知財求人 - 知財ポータルサイト「IP Force」
(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B2)
(11)【特許番号】
(24)【登録日】2024-03-18
(45)【発行日】2024-03-27
(54)【発明の名称】幹細胞の培養用添加物および培養用培地、ならびに培養方法
(51)【国際特許分類】
C12N 5/10 20060101AFI20240319BHJP
C12N 5/0735 20100101ALI20240319BHJP
C12N 5/074 20100101ALI20240319BHJP
C12N 5/07 20100101ALI20240319BHJP
【ＦＩ】
C12N5/10
C12N5/0735
C12N5/074
C12N5/07
【請求項の数】
14
(21)【出願番号】P 2020527650
(86)(22)【出願日】2019-06-27
(86)【国際出願番号】 JP2019025666
(87)【国際公開番号】W WO2020004571
(87)【国際公開日】2020-01-02
【審査請求日】2022-06-03
(31)【優先権主張番号】P 2018122532
(32)【優先日】2018-06-27
(33)【優先権主張国・地域又は機関】JP
【前置審査】
(73)【特許権者】
【識別番号】000000066
【氏名又は名称】味の素株式会社
(74)【代理人】
【識別番号】100080791
【弁理士】
【氏名又は名称】高島 一
(74)【代理人】
【識別番号】100136629
【弁理士】
【氏名又は名称】鎌田 光宜
(74)【代理人】
【識別番号】100158724
【弁理士】
【氏名又は名称】竹井 増美
(72)【発明者】
【氏名】伊藤 健一郎
【審査官】小金井 悟
(56)【参考文献】
【文献】特開２０１５－１６５７８３（ＪＰ，Ａ）
【文献】国際公開第２００８／００７０８２（ＷＯ，Ａ２）
【文献】国際公開第２０１３／１４７２６４（ＷＯ，Ａ１）
【文献】国際公開第２０１４／１１９２１９（ＷＯ，Ａ１）
【文献】国際公開第２００９／１１６９５１（ＷＯ，Ａ２）
(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)
Ｃ１２Ｎ １／００－ ７／０８
ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩＩ）
ＣＡｐｌｕｓ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＥＭＢＡＳＥ／ＢＩＯＳＩＳ（ＳＴＮ）
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
重量平均分子量が３００～５００，０００である硫酸化多糖およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上を含有する、幹細胞の浮遊培養用添加物であって、幹細胞の浮遊培養用培地の全量に対し、前記硫酸化多糖およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上の濃度が１μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬとなるように添加される、幹細胞の浮遊培養用添加物。
【請求項2】
幹細胞が、成体幹細胞、胚性幹細胞および人工多能性幹細胞からなる群より選択される１種または２種以上である、請求項１に記載の添加物。
【請求項3】
硫酸化多糖およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上が、ヘパリンおよびその塩ならびにデキストラン硫酸およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上である、請求項１または２に記載の添加物。
【請求項4】
幹細胞の浮遊培養用培地に添加される、請求項１～３のいずれか１項に記載の添加物。
【請求項5】
重量平均分子量が３００～５００，０００である硫酸化多糖およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上を含有する、幹細胞の浮遊培養用培地であって、前記硫酸化多糖およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上の含有量が１μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬである、幹細胞の浮遊培養用培地。
【請求項6】
幹細胞が、成体幹細胞、胚性幹細胞および人工多能性幹細胞からなる群より選択される１種または２種以上である、請求項５に記載の培地。
【請求項7】
硫酸化多糖およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上が、ヘパリンおよびその塩ならびにデキストラン硫酸およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上である、請求項５または６に記載の培地。
【請求項8】
フィーダーフリー培地である、請求項５～７のいずれか１項に記載の培地。
【請求項9】
無血清培地である、請求項８に記載の培地。
【請求項10】
重量平均分子量が３００～５００，０００である硫酸化多糖およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上を含有する幹細胞の浮遊培養用培地にて、幹細胞を浮遊培養することを含む、幹細胞の浮遊培養方法であって、幹細胞の浮遊培養用培地における前記硫酸化多糖およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上の含有量が１μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬである、幹細胞の浮遊培養方法。
【請求項11】
幹細胞が、成体幹細胞、胚性幹細胞および人工多能性幹細胞からなる群より選択される１種または２種以上である、請求項１０に記載の培養方法。
【請求項12】
硫酸化多糖およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上が、ヘパリンおよびその塩ならびにデキストラン硫酸およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上である、請求項１０または１１に記載の培養方法。
【請求項13】
幹細胞の浮遊培養用培地がフィーダーフリー培地である、請求項１０～１２のいずれか１項に記載の培養方法。
【請求項14】
幹細胞の浮遊培養用培地が無血清培地である、請求項１３に記載の培養方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、幹細胞を培養するために培地等に添加される幹細胞の培養用添加物、および幹細胞を培養するための培地、ならびに幹細胞の培養方法に関する。
【背景技術】
【0002】
胚性幹細胞、人工多能性幹細胞をはじめ、ヒトの幹細胞は、マトリジェルや、ビトロネクチン、ラミニン等のヒト型リコンビナントのマトリックス等を足場材料として使用した接着培養により、増殖維持されてきた。
しかし、幹細胞を研究、生産、医療などに応用するために、効率よく増殖させる培養方法が求められている。幹細胞を大量に培養する方法としては、上記した接着培養ではなく、細胞塊の状態で浮遊培養する手法が広く用いられている。
幹細胞を浮遊培養する際に、過剰な細胞の凝集を抑制しつつ、培養液流による剪断応力によって細胞死が引き起こされないように、改良された撹拌子を有する浮遊培養装置や、培養容器自体を駆動させて培養液を流動させる培養装置が開発されている。
しかし、幹細胞を研究、生産、医療などに応用するために、効率よく増殖させる培養方法が求められている。幹細胞を大量に培養する方法としては、上記した接着培養ではなく、細胞塊の状態で浮遊培養する手法が広く用いられている。
幹細胞を浮遊培養する際に、過剰な細胞の凝集を抑制しつつ、培養液流による剪断応力によって細胞死が引き起こされないように、改良された撹拌子を有する浮遊培養装置や、培養容器自体を駆動させて培養液を流動させる培養装置が開発されている。
【0003】
細胞塊の培養においては、細胞品質の担保や最適なプロセス構築を行うために、細胞塊の形成率や形状を制御することが望ましく、幹細胞の場合には、培養によって分化することなく、未分化能が維持されることが要求される。
かかる制御方法としては培地や培地成分、培養器材を用いた制御が考えられ、大量培養へのスケールアップを前提とした培養基質や培養液の開発が行われている。たとえば、ラミニン断片（ＬＭ－Ｅ８）、ビトロネクチン断片（ＶＴＮ－Ｎ）等、異種動物由来の成分を含まない（ゼノフリー）培養基質や、ゼノフリー、さらにはアルブミンフリーの無血清培地が開発されている（非特許文献１、２）。
しかしながら、特に大量浮遊培養に適用可能であり、細胞の品質を低下させない制御方法が望ましい。
かかる制御方法としては培地や培地成分、培養器材を用いた制御が考えられ、大量培養へのスケールアップを前提とした培養基質や培養液の開発が行われている。たとえば、ラミニン断片（ＬＭ－Ｅ８）、ビトロネクチン断片（ＶＴＮ－Ｎ）等、異種動物由来の成分を含まない（ゼノフリー）培養基質や、ゼノフリー、さらにはアルブミンフリーの無血清培地が開発されている（非特許文献１、２）。
しかしながら、特に大量浮遊培養に適用可能であり、細胞の品質を低下させない制御方法が望ましい。
【0004】
また、最近、デキストラン硫酸が多能性幹細胞（ヒト胚性幹細胞）の凝集を制御する効果を有し、均一で小さな細胞凝集塊の生成を促進したことが報告されている（非特許文献３）。
しかし、非特許文献３には、４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａの高分子量のデキストラン硫酸の上記効果が記載されているが、低分子量のデキストラン硫酸や、デキストラン硫酸以外の多糖類の効果に関して、何ら具体的な言及はなされていない。
しかし、非特許文献３には、４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａの高分子量のデキストラン硫酸の上記効果が記載されているが、低分子量のデキストラン硫酸や、デキストラン硫酸以外の多糖類の効果に関して、何ら具体的な言及はなされていない。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【0005】
【文献】生物工学 92 (9) 469-472 (2014)
【文献】生物工学 92 (9) 487-490 (2014)
【文献】Biotechnology and Bioengineering 2018, 1-6
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0006】
本発明は、上記状況のもとになされた。
すなわち、本発明の目的は、幹細胞の浮遊培養において、幹細胞の細胞塊形成率を向上させ、かつその形状を制御し、さらに幹細胞の増殖率および未分化維持率を向上させるために好適な培養用添加物を提供し、さらには幹細胞を培養するための培地、ならびに幹細胞の培養方法を提供することである。
すなわち、本発明の目的は、幹細胞の浮遊培養において、幹細胞の細胞塊形成率を向上させ、かつその形状を制御し、さらに幹細胞の増殖率および未分化維持率を向上させるために好適な培養用添加物を提供し、さらには幹細胞を培養するための培地、ならびに幹細胞の培養方法を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【0007】
本発明者は、上記課題を解決すべく鋭意検討した結果、低分子量のデキストラン硫酸等の硫酸化多糖等、高分子量のデキストラン硫酸以外の多糖類を含有する添加物を幹細胞の培養用培地に添加して、幹細胞の浮遊培養を行うことにより、または、低分子量のデキストラン硫酸等の硫酸化多糖等、高分子量のデキストラン硫酸以外の多糖類を含有する幹細胞の培養用培地にて幹細胞の浮遊培養を行うことにより、幹細胞の増殖率および生存率を向上させ、さらに細胞塊形成率を向上させることができて、細胞塊の形状も良好に制御でき、未分化維持率を向上させ得ることを見出し、本発明を完成するに至った。
【0008】
すなわち、本発明は以下に関する。
［１］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類を含有する、幹細胞培養用添加物。
［２］幹細胞が、成体幹細胞、胚性幹細胞および人工多能性幹細胞からなる群より選択される１種または２種以上である、［１］に記載の添加物。
［３］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、前記デキストラン硫酸以外の多糖類であって、負電荷を有する官能基を有する陰イオン性の多糖類またはその塩である、［１］または［２］に記載の添加物。
［４］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、前記デキストラン硫酸以外の硫酸化多糖またはその塩である、［１］～［３］のいずれかに記載の添加物。
［５］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、ヘパリンおよびその塩ならびに重量平均分子量が５，０００～５０，０００であるデキストラン硫酸およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上である、［１］～［４］のいずれかに記載の添加物。
［６］幹細胞培養用培地に添加される、［１］～［５］のいずれかに記載の添加物。
［７］培地の全量に対し、分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類の濃度が１μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬとなるように添加される、［６］に記載の添加物。
［８］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類を含有する、幹細胞培養用培地。
［９］成体幹細胞、胚性幹細胞および人工多能性幹細胞からなる群より選択される１種または２種以上の培養用である、［８］に記載の培地。
［１０］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、前記デキストラン硫酸以外の多糖類であって、負電荷を有する官能基を有する陰イオン性の多糖類またはその塩である、［８］または［９］に記載の培地。
［１１］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、前記デキストラン硫酸以外の硫酸化多糖またはその塩である、［８］～［１０］のいずれかに記載の培地。
［１２］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、ヘパリンおよびその塩ならびに重量平均分子量が５，０００～５０，０００であるデキストラン硫酸およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上である、［８］～［１１］のいずれかに記載の培地。
［１３］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類の含有量が１μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬである、［８］～［１２］のいずれかに記載の培地。
［１４］フィーダーフリー培地である、［８］～［１３］のいずれかに記載の培地。
［１５］無血清培地である、［１４］に記載の培地。
［１６］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類を含有する幹細胞の培養用培地にて、幹細胞を浮遊培養することを含む、幹細胞の培養方法。
［１７］幹細胞が、成体幹細胞、胚性幹細胞および人工多能性幹細胞からなる群より選択される１種または２種以上である、［１６］に記載の培養方法。
［１８］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、前記デキストラン硫酸以外の多糖類であって、負電荷を有する官能基を有する陰イオン性の多糖類またはその塩である、［１６］または［１７］に記載の培養方法。
［１９］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、前記デキストラン硫酸以外の硫酸化多糖またはその塩である、［１６］～［１８］のいずれかに記載の培養方法。
［２０］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、ヘパリンおよびその塩ならびに重量平均分子量が５，０００～５０，０００であるデキストラン硫酸およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上である、［１６］～［１９］のいずれかに記載の培養方法。
［２１］幹細胞の培養用培地における分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類の含有量が１μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬである、［１６］～［２０］のいずれかに記載の培養方法。
［２２］幹細胞の培養用培地がフィーダーフリー培地である、［１６］～［２１］のいずれかに記載の培養方法。
［２３］幹細胞の培養用培地が無血清培地である、［２２］に記載の培養方法。
［１］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類を含有する、幹細胞培養用添加物。
［２］幹細胞が、成体幹細胞、胚性幹細胞および人工多能性幹細胞からなる群より選択される１種または２種以上である、［１］に記載の添加物。
［３］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、前記デキストラン硫酸以外の多糖類であって、負電荷を有する官能基を有する陰イオン性の多糖類またはその塩である、［１］または［２］に記載の添加物。
［４］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、前記デキストラン硫酸以外の硫酸化多糖またはその塩である、［１］～［３］のいずれかに記載の添加物。
［５］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、ヘパリンおよびその塩ならびに重量平均分子量が５，０００～５０，０００であるデキストラン硫酸およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上である、［１］～［４］のいずれかに記載の添加物。
［６］幹細胞培養用培地に添加される、［１］～［５］のいずれかに記載の添加物。
［７］培地の全量に対し、分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類の濃度が１μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬとなるように添加される、［６］に記載の添加物。
［８］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類を含有する、幹細胞培養用培地。
［９］成体幹細胞、胚性幹細胞および人工多能性幹細胞からなる群より選択される１種または２種以上の培養用である、［８］に記載の培地。
［１０］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、前記デキストラン硫酸以外の多糖類であって、負電荷を有する官能基を有する陰イオン性の多糖類またはその塩である、［８］または［９］に記載の培地。
［１１］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、前記デキストラン硫酸以外の硫酸化多糖またはその塩である、［８］～［１０］のいずれかに記載の培地。
［１２］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、ヘパリンおよびその塩ならびに重量平均分子量が５，０００～５０，０００であるデキストラン硫酸およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上である、［８］～［１１］のいずれかに記載の培地。
［１３］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類の含有量が１μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬである、［８］～［１２］のいずれかに記載の培地。
［１４］フィーダーフリー培地である、［８］～［１３］のいずれかに記載の培地。
［１５］無血清培地である、［１４］に記載の培地。
［１６］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類を含有する幹細胞の培養用培地にて、幹細胞を浮遊培養することを含む、幹細胞の培養方法。
［１７］幹細胞が、成体幹細胞、胚性幹細胞および人工多能性幹細胞からなる群より選択される１種または２種以上である、［１６］に記載の培養方法。
［１８］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、前記デキストラン硫酸以外の多糖類であって、負電荷を有する官能基を有する陰イオン性の多糖類またはその塩である、［１６］または［１７］に記載の培養方法。
［１９］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、前記デキストラン硫酸以外の硫酸化多糖またはその塩である、［１６］～［１８］のいずれかに記載の培養方法。
［２０］分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類が、ヘパリンおよびその塩ならびに重量平均分子量が５，０００～５０，０００であるデキストラン硫酸およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上である、［１６］～［１９］のいずれかに記載の培養方法。
［２１］幹細胞の培養用培地における分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類の含有量が１μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬである、［１６］～［２０］のいずれかに記載の培養方法。
［２２］幹細胞の培養用培地がフィーダーフリー培地である、［１６］～［２１］のいずれかに記載の培養方法。
［２３］幹細胞の培養用培地が無血清培地である、［２２］に記載の培養方法。
【発明の効果】
【0009】
本発明により、幹細胞の浮遊培養に好適な培養用添加物および培地、ならびに幹細胞の培養方法を提供することができる。
従って、本発明により、幹細胞の浮遊培養において、幹細胞の増殖率および生存率を向上させることができ、大きさおよび形状の制御された細胞塊の形成率を向上させ、さらに未分化維持率を向上させることができる。
従って、本発明により、幹細胞の浮遊培養において、幹細胞の増殖率および生存率を向上させることができ、大きさおよび形状の制御された細胞塊の形成率を向上させ、さらに未分化維持率を向上させることができる。
【図面の簡単な説明】
【0010】
【図1】図１は、実施例１のヒトｉＰＳ細胞の撹拌培養において、ヘパリンナトリウムおよびデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）が細胞塊の形成および細胞の状態に与える効果を示す図である。なお、図中「Dextran sulfate」はデキストラン硫酸ナトリウムを示す。
【図3】図３は、実施例３のヒトｉＰＳ細胞の撹拌継代培養において、継代を重ねた際のデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）の効果を示す図である。なお、図中「Dextran sulfate」はデキストラン硫酸ナトリウムを示す。
【図5】図５は、実施例５のヒトｉＰＳ細胞の撹拌培養において、分子量の異なるデキストラン硫酸ナトリウムの効果を示す図である。なお、図中「Dextran sulfate」はデキストラン硫酸ナトリウムを示す。
【図7】図７は、実施例７の種々の幹細胞培養培地でのヒトｉＰＳ細胞の撹拌培養において、デキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）の効果を示す図である。なお、図中「Dextran sulfate」はデキストラン硫酸ナトリウムを示す。
【発明を実施するための形態】
【0011】
本発明は、幹細胞の培養用培地に添加し得る、幹細胞培養用添加物（以下、本明細書において「本発明の添加物」ともいう）を提供する。
【0012】
ここで、「幹細胞」とは、自己複製能と、別の種類の細胞に分化する能力を持ち、際限なく増殖できる細胞をいう。
たとえば、造血幹細胞、衛星細胞、神経幹細胞、間葉系幹細胞、乳腺幹細胞、嗅粘膜幹細胞、神経冠幹細胞、肝幹細胞、膵幹細胞、筋幹細胞、生殖幹細胞、腸管幹細胞、毛包幹細胞等の成体幹細胞；胚性幹細胞（ＥＳ細胞）、胚性腫瘍細胞、胚性生殖幹細胞、人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）等の多能性幹細胞；癌幹細胞等が挙げられる。
本発明の添加物は、成体幹細胞、胚性幹細胞および人工多能性幹細胞の培養に好ましく用いられ、胚性幹細胞および人工多能性幹細胞の培養により好ましく用いられる。
たとえば、造血幹細胞、衛星細胞、神経幹細胞、間葉系幹細胞、乳腺幹細胞、嗅粘膜幹細胞、神経冠幹細胞、肝幹細胞、膵幹細胞、筋幹細胞、生殖幹細胞、腸管幹細胞、毛包幹細胞等の成体幹細胞；胚性幹細胞（ＥＳ細胞）、胚性腫瘍細胞、胚性生殖幹細胞、人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）等の多能性幹細胞；癌幹細胞等が挙げられる。
本発明の添加物は、成体幹細胞、胚性幹細胞および人工多能性幹細胞の培養に好ましく用いられ、胚性幹細胞および人工多能性幹細胞の培養により好ましく用いられる。
【0013】
本発明の添加物は、分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類を含有する。
本発明において、「分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類」とは、グリコシド結合によって単糖分子が複数（２個以上）結合した物質であって、４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａの分子量を有する高分子量のデキストラン硫酸以外のものをいい、以下、本明細書において、「本発明における多糖類」のように表記することもある。
本発明における多糖類を構成する単糖としては、エリトルロース等のケトテトロース；エリトロース、トレオース等のアルドテトロース；リブロース、キシルロース等のケトペントース；リボース、アラビノース、キシロース、リキソース等のアルドペントース；プシコース（アルロース）、フルクトース、ソルボース、タガトース等のケトヘキソース；アロース、アルトロース、グルコース、マンノース、グロース、イドース、ガラクトース、タロース等のアルドヘキソース；セドヘプツロース等のケトヘプトースといった４炭糖～７炭糖、デオキシリボース、フコース、フクロース、ラムノース等のデオキシ糖；アラビノン酸、フルクツロン酸、タガツロン酸、グルクロン酸、ガラクツロン酸、マンヌロン酸、イズロン酸、グルロン酸等のウロン酸；グルコサミン、Ｎ－アセチルグルコサミン、ガラクトサミン、Ｎ－アセチルガラクトサミン、マンノサミン、Ｎ－アセチルマンノサミン、Ｎ－アセチルムラミン酸、ノイラミン酸、Ｎ－アセチルノイラミン酸等のアミノ糖およびそのＮ－アセチル化物等が例示される。
本発明における多糖類として、上記した単糖より選択される１種または２種以上により構成されるホモ多糖、ヘテロ多糖、ムコ多糖および、それらの脱アセチル化物、硫酸化物等の化学的修飾体等が用いられる。
本発明において、「分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるデキストラン硫酸以外の多糖類」とは、グリコシド結合によって単糖分子が複数（２個以上）結合した物質であって、４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａの分子量を有する高分子量のデキストラン硫酸以外のものをいい、以下、本明細書において、「本発明における多糖類」のように表記することもある。
本発明における多糖類を構成する単糖としては、エリトルロース等のケトテトロース；エリトロース、トレオース等のアルドテトロース；リブロース、キシルロース等のケトペントース；リボース、アラビノース、キシロース、リキソース等のアルドペントース；プシコース（アルロース）、フルクトース、ソルボース、タガトース等のケトヘキソース；アロース、アルトロース、グルコース、マンノース、グロース、イドース、ガラクトース、タロース等のアルドヘキソース；セドヘプツロース等のケトヘプトースといった４炭糖～７炭糖、デオキシリボース、フコース、フクロース、ラムノース等のデオキシ糖；アラビノン酸、フルクツロン酸、タガツロン酸、グルクロン酸、ガラクツロン酸、マンヌロン酸、イズロン酸、グルロン酸等のウロン酸；グルコサミン、Ｎ－アセチルグルコサミン、ガラクトサミン、Ｎ－アセチルガラクトサミン、マンノサミン、Ｎ－アセチルマンノサミン、Ｎ－アセチルムラミン酸、ノイラミン酸、Ｎ－アセチルノイラミン酸等のアミノ糖およびそのＮ－アセチル化物等が例示される。
本発明における多糖類として、上記した単糖より選択される１種または２種以上により構成されるホモ多糖、ヘテロ多糖、ムコ多糖および、それらの脱アセチル化物、硫酸化物等の化学的修飾体等が用いられる。
【0014】
本発明の目的には、上記多糖類は、低分子量から高分子量まで種々の分子量のものを用いることができる。
本明細書において、「分子量」とは、サイズ排除クロマトグラフィーにより測定される分子量である。
本発明の目的には、上記多糖類として、サイズ排除クロマトグラフィーにより測定される重量平均分子量が３００～５００，０００程度のものを用いることが好ましく、１，０００～５０，０００程度のものを用いることがより好ましく、４，０００～５０，０００程度のものを用いることがさらに好ましい。
なお、本明細書において、上記重量平均分子量を単に「平均分子量」と表記することがある。
多糖類のサイズ排除クロマトグラフィーは、多糖類の種類等に応じて、一般的に用いられる親水性ポリマーを担体とするカラム、硝酸ナトリウム水溶液といった中性塩溶離液を用いた溶離条件等により行うことができる。
本明細書において、「分子量」とは、サイズ排除クロマトグラフィーにより測定される分子量である。
本発明の目的には、上記多糖類として、サイズ排除クロマトグラフィーにより測定される重量平均分子量が３００～５００，０００程度のものを用いることが好ましく、１，０００～５０，０００程度のものを用いることがより好ましく、４，０００～５０，０００程度のものを用いることがさらに好ましい。
なお、本明細書において、上記重量平均分子量を単に「平均分子量」と表記することがある。
多糖類のサイズ排除クロマトグラフィーは、多糖類の種類等に応じて、一般的に用いられる親水性ポリマーを担体とするカラム、硝酸ナトリウム水溶液といった中性塩溶離液を用いた溶離条件等により行うことができる。
【0015】
また、本発明においては、上記多糖類が後述する陰イオン性の多糖類である場合、塩の形態で用いることもできる。かかる塩としては、たとえば、リチウム塩、ナトリウム塩、カリウム塩等のアルカリ金属塩；マグネシウム塩、カルシウム塩等のアルカリ土類金属塩；アンモニウム塩；トリエタノールアミン塩、ピリジニウム塩等の有機アミン塩等が例示される。
【0016】
本発明の目的には、負電荷を有する官能基を有する陰イオン性の多糖類が好ましく用いられ、たとえば、ヒアルロン酸、ポリガラクツロン酸、ペクチン、アルギン酸等、分子内にカルボン酸を有するウロン酸を構成単位として含有する多糖類；カラギーナン、フコイダン、ヘパリン、ヘパラン硫酸、デキストラン硫酸（分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるものを除く）、デルマタン硫酸、ケラタン硫酸、コンドロイチン硫酸（コンドロイチン４－硫酸、コンドロイチン６－硫酸等）等の硫酸化多糖が好ましい多糖として例示される。
なかでも、硫酸化多糖がより好ましく用いられ、硫酸化度の高いヘパリン、デキストラン硫酸（分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるものを除く）、コンドロイチン硫酸等がさらに好ましく用いられる。硫酸化多糖としては、全水酸基の硫酸化度が１０％～９０％程度のものが好ましく用いられ、２０％～８０％程度のものがより好ましく用いられる。
なかでも、硫酸化多糖がより好ましく用いられ、硫酸化度の高いヘパリン、デキストラン硫酸（分子量が４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａであるものを除く）、コンドロイチン硫酸等がさらに好ましく用いられる。硫酸化多糖としては、全水酸基の硫酸化度が１０％～９０％程度のものが好ましく用いられ、２０％～８０％程度のものがより好ましく用いられる。
【0017】
なお、デキストラン硫酸は、グルコースのみから構成され、α－１，６－結合を多く含む多糖類が硫酸化されたものである。
本発明においては、４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａの分子量を有する高分子量のもの以外のデキストラン硫酸が用いられ、好ましくは、サイズ排除クロマトグラフィーにより測定される重量平均分子量が１，０００～５０，０００程度のものが用いられ、より好ましくは前記重量平均分子量が４，０００～５０，０００程度のものが用いられる。
本発明においては、４，０００ｋＤａ～４０，０００ｋＤａの分子量を有する高分子量のもの以外のデキストラン硫酸が用いられ、好ましくは、サイズ排除クロマトグラフィーにより測定される重量平均分子量が１，０００～５０，０００程度のものが用いられ、より好ましくは前記重量平均分子量が４，０００～５０，０００程度のものが用いられる。
【0018】
本発明の添加物には、上記本発明における多糖類は１種を選択して用いてもよく、２種以上を選択して、組み合わせて用いることもできる。
本発明の培養用添加物における本発明における多糖類の含有量は、培地に添加した際の培地組成物中における本発明における多糖類の含有量が、後述する含有量の範囲内となるように設定される。
本発明の培養用添加物における本発明における多糖類の含有量は、培地に添加した際の培地組成物中における本発明における多糖類の含有量が、後述する含有量の範囲内となるように設定される。
【0019】
なお、幹細胞の培養における細胞塊形成促進効果等の観点からは、上記本発明における多糖類の特に好ましい例として、ヘパリンおよびその塩、ならびに、平均分子量（サイズ排除クロマトグラフィーにより測定される重量平均分子量）が５，０００～５０，０００程度のデキストラン硫酸およびその塩が挙げられる。
従って、本発明の特に好ましい態様においては、上記本発明における多糖類として、ヘパリンおよびその塩、ならびに、平均分子量が５，０００～５０，０００程度のデキストラン硫酸およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上が用いられる。
従って、本発明の特に好ましい態様においては、上記本発明における多糖類として、ヘパリンおよびその塩、ならびに、平均分子量が５，０００～５０，０００程度のデキストラン硫酸およびその塩からなる群より選択される１種または２種以上が用いられる。
【0020】
本発明においては、上記した本発明における多糖類をそのまま培養用添加物としてもよく、また、水等の溶媒に溶解もしくは分散し、水溶液、分散液等の液状の培養用添加物としてもよく、あるいは賦形剤、結合剤等の一般的に製剤化に用いられる成分と混合して、粉末状、顆粒状、錠剤状等の固形状の培養用添加物としてもよい。
また、上記した本発明における多糖類を、炭水化物、無機塩等の以下に述べる培地成分の一部と混合して、培養用添加物として調製してもよい。
幹細胞の培養用培地への添加が簡便で、培地との混和も容易であるとの観点から、本発明の添加物は、好ましくは液状、粉末状、顆粒状、錠剤状等の形態で提供される。
また、上記した本発明における多糖類を、炭水化物、無機塩等の以下に述べる培地成分の一部と混合して、培養用添加物として調製してもよい。
幹細胞の培養用培地への添加が簡便で、培地との混和も容易であるとの観点から、本発明の添加物は、好ましくは液状、粉末状、顆粒状、錠剤状等の形態で提供される。
【0021】
本発明の添加物は、滅菌処理して調製することが好ましい。滅菌処理の方法は特に制限されず、たとえば、１２１℃で２０分間のオートクレーブ滅菌、放射線滅菌、エチレンオキサイドガス滅菌、フィルターろ過滅菌等が挙げられ、本発明の添加物の形態等により、適宜選択することができる。
【0022】
本発明の添加物は、後述する幹細胞の培養用培地の成分に添加されて、幹細胞の培養用培地の調製に用いられ、または後述する幹細胞の培養用培地に添加されて用いられる。
【0023】
本発明の添加物を培養用培地に添加して幹細胞を浮遊培養した場合、幹細胞の増殖率および生存率が向上し、大きさおよび形状の制御された細胞塊を効率的に形成させることができ、さらに幹細胞の未分化維持率が向上する。
ここで、「細胞塊」とは、細胞同士が集合しまたは凝集化した球状の細胞集合体をいい、「スフェロイド」ともいう。「大きさおよび形状の制御された細胞塊を効率的に形成させる」とは、小さな球状の均一な細胞塊が高密度で形成されることをいう。
ここで、「細胞塊」とは、細胞同士が集合しまたは凝集化した球状の細胞集合体をいい、「スフェロイド」ともいう。「大きさおよび形状の制御された細胞塊を効率的に形成させる」とは、小さな球状の均一な細胞塊が高密度で形成されることをいう。
【0024】
本発明はまた、幹細胞の培養用培地（以下、本明細書において「本発明の培地」ともいう）を提供する。
本発明の培地は、幹細胞の培養に通常用いられる培地成分とともに、本発明における多糖類を含有する。
本発明の培地には、本発明における多糖類は１種を単独で、または２種以上を組み合わせて含有させることができる。
本発明の培地に含有される本発明における多糖類は、上記した本発明の添加物として調製された状態で、前記培地成分とともに含有されてもよく、または培地成分に直接添加されてもよい。
本発明の培地における上記した本発明における多糖類の含有量は、培養時における終濃度として、通常１μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬであり、好ましくは１０μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬであり、より好ましくは２０μｇ／ｍＬ～２５０μｇ／ｍＬである。
本発明の培地は、幹細胞の培養に通常用いられる培地成分とともに、本発明における多糖類を含有する。
本発明の培地には、本発明における多糖類は１種を単独で、または２種以上を組み合わせて含有させることができる。
本発明の培地に含有される本発明における多糖類は、上記した本発明の添加物として調製された状態で、前記培地成分とともに含有されてもよく、または培地成分に直接添加されてもよい。
本発明の培地における上記した本発明における多糖類の含有量は、培養時における終濃度として、通常１μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬであり、好ましくは１０μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬであり、より好ましくは２０μｇ／ｍＬ～２５０μｇ／ｍＬである。
【0025】
本発明の培地に含有させ得る培地成分としては、幹細胞の培養に通常用いられる培地成分を挙げることができ、たとえば、グルコース、フルクトース、スクロース、マルトース等の糖；アスパラギン、アスパラギン酸、グルタミン、グルタミン酸等のアミノ酸；アルブミン、トランスフェリン等のタンパク質およびペプチド；血清；ビタミンＡ、ビタミンＢ群（チアミン、リボフラビン、ピリドキシン、シアノコバラミン、ビオチン、葉酸、パントテン酸、ニコチンアミド等）、ビタミンＣ、ビタミンＥ等のビタミン；オレイン酸、アラキドン酸、リノール酸等の脂肪酸、コレステロール等の脂質；塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウム、硫酸マグネシウム、リン酸二水素ナトリウム等の無機塩；亜鉛、銅、セレン等の微量元素；Ｎ，Ｎ－ビス（２－ヒドロキシエチル）－２－アミノエタンスルホン酸（N,N-bis(2-hydroxyethyl)-2-aminoethanesulfonic acid（ＢＥＳ））、４－（２－ヒドロキシエチル）－１－ピペラジンエタンスルホン酸（4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic acid（ＨＥＰＥＳ））、Ｎ－［トリス（ヒドロキシメチル）メチル］グリシン（N-[tris(hydroxymethyl)methyl]glycine（Ｔｒｉｃｉｎｅ））等の緩衝剤；アンホテリシンＢ、カナマイシン、ゲンタマイシン、ストレプトマイシン、ペニシリン等の抗生物質；Ｔｙｐｅ Ｉ コラーゲン、Ｔｙｐｅ ＩＩ コラーゲン、フィブロネクチン、ラミニン、ポリ－Ｌ－リジン、ポリ－Ｄ－リジン等の細胞接着因子および細胞外マトリックス成分；インターロイキン、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）、トランスフォーミング増殖因子（ＴＧＦ）－α、トランスフォーミング増殖因子（ＴＧＦ）－β、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）、アクチビンＡ等のサイトカインおよび増殖因子；デキサメサゾン、ヒドロコルチゾン、エストラジオール、プロゲステロン、グルカゴン、インスリン等のホルモン等が挙げられ、培養する幹細胞の種類に応じて適切な成分を選択して用いることができる。
なお、血清には未知の因子やプリオン、ウイルス等が含まれる可能性があるため、本発明の培地は、培地成分として血清を含有しないことが好ましい。また、本発明の培地が、ヒトの幹細胞の培養用培地として調製される場合には、ヒト以外の動物由来成分を含有しないことが好ましい。
なお、血清には未知の因子やプリオン、ウイルス等が含まれる可能性があるため、本発明の培地は、培地成分として血清を含有しないことが好ましい。また、本発明の培地が、ヒトの幹細胞の培養用培地として調製される場合には、ヒト以外の動物由来成分を含有しないことが好ましい。
【0026】
また、本発明においては、培地成分として、既存の幹細胞培養用培地を用いることができ、市販の培地を用いることもできる。
かかる培地としては、ＳＴＥＭＰＲＯ（登録商標） ｈＥＳＣ ＳＦＭ培地（ライフテクノロジーズ（Life Technologies）社）、ｍＴｅＳＲ１培地（ステムセルテクノロジーズ（STEMCELL Technologies）社）、ＴｅＳＲ２培地（ステムセルテクノロジーズ（STEMCELL Technologies）社）、ＴｅＳＲ－Ｅ８培地（ステムセルテクノロジーズ（STEMCELL Technologies）社）、Ｅｓｓｅｎｃｉａｌ ８培地（ライフテクノロジーズ（Life Technologies）社）、ＨＥＳｃＧＲＯ（商標） Ｓｅｒｕｍ－Ｆｒｅｅ Ｍｅｄｉｕｍ ｆｏｒ ｈＥＳ ｃｅｌｌｓ（ミリポア（Millipore）社）、ＰｌｕｒｉＳＴＥＭ（商標） Ｈｕｍａｎ ＥＳ／ｉＰＳ Ｍｅｄｉｕｍ（イーエムディー ミリポア（EMD Millipore）社）、ＮｕｔｒｉＳｔｅｍ（登録商標） ｈＥＳＣ ＸＦ培地（バイオロジカル インダストリーズ イスラエル ベイト－ヘメク リミテッド（Biological Industries Israel Beit-Haemek Ltd.）、ＮｕｔｒｉＳｔｅｍ（商標） ＸＦ／ＦＦ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｕｍ（ステムジェント（Stemgent）社）、ＡＦ ＮｕｔｒｉＳｔｅｍ（登録商標） ｈＥＳＣ ＸＦ培地（バイオロジカル インダストリーズ イスラエル ベイト－ヘメク リミテッド（Biological Industries Israel Beit-Haemek Ltd.）、Ｓ－ｍｅｄｉｕｍ（ＤＳファーマバイオメディカル株式会社）、ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標） ＡＫ０３培地（味の素株式会社）、ｈＥＳＦ９培地、ｈＥＳＦ－ＦＸ培地、ＣＤＭ培地、ＤＥＦ－ＣＳ ５００ Ｘｅｎｏ－Ｆｒｅｅ ３Ｄ Ｓｐｈｅｒｏｉｄ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｕｍ（セラルティス（Cellartis）社）、ＳｔｅｍＦｌｅｘ培地（サーモフィッシャー サイエンティフィック（Thermo Fisher Scientific）社）等が挙げられる。
本発明の目的には、フィーダーフリーの幹細胞培養用培地を用いることが好ましく、さらに無血清培地を用いることがより好ましく、また、ヒトの幹細胞の培養用培地に用いるには、ヒト以外の動物由来成分を含有しないもの（ゼノフリー培地）が好ましい。
かかる培地としては、ＳＴＥＭＰＲＯ（登録商標） ｈＥＳＣ ＳＦＭ培地（ライフテクノロジーズ（Life Technologies）社）、ｍＴｅＳＲ１培地（ステムセルテクノロジーズ（STEMCELL Technologies）社）、ＴｅＳＲ２培地（ステムセルテクノロジーズ（STEMCELL Technologies）社）、ＴｅＳＲ－Ｅ８培地（ステムセルテクノロジーズ（STEMCELL Technologies）社）、Ｅｓｓｅｎｃｉａｌ ８培地（ライフテクノロジーズ（Life Technologies）社）、ＨＥＳｃＧＲＯ（商標） Ｓｅｒｕｍ－Ｆｒｅｅ Ｍｅｄｉｕｍ ｆｏｒ ｈＥＳ ｃｅｌｌｓ（ミリポア（Millipore）社）、ＰｌｕｒｉＳＴＥＭ（商標） Ｈｕｍａｎ ＥＳ／ｉＰＳ Ｍｅｄｉｕｍ（イーエムディー ミリポア（EMD Millipore）社）、ＮｕｔｒｉＳｔｅｍ（登録商標） ｈＥＳＣ ＸＦ培地（バイオロジカル インダストリーズ イスラエル ベイト－ヘメク リミテッド（Biological Industries Israel Beit-Haemek Ltd.）、ＮｕｔｒｉＳｔｅｍ（商標） ＸＦ／ＦＦ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｕｍ（ステムジェント（Stemgent）社）、ＡＦ ＮｕｔｒｉＳｔｅｍ（登録商標） ｈＥＳＣ ＸＦ培地（バイオロジカル インダストリーズ イスラエル ベイト－ヘメク リミテッド（Biological Industries Israel Beit-Haemek Ltd.）、Ｓ－ｍｅｄｉｕｍ（ＤＳファーマバイオメディカル株式会社）、ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標） ＡＫ０３培地（味の素株式会社）、ｈＥＳＦ９培地、ｈＥＳＦ－ＦＸ培地、ＣＤＭ培地、ＤＥＦ－ＣＳ ５００ Ｘｅｎｏ－Ｆｒｅｅ ３Ｄ Ｓｐｈｅｒｏｉｄ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｕｍ（セラルティス（Cellartis）社）、ＳｔｅｍＦｌｅｘ培地（サーモフィッシャー サイエンティフィック（Thermo Fisher Scientific）社）等が挙げられる。
本発明の目的には、フィーダーフリーの幹細胞培養用培地を用いることが好ましく、さらに無血清培地を用いることがより好ましく、また、ヒトの幹細胞の培養用培地に用いるには、ヒト以外の動物由来成分を含有しないもの（ゼノフリー培地）が好ましい。
【0027】
幹細胞の浮遊培養に用いるという観点からは、本発明の培地は、溶液、分散液等の液状の形態とすることが好ましい。
【0028】
本発明の培地は、公知の組成に従って、上記した培地成分から適宜選択される成分を、本発明における多糖類とともに水等の溶媒に添加し、溶解または分散して調製することができる。
また、本発明の培地は、各社・各機関から提供されている上記した幹細胞培養用培地に、本発明における多糖類を添加して溶解または分散して調製することができる。
さらに、本発明の培地は、使用時の濃度よりも濃縮した状態、凍結乾燥された粉末状の状態で調製し、使用時に水等の溶媒で希釈し、または水等の溶媒に溶解または分散して用いる態様とすることもできる。
本発明の培地は、上記したような滅菌処理を施して調製されることが好ましい。
また、本発明の培地は、各社・各機関から提供されている上記した幹細胞培養用培地に、本発明における多糖類を添加して溶解または分散して調製することができる。
さらに、本発明の培地は、使用時の濃度よりも濃縮した状態、凍結乾燥された粉末状の状態で調製し、使用時に水等の溶媒で希釈し、または水等の溶媒に溶解または分散して用いる態様とすることもできる。
本発明の培地は、上記したような滅菌処理を施して調製されることが好ましい。
【0029】
本発明の培地を用いて幹細胞を浮遊培養することにより、高増殖率および生存率にて幹細胞の３次元培養が可能となり、大きさおよび形状の制御された細胞塊を効率的に形成させることができる。また、幹細胞の未分化維持率を向上させることができる。
【0030】
さらに、本発明は、幹細胞の培養方法（以下、本明細書にて「本発明の培養方法」とも称する）を提供する。
本発明の培養方法は、本発明における多糖類を含有する幹細胞の培養用培地にて、幹細胞を浮遊培養することを含む。
本発明の培養方法は、本発明における多糖類を含有する幹細胞の培養用培地にて、幹細胞を浮遊培養することを含む。
【0031】
「本発明における多糖類を含有する幹細胞の培養用培地」については上記した通りであり、本発明において、幹細胞の培養用培地に含有される本発明における多糖類は、上記した本発明の添加物として調製されて添加されたものでもよく、本発明における多糖類自体が直接添加されたものでもよい。
また、本発明においては、本発明における多糖類は、培養時における終濃度として、通常１μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬの濃度となるように培地に添加され、１０μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬの濃度となるように培地に添加されることが好ましく、２０μｇ／ｍＬ～２５０μｇ／ｍＬの濃度となるように培地に添加されることがより好ましい。
また、本発明においては、本発明における多糖類は、培養時における終濃度として、通常１μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬの濃度となるように培地に添加され、１０μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬの濃度となるように培地に添加されることが好ましく、２０μｇ／ｍＬ～２５０μｇ／ｍＬの濃度となるように培地に添加されることがより好ましい。
【0032】
本発明の培養方法において、幹細胞の培養は、通常の浮遊培養の方法に従って行うことができる。すなわち、培養スケールに応じて適宜細胞培養用プレート、細胞培養フラスコ、バイオリアクター等の培養器具または培養装置を用い、上記した本発明の培地または本発明の添加物を添加した幹細胞培養用培地に幹細胞を播種して、通常２５℃～３９℃、好ましくは３３℃～３９℃で、通常４体積％～１０体積％、好ましくは４体積％～６体積％の二酸化炭素存在下、また通常１体積％～２５体積％、好ましくは４体積％～２０体積％の酸素存在下にて、通常１日間～３０日間、好ましくは３日間～１４日間培養を行う。なお、２～３日間ごとに培地交換を行う。
培地交換は、遠心分離やろ過により幹細胞と培地とを分離した後、新しい培地を幹細胞に添加すればよい。あるいは、遠心分離やろ過を行うことにより幹細胞を適宜濃縮した後、新しい培地をこの濃縮液に添加すればよい。
上記遠心分離の際の重力加速度（Ｇ）は、通常５０Ｇ～１，０００Ｇ、好ましくは、１００Ｇ～５００Ｇであり、ろ過に用いるフィルターの細孔の大きさは、通常１０μｍ～２００μｍである。
培地交換は、遠心分離やろ過により幹細胞と培地とを分離した後、新しい培地を幹細胞に添加すればよい。あるいは、遠心分離やろ過を行うことにより幹細胞を適宜濃縮した後、新しい培地をこの濃縮液に添加すればよい。
上記遠心分離の際の重力加速度（Ｇ）は、通常５０Ｇ～１，０００Ｇ、好ましくは、１００Ｇ～５００Ｇであり、ろ過に用いるフィルターの細孔の大きさは、通常１０μｍ～２００μｍである。
【0033】
大きさの制御された細胞塊を効率よく得るためには、幹細胞の培養は、撹拌または振とうを行って実施することが好ましい。
撹拌は、通常１０ｒｐｍ～２，０００ｒｐｍ、好ましくは４０ｒｐｍ～１，０００ｒｐｍの撹拌速度で行う。
また、振とうは、通常１０ｒｐｍ～５００ｒｐｍ、好ましくは５０ｒｐｍ～２５０ｒｐｍの振とう速度で行う。
撹拌は、通常１０ｒｐｍ～２，０００ｒｐｍ、好ましくは４０ｒｐｍ～１，０００ｒｐｍの撹拌速度で行う。
また、振とうは、通常１０ｒｐｍ～５００ｒｐｍ、好ましくは５０ｒｐｍ～２５０ｒｐｍの振とう速度で行う。
【0034】
培養された幹細胞は、遠心分離またはフィルターを用いたろ過により回収することができる。
遠心分離は、５０Ｇ～１，０００Ｇ、好ましくは１００Ｇ～５００Ｇで１分間～１０分間程度行う。
また、ろ過は、１０μｍ～２００μｍ程度の細孔を有するフィルターを用いて行うことができる。
遠心分離は、５０Ｇ～１，０００Ｇ、好ましくは１００Ｇ～５００Ｇで１分間～１０分間程度行う。
また、ろ過は、１０μｍ～２００μｍ程度の細孔を有するフィルターを用いて行うことができる。
【0035】
培養された幹細胞は、ＳＴＥＭ－ＣＥＬＬＢＡＮＫＥＲ（日本全薬工業株式会社）等の凍結保護剤を含有する凍結用培地を用いて、液体窒素中で保存することが好ましい。
【0036】
本発明の培養方法により、高増殖率および生存率にて幹細胞の３次元培養を行うことができ、大きさおよび形状の制御された細胞塊を効率的に得ることができる。また、未分化維持率の向上した幹細胞の培養細胞を得ることができる。
【実施例】
【0037】
以下、本発明について、実施例によりさらに詳細に説明する。
【0038】
以下の実施例において、次に示す幹細胞培養用培地と、本発明における多糖類として下記の多糖類を用い、幹細胞として未分化のヒトｉＰＳ細胞（ｈｉＰＳＣ）を用いて、次の通り撹拌による浮遊培養および振とうによる浮遊培養を行った。
【0039】
（１）幹細胞培養用培地としては、ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地（味の素株式会社）、Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ８培地 （サーモフィッシャー サイエンティフィック（Thermo Fisher Scientific）社、A1517001）、ｍＴｅＳＲ１培地（ステムセル テクノロジーズ（STEMCELL Technologies）社、85850）、ＤＥＦ－ＣＳ ５００ Ｘｅｎｏ－Ｆｒｅｅ ３Ｄ Ｓｐｈｅｒｏｉｄ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｕｍ（セラルティス（Cellartis）社、Y30047）、およびＳｔｅｍＦｌｅｘ培地（サーモフィッシャー サイエンティフィック（Thermo Fisher Scientific）社、A3349401）を用いた。
【0040】
（２）本発明における多糖類としては、ヘパリンナトリウム（Heparin sodium）（ナカライテスク株式会社、17513-54）、ヘパリンリチウム（Heparin lithium）（ナカライテスク株式会社、02869-74）、ヘパリンアンモニウム（Heparin ammonium）（シグマ－アルドリッチ（Sigma-Aldrich社）、H6279）、クレキサン（エノキサパリンナトリウム）（サノフィ株式会社）（平均分子量＝４，５００の低分子量ヘパリンナトリウム）、ヘパラン硫酸（heparan sulfate）（国際公開第２０１７／１１５６７５号に記載の方法に従って製造した）、およびデキストラン硫酸ナトリウム（Sodium dextran sulfate）（和光純薬工業株式会社、191-08365）（平均分子量＝５，０００）、デキストラン硫酸ナトリウム（ＭＰ バイオメディカルズ（MP BIOMEDICALS）、0216011090）（分子量３６，０００～５０，０００）を用いた。
【0041】
（３）未分化ｈｉＰＳＣとしては、1210B2株および1231A3株(Nakagawa, M. et al., Sci. Rep. 4, 3594, 2014参照)のｈｉＰＳ細胞を用いた。
【0042】
（４）撹拌による浮遊細胞培養は、培養器材として、シングルユースバイオリアクター３０ｍＬ容量（エイブル株式会社（ABLE Corporation）、BWV-S03A）と５ｍＬ容量（エイブル株式会社（ABLE Corporation）、S-1467）を用いて行った。
３０ｍＬスケールの浮遊培養には、３０ｍＬ容量のバイオリアクターに、１０μＭのＲｈｏ結合キナーゼ阻害剤（Ｙ－２７６３２）（富士フィルム和光純薬株式会社、034-24024）を含有する培地３０ｍＬを添加し、５ｍＬスケールの浮遊培養には、５ｍＬ容量のバイオリアクターに１０μＭのＲｈｏ結合キナーゼ阻害剤（Ｙ－２７６３２）を含有する培地５ｍＬを添加し、シングルセル化したｈｉＰＳＣを添加して、３７℃、５体積％二酸化炭素の条件下で、各実施例に記載の回転数にて撹拌培養を行った。
２日目以降には培地交換を行った。培地交換は、各実施例に記載の量の培地上清を抜き取り、５００Ｇ、５ｍｉｎ遠心分離し、上清を除去後、同量の新しい培地を添加し、ペレットを懸濁後バイオリアクターに添加して行った。
３０ｍＬスケールの浮遊培養には、３０ｍＬ容量のバイオリアクターに、１０μＭのＲｈｏ結合キナーゼ阻害剤（Ｙ－２７６３２）（富士フィルム和光純薬株式会社、034-24024）を含有する培地３０ｍＬを添加し、５ｍＬスケールの浮遊培養には、５ｍＬ容量のバイオリアクターに１０μＭのＲｈｏ結合キナーゼ阻害剤（Ｙ－２７６３２）を含有する培地５ｍＬを添加し、シングルセル化したｈｉＰＳＣを添加して、３７℃、５体積％二酸化炭素の条件下で、各実施例に記載の回転数にて撹拌培養を行った。
２日目以降には培地交換を行った。培地交換は、各実施例に記載の量の培地上清を抜き取り、５００Ｇ、５ｍｉｎ遠心分離し、上清を除去後、同量の新しい培地を添加し、ペレットを懸濁後バイオリアクターに添加して行った。
【0043】
振とうによる浮遊培養は、６ ｗｅｌｌの細胞培養用プレート（グレイナー バイオ－ワン インターナショナル（Greiner Bio-One International）社、657160）に１０μＭのＲｈｏ結合キナーゼ阻害剤（Ｙ－２７６３２）を含有する培地５ｍＬを添加し、シングルセル化したｈｉＰＳＣを１ｘ１０６細胞添加し、３７℃、５体積％二酸化炭素の条件下で９５ｒｐｍで水平振とうを行って実施した。
【0044】
また、下記の各実施例において、培養された幹細胞における細胞塊数と長径の測定、細胞数および生存率の測定、ならびに細胞の未分化維持率の測定は、以下の通り行った。
【0045】
（１）細胞塊数と長径の測定
細胞塊を含む培地上清を２４ ｗｅｌｌプレートに５００μＬ分取した。細胞塊を振とうして分散させたのち、ＢＺ－Ｘ蛍光顕微鏡（株式会社キーエンス（Keyence））でウェル全体を撮影した。撮影した画像に対してマクロセルカウントを行うことで、細胞塊の個数と長径の平均を求めた。
細胞塊を含む培地上清を２４ ｗｅｌｌプレートに５００μＬ分取した。細胞塊を振とうして分散させたのち、ＢＺ－Ｘ蛍光顕微鏡（株式会社キーエンス（Keyence））でウェル全体を撮影した。撮影した画像に対してマクロセルカウントを行うことで、細胞塊の個数と長径の平均を求めた。
【0046】
（２）細胞数および生存率の測定
細胞塊を含む培地上清を全量回収し、５００Ｇ、５ｍｉｎ遠心分離した。上清を除去後、１０回タッピングを行い、１ｍＬの細胞分離／分散溶液（Ａｃｃｕｍａｘ（ミリポア（Millipore）社、SCR006）を添加し、細胞塊ペレットを懸濁した。室温で５ｍｉｎインキュベーションした後、ピペッティングにより細胞塊を再懸濁した。再度室温で５ｍｉｎインキュベーションした後、ピペッティングにより細胞塊をシングルセル化した。４ｍＬの培地を添加し、５００Ｇ、５ｍｉｎ遠心分離した。上清を除去後、１０回タッピングを行うことでペレットを破砕し、１ｍＬのＲｈｏ結合キナーゼ阻害剤（Ｙ－２７６３２）を含有する培地を添加してピペッティングすることにより細胞を再懸濁した。細胞懸濁液を４０μｍのセルストレーナー（ＢＤ Ｆａｌｃｏｎ（コーニング社）、2-1919-02）に通し、さらに４ｍＬのＲｈｏ結合キナーゼ阻害剤（Ｙ－２７６３２）を含有する培地でセルストレーナーを共洗いした。回収した細胞懸濁液を生死細胞オートアナライザー Ｖｉ－ＣＥＬＬ ＸＲ（ベックマン・コールター株式会社）で分析することで、細胞数と生存率の測定を行った。
細胞塊を含む培地上清を全量回収し、５００Ｇ、５ｍｉｎ遠心分離した。上清を除去後、１０回タッピングを行い、１ｍＬの細胞分離／分散溶液（Ａｃｃｕｍａｘ（ミリポア（Millipore）社、SCR006）を添加し、細胞塊ペレットを懸濁した。室温で５ｍｉｎインキュベーションした後、ピペッティングにより細胞塊を再懸濁した。再度室温で５ｍｉｎインキュベーションした後、ピペッティングにより細胞塊をシングルセル化した。４ｍＬの培地を添加し、５００Ｇ、５ｍｉｎ遠心分離した。上清を除去後、１０回タッピングを行うことでペレットを破砕し、１ｍＬのＲｈｏ結合キナーゼ阻害剤（Ｙ－２７６３２）を含有する培地を添加してピペッティングすることにより細胞を再懸濁した。細胞懸濁液を４０μｍのセルストレーナー（ＢＤ Ｆａｌｃｏｎ（コーニング社）、2-1919-02）に通し、さらに４ｍＬのＲｈｏ結合キナーゼ阻害剤（Ｙ－２７６３２）を含有する培地でセルストレーナーを共洗いした。回収した細胞懸濁液を生死細胞オートアナライザー Ｖｉ－ＣＥＬＬ ＸＲ（ベックマン・コールター株式会社）で分析することで、細胞数と生存率の測定を行った。
【0047】
（３）細胞の未分化維持率の測定
培養後シングルセル化した細胞を、細胞固定化／細胞透過化溶液（ＢＤ Ｃｙｔｏｆｉｘ／Ｃｙｔｏｐｅｒｍ（商標） Ｋｉｔ(ビー ディー バイオサイエンス（BD Biosciences）社、554714)）により固定化した。具体的には、２００μＬのＣｙｔｏｆｉｘ／Ｃｙｔｏｐｅｒｍを添加し、氷上で２０分静置することでｈｉＰＳＣの固定を行った。
次いで、１ｍＬのＢＤ Ｐｅｒｍ／Ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ（商標）(ビー ディー バイオサイエンス（BD Biosciences）社、554723）を添加し、５，０００ｒｐｍ、２ｍｉｎ遠心分離を行い、上清を除いた。次に、適当量のＢＤ Ｐｅｒｍ／Ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ（商標）に懸濁し、二重染色用サンプル、単染色用サンプル、ｉｓｏｔｙｐｅ ｃｏｎｔｒｏｌ用サンプル、非染色用サンプルに分けてそれぞれ遠沈管に分注し、５，０００ｒｐｍ、２ｍｉｎ遠心分離を行い、上清を除去した。
二重染色および単染色は１：５（５倍）希釈のＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標） ４８８ ｍｏｕｓｅ ａｎｔｉ－ｏｃｔ３／４（ベクトン・ディッキンソン（Becton Dickinson）社、560253）および１：１０（１０倍）希釈のＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標） ６４７ ｍｏｕｓｅ ａｎｔｉ―ＳＳＥＡ－４（ベクトン・ディッキンソン（Becton Dickinson）社、560796）の両方、もしくは一方をＢＤ Ｐｅｒｍ／Ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ（商標）に添加した溶液を１００μＬ添加し、室温、遮光下で２０ｍｉｎインキュベーションすることで行った。
Ｉｓｏｔｙｐｅ ｃｏｎｔｒｏｌ用サンプルには１：２０（２０倍）希釈のＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標） ４８８ Ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ１ κ Ｉｓｏｔｙｐｅ Ｃｏｎｔｒｏｌ（ベクトン・ディッキンソン（Becton Dickinson）社、557721）または１：２０（２０倍）希釈のＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標） ６４７ Ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ３、κ Ｉｓｏｔｙｐｅ Ｃｏｎｔｒｏｌ（ベクトン・ディッキンソン（Becton Dickinson）社、560803）を添加したＢＤ Ｐｅｒｍ／Ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ（商標）を１００μＬ加え、同様に室温、遮光下で２０ｍｉｎインキュベーションした。
上記の各反応後、５００μＬのＢＤ Ｐｅｒｍ／Ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ（商標）を添加し５，０００ｒｐｍ、２ｍｉｎ遠心分離し、上清を除去した。各サンプルにＦｏｃｕｓｉｎｇ ｆｌｕｉｄ（サーモフィッシャー サイエンティフィック（Thermo Fisher Scientific）社、4488621）を１ｍＬ添加し、再度５，０００ｒｐｍ、２ｍｉｎ遠心分離を行った上で２００μＬのＦｏｃｕｓｉｎｇ ｆｌｕｉｄ（サーモフィッシャー サイエンティフィック（Thermo Fisher Scientific）社、4488621）に懸濁した。調製したサンプルはＡｔｔｕｎｅ ＮｘＴ Ｆｌｏｗ Ｃｙｔｏｍｅｔｅｒ（サーモフィッシャー サイエンティフィック（Thermo Fisher Scientific）社）で解析を実施した。Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標） ４８８色素はＢＬ１、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標） ６４７色素はＲＬ１で検出を行った。
細胞の未分化維持率は、培養された細胞におけるＯｃｔ３／４／ＳＳＥＡ４陽性率により表すことができる。
培養後シングルセル化した細胞を、細胞固定化／細胞透過化溶液（ＢＤ Ｃｙｔｏｆｉｘ／Ｃｙｔｏｐｅｒｍ（商標） Ｋｉｔ(ビー ディー バイオサイエンス（BD Biosciences）社、554714)）により固定化した。具体的には、２００μＬのＣｙｔｏｆｉｘ／Ｃｙｔｏｐｅｒｍを添加し、氷上で２０分静置することでｈｉＰＳＣの固定を行った。
次いで、１ｍＬのＢＤ Ｐｅｒｍ／Ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ（商標）(ビー ディー バイオサイエンス（BD Biosciences）社、554723）を添加し、５，０００ｒｐｍ、２ｍｉｎ遠心分離を行い、上清を除いた。次に、適当量のＢＤ Ｐｅｒｍ／Ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ（商標）に懸濁し、二重染色用サンプル、単染色用サンプル、ｉｓｏｔｙｐｅ ｃｏｎｔｒｏｌ用サンプル、非染色用サンプルに分けてそれぞれ遠沈管に分注し、５，０００ｒｐｍ、２ｍｉｎ遠心分離を行い、上清を除去した。
二重染色および単染色は１：５（５倍）希釈のＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標） ４８８ ｍｏｕｓｅ ａｎｔｉ－ｏｃｔ３／４（ベクトン・ディッキンソン（Becton Dickinson）社、560253）および１：１０（１０倍）希釈のＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標） ６４７ ｍｏｕｓｅ ａｎｔｉ―ＳＳＥＡ－４（ベクトン・ディッキンソン（Becton Dickinson）社、560796）の両方、もしくは一方をＢＤ Ｐｅｒｍ／Ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ（商標）に添加した溶液を１００μＬ添加し、室温、遮光下で２０ｍｉｎインキュベーションすることで行った。
Ｉｓｏｔｙｐｅ ｃｏｎｔｒｏｌ用サンプルには１：２０（２０倍）希釈のＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標） ４８８ Ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ１ κ Ｉｓｏｔｙｐｅ Ｃｏｎｔｒｏｌ（ベクトン・ディッキンソン（Becton Dickinson）社、557721）または１：２０（２０倍）希釈のＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標） ６４７ Ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ３、κ Ｉｓｏｔｙｐｅ Ｃｏｎｔｒｏｌ（ベクトン・ディッキンソン（Becton Dickinson）社、560803）を添加したＢＤ Ｐｅｒｍ／Ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ（商標）を１００μＬ加え、同様に室温、遮光下で２０ｍｉｎインキュベーションした。
上記の各反応後、５００μＬのＢＤ Ｐｅｒｍ／Ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ（商標）を添加し５，０００ｒｐｍ、２ｍｉｎ遠心分離し、上清を除去した。各サンプルにＦｏｃｕｓｉｎｇ ｆｌｕｉｄ（サーモフィッシャー サイエンティフィック（Thermo Fisher Scientific）社、4488621）を１ｍＬ添加し、再度５，０００ｒｐｍ、２ｍｉｎ遠心分離を行った上で２００μＬのＦｏｃｕｓｉｎｇ ｆｌｕｉｄ（サーモフィッシャー サイエンティフィック（Thermo Fisher Scientific）社、4488621）に懸濁した。調製したサンプルはＡｔｔｕｎｅ ＮｘＴ Ｆｌｏｗ Ｃｙｔｏｍｅｔｅｒ（サーモフィッシャー サイエンティフィック（Thermo Fisher Scientific）社）で解析を実施した。Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標） ４８８色素はＢＬ１、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標） ６４７色素はＲＬ１で検出を行った。
細胞の未分化維持率は、培養された細胞におけるＯｃｔ３／４／ＳＳＥＡ４陽性率により表すことができる。
【0048】
［実施例１］ヘパリンナトリウムおよびデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）をそれぞれ含有する培地を用いたｈｉＰＳＣの撹拌培養
ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地に０．２５ｍｇ／ｍＬのヘパリンナトリウムおよび０．１ｍｇ／ｍＬのデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）をそれぞれ添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌浮遊培養して、ヘパリンナトリウムおよび平均分子量が５，０００であるデキストラン硫酸ナトリウムがｈｉＰＳＣの細胞塊の形成および細胞の状態に与える効果を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを３０ｍＬのバイオリアクターに２ｘ１０６細胞播種し、５５ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。２日目および３日目に２１ｍＬの培地交換を行った。
４日目に細胞塊の形成数、細胞塊の平均長径、増殖率、細胞生存率、未分化維持率を上記した方法で測定し、結果を図１に示した。
ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地に０．２５ｍｇ／ｍＬのヘパリンナトリウムおよび０．１ｍｇ／ｍＬのデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）をそれぞれ添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌浮遊培養して、ヘパリンナトリウムおよび平均分子量が５，０００であるデキストラン硫酸ナトリウムがｈｉＰＳＣの細胞塊の形成および細胞の状態に与える効果を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを３０ｍＬのバイオリアクターに２ｘ１０６細胞播種し、５５ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。２日目および３日目に２１ｍＬの培地交換を行った。
４日目に細胞塊の形成数、細胞塊の平均長径、増殖率、細胞生存率、未分化維持率を上記した方法で測定し、結果を図１に示した。
【0049】
図１に示されるように、ヘパリンナトリウムまたはデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を添加した培地で培養を行うと、いずれも添加しない場合（Ｍｏｃｋ）に比べて細胞塊の形成数が約２倍に向上し、細胞塊の長径は減少することが認められた。また、細胞の増殖率、生存率、未分化維持率は全て向上した。
これらの結果より、ヘパリンナトリウムまたは平均分子量が５，０００であるデキストラン硫酸ナトリウムを培地に添加してｈｉＰＳＣの撹拌培養を行うことで、小さい細胞塊を多量に形成させることが可能であり、生存率および未分化維持率の高いｉＰＳ細胞を効率よく増殖させることが可能であることが明らかになった。
これらの結果より、ヘパリンナトリウムまたは平均分子量が５，０００であるデキストラン硫酸ナトリウムを培地に添加してｈｉＰＳＣの撹拌培養を行うことで、小さい細胞塊を多量に形成させることが可能であり、生存率および未分化維持率の高いｉＰＳ細胞を効率よく増殖させることが可能であることが明らかになった。
【0050】
［実施例２］ヘパリンナトリウムを含有する培地を用いたｈｉＰＳＣの撹拌継代培養
ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地に０．１ｍｇ／ｍＬのヘパリンナトリウムを添加し、ｈｉＰＳＣを４継代の間撹拌培養して、継代を重ねた際のヘパリンナトリウムの効果を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを３０ｍＬのバイオリアクターに６ｘ１０６細胞播種し、１２０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。２日目～５日目、９日目～１１日目、１５日目～１７日目、２１日目には２１ｍＬの培地交換を行い、６日目、１２日目、１８日目、２２日目に３０ｍＬ全量の培地交換を行った。７日目、１３日目、１９日目、２３日目に細胞塊を破砕し、細胞塊の形成数、細胞塊の平均長径、細胞増殖率（累積増殖率）、細胞生存率、未分化維持率を測定した。また、７日目、１３日目には、回収してシングルセル化した細胞を６ｘ１０６細胞、１９日目には３ｘ１０７細胞を新たなバイオリアクターに継代播種した。
各継代時における細胞塊数、細胞増殖率、細胞生存率、未分化維持率を図２に示した。
ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地に０．１ｍｇ／ｍＬのヘパリンナトリウムを添加し、ｈｉＰＳＣを４継代の間撹拌培養して、継代を重ねた際のヘパリンナトリウムの効果を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを３０ｍＬのバイオリアクターに６ｘ１０６細胞播種し、１２０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。２日目～５日目、９日目～１１日目、１５日目～１７日目、２１日目には２１ｍＬの培地交換を行い、６日目、１２日目、１８日目、２２日目に３０ｍＬ全量の培地交換を行った。７日目、１３日目、１９日目、２３日目に細胞塊を破砕し、細胞塊の形成数、細胞塊の平均長径、細胞増殖率（累積増殖率）、細胞生存率、未分化維持率を測定した。また、７日目、１３日目には、回収してシングルセル化した細胞を６ｘ１０６細胞、１９日目には３ｘ１０７細胞を新たなバイオリアクターに継代播種した。
各継代時における細胞塊数、細胞増殖率、細胞生存率、未分化維持率を図２に示した。
【0051】
図２より明らかなように、ヘパリンナトリウムを添加した培地で培養を行うと、ヘパリンナトリウムを添加しない培地（Ｍｏｃｋ）に比べて、どの継代数においても細胞塊の形成数、細胞の増殖率、生存率、未分化維持率が全て向上した。
これらの結果より、ヘパリンナトリウムを培地に添加してｈｉＰＳＣの撹拌培養を行うことで、継続的に小さい細胞塊を多量に形成させ、また生存率および未分化維持率の高いｉＰＳ細胞を効率よく増殖させることが可能であることが明らかになった。
これらの結果より、ヘパリンナトリウムを培地に添加してｈｉＰＳＣの撹拌培養を行うことで、継続的に小さい細胞塊を多量に形成させ、また生存率および未分化維持率の高いｉＰＳ細胞を効率よく増殖させることが可能であることが明らかになった。
【0052】
［実施例３］デキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を含有する培地を用いたｈｉＰＳＣの撹拌継代培養
ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地に０．１ｍｇ／ｍＬのデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を添加し、ｈｉＰＳＣを３継代の間撹拌培養して、継代を重ねた際のデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）の効果を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを３０ｍＬのバイオリアクターに６ｘ１０６細胞播種し、８日間は５５ｒｐｍで、その後６日間は１２０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。２日目～３日目、６日目～７日目、１０日目～１２日目には２１ｍＬの培地交換を行い、１３日目、２２日目に３０ｍＬ全量の培地交換を行った。４日目、８日目、１４日目に細胞塊を破砕し、細胞塊の形成数、細胞塊の平均長径、細胞増殖率、細胞生存率、未分化維持率を測定した。また、４日目、８日目には、回収してシングルセル化した細胞６ｘ１０６細胞を新たなバイオリアクターに継代播種した。
継代時における細胞塊数、細胞増殖率、細胞生存率、未分化維持率を図３に示した。
ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地に０．１ｍｇ／ｍＬのデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を添加し、ｈｉＰＳＣを３継代の間撹拌培養して、継代を重ねた際のデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）の効果を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを３０ｍＬのバイオリアクターに６ｘ１０６細胞播種し、８日間は５５ｒｐｍで、その後６日間は１２０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。２日目～３日目、６日目～７日目、１０日目～１２日目には２１ｍＬの培地交換を行い、１３日目、２２日目に３０ｍＬ全量の培地交換を行った。４日目、８日目、１４日目に細胞塊を破砕し、細胞塊の形成数、細胞塊の平均長径、細胞増殖率、細胞生存率、未分化維持率を測定した。また、４日目、８日目には、回収してシングルセル化した細胞６ｘ１０６細胞を新たなバイオリアクターに継代播種した。
継代時における細胞塊数、細胞増殖率、細胞生存率、未分化維持率を図３に示した。
【0053】
図３に示されるように、デキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を添加した培地で培養を行うと、デキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を添加しないＭｏｃｋに比べて、細胞増殖率には差が見られなかったが、どの継代数においても細胞塊の形成数、細胞の生存率、未分化維持率が全て向上した。
これらの結果より、平均分子量が５，０００であるデキストラン硫酸ナトリウムを培地に添加してｈｉＰＳＣの撹拌培養を行うことで、継続的に小さい細胞塊を多量に形成させ、また生存率および未分化維持率の高いｉＰＳ細胞を効率よく増殖させることが可能であることが明らかになった。
これらの結果より、平均分子量が５，０００であるデキストラン硫酸ナトリウムを培地に添加してｈｉＰＳＣの撹拌培養を行うことで、継続的に小さい細胞塊を多量に形成させ、また生存率および未分化維持率の高いｉＰＳ細胞を効率よく増殖させることが可能であることが明らかになった。
【0054】
［実施例４］各種ヘパリン類を含有する培地を用いたｈｉＰＳＣの撹拌培養
ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地に０．２５ｍｇ／ｍＬのヘパリンナトリウム（Ｎａ）、ヘパリンリチウム(Ｌｉ)、ヘパリンアンモニウム（ＮＨ４）、ヘパラン硫酸および５０Ｕ／ｍＬのクレキサン（エノキサパリンナトリウム）（低分子量ヘパリン；平均分子量＝４，５００）をそれぞれ添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌培養して、各種ヘパリン類の効果を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを５ｍＬのバイオリアクターに１ｘ１０６細胞播種し、１２０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。培養２日目以降毎日３．５ｍＬの培地交換を行い、ヘパリンＮａおよびヘパリンＬｉをそれぞれ添加した培地を用いた培養では３日目に、それ以外のヘパリン類を添加した培地を用いた培養では４日目に細胞塊の形成数を測定し、結果を図４に示した。
ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地に０．２５ｍｇ／ｍＬのヘパリンナトリウム（Ｎａ）、ヘパリンリチウム(Ｌｉ)、ヘパリンアンモニウム（ＮＨ４）、ヘパラン硫酸および５０Ｕ／ｍＬのクレキサン（エノキサパリンナトリウム）（低分子量ヘパリン；平均分子量＝４，５００）をそれぞれ添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌培養して、各種ヘパリン類の効果を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを５ｍＬのバイオリアクターに１ｘ１０６細胞播種し、１２０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。培養２日目以降毎日３．５ｍＬの培地交換を行い、ヘパリンＮａおよびヘパリンＬｉをそれぞれ添加した培地を用いた培養では３日目に、それ以外のヘパリン類を添加した培地を用いた培養では４日目に細胞塊の形成数を測定し、結果を図４に示した。
【0055】
図４に示されるように、各ヘパリン塩、低分子量ヘパリンおよびヘパラン硫酸のそれぞれを添加した培地を用いて撹拌培養を行った場合、前記のいずれも添加しないＭｏｃｋに比べて、細胞塊の形成数が向上した。
これらの結果より、カウンターカチオンの種類、分子量または硫酸化度の異なるヘパリン類が、いずれも細胞塊を多量に形成させる効果を有することが明らかになった。
これらの結果より、カウンターカチオンの種類、分子量または硫酸化度の異なるヘパリン類が、いずれも細胞塊を多量に形成させる効果を有することが明らかになった。
【0056】
［実施例５］分子量の異なるデキストラン硫酸ナトリウムを用いたｈｉＰＳＣの撹拌培養
ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地に、平均分子量が５，０００のデキストラン硫酸ナトリウムおよび分子量が３６，０００～５０，０００のデキストラン硫酸ナトリウムをそれぞれ０．１ｍｇ／ｍＬ添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌培養して、分子量の異なるデキストラン硫酸ナトリウムの効果を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを５ｍＬのバイオリアクターに１ｘ１０６細胞播種し、１２０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行い、４日目に細胞塊の形成数を測定し、結果を図５に示した。
ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地に、平均分子量が５，０００のデキストラン硫酸ナトリウムおよび分子量が３６，０００～５０，０００のデキストラン硫酸ナトリウムをそれぞれ０．１ｍｇ／ｍＬ添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌培養して、分子量の異なるデキストラン硫酸ナトリウムの効果を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを５ｍＬのバイオリアクターに１ｘ１０６細胞播種し、１２０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行い、４日目に細胞塊の形成数を測定し、結果を図５に示した。
【0057】
図５に示されるように、いずれの分子量のデキストラン硫酸ナトリウムを添加した場合も、デキストラン硫酸ナトリウムを添加しないＭｏｃｋに比べて、細胞塊の形成数が向上したが、平均分子量が５，０００のデキストラン硫酸ナトリウムを添加した場合の方が、高い細胞塊の形成促進効果を示した。
【0058】
［実施例６］ヘパリンナトリウムを含有する各種培地を用いたｈｉＰＳＣの撹拌培養
ＳｔｅｍＦｌｅｘ培地、ＤＥＦ－ＣＳ ５００ Ｘｅｎｏ－Ｆｒｅｅ ３Ｄ Ｓｐｈｅｒｏｉｄ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｕｍ、Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ８培地、 ｍＴｅＳＲ１培地のそれぞれに０．２５ｍｇ／ｍＬのヘパリンナトリウムを添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌培養して、前記各培地を用いた撹拌培養におけるヘパリンナトリウムの効果を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを３０ｍＬのバイオリアクターに６ｘ１０６細胞播種し、５５ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。培養２日目以降毎日２１ｍＬの培地交換を行い、ＤＥＦ－ＣＳ ５００ Ｘｅｎｏ－Ｆｒｅｅ ３Ｄ Ｓｐｈｅｒｏｉｄ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｕｍ培地を用いた実験では６日目に、それ以外の実験では５日目に細胞塊の形成数、細胞塊の長径および細胞増殖率を測定し、結果を図６に示した。
ＳｔｅｍＦｌｅｘ培地、ＤＥＦ－ＣＳ ５００ Ｘｅｎｏ－Ｆｒｅｅ ３Ｄ Ｓｐｈｅｒｏｉｄ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｕｍ、Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ８培地、 ｍＴｅＳＲ１培地のそれぞれに０．２５ｍｇ／ｍＬのヘパリンナトリウムを添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌培養して、前記各培地を用いた撹拌培養におけるヘパリンナトリウムの効果を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを３０ｍＬのバイオリアクターに６ｘ１０６細胞播種し、５５ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。培養２日目以降毎日２１ｍＬの培地交換を行い、ＤＥＦ－ＣＳ ５００ Ｘｅｎｏ－Ｆｒｅｅ ３Ｄ Ｓｐｈｅｒｏｉｄ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｕｍ培地を用いた実験では６日目に、それ以外の実験では５日目に細胞塊の形成数、細胞塊の長径および細胞増殖率を測定し、結果を図６に示した。
【0059】
図６に示されるように、いずれの培地を用いた場合にも、ヘパリンナトリウムを添加した場合において、ヘパリンナトリウムを添加しない場合に比べて細胞塊の形成数の向上、および細胞塊の長径の減少が観察された。また、ｍＴｅＳＲ１培地とＥｓｓｅｎｔｉａｌ ８培地を用いた培養において、ヘパリンナトリウムの添加により、細胞増殖率の顕著な向上が観察された。
これらの結果より、培養に用いる培地の種類によらず、ヘパリン塩が細胞塊の形成率を向上させ、かつ細胞の大きさを制御し、増殖を促進させる効果を有することが明らかになった。
これらの結果より、培養に用いる培地の種類によらず、ヘパリン塩が細胞塊の形成率を向上させ、かつ細胞の大きさを制御し、増殖を促進させる効果を有することが明らかになった。
【0060】
［実施例７］デキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を含有する各種培地を用いたｈｉＰＳＣの撹拌培養
Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ８培地およびｍＴｅＳＲ１培地のそれぞれに０．１ｍｇ／ｍＬのデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌培養して、前記各培地を用いた培養におけるデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）の効果を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを５ｍＬのバイオリアクターに１ｘ１０６細胞播種し、８０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。培養２日目以降毎日３．５ｍＬの培地交換を行い、４日目に細胞塊の形成数および細胞増殖率を測定し、結果を図７に示した。
Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ８培地およびｍＴｅＳＲ１培地のそれぞれに０．１ｍｇ／ｍＬのデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌培養して、前記各培地を用いた培養におけるデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）の効果を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを５ｍＬのバイオリアクターに１ｘ１０６細胞播種し、８０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。培養２日目以降毎日３．５ｍＬの培地交換を行い、４日目に細胞塊の形成数および細胞増殖率を測定し、結果を図７に示した。
【0061】
図７に示されるように、いずれの培地においても、デキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を添加して培養した場合に細胞塊の形成数が向上し、細胞増殖率が大きく向上することが認められた。
これらの結果より、用いる培地の種類によらず、平均分子量が５，０００であるデキストラン硫酸ナトリウムが細胞塊の形成および増殖を促進させることが明らかになった。
これらの結果より、用いる培地の種類によらず、平均分子量が５，０００であるデキストラン硫酸ナトリウムが細胞塊の形成および増殖を促進させることが明らかになった。
【0062】
［実施例８］種々の濃度のヘパリンナトリウムを含有する培地を用いたｈｉＰＳＣの撹拌培養
ｍＴｅＳＲ１培地に０．２５μｇ／ｍＬ～２５０μｇ／ｍＬのヘパリンナトリウムを添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌培養して、細胞塊形成率向上効果におけるヘパリンナトリウムの濃度依存性を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを５ｍＬのバイオリアクターに１ｘ１０６細胞播種し、８０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。培養２日目～３日目に３．５ｍＬの培地交換を行い、４日目に細胞塊の形成数を測定した。
また、ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地に０．１ｍｇ／ｍＬおよび１ｍｇ／ｍＬの各濃度のヘパリンナトリウムを添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌培養した。
1210B2株のヒトｈｉＰＳＣを３０ｍＬのバイオリアクターに６ｘ１０６細胞播種し、１２０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。培養２日目～４日目には２１ｍＬ、５日目には３０ｍＬの培地交換を行い、６日目に細胞塊の形成数を測定した。
上記それぞれにおいて、細胞塊数を測定した結果を図８に示した。
ｍＴｅＳＲ１培地に０．２５μｇ／ｍＬ～２５０μｇ／ｍＬのヘパリンナトリウムを添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌培養して、細胞塊形成率向上効果におけるヘパリンナトリウムの濃度依存性を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを５ｍＬのバイオリアクターに１ｘ１０６細胞播種し、８０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。培養２日目～３日目に３．５ｍＬの培地交換を行い、４日目に細胞塊の形成数を測定した。
また、ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地に０．１ｍｇ／ｍＬおよび１ｍｇ／ｍＬの各濃度のヘパリンナトリウムを添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌培養した。
1210B2株のヒトｈｉＰＳＣを３０ｍＬのバイオリアクターに６ｘ１０６細胞播種し、１２０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。培養２日目～４日目には２１ｍＬ、５日目には３０ｍＬの培地交換を行い、６日目に細胞塊の形成数を測定した。
上記それぞれにおいて、細胞塊数を測定した結果を図８に示した。
【0063】
図８に示されるように、ｍＴｅＳＲ１培地に２．５μｇ／ｍＬ～２５０μｇ／ｍＬのヘパリンナトリウムを添加した培地を用いて培養した場合に、細胞塊の形成数が向上することが認められた。また、ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地に０．１ｍｇ／ｍＬおよび１ｍｇ／ｍＬの各濃度のヘパリンナトリウムを添加して撹拌培養した場合にも、細胞塊の形成率は大幅に向上することが認められた。
上記の結果より、約１μｇ／ｍＬから１ｍｇ／ｍＬ程度のヘパリンナトリウムを添加することで、細胞塊の形成率の向上効果が得られることが明らかになった。
上記の結果より、約１μｇ／ｍＬから１ｍｇ／ｍＬ程度のヘパリンナトリウムを添加することで、細胞塊の形成率の向上効果が得られることが明らかになった。
【0064】
［実施例９］種々の濃度のデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を含有する培地を用いたｈｉＰＳＣの撹拌培養
ｍＴｅＳＲ１培地に０．１μｇ／ｍＬ～１０００μｇ／ｍＬのデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌培養して、細胞塊形成率向上効果におけるデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）の濃度依存性を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを５ｍＬのバイオリアクターに１ｘ１０６細胞播種し、８０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。培養２日目と３日目に３．５ｍＬの培地交換を行い、４日目に細胞塊の形成数を測定し、結果を図９に示した。
ｍＴｅＳＲ１培地に０．１μｇ／ｍＬ～１０００μｇ／ｍＬのデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌培養して、細胞塊形成率向上効果におけるデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）の濃度依存性を評価した。
1210B2株のｈｉＰＳＣを５ｍＬのバイオリアクターに１ｘ１０６細胞播種し、８０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。培養２日目と３日目に３．５ｍＬの培地交換を行い、４日目に細胞塊の形成数を測定し、結果を図９に示した。
【0065】
図９に示されるように、１０μｇ／ｍＬ～１０００μｇ／ｍＬのデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を添加した培地を用いて撹拌培養した場合に、顕著な細胞塊の形成数の向上が観察された。
この結果より、平均分子量が５，０００であるデキストラン硫酸ナトリウムを約１０μｇ／ｍＬから１ｍｇ／ｍＬ程度の濃度で添加することで、細胞塊の形成率向上効果が得られることが明らかになった。
この結果より、平均分子量が５，０００であるデキストラン硫酸ナトリウムを約１０μｇ／ｍＬから１ｍｇ／ｍＬ程度の濃度で添加することで、細胞塊の形成率向上効果が得られることが明らかになった。
【0066】
［実施例１０］ヘパリンナトリウムを含有する培地を用いたｈｉＰＳＣの振とう培養
ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地に０．１ｍｇ／ｍＬのヘパリンナトリウムを添加し、ｈｉＰＳＣを振とう培養して、ヘパリンナトリウムがｈｉＰＳＣの細胞塊の形成および細胞の状態に与える効果を評価した。
１０μＭのＲｈｏ結合キナーゼ阻害剤（Ｙ－２７６３２）を含有する上記培地５ｍＬを添加した６－ｗｅｌｌ細胞培養用プレートに1210B2株のｈｉＰＳＣを１ｘ１０６細胞播種し、９５ｒｐｍの振とう速度で振とう培養を行った。培養１日目の培養細胞のＢＺ－Ｘ顕微鏡による観察結果を図１０に示した。
ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地に０．１ｍｇ／ｍＬのヘパリンナトリウムを添加し、ｈｉＰＳＣを振とう培養して、ヘパリンナトリウムがｈｉＰＳＣの細胞塊の形成および細胞の状態に与える効果を評価した。
１０μＭのＲｈｏ結合キナーゼ阻害剤（Ｙ－２７６３２）を含有する上記培地５ｍＬを添加した６－ｗｅｌｌ細胞培養用プレートに1210B2株のｈｉＰＳＣを１ｘ１０６細胞播種し、９５ｒｐｍの振とう速度で振とう培養を行った。培養１日目の培養細胞のＢＺ－Ｘ顕微鏡による観察結果を図１０に示した。
【0067】
図１０に示されるように、ヘパリンナトリウムを添加せずに培養した群（Ｍｏｃｋ）では凝集した巨大な細胞塊が認められるのに対し、ヘパリンナトリウムを添加して培養した群では細胞塊が良好に分散され、均一な細胞塊の形成が認められた。
この結果から、ヘパリンナトリウムを培地に添加してｈｉＰＳＣの振とう培養を行うことで、均一な細胞塊を形成させることが可能であることが明らかになった。
この結果から、ヘパリンナトリウムを培地に添加してｈｉＰＳＣの振とう培養を行うことで、均一な細胞塊を形成させることが可能であることが明らかになった。
【0068】
［実施例１１］種々の濃度のデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を含有する培地を用いたｈｉＰＳＣの撹拌培養
ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地に１０μｇ／ｍＬ～１０００μｇ／ｍＬのデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌培養して、細胞塊形成率向上効果におけるデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）の濃度依存性を評価した。
1231A3株および1210B2株の各ｈｉＰＳＣを、それぞれ５ｍＬのバイオリアクターに１ｘ１０６細胞ずつ播種し、８０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。２日目に細胞塊の形成数を測定し、結果を図１１に示した。
ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）ＡＫ０３Ｎ培地に１０μｇ／ｍＬ～１０００μｇ／ｍＬのデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を添加し、ｈｉＰＳＣを撹拌培養して、細胞塊形成率向上効果におけるデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）の濃度依存性を評価した。
1231A3株および1210B2株の各ｈｉＰＳＣを、それぞれ５ｍＬのバイオリアクターに１ｘ１０６細胞ずつ播種し、８０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌培養を行った。２日目に細胞塊の形成数を測定し、結果を図１１に示した。
【0069】
図１１に示されるように、1231A3株を用いた場合には、１０μｇ／ｍＬ～３３０μｇ／ｍＬのデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を添加した培地を用いて撹拌培養した場合に、細胞塊の形成数の向上が認められ、１０μｇ／ｍＬ～１０００μｇ／ｍＬの濃度で、細胞塊長径の減少が観察された。
一方、1210B2株を用いた場合には、１０μｇ／ｍＬ～１０００μｇ／ｍＬのデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を添加した場合に、細胞塊の形成数の向上および細胞塊長径の減少が観察された。
上記の結果より、平均分子量が５，０００であるデキストラン硫酸ナトリウムを約１０μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬ程度の濃度で添加することで、ｈｉＰＳＣ株の種類によらず細胞塊の形成率向上、および細胞塊の大きさの制御効果が得られる可能性が示唆された。
一方、1210B2株を用いた場合には、１０μｇ／ｍＬ～１０００μｇ／ｍＬのデキストラン硫酸ナトリウム（平均分子量＝５，０００）を添加した場合に、細胞塊の形成数の向上および細胞塊長径の減少が観察された。
上記の結果より、平均分子量が５，０００であるデキストラン硫酸ナトリウムを約１０μｇ／ｍＬ～１ｍｇ／ｍＬ程度の濃度で添加することで、ｈｉＰＳＣ株の種類によらず細胞塊の形成率向上、および細胞塊の大きさの制御効果が得られる可能性が示唆された。
【産業上の利用可能性】
【0070】
以上、詳述したように、本発明により、幹細胞の浮遊培養に有用な培養用添加物および培地を提供することができる。
本発明の培養用添加物および培地により、幹細胞の浮遊培養において、幹細胞の増殖率および生存率を向上させることができ、大きさおよび形状の制御された細胞塊の形成率を向上させ、さらに未分化維持率を向上させることができる。
さらに、本発明により、幹細胞の培養方法を提供することができる。
本発明の培養方法により、高増殖率および生存率にて幹細胞の３次元培養を行うことができ、大きさおよび形状の制御された細胞塊を効率的に得ることができる。また、未分化維持率の向上した幹細胞の培養細胞を得ることができる。
本発明の培養用添加物および培地により、幹細胞の浮遊培養において、幹細胞の増殖率および生存率を向上させることができ、大きさおよび形状の制御された細胞塊の形成率を向上させ、さらに未分化維持率を向上させることができる。
さらに、本発明により、幹細胞の培養方法を提供することができる。
本発明の培養方法により、高増殖率および生存率にて幹細胞の３次元培養を行うことができ、大きさおよび形状の制御された細胞塊を効率的に得ることができる。また、未分化維持率の向上した幹細胞の培養細胞を得ることができる。
【0071】
本願は、日本国で出願された特願２０１８－１２２５３２を基礎としており、その内容は本明細書にすべて包含されるものである。
【図1】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
【図10】
【図11】
