ホーム > 特許ランキング > ピテンゴ ゲーエムベーハー
(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B2)
(11)【特許番号】
(24)【登録日】2023-02-24
(45)【発行日】2023-03-06
(54)【発明の名称】微小血管造影用の造影剤
(51)【国際特許分類】
A61K 49/04 20060101AFI20230227BHJP
A61K 47/34 20170101ALI20230227BHJP
A61K 47/18 20170101ALI20230227BHJP
A61K 47/08 20060101ALI20230227BHJP
【ＦＩ】
A61K49/04 210
A61K47/34
A61K47/18
A61K47/08
【請求項の数】
29
(21)【出願番号】P 2019570620
(86)(22)【出願日】2018-03-06
(65)【公表番号】
(43)【公表日】2020-04-09
(86)【国際出願番号】 EP2018055463
(87)【国際公開番号】W WO2018162473
(87)【国際公開日】2018-09-13
【審査請求日】2021-01-27
(31)【優先権主張番号】00284/17
(32)【優先日】2017-03-09
(33)【優先権主張国・地域又は機関】CH
(73)【特許権者】
【識別番号】320001710
【氏名又は名称】ピテンゴ ゲーエムベーハー
(74)【代理人】
【識別番号】110002354
【氏名又は名称】弁理士法人平和国際特許事務所
(72)【発明者】
【氏名】ベート ステガー
(72)【発明者】
【氏名】ルスラン フルシチュク
(72)【発明者】
【氏名】バレンティン ジョノフ
【審査官】池上 文緒
(56)【参考文献】
【文献】米国特許出願公開第２０１６／０１５１１２４（ＵＳ，Ａ１）
【文献】国際公開第２０１１／０９８５３０（ＷＯ，Ａ２）
【文献】日本医放会誌 (1993) vol.53, no.1, p.50-56
(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)
Ａ６１Ｋ ４９／０４
ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩＩ）
ＣＡｐｌｕｓ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＥＭＢＡＳＥ／ＢＩＯＳＩＳ（ＳＴＮ）
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
死後微小血管造影用の、マイクロＣＴデバイスを用いたマウスもしくはラットもしくは他の実験動物、又は動物及びヒトの個々の臓器の血管系のデジタル撮像用の、－ ポリウレタンと
－ 硬化剤と
を含む造影剤であって、
さらに、
－ ヨード化エステル化亜麻仁油と
－ ２－ブタノンと
を含むことを特徴とする、造影剤。
【請求項2】
前記ヨード化エステル化亜麻仁油が、エチル－９，１２，１５－トリヨードオクタデカトリエノアートであることを特徴とする、請求項１に記載の造影剤。
【請求項3】
前記造影剤が色素を含むことを特徴とする、請求項１又は２に記載の造影剤。
【請求項4】
前記ポリウレタンが、ポリイソシアナート－プレポリマーであることを特徴とする、請求項１～３のいずれかに記載の造影剤。
【請求項5】
前記硬化剤が、変性芳香族ジアミンであることを特徴とする、請求項１～４のいずれかに記載の造影剤。
【請求項6】
－ 前記ヨード化エステル化亜麻仁油が、２０～６０％の割合で前記造影剤に含まれ、－ 前記２－ブタノンが、７～３０％の割合で前記造影剤に含まれることを特徴とする、請求項１～５のいずれかに記載の造影剤。
【請求項7】
前記ヨード化エステル化亜麻仁油と前記２－ブタノンとを含む造影溶液において、前記２－ブタノンの体積に対する前記ヨード化エステル化亜麻仁油の体積の比率が、０．７５～４であることを特徴とする、請求項１～６のいずれかに記載の造影剤。
【請求項8】
前記ポリウレタンは、２５～６０％の割合で前記造影剤に含まれ、－ 前記硬化剤は、４～１０％の割合で前記造影剤に含まれることを特徴とする、請求項１～７のいずれかに記載の造影剤。
【請求項9】
－ ヨード化エステル化亜麻仁油を含み、かつ２－ブタノンを含む第１の容器と、－ ポリウレタンを含む第２の容器と、
－ 硬化剤を含む第３の容器と
を含む、死後微小血管造影用のキット・オブ・パーツ。
【請求項10】
前記第１の容器がさらに、色素を含む、請求項９に記載のキット・オブ・パーツ。
【請求項11】
－ 前記第１の容器が、２～４ｍｌの前記ヨード化エステル化亜麻仁油と、２～３ｍｌの前記２－ブタノンとの第１の混合物を含み、－ 前記第２の容器が、４～７ｍｌの前記ポリウレタンを含み、
－ 前記第３の容器が、０．５～１．５ｍｌの前記硬化剤を含む、
請求項９又は１０に記載のキット・オブ・パーツ。
【請求項12】
さらに、－ 前記第１の容器及び前記第２の容器の中身を受けるための第１のシリンジと、
－ 前記第３の容器の中身を受けるための第２のシリンジと、
－ 前記第１のシリンジの中身と前記第２のシリンジの中身とを混合するための混合容器と
を含む、請求項９～１１のいずれかに記載のキット・オブ・パーツ。
【請求項13】
マイクロＣＴデバイスを用いてマウス又はラットの血管系をデジタル撮像するための、請求項１～８のいずれかに記載の死後微小血管造影用の造影剤の製造方法であって、ｆ．）第１の容器中に、ヨード化エステル化亜麻仁油と２－ブタノンとの第１の混合物を準備するステップと、
ｇ．）第２の容器中に、ポリウレタンを準備するステップと、
ｈ．）第３の容器中に、硬化剤を準備するステップと、
ｉ．）前記第１の容器の中身を前記第２の容器の中身とブレンドし混合して、第２の混合物を形成するステップと、
ｊ．）被験血管系に注入する直前に、前記第３の容器の中身をステップｉ．）の前記第２の混合物と混合要素中でブレンドするステップと
を含む、方法。
【請求項14】
マイクロＣＴデバイスを用いて死後の動物又は死後のヒトの身体若しくは臓器の血管系をデジタル撮像するための死後微小血管造影法であって、ｋ．）請求項１～８のいずれかに記載の造影剤を準備するステップと、
ｌ．）被験動物の身体にカニューレを挿入し、洗浄するステップと、
ｍ．）前記造影剤を、前記身体又は前記臓器に注入するステップと
を含む、死後微小血管造影法。
【請求項15】
前記造影剤の注入後、前記動物の身体内で前記造影剤が硬化するのを待ち、次いで前記動物の身体をマイクロＣＴデバイスを用いてスキャンすることを特徴とする、請求項１４に記載の死後微小血管造影法。
【請求項16】
ステップｍ）での注入が、ディスペンサーを用いて行われるか、又はステップｍ）での注入が、注入ポンプを用いて行われることを特徴とする、請求項１４又は１５に記載の死後微小血管造影法。
【請求項17】
前記造影剤が、ヒトもしくは動物の身体、又はヒトもしくは動物の臓器に注入されることを特徴とする、請求項１～８のいずれかに記載の造影剤又は請求項９～１２のいずれかに記載のキット・オブ・パーツの、死後微小血管造影における使用。
【請求項18】
前記造影剤が青色色素であることを特徴とする、請求項３に記載の造影剤。
【請求項19】
前記ポリウレタンが、脂肪族イソシアナートであることを特徴とする、請求項４に記載の造影剤。
【請求項20】
前記硬化剤が、ジエチルメチルベンゼンジアミンであることを特徴とする、請求項５に記載の造影剤。
【請求項21】
前記硬化剤が、ジエチルメチルベンゼンジアミンの２種の異性体の混合物であることを特徴とする、請求項５に記載の造影剤。
【請求項22】
前記ポリウレタンと前記硬化剤との体積比は、１００：１０～１００：２５の範囲にあることを特徴とする、請求項１～２１のいずれかに記載の造影剤。
【請求項23】
前記ヨード化エステル化亜麻仁油は、エチル－９，１２，１５－トリヨードオクタデカトリエノアートであり、前記ポリウレタンは、４，４’－メチレン－ジ（シクロヘキシル－イソシアナート）であり、
前記硬化剤は、２，６－ジアミノ－３，５－ジエチルトルエンであることを特徴とする、請求項９に記載の死後微小血管造影用のキット・オブ・パーツ。
【請求項24】
－ 前記第１の容器が、２．５～２．８ｍｌの前記ヨード化エステル化亜麻仁油と、２．２～２．９ｍｌの前記２－ブタノンとの第１の混合物を含み、－ 前記第２の容器が、４．５～５ｍｌの前記ポリウレタンを含み、
－ 前記第３の容器が、０．８～１．２ｍｌの前記硬化剤を含む、
請求項１１に記載のキット・オブ・パーツ。
【請求項25】
さらに、－ 前記第１のシリンジ及び前記第２のシリンジを制御するためのディスペンサーであって、前記第１のシリンジ及び前記第２のシリンジそれぞれの第１の端部を受けるためのデバイスを備えたディスペンサーを含む、請求項１２に記載のキット・オブ・パーツ。
【請求項26】
さらに、－ 前記第１のシリンジ及び前記第２のシリンジそれぞれの第２の端部を受け、かつ前記混合容器の第１の端部を受けるためのアダプター要素を含む、請求項１２に記載のキット・オブ・パーツ。
【請求項27】
前記ステップｊ．）において、前記ポリウレタンと前記硬化剤との混合体積比１００：１６～１００：１９を用いる、請求項１３に記載の死後微小血管造影用の造影剤の製造方法。
【請求項28】
請求項１４に記載の、マイクロＣＴデバイスを用いて死後の動物又は死後のヒトの身体若しくは臓器の血管系をデジタル撮像するための死後微小血管造影法であって、ｋ．）請求項１～８のいずれかに記載の造影剤を、請求項１３に記載の方法にしたがい準備するステップと、
ｌ．）被験動物の身体にカニューレを挿入し、洗浄するステップであって、透明溶液で、マウスの場合には２０～１００ｍｌの洗浄量を、あるいはラットの場合には２０～２００ｍｌの洗浄量を用いるステップと、
ｍ．）前記造影剤を、一定の流量で前記身体又は前記臓器に注入するステップと
を含む、方法。
【請求項29】
請求項１４に記載の、マイクロＣＴデバイスを用いて死後の動物又は死後のヒトの身体若しくは臓器の血管系をデジタル撮像するための死後微小血管造影法であって、前記ステップｍ．）において、前記造影剤を、最大１．５ｍｌ／分の流量で、前記身体又は前記臓器に注入する、方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、死後微小血管造影用の、すなわち、Ｘ線撮像法、特にナノ又はマイクロＣＴデバイスを用いた、例えばマウス、ラット、又は他の実験動物などの特に小動物、ならびに動物及びヒトの個々の臓器の血管系のデジタル撮像用の、造影剤に関する。
【背景技術】
【0002】
微小血管造影の一目的は、個々の臓器又は全身の最も細い血管すなわち毛細血管を三次元的に視覚化し、分析用にそれらを正確に描写することである。薬理学の研究では特に、また科学捜査においても、無傷血管の分析が必要である。今日まで、微小血管の撮像には主に２種類の技術が使用されてきた。１つはいわゆる鋳型法であり、もう１つは放射線造影剤を用いる撮像法、特にＭｉｃｒｏｆｉｌ（登録商標）法である。
【0003】
マイクロコンピューター断層撮影（マイクロＣＴ）などの３Ｄ撮像法が、過去数年でますます話題を呼んでいる。血管系の撮像には、マイクロＣＴを用いた視覚化のために、放射線不透過性造影剤の灌流が必要である。これまで血管の研究では、例えば脳、心臓、肝臓、腎臓、肺などの様々な臓器、ならびに後肢や腫瘍の血管系を表示するために、マイクロＣＴが様々な造影剤と組み合わせて用いられてきた。しかし、こうした研究には常に、解像度に関して、あるいは不完全な充填性及び不良な灌流ゆえに（また、使用される造影剤の粘度が比較的高いために）制限があった（例えばＰｅｒｒｉｅｎ， Ｄ．Ｓ．， ２０１６）。
【0004】
血管腐食鋳型法では、鋳型材、例えば重合するポリウレタン系の薬剤が血管に注入される（例えばＭｅｙｅｒ ｅｔ ａｌ．， ２００７ ＆ ２００８； Ｋｒｕｃｋｅｒ ｅｔ ａｌ．， ２００６）。次に、薬剤の重合後、周辺組織は化学的に浸軟され、消化される。こうして作製された血管ダイカストは、次に、走査電子顕微鏡（ＳＥＭ）又は放射線を用いて三次元的に評価される。さらに、三次元血管モデルが創られる可能性もある。この方法の主たる重大な欠点は、組織の浸軟により生じる。それというのも、それゆえに（次いで）組織学的検査を行うという選択肢が排除され、したがって組織における部位特定ですら一切できなくなるためである。この方法のさらなる欠点は、走査電子顕微鏡を用いた場合に、血管の表示性に限界があることである。なぜならば、血管鋳型の外表面の血管の画像は得られるものの、鋳型内部では画像が得られないためである。
【0005】
Ｍｉｃｒｏｆｉｌ（登録商標）法は、直径１００μｍまでの血管の表示に特に有用である。この血管径では毛細血管領域の状況はまず判断できないため、ユーザーは使用法を種々変更する。つまりユーザーは、必要に応じて希釈又はそれ以外の変性により造影剤の物質組成を変えて、造影剤がより細い血管に入ることができるようにする。一般には、１０μｍまでの毛細血管領域に到達し表示することができる。しかし、造影剤組成物の希釈又は変性の種類は、何らかの公知の指標によるものではなく、個別である。使用は、通常は手動で行われる。それでも、発表されている諸研究によれば、おそらく粘度が比較的高いために、灌流は不十分となる（Ｐｅｒｒｉｅｎ， Ｄ．Ｓ． ２０１６）。
【0006】
酸素と代謝産物の交換は、主に毛細血管床レベルで、すなわち直径約４～１０μｍの血管のレベルで生じる。前臨床研究は通常、中程度の直径（約１５μｍ）の微小血管の表示に限定される。一方で、研究では各種マイクロＣＴスキャナー又はマイクロＣＴデバイスを用いる場合もあり、これにより直径３～４μｍまでの毛細血管を表示することができるが、ただし、添加された好適な造影剤がこのような毛細血管にも到達し充填されることが前提条件となる。
【0007】
したがって、極細血管中へ十分に奥まで浸透することができ、マイクロＣＴにより可能な限りアーチファクトのない微小血管構造の視覚化又は形態計測３Ｄ画像分析をそれぞれ可能にする造影剤が非常に求められている（Ｚａｇｏｒｃｈｅｖ ｅｔ ａｌ．， ２０１０も参照されたい）。
【発明の概要】
【0008】
したがって本発明は、直径３～４μｍまでの毛細血管内に浸透することができ、したがってマイクロＣＴ法による該血管の表示を可能にする、改良された造影剤を提供するという課題を解決するものである。血管系の再現性のある表示を可能にする、改良されたエクスビボ血管造影法も、非常に求められている。本発明の造影溶液の開発により、現行の従来技術の欠点を克服する、そのような改良された造影剤、ならびに改良された血管造影法が提供される。
【0009】
上述した課題は、請求項１に記載の造影剤又は請求項１０に記載のキット・オブ・パーツにより解決される。改良された造影剤の準備は、好ましくは請求項１４に記載の製造方法により実施され、請求項１５に記載のエクスビボ微小血管造影法は、本発明の造影剤の再現性のある、したがって最適な使用を可能にする。
【0010】
直径３～４μｍまでの毛細血管の表示を可能にする本発明の造影剤は、エクスビボで使用される。エクスビボ又は死後の微小血管造影用の本発明の造影剤は、好ましくはデジタル撮像に利用され、したがって、マイクロＣＴデバイスを用いたマウスもしくはラット又は他の実験動物、及びヒト臓器の血管系の検査に利用される。本発明の造影剤は、ヨード化エステル化油、好ましくはヨード化エステル化亜麻仁油又はヨード化エステル化ケシ油を含有する。それに加えて本発明の造影剤は、ポリウレタン及び硬化剤、ならびに溶媒としてケトンを含有する。ケトンは、好ましくは以下の群：ブタノン（又は２－ブタノン、又はメチルエチルケトン、又はＣ４Ｈ８Ｏ）、アセトン（又は２－プロパノン、又はジメチルケトン、又はＣ３Ｈ６Ｏ）、又は３－ペンタノン（又はジエチルケトン、又はＣ５Ｈ１０Ｏ）から選択される。このうち、特に２－ブタノン又はアセトンが溶媒として好ましく、２－ブタノンが最も好ましい。あるいは、おそらく塩化メチレンを溶媒として用いることも可能である。ヨード化エステル化油とケトンとの混合物を、本願では「造影溶液」と称する。
【0011】
造影剤の特に好ましい実施形態は、さらに色素を含有し、該色素は、好ましくは青色色素（例えば、ＶａｓＱｔｅｃ社製ＢｌｕｅＤｙｅ）である。色素が添加される場合、本願では、該色素も、「造影溶液」と称される混合物の一部をなす。
【0012】
ある好ましい実施形態は、上述したように、ヨード化エステル化油としてヨード化エステル化亜麻仁油を含有する。したがって本発明の造影剤は、ヨウ素を含有し、そして好ましくは色素をも含有する重合物質であり、好ましくはヨード化エステル化亜麻仁油をベースとする。好ましくは、ヨード化エステル化亜麻仁油は、エチル－９，１２，１５－トリヨードオクタデカトリエノアート又はリノール酸エチルである。
【0013】
本発明の造影剤は、好ましくは自己蛍光特性を有し、その結果として、使用の初期段階で血管が好ましくは青色に着色され、注入を視覚的に制御することが容易となる。
【0014】
造影溶液は、被験体又は被験臓器への使用又は注入の前に、規定の方式にしたがって前述のポリウレタン（ＰＵ）樹脂及び硬化剤と混合される。
【0015】
本発明の造影剤の製造に用いられるポリウレタンは、好ましくはポリイソシアナート－プレポリマーである。それはしたがって、好ましくは脂肪族イソシアナートである。好ましくは、イソシアナートは芳香族基を含み、また好ましくは脂肪族基を含む。ポリウレタンが可撓性を保持できるように、通常はポリエーテル類が用いられる。ポリウレタンが、ポリエステルを、又は好ましくはポリエーテルを、特に好ましくはエチレングリコール残基及び／又はプロピレングリコール残基で構成されるポリエーテルを含有していれば、特に有利である。好ましくはポリウレタンは、鎖延長剤、特にジオール系又は好ましくはジアミン系鎖延長剤、特に好ましくはジエチルメチルベンゼンジアミンを含む。微小血管造影に特に好適な造影剤は、ポリウレタンとして、４，４’－メチレン－ジ（シクロヘキシル－イソシアナート）（ＨＤＭＩ）、又は４，４’－ジシクロヘキシルメタン－ジイソシアナートを含有する。
【0016】
造影剤に使用される硬化剤は、好ましくは体内又は選択的に臓器に注入される直前になってはじめてヨード化エステル化油とブタノンとＰＵとの混合物に添加され、該硬化剤は、好ましくは変性芳香族ジアミン、特に好ましくはジエチルメチルベンゼンジアミン、例えば２，６－ジアミノ－３，５－ジエチルトルエンである。本発明の造影剤の用途に特に有利な硬化剤は、ジエチルメチルベンゼンジアミンの２種の異性体の混合物を含み、最も好ましくは２，６－ジアミノ－３，５－ジエチルトルオールと２，４－ジアミノ－３，６－ジエチルトルオールとの比率が７：３の異性体混合物を含む。
【0017】
有利には、ヨード化エステル化油は、２０～６０％、好ましくは２２～４５％、特に好ましくは２４～３０％（いずれも体積％）の割合で造影剤に含まれる。ケトン、又は好ましくは２－ブタノンは、好ましくは７～３０％、好ましくは１０～２５％、特に好ましくは１４～２２％（それぞれ体積％）の割合で造影剤に含まれる。
【0018】
ポリウレタンは、好ましくは２５～６０％、好ましくは３５～５０％、特に好ましくは３８～５０％、最も好ましくは４３～４７％（いずれも体積％）の割合で造影剤に含まれる。
【0019】
硬化剤は、好ましくは４～１０％、好ましくは５～９％、特に好ましくは６～８％（いずれも体積％）の割合で造影剤に含まれる。
【0020】
本発明はさらに、
－ 上述のヨード化エステル化油と前述のケトン又は好ましくは２－ブタノンとを含む第１の容器と、
－ 上述のポリウレタンを含む第２の容器と、
－ 上述の硬化剤を含む第３の容器と
を含む、微小血管造影用キット・オブ・パーツに関する。
－ 上述のヨード化エステル化油と前述のケトン又は好ましくは２－ブタノンとを含む第１の容器と、
－ 上述のポリウレタンを含む第２の容器と、
－ 上述の硬化剤を含む第３の容器と
を含む、微小血管造影用キット・オブ・パーツに関する。
【0021】
第１の容器は、好ましくは２～４ｍｌの、好ましくは２．５～２．８ｍｌのヨード化エステル化油、好ましくはヨード化エステル化亜麻仁油と、２～３ｍｌの、好ましくは２．２～２．９ｍｌのケトン又は２－ブタノンとの第１の混合物を含む。換言すれば、第１の容器は、「造影溶液」を含む。第１の容器は、好ましくはさらに上述の色素、好ましくは青色色素を含むが、それは、該色素も混合されて「造影溶液」の一部をなしている場合である。本願では、約０．２ｇの色素に相当するひとつまみの色素を添加するだけで十分である。第２の容器は、好ましくは４～７ｍｌの、特に好ましくは４．５～５ｍｌのポリウレタンを含み、第３の容器は、好ましくは０．５～１．５ｍｌの、特に好ましくは０．８～１．２ｍｌの硬化剤を含む。好ましくは、注入される混合物におけるポリウレタンと硬化剤との体積比は、１００：１０～１００：２５の範囲にあり、特に好ましくは１００：１６～１００：１９の範囲にある。
【0022】
好ましくは、キット・オブ・パーツはさらに、
－ 第１の容器及び第２の容器の中身を受けるための、好ましくは容量１２ｍｌの第１のシリンジと、
－ 第３の容器の中身を受けるための、好ましくは容量１ｍｌの第２のシリンジと、
－ 第１のシリンジの中身と第２のシリンジの中身とを混合するための混合容器と、
－ 第１のシリンジ及び第２のシリンジを制御するためのディスペンサーであって、第１のシリンジ及び第２のシリンジそれぞれの第１の端部を受けるためのデバイスを備えたディスペンサーと、
－ 好ましくは、第１のシリンジ及び第２のシリンジそれぞれの第２の端部を受け、かつ混合室の第１の端部を受けるためのアダプター要素と
を含む。
－ 第１の容器及び第２の容器の中身を受けるための、好ましくは容量１２ｍｌの第１のシリンジと、
－ 第３の容器の中身を受けるための、好ましくは容量１ｍｌの第２のシリンジと、
－ 第１のシリンジの中身と第２のシリンジの中身とを混合するための混合容器と、
－ 第１のシリンジ及び第２のシリンジを制御するためのディスペンサーであって、第１のシリンジ及び第２のシリンジそれぞれの第１の端部を受けるためのデバイスを備えたディスペンサーと、
－ 好ましくは、第１のシリンジ及び第２のシリンジそれぞれの第２の端部を受け、かつ混合室の第１の端部を受けるためのアダプター要素と
を含む。
【0023】
本発明はさらに、マイクロＣＴ（μＣＴ）デバイスを用いてマウス又はラットの血管系をデジタル撮像するための、微小血管造影用の上述の造影剤の製造方法であって、
ａ）第１の容器中に、ヨード化エステル化油、好ましくはヨード化エステル化亜麻仁油と、ケトン、好ましくは２－ブタノンとの第１の混合物を準備するステップと、
ｂ）第２の容器中に、ポリウレタンを準備するステップと、
ｃ）第３の容器中に、硬化剤を準備するステップと、
ｄ）第１の容器の中身を第２の容器の中身とブレンドし混合して、第２の混合物を形成するステップと、
ｅ）マウス又はラットの血管系に注入する直前に、第３の容器の中身をステップｄ）の第２の混合物と混合要素中でブレンドするステップであって、好ましくはポリウレタンと硬化剤との混合比１００：１６を用いるステップと
を含む方法に関する。
ａ）第１の容器中に、ヨード化エステル化油、好ましくはヨード化エステル化亜麻仁油と、ケトン、好ましくは２－ブタノンとの第１の混合物を準備するステップと、
ｂ）第２の容器中に、ポリウレタンを準備するステップと、
ｃ）第３の容器中に、硬化剤を準備するステップと、
ｄ）第１の容器の中身を第２の容器の中身とブレンドし混合して、第２の混合物を形成するステップと、
ｅ）マウス又はラットの血管系に注入する直前に、第３の容器の中身をステップｄ）の第２の混合物と混合要素中でブレンドするステップであって、好ましくはポリウレタンと硬化剤との混合比１００：１６を用いるステップと
を含む方法に関する。
【0024】
本発明はさらに、マイクロＣＴデバイスを用いて動物、特にマウス又はラットの身体の血管系をデジタル撮像するための微小血管造影法であって、
－ 上述の造影剤を、好ましくは上述の方法にしたがい準備するステップと、
－ 被験動物の身体にカニューレを挿入し、好ましくは透明溶液で、特にＰＢＳ（リン酸緩衝食塩水溶液）で洗浄又は瀉血するステップであって、好ましくはマウスの場合には２０～１００ｍｌの洗浄量、あるいはラットの場合には２０～２００ｍｌの洗浄量を用いるステップと、
－ 造影剤を、好ましくは一定の流量で、好ましくは可能な限り一定の圧力で注入するステップであって、流量は、好ましくは最大３ｍｌ／分、特に好ましくは最大１．５ｍｌ／分であるステップと
を含む方法に関する。
－ 上述の造影剤を、好ましくは上述の方法にしたがい準備するステップと、
－ 被験動物の身体にカニューレを挿入し、好ましくは透明溶液で、特にＰＢＳ（リン酸緩衝食塩水溶液）で洗浄又は瀉血するステップであって、好ましくはマウスの場合には２０～１００ｍｌの洗浄量、あるいはラットの場合には２０～２００ｍｌの洗浄量を用いるステップと、
－ 造影剤を、好ましくは一定の流量で、好ましくは可能な限り一定の圧力で注入するステップであって、流量は、好ましくは最大３ｍｌ／分、特に好ましくは最大１．５ｍｌ／分であるステップと
を含む方法に関する。
【0025】
造影剤の使用又は注入は、ディスペンサーを用いて手動で行ってもよいし、注入ポンプを用いて行ってもよいし、また灌流手段を用いて行ってもよく、このようなものは、好ましくはそれぞれ個別の必要に応じて調整又は調節されており、それによって特定の時間単位当たりの体積を維持することができる。
【0026】
対象となる被験臓器に応じて、マウスの場合には通常１～１２ｍｌの造影剤が注入され、ラットの場合には通常１～３０ｍｌの造影剤が注入される。
【0027】
マウス又はラットへの造影剤の注入は、好ましくは１～６分の時間枠で行われ、マウス又はラットに用いられる注入速度は、好ましくは０．５～１２ｍｌ／分、特に好ましくは１～３ｍｌ／分、最も好ましくは最大で１．５ｍｌ／分である。
【0028】
造影剤の注入後、好ましくは動物の身体内で造影剤が硬化するのを待つ。次に、各臓器又は体の各部を切除し、化学的に固定してからマイクロＣＴデバイスを用いてスキャンする。
【0029】
本発明の造影剤は、とりわけ実験目的に好適であり、すなわち前臨床研究における小動物、特にマウスやラットの身体の灌流用に好適である。しかし、例えば大型実験動物、例えばウサギ、イヌ、魚、ヒツジ、ミニブタ等の、個々の領域又は臓器の選択的灌流に用いることも可能である。これらは、例えば整形外科又は歯科の研究に用いられる（歯科置換術、骨置換術等）。この目的では、造影剤は具体的には動脈に注入され、その「対象領域」が表示されることになる。そうすれば、個々の臓器又は体の一部、例えば下顎等へ造影剤を選択的に注入することが可能になり、そうして当該臓器又は体の一部を表示することができる。本発明の造影剤は、科学捜査における使用にも好適であり、したがって人間の遺体の検死にも好適である。
【0030】
本発明の造影剤を提供することで、バイオ医学研究の様々な分野においてエクスビボのマイクロＣＴ技術の新たな使用域が広がる。従来技術のＰＵ消化法では、ＣＴスキャン後、血管系の３Ｄモデルを得るために周辺組織を消化により除去しなくてはならないが、本発明の非破壊法では、一方では血管系の高解像度の画像が得られ、他方では周辺組織が無傷のままであるため、続いて既にスキャン済みの標本を組織学的又は電子顕微鏡検査のベースとしてさらに使用することができる。さらに、当該臓器の一部を切除して、さらに高解像度でスキャンすることができる。次いで、好適な定量化ソフトウェアを用いて画像分析が行われる。
【0031】
造影剤の有利な用途は、例えば２．５μｍ未満（ボクセル一辺のサイズ）に迫る解像度のマウス腎臓糸球体の定量化（Ｓｈｏｋｉｃｈｅ， Ｃ．Ｃ． ｅｔ ａｌ．， ２０１６）といった腎臓血管構造の形態計測や、マウス後肢の血管系及び筋肉組織の相関撮像（Ｓｃｈａａｄ ｅｔ ａｌ．， ２０１７）で証明されている。Ｍｉｃｒｏｆｉｌ（登録商標）（Ｆｌｕｉｔｅｃ社）で動物の身体を灌流する場合、今のところの標準的な撮像法では、通常で最高約５０～１００μｍの解像度に達することができる。この解像度を改善するため、血管造影技術者らはＭｉｃｒｏｆｉｌ（登録商標）を独自に希釈し、希釈の程度にもよるが、約１２μｍまでの解像度が可能となった。しかし、より細い血管や毛細血管の灌流は、高粘度などのいくつかの要因ゆえに不十分である（Ｐｅｒｒｉｅｎ Ｄ．Ｓ：， ２０１６）。
【0032】
しかし、造影溶液を有する本発明の造影剤は、直径３～４μｍまでの極細の毛細血管までも進入し、したがって血管系のより詳細な表示を可能にする。本発明の使用方法はまた、再現性のある、低粘度（Ｍｉｃｒｏｆｉｌ（登録商標）法の様々な個々の変性物と比較した場合）を提供する。
【0033】
本発明の造影剤のさらなる利点は、重合の結果、被験物の安定性が高まることであり、これによって特にマイクロＣＴスキャンを行う間に撮像の質が向上するため、有利である。さらに、造影溶液をベースとする新規の造影剤は、Ｘ線吸収度が高く、それは骨組織のＸ線吸収度に近い。そのため、閾値に基づいて表示される血管の区別及び視覚化が容易になる。
【0034】
したがって、本発明の造影剤の鋳型及び自己蛍光特性は、要約すると、相関アプローチを可能にするものであり、すなわちマイクロＣＴ撮像を行い、さらに検査すべき組織片を決定した後、さらに同じ被験物について組織学及び透過型電子顕微鏡による形態分析を行うことができる。本発明の造影剤は、灌流した血管内に留まり、自己蛍光性を有するため、マイクロＣＴ切片の仮想スタックにおける特定の組織学的切片の「部位特定」が容易になる。
【0035】
腎臓形態計測に関しては、最新の高磁場ＭＲＩ技法も、最近記述されたインビボ抗ＣＤ３１標識化を用いる「光シート顕微鏡」による方法も、本発明の造影剤を用いたマイクロＣＴに基づく形態計測法ほど腎臓の血管樹を表示することはできない。さらに本方法は、既に一般公開されているソフトウェアを用いた臓器血管系の３Ｄスケルトン化及びそれに対応する分析を可能にする。血管を高速で３Ｄ表示すること以外に、マイクロＣＴに基づく形態計測法は、相当な時短を可能にする（組織学又は鋳型法に基づく古典的な方法では１～２週間を要するところ、２４時間未満となる）。
【0036】
驚くべきことに、本発明の造影剤は、脱灰後の骨血管の視覚化にも用いることができることが判明した。この脱灰は、従来技術の一部であって本発明の目的ではないが、一般に主要な３種の脱灰剤を用いることができる。１つ目は、塩酸又は硝酸などの強鉱酸系のものであり、２つ目は、ギ酸（例えば単純な１０％水溶液、又はホルマリンもしくは緩衝液との組み合わせ）又はトリクロロ酢酸などのより弱い有機酸系のものであり、３つ目は、いわゆるキレート剤、例えば１０％ＥＤＴＡ溶液で構成されているものである。骨血管の視覚化には、好ましくはキレート剤が用いられる。ＥＤＴＡ（エチレンジアミン四酢酸）の効果は緩慢であるが、結果的にほとんど組織損傷がなく、標準的な着色剤がほとんど影響を受けない。ＥＤＴＡ系脱灰剤の組成物としては、２５０ｇのＥＤＴＡ二ナトリウム塩と１７５０ｍｌの蒸留水との混合物が考えられ、ここで、溶液は、好ましくは約２５ｇの水酸化ナトリウムの添加によりｐＨ７に調節される。
【0037】
本発明のさらなる実施形態は、従属請求項に記載されている。
【0038】
【0039】
本発明の好ましい実施形態又は本発明の使用例について、図面を参照して以下に説明するが、これらは本発明の好ましい実施形態を例示するものであって、本発明を限定するものではない。
【図面の簡単な説明】
【0040】
【図1】マイクロＣＴにより視覚化したマウス後肢の血管構造を示し；Ａ）は、ボクセル一辺長２．７μｍの、３Ｄ側面図であり；Ｂ）は、ボクセル一辺長０．８又は０．６６μｍの、血管構造の仮想水平方向断面図（Ａに示すレベル）であり、脛骨（Ｔ）及び腓骨（Ｆ）は、Ｘ線吸収度が高いため、うっすらと着色して見えており；Ｃ～Ｆでは、単離したヒラメ筋（Ｃ、Ｄ）又は足底筋（Ｅ、Ｆ）の仮想水平方向断面（断層）図を示しており；Ｃ’）～Ｆ’）では、Ｃ）～Ｆ）で長方形の印をつけた特定のセクションをより詳細に示しており；微小血管構造が、異なる血管密度、蛇行性、及び３Ｄ配置で、高拡大率でボリュームレンダリング描写されている。
【図2】腎臓血管構造及び糸球体の異なる視覚化の様相を示しており；Ａ）では、腎臓血管構造に焦点を当てたマイクロＣＴデータセットの再構成３Ｄスタックを例示し；Ｂでは、該データセット内の一仮想断面を異なる伝達関数を用いて示し、腎臓組織に焦点を当てて視覚化しており；Ｃ～Ｃ’は、糸球体に焦点を当てて視覚化しており；図Ｃは、左下隅の白いボックスに示す仮想５００μｍ厚ディスクのボリュームレンダリングを示し；Ｃの白枠は、図Ｃ’で拡大している糸球体が存在するポイントを示し；図Ｄ～Ｄ’は、高度視覚化オプション、つまり解像度がより高い（ボクセル一辺長＝０．５９μｍ）微小血管造影ＣＴを示す。図Ｄのインサートは、Ｄに示す仮想断面レベルを示し；Ｄで印をつけた糸球体の微小血管構造の３ＤボリュームレンダリングをＤ’に示す。
【図3】マイクロＣＴデータ及び組織学的アプローチを用いて互いに対応するポイントを視覚化した、相関顕微鏡画像である。撮像後、組織学的切断及び検査のため、固定した腎臓をさらに処理した；図ａ～ｃは、明視野顕微鏡（ａ及びａ’）、蛍光顕微鏡（ｂ及びｂ’）、そしてマイクロＣＴ（ｃ及びｃ’）による、同じ腎臓の同じレベル（断面）の視覚化を示す。ｂ及びｂ’の緑色のシグナルは、血管内で重合する自己蛍光造影剤に由来する。この特性により、太めの血管の向きに基づく、組織学とマイクロＣＴとの間の観測が容易になる。図ａ’～ｃ’では、ａ～ｃで印をつけた領域を高拡大率で示す。糸球体は、ａ’～ｃ’で円で示されている。
【図4】（ａ）組織学的データと（ｂ）マイクロＣＴデータに基づく、糸球体数のステレオロジー的推定に用いられる、組み合わせたフラクショネーター／ディセクター原理の概略図である。ａ）古典的な組織学的原理：腎臓全体の包括的な切断、切片ペアの距離は１５μｍ（約１０等距離の切片サンプリング・レベル（ＳＳＬ）のディセクター高さ、約１ｍｍ）、切片厚さ５μｍ。ディセクター高さとしては、切片を２つおきに用い、ＳＳＬについては、次の適切なディセクターペアが用いられるまで１９７切片（２００－３）を捨てる。１つのディセクターを形成する、互いに対応する画像上で、一方の切片には見られるが他方には見られない、かつカウンティング・フレーム内に存在するが左下のラインにかからない糸球体を計測する（黒いチェックマーク）。推定した個数に切片サンプル・ファクター（ＳＳＦ）及びエリア・サンプル・ファクター（ＡＳＦ）の逆数を掛けて、腎臓あたりの糸球体の絶対数を組織学に基づき求める（Ｎａｂｓ－ｈｉｓｔｏ（ｇｌｏｍ）、テキスト参照）。 ｂ）μａＣＴ（微小血管造影ＣＴ）の原理：マイクロＣＴデータの仮想画像スタックに基づく原理とほぼ同じ。ディセクター高さ（１６μｍ又は８ボクセル高さ）及び切片パターン・レベル（１ｍｍ又は５００ボクセル高さ）を実現し、ここでボクセルスタックの対応する切片番号を用いる（図左端）。切片／ボクセル高さ：２μｍ。切片レベル全体の全糸球体をディセクター原理にしたがい計測（チェックマーク）したため、カウンティング・フレームは不要である。推定された糸球体数に切片パターン・ファクターの逆数を乗じただけであるため、エリア・パターン率の必要はなく、こうして腎臓あたりの糸球体の総数を求めた（Ｎａｂｓ－μａＣＴ（ｇｌｏｍ））。
【図6】本発明の造影剤を使用してマイクロＣＴを用いて例示されたマウス脛骨の血管構造であり；（６ａ）及び（６ｂ）はどちらも同じ脛骨の仮想横断面図を示し、（６ａ）では脱灰前の骨を示し、（６ｂ）では１０％ＥＤＴＡでの脱灰後の骨を示す。脛骨（Ｔ）は、（６ａ）ではＸ線吸収度が高いためより明るく見えており、（６ｂ）では脱灰後にＸ線吸収度が低下したため透明に見えている。したがって、骨膜の血管と髄腔（ＫＨ）の血管との間の骨組織を水平方向に走る細い結合血管は、（６ｂ）のほうがよく見え、わかりやすい（上方向矢印）。髄腔内の血管の視覚化は、脛骨の骨組織の脱灰でＸ線吸収度が低下したために、（６ｂ）のほうが見えやすくなっている。脛骨の外縁に補給動脈（ａｖｎ＝栄養動脈・静脈）がはっきりと見えている。
【図7】本発明の造影剤を用いてマイクロＣＴにより示されたマウス脛骨の血管構造であり；（７ａ）及び（７ｂ）は、どちらも同じ脛骨の仮想縦断面図を示し、（７ａ）では脱灰前の骨を示し、（７ｂ）では１０％ＥＤＴＡでの脱灰後の骨を示す。脛骨（Ｔ）は、（７ａ）ではＸ線吸収度が高いためより明るく見えており、（７ｂ）では脱灰後にＸ線吸収度が低下したため透明に見えている。したがって、骨組織を走る骨血管（ａｖｎ＝栄養動脈・静脈）は、（７ａ）でも見えてはいるが、（７ｂ）のほうがたどりやすい。髄腔（ＫＨ）の中央に、中心洞（ＺＳ）及びその結合部がはっきりと見えている。
【発明を実施するための形態】
【0041】
１．個々の構成要素の準備：
容器を３つ準備する。容器１は、ヨード化エステル化油、好ましくはヨード化エステル化亜麻仁油と、２－ブタノン（Ｃ４Ｈ８Ｏ）と、色素（ＶａｓＱｔｅｃ社製ＢｌｕｅＤｙｅ）との第１の混合物を含む。この第１の混合物は、本願の文脈では、色素の有無にかかわらず「造影溶液」と称される。容器２は、ポリウレタン（ＰＵ）を含む。容器３は、硬化剤を含む。
容器を３つ準備する。容器１は、ヨード化エステル化油、好ましくはヨード化エステル化亜麻仁油と、２－ブタノン（Ｃ４Ｈ８Ｏ）と、色素（ＶａｓＱｔｅｃ社製ＢｌｕｅＤｙｅ）との第１の混合物を含む。この第１の混合物は、本願の文脈では、色素の有無にかかわらず「造影溶液」と称される。容器２は、ポリウレタン（ＰＵ）を含む。容器３は、硬化剤を含む。
【0042】
２．容器１からの造影剤の取り出し：
１２ｍｌ使い捨てシリンジ（例えばルアーロックｃ１０８６付きＭｏｎｏｊｅｃｔシリンジ、Ｑｏｓｉｎａ社）を容器１のルアーコネクター（２０ｍｍバイアルキャップ用ポリカーボネート製拭き取り可能無針バルブ雌ルアー、Ｖａｌｕｅ Ｐｌａｓｔｉｃ社）に回し嵌め；容器１に空気５ｍｌを注入し（垂直方向圧力）、容器１を回転させ、造影剤を全てシリンジ内へ吸引する。
１２ｍｌ使い捨てシリンジ（例えばルアーロックｃ１０８６付きＭｏｎｏｊｅｃｔシリンジ、Ｑｏｓｉｎａ社）を容器１のルアーコネクター（２０ｍｍバイアルキャップ用ポリカーボネート製拭き取り可能無針バルブ雌ルアー、Ｖａｌｕｅ Ｐｌａｓｔｉｃ社）に回し嵌め；容器１に空気５ｍｌを注入し（垂直方向圧力）、容器１を回転させ、造影剤を全てシリンジ内へ吸引する。
【0043】
３．造影剤とポリウレタンとの第２の混合物の製造：（ＰＵを含む）容器２に造影剤を注入し；シリンジを取り外し、ルアーコネクターをルアーキャップで塞ぐ。
【0044】
４．第２の混合物の混合：
容器２の中の第２の混合物を、Ｖｏｒｔｅｘデバイスで混合する。実験で用いた造影剤とＰＵとの第２の混合物（硬化剤なし）の粘度は、この時点で２０℃で約１００ｍＰａｓ．ｓである。
容器２の中の第２の混合物を、Ｖｏｒｔｅｘデバイスで混合する。実験で用いた造影剤とＰＵとの第２の混合物（硬化剤なし）の粘度は、この時点で２０℃で約１００ｍＰａｓ．ｓである。
【0045】
５．第２の混合物のシリンジ内への吸引：
ルアーキャップを取り外し；容器２に空気１０ｍｌを注入し；容器２を回転させ、第２の混合物を１２ｍｌ使い捨てシリンジ内へ吸引する。
ルアーキャップを取り外し；容器２に空気１０ｍｌを注入し；容器２を回転させ、第２の混合物を１２ｍｌ使い捨てシリンジ内へ吸引する。
【0046】
６．硬化剤の吸引：
１ｍｌ使い捨てシリンジ（ルアースリップｃ３３０２付き１ｍｌシリンジ、Ｑｏｓｉｎａ社）を容器３（又は容器３に取り付けられたルアーコネクター）に回し嵌め；容器３に空気０．５ｍｌを注入し；硬化剤を全て（１ｍｌ）吸引する。
１ｍｌ使い捨てシリンジ（ルアースリップｃ３３０２付き１ｍｌシリンジ、Ｑｏｓｉｎａ社）を容器３（又は容器３に取り付けられたルアーコネクター）に回し嵌め；容器３に空気０．５ｍｌを注入し；硬化剤を全て（１ｍｌ）吸引する。
【0047】
７．保存／微小気泡の除去：
シリンジの中身の脱気、すなわち微小気泡を除去するため、少なくとも１５分間、シリンジを直立状態にする。
シリンジの中身の脱気、すなわち微小気泡を除去するため、少なくとも１５分間、シリンジを直立状態にする。
【0048】
８．マウス／ラットの準備：
最初に動物に深麻酔をするか又は安楽死させてから、カニューレを挿入する。動物の身体の洗浄は、２×５～５０ｍｌの透明溶液、好ましくは等張溶液、例えばＰＢＳ（リン酸緩衝食塩水）溶液などで行う。好ましくは、動物を二分して洗浄する（その後も、各半身にそれぞれ造影剤を充填する）。
最初に動物に深麻酔をするか又は安楽死させてから、カニューレを挿入する。動物の身体の洗浄は、２×５～５０ｍｌの透明溶液、好ましくは等張溶液、例えばＰＢＳ（リン酸緩衝食塩水）溶液などで行う。好ましくは、動物を二分して洗浄する（その後も、各半身にそれぞれ造影剤を充填する）。
【0049】
８ａ．）下半身のカニューレ挿入及び洗浄のために、カニューレ（例えばＡｉｃｈｅｌｅ Ｍｅｄｉｃａ ＡＧ製ＢＤ Ｎｅｏｆｌｏｎ ０．６×１９ｍｍ、２６Ｇ）を大動脈に挿入してから、透明溶液を順方向に、すなわち心臓から離れる方向に灌流する。大動脈への穿刺箇所は、胸部大動脈領域にあるのが好ましい。下半身が充填された目安は心臓の膨張であり、心臓が膨張し始めたら、右心房の切開を行う。すると透明溶液が漏れるが、始めは洗浄された動物の血液が混ざっている。心房切開部から漏れる透明溶液が透明になったら、下半身が完全に洗浄できたと推測できる。
【0050】
８ｂ．）上半身のカニューレ挿入及び洗浄のために、同じ切開箇所で、おそらくはステップ８ａと同じカニューレを逆方向に挿入し、同じ血管、すなわち大動脈中で、透明溶液を逆方向に、すなわち心臓へ向けて灌流する。
【0051】
９．シリンジの取り付け：
９ａ．）（手動）ディスペンサーに取り付ける場合：それぞれが第１の端部を有する１２ｍｌシリンジ及び１ｍｌシリンジを、互いに接続された２シリンジ・ディスペンサー（２つの使い捨てシリンジ１１：１（Ｍ－Ｓｙｓｔｅｍ、Ｍｅｄｍｉｘ Ｓｙｓｔｅｍｓ ＡＧ））に挿入し；アダプター（Ａｄａｐｔｅｒ Ｌ－Ｓｙｓｔｅｍ、Ｍｅｄｍｉｘ Ｓｙｓｔｅｍｓ ＡＧ）を２つのシリンジそれぞれの第２の端部に取り付け；アダプターを混合容器（ミキサー、ＭＬ ３．２－１６－ＬＬＭ、ＤＮ３．２×１６、Ｍｅｄ．ＬｕｅｒＬｏｃｋ、Ｍｅｄｍｉｘ Ｓｙｓｔｅｍｓ ＡＧ）に取り付ける；又は
９ｂ．）注入ポンプに取り付ける場合：両シリンジを注入ポンプに取り付け；ポンプを正しい位置に手動で調節し；２つのシリンジそれぞれの第２の端部でアダプターを回し外し；アダプターを混合容器に取り付け；ポンプ（シリンジポンプＬＥＧＡＴＯ １００、２２０Ｖ／５０Ｈｚ、ＣＥ、ｋｄＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）のセットアップ、パラメーターの選択を行う（モード：注入のみ；シリンジ：Ｓｈｅｒｗｏｏｄ １２ｍｌ；流量：最大１．５ｍｌ／分；最大体積：約３ｍｌ／マウス、約９～１０ｍｌ／ラット）。
９ａ．）（手動）ディスペンサーに取り付ける場合：それぞれが第１の端部を有する１２ｍｌシリンジ及び１ｍｌシリンジを、互いに接続された２シリンジ・ディスペンサー（２つの使い捨てシリンジ１１：１（Ｍ－Ｓｙｓｔｅｍ、Ｍｅｄｍｉｘ Ｓｙｓｔｅｍｓ ＡＧ））に挿入し；アダプター（Ａｄａｐｔｅｒ Ｌ－Ｓｙｓｔｅｍ、Ｍｅｄｍｉｘ Ｓｙｓｔｅｍｓ ＡＧ）を２つのシリンジそれぞれの第２の端部に取り付け；アダプターを混合容器（ミキサー、ＭＬ ３．２－１６－ＬＬＭ、ＤＮ３．２×１６、Ｍｅｄ．ＬｕｅｒＬｏｃｋ、Ｍｅｄｍｉｘ Ｓｙｓｔｅｍｓ ＡＧ）に取り付ける；又は
９ｂ．）注入ポンプに取り付ける場合：両シリンジを注入ポンプに取り付け；ポンプを正しい位置に手動で調節し；２つのシリンジそれぞれの第２の端部でアダプターを回し外し；アダプターを混合容器に取り付け；ポンプ（シリンジポンプＬＥＧＡＴＯ １００、２２０Ｖ／５０Ｈｚ、ＣＥ、ｋｄＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）のセットアップ、パラメーターの選択を行う（モード：注入のみ；シリンジ：Ｓｈｅｒｗｏｏｄ １２ｍｌ；流量：最大１．５ｍｌ／分；最大体積：約３ｍｌ／マウス、約９～１０ｍｌ／ラット）。
【0052】
１０．注入／灌流：
１０ａ．）慎重に均一に、できるだけ同じフローで、又は
１０ｂ．）ポンプを起動、最大流量１．５ｍｌ／分。
１０ａ．）慎重に均一に、できるだけ同じフローで、又は
１０ｂ．）ポンプを起動、最大流量１．５ｍｌ／分。
【0053】
動物の下半身全体及び／又は上半身全体の充填：
カニューレ（例えばＡｉｃｈｅｌｅ Ｍｅｄｉｃａ ＡＧ製ＢＤ Ｎｅｏｆｌｏｎ ０．６×１９ｍｍ、２６Ｇ、洗浄に使用したカニューレでもよい）を手動ディスペンサー（オプションａ）又はポンプ（オプションｂ）に取り付ける。
カニューレ（例えばＡｉｃｈｅｌｅ Ｍｅｄｉｃａ ＡＧ製ＢＤ Ｎｅｏｆｌｏｎ ０．６×１９ｍｍ、２６Ｇ、洗浄に使用したカニューレでもよい）を手動ディスペンサー（オプションａ）又はポンプ（オプションｂ）に取り付ける。
【0054】
下半身の灌流では、洗浄ステップと同様に、動物の洗浄又は瀉血で用いたのと同じ注入箇所から、造影剤を順方向灌流により、心臓から離れる方向に動物の身体内に注入する。後肢が造影剤の色（好ましくは青色色素）に変色するのが、下半身が充填された目安になる。
【0055】
上半身全体に造影剤を充填するには、上述したカニューレ挿入又は洗浄ステップと同様に、造影剤を同じ注入箇所から動物の上半身に、すなわち造影剤を逆方向に灌流させて注入する。
【0056】
造影剤が心臓に流入しないよう安全策として、すなわち左心室の拡張を防止するため、上行大動脈を糸で閉じておく。動物の前肢すなわち前足、ならびに鼻が造影剤の色を呈すると、動物の上半身が完全に充填されたと推測できる。
【0057】
マウス又はラットの全身に充填する場合、それぞれ最高約１０ｍｌ、最高約３５ｍｌの造影剤が必要である。
【0058】
動物の身体の１つ以上の臓器への選択的充填：
下半身に属する全ての臓器に、下半身の完全充填により、上述したように造影剤を充填することができる。上半身全体に充填することで、脳に造影剤を充填することができる。
下半身に属する全ての臓器に、下半身の完全充填により、上述したように造影剤を充填することができる。上半身全体に充填することで、脳に造影剤を充填することができる。
【0059】
しかし、心臓及び／又は肺への充填は選択的に行う必要があり、そのためには、カニューレを下行大動脈に挿入し、下行大動脈の遠位部をつまんで、上行大動脈及び心臓の冠血管にだけ充填するようにする。すると、このつまんだ部分にだけ透明溶液（例えばＰＢＳ）が注入される。
【0060】
肺の血管系には、心臓の左心房に入る肺静脈を通して逆方向に充填される。
【0061】
選択臓器に充填する場合、例えば心臓及び／又は肺に充填する場合、動物の全身に充填する場合と比べて、約０．５～１．５ｍｌしか造影剤を必要としない。
【0062】
１１．硬化：
注入後、造影剤は、大動脈から動脈を通って動物の身体の毛細血管網及び静脈系へと移動していき、そこで重合により硬化する。造影剤は、少なくとも２０～３０分で硬化する。次に、硬化した造影剤を含む動物の身体の一部を化学的に、好ましくは２％パラホルムアルデヒド溶液で固定し、それから０～８℃で数カ月間は保存することができる。
注入後、造影剤は、大動脈から動脈を通って動物の身体の毛細血管網及び静脈系へと移動していき、そこで重合により硬化する。造影剤は、少なくとも２０～３０分で硬化する。次に、硬化した造影剤を含む動物の身体の一部を化学的に、好ましくは２％パラホルムアルデヒド溶液で固定し、それから０～８℃で数カ月間は保存することができる。
【0063】
１２．マイクロＣＴスキャンによる画像の分析：
動物の身体の撮像法、又はマイクロＣＴデバイスを用いたスキャンは、硬化した状態で実行される。スキャン中は、画像の乱れにつながるため、体が動いたり動かされたりしてはならない。微細な動きも防ぐために、スキャン中は動物の身体を機械的に固定すべきである。
動物の身体の撮像法、又はマイクロＣＴデバイスを用いたスキャンは、硬化した状態で実行される。スキャン中は、画像の乱れにつながるため、体が動いたり動かされたりしてはならない。微細な動きも防ぐために、スキャン中は動物の身体を機械的に固定すべきである。
【0064】
各図に示す被験物の画像は、「デスクトップマイクロＣＴ」デバイス（ＳｋｙＳｃａｎ １１７２又は１２７２、Ｂｒｕｋｅｒ社、ＭｉｃｒｏＣＴ、ベルギー国Ｋｏｎｔｉｃｈ）を用いてスキャンしている。
【0065】
１３．保存：
ＣＴスキャン後、動物の身体を、再び０～８℃で２％パラホルムアルデヒド溶液中に保存することができる。
ＣＴスキャン後、動物の身体を、再び０～８℃で２％パラホルムアルデヒド溶液中に保存することができる。
【0066】
１４．組織学：
続いて、動物の身体の一部又は臓器の組織学的検査を行うことができる。そのために、従来のパラフィン包埋、従来の組織学的薄片法、色素及び免疫組織化学を用いることができる。
続いて、動物の身体の一部又は臓器の組織学的検査を行うことができる。そのために、従来のパラフィン包埋、従来の組織学的薄片法、色素及び免疫組織化学を用いることができる。
【0067】
ここで、硬化した造影剤は、組織学的切断後も血管内に留まりはっきりと見える。造影剤の自己蛍光によって、組織学的切片と、対応するマイクロＣＴデータセットの仮想切片との直接的な比較が可能となる。
【0068】
１５．評価（マイクロＣＴデータセットの定量及び定性分析）：
マイクロＣＴ映像は、スキャン後に例えばＮＲｅｃｏｎソフトウェア（ＮＲｅｃｏｎＳｅｒｖｅｒ６４ｂｉｔ、Ｂｒｕｋｅｒ社、ＭｉｃｒｏＣＴ、ベルギー国Ｋｏｎｔｉｃｈ）を用いて逆戻しに再構成された映像の場合もあるし、ＣＴＶｏｘソフトウェア（Ｂｒｕｋｅｒ社、ＭｉｃｒｏＣＴ、ベルギー国Ｋｏｎｔｉｃｈ）を用いて「ボリュームレンダリング」され、三次元的に視覚化される場合もある。組織及び血管を、ＣＴＡｎソフトウェア（Ｂｒｕｋｅｒ社、ＭｉｃｒｏＣＴ、ベルギー国Ｋｏｎｔｉｃｈ）を用いてセグメント化し分析することができ、あるいは他の一般公開されているソフトウェア、例えばＭａｔｌａｂ（Ｔｈｅ ＭａｔｈＷｏｒｋｓ， Ｉｎｃ．、米国マサチューセッツ州ナティック）又はＩｍａｇｅＪ（Ｒａｓｂａｎｄ， Ｗ．Ｓ．， ＩｍａｇｅＪ、アメリカ国立衛生研究所、米国メリーランド州ベセスダ、ｈｔｔｐ：／／ｉｍａｇｅｊ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｉｊ／、１９９７－２０１６）を用いて判定することもできる。
マイクロＣＴ映像は、スキャン後に例えばＮＲｅｃｏｎソフトウェア（ＮＲｅｃｏｎＳｅｒｖｅｒ６４ｂｉｔ、Ｂｒｕｋｅｒ社、ＭｉｃｒｏＣＴ、ベルギー国Ｋｏｎｔｉｃｈ）を用いて逆戻しに再構成された映像の場合もあるし、ＣＴＶｏｘソフトウェア（Ｂｒｕｋｅｒ社、ＭｉｃｒｏＣＴ、ベルギー国Ｋｏｎｔｉｃｈ）を用いて「ボリュームレンダリング」され、三次元的に視覚化される場合もある。組織及び血管を、ＣＴＡｎソフトウェア（Ｂｒｕｋｅｒ社、ＭｉｃｒｏＣＴ、ベルギー国Ｋｏｎｔｉｃｈ）を用いてセグメント化し分析することができ、あるいは他の一般公開されているソフトウェア、例えばＭａｔｌａｂ（Ｔｈｅ ＭａｔｈＷｏｒｋｓ， Ｉｎｃ．、米国マサチューセッツ州ナティック）又はＩｍａｇｅＪ（Ｒａｓｂａｎｄ， Ｗ．Ｓ．， ＩｍａｇｅＪ、アメリカ国立衛生研究所、米国メリーランド州ベセスダ、ｈｔｔｐ：／／ｉｍａｇｅｊ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｉｊ／、１９９７－２０１６）を用いて判定することもできる。
【0069】
混合試験：
造影剤の最適な組成を求めて、ヨード化エステル化亜麻仁油の２－ブタノン及びＰＵに対する異なる比率を試験した。ここで、ＰＵと硬化剤との重量％での好ましい一定の比率として、１００：１６を用いた。さらに、いずれの場合も、粉末形態の青色色素を０．２ｇ（又はひとつまみ）用いた。混合試験を、以下のように実施した。
造影剤の最適な組成を求めて、ヨード化エステル化亜麻仁油の２－ブタノン及びＰＵに対する異なる比率を試験した。ここで、ＰＵと硬化剤との重量％での好ましい一定の比率として、１００：１６を用いた。さらに、いずれの場合も、粉末形態の青色色素を０．２ｇ（又はひとつまみ）用いた。混合試験を、以下のように実施した。
【0070】
各構成要素を、別々に準備した。ポリウレタン（ＰＵ）を、ガラス容器内で、ブタノン、ヨード化エステル化亜麻仁油、及び色素と、超音波槽を用いて混合した。次に、硬化剤を加えて同じく超音波槽内で約３０秒間混合した。次いで、混合物が入ったガラス容器を真空室に置き、表面に小さい気泡が発生するまで待った（約４０秒）。次に、シリンジに混合物を充填し、混合物を被験物に注入（灌流）した。
【0071】
粘度を求めるために、混合物を「落下試験」に供した。毎分０．１ｍｌの混合物を１枚の紙に加え、紙を鉛直方向に保持した。混合物は紙を通過した。粘度を測定するために、混合物が特定の時点に通過した距離を観測した。身体での灌流を模倣するために、Ｖｅｎｆｌｏｎ静脈カテーテルをシリンジに取り付けた。粘度試験後、重合した混合物が入った静脈カテーテルをシリンジから取り外した。全ての静脈カテーテルを、異なる混合物の吸収について、マイクロＣＴデバイスで検査した。
【0072】
【表1】
【0073】
重合に関しては、試験した組成物は、３つを除いて全て灌流に適していた。灌流の最短時間を求めたところ、１０分であった。試料１ａ～ｃ、２、６～９は、この要件を満たした。
【0074】
試験では、（５ｇのＰＵ及び０．８ｍｌの硬化剤に対し）少なくとも２ｍｌの２－ブタノンを用いるべきであると判明した。この値よりも少ないと、重合が生じるのが速過ぎて完全に灌流することができない。
【0075】
ヨード化エステル化油の量も、重合の時間に影響する。試料８及び９は、他の試料よりも速い重合を示した。したがって、ＰＵ、硬化剤、及び２－ブタノンの体積が一定であれば、８ｍｌの油が最も好適な濃度に相当するようである。
【0076】
試料６～９では、重合完了後に油及び色素の沈殿が見られたが、これは造影剤が周辺組織内に拡散する原因となり得、画質の低下にもつながり得る。
【0077】
試料８及び９は、ヨード化油の濃度が高く、したがって吸収度も（おそらく骨組織と同じくらい）高かった。この場合、アーチファクトを抑えるためにスキャン時にアルミニウムのフィルターを使う必要があり、そのためスキャン時間が長くなる。それでも高吸収度は毛細血管の認識に良い影響をもたらし得るが、毛細血管ピクセルの過飽和を招く可能性もあり、そうなるとパーシャルボリューム効果が損なわれ、ピクセルサイズが大きくなってしまうこともある（実験では、いずれの場合も０．８μｍの等方性ピクセルサイズを用いた）。
【0078】
ヨード化エステル化亜麻仁油の代わりにヨード化エステル化ケシ油を用いると、灌流は良好であったが、血管造影のコントラストは悪化し、それはヨウ素の比率が低かったためと思われる。溶媒としてブタノンの代わりにアセトンを用いると、ブタノンと類似の効果が見られたが、それは他のケトン、例えばジエチルケトンでも予測される。代替の溶媒として、塩化メチレンを使用することも考えられる。
【0079】
以下の表では、濃度を重量％で表すのに次の測定値を用いた：３．５ｍｌのヨード化エステル化亜麻仁油、重量４．８ｇ。０．８ｍｌの硬化剤、重量０．８ｇ。２ｍｌのブタノン、重量１．５ｇ。使用したＰＵの密度は、約１．０５ｇ／ｃｍ３であった。
【0080】
【表2】
【0081】
最適化試験：
混合試験後、造影剤混合物をさらに最適化した。造影剤を被験体又は被験臓器に注入するための上述の本方法では、硬化剤又は第３の容器の中身は、残りの造影剤構成要素の注入中又は注入直前になってはじめて混合される。そのためにはダブルシリンジが用いられる。その場合、硬化剤と残りの（第２の）混合物との特定の体積比は１：１１と予め決まる。そうなると常に硬化剤が余ることになり、したがって、総量に占める硬化剤の量は限定すべきではない、ということになる。混合試験ではダブルシリンジを使用しなかったため、硬化剤は所定量の０．８ｍｌを用いた。
混合試験後、造影剤混合物をさらに最適化した。造影剤を被験体又は被験臓器に注入するための上述の本方法では、硬化剤又は第３の容器の中身は、残りの造影剤構成要素の注入中又は注入直前になってはじめて混合される。そのためにはダブルシリンジが用いられる。その場合、硬化剤と残りの（第２の）混合物との特定の体積比は１：１１と予め決まる。そうなると常に硬化剤が余ることになり、したがって、総量に占める硬化剤の量は限定すべきではない、ということになる。混合試験ではダブルシリンジを使用しなかったため、硬化剤は所定量の０．８ｍｌを用いた。
【0082】
ＰＵと硬化剤との好ましい体積比は、１００：１６～１００：１９の範囲である。しかし、この範囲は変えてもよく、造影剤の質に実質的な影響はない。
【0083】
最適化試験を行った際、造影剤中のヨード化エステル化亜麻仁油と２－ブタノンとの体積比が５４％／４６％であるのが最適であると判明した（任意選択の色素は、少量であるため考慮していない）（オプション２、５、６）。しかし、ヨード化エステル化亜麻仁油と２－ブタノンとの体積比が５３％／４７％（オプション１）又は５６％／４４％（オプション３）、あるいは５８％／４２％（オプション４）でも、灌流において良好な結果を示し、続いて撮像においても良好なコントラストを示している。したがって、ケトンの体積に対するヨード化エステル化油の体積の比率の好ましい範囲は、いわば０．７５～４、好ましくは１～１．５、特に１．１～１．３と定めることができる。
【0084】
ヨード化エステル化油は、コントラストに影響する。ブタノンは、希釈剤の役割を果たす。より高いコントラストが望ましい場合には、より多くのヨード化エステル化油を混合物に加え、したがってコントラストを低下させるには、ヨード化エステル化油を減じる。油の量が比較的過剰である場合、過飽和により溶液から油が漏出して高粘度となり、灌流が妨害又は阻害される。
【0085】
個々の容器を空にする間、及び構成要素の混合中、及び造影剤の注入中、いずれの場合も、容器のみならず混合チューブ及びシリンジの壁や容器底に残留分が残るため、最適化試験では、構成要素の体積を容器の最大容量にまで最適化し（オプション５、６）、ヨード化エステル化亜麻仁油と２－ブタノンとを一定の最適な比率とした（オプション２の５４％／４６％）。したがって、実際に容器を満たす量は、当然ながら、対応する容器の容量に合わせて、又は被験物に応じて充填許容量により、調節することになる。
【0086】
造影剤組成のオプション：
【表3】
【0087】
【表4】
【0088】
【表5】
【0089】
【表6】
【0090】
【表7】
【0091】
【表8】
【0092】
粘度：
【表9】
【0093】
第２の混合物、すなわち造影溶液とＰＵとの組み合わせ（又はまだ硬化剤を含まない造影剤の組み合わせ）の粘度は、２０℃で約１００ｍＰａｓ．ｓである。
【0094】
参照文献
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－ Ｍｅｙｅｒ， Ｅ． ｅｔ ａｌ．， Ｐｏｌｙｕｒｅｔｈａｎｅ Ｅｌａｓｔｏｍｅｒ： Ａ Ｎｅｗ Ｍａｔｅｒｉａｌ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｖｉｓｕａｌｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ Ｃａｄａｖｅｒｉｃ Ｂｌｏｏｄ Ｖｅｓｓｅｌｓ， Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ａｎａｔｏｍｙ ２０：０００－０００ （２００７） （Ｗｉｌｅｙ Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ）
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－ Ｇｒａｂｈｅｒｒ ｅｔ ａｌ．， Ａｎｇｉｏｆｉｌ（Ｒ）－ｍｅｄｉａｔｅｄ Ｖｉｓｕａｌｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｖａｓｃｕｌａｒ Ｓｙｓｔｅｍ ｂｙ Ｍｉｃｒｏｃｏｍｐｕｔｅｄ Ｔｏｍｏｇｒａｐｈｙ： Ａ Ｆｅａｓｉｂｉｌｉｔｙ Ｓｔｕｄｙ， Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ａｎｄ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ ７１（７）： ５５１－５５６， ２００８．
－ Ｓｈｏｋｉｃｈｅ， Ｃ．Ｃ．， Ｂａｕｍａｎｎ Ｐ．， Ｈｌｕｓｈｃｈｕｋ Ｒ．， Ｄｊｏｎｏｖ Ｖ．， Ｒｅｙｅｓ Ｍ． （２０１６） Ｈｉｇｈ－Ｔｈｒｏｕｇｈｐｕｔ Ｇｌｏｍｅｒｕｌｉ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ μ－ＣＴ Ｋｉｄｎｅｙ Ｉｍａｇｅｓ Ｕｓｉｎｇ Ｔｒｅｅ Ｐｒｉｏｒｓ ａｎｄ Ｓｃａｌａｂｌｅ Ｓｐａｒｓｅ Ｃｏｍｐｕｔａｔｉｏｎ． Ｉｎ： Ｏｕｒｓｅｌｉｎ Ｓ．， Ｊｏｓｋｏｗｉｃｚ Ｌ．， Ｓａｂｕｎｃｕ Ｍ．， Ｕｎａｌ Ｇ．， Ｗｅｌｌｓ Ｗ． （ｅｄｓ） Ｍｅｄｉｃａｌ Ｉｍａｇｅ Ｃｏｍｐｕｔｉｎｇ ａｎｄ Ｃｏｍｐｕｔｅｒ－Ａｓｓｉｓｔｅｄ Ｉｎｔｅｒｖｅｎｔｉｏｎ － ＭＩＣＣＡＩ ２０１６．
－ Ｐｅｒｒｉｅｎ， Ｄ．Ｓ． ｅｔ ａｌ．， Ｎｏｖｅｌ ｍｅｔｈｏｄｓ ｆｏｒ ｍｉｃｒｏＣＴ－ｂａｓｅｄ ａｎａｌｙｓｅｓ ｏｆ ｖａｓｃｕｌａｔｕｒｅ ｉｎ ｔｈｅ ｒｅｎａｌ ｃｏｒｔｅｘ ｒｅｖｅａｌ ａ ｌｏｓｓ ｏｆ ｐｅｒｆｕｓａｂｌｅ ａｒｔｅｒｉｏｌｅｓ ａｎｄ ｇｌｏｍｅｒｕｌｉ ｉｎ ｅＮＯＳ－／－ ｍｉｃｅ， ＢＭＣ． Ｎｅｐｈｒｏｌ． １７， ２４ （２０１６）．
－ Ｓｃｈａａｄ， Ｌ．， ｅｔ ａｌ．， Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｖｅ Ｉｍａｇｉｎｇ ｏｆ ｔｈｅ Ｍｕｒｉｎｅ Ｈｉｎｄ Ｌｉｍｂ Ｖａｓｃｕｌａｔｕｒｅ ａｎｄ Ｍｕｓｃｌｅ Ｔｉｓｓｕｅ ｂｙ ＭｉｃｒｏＣＴ ａｎｄ Ｌｉｇｈｔ Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ， Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｒｅｐｏｒｔｓ， ７：４１８４２ （２０１７）， ｄｏｉ： １０．１０３８／ｓｒｅｐ４１８４
－ Ｚａｇｏｒｃｈｅｖ， Ｌ． ｅｔ ａｌ．， Ｍｉｃｒｏ ｃｏｍｐｕｔｅｄ ｔｏｍｏｇｒａｐｈｙ ｆｏｒ ｖａｓｃｕｌａｒ ｅｘｐｌｏｒａｔｉｏｎ， Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｎｇｉｏｇｅｎｅｓｉｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ２０１０， ２：７
－ Ｍｅｙｅｒ， Ｅ． ｅｔ ａｌ．， Ｐｏｌｙｕｒｅｔｈａｎｅ Ｅｌａｓｔｏｍｅｒ： Ａ Ｎｅｗ Ｍａｔｅｒｉａｌ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｖｉｓｕａｌｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ Ｃａｄａｖｅｒｉｃ Ｂｌｏｏｄ Ｖｅｓｓｅｌｓ， Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ａｎａｔｏｍｙ ２０：０００－０００ （２００７） （Ｗｉｌｅｙ Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ）
－ Ｋｒｕｃｋｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｎｅｗ Ｐｏｌｙｕｒｅｔｈａｎｅ－Ｂａｓｅｄ Ｍａｔｅｒｉａｌ ｆｏｒ Ｖａｓｃｕｌａｒ Ｃｏｒｒｏｓｉｏｎ Ｃａｓｔｉｎｇ ｗｉｔｈ Ｉｍｐｒｏｖｅｄ Ｐｈｙｓｉｃａｌ ａｎｄ Ｉｍａｇｉｎｇ Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ． Ｒｅｓ． Ｔｅｃｈ． ６９： １３８－１４７ （２００６）
－ Ｍｅｙｅｒ， Ｅ． ｅｔ ａｌ．， Ａｌｔｅｒｅｄ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ ａｎｄ ３Ｄ ａｒｃｈｉｔｅｃｔｕｒｅ ｏｆ ｂｒａｉｎ ｖａｓｃｕｌａｔｕｒｅ ｉｎ ａ ｍｏｕｓｅ ｍｏｄｅｌ ｆｏｒ Ａｌｚｈｅｉｍｅｒ’ｓ ｄｉｓｅａｓｅ， ＰＮＡＳ， １０５； ９； ３５８７－３５９２ （２００８）
－ Ｇｒａｂｈｅｒｒ ｅｔ ａｌ．， Ａｎｇｉｏｆｉｌ（Ｒ）－ｍｅｄｉａｔｅｄ Ｖｉｓｕａｌｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｖａｓｃｕｌａｒ Ｓｙｓｔｅｍ ｂｙ Ｍｉｃｒｏｃｏｍｐｕｔｅｄ Ｔｏｍｏｇｒａｐｈｙ： Ａ Ｆｅａｓｉｂｉｌｉｔｙ Ｓｔｕｄｙ， Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ａｎｄ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ ７１（７）： ５５１－５５６， ２００８．
－ Ｓｈｏｋｉｃｈｅ， Ｃ．Ｃ．， Ｂａｕｍａｎｎ Ｐ．， Ｈｌｕｓｈｃｈｕｋ Ｒ．， Ｄｊｏｎｏｖ Ｖ．， Ｒｅｙｅｓ Ｍ． （２０１６） Ｈｉｇｈ－Ｔｈｒｏｕｇｈｐｕｔ Ｇｌｏｍｅｒｕｌｉ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ μ－ＣＴ Ｋｉｄｎｅｙ Ｉｍａｇｅｓ Ｕｓｉｎｇ Ｔｒｅｅ Ｐｒｉｏｒｓ ａｎｄ Ｓｃａｌａｂｌｅ Ｓｐａｒｓｅ Ｃｏｍｐｕｔａｔｉｏｎ． Ｉｎ： Ｏｕｒｓｅｌｉｎ Ｓ．， Ｊｏｓｋｏｗｉｃｚ Ｌ．， Ｓａｂｕｎｃｕ Ｍ．， Ｕｎａｌ Ｇ．， Ｗｅｌｌｓ Ｗ． （ｅｄｓ） Ｍｅｄｉｃａｌ Ｉｍａｇｅ Ｃｏｍｐｕｔｉｎｇ ａｎｄ Ｃｏｍｐｕｔｅｒ－Ａｓｓｉｓｔｅｄ Ｉｎｔｅｒｖｅｎｔｉｏｎ － ＭＩＣＣＡＩ ２０１６．
－ Ｐｅｒｒｉｅｎ， Ｄ．Ｓ． ｅｔ ａｌ．， Ｎｏｖｅｌ ｍｅｔｈｏｄｓ ｆｏｒ ｍｉｃｒｏＣＴ－ｂａｓｅｄ ａｎａｌｙｓｅｓ ｏｆ ｖａｓｃｕｌａｔｕｒｅ ｉｎ ｔｈｅ ｒｅｎａｌ ｃｏｒｔｅｘ ｒｅｖｅａｌ ａ ｌｏｓｓ ｏｆ ｐｅｒｆｕｓａｂｌｅ ａｒｔｅｒｉｏｌｅｓ ａｎｄ ｇｌｏｍｅｒｕｌｉ ｉｎ ｅＮＯＳ－／－ ｍｉｃｅ， ＢＭＣ． Ｎｅｐｈｒｏｌ． １７， ２４ （２０１６）．
－ Ｓｃｈａａｄ， Ｌ．， ｅｔ ａｌ．， Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｖｅ Ｉｍａｇｉｎｇ ｏｆ ｔｈｅ Ｍｕｒｉｎｅ Ｈｉｎｄ Ｌｉｍｂ Ｖａｓｃｕｌａｔｕｒｅ ａｎｄ Ｍｕｓｃｌｅ Ｔｉｓｓｕｅ ｂｙ ＭｉｃｒｏＣＴ ａｎｄ Ｌｉｇｈｔ Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ， Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｒｅｐｏｒｔｓ， ７：４１８４２ （２０１７）， ｄｏｉ： １０．１０３８／ｓｒｅｐ４１８４
【図1】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図6】
【図7】
