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(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B2)
(11)【特許番号】
(24)【登録日】2023-07-03
(45)【発行日】2023-07-11
(54)【発明の名称】プライマー及びその使用
(51)【国際特許分類】
C12Q 1/6876 20180101AFI20230704BHJP
C12Q 1/6844 20180101ALI20230704BHJP
C12M 1/00 20060101ALN20230704BHJP
C12M 1/34 20060101ALN20230704BHJP
C12N 15/09 20060101ALN20230704BHJP
【ＦＩ】
C12Q1/6876 Z ZNA
C12Q1/6844 Z
C12M1/00 A
C12M1/34 Z
C12N15/09 Z
【請求項の数】
6
(21)【出願番号】P 2020534651
(86)(22)【出願日】2019-07-30
(86)【国際出願番号】 JP2019029753
(87)【国際公開番号】W WO2020027096
(87)【国際公開日】2020-02-06
【審査請求日】2022-04-21
(31)【優先権主張番号】P 2018146892
(32)【優先日】2018-08-03
(33)【優先権主張国・地域又は機関】JP
(73)【特許権者】
【識別番号】598121341
【氏名又は名称】慶應義塾
(74)【代理人】
【識別番号】100106909
【弁理士】
【氏名又は名称】棚井 澄雄
(74)【代理人】
【識別番号】100188558
【弁理士】
【氏名又は名称】飯田 雅人
(74)【代理人】
【識別番号】100181722
【弁理士】
【氏名又は名称】春田 洋孝
(74)【代理人】
【識別番号】100188592
【弁理士】
【氏名又は名称】山口 洋
(72)【発明者】
【氏名】加藤 真吾
【審査官】松原 寛子
(56)【参考文献】
【文献】特開平１１－０００１９８（ＪＰ，Ａ）
【文献】特表２０１６－５３６９８１（ＪＰ，Ａ）
【文献】BMC Biotechnol.，2013年，vol.13, No.7，p.1-11
(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)
Ｃ１２Ｑ １／６８７６
Ｃ１２Ｑ １／６８４４
Ｃ１２Ｍ １／００
Ｃ１２Ｍ １／３４
Ｃ１２Ｎ １５／０９
ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩＩ）
ＣＡｐｌｕｓ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＥＭＢＡＳＥ／ＢＩＯＳＩＳ（ＳＴＮ）
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
第１の領域と第２の領域からなるプライマーであって、前記プライマーは、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料中の前記対象ＲＮＡの存在を検出する方法において用いるためのものであり、
５’側に前記第１の領域が位置しており、３’側に前記第２の領域が位置しており、
前記第１の領域は、対象ＲＮＡと相補的でない塩基配列からなり、
前記第２の領域は、前記対象ＲＮＡに相補的な塩基配列からなり、
前記第２の領域の配列の塩基数は、６塩基～１２塩基であり、
前記第２の領域の配列は、Ｇ又はＣの塩基を２０～７０％含み、
前記第２の領域の融解温度は２０～５０℃であり、
前記第１の領域と前記第２の領域の塩基数の合計は、２０塩基～５０塩基であり、
前記プライマーの全体の融解温度は、４５～８０℃であり、
前記対象ＲＮＡの存在を検出する方法は、
対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料に前記プライマー及び逆転写酵素を添加することと、
前記プライマー及び前記対象ＲＮＡを、前記第２の領域の融解温度よりも低い温度でハイブリダイズさせることと、
逆転写反応を行いｃＤＮＡを合成することと、
前記ｃＤＮＡを鋳型として、前記プライマーからなるアンチセンスプライマー及び前記ｃＤＮＡにハイブリダイズするセンスプライマーを用いた核酸増幅反応を行うことと、
前記核酸増幅反応による核酸の増幅を検出することと、を含み、
前記核酸増幅反応は、前記第２の領域の融解温度よりも高い温度で行われるものである、プライマー。
【請求項2】
配列番号１０～１３のいずれかに記載された配列からなる、請求項１に記載のプライマー。
【請求項3】
対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料に請求項１又は２に記載のプライマー及び逆転写酵素を添加することと、前記プライマー及び前記対象ＲＮＡを、前記第２の領域の融解温度よりも低い温度でハイブリダイズさせることと、
逆転写反応を行いｃＤＮＡを合成することと、を含み、
前記ｃＤＮＡは、前記対象ＲＮＡのみを鋳型としたｃＤＮＡである、ｃＤＮＡの製造方法。
【請求項4】
対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料に請求項１又は２に記載のプライマー及び逆転写酵素を添加することと、前記プライマー及び前記対象ＲＮＡを、前記第２の領域の融解温度よりも低い温度でハイブリダイズさせることと、
逆転写反応を行いｃＤＮＡを合成することと、
前記ｃＤＮＡを鋳型として、請求項１に記載のプライマーからなるアンチセンスプライマー及び前記ｃＤＮＡにハイブリダイズするセンスプライマーを用いた核酸増幅反応を行うことと、
前記核酸増幅反応による核酸の増幅を検出することと、を含み、
前記核酸増幅反応は、前記第２の領域の融解温度よりも高い温度で行われる、
対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料中の前記対象ＲＮＡの存在を検出する方法。
【請求項5】
請求項１又は２に記載のプライマーを含む、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料から対象ＲＮＡを鋳型としたｃＤＮＡを製造するためのキット。
【請求項6】
請求項１又は２に記載のプライマーと、対象ＲＮＡを鋳型として合成されたｃＤＮＡにハイブリダイズするセンスプライマーと、
を含む、
対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料中の前記対象ＲＮＡの存在の検出用キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、プライマー及びその使用に関する。より詳細には、プライマー、ｃＤＮＡの製造方法、ＲＮＡの存在を検出する方法、ｃＤＮＡを製造するためのキット、ＲＮＡの存在の検出用キットに関する。本願は、２０１８年８月３日に日本に出願された特願２０１８－１４６８９２号に基づき優先権を主張し、それらの内容をここに援用する。
【背景技術】
【0002】
対象遺伝子の発現量を解析するために、対象遺伝子から転写されたＲＮＡの量を定量することが頻繁に行われる。細胞破砕物等から得られる対象遺伝子から転写されたＲＮＡは、微量かつ不安定である。
【0003】
対象ＲＮＡを検出する方法としては、対象ＲＮＡにハイブリダイズするプローブを用いる、ノーザンブロッティングやｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション等が挙げられる。
他にも、より高感度である、ＲＴ－ＰＣＲを組み合わせた方法がよく用いられる。
他にも、より高感度である、ＲＴ－ＰＣＲを組み合わせた方法がよく用いられる。
【0004】
ＲＴ－ＰＣＲ法では、まず、細胞を破砕してＲＮＡとＤＮＡを含む試料を得て、この試料に対してＤＮＡ分解酵素（ＤＮａｓｅ）を添加し、ＤＮＡを分解する。これにより、試料からＤＮＡが除去される。
【0005】
引き続いて、ＤＮａｓｅを失活させた後、ＲＮＡを含む試料を用いて、逆転写反応によりＲＮＡに相補的なＤＮＡ（ｃＤＮＡ）を合成する。得られたｃＤＮＡを核酸増幅反応により増幅させ、試料に含まれていたＲＮＡを検出する方法が一般的である。
【0006】
従来、ＤＮＡとＲＮＡの混合物から、ＲＮＡを検出する場合には、ＤＮａｓｅでＤＮＡのみを分解する必要があり、煩雑であった。このため、より簡便にＲＮＡを検出する方法が検討されている。例えば、非特許文献１には、ＤＮａｓｅを使用せずに、ＤＮＡとＲＮＡを含む混合物から、ＲＴ－ＰＣＲ法により、試料に含まれていたＲＮＡを検出する方法が記載されている。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【0007】
【文献】Gadkar VJ and Filion M., Development of a versatile TaqMan real-time quantitative PCR (RT-qPCR) compliant anchor sequence to quantify bacterial gene transcripts from RNA samples containing carryover genomic DNA., BMC Biotechnol. 13:7, 2013.
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0008】
しかしながら、非特許文献１の方法では、ＰＣＲにおいて用いるプライマーとして、逆転写反応において用いるプライマーとは異なるプライマーを準備する必要がある。また、ＰＣＲを行う前に、逆転写反応において用いたプライマーを除去する必要がある。したがって、非特許文献１の方法には改良の余地がある。
【0009】
そこで、本発明は、ＤＮＡとＲＮＡの混合物から、ＲＮＡを簡便に検出する技術を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【0010】
本発明は以下の態様を含む。
［１］第１の領域と第２の領域からなるプライマーであって、５’側に前記第１の領域が位置しており、３’側に前記第２の領域が位置しており、前記第１の領域は、対象ＲＮＡと相補的でない塩基配列からなり、前記第２の領域は、前記対象ＲＮＡに相補的な塩基配列からなり、前記第２の領域の融解温度は２０～５０℃である、プライマー。
［２］対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料に［１］に記載のプライマー及び逆転写酵素を添加することと、前記プライマー及び前記対象ＲＮＡを、前記第２の領域の融解温度よりも低い温度でハイブリダイズさせることと、逆転写反応を行いｃＤＮＡを合成することと、を含み、前記ｃＤＮＡは、前記対象ＲＮＡのみを鋳型としたｃＤＮＡである、ｃＤＮＡの製造方法。
［３］対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料に［１］に記載のプライマー及び逆転写酵素を添加することと、前記プライマー及び前記対象ＲＮＡを、前記第２の領域の融解温度よりも低い温度でハイブリダイズさせることと、逆転写反応を行いｃＤＮＡを合成することと、前記ｃＤＮＡを鋳型として、［１］に記載のプライマーからなるアンチセンスプライマー及び前記ｃＤＮＡにハイブリダイズするセンスプライマーを用いた核酸増幅反応を行うことと、前記核酸増幅反応による核酸の増幅を検出することと、を含み、前記核酸増幅反応は、前記第２の領域の融解温度よりも高い温度で行われる、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料中の前記対象ＲＮＡの存在を検出する方法。
［４］［１］に記載のプライマーを含む、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料から対象ＲＮＡを鋳型としたｃＤＮＡを製造するためのキット。
［５］［１］に記載のプライマーと、対象ＲＮＡを鋳型として合成されたｃＤＮＡにハイブリダイズするセンスプライマーと、を含む、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料中の前記対象ＲＮＡの存在の検出用キット。
［１］第１の領域と第２の領域からなるプライマーであって、５’側に前記第１の領域が位置しており、３’側に前記第２の領域が位置しており、前記第１の領域は、対象ＲＮＡと相補的でない塩基配列からなり、前記第２の領域は、前記対象ＲＮＡに相補的な塩基配列からなり、前記第２の領域の融解温度は２０～５０℃である、プライマー。
［２］対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料に［１］に記載のプライマー及び逆転写酵素を添加することと、前記プライマー及び前記対象ＲＮＡを、前記第２の領域の融解温度よりも低い温度でハイブリダイズさせることと、逆転写反応を行いｃＤＮＡを合成することと、を含み、前記ｃＤＮＡは、前記対象ＲＮＡのみを鋳型としたｃＤＮＡである、ｃＤＮＡの製造方法。
［３］対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料に［１］に記載のプライマー及び逆転写酵素を添加することと、前記プライマー及び前記対象ＲＮＡを、前記第２の領域の融解温度よりも低い温度でハイブリダイズさせることと、逆転写反応を行いｃＤＮＡを合成することと、前記ｃＤＮＡを鋳型として、［１］に記載のプライマーからなるアンチセンスプライマー及び前記ｃＤＮＡにハイブリダイズするセンスプライマーを用いた核酸増幅反応を行うことと、前記核酸増幅反応による核酸の増幅を検出することと、を含み、前記核酸増幅反応は、前記第２の領域の融解温度よりも高い温度で行われる、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料中の前記対象ＲＮＡの存在を検出する方法。
［４］［１］に記載のプライマーを含む、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料から対象ＲＮＡを鋳型としたｃＤＮＡを製造するためのキット。
［５］［１］に記載のプライマーと、対象ＲＮＡを鋳型として合成されたｃＤＮＡにハイブリダイズするセンスプライマーと、を含む、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料中の前記対象ＲＮＡの存在の検出用キット。
【発明の効果】
【0011】
本発明によれば、ＤＮＡとＲＮＡの混合物から、対象ＲＮＡを簡便に検出する技術を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【0012】
【図1】第１の領域と第２の領域からなるプライマーの第２の領域が、対象ＲＮＡにハイブリダイズした状態を説明する模式図である。
【図2】（ａ）は、本実施形態のプライマーの第２の領域が、対象ＲＮＡにハイブリダイズし、逆転写酵素がｃＤＮＡを合成する過程を説明する模式図である。（ｂ）は、本実施形態のプライマーの第２の領域が、ＤＮＡにハイブリダイズするが、逆転写酵素がｃＤＮＡを合成しないことを説明する模式図である。
【図3】（ａ）は、ｃＤＮＡにセンスプライマーがハイブリダイズした状態を説明する模式図である。（ｂ）は、ＰＣＲの１サイクル目でｃＤＮＡを鋳型として合成されたセンス鎖に、アンチセンスプライマーがハイブリダイズした状態を説明する模式図である。（ｃ）は、試料中に混入したＤＮＡにセンスプライマーがハイブリダイズした状態を説明する模式図である。（ｄ）は、試料中に混入したＤＮＡにアンチセンスプライマーの第２の領域がハイブリダイズしない状態を説明する模式図である。
【図4】ｐＮＬ４－３ プラスミドを鋳型とした場合の、定量ＰＣＲのサイクル数と増幅されたＤＮＡ量の関係を示す増幅曲線である。
【図5】ＲＮＡを鋳型として逆転写反応と定量ＰＣＲを行った場合の、定量ＰＣＲのサイクル数とＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ量の関係を示す増幅曲線である。
【図6】各コピー数のＲＮＡを鋳型とし、ｇａｇ－ＲＡ（２７－０）を用いて、逆転写反応と定量ＰＣＲを行った場合の、サイクル数とＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ量の関係を示す増幅曲線である。
【図7】各コピー数のＲＮＡを鋳型とし、ｇａｇ－ＲＡ（９－１８）を用いて、逆転写反応と定量ＰＣＲを行った場合の、サイクル数とＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ量の関係を示す増幅曲線である。
【図8】各コピー数のＲＮＡを鋳型とし、ｇａｇ－ＲＡ（２７－０）プライマーを用いて、逆転写反応と定量ＰＣＲを行った場合の、鋳型ＲＮＡのコピー数と、Ｃｑ値の関係を示すグラフである。
【図9】各コピー数のＲＮＡを鋳型とし、ｇａｇ－ＲＡ（９－１８）を用いて、逆転写反応と定量ＰＣＲを行った場合の、鋳型ＲＮＡのコピー数と、Ｃｑ値の関係を示すグラフである。
【図10】各コピー数のｐＮＬ４－３ プラスミドＤＮＡを鋳型とし、ｇａｇ－ＲＡ（２７－０）を用いて、定量ＰＣＲを行った場合の、サイクル数とＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ量の関係を示す増幅曲線である。
【図11】各コピー数のｐＮＬ４－３ プラスミドＤＮＡを鋳型とし、ｇａｇ－ＲＡ（９－１８）を用いて、定量ＰＣＲを行った場合の、サイクル数とＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ量の関係を示す増幅曲線である。
【図12】ｐＮＬ４－３ プラスミドＤＮＡとＲＮＡの混合物を鋳型とし、ｇａｇ－ＲＡ（２７－０）を用いて、逆転写反応と定量ＰＣＲを行った場合の、定量ＰＣＲのサイクル数とＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ量の関係を示す増幅曲線である。
【図13】ｐＮＬ４－３ プラスミドＤＮＡとＲＮＡの混合物を鋳型とし、ｇａｇ－ＲＡ（９－１８）を用いて、逆転写反応と定量ＰＣＲを行った場合の、定量ＰＣＲのサイクル数とＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ量の関係を示す増幅曲線である。
【発明を実施するための形態】
【0013】
［プライマー］
１実施形態において、本発明は、第１の領域と第２の領域からなるプライマーであって、５’側に前記第１の領域が位置しており、３’側に前記第２の領域が位置しており、前記第１の領域は、対象ＲＮＡと相補的でない塩基配列からなり、前記第２の領域は、前記対象ＲＮＡに相補的な塩基配列からなり、前記第２の領域の融解温度は２０～５０℃である、プライマーを提供する。
１実施形態において、本発明は、第１の領域と第２の領域からなるプライマーであって、５’側に前記第１の領域が位置しており、３’側に前記第２の領域が位置しており、前記第１の領域は、対象ＲＮＡと相補的でない塩基配列からなり、前記第２の領域は、前記対象ＲＮＡに相補的な塩基配列からなり、前記第２の領域の融解温度は２０～５０℃である、プライマーを提供する。
【0014】
プライマーとは、鋳型となるＤＮＡ又はＲＮＡに相補的な配列を含む１本鎖オリゴヌクレオチドである。
【0015】
プライマーと、鋳型となるＤＮＡ又はＲＮＡが、５０％の割合で２本鎖を形成する温度を融解温度（Ｔｍ）と呼ぶ。Ｔｍは、例えば、下記式（１）にしたがって求めることができる。ここで、［Ｎａ+］は鋳型とプライマーを含む溶液のナトリウムイオンの濃度であり、％ＧＣはプライマーに含まれるグアニン塩基又はシトシン塩基の割合を百分率で算出したものであり、Ｌｅｎｇｔｈはプライマーの塩基数である。
Ｔｍ＝８１．５＋１６．６×ｌｏｇ［Ｎａ+］＋０．４１×（％ＧＣ）－（５００／Ｌｅｎｇｔｈ） （１）
Ｔｍ＝８１．５＋１６．６×ｌｏｇ［Ｎａ+］＋０．４１×（％ＧＣ）－（５００／Ｌｅｎｇｔｈ） （１）
【0016】
また、一般的なＰＣＲ反応液は、５０ｍＭ ＫＣｌ、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌを含む。これを考慮して、Ｔｍを下記式（２）に従って求めることもできる。
Ｔｍ＝６０．８＋０．４１×（％ＧＣ）－（５００／Ｌｅｎｇｔｈ） （２）
Ｔｍ＝６０．８＋０．４１×（％ＧＣ）－（５００／Ｌｅｎｇｔｈ） （２）
【0017】
Ｔｍより高い温度下では、鋳型となるＤＮＡ又はＲＮＡと２本鎖を形成するプライマーの割合は減少し、Ｔｍより低い温度下では、ＤＮＡ又はＲＮＡと２本鎖を形成するプライマーの割合は増加する。
【0018】
プライマーは、鋳型となるＲＮＡ又はＤＮＡと相補的でない配列を有していても、鋳型となるＲＮＡ又はＤＮＡと２本鎖を形成することができる。この場合の融解温度は、プライマーが有する、鋳型となるＲＮＡ又はＤＮＡと相補的な配列によって決まる。
【0019】
本実施形態において、第１の領域は対象ＲＮＡと相補的でない配列であり、第２の領域は対象ＲＮＡと相補的な配列である。図１は、本実施形態のプライマーの第２の領域が、対象ＲＮＡにハイブリダイズした状態を説明する模式図である。
【0020】
図１に示すように、対象ＲＮＡと本実施形態のプライマーは第２の領域でハイブリダイズし、第１の領域はハイブリダイズしない。
【0021】
実施例において詳述するように、第２の領域の配列の塩基数は、６塩基～１２塩基が好ましく、６塩基～１０塩基がより好ましく、８塩基～１０塩基が更に好ましい。
【0022】
第２の領域の塩基配列は、Ｇ又はＣの塩基を２０～７０％含むことが好ましく、３０～６０％含むことがより好ましく、４０～６０％含むことが更に好ましい。本実施形態のプライマーのＴｍは、第２の領域の配列の塩基のみを考慮して算出する。
【0023】
上述のように第２の領域の塩基配列を決めると、第２の領域の融解温度は、２０～５０℃となる。融解温度は、２０～４０℃であることがより好ましく、２０～３５℃であることが更に好ましい。
【0024】
第１の領域と第２の領域の塩基数の合計は、２０～５０が好ましく、２０～４０がより好ましく、２５～３５が更に好ましい。上記式（２）で算出した場合、本実施形態のプライマーの全体の融解温度は、４５～８０℃が好ましく、５０～８０℃がより好ましく、５５～７５℃が更に好ましい。
【0025】
［製造方法］
１実施形態において、本発明は、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料に上述のプライマー及び逆転写酵素を添加することと、前記プライマー及び前記対象ＲＮＡを、前記第２の領域の融解温度よりも低い温度でハイブリダイズさせることと、逆転写反応を行いｃＤＮＡを合成することと、を含み、前記ｃＤＮＡは、前記対象ＲＮＡのみを鋳型としたｃＤＮＡである、ｃＤＮＡの製造方法を提供する。
１実施形態において、本発明は、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料に上述のプライマー及び逆転写酵素を添加することと、前記プライマー及び前記対象ＲＮＡを、前記第２の領域の融解温度よりも低い温度でハイブリダイズさせることと、逆転写反応を行いｃＤＮＡを合成することと、を含み、前記ｃＤＮＡは、前記対象ＲＮＡのみを鋳型としたｃＤＮＡである、ｃＤＮＡの製造方法を提供する。
【0026】
本実施形態において、ＤＮＡとは、細胞を破砕してＲＮＡを分離する際に、混入するＤＮＡのことを指す。混入するＤＮＡとしては、上述のプライマーの第２の領域に相補的な配列を持つゲノムＤＮＡ、その他のゲノムＤＮＡ、及びミトコンドリアＤＮＡ等が挙げられる。
【0027】
対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料としては、単細胞生物、多細胞生物の組織、動物の血液等から、ＡＧＰＣ（Ａｃｉｄ Ｇｕａｎｉｄｉｎｅ ｔｈｉｏｃｙａｎａｔｅ－Ｐｈｅｎｏｌ－Ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ）法等を用いて得られたものが挙げられる。
【0028】
逆転写酵素としては、第２の領域の融解温度付近、すなわち、２０～４０℃で逆転写活性を有するものを用いることができる。逆転写酵素としては、例えば、Ｍｏｌｏｎｅｙ
Ｍｕｒｉｎｅ Ｌｅｕｋｅｍｉａ Ｖｉｒｕｓ Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ（Ｍ－ＭＬＶ ＲＴ）、Ａｖｉａｎ Ｍｙｅｌｏｂｌａｓｔｏｓｉｓ Ｖｉｒｕｓ
Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ（ＡＭＶ ＲＴ）、変異型Ｍ－ＭＬＶ
ＲＴであるＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔＴＭ ＩＶ Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ（ＳＳ ＲＴ）（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）等を用いてもよい。
Ｍｕｒｉｎｅ Ｌｅｕｋｅｍｉａ Ｖｉｒｕｓ Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ（Ｍ－ＭＬＶ ＲＴ）、Ａｖｉａｎ Ｍｙｅｌｏｂｌａｓｔｏｓｉｓ Ｖｉｒｕｓ
Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ（ＡＭＶ ＲＴ）、変異型Ｍ－ＭＬＶ
ＲＴであるＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔＴＭ ＩＶ Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ（ＳＳ ＲＴ）（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）等を用いてもよい。
【0029】
逆転写酵素としては、ＲＮａｓｅ Ｈ活性を喪失した、公知の変異体を用いることが好ましい。ＲＮａｓｅ Ｈ活性を有する逆転写酵素を用いた場合、そのＲＮａｓｅ Ｈ活性によりＲＮＡ：ＤＮＡハイブリッドのＲＮＡを分解するため、逆転写産物の収量が低下する。
【0030】
対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料に、上述のプライマーを加え、これを上述の第２の領域の融解温度よりも低い温度で静置することにより、上述のプライマーを対象ＲＮＡにハイブリダイズさせる。
【0031】
引き続いて、試料に逆転写酵素を加える。逆転写の反応温度は、逆転写酵素が逆転写の活性を持つ温度範囲に設定する。例えば、２０～６０℃に設定することが好ましい。Ｍ－ＭＬＶ ＲＴを用いる場合には、逆転写反応を２０～３７℃の室温付近で簡便に行うこともできる。
【0032】
対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料に対し、上述したプライマーと逆転写酵素を添加すると、２０～６０℃の温度範囲においては、上述したプライマーの第２の領域は、対象ＲＮＡとＤＮＡの両者と２本鎖を維持する。
【0033】
図２（ａ）は、上述したプライマーの第２の領域が、対象ＲＮＡにハイブリダイズし、逆転写酵素がｃＤＮＡを合成する過程を説明する模式図である。図２（ｂ）は、上述したプライマーの第２の領域が、ＤＮＡにハイブリダイズするが、逆転写酵素がｃＤＮＡを合成しないことを説明する模式図である。図２中、ＲＴは逆転写酵素を示す。
【0034】
一般的に、逆転写酵素は、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を有するが、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性は低い。そのため、一般的な逆転写酵素は、ＲＮＡを鋳型とするが、ＤＮＡを鋳型としない。この結果、対象ＲＮＡのみを鋳型としたｃＤＮＡが合成される。
【0035】
そのため、添加された逆転写酵素は、対象ＲＮＡを鋳型として、上述のプライマーの３’端から３’方向へ、対象ＲＮＡのみに特異的な相補的ＤＮＡ（ｃＤＮＡ）を合成する。
このｃＤＮＡの５’端には、第１の領域の配列が付加される。
このｃＤＮＡの５’端には、第１の領域の配列が付加される。
【0036】
［検出方法］
１実施形態において、本発明は、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料に上述のプライマー及び逆転写酵素を添加することと、前記プライマー及び前記対象ＲＮＡを、前記第２の領域の融解温度よりも低い温度でハイブリダイズさせることと、逆転写反応を行いｃＤＮＡを合成することと、前記ｃＤＮＡを鋳型として、上述のプライマーからなるアンチセンスプライマー及び前記ｃＤＮＡにハイブリダイズするセンスプライマーを用いた核酸増幅反応を行うことと、前記核酸増幅反応による核酸の増幅を検出することと、を含み、前記核酸増幅反応を、前記第２の領域の融解温度よりも高い温度で行う、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料中の前記対象ＲＮＡの存在を検出する方法を提供する。
１実施形態において、本発明は、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料に上述のプライマー及び逆転写酵素を添加することと、前記プライマー及び前記対象ＲＮＡを、前記第２の領域の融解温度よりも低い温度でハイブリダイズさせることと、逆転写反応を行いｃＤＮＡを合成することと、前記ｃＤＮＡを鋳型として、上述のプライマーからなるアンチセンスプライマー及び前記ｃＤＮＡにハイブリダイズするセンスプライマーを用いた核酸増幅反応を行うことと、前記核酸増幅反応による核酸の増幅を検出することと、を含み、前記核酸増幅反応を、前記第２の領域の融解温度よりも高い温度で行う、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料中の前記対象ＲＮＡの存在を検出する方法を提供する。
【0037】
本明細書において、アンチセンス鎖とは、対象ＲＮＡに相補的なポリヌクレオチド鎖を指す。センス鎖とは、アンチセンス鎖と相補的な配列をもつポリヌクレオチド鎖を指す。
【0038】
［製造方法］の実施形態で上述したように、第１の領域の塩基配列を含むアンチセンスプライマーと逆転写酵素を用いて逆転写反応を行うと、対象ＲＮＡに相補的な、第１の領域の配列が付加されたｃＤＮＡが合成される。
【0039】
本実施形態の核酸増幅反応においては、プライマーセットとして、センスプライマーとアンチセンスプライマーを用いる。センスプライマーとしては、ｃＤＮＡの配列に相補的なセンス鎖において、アンチセンスプライマーがハイブリダイズする位置から、例えば、５’側に５０～２０００塩基離れた位置の配列を使用することができる。
【0040】
本実施形態の核酸増幅反応においては、アンチセンスプライマーとして、対象ＲＮＡの逆転写に用いたプライマー、すなわち、第１の領域と第２の領域からなるプライマーを用いることができる。この結果、未反応の逆転写用プライマーを除去する必要がなく、核酸増幅反応に新たなアンチセンスプライマーを用意する必要もなくなる。
【0041】
ｃＤＮＡを鋳型とした場合には、ＰＣＲにより、ＤＮＡが指数関数的に増幅する。試料中に混入したＤＮＡを鋳型とした場合には、ＰＣＲにより、ＤＮＡは指数関数的に増幅しないか、増幅したとしても限定的である。
【0042】
アンチセンスプライマー及びセンスプライマーの塩基数は、２０～５０が好ましく、２０～４０がより好ましく、２５～３５が更に好ましい。アンチセンスプライマー及びセンスプライマーの融解温度としては、４５～８０℃が好ましく、５０～８０℃がより好ましく、５５～７５℃が更に好ましい。
【0043】
核酸増幅反応としては、Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ Ｃｈａｉｎ Ｒｅａｃｔｉｏｎ（ＰＣＲ）法、又はＬｏｏｐ－ｍｅｄｉａｔｅｄ ｉｓｏｔｈｅｒｍａｌ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ（ＬＡＭＰ）法等が挙げられる。
【0044】
ＰＣＲ法では、プライマーと耐熱性ＤＮＡポリメラーゼを用いる。ＤＮＡポリメラーゼとしては、例えば、好熱菌の一種であるＴｈｅｒｍｕｓ ａｑｕａｔｉｃｕｓのＤＮＡポリメラーゼ（Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ）等の公知の耐熱性ＤＮＡポリメラーゼを用いることができる。
【0045】
ＰＣＲ法では、２本鎖ＤＮＡが１本鎖ＤＮＡに解離し（反応１）、プライマーが解離した１本鎖ＤＮＡと２本鎖を形成し（反応２）、ＤＮＡポリメラーゼが結合したプライマーの３’端から３’方向へＤＮＡ鎖を伸長させる（反応３）、という３個の反応を１サイクルとして、このサイクルを繰り返して核酸増幅反応が進む。
【0046】
サイクル数としては、２０～６０回が好ましく、２０～４０回がより好ましく、２５～３５回が更に好ましい。
【0047】
反応２の温度は、アンチセンスプライマーの第１の領域と第２の領域の配列のＴｍ値より、－２０℃～＋２０℃にすることが好ましく、－１０℃～＋１０℃にすることがより好ましく、－５℃～＋５℃にすることが更に好ましい。
【0048】
また、反応２の温度は、センスプライマーとアンチセンスプライマーのＴｍ以下の温度に設定する。反応２の温度としては、５０～７０℃が好ましく、５０～６５℃がより好ましく、５５～６５℃が更に好ましい。
【0049】
続いて、１サイクル目の反応３において、反応液中のＤＮＡポリメラーゼは、合成されたｃＤＮＡを鋳型として、センスプライマーの３’端から３’方向へＤＮＡを伸長させて、２本鎖ＤＮＡを合成する。図３（ａ）は、本実施形態の逆転写反応において合成されたｃＤＮＡにセンスプライマーがハイブリダイズした状態を説明する模式図である。
【0050】
ｃＤＮＡを鋳型として合成されたＤＮＡは、アンチセンスプライマーの第１と第２の領域に相補的な配列を有する。図３（ｂ）は、ＰＣＲの１サイクル目でｃＤＮＡを鋳型として合成されたセンス鎖に、アンチセンスプライマーがハイブリダイズした状態を説明する模式図である。
【0051】
図３（ｂ）に示すように、アンチセンスプライマーがハイブリダイズした後、上述した反応３により、２本鎖ＤＮＡが合成される。
【0052】
前述のｃＤＮＡを鋳型として合成された２本鎖ＤＮＡは、センスプライマーとアンチセンスプライマーにそれぞれ相補的な配列を有する。ＰＣＲの反応サイクルを繰り返すことにより、２本鎖ＤＮＡが指数関数的に増幅する。
【0053】
図３（ｃ）は、試料中に混入したＤＮＡにセンスプライマーがハイブリダイズした状態を説明する模式図である。
【0054】
試料中に混入したＤＮＡは、アンチセンスプライマーの第２の領域に相補的な配列を有するが、第１の領域に相補的な配列は有していない。また、上述した反応２は、アンチセンスプライマーの第２の領域のＴｍよりも高い温度で行う。
【0055】
反応２の温度は、アンチセンスプライマーの第２の領域のＴｍよりも、１０～５０℃高いことが好ましく、１５～４０℃高いことがより好ましく、２０～４０℃高いことが更に好ましい。
【0056】
ｃＤＮＡを鋳型として合成されたセンスＤＮＡは、アンチセンスプライマー全体の配列と相補的な配列を持つ。そのため、アンチセンスプライマーは、上述の温度範囲に設定された反応２において、ｃＤＮＡを鋳型として合成されたセンスＤＮＡにハイブリダイズする。
【0057】
一方、試料中に混入したＤＮＡは、アンチセンスプライマーの第２の領域と相補的な配列を持つが、アンチセンスプライマーの第１の領域と相補的な配列は持たない。そのため、アンチセンスプライマーは、上述の温度範囲に設定された反応２において、混入したＤＮＡにハイブリダイズすることができない。
【0058】
図３（ｄ）は、試料中に混入したＤＮＡにアンチセンスプライマーの第２の領域がハイブリダイズしない状態を説明する模式図である。
【0059】
図３（ｄ）に示すように、アンチセンスプライマーは、試料中に混入したＤＮＡと２本鎖を形成しないため、混入したＤＮＡを鋳型とするＤＮＡは、指数関数的に増幅しないか、増幅したとしても限定的である。その結果、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料から、対象ＲＮＡを鋳型とするＤＮＡが特異的に増幅される。
【0060】
増幅したＤＮＡの存在は、このＤＮＡと相補的な配列を有するプローブ、又は検出可能なプローブで標識したプライマー等の公知のプローブを用いることにより、検出できる。
【0061】
実施例において詳述するように、増幅したＤＮＡを検出することにより、対象ＲＮＡの存在を検出することができる。さらに、対象ＲＮＡのコピー数は、増幅したＤＮＡの量と相関を示すため、増幅したＤＮＡの量から対象ＲＮＡの量を算出することができる。
【0062】
［キット］
（第１実施形態）
１実施形態において、本発明は、上述のアンチセンスプライマーを含む、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料から対象ＲＮＡを鋳型としたｃＤＮＡを製造するためのキットを提供する。
（第１実施形態）
１実施形態において、本発明は、上述のアンチセンスプライマーを含む、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料から対象ＲＮＡを鋳型としたｃＤＮＡを製造するためのキットを提供する。
【0063】
第２の領域は、対象ＲＮＡと相補的な配列である。塩基数としては８～１０塩基であってもよい。対象ＲＮＡと第１の領域と第２の領域からなるプライマーを混合すると、第２の領域は、対象ＲＮＡと２本鎖を形成することができる。
【0064】
逆転写酵素としては、例えば、Ｍ－ＭＬＶを用いることができるが、これに限定されない。また、逆転写反応の温度としては、逆転写酵素の逆転写の活性がある温度範囲内に設定する。
【0065】
前述のように、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料に、第１の領域と第２の領域からなるプライマー及び逆転写酵素を添加し、逆転写反応を行うと、対象ＲＮＡのみに特異的なｃＤＮＡを製造することができる。製造されたｃＤＮＡの５’端には、第１の領域の配列が付加される。
【0066】
（第２実施形態）
１実施形態において、本発明は、上述のアンチセンスプライマーと、対象ＲＮＡを鋳型として合成されたｃＤＮＡにハイブリダイズするセンスプライマーと、を含む、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料中の前記対象ＲＮＡの存在の検出用キットを提供する。
１実施形態において、本発明は、上述のアンチセンスプライマーと、対象ＲＮＡを鋳型として合成されたｃＤＮＡにハイブリダイズするセンスプライマーと、を含む、対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料中の前記対象ＲＮＡの存在の検出用キットを提供する。
【0067】
対象ＲＮＡ及びＤＮＡを含む試料中に、第１の領域と第２の領域からなるプライマー及び逆転写酵素を添加し、逆転写反応を行うと、５’端に第１の領域の配列が付加されたｃＤＮＡを製造することができる。
【0068】
対象ＲＮＡの存在を検出するために、ｃＤＮＡを鋳型として、核酸増幅反応により２本鎖ＤＮＡを増幅させてもよい。核酸増幅反応としては、上述したものと同様であり、例えば、ＰＣＲ法、ＬＡＭＰ法等が挙げられる。センスプライマー、アンチセンスプライマーについては、［検出方法］の実施形態において上述したものと同様である。
【0069】
上述したように、核酸増幅反応により増幅されたＤＮＡの存在は、公知のプローブ及び定量ＰＣＲ装置を用いて、検出することができる。これにより、試料中に含まれるＲＮＡの存在を検出することができる。
【実施例】
【0070】
以下、実施例により本発明を説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
【0071】
［実験例１］
（鋳型ＤＮＡおよびＲＮＡの調製）
逆転写反応と定量ＰＣＲに用いる鋳型ＤＮＡとＲＮＡを調整した。
（鋳型ＤＮＡおよびＲＮＡの調製）
逆転写反応と定量ＰＣＲに用いる鋳型ＤＮＡとＲＮＡを調整した。
【0072】
まず、ＨＩＶ－１のｇａｇ遺伝子が挿入されたｐＮＬ４－３ プラスミドを調製した。
このプラスミドＤＮＡの配列のＮＣＢＩアクセッション番号はＡＦ３２４４９３．２である。
このプラスミドＤＮＡの配列のＮＣＢＩアクセッション番号はＡＦ３２４４９３．２である。
【0073】
５０ｎｇ／ｍＬの濃度のＤＮＡの、２６０ｎｍにおける吸光度は１である。調製したプラスミドＤＮＡの２６０ｎｍにおける吸光度から、プラスミドＤＮＡの濃度を算出した。
この濃度から、鋳型として用いるプラスミドＤＮＡのコピー数を算出した。
この濃度から、鋳型として用いるプラスミドＤＮＡのコピー数を算出した。
【0074】
また、ＨＩＶ－１が感染した８Ｅ５細胞の培養液の上清から、ＭｉｎＥｌｕｔｅ Ｖｉｒｕｓ Ｓｐｉｎ Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社）を用いて、ＲＮＡを抽出した。抽出したＲＮＡを用いて、逆転写反応とｎｅｓｔｅｄ ＰＣＲを行った。得られた結果についてポワソン分布式を用いて解析し、抽出したＲＮＡのコピー数を計算した。
【0075】
［実験例２］
（プラスミドＤＮＡを鋳型とした定量ＰＣＲ）
《プライマーの作製》
定量ＰＣＲに用いるセンスプライマーと１４種類のアンチセンスプライマーを作成した。使用したプライマーの配列を表１に示す。「ｇａｇ－ＦＡ」はセンスプライマーの名称であり、「ｇａｇ－ＲＡ」はアンチセンスプライマーの名称である。プライマーの配列及び上記式（２）に基づいて計算したＴｍ値を表１に示す。
（プラスミドＤＮＡを鋳型とした定量ＰＣＲ）
《プライマーの作製》
定量ＰＣＲに用いるセンスプライマーと１４種類のアンチセンスプライマーを作成した。使用したプライマーの配列を表１に示す。「ｇａｇ－ＦＡ」はセンスプライマーの名称であり、「ｇａｇ－ＲＡ」はアンチセンスプライマーの名称である。プライマーの配列及び上記式（２）に基づいて計算したＴｍ値を表１に示す。
【0076】
【表1】
【0077】
表１中、「ｇａｇ－ＲＡ（Ｘ－Ｙ）」は、第１の領域と第２の領域からなるプライマーであることを表す。３’端のＸ個の塩基はｇａｇ ｍＲＮＡに相補的であり、上述の第２の領域に相当し、５’端のＹ個の塩基は、ｇａｇ ｍＲＮＡと相補的ではない配列であり、上述の第１の領域に相当することを表す。
【0078】
《ＤＮＡを鋳型とした定量ＰＣＲ》
１０００コピーのｐＮＬ４－３ プラスミドを鋳型として、表１に示されるｇａｇ－ＦＡプライマーと１４種類のｇａｇ－ＲＡ（Ｘ－Ｙ）プライマーを用いて、それぞれ定量ＰＣＲを行った。
１０００コピーのｐＮＬ４－３ プラスミドを鋳型として、表１に示されるｇａｇ－ＦＡプライマーと１４種類のｇａｇ－ＲＡ（Ｘ－Ｙ）プライマーを用いて、それぞれ定量ＰＣＲを行った。
【0079】
反応条件は、９７℃ ２分で最初の熱変性を行った後、（９４℃ ５秒、６０℃ ２０秒）を６０サイクルとした。検出にはリアルタイムＰＣＲ装置（型式Ｌｉｇｈｔ Ｃｙｃｌｅｒ９６、日本ジェネティクス社）を用いた。また、プローブの蛍光強度が０．０５に達した時のサイクル数をＣｑとした。結果を図４と表２に示す。
【0080】
図４は、ｐＮＬ４－３ プラスミドを鋳型とした場合の、定量ＰＣＲのサイクル数と増幅されたＤＮＡ量の関係を示す増幅曲線である。図４中、各増幅曲線は、それぞれＰＣＲで用いたｇａｇ－ＲＡ（Ｘ－Ｙ）プライマーに対応する。
【0081】
その結果、プライマーに含まれる、第２の領域の塩基数が２０以下になると、増幅曲線が右へシフトすることが明らかになった。すなわち、核酸増幅速度が低下することが明らかになった。また、第２の領域の塩基数が１２以下になると、ＰＣＲによりＤＮＡはほとんど増幅しないことが分かった。
【0082】
【表2】
【0083】
表２中、Ｃｑの値は、増幅されたＤＮＡが閾値に達した時の、サイクル数を示す。第２の領域の塩基数が２０以下になると、Ｃｑの値が大きくなる傾向が確認された。また、第２の領域の塩基数が１２以下になると、増幅したＤＮＡの量は閾値に達しないことが明らかになった。
【0084】
また、プライマーの第２の領域のＴｍが５２℃以下になるとＤＮＡの増幅効率が低下し、３６℃以下になるとＤＮＡは増幅しないことが明らかになった。これは、第２の領域のＴｍが低くなると、ｇａｇ－ＲＡ（Ｘ－Ｙ）プライマーがセンスＤＮＡと２本鎖を形成しにくくなるためであると考えられた。
【0085】
［実験例３］
（ＲＮＡを鋳型とした逆転写反応と定量ＰＣＲ）
鋳型ＲＮＡとｇａｇ－ＲＡ（Ｘ－Ｙ）プライマーを用いて、逆転写反応と定量ＰＣＲを行い、ＤＮＡの増幅効率を解析した。
（ＲＮＡを鋳型とした逆転写反応と定量ＰＣＲ）
鋳型ＲＮＡとｇａｇ－ＲＡ（Ｘ－Ｙ）プライマーを用いて、逆転写反応と定量ＰＣＲを行い、ＤＮＡの増幅効率を解析した。
【0086】
１０００コピーのＲＮＡを含む試料に、ｇａｇ－ＲＡ（Ｘ－Ｙ）プライマーとＭ－ＭＬＶ逆転写酵素（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）を加え、３７℃で１０分間静置し、逆転写反応により、ｃＤＮＡを合成した。
【0087】
続いて、合成したｃＤＮＡと、表１に示されるｇａｇ－ＦＡプライマーとｇａｇ－ＲＡ（Ｘ－Ｙ）プライマーを用いて、定量ＰＣＲを行った。反応条件は、９７℃ ２分で最初の熱変性を行った後、（９４℃ ５秒、６０℃ ２０秒）を６０サイクルとした。結果を図５と表３に示す。
【0088】
図５は、ＲＮＡを鋳型として逆転写反応と定量ＰＣＲを行った場合の、定量ＰＣＲのサイクル数とＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ量の関係を示す増幅曲線である。図５中、各増幅曲線は、ＰＣＲで用いたｇａｇ－ＲＡプライマーを示す。
【0089】
その結果、プライマーに含まれる、第２の領域の塩基数が７であっても、ＰＣＲによりＤＮＡが指数関数的に増幅することが明らかになった。
【0090】
【表3】
【0091】
表３中、Ｃｑの値は、増幅されたＤＮＡが閾値に達した時のサイクル数を示す。第２の領域の塩基数が１０以上であれば、Ｃｑの値はほとんど変わらないことが明らかになった。また、第２の領域の塩基数の値が７～１０であっても、ＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ量は閾値に達することが明らかになった。
【0092】
これらの結果を小括すると、第２の領域のＴｍが７～３６℃であるプライマーを用いた場合、逆転写反応とＰＣＲにより、プラスミドＤＮＡを鋳型としたＤＮＡはほとんど増幅せず、ＲＮＡが鋳型の場合には、産物ＤＮＡ量は指数関数的に増幅することが明らかになった。
【0093】
すなわち、第２の領域のＴｍが７～３６℃であるプライマーを用いた場合には、ＤＮＡとＲＮＡの混合物中から、逆転写反応とＰＣＲにより、対象ＲＮＡを鋳型としたＤＮＡ産物を得ることができる。
【0094】
［実験例４］
（ＲＮＡのコピー数と増幅曲線の関係）
鋳型とするＲＮＡのコピー数及びｇａｇ－ＲＡ（Ｘ－Ｙ）プライマーと、定量ＰＣＲによるＤＮＡの増幅効率の関係性について解析した。
（ＲＮＡのコピー数と増幅曲線の関係）
鋳型とするＲＮＡのコピー数及びｇａｇ－ＲＡ（Ｘ－Ｙ）プライマーと、定量ＰＣＲによるＤＮＡの増幅効率の関係性について解析した。
【0095】
１００００、１０００、１００、１０、０コピーのＲＮＡを含む試料に、ｇａｇ－ＲＡ（Ｘ－Ｙ）プライマーとＭ－ＭＬＶ逆転写酵素（サーモフィッシャーサイエンティフィック社）を加え、３７℃で１０分間静置し、逆転写反応により、ｃＤＮＡを合成した。
【0096】
続いて、合成したｃＤＮＡを鋳型として、ｇａｇ－ＦＡプライマーとｇａｇ－ＲＡ（２７－０）プライマーを用いて、定量ＰＣＲを行った。反応条件は、９７℃ ２分で最初の熱変性を行った後、（９４℃ ５秒、６０℃ ２０秒）を６０サイクルとした。各実験を３回繰り返した。結果を図６と図８に示す。
【0097】
図６は、各コピー数のＲＮＡを鋳型とし、ｇａｇ－ＲＡ（２７－０）を用いて、逆転写反応と定量ＰＣＲを行った場合の、サイクル数とＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ量の関係を示す増幅曲線である。その結果、ｇａｇ－ＲＡ（２７－０）を用いた場合、鋳型が１０コピーのＲＮＡであっても、再現性良くＰＣＲによりＤＮＡが増幅できることが明らかになった。また、それぞれの曲線は、分離可能であることから、ＲＮＡのコピー数を定量的に分析できることが明らかになった。
【0098】
次に、合成したｃＤＮＡを鋳型として、ｇａｇ－ＦＡプライマーとｇａｇ－ＲＡ（９－１８）プライマーを用いて、定量ＰＣＲを行った。反応条件は、９７℃ ２分で最初の熱変性を行った後、（９４℃ ５秒、６０℃ ２０秒）を６０サイクルとした。結果を図７と図９に示す。
【0099】
図７は、各コピー数のＲＮＡを鋳型とし、ｇａｇ－ＲＡ（９－１８）を用いて、逆転写反応と定量ＰＣＲを行った場合の、サイクル数とＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ量の関係を示す増幅曲線である。その結果、ｇａｇ－ＲＡ（９－１８）を用いた場合、鋳型が１０コピーのＲＮＡであっても、再現性良くＰＣＲによりＤＮＡが増幅できることが明らかになった。また、それぞれの曲線は、分離可能であることから、ＲＮＡのコピー数を定量的に分析できることが明らかになった。
【0100】
図８は、各コピー数のＲＮＡを鋳型とし、ｇａｇ－ＲＡ（２７－０）プライマーを用いて、逆転写反応と定量ＰＣＲを行った場合の、鋳型ＲＮＡのコピー数と、Ｃｑ値の関係を示すグラフである。図９は、各コピー数のＲＮＡを鋳型とし、ｇａｇ－ＲＡ（９－１８）を用いて、逆転写反応と定量ＰＣＲを行った場合の、鋳型ＲＮＡのコピー数と、Ｃｑ値の関係を示すグラフである。
【0101】
その結果、ｇａｇ－ＲＡ（２７－０）をプライマー用いた場合と、ｇａｇ－ＲＡ（９－１８）プライマーを用いた場合とで、検量線の傾きはほぼ一致することが明らかになった。この結果は、ふたつの場合で、増幅効率が同レベルであることを示す。
【0102】
［実験例５］
（鋳型ＤＮＡコピー数と増幅曲線の関係）
鋳型とするプラスミドＤＮＡのコピー数及びｇａｇ－ＲＡ（Ｘ－Ｙ）プライマーと、定量ＰＣＲによるＤＮＡの増幅効率の関係性について解析した。
（鋳型ＤＮＡコピー数と増幅曲線の関係）
鋳型とするプラスミドＤＮＡのコピー数及びｇａｇ－ＲＡ（Ｘ－Ｙ）プライマーと、定量ＰＣＲによるＤＮＡの増幅効率の関係性について解析した。
【0103】
１００００、１０００、１００、１０、０コピーのｐＮＬ４－３ プラスミドＤＮＡを含む試料に、ｇａｇ－ＦＡプライマーとｇａｇ－ＲＡ（２７－０）プライマーを用いて、定量ＰＣＲを行った。反応条件は、９７℃ ２分で最初の熱変性を行った後、（９４℃
５秒、６０℃ ２０秒）を６０サイクルとした。結果を図１０に示す。
５秒、６０℃ ２０秒）を６０サイクルとした。結果を図１０に示す。
【0104】
図１０は、各コピー数のｐＮＬ４－３ プラスミドＤＮＡを鋳型とし、ｇａｇ－ＲＡ（２７－０）を用いて、定量ＰＣＲを行った場合の、サイクル数とＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ量の関係を示す増幅曲線である。その結果、ｇａｇ－ＲＡ（２７－０）プライマーを用いた場合には、鋳型のｐＮＬ４－３ プラスミドＤＮＡが１０コピーであっても、ＰＣＲによりＤＮＡが増幅することが明らかになった。
【0105】
次に、１００００、１０００、１００、１０、０コピーのｐＮＬ４－３ プラスミドＤＮＡを含む試料に、ｇａｇ－ＦＡプライマーとｇａｇ－ＲＡ（９－１８）プライマーを用いて、定量ＰＣＲを行った。反応条件は、９７℃ ２分で最初の熱変性を行った後、（９４℃ ５秒、６０℃ ２０秒）を６０サイクルとした。結果を図１１に示す。
【0106】
図１１は、各コピー数のｐＮＬ４－３ プラスミドＤＮＡを鋳型とし、ｇａｇ－ＲＡ（９－１８）を用いて、定量ＰＣＲを行った場合の、サイクル数とＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ量の関係を示す増幅曲線である。その結果、プライマーとしてｇａｇ－ＦＡとｇａｇ－ＲＡ（９－１８）を用いた場合には、ＰＣＲによりＤＮＡはほとんど増幅しないことが明らかになった。
【0107】
［実験例６］
（ＤＮＡとＲＮＡの混合物を鋳型としたＲＴ－ＰＣＲ）
ＤＮＡとＲＮＡを含む試料と、ｇａｇ－ＲＡ（２７－０）又はｇａｇ－ＲＡ（９－１８）を用いて、逆転写反応とＰＣＲを行い、ＲＮＡの量を定量した。
（ＤＮＡとＲＮＡの混合物を鋳型としたＲＴ－ＰＣＲ）
ＤＮＡとＲＮＡを含む試料と、ｇａｇ－ＲＡ（２７－０）又はｇａｇ－ＲＡ（９－１８）を用いて、逆転写反応とＰＣＲを行い、ＲＮＡの量を定量した。
【0108】
ｐＮＬ４－３ プラスミドＤＮＡとＲＮＡの混合物に、ｇａｇ－ＲＡ（２７－０）又はｇａｇ－ＲＡ（９－１８）プライマーとＭ－ＭＬＶ逆転写酵素（サーモフィッシャーサイエンティフィック社）を加え、３７℃で１０分間静置し、逆転写反応により、ｃＤＮＡを合成した。鋳型のコピー数は、（ＤＮＡが１０００コピー、ＲＮＡが０コピー）、（ＤＮＡが９６０コピー、ＲＮＡが４０コピー）、（ＤＮＡが８００コピー、ＲＮＡが２００コピー）、（ＤＮＡが０コピー、ＲＮＡが１０００コピー）、（ＤＮＡが０コピー、ＲＮＡが０コピー）であった。
【0109】
続いて、合成したｃＤＮＡと、ｇａｇ－ＦＡプライマーとｇａｇ－ＲＡ（２７－０）プライマーを用いて、定量ＰＣＲを行った。反応条件は、９７℃ ２分で最初の熱変性を行った後、（９４℃ ５秒、６０℃ ２０秒）の６０サイクルとした。結果を図１２に示す。
【0110】
図１２は、ｐＮＬ４－３ プラスミドＤＮＡとＲＮＡの混合物を鋳型とし、ｇａｇ－ＲＡ（２７－０）を用いて、逆転写反応と定量ＰＣＲを行った場合の、定量ＰＣＲのサイクル数とＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ量の関係を示す増幅曲線である。
【0111】
その結果、ｇａｇ－ＲＡ（２７－０）プライマーを用いた場合には、いずれの鋳型の組み合わせにおいても、同様の増幅曲線が得られた。
【0112】
次に、合成したｃＤＮＡと、ｇａｇ－ＦＡプライマーとｇａｇ－ＲＡ（９－１８）プライマーを用いて、定量ＰＣＲを行った。反応条件は、９７℃ ２分で最初の熱変性を行った後、（９４℃ ５秒、６０℃ ２０秒）の６０サイクルとした。結果を図１３に示す。
【0113】
図１３は、ｐＮＬ４－３ プラスミドＤＮＡとＲＮＡの混合物を鋳型とし、ｇａｇ－ＲＡ（９－１８）を用いて、逆転写反応と定量ＰＣＲを行った場合の、定量ＰＣＲのサイクル数とＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ量の関係を示す増幅曲線である。
【0114】
その結果、ｇａｇ－ＲＡ（９－１８）プライマーを用いた場合には、ＤＮＡの増幅効率は、鋳型ＤＮＡには依存せず、鋳型ＲＮＡの量に依存することが明らかになった。
【0115】
以上の結果を小括すると、ｇａｇ－ＲＡ（９－１８）プライマーを用いて、逆転写反応と定量ＰＣＲを行うと、ＤＮＡとＲＮＡの混合物からＲＮＡの量を定量することが可能であることが明らかになった。
【産業上の利用可能性】
【0116】
本発明によれば、ＤＮＡとＲＮＡの混合物から、対象ＲＮＡを簡便に検出する技術を提供することができる。
【図1】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
【図10】
【図11】
【図12】
【図13】
【配列表】