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(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B2)
(11)【特許番号】
(24)【登録日】2022-08-19
(45)【発行日】2022-08-29
(54)【発明の名称】核酸検出方法、核酸検出用プライマー及び核酸検出用キット
(51)【国際特許分類】
C12Q 1/68 20180101AFI20220822BHJP
C12Q 1/6876 20180101ALI20220822BHJP
C12Q 1/686 20180101ALI20220822BHJP
C12N 15/09 20060101ALI20220822BHJP
C12Q 1/6844 20180101ALI20220822BHJP
C12N 15/11 20060101ALI20220822BHJP
C12N 9/16 20060101ALI20220822BHJP
C12N 9/12 20060101ALI20220822BHJP
【ＦＩ】
C12Q1/68 ZNA
C12Q1/6876 Z
C12Q1/686 Z
C12N15/09 Z
C12Q1/6844 Z
C12N15/11 Z
C12N9/16 Z
C12N9/12
【請求項の数】
19
(21)【出願番号】P 2019525677
(86)(22)【出願日】2018-06-20
(86)【国際出願番号】 JP2018023537
(87)【国際公開番号】W WO2018235886
(87)【国際公開日】2018-12-27
【審査請求日】2021-03-29
(31)【優先権主張番号】P 2017123247
(32)【優先日】2017-06-23
(33)【優先権主張国・地域又は機関】JP
(73)【特許権者】
【識別番号】000120456
【氏名又は名称】栄研化学株式会社
(74)【代理人】
【識別番号】100123858
【弁理士】
【氏名又は名称】磯田 志郎
(74)【代理人】
【識別番号】230115864
【弁護士】
【氏名又は名称】永島 孝明
(72)【発明者】
【氏名】道行 悟
【審査官】市島 洋介
(56)【参考文献】
【文献】特開２００８－３０７０２９（ＪＰ，Ａ）
【文献】米国特許第０５８３０６６４（ＵＳ，Ａ）
【文献】“LAMP法とは”, [online], 2017.5.30, 栄研化学株式会社, [2018.9.7 検索], インターネット<URL: https://web.archive.org/web/20170530003750 /http://www.loopamp.eiken.co.jp:80/lamp/index.html>
【文献】Mol. Cell，2015年，Vol.60，pp.242-255
(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)
Ｃ１２Ｑ １／００－３／００
ＣＡｐｌｕｓ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＥＭＢＡＳＥ／ＢＩＯＳＩＳ（ＳＴＮ）
ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩＩ）
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
検出対象核酸を検出する核酸検出方法において、Ａ）増幅されて検出の指標となる鋳型核酸と、
Ｂ）前記検出対象核酸の少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する第１のポリヌクレオチド部分と、前記鋳型核酸の一部に相補的な塩基配列を有する第２のポリヌクレオチド部分と、前記鋳型核酸において前記第２のポリヌクレオチド部分と相補的な領域よりも５´側の領域の塩基配列の一部と同一の塩基配列を含む第３のポリヌクレオチド部分とを含む核酸検出用プライマーであって、
前記検出対象核酸がRNAである場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がDNAであり、前記検出対象核酸がDNAである場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がRNAであり、
前記第１のポリヌクレオチド部分の５´側に前記第２のポリヌクレオチド部分が連結し、前記第２のポリヌクレオチド部分の５´側に前記第３のポリヌクレオチド部分が連結している、
核酸検出用プライマーと、
Ｃ）DNA/RNA複合体を分解するヌクレアーゼと、
Ｄ）ポリメラーゼと
を少なくとも使用し、
ｉ）前記検出対象核酸を含む被検試料と、前記核酸検出用プライマーとを接触させることにより、前記検出対象核酸と前記核酸検出用プライマーとをハイブリダイズさせて、DNA/RNA複合体を形成し、
ii）前記DNA/RNA複合体の少なくとも一部を前記ヌクレアーゼで分解することにより、前記核酸検出用プライマーから前記第１のポリヌクレオチド部分を除去し、
iii）前記核酸検出用プライマーを前記鋳型核酸にハイブリダイズさせて、前記ポリメラーゼにより前記鋳型核酸を増幅する反応を行う
ことを含む核酸検出方法。
【請求項2】
前記検出対象核酸が、１０～１００塩基の短鎖核酸である、請求項１に記載の核酸検出方法。
【請求項3】
前記検出対象核酸がRNAであり、前記ヌクレアーゼがDNA/RNA複合体中のDNAを分解するヌクレアーゼである、請求項１又は２に記載の核酸検出方法。
【請求項4】
前記核酸検出用プライマーの３´末端に、増幅反応を停止する修飾を有する、請求項１～３のいずれか１項に記載の核酸検出方法。
【請求項5】
前記核酸検出用プライマーが、前記第１のポリヌクレオチド部分の３´側にさらに非自然人工塩基配列を有しかつ前記鋳型核酸ともハイブリダイズしない第４のポリヌクレオチド部分を有している、請求項１～４のいずれか１項に記載の核酸検出方法。
【請求項6】
前記iii）において、LAMP法による核酸増幅又はPCR法による核酸増幅を行う、請求項１～５のいずれか１項に記載の核酸検出方法。
【請求項7】
前記鋳型核酸が、非自然人工塩基配列を有する鋳型核酸である、請求項１～６のいずれか１項に記載の核酸検出方法。
【請求項8】
前記鋳型核酸が、前記検出対象核酸の一部と同一である共通塩基配列を有しており、前記第２のポリヌクレオチド部分における３´側の部分が、前記共通塩基配列と相補的である、請求項１～７のいずれか１項に記載の核酸検出方法。
【請求項9】
検出対象核酸を検出するために用いる核酸検出用プライマーにおいて、前記検出対象核酸の少なくとも一部に相補的な塩基配列を有する第１のポリヌクレオチド部分と、
増幅されて検出の指標となる鋳型核酸の一部に相補的な塩基配列を有する第２のポリヌクレオチド部分と、
前記鋳型核酸において前記第２のポリヌクレオチド部分と相補的な領域よりも５´側の領域の塩基配列の一部と同一の塩基配列を含む第３のポリヌクレオチド部分と
を含み、
前記検出対象核酸がRNAである場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がDNAであり、前記検出対象核酸がDNAの場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がRNAであり、
前記第１のポリヌクレオチド部分の５´側に第２のポリヌクレオチド部分が連結し、前記第２のポリヌクレオチド部分の５´側に前記第３のポリヌクレオチド部分が連結している
ことを特徴とする核酸検出用プライマー。
【請求項10】
前記第１のポリヌクレオチド部分が１０～１００塩基である、請求項９に記載の核酸検出用プライマー。
【請求項11】
前記核酸検出用プライマーの３´末端に、増幅反応を停止する修飾を有する、請求項９又は１０に記載の核酸検出用プライマー。
【請求項12】
前記第１のポリヌクレオチド部分の３´側に、さらに非自然人工塩基配列を有しかつ前記鋳型核酸ともハイブリダイズしない第４のポリヌクレオチド部分を有している、請求項９～１１のいずれか１項に記載の核酸検出用プライマー。
【請求項13】
前記第２のポリヌクレオチド部分における３´側の部分が、前記鋳型核酸の一部に相補的であるだけでなく、前記検出対象核酸の一部とも相補的である、請求項９～１２のいずれか１項に記載の核酸検出用プライマー。
【請求項14】
検出対象核酸を検出するために用いる核酸検出用キットにおいて、Ａ）増幅されて検出の指標となる鋳型核酸と、
Ｂ）前記検出対象核酸の少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する第１のポリヌクレオチド部分と、前記鋳型核酸の一部に相補的な塩基配列を有する第２のポリヌクレオチド部分と、前記鋳型核酸において前記第２のポリヌクレオチド部分と相補的な領域よりも５´側の領域の塩基配列の一部と同一の塩基配列を含む第３のポリヌクレオチド部分とを含む核酸検出用プライマーであって、
前記検出対象核酸がRNAである場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がDNAであり、前記検出対象核酸がDNAである場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がRNAであり、
前記第１のポリヌクレオチド部分の５´側に前記第２のポリヌクレオチド部分が連結し、前記第２のポリヌクレオチド部分の５´側に前記第３のポリヌクレオチド部分が連結している、
核酸検出用プライマーと、
Ｃ）DNA/RNA複合体を分解するヌクレアーゼと
を含むことを特徴とする核酸検出用キット。
【請求項15】
前記第１のポリヌクレオチド部分が１０～１００塩基である、請求項１４に記載の核酸検出用キット。
【請求項16】
前記検出対象核酸がRNAであり、前記ヌクレアーゼがDNA/RNA複合体中のDNAを分解するヌクレアーゼである、請求項１４又は１５に記載の核酸検出用キット。
【請求項17】
さらに、Ｄ）ポリメラーゼを含むことを特徴とする、請求項１４～１６のいずれか１項に記載の核酸検出用キット。
【請求項18】
前記核酸検出用プライマーが、前記第１のポリヌクレオチド部分の３´側にさらに非自然人工塩基配列を有しかつ前記鋳型核酸ともハイブリダイズしない第４のポリヌクレオチド部分を有している、請求項１４～１７のいずれか１項に記載の核酸検出用キット。
【請求項19】
前記鋳型核酸が、前記検出対象核酸の一部と同一である共通塩基配列を有しており、前記第２のポリヌクレオチド部分における３´側の部分が、前記共通塩基配列と相補的である、請求項１４～１８のいずれか１項に記載の核酸検出用キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、LAMP法又はPCR法等の核酸増幅の原理を利用して、検出対象となる核酸を検出する核酸検出方法に関する。本発明は、特に、１０～１００塩基の短鎖核酸の検出に適し、miRNA等の検出に用いることができる核酸検出方法に関する。
また、本発明は、核酸検出用プライマー及び核酸検出用キットに関する。
また、本発明は、核酸検出用プライマー及び核酸検出用キットに関する。
【背景技術】
【0002】
細胞内には、タンパク質へと翻訳されない短鎖核酸が多量に存在している。これらの短鎖核酸は、機能がないと考えられていた時期もあったが、１９９０年代以降の研究により、生体における重要な役割があることが明らかとなってきている。
これらの短鎖核酸のうち、miRNA（microRNA）と呼ばれる短鎖核酸は、遺伝子発現の調節に重要な役割を果たすことが明らかになっている。miRNAは、２０～２５塩基の一本鎖RNAであり、その前駆体として、染色体上のmiRNA遺伝子がRNAポリメラーゼで転写されることによって、ヘアピン構造を含むpri-miRNA（primary miRNA）が産生され、次に、核内RNaseであるDroshaによりpri-miRNAが切断されて、ヘアピン構造をした６０～７０塩基のpre-miRNA（precursor miRNA）が産生される。pre-miRNAは、核内から細胞質に輸送され、細胞質内のRNaseであるDicerによって切断され、２１～２４塩基の二本鎖RNA（miRNA duplex）となる。二本鎖RNAは、Agoタンパク質に取り込まれ、片側のRNA鎖（成熟型miRNA）だけが最終的にAgoタンパク質と安定な複合体を形成し、RNA誘導型サイレンシング複合体（RNA-induced silencing complex：RISC）を形成する。RISCは、RISCに取り込まれた成熟型miRNAと部分的に相補的な配列を有する標的mRNAに結合し、標的mRNAの翻訳を抑制することで、遺伝子発現を調節している。
これらの短鎖核酸のうち、miRNA（microRNA）と呼ばれる短鎖核酸は、遺伝子発現の調節に重要な役割を果たすことが明らかになっている。miRNAは、２０～２５塩基の一本鎖RNAであり、その前駆体として、染色体上のmiRNA遺伝子がRNAポリメラーゼで転写されることによって、ヘアピン構造を含むpri-miRNA（primary miRNA）が産生され、次に、核内RNaseであるDroshaによりpri-miRNAが切断されて、ヘアピン構造をした６０～７０塩基のpre-miRNA（precursor miRNA）が産生される。pre-miRNAは、核内から細胞質に輸送され、細胞質内のRNaseであるDicerによって切断され、２１～２４塩基の二本鎖RNA（miRNA duplex）となる。二本鎖RNAは、Agoタンパク質に取り込まれ、片側のRNA鎖（成熟型miRNA）だけが最終的にAgoタンパク質と安定な複合体を形成し、RNA誘導型サイレンシング複合体（RNA-induced silencing complex：RISC）を形成する。RISCは、RISCに取り込まれた成熟型miRNAと部分的に相補的な配列を有する標的mRNAに結合し、標的mRNAの翻訳を抑制することで、遺伝子発現を調節している。
【0003】
miRNAは、多数の標的遺伝子の発現を調節することにより細胞機能において重要な役割を果たすが、癌等の疾患と関連性が深いことも明らかになってきている。これまでの研究により、癌等の様々な疾患において、発現異常を示すmiRNAが報告されており、miRNAは、様々な疾患の診断ツールとしての開発が期待されている。
【0004】
しかしながら、miRNAを検出する方法としては、マイクロアレイ法が多く用いられているものの、操作が複雑であることや高価であること等が課題である。
核酸増幅法を用いたmiRNAの検出方法としては、miRNAをポリアデニル化してポリA配列を付加した上で、ポリT配列とmiRNAに相補的な塩基を含むプライマーを用いた逆転写反応によりcDNAの合成を行い、このcDNAに相補的なプライマーを用いてcDNAの核酸増幅を行うことにより、miRNAを検出する方法が開発されている（特許文献１）。
また、miRNAに特異的な3´領域とステムループとを有するプライマーに、miRNAをハイブリダイズさせて、プライマーの伸長反応を行い、伸長反応させたプライマーを鋳型に増幅反応を行うことで、miRNAを検出する方法も開発されている（特許文献２）。
核酸増幅法を用いたmiRNAの検出方法としては、miRNAをポリアデニル化してポリA配列を付加した上で、ポリT配列とmiRNAに相補的な塩基を含むプライマーを用いた逆転写反応によりcDNAの合成を行い、このcDNAに相補的なプライマーを用いてcDNAの核酸増幅を行うことにより、miRNAを検出する方法が開発されている（特許文献１）。
また、miRNAに特異的な3´領域とステムループとを有するプライマーに、miRNAをハイブリダイズさせて、プライマーの伸長反応を行い、伸長反応させたプライマーを鋳型に増幅反応を行うことで、miRNAを検出する方法も開発されている（特許文献２）。
【0005】
ところで、RNAを分解する酵素としてリボヌクレアーゼ（RNase）がある。高い温度で活性を有するRNaseを利用して、プライマーの伸長を妨げるブロッキング基が結合したプライマーが、鋳型核酸と二重鎖を形成したときに、ブロッキング基を除去して、PCR反応をホットスタートする方法が開発されている（特許文献３）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0006】
【文献】米国特許出願公開第２００９／０２２０９６９号明細書
【文献】米国特許第７５７５８６３号明細書
【文献】特許第５５３９３２５号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【0007】
従来のmiRNAを検出する方法としては、マイクロアレイ法が多く用いられているものの、操作が複雑であることや高価であること等が課題であった。また、核酸増幅を用いたmiRNAの検出方法も開発されているが、特異度や簡便さの面で実用性に課題があるものであった。
そこで、本発明は、上記従来の状況に鑑み、短鎖核酸の検出にも好適に用いることができる、新しい方式の核酸検出法を開発することを目的とする。
そこで、本発明は、上記従来の状況に鑑み、短鎖核酸の検出にも好適に用いることができる、新しい方式の核酸検出法を開発することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【0008】
上記課題を解決するために、本発明者らは鋭意研究した結果、プライマーの一部が検出対象核酸とのハイブリダイズによりDNA/RNA複合体を形成してヌクレアーゼによって分解される特殊な核酸検出用プライマーを用いることにより、検出対象核酸が存在する場合のみ核酸検出用プライマーが活性化されて核酸増幅反応が生じることを見出し、本発明を完成するに至った。
【0009】
すなわち、本発明は、核酸検出法に関する下記の第１の発明と、核酸検出用プライマーに関する下記の第２の発明と、核酸検出用キットに関する下記の第３の発明を提供する。
（１） 第１の発明は、検出対象核酸を検出する核酸検出方法に関するものであり、かかる核酸検出方法は、
Ａ）増幅されて検出の指標となる鋳型核酸と、
Ｂ）前記検出対象核酸の少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する第１のポリヌクレオチド部分と、前記鋳型核酸の一部に相補的な塩基配列を有する第２のポリヌクレオチド部分とを含む核酸検出用プライマーであって、
前記検出対象核酸がRNAである場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がDNAであり、前記検出対象核酸がDNAである場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がRNAであり、
前記第１のポリヌクレオチド部分の５´側に前記第２のポリヌクレオチド部分が連結している、
核酸検出用プライマーと、
Ｃ）DNA/RNA複合体を分解するヌクレアーゼと、
Ｄ）ポリメラーゼと
を少なくとも使用し、
ｉ）前記検出対象核酸を含む被検試料と、前記核酸検出用プライマーとを接触させることにより、前記検出対象核酸と前記核酸検出用プライマーとをハイブリダイズさせて、DNA/RNA複合体を形成し、
ii）前記DNA/RNA複合体の少なくとも一部を前記ヌクレアーゼで分解することにより、前記核酸検出用プライマーから前記第１のポリヌクレオチド部分を除去し、
iii）前記核酸検出用プライマーを前記鋳型核酸にハイブリダイズさせて、前記ポリメラーゼにより前記鋳型核酸を増幅する反応を行う
ことを含むことを特徴とする。
（２） 第１の発明の核酸検出方法においては、前記検出対象核酸が、１０～１００塩基の短鎖核酸であることが好ましい。
（３） 前記いずれかの核酸検出方法においては、前記核酸検出用プライマーが、前記第２のポリヌクレオチド部分の５´側にさらに、前記鋳型核酸において前記第２のポリヌクレオチド部分と相補的な領域よりも５´側の領域の塩基配列の一部と同一の塩基配列を含む第３のポリヌクレオチド部分を有することができる。
（４） 前記いずれかの核酸検出方法においては、
前記検出対象核酸がRNAであり、前記ヌクレアーゼがDNA/RNA複合体中のDNAを分解するヌクレアーゼであることが好ましい。
（５） 前記いずれかの核酸検出方法においては、
前記核酸検出用プライマーの３´末端に、増幅反応を停止する修飾を有することが好ましい。
（６） 前記いずれかの核酸検出方法においては、前記核酸検出用プライマーが、前記第１のポリヌクレオチド部分の３´側にさらに非自然人工塩基配列を有しかつ前記鋳型核酸ともハイブリダイズしない第４のポリヌクレオチド部分を有することができる。
（７） 前記いずれかの核酸検出方法においては、前記iii）において、LAMP法による核酸増幅又はPCR法による核酸増幅を行うことが好ましい。
（８） 前記いずれかの核酸検出方法においては、前記鋳型核酸が、非自然人工塩基配列を有する鋳型核酸であることが好ましい。
（９） 前記いずれかの核酸検出方法においては、前記鋳型核酸が、前記検出対象核酸の一部と同一である共通塩基配列を有しており、
前記第２のポリヌクレオチド部分における３´側の部分が、前記共通塩基配列と相補的なものとすることができる。
（１０） 第２の発明は、検出対象核酸を検出するために用いる核酸検出用プライマーに関し、かかる核酸検出用プライマーは、
前記検出対象核酸の少なくとも一部に相補的な塩基配列を有する第１のポリヌクレオチド部分と、
増幅されて検出の指標となる鋳型核酸の一部に相補的な塩基配列を有する第２のポリヌクレオチド部分と
を含み、
前記検出対象核酸がRNAである場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がDNAであり、前記検出対象核酸がDNAの場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がRNAであり、
前記第１のポリヌクレオチド部分の５´側に第２のポリヌクレオチド部分が連結していることを特徴とする。
（１１） 第２の発明の核酸検出用プライマーにおいては、前記第１のポリヌクレオチド部分が１０～１００塩基であることが好ましい。
（１２） 前記いずれかの核酸検出用プライマーにおいては、第２のポリヌクレオチド部分の５´側に、さらに、前記鋳型核酸において前記第２のポリヌクレオチド部分と相補的な領域よりも５´側の領域の塩基配列の一部と同一の塩基配列を含む第３のポリヌクレオチド部分を有することができる。
（１３） 前記いずれかの核酸検出用プライマーにおいては、前記核酸検出用プライマーの３´末端に、増幅反応を停止する修飾を有することが好ましい。
（１４） 前記いずれかの核酸検出用プライマーにおいては、前記第１のポリヌクレオチド部分の３´側に、さらに非自然人工塩基配列を有しかつ前記鋳型核酸ともハイブリダイズしない第４のポリヌクレオチド部分を有することができる。
（１５） 前記いずれかの核酸検出用プライマーにおいては、前記第２のポリヌクレオチド部分における３´側の部分を、前記鋳型核酸の一部に相補的であるだけでなく、前記検出対象核酸の一部とも相補的にすることができる。
（１６） 第３の発明は、検出対象核酸を検出するために用いる核酸検出用キットに関し、かかる核酸検出用キットは、
Ａ）増幅されて検出の指標となる鋳型核酸と、
Ｂ）前記検出対象核酸の少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する第１のポリヌクレオチド部分と、前記鋳型核酸の一部に相補的な塩基配列を有する第２のポリヌクレオチド部分とを含む核酸検出用プライマーであって、
前記検出対象核酸がRNAである場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がDNAであり、前記検出対象核酸がDNAである場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がRNAであり、
前記第１のポリヌクレオチド部分の５´側に前記第２のポリヌクレオチド部分が連結している、
核酸検出用プライマーと、
Ｃ）DNA/RNA複合体を分解するヌクレアーゼと
を含むことを特徴とする。
（１７） 第３の発明の核酸検出用キットにおいては、前記第１のポリヌクレオチド部分が１０～１００塩基であることが好ましい。
（１８） 前記いずれかの核酸検出用キットにおいては、前記核酸検出用プライマーが、前記第２のポリヌクレオチド部分の５´側にさらに、前記鋳型核酸において前記第２のポリヌクレオチド部分と相補的な領域よりも５´側の領域の塩基配列の一部と同一の塩基配列を含む第３のポリヌクレオチド部分を有することができる。
（１９） 前記いずれかの核酸検出用キットにおいては、前記検出対象核酸がRNAであり、前記ヌクレアーゼがDNA/RNA複合体中のDNAを分解するヌクレアーゼであることが好ましい。
（２０） 前記いずれかの核酸検出用キットにおいては、さらに、Ｄ）ポリメラーゼを含むことが好ましい。
（２１） 前記いずれかの核酸検出用キットにおいては、前記核酸検出用プライマーが、前記第１のポリヌクレオチド部分の３´側にさらに非自然人工塩基配列を有しかつ前記鋳型核酸ともハイブリダイズしない第４のポリヌクレオチド部分を有することができる。
（２２） 前記いずれかの核酸検出用キットにおいては、前記鋳型核酸が、前記検出対象核酸の一部と同一である共通塩基配列を有しており、
前記第２のポリヌクレオチド部分における３´側の部分が、前記共通塩基配列と相補的なものとすることができる。
（１） 第１の発明は、検出対象核酸を検出する核酸検出方法に関するものであり、かかる核酸検出方法は、
Ａ）増幅されて検出の指標となる鋳型核酸と、
Ｂ）前記検出対象核酸の少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する第１のポリヌクレオチド部分と、前記鋳型核酸の一部に相補的な塩基配列を有する第２のポリヌクレオチド部分とを含む核酸検出用プライマーであって、
前記検出対象核酸がRNAである場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がDNAであり、前記検出対象核酸がDNAである場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がRNAであり、
前記第１のポリヌクレオチド部分の５´側に前記第２のポリヌクレオチド部分が連結している、
核酸検出用プライマーと、
Ｃ）DNA/RNA複合体を分解するヌクレアーゼと、
Ｄ）ポリメラーゼと
を少なくとも使用し、
ｉ）前記検出対象核酸を含む被検試料と、前記核酸検出用プライマーとを接触させることにより、前記検出対象核酸と前記核酸検出用プライマーとをハイブリダイズさせて、DNA/RNA複合体を形成し、
ii）前記DNA/RNA複合体の少なくとも一部を前記ヌクレアーゼで分解することにより、前記核酸検出用プライマーから前記第１のポリヌクレオチド部分を除去し、
iii）前記核酸検出用プライマーを前記鋳型核酸にハイブリダイズさせて、前記ポリメラーゼにより前記鋳型核酸を増幅する反応を行う
ことを含むことを特徴とする。
（２） 第１の発明の核酸検出方法においては、前記検出対象核酸が、１０～１００塩基の短鎖核酸であることが好ましい。
（３） 前記いずれかの核酸検出方法においては、前記核酸検出用プライマーが、前記第２のポリヌクレオチド部分の５´側にさらに、前記鋳型核酸において前記第２のポリヌクレオチド部分と相補的な領域よりも５´側の領域の塩基配列の一部と同一の塩基配列を含む第３のポリヌクレオチド部分を有することができる。
（４） 前記いずれかの核酸検出方法においては、
前記検出対象核酸がRNAであり、前記ヌクレアーゼがDNA/RNA複合体中のDNAを分解するヌクレアーゼであることが好ましい。
（５） 前記いずれかの核酸検出方法においては、
前記核酸検出用プライマーの３´末端に、増幅反応を停止する修飾を有することが好ましい。
（６） 前記いずれかの核酸検出方法においては、前記核酸検出用プライマーが、前記第１のポリヌクレオチド部分の３´側にさらに非自然人工塩基配列を有しかつ前記鋳型核酸ともハイブリダイズしない第４のポリヌクレオチド部分を有することができる。
（７） 前記いずれかの核酸検出方法においては、前記iii）において、LAMP法による核酸増幅又はPCR法による核酸増幅を行うことが好ましい。
（８） 前記いずれかの核酸検出方法においては、前記鋳型核酸が、非自然人工塩基配列を有する鋳型核酸であることが好ましい。
（９） 前記いずれかの核酸検出方法においては、前記鋳型核酸が、前記検出対象核酸の一部と同一である共通塩基配列を有しており、
前記第２のポリヌクレオチド部分における３´側の部分が、前記共通塩基配列と相補的なものとすることができる。
（１０） 第２の発明は、検出対象核酸を検出するために用いる核酸検出用プライマーに関し、かかる核酸検出用プライマーは、
前記検出対象核酸の少なくとも一部に相補的な塩基配列を有する第１のポリヌクレオチド部分と、
増幅されて検出の指標となる鋳型核酸の一部に相補的な塩基配列を有する第２のポリヌクレオチド部分と
を含み、
前記検出対象核酸がRNAである場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がDNAであり、前記検出対象核酸がDNAの場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がRNAであり、
前記第１のポリヌクレオチド部分の５´側に第２のポリヌクレオチド部分が連結していることを特徴とする。
（１１） 第２の発明の核酸検出用プライマーにおいては、前記第１のポリヌクレオチド部分が１０～１００塩基であることが好ましい。
（１２） 前記いずれかの核酸検出用プライマーにおいては、第２のポリヌクレオチド部分の５´側に、さらに、前記鋳型核酸において前記第２のポリヌクレオチド部分と相補的な領域よりも５´側の領域の塩基配列の一部と同一の塩基配列を含む第３のポリヌクレオチド部分を有することができる。
（１３） 前記いずれかの核酸検出用プライマーにおいては、前記核酸検出用プライマーの３´末端に、増幅反応を停止する修飾を有することが好ましい。
（１４） 前記いずれかの核酸検出用プライマーにおいては、前記第１のポリヌクレオチド部分の３´側に、さらに非自然人工塩基配列を有しかつ前記鋳型核酸ともハイブリダイズしない第４のポリヌクレオチド部分を有することができる。
（１５） 前記いずれかの核酸検出用プライマーにおいては、前記第２のポリヌクレオチド部分における３´側の部分を、前記鋳型核酸の一部に相補的であるだけでなく、前記検出対象核酸の一部とも相補的にすることができる。
（１６） 第３の発明は、検出対象核酸を検出するために用いる核酸検出用キットに関し、かかる核酸検出用キットは、
Ａ）増幅されて検出の指標となる鋳型核酸と、
Ｂ）前記検出対象核酸の少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する第１のポリヌクレオチド部分と、前記鋳型核酸の一部に相補的な塩基配列を有する第２のポリヌクレオチド部分とを含む核酸検出用プライマーであって、
前記検出対象核酸がRNAである場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がDNAであり、前記検出対象核酸がDNAである場合には、少なくとも前記第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がRNAであり、
前記第１のポリヌクレオチド部分の５´側に前記第２のポリヌクレオチド部分が連結している、
核酸検出用プライマーと、
Ｃ）DNA/RNA複合体を分解するヌクレアーゼと
を含むことを特徴とする。
（１７） 第３の発明の核酸検出用キットにおいては、前記第１のポリヌクレオチド部分が１０～１００塩基であることが好ましい。
（１８） 前記いずれかの核酸検出用キットにおいては、前記核酸検出用プライマーが、前記第２のポリヌクレオチド部分の５´側にさらに、前記鋳型核酸において前記第２のポリヌクレオチド部分と相補的な領域よりも５´側の領域の塩基配列の一部と同一の塩基配列を含む第３のポリヌクレオチド部分を有することができる。
（１９） 前記いずれかの核酸検出用キットにおいては、前記検出対象核酸がRNAであり、前記ヌクレアーゼがDNA/RNA複合体中のDNAを分解するヌクレアーゼであることが好ましい。
（２０） 前記いずれかの核酸検出用キットにおいては、さらに、Ｄ）ポリメラーゼを含むことが好ましい。
（２１） 前記いずれかの核酸検出用キットにおいては、前記核酸検出用プライマーが、前記第１のポリヌクレオチド部分の３´側にさらに非自然人工塩基配列を有しかつ前記鋳型核酸ともハイブリダイズしない第４のポリヌクレオチド部分を有することができる。
（２２） 前記いずれかの核酸検出用キットにおいては、前記鋳型核酸が、前記検出対象核酸の一部と同一である共通塩基配列を有しており、
前記第２のポリヌクレオチド部分における３´側の部分が、前記共通塩基配列と相補的なものとすることができる。
【発明の効果】
【0010】
本発明は、検出対象核酸の少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する第１のポリヌクレオチド部分と、鋳型核酸の一部に相補的な塩基配列を有する第２のポリヌクレオチド部分とを含む核酸検出用プライマーを用いるものであり、検出対象核酸が存在する場合に、検出対象核酸と核酸検出用プライマーとがハイブリダイズして、DNA/RNA複合体を形成し、DNA/RNA複合体の少なくとも一部がヌクレアーゼによって分解されることによって、第１のポリヌクレオチド部分が除去されて、核酸検出用プライマーが活性化される。そして、核酸検出用プライマーの第２のポリヌクレオチド部分が鋳型核酸にハイブリダイズし、ポリメラーゼによって鋳型核酸の増幅反応が開始される。このように、本発明によれば、検出対象核酸が存在する場合にのみ鋳型核酸の正常な増幅反応が生じるため、鋳型核酸の増幅を指標として検出対象核酸を検出することができるという効果を奏する。
【図面の簡単な説明】
【0011】
【図1】本発明の核酸検出方法の第１の実施形態を示す模式図である。図１（Ａ）は、検出対象核酸を含む被検試料と反応溶液とを混合した状態を示す。図１（Ｂ）は、検出対象核酸と第１のポリヌクレオチド部分とがハイブリダイズして、DNA/RNA複合体を形成した状態を示す。図１（Ｃ）は、DNA/RNA複合体の第１のポリヌクレオチド部分がヌクレアーゼによって分解される状態を示す。図１（Ｄ）は、活性化された核酸検出用プライマーが、鋳型核酸にハイブリダイズした状態を示す。図１（Ｅ）は、鋳型核酸がポリメラーゼにより増幅されている状態を示す。
【図2】本発明の核酸検出方法の第２の実施形態を示す模式図である。図２（Ａ）は、検出対象核酸を含む被検試料と反応溶液とを混合した状態を示す。図２（Ｂ）は、検出対象核酸と第１のポリヌクレオチド部分とがハイブリダイズして、DNA/RNA複合体を形成した状態を示す。図２（Ｃ）は、DNA/RNA複合体の第１のポリヌクレオチド部分がヌクレアーゼによって分解される状態を示す。図２（Ｄ）は、活性化された核酸検出用プライマーが、鋳型核酸にハイブリダイズした状態を示す。図２（Ｅ）は、鋳型核酸がポリメラーゼにより増幅されている状態を示す。
【図3】本発明の核酸検出方法の第３の実施形態を示す模式図である。図３（Ａ）は、検出対象核酸を含む被検試料と反応溶液とを混合した状態を示す。図３（Ｂ）は、検出対象核酸と核酸検出用プライマーとがハイブリダイズして、DNA/RNA複合体を形成した状態を示す。図３（Ｃ）は、DNA/RNA複合体の第１のポリヌクレオチド部分がヌクレアーゼによって分解される状態を示す。図３（Ｄ）は、核酸検出用プライマーから第１のポリヌクレオチド部分が除去された状態を示す。図３（Ｅ）は、核酸検出用プライマーが、鋳型核酸にハイブリダイズした状態を示す。図３（Ｆ）は、鋳型核酸がポリメラーゼにより増幅されている状態を示す。
【図4】本発明の核酸検出方法の第４の実施形態を示す模式図である。図４（Ａ）は、検出対象核酸を含む被検試料と反応溶液とを混合した状態を示す。図４（Ｂ）は、検出対象核酸と核酸検出用プライマーがハイブリダイズして、DNA/RNA複合体を形成した状態を示す。図４（Ｃ）は、DNA/RNA複合体の第２のポリヌクレオチド部分がヌクレアーゼによって切断される状態を示す。図４（Ｄ）は、核酸検出用プライマーから第１のポリヌクレオチド部分が除去された状態を示す。図４（Ｅ）は、核酸検出用プライマーが、鋳型核酸にハイブリダイズした状態を示す。図４（Ｆ）は、鋳型核酸がポリメラーゼにより増幅されている状態を示す。
【図5】短鎖DNAの検出の実験に用いた各プライマーの配列等を示す図面である。
【図6】短鎖DNAの検出の実験工程の条件を示す図面である。
【図7】短鎖DNAの検出にあたり、LAMP法による増幅が確認できるまでの時間を計測した結果を示す図面である。
【図8】LAMP法の核酸増幅反応の概要を示す模式図である。
【図9】LAMP法の核酸増幅反応の概要を示す模式図である。
【発明を実施するための形態】
【0012】
１． 核酸検出方法
１－１． 本発明の核酸検出方法の概要
本発明の第１の発明の核酸検出方法は、少なくとも次のＡ）～Ｄ）の試薬を使用することを特徴とする。
Ａ）増幅されて検出の指標となる鋳型核酸
Ｂ）検出対象核酸の少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する第１のポリヌクレオチド部分と、鋳型核酸の一部に相補的な塩基配列を有する第２のポリヌクレオチド部分とを含む核酸検出用プライマーであって、
検出対象核酸がRNAである場合には、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がDNAであり、検出対象核酸がDNAである場合には、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がRNAであり、
第１のポリヌクレオチド部分の５´側に第２のポリヌクレオチド部分が連結している、
核酸検出用プライマー
Ｃ）DNA/RNA複合体を分解するヌクレアーゼ
Ｄ）ポリメラーゼ
１－１． 本発明の核酸検出方法の概要
本発明の第１の発明の核酸検出方法は、少なくとも次のＡ）～Ｄ）の試薬を使用することを特徴とする。
Ａ）増幅されて検出の指標となる鋳型核酸
Ｂ）検出対象核酸の少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する第１のポリヌクレオチド部分と、鋳型核酸の一部に相補的な塩基配列を有する第２のポリヌクレオチド部分とを含む核酸検出用プライマーであって、
検出対象核酸がRNAである場合には、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がDNAであり、検出対象核酸がDNAである場合には、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がRNAであり、
第１のポリヌクレオチド部分の５´側に第２のポリヌクレオチド部分が連結している、
核酸検出用プライマー
Ｃ）DNA/RNA複合体を分解するヌクレアーゼ
Ｄ）ポリメラーゼ
【0013】
本発明の核酸検出方法においては、前記Ａ）～Ｄ）の試薬を使用することにより、被検試料に検出対象核酸が含まれる場合に、次のｉ）～iii）の反応が生じ、鋳型核酸の増幅を指標として検出対象核酸の存在を検出することが可能となる。
ｉ）検出対象核酸を含む被検試料と、前記Ｂ）の核酸検出用プライマーとを接触させることにより、検出対象核酸と核酸検出用プライマーとをハイブリダイズさせて、DNA/RNA複合体を形成し、
ii）DNA/RNA複合体の少なくとも一部を、前記Ｃ）のヌクレアーゼで分解することにより、核酸検出用プライマーから第１のポリヌクレオチド部分を除去し、
iii）前記核酸検出用プライマーを、前記Ａ）の鋳型核酸にハイブリダイズさせて、前記Ｄ）のポリメラーゼにより鋳型核酸を増幅する反応を行う。
ｉ）検出対象核酸を含む被検試料と、前記Ｂ）の核酸検出用プライマーとを接触させることにより、検出対象核酸と核酸検出用プライマーとをハイブリダイズさせて、DNA/RNA複合体を形成し、
ii）DNA/RNA複合体の少なくとも一部を、前記Ｃ）のヌクレアーゼで分解することにより、核酸検出用プライマーから第１のポリヌクレオチド部分を除去し、
iii）前記核酸検出用プライマーを、前記Ａ）の鋳型核酸にハイブリダイズさせて、前記Ｄ）のポリメラーゼにより鋳型核酸を増幅する反応を行う。
【0014】
前記ｉ）～iii）の反応について、以下、図面を参照しながら説明する。
図１は、本発明の核酸検出方法の一例である第１の実施形態を模式的に示す図面である。
図１（Ａ）は、検出対象核酸を含む被検試料と反応溶液とを混合した状態を示し、混合された反応溶液中には、検出対象核酸１と、鋳型核酸２と、核酸検出用プライマー３と、ヌクレアーゼ４と、ポリメラーゼ５とが存在している。
鋳型核酸２と、ヌクレアーゼ４と、ポリメラーゼ５については、図１に示される第１の実施形態のように最初から混合しておいてもよいが、反応段階に応じて後から添加してもよい。
図１は、本発明の核酸検出方法の一例である第１の実施形態を模式的に示す図面である。
図１（Ａ）は、検出対象核酸を含む被検試料と反応溶液とを混合した状態を示し、混合された反応溶液中には、検出対象核酸１と、鋳型核酸２と、核酸検出用プライマー３と、ヌクレアーゼ４と、ポリメラーゼ５とが存在している。
鋳型核酸２と、ヌクレアーゼ４と、ポリメラーゼ５については、図１に示される第１の実施形態のように最初から混合しておいてもよいが、反応段階に応じて後から添加してもよい。
【0015】
図１（Ａ）に示されるように、核酸検出用プライマー３は、検出対象核酸１の少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する第１のポリヌクレオチド部分３０１と、鋳型核酸２の一部に相補的な塩基配列を有する第２のポリヌクレオチド部分３０２とを含んでいる。そして、第１のポリヌクレオチド部分３０１の５´側に第２のポリヌクレオチド部分３０２が連結している。
検出対象核酸１は、RNA又はDNAであり、検出対象核酸１がRNAである場合には、第１のポリヌクレオチド部分３０１はDNAとなるように設計し、検出対象核酸１がDNAである場合には、第１のポリヌクレオチド部分３０２はRNAとなるように設計する。
検出対象核酸１は、RNA又はDNAであり、検出対象核酸１がRNAである場合には、第１のポリヌクレオチド部分３０１はDNAとなるように設計し、検出対象核酸１がDNAである場合には、第１のポリヌクレオチド部分３０２はRNAとなるように設計する。
【0016】
図１（Ｂ）は、検出対象核酸と第１のポリヌクレオチド部分とがハイブリダイズして、DNA/RNA複合体を形成した状態を示す。
図１（Ｂ）に示されるように、核酸検出用プライマー３の第１のポリヌクレオチド部分３０１は、検出対象核酸１の少なくとも一部と相補的な塩基配列を有するので、第１のポリヌクレオチド部分３０１と検出対象核酸１とがハイブリダイズし、DNA/RNA複合体を形成する。
図１（Ｂ）に示されるように、核酸検出用プライマー３の第１のポリヌクレオチド部分３０１は、検出対象核酸１の少なくとも一部と相補的な塩基配列を有するので、第１のポリヌクレオチド部分３０１と検出対象核酸１とがハイブリダイズし、DNA/RNA複合体を形成する。
【0017】
図１（Ｃ）は、DNA/RNA複合体の第１のポリヌクレオチド部分がヌクレアーゼによって分解される状態を示す。
図１（Ｃ）に示されるように、DNA/RNA複合体が形成されると、ヌクレアーゼ４がこれを認識して結合する。
検出対象核酸１がRNAである場合には、第１のポリヌクレオチド部分がDNAとなるため、ヌクレアーゼ４として、DNA/RNA複合体中のDNAを分解するデオキシリボヌクレアーゼ（DNase）を用い、これにより第１のポリヌクレオチド部分３０１のDNAを分解する。また、検出対象核酸１がDNAである場合には、第１のポリヌクレオチド部分がRNAとなるため、ヌクレアーゼ４として、DNA/RNA複合体中のRNAを分解するリボヌクレアーゼ（RNase）を用い、これにより第１のポリヌクレオチド部分３０１のRNAを分解する。
図１（Ｃ）に示されるように、DNA/RNA複合体が形成されると、ヌクレアーゼ４がこれを認識して結合する。
検出対象核酸１がRNAである場合には、第１のポリヌクレオチド部分がDNAとなるため、ヌクレアーゼ４として、DNA/RNA複合体中のDNAを分解するデオキシリボヌクレアーゼ（DNase）を用い、これにより第１のポリヌクレオチド部分３０１のDNAを分解する。また、検出対象核酸１がDNAである場合には、第１のポリヌクレオチド部分がRNAとなるため、ヌクレアーゼ４として、DNA/RNA複合体中のRNAを分解するリボヌクレアーゼ（RNase）を用い、これにより第１のポリヌクレオチド部分３０１のRNAを分解する。
【0018】
本発明において使用するヌクレアーゼとしては、核酸配列の内部で核酸を分解するエンドヌクレアーゼを用いることができ、また、核酸配列において外側から核酸を分解するエキソヌクレアーゼを用いることもできる。
第１の実施形態では、ヌクレアーゼ４としてエンドヌクレアーゼを使用しており、第１のポリヌクレオチド部分３０１と第２のポリヌクレオチド部分３０２との連結部分から分解が開始され、これにより、第１のポリヌクレオチド部分３０１と第２のポリヌクレオチド部分３０２とが切り離される。このように、ヌクレアーゼ４によって、核酸検出用プライマー３から第１のポリヌクレオチド部分３０１が除去されて、核酸検出用プライマー３が活性化する。
本発明において、ヌクレアーゼとしてエキソヌクレアーゼを用いる場合には、３´末端から核酸を分解するエキソヌクレアーゼを用いることが好ましく、これにより、第１のポリヌクレオチド部分が３´末端から分解され、第１のポリヌクレオチド部分が完全に分解されることにより、核酸検出用プライマーが活性化する。
第１のポリヌクレオチドを速く確実に除去するためには、ヌクレアーゼとしてエンドヌクレアーゼを用いることが好ましい。
第１の実施形態では、ヌクレアーゼ４としてエンドヌクレアーゼを使用しており、第１のポリヌクレオチド部分３０１と第２のポリヌクレオチド部分３０２との連結部分から分解が開始され、これにより、第１のポリヌクレオチド部分３０１と第２のポリヌクレオチド部分３０２とが切り離される。このように、ヌクレアーゼ４によって、核酸検出用プライマー３から第１のポリヌクレオチド部分３０１が除去されて、核酸検出用プライマー３が活性化する。
本発明において、ヌクレアーゼとしてエキソヌクレアーゼを用いる場合には、３´末端から核酸を分解するエキソヌクレアーゼを用いることが好ましく、これにより、第１のポリヌクレオチド部分が３´末端から分解され、第１のポリヌクレオチド部分が完全に分解されることにより、核酸検出用プライマーが活性化する。
第１のポリヌクレオチドを速く確実に除去するためには、ヌクレアーゼとしてエンドヌクレアーゼを用いることが好ましい。
【0019】
図１（Ｄ）は、活性化された核酸検出用プライマーが、鋳型核酸にハイブリダイズした状態を示し、図１（Ｅ）は、鋳型核酸がポリメラーゼにより増幅されている状態を示す。
核酸検出用プライマー３は、第１のポリヌクレオチド部分３０１が除去されているため、鋳型核酸２を増幅するためのプライマーとして活性化されている。すなわち、図１（Ｄ）に示すように、核酸検出用プライマー３が鋳型核酸２にハイブリダイズした場合に、核酸検出用プライマー３の３´末端側の塩基が鋳型核酸２と塩基対を形成するため、図１（Ｅ）に示すように、ポリメラーゼ５による増幅反応が可能となる。
一方、本発明の核酸検出方法において、検出対象核酸が存在しない場合には、第１のポリヌクレオチド部分が核酸検出用プライマーから除去されず、核酸検出用プライマーが鋳型核酸にハイブリダイズしても、核酸検出用プライマーの３´末端側の塩基が鋳型核酸と塩基対を形成しないため、鋳型核酸の増幅反応を正常に行うことができない。
したがって、本発明の核酸検出方法によれば、検出対象核酸が存在する場合にのみ鋳型核酸の正常な増幅反応が生じることとなる。
核酸検出用プライマー３は、第１のポリヌクレオチド部分３０１が除去されているため、鋳型核酸２を増幅するためのプライマーとして活性化されている。すなわち、図１（Ｄ）に示すように、核酸検出用プライマー３が鋳型核酸２にハイブリダイズした場合に、核酸検出用プライマー３の３´末端側の塩基が鋳型核酸２と塩基対を形成するため、図１（Ｅ）に示すように、ポリメラーゼ５による増幅反応が可能となる。
一方、本発明の核酸検出方法において、検出対象核酸が存在しない場合には、第１のポリヌクレオチド部分が核酸検出用プライマーから除去されず、核酸検出用プライマーが鋳型核酸にハイブリダイズしても、核酸検出用プライマーの３´末端側の塩基が鋳型核酸と塩基対を形成しないため、鋳型核酸の増幅反応を正常に行うことができない。
したがって、本発明の核酸検出方法によれば、検出対象核酸が存在する場合にのみ鋳型核酸の正常な増幅反応が生じることとなる。
【0020】
本発明で使用する核酸検出用プライマーは、図１（Ｄ）に示されるように、第１のポリヌクレオチド部分３０１が除去されてから、鋳型核酸２にハイブリダイズしてもよいが、鋳型核酸にハイブリダイズしてから、第１のポリヌクレオチド部分がヌクレアーゼにより除去されてもよい。
【0021】
鋳型核酸２を増幅するにあたっては、核酸検出用プライマー３とは異なる鋳型核酸の領域にハイブリダイズするプライマーを設計し、２つのプライマーを用いたPCR反応により鋳型核酸２を増幅することができる。
【0022】
また、鋳型核酸２を増幅するにあたっては、LAMP法を用いることもできる。LAMP法とは、本件出願人が開発した核酸増幅法であり（特許第３３１３３５８号等）、等温での核酸増幅反応を可能とする方法である。
LAMP法では、プライマーとして、鋳型核酸上の６つの領域の塩基配列に基づいて設計される、少なくとも４種類のプライマーが使用され、それぞれのプライマーは、インナープライマーF（FIP）、インナープライマーB（BIP）、アウタープライマーF（F3）、アウタープライマーB（B3）と呼ばれる。この他に、ループプライマーF（LF）とループプライマーB（LB）を用いることもできる。
本発明の核酸検出用プライマーをインナープライマーとして設計する場合には、核酸検出用プライマーの第２のポリヌクレオチド部分の５´側に第３のポリヌクレオチド部分を設ける。第３のポリヌクレオチド部分の塩基配列は、鋳型核酸において第２のポリヌクレオチド部分と相補的な領域よりも５´側の領域の塩基配列の一部と同一の塩基配列を含むように設計する。
一方、本発明の核酸検出用プライマーをアウタープライマーとしても設計する場合には、第３のポリヌクレオチド部分を設ける必要はない。
LAMP法では、プライマーとして、鋳型核酸上の６つの領域の塩基配列に基づいて設計される、少なくとも４種類のプライマーが使用され、それぞれのプライマーは、インナープライマーF（FIP）、インナープライマーB（BIP）、アウタープライマーF（F3）、アウタープライマーB（B3）と呼ばれる。この他に、ループプライマーF（LF）とループプライマーB（LB）を用いることもできる。
本発明の核酸検出用プライマーをインナープライマーとして設計する場合には、核酸検出用プライマーの第２のポリヌクレオチド部分の５´側に第３のポリヌクレオチド部分を設ける。第３のポリヌクレオチド部分の塩基配列は、鋳型核酸において第２のポリヌクレオチド部分と相補的な領域よりも５´側の領域の塩基配列の一部と同一の塩基配列を含むように設計する。
一方、本発明の核酸検出用プライマーをアウタープライマーとしても設計する場合には、第３のポリヌクレオチド部分を設ける必要はない。
【0023】
増幅された鋳型核酸は、例えば、これらに限定されるわけではないが、インターカレーターと反応させて染色することにより、又は、核酸増幅にあたって蛍光色素等で標識されたプライマーを用いることにより、光学的手段を用いて検出することが可能である。
【0024】
本発明の核酸検出方法によれば、検出対象核酸が存在する場合にのみ鋳型核酸の増幅反応が生じるため、鋳型核酸の増幅を指標として検出対象核酸を検出することができるという効果を奏する。
また、本発明の核酸検出方法は、核酸増幅を利用した方法でありながら、検出対象核酸を直接増幅することがないため、直接増幅することが難しい１０～１００塩基の短鎖核酸であっても好適に検出することができるという効果を奏する。
また、本発明の核酸検出方法は、核酸増幅を利用した方法でありながら、検出対象核酸を直接増幅することがないため、直接増幅することが難しい１０～１００塩基の短鎖核酸であっても好適に検出することができるという効果を奏する。
【0025】
１－２． 本発明の核酸検出方法の詳細な説明
本発明において、検出の対象となる「検出対象核酸」は、DNA（デオキシリボ核酸）又はRNA（リボ核酸）であるが、DNA/RNA複合体を形成することができ、ヌクレアーゼで分解可能なものであれば、一部に人工核酸を有しているDNA又はRNAや、他の物質と結合したDNA又はRNAであってもよい。
臨床診断の目的のためには、生体内に存在する天然のDNA又はRNAを人工的に抽出したものを「検出対象核酸」とすることが好ましい。
生体内に存在する天然のDNA又はRNAとしては、これらに限定されるわけではないが、例えば、ゲノムDNA、ミトコンドリアDNA（mtDNA）、メッセンジャーRNA（mRNA）、トランスファーRNA（tRNA）、リボソームRNA（rRNA）、核内低分子RNA（small nuclear RNA：snRNA）、核小体低分子RNA（small nucleolar RNA：snoRNA）、microRNA（miRNA）、small interfering RNA（siRNA）等が存在する。
本発明において、検出の対象となる「検出対象核酸」は、DNA（デオキシリボ核酸）又はRNA（リボ核酸）であるが、DNA/RNA複合体を形成することができ、ヌクレアーゼで分解可能なものであれば、一部に人工核酸を有しているDNA又はRNAや、他の物質と結合したDNA又はRNAであってもよい。
臨床診断の目的のためには、生体内に存在する天然のDNA又はRNAを人工的に抽出したものを「検出対象核酸」とすることが好ましい。
生体内に存在する天然のDNA又はRNAとしては、これらに限定されるわけではないが、例えば、ゲノムDNA、ミトコンドリアDNA（mtDNA）、メッセンジャーRNA（mRNA）、トランスファーRNA（tRNA）、リボソームRNA（rRNA）、核内低分子RNA（small nuclear RNA：snRNA）、核小体低分子RNA（small nucleolar RNA：snoRNA）、microRNA（miRNA）、small interfering RNA（siRNA）等が存在する。
【0026】
検出対象核酸の長さは、DNA/RNA複合体を形成したときにヌクレアーゼによって認識できる長さであれば特に限定されないが、通常、５～５０００塩基である。
また、本発明の核酸検出方法は、核酸増幅を利用した方法でありながら、検出対象核酸を直接増幅することがないため、直接増幅することが難しい１０～１００塩基の短鎖核酸であっても好適に検出することができる。
検出対象核酸は、より好ましくは、２０～５０塩基とするのがよく、miRNAについても好適に検出することが可能である。
また、本発明の核酸検出方法は、核酸増幅を利用した方法でありながら、検出対象核酸を直接増幅することがないため、直接増幅することが難しい１０～１００塩基の短鎖核酸であっても好適に検出することができる。
検出対象核酸は、より好ましくは、２０～５０塩基とするのがよく、miRNAについても好適に検出することが可能である。
【0027】
本発明で使用する「鋳型核酸」としては、DNA、RNA又はこれらの類縁体である人工核酸を用いることができるが、増幅が容易である点からDNAを用いることが好ましい。「鋳型核酸」は、安定な二本鎖核酸を用いることができるが、一本鎖核酸であってもよい。
本発明において、人工核酸としては、例えば、糖とリン酸からなるヌクレオチド骨格を修飾した人工核酸、塩基部分を修飾した人工核酸を用いることができる。ヌクレオチド骨格を修飾した人工核酸としては、これらに限定されるわけではないが、例えば、ペプチド鎖を骨格としたペプチド核酸（Peptide Nucleic Acid： PNA）、糖に架橋構造を持たせたロックト核酸（Locked Nucleic Acid： LNA）、ホスホジエステル結合で連結したグリコールを骨格とするグリコール核酸（Glycol Nucleic Acid： GNA）等を挙げることができる。また、塩基部分を修飾した人工核酸としては、これらに限定されるわけではないが、例えば、塩基として、2-アミノ-6-ジメチルアミノプリン、ピリドン-2-オン、2-アミノ-6-(2-チエニル)プリン、ピロロピリジン、メチルイソカルボステリル、アザアデニン、アザグアニン等を用いた人工核酸が挙げられる。
本発明において、人工核酸としては、例えば、糖とリン酸からなるヌクレオチド骨格を修飾した人工核酸、塩基部分を修飾した人工核酸を用いることができる。ヌクレオチド骨格を修飾した人工核酸としては、これらに限定されるわけではないが、例えば、ペプチド鎖を骨格としたペプチド核酸（Peptide Nucleic Acid： PNA）、糖に架橋構造を持たせたロックト核酸（Locked Nucleic Acid： LNA）、ホスホジエステル結合で連結したグリコールを骨格とするグリコール核酸（Glycol Nucleic Acid： GNA）等を挙げることができる。また、塩基部分を修飾した人工核酸としては、これらに限定されるわけではないが、例えば、塩基として、2-アミノ-6-ジメチルアミノプリン、ピリドン-2-オン、2-アミノ-6-(2-チエニル)プリン、ピロロピリジン、メチルイソカルボステリル、アザアデニン、アザグアニン等を用いた人工核酸が挙げられる。
【0028】
本発明で使用する「鋳型核酸」は必ずしも、検出対象核酸の配列に対応して別個に設計する必要がなく、多種の検出対象核酸の検出において一つの鋳型核酸を共通して使用することが可能である。ここで、「鋳型核酸」は、多種の検出対象核酸のいずれに対しても相同性が低いものであることが好ましく、これにより、鋳型核酸が核酸検出用プライマーの第１のポリヌクレオチド部分とハイブリダイズすることを防止することができる。
より好ましくは、「鋳型核酸」として、非自然人工塩基配列を有する鋳型核酸を使用するのがよい。ここで、「非自然人工塩基配列」とは、生物由来の核酸の塩基配列ではなく人工的に作成された塩基配列をいい、遺伝子データベースに登録された生物由来の核酸の塩基配列のいずれに対しても相同性が低いものが好ましい。非自然人工塩基配列を用いることにより、鋳型核酸が核酸検出用プライマーの第１のポリヌクレオチド部分とハイブリダイズしてしまうことや、鋳型核酸が被検試料中に存在する生体由来の核酸とハイブリダイズしてしまうことを防止することができ、さらに、コンタミネーションリスクを低減することができる。
より好ましくは、「鋳型核酸」として、非自然人工塩基配列を有する鋳型核酸を使用するのがよい。ここで、「非自然人工塩基配列」とは、生物由来の核酸の塩基配列ではなく人工的に作成された塩基配列をいい、遺伝子データベースに登録された生物由来の核酸の塩基配列のいずれに対しても相同性が低いものが好ましい。非自然人工塩基配列を用いることにより、鋳型核酸が核酸検出用プライマーの第１のポリヌクレオチド部分とハイブリダイズしてしまうことや、鋳型核酸が被検試料中に存在する生体由来の核酸とハイブリダイズしてしまうことを防止することができ、さらに、コンタミネーションリスクを低減することができる。
【0029】
本発明で使用する「核酸検出用プライマー」は、検出対象核酸の少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する第１のポリヌクレオチド部分と、鋳型核酸の一部に相補的な塩基配列を有する第２のポリヌクレオチド部分とを含む。
ここで、第１のポリヌクレオチド部分は、検出対象核酸の全ての塩基配列と相補的な塩基配列を有するものであってもよく、また、検出対象核酸の一部のみと相補的な塩基配列を有するものであってもよい。
ここで、第１のポリヌクレオチド部分は、検出対象核酸の全ての塩基配列と相補的な塩基配列を有するものであってもよく、また、検出対象核酸の一部のみと相補的な塩基配列を有するものであってもよい。
【0030】
本発明において「相補的な塩基配列を有する」とは、例えば、A（アデニン）とT（チミン）との塩基対、G（グアニン）とC（シトシン）との塩基対、A（アデニン）とU（ウラシル）との塩基対、2-アミノ-6-ジメチルアミノプリンとピリドン-2-オンとの塩基対のように、互いに水素結合により結合することができる塩基対を形成できる塩基配列を有していることをいうが、一部に水素結合により結合できる塩基対とはならないミスマッチとなる塩基を有していてもよい。ただし、第１のポリヌクレオチド部分と第２のポリヌクレオチド部分の境界部分はミスマッチとならないようにすることが好ましく、また、第１のポリヌクレオチド部分及び第２のポリヌクレオチド部分において、ミスマッチは、それぞれ２０％以下とするのが好ましく、より好ましくは５％以下とするのがよい。
【0031】
本発明で使用する核酸検出用プライマーは、第１のポリヌクレオチド部分の５´側に、第２のポリヌクレオチド部分が連結している。ここで、第１のポリヌクレオチド部分と第２のポリヌクレオチド部分の間には、場合により、検出対象核酸とも鋳型核酸とも相補的ではない１塩基程度の介在配列を設けることもできる。かかる介在配列は、核酸検出用プライマーから第１のポリヌクレオチド部分が除去されるときに、条件により一緒に除去することができ、その場合には、核酸検出用プライマーを活性化することが可能である。
【0032】
本発明で使用する核酸検出用プライマーは、第１のポリヌクレオチド部分や第２のポリヌクレオチド部分以外の核酸部分を有していてもよい。例えば、第２のポリヌクレオチド部分の５´側に、鋳型核酸の塩基配列と相補的ではない第３のポリヌクレオチド部分を連結することもできる。また、第１のポリヌクレオチド部分の３´側には、検出対象核酸の塩基配列と相補的ではない第４のポリヌクレオチド部分を連結することもできる。
第３のポリヌクレオチド部分は、特定の機能を持たせることもできる。例えば、これらに限定されるわけではないが、鋳型核酸において第２のポリヌクレオチド部分と相補的な領域よりも５´側の領域の塩基配列の一部と同一の塩基配列を含むように、第３のポリヌクレオチド部分を設計することにより、核酸検出用プライマーをLAMP法のインナープライマーとして使用することが可能となる。
また、第４のポリヌクレオチド部分についても、特定の機能を持たせることができる。例えば、これらに限定されるわけではないが、第４のポリヌクレオチド部分が非自然人工塩基配列を有しかつ鋳型核酸ともハイブリダイズしないように設計することにより、第１のポリヌクレオチド部分が被検試料中の検出対象核酸以外の核酸等とハイブリダイズしてしまった場合や、検出対象核酸が鋳型核酸と相同性が高く、第１のポリヌクレオチド部分が鋳型核酸にハイブリダイズしてしまった場合でも、第４のポリヌクレオチド部分が被検試料中の核酸や鋳型核酸とハイブリダイズしないため、意図しない増幅反応を防止することができる。
第３のポリヌクレオチド部分は、特定の機能を持たせることもできる。例えば、これらに限定されるわけではないが、鋳型核酸において第２のポリヌクレオチド部分と相補的な領域よりも５´側の領域の塩基配列の一部と同一の塩基配列を含むように、第３のポリヌクレオチド部分を設計することにより、核酸検出用プライマーをLAMP法のインナープライマーとして使用することが可能となる。
また、第４のポリヌクレオチド部分についても、特定の機能を持たせることができる。例えば、これらに限定されるわけではないが、第４のポリヌクレオチド部分が非自然人工塩基配列を有しかつ鋳型核酸ともハイブリダイズしないように設計することにより、第１のポリヌクレオチド部分が被検試料中の検出対象核酸以外の核酸等とハイブリダイズしてしまった場合や、検出対象核酸が鋳型核酸と相同性が高く、第１のポリヌクレオチド部分が鋳型核酸にハイブリダイズしてしまった場合でも、第４のポリヌクレオチド部分が被検試料中の核酸や鋳型核酸とハイブリダイズしないため、意図しない増幅反応を防止することができる。
【0033】
核酸検出用プライマーにおいて、第１のポリヌクレオチド部分は、検出対象核酸の配列に応じて個別に設計する必要があるが、第２ないし第４のポリヌクレオチド部分については、必ずしも検出対象核酸の配列に応じて設計する必要がなく、多種の検出対象核酸の検出において、共通の配列を用いることができる。したがって、本発明の核酸検出方法においては、核酸検出用プライマーの設計にあたり、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分だけを検出対象核酸の配列に応じて設計すればよく、簡便にプライマーを設計することが可能である。
【0034】
図２は、本発明の核酸検出方法の他の一例である第２の実施形態を模式的に示す図面である。
図２（Ａ）は、検出対象核酸を含む被検試料と反応溶液とを混合した状態を示しているが、核酸検出用プライマー３は、第１のポリヌクレオチド部分３０１と第２のポリヌクレオチド部分３０２の他に、第３のポリヌクレオチド部分３０３と第４のポリヌクレオチド部分３０４を含んでいる。そして、第１のポリヌクレオチド部分３０１は、検出対象核酸１の一部のみと相補的な塩基配列を有している。
図２（Ａ）は、検出対象核酸を含む被検試料と反応溶液とを混合した状態を示しているが、核酸検出用プライマー３は、第１のポリヌクレオチド部分３０１と第２のポリヌクレオチド部分３０２の他に、第３のポリヌクレオチド部分３０３と第４のポリヌクレオチド部分３０４を含んでいる。そして、第１のポリヌクレオチド部分３０１は、検出対象核酸１の一部のみと相補的な塩基配列を有している。
【0035】
図２（Ｂ）は、検出対象核酸と第１のポリヌクレオチド部分とがハイブリダイズして、DNA/RNA複合体を形成した状態を示すが、第１のポリヌクレオチド部分３０１は、検出対象核酸１の一部のみと相補的な塩基配列を有しているため、検出対象核酸１にはDNA/RNA複合体を形成しない部分が存在する。
図２（Ｃ）は、DNA/RNA複合体がヌクレアーゼによって分解される状態を示すが、第１のポリヌクレオチド部分３０１と第２のポリヌクレオチド部分３０２との連結部分から分解が開始され、これにより、第１のポリヌクレオチド部分３０１と第２のポリヌクレオチド部分３０２とが切り離される。
このように、第１のポリヌクレオチド部分３０１が、検出対象核酸１の一部のみと相補的な塩基配列を有している場合でも、核酸検出用プライマー３から第１のポリヌクレオチド部分３０１を除去して、核酸検出用プライマー３を活性化することができる。
図２（Ｃ）は、DNA/RNA複合体がヌクレアーゼによって分解される状態を示すが、第１のポリヌクレオチド部分３０１と第２のポリヌクレオチド部分３０２との連結部分から分解が開始され、これにより、第１のポリヌクレオチド部分３０１と第２のポリヌクレオチド部分３０２とが切り離される。
このように、第１のポリヌクレオチド部分３０１が、検出対象核酸１の一部のみと相補的な塩基配列を有している場合でも、核酸検出用プライマー３から第１のポリヌクレオチド部分３０１を除去して、核酸検出用プライマー３を活性化することができる。
【0036】
図２（Ｄ）は、活性化された核酸検出用プライマーが、鋳型核酸にハイブリダイズした状態を示し、図２（Ｅ）は、鋳型核酸がポリメラーゼにより増幅されている状態を示す。
核酸検出用プライマー３は、第３のポリヌクレオチド部分３０３を有しているが、その塩基配列は、第２のポリヌクレオチド部分３０２がハイブリダイズする鋳型核酸２の領域の５´側の領域の塩基配列の一部と同一である。これにより、核酸検出用プライマー３を、LAMP法のインナープライマーとして使用することができ、さらに、もう一方のインナープライマーと、２つのアウタープライマーを設計し、ポリメラーゼ５を用いて、鋳型核酸２をLAMP法により等温増幅することが可能となる。
核酸検出用プライマー３は、第３のポリヌクレオチド部分３０３を有しているが、その塩基配列は、第２のポリヌクレオチド部分３０２がハイブリダイズする鋳型核酸２の領域の５´側の領域の塩基配列の一部と同一である。これにより、核酸検出用プライマー３を、LAMP法のインナープライマーとして使用することができ、さらに、もう一方のインナープライマーと、２つのアウタープライマーを設計し、ポリメラーゼ５を用いて、鋳型核酸２をLAMP法により等温増幅することが可能となる。
【0037】
本発明で用いる核酸検出用プライマーにおいて、第１のポリヌクレオチド部分は少なくとも５´末端がDNA又はRNAである核酸とするが、DNA及び／又はRNAのみからなる核酸に限定されず、検出対象核酸とハイブリダイズしてDNA/RNA複合体を形成することができ、ヌクレアーゼで分解可能なものであれば、一部に人工核酸を有していてもよく、また、標識等の他の物質と結合した核酸であってもよい。
第１のポリヌクレオチド部分は、検出対象核酸の少なくとも一部と相補的な塩基配列となるものであれば、その塩基長や配列は特に限定されないが、ハイブリダイズに適したＴｍ値となるように塩基長と配列を設計することが好ましい。第１のポリヌクレオチド部分の塩基長は、通常、５～５０００塩基であり、より好ましくは１０～１００塩基であり、さらに好ましくは２０～５０塩基である。
第１のポリヌクレオチド部分は、検出対象核酸と相補的であるのと同時に鋳型核酸とも相補的な部分を有していてもよい。また、第２のポリヌクレオチド部分は、鋳型核酸と相補的であるのと同時に検出対象核酸とも相補的な部分を有していてもよい。
第１のポリヌクレオチド部分は、検出対象核酸の少なくとも一部と相補的な塩基配列となるものであれば、その塩基長や配列は特に限定されないが、ハイブリダイズに適したＴｍ値となるように塩基長と配列を設計することが好ましい。第１のポリヌクレオチド部分の塩基長は、通常、５～５０００塩基であり、より好ましくは１０～１００塩基であり、さらに好ましくは２０～５０塩基である。
第１のポリヌクレオチド部分は、検出対象核酸と相補的であるのと同時に鋳型核酸とも相補的な部分を有していてもよい。また、第２のポリヌクレオチド部分は、鋳型核酸と相補的であるのと同時に検出対象核酸とも相補的な部分を有していてもよい。
【0038】
本発明においては、検出対象核酸がRNAである場合には、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端をDNAとする。この場合、核酸検出用プライマーの製造の容易さの面から、第１のポリヌクレオチド部分の全体をDNAとすることが好ましい。
検出対象核酸がDNAである場合には、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端をRNAとする。この場合、第１のポリヌクレオチド部分の全体をRNAとすることもできるが、第１のポリヌクレオチド部分の５´末端のみをRNAとすることもできる。
検出対象核酸と核酸検出用プライマーとがハイブリダイズした場合に、DNA/RNA複合体が形成されるように核酸検出用プライマーを設計し、DNA/RNA複合体の少なくとも一部においてヌクレアーゼによる分解を行うことにより、核酸検出用プライマーを活性化することが可能となる。
検出対象核酸がDNAである場合には、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端をRNAとする。この場合、第１のポリヌクレオチド部分の全体をRNAとすることもできるが、第１のポリヌクレオチド部分の５´末端のみをRNAとすることもできる。
検出対象核酸と核酸検出用プライマーとがハイブリダイズした場合に、DNA/RNA複合体が形成されるように核酸検出用プライマーを設計し、DNA/RNA複合体の少なくとも一部においてヌクレアーゼによる分解を行うことにより、核酸検出用プライマーを活性化することが可能となる。
【0039】
図３は、本発明の核酸検出方法の他の一例である第３の実施形態を模式的に示す図面である。
図３（Ａ）は、検出対象核酸を含む被検試料と反応溶液とを混合した状態を示しているが、試薬の１つである核酸検出用プライマー３は、第１のポリヌクレオチド部分３０１と、第２のポリヌクレオチド部分３０２を有している。第３の実施形態においては、検出対象核酸１は全長がDNAとなっている。そして、核酸検出用プライマー３の第１のポリヌクレオチド部分３０１は、検出対象核酸１の一部と相補的な塩基配列を有しているが、５´末端がRNAとなっており、それ以外の部分がDNAとなっている。
第３の実施形態において、第２のポリヌクレオチド部分３０２は、鋳型核酸２の一部に相補的な塩基配列を有するDNAからなるが、３´側の部分３０２ａと５´側の部分３０２ｂとに分けて設計されている。そして、３´側の部分３０２ａは、鋳型核酸２の一部に相補的であるだけでなく、検出対象核酸１の一部に対しても相補的であるように設計されている。鋳型核酸２には、検出対象核酸１の一部と同一の塩基配列（共通塩基配列）２０１ａが挿入されており、これにより３０２ａが鋳型核酸２の一部に相補的であるだけでなく、検出対象核酸１の一部に対しても相補的であるように設計することが可能となる。
図３（Ａ）は、検出対象核酸を含む被検試料と反応溶液とを混合した状態を示しているが、試薬の１つである核酸検出用プライマー３は、第１のポリヌクレオチド部分３０１と、第２のポリヌクレオチド部分３０２を有している。第３の実施形態においては、検出対象核酸１は全長がDNAとなっている。そして、核酸検出用プライマー３の第１のポリヌクレオチド部分３０１は、検出対象核酸１の一部と相補的な塩基配列を有しているが、５´末端がRNAとなっており、それ以外の部分がDNAとなっている。
第３の実施形態において、第２のポリヌクレオチド部分３０２は、鋳型核酸２の一部に相補的な塩基配列を有するDNAからなるが、３´側の部分３０２ａと５´側の部分３０２ｂとに分けて設計されている。そして、３´側の部分３０２ａは、鋳型核酸２の一部に相補的であるだけでなく、検出対象核酸１の一部に対しても相補的であるように設計されている。鋳型核酸２には、検出対象核酸１の一部と同一の塩基配列（共通塩基配列）２０１ａが挿入されており、これにより３０２ａが鋳型核酸２の一部に相補的であるだけでなく、検出対象核酸１の一部に対しても相補的であるように設計することが可能となる。
【0040】
図３（Ｂ）は、検出対象核酸と核酸検出用プライマーとがハイブリダイズして、DNA/RNA複合体を形成した状態を示す。
図３（Ｂ）に示されるように、第１のポリヌクレオチド部分３０１と、第２のポリヌクレオチド部分の３´側の部分３０２ａは、検出対象核酸１とハイブリダイズする。ここで、第１のポリヌクレオチド部分３０１の５´末端のみがRNAとなっているので、この部分においてDNA/RNA複合体が形成される。
図３（Ｂ）に示されるように、第１のポリヌクレオチド部分３０１と、第２のポリヌクレオチド部分の３´側の部分３０２ａは、検出対象核酸１とハイブリダイズする。ここで、第１のポリヌクレオチド部分３０１の５´末端のみがRNAとなっているので、この部分においてDNA/RNA複合体が形成される。
【0041】
図３（Ｃ）は、DNA/RNA複合体の第１のポリヌクレオチド部分がヌクレアーゼによって分解される状態を示す。
図３（Ｃ）に示されるように、DNA/RNA複合体が形成されると、ヌクレアーゼ４がこれを認識して結合し、DNA/RNA複合体中のRNAを分解する。第３の実施形態においては、ヌクレアーゼとしてRNase Hを使用しており、DNA/RNA複合体が１塩基対だけである場合でも、これを認識して分解することができる。１塩基のみの分解ではあるものの、第１のポリヌクレオチド部分３０１と第２のポリヌクレオチド部分３０２との境界が切断されることとなる。
図３（Ｃ）に示されるように、DNA/RNA複合体が形成されると、ヌクレアーゼ４がこれを認識して結合し、DNA/RNA複合体中のRNAを分解する。第３の実施形態においては、ヌクレアーゼとしてRNase Hを使用しており、DNA/RNA複合体が１塩基対だけである場合でも、これを認識して分解することができる。１塩基のみの分解ではあるものの、第１のポリヌクレオチド部分３０１と第２のポリヌクレオチド部分３０２との境界が切断されることとなる。
【0042】
図３（Ｄ）は、核酸検出用プライマーから第１のポリヌクレオチド部分が除去された状態を示す。
第３の実施形態においては、図３（Ｃ）に示されるように、第１のポリヌクレオチド部分３０１と第２のポリヌクレオチド部分３０２との境界が切断されているものの、第２のポリヌクレオチド部分の３´側の部分３０２ａが検出対象核酸１とハイブリダイズしているため、そのままでは第１のポリヌクレオチド部分３０１は核酸検出用プライマー３から切り離されていない状態にある。しかしながら、塩基対の形成と分離は動的平衡状態にあるため、図３（Ｄ）に示されるように、核酸検出用プライマー３から第１のポリヌクレオチド部分３０１は分離することが可能である。あるいは、反応溶液を加熱することによって、第１のポリヌクレオチド部分の分離を促進することもできる。
第３の実施形態においては、図３（Ｃ）に示されるように、第１のポリヌクレオチド部分３０１と第２のポリヌクレオチド部分３０２との境界が切断されているものの、第２のポリヌクレオチド部分の３´側の部分３０２ａが検出対象核酸１とハイブリダイズしているため、そのままでは第１のポリヌクレオチド部分３０１は核酸検出用プライマー３から切り離されていない状態にある。しかしながら、塩基対の形成と分離は動的平衡状態にあるため、図３（Ｄ）に示されるように、核酸検出用プライマー３から第１のポリヌクレオチド部分３０１は分離することが可能である。あるいは、反応溶液を加熱することによって、第１のポリヌクレオチド部分の分離を促進することもできる。
【0043】
図３（Ｅ）は、核酸検出用プライマーが、鋳型核酸にハイブリダイズした状態を示し、図３（Ｆ）は、鋳型核酸がポリメラーゼにより増幅されている状態を示す。
図３（Ｅ）に示されるように、第１のポリヌクレオチド部分３０１が除去されて活性化した核酸検出用プライマー３は、鋳型核酸２にハイブリダイズする。第２のポリヌクレオチド部分の３´側の部分３０２ａは、検出対象核酸１の一部と相補的であるが、同時に鋳型核酸２の共通塩基配列２０１ａとも相補的であるように設計されているため、核酸検出用プライマー３の３´末端の塩基が鋳型核酸２と塩基対を形成する。このため、図３（Ｆ）に示すように、ポリメラーゼ５による増幅反応が可能となる。
図３（Ｅ）に示されるように、第１のポリヌクレオチド部分３０１が除去されて活性化した核酸検出用プライマー３は、鋳型核酸２にハイブリダイズする。第２のポリヌクレオチド部分の３´側の部分３０２ａは、検出対象核酸１の一部と相補的であるが、同時に鋳型核酸２の共通塩基配列２０１ａとも相補的であるように設計されているため、核酸検出用プライマー３の３´末端の塩基が鋳型核酸２と塩基対を形成する。このため、図３（Ｆ）に示すように、ポリメラーゼ５による増幅反応が可能となる。
【0044】
本発明で用いる核酸検出用プライマーにおいて、第２のポリヌクレオチド部分は、DNA、RNA又はこれらの類縁体である人工核酸とすることができるが、核酸増幅の容易性から、DNAとすることが好ましい。
第２のポリヌクレオチド部分は、鋳型核酸の一部と相補的な塩基配列となるものであれば、その塩基長や配列は特に限定されないが、ハイブリダイズに適したＴｍ値となるように塩基長と配列を設計することが好ましい。
第２のポリヌクレオチド部分は、第３の実施形態の例のように、３´側の部分が、鋳型核酸と相補的であるのと同時に、検出対象核酸とも相補的であるものとすることもできる。
第２のポリヌクレオチド部分は、鋳型核酸の一部と相補的な塩基配列となるものであれば、その塩基長や配列は特に限定されないが、ハイブリダイズに適したＴｍ値となるように塩基長と配列を設計することが好ましい。
第２のポリヌクレオチド部分は、第３の実施形態の例のように、３´側の部分が、鋳型核酸と相補的であるのと同時に、検出対象核酸とも相補的であるものとすることもできる。
【0045】
本発明で用いる核酸検出用プライマーは、これらに限定されるわけではないが、例えば、固相合成法等を用いることにより、化学的に合成することができる。また、一部分がRNAであり他の部分がDNAである核酸検出用プライマーについても、化学的に合成することが可能である。
【0046】
本発明で用いる核酸検出用プライマーにおいては、３´末端に増幅反応を停止する修飾を有することが好ましい。このような修飾を設けることにより、第１のポリヌクレオチド部分が除去されていない核酸検出用プライマーが、鋳型核酸や被検試料中の検出対象核酸以外の核酸等とハイブリダイズして核酸増幅反応を生じてしまうことを防ぐことができる。
増幅反応を停止する修飾としては、これらに限定されるわけではないが、例えば、ポリヌクレオチドの末端のリボースの３´位のOH基を、リン酸基等の他の物質に置換する修飾を行うことにより、ポリメラーゼによる伸長反応を停止させることができる。
あるいは、前記のとおり、第１のポリヌクレオチド部分の３´末端に第４のポリヌクレオチド部分を連結し、第４のポリヌクレオチド部分が非自然人工塩基配列を有しかつ鋳型核酸ともハイブリダイズしないように設計することにより、第１のポリヌクレオチド部分が被検試料中の検出対象核酸以外の核酸等とハイブリダイズしてしまった場合や、第１のポリヌクレオチド部分が鋳型核酸にハイブリダイズしてしまった場合でも、第４のポリヌクレオチド部分が被検試料中の核酸や鋳型核酸とハイブリダイズしないので、意図しない核酸増幅反応を生じてしまうことを防ぐことができる。
増幅反応を停止する修飾としては、これらに限定されるわけではないが、例えば、ポリヌクレオチドの末端のリボースの３´位のOH基を、リン酸基等の他の物質に置換する修飾を行うことにより、ポリメラーゼによる伸長反応を停止させることができる。
あるいは、前記のとおり、第１のポリヌクレオチド部分の３´末端に第４のポリヌクレオチド部分を連結し、第４のポリヌクレオチド部分が非自然人工塩基配列を有しかつ鋳型核酸ともハイブリダイズしないように設計することにより、第１のポリヌクレオチド部分が被検試料中の検出対象核酸以外の核酸等とハイブリダイズしてしまった場合や、第１のポリヌクレオチド部分が鋳型核酸にハイブリダイズしてしまった場合でも、第４のポリヌクレオチド部分が被検試料中の核酸や鋳型核酸とハイブリダイズしないので、意図しない核酸増幅反応を生じてしまうことを防ぐことができる。
【0047】
本発明で用いる「ヌクレアーゼ」としては、検出対象核酸がRNAである場合には、DNA/RNA複合体中のDNAを分解するデオキシリボヌクレアーゼ（DNase）を用いる。また、検出対象核酸がDNAである場合には、ヌクレアーゼとして、DNA/RNA複合体中のRNAを分解するリボヌクレアーゼ（RNase）を用いる。
本発明で使用するヌクレアーゼは、核酸配列の内部で核酸を分解するエンドヌクレアーゼを用いることができ、また、核酸配列において外側から核酸を分解するエキソヌクレアーゼを用いることもできる。
第１のポリヌクレオチドを速く確実に除去するためには、ヌクレアーゼとしてエンドヌクレアーゼを用いることが好ましい。また、エキソヌクレアーゼを用いる場合には、３´末端から核酸を分解するエキソヌクレアーゼを用いることが好ましい。
本発明で使用するヌクレアーゼは、核酸配列の内部で核酸を分解するエンドヌクレアーゼを用いることができ、また、核酸配列において外側から核酸を分解するエキソヌクレアーゼを用いることもできる。
第１のポリヌクレオチドを速く確実に除去するためには、ヌクレアーゼとしてエンドヌクレアーゼを用いることが好ましい。また、エキソヌクレアーゼを用いる場合には、３´末端から核酸を分解するエキソヌクレアーゼを用いることが好ましい。
【0048】
デオキシリボヌクレアーゼ（DNase）としては、これらに限定されるわけではないが、例えば、DNA/RNA複合体のDNAを分解するエンドヌクレアーゼであるDNase H（国際公開第２０１４／１９０１８１号、Mol Cell., 2015, Oct 15, 60(2), pp.242-255）を用いることができる。また、リボヌクレアーゼ（RNase）としては、これらに限定されるわけではないが、例えば、DNA/RNA複合体のRNAを分解するエンドリボヌクレアーゼであるRNase Hを用いることができる。
【0049】
前記のDNase Hは、NmeCas9と呼ばれるタンパク質であり、細菌や古細菌が有する適応免疫システムであるCRISPR-Cas9システムにおいてヌクレアーゼとして機能するCas9タンパク質の一種である。CRISPR-Cas9システムは、ゲノム編集技術に応用できることが注目されているが、ゲノム編集技術で一般的に使用されているCas9タンパク質は、化膿レンサ球菌（Streptococcus pyogenes）由来のSpyCas9である。一方、NmeCas9は、髄膜炎菌（Neisseria meningitidis）由来のCas9タンパク質であり、SpyCas9とは異なる特性を有している。化膿レンサ球菌由来のSpyCas9は、ガイド鎖として機能するcrRNAとtracrRNAが存在する場合に、crRNAの一部に相補的な配列とPAM配列とを有する二本鎖DNAに結合して、二本鎖DNAの切断を行う。一方、髄膜炎菌由来のNmeCas9は、tracrRNAやPAM配列を必要とせず、crRNAが存在すれば、crRNAの一部と相補的な配列を有する一本鎖DNAに結合して、一本鎖DNAの切断を行う。さらには、少なくとも17塩基以上のRNA-DNA複合体において、NmeCas9は配列に関係なく一本鎖DNAの切断を行うことができる。NmeCas9は、RNA-DNA複合体におけるDNA鎖を切断するため、RNA-DNA複合体におけるRNA鎖を分解するRNase Hとの比較から、DNase H活性を有するともいわれている（Mol Cell., 2015, Oct 15, 60(2), pp.242-255）。
【0050】
図４は、本発明の核酸検出方法において、ヌクレアーゼとしてNmeCas9を用いる方法の一例として、第４の実施形態を模式的に示す図面である。
図４（Ａ）は、検出対象核酸を含む被検試料と反応溶液とを混合した状態を示す。図４（Ａ）において、試薬の１つである核酸検出用プライマー３は、第１のポリヌクレオチド部分３０１と、第２のポリヌクレオチド部分３０２と、第３のポリヌクレオチド部分３０３と、第４のポリヌクレオチド部分３０４とを有している。第４の実施形態においては、検出対象核酸１は全長がRNAである。そして、核酸検出用プライマー３の第１のポリヌクレオチド部分３０１は、検出対象核酸１の少なくとも一部と相補的な塩基配列を有している。
第４の実施形態において、第２のポリヌクレオチド部分３０２は、鋳型核酸２の一部に相補的な塩基配列を有するDNAからなるが、３´側の部分３０２ａと５´側の部分３０２ｂとに分けて設計されている。そして、３´側の部分３０２ａは、鋳型核酸２の一部に相補的であるだけでなく、検出対象核酸１の一部に対しても相補的であるように設計されている。NmeCas9を用いる場合には、このような３０２ａの部分を、１塩基以上設ける必要があり、より好ましくは、２～２０塩基設ける。鋳型核酸２には、検出対象核酸１の一部と同一の塩基配列（共通塩基配列）２０１ａが挿入されており、これにより３０２ａが鋳型核酸２の一部に相補的であるだけでなく、検出対象核酸１の一部に対しても相補的であるように設計することが可能となる。
図４（Ａ）は、検出対象核酸を含む被検試料と反応溶液とを混合した状態を示す。図４（Ａ）において、試薬の１つである核酸検出用プライマー３は、第１のポリヌクレオチド部分３０１と、第２のポリヌクレオチド部分３０２と、第３のポリヌクレオチド部分３０３と、第４のポリヌクレオチド部分３０４とを有している。第４の実施形態においては、検出対象核酸１は全長がRNAである。そして、核酸検出用プライマー３の第１のポリヌクレオチド部分３０１は、検出対象核酸１の少なくとも一部と相補的な塩基配列を有している。
第４の実施形態において、第２のポリヌクレオチド部分３０２は、鋳型核酸２の一部に相補的な塩基配列を有するDNAからなるが、３´側の部分３０２ａと５´側の部分３０２ｂとに分けて設計されている。そして、３´側の部分３０２ａは、鋳型核酸２の一部に相補的であるだけでなく、検出対象核酸１の一部に対しても相補的であるように設計されている。NmeCas9を用いる場合には、このような３０２ａの部分を、１塩基以上設ける必要があり、より好ましくは、２～２０塩基設ける。鋳型核酸２には、検出対象核酸１の一部と同一の塩基配列（共通塩基配列）２０１ａが挿入されており、これにより３０２ａが鋳型核酸２の一部に相補的であるだけでなく、検出対象核酸１の一部に対しても相補的であるように設計することが可能となる。
【0051】
図４（Ｂ）は、検出対象核酸と核酸検出用プライマーがハイブリダイズして、DNA/RNA複合体を形成した状態を示す。
図４（Ｂ）に示されるように、第１のポリヌクレオチド部分３０１と、第２のポリヌクレオチド部分の３´側の部分３０２ａは、連続的に検出対象核酸１とハイブリダイズすることにより、DNA/RNA複合体を形成する。
図４（Ｂ）に示されるように、第１のポリヌクレオチド部分３０１と、第２のポリヌクレオチド部分の３´側の部分３０２ａは、連続的に検出対象核酸１とハイブリダイズすることにより、DNA/RNA複合体を形成する。
【0052】
図４（Ｃ）は、DNA/RNA複合体の第２のポリヌクレオチド部分がヌクレアーゼによって切断される状態を示す。
図４（Ｃ）に示されるように、DNA/RNA複合体が形成されると、ヌクレアーゼ４（NmeCas9）がこれを認識して結合し、DNA/RNA複合体中のDNA鎖の５´末端から２～５塩基の距離にあるDNA鎖を切断する。切断する箇所は、tracrRNAを加えること等により若干シフトさせることが可能である。ヌクレアーゼ４によって切断する箇所は、第２のポリヌクレオチド部分にあるが、第１のポリヌクレオチド部分と第２のポリヌクレオチド部分の境界であってもよい。
図４（Ｃ）に示されるように、DNA/RNA複合体が形成されると、ヌクレアーゼ４（NmeCas9）がこれを認識して結合し、DNA/RNA複合体中のDNA鎖の５´末端から２～５塩基の距離にあるDNA鎖を切断する。切断する箇所は、tracrRNAを加えること等により若干シフトさせることが可能である。ヌクレアーゼ４によって切断する箇所は、第２のポリヌクレオチド部分にあるが、第１のポリヌクレオチド部分と第２のポリヌクレオチド部分の境界であってもよい。
【0053】
図４（Ｄ）は、核酸検出用プライマーから第１のポリヌクレオチド部分が除去された状態を示す。
第４の実施形態においては、図４（Ｃ）に示されるように、核酸検出用プライマー３が切断されているものの、第２のポリヌクレオチド部分の３´側の部分３０２ａの一部が検出対象核酸１とハイブリダイズしているため、そのままでは第１のポリヌクレオチド部分３０１は核酸検出用プライマー３から切り離されていない状態にある。しかしながら、塩基対の形成と分離は動的平衡状態にあるため、図４（Ｄ）に示されるように、核酸検出用プライマー３から第１のポリヌクレオチド部分３０１は分離することが可能である。あるいは、反応溶液を加熱することによって、第１のポリヌクレオチド部分の分離を促進することもできる。
第４の実施形態においては、図４（Ｃ）に示されるように、核酸検出用プライマー３が切断されているものの、第２のポリヌクレオチド部分の３´側の部分３０２ａの一部が検出対象核酸１とハイブリダイズしているため、そのままでは第１のポリヌクレオチド部分３０１は核酸検出用プライマー３から切り離されていない状態にある。しかしながら、塩基対の形成と分離は動的平衡状態にあるため、図４（Ｄ）に示されるように、核酸検出用プライマー３から第１のポリヌクレオチド部分３０１は分離することが可能である。あるいは、反応溶液を加熱することによって、第１のポリヌクレオチド部分の分離を促進することもできる。
【0054】
図４（Ｅ）は、核酸検出用プライマーが、鋳型核酸にハイブリダイズした状態を示し、図４（Ｆ）は、鋳型核酸がポリメラーゼにより増幅されている状態を示す。
図４（Ｅ）に示されるように、第１のポリヌクレオチド部分３０１が除去されて活性化した核酸検出用プライマー３は、鋳型核酸２にハイブリダイズする。第２のポリヌクレオチド部分の３´側の部分３０２ａは、検出対象核酸１の一部と相補的であるが、同時に鋳型核酸２の共通塩基配列２０１ａとも相補的であるように設計されているため、核酸検出用プライマー３の３´末端の塩基が鋳型核酸２と塩基対を形成する。このため、図４（Ｆ）に示すように、ポリメラーゼ５による増幅反応が可能となる。
図４（Ｅ）に示されるように、第１のポリヌクレオチド部分３０１が除去されて活性化した核酸検出用プライマー３は、鋳型核酸２にハイブリダイズする。第２のポリヌクレオチド部分の３´側の部分３０２ａは、検出対象核酸１の一部と相補的であるが、同時に鋳型核酸２の共通塩基配列２０１ａとも相補的であるように設計されているため、核酸検出用プライマー３の３´末端の塩基が鋳型核酸２と塩基対を形成する。このため、図４（Ｆ）に示すように、ポリメラーゼ５による増幅反応が可能となる。
【0055】
本発明で用いる「ポリメラーゼ」としては、DNAを鋳型としてDNAを合成するポリメラーゼ（DNA依存性DNAポリメラーゼ）や、RNAを鋳型としてDNAを合成するポリメラーゼ（DNA依存性DNAポリメラーゼ）を用いることができるが、核酸増幅の容易性からDNA依存性DNAポリメラーゼを使用することが好ましい。
【0056】
本発明の核酸検出方法の前記ｉ）の工程は、検出対象核酸を含む被検試料と、核酸検出用プライマーとを接触させることにより、検出対象核酸と核酸検出用プライマーとをハイブリダイズさせて、DNA/RNA複合体を形成する工程である。
ここで、「ハイブリダイズ」とは、検出対象核酸の塩基と第１のポリヌクレオチド部分の塩基とが水素結合により結合し、検出対象核酸と第１のポリヌクレオチド部分とが複合体を形成することである。
検出対象核酸がRNAである場合には、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がDNAであり、検出対象核酸がDNAである場合には、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がRNAであるため、検出対象核酸と第１のポリヌクレオチド部分がハイブリダイズすると、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端において、DNA/RNA複合体が形成される。
ここで、「ハイブリダイズ」とは、検出対象核酸の塩基と第１のポリヌクレオチド部分の塩基とが水素結合により結合し、検出対象核酸と第１のポリヌクレオチド部分とが複合体を形成することである。
検出対象核酸がRNAである場合には、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がDNAであり、検出対象核酸がDNAである場合には、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がRNAであるため、検出対象核酸と第１のポリヌクレオチド部分がハイブリダイズすると、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端において、DNA/RNA複合体が形成される。
【0057】
検出対象核酸を含む被検試料と、核酸検出用プライマーとを接触させる条件は、両者がハイブリダイズでき、DNA/RNA複合体を形成できる条件であれば特に限定されるものではないが、相同性の高いものだけがハイブリダイズできるような反応条件とすることが好ましい。
そのような反応条件は、検出対象核酸の塩基配列と第１のポリヌクレオチド部分の塩基配列を考慮した上で、温度、塩濃度、pH、添加する有機溶媒等の条件を設定することができる。
そのような反応条件は、検出対象核酸の塩基配列と第１のポリヌクレオチド部分の塩基配列を考慮した上で、温度、塩濃度、pH、添加する有機溶媒等の条件を設定することができる。
【0058】
本発明の核酸検出方法の前記ii）の工程は、DNA/RNA複合体の少なくとも一部をヌクレアーゼで分解することにより、核酸検出用プライマーから第１のポリヌクレオチド部分を除去する工程である。
ここで、「DNA/RNA複合体の少なくとも一部」とは、その部分がヌクレアーゼで分解されることにより、核酸検出用プライマーから第１のポリヌクレオチド部分が除去できる部分であればよい。例えば、エンドヌクレアーゼを用いて第１のポリヌクレオチド部分を分解する場合には、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端におけるDNA/RNA複合体が分解されればよい。
また、「分解」とは、少なくともヌクレオチド骨格の少なくとも一部の共有結合が分解されることにより、ヌクレオチド骨格が切断される分解であればよい。
ここで、「DNA/RNA複合体の少なくとも一部」とは、その部分がヌクレアーゼで分解されることにより、核酸検出用プライマーから第１のポリヌクレオチド部分が除去できる部分であればよい。例えば、エンドヌクレアーゼを用いて第１のポリヌクレオチド部分を分解する場合には、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端におけるDNA/RNA複合体が分解されればよい。
また、「分解」とは、少なくともヌクレオチド骨格の少なくとも一部の共有結合が分解されることにより、ヌクレオチド骨格が切断される分解であればよい。
【0059】
ヌクレアーゼによる分解を行う反応条件としては、DNA/RNA複合体の第１のポリヌクレオチド部分が分解される反応条件であれば、特に限定されないが、使用するヌクレアーゼの種類に応じた至適温度、至適塩濃度、至適pHにおいて、必要とする金属イオン等を含有する溶媒を用いて反応を行うことが好ましい。
【0060】
本発明の核酸検出方法の前記iii）の工程は、核酸検出用プライマーを鋳型核酸にハイブリダイズさせて、ポリメラーゼにより鋳型核酸を増幅する反応を行う工程である。
ここで、鋳型核酸を増幅する反応は、プライマーを必要とする核酸増幅法であれば特に限定されず、これらに限定されるわけではないが、例えば、PCR法、LAMP法、SDA法等を用いて行うことができる。
ここで、鋳型核酸を増幅する反応は、プライマーを必要とする核酸増幅法であれば特に限定されず、これらに限定されるわけではないが、例えば、PCR法、LAMP法、SDA法等を用いて行うことができる。
【0061】
PCR（Polymerase Chain Reaction）法では、鋳型核酸に相補的で、鋳型核酸のセンス鎖とアンチセンス鎖にハイブリダイズする２本のプライマーを設計して用いる。そして、1)二本鎖核酸を加熱して一本鎖核酸へと変性させる熱変性を行い、2）プライマーを鋳型核酸にハイブリダイズさせるアニーリングを行い、3）プライマーを起点としてポリメラーゼにより鋳型核酸を鋳型として核酸を合成する伸長反応を行い、1)～3）の工程を繰り返し行うことで、プライマーに挟まれた領域の核酸を増幅することができる。
【0062】
本発明の核酸検出方法においてPCR法を用いる場合には、本発明の核酸検出用プライマーを一方のプライマーとして用い、もう一方のプライマーは、鋳型核酸の塩基配列に基づき設計して用いる。
PCR法のアニーリングにおいては、本発明の核酸検出用プライマーの第２のポリヌクレオチド部分の塩基配列やもう一方のプライマーの塩基配列に基づいて、Tm（融解温度）を算出し、アニーリングの温度はTmよりも低い温度に設定することが好ましい。
また、伸長反応は、通常６７～７７℃程度で行い、熱変成は、通常９０～９８℃程度で行う。
アニーリング、伸長反応、及び熱変成は、それぞれ異なる温度で行うため、これらの温度の移行を速やかに行うための機器として、通常、サーマルサイクラーを用いる。
PCR法には、通常、耐熱性DNAポリメラーゼを用い、その場合には、４種類の基質（dATP、dGTP、dCTP、dTTP）と2価のマグネシウムイオンを含み、至適pHを保つ緩衝液となる反応バッファーを用いる。
PCR法のアニーリングにおいては、本発明の核酸検出用プライマーの第２のポリヌクレオチド部分の塩基配列やもう一方のプライマーの塩基配列に基づいて、Tm（融解温度）を算出し、アニーリングの温度はTmよりも低い温度に設定することが好ましい。
また、伸長反応は、通常６７～７７℃程度で行い、熱変成は、通常９０～９８℃程度で行う。
アニーリング、伸長反応、及び熱変成は、それぞれ異なる温度で行うため、これらの温度の移行を速やかに行うための機器として、通常、サーマルサイクラーを用いる。
PCR法には、通常、耐熱性DNAポリメラーゼを用い、その場合には、４種類の基質（dATP、dGTP、dCTP、dTTP）と2価のマグネシウムイオンを含み、至適pHを保つ緩衝液となる反応バッファーを用いる。
【0063】
LAMP法は、本件出願人が開発した核酸増幅法であり（特許第３３１３３５８号等）、鎖置換型ポリメラーゼを使用し、等温での核酸増幅反応を可能とする方法である。
LAMP法では、インナープライマーのペア（FIPとBIP）と、アウタープライマーのペア（F3とB3）を使用し、この他に、ループプライマーのペア（LFとLB）を用いることができる。
LAMP法の核酸増幅反応の概要を図８及び９に模式的に示す。
LAMP法では、インナープライマーのペア（FIPとBIP）と、アウタープライマーのペア（F3とB3）を使用し、この他に、ループプライマーのペア（LFとLB）を用いることができる。
LAMP法の核酸増幅反応の概要を図８及び９に模式的に示す。
【0064】
図８の（１）に示されるように、鋳型核酸の片側鎖に存在する任意配列F1cとその３´側に存在する任意配列F2cを選択したとき、インナープライマー（FIP）は、F2cに相補的な配列F2とF1cと同一な配列F1ｃとを３´から５´に向けてこの順に有するプライマーである。
インナープライマー（BIP）は、図８の（６）に示されるように、鋳型核酸のもう一方の鎖に存在する任意配列B1cとその３´側に存在する任意配列B2cを選択したとき、B2cに相補的な配列B2とB1cと同一な配列B1cとを３´から５´に向けてこの順に有するプライマーである。
インナープライマー（BIP）は、図８の（６）に示されるように、鋳型核酸のもう一方の鎖に存在する任意配列B1cとその３´側に存在する任意配列B2cを選択したとき、B2cに相補的な配列B2とB1cと同一な配列B1cとを３´から５´に向けてこの順に有するプライマーである。
【0065】
鋳型核酸は、二本鎖核酸となっている場合でも６５℃付近では動的平衡状態にあるため、いずれかのプライマーが鋳型核酸の相補的な部分にアニールし、鎖置換型ポリメラーゼを使用することで、プライマーを起点とした伸長反応により片側の鎖が剥がされて一本鎖状態となる。このため、LAMP法では、PCR法のようにあらかじめ二本鎖核酸を一本鎖核酸に熱変性しておく必要がない。そして、図８の（１）に示すように、一本鎖となった鋳型核酸にインナープライマーをアニールさせて、伸長反応を開始することができる。そして、図８の（２）に示すように、鋳型核酸と相補的な核酸が合成される。
本発明の核酸検出方法において、核酸検出用プライマーをLAMP法のインナープライマーとする場合には、第２のポリヌクレオチド部分がF2又はB2となるように設計するとともに、さらに第３のポリヌクレオチド部分としてF1c又はB1cを有するように設計する。
本発明の核酸検出方法において、核酸検出用プライマーをLAMP法のインナープライマーとする場合には、第２のポリヌクレオチド部分がF2又はB2となるように設計するとともに、さらに第３のポリヌクレオチド部分としてF1c又はB1cを有するように設計する。
【0066】
アウタープライマーとは、図８の（３）及び（６）に示されるように、鋳型核酸においてインナープライマーと相補的なF2c又はB2cよりも外側（３´側）に存在する任意配列F3c又はB3cと相補的な、F3又はB3の配列を有するプライマーである。
図８の（３）に示されるように、インナープライマー（FIP）の外側にアウタープライマー（F3）がアニールする。次に、アウタープライマー（F3）を起点として、鎖置換型ポリメラーゼによって鋳型核酸と相補的な核酸が合成され、先にインナープライマー（FIP）を起点として合成されている核酸を剥がしながら核酸が合成されていく。これにより、図８の（４）に示されるように、アウタープライマー（F3）を起点として合成された二本鎖核酸が生成する。
図８の（３）に示されるように、インナープライマー（FIP）の外側にアウタープライマー（F3）がアニールする。次に、アウタープライマー（F3）を起点として、鎖置換型ポリメラーゼによって鋳型核酸と相補的な核酸が合成され、先にインナープライマー（FIP）を起点として合成されている核酸を剥がしながら核酸が合成されていく。これにより、図８の（４）に示されるように、アウタープライマー（F3）を起点として合成された二本鎖核酸が生成する。
【0067】
インナープライマー（FIP）を起点として合成された核酸は、アウタープライマー（F3）を起点とした核酸合成により剥がされて一本鎖となるが、図８の（５）に示されるように、５´末端側に相補的な領域F1cとF1を有する。このため、図８の（６）に示されるように、自己アニールを起こしてループを形成する。
図８の（６）に示されるように、ループを形成した核酸に対しては、インナープライマー（BIP）がアニールし、これを起点として相補的な核酸の合成が行われる。この過程で、ループは剥がされて伸びた状態となる。さらに、インナープライマー（BIP）の外側にアウタープライマー（B3）がアニールし、これを起点として鎖置換型ポリメラーゼによって相補的な核酸が合成され、先にインナープライマー（BIP）を起点として合成されている核酸を剥がしながら核酸が伸長いく。これにより、図８の（７）に示されるように、アウタープライマー（B3）を起点として合成された二本鎖核酸が生成する。
図８の（６）に示されるように、ループを形成した核酸に対しては、インナープライマー（BIP）がアニールし、これを起点として相補的な核酸の合成が行われる。この過程で、ループは剥がされて伸びた状態となる。さらに、インナープライマー（BIP）の外側にアウタープライマー（B3）がアニールし、これを起点として鎖置換型ポリメラーゼによって相補的な核酸が合成され、先にインナープライマー（BIP）を起点として合成されている核酸を剥がしながら核酸が伸長いく。これにより、図８の（７）に示されるように、アウタープライマー（B3）を起点として合成された二本鎖核酸が生成する。
【0068】
本発明の核酸検出方法においては、核酸検出用プライマーをLAMP法のアウタープライマーとして用いることができ、その場合には、第２のポリヌクレオチド部分がF3又はB3となるように設計する。
【0069】
図８の（６）に示されるように、インナープライマー（BIP）を起点として合成され核酸は、アウタープライマー（B3）を起点とする合成により剥がされて、一本鎖の核酸となる。この核酸は、図８の（８）に示すように、３´末端側に相補的な領域F1cとF1を有し、５´末端側に相補的な領域B1cとB1を有するため、両末端においてループを形成し、ダンベル型の核酸となる。
【0070】
ダンベル型の核酸は、指数関数的な核酸増幅を引き起こすための起点となる構造となる。
まず、図９の（８）に示されるように、ダンベル型の核酸の３´末端のF1を起点として自己を鋳型とした核酸合成が行われ、これにより、５´末端のループが剥がされて伸びる。さらに、３´末端側にあるループのF2cは一本鎖であるため、インナープライマー（FIP）又はループプライマーがアニールすることができ、FIPのF2を起点とした核酸合成が行われ、先にF1を起点として合成された核酸を剥がしながら核酸が伸長していく。
まず、図９の（８）に示されるように、ダンベル型の核酸の３´末端のF1を起点として自己を鋳型とした核酸合成が行われ、これにより、５´末端のループが剥がされて伸びる。さらに、３´末端側にあるループのF2cは一本鎖であるため、インナープライマー（FIP）又はループプライマーがアニールすることができ、FIPのF2を起点とした核酸合成が行われ、先にF1を起点として合成された核酸を剥がしながら核酸が伸長していく。
【0071】
次に、図９の（９）に示されるように、FIPを起点として合成された核酸によりよって剥がされて一本鎖となった、F1を起点として合成された核酸は、その３´末端側に相補的な領域を有するため、自己アニールしてループを形成する。このループの３´末端のB1を起点として、自己を鋳型とした核酸合成が始まる。そして、FIPを起点として合成された核酸を剥がしながら伸長し、図９の（１０）に示される構造となる。
上記の過程によって、FIPを起点として合成された核酸は剥がされて一本鎖となるが、図９の（１１）に示されるように、その両端に相補的な領域を有するため、両末端においてループを形成しダンベル型の核酸となる。
上記の過程によって、FIPを起点として合成された核酸は剥がされて一本鎖となるが、図９の（１１）に示されるように、その両端に相補的な領域を有するため、両末端においてループを形成しダンベル型の核酸となる。
【0072】
図９の（１１）のダンベル型核酸の構造は、（８）の構造と全く相補的な構造である。したがって、（８）のダンベル型核酸と同様に、３´末端のB1を起点として自己を鋳型とした核酸合成が行われ、さらに、３´末端側にあるループのB2cにインナープライマー（BIP）又はループプライマーがアニールして、BIPのB2を起点とした核酸合成が行われ、先にB1を起点として合成された核酸を剥がしながら核酸が伸長していく。これにより、（８）、（９）、（１１）と同様の過程を経て、再び（８）の核酸が生成される。
このような核酸合成のサイクルを繰り返す中で、（１０）のような核酸が次々と合成されていく。
このような核酸合成のサイクルを繰り返す中で、（１０）のような核酸が次々と合成されていく。
【0073】
（１０）の核酸においては、一本鎖となっているB2cにBIP又はルーフプライマーがアニールして、二本鎖部分を剥がしながら核酸を合成し、ループを有する核酸が生成し、さらにループを起点として核酸が合成される過程を繰り返すことにより、同一鎖上に互いに相補的な配列を繰り返す構造の増幅産物がいろいろなサイズで生成される。
LAMP法では、以上のような増幅反応により、核酸が指数関数的に増幅される。
LAMP法では、以上のような増幅反応により、核酸が指数関数的に増幅される。
【0074】
LAMP法には、通常、鎖置換DNAポリメラーゼを用い、その場合には、４種類の基質（dATP、dGTP、dCTP、dTTP）と2価のマグネシウムイオンを含み、至適pHを保つ緩衝液となる反応バッファーを用いる。
LAMP法の反応温度は、通常５０～７０℃、好ましくは５５～７０℃である。また、反応時間は、通常１分～１０時間、好ましくは５分～４時間である。
LAMP法の反応温度は、通常５０～７０℃、好ましくは５５～７０℃である。また、反応時間は、通常１分～１０時間、好ましくは５分～４時間である。
【0075】
SDA（Standard Displacement Amplification）法は、制限酵素と鎖置換ポリメラーゼを用いて核酸を増幅する方法である。SDA法では、プライマーに予め制限酵素認識配列を挿入しておくことによって、制限酵素処理によって生じたニックが相補鎖合成の起点を与えて、そこから先に合成された核酸を剥がしながら核酸の伸長反応を行うため、PCR法のように温度を変化させることなく、等温で核酸を増幅することができる。
【0076】
本発明の核酸検出方法においては、鋳型核酸の増幅を指標として、検出対象核酸の存在を検出することができる。
鋳型核酸の増幅を確認する方法は、これらに限定されるわけではないが、例えば、増幅された核酸をインターカレーターと反応させて染色することにより光学的に検出することができ、また、プライマーを蛍光色素で予め標識しておいて、増幅された核酸に蛍光色素を取り込ませることにより光学的に検出することができる。また、増幅された核酸を確認するにあたっては、電気泳動により分子量の大きな増幅核酸を分離してもよく、また、蛍光色素によるFRET（蛍光共鳴エネルギー移動）を利用して増幅核酸の検出を行ってもよい。
インターカレーターとしては、これらに限定されるわけではないが、例えば、エチジウムブロマイド、SYBR Green（登録商標）、Pico Green（登録商標）のような二本鎖核酸に特異的に結合するインターカレーターを用いることができる。
鋳型核酸の増幅を確認する方法は、これらに限定されるわけではないが、例えば、増幅された核酸をインターカレーターと反応させて染色することにより光学的に検出することができ、また、プライマーを蛍光色素で予め標識しておいて、増幅された核酸に蛍光色素を取り込ませることにより光学的に検出することができる。また、増幅された核酸を確認するにあたっては、電気泳動により分子量の大きな増幅核酸を分離してもよく、また、蛍光色素によるFRET（蛍光共鳴エネルギー移動）を利用して増幅核酸の検出を行ってもよい。
インターカレーターとしては、これらに限定されるわけではないが、例えば、エチジウムブロマイド、SYBR Green（登録商標）、Pico Green（登録商標）のような二本鎖核酸に特異的に結合するインターカレーターを用いることができる。
【0077】
２． 核酸検出用プライマー
本発明の第２の発明の核酸検出用プライマーは、目的とする核酸の検出に用いる試薬であり、前記１．に記載した核酸検出用プライマーを用いることができる。
核酸検出用プライマーは、バッファー溶液に溶解された状態で製品としてもよく、また、乾燥された状態で製品としてもよい。
バッファー溶液については、核酸検出用プライマーを安定に溶解することができる組成となっていれば、どのような溶液であってもよい。例えば、これらに限定されるわけではないが、トリス塩酸を溶解したバッファーや、トリス塩酸とEDTAを溶解したTEバッファー等を用いることができる。
本発明の第２の発明の核酸検出用プライマーは、目的とする核酸の検出に用いる試薬であり、前記１．に記載した核酸検出用プライマーを用いることができる。
核酸検出用プライマーは、バッファー溶液に溶解された状態で製品としてもよく、また、乾燥された状態で製品としてもよい。
バッファー溶液については、核酸検出用プライマーを安定に溶解することができる組成となっていれば、どのような溶液であってもよい。例えば、これらに限定されるわけではないが、トリス塩酸を溶解したバッファーや、トリス塩酸とEDTAを溶解したTEバッファー等を用いることができる。
【0078】
３． 核酸検出用キット
本発明の第３の発明の核酸検出用キットは、少なくとも、
Ａ）増幅されて検出の指標となる鋳型核酸と、
Ｂ）検出対象核酸の少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する第１のポリヌクレオチド部分と、鋳型核酸の一部に相補的な塩基配列を有する第２のポリヌクレオチド部分とを含む核酸検出用プライマーであって、
検出対象核酸がRNAである場合には、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がDNAであり、検出対象核酸がDNAである場合には、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がRNAであり、
第１のポリヌクレオチド部分の５´側に第２のポリヌクレオチド部分が連結している、
核酸検出用プライマーと、
Ｃ）DNA/RNA複合体を分解するヌクレアーゼと
を試薬として含むことを特徴とする。
本発明の核酸検出用キットは、市販のポリメラーゼと組み合わせて使用することができるが、本発明の核酸検出用キット自体にさらに
Ｄ）ポリメラーゼ
を試薬として含むことが好ましい。
これらのＡ）～Ｄ）の試薬については、前記１．及び２．に記載した試薬と同一のものを用いることができる。
本発明の第３の発明の核酸検出用キットは、少なくとも、
Ａ）増幅されて検出の指標となる鋳型核酸と、
Ｂ）検出対象核酸の少なくとも一部と相補的な塩基配列を有する第１のポリヌクレオチド部分と、鋳型核酸の一部に相補的な塩基配列を有する第２のポリヌクレオチド部分とを含む核酸検出用プライマーであって、
検出対象核酸がRNAである場合には、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がDNAであり、検出対象核酸がDNAである場合には、少なくとも第１のポリヌクレオチド部分の５´末端がRNAであり、
第１のポリヌクレオチド部分の５´側に第２のポリヌクレオチド部分が連結している、
核酸検出用プライマーと、
Ｃ）DNA/RNA複合体を分解するヌクレアーゼと
を試薬として含むことを特徴とする。
本発明の核酸検出用キットは、市販のポリメラーゼと組み合わせて使用することができるが、本発明の核酸検出用キット自体にさらに
Ｄ）ポリメラーゼ
を試薬として含むことが好ましい。
これらのＡ）～Ｄ）の試薬については、前記１．及び２．に記載した試薬と同一のものを用いることができる。
【0079】
また、本発明の核酸検出用キットには、
ｉ）検出対象核酸を含む被検試料と、核酸検出用プライマーとを接触させることにより、検出対象核酸と核酸検出用プライマーとをハイブリダイズさせて、DNA/RNA複合体を形成し、
ii）DNA/RNA複合体の少なくとも一部をヌクレアーゼで分解することにより、核酸検出用プライマーから第１のポリヌクレオチド部分を除去し、
iii）核酸検出用プライマーを鋳型核酸にハイブリダイズさせて、鋳型核酸を増幅する反応を行う
ことを記載した説明書を含ませることができる。
ｉ）検出対象核酸を含む被検試料と、核酸検出用プライマーとを接触させることにより、検出対象核酸と核酸検出用プライマーとをハイブリダイズさせて、DNA/RNA複合体を形成し、
ii）DNA/RNA複合体の少なくとも一部をヌクレアーゼで分解することにより、核酸検出用プライマーから第１のポリヌクレオチド部分を除去し、
iii）核酸検出用プライマーを鋳型核酸にハイブリダイズさせて、鋳型核酸を増幅する反応を行う
ことを記載した説明書を含ませることができる。
【0080】
以下、実施例により本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
【実施例1】
【0081】
（短鎖DNAの検出）
本発明の核酸検出法を用いて短鎖DNAの検出を行った。
検出対象核酸として、MIR21遺伝子によってコードされる塩基配列を有するDNA（miR-21）を用い、鋳型核酸として、ARITA人工遺伝子を用いた。
核酸検出用プライマーとして、miR-21の一部に相補的な塩基配列を有するRNAを第１のポリヌクレオチド部分とし、ARITA人工遺伝子の一部に相補的な塩基配列を有するDNAを第２のポリヌクレオチド部分とし、さらにLAMP法のインナープライマーとするための第３のポリヌクレオチド部分を有するART7-BIP-Rを設計した。
また、ART7-BIP-Rにおいて、第１のポリヌクレオチド部分をDNA配列に置換したART7-BIP-Dを、対照とするプライマーとして設計した。
さらに、ART7-BIP-Rにおいて、第１のポリヌクレオチド部分が除去されているART7-BIPを、対照とするプライマーとして設計した。
さらに、LAMP法におけるもう一つのインナープライマーとしてART7-FIPを設計し、アウタープライマーとしてART7-F3及びART7-B3を設計し、ループプライマーとしてART7-LF及びART7-LBを設計した。
ヌクレアーゼとしては、RNase（Hybridase（登録商標） Thermostable RNase H、epicentre社製）を用い、ポリメラーゼとしては、Bst-LF（Bst DNA Polymerase, Large Fragment、New England Biolabs社製）を用いた。
短鎖DNAの検出の実験に用いた各プライマーの配列等を図５に示す。
図５において、miR-21と、ART7-BIP-D及びART7-BIP-Rとで相補的な配列となっている部分を下線で示す。
本発明の核酸検出法を用いて短鎖DNAの検出を行った。
検出対象核酸として、MIR21遺伝子によってコードされる塩基配列を有するDNA（miR-21）を用い、鋳型核酸として、ARITA人工遺伝子を用いた。
核酸検出用プライマーとして、miR-21の一部に相補的な塩基配列を有するRNAを第１のポリヌクレオチド部分とし、ARITA人工遺伝子の一部に相補的な塩基配列を有するDNAを第２のポリヌクレオチド部分とし、さらにLAMP法のインナープライマーとするための第３のポリヌクレオチド部分を有するART7-BIP-Rを設計した。
また、ART7-BIP-Rにおいて、第１のポリヌクレオチド部分をDNA配列に置換したART7-BIP-Dを、対照とするプライマーとして設計した。
さらに、ART7-BIP-Rにおいて、第１のポリヌクレオチド部分が除去されているART7-BIPを、対照とするプライマーとして設計した。
さらに、LAMP法におけるもう一つのインナープライマーとしてART7-FIPを設計し、アウタープライマーとしてART7-F3及びART7-B3を設計し、ループプライマーとしてART7-LF及びART7-LBを設計した。
ヌクレアーゼとしては、RNase（Hybridase（登録商標） Thermostable RNase H、epicentre社製）を用い、ポリメラーゼとしては、Bst-LF（Bst DNA Polymerase, Large Fragment、New England Biolabs社製）を用いた。
短鎖DNAの検出の実験に用いた各プライマーの配列等を図５に示す。
図５において、miR-21と、ART7-BIP-D及びART7-BIP-Rとで相補的な配列となっている部分を下線で示す。
【0082】
核酸を検出するための実験工程を図６に示す。
まず、200pmolのART7-BIP、ART7-BIP-D、及びART7-BIP-Rを、それぞれ50pmolのmiR-21と混合し、熱安定性RNase Hで処理した後、その他のLAMP法用プライマー（ART7-F3、ART7-B3、ART7-FIP、ART7-LF、及びART7-LB）とARITA人工遺伝子を加えて、LAMP法による核酸増幅反応を行った。また、対照として、miR-21ではなくDW（Distilled Water）を用いて、ART7-BIP、ART7-BIP-D、及びART7-BIP-Rと、それぞれ混合し、それらを熱安定性RNase Hで処理した後、その他のLAMP法用プライマーとARITA人工遺伝子を加えて、LAMP法による核酸増幅反応を行った。
熱安定性RNase H処理においては、KClやMgSO４を含む反応液を用いて、４０℃において３０分間酵素処理した。酵素反応後、９５℃で１０分間酵素失活処理を行った。
LAMP法の核酸増幅反応は、KCl、MgSO４、dNTPs及びBst-LFを含む反応液を用いて、６５℃において６０分間行った。
まず、200pmolのART7-BIP、ART7-BIP-D、及びART7-BIP-Rを、それぞれ50pmolのmiR-21と混合し、熱安定性RNase Hで処理した後、その他のLAMP法用プライマー（ART7-F3、ART7-B3、ART7-FIP、ART7-LF、及びART7-LB）とARITA人工遺伝子を加えて、LAMP法による核酸増幅反応を行った。また、対照として、miR-21ではなくDW（Distilled Water）を用いて、ART7-BIP、ART7-BIP-D、及びART7-BIP-Rと、それぞれ混合し、それらを熱安定性RNase Hで処理した後、その他のLAMP法用プライマーとARITA人工遺伝子を加えて、LAMP法による核酸増幅反応を行った。
熱安定性RNase H処理においては、KClやMgSO４を含む反応液を用いて、４０℃において３０分間酵素処理した。酵素反応後、９５℃で１０分間酵素失活処理を行った。
LAMP法の核酸増幅反応は、KCl、MgSO４、dNTPs及びBst-LFを含む反応液を用いて、６５℃において６０分間行った。
【0083】
短鎖DNAの検出にあたり、LAMP法による増幅が確認できるまでの時間を計測した結果を図７に示す。
図７に示されるように、本発明の核酸検出用プライマーであるART7-BIP-Rを使用した場合には、検出対象核酸であるmiR-21が存在するときに、正常な核酸増幅反応が生じて、短時間で増幅が確認でき、miR-21が存在しない場合には、増幅時間が遅く、特異的な増幅は確認されなかった。
通常のインナープライマーであるART7-BIPを用いた場合には、miR-21の有無に関わらず、正常な核酸増幅反応が生じて、短時間で増幅が確認できた。
また、第１のポリヌクレオチド部分としてRNAではなくDNAを有するART-BIP-Dを用いた場合には、miR-21の有無に関わらず増幅時間が遅く、特異的な増幅は確認されなかった。
図７に示されるように、本発明の核酸検出用プライマーであるART7-BIP-Rを使用した場合には、検出対象核酸であるmiR-21が存在するときに、正常な核酸増幅反応が生じて、短時間で増幅が確認でき、miR-21が存在しない場合には、増幅時間が遅く、特異的な増幅は確認されなかった。
通常のインナープライマーであるART7-BIPを用いた場合には、miR-21の有無に関わらず、正常な核酸増幅反応が生じて、短時間で増幅が確認できた。
また、第１のポリヌクレオチド部分としてRNAではなくDNAを有するART-BIP-Dを用いた場合には、miR-21の有無に関わらず増幅時間が遅く、特異的な増幅は確認されなかった。
【産業上の利用可能性】
【0084】
本発明の核酸検出方法、核酸検出用プライマー、及び核酸検出キットは、臨床検査、臨床検査用試薬、及び研究試薬の産業分野で有用である。
【符号の説明】
【0085】
１ 検出対象核酸
２ 鋳型核酸
２０１ａ 共通塩基配列
３ 核酸検出用プライマー
３０１ 第１のポリヌクレオチド部分
３０２ 第２のポリヌクレオチド部分
３０２ａ 第２のポリヌクレオチド部分の３´側の部分
３０２ｂ 第２のポリヌクレオチド部分の５´側の部分
３０３ 第３のポリヌクレオチド部分
３０４ 第４のポリヌクレオチド部分
４ ヌクレアーゼ
５ ポリメラーゼ
２ 鋳型核酸
２０１ａ 共通塩基配列
３ 核酸検出用プライマー
３０１ 第１のポリヌクレオチド部分
３０２ 第２のポリヌクレオチド部分
３０２ａ 第２のポリヌクレオチド部分の３´側の部分
３０２ｂ 第２のポリヌクレオチド部分の５´側の部分
３０３ 第３のポリヌクレオチド部分
３０４ 第４のポリヌクレオチド部分
４ ヌクレアーゼ
５ ポリメラーゼ
【図1】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
【配列表】