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特許7385296生体試料中のβ－Ｄ－グルカンの免疫学的分析方法、及びβ－Ｄ－グルカン分析用キット
(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B2)
(11)【特許番号】
(24)【登録日】2023-11-14
(45)【発行日】2023-11-22
(54)【発明の名称】生体試料中のβ－Ｄ－グルカンの免疫学的分析方法、及びβ－Ｄ－グルカン分析用キット
(51)【国際特許分類】
G01N 33/53 20060101AFI20231115BHJP
G01N 33/543 20060101ALI20231115BHJP
C07K 16/14 20060101ALI20231115BHJP
C12N 15/13 20060101ALN20231115BHJP
【ＦＩ】
G01N33/53 S
G01N33/543 545A
C07K16/14
C12N15/13
【請求項の数】
12
(21)【出願番号】P 2021505009
(86)(22)【出願日】2020-03-06
(86)【国際出願番号】 JP2020009569
(87)【国際公開番号】W WO2020184409
(87)【国際公開日】2020-09-17
【審査請求日】2022-12-13
(31)【優先権主張番号】P 2019042753
(32)【優先日】2019-03-08
(33)【優先権主張国・地域又は機関】JP
(73)【特許権者】
【識別番号】390037327
【氏名又は名称】積水メディカル株式会社
(74)【代理人】
【識別番号】110000774
【氏名又は名称】弁理士法人 もえぎ特許事務所
(72)【発明者】
【氏名】砂村 栄一郎
(72)【発明者】
【氏名】宮崎 修
(72)【発明者】
【氏名】與谷 卓也
(72)【発明者】
【氏名】北原 慎一郎
(72)【発明者】
【氏名】岩崎 真波
【審査官】海野 佳子
(56)【参考文献】
【文献】特開平０４－３４６７９１（ＪＰ，Ａ）
【文献】特開２００８－２７３９１７（ＪＰ，Ａ）
【文献】Hiroshi TAMURA et al.，Plasma (1-3)-beta-D-glucan assay and immunohistochemical staining of (1-3)-beta-D-glucan in the fungal cell walls using a novel horseshoe crab protein (T-GBF) the specifically binds to (1-3)-beta-D-glucan ，journal of clinical laboratory analysis，Vol.11，1997年01月01日，PP.104-109
(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)
Ｇ０１Ｎ ３３／４８－３３／９８
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合するモノクローナル抗体を二種類使用して、生体試料中のβ－Ｄ－グルカンを分析することを含む、生体試料中のβ－Ｄ－グルカンの免疫学的分析方法。
【請求項2】
前記生体試料が、血液、血漿、又は血清である、請求項１に記載の免疫学的分析方法。
【請求項3】
前記β－Ｄ－グルカンが、（１→３）－β－Ｄ－グルカン及び（１→３）（１→６）－β－Ｄ－グルカンである、請求項１又は２に記載の免疫学的分析方法。
【請求項4】
前記β－Ｄ－グルカンの濃度が１μｇ／ｍＬ以下である、請求項１～３のいずれかに記載の免疫学的分析方法。
【請求項5】
ＥＬＩＳＡを用いる、請求項１～４のいずれかに記載の免疫学的分析方法。
【請求項6】
対象が深在性真菌症に罹患しているかどうかを判定することをさらに含み、前記判定のカットオフ値が、２０ｐｇ／ｍＬである、請求項１～５のいずれかに記載の免疫学的分析方法。
【請求項7】
前記モノクローナル抗体が、リムルス試薬におけるβ－Ｄ－グルカンの分析において競合阻害作用を有する、請求項１～６のいずれかに記載の免疫学的分析方法。
【請求項8】
（ａ）重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合する第１のモノクローナル抗体を固定化した固相を含み、（ｂ）標識物質で標識された、重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合する第２のモノクローナル抗体をさらに含む、生体試料中のβ－Ｄ－グルカン分析用キット。
【請求項9】
前記生体試料が、血液、血漿、又は血清である、請求項８に記載のキット。
【請求項10】
前記β－Ｄ－グルカンが、（１→３）－β－Ｄ－グルカン及び（１→３）（１→６）－β－Ｄ－グルカンである、請求項８又は９に記載のキット。
【請求項11】
前記β－Ｄ－グルカンの濃度が１μｇ／ｍＬ以下である、請求項８～１０のいずれかに記載のキット。
【請求項12】
深在性真菌症に罹患しているかどうかの判定に用いられ、前記判定のカットオフ値が、２０ｐｇ／ｍＬである、請求項８～１１のいずれかに記載のキット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、生体試料中のβ－Ｄ－グルカン（以下、ＢＧと称することがある）の免疫学的分析方法に関する。また、本発明は、生体試料中のＢＧを分析するためのβ－Ｄ－グルカン分析用キットに関する。また、本発明は、重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合するモノクローナル抗体にも関する。
【背景技術】
【0002】
β－Ｄ－グルカンは、複数のグルコース分子がβ型結合により結合した、グルコースのポリマーである。グルコースの１位の炭素原子は他のグルコースの５個の炭素である、１位、２位、３位、４位、及び６位の各々の炭素と結合可能である。自然界のβ－Ｄ－グルカンには、１位と３位（１→３）、１位と４位（１→４）、又は１位と６位（１→６）の結合の組み合わせが多いことが報告されている。
【0003】
β－Ｄ－グルカンは真菌の細胞壁構成成分であり、細菌等の他の微生物に見られない特徴的な物質である。この特徴により、β－Ｄ－グルカン分析は、深在性真菌症の検査に用いられている。深在性真菌症は、抵抗力が弱り免疫不全状態になった患者が罹患する日和見感染症の一種であり、患者は極めて重篤な状態に陥る。代表的な深在性真菌症の原因菌として、Ｃａｎｄｉｄａ属とＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属が挙げられる。これらの原因菌の細胞壁にはＢＧが共通して存在することから、体液中のＢＧの測定が、深在性真菌症感染の補助診断のために使用されている。臨床検体中のβグルカンの構造は、深在性真菌症の原因菌により異なると考えられるが、これらの原因菌には、（１→３）－β－Ｄ－グルカン（以下、（１→３）ＢＧと称することがある）及び（１→３）（１→６）－β－Ｄ－グルカン（以下、（１→３）（１→６）ＢＧと称することがある）から成る細胞壁を有するものが特に多いとされている。
【0004】
現在、カブトガニが持つＢＧへの防御反応を利用したリムルス試薬が、深在性真菌症の検査に使用されている（特許文献１及び２）。このリムルス試薬は、体外診断用医薬品として認可されている。しかしながら、このリムルス試薬を使用する方法は、天然資源であるカブトガニの血液を必要としており、資源の枯渇が懸念されることに加え、一定の品質を保つことにコストがかかる。また、複数工程を必要とする用手法であるためバラつきが出やすいこともこの方法の欠点として挙げられる。
【0005】
近年、リムルス試薬が有する欠点を解消し、ＢＧをより迅速にかつ簡易的に測定するために、ＢＧを認識する抗体を用いてＢＧを測定することが試みられている（特許文献３、非特許文献１～２）。しかしながら、これらの方法に用いられている抗体は、測定感度が悪いものや、測定対象の抗原を２種類の抗体（固定化抗体と標識抗体）でサンドイッチする、いわゆるサンドイッチアッセイに使用するには困難なものであった。また、リムルス試薬と同等の感度及び同様の反応性を有する、ＢＧを認識する抗体を用いた測定系に関しても検討されておらず、リムルス試薬と代替できる可能性のある、ＢＧを測定するための免疫学的分析方法は未だ存在しない状況であった。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0006】
【文献】特許第５０８９３７５号公報
【文献】特許第３５５３６５６号公報
【文献】特開平４－３４６７９１号公報
【非特許文献】
【0007】
【文献】Ｕｓｅ ｏｆ ｂｅｔａ－１，３－ｇｌｕｃａｎ－ｓｐｅｃｉｆｉｃ ａｎｔｉｂｏｄｙ ｔｏ ｓｔｕｄｙ ｔｈｅ ｃｙｓｔ ｗａｌｌ ｏｆ Ｐｎｅｕｍｏｃｙｓｔｉｓ ｃａｒｉｎｉｉ ａｎｄ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｐｎｅｕｍｏｃａｎｄｉｎ Ｂ０ ａｎａｌｏｇ Ｌ－７３３，５６０．Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ Ａｇｅｎｔｓ ａｎｄ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒａｐｙ １９９４ Ｏｃｔ；３８（１０）：２２５８－２２６５。
【文献】Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ａ ｔｗｏ－ｓｉｔｅ ｅｎｚｙｍｅ ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ｔｏ ｍｅａｓｕｒｅ ａｉｒｂｏｒｎｅ ｅｘｐｏｓｕｒｅ ｔｏ （１－３）－ｂｅｔａ－Ｄ－ｇｌｕｃａｎ．Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｍｅｔｈｏｄｓ ２００８ Ａｕｇ ２０；３３７（１）：５５－６２
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0008】
上記のように、ＢＧを認識する抗体を用いてＢＧを測定する従来の技術に関しては、多くの課題が存在した。したがって、検出感度がリムルス試薬と同等であり、リムルス試薬と同様の反応性を示し、高感度であるサンドイッチアッセイを行うことも可能である、抗体を利用したＢＧ分析法が望まれていた。
【課題を解決するための手段】
【0009】
発明者らは、リムルス試薬の様々なＢＧに対する反応性を詳細に解析した。その結果、リムルス試薬は、ＢＧの中で、（１→３）ＢＧ及び（１→３）（１→６）ＢＧに反応することを確認した。
前述のように、深在性真菌症の原因菌種によって、生体試料中のＢＧの構造は異なると考えられ、特に、（１→３）ＢＧ及び（１→３）（１→６）ＢＧが多く存在する。（１→３）（１→６）ＢＧの構造では、β（１→３）結合中にβ（１→６）結合が一定数存在していると考えられる。発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討し、長いβ（１→３）重合をエピトープとして認識する抗体では、β（１→６）結合が障害となり、（１→３）（１→６）ＢＧは認識できないのではないかという可能性に気付いた。そして、リムルス試薬と同様の反応性を有し且つ深在性真菌症の原因菌を高感度で検出するためには、（１→３）ＢＧと、（１→３）（１→６）ＢＧの両方を認識することができる可能性を有する、短いβ（１→３）重合をエピトープとして認識する抗体を作出することが効果的であると考えた。また、短いβ（１→３）重合をエピトープとして認識することで、高感度なサンドイッチアッセイを構築することも可能であると考えた。
そこで、短いβ（１→３）重合をエピトープとして認識する抗体を複数作出した。そして、これらの抗体を用いてサンドイッチアッセイを構築することで、リムルス試薬と同等の感度及び同様の反応性を有するＢＧの測定系を構築することに成功し、本発明を完成するに至った。
具体的に、本発明は以下のとおりである。
＜１＞重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合するモノクローナル抗体を用いて、生体試料中のβ－Ｄ－グルカンを分析すること
を含む、生体試料中のβ－Ｄ－グルカンの免疫学的分析方法。
＜２＞前記生体試料が、血液、血漿、又は血清である、＜１＞に記載の免疫学的分析方法。
＜３＞前記β－Ｄ－グルカンが、（１→３）－β－Ｄ－グルカン及び（１→３）（１→６）－β－Ｄ－グルカンである、＜１＞又は＜２＞に記載の免疫学的分析方法。
＜４＞前記β－Ｄ－グルカンの濃度が１μｇ／ｍＬ以下である、＜１＞～＜３＞のいずれかに記載の免疫学的分析方法。
＜５＞ＥＬＩＳＡを用いる、＜１＞～＜４＞のいずれかに記載の免疫学的分析方法。
＜６＞重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合するモノクローナル抗体を二種類使用する、＜１＞～＜５＞のいずれかに記載の免疫学的分析方法。
＜７＞対象が深在性真菌症に罹患しているかどうかを判定することをさらに含み、前記判定のカットオフ値が、２０ｐｇ/ｍＬである＜１＞～＜６＞のいずれかに記載の免疫学的分析方法。
＜８＞前記モノクローナル抗体が、リムルス試薬におけるβ－Ｄ－グルカンの分析において競合阻害作用を有する、＜１＞～＜７＞のいずれかに記載の免疫学的分析方法。
＜９＞（ａ）重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合する第１のモノクローナル抗体を固定化した固相
を含む、生体試料中のβ－Ｄ－グルカン分析用キット。
＜１０＞（ｂ）標識物質で標識された、重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合する第２のモノクローナル抗体
をさらに含む、＜９＞に記載のキット。
＜１１＞前記生体試料が、血液、血漿、又は血清である、＜９＞又は＜１０＞に記載のキット。
＜１２＞前記β－Ｄ－グルカンが、（１→３）－β－Ｄ－グルカン及び（１→３）（１→６）－β－Ｄ－グルカンである、＜１０＞～＜１２＞のいずれかに記載のキット。
＜１３＞前記β－Ｄ－グルカンの濃度が１μｇ／ｍＬ以下である、＜９＞～＜１２＞のいずれかに記載のキット。
＜１４＞対象が深在性真菌症に罹患しているかどうかの判定に用いられ、前記判定のカットオフ値が、２０ｐｇ／ｍＬである、＜９＞～＜１３＞のいずれかに記載のキット。
＜１５＞重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合するモノクローナル抗体。
前述のように、深在性真菌症の原因菌種によって、生体試料中のＢＧの構造は異なると考えられ、特に、（１→３）ＢＧ及び（１→３）（１→６）ＢＧが多く存在する。（１→３）（１→６）ＢＧの構造では、β（１→３）結合中にβ（１→６）結合が一定数存在していると考えられる。発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討し、長いβ（１→３）重合をエピトープとして認識する抗体では、β（１→６）結合が障害となり、（１→３）（１→６）ＢＧは認識できないのではないかという可能性に気付いた。そして、リムルス試薬と同様の反応性を有し且つ深在性真菌症の原因菌を高感度で検出するためには、（１→３）ＢＧと、（１→３）（１→６）ＢＧの両方を認識することができる可能性を有する、短いβ（１→３）重合をエピトープとして認識する抗体を作出することが効果的であると考えた。また、短いβ（１→３）重合をエピトープとして認識することで、高感度なサンドイッチアッセイを構築することも可能であると考えた。
そこで、短いβ（１→３）重合をエピトープとして認識する抗体を複数作出した。そして、これらの抗体を用いてサンドイッチアッセイを構築することで、リムルス試薬と同等の感度及び同様の反応性を有するＢＧの測定系を構築することに成功し、本発明を完成するに至った。
具体的に、本発明は以下のとおりである。
＜１＞重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合するモノクローナル抗体を用いて、生体試料中のβ－Ｄ－グルカンを分析すること
を含む、生体試料中のβ－Ｄ－グルカンの免疫学的分析方法。
＜２＞前記生体試料が、血液、血漿、又は血清である、＜１＞に記載の免疫学的分析方法。
＜３＞前記β－Ｄ－グルカンが、（１→３）－β－Ｄ－グルカン及び（１→３）（１→６）－β－Ｄ－グルカンである、＜１＞又は＜２＞に記載の免疫学的分析方法。
＜４＞前記β－Ｄ－グルカンの濃度が１μｇ／ｍＬ以下である、＜１＞～＜３＞のいずれかに記載の免疫学的分析方法。
＜５＞ＥＬＩＳＡを用いる、＜１＞～＜４＞のいずれかに記載の免疫学的分析方法。
＜６＞重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合するモノクローナル抗体を二種類使用する、＜１＞～＜５＞のいずれかに記載の免疫学的分析方法。
＜７＞対象が深在性真菌症に罹患しているかどうかを判定することをさらに含み、前記判定のカットオフ値が、２０ｐｇ/ｍＬである＜１＞～＜６＞のいずれかに記載の免疫学的分析方法。
＜８＞前記モノクローナル抗体が、リムルス試薬におけるβ－Ｄ－グルカンの分析において競合阻害作用を有する、＜１＞～＜７＞のいずれかに記載の免疫学的分析方法。
＜９＞（ａ）重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合する第１のモノクローナル抗体を固定化した固相
を含む、生体試料中のβ－Ｄ－グルカン分析用キット。
＜１０＞（ｂ）標識物質で標識された、重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合する第２のモノクローナル抗体
をさらに含む、＜９＞に記載のキット。
＜１１＞前記生体試料が、血液、血漿、又は血清である、＜９＞又は＜１０＞に記載のキット。
＜１２＞前記β－Ｄ－グルカンが、（１→３）－β－Ｄ－グルカン及び（１→３）（１→６）－β－Ｄ－グルカンである、＜１０＞～＜１２＞のいずれかに記載のキット。
＜１３＞前記β－Ｄ－グルカンの濃度が１μｇ／ｍＬ以下である、＜９＞～＜１２＞のいずれかに記載のキット。
＜１４＞対象が深在性真菌症に罹患しているかどうかの判定に用いられ、前記判定のカットオフ値が、２０ｐｇ／ｍＬである、＜９＞～＜１３＞のいずれかに記載のキット。
＜１５＞重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合するモノクローナル抗体。
【発明の効果】
【0010】
本発明によれば、リムルス試薬と同等の感度及び同様の反応性を有する、生体試料中のＢＧの免疫学的分析方法を行うことが可能である。本発明によれば、リムルス試薬と同等の感度及び同様の反応性を有する生体試料中のＢＧの免疫学的分析用キットを提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【0011】
【図1】臨床検体を検出する上での、短いβ（１→３）重合をエピトープとして認識する抗体のメリットを示す模式図である。
【図2】短いβ（１→３）重合をエピトープとして認識する抗体をスクリーニングするための競合ＥＬＩＳＡの結果を示すグラフである。
【図3】８６２０２Ｒ抗体のエピトープ解析結果を示すグラフである。
【図4】８６２０７抗体のエピトープ解析結果を示すグラフである。
【図5】８６２０２Ｒ抗体及び８６２０７抗体を用いて、様々なＢＧを用いてサンドイッチＥＬＩＳＡを行った結果を示すグラフである。
【図6】市販試薬１を用いて、様々なＢＧを分析した結果を示すグラフである。
【図7】市販試薬２を用いて、様々なＢＧを分析した結果を示すグラフである。
【図8】本発明のＢＧの免疫学的分析方法の検出下限の検討結果を表すグラフである。
【図9】本発明のＢＧの免疫学的分析方法と市販試薬１との相関を示すグラフである。
【図10】本発明のＢＧの免疫学的分析方法と市販試薬２との相関を示すグラフである。
【図11】本発明のＢＧの免疫学的分析方法に使用する抗体を用いた市販試薬２による測定の競合実験の結果を示すグラフである。
【図12】リムルス試薬のカットオフ値（２０ｐｇ／ｍＬ）を用いた健常人血漿試料の真菌感染の有無の判定結果を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【0012】
［１］生体試料中のβ－Ｄ－グルカンの免疫学的分析方法
（生体試料）
本発明における「生体試料」としては、主に生体（生物）由来の固形組織及び体液を挙げることができ、体液を用いることが好ましい。本発明における生体試料は、より好ましくは、血液、血清、血漿、尿、唾液、喀痰、涙液、耳漏、又は前立腺液であり、さらに好ましくは血液、血清又は血漿であり、さらに好ましくは深在性真菌症に罹患している疑いのある対象の血液、血清又は血漿であり、最も好ましくはＣａｎｄｉｄａ属及び／又はＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属を原因菌とする深在性真菌症に罹患している疑いのある対象の血液、血清又は血漿である。生体又は対象は、ヒト又は動物（例えば、サル、イヌ、ネコ、マウス、モルモット、ラット、ハムスター、ウマ、ウシ、ブタ、鳥類、及び魚類）を含み、好ましくはヒトである。
（生体試料）
本発明における「生体試料」としては、主に生体（生物）由来の固形組織及び体液を挙げることができ、体液を用いることが好ましい。本発明における生体試料は、より好ましくは、血液、血清、血漿、尿、唾液、喀痰、涙液、耳漏、又は前立腺液であり、さらに好ましくは血液、血清又は血漿であり、さらに好ましくは深在性真菌症に罹患している疑いのある対象の血液、血清又は血漿であり、最も好ましくはＣａｎｄｉｄａ属及び／又はＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属を原因菌とする深在性真菌症に罹患している疑いのある対象の血液、血清又は血漿である。生体又は対象は、ヒト又は動物（例えば、サル、イヌ、ネコ、マウス、モルモット、ラット、ハムスター、ウマ、ウシ、ブタ、鳥類、及び魚類）を含み、好ましくはヒトである。
【0013】
本発明の免疫学的分析方法では、必要に応じて、生体試料の前処理を行う。前処理としては、例えば、アルカリ処理及び熱処理を挙げることができ、又はこれらの処理を組み合わせることもできる。処理時間、アルカリ溶液のｐＨ、アルカリ試薬の種類、処理温度等は、生体試料の種類等に応じて、適宜設定すればよい。
【0014】
（β－Ｄ－グルカン）
本明細書において、「β－Ｄ－グルカン」及び「ＢＧ」は、複数のグルコース分子がβ型結合により結合した、グルコースのポリマーを意味する。ＢＧは真菌の細胞壁構成成分であり、体液中のＢＧの測定が、深在性真菌症感染の補助診断のために使用されている。ＢＧとしては、（１→３）－β－Ｄ－グルカン、（１→３）（１→６）－β－Ｄ－グルカン、（１→３）（１→４）－β－Ｄ－グルカン（オオムギ由来βグルカン、リケナン等）等が例示できる。本発明の免疫学的分析方法において、検出対象の生体試料中のβ－Ｄ－グルカンは、好ましくは（１→３）－β－Ｄ－グルカン及び／又は（１→３）（１→６）－β－Ｄ－グルカンである。
本明細書において、「β－Ｄ－グルカン」及び「ＢＧ」は、複数のグルコース分子がβ型結合により結合した、グルコースのポリマーを意味する。ＢＧは真菌の細胞壁構成成分であり、体液中のＢＧの測定が、深在性真菌症感染の補助診断のために使用されている。ＢＧとしては、（１→３）－β－Ｄ－グルカン、（１→３）（１→６）－β－Ｄ－グルカン、（１→３）（１→４）－β－Ｄ－グルカン（オオムギ由来βグルカン、リケナン等）等が例示できる。本発明の免疫学的分析方法において、検出対象の生体試料中のβ－Ｄ－グルカンは、好ましくは（１→３）－β－Ｄ－グルカン及び／又は（１→３）（１→６）－β－Ｄ－グルカンである。
【0015】
（（１→３）－β－Ｄ－グルカン）
本明細書において、「（１→３）－β－Ｄ－グルカン」及び「（１→３）ＢＧ」は、グルコースの１位の炭素と他のグルコースの３位の炭素とがβ型の結合様式により結合したグルカンを意味する。（１→３）ＢＧは、３重らせん構造という独特の構造を有する。
（１→３）ＢＧとしては、パキマン、カードラン、ラミナリテトラオース、パラミロン、カルボキシメチルパキマン、カルボキシメチルカードラン、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属真菌の細胞壁に存在する（１→３）ＢＧ、及びＣａｎｄｉｄａ属真菌の細胞壁に存在する（１→３）ＢＧが例示できる。
本明細書において、「（１→３）－β－Ｄ－グルカン」及び「（１→３）ＢＧ」は、グルコースの１位の炭素と他のグルコースの３位の炭素とがβ型の結合様式により結合したグルカンを意味する。（１→３）ＢＧは、３重らせん構造という独特の構造を有する。
（１→３）ＢＧとしては、パキマン、カードラン、ラミナリテトラオース、パラミロン、カルボキシメチルパキマン、カルボキシメチルカードラン、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属真菌の細胞壁に存在する（１→３）ＢＧ、及びＣａｎｄｉｄａ属真菌の細胞壁に存在する（１→３）ＢＧが例示できる。
【0016】
本明細書では、（１→３）ＢＧの構造において、３重らせん構造の外側の側鎖に（１→６）様式でグルコースが結合したものを、（１→３）（１→６）－β－Ｄ－グルカン、又は（１→３）（１→６）ＢＧと称する。（１→３）（１→６）ＢＧとしては、ラミナリン、ジゾフィラン、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属真菌の細胞壁に存在する（１→３）（１→６）ＢＧ、及びＣａｎｄｉｄａ属真菌の細胞壁に存在する（１→３）（１→６）ＢＧが例示できる。（１→３）（１→６）ＢＧは、３重らせん構造の外側の側鎖に（１→６）様式でグルコースが結合した構造を有しており、長いβ（１→３）重合をエピトープとして認識する抗体では、３重らせん構造の外側の側鎖にある（１→６）様式で結合したグルコースが前記抗体の結合を阻害し、（１→３）（１→６）ＢＧを認識できないと考えられる（図１）。
【0017】
本発明において使用されるモノクローナル抗体は、好ましくは、（１→４）－β－Ｄ－グルカン、（１→６）－β－Ｄ－グルカン、（１→６）－α－Ｄ－グルカン、（１→４）（１→６）－α－Ｄ－グルカン、（１→６）（１→６）－α－Ｄ－グルカン、並びに（１→４）－α－Ｄ－グルカンのいずれの構造とも反応しない。
具体的には、本発明において使用されるモノクローナル抗体は、好ましくは、（１→４）－β－Ｄ－グルカンであるマンナン及びカルボキシメチルセルロース；（１→６）－β－Ｄ－グルカンであるパルスタン；（１→６）－α－Ｄ－グルカンであるデキストラン；（１→４）（１→６）－α－Ｄ－グルカンであるグリコーゲン及びアミロペクチン；（１→６）（１→６）－α－Ｄ－グルカンであるプルラン；並びに（１→４）－α－Ｄ－グルカンであるアミロースのいずれとも反応しない。
具体的には、本発明において使用されるモノクローナル抗体は、好ましくは、（１→４）－β－Ｄ－グルカンであるマンナン及びカルボキシメチルセルロース；（１→６）－β－Ｄ－グルカンであるパルスタン；（１→６）－α－Ｄ－グルカンであるデキストラン；（１→４）（１→６）－α－Ｄ－グルカンであるグリコーゲン及びアミロペクチン；（１→６）（１→６）－α－Ｄ－グルカンであるプルラン；並びに（１→４）－α－Ｄ－グルカンであるアミロースのいずれとも反応しない。
【0018】
本明細書において「深在性真菌症」とは、真菌が肺、肝臓、腎臓、又は脳などの体の深部に入り込んで感染を起こす状態を意味する。深在性真菌症は、臓器移植を受けた患者及び免疫抑制薬を投与されている患者において主に発生する。深在性真菌症の原因菌としては、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属真菌及びＣａｎｄｉｄａ属真菌が例示でき、本発明の免疫学的分析方法では、これらの真菌の細胞壁に存在するＢＧを効果的に分析することができる。
【0019】
（重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合するモノクローナル抗体）
本発明において使用されるモノクローナル抗体は、重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合するモノクローナル抗体である。「重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合する」とは、重合度が４のβ（１→３）結合をエピトープとして認識することを意味する。なお、本明細書において「重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合するモノクローナル抗体を用いて、生体試料中のβ－Ｄ－グルカンを分析すること」は、生体試料と当該モノクローナル抗体とを接触させること、及び、得られた測定値をカットオフ値と比較することを意味する。
重合度が「４」とは、グルコースが４個重合していることを意味する。
本発明において使用される抗（１→３）ＢＧ抗体は、好ましくは遊離抗原濃度が１μｇ／ｍＬ以下において、より好ましくは遊離抗原濃度が１００ｎｇ／ｍＬ以下において、ＢＧと、好ましくは（１→３）ＢＧ及び／又は（１→３）（１→６）ＢＧと反応する。
本発明において使用されるモノクローナル抗体の具体例としては、ＮＩＴＥ ＢＰ－０２７２３であるハイブリドーマから産生されるモノクローナル抗体の８６２０２Ｒ抗体、ＮＩＴＥ ＢＰ－０２７２４であるハイブリドーマから産生されるモノクローナル抗体の８６２０７抗体が挙げられる。
本発明において使用されるモノクローナル抗体は、重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合するモノクローナル抗体である。「重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合する」とは、重合度が４のβ（１→３）結合をエピトープとして認識することを意味する。なお、本明細書において「重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合するモノクローナル抗体を用いて、生体試料中のβ－Ｄ－グルカンを分析すること」は、生体試料と当該モノクローナル抗体とを接触させること、及び、得られた測定値をカットオフ値と比較することを意味する。
重合度が「４」とは、グルコースが４個重合していることを意味する。
本発明において使用される抗（１→３）ＢＧ抗体は、好ましくは遊離抗原濃度が１μｇ／ｍＬ以下において、より好ましくは遊離抗原濃度が１００ｎｇ／ｍＬ以下において、ＢＧと、好ましくは（１→３）ＢＧ及び／又は（１→３）（１→６）ＢＧと反応する。
本発明において使用されるモノクローナル抗体の具体例としては、ＮＩＴＥ ＢＰ－０２７２３であるハイブリドーマから産生されるモノクローナル抗体の８６２０２Ｒ抗体、ＮＩＴＥ ＢＰ－０２７２４であるハイブリドーマから産生されるモノクローナル抗体の８６２０７抗体が挙げられる。
【0020】
本明細書において、重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンと「反応する」、重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンを「認識する」、重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンと「結合する」は、同義で用いられるが、これらの例示に限定されることはなく、最も広義に解釈する必要がある。抗体が抗原（化合物）と「反応する」か否かの確認は、抗原固相化ＥＬＩＳＡ法、競合ＥＬＩＳＡ法、サンドイッチＥＬＩＳＡ法などにより行うことができるほか、表面プラズモン共鳴（ｓｕｒｆａｃｅ ｐｌａｓｍｏｎ ｒｅｓｏｎａｎｃｅ）の原理を利用した方法（ＳＰＲ法）などにより行うことができる。ＳＰＲ法は、Ｂｉａｃｏｒｅ（登録商標）の名称で市販されている、装置、センサー、試薬類を使用して行うことができる。
【0021】
本発明に使用される抗体と、ある化合物が「反応しない」とは、本発明に使用される抗体がある化合物と実質的に反応しないことをいい、「実質的に反応しない」とは、例えば、上記ＳＰＲ法に基づき、Ｂｉａｃｏｒｅ（登録商標）Ｔ１００やＴ２００を使用し、本発明の抗体を固定化して測定を行った場合に、本発明に使用される抗体の反応性の増強が認められないことをいう。詳細には、抗体と化合物との反応性が、コントロール（化合物非添加）の反応性と比べて有意な差がないことをいう。上記ＳＰＲ法以外の当業者に周知の方法又は手段によっても「実質的に反応しない」ことを確認できるのはいうまでもない。
【0022】
本発明の免疫学的分析方法において使用されるモノクローナル抗体は、本発明の効果が得られる限りにおいて、該モノクローナル抗体の機能を有する断片を含む。例えば、モノクローナル抗体の酵素的消化により得られる該モノクローナル抗体のＦａｂ部分を含む機能性断片、遺伝子組換えによって作製される該モノクローナル抗体のＦａｂ部分を含む機能性断片、及びファージディスプレイ法で作製されたｓｃＦｖを含む機能性断片等が挙げられる。
【0023】
本発明の免疫学的分析方法において使用される抗体は、抗原（免疫原）としてラミナリテトラオースなどの重合度が４の（１→３）ＢＧをリン酸緩衝生理食塩水などの溶媒に溶解し、この溶液を動物に投与して免疫することにより製造できる。抗原（免疫原）としてラミナリヘプタオースなどの重合度が５以上の（１→３）ＢＧを用いて、重合度が４の（１→３）ＢＧに結合する抗体を産生するハイブリドーマをスクリーニングしてもよい。必要に応じて前記溶液に適宜のアジュバントを添加した後、エマルジョンを用いて免疫を行ってもよい。アジュバントとしては、油中水型乳剤、水中油中水型乳剤、水中油型乳剤、リポソーム、水酸化アルミニウムゲルなどの汎用されるアジュバントのほか、生体成分由来のタンパク質やペプチド性物質などを用いてもよい。例えば、フロイントの不完全アジュバント又はフロイントの完全アジュバントなどを好適に用いることができる。アジュバントの投与経路、投与量、投与時期は特に限定されないが、抗原を免疫する動物において所望の免疫応答を増強できるように適宜選択することが望ましい。
【0024】
免疫に用いる動物の種類も特に限定されないが、哺乳動物が好ましく、例えばマウス、ラット、ウシ、ウサギ、ヤギ、ヒツジ、アルパカなどを用いることができ、より好ましくはマウス又はラットを用いることができる。動物の免疫は、一般的な手法に従って行えばよく、例えば、抗原の溶液、好ましくはアジュバントとの混合物を動物の皮下、皮内、静脈、又は腹腔内に注射することにより免疫を行うことができる。免疫応答は、一般的に免疫される動物の種類及び系統によって異なるので、免疫スケジュールは使用される動物に応じて適宜設定することが望ましい。抗原投与は最初の免疫後に何回か繰り返し行うことが好ましい。
【0025】
モノクローナル抗体を得るために、引き続き以下の操作が行われるがそれに限定されることはなく、モノクローナル抗体それ自体の製造方法については当業界で周知されており、かつ汎用されているので当業者は前記の抗原を用いることによって本発明の免疫学的分析方法において使用される抗体を容易に製造することが可能である（例えばＡｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，（１９８８） 第６章などを参照のこと）。
【0026】
最終免疫後、免疫した動物から抗体産生細胞である脾臓細胞あるいはリンパ節細胞を摘出し、高い増殖能を有する骨髄腫由来の細胞株と細胞融合することによりハイブリドーマを作製することができる。細胞融合には抗体産生能（質・量）が高い細胞を用いることが好ましく、また骨髄腫由来の細胞株は融合する抗体産生細胞の由来する動物と適合性があることが好ましい。細胞融合は、当該分野で公知の方法に従って行うことができるが、例えば、ポリエチレングリコール法、センダイウイルスを用いた方法、電流を利用する方法などを採用することができる。得られたハイブリドーマは当業界で汎用の条件に従って増殖させることができ、産生される抗体の性質を確認しつつ所望のハイブリドーマを選択することができる。ハイブリドーマのクローニングは、例えば限界希釈法や軟寒天法などの周知の方法により行うことが可能である。
【0027】
ハイブリドーマの選択は、産生される抗体が実際の測定に用いられる条件を考慮し、選択の段階で効率的に行うこともできる。例えば、動物に免疫して得られた抗体を、交差反応性を確認したい化合物の存在下、固相に固定化した重合度が４の（１→３）ＢＧと反応させ、交差反応性を確認したい化合物の非存在下での反応性と比較することにより所望の抗体を産生するハイブリドーマをより効率よく選抜することができる。また、動物に免疫して得られた抗体を、生物試料由来成分の存在下、固相に固定化した重合度が４の（１→３）ＢＧと反応させ、生物試料由来成分の非存在下での反応性と比較することにより所望の抗体を産生するハイブリドーマをより効率よく選択することもできる。
【0028】
クローニング工程後、産生される抗体と重合度が４の（１→３）ＢＧとの結合能をＥＬＩＳＡ法、ＲＩＡ法、蛍光抗体法などの方法を用いてアッセイすることにより、選択されたハイブリドーマが所望の性質を有するモノクローナル抗体を産生するか否かを確認することができる。
前記のようにして選別されたハイブリドーマを大量培養することにより、所望の特性を有するモノクローナル抗体を製造することができる。大量培養の方法は特に限定されないが、例えば、ハイブリドーマを適宜の培地中で培養してモノクローナル抗体を培地中に産生させる方法や、哺乳動物の腹腔内にハイブリドーマを注射して増殖させ、腹水中に抗体を産生させる方法などを挙げることができる。モノクローナル抗体の精製は、先述した抗血清からの抗体の精製法、例えばＤＥＡＥ陰イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、硫安分画法、ＰＥＧ分画法、エタノール分画法などを適宜組み合わせて行うことができる。
前記のようにして選別されたハイブリドーマを大量培養することにより、所望の特性を有するモノクローナル抗体を製造することができる。大量培養の方法は特に限定されないが、例えば、ハイブリドーマを適宜の培地中で培養してモノクローナル抗体を培地中に産生させる方法や、哺乳動物の腹腔内にハイブリドーマを注射して増殖させ、腹水中に抗体を産生させる方法などを挙げることができる。モノクローナル抗体の精製は、先述した抗血清からの抗体の精製法、例えばＤＥＡＥ陰イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、硫安分画法、ＰＥＧ分画法、エタノール分画法などを適宜組み合わせて行うことができる。
【0029】
本発明の免疫学的分析方法において使用される抗体としては、抗体分子全体のほかに抗原抗体反応活性を有する抗体のフラグメントを使用することも可能であり、前記のように動物への免疫工程を経て得られたもののほか、遺伝子組み換え技術を使用して得られるものやキメラ抗体を用いることも可能である。抗体の断片としては機能性の断片であることが好ましく、例えば、Ｆ（ａｂ'）2、Ｆａｂ'、ｓｃＦｖなどが挙げられ、これらのフラグメントは前記のようにして得られる抗体をタンパク質分解酵素（例えば、ペプシンやパパインなど）で処理すること、あるいは該抗体のＤＮＡをクローニングして大腸菌や酵母を用いた培養系で発現させることにより製造できる。
【0030】
また、本発明の免疫学的分析方法において抗体は、不溶性担体上に固定された固定（固相）化抗体として使用したり、後述する当業者に周知慣用の標識物質で標識した標識抗体として使用することができる。例えば、不溶性担体にモノクローナル抗体を物理的に吸着させ、あるいは化学的に結合（適当なスペーサーを介してよい）させることにより固定化抗体を製造することができる。不溶性担体としては、ポリスチレン樹脂などの高分子基材、ガラスなどの無機基材、セルロースやアガロースなどの多糖類基材などからなる不溶性担体を用いることができ、その形状は特に限定されず、板状（例えば、マイクロプレートやメンブレン）、ビーズあるいは粒子状（例えば、ラテックス粒子、磁性粒子）、筒状（例えば、試験管）など任意の形状を選択できる。
【0031】
本発明の免疫学的分析方法において使用される抗体と結合可能な標識抗体（二次抗体）を用いることにより、ＢＧに結合した抗体の量を測定することができ、それにより生体試料中のＢＧを検出することができる。生体試料中のＢＧは、好ましくは、（１→３）ＢＧ及び／又は（１→３）（１→６）ＢＧである。標識抗体を製造するための標識物質としては、例えば酵素、蛍光物質、化学発光物質、ビオチン、アビジン、又は放射性同位体、金コロイド粒子、着色ラテックスなどが挙げられる。標識物質と抗体との結合法としては、当業者に利用可能なグルタルアルデヒド法、マレイミド法、ピリジルジスルフィド法、又は過ヨウ素酸法などの方法を用いることができるが、固定化抗体や標識抗体の種類、及びそれらの製造方法は前記の例に限定されることはない。例えば、ホースラディッシュ・ペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）やアルカリホスファターゼ（ＡＬＰ）などの酵素を標識物質として用いる場合にはその酵素の特異的基質（酵素がＨＲＰの場合には、例えばＯ-フェニレンジアミン（ＯＰＤ）あるいは３，３'，５，５'-テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）、ＡＬＰの場合にはｐ-ニトロフェニル・ホスフェートなど）を用いて酵素活性を測定することができ、ビオチンを標識物質として用いる場合には少なくともアビジンあるいは酵素修飾アビジンを反応させるのが一般的である。本発明の免疫学的分析方法においては、標識物質としてビオチン又はＨＲＰを使用することが好ましい。
【0032】
本明細書において、「不溶性担体」を「固相」、抗原や抗体を不溶性担体に物理的あるいは化学的に担持させることあるいは担持させた状態を「固定」、「固定化」、「固相化」と表現することがある。また、「分析」、「検出」、又は「測定」という用語は、ＢＧの存在の証明及び／又は定量などを含めて最も広義に解釈する必要があり、いかなる意味においても限定的に解釈してはならない。
【0033】
（免疫学的分析方法）
本発明の免疫学的分析方法としては、ＥＬＩＳＡ、酵素免疫測定法、免疫組織染色法、表面プラズモン共鳴法、ラテックス凝集免疫測定法、化学発光免疫測定法、電気化学発光免疫測定法、蛍光抗体法、放射免疫測定法、免疫沈降法、ウエスタンブロット法、イムノクロマトグラフ法、及び高速液体クロマトグラフィー法（ＨＰＬＣ法）等が挙げられるが、これらに限定されるものではない。本発明の免疫学的分析方法としては、ＥＬＩＳＡを用いることが好ましい。ＥＬＩＳＡの中でも、固相に固定した第１のモノクローナル抗体と標識した第２のモノクローナル抗体とを使用するサンドイッチＥＬＩＳＡが好ましい。
この場合、第１のモノクローナル抗体として、８６２０７抗体を用い、第２のモノクローナル抗体として、８６２０２Ｒ抗体を用いることができる。なお、第１のモノクローナル抗体と第２のモノクローナル抗体は同一の抗体を用いてもよい。さらに固相に固相化する抗体、あるいは標識抗体は、それぞれ複数の抗体を混合してもよい。標識抗体に対する標識物質としては、ビオチン又はＨＲＰを使用することが好ましい。
本発明の免疫学的分析方法としては、ＥＬＩＳＡ、酵素免疫測定法、免疫組織染色法、表面プラズモン共鳴法、ラテックス凝集免疫測定法、化学発光免疫測定法、電気化学発光免疫測定法、蛍光抗体法、放射免疫測定法、免疫沈降法、ウエスタンブロット法、イムノクロマトグラフ法、及び高速液体クロマトグラフィー法（ＨＰＬＣ法）等が挙げられるが、これらに限定されるものではない。本発明の免疫学的分析方法としては、ＥＬＩＳＡを用いることが好ましい。ＥＬＩＳＡの中でも、固相に固定した第１のモノクローナル抗体と標識した第２のモノクローナル抗体とを使用するサンドイッチＥＬＩＳＡが好ましい。
この場合、第１のモノクローナル抗体として、８６２０７抗体を用い、第２のモノクローナル抗体として、８６２０２Ｒ抗体を用いることができる。なお、第１のモノクローナル抗体と第２のモノクローナル抗体は同一の抗体を用いてもよい。さらに固相に固相化する抗体、あるいは標識抗体は、それぞれ複数の抗体を混合してもよい。標識抗体に対する標識物質としては、ビオチン又はＨＲＰを使用することが好ましい。
【0034】
（深在性真菌症の診断、診断補助、及び治療）
本発明の免疫学的分析方法の分析結果に基づき、対象が深在性真菌症に罹患しているか否かを診断することができ、又は診断の補助とすることができる。従来の抗体を利用した免疫学的分析方法では感度が不足しており、罹患早期の深在性真菌症患者では、陰性と判断されてしまう恐れがあった。深在性真菌症は早期発見及び早期治療が重要となる。本発明の高感度な免疫学的分析方法を使用すれば、深在性真菌症の早期発見及び早期治療を実現できるものである。
また、本発明の免疫学的分析方法を行った後、必要に応じて、生体試料中のＢＧを分析する工程の結果に基づき、他の深在性真菌症分析方法の患者への実施、及び／又は深在性真菌症治療薬の患者への投与を実施してもよい。
本発明の免疫学的分析方法の分析結果に基づき、対象が深在性真菌症に罹患しているか否かを診断することができ、又は診断の補助とすることができる。従来の抗体を利用した免疫学的分析方法では感度が不足しており、罹患早期の深在性真菌症患者では、陰性と判断されてしまう恐れがあった。深在性真菌症は早期発見及び早期治療が重要となる。本発明の高感度な免疫学的分析方法を使用すれば、深在性真菌症の早期発見及び早期治療を実現できるものである。
また、本発明の免疫学的分析方法を行った後、必要に応じて、生体試料中のＢＧを分析する工程の結果に基づき、他の深在性真菌症分析方法の患者への実施、及び／又は深在性真菌症治療薬の患者への投与を実施してもよい。
【0035】
本発明の免疫学的分析方法は、生体試料（例えば、血液、血清又は血漿、好ましくは血漿）中に含まれる４ｐｇ／ｍＬ以上のＢＧを検出する工程、及び／又は前記検出工程の結果に基づき生体試料を採取した対象が深在性真菌症に罹患している又は罹患している疑いがあると診断する工程、又は診断を補助する工程を含むことができる。カットオフ値は生体試料の種類または免疫学的分析方法の種類に応じて適宜設定することができる。例えば、本発明の免疫学的分析方法は、生体試料（例えば、血液、血清又は血漿、好ましくは血漿）中に含まれる、６ｐｇ／ｍＬ以上、７ｐｇ／ｍＬ以上、８ｐｇ／ｍＬ以上、９ｐｇ／ｍＬ以上、１０ｐｇ／ｍＬ以上、１１ｐｇ／ｍＬ以上、２０ｐｇ／ｍＬ以上、５０ｐｇ／ｍＬ以上、８０ｐｇ／ｍＬ以上、１００ｐｇ／ｍＬ、１５０ｐｇ／ｍＬ以上、２００ｐｇ／ｍＬ以上、２５０ｐｇ／ｍＬ以上、３００ｐｇ／ｍＬ以上、４００ｐｇ／ｍＬ以上、５００ｐｇ／ｍＬ以上、１ｎｇ／ｍＬ以上、５ｎｇ／ｍＬ以上、又は１０ｎｇ／ｍＬ以上のＢＧを検出する工程、及び／又は前記検出工程の結果に基づき生体試料を採取した対象が深在性真菌症に罹患している又は罹患している疑いがあると診断する工程又は診断を補助する工程を含むことができる。
市販のリムルス試薬では、試料中の（１→３）ＢＧ及び／又は（１→３）（１→６）ＢＧがＧ因子と結合する。この結合により、カスケードが開始され、（１→３）ＢＧ及び／又は（１→３）（１→６）ＢＧの分析が行われる。本発明の免疫学的分析方法において使用されるモノクローナル抗体は、（１→３）ＢＧ及び／又は（１→３）（１→６）ＢＧにおけるＧ因子結合部位を認識することが好ましい。
本発明の免疫学的分析方法において使用されるモノクローナル抗体は、リムルス試薬におけるβ－Ｄ－グルカン、好ましくは（１→３）ＢＧ及び／又は（１→３）（１→６）ＢＧの分析において、競合阻害作用を有することが好ましい。この場合、競合阻害作用とは、具体的には、モノクローナル抗体がβ－Ｄ－グルカンに結合することにより、β－Ｄ－グルカンとＧ因子との結合が阻害され、結果的にリムルス試薬の反応カスケードの進行を阻害されることを意味する。
発明の免疫学的分析方法において使用されるモノクローナル抗体が、リムルス試薬におけるβ－Ｄ－グルカンの分析において、競合阻害作用を有する場合、モノクローナル抗体の反応系における濃度は、０．１μｇ／ｍＬ～１０００μｇ／ｍＬであり、好ましくは、１μｇ／ｍＬ～１００μｇ／ｍＬである。
市販のリムルス試薬では、試料中の（１→３）ＢＧ及び／又は（１→３）（１→６）ＢＧがＧ因子と結合する。この結合により、カスケードが開始され、（１→３）ＢＧ及び／又は（１→３）（１→６）ＢＧの分析が行われる。本発明の免疫学的分析方法において使用されるモノクローナル抗体は、（１→３）ＢＧ及び／又は（１→３）（１→６）ＢＧにおけるＧ因子結合部位を認識することが好ましい。
本発明の免疫学的分析方法において使用されるモノクローナル抗体は、リムルス試薬におけるβ－Ｄ－グルカン、好ましくは（１→３）ＢＧ及び／又は（１→３）（１→６）ＢＧの分析において、競合阻害作用を有することが好ましい。この場合、競合阻害作用とは、具体的には、モノクローナル抗体がβ－Ｄ－グルカンに結合することにより、β－Ｄ－グルカンとＧ因子との結合が阻害され、結果的にリムルス試薬の反応カスケードの進行を阻害されることを意味する。
発明の免疫学的分析方法において使用されるモノクローナル抗体が、リムルス試薬におけるβ－Ｄ－グルカンの分析において、競合阻害作用を有する場合、モノクローナル抗体の反応系における濃度は、０．１μｇ／ｍＬ～１０００μｇ／ｍＬであり、好ましくは、１μｇ／ｍＬ～１００μｇ／ｍＬである。
【0036】
［２］生体試料中のβ－Ｄ－グルカン分析用キット
本発明により提供されるキットは、（ａ）重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合する第１のモノクローナル抗体を固定化した固相を含み、好ましくは（ｂ）標識物質で標識された、重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合する第２のモノクローナル抗体を含む。第１のモノクローナル抗体を固定化した固相は、生体試料中のＢＧを捕捉して、ＢＧ－抗体複合体を形成する。標識物質で標識された第２の抗ＢＧモノクローナル抗体は、このＢＧ－抗体複合体に反応してサンドイッチを形成する。標識物質に応じた方法により標識物質の量を測定することにより、試料中のＢＧを測定することができる。第１のモノクローナル抗体の固相への固定化の方法、第２のモノクローナル抗体の標識物質での標識の方法など、キットを構成する上での具体的な方法は本明細書中に記載された方法のほか、当業者に周知の方法を制限なく使用することができる。
本発明により提供されるキットは、（ａ）重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合する第１のモノクローナル抗体を固定化した固相を含み、好ましくは（ｂ）標識物質で標識された、重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合する第２のモノクローナル抗体を含む。第１のモノクローナル抗体を固定化した固相は、生体試料中のＢＧを捕捉して、ＢＧ－抗体複合体を形成する。標識物質で標識された第２の抗ＢＧモノクローナル抗体は、このＢＧ－抗体複合体に反応してサンドイッチを形成する。標識物質に応じた方法により標識物質の量を測定することにより、試料中のＢＧを測定することができる。第１のモノクローナル抗体の固相への固定化の方法、第２のモノクローナル抗体の標識物質での標識の方法など、キットを構成する上での具体的な方法は本明細書中に記載された方法のほか、当業者に周知の方法を制限なく使用することができる。
【0037】
第１のモノクローナル抗体及び第２のモノクローナル抗体としては、重合度が４の（１→３）－β－Ｄ－グルカンに結合するモノクローナル抗体であれば特に限定されない。例えば、第１のモノクローナル抗体として、８６２０７抗体を用い、第２のモノクローナル抗体として、８６２０２Ｒ抗体を用いることができる。
【0038】
標識物質としては、例えば、蛍光物質、化学発光物質、ビオチン、アビジンなどの当業者に公知の標識物質を使用することができる。標識物質と抗体との結合法としては、使用する標識物質及び抗体に応じて公知の結合法の中から適宜選択することができ、例えば、グルタルアルデヒド法、マレイミド法、ピリジルジスルフィド法、又は過ヨウ素酸法などの方法を用いることができる。標識物質として、ビオチン又はＨＲＰを使用することが好ましい。
【0039】
本発明のキットには、他に使用説明書などを含むこともできる。キットは、任意の構成要素、例えば緩衝剤、安定化剤、反応容器等を含んでいてもよい。
【0040】
本発明のキットは、生体試料（例えば、血液、血清又は血漿、好ましくは血漿）中に含まれる４ｐｇ／ｍＬ以上のＢＧを検出することができ、この結果をもとに生体試料を採取した対象が深在性真菌症に罹患している又は罹患している疑いがあると診断することができる。カットオフ値は生体試料の種類等に応じて適宜設定することができる。例えば、本発明のキットは、生体試料（例えば、血液、血清又は血漿、好ましくは血漿）中に含まれる、６ｐｇ／ｍＬ以上、７ｐｇ／ｍＬ以上、８ｐｇ／ｍＬ以上、９ｐｇ／ｍＬ以上、１０ｐｇ／ｍＬ以上、１１ｐｇ／ｍＬ以上、１５ｐｇ／ｍＬ以上、２０ｐｇ／ｍＬ以上、２４．９ｐｇ／ｍＬ以上、２５ｐｇ／ｍＬ以上、３０ｐｇ／ｍＬ以上、５０ｐｇ／ｍＬ以上、８０ｐｇ／ｍＬ以上、１００ｐｇ／ｍＬ、１５０ｐｇ／ｍＬ以上、２００ｐｇ／ｍＬ以上、２５０ｐｇ／ｍＬ以上、３００ｐｇ／ｍＬ以上、４００ｐｇ／ｍＬ以上、５００ｐｇ／ｍＬ以上、１ｎｇ／ｍＬ以上、５ｎｇ／ｍＬ以上、又は１０ｎｇ／ｍＬ以上のＢＧを検出することができ、この結果を基に、生体試料を採取した対象が深在性真菌症に罹患している又は罹患している疑いがあると診断することができる。
【0041】
以下、実施例によって本発明を具体的に説明するが、これらは本発明の範囲を限定するものではない。
【実施例】
【0042】
〔実施例１〕本発明に使用するモノクローナル抗体の製造方法
１．免疫用抗原の調製
グルコース７個が直鎖状に重合した構造を有する（１→３）ＢＧであるラミナリヘプタオース（生化学バイオビジネス社製）を免疫用抗原として使用した。ラミナリヘプタオース－トランスフェリンコンジュゲートを非特許文献１に記載の調製方法と同様の方法で調製し、免疫用抗原として使用した。
１．免疫用抗原の調製
グルコース７個が直鎖状に重合した構造を有する（１→３）ＢＧであるラミナリヘプタオース（生化学バイオビジネス社製）を免疫用抗原として使用した。ラミナリヘプタオース－トランスフェリンコンジュゲートを非特許文献１に記載の調製方法と同様の方法で調製し、免疫用抗原として使用した。
【0043】
２．ハイブリドーマの作製及び抗体の採取
調製したラミナリヘプタオース－トランスフェリンコンジュゲートの溶液（１ｍｇ／ｍＬ）１００μＬ、０．１ＭＰＢＳ（ｐＨ７．２）０．２５ｍＬ及びフロイントのアジュバント（完全アジュバントまたは不完全アジュバント）０．２５ｍＬからなる懸濁液の全量をＢＡＬＢ／ｃマウス（雌）及びＦ３４４／Ｊｃ１ラット（雌）の背部皮下又は腹腔にそれぞれ計３－６回投与した。投与間隔は２週間で、最初の投与はフロイントの完全アジュバントを、後の４回はフロイントの不完全アジュバントを用いた。５回目の投与の１週間後にマウス及びラットを開腹してそれらの脾臓をとり、ピペッティングにより単細胞を得た。
調製したラミナリヘプタオース－トランスフェリンコンジュゲートの溶液（１ｍｇ／ｍＬ）１００μＬ、０．１ＭＰＢＳ（ｐＨ７．２）０．２５ｍＬ及びフロイントのアジュバント（完全アジュバントまたは不完全アジュバント）０．２５ｍＬからなる懸濁液の全量をＢＡＬＢ／ｃマウス（雌）及びＦ３４４／Ｊｃ１ラット（雌）の背部皮下又は腹腔にそれぞれ計３－６回投与した。投与間隔は２週間で、最初の投与はフロイントの完全アジュバントを、後の４回はフロイントの不完全アジュバントを用いた。５回目の投与の１週間後にマウス及びラットを開腹してそれらの脾臓をとり、ピペッティングにより単細胞を得た。
【0044】
これらの脾細胞を血清無添加のＰＲＭＩ１６４０培地で２回洗浄し、脾細胞５×１０7個に対し、別に培養を行ない洗浄したマウスミエローマ細胞（Ｘ－６３－Ａｇ８－６．５．３）１×１０7個の割合で混合して遠心分離を行ない、上清を除去した。沈渣をよく溶かし、融合促進剤であるポリエチレングリコール１５４０（１ｍＬ）を３７℃で１分間かけてゆっくりと添加し、さらに１分間撹拌して融合を行なった。これらの融合細胞（ハイブリドーマ）を牛胎児血清添加ＲＰＭＩ１６４０培地１０ｍＬで懸濁して遠心分離した後、その残渣を９６穴培養用プレート一枚にまき、３７℃、５％ＣＯ2インキュベーターで１週間培養した。ＨＡＴ培地で１週間、３７℃で培養した後、ハイブリドーマだけを選択的に採取した。
【0045】
３．抗原固相化ＥＬＩＳＡ（一次スクリーニング）
以下に示す方法でハイブリドーマの１次スクリーニングを行った。抗原としてはラミナリンを用いた。ラミナリンは（１→３）（１→６）ＢＧであり、３重らせん構造の外側の側鎖に（１→６）様式でグルコースが結合した構造を有している。ラミナリンを認識する抗体は、（１→６）様式で結合したグルコースの間の短いβ（１→３）結合を認識している可能性があると考えた。
１）ラミナリン溶液をｐｌａｔｅに分注し(５０μＬ/ｗｅｌｌ)、室温で２時間または４℃で一夜静置した。
２）３回洗浄後（４００μＬ/ｗｅｌｌ）、ブロッキング液を分注し（１００μＬ/ｗｅｌｌ）、室温で１時間静置した。
３）３回洗浄後（４００μＬ/ｗｅｌｌ）、培養上清の希釈系列を分注し（５０μＬ/ｗｅｌｌ）、室温で１時間静置した。
４）３回洗浄後（４００μＬ/ｗｅｌｌ）、ＨＲＰ標識ヤギ抗マウスＩｇＧポリクローナル抗体を分注し(５０μＬ/ｗｅｌｌ)、室温で１時間静置した。
５）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、ＯＰＤ発色液を分注(５０μＬ/ｗｅｌｌ)し、室温で１０分間反応させた。
６）停止液を分注し（５０μＬ/ｗｅｌｌ）、反応を停止し、プレートリーダーで測定した。
７）ラミナリンとの反応性が高かった抗体を産生するハイブリドーマ５０種を選別し、以下の競合ＥＬＩＳＡに用いた。
以下に示す方法でハイブリドーマの１次スクリーニングを行った。抗原としてはラミナリンを用いた。ラミナリンは（１→３）（１→６）ＢＧであり、３重らせん構造の外側の側鎖に（１→６）様式でグルコースが結合した構造を有している。ラミナリンを認識する抗体は、（１→６）様式で結合したグルコースの間の短いβ（１→３）結合を認識している可能性があると考えた。
１）ラミナリン溶液をｐｌａｔｅに分注し(５０μＬ/ｗｅｌｌ)、室温で２時間または４℃で一夜静置した。
２）３回洗浄後（４００μＬ/ｗｅｌｌ）、ブロッキング液を分注し（１００μＬ/ｗｅｌｌ）、室温で１時間静置した。
３）３回洗浄後（４００μＬ/ｗｅｌｌ）、培養上清の希釈系列を分注し（５０μＬ/ｗｅｌｌ）、室温で１時間静置した。
４）３回洗浄後（４００μＬ/ｗｅｌｌ）、ＨＲＰ標識ヤギ抗マウスＩｇＧポリクローナル抗体を分注し(５０μＬ/ｗｅｌｌ)、室温で１時間静置した。
５）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、ＯＰＤ発色液を分注(５０μＬ/ｗｅｌｌ)し、室温で１０分間反応させた。
６）停止液を分注し（５０μＬ/ｗｅｌｌ）、反応を停止し、プレートリーダーで測定した。
７）ラミナリンとの反応性が高かった抗体を産生するハイブリドーマ５０種を選別し、以下の競合ＥＬＩＳＡに用いた。
【0046】
４．競合ＥＬＩＳＡ（二次スクリーニング）
以下に示す方法でハイブリドーマの２次スクリーニング（樹立候補株の反応性確認）を行った。
１）ラミナリン溶液をＥＬＩＳＡ用プレートに分注し(５０μＬ/ｗｅｌｌ)、室温で２時間または４℃で一夜静置した。
２）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、ブロッキング液を分注し(１００μＬ/ｗｅｌｌ)、室温で１時間静置した。
３）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、糖鎖（デキストラン、ラミナリン、又はラミナリヘプタオース）を分注した（２５μＬ/ｗｅｌｌ)。続いて培養上清を分注して(２５μＬ/ｗｅｌｌ)室温で１時間静置した。
４）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、ＨＲＰ標識ヤギ抗マウスＩｇＧポリクローナル抗体を分注し(５０μｌ/ｗｅｌｌ)、室温で１時間静置した。
５）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、ＯＰＤ発色液を分注(５０μＬ/ｗｅｌｌ)し、室温で１０分間反応させた。
６）停止液を分注し（５０μＬ/ｗｅｌｌ）、反応を停止し、プレートリーダーで測定した。
７）結果を図２に示す。ラミナリン及びラミナリヘプタオースを遊離抗原として用いた場合にいずれも競合が生じた、８６２０７（マウス由来）及び８６２０２Ｒ（ラット由来）を選抜した。
以下に示す方法でハイブリドーマの２次スクリーニング（樹立候補株の反応性確認）を行った。
１）ラミナリン溶液をＥＬＩＳＡ用プレートに分注し(５０μＬ/ｗｅｌｌ)、室温で２時間または４℃で一夜静置した。
２）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、ブロッキング液を分注し(１００μＬ/ｗｅｌｌ)、室温で１時間静置した。
３）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、糖鎖（デキストラン、ラミナリン、又はラミナリヘプタオース）を分注した（２５μＬ/ｗｅｌｌ)。続いて培養上清を分注して(２５μＬ/ｗｅｌｌ)室温で１時間静置した。
４）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、ＨＲＰ標識ヤギ抗マウスＩｇＧポリクローナル抗体を分注し(５０μｌ/ｗｅｌｌ)、室温で１時間静置した。
５）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、ＯＰＤ発色液を分注(５０μＬ/ｗｅｌｌ)し、室温で１０分間反応させた。
６）停止液を分注し（５０μＬ/ｗｅｌｌ）、反応を停止し、プレートリーダーで測定した。
７）結果を図２に示す。ラミナリン及びラミナリヘプタオースを遊離抗原として用いた場合にいずれも競合が生じた、８６２０７（マウス由来）及び８６２０２Ｒ（ラット由来）を選抜した。
【0047】
５．抗体精製手順
得られたハイブリドーマ２種を用いてモノクローナル抗体の精製を行った。各ハイブリドーマ細胞を腹腔注射したマウスから腹水を抽出し、－８０℃で凍結保存した。腹水に腹水溶解液を添加し、ウォーターバスで融解後に遠心し、上清を回収した。
回収した上清に５０％硫酸アンモニウムを添加した。再度遠心を行い、沈殿画分に再溶解液を添加し、沈殿を溶解させた。溶解させた液を遠心し、上清を回収した。上清を１００倍量の透析液（２０ｍＭ ＮａＰｉ ｐＨ７．５, １００ｍＭ ＮａＣｌ, １ｍＭ ＥＤＴＡ ２Ｎａ）を用いて４℃で一晩透析した。透析には、Ｓｌｉｄｅ－Ａ－Ｌｙｚｅｒ Ｄｉａｌｙｓｉｓ ｃａｓｓｅｔｔｅ １０ｋ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）を使用した。
得られたハイブリドーマ２種を用いてモノクローナル抗体の精製を行った。各ハイブリドーマ細胞を腹腔注射したマウスから腹水を抽出し、－８０℃で凍結保存した。腹水に腹水溶解液を添加し、ウォーターバスで融解後に遠心し、上清を回収した。
回収した上清に５０％硫酸アンモニウムを添加した。再度遠心を行い、沈殿画分に再溶解液を添加し、沈殿を溶解させた。溶解させた液を遠心し、上清を回収した。上清を１００倍量の透析液（２０ｍＭ ＮａＰｉ ｐＨ７．５, １００ｍＭ ＮａＣｌ, １ｍＭ ＥＤＴＡ ２Ｎａ）を用いて４℃で一晩透析した。透析には、Ｓｌｉｄｅ－Ａ－Ｌｙｚｅｒ Ｄｉａｌｙｓｉｓ ｃａｓｓｅｔｔｅ １０ｋ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）を使用した。
【0048】
翌日、低圧クロマトグラフィーシステムＡＫＴＡ Ｐｒｉｍｅ ｐｌｕｓ（ＧＥヘルスケア社製）にプロテインＧカラムＨｉ Ｔｒａｐ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｇ ＨＰ ５ｍＬ（ＧＥヘルスケア社製）を接続し、透析したサンプル溶液を分離・精製した。プロテインＧカラムはカラム平衡化液であらかじめ平衡化した。サンプル溶液をカラムに添加した後、ｐＨ４の溶出液でカラムに結合した抗体を溶出させた。ｐＨ４溶出の後、ｐＨ３の溶出液でさらに溶出を行った。ｐＨ４の溶出液及びｐＨ３の溶出液で溶出させたサンプル溶液をそれぞれ抗体保存液（ＰＢＳ）で透析した。透析は４℃、１００倍量で２回行った。透析後、最終濃度０．０９％となるようにアジ化ナトリウムを添加し、４００μＬに小分けした後に－８０℃で保存した。上記の手順により２種の抗体（８６２０２Ｒ抗体及び８６２０７抗体）を得た。以下の測定にはｐＨ４で溶出させた抗体サンプルを使用した。
【0049】
〔実施例２〕複数の重合度の（１→３）ＢＧに対する抗体の反応性の検証
重合度が１～７の（１→３）ＢＧを用いて競合ＥＬＩＳＡを行い、各重合度の（１→３）ＢＧに対する８６２０２Ｒ抗体及び８６２０７抗体の反応性を検証した。重合度が１～７の（１→３）ＢＧとしては、グルコース（重合度１）、ラミナリジオース（重合度２）、ラミナリトリオース（重合度３）、ラミナリテトラオース（重合度４）、ラミナリペンタオース（重合度５）、及びラミナリヘプタオース（重合度７）を用いた。ラミナリヘキサオース（重合度６）については原料確保が困難であったため、検証に用いなかった。グルコースは富士フィルム和光純薬社より購入し、その他の（１→３）ＢＧは、Santa Cruz Biotechnology社から購入したものを用いた。
１）ラミナリンをＥＬＩＳＡ用プレートに分注し(ＰＢＳ中１μｇ/ｍｌ, ５０μＬ/ｗｅｌｌ)、４℃で一夜静置した。
２）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、ブロッキング液を分注し(１００μＬ/ｗｅｌｌ)、室温で１時間静置した。
３）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、各々の（１→３）ＢＧを分注した（２５μＬ/ｗｅｌｌ、各々の（１→３）ＢＧの濃度は１００μｇ/ｍｌ)。続いて８６２０２Ｒ抗体液あるいは８６２０７抗体液を分注して(２５μＬ/ｗｅｌｌ)室温で１時間静置した。
４）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、ＨＲＰ標識ヤギ抗ラットＩｇＧポリクローナル抗体あるいはＨＲＰ標識ヤギ抗マウスＩｇＧポリクローナル抗体を分注し(５０μｌ/ｗｅｌｌ)、室温で１時間静置した。
５）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、ＯＰＤ発色液を分注(５０μＬ/ｗｅｌｌ)し、室温で１０分間反応させた。
６）停止液を分注し（５０μＬ/ｗｅｌｌ）、反応を停止し、プレートリーダーで測定した。
７）８６２０２Ｒ抗体の結果を図３に示し、８６２０７抗体の結果を図４に示す。
８６２０２Ｒ抗体は、重合度４～７の（１→３）ＢＧを認識した。したがって、重合度４のβ（１→３）結合を認識する抗体であると考えられた。
８６２０７抗体については、重合度４～７の（１→３）ＢＧを認識した。したがって、重合度４のβ（１→３）結合を認識する抗体であると考えられた。また、両抗体の反応性の違いを考慮すると、両抗体は認識部位が若干異なると考えられる。
重合度が１～７の（１→３）ＢＧを用いて競合ＥＬＩＳＡを行い、各重合度の（１→３）ＢＧに対する８６２０２Ｒ抗体及び８６２０７抗体の反応性を検証した。重合度が１～７の（１→３）ＢＧとしては、グルコース（重合度１）、ラミナリジオース（重合度２）、ラミナリトリオース（重合度３）、ラミナリテトラオース（重合度４）、ラミナリペンタオース（重合度５）、及びラミナリヘプタオース（重合度７）を用いた。ラミナリヘキサオース（重合度６）については原料確保が困難であったため、検証に用いなかった。グルコースは富士フィルム和光純薬社より購入し、その他の（１→３）ＢＧは、Santa Cruz Biotechnology社から購入したものを用いた。
１）ラミナリンをＥＬＩＳＡ用プレートに分注し(ＰＢＳ中１μｇ/ｍｌ, ５０μＬ/ｗｅｌｌ)、４℃で一夜静置した。
２）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、ブロッキング液を分注し(１００μＬ/ｗｅｌｌ)、室温で１時間静置した。
３）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、各々の（１→３）ＢＧを分注した（２５μＬ/ｗｅｌｌ、各々の（１→３）ＢＧの濃度は１００μｇ/ｍｌ)。続いて８６２０２Ｒ抗体液あるいは８６２０７抗体液を分注して(２５μＬ/ｗｅｌｌ)室温で１時間静置した。
４）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、ＨＲＰ標識ヤギ抗ラットＩｇＧポリクローナル抗体あるいはＨＲＰ標識ヤギ抗マウスＩｇＧポリクローナル抗体を分注し(５０μｌ/ｗｅｌｌ)、室温で１時間静置した。
５）３回洗浄後(４００μＬ/ｗｅｌｌ)、ＯＰＤ発色液を分注(５０μＬ/ｗｅｌｌ)し、室温で１０分間反応させた。
６）停止液を分注し（５０μＬ/ｗｅｌｌ）、反応を停止し、プレートリーダーで測定した。
７）８６２０２Ｒ抗体の結果を図３に示し、８６２０７抗体の結果を図４に示す。
８６２０２Ｒ抗体は、重合度４～７の（１→３）ＢＧを認識した。したがって、重合度４のβ（１→３）結合を認識する抗体であると考えられた。
８６２０７抗体については、重合度４～７の（１→３）ＢＧを認識した。したがって、重合度４のβ（１→３）結合を認識する抗体であると考えられた。また、両抗体の反応性の違いを考慮すると、両抗体は認識部位が若干異なると考えられる。
【0050】
〔実施例３〕結合様式の異なるＢＧに対する反応性確認
固相抗体として８６２０７抗体を用い、そしてＨＲＰ標識抗体（液相抗体）として８６２０２Ｒ抗体を用いてサンドイッチＥＬＩＳＡを行い、様々なＢＧに対する反応性をリムルス試薬と比較した。リムルス試薬に関しては、β－グルカンテストワコー（富士フィルム和光純薬株式会社）（以下「市販試薬１」）及びファンギテック（登録商標）Ｇテスト ＥＳ「ニッスイ」（日水製薬株式会社）（以下「市販試薬２」）を使用し、添付のプロトコルにしたがって実験を行った。なお、使用した抗原は以下の通りである。
以下にサンドイッチＥＬＩＳＡの手順を示す。
１）９６穴プレート（ｎｕｎｃイムノプレート，品番４４２４０４，Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）の各ウェルに固相用抗体（５μｇ／ｍＬ，１００μＬ，ＰＢＳで希釈）を分注し、室温で２時間、あるいは４℃で一晩静置した。
２）各ウェルの液を除いた後、８連ピペットマンを用いて、各プレートウェルにＰＢＳＴ ２００μＬを２回分注した（合計４００μＬ）。添加したＰＢＳＴを除き、洗浄操作１回分とした。上記操作を３回行った（＝ＰＢＳＴ ４００μＬで３回洗浄，以下の操作においても洗浄は同様の手順で行った）。
３）洗浄後、各ウェルにブロッキング液２００μＬを分注し、室温で１時間以上静置した。
４）ブロッキング液を捨てた後、段階希釈した各々のＢＧを添加し、６０分反応させた。
５）反応後、各ウェルの液を除き、ＰＢＳＴ ４００μＬで３回洗浄した。
６）ＨＲＰ標識抗体（０．５μｇ／ｍＬ，１００μＬ，ブロッキング液で希釈）を分注し、６０分反応させた。
７）反応後、各ウェルの液を除き、ＰＢＳＴ ４００μＬで３回洗浄した。
８）発色液１００μＬを各ウェルに分注し、室温で１０分間反応させた。
９）反応停止液１００μＬを各ウェルに添加した。
１０）マイクロプレートリーダー（Ｍｕｌｔｉｓｋａｎ ＦＣ， ｔｈｅｒｍｏ ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）で４９２ｎｍの吸光度を測定した。
固相抗体として８６２０７抗体を用い、そしてＨＲＰ標識抗体（液相抗体）として８６２０２Ｒ抗体を用いてサンドイッチＥＬＩＳＡを行い、様々なＢＧに対する反応性をリムルス試薬と比較した。リムルス試薬に関しては、β－グルカンテストワコー（富士フィルム和光純薬株式会社）（以下「市販試薬１」）及びファンギテック（登録商標）Ｇテスト ＥＳ「ニッスイ」（日水製薬株式会社）（以下「市販試薬２」）を使用し、添付のプロトコルにしたがって実験を行った。なお、使用した抗原は以下の通りである。
【表1】
１）９６穴プレート（ｎｕｎｃイムノプレート，品番４４２４０４，Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）の各ウェルに固相用抗体（５μｇ／ｍＬ，１００μＬ，ＰＢＳで希釈）を分注し、室温で２時間、あるいは４℃で一晩静置した。
２）各ウェルの液を除いた後、８連ピペットマンを用いて、各プレートウェルにＰＢＳＴ ２００μＬを２回分注した（合計４００μＬ）。添加したＰＢＳＴを除き、洗浄操作１回分とした。上記操作を３回行った（＝ＰＢＳＴ ４００μＬで３回洗浄，以下の操作においても洗浄は同様の手順で行った）。
３）洗浄後、各ウェルにブロッキング液２００μＬを分注し、室温で１時間以上静置した。
４）ブロッキング液を捨てた後、段階希釈した各々のＢＧを添加し、６０分反応させた。
５）反応後、各ウェルの液を除き、ＰＢＳＴ ４００μＬで３回洗浄した。
６）ＨＲＰ標識抗体（０．５μｇ／ｍＬ，１００μＬ，ブロッキング液で希釈）を分注し、６０分反応させた。
７）反応後、各ウェルの液を除き、ＰＢＳＴ ４００μＬで３回洗浄した。
８）発色液１００μＬを各ウェルに分注し、室温で１０分間反応させた。
９）反応停止液１００μＬを各ウェルに添加した。
１０）マイクロプレートリーダー（Ｍｕｌｔｉｓｋａｎ ＦＣ， ｔｈｅｒｍｏ ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）で４９２ｎｍの吸光度を測定した。
【0051】
結果を図５～７に示す。ＢＧを認識する抗体を用いたサンドイッチＥＬＩＳＡでは（１→３）ＢＧを抗原として用いた場合、抗原濃度が０．１ｎｇ／ｍＬ程度から反応が見られた。また、（１→３）（１→６）ＢＧを抗原として用いた場合にも、抗原濃度が１０ｎｇ／ｍＬ程度から反応が見られた（図５）。それ以外のＢＧとは反応しなかった。
市販試薬１では、（１→３）ＢＧを抗原として用いた場合、抗原濃度が０．１ｎｇ／ｍＬ程度から反応が見られた。また、（１→３）（１→６）ＢＧを抗原として用いた場合にも、抗原濃度が１０ｎｇ／ｍＬ程度から反応が見られた（図６）。それ以外のＢＧとは反応しなかった。
市販試薬２では、（１→３）ＢＧを抗原として用いた場合、抗原濃度が０．０１ｎｇ／ｍＬ程度から反応が見られた。また、（１→３）（１→６）ＢＧを抗原として用いた場合にも、抗原濃度が１ｎｇ／ｍＬ程度から反応が見られた（図７）。それ以外のＢＧとは反応しなかった。
したがって、ＢＧを認識する抗体を用いたサンドイッチＥＬＩＳＡは、（１→３）ＢＧ及び（１→３）（１→６）ＢＧに対して、和光純薬工業社製のリムルス試薬（市販試薬１）及び日水製薬社製のリムルス試薬（市販試薬２）と同様の反応性を有することが示された。
市販試薬１では、（１→３）ＢＧを抗原として用いた場合、抗原濃度が０．１ｎｇ／ｍＬ程度から反応が見られた。また、（１→３）（１→６）ＢＧを抗原として用いた場合にも、抗原濃度が１０ｎｇ／ｍＬ程度から反応が見られた（図６）。それ以外のＢＧとは反応しなかった。
市販試薬２では、（１→３）ＢＧを抗原として用いた場合、抗原濃度が０．０１ｎｇ／ｍＬ程度から反応が見られた。また、（１→３）（１→６）ＢＧを抗原として用いた場合にも、抗原濃度が１ｎｇ／ｍＬ程度から反応が見られた（図７）。それ以外のＢＧとは反応しなかった。
したがって、ＢＧを認識する抗体を用いたサンドイッチＥＬＩＳＡは、（１→３）ＢＧ及び（１→３）（１→６）ＢＧに対して、和光純薬工業社製のリムルス試薬（市販試薬１）及び日水製薬社製のリムルス試薬（市販試薬２）と同様の反応性を有することが示された。
【0052】
〔実施例４〕生体試料中のＢＧの検出下限の検討
実施例４では、生体試料を用いて、サンドイッチＥＬＩＳＡの検出下限を検討した。固相用抗体として８６２０７抗体を使用し、液相抗体として、ＨＲＰ標識８６２０２Ｒ抗体を使用した。
実施例４では、生体試料を用いて、サンドイッチＥＬＩＳＡの検出下限を検討した。固相用抗体として８６２０７抗体を使用し、液相抗体として、ＨＲＰ標識８６２０２Ｒ抗体を使用した。
【0053】
４－１．アルカリによる前処理
生体試料（真菌由来のＢＧを２４ｐｇ／ｍＬ含むヒト血漿、ＢＧは市販試薬２により測定）を、ＰＢＳＴを用いて段階的に希釈し、希釈系列を調製した。当該検体１７６μＬにアルカリ処理液３０９．６μＬ（１５０ｍＭ ＫＯＨ：水酸化カリウム）を添加し、３７℃で１５分間インキュベートした。その後、１Ｍ Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ（ｐＨ７．５）を３９４．４μＬずつ添加し、アルカリ処理液を中和した(合計８８０μＬ, 検体５倍希釈，８測定分)。これらをアルカリ前処理検体とした。
生体試料（真菌由来のＢＧを２４ｐｇ／ｍＬ含むヒト血漿、ＢＧは市販試薬２により測定）を、ＰＢＳＴを用いて段階的に希釈し、希釈系列を調製した。当該検体１７６μＬにアルカリ処理液３０９．６μＬ（１５０ｍＭ ＫＯＨ：水酸化カリウム）を添加し、３７℃で１５分間インキュベートした。その後、１Ｍ Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ（ｐＨ７．５）を３９４．４μＬずつ添加し、アルカリ処理液を中和した(合計８８０μＬ, 検体５倍希釈，８測定分)。これらをアルカリ前処理検体とした。
【0054】
４－２．抗体のＨＲＰ標識
ＨＲＰ標識キット（同人化学社製, Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ Ｌａｂｅｌｉｎｇ Ｋｉｔ－ＳＨ, ＬＫ０９）を使用して８６２０２Ｒ抗体のＨＲＰ標識を行った。標識後のタンパク質定量は、ＢＣＡ法により行った（キット名：Ｍｉｃｒｏ ＢＣＡ ｐｒｏｔｅｉｎ ａｓｓａｙ ｋｉｔ, Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製, 品番：２３２３５）。
ＨＲＰ標識キット（同人化学社製, Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ Ｌａｂｅｌｉｎｇ Ｋｉｔ－ＳＨ, ＬＫ０９）を使用して８６２０２Ｒ抗体のＨＲＰ標識を行った。標識後のタンパク質定量は、ＢＣＡ法により行った（キット名：Ｍｉｃｒｏ ＢＣＡ ｐｒｏｔｅｉｎ ａｓｓａｙ ｋｉｔ, Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製, 品番：２３２３５）。
【0055】
４－３．サンドイッチＥＬＩＳＡ
９６穴プレート（ｎｕｎｃイムノプレート, 品番４４２４０４, Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）の各ウェルに固相用の８６２０７抗体（５μｇ／ｍＬ, １００μＬ, ＰＢＳで希釈）を分注し、４℃で一晩静置した。
各ウェルの液を除いた後、８連ピペットマンを用いて、各プレートウェルにＰＢＳＴ ２００μＬを２回分注した（合計４００μＬ）。添加したＰＢＳＴを除き、これらの操作を洗浄操作１回分とした。上記操作を３回行った（ＰＢＳＴ４００μＬで３回洗浄, 以下の操作においても洗浄は同様の手順で行った）。
洗浄後、各ウェルにブロッキング液２００μＬを分注し、室温で１時間以上静置した。
ブロッキング液を捨てた後、各前処理を行った検体１００μＬを各ウェルに添加し、９０分反応させた。
反応後、各ウェルの液を除き、ＰＢＳＴ４００μＬで３回洗浄した。
３－２で作製したＨＲＰ標識８６２０２Ｒ抗体（０．５μｇ／ｍＬ, １００μＬ, ブロッキング液で希釈）を各ウェルに分注し、３０分間反応させた。
反応後、各ウェルの液を除き、ＰＢＳＴ４００μＬで３回洗浄した。
発色液１００μＬを各ウェルに分注し、室温で１０分間反応させた。
反応停止液１００μＬを各ウェルに添加した。
マイクロプレートリーダー（Ｍｕｌｔｉｓｋａｎ ＦＣ, ｔｈｅｒｍｏ ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製を使用）で４９２ｎｍの吸光度を測定した。各試料はｎ＝８測定を行った。
９６穴プレート（ｎｕｎｃイムノプレート, 品番４４２４０４, Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）の各ウェルに固相用の８６２０７抗体（５μｇ／ｍＬ, １００μＬ, ＰＢＳで希釈）を分注し、４℃で一晩静置した。
各ウェルの液を除いた後、８連ピペットマンを用いて、各プレートウェルにＰＢＳＴ ２００μＬを２回分注した（合計４００μＬ）。添加したＰＢＳＴを除き、これらの操作を洗浄操作１回分とした。上記操作を３回行った（ＰＢＳＴ４００μＬで３回洗浄, 以下の操作においても洗浄は同様の手順で行った）。
洗浄後、各ウェルにブロッキング液２００μＬを分注し、室温で１時間以上静置した。
ブロッキング液を捨てた後、各前処理を行った検体１００μＬを各ウェルに添加し、９０分反応させた。
反応後、各ウェルの液を除き、ＰＢＳＴ４００μＬで３回洗浄した。
３－２で作製したＨＲＰ標識８６２０２Ｒ抗体（０．５μｇ／ｍＬ, １００μＬ, ブロッキング液で希釈）を各ウェルに分注し、３０分間反応させた。
反応後、各ウェルの液を除き、ＰＢＳＴ４００μＬで３回洗浄した。
発色液１００μＬを各ウェルに分注し、室温で１０分間反応させた。
反応停止液１００μＬを各ウェルに添加した。
マイクロプレートリーダー（Ｍｕｌｔｉｓｋａｎ ＦＣ, ｔｈｅｒｍｏ ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製を使用）で４９２ｎｍの吸光度を測定した。各試料はｎ＝８測定を行った。
【0056】
４－４．結果
結果を下記の表２及び図８に示す。表２の吸光度はｎ＝８測定の平均値を表し、ＳＤは標準偏差を示す。
結果を下記の表２及び図８に示す。表２の吸光度はｎ＝８測定の平均値を表し、ＳＤは標準偏差を示す。
【0057】
【表2】
【0058】
〔実施例５〕リムルス試薬との相関の検討
実施例５では、サンドイッチＥＬＩＳＡによる測定値と市販試薬１及び２による測定値との相関を、ヒト血漿試料（ｎ＝３９）を用いて検討した。固相用抗体として８６２０７抗体を使用し、液相抗体として、ＨＲＰ標識８６２０２Ｒ抗体を使用した。
実施例５では、サンドイッチＥＬＩＳＡによる測定値と市販試薬１及び２による測定値との相関を、ヒト血漿試料（ｎ＝３９）を用いて検討した。固相用抗体として８６２０７抗体を使用し、液相抗体として、ＨＲＰ標識８６２０２Ｒ抗体を使用した。
【0059】
５－１．アルカリによる前処理
市販試薬１との相関比較では、検体に以下の前処理を行った。ヒト血漿検体１４．７μＬとＰＢＳＴ２９．３μＬを添加した後、アルカリ前処理液７７．４μＬ（１５０ｍＭ ＫＯＨ：水酸化カリウム）を添加し、３７℃で１５分間インキュベートした。その後、アルカリ前処理液に１Ｍ Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ（ｐＨ７．５）を９８．６μＬ添加し、アルカリ前処理液を中和した(合計２２０μＬ, 検体１５倍希釈, 中和後のｐＨは７．９未満)。
市販試薬２との相関比較では、検体に以下の前処理を行った。ヒト血漿検体４４μＬにアルカリ前処理液７７．４μＬ（１５０ｍＭ ＫＯＨ：水酸化カリウム）を添加し、３７℃で１５分間インキュベートした。その後、アルカリ前処理液に１Ｍ Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ（ｐＨ７．５）を９８．６μＬ添加し、アルカリ前処理液を中和した(合計２２０μＬ, 検体５倍希釈, 中和後のｐＨは７．９未満)。これをアルカリ前処理検体とした。
市販試薬１との相関比較では、検体に以下の前処理を行った。ヒト血漿検体１４．７μＬとＰＢＳＴ２９．３μＬを添加した後、アルカリ前処理液７７．４μＬ（１５０ｍＭ ＫＯＨ：水酸化カリウム）を添加し、３７℃で１５分間インキュベートした。その後、アルカリ前処理液に１Ｍ Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ（ｐＨ７．５）を９８．６μＬ添加し、アルカリ前処理液を中和した(合計２２０μＬ, 検体１５倍希釈, 中和後のｐＨは７．９未満)。
市販試薬２との相関比較では、検体に以下の前処理を行った。ヒト血漿検体４４μＬにアルカリ前処理液７７．４μＬ（１５０ｍＭ ＫＯＨ：水酸化カリウム）を添加し、３７℃で１５分間インキュベートした。その後、アルカリ前処理液に１Ｍ Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ（ｐＨ７．５）を９８．６μＬ添加し、アルカリ前処理液を中和した(合計２２０μＬ, 検体５倍希釈, 中和後のｐＨは７．９未満)。これをアルカリ前処理検体とした。
【0060】
５－２．抗体のＨＲＰ標識
実施例３と同様の手順で抗体のＨＲＰ標識を行った。
実施例３と同様の手順で抗体のＨＲＰ標識を行った。
【0061】
５－３．サンドイッチＥＬＩＳＡ
実施例３と同様の手順でサンドイッチＥＬＩＳＡを行った。各試料はｎ＝２測定を行い、平均値を測定値とした。
実施例３と同様の手順でサンドイッチＥＬＩＳＡを行った。各試料はｎ＝２測定を行い、平均値を測定値とした。
【0062】
５－４．リムルス試薬
市販試薬１及び２の各々の添付文書に記載のプロトコルに従ってＢＧの測定を行った。
市販試薬１及び２の各々の添付文書に記載のプロトコルに従ってＢＧの測定を行った。
【0063】
５－５．結果
市販試薬１の測定値とＥＬＩＳＡによる吸光度との相関を図９に示す。市販試薬２の測定値とＥＬＩＳＡによる吸光度との相関を図１０に示す。
本発明の免疫学的分析方法の一実施形態のサンドイッチＥＬＩＳＡによる吸光度測定値は、市販試薬１及び２のリムルス試薬による測定値のいずれとも相関を示した。
市販試薬１の測定値とＥＬＩＳＡによる吸光度との相関を図９に示す。市販試薬２の測定値とＥＬＩＳＡによる吸光度との相関を図１０に示す。
本発明の免疫学的分析方法の一実施形態のサンドイッチＥＬＩＳＡによる吸光度測定値は、市販試薬１及び２のリムルス試薬による測定値のいずれとも相関を示した。
【0064】
〔実施例６〕リムルス試薬との競合試験
実施例５において使用した８６２０７抗体及び８６２０２Ｒ抗体が、市販試薬２のリムルス試薬のカスケード反応を阻害するかどうかを調べるために、これら２種類のモノクローナル抗体と市販試薬２との競合アッセイを実施した。
市販試薬２の添付プロトコルに若干の変更を加えて実験を行った。測定試料は、ＣＭ－パキマンを溶解した、１％ＢＳＡを含むＰＢＳ－Ｔｗｅｅｎを使用した。１０μｇ／ｍＬの抗体の存在下あるいは非存在下で、測定試料を２５℃で６０分間インキュベートした。その後、５０μＬの測定試料に２００μＬの蒸留水を加えた（抗体の変性を防ぐため、市販試薬２の前処理液は使用しなかった）。３７℃で１０分間インキュベートした後、測定試料５０μＬを市販試薬２ ３００μＬに加えた。ＥＳアナライザー（日水製薬社製）を用いて、市販試薬２のカスケード反応を３７℃で３０分間測定した。
マウスＩｇＧ抗体の対照実験として、抗サーファクタントプロテインＤ抗体（Ａｂｃａｍ社製）を使用した。実験は各３回行い、平均値を計算した。
結果を図１１に示す。８６２０７抗体及び８６２０２Ｒ抗体はいずれも、市販試薬２の活性をそれぞれ８０．０％と９５．５％抑制した。対照ＩｇＧ抗体は、抗体の非存在下と比較して、市販試薬２の活性を阻害しなかった。この結果は、８６２０７抗体及び８６２０２Ｒ抗体はいずれも、市販試薬２における反応カスケードにおいて、Ｇ因子を活性化するＢＧ中の構造を認識することを示している。
実施例５において使用した８６２０７抗体及び８６２０２Ｒ抗体が、市販試薬２のリムルス試薬のカスケード反応を阻害するかどうかを調べるために、これら２種類のモノクローナル抗体と市販試薬２との競合アッセイを実施した。
市販試薬２の添付プロトコルに若干の変更を加えて実験を行った。測定試料は、ＣＭ－パキマンを溶解した、１％ＢＳＡを含むＰＢＳ－Ｔｗｅｅｎを使用した。１０μｇ／ｍＬの抗体の存在下あるいは非存在下で、測定試料を２５℃で６０分間インキュベートした。その後、５０μＬの測定試料に２００μＬの蒸留水を加えた（抗体の変性を防ぐため、市販試薬２の前処理液は使用しなかった）。３７℃で１０分間インキュベートした後、測定試料５０μＬを市販試薬２ ３００μＬに加えた。ＥＳアナライザー（日水製薬社製）を用いて、市販試薬２のカスケード反応を３７℃で３０分間測定した。
マウスＩｇＧ抗体の対照実験として、抗サーファクタントプロテインＤ抗体（Ａｂｃａｍ社製）を使用した。実験は各３回行い、平均値を計算した。
結果を図１１に示す。８６２０７抗体及び８６２０２Ｒ抗体はいずれも、市販試薬２の活性をそれぞれ８０．０％と９５．５％抑制した。対照ＩｇＧ抗体は、抗体の非存在下と比較して、市販試薬２の活性を阻害しなかった。この結果は、８６２０７抗体及び８６２０２Ｒ抗体はいずれも、市販試薬２における反応カスケードにおいて、Ｇ因子を活性化するＢＧ中の構造を認識することを示している。
【0065】
〔実施例７〕リムルス試薬のカットオフ値（２０ｐｇ／ｍＬ）を用いた健常人血漿試料の測定
８６２０７抗体及び８６２０２Ｒ抗体を用いたＥＬＩＳＡを用いて、リムルス試薬と同様に真菌感染の診断が行えるかどうかを確認するために、健常人の血漿試料３２検体を用いて実験を行った。実験の手順は実施例５（市販試薬２との相関比較）と同じである。結果を図１２に示す。
検体の測定値は、いずれもリムルス試薬のカットオフ値２０ｐｇ／ｍＬ未満、中心値は３．６ｐｇ／ｍＬであった。したがって、８６２０７抗体及び８６２０２Ｒ抗体を用いたＥＬＩＳＡを用いて、リムルス試薬と同様に真菌感染の診断を行うことができることが示された。
８６２０７抗体及び８６２０２Ｒ抗体を用いたＥＬＩＳＡを用いて、リムルス試薬と同様に真菌感染の診断が行えるかどうかを確認するために、健常人の血漿試料３２検体を用いて実験を行った。実験の手順は実施例５（市販試薬２との相関比較）と同じである。結果を図１２に示す。
検体の測定値は、いずれもリムルス試薬のカットオフ値２０ｐｇ／ｍＬ未満、中心値は３．６ｐｇ／ｍＬであった。したがって、８６２０７抗体及び８６２０２Ｒ抗体を用いたＥＬＩＳＡを用いて、リムルス試薬と同様に真菌感染の診断を行うことができることが示された。
【産業上の利用可能性】
【0066】
本発明によれば、リムルス試薬と同等の感度及び同様の反応性を有する、生体試料中のＢＧの免疫学的分析方法を行うことが可能である。本発明によれば、リムルス試薬と同等の感度及び同様の反応性を有する生体試料中のＢＧの免疫学的分析用キットを提供することができる。
【受託番号】
【0067】
［寄託生物材料への言及］
（１）抗体番号８６２０２Ｒを産生するハイブリドーマ８６２０２Ｒ
イ 当該生物材料を寄託した寄託機関の名称及び住所
独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許微生物寄託センター
日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８（郵便番号２９２－０８１８）
ロ イの寄託機関に生物材料を寄託した日付
平成３０年５月１７日
ハ イの寄託機関が寄託について付した受託番号
ＮＩＴＥ ＢＰ－０２７２３
（２）抗体番号８６２０７を産生するハイブリドーマ８６２０７
イ 当該生物材料を寄託した寄託機関の名称及び住所
独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許微生物寄託センター
日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８（郵便番号２９２－０８１８）
ロ イの寄託機関に生物材料を寄託した日付
平成３０年５月１７日
ハ イの寄託機関が寄託について付した受託番号
ＮＩＴＥ ＢＰ－０２７２４
（１）抗体番号８６２０２Ｒを産生するハイブリドーマ８６２０２Ｒ
イ 当該生物材料を寄託した寄託機関の名称及び住所
独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許微生物寄託センター
日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８（郵便番号２９２－０８１８）
ロ イの寄託機関に生物材料を寄託した日付
平成３０年５月１７日
ハ イの寄託機関が寄託について付した受託番号
ＮＩＴＥ ＢＰ－０２７２３
（２）抗体番号８６２０７を産生するハイブリドーマ８６２０７
イ 当該生物材料を寄託した寄託機関の名称及び住所
独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許微生物寄託センター
日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８（郵便番号２９２－０８１８）
ロ イの寄託機関に生物材料を寄託した日付
平成３０年５月１７日
ハ イの寄託機関が寄託について付した受託番号
ＮＩＴＥ ＢＰ－０２７２４
【図1】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
【図10】
【図11】
【図12】