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(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B2)
(11)【特許番号】
(24)【登録日】2023-08-17
(45)【発行日】2023-08-25
(54)【発明の名称】アミノ酸定量方法及びアミノ酸定量用キット
(51)【国際特許分類】
C12Q 1/25 20060101AFI20230818BHJP
C12N 15/52 20060101ALN20230818BHJP
【ＦＩ】
C12Q1/25 ZNA
C12N15/52 Z
【請求項の数】
6
(21)【出願番号】P 2020513235
(86)(22)【出願日】2019-04-05
(86)【国際出願番号】 JP2019015061
(87)【国際公開番号】W WO2019198623
(87)【国際公開日】2019-10-17
【審査請求日】2022-04-01
(31)【優先権主張番号】P 2018077189
(32)【優先日】2018-04-12
(33)【優先権主張国・地域又は機関】JP
(73)【特許権者】
【識別番号】000210067
【氏名又は名称】池田食研株式会社
(73)【特許権者】
【識別番号】503359821
【氏名又は名称】国立研究開発法人理化学研究所
(74)【代理人】
【識別番号】100216286
【弁理士】
【氏名又は名称】篠崎 史典
(72)【発明者】
【氏名】山田 健太
(72)【発明者】
【氏名】青木 秀之
(72)【発明者】
【氏名】中柄 朋子
(72)【発明者】
【氏名】喜田 幹子
(72)【発明者】
【氏名】佐藤 大祐
(72)【発明者】
【氏名】寺田 貴帆
(72)【発明者】
【氏名】疋田 泰士
(72)【発明者】
【氏名】横山 茂之
【審査官】北村 悠美子
(56)【参考文献】
【文献】国際公開第２０１７／１７０４６９（ＷＯ，Ａ１）
【文献】特開２０１３－１９８４４８（ＪＰ，Ａ）
【文献】国際公開第２０１３／１１８８９４（ＷＯ，Ａ１）
(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)
Ｃ１２Ｑ １／００－３／００
ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩＩ）
ＣＡｐｌｕｓ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＥＭＢＡＳＥ／ＢＩＯＳＩＳ（ＳＴＮ）
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
以下の各工程を含む工程（Ｉ）：（工程Ｉ－１）試料中のアミノ酸（ＡＡ）に対応するアミノアシルｔＲＮＡ合成酵素（ＡＡＲＳ）及び転移ＲＮＡ（ｔＲＮＡ）を反応させて、ＡＡＲＳとｔＲＮＡから成る複合体（ＡＡＲＳ－ｔＲＮＡ複合体）を形成させる反応（反応１）を含む工程；
（工程Ｉ－２）二価陽イオンの存在下、該ＡＡ、該ＡＡに対応するＡＡＲＳ－ｔＲＮＡ複合体、及び、アデノシン三リン酸（ＡＴＰ）を反応させて、アミノアシルアデニル酸（アミノアシルＡＭＰ）とＡＡＲＳ－ｔＲＮＡ複合体から成る複合体（アミノアシルＡＭＰ－ＡＡＲＳ－ｔＲＮＡ複合体）を形成させる反応（反応２）を含む工程；
（工程Ｉ－３）反応２及び／又は反応４で形成されたアミノアシルＡＭＰ－ＡＡＲＳ－ｔＲＮＡ複合体（該複合体から生成され得るＡＡＲＳ及びアミノアシルｔＲＮＡも含む）にアミノ酸再生試薬を作用させて、ＡＡ、並びに、ＡＡＲＳ、ＡＡＲＳ－ｔＲＮＡ複合体及びｔＲＮＡからなる群から選択される少なくとも一種以上の化合物を遊離させる反応（反応３）を含む工程；
（工程Ｉ－４）反応３で遊離されたＡＡ、並びに、ＡＡＲＳ、ＡＡＲＳ－ｔＲＮＡ複合体及びｔＲＮＡからなる群から選択される少なくとも一種以上の化合物を反応１及び／又は反応２において再利用することによってアミノアシルＡＭＰ－ＡＡＲＳ－ｔＲＮＡ複合体反応を形成させる反応（反応４）を含む工程；及び、
（工程Ｉ－５）工程Ｉ－３及び工程Ｉ－４を繰り返す工程、並びに、工程（Ｉ）で生じた反応産生物の量を測定し、該反応産生物の測定量に基づきアミノ酸の量を決定することを含む工程（ＩＩ）、
を含む、試料中のアミノ酸定量方法であって、
前記工程（Ｉ）で用いるアミノ酸再生試薬が、ヌクレオチド及びアルカリ性化合物であることを特徴とするアミノ酸定量方法。
【請求項2】
工程（Ｉ）で用いるｔＲＮＡが、ＡＡＲＳのモル数の０．２５倍以上であることを特徴とする、請求項１に記載のアミノ酸定量方法。
【請求項3】
吸光度法により吸光度変化を測定することによって、工程（Ｉ）で生じた反応産生物の量を測定する、請求項１又は２に記載のアミノ酸定量方法。
【請求項4】
工程（Ｉ）で生じる反応産生物として、ピロリン酸又は水素イオンの少なくとも何れか１つを測定する、請求項１～３のいずれか一項に記載のアミノ酸定量方法。
【請求項5】
工程（Ｉ）で生じた反応産生物のモル数が反応液中に含まれるｔＲＮＡ及び／又はアミノ酸のモル数より多いことを特徴とする、請求項１～４のいずれか一項に記載のアミノ酸定量方法。
【請求項6】
請求項１～５のいずれか一項に記載のアミノ酸定量法を実施するためのアミノ酸定量用キットであって、ＡＴＰ、アミノ酸再生試薬、並びに、該アミノ酸に対応するＡＡＲＳ及びｔＲＮＡを含む、アミノ酸定量用キット。【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、アミノ酸定量方法及びアミノ酸定量用キット等に関する。
【背景技術】
【0002】
Ｌ－アミノ酸（Ｌ-ＡＡ）は、生体内のタンパク質の構成成分として重要な役割を担っており、その種類は２０種類である。Ｌ－アミノ酸の機能性に関し多くの研究がなされ、Ｌ－アミノ酸は、医薬品、加工食品、健康食品など様々な産業で使用されている。例えば、食品中の遊離のＬ－アミノ酸は、味、加熱後の香り、保存性、摂取後の生体調節機能等に関係しており、食品科学や栄養科学分野における重要な要素として注目されている。また、近年、疾病により血液中のＬ－アミノ酸濃度が変化することが見いだされ、血液中のアミノ酸濃度を測定することで、肺がん、胃がん、大腸がんなどのがん診断を可能とするバイオマーカーとしても活用されている。その為、アミノ酸定量技術は、アミノ酸を使用する製品開発、品質管理、診断などの様々な分野で必要不可欠な技術となっている。
【0003】
Ｌ-アミノ酸のアミノ酸定量技術として、アミノ酸を液体クロマトグラフィーで分離し、ニンヒドリンや蛍光誘導体化剤オルトフタルアルデヒドによる呈色反応で検出する方法が知られている（非特許文献１）。しかし、該方法は、１検体の分析時間が２時間程度必要なため分析時間がかかり、多数の検体を測定するには不向きであるという問題点があった。
【0004】
別のアミノ酸定量技術として、Ｌ-アミノ酸に作用する酵素を利用するアミノ酸の測定方法が知られている（特許文献１）。しかし、該方法は目的基質とするアミノ酸に対する選択性が低く、目的以外のアミノ酸にも反応する、また、２０種類のアミノ酸に対応する酵素がないという問題点があった。
【0005】
アミノアシルｔＲＮＡ合成酵素（ＡＡＲＳ）は、生体内のタンパク質合成に係る酵素であり、以下の反応式１及び２に従って、アミノアシルｔＲＮＡを産生する。２０種類のＬ-アミノ酸（Ｌ-ＡＡ）に対し特異的な２０種類のＡＡＲＳが存在する。その為、標的とするアミノ酸及び転移ＲＮＡ（ｔＲＮＡ）に対する選択性が極めて高い酵素であるとされている。
【化1】
【0006】
ＡＡＲＳの内、グルタミン酸に作用するグルタミルｔＲＮＡ合成酵素、グルタミンに作用するグルタミニルｔＲＮＡ合成酵素及びアルギニンに作用するアルギニルｔＲＮＡ合成酵素の３種類のＡＡＲＳについては、以下の反応式３～５に従って、ｔＲＮＡとＡＡＲＳが予め会合し、活性化されなければＡＡＲＳ反応が起こらないことが報告されている（非特許文献２）。
【化2】
【0007】
当該反応では、ピロリン酸（ＰＰｉ）が産生されると共に、ＡＡＲＳにアデノシン三リン酸（ＡＴＰ）、Ｌ-アミノ酸（Ｌ-ＡＡ）及びｔＲＮＡが１分子ずつ作用することで、アミノアシルアデニル酸（アミノアシルＡＭＰ）-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体という反応中間体を形成する。該複合体に於いて、アミノアシルＡＭＰは、通常、ＡＡＲＳに強く結合しているため、ｔＲＮＡ又は求核剤（アミン類）を加えて複合体を分解しない限り上記のＡＡＲＳ反応は進まないとされている（特許文献２、非特許文献３～４）。
【0008】
このようなＡＡＲＳが関与する反応（ＡＡＲＳ反応）については、非特許文献５や非特許文献６のように放射線ラベルを使用した方法で確認されており、本方法を利用したＬ-アミノ酸の定量技術がこれまで開発されてきた。例えば、非特許文献７では、反応式１と反応式２のＡＡＲＳ反応に基づき、放射線ラベルをした測定対象アミノ酸を用い、ＡＴＰ、ｔＲＮＡとＡＡＲＳを作用させ、産生したアミノアシルｔＲＮＡをビーズに吸着させ、その放射線量を測定することで測定対象アミノ酸を測定する方法が記載されている。しかしながら、該方法では、放射線ラベルした測定対象アミノ酸が不可欠であり、放射線ラベルをした測定対象アミノ酸が取り扱える施設や設備が必要である。また、ビーズの吸着、分離などの煩雑な操作も必要である。さらに反応式１と２のＡＡＲＳ反応に基づくため、ＡＡＲＳが1分子のアミノ酸とＡＴＰと反応し、1分子のアミノアシルｔＲＮＡを産生するため、試料中のｔＲＮＡと同量かそれ以下のピロリン酸しか産生されない。従って、該方法では、微量な反応産物であるアミノアシルｔＲＮＡを検出する必要があり、放射線ラベルをした測定対象アミノ酸が必要不可欠だとされている（特許文献２の段落番号００１２）。
【0009】
また、例えば、以下の反応式６で示される反応に基づくアミノ酸の分析方法が特許文献３に記載されている。
【化3】
【0010】
該方法に於いては、ＡＡＲＳがＡＴＰ及びＬ-アミノ酸と結合する際に生じるピロリン酸を指標とすることによりＬ-アミノ酸を分析する（特許文献３、非特許文献８、９、１０）。しかしながら、反応式６からも分かるように、当該方法は、ｔＲＮＡを添加せず反応させる方法であり、ｔＲＮＡとＡＡＲＳが予め会合し、活性化されなければならないＡＡＲＳでは、反応が起こらない方法である。
【0011】
更に、ｔＲＮＡを添加せず、反応式１と２のＡＡＲＳ反応に基づいてＬ-アミノ酸を定量する方法が、特許文献２及び特許文献４に記載されている。即ち、前述の通りアミノアシルＡＭＰは、通常、ＡＡＲＳに強く結合してアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ複合体を形成している。そこで、該方法では、アミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ複合体分解試薬としてヒドロキシルアミンなどのアミン類（求核剤）を添加することで、ＡＡＲＳを再び反応可能な状態とし、その結果、少量のＡＡＲＳでＬ-アミノ酸を定量することを特徴とする。しかしながら、特許文献２及び特許文献４に記載の該複合体分解試薬が複合体のＬ-アミノ酸と反応して化合物が産生される（例えば、特許文献２の段落番号００３７に示されるように、該複合体分解試薬としてヒドロキシルアミンを使用した場合は、「アミノ酸ヒドロキサム酸」が産生される）ため、Ｌ-アミノ酸は再利用することが出来ず、その結果、試料中のＬ-アミノ酸と同等量の産生物であるピロリン酸しか得られない（特許文献２の段落番号００２３）。
【0012】
また、該方法はｔＲＮＡを添加せず反応させる方法であり、ｔＲＮＡとＡＡＲＳが予め会合し、活性化されなければならないＡＡＲＳでは、反応が起こらない。因みに、特許文献２では、ｔＲＮＡとＡＡＲＳが予め会合し、活性化されなければならないＡＡＲＳについては、ｔＲＮＡを添加すれば良いとしており、添加するｔＲＮＡは、測定対象のアミノ酸と同等に高いモル濃度にする必要がなく、ＡＡＲＳと同等に低いモル濃度添加すれば十分であることが記載されている（特許文献２の段落番号００１２）。また、反応式１と２のＡＡＲＳ反応に基づく該方法において、ｔＲＮＡを使用する場合、アミノアシルｔＲＮＡを構成するｔＲＮＡは再利用することが出来ず、その結果、試料中のｔＲＮＡ量に反応が制限されることとなり、ｔＲＮＡと同等量の産生物であるピロリン酸しか得られない。以上のことから、反応式１と２のＡＡＲＳ反応に基づく該方法は、ｔＲＮＡやＬ-アミノ酸の再利用をしないため、ｔＲＮＡ又はＬ-アミノ酸と同等量のピロリン酸しか得ることができない、また、ＡＡＲＳ反応で生じたピロリン酸を多段階の酵素反応により検出しているため、煩雑であるとともに、血中の夾雑物やその他の外部要因により各酵素が影響を受けやすいことが懸念される。
【0013】
実際に、特許文献２には、こうして予めｔＲＮＡと会合されたＡＡＲＳから形成されるアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体にヒドロキシルアミンなどのアミン類（求核剤）を作用させた場合に、該複合体からＡＡ、並びに、ＡＡＲＳ、ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体及びｔＲＮＡからなる群から選択される少なくとも一種以上の化合物が遊離されて、これらが再び反応可能な状態となり、その結果、Ｌ-アミノ酸が定量出来ることは何ら記載ないし示唆されていないし、また、そのような事実を示した実施例は開示されていない。
【0014】
一方、別のＡＡＲＳ反応としては、例えば、以下の反応式７と８の反応が知られている。当該反応では、ＡＡＲＳにＡＴＰ及びＬ-アミノ酸が１分子ずつ作用することで、アミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ複合体を形成する。次いで該複合体にＡＴＰ、ＧＴＰ等を作用させることによって、医薬品や医薬品原料として期待されているジアデノシン四リン酸（Ａｐ４Ａ）等のジアデノシンポリリン酸（ＡｐｎＡ）及びアデノシングアノシンテトラリン酸（Ａｐ４Ｇ）等が合成・製造されている（特許文献５、特許文献６、非特許文献１１、非特許文献１２）。
【化4】
【0015】
当該反応の反応式７は、ピロリン酸の存在下では逆反応が促進され、アミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ複合体からアミノ酸、ＡＡＲＳ及びＡＴＰが産生される。その為、当該反応を進めるためには、逆反応を生じなくさせる必要があり、上記の公知文献に記載の技術では、反応式７で産生される不必要なピロリン酸を分解するため、ピロリン酸を分解する無機ピロホスファターゼが使用されている。更に、これら公知文献に記載された技術は、あくまで、ＡｐｎＡ及びＡｐ４Ｇ等の合成・製造に関するものであって、アミノ酸の定量に関する技術的課題を解決することを目的とするものではない。実際に、これら公知文献には、上記の反応式７と８のＡＡＲＳ反応を活用したアミノ酸の定量については何ら言及されておらず、反応式８に於いて生じるアミノ酸及びＡＡＲＳの再利用に関しても一切触れられていない。
【0016】
また、反応式７と８のＡＡＲＳ反応に基づいた、Ｌ体及びＤ体のアミノ酸を定量する方法が、特許文献７に記載されている。この方法では、一度形成させたアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ複合体からＡＡＲＳ及びアミノ酸を遊離させ、それらを再度、アミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ複合体の形成に利用することによって、最終的に、測定対象であるピロリン酸等の反応産生物を、試料中に含まれるアミノ酸より多くのモル数まで産生させることを特徴とする。しかしながら、該発明は、ｔＲＮＡとＡＡＲＳが予め会合し、活性化されなければならないＡＡＲＳに関して何ら触れられていない。更に、特許文献７には、アミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体から、ＡＡ、並びに、ＡＡＲＳ、ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体及びｔＲＮＡからなる群から選択される少なくとも一種以上の化合物が遊離され、これらが再利用できる可能性については記載ないし示唆されていない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0017】
【文献】特開２０１３－１４６２６４号公報
【文献】特許５３０５２０８号明細書
【文献】特開２０１１－５０３５７号公報
【文献】ＷＯ２０１３１１８８９４Ａ１
【文献】特開２０００－６９９９０号公報
【文献】特許３１３５６４９号明細書
【文献】ＷＯ２０１７１７０４６９Ａ１
【非特許文献】
【0018】
【文献】“化学と生物”、（日本）、２０１５年、Ｖｏｌ.５３、ｐ．１９２－１９７
【文献】Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ、１４, １７９１－１７９９, ２００６
【文献】“ヴォート 生化学（下）”、（日本）、第３版、１０２４－１０２９
【文献】Ｊ.Ｂｉｏｌ.Ｃｈｅｍ., ２４１, ８３９－８４５, １９６６
【文献】Ｊ.Ｂｉｏｌ.Ｃｈｅｍ., ２４０, ４３２－４３８, １９６５
【文献】Ｅｕｒ. Ｊ. Ｂｉｏｃｈｅｍ., ７０, １３７－１４５, １９７６
【文献】Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍ., ３６３, ２４６－２５４, ２００７
【文献】Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍ., ４４３, ２２－２６, ２０１３
【文献】Ａｐｐl. Ｂｉｏｃｈｅｍ. Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏl., １７４, ２５２７－２５３６, ２０１４
【文献】Ｊ．Ｃｈｅｍ.Ｃｈｅｍ．Ｅｎｇ．６，３９７－４００，２０１２
【文献】“東京医科大学雑誌”、（日本）、１９９３年、Ｖｏｌ.５１、ｐ．４６９－４８０
【文献】Ａｇｒｉｃ. Ｂｉｏｌ. Ｃｈｅｍ., ５３, ６１５－６２３, １９８９
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0019】
本発明は、上記のアミノ酸定量法に関する従来技術に於ける様々な問題点を解決し、ＡＡＲＳを用いて、測定対象のアミノ酸を選択的且つ簡便、高感度に定量する方法及びアミノ酸定量用キットを提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【0020】
発明者らは、種々の検討を行った結果、ＡＡＲＳを用いて試料中のアミノ酸（Ｌ体及びＤ体）、特に、グルタミン酸、グルタミン及びアルギニンの量を定量する方法に於いて、図１に示すように、試料中のアミノ酸（ＡＡ）に対応するアミノアシルｔＲＮＡ合成酵素（ＡＡＲＳ）及び転移ＲＮＡ（ｔＲＮＡ）を反応させて、ＡＡＲＳとｔＲＮＡから成る複合体（ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体）を形成させ、このＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体とアミノ酸及びＡＴＰと反応させてアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体を形成させ、次いで、一度形成させたアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体（該複合体から生成され得るＡＡＲＳ及びアミノアシルｔＲＮＡも含む）とアミノ酸再生試薬（ヌクレオチド又は、アルカリ性化合物）を反応させることによって、該複合体から、ＡＡ、並びに、ＡＡＲＳ、ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体及びｔＲＮＡからなる群から選択される少なくとも一種以上の化合物を遊離させ、それらを再度、アミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体の形成に利用することによって、最終的に、測定対象であるピロリン酸等の反応産生物が、反応液中に含まれるｔＲＮＡ及び／又はアミノ酸より多くのモル数まで産生され得ることを見出し、本発明を完成させた。
【0021】
本発明は、以下の［１］～［７］の態様に関する。
［１］以下の各工程を含む工程（Ｉ）：
（工程Ｉ－１）試料中のアミノ酸（ＡＡ）に対応するアミノアシルｔＲＮＡ合成酵素（ＡＡＲＳ）及び転移ＲＮＡ（ｔＲＮＡ）を反応させて、ＡＡＲＳとｔＲＮＡから成る複合体（ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体）を形成させる反応（反応１）を含む工程；
（工程Ｉ－２）二価陽イオンの存在下、該ＡＡ、該ＡＡに対応するＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体、及び、アデノシン三リン酸（ＡＴＰ）を反応させて、アミノアシルアデニル酸（アミノアシルＡＭＰ）とＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体から成る複合体（アミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体）を形成させる反応（反応２）を含む工程；
（工程Ｉ－３）反応２及び／又は反応４で形成されたアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体（該複合体から生成され得るＡＡＲＳ及びアミノアシルｔＲＮＡも含む）にアミノ酸再生試薬を作用させて、ＡＡ、並びに、ＡＡＲＳ、ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体及びｔＲＮＡからなる群から選択される少なくとも一種以上の化合物を遊離させる反応（反応３）を含む工程；
（工程Ｉ－４）反応３で遊離されたＡＡ、並びに、ＡＡＲＳ、ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体及びｔＲＮＡからなる群から選択される少なくとも一種以上の化合物を反応１及び/又は反応２において再利用することによってアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体反応を形成させる反応（反応４）を含む工程；及び、
（工程Ｉ－５）工程Ｉ－３及び工程Ｉ－４を繰り返す工程、並びに、工程（Ｉ）で生じた反応産生物の量を測定し、該反応産生物の測定量に基づきアミノ酸の量を決定することを含む工程（ＩＩ）、
を含む、試料中のアミノ酸定量方法。
［２］工程（Ｉ）で用いるアミノ酸再生試薬が、ヌクレオチド及びアルカリ性化合物であることを特徴とする、態様［１］に記載のアミノ酸定量方法。
［３］工程（Ｉ）で用いるｔＲＮＡが、ＡＡＲＳのモル数の０.２５倍以上であることを特徴とする、態様［１］に記載のアミノ酸定量方法。
［４］吸光度法により吸光度変化を測定することによって、工程（Ｉ）で生じた反応産生物の量を測定する、態様［１］～［３］に記載のアミノ酸定量方法。
［５］工程（Ｉ）で生じる反応産生物として、ピロリン酸又は水素イオンの少なくとも何れか１つを測定する、態様［１］～［４］の何れか一項に記載のアミノ酸定量方法。
［６］工程（Ｉ）で生じた反応産生物のモル数が反応液中に含まれるｔＲＮＡ及び／又はアミノ酸のモル数より多いことを特徴とする、態様［１］～［５］のいずれか一項に記載のアミノ酸定量方法。
［７］態様［１］～［６］に記載のアミノ酸定量法を実施するためのアミノ酸定量用キットであって、ＡＴＰ、アミノ酸再生試薬、並びに、該アミノ酸に対応するＡＡＲＳ及びｔＲＮＡを含む、アミノ酸定量用キット。
［１］以下の各工程を含む工程（Ｉ）：
（工程Ｉ－１）試料中のアミノ酸（ＡＡ）に対応するアミノアシルｔＲＮＡ合成酵素（ＡＡＲＳ）及び転移ＲＮＡ（ｔＲＮＡ）を反応させて、ＡＡＲＳとｔＲＮＡから成る複合体（ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体）を形成させる反応（反応１）を含む工程；
（工程Ｉ－２）二価陽イオンの存在下、該ＡＡ、該ＡＡに対応するＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体、及び、アデノシン三リン酸（ＡＴＰ）を反応させて、アミノアシルアデニル酸（アミノアシルＡＭＰ）とＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体から成る複合体（アミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体）を形成させる反応（反応２）を含む工程；
（工程Ｉ－３）反応２及び／又は反応４で形成されたアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体（該複合体から生成され得るＡＡＲＳ及びアミノアシルｔＲＮＡも含む）にアミノ酸再生試薬を作用させて、ＡＡ、並びに、ＡＡＲＳ、ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体及びｔＲＮＡからなる群から選択される少なくとも一種以上の化合物を遊離させる反応（反応３）を含む工程；
（工程Ｉ－４）反応３で遊離されたＡＡ、並びに、ＡＡＲＳ、ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体及びｔＲＮＡからなる群から選択される少なくとも一種以上の化合物を反応１及び/又は反応２において再利用することによってアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体反応を形成させる反応（反応４）を含む工程；及び、
（工程Ｉ－５）工程Ｉ－３及び工程Ｉ－４を繰り返す工程、並びに、工程（Ｉ）で生じた反応産生物の量を測定し、該反応産生物の測定量に基づきアミノ酸の量を決定することを含む工程（ＩＩ）、
を含む、試料中のアミノ酸定量方法。
［２］工程（Ｉ）で用いるアミノ酸再生試薬が、ヌクレオチド及びアルカリ性化合物であることを特徴とする、態様［１］に記載のアミノ酸定量方法。
［３］工程（Ｉ）で用いるｔＲＮＡが、ＡＡＲＳのモル数の０.２５倍以上であることを特徴とする、態様［１］に記載のアミノ酸定量方法。
［４］吸光度法により吸光度変化を測定することによって、工程（Ｉ）で生じた反応産生物の量を測定する、態様［１］～［３］に記載のアミノ酸定量方法。
［５］工程（Ｉ）で生じる反応産生物として、ピロリン酸又は水素イオンの少なくとも何れか１つを測定する、態様［１］～［４］の何れか一項に記載のアミノ酸定量方法。
［６］工程（Ｉ）で生じた反応産生物のモル数が反応液中に含まれるｔＲＮＡ及び／又はアミノ酸のモル数より多いことを特徴とする、態様［１］～［５］のいずれか一項に記載のアミノ酸定量方法。
［７］態様［１］～［６］に記載のアミノ酸定量法を実施するためのアミノ酸定量用キットであって、ＡＴＰ、アミノ酸再生試薬、並びに、該アミノ酸に対応するＡＡＲＳ及びｔＲＮＡを含む、アミノ酸定量用キット。
【発明の効果】
【0022】
本発明に係るアミノ酸定量方法に於いては、試料中のアミノ酸に対応するＡＡＲＳ及びｔＲＮＡと反応させて、ＡＡＲＳとｔＲＮＡから成る複合体（ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体）を形成させ、二価陽イオンの存在下、該ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体、該アミノ酸及びＡＴＰを反応させて、アミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体を形成させる。次いで、一度形成させたアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体（該複合体から生成され得るＡＡＲＳ及びアミノアシルｔＲＮＡも含む）とアミノ酸再生試薬（ヌクレオチド又はアルカリ性化合物）を反応させて、ＡＡ、並びに、ＡＡＲＳ、ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体及びｔＲＮＡからなる群から選択される少なくとも一種以上の化合物を遊離させ、それらをアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体の形成に繰り返し利用することによって、測定対象であるピロリン酸等の反応産生物を、反応液中に含まれるｔＲＮＡ及び／又はアミノ酸より多くのモル数まで産生させることができる。その結果、従来技術のような放射線ラベルをした測定対象アミノ酸は不必要となる。また、従来技術に比べてより簡便な手段でこれら反応産生物を測定する場合であっても、従来技術の多段階酵素反応を用いた蛍光法などによる高感度分析のアミノ酸定量法のアミノ酸定量範囲と同等の範囲での定量が可能であり、このような高感度分析は不必要となる。従って、本発明によって、グルタミン酸、グルタミン、及び、アルギニンを特異的且つ簡便、高感度に定量する方法及びその定量用キットを提供することが可能となる。
【図面の簡単な説明】
【0023】
【図1】本発明方法に含まれると考えられる反応工程を示す図である。
【図2】ｔＲＮＡを用いた各種ＡＡＲＳ反応により生じるピロリン酸産生量を示す図である。
【図3】ｔＲＮＡ混合品を用いた各種ＡＡＲＳ反応により生じるピロリン酸産生量を示す図である。
【図4】ＡｒｇＲＳにおけるｔＲＮＡの各種濃度によるピロリン酸産生量を示す図である。
【図5】ＧｌｕＲＳにおけるｔＲＮＡの各種濃度によるピロリン酸産生量を示す図である。
【図6】ＧｌｎＲＳにおけるｔＲＮＡの各種濃度によるピロリン酸産生量を示す図である。
【図7】ＡｒｇＲＳにおけるｔＲＮＡ混合品の各種濃度によるピロリン酸産生量を示す図である。
【図8】ＧｌｎＲＳにおけるｔＲＮＡ混合品の各種濃度によるピロリン酸産生量を示す図である。
【図9】本発明と公知文献（非特許文献６、特許文献２）のＡＡＲＳ反応におけるピロリン酸産生量を示す図である。
【図10】各種ＡＴＰ濃度により生じるピロリン酸産生量を示す図である。
【図11】各種二価イオン濃度により生じるピロリン酸産生量を示す図である。
【図12】各反応温度によるピロリン酸産生量を示す図である。
【図13】各ｐＨによるピロリン酸産生量を示す図である。
【図14】モリブデンブルー法によるピロリン酸測定におけるアミノ酸検量線を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【0024】
本発明方法の反応１では、試料中のアミノ酸（ＡＡ）に対応するＡＡＲＳ及び該ＡＡＲＳに対応する転移ＲＮＡ（ｔＲＮＡ）を反応させて、ＡＡＲＳとｔＲＮＡから成るＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体を形成させる。本発明方法に使用するＡＡＲＳは、グルタミン酸に特異的に作用するグルタミルｔＲＮＡ合成酵素（ＧｌｕＲＳ）、グルタミンに特異的に作用するグルタミニルｔＲＮＡ合成酵素（ＧｌｎＲＳ）、アルギニンに特異的に作用するアルギニルｔＲＮＡ合成酵素（ＡｒｇＲＳ）などアミノ酸に対し特異的に作用するＡＡＲＳを用いる。また、本発明に使用するＡＡＲＳは、ウシ、ラット、マウスなどの動物由来、Ｌｕｐｉｎ Ｓｅｅｄ、Ｐｈａｓｅｏｌｕｓ ａｕｒｕｓなどの植物由来、Ｅｓｃｈｅｒｃｈｉａ属、Ｔｈｅｒｍｕｓ属、Ｔｈｅｒｍｏｔｏｇａ属、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ属などの微生物由来など、生物由来のＡＡＲＳであれば、いずれのＡＡＲＳでも良く、特に取扱及び生産性の面の観点から、微生物由来のＡＡＲＳが好ましい。また、組換え型ＡＡＲＳでも良く、合成したＡＡＲＳでも良い。可溶性酵素が好ましいが、不溶性酵素に界面活性剤を組み合わせても良く、可溶化タンパクとの融合又は膜結合部分の削除等により不溶性酵素を可溶化させた酵素でも良い。ＡＡＲＳの公知のアミノ酸配列を利用でき、組換え型のＡＡＲＳは、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％又は９５％以上の同一性を有する配列を有し、ＡＡＲＳ活性を有するタンパク質を使用しても良い。
【0025】
本発明に使用するＡＡＲＳとしては、当業者に公知の任意の方法・手段、例えば、ＡＡＲＳを含む対象物に加水し、粉砕機、超音波破砕機などで粉砕後、破砕した破砕物を遠心分離、濾過などで固形物を取り除いた抽出物、さらに当該抽出物をカラムクロマトグラフィーなどにより精製、単離したＡＡＲＳなどを用いることができる。即ち、本発明の主な技術的特徴は、ＡＡＲＳを用いるアミノ酸定量方法に於いて、形成されたアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体中から、ＡＡ、並びに、ＡＡＲＳ、ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体及びｔＲＮＡからなる群から選択される少なくとも一種以上の化合物を遊離させて、それらをアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体の形成に繰り返し利用することによって、測定対象であるピロリン酸等の反応産生物を、反応液中に含まれるｔＲＮＡ及び／又はアミノ酸より多くのモル数まで産生させることであり、ＡＡＲＳの調製方法は何ら限定されるものではない。
【0026】
当該反応に使用される反応液中のＡＡＲＳ濃度は、試料の種類、推定される試料中のアミノ酸濃度、ＡＴＰ濃度、及び、反応時間・温度等の各種反応条件に応じて、当業者が適宜決められる。工程（Ｉ）の反応２における逆反応を出来るだけ抑えるためには、試料中のアミノ酸濃度が低濃度と予想される場合は、ＡＡＲＳ濃度を高濃度とすることが好ましく、逆に試料中のアミノ酸濃度が高濃度と予想される場合は、ＡＡＲＳ濃度は低濃度で良い。また、ＡＡＲＳ濃度を高濃度することによって反応を短時間に完了させることが出来、逆に反応時間が長時間でも良い場合は、ＡＡＲＳ濃度は低濃度で良い。例えば、Ｅｓｃｈｅｒｃｈｉａ属、Ｔｈｅｒｍｕｓ属、Ｔｈｅｒｍｏｔｏｇａ属などの微生物由来のＡＡＲＳの濃度は、０．１μＭ以上、より好ましくは０．２５μＭ以上、さらに好ましくは１．０μＭ以上、特に好ましくは３．０μＭ以上、最も好ましくは５.０μＭ以上とすることができる。いずれにしても、本発明方法では、ＡＡＲＳが繰り返し使用されるので、予想される試料中のアミノ酸量に対して、過剰量のＡＡＲＳを添加する必要はない、という利点を有する。従って、ＡＡＲＳ濃度の上限は、経済性なども考慮して当業者が適宜設定することが出来る。
【0027】
また、本発明方法の反応１ではＡＡＲＳと共にｔＲＮＡを用いる。本発明に使用するｔＲＮＡは、各アミノ酸に対し特異的に作用するＡＡＲＳに対応するｔＲＮＡを用いる。例えば、グルタミン酸に特異的に作用するＧｌｕＲＳに対応するｔＲＮＡ、グルタミンに特異的に作用するＧｌｎＲＳに対応するｔＲＮＡ、アルギニンに特異的に作用するＡｒｇＲＳに対応するｔＲＮＡが挙げられる。また、本発明に使用するｔＲＮＡは、ウシ、ラット、マウスなどの動物由来、Ｌｕｐｉｎ Ｓｅｅｄ、Ｐｈａｓｅｏｌｕｓ ａｕｒｕｓなどの植物由来、Ｅｓｃｈｅｒｃｈｉａ属、Ｔｈｅｒｍｕｓ属、Ｔｈｅｒｍｏｔｏｇａ属、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ属などの微生物由来など、生物由来のｔＲＮＡであれば、いずれのｔＲＮＡでも良く、特に取扱及び生産性の面の観点から、微生物由来のｔＲＮＡが好ましい。また、合成したｔＲＮＡでも良い。ｔＲＮＡの公知の塩基配列を利用でき、合成したｔＲＮＡは、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％又は９５％以上の同一性を有する配列を有し、ＡＡＲＳに結合、ＡＡＲＳ反応を引き起こすｔＲＮＡであれば良い。
【0028】
本発明に使用するｔＲＮＡとしては、当業者に公知の任意の方法・手段、例えば、ｔＲＮＡを含む対象物を抽出用緩衝液とフェノールとの混合液に混ぜ、超音波ホモジナイザーなどで粉砕後、破砕した破砕物を遠心分離、濾過などで取得したｔＲＮＡ、さらに当該ｔＲＮＡをカラムクロマトグラフィーなどにより精製、単離したｔＲＮＡなどを用いることができる。即ち、本発明の主な技術的特徴は、ＡＡＲＳを用いるアミノ酸定量方法に於いて、形成されたアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体中から、ＡＡ、並びに、ＡＡＲＳ、ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体及びｔＲＮＡからなる群から選択される少なくとも一種以上の化合物を遊離させて、それらをアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体の形成に繰り返し利用することによって、測定対象であるピロリン酸等の反応産生物を、反応液中に含まれるｔＲＮＡ及び／又はアミノ酸より多くのモル数まで産生させることであり、ｔＲＮＡの調製方法は何ら限定されるものではない。更に、以下の実施例に於いて「ｔＲＮＡ混合物」と示されるような、各アミノ酸に対応する複数の種類のｔＲＮＡが任意の割合で混在する混合物を本発明の方法に於ける「ｔＲＮＡ」として使用することも可能である。
【0029】
当該反応に使用される反応液中のｔＲＮＡの濃度は、試料の種類、予想される試料中のアミノ酸濃度、ＡＡＲＳ濃度、ヌクレオチド濃度、及び、反応時間・温度等の各種反応条件に応じて、当業者が適宜決められる。例えばｔＲＮＡ濃度は、０．０１μＭ以上、より好ましくは０．１μＭ以上、さらに好ましくは０.５μＭ以上、特に好ましくは１.０μＭ以上、最も好ましくは２.０μＭ以上とすることができる。又、ｔＲＮＡ混合品の場合には、ｔＲＮＡ全体の濃度は、１μＭ以上、より好ましくは５μＭ以上、さらに好ましくは１０μＭ以上、特に好ましくは５０μＭ以上、最も好ましくは１００μＭ以上とすることができる。尚、ｔＲＮＡの濃度は、平均分子量２５，０００により算出した。ｔＲＮＡ濃度の上限は、経済性なども考慮して当業者が適宜設定することが出来る。また、反応条件に依存するが、測定対象であるピロリン酸等の反応産生物を試料中に含まれるアミノ酸より多くのモル数まで産生させるために、ｔＲＮＡのモル数がＡＡＲＳのモル数の０.２５倍以上、より好ましくは、０.５倍以上、更に好ましくは、１倍以上であることが望ましい。更に、反応条件に依存するが、測定対象であるピロリン酸等の反応産生物を試料中に含まれるｔＲＮＡより多くのモル数まで産生させるために、ｔＲＮＡのモル数がＡＡＲＳのモル数の０.１倍以上、より好ましくは、０.２５倍以上、更に好ましくは、０.５倍以上であることが望ましい。
【0030】
本発明方法の反応２では、二価陽イオンの存在下、試料中のアミノ酸（ＡＡ）、該ＡＡに対応するＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体、及び、アデノシン三リン酸（ＡＴＰ）を反応させて、アミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体を形成させる。
本発明に使用する試料に特に制限はなく、例えば、血液、生鮮食品、加工食品及び飲料などがあげられる。各試料中のアミノ酸濃度は、各アミノ酸により異なる。例えば、血液中のグルタミン酸は１１～４４ｎｍｏｌ／ｍＬ、グルタミンは４８８～７３３ｎｍｏｌ／ｍＬである。生鮮食品中の遊離アミノ酸含量は、例えば、ニンニクでは、アルギニンは１３６ｍｇ／１００ｇなどである。トマトでは、グルタミンは９４ｍｇ／１００ｇである。乾燥シイタケでは、グルタミン酸は３８６ｍｇ／１００ｇである。加工食品や飲料中の遊離アミノ酸含量は、例えば、醤油では、グルタミン酸は７８２ｍｇ／１００ｇである。煎茶では、アルギニンは３１４ｍｇ／１００ｇ、グルタミン酸は２５８ｍｇ／１００ｇである。これら各試料中の予想されるアミノ酸濃度によって、適宜、希釈調製し、本発明の試料として使用できる。
本発明に使用する試料に特に制限はなく、例えば、血液、生鮮食品、加工食品及び飲料などがあげられる。各試料中のアミノ酸濃度は、各アミノ酸により異なる。例えば、血液中のグルタミン酸は１１～４４ｎｍｏｌ／ｍＬ、グルタミンは４８８～７３３ｎｍｏｌ／ｍＬである。生鮮食品中の遊離アミノ酸含量は、例えば、ニンニクでは、アルギニンは１３６ｍｇ／１００ｇなどである。トマトでは、グルタミンは９４ｍｇ／１００ｇである。乾燥シイタケでは、グルタミン酸は３８６ｍｇ／１００ｇである。加工食品や飲料中の遊離アミノ酸含量は、例えば、醤油では、グルタミン酸は７８２ｍｇ／１００ｇである。煎茶では、アルギニンは３１４ｍｇ／１００ｇ、グルタミン酸は２５８ｍｇ／１００ｇである。これら各試料中の予想されるアミノ酸濃度によって、適宜、希釈調製し、本発明の試料として使用できる。
【0031】
本発明に使用するＡＴＰは、ナトリウム塩、リチウム塩などが使用できる。当該反応に使用される反応液中のＡＴＰの濃度は、試料の種類、予想される試料中のアミノ酸濃度、ＡＡＲＳ濃度、ヌクレオチド濃度、及び、反応時間・温度等の各種反応条件に応じて、当業者が適宜決められるが、予想される試料中のアミノ酸濃度に対して過剰となるように添加するのが好ましい。例えば試料が血液の場合、ＡＴＰ濃度は、０.０１ｍＭ以上、より好ましくは０.１ｍＭ以上、さらに好ましくは１.０ｍＭ以上、特に好ましくは５.０ｍＭ以上、最も好ましくは１０.０ｍＭ以上とすることができる。ＡＴＰ濃度の上限は、経済性なども考慮して当業者が適宜設定することが出来る。
【0032】
また、本発明に使用する二価イオンは、マグネシウム、マンガン、コバルト、カルシウムなどが使用できる。二価イオンは、各ＡＡＲＳにより要求性が異なるため、使用するＡＡＲＳに適した二価イオンを適宜使用すれば良いが、ＡＡＲＳ共通に要求性のあるマグネシウムやマンガンの使用がより好ましい。さらには二価イオンと同様な作用をするスペルミン、スペルミジン、プトレッシンなどのポリアミンも使用できる。当該反応に使用される反応液中の二価イオンの濃度は、適宜決められるが、ＡＴＰ濃度に対して同等以上に添加するのが好ましい。例えば、Ｅｓｃｈｅｒｃｈｉａ属、Ｔｈｅｒｍｕｓ属、Ｔｈｅｒｍｏｔｏｇａ属などの微生物由来のＡＡＲＳにおけるＡＴＰ：二価陽イオンの比率は、少なくとも１：１、より好ましくは少なくとも１：３、さらに好ましくは少なくとも１：５、特に好ましくは少なくとも１：７、最も好ましくは少なくとも１：１０とすることができる。
【0033】
続いて、本発明方法の反応３では、反応２及び／又は反応４で形成させたアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体、並びに、反応条件等によって該複合体から生成され得るアミノアシルｔＲＮＡ、に対しアミノ酸再生試薬を作用させ、該複合体を分解し該複合体からＡＡ、並びに、ＡＡＲＳ、ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体及びｔＲＮＡからなる群から選択される少なくとも一種以上の化合物を遊離させる。当該反応のアミノ酸再生試薬としては、例えば、ＡＴＰ、アデノシン二リン酸（ＡＤＰ）、アデノシン一リン酸（ＡＭＰ）及びグアノシン三リン酸（ＧＴＰ）などのヌクレオチドや、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、炭酸ナトリウム及び緩衝剤などの水酸化物イオン（アルカリ性水溶液）を発生するアルカリ性化合物を使用できる。また、アルカリ性化合物は、反応の場（反応系）をｐＨ７以上にできれば良い。例えば、Ｅｓｃｈｅｒｃｈｉａ属、Ｔｈｅｒｍｕｓ属及びＴｈｅｒｍｏｔｏｇａ属のＡＡＲＳの場合では、好ましくはｐＨ７.０以上、より好ましくはｐＨ７.５以上、さらに好ましくは、ｐＨ８.０以上であることが好ましい。尚、反応ｐＨは、当業者に公知の任意の緩衝剤などを使用して調整することが出来る。当該反応に使用される反応液中のアミノ酸再生試薬の濃度は、試料の種類、予想される試料中のアミノ酸濃度、ＡＡＲＳ濃度、ＡＴＰ濃度、ｔＲＮＡ濃度及び、反応時間・温度等の各種反応条件に応じて、当業者が適宜決められるが、反応２で使用するＡＴＰと当該反応に使用するアミノ酸再生試薬の総量は試料中のアミノ酸濃度に対して過剰に添加するのが好ましい。例えば、試料が血液の場合、ヌクレオチド濃度は、０.０１ｍＭ以上、より好ましくは０.１ｍＭ以上、さらに好ましくは１.０ｍＭ以上、特に好ましくは５.０ｍＭ以上、最も好ましくは１０.０ｍＭ以上とすることができる。従って、本発明方法では、ＡＡＲＳを再び反応可能な状態とさせるために、特許文献２に記載されているようなアミン類等のアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ複合体分解試薬を添加する必要がなく、更に、遊離したアミノ酸が該試薬と反応することがないので、遊離したアミノ酸をアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体の形成に再び利用することができる。
【0034】
本発明方法の反応４では、反応３で遊離したＡＡ、並びに、ＡＡＲＳ、ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体及びｔＲＮＡからなる群から選択される少なくとも一種以上の化合物を反応１及び/又反応２において再び使用することによってアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体反応を形成させる。更に、本発明方法の工程（Ｉ）において、当業者に公知の任意の方法によって、反応２又は４で生じたピロリン酸及び反応系中のＡＭＰにホスホエノールピルビン酸とピルビン酸ジキナーゼとを反応させることによって産生されるＡＴＰを、アミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体形成及び該複合体からのＡＡ、並びに、ＡＡＲＳ、ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体及びｔＲＮＡからなる群から選択される少なくとも一種以上の化合物の遊離に再利用すること、及び/又は、反応３でヌクレオチドから生成されるＡｐ４Ａに対しＡｐ４Ａピロホスホヒドラーゼを作用させることによって産生されるＡＤＰを、反応３におけるヌクレオチドとして再利用することもできる。
【0035】
その結果、前述のＡＴＰなどのヌクレオチド及び該アミノ酸に対応するＡＡＲＳの組成等の反応条件において、工程（Ｉ）に於ける反応の結果、ピロリン酸及び/又は水素イオン等の夫々の反応産生物の各々について、反応液中に含まれているｔＲＮＡや測定対象のアミノ酸のモル数より多いモル数の分子が産生され得る。その結果、本発明方法では、従来技術より低濃度である１μＭ程度の極めて低いアミノ酸濃度から定量可能となる。従って、この点は従来技術と比較して本発明の顕著な効果といえる。
【0036】
しかしながら、当該反応条件下で産生されるピロリン酸等の反応産生物が、反応液中のｔＲＮＡやアミノ酸のモル数以下の量であっても、該反応産生物に基づきアミノ酸の定量が可能であれば、ピロリン酸等の反応産生物が当該アミノ酸のモル数以上に産生される必要はない。従って、本発明の工程（Ｉ）に於いて産生されるピロリン酸や水素イオンの量は、工程（ＩＩ）に於ける該反応産生物の適当な測定方法によってアミノ酸の定量が可能となる限り、特に限定されない。従って、本発明方法の（工程Ｉ－５）に於ける、反応３（工程Ｉ－３）及び反応４（工程Ｉ－４）の繰り返しの回数に特に制限はない。
【0037】
本発明方法の工程（Ｉ）における反応温度は、各反応が生じるような任意の温度で良い。例えば、Ｅｓｃｈｅｒｃｈｉａ属のＡＡＲＳの場合、１０～６０℃、好ましくは、４０～５０℃Ｔｈｅｒｍｕｓ属及びＴｈｅｒｍｏｔｏｇａ属のＡＡＲＳの場合では、１０～９５℃、好ましくは、４０～７０℃が適している。また、当該反応時間も試料中のアミノ酸とＡＡＲＳ反応が生じるような任意の時間で良いが、好ましくは１～９０分程度、より好ましくは５～７０分程度、さらに好ましくは、１０～６０分程度であることが望ましい。
【0038】
本発明方法の工程（Ｉ）に含まれる各工程で使用する試薬・酵素等の各反応成分は、ＡＡＲＳ反応が生じる添加方法である限り、当業者に公知の任意の手段・手順等で反応系に添加することができる。例えば、各成分を反応開始前に一度に反応系に予め添加するか、又は、ＡＡＲＳ又はアミノ酸を最後に添加し反応させても良い。
【0039】
本発明方法の工程（ＩＩ）では、工程（Ｉ）で生じたピロリン酸及び水素イオン等の各反応産生物の夫々の量を測定し、該反応産生物の測定量に基づきアミノ酸の量を決定する。工程（ＩＩ）は、測定方法等に応じて、工程（Ｉ）に於ける試料中のアミノ酸とＡＡＲＳとの反応を当業者に公知の任意の方法・手段で停止させた後、あるいは、工程（Ｉ）に於ける反応が進行中の任意の段階で適宜、実施することが出来る。
【0040】
本発明の工程（Ｉ）で生じたピロリン酸の量の測定には、当業者に公知の任意の方法・手段、例えば、モリブデン酸とピロリン酸を反応させ産生した青色の錯体の吸光度を測定するモリブデンブルー法、ヒポキサンチン－グアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ、キサンチンオキシダーゼ又はキサンチンデヒドロゲナーゼを組みわせる方法などが使用できる。また、本発明の工程（Ｉ）で生じたピロリン酸を無機ピロホスファターゼなどで２分子のリン酸とし、そのリン酸を測定することで、より高感度の測定ができる。例えば、ルミノールと無機ピロホスファターゼ、ピルビン酸オキシダーゼ及びペルオキシダーゼを組み合わせ産生物の発光を測定する方法などのピロリン酸を測定できる酵素法などが使用できる。さらに酵素反応などで酸化還元反応を起こし、その酸化還元反応に由来する電流値を検出する多電極電位計測計により電位変化を測定する測定方法などを使用することができる。また、当該反応で産生された水素イオンの測定には、水素イオンを検出するガラス電極やイオン感応性電界効果トランジスタにより電位変化を測定する測定方法などを使用することができる。当該反応で産生されたアデノシン一リン酸（ＡＭＰ）の測定には、アデノシン一リン酸を検出する発光を利用したＡＭＰセンサで測定するなどを使用することができる。本発明の工程（Ｉ）で生じたピロリン酸、水素イオン、ＡＭＰなどは、反応溶液から分離し、測定することができる。反応溶液からのピロリン酸、水素イオン、ＡＭＰなどの分離方法としては、測定に影響の無い方法であれば特に限定されないが、例えば、酸処理による除タンパク質、ペーパークロマトグラフィー分離、マイクロ流体デバイスでの分離などが挙げられる。本発明の主な技術的特徴は、ＡＡＲＳを用いるアミノ酸定量方法に於いて、形成されたアミノアシルＡＭＰ-ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体中からＡＡ、並びに、ＡＡＲＳ、ＡＡＲＳ-ｔＲＮＡ複合体及びｔＲＮＡからなる群から選択される少なくとも一種以上の化合物を遊離させて、これら化合物を、再度、該複合体の形成に繰り返し利用することにより、測定対象であるピロリン酸等の反応産生物を、反応液中に含まれるｔＲＮＡ及び／又はアミノ酸より多くのモル数まで産生させることであり、反応産生物の量の測定方法は何ら限定されるものではない。
【0041】
本発明は、上記の本発明方法を実施するための、試料中のアミノ酸定量に必要な前述の各成分を含む、アミノ酸定量用キットを提供する。当該キットは、安定化剤又は緩衝剤等の当業者に公知の他の任意成分を適宜含有させ、前記酵素等試薬成分の安定性を高めても良い。測定に影響の無い成分であれば特に限定されないが、例えば、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）、卵白アルブミン、糖類、糖アルコール類、カルボキシル基含有化合物、酸化防止剤、界面活性剤、又は酵素と作用性のないアミノ酸類等を例示できる。また、当該キットの一例として前述のピロリン酸や水素イオンを測定するためのキットを挙げることが出来る。
以下、実施例によって本発明を具体的に説明するが、本発明の技術的範囲は以下の実施例に
よって限定されるものではない。
以下、実施例によって本発明を具体的に説明するが、本発明の技術的範囲は以下の実施例に
よって限定されるものではない。
【実施例1】
【0042】
（大腸菌由来のＡＡＲＳの調製）
大腸菌Ｋ１２株由来の変異株（ＮＢＲＣ３９９２）のＡＡＲＳ配列をもつプラスミド（ｐＥＴ２８ｂ）を大腸菌ＢＬ２１（ＤＥ３）ｐＬｙｓ株に遺伝子導入し、発現株として用いた。各発現株について、選択マーカーとしてカナマイシン、クロラムフェニコールを含むＬＢ培地で３７℃培養し、ＯＤ６００が約０．６に到達後、ＩＰＴＧを終濃度１ｍＭとなるように添加し、ＩＰＴＧを添加して２５℃で一晩誘導培養を行った。培養終了後、集菌を行い、得られた菌体を超音波破砕し、無細胞抽出液を調製した。さらに遠心分離を行い、得られた上清の一部を用いて電気泳動法により目的酵素の発現を確認した。次いで残りの上清をＨｉｓタグカラム（商品名：ＴＡＬＯＮ ｓｕｐｅｒｆｌｏｗ、ＧＥヘルスケア製）により夾雑タンパクを除去することにより、ＡｒｇＲＳ（配列番号１）、ＧｌｕＲＳ（配列番号２）、ＧｌｎＲＳ（配列番号３）を得た。
大腸菌Ｋ１２株由来の変異株（ＮＢＲＣ３９９２）のＡＡＲＳ配列をもつプラスミド（ｐＥＴ２８ｂ）を大腸菌ＢＬ２１（ＤＥ３）ｐＬｙｓ株に遺伝子導入し、発現株として用いた。各発現株について、選択マーカーとしてカナマイシン、クロラムフェニコールを含むＬＢ培地で３７℃培養し、ＯＤ６００が約０．６に到達後、ＩＰＴＧを終濃度１ｍＭとなるように添加し、ＩＰＴＧを添加して２５℃で一晩誘導培養を行った。培養終了後、集菌を行い、得られた菌体を超音波破砕し、無細胞抽出液を調製した。さらに遠心分離を行い、得られた上清の一部を用いて電気泳動法により目的酵素の発現を確認した。次いで残りの上清をＨｉｓタグカラム（商品名：ＴＡＬＯＮ ｓｕｐｅｒｆｌｏｗ、ＧＥヘルスケア製）により夾雑タンパクを除去することにより、ＡｒｇＲＳ（配列番号１）、ＧｌｕＲＳ（配列番号２）、ＧｌｎＲＳ（配列番号３）を得た。
【実施例2】
【0043】
（大腸菌由来のｔＲＮＡの調製）
大腸菌Ｋ１２株由来のｔＲＮＡ遺伝子配列をコードするオリゴヌクレオチドから、Ｉｎ ｖｉｔｒｏでｔＲＮＡを転写した。電気泳動法により、目的ｔＲＮＡの転写を確認した後、ゲルろ過カラムを用いて、未反応ＮＴＰ、塩などを除去した。次いで、イオン交換体カラムを用いて、目的ｔＲＮＡ以外の核酸断片を除去することにより、アルギニン、グルタミン酸及びグルタミンの各アミノ酸に夫々対応するｔＲＮＡ（配列番号４～６）を調製した。
大腸菌Ｋ１２株由来のｔＲＮＡ遺伝子配列をコードするオリゴヌクレオチドから、Ｉｎ ｖｉｔｒｏでｔＲＮＡを転写した。電気泳動法により、目的ｔＲＮＡの転写を確認した後、ゲルろ過カラムを用いて、未反応ＮＴＰ、塩などを除去した。次いで、イオン交換体カラムを用いて、目的ｔＲＮＡ以外の核酸断片を除去することにより、アルギニン、グルタミン酸及びグルタミンの各アミノ酸に夫々対応するｔＲＮＡ（配列番号４～６）を調製した。
【実施例3】
【0044】
（大腸菌由来のｔＲＮＡ混合品の調製）
大腸菌由来ｔＲＮＡ数十種類の混合品（商品名：ｔＲＮＡ，ｆｒｏｍ Ｅ．ｃｏｌｉ ＭＲＥ６００，１００ｍｇ、Ｒｏｃｈｅ製）をＮｕｃｌｅａｓｅフリー水に溶解させることにより、ｔＲＮＡ混合品を調製した。
大腸菌由来ｔＲＮＡ数十種類の混合品（商品名：ｔＲＮＡ，ｆｒｏｍ Ｅ．ｃｏｌｉ ＭＲＥ６００，１００ｍｇ、Ｒｏｃｈｅ製）をＮｕｃｌｅａｓｅフリー水に溶解させることにより、ｔＲＮＡ混合品を調製した。
【実施例4】
【0045】
（ｔＲＮＡを用いた各種ＡＡＲＳ反応により生じるピロリン酸の産生量：本発明方法の工程（Ｉ））
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１０ｍＭ ＡＴＰ、１００ｍＭ ＭｇＣｌ２、５０μＭ Ｌ-グルタミン酸、２．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び１８μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液を１５０μＬ調製し、４０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品１（本発明品）を調製した。
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１０ｍＭ ＡＴＰ、１００ｍＭ ＭｇＣｌ２、５０μＭ Ｌ-グルタミン酸、２．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び１８μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液を１５０μＬ調製し、４０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品１（本発明品）を調製した。
【実施例5】
【0046】
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２．５ｍＭ ＡＴＰ、１２．５ｍＭ ＭｎＣｌ２、５０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び１０μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液を１５０μＬ調製し、５０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品２（本発明品）を調製した。
【実施例6】
【0047】
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、３ｍＭ ＡＴＰ、３０ｍＭ ＭｇＣｌ２、５０μＭ Ｌ-グルタミン、２.０μＭ ＧｌｎＲＳ、及び８.２μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液を１５０μＬ調製し、４０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品３（本発明品）を調製した。
【実施例7】
【0048】
（モリブデンブルー法によるピロリン酸の測定：本発明方法の工程（ＩＩ））
実施例４、５、６で調製した実施品１～３の反応溶液１５０μＬに１Ｍメルカプトエタノール１５μＬ、発色液（２．５％モリブデン酸アンモニウム／５Ｎ硫酸）６０μＬを混合し、室温で２０分間静置した後、５８０ｎｍの吸光度を測定した。なお、基質アミノ酸の代わりに水を添加したサンプルの吸光値を、ブランクとして各サンプルの吸光値から差し引いた値から、反応溶液中のピロリン酸量を求めた。その結果、図２に示す通り、ＧｌｕＲＳ、ＡｒｇＲＳ及びＧｌｎＲＳにおいて単に、反応液中のｔＲＮＡ分子又は/及び各基質アミノ酸が一回きり酵素反応に使用された（再利用されない）場合に産生されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。
実施例４、５、６で調製した実施品１～３の反応溶液１５０μＬに１Ｍメルカプトエタノール１５μＬ、発色液（２．５％モリブデン酸アンモニウム／５Ｎ硫酸）６０μＬを混合し、室温で２０分間静置した後、５８０ｎｍの吸光度を測定した。なお、基質アミノ酸の代わりに水を添加したサンプルの吸光値を、ブランクとして各サンプルの吸光値から差し引いた値から、反応溶液中のピロリン酸量を求めた。その結果、図２に示す通り、ＧｌｕＲＳ、ＡｒｇＲＳ及びＧｌｎＲＳにおいて単に、反応液中のｔＲＮＡ分子又は/及び各基質アミノ酸が一回きり酵素反応に使用された（再利用されない）場合に産生されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。
【実施例8】
【0049】
（ｔＲＮＡ混合品を用いた各種ＡＡＲＳ反応により生じるピロリン酸の産生量：本発明方法の工程（Ｉ））
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、２５ｍＭ ＡＴＰ、２５０ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-グルタミン酸、５．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び６００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液を１５０μＬ調製し、４０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品４（本発明品）を調製した。
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、２５ｍＭ ＡＴＰ、２５０ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-グルタミン酸、５．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び６００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液を１５０μＬ調製し、４０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品４（本発明品）を調製した。
【実施例9】
【0050】
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２．５ｍＭ ＡＴＰ、１２５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液を１５０μＬ調製し、５０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品５（本発明品）を調製した。
【実施例10】
【0051】
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、３ｍＭ ＡＴＰ、３０ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-グルタミン、２.０μＭ ＧｌｎＲＳ、及び３２０μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液を１５０μＬ調製し、４０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品６（本発明品）を調製した。
【実施例11】
【0052】
（モリブデンブルー法によるピロリン酸の測定：本発明方法の工程（ＩＩ））
実施例８、９、１０で調製した実施品４～６のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図３に示す通り、ＧｌｕＲＳ、ＡｒｇＲＳ及びＧｌｎＲＳにおいて単に、反応液中の各基質アミノ酸が一回きり酵素反応に使用された（再利用されない）場合に産生されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。
実施例８、９、１０で調製した実施品４～６のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図３に示す通り、ＧｌｕＲＳ、ＡｒｇＲＳ及びＧｌｎＲＳにおいて単に、反応液中の各基質アミノ酸が一回きり酵素反応に使用された（再利用されない）場合に産生されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。
【実施例12】
【0053】
（各種ｔＲＮＡ濃度によるピロリン酸の産生量：本発明方法の工程（Ｉ））
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２.５ｍＭ ＭｎＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、及び２．５μＭ ＡｒｇＲＳを含む反応溶液に、夫々、０μＭ ｔＲＮＡ、０.２５μＭ ｔＲＮＡ、０．６３μＭ ｔＲＮＡ、１．２５μＭ ｔＲＮＡ、１．８８μＭ ｔＲＮＡ、２．５μＭ ｔＲＮＡ、又は、５．０μＭ ｔＲＮＡを添加した各反応溶液を１５０μＬ調製し、５０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品（本発明品）７、８、９、１０、１１、１２、及び１３を調製した。
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２.５ｍＭ ＭｎＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、及び２．５μＭ ＡｒｇＲＳを含む反応溶液に、夫々、０μＭ ｔＲＮＡ、０.２５μＭ ｔＲＮＡ、０．６３μＭ ｔＲＮＡ、１．２５μＭ ｔＲＮＡ、１．８８μＭ ｔＲＮＡ、２．５μＭ ｔＲＮＡ、又は、５．０μＭ ｔＲＮＡを添加した各反応溶液を１５０μＬ調製し、５０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品（本発明品）７、８、９、１０、１１、１２、及び１３を調製した。
【実施例13】
【0054】
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１０ｍＭ ＡＴＰ、１００ｍＭ ＭｇＣｌ２、５０μＭ Ｌ-グルタミン酸、及び２．０μＭ ＧｌｕＲＳを含む反応溶液に、夫々、０μＭ ｔＲＮＡ、６μＭ ｔＲＮＡ、１２μＭ ｔＲＮＡ、又は、１８μＭ ｔＲＮＡを添加した各反応溶液を１５０μＬ調製し、４０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品（本発明品）１４、１５、１６、及び１７を調製した。
【実施例14】
【0055】
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、３ｍＭ ＡＴＰ、３０ｍＭ ＭｇＣｌ２、５０μＭ Ｌ-グルタミン、及び２．０μＭ ＧｌｎＲＳを含む反応溶液に、夫々、０μＭ ｔＲＮＡ、４μＭ ｔＲＮＡ、８μＭ ｔＲＮＡ、又は、１６μＭ ｔＲＮＡを添加した各反応溶液を１５０μＬ調製し、４０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品（本発明品）１８、１９、２０、及び２１を調製した。
【実施例15】
【0056】
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２５ｍＭ ＭgＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、及び２．５μＭ ＡｒｇＲＳを含む反応溶液に、夫々、０μＭ ｔＲＮＡ混合品、１００μＭ ｔＲＮＡ混合品、２００μＭ ｔＲＮＡ混合品、又は、４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を添加した各反応溶液を１５０μＬ調製し、５０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品（本発明品）２２、２３、２４、及び２５を調製した。
【実施例16】
【0057】
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、３ｍＭ ＡＴＰ、３０ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-グルタミン、及び２．０μＭ ＧｌｎＲＳを含む反応溶液に、夫々、０μＭ ｔＲＮＡ混合品、１６０μＭ ｔＲＮＡ混合品、２４０μＭ ｔＲＮＡ混合品、又は、３２０μＭ ｔＲＮＡ混合品を添加した各反応溶液を１５０μＬ調製し、４０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品（本発明品）２６、２７、２８、及び２９を調製した。
【実施例17】
【0058】
（モリブデンブルー法によるピロリン酸の測定：本発明方法の工程（ＩＩ））
実施例１２、１３、１４、１５、１６で調製した実施品７～２９のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図４、５、６、７、８に示す通り、ＡｒｇＲＳ、ＧｌｕＲＳ及びＧｌｎＲＳにおいてｔＲＮＡ濃度の増加と共にピロリン酸の増加が認められた。ｔＲＮＡが無添加の場合、ＡｒｇＲＳ、ＧｌｕＲＳ及びＧｌｎＲＳのいずれにおいてもピロリン酸の増加が認められなかったことから、これらのＡＡＲＳ反応には、ｔＲＮＡが必須であることが分かった。また、単に、反応液中のｔＲＮＡ又は/及び各基質アミノ酸の全てが酵素反応に一回きり使用された（再利用されない）場合に産生されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。
実施例１２、１３、１４、１５、１６で調製した実施品７～２９のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図４、５、６、７、８に示す通り、ＡｒｇＲＳ、ＧｌｕＲＳ及びＧｌｎＲＳにおいてｔＲＮＡ濃度の増加と共にピロリン酸の増加が認められた。ｔＲＮＡが無添加の場合、ＡｒｇＲＳ、ＧｌｕＲＳ及びＧｌｎＲＳのいずれにおいてもピロリン酸の増加が認められなかったことから、これらのＡＡＲＳ反応には、ｔＲＮＡが必須であることが分かった。また、単に、反応液中のｔＲＮＡ又は/及び各基質アミノ酸の全てが酵素反応に一回きり使用された（再利用されない）場合に産生されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。
【0059】
［比較例１］
（本発明と公知文献記載のＡＡＲＳ反応におけるピロリン酸の産生量の比較）
非特許文献６記載の反応に於いて、測定対象として放射線ラベルをしない通常のアミノ酸を使用したこと以外は、該文献に記載の条件に従い、１００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ７.４）、２ｍＭ ＡＴＰ、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、１５.４μＭ ＡｒｇＲＳ、及び２μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液を１５０μＬ調製し、３７℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、比較品１を調製した。
（本発明と公知文献記載のＡＡＲＳ反応におけるピロリン酸の産生量の比較）
非特許文献６記載の反応に於いて、測定対象として放射線ラベルをしない通常のアミノ酸を使用したこと以外は、該文献に記載の条件に従い、１００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ７.４）、２ｍＭ ＡＴＰ、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、１５.４μＭ ＡｒｇＲＳ、及び２μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液を１５０μＬ調製し、３７℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、比較品１を調製した。
【0060】
［比較例２］
特許文献２記載の反応条件に従い、２０ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８.０）、０.５ｍＭ ＡＴＰ、５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、１.０μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００ｍＭ ヒドロキシアミンを含む反応溶液を１５０μＬ調製し、５０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、比較品２を調製した。
特許文献２記載の反応条件に従い、２０ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８.０）、０.５ｍＭ ＡＴＰ、５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、１.０μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００ｍＭ ヒドロキシアミンを含む反応溶液を１５０μＬ調製し、５０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、比較品２を調製した。
【実施例18】
【0061】
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２.５ｍＭ ＭｎＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び１０μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液を１５０μＬ調製し、５０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品３０（本発明品）を調製した。
【実施例19】
【0062】
（モリブデンブルー法によるピロリン酸の測定：本発明方法の工程（ＩＩ））
比較例１、比較例２及び実施例１８で調製した比較品１、比較品２及び実施品３０のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図９に示す通り、本発明の方法では、添加したｔＲＮＡ及びアミノ酸の全てが一回きり反応に使用された（再利用されない）場合に産生されると推測されるピロリン酸量である理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。一方、比較品１の産生したピロリン酸は、ｔＲＮＡの理論値に近く、アミノ酸の理論値以下であった。また、比較品２では、ピロリン酸は、全く産生されなかった。
比較例１、比較例２及び実施例１８で調製した比較品１、比較品２及び実施品３０のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図９に示す通り、本発明の方法では、添加したｔＲＮＡ及びアミノ酸の全てが一回きり反応に使用された（再利用されない）場合に産生されると推測されるピロリン酸量である理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。一方、比較品１の産生したピロリン酸は、ｔＲＮＡの理論値に近く、アミノ酸の理論値以下であった。また、比較品２では、ピロリン酸は、全く産生されなかった。
【実施例20】
【0063】
（各種ＡＴＰ濃度によるピロリン酸の産生量：本発明方法の工程（Ｉ））
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１.２５ｍＭ ＡＴＰ、１.２５ｍＭ ＭｎＣｌ２、５０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び１０.０μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、６.２５ｍＭ ＡＴＰ、６.２５ｍＭ ＭｎＣｌ２、５０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び１０.０μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液、又は、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２.５ｍＭ ＭｎＣｌ２、５０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び１０.０μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液を１５０μＬ調製し、５０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品（本発明品）３１、３２、及び３３を調製した。
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１.２５ｍＭ ＡＴＰ、１.２５ｍＭ ＭｎＣｌ２、５０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び１０.０μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、６.２５ｍＭ ＡＴＰ、６.２５ｍＭ ＭｎＣｌ２、５０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び１０.０μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液、又は、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２.５ｍＭ ＭｎＣｌ２、５０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び１０.０μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液を１５０μＬ調製し、５０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品（本発明品）３１、３２、及び３３を調製した。
【実施例21】
【0064】
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１.２５ｍＭ ＡＴＰ、１２.５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-グルタミン酸、５．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び６００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、２．５ｍＭ ＡＴＰ、２５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-グルタミン酸、５．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び６００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、５ｍＭ ＡＴＰ、５０ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-グルタミン酸、５．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び６００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、又は、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１０ｍＭ ＡＴＰ、１００ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-グルタミン酸、５．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び６００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液を１５０μＬ調製し、４０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品（本発明品）３４、３５、３６、及び３７を調製した。
【実施例22】
【0065】
（モリブデンブルー法によるピロリン酸の測定：本発明方法の工程（ＩＩ））
実施例２０、２１で調製した実施品３１～３７のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図１０に示す通り、ＡｒｇＲＳ及びＧｌｕＲＳにおいてＡＴＰ濃度の増加と共にピロリン酸の増加が認められた。また、ｔＲＮＡ又は/及び各基質アミノ酸の全てが一回きり酵素反応に使用された（再利用されない）場合に産生されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。
実施例２０、２１で調製した実施品３１～３７のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図１０に示す通り、ＡｒｇＲＳ及びＧｌｕＲＳにおいてＡＴＰ濃度の増加と共にピロリン酸の増加が認められた。また、ｔＲＮＡ又は/及び各基質アミノ酸の全てが一回きり酵素反応に使用された（再利用されない）場合に産生されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。
【実施例23】
【0066】
（各種二価イオン濃度によるピロリン酸産生量：本発明方法の工程（Ｉ））
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２．５ｍＭ ＡＴＰ、１８．７５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２．５ｍＭ ＡＴＰ、３１．２５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２．５ｍＭ ＡＴＰ、６２．５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、又は、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２．５ｍＭ ＡＴＰ、９３．７５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液を１５０μＬ調製し、５０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品（本発明品）３８、３９、４０、及び４１を調製した。
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２．５ｍＭ ＡＴＰ、１８．７５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２．５ｍＭ ＡＴＰ、３１．２５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２．５ｍＭ ＡＴＰ、６２．５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、又は、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２．５ｍＭ ＡＴＰ、９３．７５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液を１５０μＬ調製し、５０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品（本発明品）３８、３９、４０、及び４１を調製した。
【実施例24】
【0067】
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、２５ｍＭ ＡＴＰ、３７．５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-グルタミン酸、５．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び６００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、２５ｍＭ ＡＴＰ、１２５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-グルタミン酸、５．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び６００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、２５ｍＭ ＡＴＰ、１８７．５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-グルタミン酸、５．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び６００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、又は、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、２５ｍＭ ＡＴＰ、２５０ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-グルタミン酸、５．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び６００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液を１５０μＬ調製し、４０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、実施品（本発明品）４２、４３、４４、及び４５を調製した。
【実施例25】
【0068】
（モリブデンブルー法によるピロリン酸の測定：本発明方法の工程（ＩＩ））
実施例２３、２４で調製した実施品３８～４５のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図１１に示す通り、ＡｒｇＲＳ及びＧｌｕＲＳ共に、ＡＴＰ：二価イオン比率が、１：１.５～１：１０において、各基質アミノ酸の全てが一回きり酵素反応に使用された（再利用されない）場合に産生されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。
実施例２３、２４で調製した実施品３８～４５のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図１１に示す通り、ＡｒｇＲＳ及びＧｌｕＲＳ共に、ＡＴＰ：二価イオン比率が、１：１.５～１：１０において、各基質アミノ酸の全てが一回きり酵素反応に使用された（再利用されない）場合に産生されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。
【実施例26】
【0069】
（各反応温度によるピロリン酸産生量：本発明方法の工程（Ｉ））
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２.５ｍＭ ＭｎＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び２.５μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液を１５０μＬ調製し、２０、又は３０、又は４０、又は５０℃で６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。その結果、図１２に示す通り、２０～５０℃の広い範囲において、良好なピロリン酸の産生が認められた。また、ｔＲＮＡ又は/各基質アミノ酸の全てが一回きり酵素反応に使用された（再利用されない）場合に産生されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２.５ｍＭ ＭｎＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び２.５μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液を１５０μＬ調製し、２０、又は３０、又は４０、又は５０℃で６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。その結果、図１２に示す通り、２０～５０℃の広い範囲において、良好なピロリン酸の産生が認められた。また、ｔＲＮＡ又は/各基質アミノ酸の全てが一回きり酵素反応に使用された（再利用されない）場合に産生されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。
【実施例27】
【0070】
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、２５ｍＭ ＡＴＰ、２５０ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-グルタミン酸、５．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び６００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液を１５０μＬ調製し、３０、又は４０、又は５０℃で６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。その結果、図１２に示す通り、３０～５０℃の広い範囲において、良好なピロリン酸の産生が認められた。また、各基質アミノ酸の全てが一回きり酵素反応に使用された（再利用されない）場合に産生されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。
【実施例28】
【0071】
（各ｐＨによるピロリン酸産生量：本発明方法の工程（Ｉ））
２００ｍＭ ＭＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ６．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ７．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、又は、２００ｍＭ ＣＨＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ９．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液を１５０μＬ調製し、５０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。その結果、図１３に示す通り、ｐＨ７～８において、各基質アミノ酸の全てが一回きり酵素反応に使用された（再利用されない）場合に産生されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。
２００ｍＭ ＭＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ６．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ７．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、又は、２００ｍＭ ＣＨＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ９．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２５ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液を１５０μＬ調製し、５０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。その結果、図１３に示す通り、ｐＨ７～８において、各基質アミノ酸の全てが一回きり酵素反応に使用された（再利用されない）場合に産生されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。
【実施例29】
【0072】
２００ｍＭ ＭＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ６．０）、２５ｍＭ ＡＴＰ、２５０ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-グルタミン酸、５．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び６００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ７．０）、２５ｍＭ ＡＴＰ、２５０ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-グルタミン酸、５．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び６００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、２５ｍＭ ＡＴＰ、２５０ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-グルタミン酸、５．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び６００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液、又は、２００ｍＭ ＣＨＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ９．０）、２５ｍＭ ＡＴＰ、２５０ｍＭ ＭｇＣｌ２、２０μＭ Ｌ-グルタミン酸、５．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び６００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液を１５０μＬ調製し、４０℃、６０分間処理した。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。その結果、図１３に示す通り、ｐＨ７～９において、各基質アミノ酸の全てが一回きり酵素反応に使用された（再利用されない）場合に産生されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。
【実施例30】
【0073】
（ｔＲＮＡを用いたモリブデンブルー法によるピロリン酸測定におけるアルギニンの検量線）
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２.５ｍＭ ＭｎＣｌ２、０、１０、２０、又は３０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び１０μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液１５０μＬを調製し、５０℃、６０分間反応させた。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、上清中のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図１４に示すように、添加したアミノ酸が全て反応に使用された場合に産生されると推測されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。また、０～３０μＭ のアミノ酸濃度範囲においてアミノ酸濃度とピロリン酸量に相関関係(Ｒ＝０．９６)が認められ、Ｌ-アルギニンの定量が可能であることが示された。
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２.５ｍＭ ＭｎＣｌ２、０、１０、２０、又は３０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び１０μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液１５０μＬを調製し、５０℃、６０分間反応させた。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、上清中のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図１４に示すように、添加したアミノ酸が全て反応に使用された場合に産生されると推測されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。また、０～３０μＭ のアミノ酸濃度範囲においてアミノ酸濃度とピロリン酸量に相関関係(Ｒ＝０．９６)が認められ、Ｌ-アルギニンの定量が可能であることが示された。
【実施例31】
【0074】
（ｔＲＮＡを用いたモリブデンブルー法によるピロリン酸測定におけるグルタミンの検量線）
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、３ｍＭ ＡＴＰ、３０ｍＭ ＭgＣｌ２、０、５、１０、２０、又は３０μＭ Ｌ-グルタミン、２μＭ ＧｌｎＲＳ、及び１６μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液１５０μＬを調製し、４０℃、６０分間反応させた。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、上清中のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図１４に示すように、添加したアミノ酸が全て反応に使用された場合に産生されると推測されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。また、０～３０μＭ のアミノ酸濃度範囲においてアミノ酸濃度とピロリン酸量に相関関係(Ｒ＝０．９９)が認められ、Ｌ-グルタミンの定量が可能であることが示された。
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、３ｍＭ ＡＴＰ、３０ｍＭ ＭgＣｌ２、０、５、１０、２０、又は３０μＭ Ｌ-グルタミン、２μＭ ＧｌｎＲＳ、及び１６μＭ ｔＲＮＡを含む反応溶液１５０μＬを調製し、４０℃、６０分間反応させた。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、上清中のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図１４に示すように、添加したアミノ酸が全て反応に使用された場合に産生されると推測されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。また、０～３０μＭ のアミノ酸濃度範囲においてアミノ酸濃度とピロリン酸量に相関関係(Ｒ＝０．９９)が認められ、Ｌ-グルタミンの定量が可能であることが示された。
【実施例32】
【0075】
（ｔＲＮＡ混合品を用いたモリブデンブルー法によるピロリン酸測定におけるアルギニンの検量線）
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２５ｍＭ ＭｇＣｌ２、０、５、１０、又は２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液１５０μＬを調製し、５０℃、６０分間反応させた。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、上清中のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図１４に示すように、添加したアミノ酸が全て反応に使用された場合に産生されると推測されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。また、０～２０μＭ のアミノ酸濃度範囲においてアミノ酸濃度とピロリン酸量に相関関係(Ｒ＝０．９９)が認められ、Ｌ-アルギニンの定量が可能であることが示された。
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、１２.５ｍＭ ＡＴＰ、１２５ｍＭ ＭｇＣｌ２、０、５、１０、又は２０μＭ Ｌ-アルギニン、２．５μＭ ＡｒｇＲＳ、及び４００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液１５０μＬを調製し、５０℃、６０分間反応させた。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、上清中のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図１４に示すように、添加したアミノ酸が全て反応に使用された場合に産生されると推測されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。また、０～２０μＭ のアミノ酸濃度範囲においてアミノ酸濃度とピロリン酸量に相関関係(Ｒ＝０．９９)が認められ、Ｌ-アルギニンの定量が可能であることが示された。
【実施例33】
【0076】
（ｔＲＮＡ混合品を用いたモリブデンブルー法によるピロリン酸測定におけるグルタミン酸の検量線）
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、２５ｍＭ ＡＴＰ、２５０ｍＭ ＭｇＣｌ２、０、５、１０、又は２０μＭ Ｌ-グルタミン酸、５．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び６００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液１５０μＬを調製し、４０℃、６０分間反応させた。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、上清中のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図１４に示すように、添加したアミノ酸が全て反応に使用された場合に産生されると推測されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。また、０～２０μＭ のアミノ酸濃度範囲においてアミノ酸濃度とピロリン酸量に相関関係(Ｒ＝０．９９)が認められ、Ｌ-グルタミン酸の定量が可能であることが示された。
２００ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ（ｐＨ８．０）、２５ｍＭ ＡＴＰ、２５０ｍＭ ＭｇＣｌ２、０、５、１０、又は２０μＭ Ｌ-グルタミン酸、５．０μＭ ＧｌｕＲＳ、及び６００μＭ ｔＲＮＡ混合品を含む反応溶液１５０μＬを調製し、４０℃、６０分間反応させた。反応後、トリクロロ酢酸を終濃度４％となるように３０μＬ添加し、反応を停止した。反応停止後、遠心分離で沈殿を除去し、上清中のピロリン酸を実施例７に記載のモリブデンブルー法により測定した。その結果、図１４に示すように、添加したアミノ酸が全て反応に使用された場合に産生されると推測されるピロリン酸量の理論値より多くのピロリン酸が産生されていた。また、０～２０μＭ のアミノ酸濃度範囲においてアミノ酸濃度とピロリン酸量に相関関係(Ｒ＝０．９９)が認められ、Ｌ-グルタミン酸の定量が可能であることが示された。
【0077】
以上の結果から、本発明方法におけるＡＡＲＳ反応では、ＡＡＲＳ、ｔＲＮＡ及びアミノ酸を繰り返し反応に使用することで、産生されるピロリン酸を増幅できることが示された。実施例４～１１に示されるように、ＡｒｇＲＳ、ＧｌｕＲＳ及びＧｌｎＲＳのいずれにおいても当該反応で産生されるピロリン酸を反応液中のｔＲＮＡ及び/又はアミノ酸のモル数より多く産生させることができた。実施例１２～１７に示されるように、ｔＲＮＡ濃度によってピロリン酸の産生量は変化することが分かった。また、ｔＲＮＡが無添加の場合、ＡｒｇＲＳ、ＧｌｕＲＳ及びＧｌｎＲＳのいずれにおいてもピロリン酸の増加が認められなかったことから、これらのＡＡＲＳ反応には、ｔＲＮＡが必須であることが分かった。比較例１及び比較例２に示されるように、従来のＡＡＲＳ反応では、産生されるピロリン酸量が、反応液中のｔＲＮＡ及び/又はアミノ酸の分子数以下であったが、本発明の方法では、反応液中のｔＲＮＡ及び/又はアミノ酸の分子数以上のピロリン酸が産生されることが分かった。実施例２０～２５に示されるように、ＡＴＰ濃度やマグネシウム濃度によって、ピロリン酸の産生量が変化することが分かった。また、実施例２６～２９に示されるように、酵素反応温度及びｐＨによって、ピロリン酸の産生量は変化し、３０～５０℃、ｐＨ７～９で好適にピロリン酸が産生することが分かった。さらに、実施例３０～３３に示されるように、アミノ酸濃度に依存して直線的にピロリン酸が増加する、即ちアミノ酸濃度とピロリン酸量に相関関係があることが分かり、本発明のＡＡＲＳ反応により産生したピロリン酸について、簡便な方法であるモリブデンブルー法による各種アミノ酸の定量が可能であることが確認された。
【産業上の利用可能性】
【0078】
従来のｔＲＮＡの会合を必要とするＡＡＲＳを用いたアミノ酸定量法では、微量な反応産物を検出する必要があり、放射線ラベルをした測定対象アミノ酸や高感度分析が必要不可欠であった。これに対して、本発明に係るアミノ酸定量方法によれば、測定対象であるピロリン酸等の反応産生物を、反応液中に含まれるｔＲＮＡ及び／又はアミノ酸より多くのモル数まで産生させることができる。その結果、従来技術のような放射線ラベルをした測定対象アミノ酸は不必要である。また、従来技術に比べてより簡便な手段でこれら反応産生物を測定する場合であっても、従来技術の多段階酵素反応を用いた蛍光法などによる高感度分析のアミノ酸定量法のアミノ酸定量範囲と同等の範囲での定量が可能であり、このような高感度分析は不必要である。従って、本発明によって、ＡＡＲＳを用いてアミノ酸を特異的且つ簡便、高感度に定量する方法及びアミノ酸定量用キットを提供することが可能となった。
【図1】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
【図10】
【図11】
【図12】
【図13】
【図14】
【配列表】