(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B2)
(11)【特許番号】
(24)【登録日】2023-10-30
(45)【発行日】2023-11-08
(54)【発明の名称】改変された耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ
(51)【国際特許分類】
C12N 9/12 20060101AFI20231031BHJP
C12Q 1/686 20180101ALI20231031BHJP
C12N 15/31 20060101ALN20231031BHJP
C12N 15/54 20060101ALN20231031BHJP
【ＦＩ】
C12N9/12
C12Q1/686 Z
C12N15/31
C12N15/54 ZNA
【請求項の数】
9
(21)【出願番号】P 2022032680
(22)【出願日】2022-03-03
(62)【分割の表示】P 2018552507の分割
【原出願日】2017-11-13
(65)【公開番号】P2022088403
(43)【公開日】2022-06-14
【審査請求日】2022-03-03
(31)【優先権主張番号】P 2016226546
(32)【優先日】2016-11-22
(33)【優先権主張国・地域又は機関】JP
(31)【優先権主張番号】P 2017170159
(32)【優先日】2017-09-05
(33)【優先権主張国・地域又は機関】JP
(31)【優先権主張番号】P 2017210452
(32)【優先日】2017-10-31
(33)【優先権主張国・地域又は機関】JP
(73)【特許権者】
【識別番号】000003160
【氏名又は名称】東洋紡株式会社
(74)【代理人】
【識別番号】110000796
【氏名又は名称】弁理士法人三枝国際特許事務所
(72)【発明者】
【氏名】小林 哲大
(72)【発明者】
【氏名】新井 康広
【審査官】西澤 龍彦
(56)【参考文献】
【文献】特表２００４－５２１６０６（ＪＰ，Ａ）
【文献】特表２０１２－５０７９８７（ＪＰ，Ａ）
【文献】特表２０１５－５３６６８４（ＪＰ，Ａ）
【文献】国際公開第２０１２／０９７３１８（ＷＯ，Ａ２）
【文献】特許第７０６７４８３（ＪＰ，Ｂ２）
【文献】YAMAGAMI, T et al.，Mutant Taq DNA polymerases with improved elongation ability as a useful reagent for genetic engineering，frontiers in MICROBIOLOGY，2014年，Vol. 5，pp. 1-10
【文献】今中忠行，タンパク質工学による酵素の耐熱化と機能変換，高分子，1990年，Vol. 39，pp. 504-507
(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)
Ｃ１２Ｎ
ＣＡｐｌｕｓ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＥＭＢＡＳＥ／ＢＩＯＳＩＳ（ＳＴＮ）
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
配列番号１又は２のアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するＤＮＡポリメラーゼにおいて、５０９位に相当するアミノ酸がアルギニンに置換されており、１ｋｂあたりの伸長時間が３０秒以下であり、
３７℃で４週間保存時に核酸増幅活性を有する、
ＤＮＡポリメラーゼ（但し、配列番号１のアミノ酸配列における５０９位のアミノ酸がアルギニンに置換されたアミノ酸配列を有するＤＮＡポリメラーゼ及び配列番号２のアミノ酸配列における５０９位のアミノ酸がアルギニンに置換されたアミノ酸配列を有するＤＮＡポリメラーゼを除く。）。
【請求項2】
配列番号１又は２のアミノ酸配列と９６％以上の同一性を有するＤＮＡポリメラーゼにおいて、５０９位に相当するアミノ酸がアルギニンに置換されており、１ｋｂあたりの伸長時間が３０秒以下であり、
３７℃で４週間保存時に核酸増幅活性を有する、
ＤＮＡポリメラーゼ（但し、配列番号１のアミノ酸配列における５０９位のアミノ酸がアルギニンに置換されたアミノ酸配列を有するＤＮＡポリメラーゼ及び配列番号２のアミノ酸配列における５０９位のアミノ酸がアルギニンに置換されたアミノ酸配列を有するＤＮＡポリメラーゼを除く。）。
【請求項3】
更に逆転写活性を有する、請求項１又は２に記載のＤＮＡポリメラーゼ。
【請求項4】
逆転写反応が５分以下で完了する、請求項３に記載のＤＮＡポリメラーゼ。
【請求項5】
逆転写反応が１分以下で完了する、請求項３又は４に記載のＤＮＡポリメラーゼ。
【請求項6】
精製工程を経ていない生体試料を増幅するために用いられる、請求項１～５のいずれかに記載のＤＮＡポリメラーゼ。
【請求項7】
前記生体試料が、血液由来試料、唾液、髄液、尿および乳からなる群より選ばれた少なくとも１種の試料である請求項６に記載のＤＮＡポリメラーゼ。
【請求項8】
請求項１～７のいずれかに記載のＤＮＡポリメラーゼを含む、核酸増幅用試薬。
【請求項9】
請求項１～７のいずれかに記載のＤＮＡポリメラーゼ、又は請求項８に記載の核酸増幅用試薬を使用する、核酸増幅方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）等に用いられる耐熱性ＤＮＡポリメラーゼの変異体に関する。更には、該耐熱性ＤＮＡポリメラーゼを用いた核酸の増幅方法に関する。本発明は、研究分野のみならず臨床診断や環境検査等にも利用できる。
【背景技術】
【0002】
核酸増幅法は数コピーの標的核酸を可視化可能なレベル、すなわち数億コピー以上に増幅する技術であり、生命科学研究分野のみならず、遺伝子診断、臨床検査といった医療分野、あるいは、食品や環境中の微生物検査等においても、広く用いられている。
【0003】
代表的な核酸増幅法は、ＰＣＲ（Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ Ｃｈａｉｎ Ｒｅａｃｔｉｏｎ）である。ＰＣＲは、（１）熱処理によるＤＮＡ変性（２本鎖ＤＮＡから１本鎖ＤＮＡへの解離）、（２）鋳型１本鎖ＤＮＡへのプライマーのアニーリング、（３）ＤＮＡポリメラーゼを用いた前記プライマーの伸長、という３ステップを１サイクルとし、このサイクルを繰り返すことによって、試料中の標的核酸を増幅する方法である。
【0004】
検出対象核酸がＲＮＡである場合、例えば病原性微生物の検出において対象がＲＮＡウイルスである場合、あるいは遺伝子の発現量をｍＲＮＡの定量によって測定する場合などは、逆転写酵素によりＲＮＡをｃＤＮＡに変換する反応（逆転写反応）をＰＣＲの前に行うＲＴ－ＰＣＲも広く用いられている。
【0005】
これら核酸増幅法は生体試料中に存在する糖やタンパク質などの阻害物質により強く阻害され、増幅効率や検出感度が低下することが知られており、前記の核酸増幅に先立ち、生体試料から核酸を抽出し、精製する操作が必要となる。
【0006】
生体試料からの核酸抽出法としては、フェノールやクロロホルムなどの有機溶媒を用いる方法が知られている（特許文献１）が、これらの方法を用いて試料中の核酸の精製を行っても、夾雑物を完全に除去することは困難であり、試料中の核酸の回収量が一定でない場合も多く、特に試料中の核酸の含量が少ないときは核酸増幅を行うことが難しくなる場合もある。
【0007】
また核酸増幅法では、反応に時間がかかることも問題の一つになっている。一般的にＰＣＲの反応では標的核酸のサイズによって、伸長時間を変化させる必要があり、１ｋｂあたり１分程度を設定することが多く、標的核酸が長い場合は、反応時間が２～３時間を超える場合がある。また、逆転写の反応時間に関しても２０分程度は要することが一般的である。
【0008】
以上のことから、更なる反応系の改善が求められており、より阻害物質に対する耐性が強く、より短時間で反応を実施できる核酸増幅法が求められていた。
【0009】
実際、反応効率を高めるため、ＤＮＡポリメラーゼの改良が検討されている（特許文献２～４、非特許文献１～３）。特許文献２においては、ＰＣＲで一般的に用いられているＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼに変異を入れることで、塩などの阻害に強い改変型ＤＮＡポリメラーゼの取得に成功している。また同様に特許文献３、及び非特許文献１～３においても、Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼに変異を入れることで、血液や阻害に強い改変型ＤＮＡポリメラーゼを取得している。
【0010】
しかしながら、このような変異体の作製は、最も汎用的に使用されているＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼへの変異にとどまり、その他のＤＮＡポリメラーゼでは実施されていなかった。また、夾雑物に対する阻害には強くなった例が示されているものの、反応時間の短縮については言及されていなかった。
【0011】
Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼは逆転写活性が弱く、ＲＴ－ＰＣＲに用いることはできない。また、これらＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼ変異体でも、反応を効率よく実施するには不十分な例が散見されており、より性能の高いＤＮＡポリメラーゼが求められていた。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0012】
【文献】特開平９－１９２９２号公報
【文献】特許第５８０９０５９号公報
【文献】特許第５８５２６５０号公報
【文献】特許第５１８９１０１号公報
【非特許文献】
【0013】
【文献】ＯＲＩＧＩＮＡＬ ＲＥＳＥＡＲＣＨＡＲＴＩＣＬＥ（２０１４年８月１４日発行）
【文献】Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ, Ｖｏｌ. ３７, Ｎｏ. ５ ｅ４０（２００９年発行）
【文献】ＯＲＩＧＩＮＡＬ ＲＥＳＥＡＲＣＨＡＲＴＩＣＬＥ（２０１４年９月３日発行）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0014】
核酸増幅法において、特にＰＣＲやＲＴ－ＰＣＲにおいて、阻害物質に対する耐性が強く、またＰＣＲ反応時間を短縮できるようなＤＮＡポリメラーゼが求められていた。
【課題を解決するための手段】
【0015】
本発明者らは、上記課題に鑑み、鋭意研究の結果、逆転写活性を有するＤＮＡポリメラーゼに変異を入れることで、既存のＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼや同位置に変異を持つＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼ変異体より、阻害物質に強く、かつ反応時間を大幅に短縮できることを見出した。また、逆転写活性を有するＤＮＡポリメラーゼを使用するため、今までは対応できなかったＲＴ－ＰＣＲにもこの改変型ＤＮＡポリメラーゼが適用できることを見出し、本発明を完成させるに至った。
【0016】
即ち、本発明の概要は以下の通りである。
項１．逆転写活性を有し、かつ、配列番号１のアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するＤＮＡポリメラーゼにおいて、５０９位および７４４位からなる群から選択される少なくとも１つの部位のアミノ酸を改変したことを特徴とするＤＮＡポリメラーゼ。
項２．逆転写活性を有し、かつ、配列番号１のアミノ酸配列と９６％以上の同一性を有するＤＮＡポリメラーゼにおいて、５０９位および７４４位からなる群から選択される少なくとも１つの部位のアミノ酸を改変したことを特徴とするＤＮＡポリメラーゼ。
項３．逆転写活性を有し、かつ、配列番号１のアミノ酸配列を有するＤＮＡポリメラーゼにおいて、５０９位および７４４位からなる群から選択される少なくとも１つの部位のアミノ酸を改変したことを特徴とするＤＮＡポリメラーゼ。
項４．逆転写活性を有し、かつ、配列番号２のアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するＤＮＡポリメラーゼにおいて、５０９位および７４４位からなる群から選択される少なくとも１つの部位のアミノ酸を改変したことを特徴とするＤＮＡポリメラーゼ。
項５．逆転写活性を有し、かつ、配列番号２のアミノ酸配列と９６％以上の同一性を有するＤＮＡポリメラーゼにおいて、５０９位および７４４位からなる群から選択される少なくとも１つの部位のアミノ酸を改変したことを特徴とするＤＮＡポリメラーゼ。
項６．逆転写活性を有し、かつ、配列番号２のアミノ酸配列を有するＤＮＡポリメラーゼにおいて、５０９位および７４４位からなる群から選択される少なくとも１つの部位のアミノ酸を改変したことを特徴とするＤＮＡポリメラーゼ。
項７．配列番号１または配列番号２における５０９位または７４４位に相当するアミノ酸の改変が、ヒスチジン、リジンおよびアルギニンからなる群より選択されるいずれかのアミノ酸に置換されたものである項１から６のいずれかに記載のＤＮＡポリメラーゼ。
項８．配列番号１または配列番号２における５０９位に相当するアミノ酸の改変が、アルギニンに置換されたものである項７に記載のＤＮＡポリメラーゼ。
項９．逆転写反応が５分以下で完了する項１から８のいずれかに記載のＤＮＡポリメラーゼ。
項１０．逆転写反応が１分以下で完了する項９に記載のＤＮＡポリメラーゼ。
項１１．１ｋｂあたりの伸長時間が３０秒以下である項１から１０のいずれかに記載のＤＮＡポリメラーゼ。
項１２．項１～１１のいずれかに記載のＤＮＡポリメラーゼを使用して、精製工程を経ていない生体試料を増幅することを特徴とする核酸増幅方法。
項１３．前記生体試料が、血液由来試料、唾液、髄液、尿および乳からなる群より選ばれた少なくとも１種の試料である項１２に記載の核酸増幅方法。
項１．逆転写活性を有し、かつ、配列番号１のアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するＤＮＡポリメラーゼにおいて、５０９位および７４４位からなる群から選択される少なくとも１つの部位のアミノ酸を改変したことを特徴とするＤＮＡポリメラーゼ。
項２．逆転写活性を有し、かつ、配列番号１のアミノ酸配列と９６％以上の同一性を有するＤＮＡポリメラーゼにおいて、５０９位および７４４位からなる群から選択される少なくとも１つの部位のアミノ酸を改変したことを特徴とするＤＮＡポリメラーゼ。
項３．逆転写活性を有し、かつ、配列番号１のアミノ酸配列を有するＤＮＡポリメラーゼにおいて、５０９位および７４４位からなる群から選択される少なくとも１つの部位のアミノ酸を改変したことを特徴とするＤＮＡポリメラーゼ。
項４．逆転写活性を有し、かつ、配列番号２のアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するＤＮＡポリメラーゼにおいて、５０９位および７４４位からなる群から選択される少なくとも１つの部位のアミノ酸を改変したことを特徴とするＤＮＡポリメラーゼ。
項５．逆転写活性を有し、かつ、配列番号２のアミノ酸配列と９６％以上の同一性を有するＤＮＡポリメラーゼにおいて、５０９位および７４４位からなる群から選択される少なくとも１つの部位のアミノ酸を改変したことを特徴とするＤＮＡポリメラーゼ。
項６．逆転写活性を有し、かつ、配列番号２のアミノ酸配列を有するＤＮＡポリメラーゼにおいて、５０９位および７４４位からなる群から選択される少なくとも１つの部位のアミノ酸を改変したことを特徴とするＤＮＡポリメラーゼ。
項７．配列番号１または配列番号２における５０９位または７４４位に相当するアミノ酸の改変が、ヒスチジン、リジンおよびアルギニンからなる群より選択されるいずれかのアミノ酸に置換されたものである項１から６のいずれかに記載のＤＮＡポリメラーゼ。
項８．配列番号１または配列番号２における５０９位に相当するアミノ酸の改変が、アルギニンに置換されたものである項７に記載のＤＮＡポリメラーゼ。
項９．逆転写反応が５分以下で完了する項１から８のいずれかに記載のＤＮＡポリメラーゼ。
項１０．逆転写反応が１分以下で完了する項９に記載のＤＮＡポリメラーゼ。
項１１．１ｋｂあたりの伸長時間が３０秒以下である項１から１０のいずれかに記載のＤＮＡポリメラーゼ。
項１２．項１～１１のいずれかに記載のＤＮＡポリメラーゼを使用して、精製工程を経ていない生体試料を増幅することを特徴とする核酸増幅方法。
項１３．前記生体試料が、血液由来試料、唾液、髄液、尿および乳からなる群より選ばれた少なくとも１種の試料である項１２に記載の核酸増幅方法。
【発明の効果】
【0017】
本発明のＤＮＡポリメラーゼを使用することにより、夾雑物の影響を受けずに、かつ、短い反応時間で核酸増幅を行うことができる。夾雑物除去の精製工程を省略できるため、大幅に処理時間を短くできる。
【図面の簡単な説明】
【0018】
【図1】実施例３において、Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ及び改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼを用いたＤＮＡ増幅を検討した結果を示す図である。
【図2】実施例４において、高速ＰＣＲによるＤＮＡ増幅を検討した結果を示す図である。
【図3】実施例５における、血液試料中のＤＮＡ増幅を検討した結果を示す図である。
【図4】実施例６における、ＲＴ－ＰＣＲの増幅曲線、融解曲線の結果を示す図である。
【図5】実施例７において、野生型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼおよび改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼを用いたＲＴ－ＰＣＲの増幅曲線並びに融解曲線の結果を示す図である。
【図6】実施例８において、ＦＴＡカードで保存した血液からＤＮＡ増幅を検討した結果を示す図である。
【図7】実施例１０において、ＤＮＡポリメラーゼの血漿由来成分に対する耐性を評価した結果を示す図である。
【図8】実施例１１において、ＤＮＡポリメラーゼの高速ＲＴ－ＰＣＲの評価を行った結果を示す図である。
【図9】実施例１２において、ＤＮＡポリメラーゼの血液に対する耐性を評価した結果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【0019】
本発明は、逆転写活性を持つ改変型ＤＮＡポリメラーゼに関する。逆転写活性を持つ耐熱性ＤＮＡポリメラーゼとは、ＲＮＡをｃＤＮＡに変換する能力とＤＮＡを増幅する能力を兼ね備えたＤＮＡポリメラーゼであり、本発明を特に限定するものではないが、Ｔｈｅｒｍｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ ＨＢ８由来のＤＮＡポリメラーゼ（Ｔｔｈ）やＴｈｅｍｕｓ ｓｐ Ｚ０５由来のＤＮＡポリメラーゼ（Ｚ０５）やＴｈｅｒｍｏｔｏｇａ ｍａｒｉｔｉｍａ由来のＤＮＡポリメラーゼ（Ｔｍａ）など挙げられる。特に好ましくは、Ｔｔｈ、Ｚ０５が挙げられる。
【0020】
本発明のＤＮＡポリメラーゼは、配列番号１に示されるアミノ酸配列からなるタンパク質において、特定部位のアミノ酸に変異、具体的には他のアミノ酸への置換されることにより改変されることを特徴とする。改変前のアミノ酸配列は、配列番号１と完全に同一である場合に限られるものではない。好ましくは配列番号１との同一性が８０％以上であればよく、好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、更に好ましくは９３％以上、特に好ましくは９６％以上である。
【0021】
本発明のＤＮＡポリメラーゼは、より好ましくは配列番号１または配列番号２におけるアミノ酸Ｑ５０９ 、またはＥ７４４に相当するアミノ酸の少なくとも１つのアミノ酸の改変を有する。ここで、例えばＱ５０９とは、５０９番目のアミノ酸であるグルタミン（Ｑ）残基を意味しており、アルファベット１文字は通用されているアミノ酸の略号を表している。好ましい例において、Ｑ５０９アミノ酸はグルタミン（Ｑ）が正電荷の極性アミノ酸に置換されており、具体的にはＱ５０９Ｈ、Ｑ５０９Ｋ、及びＱ５０９Ｒからなる群より選ばれるアミノ酸置換である。ここで、例えばＱ５０９Ｋとは、５０９番目のアミノ酸のグルタミン（Ｑ）がリシン（Ｋ）に置換されていることを意味しており、以下同様である。別の好ましい例において、Ｅ７４４アミノ酸はグルタミン酸（Ｅ）が正電荷をもつ極性アミノ酸に置換されており、具体的にはＥ７４４Ｈ、Ｅ７４４ＫまたはＥ７４４Ｒのアミノ酸置換である。
【0022】
本発明のＤＮＡポリメラーゼは、配列番号１または配列番号２における５０９位、または７４４位におけるアミノ酸のいずれかが改変されておればよく、その他、アミノ酸が欠損・改変されていてもよい。具体的には５‘－３’エキソヌクレアーゼ活性を除去するためＮ末端が削除されたものや、低温での反応を止めるためのＥ７１０Ｌなどの変異を持っているものであってもよく、特に限定されない。また、本発明のＤＮＡポリメラーゼは、５０９位、７４４位以外に変異を含んでいてもよい。好ましくは、５０９位もしくは７４４位に変異をもつ配列番号１または２と９０％以上の同一性を有するＤＮＡポリメラーゼであり、さらに好ましくは、配列番号１または２と９６％以上の同一性を持つＤＮＡポリメラーゼである。
【0023】
これらの改変されたＤＮＡポリメラーゼを製造する方法としては、従来からの公知の方法が使用できる。例えば、野生型ＤＮＡポリメラーゼをコードする遺伝子に変異を導入して、タンパク質工学的手法により新たな機能を有する変異型（改変型）ＤＮＡポリメラーゼを製造する方法が好ましい。
【0024】
アミノ酸の改変を導入する方法の一態様として、Ｉｎｖｅｒｓｅ ＰＣＲ法に基づく部位特異的変異導入法を用いることができる。例えば、ＫＯＤ －Ｐｌｕｓ－ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｋｉｔ（Ｔｏｙｏｂｏ製）は、（１）目的とする遺伝子を挿入したプラスミドを変性させ、該プラスミドに変異プライマーをアニーリングさせ、続いてＫＯＤ ＤＮＡポリメラーゼを用いて伸長反応を行う、（２）（１）のサイクルを１５回繰り返す、（３）制限酵素ＤｐｎＩを用いて鋳型としたプラスミドのみを選択的に切断する、（４）新たに合成された遺伝子をリン酸化、Ｌｉｇａｔｉｏｎを実施し環化させる、（５）環化した遺伝子を大腸菌に形質転換し、目的とする変異の導入されたプラスミドを保有する形質転換体を取得することのできるキットである。
【0025】
本発明のＤＮＡポリメラーゼとしては、Ｓｓｏ７ｄやＰＣＮＡの融合タンパク質の形態であってもよい。また、Ｈｉｓタグ、ＧＳＴタグなどのタンパク質タグを付加した融合タンパク質であってもよい。
【0026】
本発明のＤＮＡポリメラーゼの別な態様としては、従来のものと比べて逆転写活性に優れており、逆転写反応が速いことが好ましい。具体的な態様例としては、逆転写反応が５分以下、好ましくは３分以下、より好ましくは１分以下で完了するものである。ここで、本発明において、逆転写反応が完了するとは、以下のように定義される。すなわち、ＲＴ－ＰＣＲ反応が成立している条件として、ＰＣＲ効率が９０～１１０％以内で、かつ、相関係数ｒ2が０．９８であることとする。ＰＣＲ効率とは段階希釈した核酸量をＸ軸、核酸量に対応するＣｔ値をＹ軸として、結果をプロットした検量線の傾き（ｓｌｏｐｅ）より、式（１）より求めることができる。相関係数ｒ2は検量線の直線性を表す。このような形で、逆転写反応の後のＰＣＲが可能となっている場合に、逆転写反応が完了しているものとする。
【0027】
【数1】
【0028】
上記ＤＮＡポリメラーゼ遺伝子を必要に応じて発現ベクターに移し替え、宿主として例えば大腸菌を、該発現ベクターを用いて形質転換した後、アンピシリン等の薬剤を含む寒天培地に塗布し、コロニーを形成させる。コロニーを栄養培地、例えばＬＢ培地や２×ＹＴ培地に接種し、３７℃で１２～２０時間培養した後、菌体を破砕して粗酵素液を抽出する。ベクターとしては、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ由来のものが好ましい。菌体を破砕する方法としては公知のいかなる手法を用いても良いが、例えば超音波処理、フレンチプレスやガラスビーズ破砕のような物理的破砕法やリゾチームのような溶菌酵素を用いることができる。この粗酵素液を８０℃、３０分間熱処理し、宿主由来のＤＮＡポリメラーゼを失活させ、ＤＮＡポリメラーゼ活性を測定する。
【0029】
上記方法により選抜された菌株から精製ＤＮＡポリメラーゼを取得する方法は、いかなる手法を用いても良いが、例えば下記のような方法がある。栄養培地に培養して得られた菌体を回収した後、酵素的または物理的破砕法により破砕抽出して粗酵素液を得る。得られた粗酵素抽出液から熱処理、例えば８０℃、３０分間処理し、その後硫安沈殿によりＤＮＡポリメラーゼ画分を回収する。この粗酵素液をセファデックスＧ－２５（アマシャムファルマシア・バイオテク製）を用いたゲル濾過等の方法により脱塩を行うことができる。この操作の後、ヘパリンセファロースカラムクロマトグラフィーにより分離、精製し、精製酵素標品を得ることができる。該精製酵素標品はＳＤＳ－ＰＡＧＥによってほぼ単一バンドを示す程度に純化される。
【0030】
［ＤＮＡポリメラーゼ活性測定法］
純化されたＤＮＡポリメラーゼは以下に示す方法で活性を測定することができる。酵素活性が強い場合には、保存緩衝液（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ８．０），５０ｍＭ ＫＣｌ，１ｍＭ ジチオスレイトール，０．１％ Ｔｗｅｅｎ２０，０．１％ Ｎｏｎｉｄｅｔ Ｐ４０，５０％ グリセリン）でサンプルを希釈して測定を行う。（１）下記のＡ液２５μｌ、Ｂ液５μｌ、Ｃ液５μｌ、滅菌水１０μｌ、及び酵素溶液５μｌをマイクロチューブに加えて、７５℃にて１０分間反応する。（２）その後氷冷し、Ｅ液５０μｌ、Ｄ液１００μｌを加えて、攪拌後更に１０分間氷冷する。（３）この液をガラスフィルター（ワットマン製ＧＦ／Ｃフィルター）で濾過し、０．１Ｎ 塩酸およびエタノールで十分洗浄する。（４）フィルターの放射活性を液体シンチレーションカウンター（パッカード製Ｔｒｉ－Ｃａｒｂ２８１０ ＴＲ）で計測し、鋳型ＤＮＡのヌクレオチドの取り込みを測定する。酵素活性の１単位はこの条件で３０分当りの１０ｎｍｏｌのヌクレオチドを酸不溶性画分（即ち、Ｄ液を添加したときに不溶化する画分）に取り込む酵素量とする。
Ａ：４０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．５）１６ｍＭ 塩化マグネシウム１５ｍＭ ジチオスレイトール１００μｇ／ｍｌ ＢＳＡ（牛血清アルブミン）
Ｂ：１．５μｇ／μｌ 活性化仔牛胸腺ＤＮＡ
Ｃ：１．５ｍＭ ｄＮＴＰ（２５０ｃｐｍ／ｐｍｏｌ ［３Ｈ］ｄＴＴＰ）
Ｄ：２０％ トリクロロ酢酸（２ｍＭ ピロリン酸ナトリウム）
Ｅ：１ｍｇ／ｍｌ 仔牛胸腺ＤＮＡ
純化されたＤＮＡポリメラーゼは以下に示す方法で活性を測定することができる。酵素活性が強い場合には、保存緩衝液（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ８．０），５０ｍＭ ＫＣｌ，１ｍＭ ジチオスレイトール，０．１％ Ｔｗｅｅｎ２０，０．１％ Ｎｏｎｉｄｅｔ Ｐ４０，５０％ グリセリン）でサンプルを希釈して測定を行う。（１）下記のＡ液２５μｌ、Ｂ液５μｌ、Ｃ液５μｌ、滅菌水１０μｌ、及び酵素溶液５μｌをマイクロチューブに加えて、７５℃にて１０分間反応する。（２）その後氷冷し、Ｅ液５０μｌ、Ｄ液１００μｌを加えて、攪拌後更に１０分間氷冷する。（３）この液をガラスフィルター（ワットマン製ＧＦ／Ｃフィルター）で濾過し、０．１Ｎ 塩酸およびエタノールで十分洗浄する。（４）フィルターの放射活性を液体シンチレーションカウンター（パッカード製Ｔｒｉ－Ｃａｒｂ２８１０ ＴＲ）で計測し、鋳型ＤＮＡのヌクレオチドの取り込みを測定する。酵素活性の１単位はこの条件で３０分当りの１０ｎｍｏｌのヌクレオチドを酸不溶性画分（即ち、Ｄ液を添加したときに不溶化する画分）に取り込む酵素量とする。
Ａ：４０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．５）１６ｍＭ 塩化マグネシウム１５ｍＭ ジチオスレイトール１００μｇ／ｍｌ ＢＳＡ（牛血清アルブミン）
Ｂ：１．５μｇ／μｌ 活性化仔牛胸腺ＤＮＡ
Ｃ：１．５ｍＭ ｄＮＴＰ（２５０ｃｐｍ／ｐｍｏｌ ［３Ｈ］ｄＴＴＰ）
Ｄ：２０％ トリクロロ酢酸（２ｍＭ ピロリン酸ナトリウム）
Ｅ：１ｍｇ／ｍｌ 仔牛胸腺ＤＮＡ
【0031】
本発明の核酸増幅方法は、核酸増幅のための温度・時間・反応サイクル等の条件は、増幅したい核酸の種類や塩基の配列、鎖長等によって変わるが、当業者であれば適宜設定できる。ただし、本発明における核酸増幅法は、特にＰＣＲやＲＴ－ＰＣＲで使用する場合では、伸長時間を１ｋｂあたり３０秒以下にしてもよい。ＰＣＲやＲＴ－ＰＣＲでは、（１）熱処理によるＤＮＡ変性（２本鎖ＤＮＡから１本鎖ＤＮＡへの解離）、（２）鋳型１本鎖ＤＮＡへのプライマーのアニーリング、（３）ＤＮＡポリメラーゼを用いた前記プライマーの伸長、という３ステップを１サイクルとし、このサイクルを繰り返す。本発明における伸長時間とは、（３）のプライマーを伸長させる反応に必要な１サイクルの時間を示す。
【0032】
［精製工程を経ないこと］
本発明における核酸増幅方法においては、精製工程を経ていない生体試料内の核酸を精製することなく増幅することができる。ここで、精製とは、生体試料の組織、細胞壁などの夾雑物質と生体試料中のＤＮＡを分離する方法をいうものであり、具体的にはフェノールあるいはフェノール・クロロホルム等を用いて、ＤＮＡを分離する方法や、イオン交換樹脂、ガラスフィルターあるいはタンパク凝集作用を有する試薬によってＤＮＡを分離する方法などが挙げられる。
本発明における核酸増幅方法においては、精製工程を経ていない生体試料内の核酸を精製することなく増幅することができる。ここで、精製とは、生体試料の組織、細胞壁などの夾雑物質と生体試料中のＤＮＡを分離する方法をいうものであり、具体的にはフェノールあるいはフェノール・クロロホルム等を用いて、ＤＮＡを分離する方法や、イオン交換樹脂、ガラスフィルターあるいはタンパク凝集作用を有する試薬によってＤＮＡを分離する方法などが挙げられる。
【0033】
本発明における核酸増幅方法は、生体試料をこれらの精製法をとることなく、核酸増幅反応液に添加し増幅する方法である。本発明において「精製工程を経ていない生体試料」とは、生体試料そのもの、あるいは液体の生体試料を水や核酸保存液などの溶媒を用いて希釈したもの、生体試料を水などの溶媒に添加し熱をかけて破砕させたもの、ＦＴＡカード（ＧＥヘルスケア）のような核酸保存液を含んだ物質に貼付されたものなどが挙げられる。
【0034】
臓器や細胞など、増幅対象となる核酸が試料の組織内に存在する場合、前記核酸を抽出するために組織を破壊する行為（物理的な処理による破壊、界面活性剤などを使用した破壊など）は、本発明における精製には該当しない。また、上記方法で得られた試料または生体試料を、緩衝液などにより希釈する行為も本発明における精製に該当しない。
【0035】
［生体試料］
本発明の核酸増幅方法に適用する生体試料は、生体から採取された試料であれば特に限定されない。例えば、動植物組織、体液、排泄物、細胞、細菌、ウイルス等をいう。体液には血液や唾液が含まれ、細胞には血液から分離した白血球が含まれるが、これらに限定されるものではない。
本発明の核酸増幅方法に適用する生体試料は、生体から採取された試料であれば特に限定されない。例えば、動植物組織、体液、排泄物、細胞、細菌、ウイルス等をいう。体液には血液や唾液が含まれ、細胞には血液から分離した白血球が含まれるが、これらに限定されるものではない。
【0036】
本発明はＰＣＲやＲＴ－ＰＣＲのみならず、ＤＮＡを鋳型とし、１種のプライマー、ｄＮＴＰ（デオキシリボヌクレオチド三リン酸）を反応させることによりプライマーを伸長して、ＤＮＡプライマー伸長物を合成する方法にも使用される。具体的には、プライマーエクステンション法、シークエンス法、従来の温度サイクルを行わない方法およびサイクルシーケンス法などにも適用することができる。
【0037】
本発明の改変されたＤＮＡポリメラーゼは、核酸増幅用試薬の態様で提供されてもよい。核酸増幅用試薬の一例としては、一方のプライマーが他方のプライマーのＤＮＡ伸長生成物に互いに相補的である２種のプライマー、ｄＮＴＰ、及び上記のような本発明における耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、２価イオン、１価イオン及び緩衝液を含み、さらに具体的には、一方のプライマーが他方のプライマーＤＮＡ伸長生成物に相補的である２種のプライマー、ｄＮＴＰ及び上記耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、マグネシウムイオン及び／またはマンガンイオン、アンモニウムイオン及び／又はカリウムイオン、ＢＳＡ、上述のような非イオン界面活性剤及び緩衝液を含む態様が好ましい。
【0038】
核酸増幅用試薬の別の態様としては、一方のプライマーが他方のプライマーのＤＮＡ伸長生成物に互いに相補的である２種のプライマー、ｄＮＴＰ及び上述したような本発明における耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、２価イオン、１価イオン、緩衝液、及び必要に応じて耐熱性ＤＮＡポリメラーゼのポリメラーゼ活性及び／又は３’－５’エキソヌクレアーゼ活性を抑制する活性を有する抗体を含む核酸増幅用試薬がある。該抗体としては、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体などが挙げられる。本核酸増幅用試薬は、ＰＣＲの感度上昇、非特異的増幅の軽減に特に有効である。
【0039】
以下、本発明を実施例に基づき、より詳細に説明する。なお、本発明は実施例に特に限定されるものではない。
【実施例】
【0040】
実施例１
ＤＮＡポリメラーゼプラスミドの作製
人工合成により作成したＴｈｅｒｍｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ ＨＢ８由来のＤＮＡポリメラーゼ遺伝子（配列番号３）、Ｔｈｅｍｕｓ ｓｐ Ｚ０５由来のＤＮＡポリメラーゼ遺伝子（配列番号４）、およびＴｈｅｒｍｕｓ ａｑｕａｔｉｃｕｓ由来の耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ遺伝子（配列番号５）をｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔにクローニングし、それぞれ野生型Ｔｔｈ、Ｚ０５、Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼを組み込んだプラスミドを作製した（それぞれｐＴｔｈ、ｐＺ０５、ｐＴａｑ）。変異をもつプラスミドの作製には、ｐＴｔｈ、ｐＺ０５、ｐＴａｑを鋳型に、ＫＯＤ －Ｐｌｕｓ－ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｋｉｔ（Ｔｏｙｏｂｏ製）を用いて、方法は取扱い説明書に準じて行った。二重変異の一部については作製した変異プラスミドを鋳型に、同様のキットを用いてさらに変異を入れることで作製した。作製したプラスミド及びその際に使用した鋳型・プライマーを表１に示す。得られたプラスミドはエシェリシア・コリＪＭ１０９を形質転換し、酵素調製に用いた。
ＤＮＡポリメラーゼプラスミドの作製
人工合成により作成したＴｈｅｒｍｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ ＨＢ８由来のＤＮＡポリメラーゼ遺伝子（配列番号３）、Ｔｈｅｍｕｓ ｓｐ Ｚ０５由来のＤＮＡポリメラーゼ遺伝子（配列番号４）、およびＴｈｅｒｍｕｓ ａｑｕａｔｉｃｕｓ由来の耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ遺伝子（配列番号５）をｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔにクローニングし、それぞれ野生型Ｔｔｈ、Ｚ０５、Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼを組み込んだプラスミドを作製した（それぞれｐＴｔｈ、ｐＺ０５、ｐＴａｑ）。変異をもつプラスミドの作製には、ｐＴｔｈ、ｐＺ０５、ｐＴａｑを鋳型に、ＫＯＤ －Ｐｌｕｓ－ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｋｉｔ（Ｔｏｙｏｂｏ製）を用いて、方法は取扱い説明書に準じて行った。二重変異の一部については作製した変異プラスミドを鋳型に、同様のキットを用いてさらに変異を入れることで作製した。作製したプラスミド及びその際に使用した鋳型・プライマーを表１に示す。得られたプラスミドはエシェリシア・コリＪＭ１０９を形質転換し、酵素調製に用いた。
【0041】
【表1】
【0042】
実施例２
ＤＮＡポリメラーゼの作製
実施例１で得られた菌体の培養は、以下のようにして実施した。まず、滅菌処理した１００μｇ／ｍｌのアンピシリンを含有するＴＢ培地（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｃｌｏｎｉｎｇ ２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ、ｐ．Ａ．２）８０ｍＬを、５００ｍＬ坂口フラスコに分注した。この培地に予め１００μｇ／ｍｌのアンピシリンを含有する３ｍｌのＬＢ培地（１％バクトトリプトン、０．５％酵母エキス、０．５％塩化ナトリウム；ギブコ製）で３７℃、１６時間培養したエシェリシア・コリＪＭ１０９（プラスミド形質転換株）（試験管使用）を接種し、３７℃にて１６時間通気培養した。培養液より菌体を遠心分離により回収し、５０ｍｌの破砕緩衝液（３０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ８．０）、３０ｍＭ ＮａＣｌ、０．１ｍＭ ＥＤＴＡ）に懸濁後、ソニケーション処理により菌体を破砕し、細胞破砕液を得た。次に細胞破砕液を８０℃にて１５分間処理した後、遠心分離にて不溶性画分を除去した。更に、ポリエチレンイミンを用いた除核酸処理、硫安塩析、ヘパリンセファロースクロマトグラフィーを行い、最後に保存緩衝液（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ８．０）、５０ｍＭ 塩化カリウム、１ｍＭ ジチオスレイトール、０．１％ Ｔｗｅｅｎ２０、０．１％ノニデットＰ４０、５０％グリセリン）に置換し、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼを得た。
ＤＮＡポリメラーゼの作製
実施例１で得られた菌体の培養は、以下のようにして実施した。まず、滅菌処理した１００μｇ／ｍｌのアンピシリンを含有するＴＢ培地（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｃｌｏｎｉｎｇ ２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ、ｐ．Ａ．２）８０ｍＬを、５００ｍＬ坂口フラスコに分注した。この培地に予め１００μｇ／ｍｌのアンピシリンを含有する３ｍｌのＬＢ培地（１％バクトトリプトン、０．５％酵母エキス、０．５％塩化ナトリウム；ギブコ製）で３７℃、１６時間培養したエシェリシア・コリＪＭ１０９（プラスミド形質転換株）（試験管使用）を接種し、３７℃にて１６時間通気培養した。培養液より菌体を遠心分離により回収し、５０ｍｌの破砕緩衝液（３０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ８．０）、３０ｍＭ ＮａＣｌ、０．１ｍＭ ＥＤＴＡ）に懸濁後、ソニケーション処理により菌体を破砕し、細胞破砕液を得た。次に細胞破砕液を８０℃にて１５分間処理した後、遠心分離にて不溶性画分を除去した。更に、ポリエチレンイミンを用いた除核酸処理、硫安塩析、ヘパリンセファロースクロマトグラフィーを行い、最後に保存緩衝液（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ８．０）、５０ｍＭ 塩化カリウム、１ｍＭ ジチオスレイトール、０．１％ Ｔｗｅｅｎ２０、０．１％ノニデットＰ４０、５０％グリセリン）に置換し、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼを得た。
【0043】
上記精製工程のＤＮＡポリメラーゼ活性測定は、以下の操作で行った。また、酵素活性が高い場合はサンプルを希釈して測定を行った。
【0044】
（試薬）
Ａ液： ４０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．５）、１６ｍＭ 塩化マグネシウム、１５ｍＭ ジチオスレイトール、１００μｇ／ｍｌ ＢＳＡ
Ｂ液： １．５μｇ／μｌ 活性化仔牛胸腺ＤＮＡ
Ｃ液： １．５ｍＭ ｄＮＴＰ（２５０ｃｐｍ／ｐｍｏｌ ［３Ｈ］ｄＴＴＰ）
Ｄ液： ２０％ トリクロロ酢酸（２ｍＭ ピロリン酸ナトリウム）
Ｅ液： １ｍｇ／ｍｌ 仔牛胸腺ＤＮＡ
Ａ液： ４０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．５）、１６ｍＭ 塩化マグネシウム、１５ｍＭ ジチオスレイトール、１００μｇ／ｍｌ ＢＳＡ
Ｂ液： １．５μｇ／μｌ 活性化仔牛胸腺ＤＮＡ
Ｃ液： １．５ｍＭ ｄＮＴＰ（２５０ｃｐｍ／ｐｍｏｌ ［３Ｈ］ｄＴＴＰ）
Ｄ液： ２０％ トリクロロ酢酸（２ｍＭ ピロリン酸ナトリウム）
Ｅ液： １ｍｇ／ｍｌ 仔牛胸腺ＤＮＡ
【0045】
（方法）
Ａ液２５μｌ、Ｂ液５μｌ、Ｃ液５μｌ及び滅菌水１０μｌを、マイクロチューブに加えて攪拌混合後、上記精製酵素希釈液５μｌを加えて、７５℃で１０分間反応する。その後冷却し、Ｅ液５０μｌ、Ｄ液１００μｌを加えて、攪拌後更に１０分間氷冷する。この液をガラスフィルター（ワットマン製ＧＦ／Ｃフィルター）で濾過し、０．１Ｎ塩酸及びエタノールで十分洗浄し、フィルターの放射活性を液体シンチレーションカウンター（パッカード製Ｔｒｉ－Ｃａｒｂ２８１０ ＴＲ）を用いて計測し、鋳型ＤＮＡへのヌクレオチドの取り込みを測定した。酵素活性の１単位はこの条件下で３０分当り１０ｎｍｏｌのヌクレオチドを酸不溶性画分に取り込む酵素量とした。
Ａ液２５μｌ、Ｂ液５μｌ、Ｃ液５μｌ及び滅菌水１０μｌを、マイクロチューブに加えて攪拌混合後、上記精製酵素希釈液５μｌを加えて、７５℃で１０分間反応する。その後冷却し、Ｅ液５０μｌ、Ｄ液１００μｌを加えて、攪拌後更に１０分間氷冷する。この液をガラスフィルター（ワットマン製ＧＦ／Ｃフィルター）で濾過し、０．１Ｎ塩酸及びエタノールで十分洗浄し、フィルターの放射活性を液体シンチレーションカウンター（パッカード製Ｔｒｉ－Ｃａｒｂ２８１０ ＴＲ）を用いて計測し、鋳型ＤＮＡへのヌクレオチドの取り込みを測定した。酵素活性の１単位はこの条件下で３０分当り１０ｎｍｏｌのヌクレオチドを酸不溶性画分に取り込む酵素量とした。
【0046】
実施例３
ＰＣＲ
実施例２で作製したＤＮＡポリメラーゼを用いて、ヒトβ－グロビン３．６ｋｂ、８．５ｋｂを増幅するＰＣＲを実施した。
ＰＣＲにはＫＯＤ Ｄａｓｈ（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ、およびを０．２ｍＭ ｄＮＴＰｓ、ヒトβ－グロビン３．６ｋｂを増幅する１５ｐｍｏｌのプライマー（配列番号６及び７）、もしくは８．５ｋｂを増幅する１５ｐｍｏｌのプライマー（配列番号８及び９）、５０ｎｇのヒトゲノムＤＮＡ（Ｒｏｃｈｅ製）、１、２、５、１０Ｕの酵素を含む５０μｌの反応液を９４℃、２分の前反応の後、９８℃、１０秒→６０℃、１０秒→６８℃、４分（３．６ｋｂの増幅）または８分（８．５ｋｂの増幅）を３５サイクル繰り返すスケジュールでＰＣＲ ｓｙｓｔｅｍ ＧｅｎｅＡｍｐ９７００（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍ製）を用いてＰＣＲを行った。反応終了後、５μｌの反応液について１％アガロース電気泳動を行い、エチジウムブロマイド染色し、紫外線照射下増幅ＤＮＡ断片の増幅量を確認した。
ＰＣＲ
実施例２で作製したＤＮＡポリメラーゼを用いて、ヒトβ－グロビン３．６ｋｂ、８．５ｋｂを増幅するＰＣＲを実施した。
ＰＣＲにはＫＯＤ Ｄａｓｈ（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ、およびを０．２ｍＭ ｄＮＴＰｓ、ヒトβ－グロビン３．６ｋｂを増幅する１５ｐｍｏｌのプライマー（配列番号６及び７）、もしくは８．５ｋｂを増幅する１５ｐｍｏｌのプライマー（配列番号８及び９）、５０ｎｇのヒトゲノムＤＮＡ（Ｒｏｃｈｅ製）、１、２、５、１０Ｕの酵素を含む５０μｌの反応液を９４℃、２分の前反応の後、９８℃、１０秒→６０℃、１０秒→６８℃、４分（３．６ｋｂの増幅）または８分（８．５ｋｂの増幅）を３５サイクル繰り返すスケジュールでＰＣＲ ｓｙｓｔｅｍ ＧｅｎｅＡｍｐ９７００（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍ製）を用いてＰＣＲを行った。反応終了後、５μｌの反応液について１％アガロース電気泳動を行い、エチジウムブロマイド染色し、紫外線照射下増幅ＤＮＡ断片の増幅量を確認した。
【0047】
図１はＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼおよび改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｅ９Ｋ、Ｐ６Ｓ／Ｅ９Ｋ、Ｐ６Ｓ、Ｋ５３Ｎ／Ｋ５６Ｑ／Ｅ５７Ｄ、Ｓ３０Ｎ／Ｋ５３Ｎ／Ｋ５６Ｑ／Ｅ５７Ｄ、Ｓ３０Ｎ、Ｄ２３８Ｎ、Ｑ５０９Ｒ、Ｑ５０９Ｋ、Ｅ７４４Ｋ、Ｅ７９９Ｇ、Ｅ７９９Ｇ／Ｅ８００Ａ）の３．６ｋｂを増幅した結果を示す。それぞれ１、２、５、１０Ｕから増幅し、５Ｕ、１０Ｕからバンドが確認できる。さらに、Ｑ５０９Ｒ、Ｑ５０９Ｋ、Ｅ７４４Ｋは２Ｕからでも増幅でき、より少ない酵素量で効率よく増幅ができることが分かった。
【0048】
表２に３．６ｋｂ、表３に８．５ｋｂの増幅結果を様々なＤＮＡポリメラーゼ、および変異体で実施し、その結果をまとめたものを示す。○は増幅したことを、△は増幅したがバンドが薄い、もしくは非特異バンドが多いことを、×は増幅しないことを示す。
【0049】
Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼはＥ５０７Ｋ、Ｅ５０７Ｑ、Ｅ７４２Ｋ、Ｅ７４２Ｒの変異体で増幅成功率が上がり、３．６ｋｂを増幅できる結果が得られた。５０７位、７４２位はＴｔｈやＺ０５では５０９位、７４４位に相当し、Ｔｔｈ、Ｚ０５でもこの箇所への変異が性能の向上を示した。しかし、８．５ｋｂの増幅についてはＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼやその変異体でも増幅しない結果となった。一方、逆転写能をもつＴｔｈやＺ０５のＱ５０９Ｋ、Ｑ５０９Ｒ、Ｅ７４４Ｋ、Ｅ７４４Ｒ変異体では８．５ｋｂをも増幅することが確認できた。逆転写能をもつＤＮＡポリメラーゼの方が性能が高く、変異の挿入により、より高い性能を発揮することがわかった。また今回の変異箇所はＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼとして既に報告されているものであるが、Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼでは効果が見られないものも多く存在した。
【0050】
【表2】
【0051】
【表3】
【0052】
実施例４
高速ＰＣＲ
実施例２で作製したＤＮＡポリメラーゼを用いて、伸長時間を短くした高速ＰＣＲを実施した。ＰＣＲにはＫＯＤ Ｄａｓｈ（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ、およびを０．２ｍＭ ｄＮＴＰｓ、ヒトβ－グロビン３．６ｋｂを増幅する１５ｐｍｏｌのプライマー（配列番号６及び７）、５０ｎｇのヒトゲノムＤＮＡ（Ｒｏｃｈｅ製）、５Ｕの酵素を含む５０μｌの反応液を９４℃、２分の前反応の後、９８℃、１０秒→６０℃、１０秒→６８℃、１５秒、１分、または２分を３５サイクル繰り返すスケジュールでＰＣＲ ｓｙｓｔｅｍ ＧｅｎｅＡｍｐ９７００（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍ）を用いてＰＣＲを行った。反応終了後、５μｌの反応液について１％アガロース電気泳動を行い、エチジウムブロマイド染色し、紫外線照射下増幅ＤＮＡ断片の増幅量を確認した。
高速ＰＣＲ
実施例２で作製したＤＮＡポリメラーゼを用いて、伸長時間を短くした高速ＰＣＲを実施した。ＰＣＲにはＫＯＤ Ｄａｓｈ（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ、およびを０．２ｍＭ ｄＮＴＰｓ、ヒトβ－グロビン３．６ｋｂを増幅する１５ｐｍｏｌのプライマー（配列番号６及び７）、５０ｎｇのヒトゲノムＤＮＡ（Ｒｏｃｈｅ製）、５Ｕの酵素を含む５０μｌの反応液を９４℃、２分の前反応の後、９８℃、１０秒→６０℃、１０秒→６８℃、１５秒、１分、または２分を３５サイクル繰り返すスケジュールでＰＣＲ ｓｙｓｔｅｍ ＧｅｎｅＡｍｐ９７００（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍ）を用いてＰＣＲを行った。反応終了後、５μｌの反応液について１％アガロース電気泳動を行い、エチジウムブロマイド染色し、紫外線照射下増幅ＤＮＡ断片の増幅量を確認した。
【0053】
図２は、伸長時間（６８℃での反応時間）が１５秒と２分の高速ＰＣＲにおいて、５ＵのＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼと種々な改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｅ９Ｋ、Ｐ６Ｓ／Ｅ９Ｋ、Ｐ６Ｓ、Ｋ５３Ｎ／Ｋ５６Ｑ／Ｅ５７Ｄ、Ｓ３０Ｎ／Ｋ５３Ｎ／Ｋ５６Ｑ／Ｅ５７Ｄ、Ｓ３０Ｎ、Ｄ２３８Ｎ、Ｑ５０９Ｒ、Ｑ５０９Ｋ、Ｅ７４４Ｋ、Ｅ７９９Ｇ、Ｅ７９９Ｇ／Ｅ８００Ａ）を用い、ヒトβ－グロビン３．６ｋｂの増幅量を１％アガロース電気泳動で比較した結果を示す。２分の増幅ではＥ９Ｋ、Ｐ６Ｓ／Ｅ９Ｋ、Ｐ６Ｓ、Ｓ３０Ｎ／Ｋ５３Ｎ／Ｋ５６Ｑ／Ｅ５７Ｄ、Ｓ３０Ｎ、Ｄ２３８Ｎ、Ｑ５０９Ｒ、Ｑ５０９Ｋ、Ｅ７４４Ｋ、Ｅ７９９Ｇ／Ｅ８００Ａで増幅が確認できるが、なかでもＱ５０９Ｒ、Ｑ５０９Ｋ、Ｅ７４４Ｋはバンド強度が強く、明確なバンドが確認できた。１５秒の増幅ではＱ５０９Ｒ、Ｑ５０９Ｋ、Ｅ７４４Ｋの変異体でしか増幅が確認できなかった。
【0054】
表４に実施例４の増幅結果を様々なＤＮＡポリメラーゼおよび変異体で実施し、結果をまとめたものを示す。○は増幅したことを、△は増幅したがバンドが薄い、もしくは非特異バンドが多いことを、×は増幅しないことを示す。
【0055】
Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼでは、いずれの増幅時間でも増幅できないところ、Ｅ５０７Ｋ、Ｅ５０７Ｑ、Ｅ７４２Ｋ、Ｅ７４２Ｒの変異体では、すべての増幅時間でバンドが確認された。ＴｔｈやＺ０５ ＤＮＡポリメラーゼのＱ５０９Ｋ、Ｑ５０９Ｒ、Ｅ７４４Ｋ、Ｅ７４４Ｒ変異体でも、すべての増幅時間でバンドが確認され、かつ、Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼのＥ５０７Ｋ、Ｅ５０７Ｑ、Ｅ７４２Ｋ、Ｅ７４２Ｒ変異体では、増幅量が減ってしまった１５秒の増幅時間でも、明確なバンドが確認できた。汎用的なＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼおよびその変異体よりも、逆転写活性を持つＴｔｈ、Ｚ０５ ＤＮＡポリメラーゼの変異体の方がより高速ＰＣＲに適した性能を持っていることが分かった。
【0056】
【表4】
【0057】
実施例５
血液からの直接増幅
実施例２で作成したＤＮＡポリメラーゼを用いて、反応液中に血液を直接添加してＰＣＲを実施した。ＰＣＲにはＫＯＤ Ｄａｓｈ（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ、およびを０．２ｍＭ ｄＮＴＰｓ、ヒトβ－グロビン３．６ｋｂを増幅する１５ｐｍｏｌのプライマー（配列番号６及び７）、血液を１μｌ、３μｌ、または５μｌ、５Ｕの酵素を含む５０μｌの反応液を９４℃、２分の前反応の後、９８℃、１０秒→６０℃、１０秒→６８℃、４分を３５サイクル繰り返すスケジュールでＰＣＲ ｓｙｓｔｅｍ ＧｅｎｅＡｍｐ９７００（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍ社）を用いてＰＣＲを行った。反応終了後、５μｌの反応液について１％アガロース電気泳動を行い、エチジウムブロマイド染色し、紫外線照射下、増幅ＤＮＡ断片の増幅量を確認した。
血液からの直接増幅
実施例２で作成したＤＮＡポリメラーゼを用いて、反応液中に血液を直接添加してＰＣＲを実施した。ＰＣＲにはＫＯＤ Ｄａｓｈ（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ、およびを０．２ｍＭ ｄＮＴＰｓ、ヒトβ－グロビン３．６ｋｂを増幅する１５ｐｍｏｌのプライマー（配列番号６及び７）、血液を１μｌ、３μｌ、または５μｌ、５Ｕの酵素を含む５０μｌの反応液を９４℃、２分の前反応の後、９８℃、１０秒→６０℃、１０秒→６８℃、４分を３５サイクル繰り返すスケジュールでＰＣＲ ｓｙｓｔｅｍ ＧｅｎｅＡｍｐ９７００（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍ社）を用いてＰＣＲを行った。反応終了後、５μｌの反応液について１％アガロース電気泳動を行い、エチジウムブロマイド染色し、紫外線照射下、増幅ＤＮＡ断片の増幅量を確認した。
【0058】
図３は、反応液に血液１μｌ、５μｌを添加し、５ＵのＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ、及び種々な改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｅ９Ｋ、Ｐ６Ｓ／Ｅ９Ｋ、Ｐ６Ｓ、Ｋ５３Ｎ／Ｋ５６Ｑ／Ｅ５７Ｄ、Ｓ３０Ｎ／Ｋ５３Ｎ／Ｋ５６Ｑ／Ｅ５７Ｄ、Ｓ３０Ｎ、Ｄ２３８Ｎ、Ｑ５０９Ｒ、Ｑ５０９Ｋ、Ｅ７４４Ｋ、Ｅ７９９Ｇ、Ｅ７９９Ｇ／Ｅ８００Ａ）を用い、ヒトβ－グロビン３．６ｋｂの増幅量を１％アガロース電気泳動で比較した結果を示す。血液１μｌからの増幅ではＱ５０９Ｒ、Ｑ５０９Ｋ、Ｅ７４４Ｋで明確なバンドが確認できた。血液５μｌからの増幅では、増幅量は下がるものの、Ｑ５０９Ｒ、Ｑ５０９Ｋの変異体で、増幅を確認することができた。
【0059】
表５に様々なＤＮＡポリメラーゼ、および変異体で１μｌ、３μｌ及び５μｌの血液からの増幅を実施し、その結果をまとめたものを示す。○は増幅したことを、△は増幅したがバンドが薄い、もしくは非特異バンドが多いことを、×は増幅しないことを示す。
【0060】
Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼでは血液からの増幅ができないところ、Ｅ５０７Ｋ、Ｅ５０７Ｑ、Ｅ７４２Ｋ、Ｅ７４２Ｒの変異体では血液１μｌから増幅ができることが確認された。それ以上の血液を添加したものではＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼ及びその変異体では増幅できなかった。ＴｔｈやＺ０５ ＤＮＡポリメラーゼにおいては、野生型や大部分の変異体は増幅が見られないものの、Ｑ５０９Ｋ、Ｑ５０９Ｒ、Ｅ７４４Ｋ、Ｅ７４４Ｒ変異体では血液１、３μｌからの増幅が可能であった。また血液５μｌからでもＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼのＱ５０９Ｋ、Ｑ５０９Ｒでは増幅が確認できた。汎用的なＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼ及びその変異体より、逆転写活性を持つＴｔｈ、Ｚ０５ ＤＮＡポリメラーゼの変異体の方が、より血液による阻害を受けにくいことが分かった。
【0061】
【表5】
【0062】
実施例６
逆転写能を有するＤＮＡポリメラーゼを用いたＲＴ－ＰＣＲ
実施例２で作製したＤＮＡポリメラーゼを用いて、ＲＮＡから１ステップでのＲＴ－ＰＣＲを実施した。ＲＴ－ＰＣＲにはＴＫＯＤ －Ｐｌｕｓ－ Ｖｅｒ．２（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ、および２．５ｍＭ Ｍｎ（ＯＡｃ）２、０．４ｍＭ ｄＮＴＰｓ、ヒトβ－グロビンを増幅する０．４ｐｍｏｌのプライマー（配列番号１０及び１１）、１／３００００倍希釈 ＳＹＢＲ（登録商標） ＧｒｅｅｎＩ、１Ｕの抗体混合酵素を含む２０μｌの反応液にＨｅＬａ ｔｏｔａｌ ＲＮＡを２００ｎｇ、２０ｎｇ、２ｎｇ、０．２ｎｇになるよう添加し、９０℃、３０秒の前反応の後、６１℃、２０分の逆転写反応、９５℃、６０秒での再度、前反応後、９５℃、１５秒→６０℃、１５秒→７４℃、４５分を４０サイクル繰り返すスケジュールでＬＣ９６（Ｒｏｃｈｅ製）を用いてリアルタイムＰＣＲを行った。酵素にはＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｋ、Ｅ７４４Ｒ）を使用した。
逆転写能を有するＤＮＡポリメラーゼを用いたＲＴ－ＰＣＲ
実施例２で作製したＤＮＡポリメラーゼを用いて、ＲＮＡから１ステップでのＲＴ－ＰＣＲを実施した。ＲＴ－ＰＣＲにはＴＫＯＤ －Ｐｌｕｓ－ Ｖｅｒ．２（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ、および２．５ｍＭ Ｍｎ（ＯＡｃ）２、０．４ｍＭ ｄＮＴＰｓ、ヒトβ－グロビンを増幅する０．４ｐｍｏｌのプライマー（配列番号１０及び１１）、１／３００００倍希釈 ＳＹＢＲ（登録商標） ＧｒｅｅｎＩ、１Ｕの抗体混合酵素を含む２０μｌの反応液にＨｅＬａ ｔｏｔａｌ ＲＮＡを２００ｎｇ、２０ｎｇ、２ｎｇ、０．２ｎｇになるよう添加し、９０℃、３０秒の前反応の後、６１℃、２０分の逆転写反応、９５℃、６０秒での再度、前反応後、９５℃、１５秒→６０℃、１５秒→７４℃、４５分を４０サイクル繰り返すスケジュールでＬＣ９６（Ｒｏｃｈｅ製）を用いてリアルタイムＰＣＲを行った。酵素にはＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｋ、Ｅ７４４Ｒ）を使用した。
【0063】
図４は、ＲＴ－ＰＣＲの増幅曲線、融解曲線の結果を、表６にはそれぞれのＣｑ値、ＰＣＲ効率をまとめた結果を示す。野生型のＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼは立ち上がりが遅く、反応効率も６０％に満たず低いところ、変異体では立ち上がりが早く、ＰＣＲ効率も７０～８０％と高かった。改変の影響で性能が向上したためで、Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼでは実施することができないＲＴ－ＰＣＲにおいても、逆転写能をもつＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼを改変した方がメリットは大きい。
【0064】
【表6】
【0065】
実施例７
逆転写能をもつＤＮＡポリメラーゼを用いたＲＴ－ＰＣＲ
実施例２で作製したＤＮＡポリメラーゼを用いて、ＲＮＡからの１ステップでのＲＴ－ＰＣＲを実施した。ＲＴ－ＰＣＲにはＫＯＤ －Ｐｌｕｓ－ Ｖｅｒ．２（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ及び２．５ｍＭ Ｍｎ（ＯＡｃ）２、０．４ｍＭ ｄＮＴＰｓ、β-Ａｃｔｉｎを増幅する４ｐｍｏｌのプライマー（配列番号１０及び１１）、１／３００００倍希釈 ＳＹＢＲ（登録商標） ＧｒｅｅｎＩ、１Ｕの抗体混合酵素を含む２０μｌの反応液にＨｅＬａ ｔｏｔａｌ ＲＮＡを１０ｎｇ、１ｎｇ、０．１ｎｇ、０．０１ｎｇになるよう添加し、９０℃、３０秒の前反応の後、６０℃、１、５または１０分の逆転写反応、９５℃、６０秒での再度、前反応後、９５℃、１５秒→６０℃、６０秒を４５サイクル繰り返すスケジュールで、ＬＣ９６（Ｒｏｃｈｅ）を用いてリアルタイムＰＣＲを行った。酵素にはＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｒ、Ｅ７７４Ｋ）を使用した。
逆転写能をもつＤＮＡポリメラーゼを用いたＲＴ－ＰＣＲ
実施例２で作製したＤＮＡポリメラーゼを用いて、ＲＮＡからの１ステップでのＲＴ－ＰＣＲを実施した。ＲＴ－ＰＣＲにはＫＯＤ －Ｐｌｕｓ－ Ｖｅｒ．２（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ及び２．５ｍＭ Ｍｎ（ＯＡｃ）２、０．４ｍＭ ｄＮＴＰｓ、β-Ａｃｔｉｎを増幅する４ｐｍｏｌのプライマー（配列番号１０及び１１）、１／３００００倍希釈 ＳＹＢＲ（登録商標） ＧｒｅｅｎＩ、１Ｕの抗体混合酵素を含む２０μｌの反応液にＨｅＬａ ｔｏｔａｌ ＲＮＡを１０ｎｇ、１ｎｇ、０．１ｎｇ、０．０１ｎｇになるよう添加し、９０℃、３０秒の前反応の後、６０℃、１、５または１０分の逆転写反応、９５℃、６０秒での再度、前反応後、９５℃、１５秒→６０℃、６０秒を４５サイクル繰り返すスケジュールで、ＬＣ９６（Ｒｏｃｈｅ）を用いてリアルタイムＰＣＲを行った。酵素にはＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｒ、Ｅ７７４Ｋ）を使用した。
【0066】
図５に、ＲＴ－ＰＣＲの増幅曲線、融解曲線、Ｃｔ値、ＰＣＲ効率をまとめた結果を示す。野生型のＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼは逆転写時間が短いほど、Ｃｔ値の間隔が詰まり、逆転写時間１分間ではｒ2が０．９４７とかなり低く、ＰＣＲ効率も５８６％であり、適切な範囲である９０～１１０％から大きく外れている。一方、変異体では逆転写時間が短くとも、逆転写時間１分間ではｒ2が０．９９８および０．９９９と高く、ＰＣＲ効率も９３％および９５％であり、適切な範囲である９０～１１０％に入っている。これは改変の影響で性能が向上したためであり、Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼではできないＲＴ－ＰＣＲにおいても、逆転写能をもつＤＮＡポリメラーゼを改変した方がメリットは大きい。
【0067】
実施例８
改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｋ、Ｑ５０９Ｒ）の保存安定性
実施例２で作製したＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｋ、Ｑ５０９Ｒ）を用いたＭａｓｔｅｒ Ｍｉｘの保存安定性について評価を実施した。Ｍａｓｔｅｒ ＭｉｘにはＫＯＤ －Ｐｌｕｓ－ Ｖｅｒ．２（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、２０μｌ系に０．４ｍＭ ｄＮＴＰｓおよび１Ｕの抗体混合酵素を含むように２×Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘを調製した。これを－２０℃と３７℃で４週間保存し、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｋ、Ｑ５０９Ｒ）の安定性の違いについて評価した。評価系としては、ＲＮＡからの１ステップでのＲＴ－ＰＣＲを実施した。調製したＭａｓｔｅｒ Ｍｉｘを用いて、１×Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ及び２．５ｍＭ Ｍｎ（ＯＡｃ）２、１０ｐｍｏｌのプライマー（配列番号１２及び１３）、４ｐｍｏｌのプローブ（配列番号１４）、１Ｕの抗体混合酵素を含む２０μｌの反応液にエンテロウィルスＲＮＡを６２５コピー分の量を添加し、９０℃、３０秒の前反応の後、６０℃、５分の逆転写反応、９５℃、６０秒での再度、前反応後、９５℃、５秒→６０℃、５秒を４５サイクル繰り返すスケジュールで、ＬＣ９６（Ｒｏｃｈｅ製）を用いてリアルタイムＰＣＲを行った。
改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｋ、Ｑ５０９Ｒ）の保存安定性
実施例２で作製したＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｋ、Ｑ５０９Ｒ）を用いたＭａｓｔｅｒ Ｍｉｘの保存安定性について評価を実施した。Ｍａｓｔｅｒ ＭｉｘにはＫＯＤ －Ｐｌｕｓ－ Ｖｅｒ．２（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、２０μｌ系に０．４ｍＭ ｄＮＴＰｓおよび１Ｕの抗体混合酵素を含むように２×Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘを調製した。これを－２０℃と３７℃で４週間保存し、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｋ、Ｑ５０９Ｒ）の安定性の違いについて評価した。評価系としては、ＲＮＡからの１ステップでのＲＴ－ＰＣＲを実施した。調製したＭａｓｔｅｒ Ｍｉｘを用いて、１×Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ及び２．５ｍＭ Ｍｎ（ＯＡｃ）２、１０ｐｍｏｌのプライマー（配列番号１２及び１３）、４ｐｍｏｌのプローブ（配列番号１４）、１Ｕの抗体混合酵素を含む２０μｌの反応液にエンテロウィルスＲＮＡを６２５コピー分の量を添加し、９０℃、３０秒の前反応の後、６０℃、５分の逆転写反応、９５℃、６０秒での再度、前反応後、９５℃、５秒→６０℃、５秒を４５サイクル繰り返すスケジュールで、ＬＣ９６（Ｒｏｃｈｅ製）を用いてリアルタイムＰＣＲを行った。
【0068】
表７に示すように、３７℃、４週間では改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｒ）のみ増幅が確認され、Ｑ５０９Ｒ変異体の方が安定性が高い結果となった。これはリジンの側鎖のアミノ基の求核性がアルギニンの側鎖のグアニジウム基よりも高く、反応性が高いために、Ｂｕｆｆｅｒ成分との化学反応がおき、安定性が低くなったものと考えられる。
【0069】
【表7】
【0070】
実施例９
ＦＴＡカードで保存した血液から直接増幅
実施例２で作成したＤＮＡポリメラーゼを用いて、反応液中に血液を直接添加してＰＣＲを実施した。ＰＣＲにはＫＯＤ ＦＸ（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ、およびを０．４ｍＭ ｄＮＴＰｓ、ヒトβ－グロビン１．３ｋｂを増幅する１５ｐｍｏｌのプライマー（配列番号１５及び１６）、ＦＴＡカード（ＧＥヘルスケア）に血液を貼付したものをφ１．２ｍｍのパンチで抜出したもの１つ、２Ｕの酵素を含む５０μｌの反応液を９４℃、２分の前反応の後、９４℃、３０秒→６０℃、１０秒→６８℃、２分を３０サイクル繰り返すスケジュールでＰＣＲ ｓｙｓｔｅｍ ＧｅｎｅＡｍｐ９７００（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍ製）を用いてＰＣＲを行った。酵素には抗体を混合したＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｋ、Ｑ５０９Ｒ）、Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ、および改変型Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｅ５０７Ｋ、Ｅ５０７Ｒ）使用した。反応終了後、５μｌの反応液について１％アガロース電気泳動を行い、エチジウムブロマイド染色し、紫外線照射下、増幅ＤＮＡ断片の増幅量を確認した。
ＦＴＡカードで保存した血液から直接増幅
実施例２で作成したＤＮＡポリメラーゼを用いて、反応液中に血液を直接添加してＰＣＲを実施した。ＰＣＲにはＫＯＤ ＦＸ（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ、およびを０．４ｍＭ ｄＮＴＰｓ、ヒトβ－グロビン１．３ｋｂを増幅する１５ｐｍｏｌのプライマー（配列番号１５及び１６）、ＦＴＡカード（ＧＥヘルスケア）に血液を貼付したものをφ１．２ｍｍのパンチで抜出したもの１つ、２Ｕの酵素を含む５０μｌの反応液を９４℃、２分の前反応の後、９４℃、３０秒→６０℃、１０秒→６８℃、２分を３０サイクル繰り返すスケジュールでＰＣＲ ｓｙｓｔｅｍ ＧｅｎｅＡｍｐ９７００（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍ製）を用いてＰＣＲを行った。酵素には抗体を混合したＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｋ、Ｑ５０９Ｒ）、Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ、および改変型Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｅ５０７Ｋ、Ｅ５０７Ｒ）使用した。反応終了後、５μｌの反応液について１％アガロース電気泳動を行い、エチジウムブロマイド染色し、紫外線照射下、増幅ＤＮＡ断片の増幅量を確認した。
【0071】
図６は、反応液にＦＴＡカードで保存した血液（φ１．２ｍｍ）を添加し、２ＵのＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｋ、Ｑ５０９Ｒ）、Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ、および改変型Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｅ５０７Ｋ、Ｅ５０７Ｒ）を用い、ヒトβ－グロビン１．３ｋｂの増幅量を１％アガロース電気泳動で比較した結果を示す。野生型のＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ、および改変型Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｅ５０７Ｋ、Ｅ５０７Ｒ）では増幅が見られないものの、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｋ、Ｑ５０９Ｒ）では明確なバンドが確認できた。ＦＴＡカードには核酸を安定化させるため、グアニジンなどの変性剤が含まれており、それらがＰＣＲを阻害することが知られている。Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ及びその変異体より、逆転写活性を持つＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼの変異体の方が、ＦＴＡカードや血液による阻害を受けにくいことが分かった。
【0072】
実施例１０
改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼの血漿由来成分に対する耐性
実施例２で作製したＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼを用いて、反応液中４０％の血漿を持ち込んだ際の影響を評価した。方法として大腸菌ゲノムＤＮＡをスパイクし、リアルタイムＰＣＲを実施した。ＰＣＲにはＴＨＵＮＤＥＲＢＩＲＤ（登録商標）Ｐｒｏｂｅ Ｏｎｅ－ｓｔｅｐ ｑＲＴ－ＰＣＲ Ｋｉｔ（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ及び４ｐｍｏｌの大腸菌特異的プライマー（配列番号１７及び１８）、４ｐｍｏｌのプローブ（配列番号１９）、１Ｕの抗体混合酵素、血漿８μlを含む２０μｌの反応液に大腸菌ゲノムＤＮＡを５ｎｇ、０．５ｎｇ、０．０５ｎｇ、０．００５ｎｇになるよう添加し、９５℃、１分の前反応の後、９５℃、１５秒→６０℃、１５秒を４０サイクル繰り返すスケジュールでリアルタイムＰＣＲを行った。酵素にはＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｒ）を使用した。
改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼの血漿由来成分に対する耐性
実施例２で作製したＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼを用いて、反応液中４０％の血漿を持ち込んだ際の影響を評価した。方法として大腸菌ゲノムＤＮＡをスパイクし、リアルタイムＰＣＲを実施した。ＰＣＲにはＴＨＵＮＤＥＲＢＩＲＤ（登録商標）Ｐｒｏｂｅ Ｏｎｅ－ｓｔｅｐ ｑＲＴ－ＰＣＲ Ｋｉｔ（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ及び４ｐｍｏｌの大腸菌特異的プライマー（配列番号１７及び１８）、４ｐｍｏｌのプローブ（配列番号１９）、１Ｕの抗体混合酵素、血漿８μlを含む２０μｌの反応液に大腸菌ゲノムＤＮＡを５ｎｇ、０．５ｎｇ、０．０５ｎｇ、０．００５ｎｇになるよう添加し、９５℃、１分の前反応の後、９５℃、１５秒→６０℃、１５秒を４０サイクル繰り返すスケジュールでリアルタイムＰＣＲを行った。酵素にはＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｒ）を使用した。
【0073】
図７に、ＲＴ－ＰＣＲの増幅曲線、Ｃｔ値、ＰＣＲ効率をまとめた結果を示す。野生型のＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼは血漿由来の阻害を受け、ｒ2が０．５８０１とかなり低く、ＰＣＲ効率も１４９％であり、適切な範囲である９０～１１０％から大きく外れている。一方、Ｑ５０９Ｒ変異体では逆転写時間が短くとも、逆転写時間１分間ではｒ2が０．９９８と高く、ＰＣＲ効率も９２％であり、適切な範囲である９０～１１０％に入っている。これは改変の影響で血漿由来の成分に対する耐性が向上していたためである。
【0074】
実施例１１
高速ＲＴ－ＰＣＲ検出
実施例２で作製したＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｒ）を用いてエンテロウィルスＲＮＡからの１ステップでのＲＴ－ＰＣＲを実施した。ＲＴ－ＰＣＲにはＫＯＤ －Ｐｌｕｓ－ Ｖｅｒ．２（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ及び２．５ｍＭ Ｍｎ（ＯＡｃ）２、０．４ｍＭ ｄＮＴＰｓ、１０ｐｍｏｌのプライマー（配列番号１２及び１３）、４ｐｍｏｌのプローブ（配列番号１４）、１Ｕの抗体混合酵素を含む２０μｌの反応液にエンテロウィルスＲＮＡを２５００、６２５、１５６、４０、２４．４コピー分の量をそれぞれ添加し、９０℃、３０秒の前反応の後、６０℃、５分の逆転写反応、９５℃、６０秒での再度、前反応後、９５℃、５秒→６０℃、５秒を５０サイクル繰り返すスケジュールで、ＬＣ９６（Ｒｏｃｈｅ製）を用いてリアルタイムＰＣＲを行った。酵素にはＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｒ）を使用した。
高速ＲＴ－ＰＣＲ検出
実施例２で作製したＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｒ）を用いてエンテロウィルスＲＮＡからの１ステップでのＲＴ－ＰＣＲを実施した。ＲＴ－ＰＣＲにはＫＯＤ －Ｐｌｕｓ－ Ｖｅｒ．２（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ及び２．５ｍＭ Ｍｎ（ＯＡｃ）２、０．４ｍＭ ｄＮＴＰｓ、１０ｐｍｏｌのプライマー（配列番号１２及び１３）、４ｐｍｏｌのプローブ（配列番号１４）、１Ｕの抗体混合酵素を含む２０μｌの反応液にエンテロウィルスＲＮＡを２５００、６２５、１５６、４０、２４．４コピー分の量をそれぞれ添加し、９０℃、３０秒の前反応の後、６０℃、５分の逆転写反応、９５℃、６０秒での再度、前反応後、９５℃、５秒→６０℃、５秒を５０サイクル繰り返すスケジュールで、ＬＣ９６（Ｒｏｃｈｅ製）を用いてリアルタイムＰＣＲを行った。酵素にはＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｒ）を使用した。
【0075】
図８に示すように、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｒ）は高速ＲＴ－ＰＣＲにおいて野生型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼと比較して、２４．４コピーのエンテロウィルスを安定して検出することができた。
【0076】
実施例１２
改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼの血液耐性
実施例２で作製したＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼを用いて、リアルタイムＰＣＲを実施した。ＰＣＲにはＴＨＵＮＤＥＲＢＩＲＤ（登録商標）Ｐｒｏｂｅ Ｏｎｅ－ｓｔｅｐ ｑＲＴ－ＰＣＲ Ｋｉｔ（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ及び４ｐｍｏｌのプライマー（配列番号２０及び２１）、４ｐｍｏｌのプローブ（配列番号２２）、４Ｕの抗体混合酵素、血漿１μlを含む２０μｌの反応液を調製し、９５℃、１分の前反応の後、９５℃、１５秒→６０℃、６０秒を４０サイクル繰り返すスケジュールでリアルタイムＰＣＲを行った。酵素にはＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｒ、Ｅ７４４Ｒ）を使用した。
改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼの血液耐性
実施例２で作製したＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼを用いて、リアルタイムＰＣＲを実施した。ＰＣＲにはＴＨＵＮＤＥＲＢＩＲＤ（登録商標）Ｐｒｏｂｅ Ｏｎｅ－ｓｔｅｐ ｑＲＴ－ＰＣＲ Ｋｉｔ（Ｔｏｙｏｂｏ製）添付のＢｕｆｆｅｒを用い、１×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ及び４ｐｍｏｌのプライマー（配列番号２０及び２１）、４ｐｍｏｌのプローブ（配列番号２２）、４Ｕの抗体混合酵素、血漿１μlを含む２０μｌの反応液を調製し、９５℃、１分の前反応の後、９５℃、１５秒→６０℃、６０秒を４０サイクル繰り返すスケジュールでリアルタイムＰＣＲを行った。酵素にはＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｒ、Ｅ７４４Ｒ）を使用した。
【0077】
図９のように、野生型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼでは増幅が確認されないが、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｒ、Ｅ７４４Ｋ）では血液からの増幅が確認された。
【産業上の利用可能性】
【0078】
本発明により、分子生物学の分野において有用な改変されたＤＮＡポリメラーゼ、及びその組成物を提供される。本発明により、核酸増幅において反応阻害がなく、更に反応時間を短縮することができる。本発明は、遺伝子発現解析に際して特に有用であり、研究用途のみならず臨床診断や環境検査等にも利用できる。
【図1】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図5-1】
【図5-2】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
【配列表】