝子を分離する方法を探すために鋭意努力した結果、ＣＲＩＳＰＲ-Ｃａｓ ｓｙｓｔｅｍで微量のｃｆＤＮＡの正常遺伝子を特異的に切断させる技術と切断されていない突然変異遺伝子を特異的に増幅させる技術とを用いて、本発明を完成した。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0008】
【文献】大韓民国公開特許１０－２０１６－０１２９５２３
【非特許文献】
【0009】
【文献】Ｊｉｎｅｋ ｅｔ ａｌ．Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０１２，３３７，８１６－８２１
【文献】Ｚａｌａｔａｎ ｅｔ ａｌ．Ｃｅｌｌ，２０１５，１６０，３３９－３５０
【文献】Ｔｉａｎ Ｊ，Ｍａ Ｋ，Ｓａａｅｍ Ｉ．，Ｍｏｌ Ｂｉｏｓｙｓｔ，２００９，５（７），７１４－７２２
【文献】Ｍｉｃｈａｅｌ，Ｌ．．Ｍｅｔｚｋｅｒ，Ｎａｔｕｒｅ Ｒｅｖｉｅｗｓ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ，２０１０，１１，３１－４６
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0010】
本発明の目的は、突然変異細胞遊離遺伝子分離用キットを提供するところにある。
【0011】
本発明の他の目的は、突然変異遺伝子型分析方法を提供するところにある。
【課題を解決するための手段】
【0012】
本発明は、次を含む突然変異細胞由来遺伝子分離用キットを提供する：
５’末端が保護されたプライマーを含む野生型細胞遊離遺伝子（ｗｉｌｄ ｔｙｐｅ ｃｅｌｌ ｆｒｅｅ ＤＮＡ）及び突然変異細胞遊離遺伝子増幅用組成物；前記野生型細胞遊離遺伝子特異的ガイドＲＮＡ；前記野生型細胞遊離遺伝子を切断するためのＣａｓタンパク質；及び前記野生型細胞遊離遺伝子を除去するためのエキソヌクレアーゼ。
５’末端が保護されたプライマーを含む野生型細胞遊離遺伝子（ｗｉｌｄ ｔｙｐｅ ｃｅｌｌ ｆｒｅｅ ＤＮＡ）及び突然変異細胞遊離遺伝子増幅用組成物；前記野生型細胞遊離遺伝子特異的ガイドＲＮＡ；前記野生型細胞遊離遺伝子を切断するためのＣａｓタンパク質；及び前記野生型細胞遊離遺伝子を除去するためのエキソヌクレアーゼ。
【0013】
前記突然変異細胞遊離遺伝子は、癌特異的な突然変異を含むＤＮＡでもある。
【0014】
本発明において、用語、「細胞遊離遺伝子（ｃｅｌｌ－ｆｒｅｅ ＤＮＡ；ｃｆＤＮＡ）」は、腫瘍細胞で起因して癌患者から由来の血液、血しょうまたは小便などの生物学的試料から発見される癌細胞由来遺伝子を意味し、壊死、細胞死または泌尿器官の正常細胞及び／または癌細胞で活性化されて、多様な細胞生理学的過程を通じて小便、血液などに放出される。小便、脳脊髄液（ｃｅｒｅｂｒｏｓｐｉｎａｌ ｆｌｕｉｄ；ＣＳＦ）、血しょう、血液、または体液は、容易に得られる試料なので、反復的なサンプリングを通じて大量の単純であり、非侵襲的な検体の収集が可能である。
【0015】
本発明において、用語、「ＣＲＩＳＰＲ-Ｃａｓシステム」は、遺伝子または核酸に相補的な配列を有するガイドＲＮＡ（ｇＲＮＡ）と標的する遺伝子または核酸を切断することができるヌクレアーゼであるＣＲＩＳＰＲ酵素で構成され、ｇＲＮＡとＣＲＩＳＰＲ酵素は、ＣＲＩＳＰＲ-Cas複合体を形成し、該形成されたＣＲＩＳＰＲ-Cas複合体によって標的する遺伝子または核酸を切断または変形させる。
【0016】
Ｃａｓタンパク質は、ＣＲＩＳＰＲ-Ｃａｓシステムで必須的なタンパク質要素を意味し、ＣＲＩＳＰＲ ＲＮＡ（ｃｒＲＮＡ）及びトランス活性化ｃｒＲＮＡ（ｔｒａｎｓ－ａｃｔｉｖａｔｉｎｇ ｃｒＲＮＡ、ｔｒａｃｒＲＮＡ）と呼ばれる２つのＲＮＡと複合体を形成する時、活性エンドヌクレアーゼを形成する。Ｃａｓタンパク質遺伝子及びタンパク質の情報は、大韓民国の国立生命工学情報センター（ｎａｔｉｏｎａｌ ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ、ＮＣＢＩ）のＧｅｎＢａｎｋで求めうるが、これに制限されるものではない。
【0017】
本発明において、用語、「ガイドＲＮＡ」は、標的ＤＮＡに特異的なＲＮＡであって、細胞内に伝達された線形二本鎖ＤＮＡの転写を通じて発現されて標的遺伝子配列を認識し、Ｃａｓタンパク質と複合体を形成し、Ｃａｓタンパク質を標的ＤＮＡに持って来るＲＮＡである。前記「標的遺伝子配列」は、標的遺伝子または核酸内に存在するヌクレオチド配列であって、具体的には、標的遺伝子または核酸内に標的領域の一部ヌクレオチド配列であり、この際、「標的領域」は、標的遺伝子または核酸内にガイド核酸－エディタータンパク質によって変形される部位である。
【0018】
本発明において、用語、「ＰＡＭ(PAM ; protospacer adjacent motif) 配列（ｓｅｑｕｅｎｃｅ）」は、目標配列横に位置する３ｂｐ～６ｂｐ程度サイズの配列であって、ＣＲＩＳＰＲ－Ｃａｓ複合体が認識するターゲット配列を意味し、ＣＲＩＳＰＲ－Ｃａｓ複合体は、ＰＡＭ配列を認識した後、特定の位置を切断する。
【0019】
前記キットは、癌の疑い個体から分離された液体試料（血液、血しょうまたは尿試料など）に含まれた野生型細胞遊離遺伝子及び突然変異細胞遊離遺伝子から突然変異細胞遊離遺伝子を分離するためのものである。
【0020】
前記Ｃａｓタンパク質は、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｙｏｇｅｎｅｓ Ｃａｓ９（ＳｐＣａｓ９）、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ Ｃａｓ９（ＳｔＣａｓ９）、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐａｓｔｅｕｒｉａｎｕｓ（ＳｐａＣａｓ９）、Ｃａｍｐｙｌｏｂａｃｔｅｒ ｊｅｊｕｎｉ Ｃａｓ９（ＣｊＣａｓ９）、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ（ＳａＣａｓ９）、Ｆｒａｎｃｉｓｅｌｌａ ｎｏｖｉｃｉｄａ Ｃａｓ９（ＦｎＣａｓ９）、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｃｉｎｅｒｅａ Ｃａｓ９（ＮｃＣａｓ９）、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｓ Ｃａｓ９（ＮｍＣａｓ９）Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ とＦｒａｎｃｉｓｅｌｌａ １（Ｃｐｆ１）であり得るが、必ずしもこれに制限されるものではない。
【0021】
前記Ｃａｓタンパク質または遺伝子情報は、ＮＣＢＩ（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ）のＧｅｎＢａｎｋのような公知のデータベースから得られるが、これに制限されるものではない。
【0022】
前記ガイドＲＮＡは、ｃｒＲＮＡ（ＣＲＩＳＰＲ ＲＮＡ）及びｔｒａｃｒＲＮＡ（ｔｒａｎｓ－ａｃｔｉｖａｔｉｎｇ ｃｒＲＮＡ）を含む二重ＲＮＡ（ｄｕａｌＲＮＡ）またはｓｇＲＮＡ（ｓｉｎｇｌｅ－ｃｈａｉｎ ＲＮＡ）でもある。
【0023】
前記ガイドＲＮＡは、複数個の野生型細胞遊離遺伝子特異的な２種類以上のガイドＲＮＡを含みうる。すなわち、本発明のキットは、マルチプレクシングが可能なキットである。
【0024】
前記ガイドＲＮＡ製作方法は、当該技術分野に広く知られている。
【0025】
前記５’末端が保護されたプライマーは、前記プライマーの５’末端がホスホロチオエート結合（ｐｈｏｓｐｈｏｔｈｉｏａｔｅ ｂｏｎｄ）で保護されたものである。
【0026】
前記遺伝子増幅用組成物は、ＰＣＲ組成物でもある。
【0027】
本発明において、用語「増幅反応」は、ターゲット核酸配列を増幅する反応を意味し、ＰＣＲ（ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ｃｈａｉｎ ｒｅａｃｔｉｏｎ、重合酵素連鎖反応）によって実施される。前記ＰＣＲは、逆転写（ｒｅｖｅｒｓｅ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ）重合酵素連鎖反応（ＲＴ－ＰＣＲ）、マルチプレックス（ｍｕｌｔｉｐｌｅｘ）ＰＣＲ、リアルタイム（ｒｅａｌ－ｔｉｍｅ）ＰＣＲ、アセンブリー（Ａｓｓｅｍｂｌｙ）ＰＣＲ、フュージョン（Ｆｕｓｉｏｎ）ＰＣＲ、リガーゼ連鎖反応（Ｌｉｇａｓｅ ｃｈａｉｎ ｒｅａｃｔｉｏｎ；ＬＣＲ）を含むが、これに制限されるものではない。
【0028】
本明細書において、用語「プライマー（ｐｒｉｍｅｒ）」は、一本鎖のオリゴヌクレオチドの１つであって、リボヌクレオチドも含み、望ましくは、デオキシリボヌクレオチドでもある。前記プライマーは、鋳型（ｔｅｍｐｌａｔｅ）の一部位に混成化またはアニーリングされて、二本鎖構造を形成する。本発明において、プライマーは、ＮＧＳシーケンシングアダプタ配列に混成化（ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ）またはアニーリング（ａｎｎｅａｌｉｎｇ）される。アニーリングは、鋳型核酸にオリゴヌクレオチドまたは核酸が並置（ａｐｐｏｓｉｔｉｏｎ）されることを意味し、前記並置は、重合酵素（ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ）がヌクレオチドを重合させて、鋳型核酸またはその一部に相補的な核酸分子を形成させる。混成化は、２個の一本鎖核酸が相補的な塩基配列のペアリング（ｐａｉｒｉｎｇ）によって二重層構造（ｄｕｐｌｅｘ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ）を形成することを意味する。前記プライマーは、鋳型に相補的なプライマー延長産物の合成が誘導される条件で合成の開始点として作用する。
【0029】
前記ＰＣＲ組成物は、野生型細胞遊離遺伝子及び突然変異細胞遊離遺伝子のそれぞれに特異的な５’末端が保護されたプライマー以外に、当該技術分野に広く知られた成分を含みうる。具体的に、ＰＣＲバッファ（ＰＣＲ ｂｕｆｆｅｒ）、ｄＮＴＰ、ＤＮＡポリメラーゼ（ＤＮＡ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ）などを含みうる。
【0030】
本発明において、用語、「エキソヌクレアーゼ（Ｅｘｏｎｕｃｌｅａｓｅ）」は、ＤＮＡシーケンスでポリヌクレオチド鎖の３’末端または５’末端からヌクレオチドを順次に分解する酵素である。３’－５’エキソヌクレアーゼは、３’末端でホスホジエステル（ｐｈｏｓｐｈｏ－ｄｉｅｓｔｅｒ）結合を分解する酵素であり、５’－３’エキソヌクレアーゼは、５’末端でホスホジエステル結合を分解する酵素である。
【0031】
前記エキソヌクレアーゼは、当該技術分野に知られたエキソヌクレアーゼであれば、如何なるものも使用することができる。具体的に、エキソヌクレアーゼは、３’→５’エキソヌクレアーゼ及び／または５’→３’エキソヌクレアーゼを含みうる。具体的に、エキソヌクレアーゼＩＩＩ、エキソヌクレアーゼＩ、Ｔ５エキソヌクレアーゼ、Ｔ７エキソヌクレアーゼ、エキソヌクレアーゼＴ、エキソヌクレアーゼＶ、Ｌａｍｂｄａエキソヌクレアーゼ、及びエキソヌクレアーゼＶＩＩなどを含みうる。望ましくは、エキソヌクレアーゼＴ７及びエキソヌクレアーゼＴ（一本鎖特異的ヌクレアーゼ）であり得るが、必ずしもこれに制限されるものではない。
【0032】
５’末端が保護されているプライマーを含む遺伝子増幅用組成物として野生型細胞遊離遺伝子及び突然変異細胞遊離遺伝子が含まれた試料を反応させれば、野生型細胞遊離遺伝子及び突然変異細胞遊離遺伝子末端がホスホロチオエートで保護される。この保護されているＤＮＡは、エキソヌクレアーゼを処理するとしても、ホスホロチオエート結合のために分解されない。
【0033】
野生型細胞遊離遺伝子特異的ガイドＲＮＡ及びＣａｓタンパク質によって野生型細胞遊離ＤＮＡ紙によって当該ＤＮＡが切断されれば、保護されていない核酸末端がエキソヌクレアーゼに露出され、これにより、野生型細胞遊離遺伝子ＤＮＡは、分解されて除去され、突然変異細胞遊離遺伝子のみ分離される（図１）。
【0034】
本発明の一実施例では、ＫＲＡＳ遺伝子を目標とするガイドＲＮＡを使用した時、５’－ＮＧＧ－３’ＰＡＭシーケンスを満足するｗｔＫＲＡＳのみ選択的にＣａｓ９によって切られた。この際、Ｔ７エキソヌクレアーゼとエキソヌクレアーゼＴとを処理することにより、Ｃａｓ９によって切られたｗｔＫＲＡＳ ＤＮＡが完全に除去されることを電気泳動を通じて確認することができた。
【0035】
他の側面において、本発明は、次の段階を含む突然変異遺伝子型分析方法を提供する：
ｉ）少なくとも１つの野生型細胞遊離遺伝子及び少なくとも１つの突然変異細胞遊離遺伝子が含まれた分離された試料内の前記野生型細胞遊離遺伝子と突然変異細胞遊離遺伝子とを５’末端が保護されたプライマーを用いて増幅する段階；ｉｉ）前記野生型細胞遊離遺伝子に特異的に結合するガイドＲＮＡ及びＣａｓタンパク質を処理して、前記増幅された野生型細胞遊離遺伝子のみを切断する段階；ｉｉｉ）前記突然変異細胞遊離遺伝子と、前記切断された細胞遊離遺伝子と、が存在する試料にエキソヌクレアーゼを処理して、前記切断された野生型細胞遊離遺伝子のみを除去する段階；ｉｖ）前記試料内に残っている突然変異細胞遊離遺伝子を増幅する段階；及びｖ）前記増幅された突然変異細胞遊離遺伝子を分析する段階。
ｉ）少なくとも１つの野生型細胞遊離遺伝子及び少なくとも１つの突然変異細胞遊離遺伝子が含まれた分離された試料内の前記野生型細胞遊離遺伝子と突然変異細胞遊離遺伝子とを５’末端が保護されたプライマーを用いて増幅する段階；ｉｉ）前記野生型細胞遊離遺伝子に特異的に結合するガイドＲＮＡ及びＣａｓタンパク質を処理して、前記増幅された野生型細胞遊離遺伝子のみを切断する段階；ｉｉｉ）前記突然変異細胞遊離遺伝子と、前記切断された細胞遊離遺伝子と、が存在する試料にエキソヌクレアーゼを処理して、前記切断された野生型細胞遊離遺伝子のみを除去する段階；ｉｖ）前記試料内に残っている突然変異細胞遊離遺伝子を増幅する段階；及びｖ）前記増幅された突然変異細胞遊離遺伝子を分析する段階。
【0036】
前記ｉ）少なくとも１つの野生型細胞遊離遺伝子及び少なくとも１つの突然変異細胞遊離遺伝子が含まれた分離された試料は、癌の疑い個体から分離された液体試料（血液、血しょうまたは尿試料）でもある。
前記突然変異細胞遊離遺伝子は、癌特異的な突然変異を含むＤＮＡでもある。
前記突然変異細胞遊離遺伝子分析は、癌の診断のための情報を提供するためのものである。
前記突然変異細胞遊離遺伝子は、癌特異的な突然変異を含むＤＮＡでもある。
前記突然変異細胞遊離遺伝子分析は、癌の診断のための情報を提供するためのものである。
【0037】
本発明において、用語、「診断」は、特定疾病または疾患に対する一客体の感受性（ｓｕｓｃｅｐｔｉｂｉｌｉｔｙ）を判定すること、一客体が特定疾病または疾患を現在有しているか否かを判定すること、特定疾病または疾患にかかった一客体の予後（ｐｒｏｇｎｏｓｉｓ）を判定すること、またはセラメトリックス（ｔｈｅｒａｍｅｔｒｉｃｓ）（例えば、治療効能についての情報を提供するために、客体の状態をモニタリングすること）を含む。
【0038】
本発明において、前記診断は、癌の発病の有無を確認すること、及び／または癌の予後を確認することを含みうる。
前記癌は、初期癌でもある。
前記癌は、例えば、扁平細胞癌（ｓｑｕａｍｏｕｓ ｃｅｌｌ ｃａｎｃｅｒ、例えば、上皮の扁平細胞癌）、小型細胞肺癌、非小型細胞肺癌、肺癌、腹膜癌、結腸癌、胆道腫瘍、鼻咽頭癌、喉頭癌、気管支癌、口腔癌、骨肉腫、胆嚢癌、腎臓癌、白血病、膀胱癌、黒色腫、脳癌、神経膠腫、脳腫瘍、皮膚癌、膵臓癌、乳癌、肝癌、骨髓癌、食道癌、大腸癌、胃癌、子宮頸部癌、前立腺癌、卵巣癌、頭頸部癌、及び直腸癌からなる群から選択された１種以上であり得るが、これに限定されるものではない。
前記癌は、初期癌でもある。
前記癌は、例えば、扁平細胞癌（ｓｑｕａｍｏｕｓ ｃｅｌｌ ｃａｎｃｅｒ、例えば、上皮の扁平細胞癌）、小型細胞肺癌、非小型細胞肺癌、肺癌、腹膜癌、結腸癌、胆道腫瘍、鼻咽頭癌、喉頭癌、気管支癌、口腔癌、骨肉腫、胆嚢癌、腎臓癌、白血病、膀胱癌、黒色腫、脳癌、神経膠腫、脳腫瘍、皮膚癌、膵臓癌、乳癌、肝癌、骨髓癌、食道癌、大腸癌、胃癌、子宮頸部癌、前立腺癌、卵巣癌、頭頸部癌、及び直腸癌からなる群から選択された１種以上であり得るが、これに限定されるものではない。
【0039】
前記５’末端が保護されたプライマーは、前記プライマーの５’末端がホスホロチオエート結合で保護されたものである。
【0040】
前記Ｃａｓタンパク質は、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｙｏｇｅｎｅｓ Ｃａｓ９（ＳｐＣａｓ９）、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ Ｃａｓ９（ＳｔＣａｓ９）、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐａｓｔｅｕｒｉａｎｕｓ（ＳｐａＣａｓ９）、Ｃａｍｐｙｌｏｂａｃｔｅｒ ｊｅｊｕｎｉ Ｃａｓ９（ＣｊＣａｓ９）、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ（ＳａＣａｓ９）、Ｆｒａｎｃｉｓｅｌｌａ ｎｏｖｉｃｉｄａ Ｃａｓ９（ＦｎＣａｓ９）、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｃｉｎｅｒｅａ Ｃａｓ９（ＮｃＣａｓ９）、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｓ Ｃａｓ９（ＮｍＣａｓ９）Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ とＦｒａｎｃｉｓｅｌｌａ １（Ｃｐｆ１）であり得るが、必ずしもこれに制限されるものではない。
【0041】
前記ガイドＲＮＡは、ｃｒＲＮＡ及びｔｒａｃｒＲＮＡを含む二重ＲＮＡまたはｓｇＲＮＡでもある。
【0042】
前記増幅は、ＰＣＲで行われ、ＰＣＲ条件は、当該技術分野に広く知られた方法に基づいて設定することができる。
【発明の効果】
【0043】
本発明の突然変異細胞遊離遺伝子分離用キット及び突然変異細胞遊離遺伝子分離方法は、ＣＲＩＳＰＲ-Ｃａｓシステム及びエキソヌクレアーゼを利用したものであって、血液内のｃｆＤＮＡでほとんどを占める正常体細胞由来遺伝子（＞９９．９％）を選択的に除去することができる。その結果、ｃｆＤＮＡ上で突然変異細胞遊離遺伝子（癌細胞由来遺伝子）のみを分析することができて、初期癌診断に有用に使われる。
【0044】
また、本発明の突然変異細胞遊離遺伝子分離用キット及び突然変異細胞遊離遺伝子分離方法は、試料内の正常細胞由来の遺伝子を除去して、ｃｆＤＮＡに存在する突然変異細胞遊離遺伝子（癌細胞由来遺伝子）の比率に相応する極微量の遺伝子を分析することができる効果を提供する。
【0045】
しかも、本発明は、複数個の正常由来遺伝子特異的なガイドＲＮＡを利用することができるので、多重化システム（ｍｕｌｔｉｐｌｅｘｉｎｇ ｓｙｓｔｅｍ）によって同時に２種以上の発癌遺伝子に対する同時検出が可能である。
【図面の簡単な説明】
【0046】
【図1】本発明で試料内のｗｔＤＮＡ（ｗｉｌｄ ｔｙｐｅ ＤＮＡ）を選択的に除去することにより、ｍｔＤＮＡ（ｍｕｔａｎｔ ＤＮＡ）のみを増幅させる過程の模式図である。
【図2A】本発明によるＣＲＩＳＰＲ－Ｃａｓシステムを用いて試料内のｗｔＤＮＡのみを選択的に切断した結果に関するものである。
【図2B】同上
【図3A】本発明によるＣＲＩＳＰＲ－Ｃａｓシステムによって切断されたＤＮＡが選択的にエキソヌクレアーゼによって分解される結果に関するものである。
【図3B】同上
【図4】本発明による ＣＲＩＳＰＲ－Ｃａｓ及びエキソヌクレアーゼを処理してＫＲＡＳ ｗｔＤＮＡを除去したサンプルを次世代塩基配列分析を通じて分析した結果に関するものである。
【図5】本発明による ＣＲＩＳＰＲ－Ｃａｓ及びエキソヌクレアーゼを処理してＫＲＡＳ ｗｔＤＮＡを除去したサンプルをサンガーシーケンシングを通じて分析した結果に関するものである。
【図6】本発明による ＣＲＩＳＰＲ－Ｃａｓ及びエキソヌクレアーゼを処理して多様な目標遺伝子をマルチプレクシング方法で除去することにより、多様な癌由来遺伝子を一回で増幅させる過程を示す具体的な模式図である。
【図7A】本発明による ＣＲＩＳＰＲ－Ｃａｓ及びエキソヌクレアーゼを処理し、マルチプレクシングシステムを用いて目標遺伝子（ｗｔＤＮＡ）のみ選択的に除去することができるということをアガロースゲル電気泳動を通じて立証した結果に関するものである。
【図7B】同上
【図8】本発明による ＣＲＩＳＰＲ－Ｃａｓ及びエキソヌクレアーゼを処理し、マルチプレクシングシステムを用いてＫＲＡＳ ｗｔＤＮＡとＥＧＦＲ ｗｔＤＮＡとを除去したサンプルを次世代塩基配列分析を通じて分析した結果に関するものである。
【図9】本発明でＣａｓ９オーソログ（ｏｔｈｏｌｏｇｕｅ）を活用したマルチプレクシングシステムが結合された遺伝子除去方法を示す模式図である。
【発明を実施するための形態】
【0047】
目標遺伝子を選択的に切断させるＣＲＩＳＰＲ-Ｃａｓシステムは、非常に高い正確度を有したエンドヌクレアーゼ（ｅｎｄｏｎｕｃｌｅａｓｅ）であって、Ｃａｓ９オーソログは、それぞれ異なるＰＡＭ領域配列を有している。ＰＡＭシーケンスは、Ｃａｓ９タンパク質が目標遺伝子を認識する時、必須的な遺伝子シーケンスであって、目標遺伝子と完璧に相補的なガイドＲＮＡと結合しているとしても、ＰＡＭ配列が満足されなければ、ＣＲＩＳＰＲ-Ｃａｓシステムは作動しない。また、ガイドＲＮＡが標的遺伝子と非常補的な遺伝子配列が多ければ、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓは、標的遺伝子を正常に認識することができなくなる。ヌクレオチド置換（ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ ｓｕｂｓｔｉｔｕｔｉｏｎ）によって発生した癌遺伝子を確認するために、野生型遺伝子に相補的なガイドＲＮＡをデザインした。ガイドＲＮＡの目標を選定する時、大きく２種の基準にデザインした。置換が起こる前の塩基配列がＰＡＭサイトに該当する場合、ＰＡＭサイトを基準にガイドＲＮＡを設計し、ＰＡＭサイトに該当しない場合には、シード領域（ｓｅｅｄ ｒｅｇｉｏｎ）にミスマッチ（ｍｉｓｍａｔｃｈ）を追加してガイドＲＮＡを設計した。Ｃａｓ９のシード領域は、標的遺伝子を認識する時、ガイドＲＮＡと標的遺伝子とのミスマッチに敏感に反応する位置に、シード領域に１～２ｎｔミスマッチがある場合には、目標遺伝子を明確に認知することができなくなる。
【0048】
本発明で使われるガイドＲＮＡは、野生型の遺伝子を選択的に認識できるように設計されている。
【0049】
本発明において、Ｃａｓ９で標的遺伝子を切断した後、ＰＣＲ増幅を行えば、Ｃａｓ９によって切られた野生型細胞遊離ＤＮＡは、突然変異細胞遊離ＤＮＡよりも増幅された量が少なかった。しかし、Ｃａｓ９で野生型ＤＮＡを切り、突然変異ＤＮＡに対するＰＣＲを行う単純な方式としては、極微量の突然変異遺伝子を確認するための検出限界に到逹することができなかった。これは、Ｃａｓ９によって切断される野生型ＤＮＡ切片がＰＣＲされる過程でプライマーの役割ができるために、最終的に増幅されたＰＣＲ産物に野生型由来の遺伝子配列が含まれうる。Ｃａｓ９の正確度を借りて野生型遺伝子を選択的に切断させても、切られたＤＮＡ切片が背景信号を上昇させて、極微量存在する癌由来遺伝子を検出することができる検出限界に到逹できないようにした（図１の下段左側ボックスの図参照）。
【0050】
しかし、本発明では、ＰＣＲ過程で背景信号を生成する野生型ＤＮＡの切られた切片を除去することにより、微量の標的遺伝子に対しても、十分な検出能を有するようにした。微量のｃｆＤＮＡ遺伝子分析の最終過程で分析対象遺伝子をＰＣＲを通じて増幅する時、５’末端がホスホロチオエート結合で保護されたプライマーを使用して増幅を行うか、既に増幅されたＰＣＲアンプリコンの両末端にホスホロチオエート結合を含んでいるアダプダ（ａｄａｔｐｏｒ）をライゲーション（ｌｉｇａｔｉｏｎ）させる。ヌクレオチドを連結するホスホジエステル結合（ｐｈｏｐｈｏｄｉｅｓｔｅｒ ｂｏｎｄ）をホスホロチオエート結合に置き換えれば、ヌクレアーゼは、当該結合が存在するヌクレオチドの間を切断することができなくなる。
【0051】
標的遺伝子が、両末端がホスホロチオエート結合で保護されている時、エキソヌクレアーゼを処理すれば、当該標的遺伝子は、エキソヌクレアーゼによって分解されない。しかし、Ｃａｓ９によって目標遺伝子が切断されれば、ホスホロチオエートで保護されていない新たなＤＮＡ末端がエキソヌクレアーゼに露出されて、Ｃａｓ９によって切られたＤＮＡは、エキソヌクレアーゼによって除去される。
【0052】
したがって、本発明の基盤となる遺伝子切断と除去技術は、相互補完的な役割を行って、従来には不可能であった微量のｃｆＤＮＡ内の癌由来遺伝子の明確な検出が可能であった。
【0053】
本発明の一態様では、分離精製されたＳｐＣａｓ９タンパク質とガイドＲＮＡ複合体は、５’－ＮＧＧ－３’のＰＡＭシーケンスを満足した遺伝子目標地点のみを正確に切断を起こすことを確認した。
【0054】
本発明において、ＫＲＡＳ遺伝子の変異は、癌遺伝子の主要変異の１つであって、ｃｆＤＮＡ上で重要なバイオマーカーである。特に、ＫＲＡＳの変異は、ｃＤＮＡ上の３５番目の核酸がＧがＴに置換されて、タンパク質上で１２番目のアミノ酸がアスパラギン酸（ａｓｐａｒａｔａｔｅ）からバリン（ｖａｌｉｎｅ）に置き換えられる変異が主に発生する。このように３５番目のグアノシン（ｇｕａｎｏｓｉｎｅ）がチミジン（ｔｈｙｍｉｄｉｎｅ）に置換されたｍｔＤＮＡは、ターゲット遺伝子上でＣａｓ９のＰＡＭに該当する塩基配列がＮＧＴに変わる。ＰＡＭシーケンスでＮＧＧを特異的に認識するＳｐＣａｓ９は、ｗｔＫＲＡＳとｍｔＫＲＡＳ（３５Ｇ＞Ｔ）とのうち、ｗｔＫＲＡＳのみを特異的に認識してＤＮＡを切断した（図２）。
【0055】
以下、実施例を通じて本発明をさらに詳しく説明する。これら実施例は、単に本発明を例示するためのものであって、本発明の範囲が、これら実施例によって制限されるものと解釈されないことは当業者にとって自明である。
【0056】
実施例１：ＳｐＣａｓ９の分離及び精製
Ｎ末端にＨｉｓｘ６標識（ｔａｇ）を含んでいる組換え化膿性連鎖球菌Ｃａｓ９（ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｙｏｇｅｎｅｓ Ｃａｓ９、ｓｐＣａｓ９）のタンパク質発現のために、ｓｐＣａｓ９遺伝情報（Ｈｉｓｘ６を含んだタンパク質の全体配列、配列番号１）を有しているプラスミド（ｐｌａｓｍｉｄ）を感応細胞（Ｃｏｍｐｅｔｅｎｔ ｃｅｌｌ）であるＢＬ２１－ＤＥ３種に形質転換を実施した。前記形質転換されたＢＬ２１－ＤＥ３が増殖している液体培地にＩＰＴＧ（Ｉｓｏｐｒｏｐｙｌ ｂ－Ｄ－ＴｈｉｏＧａｌａｃｔｏｓｉｄｅ）を処理した後、１８℃で１６時間培養した。細胞を５０００ｘｇで１５分間遠心分離した後、ＮａＨ２ＰＯ４ ５０ｍＭ（ｐＨ８）、ＮａＣｌ ４００ｍＭ、イミダゾール（ｉｍｉｄａｚｏｌｅ）１０ｍＭ、ＰＭＳＦ １ｍＭ、ＤＴＴ １ｍＭ、トリトンＸ－１００（Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００）１％、リゾチーム（ｌｙｓｏｚｙｍｅ）１ｍｇ／ｍｌを含んだ溶解緩衝液（ｌｙｓｉｓ ｂｕｆｆｅｒ）で細胞を融解させた。超音波粉砕機を用いて細胞を粉砕した後、１５０００ｘｇ ３０分間遠心分離して、上澄み液と細胞滓とを分離した。上澄み液にニッケル－ニトリロ三酢酸レジン（Ｎｉ－ＮＴＡ ｒｅｓｉｎ、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）を添加して、４℃で１時間反応させた後、ＮａＨ２ＰＯ４ ５０ｍＭ（ｐＨ８）、ＮａＣｌ ４００ｍＭ、イミダゾール２０ｍＭの洗浄緩衝液（ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ）でＮｉ－ＮＴＡレジンを２回繰り返して洗浄した。最後に、当該レジンにＮａＨ２ＰＯ４ ５０ｍＭ（ｐＨ８）、ＮａＣｌ ４００ｍＭ、イミダゾール２５０ｍＭの溶出緩衝液（ｅｌｕｔｉｏｎ ｂｕｆｆｅｒ）を添加することにより、ｓｐＣａｓ９をＮｉ－ＮＴＡレジンから分離した。ｓｐＣａｓ９が含まれた緩衝液をａｍｉｃｏｎ ｕｌｔｒａ ｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｌ ｆｉｌｔｅｒを用いてＨＥＰＥＳ ２０ｍＭ（ｐＨ７．５）、ＮａＣｌ ４００ｍＭ、ＤＴＴ １ｍＭ、グリセロール（ｇｌｙｃｅｒｏｌ）４０％を含む緩衝液に置き換えた。
Ｎ末端にＨｉｓｘ６標識（ｔａｇ）を含んでいる組換え化膿性連鎖球菌Ｃａｓ９（ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｙｏｇｅｎｅｓ Ｃａｓ９、ｓｐＣａｓ９）のタンパク質発現のために、ｓｐＣａｓ９遺伝情報（Ｈｉｓｘ６を含んだタンパク質の全体配列、配列番号１）を有しているプラスミド（ｐｌａｓｍｉｄ）を感応細胞（Ｃｏｍｐｅｔｅｎｔ ｃｅｌｌ）であるＢＬ２１－ＤＥ３種に形質転換を実施した。前記形質転換されたＢＬ２１－ＤＥ３が増殖している液体培地にＩＰＴＧ（Ｉｓｏｐｒｏｐｙｌ ｂ－Ｄ－ＴｈｉｏＧａｌａｃｔｏｓｉｄｅ）を処理した後、１８℃で１６時間培養した。細胞を５０００ｘｇで１５分間遠心分離した後、ＮａＨ２ＰＯ４ ５０ｍＭ（ｐＨ８）、ＮａＣｌ ４００ｍＭ、イミダゾール（ｉｍｉｄａｚｏｌｅ）１０ｍＭ、ＰＭＳＦ １ｍＭ、ＤＴＴ １ｍＭ、トリトンＸ－１００（Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００）１％、リゾチーム（ｌｙｓｏｚｙｍｅ）１ｍｇ／ｍｌを含んだ溶解緩衝液（ｌｙｓｉｓ ｂｕｆｆｅｒ）で細胞を融解させた。超音波粉砕機を用いて細胞を粉砕した後、１５０００ｘｇ ３０分間遠心分離して、上澄み液と細胞滓とを分離した。上澄み液にニッケル－ニトリロ三酢酸レジン（Ｎｉ－ＮＴＡ ｒｅｓｉｎ、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）を添加して、４℃で１時間反応させた後、ＮａＨ２ＰＯ４ ５０ｍＭ（ｐＨ８）、ＮａＣｌ ４００ｍＭ、イミダゾール２０ｍＭの洗浄緩衝液（ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ）でＮｉ－ＮＴＡレジンを２回繰り返して洗浄した。最後に、当該レジンにＮａＨ２ＰＯ４ ５０ｍＭ（ｐＨ８）、ＮａＣｌ ４００ｍＭ、イミダゾール２５０ｍＭの溶出緩衝液（ｅｌｕｔｉｏｎ ｂｕｆｆｅｒ）を添加することにより、ｓｐＣａｓ９をＮｉ－ＮＴＡレジンから分離した。ｓｐＣａｓ９が含まれた緩衝液をａｍｉｃｏｎ ｕｌｔｒａ ｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｌ ｆｉｌｔｅｒを用いてＨＥＰＥＳ ２０ｍＭ（ｐＨ７．５）、ＮａＣｌ ４００ｍＭ、ＤＴＴ １ｍＭ、グリセロール（ｇｌｙｃｅｒｏｌ）４０％を含む緩衝液に置き換えた。
【0057】
実施例２．インビトロ転写によるガイドＲＮＡの合成
Ｔ７プロモーター及びガイドＲＮＡ情報が含まれているＤＮＡ鋳型とＴ７ ＲＮＡ重合酵素とを４０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ７．９）、６ｍＭ ＭｇＣｌ２、１０ｍＭ ＤＴＴ、１０ｍＭ ＮａＣｌ、２ｍＭ スペルミジン（ｓｐｅｒｍｉｄｉｎｅ）、ＮＴＰ、そして、Ｒｎａｓｅ阻害剤が含まれた緩衝液で３７℃で１８時間反応させることにより、インビトロ（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）でガイドＲＮＡを合成した（配列番号２及び配列番号３）。合成されたガイドＲＮＡは、ＲＮＡ精製キットを使用して精製した。
Ｔ７プロモーター及びガイドＲＮＡ情報が含まれているＤＮＡ鋳型とＴ７ ＲＮＡ重合酵素とを４０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ７．９）、６ｍＭ ＭｇＣｌ２、１０ｍＭ ＤＴＴ、１０ｍＭ ＮａＣｌ、２ｍＭ スペルミジン（ｓｐｅｒｍｉｄｉｎｅ）、ＮＴＰ、そして、Ｒｎａｓｅ阻害剤が含まれた緩衝液で３７℃で１８時間反応させることにより、インビトロ（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）でガイドＲＮＡを合成した（配列番号２及び配列番号３）。合成されたガイドＲＮＡは、ＲＮＡ精製キットを使用して精製した。
【0058】
実施例３．インビトロ切断（ｉｎ ｖｉｔｒｏ Ｃｌｅａｖａｇｅ）
前記実施例１によって分離精製された５００ｎｇ ＳｐＣａｓ９（以下、Ｃａｓ９と表示）と前記実施例２によって製造された１００ｎｇ ガイドＲＮＡとを３７℃で５分間結合させ、酢酸カリウム（Ｐｏｔａｓｓｉｕｍ ａｃｅｔａｔｅ）５０ｍＭ（ｐＨ７．９）、トリス－酢酸（Ｔｒｉｓ－ａｃｅｔａｔｅ）２０ｍＭ、酢酸マグネシウム（Ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ａｃｅｔａｔｅ）１０ｍＭ、ＤＴＴ １ｍＭで構成された緩衝液で１５０ｎｇ 二本鎖ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡ）である野生型ＫＲＡＳ遺伝子（配列番号４）及び突然変異ＫＲＡＳ遺伝子（ＫＲＡＳ Ｄ１２Ｖ、配列番号６）と３７℃で６０分間反応させた。ＫＲＡＳ遺伝子及びアミノ酸配列情報は、次の表１のようである。
前記実施例１によって分離精製された５００ｎｇ ＳｐＣａｓ９（以下、Ｃａｓ９と表示）と前記実施例２によって製造された１００ｎｇ ガイドＲＮＡとを３７℃で５分間結合させ、酢酸カリウム（Ｐｏｔａｓｓｉｕｍ ａｃｅｔａｔｅ）５０ｍＭ（ｐＨ７．９）、トリス－酢酸（Ｔｒｉｓ－ａｃｅｔａｔｅ）２０ｍＭ、酢酸マグネシウム（Ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ａｃｅｔａｔｅ）１０ｍＭ、ＤＴＴ １ｍＭで構成された緩衝液で１５０ｎｇ 二本鎖ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡ）である野生型ＫＲＡＳ遺伝子（配列番号４）及び突然変異ＫＲＡＳ遺伝子（ＫＲＡＳ Ｄ１２Ｖ、配列番号６）と３７℃で６０分間反応させた。ＫＲＡＳ遺伝子及びアミノ酸配列情報は、次の表１のようである。
【0059】
【表1-1】
【表1-2】
【0060】
Ｃａｓ９によって切断されたＤＮＡ切片は、１．５％アガロースゲル（ａｇａｒｏｓｅ ｇｅｌ）で電気泳動を行った後、ＥｔＢｒで染色して確認した。実験の結果、分離精製されたＣａｓ９タンパク質とガイドＲＮＡ複合体は、５’－ＮＧＧ－３’のＰＡＭシーケンスを満足した遺伝子目標地点のみを正確に切断を起こすことを確認した（図２参照）。
【0061】
癌遺伝子の主要変異の１つであるＫＲＡＳ遺伝子の変異は、ｃｆＤＮＡ上で検出することができる重要なバイオマーカーである。特に、ＫＲＡＳの変異は、ｃＤＮＡ上の３５番目の核酸がＧがＴに置換されて、ＫＲＡＳタンパク質内の１２番目のアミノ酸がグリシン（ｇｌｙｃｉｎｅ、Ｇ）からバリン（Ｖ）に置き換えられる変異が重要である（配列番号５及び配列番号７）。このように３５番目のグアノシンがチミジンに置換されたｍｔＤＮＡは、ターゲット遺伝子上でＣａｓ９のＰＡＭに該当する塩基配列がＮＧＴに変わる。ＰＡＭシーケンスとしてＮＧＧを特異的に認識するＣａｓ９は、ｗｔＫＲＡＳとｍｔＫＲＡＳ（３５Ｇ＞Ｔ）とのうち、ｗｔＫＲＡＳのみを特異的に認識してＤＮＡを切断する（配列番号８）。
【0062】
ガイドＲＮＡは、野生型ＫＲＡＳ遺伝子（配列番号４）を含んだ２７８７ｎｔのＤＮＡ上で１５７２ｎｔ位置に相応する目標シーケンスを有している。ガイドＲＮＡと結合したＣａｓ９は、２７８７ｎｔのＤＮＡ上でＫＲＡＳ遺伝子を切断させて、１５７２ｎｔの長い切片と、１２１５ｎｔの短い切片と、を作ることを電気泳動の結果で確認した（図２Ｂの上段及び図３Ｂの上段参照）。しかし、当該ガイドＲＮＡを使用するとしても、ＰＡＭシーケンスが５’－ＮＧＴ－３’に変わったｍｔＫＲＡＳ遺伝子は、Ｃａｓ９によって切断されないことを確認した（図２Ｂの下段及び図３Ｂの下段参照）。
【0063】
実施例４．野生型細胞遊離ＤＮＡのみの選択的除去
野生型細胞遊離遺伝子が選択的に切断され、このような選択的切断がエキソヌクレアーゼによって選択的に進行することを確認するための実験を実施した。
野生型細胞遊離遺伝子が選択的に切断され、このような選択的切断がエキソヌクレアーゼによって選択的に進行することを確認するための実験を実施した。
【0064】
ホスホロチオエート結合を使用して５’末端が保護されたプライマー（表２）とｐｈｕｓｉｏｎポリメラーゼとを使用して、標的遺伝子（癌患者血液から分離した野生型細胞遊離ＤＮＡ及び癌特異的な細胞由来ＤＮＡ）をＰＣＲ増幅させる。ＰＣＲ精製キット（Ｑｕｉａｇｅｎ Ｃａｔ ＩＤ：２８１０４）を使用して野生型ＤＮＡ（ｗｔＤＮＡ）と突然変異ＤＮＡ（ｍｔＤＮＡ）とを分離精製した後、ｗｔＤＮＡとｍｔＤＮＡとを９０：１０（ｗｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ９０％；ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ １０％）、９９：１（ｗｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ９９％；ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ １％）、９９．９：０．１（ｗｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ９９．９％；ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ０．１％）、９９．９９：０．０１（ｗｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ９９．９９％；ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ０．０１％）、９９．９９９：０．００１（ｗｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ９９．９９９％；ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ０．００１％）の比率で混ぜて、ＤＮＡ試料（ｓａｍｐｌｅ）を準備した。５００ｎｇ ＳｐＣａｓ９と１００ｎｇ ｇｕｉｄｅ ＲＮＡとを３７℃で５分間結合させ、酢酸カリウム５０ｍＭ（ｐＨ７．９）、トリス－酢酸２０ｍＭ、酢酸マグネシウム１０ｍＭ、ＤＴＴ（ジチオトレイトール、還元剤）１ｍＭで構成された緩衝液から精製された１００ｎｇ 二本鎖ＤＮＡ（ｄｏｕｂｌｅ ｓｔｒａｎｄ ＤＮＡ、ｄｓＤＮＡ）と３７℃で６０分間反応させた。
【0065】
【表2】
【0066】
反応後に、エキソヌクレアーゼＴ７、エキソヌクレアーゼＴを添加して、３７℃で６０分間追加的に反応を実施した。Ｃａｓ９とエキソヌクレアーゼとが処理されたＤＮＡ切片は、１．５％アガロースゲルで電気泳動で確認するか、ＰＣＲ増幅を行って、サンガーシーケンシング（ｓａｎｇｅｒ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ）と次世代シーケンシング（ｎｅｘｔ ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ）とで塩基配列を確認した。
【0067】
ＫＲＡＳ遺伝子を含んでいる２７８７ｎｔ ＤＮＡは、両末端がホスホロチオエート結合で保護されている（図３Ａの段階１参照）。両末端がホスホロチオエート結合によって保護されているＤＮＡは、エキソヌクレアーゼを処理するとしても分解されない。しかし、ｃａｓ９によって当該ＤＮＡが切断されれば、保護されていない核酸末端がエキソヌクレアーゼに露出され、これにより、ＤＮＡは分解された（図３Ａの段階２及び段階３参照）。ＫＲＡＳ遺伝子を標的とするガイドＲＮＡを使用した時、５’－ＮＧＧ－３’ＰＡＭシーケンスを満足するｗｔＫＲＡＳ遺伝子のみが選択的にＣａｓ９によって切られる。この際、エキソヌクレアーゼＴ７とエキソヌクレアーゼＴとを処理することにより、Ｃａｓ９によって切られたｗｔＫＲＡＳ ＤＮＡが完全に除去されることを電気泳動を通じて確認した（図３Ｂの上段最右側ライン参照）。しかし、Ｃａｓ９によって切られていないｍｔＫＲＡＳ ＤＮＡは、エキソヌクレアーゼが処理されているにも拘らず、両末端のホスホロチオエート結合のために保護されて分解されないことを確認した（図３Ｂの下段最右側ライン参照）。
【0068】
実施例５．標的ＤＮＡに対する検出限界の確認
標的ＤＮＡのみを選択的に除去した時、微量で存在する遺伝子をシーケンシングの結果で確認した。この際、微量遺伝子に対する検出限界を確認するために、ｗｔＤＮＡとｍｔＤＮＡとを互いに異なる比率で混ぜて、実験を進行した。両先端がホスホロチオエート結合で保護されたｗｔＫＲＡＳ ＤＮＡとｍｔＫＲＡＳ ＤＮＡとを９０：１０（ｗｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ９０％；ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ １０％）、９９：１（ｗｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ９９％；ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ １％）、９９．９：０．１（ｗｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ９９．９％；ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ０．１％）、９９．９９：０．０１（ｗｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ９９．９９％；ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ０．０１％）、９９．９９９：０．００１（ｗｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ９９．９９９％；ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ０．００１％）の比率で混ぜ、Ｃａｓとエキソヌクレアーゼとを処理した後、最終的に得たサンプルに対するシーケンシングを実施した（図４参照）。
標的ＤＮＡのみを選択的に除去した時、微量で存在する遺伝子をシーケンシングの結果で確認した。この際、微量遺伝子に対する検出限界を確認するために、ｗｔＤＮＡとｍｔＤＮＡとを互いに異なる比率で混ぜて、実験を進行した。両先端がホスホロチオエート結合で保護されたｗｔＫＲＡＳ ＤＮＡとｍｔＫＲＡＳ ＤＮＡとを９０：１０（ｗｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ９０％；ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ １０％）、９９：１（ｗｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ９９％；ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ １％）、９９．９：０．１（ｗｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ９９．９％；ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ０．１％）、９９．９９：０．０１（ｗｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ９９．９９％；ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ０．０１％）、９９．９９９：０．００１（ｗｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ９９．９９９％；ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ ０．００１％）の比率で混ぜ、Ｃａｓとエキソヌクレアーゼとを処理した後、最終的に得たサンプルに対するシーケンシングを実施した（図４参照）。
【0069】
図４に示すように、Ｃａｓ９のみ処理したサンプルでも、ｍｔＤＮＡの比率が上昇することをＮＧＳシーケンシングの結果で確認することができた。しかし、最初の分析サンプルでのｍｔＤＮＡの比率が１％以下に下がる場合、最終的に検出されるｍｔＤＮＡ比率が著しく低くなる。一般的に、ｃｆＤＮＡでのｍｔＤＮＡの比率は、０．０１％以下である点を考慮した時、Ｃａｓ９で標的遺伝子のみ切断する場合、ｍｔＤＮＡの存否に対する結果を確認することは容易ではない。これにより、本発明者らは、標的遺伝子の検出限界に対する確認を下記のように実施した。
【0070】
Ｃａｓ９とエキソヌクレアーゼとを処理したサンプルをサンガーシーケンシングを通じて分析した時、ＫＲＡＳ ｃ．３５グアノシンに該当する部分がチミジンと読まれることを確認した。Ｃａｓ９のみ処理した場合、最初のｍｔＤＮＡの比率が１％であったサンプル（ＮＧＳ ｒｅｓｕｌｔ ｍｔＤＮＡ：４４％）で３５番目の核酸に該当する部分でグアノシンとチミジンとのヒストグラムが同時に観測されることを確認し、ｍｔＤＮＡの比率が１％以下のサンプルでは、ｍｔＤＮＡのシーケンスを観測することができなかった（図５の左側、Ｃａｓ＿ｔｒｅａｔｍｅｎｔ参照）。しかし、Ｃａｓ９、エキソヌクレアーゼＴ、エキソヌクレアーゼＴ７が処理された場合、ｍｔＤＮＡの比率が０．０１％であったサンプルでも、突然変異シーケンスをサンガーシーケンシングの結果上で確認した（図５の右側、Ｃａｓ＋ＥｘｏＴ＋ＥｘｏＴ７＿ｔｒｅａｔｍｅｎｔ参照）。
【0071】
図５で確認したように、本発明において、Ｃａｓ９とエキソヌクレアーゼＴ７、エキソヌクレアーゼＴとを共に処理したサンプルの場合、最初ののｍｔＤＮＡの比率が０．０１％以下のサンプルでも、ＮＧＳ結果でｍｔＤＮＡの存否を明確に確認した（Ｃａｓ９のみを使用して検出可能な試料のｍｔＤＮＡ比率は、１％）。したがって、本発明では、Ｃａｓ９システムのみを用いて標的遺伝子を切断する方法に比べて、少なくとも１００倍以上に検出限界を確張した。
【0072】
実施例６．マルチプレックスシステムを利用した多様な標的ＤＮＡの除去
下記の方法によって、マルチプレックスシステムを利用した多様な標的ＤＮＡの除去を確認した。ＥＧＦＲ配列は、次の表３のようである。
下記の方法によって、マルチプレックスシステムを利用した多様な標的ＤＮＡの除去を確認した。ＥＧＦＲ配列は、次の表３のようである。
【0073】
【表3-1】
【表3-2】
【表3-3】
【0074】
ホスホロチオエート結合で５’末端が保護されたプライマー（表２）とｐｈｕｓｉｏｎポリメラーゼとを使用して、複数個の標的遺伝子に対するＰＣＲ増幅を実施した。ＰＣＲ精製キットを使用して分離精製されたＫＲＡＳ ＤＮＡとＥＧＦＲ ＤＮＡとを１：１で混ぜて、標的ＤＮＡ試料を準備した。５００ｎｇ Ｃａｓ９とＫＲＡＳとＥＧＦＲとを標的とするガイドＲＮＡ（配列番号３）をそれぞれ５０ｎｇずつ混ぜて、５分間結合させた。以後、酢酸カリウム５０ｍＭ（ｐＨ７．９）、トリス－酢酸２０ｍＭ、酢酸マグネシウム１０ｍＭ、ＤＴＴ １ｍＭで構成された緩衝液から精製された１００ｎｇ 標的ＤＮＡサンプルと３７℃で６０分間反応させた。
【0075】
Ｃａｓ９と反応させた後、エキソヌクレアーゼＴ７、エキソヌクレアーゼＴを添加して、３７℃、６０分間追加的に反応させた。Ｃａｓ９とエキソヌクレアーゼとが処理されたＤＮＡ切片は、１．５％アガロースゲルで電気泳動で確認するか、ＰＣＲ増幅を行って、サンガーシーケンシングと次世代シーケンシングとで塩基配列を確認した。
【0076】
ＫＲＡＳ ＤＮＡを標的とするガイドＲＮＡとＥＧＦＲ ＤＮＡを標的とするガイドＲＮＡとを混合してＣａｓ９と結合させた後、ｗｔＫＲＡＳ ＤＮＡ（２７８７ｎｔ）とｗｔＥＧＦＲ ＤＮＡ（２８１３ｎｔ）とが１：１で混合されたＤＮＡを切った時、それぞれの標的遺伝子は、当該ガイドＲＮＡによって切られることを確認し、切られた遺伝子のみエキソヌクレアーゼによって完全に分解されることを電気泳動を通じて検証した（図７Ｂの中段参照）。一方、ｍｔＫＲＡＳとｍｔＥＧＦＲとが１：１で混じられたＤＮＡサンプルは、Ｃａｓ９によって切断されず、エキソヌクレアーゼによって分解されないことを確認した（図７Ｂの下段参照）。
【0077】
前記のように、それぞれ異なる遺伝子を標的とするガイドＲＮＡを共に使用するマルチプレクシングシステムを適用して、複数個の標的遺伝子を同時に除去することができるということを電気泳動を通じて確認した。また、多様な遺伝子を同時に除去することにより、多種の極微量遺伝子をＮＧＳ結果上で一回で確認した。
【0078】
実施例７．マルチプレクシングシステムを利用した多様な標的ＤＮＡに対する検出限界の確認
ＫＲＡＳ遺伝子とＥＧＦＲ遺伝子とに該当するｗｔＤＮＡとｍｔＤＮＡとを互いに異なる比率で混ぜたＤＮＡサンプルを用いてマルチプレクシングシステムの検出限界をＮＧＳ分析を通じて確認した。両先端がホスホロチオエート結合で保護されたｗｔＫＲＡＳ ＤＮＡ、ｗｔＥＧＦＲ ＤＮＡとｍｔＫＲＡＳ ＤＮＡ、ｍｔＥＧＦＲ ＤＮＡとを９０：１０（ＫＲＡＳ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：１０％、ＥＧＦＲ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：１０％、ｗｔＫＲＡＳ ＤＮＡ ｒａｔｉｏ及びｗｔＥＧＦＲ ＤＮＡ ｒａｔｉｏは、それぞれ９０％）、９９：１（ＫＲＡＳ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：１％、ＥＧＦＲ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：１％、ｗｔＫＲＡＳ ＤＮＡ ｒａｔｉｏ及びｗｔＥＧＦＲ ＤＮＡ ｒａｔｉｏは、それぞれ９９％）、９９．９：０．１（ＫＲＡＳ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：０．１％、ＥＧＦＲ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏｎ：０．１％、ｗｔＫＲＡＳ ＤＮＡ ｒａｔｉｏ及びｗｔＥＧＦＲ ＤＮＡ ｒａｔｉｏは、それぞれ９９．９％）、９９．９９：０．０１（ＫＲＡＳ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：０．０１％、ＥＧＦＲ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：０．０１％、ｗｔＫＲＡＳ ＤＮＡ ｒａｔｉｏ及びｗｔＥＧＦＲ ＤＮＡ ｒａｔｉｏは、それぞれ９９．９９％）、９９．９９９：０．００１（ＫＲＡＳ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：０．００１％、ＥＧＦＲ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：０．００１％、ｗｔＫＲＡＳ ＤＮＡ ｒａｔｉｏ及びｗｔＥＧＦＲ ＤＮＡ ｒａｔｉｏは、それぞれ９９．９９９％）の比率で混ぜ、Ｃａｓ９とエキソヌクレアーゼとを処理した後、最終的に得たサンプルをシーケンシングした。
ＫＲＡＳ遺伝子とＥＧＦＲ遺伝子とに該当するｗｔＤＮＡとｍｔＤＮＡとを互いに異なる比率で混ぜたＤＮＡサンプルを用いてマルチプレクシングシステムの検出限界をＮＧＳ分析を通じて確認した。両先端がホスホロチオエート結合で保護されたｗｔＫＲＡＳ ＤＮＡ、ｗｔＥＧＦＲ ＤＮＡとｍｔＫＲＡＳ ＤＮＡ、ｍｔＥＧＦＲ ＤＮＡとを９０：１０（ＫＲＡＳ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：１０％、ＥＧＦＲ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：１０％、ｗｔＫＲＡＳ ＤＮＡ ｒａｔｉｏ及びｗｔＥＧＦＲ ＤＮＡ ｒａｔｉｏは、それぞれ９０％）、９９：１（ＫＲＡＳ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：１％、ＥＧＦＲ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：１％、ｗｔＫＲＡＳ ＤＮＡ ｒａｔｉｏ及びｗｔＥＧＦＲ ＤＮＡ ｒａｔｉｏは、それぞれ９９％）、９９．９：０．１（ＫＲＡＳ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：０．１％、ＥＧＦＲ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏｎ：０．１％、ｗｔＫＲＡＳ ＤＮＡ ｒａｔｉｏ及びｗｔＥＧＦＲ ＤＮＡ ｒａｔｉｏは、それぞれ９９．９％）、９９．９９：０．０１（ＫＲＡＳ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：０．０１％、ＥＧＦＲ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：０．０１％、ｗｔＫＲＡＳ ＤＮＡ ｒａｔｉｏ及びｗｔＥＧＦＲ ＤＮＡ ｒａｔｉｏは、それぞれ９９．９９％）、９９．９９９：０．００１（ＫＲＡＳ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：０．００１％、ＥＧＦＲ ｍｔＤＮＡ ｒａｔｉｏ：０．００１％、ｗｔＫＲＡＳ ＤＮＡ ｒａｔｉｏ及びｗｔＥＧＦＲ ＤＮＡ ｒａｔｉｏは、それぞれ９９．９９９％）の比率で混ぜ、Ｃａｓ９とエキソヌクレアーゼとを処理した後、最終的に得たサンプルをシーケンシングした。
【0079】
ＫＲＡＳに該当するガイドＲＮＡのみを利用した実験（単独標的ＤＮＡに対する実験）のように、マルチプレクシングシステムを導入した時、Ｃａｓ９のみを使用した場合、１％以下のｍｔＤＮＡが存在するサンプルで正常に突然変異シーケンスを検出することができなかった。しかし、Ｃａｓ９とエキソヌクレアーゼとが共に処理された場合、マルチプレクシングシステムでも、ｍｔＤＮＡを効果的に検出することを確認することができた（図８及び図９参照）。
【0080】
図９について説明すれば、次の通りである。Ｃａｓ９オーソログは、互いに異なる配列のＰＡＭを認識する。ｓｐＣａｓ９の場合、標的遺伝子３’隣接部分に５’－ＮＧＧ－３’のシーケンスを保有した遺伝子のみを切断させ、遺伝子上の当該ＮＧＧ塩基配列部分をｓｐＣａｓ９のＰＡＭ配列と呼ぶ。ｎｍＣａｓ９、ｓａＣａｓ９、ｃｊＣａｓ９、ＡｓＣｐｆ１、ＦｎＣｐｆ１のＰＡＭ配列は、それぞれ５’－ＮＮＮＧＭＴＴ－３’、５’－ＮＮＧＲＲＴ－３’、５’－ＮＮＮＶＲＹＡＣ－３’、５’－ＴＴＴＮ－３’、５’－ＫＹＴＶ－３’と認知される。このように、他種のＣａｓ９オーソログは、ＰＡＭ配列を保有しており、ＰＡＭ配列を満足しなければならないが、正常に作動することができる。Ｃａｓ９のオーソログをマルチプレクシングとして使用する場合、ＰＡＭ配列の制約から始まった標的可能遺伝子の多様性の限界を乗り越えることができる。当該図式に示されたように、多様なＣａｓ９オーソログを使用して遺伝子診断を試みれば、ｓｐＣｓａ９で標的可能な遺伝子の限界を外れて多種の癌突然変異を検出することができる。
【0081】
以上、本発明の内容の特定の部分を詳しく記述したところ、当業者において、このような具体的記述は、単に望ましい実施態様であり、これにより、本発明の範囲が制限されるものではないという点は明白である。したがって、本発明の実質的な範囲は、下記の特許請求の範囲とそれらの等価物とによって定義される。 また、本発明は以下の態様を含む。
＜１＞５’末端が保護されたプライマーを含む野生型細胞遊離遺伝子及び突然変異細胞遊離遺伝子増幅用組成物と、
前記野生型細胞遊離遺伝子特異的ガイドＲＮＡと、
前記野生型細胞遊離遺伝子を切断するためのＣａｓタンパク質と、
前記野生型細胞遊離遺伝子を除去するためのエキソヌクレアーゼと、
を含む、突然変異細胞遊離遺伝子分離用キット。
＜２＞前記突然変異細胞遊離遺伝子は、癌特異的な突然変異を含むＤＮＡであり、
前記キットは、癌の疑い個体から分離された血液、血しょうまたは尿試料に含まれた野生型細胞遊離遺伝子及び突然変異細胞遊離遺伝子から突然変異細胞遊離遺伝子を分離する、前記＜１＞に記載の突然変異細胞遊離遺伝子分離用キット。
＜３＞前記Ｃａｓタンパク質は、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｙｏｇｅｎｅｓ Ｃａｓ９（ＳｐＣａｓ９）、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ Ｃａｓ９（ＳｔＣａｓ９）、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐａｓｔｅｕｒｉａｎｕｓ（ＳｐａＣａｓ９）、Ｃａｍｐｙｌｏｂａｃｔｅｒ ｊｅｊｕｎｉ Ｃａｓ９（ＣｊＣａｓ９）、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ（ＳａＣａｓ９）、Ｆｒａｎｃｉｓｅｌｌａ ｎｏｖｉｃｉｄａ Ｃａｓ９（ＦｎＣａｓ９）、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｃｉｎｅｒｅａ Ｃａｓ９（ＮｃＣａｓ９）、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｓ Ｃａｓ９（ＮｍＣａｓ９）Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ とＦｒａｎｃｉｓｅｌｌａ １（Ｃｐｆ１）である、前記＜１＞に記載の突然変異細胞遊離遺伝子分離用キット。
＜４＞前記ガイドＲＮＡは、ｃｒＲＮＡ及びｔｒａｃｒＲＮＡを含む二重ＲＮＡまたはｓｇＲＮＡである、前記＜１＞に記載の突然変異細胞遊離遺伝子分離用キット。
＜５＞前記ガイドＲＮＡは、複数個の野生型細胞遊離遺伝子特異的な２種類以上のガイドＲＮＡを含む、前記＜１＞に記載の突然変異細胞遊離遺伝子分離用キット。
＜６＞前記５’末端が保護されたプライマーは、前記プライマーの５’末端がホスホロチオエート結合で保護されたものであり、前記遺伝子増幅用組成物は、ＰＣＲ組成物である、前記＜１＞に記載の突然変異細胞遊離遺伝子分離用キット。
＜７＞ｉ）少なくとも１つの野生型細胞遊離遺伝子及び少なくとも１つの突然変異細胞遊離遺伝子が含まれた分離された試料内の前記野生型細胞遊離遺伝子と突然変異細胞遊離遺伝子とを５’末端が保護されたプライマーを用いて増幅する段階と、
ｉｉ）前記野生型細胞遊離遺伝子に特異的に結合するガイドＲＮＡ及びＣａｓタンパク質を処理して、前記増幅された野生型細胞遊離遺伝子のみを切断する段階と、
ｉｉｉ）前記突然変異細胞遊離遺伝子と、前記切断された細胞遊離遺伝子と、が存在する試料にエキソヌクレアーゼを処理して、前記切断された野生型細胞遊離遺伝子のみを除去する段階と、
ｉｖ）前記試料内に残っている突然変異細胞遊離遺伝子を増幅する段階と、
ｖ）前記増幅された突然変異細胞遊離遺伝子を分析する段階と、
を含む、突然変異遺伝子型分析方法。
＜８＞前記ｉ）少なくとも１つの野生型細胞遊離遺伝子及び少なくとも１つの突然変異細胞遊離遺伝子が含まれた分離された試料は、癌の疑い個体から分離された血液、血しょうまたは尿試料である、前記＜７＞に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
＜９＞前記突然変異細胞遊離遺伝子は、癌特異的な突然変異を含むＤＮＡであり、
前記突然変異細胞遊離遺伝子分析は、癌の診断のための情報を提供する、前記＜７＞に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
＜１０＞前記５’末端が保護されたプライマーは、前記プライマーの５’末端がホスホロチオエート結合で保護された、前記＜７＞に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
＜１１＞前記Ｃａｓタンパク質は、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｙｏｇｅｎｅｓ Ｃａｓ９（ＳｐＣａｓ９）、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ Ｃａｓ９（ＳｔＣａｓ９）、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐａｓｔｅｕｒｉａｎｕｓ（ＳｐａＣａｓ９）、Ｃａｍｐｙｌｏｂａｃｔｅｒ ｊｅｊｕｎｉ Ｃａｓ９（ＣｊＣａｓ９）、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ（ＳａＣａｓ９）、Ｆｒａｎｃｉｓｅｌｌａ ｎｏｖｉｃｉｄａ Ｃａｓ９（ＦｎＣａｓ９）、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｃｉｎｅｒｅａ Ｃａｓ９（ＮｃＣａｓ９）、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｓ Ｃａｓ９（ＮｍＣａｓ９）Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ とＦｒａｎｃｉｓｅｌｌａ １（Ｃｐｆ１）である、前記＜７＞に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
＜１２＞前記ガイドＲＮＡは、ｃｒＲＮＡ及びｔｒａｃｒＲＮＡを含む二重ＲＮＡまたはｓｇＲＮＡである、前記＜７＞に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
＜１３＞前記増幅は、ＰＣＲで行われる、前記＜７＞に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
＜１＞５’末端が保護されたプライマーを含む野生型細胞遊離遺伝子及び突然変異細胞遊離遺伝子増幅用組成物と、
前記野生型細胞遊離遺伝子特異的ガイドＲＮＡと、
前記野生型細胞遊離遺伝子を切断するためのＣａｓタンパク質と、
前記野生型細胞遊離遺伝子を除去するためのエキソヌクレアーゼと、
を含む、突然変異細胞遊離遺伝子分離用キット。
＜２＞前記突然変異細胞遊離遺伝子は、癌特異的な突然変異を含むＤＮＡであり、
前記キットは、癌の疑い個体から分離された血液、血しょうまたは尿試料に含まれた野生型細胞遊離遺伝子及び突然変異細胞遊離遺伝子から突然変異細胞遊離遺伝子を分離する、前記＜１＞に記載の突然変異細胞遊離遺伝子分離用キット。
＜３＞前記Ｃａｓタンパク質は、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｙｏｇｅｎｅｓ Ｃａｓ９（ＳｐＣａｓ９）、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ Ｃａｓ９（ＳｔＣａｓ９）、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐａｓｔｅｕｒｉａｎｕｓ（ＳｐａＣａｓ９）、Ｃａｍｐｙｌｏｂａｃｔｅｒ ｊｅｊｕｎｉ Ｃａｓ９（ＣｊＣａｓ９）、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ（ＳａＣａｓ９）、Ｆｒａｎｃｉｓｅｌｌａ ｎｏｖｉｃｉｄａ Ｃａｓ９（ＦｎＣａｓ９）、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｃｉｎｅｒｅａ Ｃａｓ９（ＮｃＣａｓ９）、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｓ Ｃａｓ９（ＮｍＣａｓ９）Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ とＦｒａｎｃｉｓｅｌｌａ １（Ｃｐｆ１）である、前記＜１＞に記載の突然変異細胞遊離遺伝子分離用キット。
＜４＞前記ガイドＲＮＡは、ｃｒＲＮＡ及びｔｒａｃｒＲＮＡを含む二重ＲＮＡまたはｓｇＲＮＡである、前記＜１＞に記載の突然変異細胞遊離遺伝子分離用キット。
＜５＞前記ガイドＲＮＡは、複数個の野生型細胞遊離遺伝子特異的な２種類以上のガイドＲＮＡを含む、前記＜１＞に記載の突然変異細胞遊離遺伝子分離用キット。
＜６＞前記５’末端が保護されたプライマーは、前記プライマーの５’末端がホスホロチオエート結合で保護されたものであり、前記遺伝子増幅用組成物は、ＰＣＲ組成物である、前記＜１＞に記載の突然変異細胞遊離遺伝子分離用キット。
＜７＞ｉ）少なくとも１つの野生型細胞遊離遺伝子及び少なくとも１つの突然変異細胞遊離遺伝子が含まれた分離された試料内の前記野生型細胞遊離遺伝子と突然変異細胞遊離遺伝子とを５’末端が保護されたプライマーを用いて増幅する段階と、
ｉｉ）前記野生型細胞遊離遺伝子に特異的に結合するガイドＲＮＡ及びＣａｓタンパク質を処理して、前記増幅された野生型細胞遊離遺伝子のみを切断する段階と、
ｉｉｉ）前記突然変異細胞遊離遺伝子と、前記切断された細胞遊離遺伝子と、が存在する試料にエキソヌクレアーゼを処理して、前記切断された野生型細胞遊離遺伝子のみを除去する段階と、
ｉｖ）前記試料内に残っている突然変異細胞遊離遺伝子を増幅する段階と、
ｖ）前記増幅された突然変異細胞遊離遺伝子を分析する段階と、
を含む、突然変異遺伝子型分析方法。
＜８＞前記ｉ）少なくとも１つの野生型細胞遊離遺伝子及び少なくとも１つの突然変異細胞遊離遺伝子が含まれた分離された試料は、癌の疑い個体から分離された血液、血しょうまたは尿試料である、前記＜７＞に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
＜９＞前記突然変異細胞遊離遺伝子は、癌特異的な突然変異を含むＤＮＡであり、
前記突然変異細胞遊離遺伝子分析は、癌の診断のための情報を提供する、前記＜７＞に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
＜１０＞前記５’末端が保護されたプライマーは、前記プライマーの５’末端がホスホロチオエート結合で保護された、前記＜７＞に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
＜１１＞前記Ｃａｓタンパク質は、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｙｏｇｅｎｅｓ Ｃａｓ９（ＳｐＣａｓ９）、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ Ｃａｓ９（ＳｔＣａｓ９）、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐａｓｔｅｕｒｉａｎｕｓ（ＳｐａＣａｓ９）、Ｃａｍｐｙｌｏｂａｃｔｅｒ ｊｅｊｕｎｉ Ｃａｓ９（ＣｊＣａｓ９）、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ（ＳａＣａｓ９）、Ｆｒａｎｃｉｓｅｌｌａ ｎｏｖｉｃｉｄａ Ｃａｓ９（ＦｎＣａｓ９）、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｃｉｎｅｒｅａ Ｃａｓ９（ＮｃＣａｓ９）、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｓ Ｃａｓ９（ＮｍＣａｓ９）Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ とＦｒａｎｃｉｓｅｌｌａ １（Ｃｐｆ１）である、前記＜７＞に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
＜１２＞前記ガイドＲＮＡは、ｃｒＲＮＡ及びｔｒａｃｒＲＮＡを含む二重ＲＮＡまたはｓｇＲＮＡである、前記＜７＞に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
＜１３＞前記増幅は、ＰＣＲで行われる、前記＜７＞に記載の突然変異遺伝子型分析方法。
【図1】
【図2A】
【図2B】
【図3A】
【図3B】
【図4】
【図5】
【図6】
【図7A】
【図7B】
【図8】
【図9】
【配列表】