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(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B1)
(11)【特許番号】
(24)【登録日】2023-05-08
(45)【発行日】2023-05-16
(54)【発明の名称】薬剤の白斑リスクを判定する方法
(51)【国際特許分類】
C12Q 1/02 20060101AFI20230509BHJP
C12Q 1/26 20060101ALI20230509BHJP
C12N 5/071 20100101ALI20230509BHJP
C12N 5/0784 20100101ALI20230509BHJP
【ＦＩ】
C12Q1/02
C12Q1/26
C12N5/071
C12N5/0784
【請求項の数】
6
(21)【出願番号】P 2022140287
(22)【出願日】2022-09-02
【審査請求日】2022-10-31
【早期審査対象出願】
(73)【特許権者】
【識別番号】000113470
【氏名又は名称】ポーラ化成工業株式会社
(74)【代理人】
【識別番号】110002860
【氏名又は名称】弁理士法人秀和特許事務所
(72)【発明者】
【氏名】豊田 明美
(72)【発明者】
【氏名】山地 史哉
(72)【発明者】
【氏名】森 将人
(72)【発明者】
【氏名】宍戸 まゆみ
(72)【発明者】
【氏名】西村 いづみ
【審査官】白井 美香保
(56)【参考文献】
【文献】国際公開第２０１７／２０３９９９（ＷＯ，Ａ１）
【文献】Med. Res. Rev.，2021年，Vol.41，p.1138-1166
【文献】Frontiers in Immunology，2021年，Vol.11, Article 624566，p.1-9
【文献】Pigment Cell Melanoma Res.，2016年，Vol.29，p.541-549
(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)
Ｃ１２Ｑ １／００－３／００
ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩＩ）
ＣＡＰＬＵＳ／ＢＩＯＳＩＳ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＥＭＢＡＳＥ（ＳＴＮ）
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
被験試料の白斑リスクを判定する方法であって、（１）被験試料のメラノサイトに対する５０％生育阻害濃度（ＩＣ５０）の評価を行う工程１、並びに
工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合に、
（２）被験試料のメラノサイトにおける活性酸素産生活性の評価、
（３）被験試料のメラノサイトにおける小胞体ストレス誘導活性の評価、及び
（４）被験試料のメラノサイトにおけるアポトーシス誘導活性の評価、からなる群から選択される１又は２以上の評価を行う工程２、及び
（５）被験試料のチロシナーゼによる被代謝能の評価を行う工程３、を含み、
工程３において、前記被代謝能が認められた場合に、さらに、
被験試料のチロシナーゼによる代謝物について、工程１を行うこと、及び
工程１においてＩＣ ５０ が予め設定した基準値を超えた場合に工程２を行うことを含み、
工程１においてＩＣ ５０ が予め設定した基準値以下であった場合に、被験試料は白斑リスクが高いと判定され、
工程２において評価したいずれか１以上において活性が認められた場合に、被験試料は白斑リスクの懸念があると判定され、
工程２において評価したいずれにおいても活性が認められず、かつ工程３において前記被代謝能が認められない場合に、被験試料は白斑リスクが低いと判定される、方法。
【請求項2】
工程２において評価したいずれにおいても活性が認められないことが確認された後に、工程３を行う、請求項１に記載の方法。
【請求項3】
工程２において、（２）、（３）及び（４）の評価を行う、請求項１に記載の方法。
【請求項4】
工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合に、さらに（６）被験試料のタンパク質結合能、及び／又は
（７）被験試料の樹状細胞活性化能、の評価を行う工程４を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項5】
被験試料のチロシナーゼによる代謝物について、工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合に、さらに（６）被験試料のチロシナーゼによる代謝物のタンパク質結合能、及び／又は
（７）被験試料のチロシナーゼによる代謝物の樹状細胞活性化能、の評価を行う工程４を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項6】
被験試料が水溶性である、請求項１～５のいずれか一項に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、化粧料に配合する成分の白斑リスク判定する方法に関する。
【背景技術】
【0002】
ロドデノール（４－（４－ヒドロキシフェニル）－２－ブタノール）はそのチロシナーゼ阻害作用を利用して美白用化粧料の有効成分として利用されていたが、それを配合した化粧料を適用した皮膚において白斑を多数生じさせることが発覚した（非特許文献１）。
一般に、薬剤の開発においては、有効性の確認の他に、副作用の誘発を防ぐべく安全性の確認が行われている。しかしながら、近年、化粧料の場合は動物を使用せずに実験することが国際的な潮流であるため、薬剤の安全性を確認するために用いる試験の多くはｉｎ
ｖｉｔｒｏで実施する必要がある。ただ、安全性を確認しなければならないすべての評価項目において、利用可能なｉｎ ｖｉｔｒｏ法が確立されているわけではない。
さらに、ｉｎ ｖｉｔｒｏでも信頼性の高い安全性確認のための手段が求められており、種々の方法が提案されている。例えば、ヒト単球系培養細胞ＴＨＰ－１を利用して薬剤の感作性を評価するヒトセルライン活性化テスト（ｈ－ＣＬＡＴ）や、被験試料の共存下で培養した細胞における免疫活性化マーカー発現を検出して被験試料と細胞間の相互作用に起因する感作性を検出する方法等が提案されている（特許文献１）。
一般に、薬剤の開発においては、有効性の確認の他に、副作用の誘発を防ぐべく安全性の確認が行われている。しかしながら、近年、化粧料の場合は動物を使用せずに実験することが国際的な潮流であるため、薬剤の安全性を確認するために用いる試験の多くはｉｎ
ｖｉｔｒｏで実施する必要がある。ただ、安全性を確認しなければならないすべての評価項目において、利用可能なｉｎ ｖｉｔｒｏ法が確立されているわけではない。
さらに、ｉｎ ｖｉｔｒｏでも信頼性の高い安全性確認のための手段が求められており、種々の方法が提案されている。例えば、ヒト単球系培養細胞ＴＨＰ－１を利用して薬剤の感作性を評価するヒトセルライン活性化テスト（ｈ－ＣＬＡＴ）や、被験試料の共存下で培養した細胞における免疫活性化マーカー発現を検出して被験試料と細胞間の相互作用に起因する感作性を検出する方法等が提案されている（特許文献１）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0003】
【文献】特開２０２２－７０８１８号公報
【非特許文献】
【0004】
【文献】T. N-Mogami, Bull. Natl. Inst. Health Sci., 133, 13-20 (2015)
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0005】
白斑が生じるメカニズムについては種々研究されており様々な要因が報告されているが、化粧料への配合に耐えうる安全性を確認する際の試験法としては未だ確立されていない。また、前記評価項目が複数必要である場合、被験試料を検証する手順について効率的に確認を遂行できることも重要である。
このような状況を鑑みて、本発明は、皮膚外用剤に配合する成分について、それを曝露した皮膚に白斑が生じる危険性（白斑リスク）を、動物を用いずにｉｎ ｖｉｔｒｏで、高い信頼性で効率よく評価する方法を提供することを目的とする。
このような状況を鑑みて、本発明は、皮膚外用剤に配合する成分について、それを曝露した皮膚に白斑が生じる危険性（白斑リスク）を、動物を用いずにｉｎ ｖｉｔｒｏで、高い信頼性で効率よく評価する方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【0006】
本発明者らは、上記課題を解決するべく鋭意研究の末、白斑が生じるメカニズムを網羅的に解明した結果、被験試料（化合物等）をメラノサイトに曝露したときに白斑を生じ得る、主要な評価項目として、メラノサイトに対する直接的な細胞毒性と、細胞毒性を引き起こすメカニズムに関与する活性（間接的な細胞毒性）と、化合物のチロシナーゼによる代謝性とを特定した。さらにその優先順位を決定し、評価フローを構築して本発明を完成させた。さらに評価結果を補強するエンドポイントとして、化合物の免疫応答性評価を行うことも好ましいことを見出した。
【0007】
すなわち、本発明は以下の通りである。
［１］被験試料の白斑リスクを判定する方法であって、
（１）被験試料のメラノサイトに対する５０％生育阻害濃度（ＩＣ５０）の評価を行う
工程１、並びに
工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合に、
（２）被験試料のメラノサイトにおける活性酸素産生活性の評価、
（３）被験試料のメラノサイトにおける小胞体ストレス誘導活性の評価、及び
（４）被験試料のメラノサイトにおけるアポトーシス誘導活性の評価、からなる群から選択される１又は２以上の評価を行う工程２、及び
（５）被験試料のチロシナーゼによる被代謝能の評価を行う工程３、を含む、方法。
［２］工程２において評価したいずれにおいても活性が認められないことが確認された後に、工程３を行う、［１］に記載の方法。
［３］工程２において、（２）、（３）及び（４）の評価を行う、［１］又は［２］に記載の方法。
［４］工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値以下であった場合に、被験試料は白斑リスクが高いと判定され、
工程２において評価したいずれか１以上において活性が認められた場合に、被験試料は白斑リスクの懸念があると判定され、
工程２において評価したいずれにおいても活性が認められず、かつ工程３において前記被代謝能が認められない場合に、被験試料は白斑リスクが低いと判定される、［２］又は［３］に記載の方法。
［５］工程３において、前記被代謝能が認められた場合に、さらに、
被験試料のチロシナーゼによる代謝物について、工程１を行うこと、及び
工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合に工程２を行うことを含む、［２］～［４］のいずれかに記載の方法。
［６］工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合に、さらに
（６）被験試料のタンパク質結合能、及び／又は
（７）被験試料の樹状細胞活性化能、の評価を行う工程４を含む、［１］～［５］のいずれかに記載の方法。
［７］被験試料のチロシナーゼによる代謝物について、工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合に、さらに
（６）被験試料のチロシナーゼによる代謝物のタンパク質結合能、及び／又は
（７）被験試料のチロシナーゼによる代謝物の樹状細胞活性化能、の評価を行う工程４を含む、［５］に記載の方法。
［８］被験試料が水溶性である、［１］～［７］のいずれかに記載の方法。
［１］被験試料の白斑リスクを判定する方法であって、
（１）被験試料のメラノサイトに対する５０％生育阻害濃度（ＩＣ５０）の評価を行う
工程１、並びに
工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合に、
（２）被験試料のメラノサイトにおける活性酸素産生活性の評価、
（３）被験試料のメラノサイトにおける小胞体ストレス誘導活性の評価、及び
（４）被験試料のメラノサイトにおけるアポトーシス誘導活性の評価、からなる群から選択される１又は２以上の評価を行う工程２、及び
（５）被験試料のチロシナーゼによる被代謝能の評価を行う工程３、を含む、方法。
［２］工程２において評価したいずれにおいても活性が認められないことが確認された後に、工程３を行う、［１］に記載の方法。
［３］工程２において、（２）、（３）及び（４）の評価を行う、［１］又は［２］に記載の方法。
［４］工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値以下であった場合に、被験試料は白斑リスクが高いと判定され、
工程２において評価したいずれか１以上において活性が認められた場合に、被験試料は白斑リスクの懸念があると判定され、
工程２において評価したいずれにおいても活性が認められず、かつ工程３において前記被代謝能が認められない場合に、被験試料は白斑リスクが低いと判定される、［２］又は［３］に記載の方法。
［５］工程３において、前記被代謝能が認められた場合に、さらに、
被験試料のチロシナーゼによる代謝物について、工程１を行うこと、及び
工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合に工程２を行うことを含む、［２］～［４］のいずれかに記載の方法。
［６］工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合に、さらに
（６）被験試料のタンパク質結合能、及び／又は
（７）被験試料の樹状細胞活性化能、の評価を行う工程４を含む、［１］～［５］のいずれかに記載の方法。
［７］被験試料のチロシナーゼによる代謝物について、工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合に、さらに
（６）被験試料のチロシナーゼによる代謝物のタンパク質結合能、及び／又は
（７）被験試料のチロシナーゼによる代謝物の樹状細胞活性化能、の評価を行う工程４を含む、［５］に記載の方法。
［８］被験試料が水溶性である、［１］～［７］のいずれかに記載の方法。
【発明の効果】
【0008】
本発明の判定方法によれば、化合物の白斑リスクを網羅的な白斑発生メカニズムに基づいて、動物を用いることなくｉｎ ｖｉｔｒｏで、客観的に、短期間で効率的に判定できる。そのため、化粧料に配合する成分の検討に役立てることができる。
【図面の簡単な説明】
【0009】
【図1】白斑リスクの判定フローの一態様を示す図である。工程１は最優先で必須に行われる。工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合に、工程２及び工程３を行う。工程２及び工程３はいずれを先に又は同時に行ってもよいが、工程２において評価したいずれにおいても活性が認められないことが確認された後に、工程３を行うことが好ましい。工程３において、前記被代謝能が認められた場合は、その代謝物について改めて工程１から評価を実施することが好ましい。工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合には、工程４も行うことが好ましい。
【発明を実施するための形態】
【0010】
本発明において、白斑リスクとは、被験試料（通常は皮膚外用剤に配合しようと検討する成分）について、それを曝露した皮膚に白斑が生じる危険性をいう。通常は、「白斑リ
スクが高い」、「白斑リスクが懸念される」、「白斑リスクが低い・ない」というような３段階に評価されるが特に限定されない。白斑リスクが高い場合は、皮膚外用剤への配合すべきでないため、通常は開発候補から除外される。
スクが高い」、「白斑リスクが懸念される」、「白斑リスクが低い・ない」というような３段階に評価されるが特に限定されない。白斑リスクが高い場合は、皮膚外用剤への配合すべきでないため、通常は開発候補から除外される。
【0011】
本発明の判定方法に適用できる被験試料は、特に限定されず、純物質、動植物由来の抽出物、又はそれらの混合物等が挙げられるが、純物質が好ましく、低分子化合物がより好ましい。
また、本発明の判定方法における各工程では細胞（メラノサイト）や酵素を用いるため、試験系は通常は水性媒体を用いることとなる。そうすると難水溶性物質については適切な評価をできない場合があるため、被験試料は水溶性であることが好ましい。例えば、ｎ－オクタノール／水の分配係数(Log kow)が６以下の物質に対して、本発明の判定方法を好ましく適用できる。
また、本発明の判定方法における各工程は、光照射の影響を排除するものではないため、光反応性が高い物質については適切な評価をできない場合があるため、被験試料は光反応性が低いことが好ましい。例えば、モル吸光係数が１００Ｌ・ｍｏｌ－１・ｃｍ－１（波長２９０～７００ｎｍ）以上の物質に対して、本発明の判定方法を好ましく適用できる。
また、本発明の判定方法における各工程では細胞（メラノサイト）や酵素を用いるため、試験系は通常は水性媒体を用いることとなる。そうすると難水溶性物質については適切な評価をできない場合があるため、被験試料は水溶性であることが好ましい。例えば、ｎ－オクタノール／水の分配係数(Log kow)が６以下の物質に対して、本発明の判定方法を好ましく適用できる。
また、本発明の判定方法における各工程は、光照射の影響を排除するものではないため、光反応性が高い物質については適切な評価をできない場合があるため、被験試料は光反応性が低いことが好ましい。例えば、モル吸光係数が１００Ｌ・ｍｏｌ－１・ｃｍ－１（波長２９０～７００ｎｍ）以上の物質に対して、本発明の判定方法を好ましく適用できる。
【0012】
本発明者らは、白斑発生メカニズムについての研究を網羅的に検証し、主に以下の流れにより白斑が生じると推測した。すなわち、皮膚に適用された物質自体又はそれがチロシナーゼ代謝を受けて生じた代謝物が、表皮細胞内で何らかの働きかけをして活性酸素（ＲＯＳ）を産生させたり、小胞体（ＥＲ）ストレスを引き起こしたりする。皮膚において酸化・抗酸化反応のバランスが乱れると、ＲＯＳ産生が過剰となる。過剰に賛成したＲＯＳや、ＥＲストレスがメラノサイトの細胞死を誘発する。また、メラノサイトが細胞死するとダメージ関連分子パターン（ＤＡＭＰｓ）が発現し、樹状細胞（ＤＣ）が活性化して、免疫応答を誘発し、メラノサイトを攻撃する。
このように推測されたメカニズムに基づき、白斑リスクを判定するにあたり少なくとも評価すべき５項目を採用し、工程１～３に組み入れることとした。
このように推測されたメカニズムに基づき、白斑リスクを判定するにあたり少なくとも評価すべき５項目を採用し、工程１～３に組み入れることとした。
【0013】
以下に、本発明の判定方法に含まれる工程と、判定の指標とする評価項目について説明する。
【0014】
＜工程１＞
本発明の判定方法には、被験試料のメラノサイトに対する直接的な細胞毒性を示す指標として、（１）５０％生育阻害濃度（ＩＣ５０）の評価を行う工程１を必須にかつ最先に行う。メラノサイト細胞死は、白斑発症における最も重要なエンドポイントであるためである（山崎研志ら、尋常性白斑の病態 up to date, 2020, 日皮会誌：130(3)、357-366）。メラノサイトに対するＩＣ５０が低いほど、白斑リスクが高い傾向にある。
メラノサイトに対するＩＣ５０の測定は、特に制限されず公知の方法で行うことができる。例えば、適当な濃度に希釈した被験試料溶液を、正常ヒトメラノサイト(Normal Human Epidermal Melanocytes：ＮＨＥＭ)に所定時間曝露させた後に、adenosine triphosphate (ＡＴＰ)を指標として細胞生存率を測定し、得られた細胞生存率から算出することができる。
被験試料のメラノサイトに対する細胞毒性が高いと判断する指標、すなわちＩＣ５０の基準値（カットオフ値）としては、特に限定されないが、例えば既知の白斑を発生させる物質及び安全性が確立している既存の美白用成分のＩＣ５０の値を踏まえ、ＩＣ５０＝５０μｇ／ｍＬとすることができる。かかる基準値を超えた場合は、工程２及び工程３へ進む。
本発明の判定方法には、被験試料のメラノサイトに対する直接的な細胞毒性を示す指標として、（１）５０％生育阻害濃度（ＩＣ５０）の評価を行う工程１を必須にかつ最先に行う。メラノサイト細胞死は、白斑発症における最も重要なエンドポイントであるためである（山崎研志ら、尋常性白斑の病態 up to date, 2020, 日皮会誌：130(3)、357-366）。メラノサイトに対するＩＣ５０が低いほど、白斑リスクが高い傾向にある。
メラノサイトに対するＩＣ５０の測定は、特に制限されず公知の方法で行うことができる。例えば、適当な濃度に希釈した被験試料溶液を、正常ヒトメラノサイト(Normal Human Epidermal Melanocytes：ＮＨＥＭ)に所定時間曝露させた後に、adenosine triphosphate (ＡＴＰ)を指標として細胞生存率を測定し、得られた細胞生存率から算出することができる。
被験試料のメラノサイトに対する細胞毒性が高いと判断する指標、すなわちＩＣ５０の基準値（カットオフ値）としては、特に限定されないが、例えば既知の白斑を発生させる物質及び安全性が確立している既存の美白用成分のＩＣ５０の値を踏まえ、ＩＣ５０＝５０μｇ／ｍＬとすることができる。かかる基準値を超えた場合は、工程２及び工程３へ進む。
【0015】
＜工程２＞
工程２では、（２）被験試料のメラノサイトにおける活性酸素産生活性の評価、（３）被験試料のメラノサイトにおける小胞体ストレス誘導活性の評価、及び（４）被験試料のメラノサイトにおけるアポトーシス誘導活性の評価からなる群から選択される１又は２以上の評価を行う。好ましくは、工程２では、（２）、（３）及び（４）の全ての評価を行う。
これらの評価項目は、メラノサイトに対する間接的な細胞毒性を呈する項目であるため、本発明の判定方法では工程１において直接的な細胞毒性が高くないと判断された場合であっても、少なくとも１以上を評価することを必須とする。
工程２では、（２）被験試料のメラノサイトにおける活性酸素産生活性の評価、（３）被験試料のメラノサイトにおける小胞体ストレス誘導活性の評価、及び（４）被験試料のメラノサイトにおけるアポトーシス誘導活性の評価からなる群から選択される１又は２以上の評価を行う。好ましくは、工程２では、（２）、（３）及び（４）の全ての評価を行う。
これらの評価項目は、メラノサイトに対する間接的な細胞毒性を呈する項目であるため、本発明の判定方法では工程１において直接的な細胞毒性が高くないと判断された場合であっても、少なくとも１以上を評価することを必須とする。
【0016】
過剰に産生した活性酸素（ＲＯＳ）はメラノサイトの細胞死を誘発するため、（２）被験試料のメラノサイトにおける活性酸素産生活性が高いほど、白斑リスクが高い傾向にある。
ＲＯＳ産生活性の測定は、特に制限されず公知の方法で行うことができる。例えば、適当な濃度に希釈した被験試料溶液を、ＮＨＥＭに所定時間曝露させ、既存のＲＯＳ産生活性測定試薬（例えばROS-ID Total ROS/Superoxide detection kit（Enzo Life Sciences社製）など）を用いて、所定の蛍光強度を測定することによりヒドロキシラジカル・過酸化水素産生能及びスーパーオキシド産生能をそれぞれ測定することができる。通常は、被験試料を添加しない対照群に比べたときの添加群での蛍光強度で評価を行う。
被験試料のメラノサイトにおける活性酸素産生活性が高い（すなわち、活性がある）と判断する指標としては、特に限定されないが、例えばヒドロキシラジカル・過酸化水素産生能及びスーパーオキシド産生能から選択される１又は２において、対照群に対して高い測定値が得られたこととすることができる。
ＲＯＳ産生活性の測定は、特に制限されず公知の方法で行うことができる。例えば、適当な濃度に希釈した被験試料溶液を、ＮＨＥＭに所定時間曝露させ、既存のＲＯＳ産生活性測定試薬（例えばROS-ID Total ROS/Superoxide detection kit（Enzo Life Sciences社製）など）を用いて、所定の蛍光強度を測定することによりヒドロキシラジカル・過酸化水素産生能及びスーパーオキシド産生能をそれぞれ測定することができる。通常は、被験試料を添加しない対照群に比べたときの添加群での蛍光強度で評価を行う。
被験試料のメラノサイトにおける活性酸素産生活性が高い（すなわち、活性がある）と判断する指標としては、特に限定されないが、例えばヒドロキシラジカル・過酸化水素産生能及びスーパーオキシド産生能から選択される１又は２において、対照群に対して高い測定値が得られたこととすることができる。
【0017】
小胞体ストレスはメラノサイトの細胞死を誘発するため、（３）被験試料のメラノサイトにおける小胞体ストレス誘導活性が高いほど、白斑リスクが高い傾向にある。
小胞体ストレス誘導活性の測定は、特に制限されず公知の方法で行うことができる。例えば、例えば、適当な濃度に希釈した被験試料溶液を、ＮＨＥＭに所定時間曝露させた後に該細胞からＲＮＡを抽出し、逆転写後に、ｐＰＣＲにより小胞体ストレスマーカー（例えばC/EBP homologous protein；CHOP遺伝子など）の発現量を測定する。通常は、被験試料を添加しない対照群に比べたときの添加群での発現量で評価を行い、発現量はＧＡＰＤＨ遺伝子等で補正を行った相対発現量を用いる。
被験試料のメラノサイトにおける小胞体ストレス誘導活性が高い（すなわち、活性がある）と判断する指標としては、特に限定されないが、例えば小胞体ストレスマーカー発現量が、対照群に対して有意に高いこととすることができる。
小胞体ストレス誘導活性の測定は、特に制限されず公知の方法で行うことができる。例えば、例えば、適当な濃度に希釈した被験試料溶液を、ＮＨＥＭに所定時間曝露させた後に該細胞からＲＮＡを抽出し、逆転写後に、ｐＰＣＲにより小胞体ストレスマーカー（例えばC/EBP homologous protein；CHOP遺伝子など）の発現量を測定する。通常は、被験試料を添加しない対照群に比べたときの添加群での発現量で評価を行い、発現量はＧＡＰＤＨ遺伝子等で補正を行った相対発現量を用いる。
被験試料のメラノサイトにおける小胞体ストレス誘導活性が高い（すなわち、活性がある）と判断する指標としては、特に限定されないが、例えば小胞体ストレスマーカー発現量が、対照群に対して有意に高いこととすることができる。
【0018】
前述の通りメラノサイトの細胞死は白斑につながるため、（４）被験試料のメラノサイトにおけるアポトーシス誘導活性が高いほど、白斑リスクが高い傾向にある。
アポトーシス誘導活性の測定は、特に制限されず公知の方法で行うことができる。例えば、適当な濃度に希釈した被験試料溶液を、ＮＨＥＭに所定時間曝露させ、アポトーシスのメディエーター（カスパーゼ－３等）の発現量を測定することにより、評価することができる。
被験試料のメラノサイトにおけるアポトーシス誘導活性が高い（すなわち、活性がある）と判断する指標としては、特に限定されないが、例えばアポトーシスのメディエーターが発現している細胞（陽性細胞）の単位細胞数当たりの割合（陽性率）を算出することにより、該陽性率が所定の基準値より高いこと、又は対照群に対して高いこととすることができる。
アポトーシス誘導活性の測定は、特に制限されず公知の方法で行うことができる。例えば、適当な濃度に希釈した被験試料溶液を、ＮＨＥＭに所定時間曝露させ、アポトーシスのメディエーター（カスパーゼ－３等）の発現量を測定することにより、評価することができる。
被験試料のメラノサイトにおけるアポトーシス誘導活性が高い（すなわち、活性がある）と判断する指標としては、特に限定されないが、例えばアポトーシスのメディエーターが発現している細胞（陽性細胞）の単位細胞数当たりの割合（陽性率）を算出することにより、該陽性率が所定の基準値より高いこと、又は対照群に対して高いこととすることができる。
【0019】
＜工程３＞
工程３では、（５）被験試料のチロシナーゼによる被代謝能の評価を行う。
白斑発生で問題となったロドデノールは、チロシナーゼの阻害剤であるとともに、それ
自身がチロシナーゼの基質となり、メラノサイト内でロドデノールキノン体が生成される。そして、ロドデノールが代謝される過程で活性酸素が発生し、メラノサイトが障害を受ける。さらに、ロドデノールキノン体がチロシナーゼと形成する複合体が抗原となって、メラノサイト特異的な細胞障害性リンパ球を誘導して、自己免疫性疾患が誘発され白斑発生に至ったと推測されている。
そのため、工程３は、ロドデノールの事例のように、被験試料自体に直接的又は間接的な細胞毒性が認められない場合でも、その代謝物が細胞毒性を有する可能性を見逃さないための評価項目である。
チロシナーゼによる被代謝能の測定は、特に制限されず公知の方法で行うことができる。例えば、適当な濃度に希釈した被験試料とチロシナーゼとを反応させて、所定時間経過後の被験試料の残存率をＨＰＬＣ等で定量することにより測定することができる。通常、残存率はチロシナーゼ非添加のコントロールでの残存率を差し引いて補正する。
被験試料のチロシナーゼによる被代謝能が高い（すなわち、被代謝能がある）と判断する指標としては、特に限定されないが、例えばチロシナーゼ反応後の被験試料の残存率が反応開始から所定時間経過後に明確に低下していること、チロシナーゼ添加群における残存率がコントロールに比して明確に小さいこと、及び／又はチロシナーゼ反応により代謝物とみられる物質の生成がＨＰＬＣ等で検出されること、などとすることができる。
工程３では、（５）被験試料のチロシナーゼによる被代謝能の評価を行う。
白斑発生で問題となったロドデノールは、チロシナーゼの阻害剤であるとともに、それ
自身がチロシナーゼの基質となり、メラノサイト内でロドデノールキノン体が生成される。そして、ロドデノールが代謝される過程で活性酸素が発生し、メラノサイトが障害を受ける。さらに、ロドデノールキノン体がチロシナーゼと形成する複合体が抗原となって、メラノサイト特異的な細胞障害性リンパ球を誘導して、自己免疫性疾患が誘発され白斑発生に至ったと推測されている。
そのため、工程３は、ロドデノールの事例のように、被験試料自体に直接的又は間接的な細胞毒性が認められない場合でも、その代謝物が細胞毒性を有する可能性を見逃さないための評価項目である。
チロシナーゼによる被代謝能の測定は、特に制限されず公知の方法で行うことができる。例えば、適当な濃度に希釈した被験試料とチロシナーゼとを反応させて、所定時間経過後の被験試料の残存率をＨＰＬＣ等で定量することにより測定することができる。通常、残存率はチロシナーゼ非添加のコントロールでの残存率を差し引いて補正する。
被験試料のチロシナーゼによる被代謝能が高い（すなわち、被代謝能がある）と判断する指標としては、特に限定されないが、例えばチロシナーゼ反応後の被験試料の残存率が反応開始から所定時間経過後に明確に低下していること、チロシナーゼ添加群における残存率がコントロールに比して明確に小さいこと、及び／又はチロシナーゼ反応により代謝物とみられる物質の生成がＨＰＬＣ等で検出されること、などとすることができる。
【0020】
被験試料のチロシナーゼによる代謝物の細胞毒性についても確認する観点から、工程３において、被験試料のチロシナーゼによる被代謝能が認められた場合には、さらに、被験試料のチロシナーゼによる代謝物について、工程１を行うこと、及び工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合に工程２を行うことが好ましい。
【0021】
工程２及び工程３はいずれを先に又は同時に行ってもよいが、工程２において評価したいずれにおいても活性が認められないことが確認された後に、工程３を行うことが好ましい。工程３において、前記被代謝能が認められた場合は、その代謝物について改めて工程１から評価を実施することが好ましい。
【0022】
本発明の判定方法を図１に示すフロー図を参照して説明すると、工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値以下であった場合は、被験試料はメラノサイトに対する細胞毒性が高いため、白斑リスクが高いと判定される。また、工程２において評価したいずれか１つ以上、好ましくは２つ以上、より好ましくは３つにおいて活性があると認められた場合に、被験試料は白斑リスクの懸念があると判定される。また、工程２において評価したいずれにおいても活性があるとは認められず、かつ工程３においてチロシナーゼの被代謝能が認められない場合に、被験試料は白斑リスクが低いと判定される。なお、工程２において評価したいずれにおいても活性があるとは認められない場合であっても、工程３においてチロシナーゼの被代謝能が認められた場合は、その代謝物について白斑リスクを判定する必要があるため、工程３終了時にはまだ被験試料の白斑リスクを判断することはしない。
これらの判定基準で導かれる白斑リスクは、後述の実施例で示されるように白斑を発生させる又はさせないことが既知の物質についての知見と一致するものである。
これらの判定基準で導かれる白斑リスクは、後述の実施例で示されるように白斑を発生させる又はさせないことが既知の物質についての知見と一致するものである。
【0023】
本発明の判定方法では、白斑発生に寄与する主要な５つの評価項目を、前述の工程の順で行うことにより、白斑リスクの見落としを避けることができ、信頼性のある判定を効率的に実現できる。
一般に、判定に際して指標となる評価項目の個数を増やせば判定結果の信頼性が向上すると考えられ、また白斑発生に関与する現象は種々あると考えられているが、本発明によれば判定に用いる評価項目を適切に選択して、適切な順序とすることにより、少なくとも１つ、通常は３～５つの評価項目であっても信頼性の確保を達成している。また、直接的な細胞毒性、間接的な細胞毒性、及び代謝物の検討という段階を経ることで、判定の迅速
化・簡素化に寄与する。
一般に、判定に際して指標となる評価項目の個数を増やせば判定結果の信頼性が向上すると考えられ、また白斑発生に関与する現象は種々あると考えられているが、本発明によれば判定に用いる評価項目を適切に選択して、適切な順序とすることにより、少なくとも１つ、通常は３～５つの評価項目であっても信頼性の確保を達成している。また、直接的な細胞毒性、間接的な細胞毒性、及び代謝物の検討という段階を経ることで、判定の迅速
化・簡素化に寄与する。
【0024】
＜工程４＞
前述した工程１～３により、信頼性のある白斑リスクの判定を行うことができるが、さらに判定結果の精度や信頼性を高めるため、被験試料もしくはチロシナーゼによって代謝された代謝物のタンパク質結合能や免疫応答性を評価してもよい。具体的には、工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合には、その被験試料についてはさらに（６）被験試料のタンパク質結合能、及び／又は（７）被験試料の樹状細胞活性化能、の評価を行う工程４を行う。
前述した工程１～３により、信頼性のある白斑リスクの判定を行うことができるが、さらに判定結果の精度や信頼性を高めるため、被験試料もしくはチロシナーゼによって代謝された代謝物のタンパク質結合能や免疫応答性を評価してもよい。具体的には、工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合には、その被験試料についてはさらに（６）被験試料のタンパク質結合能、及び／又は（７）被験試料の樹状細胞活性化能、の評価を行う工程４を行う。
【0025】
（６）被験試料のタンパク質結合能が高いと、免疫応答が活性して安全性の懸念がある。
タンパク質結合能の測定は、特に制限されず公知の方法で行うことができる。例えば、ＡＤＲＡ（Amino acid Derivative Reactivity Assay）法など確立された手法を用いて行うことができる。
被験試料のタンパク質結合能があると判断する指標としては、特に限定されないが、被験試料との結合により減少した基準物質（タンパク質、ペプチド、又はＮＡＣやＮＡＬなどのペプチド誘導体）の減少率が所定の基準値よりも高いこととすることができる。タンパク質結合能があると判断された場合は、被験試料を皮膚外用剤に配合するに際し安全性上の懸念があるため、開発に慎重さが求められる。
タンパク質結合能の測定は、特に制限されず公知の方法で行うことができる。例えば、ＡＤＲＡ（Amino acid Derivative Reactivity Assay）法など確立された手法を用いて行うことができる。
被験試料のタンパク質結合能があると判断する指標としては、特に限定されないが、被験試料との結合により減少した基準物質（タンパク質、ペプチド、又はＮＡＣやＮＡＬなどのペプチド誘導体）の減少率が所定の基準値よりも高いこととすることができる。タンパク質結合能があると判断された場合は、被験試料を皮膚外用剤に配合するに際し安全性上の懸念があるため、開発に慎重さが求められる。
【0026】
（７）被験試料の樹状細胞活性化能が高いと、免疫応答が活性してメラノサイトへの攻撃が促されるため、安全性の懸念がある。
樹状細胞活性化能の測定は、特に制限されず公知の方法で行うことができる。例えば、被験試料と共培養した樹状細胞上に提示される細胞成熟化マーカー（ＣＤ８６、ＣＤ８０、ＣＤ５４、ＨＬＡ－ＤＲ、ＯＸ４０Ｌなど）の発現量を測定することにより測定することができる。
被験試料の樹状細胞活性化能があると判断する指標としては、特に限定されないが、例えば樹状細胞成熟化マーカーが発現している細胞（陽性細胞）の単位細胞数当たりの割合（陽性率）を算出することにより、該陽性率が所定の基準値より高いこと、又は対照群に対して高いこととすることができる。樹状細胞活性化能があると判断された場合は、被験試料を皮膚外用剤に配合するに際し安全性上の懸念があるため、開発に慎重さが求められる。
樹状細胞活性化能の測定は、特に制限されず公知の方法で行うことができる。例えば、被験試料と共培養した樹状細胞上に提示される細胞成熟化マーカー（ＣＤ８６、ＣＤ８０、ＣＤ５４、ＨＬＡ－ＤＲ、ＯＸ４０Ｌなど）の発現量を測定することにより測定することができる。
被験試料の樹状細胞活性化能があると判断する指標としては、特に限定されないが、例えば樹状細胞成熟化マーカーが発現している細胞（陽性細胞）の単位細胞数当たりの割合（陽性率）を算出することにより、該陽性率が所定の基準値より高いこと、又は対照群に対して高いこととすることができる。樹状細胞活性化能があると判断された場合は、被験試料を皮膚外用剤に配合するに際し安全性上の懸念があるため、開発に慎重さが求められる。
【実施例】
【0027】
以下、実施例によって本発明をさらに具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
【0028】
＜１＞試験材料
細胞は、ヒト正常ヒトメラノサイト(Normal Human Epidermal Melanocytes：ＮＨＥＭ、Thermo Fisher Scientific社、Lot No. 792326)を使用した。培地は、Medium 254+1% (v/v) HMGS+1% (v/v) AAを用いた。剥離液は、0.05% Trypsin-EDTAを用いた。
被験試料としては、表１に示す既知の白斑物質及び既知の美白成分を、表１に示す濃度で用いた。なお、被験試料番号１０～１２は光線性白斑物質として知られている。
細胞は、ヒト正常ヒトメラノサイト(Normal Human Epidermal Melanocytes：ＮＨＥＭ、Thermo Fisher Scientific社、Lot No. 792326)を使用した。培地は、Medium 254+1% (v/v) HMGS+1% (v/v) AAを用いた。剥離液は、0.05% Trypsin-EDTAを用いた。
被験試料としては、表１に示す既知の白斑物質及び既知の美白成分を、表１に示す濃度で用いた。なお、被験試料番号１０～１２は光線性白斑物質として知られている。
【0029】
【表1】
【0030】
＜２＞メラノサイトに対する５０％生育阻害濃度（ＩＣ５０）の評価
ヒトＮＨＥＭを５．０×１０４個／ウェルずつ接着細胞用プレート２４Ｆに播種し、ＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃、湿潤）内で２４時間培養した。培養後に上清を除去し、各被験試料を所定濃度で含有する培地を１ｍＬ／ウェルずつ添加し、ＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃、湿潤）内で７２時間培養した。その後、プレートを室温で３０分間インキュベートし、“Cellno” ATP ASSAY reagent Ver.2（東洋ビーネット株式会社製）を各ウェルに５００μＬずつ添加しピペッティングにより混合した。また、ブランクとして培地１ｍＬに前記試薬を５００μＬ添加したウェルを調製した。２３℃、遮光条件下で１０分間インキュベートし、ピペッティングにより混合した後、各ウェルから２００μＬずつ回収して、発光測定用白色プレート９６Ｆに移した（ｎ＝３）。発光測定用プレート９６Ｆの各ウェルの発光量を測定し、その表すＡＴＰ量を指標として、下記式で細胞生存率を算出した。細胞生存率に基づきＩＣ５０値を求め、ＩＣ５０値が５０．０μｇ／ｍＬ以下の場合は細胞毒性が強い、５０．０μｇ／ｍＬを超える場合は細胞毒性が弱いと評価した。
ヒトＮＨＥＭを５．０×１０４個／ウェルずつ接着細胞用プレート２４Ｆに播種し、ＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃、湿潤）内で２４時間培養した。培養後に上清を除去し、各被験試料を所定濃度で含有する培地を１ｍＬ／ウェルずつ添加し、ＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃、湿潤）内で７２時間培養した。その後、プレートを室温で３０分間インキュベートし、“Cellno” ATP ASSAY reagent Ver.2（東洋ビーネット株式会社製）を各ウェルに５００μＬずつ添加しピペッティングにより混合した。また、ブランクとして培地１ｍＬに前記試薬を５００μＬ添加したウェルを調製した。２３℃、遮光条件下で１０分間インキュベートし、ピペッティングにより混合した後、各ウェルから２００μＬずつ回収して、発光測定用白色プレート９６Ｆに移した（ｎ＝３）。発光測定用プレート９６Ｆの各ウェルの発光量を測定し、その表すＡＴＰ量を指標として、下記式で細胞生存率を算出した。細胞生存率に基づきＩＣ５０値を求め、ＩＣ５０値が５０．０μｇ／ｍＬ以下の場合は細胞毒性が強い、５０．０μｇ／ｍＬを超える場合は細胞毒性が弱いと評価した。
【0031】
【数1】
【0032】
＜３＞メラノサイトにおける活性酸素産生活性の評価
ヒトＮＨＥＭを５．０×１０４個／ウェルずつ２４ウェルBlack Visiplate TCに播種し、ＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃、湿潤）内で２４時間培養した。培養後に上清を除去し、各被験試料を所定濃度で含有し、かつROS-ID Total ROS/Superoxide detection kit（Enzo Life Sciences社製）のヒドロキシラジカル・過酸化水素検出用プローブ（Green probe）及びスーパーオキシド検出用プローブ（Orange probe）を所定量含有する培地を１ｍＬ／ウェルずつ添加し、また、ブランクとして前記培地のみを添加したウェルを調製した（ｎ＝３）。ＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃、湿潤）内で３時間培養した。その後、プレートの各ウェルの蛍光２波長(Green probe：Excitation(Ex)/Emission(Em)＝488/520nm、Orange probe：Ex/Em＝550/610nm)測定した。（ｎ＝３）。各プローブの蛍光強度比を下記式で算出し、ヒドロキシラジカル・過酸化水素産生能及びスーパーオキシド産生能とそれぞれした。いずれかの試験濃度群で、ヒドロキシラジカル・過酸化水素産生能及びスーパーオキシド産生能のいずれかにおいて、対照群に対して有意に（Dunnet検定でp<0.05）高い場合に活性酸素産生能が高いとし、それ以外の場合に活性酸素産生能が低いと評価した。
ヒトＮＨＥＭを５．０×１０４個／ウェルずつ２４ウェルBlack Visiplate TCに播種し、ＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃、湿潤）内で２４時間培養した。培養後に上清を除去し、各被験試料を所定濃度で含有し、かつROS-ID Total ROS/Superoxide detection kit（Enzo Life Sciences社製）のヒドロキシラジカル・過酸化水素検出用プローブ（Green probe）及びスーパーオキシド検出用プローブ（Orange probe）を所定量含有する培地を１ｍＬ／ウェルずつ添加し、また、ブランクとして前記培地のみを添加したウェルを調製した（ｎ＝３）。ＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃、湿潤）内で３時間培養した。その後、プレートの各ウェルの蛍光２波長(Green probe：Excitation(Ex)/Emission(Em)＝488/520nm、Orange probe：Ex/Em＝550/610nm)測定した。（ｎ＝３）。各プローブの蛍光強度比を下記式で算出し、ヒドロキシラジカル・過酸化水素産生能及びスーパーオキシド産生能とそれぞれした。いずれかの試験濃度群で、ヒドロキシラジカル・過酸化水素産生能及びスーパーオキシド産生能のいずれかにおいて、対照群に対して有意に（Dunnet検定でp<0.05）高い場合に活性酸素産生能が高いとし、それ以外の場合に活性酸素産生能が低いと評価した。
【0033】
【数2】
【0034】
＜４＞メラノサイトにおける小胞体ストレス誘導活性の評価
ヒトＮＨＥＭを５．０×１０４個／ウェルずつ接着細胞用プレート２４Ｆに播種し、ＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃、湿潤）内で２４時間培養した。培養後に上清を除去し、各被験試料を所定濃度で含有する培地を１ｍＬ／ウェルずつ添加し、ＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃、湿潤）内で６時間培養した。その後、上清を除去し、ＰＢＳを５００μＬ／ウェルずつ添加した。次いでＰＢＳを除去し、Cell lysis bufferを３５０μＬ／ウェルずつ添加し、プレートを室温で１０分間インキュベートした後、QIA Shredder(250)をセットしたSafe-Lock Tubes 2.0mLにウェル内の溶液を回収し、遠心分離（４℃、１５０００ｒｐｍ、２分間）を行い、ろ液を回収した。回収したろ液は－８０℃で一晩保存し、RNeasy Mini QIAcube kit (240)を用いてＲＮＡ精製を行った。得られたＲＮＡ溶液はそれぞれ分光光度計でＲＮＡ濃度を測定しＲＮＡ濃度が２００ｎｇ／１４μＬになるようにDNas free waterで希釈した。各希釈液に計２０μＬになるようにSuper Script VILO cDNA Synthesis kitを添加して、Thermal Cycler MPでｃＤＮＡ合成を行った。得られたｃＤＮＡを用いてQuant Studio 7により定量ＰＣＲを行い、ＣＨＯＰ遺伝子（Hs_DDIT3_1_SG QuantiTect Primer Assayを使用）及びＧＡＰＤＨ遺伝子（Hs_GAPDH_1_SG QuantiTect Primer Assayを使用）の発現量を解析した（ｎ＝３）。下記式でＣＨＯＰ遺伝子の相対発現量を算出した。いずれかの試験濃度群において、ＣＨＯＰ遺伝子発現量が対照群と比較して有意に（Dunnet検定でp<0.05）高い場合は小胞体ストレス誘導活性が高い、それ以外の場合に小胞体ストレス誘導活性が低いと評価した。
ヒトＮＨＥＭを５．０×１０４個／ウェルずつ接着細胞用プレート２４Ｆに播種し、ＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃、湿潤）内で２４時間培養した。培養後に上清を除去し、各被験試料を所定濃度で含有する培地を１ｍＬ／ウェルずつ添加し、ＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃、湿潤）内で６時間培養した。その後、上清を除去し、ＰＢＳを５００μＬ／ウェルずつ添加した。次いでＰＢＳを除去し、Cell lysis bufferを３５０μＬ／ウェルずつ添加し、プレートを室温で１０分間インキュベートした後、QIA Shredder(250)をセットしたSafe-Lock Tubes 2.0mLにウェル内の溶液を回収し、遠心分離（４℃、１５０００ｒｐｍ、２分間）を行い、ろ液を回収した。回収したろ液は－８０℃で一晩保存し、RNeasy Mini QIAcube kit (240)を用いてＲＮＡ精製を行った。得られたＲＮＡ溶液はそれぞれ分光光度計でＲＮＡ濃度を測定しＲＮＡ濃度が２００ｎｇ／１４μＬになるようにDNas free waterで希釈した。各希釈液に計２０μＬになるようにSuper Script VILO cDNA Synthesis kitを添加して、Thermal Cycler MPでｃＤＮＡ合成を行った。得られたｃＤＮＡを用いてQuant Studio 7により定量ＰＣＲを行い、ＣＨＯＰ遺伝子（Hs_DDIT3_1_SG QuantiTect Primer Assayを使用）及びＧＡＰＤＨ遺伝子（Hs_GAPDH_1_SG QuantiTect Primer Assayを使用）の発現量を解析した（ｎ＝３）。下記式でＣＨＯＰ遺伝子の相対発現量を算出した。いずれかの試験濃度群において、ＣＨＯＰ遺伝子発現量が対照群と比較して有意に（Dunnet検定でp<0.05）高い場合は小胞体ストレス誘導活性が高い、それ以外の場合に小胞体ストレス誘導活性が低いと評価した。
【0035】
【数3】
【0036】
＜５＞メラノサイトにおけるアポトーシス誘導活性の評価
ヒトＮＨＥＭを１．２×１０４個／ウェルずつ９６ウェルブラックプレートに播種し、ＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃、湿潤）内で２４時間培養した。培養後に上清を除去し、0.05% Hoechst33342（Thermo Fisher Scientific社製）を含有する培地を２００μＬ／ウェルずつ添加し、ＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃、湿潤）内で４５分間インキュベートした。その後、前記培地を除去し、各被験試料を所定濃度で含有する５μＭ Cellevent green（Thermo Fisher Scientific社製）添加培地を各ウェルに２００μＬずつ添加した。その後Operetta CLSを用いて５％ＣＯ２、３７℃の条件下で培養しながら１時間ごとに２波長の蛍光（Cellevent: Excitation / Emission = 460-490
/ 500-550 nm、Hoechest33342: Excitation / Emission = 355-385 / 430-500 nm）で計７２時間撮影した（ｎ＝３）。７２時間後蛍光データを用いて、前細胞数をHoechest33342の蛍光からカウントした。またカスパーゼ３陽性細胞数は、Celleventがカスパーゼ－３により切断されると核内に移行すし傾向を発する性質を有することに基づき、Hoechest33342の蛍光の範囲内で検出されるCelleventの蛍光をカウントした。前細胞数に対するカスパーゼ－３陽性細胞の割合（カスパーゼ－３陽性核率）を下記の式により算出した。いずれかの試験濃度群において、被験試料添加72時間後のカスパーゼ－３陽性核率が対照群と比較して有意（Dunnet検定でp<0.05）に高い場合はアポトーシス誘導活性が高い、それ以外の場合にアポトーシス誘導活性が低いと評価した。
ヒトＮＨＥＭを１．２×１０４個／ウェルずつ９６ウェルブラックプレートに播種し、ＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃、湿潤）内で２４時間培養した。培養後に上清を除去し、0.05% Hoechst33342（Thermo Fisher Scientific社製）を含有する培地を２００μＬ／ウェルずつ添加し、ＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃、湿潤）内で４５分間インキュベートした。その後、前記培地を除去し、各被験試料を所定濃度で含有する５μＭ Cellevent green（Thermo Fisher Scientific社製）添加培地を各ウェルに２００μＬずつ添加した。その後Operetta CLSを用いて５％ＣＯ２、３７℃の条件下で培養しながら１時間ごとに２波長の蛍光（Cellevent: Excitation / Emission = 460-490
/ 500-550 nm、Hoechest33342: Excitation / Emission = 355-385 / 430-500 nm）で計７２時間撮影した（ｎ＝３）。７２時間後蛍光データを用いて、前細胞数をHoechest33342の蛍光からカウントした。またカスパーゼ３陽性細胞数は、Celleventがカスパーゼ－３により切断されると核内に移行すし傾向を発する性質を有することに基づき、Hoechest33342の蛍光の範囲内で検出されるCelleventの蛍光をカウントした。前細胞数に対するカスパーゼ－３陽性細胞の割合（カスパーゼ－３陽性核率）を下記の式により算出した。いずれかの試験濃度群において、被験試料添加72時間後のカスパーゼ－３陽性核率が対照群と比較して有意（Dunnet検定でp<0.05）に高い場合はアポトーシス誘導活性が高い、それ以外の場合にアポトーシス誘導活性が低いと評価した。
【0037】
【数4】
【0038】
＜６＞チロシナーゼによる被代謝能の評価
１．５ｍＬチューブに５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．８）４８０μＬと、１０００Ｕ／ＭＬマッシュルーム由来チロシナーゼ（Lor No. SLBZ0022、SIGMA-ALDRICH社製）溶液又は５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．８）１５μＬとを分注し、３７℃の恒温槽で２０分間プレインキュベートした。同時に、被験試料溶液を３７℃の恒温槽で２０分間プレインキュベートした。チロシナーゼ溶液に被験試料溶液５μＬを添加しよく攪拌し、３７℃で６０分間インキュベートした。またチロシナーゼ溶液を非添加群として、５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．８）４９５μＬに被験試料溶液５μＬを添加しよく攪拌し、３７℃で６０分間インキュベートした。反応後に各チューブから２００μＬを採取し、氷冷したアセトニトリル２００μＬを添加してよく攪拌することで反応を停止した。遠心チューブに移し、１５０００×ｇ、５℃で１５分間遠心分離し、上清をＨＰＬＣバイアルに採取した。下記条件でＨＰＬＣを行い、反応後の被験試料の残存率を測定した。各群ｎ＝３とした。
ＨＰＬＣ：Acquity UPLC I-class Plus、又はAcquity UPLC H-class
検出器：Acquity PDA eλ detector、又はAcquity QDa detector
カラム：CORTECS UPLC T3 Column 1,6 μm、2.1mm×100mm、又はAcquity UPLC BEH HILIC 1,7 μm、2.1mm×100mm
ガードカラム：CORTECS UPLC T3、1,6 μm、VanGuard Pre-column、2.1mm×5mm、又はAcquity UPLC BEH HILIC 1,7 μm、VanGuard Pre-column、2.1mm×5mm
移動相：アセトニトリル：０．１％ギ酸水溶液の10:90, 20:80, 30:70, 50:50,もしくは70:30、又はアセトニトリル：20mMギ酸アンモニウム水溶液（pH3.8）の85:15
流速：０．２ｍＬ／ｍｉｎ又は０．４ｍＬ／ｍｉｎ
注入量：１μＬ
カラム温度：４０℃
試料温度：５℃
１．５ｍＬチューブに５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．８）４８０μＬと、１０００Ｕ／ＭＬマッシュルーム由来チロシナーゼ（Lor No. SLBZ0022、SIGMA-ALDRICH社製）溶液又は５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．８）１５μＬとを分注し、３７℃の恒温槽で２０分間プレインキュベートした。同時に、被験試料溶液を３７℃の恒温槽で２０分間プレインキュベートした。チロシナーゼ溶液に被験試料溶液５μＬを添加しよく攪拌し、３７℃で６０分間インキュベートした。またチロシナーゼ溶液を非添加群として、５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．８）４９５μＬに被験試料溶液５μＬを添加しよく攪拌し、３７℃で６０分間インキュベートした。反応後に各チューブから２００μＬを採取し、氷冷したアセトニトリル２００μＬを添加してよく攪拌することで反応を停止した。遠心チューブに移し、１５０００×ｇ、５℃で１５分間遠心分離し、上清をＨＰＬＣバイアルに採取した。下記条件でＨＰＬＣを行い、反応後の被験試料の残存率を測定した。各群ｎ＝３とした。
ＨＰＬＣ：Acquity UPLC I-class Plus、又はAcquity UPLC H-class
検出器：Acquity PDA eλ detector、又はAcquity QDa detector
カラム：CORTECS UPLC T3 Column 1,6 μm、2.1mm×100mm、又はAcquity UPLC BEH HILIC 1,7 μm、2.1mm×100mm
ガードカラム：CORTECS UPLC T3、1,6 μm、VanGuard Pre-column、2.1mm×5mm、又はAcquity UPLC BEH HILIC 1,7 μm、VanGuard Pre-column、2.1mm×5mm
移動相：アセトニトリル：０．１％ギ酸水溶液の10:90, 20:80, 30:70, 50:50,もしくは70:30、又はアセトニトリル：20mMギ酸アンモニウム水溶液（pH3.8）の85:15
流速：０．２ｍＬ／ｍｉｎ又は０．４ｍＬ／ｍｉｎ
注入量：１μＬ
カラム温度：４０℃
試料温度：５℃
【0039】
クロマトグラフィーのピーク面積値をEmpower 3（日本ウォーターズ）を用いて取得し、計算ソフトにて解析した。以下の式を用いて、チロシナーゼ反応後の被験試料の残存率を算出した。チロシナーゼ添加群の反応開始後６０分の残存率について、（ｉ）開始時点と比べて明確な低下（残存率の標準偏差の3倍以上の低下）が見られること、（ｉｉ）チロシナーゼ添加群及び非添加群の反応開始後60分の残存率に明確な差（非添加群の残存率の標準偏差の3倍以上の差）が見られること、かつ（ｉｉｉ）チロシナーゼ添加群において反応開始時に対して未知ピークの増加が認められることを満たす場合に、被験試料はチロシナーゼによる代謝を受ける、それ以外の場合に被験試料はチロシナーゼによる代謝を受けないと評価した。
【0040】
【数5】
【0041】
＜７＞各評価項目の結果及び判定フローの妥当性の検討
＜２＞～＜６＞の各試験の評価に基づいて、図１に示す判定フローにしたがい、各被験試料の白斑リスクを判定した。なお、＜２＞活性酸素産生能、＜３＞小胞体ストレス誘導能、及び＜４＞アポトーシス誘導能については、活性が高いと判定された結果が一つ以上あった場合には、メラノサイトの細胞毒性を引き起こす懸念ありと判断した。また、ＨＣＴ，ＦＴ，ＬＰの３つの被験試料については、光反応性の高い物質であり適切に評価ができていない懸念があるためについては本評価系の対象外とした。
ＨＣＴ，ＦＴ，ＬＰを除く既知の白斑発生物質においてはいずれもＩＣ５０≦５０μｇ／ｍＬとなった。一方、美白成分として使用実績のある４－ＭＳＡ、ＡＲＢ、ＴＡは、すべての物質でＩＣ５０＞５０μｇ／ｍＬとなった。続く各活性能評価試験において、活性酸素産生能評価試験においてＴＡが、アポトーシス誘導能において４-ＭＳＡが、それぞれ活性が高いと判定されたため、これら物質についてはメラノサイトの細胞毒性を引き起こす懸念ありと評価された。両物質ともに、市場実績のある既存美白成分であり、これまでに市場回収となるほどの白斑発症事例は報告されていない。また、本評価結果は活性が高いと判定されるもののその発現濃度は皮内濃度に対して充分高い濃度であり通常使用においては懸念すべきほどの活性ではないことが推察されることから、本評価結果は擬陽性結果と判断できる。ただし、白斑発生物質を確実に拾い上げることができ、かつ細胞毒性につながるメカニズムのわずかな活性を捉えることができる本評価系はより安全サイドに立った評価系であり妥当であるといえる。
＜２＞～＜６＞の各試験の評価に基づいて、図１に示す判定フローにしたがい、各被験試料の白斑リスクを判定した。なお、＜２＞活性酸素産生能、＜３＞小胞体ストレス誘導能、及び＜４＞アポトーシス誘導能については、活性が高いと判定された結果が一つ以上あった場合には、メラノサイトの細胞毒性を引き起こす懸念ありと判断した。また、ＨＣＴ，ＦＴ，ＬＰの３つの被験試料については、光反応性の高い物質であり適切に評価ができていない懸念があるためについては本評価系の対象外とした。
ＨＣＴ，ＦＴ，ＬＰを除く既知の白斑発生物質においてはいずれもＩＣ５０≦５０μｇ／ｍＬとなった。一方、美白成分として使用実績のある４－ＭＳＡ、ＡＲＢ、ＴＡは、すべての物質でＩＣ５０＞５０μｇ／ｍＬとなった。続く各活性能評価試験において、活性酸素産生能評価試験においてＴＡが、アポトーシス誘導能において４-ＭＳＡが、それぞれ活性が高いと判定されたため、これら物質についてはメラノサイトの細胞毒性を引き起こす懸念ありと評価された。両物質ともに、市場実績のある既存美白成分であり、これまでに市場回収となるほどの白斑発症事例は報告されていない。また、本評価結果は活性が高いと判定されるもののその発現濃度は皮内濃度に対して充分高い濃度であり通常使用においては懸念すべきほどの活性ではないことが推察されることから、本評価結果は擬陽性結果と判断できる。ただし、白斑発生物質を確実に拾い上げることができ、かつ細胞毒性につながるメカニズムのわずかな活性を捉えることができる本評価系はより安全サイドに立った評価系であり妥当であるといえる。
【0042】
【表2】
【要約】 （修正有）
【課題】皮膚外用剤に配合する成分について、それを曝露した皮膚に白斑が生じる危険性（白斑リスク）を、動物を用いずにｉｎ ｖｉｔｒｏで、高い信頼性で効率よく評価する方法を提供する。
【解決手段】被験試料の白斑リスクを判定する方法であって、
（１）被験試料のメラノサイトに対する５０％生育阻害濃度（ＩＣ５０）の評価を行う工程１、
並びに工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合に、
（２）被験試料のメラノサイトにおける活性酸素産生活性の評価、（３）被験試料のメラノサイトにおける小胞体ストレス誘導活性の評価、及び（４）被験試料のメラノサイトにおけるアポトーシス誘導活性の評価、からなる群から選択される１又は２以上の評価を行う工程２、及び
（５）被験試料のチロシナーゼによる被代謝能の評価を行う工程３、を含む、方法。
【選択図】図１
【解決手段】被験試料の白斑リスクを判定する方法であって、
（１）被験試料のメラノサイトに対する５０％生育阻害濃度（ＩＣ５０）の評価を行う工程１、
並びに工程１においてＩＣ５０が予め設定した基準値を超えた場合に、
（２）被験試料のメラノサイトにおける活性酸素産生活性の評価、（３）被験試料のメラノサイトにおける小胞体ストレス誘導活性の評価、及び（４）被験試料のメラノサイトにおけるアポトーシス誘導活性の評価、からなる群から選択される１又は２以上の評価を行う工程２、及び
（５）被験試料のチロシナーゼによる被代謝能の評価を行う工程３、を含む、方法。
【選択図】図１
【図1】