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(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B2)
(11)【特許番号】
(24)【登録日】2023-01-20
(45)【発行日】2023-01-30
(54)【発明の名称】肝機能改善剤
(51)【国際特許分類】
A61K 31/137 20060101AFI20230123BHJP
A61P 43/00 20060101ALI20230123BHJP
A23L 33/10 20160101ALI20230123BHJP
A61P 39/06 20060101ALN20230123BHJP
A61P 1/16 20060101ALN20230123BHJP
【ＦＩ】
A61K31/137
A61P43/00 105
A61P43/00 111
A23L33/10
A61P39/06
A61P1/16
【請求項の数】
5
(21)【出願番号】P 2022043177
(22)【出願日】2022-03-17
(62)【分割の表示】P 2020195482の分割
【原出願日】2020-11-25
(65)【公開番号】P2022084029
(43)【公開日】2022-06-06
【審査請求日】2022-07-15
【早期審査対象出願】
(73)【特許権者】
【識別番号】504132272
【氏名又は名称】国立大学法人京都大学
(73)【特許権者】
【識別番号】596120326
【氏名又は名称】株式会社サン・クロレラ
(74)【代理人】
【識別番号】110000084
【氏名又は名称】特許業務法人アルガ特許事務所
(72)【発明者】
【氏名】佐藤 健司
(72)【発明者】
【氏名】鄭 屹峰
(72)【発明者】
【氏名】藤島 雅基
(72)【発明者】
【氏名】奥村 衣梨
【審査官】参鍋 祐子
(56)【参考文献】
【文献】特開２０１８－０７０５６９（ＪＰ，Ａ）
【文献】J. Food Bioact.，2020年03月31日，Vol.9，pp.52-57
【文献】PLoS ONE，2012年，Vol.7, Issue 4, e35143，pp.1-7
【文献】Nutrients，2019年，Vol.11,462，doi:10.3390/nu11020462
【文献】Life Sciences，2005年，Vol.76，pp.3001-3013
【文献】Food Funct.，2014年，Vol.5，pp.3252-3260
(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)
Ａ６１Ｋ ３１／００
Ａ２３Ｌ ３３／００
ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩＩ）
ＣＡｐｌｕｓ／ＲＥＧＩＳＴＲＹ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＥＭＢＡＳＥ／ＢＩＯＳＩＳ（ＳＴＮ）
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
フェネチルアミン又はその塩を有効成分とするＧＡＰＤＨ増強剤（非アルコール性脂肪性肝疾患予防又は治療剤を除く）。
【請求項2】
フェネチルアミン又はその塩を有効成分とするメチルグリオキサール又はグリオキサールの生成抑制剤（非アルコール性脂肪性肝疾患予防又は治療剤を除く）。
【請求項3】
経口摂取用である請求項１又は２記載の剤。
【請求項4】
フェネチルアミン又はその塩を含有するＧＡＰＤＨ増強用食品組成物（非アルコール性脂肪性肝疾患予防又は治療用食品組成物を除く）。
【請求項5】
フェネチルアミン又はその塩を含有するメチルグリオキサール又はグリオキサールの生成抑制用食品組成物（非アルコール性脂肪性肝疾患予防又は治療用食品組成物を除く）。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、肝機能改善剤に関する。
【背景技術】
【0002】
肝臓は、代謝、排出、解毒、体液の恒常性の維持、十二指腸への胆汁の分泌など多くの機能を担っている、体内最大の臓器である。肝臓の疾患としては、脂肪肝、肝炎、肝硬変、肝がんなどが知られているが、脂肪肝や肝炎では、血液中のＡＳＴ（アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ）値、ＡＬＴ（アラニンアミノトランスフェラーゼ）値に代表される肝機能マーカーが上昇することが知られている。
肝機能が低下すると、生体で必要な物質の合成ができなくなる、生体で生成した老廃物の分解ができなくなる、体外からの有害物質や薬物の分解ができなくなり、肝臓の機能がさらに低下する。
肝機能が低下すると、生体で必要な物質の合成ができなくなる、生体で生成した老廃物の分解ができなくなる、体外からの有害物質や薬物の分解ができなくなり、肝臓の機能がさらに低下する。
【0003】
これらの肝機能を改善する薬剤としては、ウルソデオキシコール酸、グリチルリチンなどが挙げられる。また、肝機能を改善するために、アルコール摂取の制限、糖質、脂質の制限などの食事療法、肥満を防ぐための運動などが勧められている。
【0004】
また、肝機能改善剤として、ニンニクと梅と牡蠣の組み合わせ（特許文献１）、マルチトール（特許文献２）、種々の植物抽出物とアミノ酸などの組み合わせ（特許文献３）などが報告されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0005】
【文献】特開２０１３－２４１３４０号公報
【文献】特開２０１４－１２９３２４号公報
【文献】特開２０１７－１４１１９９号公報
【文献】米国特許出願公開第２００６／０２０４５９９号
【文献】米国特許出願公開第２００８／０２６０８８１号
【文献】米国特許第９５２６７９３号公報
【非特許文献】
【0006】
【文献】日本香料工業会ホームページ
【文献】Ｔｏｘｉｃｏｌ．Ｒｅｓ．Ｖｏｌ．３０，Ｎｏ．３，ｐｐ１９３－１９８（２０１４）
【文献】Ｃａｎ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．８８；２７３－２８４（２０１０）
【文献】Ｂｉｏｃｈｉｍｉｃａ ｅｔ Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａ Ａｃｔａ １６３７（２００３）９８－１０６
【文献】ＩＮＴＥＲＮＡＴＩＯＮＡＬ ＪＯＵＲＮＡＬ ＯＦ ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＭＥＤＩＣＩＮＥ ４１；３５２７－３５３６，２０１８
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0007】
しかしながら、これまでに報告されている肝機能改善剤の有効性は十分でなく、さらに新たな肝機能改善剤が求められていた。
従って、本発明の課題は、高い有効性を有する新たな肝機能改善剤を提供することにある。
従って、本発明の課題は、高い有効性を有する新たな肝機能改善剤を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【0008】
そこで本発明者は、種々の成分を用いて肝機能マーカーに対する作用だけでなく、解糖系の酵素、酸化ストレスなどのマーカーに対する作用も検討したところ、全く意外にも、フェニルアルキルアミン又はその塩が、微量の経口投与で、血液中のＡＳＴおよびＡＬＴから選ばれる肝機能マーカーを低下させ、酸化ストレスを軽減し、ＧＡＰＤＨ（グリセルアルデヒド－３－リン酸脱水素酵素）を増強し、短鎖アルデヒドの生成を抑制し、肝機能改善剤又は肝機能改善用食品組成物として有用であることを見出し、本発明を完成した。
【0009】
すなわち、本発明は、次の発明［１］～［１３］を提供するものである。
［１］フェニルアルキルアミン又はその塩を有効成分とする肝機能改善剤。
［２］フェニルアルキルアミン又はその塩を有効成分とする、血液中のＡＳＴおよびＡＬＴから選ばれる肝機能マーカーの低下剤。
［３］フェニルアルキルアミン又はその塩を有効成分とする酸化ストレス軽減剤。
［４］フェニルアルキルアミン又はその塩を有効成分とするＧＡＰＤＨ増強剤。
［５］フェニルアルキルアミン又はその塩を有効成分とする短鎖アルデヒド生成抑制剤。
［６］有効成分が、フェニルアルキルアミン又はその塩を含む藻類抽出物である［１］～［５］のいずれかに記載の剤。
［７］経口摂取用である［１］～［６］のいずれかに記載の剤。
［８］フェニルアルキルアミン又はその塩を含有する肝機能改善用食品組成物。
［９］フェニルアルキルアミン又はその塩を含有する、血液中のＡＳＴおよびＡＬＴから選ばれる肝機能マーカーの低下用食品組成物。
［１０］フェニルアルキルアミン又はその塩を含有する酸化ストレス軽減用食品組成物。
［１１］フェニルアルキルアミン又はその塩を含有するＧＡＰＤＨ増強用食品組成物。
［１２］フェニルアルキルアミン又はその塩を含有する短鎖アルデヒド生成抑制用食品組成物。
［１３］フェニルアルキルアミン又はその塩を含む藻類抽出物を含有するものである［８］～［１２］のいずれかに記載の組成物。
［１］フェニルアルキルアミン又はその塩を有効成分とする肝機能改善剤。
［２］フェニルアルキルアミン又はその塩を有効成分とする、血液中のＡＳＴおよびＡＬＴから選ばれる肝機能マーカーの低下剤。
［３］フェニルアルキルアミン又はその塩を有効成分とする酸化ストレス軽減剤。
［４］フェニルアルキルアミン又はその塩を有効成分とするＧＡＰＤＨ増強剤。
［５］フェニルアルキルアミン又はその塩を有効成分とする短鎖アルデヒド生成抑制剤。
［６］有効成分が、フェニルアルキルアミン又はその塩を含む藻類抽出物である［１］～［５］のいずれかに記載の剤。
［７］経口摂取用である［１］～［６］のいずれかに記載の剤。
［８］フェニルアルキルアミン又はその塩を含有する肝機能改善用食品組成物。
［９］フェニルアルキルアミン又はその塩を含有する、血液中のＡＳＴおよびＡＬＴから選ばれる肝機能マーカーの低下用食品組成物。
［１０］フェニルアルキルアミン又はその塩を含有する酸化ストレス軽減用食品組成物。
［１１］フェニルアルキルアミン又はその塩を含有するＧＡＰＤＨ増強用食品組成物。
［１２］フェニルアルキルアミン又はその塩を含有する短鎖アルデヒド生成抑制用食品組成物。
［１３］フェニルアルキルアミン又はその塩を含む藻類抽出物を含有するものである［８］～［１２］のいずれかに記載の組成物。
【発明の効果】
【0010】
本発明の肝機能改善剤は、微量のフェニルアルキルアミン又はその塩の経口投与により、血液中のＡＳＴおよびＡＬＴを低下させるだけでなく、ＧＡＰＤＨを増強することにより短鎖アルデヒドの生成を抑制し、酸化ストレスを軽減し、抗酸化酵素活性も増強して、結果的に肝機能を改善する。
【図面の簡単な説明】
【0011】
【図1】体重と肝臓重量の変化を示す図である。ＮＤ：通常食群、ＨＦＤ：高脂肪食群、ＷＥＣ：クロレラ熱水抽出物摂取群、ＰＬ：フェネチルアミン低用量群、ＰＨ：フェネチルアミン高用量群（以下の図において同じ）。
【図2】血漿中ＡＳＴ濃度およびＡＬＴ濃度の変化を示す図である。
【図3】ＴＢＡＲＳ、ＧＳＨ／ＧＳＳＧおよびＳＯＤ様活性の変化を示す図である。
【図4】ＳＯＤ－１の変化を示す図である。
【図5】ＧＯＸ－１の変化を示す図である。
【図6】ＧＡＰＤＨの変化を示す図である。
【図7】β－アクチンの変化を示す図である。
【図8】メチルグリオキサールの変化を示す図である。
【図9】システインの変化を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【0012】
本発明の肝機能改善剤の有効成分は、フェニルアルキルアミン又はその塩である。
フェニルアルキルアミンとしては、フェニル－Ｃ１－Ｃ６アルキルアミンが挙げられ、フェニルＣ１－Ｃ４アルキルアミンがより好ましい。具体的には、ベンジルアミン、フェネチルアミン、３－フェニルプロピルアミン、２－フェニルプロピルアミン、４－フェニルブチルアミン、５－フェニルペンチルアミンなどが挙げられる。このうち、フェネチルアミンがさらに好ましい。
また、フェニルアルキルアミンのフェニル基には、ハロゲン原子、ヒドロキシ基、Ｃ１－Ｃ３アルキル基、アルコキシ基などが置換していてもよい。
フェニルアルキルアミンとしては、フェニル－Ｃ１－Ｃ６アルキルアミンが挙げられ、フェニルＣ１－Ｃ４アルキルアミンがより好ましい。具体的には、ベンジルアミン、フェネチルアミン、３－フェニルプロピルアミン、２－フェニルプロピルアミン、４－フェニルブチルアミン、５－フェニルペンチルアミンなどが挙げられる。このうち、フェネチルアミンがさらに好ましい。
また、フェニルアルキルアミンのフェニル基には、ハロゲン原子、ヒドロキシ基、Ｃ１－Ｃ３アルキル基、アルコキシ基などが置換していてもよい。
【0013】
フェネチルアミンは、チーズ、魚の加工品、ワイン、キャベツ、ココア、ビールなどに存在する化合物である。欧米では、種々の食品に対して、香りの再現、風味向上の目的で、着香剤として用いられている。日本においても、食品添加物香料としての使用が認められている（非特許文献１）。
【0014】
アカシアが体重増加抑制作用を示し、フェネチルアミンがアカシアに含まる成分であることが知られている（特許文献４）。藍藻類がダイエットサプリメントとして有用であり、当該藍藻類にはフィコシアニンおよびフェネチルアミンが含まれていることが報告されている（特許文献５）。また、フェネチルアミンの硝酸塩又は亜硝酸塩が、ダイエットサプリメントとして使用できることが報告されている（特許文献６）。
しかし、フェネチルアミンなどのフェニルアルキルアミンについての肝臓に対する作用は、全く知られていない。
しかし、フェネチルアミンなどのフェニルアルキルアミンについての肝臓に対する作用は、全く知られていない。
【0015】
フェニルアルキルアミンの塩としては、塩酸塩、硫酸塩、硝酸塩、リン酸塩などの無機酸塩、酢酸塩、酒石酸塩、クエン酸塩などの有機酸塩が挙げられる。
【0016】
フェニルアルキルアミン又はその塩は、後記実施例に記載のように、マウスに対し１０μｇ／ｋｇ／ｄａｙという低用量の経口投与で、高脂肪食で上昇したＡＳＴおよびＡＬＴを有意に低下させる。
また、フェニルアルキルアミン又はその塩は、前記同様の低用量で、高脂肪食で上昇した酸化ストレス（脂質過酸化）のマーカーであるＴＢＡＲＳ（２－チオバルビツール酸反応性物質）を有意に低下させる。また、抗酸化酵素であるＳＯＤ様活性を増強する。
また、フェニルアルキルアミン又はその塩は、前記同様の低用量で、高脂肪食で減少した解糖系酵素であるＧＡＰＤＨを有意に増強する。さらに、フェニルアルキルアミン又はその塩は、前記同様の低用量で、グルタチオンを増強し、システインも増強し、一方、短鎖アルデヒド（メチルグリオキサール）を減少させる。
また、フェニルアルキルアミン又はその塩は、前記同様の低用量で、高脂肪食で上昇した酸化ストレス（脂質過酸化）のマーカーであるＴＢＡＲＳ（２－チオバルビツール酸反応性物質）を有意に低下させる。また、抗酸化酵素であるＳＯＤ様活性を増強する。
また、フェニルアルキルアミン又はその塩は、前記同様の低用量で、高脂肪食で減少した解糖系酵素であるＧＡＰＤＨを有意に増強する。さらに、フェニルアルキルアミン又はその塩は、前記同様の低用量で、グルタチオンを増強し、システインも増強し、一方、短鎖アルデヒド（メチルグリオキサール）を減少させる。
【0017】
ここで、短鎖アルデヒドであるメチルグリオキサールは、生体に、糖化ストレス、酸化ストレスをかけ、肝疾患の進行に影響していることが知られている（非特許文献２および３）。一方、メチルグリオキサールは、グリセルアルデヒド３－リン酸（ＧＡＰ）又はその異性体であるジヒドロキシアセトンリン酸（ＤＨＡＰ）から生成し、その両者を代謝する酵素がＧＡＰＤＨである。またメチルグリオキサールはシステインと反応することが知られている。メチルグリオキサールの量は、赤血球のＧＡＰＤＨ活性と反比例し、ＤＨＡＰと比例する。ＧＡＰＤＨがＧＡＰ/ＤＨＡＰを代謝すればメチルグリオキサールは減少する（非特許文献４）。しかし、ＧＡＰＤＨは変動が少ないとされており、いわゆるＨｏｕｓｅ ｋｅｅｐｉｎｇ 遺伝子として考えられている。マウスにエタノールを投与して急性肝炎を誘発しても減少傾向を示すが有意な差は認められない（非特許文献５）。
今回、高脂肪食をマウスに投与すると、肝臓に脂肪が蓄積し、遊離のシステインが激減していた。これは高脂肪食により生じたアルデヒドがシステインと反応して、肝臓中のシステインを枯渇させたと考えられる。これに対し、フェニルアルキルアミンは、ＧＡＰＤＨを２倍弱増加し、その結果、短鎖アルデヒドのメチルグリオキサールを減少させ、酸化ストレスを低下させ、その結果短鎖アルデヒドと反応しやすいシステインを維持する。これがＳＯＤなどのシステインを活性中に持つ抗酸化酵素活性を増加させ、抗酸化システムを維持する。このようにフェニルアルキルアミンは、高脂肪食による酸化ストレスを軽減し、ＧＡＰＤＨの発現増加により短鎖アルデヒドの生成を抑制することによって、肝機能を改善するものと考えられる。
今回、高脂肪食をマウスに投与すると、肝臓に脂肪が蓄積し、遊離のシステインが激減していた。これは高脂肪食により生じたアルデヒドがシステインと反応して、肝臓中のシステインを枯渇させたと考えられる。これに対し、フェニルアルキルアミンは、ＧＡＰＤＨを２倍弱増加し、その結果、短鎖アルデヒドのメチルグリオキサールを減少させ、酸化ストレスを低下させ、その結果短鎖アルデヒドと反応しやすいシステインを維持する。これがＳＯＤなどのシステインを活性中に持つ抗酸化酵素活性を増加させ、抗酸化システムを維持する。このようにフェニルアルキルアミンは、高脂肪食による酸化ストレスを軽減し、ＧＡＰＤＨの発現増加により短鎖アルデヒドの生成を抑制することによって、肝機能を改善するものと考えられる。
【0018】
フェニルアルキルアミン又はその塩は、前記のような種々の生理作用により肝機能改善剤および肝機能改善用食品組成物として有用である。従って、本発明の肝機能改善剤および肝機能改善用食品組成物には、フェニルアルキルアミン又はその塩を含有すればよいが、フェニルアルキルアミン又はその塩を含有する種々の植物抽出物を含有させてもよい。
このようなフェニルアルキルアミン又はその塩を含有する植物抽出物としては、フェネチルアミン又はその塩を含有する藻類抽出物が好ましく、フェネチルアミン又はその塩を含有するクロレラ抽出物がより好ましい。クロレラとしては、Ｃｈｌｏｒｅｌｌａ ｐｙｒｅｎｏｉｄｏｓａが好ましい。
また、植物抽出物としては、水、アルコール、多価アルコールなどによる抽出物が挙げられるが、水抽出物が好ましい。なお、ここで水は冷水でも熱水でもよい。抽出方法は、浸漬法、ソックスレー法等でもよい。
このようなフェニルアルキルアミン又はその塩を含有する植物抽出物としては、フェネチルアミン又はその塩を含有する藻類抽出物が好ましく、フェネチルアミン又はその塩を含有するクロレラ抽出物がより好ましい。クロレラとしては、Ｃｈｌｏｒｅｌｌａ ｐｙｒｅｎｏｉｄｏｓａが好ましい。
また、植物抽出物としては、水、アルコール、多価アルコールなどによる抽出物が挙げられるが、水抽出物が好ましい。なお、ここで水は冷水でも熱水でもよい。抽出方法は、浸漬法、ソックスレー法等でもよい。
【0019】
本発明の肝機能改善剤又は肝機能改善用食品組成物は、経口摂取用の形態とするのが好ましい。経口摂取用の形態としては、例えば、錠剤、カプセル剤、顆粒剤、糖衣錠、丸剤、細粒剤、散剤、粉剤、徐放性製剤、懸濁液、エマルジョン剤、シロップ剤、乳剤、凍結乾燥剤、液剤、エリキシル剤、経口ゼリー剤、ドリンク剤、ガム、菓子類等が挙げられる。
【0020】
また、肝機能改善剤又は肝機能改善用食品組成物の経口摂取用の形態は、常法によって製造でき、フェニルアルキルアミン又はその塩、あるいはフェニルアルキルアミン又はその塩を含む植物抽出物を単独で使用してもよく、薬学的又は食品として許容される担体と組み合わせて使用してもよい。当該薬学的又は食品に許容される担体としては、例えば、賦形剤、結合剤、崩壊剤、界面活性剤、滑沢剤、流動性促進剤、矯味剤、着色剤、香料、希釈剤、殺菌剤、浸透圧調整剤、ｐＨ調整剤、乳化剤、防腐剤、安定化剤、吸収助剤、酸化防止剤、紫外線吸収剤、湿潤剤、増粘剤、光沢剤、活性増強剤、抗炎症剤、等張化剤、無痛化剤、矯臭剤等が挙げられる。
【0021】
結合剤としては、例えば、デンプン、デキストリン、アラビアゴム末、ゼラチン、ヒドロキシプロピルスターチ、メチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ヒドロキシプロピルセルロース、結晶セルロース、エチルセルロース、ポリビニルピロリドン、マクロゴール等が挙げられる。
【0022】
崩壊剤としては、例えば、デンプン、ヒドロキシプロピルスターチ、カルボキシメチルセルロースナトリウム、カルボキシメチルセルロースカルシウム、カルボキシメチルセルロース、低置換ヒドロキシプロピルセルロース等が挙げられる。
【0023】
界面活性剤としては、例えば、ラウリル硫酸ナトリウム、大豆レシチン、ショ糖脂肪酸エステル、ポリソルベート８０等が挙げられる。
滑沢剤としては、例えば、タルク、ロウ類、水素添加植物油、ショ糖脂肪酸エステル、ステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸カルシウム、ステアリン酸アルミニウム、ポリエチレングリコール等が挙げられる。
流動性促進剤としては、例えば、軽質無水ケイ酸、乾燥水酸化アルミニウムゲル、合成ケイ酸アルミニウム、ケイ酸マグネシウム等が挙げられる。
滑沢剤としては、例えば、タルク、ロウ類、水素添加植物油、ショ糖脂肪酸エステル、ステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸カルシウム、ステアリン酸アルミニウム、ポリエチレングリコール等が挙げられる。
流動性促進剤としては、例えば、軽質無水ケイ酸、乾燥水酸化アルミニウムゲル、合成ケイ酸アルミニウム、ケイ酸マグネシウム等が挙げられる。
【0024】
希釈剤としては、例えば、注射用蒸留水、生理食塩水、ブドウ糖水溶液、オリーブ油、ゴマ油、ラッカセイ油、ダイズ油、トウモロコシ油、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール等が挙げられる。
【0025】
また、本発明の肝機能改善剤又は肝機能改善用食品組成物の有効成分であるフェニルアルキルアミン又はその塩を使用する際の投与量に厳格な制限はない。対象者や症状等の様々な使用態様によって得られる効果が異なるため、適宜投与量を設定することが望ましいが、肝機能改善作用の点で、フェニルアルキルアミン又はその塩として成人１日当たり、０．１ｍｇ～２００ｍｇとするのが好ましく、０．５ｍｇ～１５０ｍｇとするのがより好ましく、１ｍｇ～１００ｍｇとするのがより好ましい。
【実施例】
【0026】
次に実施例を挙げて本発明を詳細に説明するが、本発明は何らこれに限定されるものではない。
【0027】
実施例１
【0028】
（１）材料および方法
ア．材料
Ｃｈｌｏｒｅｌｌａ ｐｙｒｅｎｏｉｄｏｓａ （ＷＥＣ）の熱水抽出物を調製し、Ｓｕｎ Ｃｈｌｏｒｅｌｌａ （Ｋｙｏｔｏ， Ｊａｐａｎ）から供給を受けた。
フェネチルアミン、プロテイナーゼ阻害剤カクテル、ブチルヒドロキシトルエン（ＢＨＡ）、ジエチレントリアミン五酢酸（ＤＴＰＡ）、１，１，３，３‐テトラエトキシプロパン（ＴＥＰ）、チオバルビツール酸（ＴＢＡ）、グルタチオン（ＧＳＨ）、グルタチオンジスルフィド（ＧＳＳＧ）、Ｎ‐エチルマレイミド（ＮＥＭ）、および増強化学蛍光（ＥＣＬ）試薬をＮａｃａｌａｉ Ｔｅｓｑｕｅ（日本、京都）から入手した。
ヘパリンナトリウムはニプロ(大阪、日本)から入手した。
細胞溶解試薬は、Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ，ＵＳＡ）から入手した。マウススーパーオキシドジスムターゼ（ＳＯＤ）－１およびマウスグルタチオンペルオキシダーゼ（ＧＰＸ）１に対するウサギ免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）は、Ａｂｃａｍ（Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ，ＵＫ）から入手した。
マウスモノクローナル抗体を、ＧＡＰＤＨおよびβ－ａｃｔｉｎに反応できる、グリセルアルデヒド－３－リン酸デヒドロゲナーゼ（ＧＡＰＤＨ）およびβ－ａｃｔｉｎは、Ｐｒｏｔｅｉｎｔｅｃｈ Ｇｒｏｕｐ（Ｃｈｉｃａｇｏ，ＩＬ，ＵＳＡ）およびＳａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（Ｄａｌｌａｓ，ＴＸ，ＵＳＡ）から入手した。
ウサギおよびマウスＩｇＧに対するヤギＩｇＧ－西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）結合体を、Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（Ｄａｎｖｅｒｓ，ＭＡ，ＵＳＡ）から入手した。
ア．材料
Ｃｈｌｏｒｅｌｌａ ｐｙｒｅｎｏｉｄｏｓａ （ＷＥＣ）の熱水抽出物を調製し、Ｓｕｎ Ｃｈｌｏｒｅｌｌａ （Ｋｙｏｔｏ， Ｊａｐａｎ）から供給を受けた。
フェネチルアミン、プロテイナーゼ阻害剤カクテル、ブチルヒドロキシトルエン（ＢＨＡ）、ジエチレントリアミン五酢酸（ＤＴＰＡ）、１，１，３，３‐テトラエトキシプロパン（ＴＥＰ）、チオバルビツール酸（ＴＢＡ）、グルタチオン（ＧＳＨ）、グルタチオンジスルフィド（ＧＳＳＧ）、Ｎ‐エチルマレイミド（ＮＥＭ）、および増強化学蛍光（ＥＣＬ）試薬をＮａｃａｌａｉ Ｔｅｓｑｕｅ（日本、京都）から入手した。
ヘパリンナトリウムはニプロ(大阪、日本)から入手した。
細胞溶解試薬は、Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ，ＵＳＡ）から入手した。マウススーパーオキシドジスムターゼ（ＳＯＤ）－１およびマウスグルタチオンペルオキシダーゼ（ＧＰＸ）１に対するウサギ免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）は、Ａｂｃａｍ（Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ，ＵＫ）から入手した。
マウスモノクローナル抗体を、ＧＡＰＤＨおよびβ－ａｃｔｉｎに反応できる、グリセルアルデヒド－３－リン酸デヒドロゲナーゼ（ＧＡＰＤＨ）およびβ－ａｃｔｉｎは、Ｐｒｏｔｅｉｎｔｅｃｈ Ｇｒｏｕｐ（Ｃｈｉｃａｇｏ，ＩＬ，ＵＳＡ）およびＳａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（Ｄａｌｌａｓ，ＴＸ，ＵＳＡ）から入手した。
ウサギおよびマウスＩｇＧに対するヤギＩｇＧ－西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）結合体を、Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（Ｄａｎｖｅｒｓ，ＭＡ，ＵＳＡ）から入手した。
【0029】
イ．動物実験
雄Ｃ５７ｂｌ／６Ｊマウス（７週齢、２１～２３ｇ）を日本ＳＬＣ（静岡、日本）から購入した。全てのマウスを以下のように無作為に６群に分けた（ｎ＝６）。
マウスには通常食と水道水（ＮＤ群）、高脂肪食（カロリーベースで６０％、ＣＬＥＡ日本）と水道水（ＨＦＤ群）、１００ｍｇ／ｋｇ体重の水道水中の高脂肪食とＷＥＣ（ＷＥＣ群）、および１０と１００μｇ／ｋｇ体重の水道水中の高脂肪食とフェネチルアミン（ＰＬとＰＨ群）をそれぞれ与えた。
すべてのマウスを１２週間後、絶食せずにイソフルラン麻酔下で屠殺した。
ヘパリンナトリウム処理シリンジで下大静脈から血液を採取した。
血漿は、３５００ｒｐｍで５分間遠心分離することによって調製した。
肝臓を採取し、肝臓中の血液を、冷ＰＢＳを門脈に注入することによってパージした。血漿および肝臓は－３０℃で保存した。
雄Ｃ５７ｂｌ／６Ｊマウス（７週齢、２１～２３ｇ）を日本ＳＬＣ（静岡、日本）から購入した。全てのマウスを以下のように無作為に６群に分けた（ｎ＝６）。
マウスには通常食と水道水（ＮＤ群）、高脂肪食（カロリーベースで６０％、ＣＬＥＡ日本）と水道水（ＨＦＤ群）、１００ｍｇ／ｋｇ体重の水道水中の高脂肪食とＷＥＣ（ＷＥＣ群）、および１０と１００μｇ／ｋｇ体重の水道水中の高脂肪食とフェネチルアミン（ＰＬとＰＨ群）をそれぞれ与えた。
すべてのマウスを１２週間後、絶食せずにイソフルラン麻酔下で屠殺した。
ヘパリンナトリウム処理シリンジで下大静脈から血液を採取した。
血漿は、３５００ｒｐｍで５分間遠心分離することによって調製した。
肝臓を採取し、肝臓中の血液を、冷ＰＢＳを門脈に注入することによってパージした。血漿および肝臓は－３０℃で保存した。
【0030】
メチルグリオキサールは２，３－ｄｉａｍｉｎｏｎａｐｈｔｈａｌｅｎｅ（ＤＡＮ）により誘導化した後、液体クロマトグラフィータンデム質量分析計（ＬＣ－ＭＳ／ＭＳ）により定量した。
肝臓を同量のリン酸緩衝液中で磨砕し、破砕物に肝臓重量あたり６倍量（ｖ／ｗ）のエタノールを加えよく撹拌した。懸濁液を１４２００ｇで遠心分離し上清を得た。１０μＬの上清または標準物質の溶液に５０μＬの０．１％ ＤＡＮ溶液を加え５０℃で１時間反応させた。反応後、５００μＬの酢酸エチルを加え、よく撹拌した。酢酸エチル層を４００μＬ取り、乾固した。残渣を３０％アセトニトリル水溶液に溶解し、濾過後、ＬＣ－ＭＳ／ＭＳで分析した。０．１％ギ酸で平衡化したＩｎｅｒｔｓｉｌ ＯＤＳ－３カラム（２．１ｍｍ×２５０ｍｍ，ＧＬ Ｓｃｉｅｎｃｅ）を用いて流速０．２ｍＬ／分で０．１％ギ酸溶液（Ａ液）と０．１％ギ酸を含む８０％アセトニトリル（Ｂ液）を用いたグラジエント溶出により分離した。グラジエント条件は以下のとおり；０－１５分；０－１０％Ｂ溶液、１５－１８分；１００％Ｂ溶液、１８．１－２５分；０％Ｂ。カラムは４０℃に保った。検出はｍｕｌｔｉ ｒｅａｃｔｉｏｎ ｍｏｎｉｔｏｒｉｎｇモードで行った。
肝臓を同量のリン酸緩衝液中で磨砕し、破砕物に肝臓重量あたり６倍量（ｖ／ｗ）のエタノールを加えよく撹拌した。懸濁液を１４２００ｇで遠心分離し上清を得た。１０μＬの上清または標準物質の溶液に５０μＬの０．１％ ＤＡＮ溶液を加え５０℃で１時間反応させた。反応後、５００μＬの酢酸エチルを加え、よく撹拌した。酢酸エチル層を４００μＬ取り、乾固した。残渣を３０％アセトニトリル水溶液に溶解し、濾過後、ＬＣ－ＭＳ／ＭＳで分析した。０．１％ギ酸で平衡化したＩｎｅｒｔｓｉｌ ＯＤＳ－３カラム（２．１ｍｍ×２５０ｍｍ，ＧＬ Ｓｃｉｅｎｃｅ）を用いて流速０．２ｍＬ／分で０．１％ギ酸溶液（Ａ液）と０．１％ギ酸を含む８０％アセトニトリル（Ｂ液）を用いたグラジエント溶出により分離した。グラジエント条件は以下のとおり；０－１５分；０－１０％Ｂ溶液、１５－１８分；１００％Ｂ溶液、１８．１－２５分；０％Ｂ。カラムは４０℃に保った。検出はｍｕｌｔｉ ｒｅａｃｔｉｏｎ ｍｏｎｉｔｏｒｉｎｇモードで行った。
【0031】
システインは４－ビニルピリジン（４－ＶＰ）によりチオール基をラベルし、アミノ基を６－ａｍｉｎｏｑｕｉｎｏｌｙｌ－Ｎ－ｈｙｄｒｏｘｙｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌ ｃａｒｂａｍａｔｅ（ＡｃｃＱ）によりラベルし、ＬＣ－ＭＳ／ＭＳにより定量した。前述のマウスの肝臓の抽出物７５μＬに純水２２．５μＬを加え、さらに４－ＶＰ ２．５μＬを加え３７℃で２時間反応させた。反応液に酢酸エチル ５００μＬと純水 １００μＬを加えよく撹拌し、水相５０μＬを採取して、乾固した。ここに５０ｍＭ ホウ酸ナトリウム緩衝液 ｐＨ８．８を８０μＬ加え、さらに０．３％ ＡｃｃＱ アセトニトリル溶液２０μＬを加え５０℃で１０分反応させた。
反応液を前述のＬＣ－ＭＳ／ＭＳによりＭＲＭモードにより定量した。
反応液を前述のＬＣ－ＭＳ／ＭＳによりＭＲＭモードにより定量した。
【0032】
ウ．肝臓ＳＯＤ様活性
肝臓組織を、ＢｉｏＭａｓｈｅｒ ＩＩ （Ｎｉｐｐｉ， ２４ Ｔｏｋｙｏ， Ｊａｐａｎ）を使用することによって、０．２５Ｍスクロースおよび１ｍＭ ＥＤＴＡを含有する５体積（ｗ／ｖ）％の１０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ ７．４）中でホモジナイズした。
ホモジネートを１００００ｇで６０分間遠心分離し、肝臓中の可溶性化合物のＳＯＤ様活性アッセイのために上清を収集した。さらに、肝臓組織を同体積（ｗ／ｖ）のＰＢＳ中でホモジナイズし、次いで６体積（ｗ／ｖ）％のエタノールを添加した。得られた溶液を１００００ｇで１０分間遠心分離し、上清を回収し、低分子量化合物画分として使用した。上記上清中のＳＯＤ様活性は、ＷＳＴ－１ ＳＯＤアッセイキット（同仁、熊本、日本）を用いてアッセイした。
肝臓組織を、ＢｉｏＭａｓｈｅｒ ＩＩ （Ｎｉｐｐｉ， ２４ Ｔｏｋｙｏ， Ｊａｐａｎ）を使用することによって、０．２５Ｍスクロースおよび１ｍＭ ＥＤＴＡを含有する５体積（ｗ／ｖ）％の１０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ ７．４）中でホモジナイズした。
ホモジネートを１００００ｇで６０分間遠心分離し、肝臓中の可溶性化合物のＳＯＤ様活性アッセイのために上清を収集した。さらに、肝臓組織を同体積（ｗ／ｖ）のＰＢＳ中でホモジナイズし、次いで６体積（ｗ／ｖ）％のエタノールを添加した。得られた溶液を１００００ｇで１０分間遠心分離し、上清を回収し、低分子量化合物画分として使用した。上記上清中のＳＯＤ様活性は、ＷＳＴ－１ ＳＯＤアッセイキット（同仁、熊本、日本）を用いてアッセイした。
【0033】
エ．血漿生化学的分析
血漿アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（ＡＳＴ）およびアラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）活性は、東洋酵母に委託して測定した。
チオバルビツール酸反応性物質（ＴＢＡＲＳ）アッセイＤＴＰＡを１Ｍ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ３．５）に溶解し、２ｍＭ溶液を得た。ＢＨＡをメタノールに溶解し、１０％（ｗ／ｖ）溶液を得た。５ミリリットルのＤＴＰＡ溶液、４５ｍＬの熱水、および１００μＬのＢＨＡ溶液を０．１グラムのＴＢＡに添加して、０．２％のＴＢＡ溶液を得た。
この溶液をＴＢＡ試薬として用いた。
１０ミリリットルのメタノールを、マロンジアルデヒド前駆体である４．８μＬのＴＥＰ中に添加して、２ｍＭのＴＥＰ溶液を得た。ＴＥＰ溶液をメタノールで２～５０ｍＭに希釈し、標準溶液とした。肝臓組織を９体積（ｗ／ｖ）の１．１５％ ＫＣｌ溶液中でホモジナイズした。ホモジネートを２０００ｇで１分間遠心分離した。
上清または標準溶液（２５μＬ）をＴＢＡ試薬（１００μＬ）と混合し、ボルテックスし、次いで９５℃で６０分間加熱した。氷上で５分間冷却することによって反応を停止させた。反応剤を１４２００ｇで１０分間遠心分離した。上清の５１５ｎｍにおける吸光度を測定した。ＴＢＡＲＳ値は、μＭのマロンジアルデヒドとして表した。
グルタチオンおよびグルタチオンジスルフィドグルタチオンおよびそのジスルフィドの測定は、山田らの方法によるＮＥＭおよびＡｃｃＱでの誘導体化に続く液体クロマトグラフィータンデム質量分析（ＬＣ－ＭＳ／ＭＳ）によって決定した。
血漿アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（ＡＳＴ）およびアラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）活性は、東洋酵母に委託して測定した。
チオバルビツール酸反応性物質（ＴＢＡＲＳ）アッセイＤＴＰＡを１Ｍ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ３．５）に溶解し、２ｍＭ溶液を得た。ＢＨＡをメタノールに溶解し、１０％（ｗ／ｖ）溶液を得た。５ミリリットルのＤＴＰＡ溶液、４５ｍＬの熱水、および１００μＬのＢＨＡ溶液を０．１グラムのＴＢＡに添加して、０．２％のＴＢＡ溶液を得た。
この溶液をＴＢＡ試薬として用いた。
１０ミリリットルのメタノールを、マロンジアルデヒド前駆体である４．８μＬのＴＥＰ中に添加して、２ｍＭのＴＥＰ溶液を得た。ＴＥＰ溶液をメタノールで２～５０ｍＭに希釈し、標準溶液とした。肝臓組織を９体積（ｗ／ｖ）の１．１５％ ＫＣｌ溶液中でホモジナイズした。ホモジネートを２０００ｇで１分間遠心分離した。
上清または標準溶液（２５μＬ）をＴＢＡ試薬（１００μＬ）と混合し、ボルテックスし、次いで９５℃で６０分間加熱した。氷上で５分間冷却することによって反応を停止させた。反応剤を１４２００ｇで１０分間遠心分離した。上清の５１５ｎｍにおける吸光度を測定した。ＴＢＡＲＳ値は、μＭのマロンジアルデヒドとして表した。
グルタチオンおよびグルタチオンジスルフィドグルタチオンおよびそのジスルフィドの測定は、山田らの方法によるＮＥＭおよびＡｃｃＱでの誘導体化に続く液体クロマトグラフィータンデム質量分析（ＬＣ－ＭＳ／ＭＳ）によって決定した。
【0034】
オ．ウエスタンブロット法
肝臓のアリコート（約５０ｍｇ）を、ＢｉｏＭａｓｈｅｒ ＩＩ中で１％のプロテイナーゼ阻害剤を含有する３００μＬの細胞溶解試薬中でホモジナイズした。１２０００ｇで１５分間（４℃）遠心分離した後、上清中のタンパク質濃度をＢＣＡ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ａｓｓａｙ Ｋｉｔ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，Ｒｏｃｋｆｏｒｄ，ＩＬ，ＵＳＡ）によって測定し、同じ緩衝液で１０μｇ／１５μＬに調整した。タンパク質を、１２．５％ゲルを使用するＳＤＳ－ＰＡＧＥによって分離し、次いで、半乾燥ブロッティング装置（ＷＳＥ ４０２０、ＡＴＴＯ、Ｔｏｋｙｏ、Ｊａｐａｎ）を使用することによって、ＰＶＤＦ膜（０．４５μｍ毛穴、ＧＥ ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、シカゴ、ＩＬ、米国）に移した。
次いで、膜を４％ブロックでブロックしたエース（Ｍｅｇｍｉｌｋ Ｓｎｏｗ Ｂｒａｎｄ，Ｓａｐｐｏｒｏ，Ｊａｐａｎ）を室温で３０分間、続いて、２．６８ｍＭ ＫＣｌ、０．０５％（ｖ／ｖ）Ｔｗｅｅｎ ２０（ＴＢＳＴ）を含有する１３７ｍＭ ＮａＣｌを含有するｐＨ７．５の５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液で、室温で５分間（５回）洗浄した。
ＳＯＤ－１、ＧＰＸ－１、β－アクチン、およびＧＡＰＤＨに対する一次抗体を、０．０５％（ｖ／ｖ）Ｔｗｅｅｎ ２０を含有する０．４％ブロックエース溶液でそれぞれ１：５０００、１：５０００、１：１０００、および１：８０００に希釈した。一次抗体と一晩インキュベートした後、膜をＴＢＳＴで５分間（５回）洗浄した。ＨＲＰ－二次抗体結合体を、０．０５％（ｖ／ｖ） Ｔｗｅｅｎ ２０を含有する０．４％ブロックＡｃｅで１：１００００に希釈した。膜をＨＲＰ－二次抗体結合体と共に１時間インキュベートし、続いて室温で５分間（５回）ＴＢＳＴで洗浄した。膜をＥＣＬ試薬に１分間浸漬し、ＬｕｍｉｎｏグラフＩ（ＡＴＴＯ）を使用することによってバンドを検出した。
肝臓のアリコート（約５０ｍｇ）を、ＢｉｏＭａｓｈｅｒ ＩＩ中で１％のプロテイナーゼ阻害剤を含有する３００μＬの細胞溶解試薬中でホモジナイズした。１２０００ｇで１５分間（４℃）遠心分離した後、上清中のタンパク質濃度をＢＣＡ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ａｓｓａｙ Ｋｉｔ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，Ｒｏｃｋｆｏｒｄ，ＩＬ，ＵＳＡ）によって測定し、同じ緩衝液で１０μｇ／１５μＬに調整した。タンパク質を、１２．５％ゲルを使用するＳＤＳ－ＰＡＧＥによって分離し、次いで、半乾燥ブロッティング装置（ＷＳＥ ４０２０、ＡＴＴＯ、Ｔｏｋｙｏ、Ｊａｐａｎ）を使用することによって、ＰＶＤＦ膜（０．４５μｍ毛穴、ＧＥ ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、シカゴ、ＩＬ、米国）に移した。
次いで、膜を４％ブロックでブロックしたエース（Ｍｅｇｍｉｌｋ Ｓｎｏｗ Ｂｒａｎｄ，Ｓａｐｐｏｒｏ，Ｊａｐａｎ）を室温で３０分間、続いて、２．６８ｍＭ ＫＣｌ、０．０５％（ｖ／ｖ）Ｔｗｅｅｎ ２０（ＴＢＳＴ）を含有する１３７ｍＭ ＮａＣｌを含有するｐＨ７．５の５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液で、室温で５分間（５回）洗浄した。
ＳＯＤ－１、ＧＰＸ－１、β－アクチン、およびＧＡＰＤＨに対する一次抗体を、０．０５％（ｖ／ｖ）Ｔｗｅｅｎ ２０を含有する０．４％ブロックエース溶液でそれぞれ１：５０００、１：５０００、１：１０００、および１：８０００に希釈した。一次抗体と一晩インキュベートした後、膜をＴＢＳＴで５分間（５回）洗浄した。ＨＲＰ－二次抗体結合体を、０．０５％（ｖ／ｖ） Ｔｗｅｅｎ ２０を含有する０．４％ブロックＡｃｅで１：１００００に希釈した。膜をＨＲＰ－二次抗体結合体と共に１時間インキュベートし、続いて室温で５分間（５回）ＴＢＳＴで洗浄した。膜をＥＣＬ試薬に１分間浸漬し、ＬｕｍｉｎｏグラフＩ（ＡＴＴＯ）を使用することによってバンドを検出した。
【0035】
カ．統計解析
ある群とＨＦＤ群の間の同じ膜におけるウエスタンブロット法によって検出された蛋白質のバンド強度の差をｔ検定によって分析した。
ＨＦＤ群と他群間の他のパラメータの統計学的差は、一元配置分散分析を用いて分析し、続いて多重比較のためにＤｕｎｎｅｔｔ試験を行った。
この差はｐ＜０．０５で有意とみなされ、０．０５＜ｐ＜０．１で一定の傾向があった。
統計解析にはＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍ ７ソフトウェア（ＧｒａｐｈＰａｄ Ｓｏｆｔｗａｒｅ，ＣＡ，ＵＳＡ）を使用した。
ある群とＨＦＤ群の間の同じ膜におけるウエスタンブロット法によって検出された蛋白質のバンド強度の差をｔ検定によって分析した。
ＨＦＤ群と他群間の他のパラメータの統計学的差は、一元配置分散分析を用いて分析し、続いて多重比較のためにＤｕｎｎｅｔｔ試験を行った。
この差はｐ＜０．０５で有意とみなされ、０．０５＜ｐ＜０．１で一定の傾向があった。
統計解析にはＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍ ７ソフトウェア（ＧｒａｐｈＰａｄ Ｓｏｆｔｗａｒｅ，ＣＡ，ＵＳＡ）を使用した。
【0036】
（２）結果
ア．体重と肝臓重量
図１に示すように、高脂肪食を与えた群（ＨＦＤ、ＷＥＣ、ＰＬ、ＰＨ群）の体重は、４週間後に通常食を与えた群（ＮＤ群）よりも有意に高かった。しかし、ＷＥＣおよびフェネチルアミンの投与は体重増加に有意な影響を及ぼさなかった。ＨＦＤ群の肝重量（図１Ｃ）はＮＤ群より有意に高値であった。ＨＦＤ群の肝臓／体重比（図１Ｂ）は、ＮＤ群より高い傾向にあったが、統計学的な差はなかった。この比率は、ＨＦＤ群と比較してフェネチルアミン（ＰＬおよびＰＨ群）を投与したマウスで減少する傾向があった（ｐ＜０．１）。
ア．体重と肝臓重量
図１に示すように、高脂肪食を与えた群（ＨＦＤ、ＷＥＣ、ＰＬ、ＰＨ群）の体重は、４週間後に通常食を与えた群（ＮＤ群）よりも有意に高かった。しかし、ＷＥＣおよびフェネチルアミンの投与は体重増加に有意な影響を及ぼさなかった。ＨＦＤ群の肝重量（図１Ｃ）はＮＤ群より有意に高値であった。ＨＦＤ群の肝臓／体重比（図１Ｂ）は、ＮＤ群より高い傾向にあったが、統計学的な差はなかった。この比率は、ＨＦＤ群と比較してフェネチルアミン（ＰＬおよびＰＨ群）を投与したマウスで減少する傾向があった（ｐ＜０．１）。
【0037】
イ．血漿生化学的パラメータ
血漿ＡＳＴおよびＡＬＴ活性（図２ＡおよびＢ）は、ＨＦＤ群でＮＤ群よりも有意に高く、このことは高脂肪食摂食により肝障害が誘発されたことを示している。
これに対し、低用量のフェネチルアミン（１０μｇ／ｋｇ／日、ＰＬ群）の投与はＨＦＤ群と比較して血漿ＡＳＴおよびＡＬＴ活性を有意に低下させたが、高用量のフェネチルアミン（１００μｇ／ｋｇ／日、ＰＨ群）の投与はＡＬＴの低下傾向のみを示した。
血漿ＡＳＴおよびＡＬＴ活性（図２ＡおよびＢ）は、ＨＦＤ群でＮＤ群よりも有意に高く、このことは高脂肪食摂食により肝障害が誘発されたことを示している。
これに対し、低用量のフェネチルアミン（１０μｇ／ｋｇ／日、ＰＬ群）の投与はＨＦＤ群と比較して血漿ＡＳＴおよびＡＬＴ活性を有意に低下させたが、高用量のフェネチルアミン（１００μｇ／ｋｇ／日、ＰＨ群）の投与はＡＬＴの低下傾向のみを示した。
【0038】
ウ．肝臓における酸化ストレス
高脂肪食摂取(HFD群)は、通常食摂取(ND群)と比較して、肝臓抽出物中の脂質過酸化の指標であるチオバルビツール酸反応性物質(TBARS、図３Ａ)値を有意に増加させ、SOD様活性を低下させた(図３C)。
さらに、高脂肪食摂取群は、酸化ストレスマーカーであるグルタチオンジスルフィドに対するグルタチオンの比率（ＧＳＨ／ＧＳＳＧ、図３Ｂ）を低下させる傾向があった。これらの事実は、高脂肪食が肝臓における酸化ストレスを増加させ、内因性抗酸化系を減少させることを示している。
これに対し、ＷＥＣ、低および高用量の両方のフェネチルアミンの投与は、高脂肪食誘導脂質酸化を有意に抑制した。
ＷＥＣと低用量のフェネチルアミンの投与は、ＨＦＤ群と比較して肝臓抽出物中のＳＯＤ様活性を有意に増加させた。
肝臓のＧＳＨ／ＧＳＳＧもＨＦＤ群と比較してＰＬ群で有意に増加した（図３Ｂ）。
高脂肪食摂取(HFD群)は、通常食摂取(ND群)と比較して、肝臓抽出物中の脂質過酸化の指標であるチオバルビツール酸反応性物質(TBARS、図３Ａ)値を有意に増加させ、SOD様活性を低下させた(図３C)。
さらに、高脂肪食摂取群は、酸化ストレスマーカーであるグルタチオンジスルフィドに対するグルタチオンの比率（ＧＳＨ／ＧＳＳＧ、図３Ｂ）を低下させる傾向があった。これらの事実は、高脂肪食が肝臓における酸化ストレスを増加させ、内因性抗酸化系を減少させることを示している。
これに対し、ＷＥＣ、低および高用量の両方のフェネチルアミンの投与は、高脂肪食誘導脂質酸化を有意に抑制した。
ＷＥＣと低用量のフェネチルアミンの投与は、ＨＦＤ群と比較して肝臓抽出物中のＳＯＤ様活性を有意に増加させた。
肝臓のＧＳＨ／ＧＳＳＧもＨＦＤ群と比較してＰＬ群で有意に増加した（図３Ｂ）。
【0039】
エ．肝臓中の内因性抗酸化酵素、ＳＯＤ－１（図４）およびＧＰＸ－１（図５）の抗酸化酵素レベルを、ウエスタンブロット分析法により評価した。
驚くべきことに、高脂肪食摂取および／またはＷＥＣおよびフェネチルアミンの投与は、ＧＡＰＤＨおよびβ‐アクチンレベルに有意に影響した（図６，７）。
さらに、α－ｔｕｂｌｉｎのバンド強度は、標的タンパク質よりもはるかに低かった（データは示されていない）。
各群の蛋白質バンドの強度を、同じ膜上で分割したＨＦＤ群のそれとｔ検定で比較した。
ＳＯＤ様活性はＷＥＣおよび低用量のフェニルエチルアミンによって有意に増加した（図４）。高脂肪食摂取は、ＮＤ群と比較して肝臓におけるＧＰＸ‐１およびβ‐アクチン蛋白質レベルを有意に減少させた（図５，７）。
低用量のフェネチルアミンの投与は、ＨＦＤ基と比較してＧＰＸ－１を増加させる傾向があり（ｐ＝ ０．０５８、図５）、β－アクチンレベルを有意に増加させた（図７）。
ＨＦＤ群とＮＤ群の間でＧＡＰＤＨレベルの有意差はなかったにもかかわらず、フェネチルアミンとＷＥＣの経口投与用はＨＦＤ群と比較してＧＡＰＤＨレベルを有意に増加させた（図６）。
驚くべきことに、高脂肪食摂取および／またはＷＥＣおよびフェネチルアミンの投与は、ＧＡＰＤＨおよびβ‐アクチンレベルに有意に影響した（図６，７）。
さらに、α－ｔｕｂｌｉｎのバンド強度は、標的タンパク質よりもはるかに低かった（データは示されていない）。
各群の蛋白質バンドの強度を、同じ膜上で分割したＨＦＤ群のそれとｔ検定で比較した。
ＳＯＤ様活性はＷＥＣおよび低用量のフェニルエチルアミンによって有意に増加した（図４）。高脂肪食摂取は、ＮＤ群と比較して肝臓におけるＧＰＸ‐１およびβ‐アクチン蛋白質レベルを有意に減少させた（図５，７）。
低用量のフェネチルアミンの投与は、ＨＦＤ基と比較してＧＰＸ－１を増加させる傾向があり（ｐ＝ ０．０５８、図５）、β－アクチンレベルを有意に増加させた（図７）。
ＨＦＤ群とＮＤ群の間でＧＡＰＤＨレベルの有意差はなかったにもかかわらず、フェネチルアミンとＷＥＣの経口投与用はＨＦＤ群と比較してＧＡＰＤＨレベルを有意に増加させた（図６）。
【0040】
肝臓中の、短鎖アルデヒドであるグリオキサールレベルおよびメチルグリオキサールレベルは、ＷＥＣ、フェネチルアミンの経口投与によって有意に低下した（図８）。
また、肝臓中の遊離システインレベルは、ＷＥＣ、フェネチルアミンの経口投与によって有意に増加した（図９）。
また、肝臓中の遊離システインレベルは、ＷＥＣ、フェネチルアミンの経口投与によって有意に増加した（図９）。
【図1】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
