特許 7212885 複合体、及び計測方法

(19)【発行国】日本国特許庁(JP)

(12)【公報種別】特許公報(B2)

(11)【特許番号】

(24)【登録日】2023-01-18

(45)【発行日】2023-01-26

(54)【発明の名称】複合体、及び計測方法

(51)【国際特許分類】

   G01N 33/544 20060101AFI20230119BHJP

   G01N 27/416 20060101ALI20230119BHJP

【ＦＩ】

G01N33/544 A

G01N27/416 353Z

G01N27/416 356

G01N27/416 341G

【請求項の数】 2

(21)【出願番号】P 2019037899

(22)【出願日】2019-03-01

(65)【公開番号】P2020139923

(43)【公開日】2020-09-03

【審査請求日】2021-08-03

(73)【特許権者】

【識別番号】000004260

【氏名又は名称】株式会社デンソー

(73)【特許権者】

【識別番号】304024430

【氏名又は名称】国立大学法人北陸先端科学技術大学院大学

(73)【特許権者】

【識別番号】000003609

【氏名又は名称】株式会社豊田中央研究所

(74)【代理人】

【識別番号】110000578

【氏名又は名称】名古屋国際弁理士法人

(72)【発明者】

【氏名】糠塚 明

(72)【発明者】

【氏名】久野 斉

(72)【発明者】

【氏名】▲浜▼田 勉

(72)【発明者】

【氏名】幸田 勝典

(72)【発明者】

【氏名】小林 泰良

【審査官】三木 隆

(56)【参考文献】

【文献】特開２０１１－０６９６４６（ＪＰ，Ａ）

【文献】特開２００９－２５７７６４（ＪＰ，Ａ）

【文献】特許第６９６６２６９（ＪＰ，Ｂ２）

【文献】特開２０１１－１７８６８９（ＪＰ，Ａ）

【文献】松本洋太郎，新たなDDS戦略：光でリポソームの破壊を制御する，ファルマシア，2012年10月01日，Vol.48 No.10，Page.987

(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)

Ｇ０１Ｎ ３３／５４４

Ｇ０１Ｎ ２７／４１６

(57)【特許請求の範囲】

【請求項1】

光応答性リポソームと、
前記光応答性リポソームの内部に存在する第１緩衝液（９）と、
前記光応答性リポソームの外部に存在する第２緩衝液（１１）と、
を備え、
前記光応答性リポソームが前記第２緩衝液に分散している複合体であって、
前記光応答性リポソームは、
アゾベンゼン化合物（１７）及びリン脂質（１５）を含む膜（１３）と、
前記膜に固定され、被検出物質（２１）と結合可能な膜側結合部（１４）と、
を備え、
前記第１緩衝液の組成と、前記第２緩衝液の組成とが異なり、
前記第１緩衝液と前記第２緩衝液との間にプロトン勾配が存在する複合体（３）。

【請求項2】

被検出物質（２１）の量を計測する計測方法であって、
前記被検出物質と結合可能な支持体側結合部（６）が固定された支持体（５）と、前記被検出物質を含む液とを接触させ、
前記被検出物質と、光応答性リポソーム（７）を含む液とを接触させ、
前記支持体と、前記被検出物質を含む液とを接触させた後であって、且つ、前記被検出物質と、前記光応答性リポソームを含む液とを接触させた後に、前記支持体に固定されていない前記光応答性リポソームを除去し、
前記光応答性リポソームを除去した後、前記光応答性リポソームの内部に第１緩衝液（９）が存在し、前記光応答性リポソームの外部に、前記第１緩衝液とは組成が異なる第２緩衝液（１１）が存在する状態であって、前記第１緩衝液と前記第２緩衝液との間にプロトン勾配が存在する状態で、前記光応答性リポソームに光を照射して前記光応答性リポソームに膜孔（１９）を形成し、前記光の照射により生じる前記第２緩衝液のｐＨの変化に基づき前記被検出物質の量を計測し、
前記光応答性リポソームは、
アゾベンゼン化合物（１７）及びリン脂質（１５）を含む膜（１３）と、
前記膜に固定され、前記被検出物質と結合可能な膜側結合部（１４）と、
を備え、
前記膜側結合部は、前記被検出物質のうち、前記支持体側結合部と結合する部位とは異なる部位において前記被検出物質と結合する計測方法。

【発明の詳細な説明】

【技術分野】

【0001】

本開示は光応答性リポソーム、複合体、計測システム、及び計測方法に関する。

【背景技術】

【0002】

バイオテクノロジー、ヘルスケア等の技術分野において、抗原等の被検出物質の量を計測する必要がある。被検出物質の量を計測する方法として、リポソーム結合免疫吸着測定法（Ｌｉｐｏｓｏｍｅ Ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ Ａｓｓａｙ， ＬＩＳＡ）がある。

【0003】

ＬＩＳＡは特許文献１に開示されている。ＬＩＳＡでは、支持体上に抗体を固定しておく。その抗体に被検出物質を結合させる。次に、被検出物質にリポソームを結合させる。リポソームは一次抗体を備えている。この一次抗体が被検出物質と結合する。

【0004】

リポソームは、その内部に蛍光分子等の標識物質を含んでいる。次に、リポソームの内部に含まれていた標識物質を、リポソームの外部に漏洩させる。標識物質の量に基づき、被検出物質の量を計測する。

【先行技術文献】

【特許文献】

【0005】

【文献】特開２０１７－１６１３１７号公報

【発明の概要】

【発明が解決しようとする課題】

【0006】

リポソームの内部に含まれていた標識物質を、リポソームの外部に漏洩させるためには、リポソームを破壊又は不安定化する必要があった。リポソームを破壊又は不安定化するためには、ペプチド、タンパク質、界面活性剤等を添加したり、超音波処理を行ったりする必要があった。そのため、被検出物質の量を計測するためには、煩雑な工程が必要であった。

【0007】

本開示の１つの局面は、必ずしも煩雑な工程を行わなくても被検出物質の量を計測できる光応答性リポソーム、複合体、計測システム、及び計測方法を提供することである。

【課題を解決するための手段】

【0008】

本開示の１つの局面は、アゾベンゼン化合物（１７）及びリン脂質（１５）を含む膜（１３）と、前記膜に固定され、被検出物質（２１）と結合可能な膜側結合部（１４）と、を備える光応答性リポソーム（７）である。

【0009】

本開示の１つの局面である光応答性リポソームを用いれば、必ずしも煩雑な工程を行わなくても被検出物質の量を計測できる。
本開示の別の局面は、被検出物質（２１）の量を計測する計測方法であって、前記被検出物質と結合可能な支持体側結合部（６）が固定された支持体（５）と、前記被検出物質を含む液とを接触させ、前記被検出物質と、光応答性リポソーム（７）を含む液とを接触させ、前記支持体と、前記被検出物質を含む液とを接触させた後であって、且つ、前記被検出物質と、前記光応答性リポソームを含む液とを接触させた後に、前記支持体に固定されていない前記光応答性リポソームを除去し、前記光応答性リポソームを除去した後、前記光応答性リポソームの内部に第１緩衝液（９）が存在し、前記光応答性リポソームの外部に、前記第１緩衝液とは組成が異なる第２緩衝液（１１）が存在する状態で、前記光応答性リポソームに光を照射して前記光応答性リポソームに膜孔（１９）を形成し、前記光の照射により生じる前記第２緩衝液の組成の変化に基づき前記被検出物質の量を計測する。
本開示の別の局面である計測方法で使用する前記光応答性リポソームは、アゾベンゼン化合物（１７）及びリン脂質（１５）を含む膜（１３）と、前記膜に固定され、前記被検出物質と結合可能な膜側結合部（１４）と、を備え、前記膜側結合部は、前記被検出物質のうち、前記支持体側結合部と結合する部位とは異なる部位において前記被検出物質と結合する。

【0010】

本開示の別の局面である計測方法を用いれば、必ずしも煩雑な工程を行わなくても被検出物質の量を計測できる。

【図面の簡単な説明】

【0011】

【図1】計測システム１の構成を表す説明図である。

【図2】膜孔１９が形成されていない光応答性リポソーム７を含む複合体３の構成を表す説明図である。

【図3】膜孔１９が形成されている光応答性リポソーム７を含む複合体３の構成を表す説明図である。

【図4】ＡｚｏＴＡＢが示すトランス・シス体間の異性化を表す説明図である。

【図5】計測システム１を用いて被検出物質の量を計測する計測方法を表す説明図である。

【発明を実施するための形態】

【0012】

本開示の例示的な実施形態について図面を参照しながら説明する。
１．計測システム１の構成
計測システム１の構成を、図１～図４に基づき説明する。図１に示すように、計測システム１は、複合体３と、支持体５と、支持体側結合部６と、光源８と、を備える。

【0013】

図１に示すように、複合体３は、光応答性リポソーム７と、第１緩衝液９と、第２緩衝液１１と、を備える。光応答性リポソーム７は、第２緩衝液１１の中に複数分散している。図１～図３に示すように、光応答性リポソーム７は、微小なカプセル状の形態を有する膜１３と、膜側結合部１４と、を備える。

【0014】

図２、図３に示すように、膜１３は、リン脂質１５と、アゾベンゼン化合物１７とを含む。脂質とは、疎水基と親水基とを含む分子を意味する。アゾベンゼン化合物１７とは、青～緑色光を照射すると、シスからトランスに変化し、紫外光を照射すると、トランスからシスに変化する化合物である。すなわち、アゾベンゼン化合物１７は、青～緑色光を照射すると、シスからトランスに変化する。また、アゾベンゼン化合物１７は、紫外光を照射すると、トランスからシスに変化する。

【0015】

アゾベンゼン化合物１７として、例えば、ＡｚｏＴＡＢ、ＫＡＯＮ、ＲＡＯＮ、ＡＺＴＭＡ、Ｐａｚｏ ＰＣ、等が挙げられる。特に、光反応性の面から、ＡｚｏＴＡＢ、ＫＡＯＮが好ましい。

【0016】

ＡｚｏＴＡＢの正式名称は、ａｚｏｂｅｎｚｅｎｅ ｔｒｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｂｒｏｍｉｄｅである。ＫＡＯＮの正式名称は、Ｎ－［４－［４’－［Ｎ，Ｎ－ビス－［３－（Ｎ－リジルアミノ）プロピル］アミノカルボニル］フェニルアゾ］フェノキシアセチル］ジドデシルアミン）である。ＫＡＯＮとして、ＫＡＯＮ８、ＫＡＯＮ１２等がある。ＫＡＯＮ８における疎水基の炭素数は８はである。ＫＡＯＮ１２における疎水基の炭素数は１２である。ＫＡＯＮ１２は、緑色光を照射すると、シスからトランスに変化する。また、ＫＡＯＮ１２は、紫外光を照射すると、トランスからシスに変化する。

【0017】

ＲＡＯＮは、ＫＡＯＮと類似の分子構造を有する。ＡＺＴＭＡの正式名称は、４－Ｂｕｔｙｌａｚｏｂｅｎｚｅｎｅ－４’－（ｏｘｙｅｔｈｙｌ）ｔｒｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｂｒｏｍｉｄｅである。ＡＺＴＭＡの詳細は、Lab Chip, 2012, 12, 4508-4515に開示されている。

【0018】

Ｐａｚｏ ＰＣの正式名称は、１－Ｈｅｘａｄｅｃａｎｏｙｌ－２－（４’－ｎ－ｂｕｔｙｌｐｈｅｎｙｌ）ａｚｏ－４’’（ｇａｎｍａ－ｐｈｅｎｙｌｂｕｔｙｒｏｙｌ））－ｇｌｙｃｅｒｏ－３－ｐｈｏｓｐｈｏｃｈｏｌｉｎｅである。Ｐａｚｏ ＰＣの詳細はCell. 2006;126(4):663-676に開示されている。

【0019】

リン脂質１５として、少なくとも１つの疎水基が二重結合を有した不飽和脂質が好ましい。このようなリン脂質１５として、例えば、ジオレオイルフォスフォコリン（以下ではＤＯＰＣとする）、ステアロイルオレオイルフォスフォコリン（以下ではＳＯＰＣとする）、ジパルミトイルホスファチジルコリン（以下ではＤＰＰＣとする）、1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン-ポリエチレングリコール2,000-ジベンゾシクロオクチン（以下では、ＤＳＰＥ－ＰＥＧ（２０００）－ＤＢＣＯとする）等が挙げられる。

【0020】

ＤＯＰＣの正式名称は、１，２－ｄｉｏｌｅｏｙｌ－ｓｎ－ｇｌｙｃｅｒｏ－３－ｐｏｓｐｈｏｃｈｌｉｎｅである。ＤＰＰＣの正式名称は、１，２－ｄｉｐａｌｍｉｔｏｙｌ－ｓｎ－ｇｌｙｃｅｒｏ－３－ｐｈｏｓｐｈｏｃｈｏｌｉｎｅである。ＤＳＰＥ－ＰＥＧ（２０００）－ＤＢＣＯの正式名称は、１，２－ｄｉｓｔｅａｒｏｙｌ－ｓｎ－ｇｌｙｃｅｒｏ－３－ｐｈｏｓｐｈｏｅｔｈａｎｏｌａｍｉｎｅ－Ｎ－［ｄｉｂｅｎｚｏｃｙｃｌｏｏｃｔｙｌ （ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅ ｇｌｙｃｏｌ）－２０００］である。

【0021】

リン脂質１５のゲル－液晶相転移温度は、膜生成の観点から、光応答性リポソーム７の使用温度より低いことが好ましい。ゲル－液晶相転移温度は、凝固温度とも呼ばれる。光応答性リポソーム７の使用温度とは、後述するように、光応答性リポソーム７を用いて被検出物質の量を計測するときの光応答性リポソーム７の温度を意味する。

【0022】

光応答性リポソーム７の使用温度は、通常、室温から体温程度の温度である。リン脂質１５のゲル－液晶相転移温度が光応答性リポソーム７の使用温度より低い場合、リン脂質１５は、光応答性リポソーム７の使用温度において液晶になる。ＤＯＰＣのゲル－液晶相転移温度は－２３℃である。ＳＯＰＣのゲル－液晶相転移温度は６℃である。

【0023】

アゾベンゼン化合物１７がＫＡＯＮである場合、リン脂質１５として、そのゲル－液晶相転移温度が光応答性リポソーム７の使用温度より低いものが好ましい。この場合、ＫＡＯＮが示すトランス・シス体間の異性化の際に膜１３の線張力がスイッチされる。その結果、光応答性リポソーム７が確実な光応答性を示す。アゾベンゼン化合物１７がＡｚｏＴＡＢである場合、光応答性リポソーム７は、以下のものであることが好ましい。

【0024】

光応答性リポソーム７において、例えば、第１のリン脂質と、第２のリン脂質と、コレステロールとが混合されている。第１のリン脂質は、そのゲル－液晶相転移温度が光応答性リポソーム７の使用温度より低いリン脂質１５である。第２のリン脂質は、そのゲル－液晶相転移温度が光応答性リポソーム７の使用温度より高いリン脂質１５である。

【0025】

この場合、第１のリン脂質と、それとは相転移温度が異なる第２のリン脂質及びコレステロールとが混在する。そのことにより、膜１３の面内で相分離が発生し、秩序相と無秩序相が共存した状態が形成される。その結果、例えば、ＡｚｏＴＡＢが示すトランス・シス体間の異性化によって、膜１３の崩壊が惹起される。ＡｚｏＴＡＢが示すトランス・シス体間の異性化を図４に示す。

【0026】

アゾベンゼン化合物１７の濃度と、リン脂質１５の濃度との合計を１００％とする。濃度の単位はモル濃度である。アゾベンゼン化合物１７がＫＡＯＮ１２である場合、アゾベンゼン化合物１７の濃度は３０％より大きく４０％未満であることが好ましい。この範囲内である場合、光応答性リポソーム７を確実に得ることができる。

【0027】

アゾベンゼン化合物１７がＡｚｏＴＡＢである場合、アゾベンゼン化合物１７の濃度は５％より大きく２０％未満であることが好ましい。この範囲内である場合、光応答性リポソーム７を確実に得ることができる。

【0028】

リン脂質１５として、例えば、J Am Chem Soc. 2012;134(10):4898-4904に開示されているものを使用することができる。リン脂質１５として、例えば、不飽和状態である炭化水素鎖を有するリン脂質と、飽和状態である炭化水素鎖を有するリン脂質とを含むものが挙げられる。

【0029】

図３に示すように、光応答性リポソーム７は、第１の光が照射されると、膜１３上に膜孔１９を形成する。膜孔１９は光応答性リポソーム７の内外を連通する。膜孔１９が形成されると、光応答性リポソーム７の内部に存在していた第１緩衝液９は光応答性リポソーム７の外部に放出される。

【0030】

また、光応答性リポソーム７は、第２の光が照射されると、図２に示すように、膜１３上の膜孔１９を閉じる。アゾベンゼン化合物１７がＫＡＯＮである場合、第１の光として、緑色光を使用することができる。また、第２の光として、紫外光を使用することができる。第１の光である緑色光は、例えば、５００ｎｍ～６００ｎｍの波長を有する光である。第１の光である緑光は、５３２ｎｍ付近にピークを持つことが好ましい。第２の光である紫外光は、例えば、３００ｎｍ～４００ｎｍの波長を有する光である。

【0031】

アゾベンゼン化合物１７がＡｚｏＴＡＢである場合、第１の光として、紫外光を使用することができる。第１の光である紫外光は、例えば、３００ｎｍ～４００ｎｍの波長を有する光である。第１の光である紫外光は、３６５ｎｍ付近にピークを持つことが好ましい。

【0032】

光応答性リポソーム７における膜孔１９の形成と消滅とは、以下の作用による。光の照射により、アゾベンゼン化合物１７がシス体とトランス体とのうちの一方から他方に変化する。そのことにより、アゾベンゼン化合物１７を含む光応答性リポソーム７は変形し、膜１３上に膜孔１９が形成されたり、膜孔１９が消滅したりする。

【0033】

膜１３は、例えば、積層膜水和法によって生成することができる。積層膜水和法は、例えば、以下の方法である。まず、アゾベンゼン化合物１７及びリン脂質１５を含む脂質の分子をクロロホルム等の有機溶媒に溶解させ、溶液を調製する。その溶液を試験管に入れ、有機溶媒を蒸発させることで、試験管の底に積層膜を作製する。積層膜は２分子膜である。次に、試験管にトリス塩酸緩衝液を加える。すると、積層していた２分子膜が分離・小胞化し、光応答性リポソーム７が生成する。

【0034】

膜側結合部１４は膜１３に固定されている。膜側結合部１４は、被検出物質と結合可能である。膜側結合部１４は、例えば、分子識別素子である。分子識別素子として、例えば、抗体、ＤＮＡアプタマー、ペプチド等が挙げられる。膜側結合部１４は、被検出物質に応じて適宜選択することができる。

【0035】

膜側結合部１４を膜１３に固定する方法は特に限定されない。例えば、膜側結合部１４と膜１３との間に、クリック化学反応に基づく共有結合を形成することで、膜側結合部１４を膜１３に固定することができる。この場合、膜側結合部１４の少なくとも片末端がアジド基で修飾されていることが好ましい。

【0036】

図１～図３に示すように、第１緩衝液９は、膜１３の内部に存在する。第２緩衝液１１は、膜１３の外部に存在する。第１緩衝液９の組成と、第２緩衝液１１の組成とは異なる。
例えば、第１緩衝液９と前記第２緩衝液１１との間にイオン勾配が存在する。イオン勾配として、例えば、プロトン勾配が挙げられる。イオン勾配は、プロトン以外のイオンのイオン勾配であってもよい。第１緩衝液９と第２緩衝液１１との間にプロトン勾配が存在する場合、第１緩衝液９のｐＨは、第２緩衝液１１のｐＨより高くてもよいし、低くてもよい。

【0037】

第１緩衝液９の浸透圧と、第２緩衝液１１の浸透圧との差は、プラスマイナス１ｍ０ｓｍ／Ｋｇ以内であることが好ましい。この場合、光応答性リポソーム７の破裂や収縮を抑制することができる。

【0038】

第１緩衝液９及び第２緩衝液１１として、例えば、トリス塩酸緩衝液等が挙げられる。第１緩衝液９及び第２緩衝液１１のｐＨは、５．０～１０．０の範囲が好ましい。
支持体５は特に限定されない。支持体５として、例えば、公知のＥＬＩＳＡにおいて使用される支持体が挙げられる。支持体５として、例えば、シリコン基板等が挙げられる。

【0039】

支持体側結合部６は支持体５に固定される。支持体側結合部６は、被検出物質と結合可能である。支持体側結合部６は、被検出物質のうち、膜側結合部１４と結合する部位とは異なる部位において被検出物質と結合する。

【0040】

支持体側結合部６は、例えば、分子識別素子である。分子識別素子として、例えば、抗体、ＤＮＡアプタマー、ペプチド等が挙げられる。支持体側結合部６は、被検出物質に応じて適宜選択することができる。支持体側結合部６を支持体５に固定する方法は特に限定されず、公知の方法を適宜選択して用いることができる。

【0041】

光源８は、光応答性リポソーム７の少なくとも一部に光を照射する。光源８が照射する光は、例えば、上述した第１の光又は第２の光である。また、光源８は、例えば、第１の光と第２の光とのうちの一方を選択して照射することができる。また、第１の光を照射する光源８と、第２の光を照射する光源８とを、それぞれ備えていてもよい。光源８は、複合体３の全体に光を照射してもよいし、複合体３の一部に局所的に光を照射してもよい。

【0042】

２．計測方法について
計測システム１を用いて、被検出物質の量を計測する計測方法を行うことができる。計測方法には、例えば、以下の第１～第４工程がある。

【0043】

第１工程では、支持体側結合部６が固定された支持体５と、被検出物質２１を含む液とを接触させる。第１工程において、図５に示すように、支持体側結合部６は被検出物質２１と結合する。被検出物質２１は、支持体側結合部６を介して支持体５に固定される。

【0044】

第２工程では、被検出物質２１と、光応答性リポソーム７を含む液とを接触させる。光応答性リポソーム７を含む液は、例えば、複合体３である。第２工程において、膜側結合部１４は被検出物質２１に結合する。

【0045】

第２工程は、例えば、第１工程の後に、支持体５と、光応答性リポソーム７を含む液とを接触させる工程である。この場合、支持体５に固定されている被検出物質２１と、光応答性リポソーム７を含む液とが接触する。

【0046】

また、第２工程は、例えば、第１工程の前に、被検出物質２１を含む液と、光応答性リポソーム７を含む液とを混合し、混合液を生成する工程である。この場合、液中にある被検出物質２１と、光応答性リポソーム７を含む液とが接触する。次に、支持体５と混合液とを接触させる。支持体５と混合液とを接触させる工程は第１工程に対応する。混合液は、被検出物質２１を含む液に対応する。

【0047】

第１工程及び第２工程の後、図５に示すように、膜側結合部１４は被検出物質２１と結合する。光応答性リポソーム７は、膜側結合部１４と被検出物質２１との結合、及び、被検出物質２１と支持体側結合部６との結合により、支持体５に固定される。

【0048】

第３工程は、第１工程及び第２工程の後に行われる。第３工程では、支持体５に固定されていない光応答性リポソーム７を除去する。
第４工程は、第３工程の後に行われる。第４工程では、光応答性リポソーム７の内部に第１緩衝液９が存在し、光応答性リポソーム７の外部に第２緩衝液１１が存在する状態で、図５に示すように、光応答性リポソーム７に第１の光を照射して光応答性リポソーム７に膜孔１９を形成する。第１の光は例えば紫外光である。なお、第４工程における光応答性リポソーム７とは、図５に示すように、支持体５に固定されている光応答性リポソーム７を意味する。

【0049】

膜孔１９が形成されると、光応答性リポソーム７の内部に存在していた第１緩衝液９は、膜孔１９から、光応答性リポソーム７の外部に放出される。放出された第１緩衝液９は、光応答性リポソーム７の外部に存在する第２緩衝液１１と混合される。第１緩衝液９の組成は第２緩衝液１１の組成とは異なるので、第１の光を照射する前に比べて、第２緩衝液１１の組成が変化する。すなわち、第１の光の照射により、第２緩衝液１１の組成が変化する。

【0050】

第２緩衝液１１の組成の変化は、光応答性リポソーム７の量が多いほど、大きい。光応答性リポソーム７の量は、被検出物質２１の量が多いほど、多い。よって、第２緩衝液１１の組成の変化は、被検出物質２１の量が多いほど、大きい。第４工程では、第１の光の照射により生じる第２緩衝液１１の組成の変化に基づき、被検出物質２１の量を計測する。

【0051】

例えば、第１緩衝液９と第２緩衝液１１との間にイオン勾配が存在する場合、第１の光の照射により、第２緩衝液１１のイオン濃度が変化する。第４工程では、第１の光の照射により生じる第２緩衝液１１のイオン濃度の変化に基づき、被検出物質２１の量を計測する。

【0052】

例えば、第１緩衝液９と第２緩衝液１１との間にプロトン勾配が存在する場合、第１の光の照射により、第２緩衝液１１のｐＨが変化する。第４工程では、第１の光の照射により生じる第２緩衝液１１のｐＨの変化に基づき、被検出物質２１の量を計測する。

【0053】

３．実施例
（３－１）複合体３の製造
ＤＯＰＣ、ＤＰＰＣ、ＤＳＰＥ－ＰＥＧ（２０００）－ＤＢＣＯ、ＡｚｏＴＡＢ、及びコレステロールをクロロホルム等の有機溶媒に溶解させ、溶液を調製した。溶液におけるＤＯＰＣの濃度は、0.3ｍＭであった。溶液におけるＤＰＰＣの濃度は、0.3ｍＭであった。溶液におけるＤＳＰＥ－ＰＥＧ（２０００）－ＤＢＣＯの濃度は、0.036ｍＭであった。溶液におけるＡｚｏＴＡＢの濃度は、0.2ｍＭであった。溶液におけるコレステロールの濃度は、0.4ｍＭであった。ｍＭはミリモラーを意味する。

【0054】

次に、調製した溶液を試験管に入れ、有機溶媒を蒸発させることで、試験管の底に積層膜を作製した。積層膜は２分子膜であった。次に、試験管に第１緩衝液９を加えた。すると、積層膜が分離・小胞化し、光応答性リポソーム７のうち、膜１３の部分が生成した。膜１３を生成する方法は、積層膜水和法である。

【0055】

第１緩衝液９は、１０ｍＭのＨＥＰＥＳと、１８０ｍＭのトレハロースとを混合し、ｐＨ８．５となるよう調整したものである。ＨＥＰＥＳの正式名称は、４－（２－ｈｙｄｒｏｘｙｅｔｈｙｌ）－１－ｐｉｐｅｒａｚｉｎｅｅｔｈａｎｅｓｕｌｆｏｎｉｃ ａｃｉｄである。第１緩衝液９の浸透圧は２２０ｍＯｓｍ／ｋｇであった。

【0056】

次に、膜１３の表面に、ＦｃＩＩＩペプチド（配列番号１）を固定した。ＦｃＩＩＩペプチドは膜側結合部１４に対応する。ＦｃＩＩＩペプチドのアミノ酸配列における、Ｎ末端から２番目及び１２番のシステインに酸化的ジスルフィド結合を施した。その結果、ＦｃＩＩＩペプチドは環状ペプチドとなった。ＦｃＩＩＩペプチドはＩｇＧと結合する。ＩｇＧは免疫グロブリンの一種である。ＩｇＧは被検出物質に対応する。

【0057】

膜１３の表面にＦｃＩＩＩペプチドを固定する方法は以下のとおりである。ＦｃＩＩＩペプチドのＮ末端にアジド基を修飾した。

【0058】

次に、ＦｃＩＩＩペプチドが備えるアジド基と、膜１３に散在するＤＳＰＥ－ＰＥＧ（２０００）－ＤＢＣＯ中のＤＢＣＯ基との間に、クリック化学反応に基づく共有結合を生じさせることで、ＦｃＩＩＩペプチドを膜１３の表面に固定した。以上の工程により、光応答性リポソーム７が得られた。

【0059】

次に、光応答性リポソーム７に対し、室温下で外液置換を施した。外液置換とは、光応答性リポソーム７の外部に存在する液を、別の液に置換することである。外液置換により、光応答性リポソーム７の外部に存在する液を、第２緩衝液１１とした。

【0060】

第２緩衝液１１は、１０ｍＭのＨＥＰＥＳと１８０ｍＭのグルコースとから成る混合液であった。第２緩衝液１１の浸透圧は、第１緩衝液９の浸透圧と同じであった。塩化ナトリウムを第２緩衝液１１に添加することで、第２緩衝液１１の浸透圧を調整することができる。第２緩衝液１１のｐＨは５．０であった。

【0061】

本実施例では、遠心分離により外液置換を行った。遠心分離における遠心力は２０００ ｘｇであった。遠心分離の時間は２分間であった。本実施例では、外液置換を３回繰り返した。なお、外液置換の方法は遠心分離以外の方法であってもよい。外液置換の方法として、例えば、限外濾過、ゲル濾過等が挙げられる。以上の工程により、複合体３が得られた。

【0062】

（３－２）支持体側結合部６が固定された支持体５の製造
シリコン基板を用意した。シリコン基板の表面を、１２８個×１２８個の升目に区切った。それぞれの升目に電位検出部を形成した。電位検出部は、シリコン基板上に、シリコン酸化膜と、シリコン窒化膜とを順次積層した構成を有していた。以上の工程により、支持体５が得られた。支持体５は、電位検出部ごとに表面電位を検出することができる。

【0063】

次に、支持体５の表面にＤＮＡアプタマー（配列番号２）を固定した。ＤＮＡアプタマーは支持体側結合部６に対応する。ＤＮＡアプタマーは分子識別材料に対応する。ＤＮＡアプタマーの５’末端はアジド基で修飾されている。ＤＮＡアプタマーは、ＩｇＧのうち、ＦｃＩＩＩペプチドが結合する部位とは異なる部位においてＩｇＧと結合する。

【0064】

支持体５の表面にＤＮＡアプタマーを固定する方法は以下のとおりとした。まず、支持体５の表面を、熱水処理等を施すことで親水化した。次に、支持体５の表面を、シランカップリング効果を利用して、飽和３－アミノプロピルトリエトキシシランでコートした。次に、ジベンゾシクロオクチン- N-ヒドロキシコハク酸イミド（Ｄｉｂｅｎｚｏｃｙｃｌｏｏｃｔｙｎｅ－Ｎ－ｈｙｄｒｏｘｙｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌ ｅｓｔｅｒ）を添加することにより、３－アミノプロピルトリエトキシシランがもつアミノ基を、ジベンゾシクロオクチン（Ｄｉｂｅｎｚｏｃｙｃｌｏｏｃｔｙｎｅ）基に置換した。次に、５’末端がアジド基で修飾されているＤＮＡアプタマーを、支持体５の表面に固定した。なお、支持体側結合部６を支持体５に固定する方法は、他の方法であってもよい。

【0065】

（３－３）計測方法の実施
前記（３－２）製造した支持体５の表面に、ＩｇＧを含む緩衝液（以下ではＩｇＧ含有緩衝液とする）を滴下した。ＩｇＧ含有緩衝液のｐＨは５．０であった。ＩｇＧ含有緩衝液の組成は、ＩｇＧを含む点を除き、第２緩衝液１１と同じであった。

【0066】

なお、ＩｇＧ含有緩衝液の組成は、ＩｇＧを含む点以外でも、第２緩衝液１１の組成と異なっていてもよい。ただし、ＩｇＧ含有緩衝液のｐＨは、第２緩衝液１１のｐＨで同じであることが好ましい。ＩｇＧ含有緩衝液のｐＨと、第２緩衝液１１のｐＨとが同じである場合、後の工程においてｐＨの変化を計測することが容易になる。

【0067】

ＩｇＧ含有緩衝液におけるＩｇＧの濃度は、１０ｎＭと５０ｎＭとの２水準とした。また、比較例として、支持体５の表面に、ＩｇＧを含まない第２緩衝液１１のみを滴下した。
次に、支持体５の表面に、前記（３－１）で製造した複合体３を滴下した。滴下後、６０分間静置した。

【0068】

次に、支持体５の表面を、洗い用の緩衝液で３回洗浄した、その結果、支持体５に固定されていない光応答性リポソーム７は除去された。洗い用の緩衝液の組成は、第２緩衝液１１の組成と同じであった。洗い用の緩衝液のｐＨは５．０であった。

【0069】

次に、支持体５の表面を、１００μＬの第２緩衝液１１で浸した。次に、図５に示すように、支持体５の表面に接する第２緩衝液１１に、参照電極２３を挿入した。参照電極２３は、銀／塩化銀参照電極であった。参照電極２３は、ＥＳＡ製の６６－ＥＥ００９であった。参照電極２３の挿入後、第２緩衝液１１のｐＨの計測を開始した。

【0070】

支持体５を用いて、紫外光を照射する前の表面電位を計測した。このときの表面電位を以下では初期表面電位とする。初期表面電位は約７４５ｍＶであった。
次に、図５に示すように、支持体５の全体領域に紫外光を５秒間照射した。紫外光における波長ピークは３６５ｎｍであった。紫外光の照射強度は、１００μｍ×１００μｍの照射領域当たり１２０μＷであった。

【0071】

紫外光の照射後、支持体５を用いて、表面電位を計測した。このときの表面電位を、以下では光照射後表面電位とする。ＩｇＧ含有緩衝液におけるＩｇＧの濃度が１０ｎＭであった場合、光照射後表面電位は、初期表面電位に比べて、約３．７５ｍＶ低下した。ＩｇＧ含有緩衝液におけるＩｇＧの濃度が５０ｎＭであった場合、光照射後表面電位は、初期表面電位に比べて、１０．６０ｍＶ低下した。ＩｇＧ含有緩衝液の代わりに第２緩衝液１１のみを支持体５に滴下した場合、光照射後表面電位は、初期表面電位と同じであった。計測結果を表１に示す。

【0072】

【表1】

表１における「表面電位変化量」は、光照射後表面電位から初期表面電位を差し引いた値を意味する。表１における「標準偏差」は、複数回算出した「表面電位変化量」の標準偏差を意味する。

【0073】

支持体５の表面にＩｇＧ含有緩衝液を滴下した場合に光照射後表面電位が低下する理由は以下のとおりである。図５に示すように支持体５に固定された光応答性リポソーム７に紫外光を照射すると、図３、図５に示すように、光応答性リポソーム７に膜孔１９が生じた。すると、第１緩衝液９は、膜孔１９を通り、光応答性リポソーム７の外部に放出され、第２緩衝液１１と混合された。第１緩衝液９のｐＨは、第２緩衝液１１のｐＨよりも高い。その結果、第２緩衝液１１のｐＨが上昇した。

【0074】

数１に示すように、ネルンストの式によると、表面電位変化量とｐＨ変化量とは、負の比例関係にある。よって、第２緩衝液１１のｐＨが上昇することで、光照射後表面電位が低下した。

【0075】

【数1】

なお、支持体５に固定化されたＤＮＡアプタマーの密度は、ＤＮＡアプタマーとＩｇＧとの結合を相互干渉するほど高密度ではないことが好ましい。また、支持体５に固定化されたＤＮＡアプタマーの密度は、ＩｇＧの検出を可能にするだけの密度であることが好ましい。支持体５に固定化されたＤＮＡアプタマーの密度は、任意にコントロールすることが可能である。

【0076】

膜１３の大きさは、ＦｃＩＩＩペプチドとＩｇＧとの結合を相互干渉する大きさではないことが好ましい。また、膜１３の大きさは、ＩｇＧの検出を可能にするだけの量の第１緩衝液９を保持できる大きさであることが好ましい。膜１３の大きさは、任意にコントロールすることが可能である。

【0077】

４．光応答性リポソーム７、複合体３、計測システム１、及び計測方法が奏する効果
（１Ａ）光応答性リポソーム７は、第１の光を照射すれば膜孔１９を形成し、第１緩衝液９を外部に放出する。放出された第１緩衝液９は第２緩衝液１１と混ざる。第１緩衝液９の組成と、第２緩衝液１１の組成とは異なるため、第１緩衝液９の放出により、第２緩衝液１１の組成が変化する。計測システム１は、第２緩衝液１１の組成の変化に基づき被検出物質２１の量を計測する。そのため、計測システム１を用いれば、煩雑な工程を行わなくても、被検出物質の量を計測することができる。

【0078】

（１Ｂ）膜１３を構成するリン脂質１５として、例えば、不飽和状態である炭化水素鎖を有するリン脂質と、飽和状態である炭化水素鎖を有するリン脂質とを含むものを用いることができる。この場合、光応答性リポソーム７の使用温度において、リポソーム膜の面内で相分離が発生し、秩序相と無秩序相が共存した状態が形成されるという効果が得られる。

【0079】

（１Ｃ）膜１３を構成するアゾベンゼン化合物１７として、例えば、ＡｚｏＴＡＢを用いることができる。この場合、第１の光の照射によりＡｚｏＴＡＢが示すトランス体・シス体間の異性化によって、リポソーム膜の崩壊が惹起されるという効果が得られる。
（１Ｄ）例えば、第１緩衝液９と第２緩衝液１１との間にイオン勾配が存在する。この場合、光応答性リポソーム７に第１の光を照射したとき、第２緩衝液１１のイオン濃度が変化する。計測システム１は、第２緩衝液１１におけるイオン濃度の変化に基づき被検出物質の量を計測することができる。

【0080】

（１Ｅ）例えば、第１緩衝液９と第２緩衝液１１との間にプロトン勾配が存在する。この場合、光応答性リポソーム７に第１の光を照射したとき、第２緩衝液１１のｐＨが変化する。計測システム１は、第２緩衝液１１におけるｐＨの変化に基づき被検出物質の量を計測することができる。

【0081】

５．他の実施形態
以上、本開示の実施形態について説明したが、本開示は上述の実施形態に限定されることなく、種々変形して実施することができる。

【0082】

（１）上記実施形態における１つの構成要素が有する複数の機能を、複数の構成要素によって実現したり、１つの構成要素が有する１つの機能を、複数の構成要素によって実現したりしてもよい。また、複数の構成要素が有する複数の機能を、１つの構成要素によって実現したり、複数の構成要素によって実現される１つの機能を、１つの構成要素によって実現したりしてもよい。また、上記実施形態の構成の一部を省略してもよい。また、上記実施形態の構成の少なくとも一部を、他の上記実施形態の構成に対して付加又は置換してもよい。

【0083】

（２）上述した光応答性リポソーム、複合体の他、それらを構成要素とする製品やシステム、種々の形態で本開示を実現することもできる。

【符号の説明】

【0084】

１…計測システム、３…複合体、５…支持体、６…支持体側結合部、７…光応答性リポソーム、８…光源、９…第１緩衝液、１１…第２緩衝液、１３…膜、１４…膜側結合部、１５…リン脂質、１７…アゾベンゼン化合物、１９…膜孔、２１…被検出物質、２３…参照電極

【図1】

【図2】

【図3】

【図4】

【図5】

【配列表】

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