(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B2)
(11)【特許番号】
(24)【登録日】2022-11-08
(45)【発行日】2022-11-16
(54)【発明の名称】カルボキシル末端アミノ酸の分析方法
(51)【国際特許分類】
G01N 27/62 20210101AFI20221109BHJP
【ＦＩ】
G01N27/62 V
【請求項の数】
11
(21)【出願番号】P 2017042551
(22)【出願日】2017-03-07
(65)【公開番号】P2018146423
(43)【公開日】2018-09-20
【審査請求日】2020-02-04
【前置審査】
(73)【特許権者】
【識別番号】000253503
【氏名又は名称】キリンホールディングス株式会社
(74)【代理人】
【識別番号】100107342
【弁理士】
【氏名又は名称】横田 修孝
(74)【代理人】
【識別番号】100155631
【弁理士】
【氏名又は名称】榎 保孝
(74)【代理人】
【識別番号】100137497
【弁理士】
【氏名又は名称】大森 未知子
(74)【代理人】
【識別番号】100207907
【弁理士】
【氏名又は名称】赤羽 桃子
(72)【発明者】
【氏名】谷口 慈将
(72)【発明者】
【氏名】福島 祐子
【審査官】吉田 将志
(56)【参考文献】
【文献】米国特許出願公開第２００８／００３２３２２（ＵＳ，Ａ１）
【文献】特開昭６３－１９６８５７（ＪＰ，Ａ）
【文献】特開２００５－１２１３８０（ＪＰ，Ａ）
【文献】特開平０７－２０３９９３（ＪＰ，Ａ）
【文献】特表２０１０－５０８５０３（ＪＰ，Ａ）
【文献】中国特許出願公開第１０１１７３９２６（ＣＮ，Ａ）
【文献】特開２００５－０５３９２９（ＪＰ，Ａ）
【文献】TAKAO et al.，Facile Assignment of Sequence Ions of a Peptide Labelled with 18O at the Carboxyl Terminus，RAPID COMMUNICATIONS IN MASS SPECTROMETRY，1991年，Vol.5/Iss.7，PP.312-315
【文献】TAKAO et al.，Facile Assignment of Sequence Ions of a Peptide Labelled with 18O at the Carboxyl Terminus，RAPID COMMUNICATIONS IN MASS SPECTROMETRY，1991年，Vol.5/Iss.7，PP.312-315
(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)
Ｇ０１Ｎ ２７／６０ － Ｇ０１Ｎ ２７／７０
Ｇ０１Ｎ ２７／９２
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸を分析する方法であって、（ａ）同位体標識溶液中の１種または複数種のポリペプチドをカルボキシペプチダーゼにより酵素処理する工程と
（ｂ）同位体で標識されていないアミノ酸を前記ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸として検出する工程と
を含んでなる、方法。
【請求項2】
ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸を同定する、請求項１に記載の方法。
【請求項3】
工程（ｂ）において、同位体で標識されていないアミノ酸を前記ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸であると同定する、請求項２に記載の方法。
【請求項4】
ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸を定量する、請求項１に記載の方法。
【請求項5】
工程（ｂ）において、同位体で標識されていないアミノ酸を前記ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸として定量する、請求項４に記載の方法。
【請求項6】
工程（ｂ）において、酵素処理により遊離したアミノ酸を質量分析計で分析する、請求項１～５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項7】
同位体が酸素原子の同位体である、請求項１～６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項8】
酸素原子の同位体が１８Ｏである、請求項７に記載の方法。
【請求項9】
同位体標識溶液がＨ２
１８Ｏである、請求項１～８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項10】
ポリペプチドが構造未知のものである、請求項１～９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項11】
酵素処理時間が３０分以上である、請求項１～１０のいずれか一項に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸の分析方法に関する。
【背景技術】
【0002】
ポリペプチドのカルボキシル末端（以下、「Ｃ末端」ということがある）は、ｍＲＮＡからの翻訳後、種々のプロセシングを受け、切断・修飾などがなされることが知られている。また、タンパク質やペプチドの香味特性はＣ末端のアミノ酸に依存しうることが知られている。このため、ポリペプチドのＣ末端のアミノ酸を分析することは、生体中のポリペプチドの挙動や、食品中のタンパク質やペプチドの香味の分析において重要な意義を有する。
【0003】
これまでに開発されてきたポリペプチドのＣ末端アミノ酸残基やＣ末端付近のアミノ酸配列の分析技術としては、Ｃ末端アミノ酸を誘導体化し、分離・同定することによりＣ末端からのアミノ酸配列を順次決定する、酵素を用いない化学的方法（特許文献１）や、Ｃ末端アミノ酸をラセミ化し、断片化した後に、カルボキシペプチダーゼ処理をしてＣ末端断片を分離する技術（特許文献２）が知られている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0004】
【文献】特開平１０－２９３１３０号公報
【文献】特開平７－２０３９９３号公報
【発明の概要】
【0005】
しかしながら、上記のようなポリペプチドのＣ末端の重要性にも関わらず、当該Ｃ末端のアミノ酸の種類と量を評価できる方法はこれまでに知られていなかった。
【0006】
本発明者らは、ポリペプチドのＣ末端のアミノ酸の分析方法について鋭意検討を重ねたところ、安定同位体標識された溶液中で分析対象のポリペプチドをカルボキシペプチダーゼで分解することによって、Ｃ末端のアミノ酸を同定、かつ、定量できることを見出した。本発明者らはまた、分析対象がポリペプチドの混合物であっても、Ｃ末端アミノ酸の存在比を定量的に分析できることを見出した。本発明はこれらの知見に基づくものである。
【0007】
すなわち、本発明によれば、ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸の新規分析方法を提供することを目的とする。
【0008】
本発明によれば以下の発明が提供される。
［１］ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸を分析する方法であって、
（ａ）同位体標識溶液中の１種または複数種のポリペプチドをカルボキシペプチダーゼにより酵素処理する工程と
（ｂ）同位体で標識されていないアミノ酸をカルボキシル末端のアミノ酸として検出する工程と
を含んでなる、方法。
［２］ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸を同定する、上記［１］に記載の方法。
［３］工程（ｂ）において、同位体で標識されていないアミノ酸をカルボキシル末端のアミノ酸であると同定する、上記［２］に記載の方法。
［４］ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸を定量する、上記［１］に記載の方法。
［５］工程（ｂ）において、同位体で標識されていないアミノ酸をカルボキシル末端のアミノ酸として定量する、上記［４］に記載の方法。
［６］工程（ｂ）において、酵素処理により遊離したアミノ酸を質量分析計で分析する、上記［１］～［５］のいずれかに記載の方法。
［７］同位体が酸素原子の同位体である、上記［１］～［６］のいずれかに記載の方法。
［８］酸素原子の同位体が１８Ｏである、上記［７］に記載の方法。
［９］同位体標識溶液がＨ２ １８Ｏである、上記［１］～［８］のいずれかに記載の方法。
［１０］ポリペプチドが構造未知のものである、上記［１］～［９］のいずれかに記載の方法。
［１１］酵素処理時間が３０分以上である、上記［１］～［１０］のいずれかに記載の方法。
［１２］同位体標識溶液からなる、ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸の分析用試薬。
［１３］同位体標識溶液がＨ２ １８Ｏである、上記［１２］に記載の試薬。
［１］ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸を分析する方法であって、
（ａ）同位体標識溶液中の１種または複数種のポリペプチドをカルボキシペプチダーゼにより酵素処理する工程と
（ｂ）同位体で標識されていないアミノ酸をカルボキシル末端のアミノ酸として検出する工程と
を含んでなる、方法。
［２］ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸を同定する、上記［１］に記載の方法。
［３］工程（ｂ）において、同位体で標識されていないアミノ酸をカルボキシル末端のアミノ酸であると同定する、上記［２］に記載の方法。
［４］ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸を定量する、上記［１］に記載の方法。
［５］工程（ｂ）において、同位体で標識されていないアミノ酸をカルボキシル末端のアミノ酸として定量する、上記［４］に記載の方法。
［６］工程（ｂ）において、酵素処理により遊離したアミノ酸を質量分析計で分析する、上記［１］～［５］のいずれかに記載の方法。
［７］同位体が酸素原子の同位体である、上記［１］～［６］のいずれかに記載の方法。
［８］酸素原子の同位体が１８Ｏである、上記［７］に記載の方法。
［９］同位体標識溶液がＨ２ １８Ｏである、上記［１］～［８］のいずれかに記載の方法。
［１０］ポリペプチドが構造未知のものである、上記［１］～［９］のいずれかに記載の方法。
［１１］酵素処理時間が３０分以上である、上記［１］～［１０］のいずれかに記載の方法。
［１２］同位体標識溶液からなる、ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸の分析用試薬。
［１３］同位体標識溶液がＨ２ １８Ｏである、上記［１２］に記載の試薬。
【0009】
本発明によれば、ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸を同定、かつ、定量することができる。本発明では、分析対象のポリペプチドを修飾処理せずに、Ｃ末端のアミノ酸を同定し、かつ、定量できる点で有利である。
【図面の簡単な説明】
【0010】
【発明の具体的説明】
【0011】
＜工程（ａ）＞
工程（ａ）は、同位体標識溶液中の１種または複数種のポリペプチドをカルボキシペプチダーゼにより酵素処理する工程である。本発明の方法は、カルボキシペプチダーゼによる酵素処理に先立って分析対象のポリペプチドを同位体標識溶液中に溶解させる工程を含んでいてもよい。
工程（ａ）は、同位体標識溶液中の１種または複数種のポリペプチドをカルボキシペプチダーゼにより酵素処理する工程である。本発明の方法は、カルボキシペプチダーゼによる酵素処理に先立って分析対象のポリペプチドを同位体標識溶液中に溶解させる工程を含んでいてもよい。
【0012】
カルボキシペプチダーゼはポリペプチドをＣ末端から順次遊離させるプロテアーゼであり、例えば、カルボキシペプチダーゼＹ（ＥＣ ３．４．１６．５）、カルボキシペプチダーゼＡ（ＥＣ ３．４．１７．１）、カルボキシペプチダーゼＢ（ＥＣ ３．４．１７．２）、カルボキシペプチダーゼＣ（ＥＣ ３．４．１６．５）、カルボキシペプチダーゼＥ（ＥＣ ３．４．１７．１０）が挙げられる。
【0013】
使用するカルボキシペプチダーゼによっては基質特異性によりＣ末端アミノ酸が遊離しない可能性もあるが、この場合には使用するカルボキシペプチダーゼの種類を選択することにより、Ｃ末端アミノ酸を遊離させることができる。構造未知のポリペプチドなど、様々なポリペプチド基質を分析する場合には基質特異性が低いカルボキシペプチダーゼＹを用いることが好ましい。
【0014】
カルボキシペプチダーゼによる酵素処理の反応条件は、使用する酵素に従って適宜決定することができる。カルボキシペプチダーゼとしてカルボキシペプチダーゼＹを用いた場合には、２０～５０℃、ｐＨ３．０～８．０の条件で酵素反応を実施することができる。また、反応溶液中のポリペプチドの濃度は０．００００１～５ｍＭ程度とすることができ、カルボキシペプチダーゼは反応溶液１ｍＬ当たり０.０５～５０ｕｎｉｔとなるように添加することができる。
【0015】
ポリペプチドの溶液にカルボキシペプチダーゼを添加すると加水分解反応が開始する。反応開始直後からＣ末端アミノ酸の遊離が始まり、３０分経過後には、ポリペプチドの配列にもよるが、分析対象のポリペプチドの１０～１００％程度からＣ末端アミノ酸が遊離されうる。すなわち、好ましくは酵素反応を３０分以上実施し、酵素反応開始から３０分以降を目安にして遊離したアミノ酸を分析することができる。遊離したアミノ酸の分析については後述する。
【0016】
本発明においては、酵素反応を同位体標識溶液（好ましくは安定同位体標識溶液）中で実施する。ここで、同位体としては酸素原子の同位体が挙げられ、例えば、１８Ｏおよび１７Ｏである。また、同位体標識溶液としては、同位体標識された水が挙げられ、例えば、Ｈ２
１８Ｏ（１８Ｏ標識水）である。本発明において同位体標識溶液としてＨ２
１８Ｏを用いた場合には、カルボキシペプチダーゼがポリペプチドのＣ末端アミノ酸（C-terminal）に作用し、内部残基由来のアミノ酸には１８Ｏが取り込まれるが、Ｃ末端残基由来のアミノ酸には１８Ｏが取り込まれない（下記式参照）。１８Ｏが取り込まれたアミノ酸と１８Ｏが取り込まれていないアミノ酸とは、質量数の違いから区別して検出することができる。
【0017】
【化1】
【0018】
分析対象のポリペプチドは、１種であっても複数種であってもよく、複数種の場合には後述のようにＣ末端アミノ酸の存在比を定量的に分析することができる。
【0019】
分析対象のポリペプチドはまた、構造既知であっても、構造未知であってもよく、構造未知であっても後述のようにＣ末端アミノ酸を同定し、かつ、定量することができる。
【0020】
本発明において「ポリペプチド」は、アミノ酸がペプチド結合により連結したポリペプチド鎖からなるものを意味する。ポリペプチドのうちアミノ酸数が１０個程度以下のものはペプチドあるいはオリゴペプチドと呼ばれることがあり、アミノ酸数が１０個以上のものはタンパク質と呼ばれることがあるが、本発明においては「ポリペプチド」は、タンパク質、ペプチドおよびオリゴペプチドを含む意味で用いられるものとする。
【0021】
＜工程（ｂ）＞
工程（ｂ）は、同位体で標識されていないアミノ酸をカルボキシル末端のアミノ酸として検出する工程である。カルボキシペプチダーゼによる酵素処理により最初に遊離してくるアミノ酸がＣ末端のアミノ酸に対応する。すなわち、ポリペプチドの配列や使用するカルボキシペプチダーゼにもよるが、酵素反応を３０分程度実施すると最初にＣ末端アミノ酸が遊離し、その後遅れてＣ末端から２番目のアミノ酸、３番目のアミノ酸が順番に遊離してくる。酵素反応溶液を反応開始から５分、１０分、１５分あるいは２０分おきに回収し、遊離アミノ酸の回収率を経時観察することで、遊離してくるアミノ酸の順番を特定することができる。
工程（ｂ）は、同位体で標識されていないアミノ酸をカルボキシル末端のアミノ酸として検出する工程である。カルボキシペプチダーゼによる酵素処理により最初に遊離してくるアミノ酸がＣ末端のアミノ酸に対応する。すなわち、ポリペプチドの配列や使用するカルボキシペプチダーゼにもよるが、酵素反応を３０分程度実施すると最初にＣ末端アミノ酸が遊離し、その後遅れてＣ末端から２番目のアミノ酸、３番目のアミノ酸が順番に遊離してくる。酵素反応溶液を反応開始から５分、１０分、１５分あるいは２０分おきに回収し、遊離アミノ酸の回収率を経時観察することで、遊離してくるアミノ酸の順番を特定することができる。
【0022】
前述の通り、カルボキシペプチダーゼがポリペプチドのＣ末端アミノ酸に作用すると、内部残基由来のアミノ酸には同位体元素が取り込まれるが、Ｃ末端残基由来のアミノ酸には同位体元素が取り込まれない。すなわち、同位体で標識されていないアミノ酸を、カルボキシル末端のアミノ酸として検出することができる。
【0023】
本発明の分析方法では、ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸の種類を決定することができる。すなわち、本発明の分析方法は、ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸の決定方法あるいは同定方法とすることができる。この場合、工程（ｂ）において、同位体で標識されていないアミノ酸をカルボキシル末端のアミノ酸であると決定あるいは同定する手順を含んでいてもよい。
【0024】
本発明の分析方法ではまた、ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸を定量することができる。すなわち、本発明の分析方法は、ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸の定量方法とすることができる。この場合、工程（ｂ）において、同位体で標識されていないアミノ酸をカルボキシル末端のアミノ酸として定量する手順を含んでいてもよい。
【0025】
本発明の分析方法では、酵素処理により遊離したアミノ酸の分析は質量分析法（ＭＳ、mass spectrometry）により実施することができる。すなわち、同位体標識されたアミノ酸と、同位体標識されていないアミノ酸とは質量数が異なることから、本発明の分析方法では、質量分析法により両者を区別して検出することができる。例えば、本発明において同位体標識溶液としてＨ２
１８Ｏを用いた場合には、カルボキシペプチダーゼによる加水分解により内部残基由来のアミノ酸には１８Ｏが取り込まれるが、Ｃ末端残基由来のアミノ酸には１８Ｏが取り込まれないため、内部残基由来のアミノ酸はｍ／ｚ値（質量／電荷比）が＋２されることになり、Ｃ末端残基由来のアミノ酸と区別して検出できることとなる（図１参照）。
【0026】
本発明の分析方法に使用する質量分析法は、酵素処理により遊離したアミノ酸を同位体標識を区別して検出できるものである限り特に限定されるものではないが、例示をすれば、液体クロマトグラフィー－質量分析（ＬＣ－ＭＳ）、ガスクロマトグラフィー－質量分析（ＧＣ－ＭＳ）、キャピラリー電気泳動－質量分析（ＣＥ－ＭＳ）が挙げられ、これらのいずれも使用することができる。
【0027】
本発明の分析方法では、分析時に内部標準物質（例えば、１３Ｃなどの同位体で標識されたアミノ酸）を用いることにより、測定精度を向上させることができる。すなわち、予め定量した内部標準物質を同位体標識溶液中に存在させるか、あるいは酵素反応後の溶液に添加することで、分析対象のポリペプチドのＣ末端アミノ酸と内部標準物質を質量分析法により分析し、両者の比を元にして分析対象のアミノ酸を正確に定量することができる。質量分析法による検出では、装置自体の感度変動や、分析サンプルに含まれるマトリックスの影響によるイオンサプレッションやイオンエンハンスメント現象のため、場合によっては定量誤差が生じる可能性があるが、内部標準物質を用いることでこれらの影響を補正し、定量誤差を最小限に抑制することができる。内部標準として１３Ｃなどの同位体で標識されたアミノ酸を用いる場合は、酵素反応により１８Ｏを取り込んだアミノ酸と質量が重複しないものを選択すればよい。
【0028】
本発明の分析方法では、分析対象のポリペプチドのＣ末端のアミノ酸を同定し、かつ、定量することができる。また、分析対象のポリペプチドはアミノ酸配列が未知のものであってもよい。従って、本発明の分析方法によれば、従来なし得なかったポリペプチドのＣ末端アミノ酸の分析を簡便に実施することができ、例えば、生体内ポリペプチドの挙動解析、食品中に存在するか、あるいは食品に添加するポリペプチドの香味特性の分析、ポリペプチド医薬品の定量、品質管理などに利用することができる。
【0029】
本発明の分析方法ではまた、分析対象のポリペプチドが反応溶液中に複数種含まれていてもよい。この場合、カルボキシペプチダーゼによる酵素処理を実施すると、これら複数種のポリペプチドそれぞれからＣ末端アミノ酸が遊離してくる。これらのＣ末端アミノ酸は、いずれも同位体標識されていないアミノ酸であることから、質量分析法により、ポリペプチド内部由来の同位体標識されたアミノ酸と区別して検出することができる。また複数種のポリペプチドに由来するＣ末端アミノ酸はそれぞれ定量することができ、その存在比率を求めることができる。複数種のポリペプチドに由来するＣ末端アミノ酸の存在比率は、ポリペプチド混合物を含む飲食品の香味や物性の分析および研究に利用することができるため、有利である。
【0030】
例えば、本発明の分析方法によれば、飲食品の原料として利用されるタンパク分解物の製造時や飲食品製造時のタンパク分解反応の際に実施される酵素処理の条件を、生成するペプチド混合物におけるＣ末端アミノ酸の種類と存在比率をもとに調整し、分解物である生成ペプチド混合物の香味や物性を制御することが可能となる。また本発明の分析方法は、ポリペプチド医薬品の品質管理において、活性本体ポリペプチドと不純物ポリペプチドの存在比率分析に利用することができ、さらに、Ｃ末端アミノ酸の修飾比率分析にも利用することができるため、有利である。
【0031】
＜分析用試薬＞
本発明の別の面によれば、同位体標識溶液からなる、ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸の分析用試薬が提供される。本発明の分析用試薬は、本発明の分析方法における同位体標識溶液に相当することから、本発明の分析方法に関する記載に従って実施することができる。
本発明の別の面によれば、同位体標識溶液からなる、ポリペプチドのカルボキシル末端のアミノ酸の分析用試薬が提供される。本発明の分析用試薬は、本発明の分析方法における同位体標識溶液に相当することから、本発明の分析方法に関する記載に従って実施することができる。
【実施例】
【0032】
以下の例に基づき本発明をより具体的に説明するが、本発明はこれらの例に限定されるものではない。
【0033】
例１：Ｃ末端アミノ酸残基の分析（１）
ペプチド基質を安定同位体標識水の存在下で酵素分解反応に供し、遊離アミノ酸を液体クロマトグラフ質量分析（以下、「ＬＣ－ＭＳ」という）により定量した。
ペプチド基質を安定同位体標識水の存在下で酵素分解反応に供し、遊離アミノ酸を液体クロマトグラフ質量分析（以下、「ＬＣ－ＭＳ」という）により定量した。
【0034】
（１）酵素分解反応および分析用サンプルの調製
１ｍｇのカルボキシペプチダーゼＹ（Ｗｏｒｔｈｉｎｇｔｏｎ社製）を１ｍＬの安定同位体標識水Ｈ２ １８Ｏ（大陽日酸社製、以下「標識水」という）に溶解して酵素溶液（以下同様）を調製した。ペプチド基質：（ベンジルオキシカルボニル基）－Ｇｌｙ－Ｐｒｏ－Ｌｅｕ－Ｇｌｙ－Ｐｒｏ（配列番号１、ペプチド研究所製）を５０ｍＭリン酸バッファー（ｐＨ６．７）（（無水）リン酸二水素ナトリウム（特級）および（無水）リン酸水素ナトリウム（特級）（いずれも和光純薬工業社製）を標識水に溶解して調製、以下同様）に溶解して１．７４ｍＭペプチド基質溶液を調製した。５００μＬのペプチド基質溶液に５μＬの酵素溶液を添加して室温に置き、５分後、１０分後、３０分後、１時間後、２時間後、３時間後および２４時間後に５０μＬをサンプリングし、各サンプルを９５℃のヒートブロックで１分間加熱することにより酵素を失活させた。次いで各サンプルを標識水で６００倍に希釈し、ＬＣ－ＭＳによる遊離アミノ酸定量分析に供した。検量線は、アミノ酸混合標準液Ｈ型（和光純薬工業社製）を用いて作成した。なお、「Ｃ末端アミノ酸残基の定量値／理論値」×１００（％）を遊離アミノ酸の回収率とした。
１ｍｇのカルボキシペプチダーゼＹ（Ｗｏｒｔｈｉｎｇｔｏｎ社製）を１ｍＬの安定同位体標識水Ｈ２ １８Ｏ（大陽日酸社製、以下「標識水」という）に溶解して酵素溶液（以下同様）を調製した。ペプチド基質：（ベンジルオキシカルボニル基）－Ｇｌｙ－Ｐｒｏ－Ｌｅｕ－Ｇｌｙ－Ｐｒｏ（配列番号１、ペプチド研究所製）を５０ｍＭリン酸バッファー（ｐＨ６．７）（（無水）リン酸二水素ナトリウム（特級）および（無水）リン酸水素ナトリウム（特級）（いずれも和光純薬工業社製）を標識水に溶解して調製、以下同様）に溶解して１．７４ｍＭペプチド基質溶液を調製した。５００μＬのペプチド基質溶液に５μＬの酵素溶液を添加して室温に置き、５分後、１０分後、３０分後、１時間後、２時間後、３時間後および２４時間後に５０μＬをサンプリングし、各サンプルを９５℃のヒートブロックで１分間加熱することにより酵素を失活させた。次いで各サンプルを標識水で６００倍に希釈し、ＬＣ－ＭＳによる遊離アミノ酸定量分析に供した。検量線は、アミノ酸混合標準液Ｈ型（和光純薬工業社製）を用いて作成した。なお、「Ｃ末端アミノ酸残基の定量値／理論値」×１００（％）を遊離アミノ酸の回収率とした。
【0035】
（２）ＬＣ－ＭＳによる定量分析
遊離アミノ酸の定量分析は以下の条件で行った。
カラム：Ｉｎｔｒａｄａ Ａｍｉｎｏ Ａｃｉｄ １５０ｍｍ×２ｍｍ（粒子径３μｍ、インタクト社製）
検出器：質量分析計（Ｗａｔｅｒｓ社製）
イオンソース：ＥＳＩ－ｐｏｓｉｔｉｖｅ
Ｓｃａｎ ｒａｎｇｅ：ｍ／ｚ ５０－６００
移動相Ａ：アセトニトリル／１００ｍＭ ギ酸アンモニウム＝２０／８０（ｖ／ｖ）
移動相Ｂ：アセトニトリル／ギ酸＝１００／０．３（ｖ／ｖ）
流量：０．３ｍＬ／分
グラジエントプログラム：表１に示す通りとした。
遊離アミノ酸の定量分析は以下の条件で行った。
カラム：Ｉｎｔｒａｄａ Ａｍｉｎｏ Ａｃｉｄ １５０ｍｍ×２ｍｍ（粒子径３μｍ、インタクト社製）
検出器：質量分析計（Ｗａｔｅｒｓ社製）
イオンソース：ＥＳＩ－ｐｏｓｉｔｉｖｅ
Ｓｃａｎ ｒａｎｇｅ：ｍ／ｚ ５０－６００
移動相Ａ：アセトニトリル／１００ｍＭ ギ酸アンモニウム＝２０／８０（ｖ／ｖ）
移動相Ｂ：アセトニトリル／ギ酸＝１００／０．３（ｖ／ｖ）
流量：０．３ｍＬ／分
グラジエントプログラム：表１に示す通りとした。
【0036】
【表1】
【0037】
【0038】
図１の結果より、ペプチド基質のＣ末端のＰｒｏ残基は１８Ｏ非標識体であるＰｒｏ（１６Ｏ）（ｍ／ｚ １１６）として検出され、１８Ｏ標識体であるＰｒｏ（１８Ｏ）（ｍ／ｚ １１８）としては検出されなかった。一方、ペプチド基質の内部残基であるＧｌｙおよびＬｅｕ残基は１８Ｏ非標識体であるＧｌｙ（１６Ｏ）（Ｇｌｙ：ｍ／ｚ ７６）およびＬｅｕ（１６Ｏ）（Ｌｅｕ：ｍ／ｚ １３２）としては検出されず、１８Ｏ標識体であるＧｌｙ（１８Ｏ）（Ｇｌｙ：ｍ／ｚ ７８）およびＬｅｕ（１８Ｏ）（Ｌｅｕ：ｍ／ｚ １３４）として検出された。これらの結果より、本分析法によれば、ペプチドのＣ末端アミノ酸残基のみ１８Ｏ非標識体として選択的に検出できることが確認された。
【0039】
また、表２の結果より、酵素反応２時間後にはペプチド基質のＣ末端Ｐｒｏ残基およびこれに隣接するＧｌｙ残基の分解がほぼ完了していること、Ｃ末端Ｐｒｏ残基は１８Ｏ非標識体としてほぼ１００％の回収率であること、隣接するＧｌｙ残基は１８Ｏ標識体としてほぼ１００％の回収率であることが確認された。なお、酵素反応２４時間後にはＰｒｏ残基の１８Ｏ標識体であるＰｒｏ（１８Ｏ）が５％回収されているが、これはペプチド基質内部のＰｒｏ残基が分解されて生成したものと考えられ、Ｃ末端Ｐｒｏ残基の回収率に影響しないことが確認された。
【0040】
例２：Ｃ末端アミノ酸残基の分析（２）
（１）酵素分解反応および分析用サンプルの調製
ペプチド基質：Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｔｙｒ－Ａｒｇ（配列番号２、ペプチド研究所製）を用いた以外は例１（１）に記載の手順に従ってサンプルを調製した。
（１）酵素分解反応および分析用サンプルの調製
ペプチド基質：Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｔｙｒ－Ａｒｇ（配列番号２、ペプチド研究所製）を用いた以外は例１（１）に記載の手順に従ってサンプルを調製した。
【0041】
（２）ＬＣ－ＭＳによる定量分析
遊離アミノ酸の定量分析は、例１（２）に記載の手順に従って行った。
遊離アミノ酸の定量分析は、例１（２）に記載の手順に従って行った。
【0042】
（３）結果
結果は表３に示される通りであった。
結果は表３に示される通りであった。
【表3】
【0043】
表３の結果より、酵素反応２４時間後にはペプチド基質のＣ末端Ａｒｇ残基の分解がほぼ完了していること、Ｃ末端Ａｒｇ残基は１８Ｏ非標識体としてほぼ１００％の回収率であることが確認された。
【0044】
例３：Ｃ末端アミノ酸残基の分析（３）
（１）酵素分解反応および分析用サンプルの調製
ペプチド基質：Ｓｅｒ－Ｇｌｎ－Ａｓｎ－Ｔｙｒ－Ｐｒｏ－Ｉｌｅ－Ｖａｌ（配列番号３、ペプチド研究所製）を用いた以外は例１（１）に記載の手順に従ってサンプルを調製した。
（１）酵素分解反応および分析用サンプルの調製
ペプチド基質：Ｓｅｒ－Ｇｌｎ－Ａｓｎ－Ｔｙｒ－Ｐｒｏ－Ｉｌｅ－Ｖａｌ（配列番号３、ペプチド研究所製）を用いた以外は例１（１）に記載の手順に従ってサンプルを調製した。
【0045】
（２）ＬＣ－ＭＳによる定量分析
遊離アミノ酸の定量分析は、例１（２）に記載の手順に従って行った。
遊離アミノ酸の定量分析は、例１（２）に記載の手順に従って行った。
【0046】
（３）結果
結果は表４に示される通りであった。
結果は表４に示される通りであった。
【表4】
【0047】
表４の結果より、酵素反応２４時間後にはペプチド基質のＣ末端Ｖａｌ残基、Ｖａｌ残基に隣接するＩｌｅ残基およびＩｌｅ残基に隣接するＰｒｏ残基の分解がほぼ完了していること、Ｃ末端Ｖａｌ残基は１８Ｏ非標識体としてほぼ１００％の回収率であること、ＩｌｅおよびＰｒｏ残基は１８Ｏ標識体としてほぼ１００％の回収率であることが確認された。
【0048】
例４：ペプチド混合物のＣ末端アミノ酸残基の分析
（１）酵素分解反応および分析用サンプルの調製
各ペプチド基質：Ｓｅｒ－Ｇｌｎ－Ａｓｎ－Ｔｙｒ－Ｐｒｏ－Ｉｌｅ－Ｖａｌ（配列番号３）、Ｔｙｒ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｐｈｅ－Ｌｅｕ－Ａｒｇ－Ｌｙｓ－Ｔｙｒ－Ｐｒｏ（配列番号４）、Ｔｙｒ－Ｐｒｏ－Ｐｈｅ－Ｐｒｏ－Ｇｌｙ（配列番号５）およびＡｒｇ－Ｐｒｏ－Ｐｒｏ－Ｇｌｙ－Ｐｈｅ－Ｓｅｒ－Ｐｒｏ－Ｐｈｅ－Ａｒｇ（配列番号６）（いずれもペプチド研究所製）を５０ｍＭリン酸バッファー（ｐＨ６．７）に溶解して各１ｍＭペプチド基質溶液を調製した。各ペプチド基質溶液５０μＬを採取後、混合し、３００μＬの５０ｍＭリン酸バッファー（ｐＨ６．７）を添加して５００μＬのペプチド基質溶液を調製し、２５μＬの酵素溶液を添加して室温に置き、経時的にサンプリングし、各サンプルを９５℃のヒートブロックで１分間加熱することにより酵素を失活させた。次いで、各サンプルを標識水で２０倍に希釈し、ＬＣ－ＭＳによる遊離アミノ酸定量分析に供した。検量線の作成と、回収率の算出は、例１（１）に記載の手順に従って行った。
（１）酵素分解反応および分析用サンプルの調製
各ペプチド基質：Ｓｅｒ－Ｇｌｎ－Ａｓｎ－Ｔｙｒ－Ｐｒｏ－Ｉｌｅ－Ｖａｌ（配列番号３）、Ｔｙｒ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｐｈｅ－Ｌｅｕ－Ａｒｇ－Ｌｙｓ－Ｔｙｒ－Ｐｒｏ（配列番号４）、Ｔｙｒ－Ｐｒｏ－Ｐｈｅ－Ｐｒｏ－Ｇｌｙ（配列番号５）およびＡｒｇ－Ｐｒｏ－Ｐｒｏ－Ｇｌｙ－Ｐｈｅ－Ｓｅｒ－Ｐｒｏ－Ｐｈｅ－Ａｒｇ（配列番号６）（いずれもペプチド研究所製）を５０ｍＭリン酸バッファー（ｐＨ６．７）に溶解して各１ｍＭペプチド基質溶液を調製した。各ペプチド基質溶液５０μＬを採取後、混合し、３００μＬの５０ｍＭリン酸バッファー（ｐＨ６．７）を添加して５００μＬのペプチド基質溶液を調製し、２５μＬの酵素溶液を添加して室温に置き、経時的にサンプリングし、各サンプルを９５℃のヒートブロックで１分間加熱することにより酵素を失活させた。次いで、各サンプルを標識水で２０倍に希釈し、ＬＣ－ＭＳによる遊離アミノ酸定量分析に供した。検量線の作成と、回収率の算出は、例１（１）に記載の手順に従って行った。
【0049】
（２）ＬＣ－ＭＳによる定量分析
遊離アミノ酸の定量分析は、例１（２）に記載の手順に従って行った。
遊離アミノ酸の定量分析は、例１（２）に記載の手順に従って行った。
【0050】
（３）結果
結果は表５に示される通りであった。
結果は表５に示される通りであった。
【表5】
【0051】
表５の結果より、酵素反応３０時間後には混合ペプチド基質の各Ｃ末端アミノ酸残基は１８Ｏ非標識体としてほぼ１００％の回収率であることが確認された。一方、ペプチド基質のＣ末端には存在せず内部にのみ存在するアミノ酸残基の１８Ｏ非標識体は検出されないことが確認された。これらの結果より、本分析法によれば、ペプチド混合物において各ペプチド基質由来のＣ末端アミノ酸残基を選択的に定量できることが確認された。
【0052】
【図1】
【配列表】