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(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B2)
(11)【特許番号】
(24)【登録日】2025-01-06
(45)【発行日】2025-01-15
(54)【発明の名称】シート状細胞培養物の製造方法
(51)【国際特許分類】
C12N 5/071 20100101AFI20250107BHJP
【ＦＩ】
C12N5/071
【請求項の数】
10
(21)【出願番号】P 2020506673
(86)(22)【出願日】2019-03-15
(86)【国際出願番号】 JP2019010819
(87)【国際公開番号】W WO2019177148
(87)【国際公開日】2019-09-19
【審査請求日】2021-10-15
【審判番号】
【審判請求日】2023-04-03
(31)【優先権主張番号】P 2018047911
(32)【優先日】2018-03-15
(33)【優先権主張国・地域又は機関】JP
(73)【特許権者】
【識別番号】000109543
【氏名又は名称】テルモ株式会社
(74)【代理人】
【識別番号】110003971
【氏名又は名称】弁理士法人葛和国際特許事務所
(72)【発明者】
【氏名】鮫島 正
(72)【発明者】
【氏名】野口 枝莉
(72)【発明者】
【氏名】菅野 智規
【合議体】
【審判長】長井 啓子
【審判官】中根 知大
【審判官】深草 亜子
(56)【参考文献】
【文献】特開２０１６－５２２７０（ＪＰ，Ａ）
【文献】特開２０１６－５２２６９（ＪＰ，Ａ）
【文献】特開２０１５－１５１３３４（ＪＰ，Ａ）
(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)
C12N5/00
A61L27/00
ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩＩ）
ＣＡｐｌｕｓ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＥＭＢＡＳＥ／ＢＩＯＳＩＳ（ＳＴＮ）
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
培養基材上に形成されたシート状細胞培養物を剥離する際の縮みを抑制する方法であって、（ａ－１）少なくとも一部が培養基材に接着したシート状細胞培養物の上面を、低栄養等張液で浸漬すること、
（ａ－２）低栄養等張液を除去し、新たな低栄養等張液で浸漬すること、
（ａ－３）（ａ－１）および（ａ－２）を１回または複数回繰り返すこと、
（ｂ－１）低栄養等張液中でシート状細胞培養物を剥離すること、
（ｂ－２）剥離したシート状細胞培養物に撚れや重なりがあった場合、振盪操作を行うこと、
（ｃ）低栄養等張液を除去し、新たな低栄養等張液で浸漬することにより、シート状細胞培養物の上面および下面を灌流すること、ならびに
（ｄ）低栄養等張液中で５日間までシート状細胞培養物を保存すること、
を含み、シート状細胞培養物が、筋芽細胞を含み、低栄養等張液が、ハンクス平衡塩液である、前記方法。
【請求項2】
培養基材が、血清で被覆されている、請求項１に記載の方法。
【請求項3】
培養基材が、温度応答性材料で被覆されている、請求項１または２に記載の方法。
【請求項4】
低栄養等張液が、２～８℃である、請求項１～３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項5】
浸漬により、シート状細胞培養物に残存した製造工程由来不純物が除去されることを特徴とする、請求項１～４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項6】
剥離したシート状細胞培養物を振盪して伸展させることを含む、請求項１～５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項7】
シート状細胞培養物の伸展が、シート状細胞培養物が浸漬された低栄養等張液入りの容器を振盪することにより行われる、請求項６に記載の方法。
【請求項8】
縮みが、シート状細胞培養物中の細胞間接着に起因する、請求項１～７に記載の方法。
【請求項9】
伸展が、容器の中央を中心として回転させる、請求項６～８に記載の方法。
【請求項10】
（ｄ）低栄養等張液中で１０時間～５日間シート状細胞培養物を保存することを含む、請求項１～９のいずれか一項に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本開示は、シート状細胞培養物の製造において、シート状細胞培養物を剥離、移送および保存する際に、シート状細胞培養物の癒着、ひっつき、縮みなどを防止するための方法などに関する。
【背景技術】
【0002】
近年、損傷した組織等の修復のために、種々の細胞を移植する試みが行われている。例えば、狭心症、心筋梗塞などの虚血性心疾患により損傷した心筋組織の修復のために、胎児心筋細胞、骨格筋芽細胞、間葉系幹細胞、心臓幹細胞、ＥＳ細胞、ｉＰＳ細胞等の利用が試みられている（非特許文献１）。
【0003】
このような試みの一環として、スキャフォールドを利用して形成した細胞構造物や、細胞をシート状に形成したシート状細胞培養物が開発されてきた（特許文献１）。しかしながら、細胞シートは一般に脆弱であり、培養基材からの単離時やその後の操作中に皺や破れなどを生じやすく、移送、保存、移植などの操作には相当の熟練が必要であった。このような問題に対して、シート状細胞培養物の皺や折れ重なりなどを抑制する方法や検出する方法が開発されてきた（特許文献２～５）。しかしながら、かかる皺や折れ重なりはいずれもシート状細胞培養物の剥離操作や移送時の取り扱いなどに起因して発生するものである。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0004】
【文献】特表2007-528755号公報
【文献】特開2016-052270号公報
【文献】特開2012-029605号公報
【文献】特開2011-115080号公報
【文献】特開2012-152161号公報
【非特許文献】
【0005】
【文献】Haraguchi et al., Stem Cells Transl Med. 2012;1(2):136-41
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0006】
本発明者らは、剥離時や移送時に物理的に発生する皺や折れ重なりを抑制しても、これとは別にシート状細胞培養物を構成する細胞の生理活動に起因する縮みや撚れが発生し、かかる縮みや撚れを放置しておくと、その状態で癒着やひっつきなどが発生し、シート状細胞培養物の品質が低下してしまうという問題を見出した。
したがって、本開示の目的は、従来の方法では解消されていない、細胞同士の細胞の生理活動に起因するシート状細胞培養物の縮みや撚れなどを抑制し、それによりシート状細胞培養物の癒着、ひっつき、破れ、しわ、破損を防止することで、高品質のシート状細胞培養物を提供することにある。
したがって、本開示の目的は、従来の方法では解消されていない、細胞同士の細胞の生理活動に起因するシート状細胞培養物の縮みや撚れなどを抑制し、それによりシート状細胞培養物の癒着、ひっつき、破れ、しわ、破損を防止することで、高品質のシート状細胞培養物を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【0007】
本発明者らは、骨格筋芽細胞のシート状細胞培養物を研究する中で、培養基材上に形成した骨格筋芽細胞のシート状細胞培養物を剥離、移送および保存する際に低栄養等張液に浸漬することで、撚れや縮みが少なく、癒着やひっつきも生じにくいという新たな知見を見出した。かかる知見に基づいてさらに鋭意研究を続けた結果、本開示を完成させるに至った。
【0008】
すなわち、本開示に下記に掲げるものに関する：
［１］培養基材上に形成されたシート状細胞培養物を剥離する際に縮みを抑制する方法であって、
（ａ）少なくとも一部が培養基材に接着したシート状細胞培養物の上面を、低栄養等張液で浸漬すること、および
（ｂ）低栄養等張液中でシート状細胞培養物を剥離すること、
を含む、前記方法。
［２］培養基材が、血清で被覆されている、［１］の方法。
［３］培養基材が、温度応答性材料で被覆されている、［１］または［２］の方法。
［４］シート状細胞培養物が、筋芽細胞を含む、［１］～［３］の方法。
［５］低栄養等張液が、２～８℃である、［１］～［４］の方法。
［６］低栄養等張液が、ハンクス平衡塩液である、［１］～［５］の方法。
［７］浸漬により、シート状細胞培養物に残存した製造工程由来不純物が除去されることを特徴とする、［１］～［６］の方法。
［８］さらに、剥離したシート状細胞培養物を伸展させることを含む、［１］～［７］の方法。
［９］シート状細胞培養物の伸展が、シート状細胞培養物が浸漬された低栄養等張液入りの容器を振盪することにより行われる、［８］の方法。
［１］培養基材上に形成されたシート状細胞培養物を剥離する際に縮みを抑制する方法であって、
（ａ）少なくとも一部が培養基材に接着したシート状細胞培養物の上面を、低栄養等張液で浸漬すること、および
（ｂ）低栄養等張液中でシート状細胞培養物を剥離すること、
を含む、前記方法。
［２］培養基材が、血清で被覆されている、［１］の方法。
［３］培養基材が、温度応答性材料で被覆されている、［１］または［２］の方法。
［４］シート状細胞培養物が、筋芽細胞を含む、［１］～［３］の方法。
［５］低栄養等張液が、２～８℃である、［１］～［４］の方法。
［６］低栄養等張液が、ハンクス平衡塩液である、［１］～［５］の方法。
［７］浸漬により、シート状細胞培養物に残存した製造工程由来不純物が除去されることを特徴とする、［１］～［６］の方法。
［８］さらに、剥離したシート状細胞培養物を伸展させることを含む、［１］～［７］の方法。
［９］シート状細胞培養物の伸展が、シート状細胞培養物が浸漬された低栄養等張液入りの容器を振盪することにより行われる、［８］の方法。
【0009】
［１０］培養基材から剥離されたシート状細胞培養物の縮みを抑制する方法であって、剥離されたシート状細胞培養物を低栄養等張液により灌流することを含む、前記方法。
［１１］灌流が、剥離されたシート状細胞培養物の両面に対して行われる、［１０］の方法。
［１２］灌流が、剥離されたシート状細胞培養物を低栄養等張液に浸漬させることにより行われる、［１０］または［１１］の方法。
［１３］シート状細胞培養物を浸漬させた低栄養等張液を除去し、新たな低栄養等張液を入れて再度シート状細胞培養物を浸漬させることを少なくとも１回行う、［１２］の方法。
［１４］灌流が、シート状細胞培養物の剥離直後から剥離後６時間までの間に行われる、［１０］～［１３］の方法。
［１５］さらに、シート状細胞培養物を伸展させることを含む、［１０］～［１４］の方法。
［１６］シート状細胞培養物の伸展が、シート状細胞培養物が浸漬された低栄養等張液入りの容器を振盪することにより行われる、［１５］の方法。
［１７］さらに、シート状細胞培養物を低栄養等張液に浸漬させたまま保存することを含む、［１０］～［１６］の方法。
［１８］シート状細胞培養物が、筋芽細胞を含む、［１０］～［１７］の方法。
［１９］低栄養等張液が、２～８℃である、［１０］～［１８］の方法。
［２０］低栄養等張液が、ハンクス平衡塩液である、［１０］～［１９］の方法。
［１１］灌流が、剥離されたシート状細胞培養物の両面に対して行われる、［１０］の方法。
［１２］灌流が、剥離されたシート状細胞培養物を低栄養等張液に浸漬させることにより行われる、［１０］または［１１］の方法。
［１３］シート状細胞培養物を浸漬させた低栄養等張液を除去し、新たな低栄養等張液を入れて再度シート状細胞培養物を浸漬させることを少なくとも１回行う、［１２］の方法。
［１４］灌流が、シート状細胞培養物の剥離直後から剥離後６時間までの間に行われる、［１０］～［１３］の方法。
［１５］さらに、シート状細胞培養物を伸展させることを含む、［１０］～［１４］の方法。
［１６］シート状細胞培養物の伸展が、シート状細胞培養物が浸漬された低栄養等張液入りの容器を振盪することにより行われる、［１５］の方法。
［１７］さらに、シート状細胞培養物を低栄養等張液に浸漬させたまま保存することを含む、［１０］～［１６］の方法。
［１８］シート状細胞培養物が、筋芽細胞を含む、［１０］～［１７］の方法。
［１９］低栄養等張液が、２～８℃である、［１０］～［１８］の方法。
［２０］低栄養等張液が、ハンクス平衡塩液である、［１０］～［１９］の方法。
【0010】
［２１］培養基材から剥離されたシート状細胞培養物を保存する際に縮みを抑制する方法であって、シート状細胞培養物を、低栄養等張液に浸漬することを含む、前記方法。
［２２］浸漬が、シート状細胞培養物の剥離後６時間以降に行われる、［２１］の方法。
［２３］さらに、シート状細胞培養物を伸展させることを含む、［２１］または［２２］の方法。
［２４］シート状細胞培養物の伸展が、シート状細胞培養物が浸漬された低栄養等張液入りの容器を振盪することにより行われる、［２３］の方法。
［２５］シート状細胞培養物が、筋芽細胞を含む、［２１］～［２４］の方法。
［２６］低栄養等張液が、常温である、［２１］～［２５］の方法。
［２７］低栄養等張液が、浸漬開始時に２～８℃である、［２１］～［２６］の方法。
［２８］低栄養等張液が、ハンクス平衡塩液である、［２１］～［２７］の方法。
［２２］浸漬が、シート状細胞培養物の剥離後６時間以降に行われる、［２１］の方法。
［２３］さらに、シート状細胞培養物を伸展させることを含む、［２１］または［２２］の方法。
［２４］シート状細胞培養物の伸展が、シート状細胞培養物が浸漬された低栄養等張液入りの容器を振盪することにより行われる、［２３］の方法。
［２５］シート状細胞培養物が、筋芽細胞を含む、［２１］～［２４］の方法。
［２６］低栄養等張液が、常温である、［２１］～［２５］の方法。
［２７］低栄養等張液が、浸漬開始時に２～８℃である、［２１］～［２６］の方法。
［２８］低栄養等張液が、ハンクス平衡塩液である、［２１］～［２７］の方法。
【0011】
［２９］ 培養基材から剥離されたシート状細胞培養物の縮みを抑制する方法であって、剥離されたシート状細胞培養物を低栄養等張液により灌流することを含む、前記方法。
［３０］ 灌流が、剥離されたシート状細胞培養物の両面に対して行われる、前記[２９]に記載の方法。
［３１］ 灌流が、剥離されたシート状細胞培養物を低栄養等張液に浸漬させることにより行われる、前記[２９]または[３０]に記載の方法。
［３２］ シート状細胞培養物を浸漬させた低栄養等張液を除去し、新たな低栄養等張液を入れて再度シート状細胞培養物を浸漬させることを少なくとも１回行う、前記[３１]に記載の方法。
［３３］ 灌流が、シート状細胞培養物の剥離直後から剥離後６時間までの間に行われる、前記[２９]～[３２]のいずれか一項に記載の方法。
［３４］ さらに、シート状細胞培養物を伸展させることを含む、前記[２９]～[３３]のいずれか一項に記載の方法。
［３５］ シート状細胞培養物の伸展が、シート状細胞培養物が浸漬された低栄養等張液入りの容器を振盪することにより行われる、前記[３４]に記載の方法。
［３６］ さらに、シート状細胞培養物を低栄養等張液に浸漬させたまま保存することを含む、前記[２９]～[３５]のいずれか一項に記載の方法。
［３７］ シート状細胞培養物が、筋芽細胞を含む、前記[２９]～[３６]のいずれか一項に記載の方法。
［３８］ 低栄養等張液が、２～８℃である、前記[２９]～[３７]のいずれか一項に記載の方法。
［３９］ 低栄養等張液が、ハンクス平衡塩液である、前記[２９]～[３８]のいずれか一項に記載の方法。
［３０］ 灌流が、剥離されたシート状細胞培養物の両面に対して行われる、前記[２９]に記載の方法。
［３１］ 灌流が、剥離されたシート状細胞培養物を低栄養等張液に浸漬させることにより行われる、前記[２９]または[３０]に記載の方法。
［３２］ シート状細胞培養物を浸漬させた低栄養等張液を除去し、新たな低栄養等張液を入れて再度シート状細胞培養物を浸漬させることを少なくとも１回行う、前記[３１]に記載の方法。
［３３］ 灌流が、シート状細胞培養物の剥離直後から剥離後６時間までの間に行われる、前記[２９]～[３２]のいずれか一項に記載の方法。
［３４］ さらに、シート状細胞培養物を伸展させることを含む、前記[２９]～[３３]のいずれか一項に記載の方法。
［３５］ シート状細胞培養物の伸展が、シート状細胞培養物が浸漬された低栄養等張液入りの容器を振盪することにより行われる、前記[３４]に記載の方法。
［３６］ さらに、シート状細胞培養物を低栄養等張液に浸漬させたまま保存することを含む、前記[２９]～[３５]のいずれか一項に記載の方法。
［３７］ シート状細胞培養物が、筋芽細胞を含む、前記[２９]～[３６]のいずれか一項に記載の方法。
［３８］ 低栄養等張液が、２～８℃である、前記[２９]～[３７]のいずれか一項に記載の方法。
［３９］ 低栄養等張液が、ハンクス平衡塩液である、前記[２９]～[３８]のいずれか一項に記載の方法。
【0012】
[４０] 培養基材から剥離されたシート状細胞培養物を保存する際に縮みを抑制する方法であって、シート状細胞培養物を、低栄養等張液に浸漬することを含む、前記方法。
[４１] 浸漬が、シート状細胞培養物の剥離後６時間以降に行われる、[４０]に記載の方法。
[４２] さらに、シート状細胞培養物を伸展させることを含む、[４０]または[４１]に記載の方法。
[４３] シート状細胞培養物の伸展が、シート状細胞培養物が浸漬された低栄養等張液入りの容器を振盪することにより行われる、[４２]に記載の方法。
[４４] シート状細胞培養物が、筋芽細胞を含む、[４０]～[４３]のいずれかに記載の方法。
[４５] 低栄養等張液が、常温である、[４０]～[４４]のいずれか一項に記載の方法。
[４６] 低栄養等張液が、浸漬開始時に２～８℃である、[４０]～[４５]のいずれかに記載の方法。
[４７] 低栄養等張液が、ハンクス平衡塩液である、[４０]～[４６]のいずれかに記載の方法。
[４１] 浸漬が、シート状細胞培養物の剥離後６時間以降に行われる、[４０]に記載の方法。
[４２] さらに、シート状細胞培養物を伸展させることを含む、[４０]または[４１]に記載の方法。
[４３] シート状細胞培養物の伸展が、シート状細胞培養物が浸漬された低栄養等張液入りの容器を振盪することにより行われる、[４２]に記載の方法。
[４４] シート状細胞培養物が、筋芽細胞を含む、[４０]～[４３]のいずれかに記載の方法。
[４５] 低栄養等張液が、常温である、[４０]～[４４]のいずれか一項に記載の方法。
[４６] 低栄養等張液が、浸漬開始時に２～８℃である、[４０]～[４５]のいずれかに記載の方法。
[４７] 低栄養等張液が、ハンクス平衡塩液である、[４０]～[４６]のいずれかに記載の方法。
【発明の効果】
【0013】
本開示の方法により、シート状細胞培養物を形成した後の、剥離、移送、保存、移植などの操作によりシート状細胞培養物に癒着、ひっつき、縮みなどが生じてしまうリスクを回避し、それによりシート状細胞培養物の破れ、しわ、破損を防止し、簡便に操作することが可能となる。したがって結果として、高い品質を保ったシート状細胞培養物を簡便に製造することが可能となる。
【図面の簡単な説明】
【0014】
【図1】例１の培地の切り替えあり、および、培地の切り替えなしで保存したシート状細胞培養物を示した写真図である。切り替えなしで保存した場合、シート状細胞培養物の撚れや縮み、およびそれらに起因する癒着が認められる。
【図2】例２の培地の灌流あり、および、灌流なしで保存した場合のシート状細胞培養物を示した写真図である。灌流なしで保存した場合、シート状細胞培養物の縮みやそれに起因する癒着が認められる。
【図3】例３の常温保存あり、および、常温保存なしで保存した場合のシート状細胞培養物を示した写真図である常温保存なしで保存した場合、シート状細胞培養物の縮みやそれに起因する癒着が認められる。
【発明を実施するための形態】
【0015】
以下、本開示を詳細に説明する。
本明細書において別様に定義されない限り、本明細書で用いる全ての技術用語および科学用語は、当業者が通常理解しているものと同じ意味を有する。本明細書中で参照する全ての特許、出願、公開された出願および他の出版物は、その全体を参照により本明細書に援用する。また本明細書において参照された出版物と本明細書の記載に矛盾が生じた場合は、本明細書の記載が優先されるものとする。
本明細書において別様に定義されない限り、本明細書で用いる全ての技術用語および科学用語は、当業者が通常理解しているものと同じ意味を有する。本明細書中で参照する全ての特許、出願、公開された出願および他の出版物は、その全体を参照により本明細書に援用する。また本明細書において参照された出版物と本明細書の記載に矛盾が生じた場合は、本明細書の記載が優先されるものとする。
【0016】
本開示において「シート状細胞培養物」は、細胞が互いに連結してシート状になったものをいう。細胞同士は、直接（接着分子などの細胞要素を介するものを含む）および／または介在物質を介して、互いに連結していてもよい。介在物質としては、細胞同士を少なくとも物理的（機械的）に連結し得る物質であれば特に限定されないが、例えば、細胞外マトリックスなどが挙げられる。介在物質は、好ましくは細胞由来のもの、特に、細胞培養物を構成する細胞に由来するものである。細胞は少なくとも物理的（機械的）に連結されるが、さらに機能的、例えば、化学的、電気的に連結されてもよい。シート状細胞培養物は、１の細胞層から構成されるもの（単層）であっても、２以上の細胞層から構成されるもの（積層（多層）体、例えば、２層、３層、４層、５層、６層など）であってもよい。また、シート状細胞培養物は、細胞が明確な層構造を示すことなく、細胞１個分の厚みを超える厚みを有する３次元構造を有してもよい。例えば、シート状細胞培養物の垂直断面において、細胞が水平方向に均一に整列することなく、不均一に（例えば、モザイク状に）配置された状態で存在していてもよい。
【0017】
シート状細胞培養物は、好ましくはスキャフォールド（支持体）を含まない。スキャフォールドは、その表面上および／またはその内部に細胞を付着させ、シート状細胞培養物の物理的一体性を維持するために当該技術分野において用いられることがあり、例えば、ポリビニリデンジフルオリド（ＰＶＤＦ）製の膜等が知られているが、本開示のシート状細胞培養物は、かかるスキャフォールドがなくともその物理的一体性を維持することができる。また、本開示のシート状細胞培養物は、好ましくは、シート状細胞培養物を構成する細胞由来の物質のみからなり、それら以外の物質を含まない。
【0018】
シート状細胞培養物を構成する細胞は、シート状細胞培養物を形成し得るものであれば特に限定されず、例えば、接着細胞（付着性細胞）を含む。接着細胞は、例えば、接着性の体細胞（例えば、心筋細胞、線維芽細胞、上皮細胞、内皮細胞、肝細胞、膵細胞、腎細胞、副腎細胞、歯根膜細胞、歯肉細胞、骨膜細胞、皮膚細胞、滑膜細胞、軟骨細胞など）および幹細胞（例えば、筋芽細胞、心臓幹細胞などの組織幹細胞、胚性幹細胞、ｉＰＳ（induced pluripotent stem）細胞などの多能性幹細胞、間葉系幹細胞等）などを含む。体細胞は、幹細胞、特にｉＰＳ細胞から分化させたもの（ｉＰＳ細胞由来接着細胞）であってもよい。シート状細胞培養物を構成する細胞の非限定例としては、例えば、筋芽細胞（例えば、骨格筋芽細胞など）、間葉系幹細胞（例えば、骨髄、脂肪組織、末梢血、皮膚、毛根、筋組織、子宮内膜、胎盤、臍帯血由来のものなど）、心筋細胞、線維芽細胞、心臓幹細胞、胚性幹細胞、ｉＰＳ細胞、滑膜細胞、軟骨細胞、上皮細胞（例えば、口腔粘膜上皮細胞、網膜色素上皮細胞、鼻粘膜上皮細胞など）、内皮細胞（例えば、血管内皮細胞など）、肝細胞（例えば、肝実質細胞など）、膵細胞（例えば、膵島細胞など）、腎細胞、副腎細胞、歯根膜細胞、歯肉細胞、骨膜細胞、皮膚細胞等が挙げられる。ｉＰＳ細胞由来接着細胞の非限定例としては、ｉＰＳ細胞由来の心筋細胞、線維芽細胞、上皮細胞、内皮細胞、肝細胞、膵細胞、腎細胞、副腎細胞、歯根膜細胞、歯肉細胞、骨膜細胞、皮膚細胞、滑膜細胞、軟骨細胞などが挙げられる。
【0019】
本開示において「筋芽細胞」は、横紋筋細胞の前駆細胞であり、骨格筋芽細胞および心筋芽細胞を含む。
本開示において「骨格筋芽細胞」は、骨格筋に存在する筋芽細胞を意味する。骨格筋芽細胞は当該技術分野でよく知られており、骨格筋から任意の既知の方法（例えば、特開２００７－８９４４２号公報に記載の方法など）により調製することもできるし、商業的に入手することもできる（例えば、Lonza、Cat# CC-2580）。骨格筋芽細胞は、限定されずに、例えば、ＣＤ５６、α７インテグリン、ミオシン重鎖ＩＩａ、ミオシン重鎖ＩＩｂ、ミオシン重鎖ＩＩｄ（ＩＩｘ）、ＭｙｏＤ、Ｍｙｆ５、Ｍｙｆ６、ミオゲニン、デスミン、ＰＡＸ３などのマーカーにより同定することができる。特定の態様において、骨格筋芽細胞はＣＤ５６陽性である。さらに特定の態様において、骨格筋芽細胞はＣＤ５６陽性およびデスミン陽性である。骨格筋芽細胞は、骨格筋を有する任意の生物、限定されずに、例えば、ヒト、非ヒト霊長類、げっ歯類（マウス、ラット、ハムスター、モルモットなど）、ウサギ、イヌ、ネコ、ブタ、ウマ、ウシ、ヤギ、ヒツジなどの哺乳動物に由来してもよい。一態様において、骨格筋芽細胞は哺乳動物の骨格筋芽細胞である。特定の態様において、骨格筋芽細胞はヒト骨格筋芽細胞である。
本開示において「骨格筋芽細胞」は、骨格筋に存在する筋芽細胞を意味する。骨格筋芽細胞は当該技術分野でよく知られており、骨格筋から任意の既知の方法（例えば、特開２００７－８９４４２号公報に記載の方法など）により調製することもできるし、商業的に入手することもできる（例えば、Lonza、Cat# CC-2580）。骨格筋芽細胞は、限定されずに、例えば、ＣＤ５６、α７インテグリン、ミオシン重鎖ＩＩａ、ミオシン重鎖ＩＩｂ、ミオシン重鎖ＩＩｄ（ＩＩｘ）、ＭｙｏＤ、Ｍｙｆ５、Ｍｙｆ６、ミオゲニン、デスミン、ＰＡＸ３などのマーカーにより同定することができる。特定の態様において、骨格筋芽細胞はＣＤ５６陽性である。さらに特定の態様において、骨格筋芽細胞はＣＤ５６陽性およびデスミン陽性である。骨格筋芽細胞は、骨格筋を有する任意の生物、限定されずに、例えば、ヒト、非ヒト霊長類、げっ歯類（マウス、ラット、ハムスター、モルモットなど）、ウサギ、イヌ、ネコ、ブタ、ウマ、ウシ、ヤギ、ヒツジなどの哺乳動物に由来してもよい。一態様において、骨格筋芽細胞は哺乳動物の骨格筋芽細胞である。特定の態様において、骨格筋芽細胞はヒト骨格筋芽細胞である。
【0020】
本開示において「心筋芽細胞」は、心筋に存在する筋芽細胞を意味する。心筋芽細胞は当該技術分野でよく知られており、Ｉｓｌ１などのマーカーにより同定することができる。心筋芽細胞は、心筋を有する任意の生物、限定されずに、例えば、ヒト、非ヒト霊長類、げっ歯類（マウス、ラット、ハムスター、モルモットなど）、ウサギ、イヌ、ネコ、ブタ、ウマ、ウシ、ヤギ、ヒツジなどの哺乳動物に由来してもよい。一態様において、心筋芽細胞は哺乳動物の心筋芽細胞である。特定の態様において、心筋芽細胞はヒト心筋芽細胞である。
本開示において「心筋細胞」は、心筋細胞の特徴を有する細胞を意味し、心筋細胞の特徴としては、限定されずに、例えば、心筋細胞マーカーの発現、自律的拍動の存在などが挙げられる。心筋細胞マーカーの非限定例としては、例えば、ｃ－ＴＮＴ（cardiac troponin T）、ＣＤ１７２ａ（別名ＳＩＲＰＡまたはＳＨＰＳ－１）、ＫＤＲ（別名ＣＤ３０９、ＦＬＫ１またはＶＥＧＦＲ２）、ＰＤＧＦＲＡ、ＥＭＩＬＩＮ２、ＶＣＡＭなどが挙げられる。心筋細胞としては、ｉＰＳ細胞由来の心筋細胞が好ましく例示される。
本開示において「心筋細胞」は、心筋細胞の特徴を有する細胞を意味し、心筋細胞の特徴としては、限定されずに、例えば、心筋細胞マーカーの発現、自律的拍動の存在などが挙げられる。心筋細胞マーカーの非限定例としては、例えば、ｃ－ＴＮＴ（cardiac troponin T）、ＣＤ１７２ａ（別名ＳＩＲＰＡまたはＳＨＰＳ－１）、ＫＤＲ（別名ＣＤ３０９、ＦＬＫ１またはＶＥＧＦＲ２）、ＰＤＧＦＲＡ、ＥＭＩＬＩＮ２、ＶＣＡＭなどが挙げられる。心筋細胞としては、ｉＰＳ細胞由来の心筋細胞が好ましく例示される。
【0021】
シート状細胞培養物を構成する細胞は、シート状細胞培養物による治療が可能な任意の生物に由来し得る。かかる生物には、限定されずに、例えば、ヒト、非ヒト霊長類、イヌ、ネコ、ブタ、ウマ、ヤギ、ヒツジ、げっ歯目動物（例えば、マウス、ラット、ハムスター、モルモットなど）、ウサギなどが含まれる。また、シート状細胞培養物を構成する細胞の種類の数は特に限定されず、１種類のみ細胞で構成されていてもよいが、２種類以上の細胞を用いたものであってもよい。シート状細胞培養物を形成する細胞が２種類以上ある場合、最も多い細胞の含有比率（純度）は、シート状細胞培養物の形成終了時において、５０％以上、好ましくは６０％以上、より好ましくは７０％以上、さらに好ましくは７５％以上である。
【0022】
細胞は異種由来細胞であっても同種由来細胞であってもよい。ここで「異種由来細胞」は、シート状細胞培養物が移植に用いられる場合、そのレシピエントとは異なる種の生物に由来する細胞を意味する。例えば、レシピエントがヒトである場合、サルやブタに由来する細胞などが異種由来細胞に該当する。また、「同種由来細胞」は、レシピエントと同一の種の生物に由来する細胞を意味する。例えば、レシピエントがヒトである場合、ヒト細胞が同種由来細胞に該当する。同種由来細胞は、自己由来細胞（自己細胞または自家細胞ともいう）、すなわち、レシピエントに由来する細胞と、同種非自己由来細胞（他家細胞ともいう）を含む。自己由来細胞は、移植しても拒絶反応が生じないため、本開示においては好ましい。しかしながら、異種由来細胞や同種非自己由来細胞を利用することも可能である。異種由来細胞や同種非自己由来細胞を利用する場合は、拒絶反応を抑制するため、免疫抑制処置が必要となることがある。なお、本明細書中で、自己由来細胞以外の細胞、すなわち、異種由来細胞と同種非自己由来細胞を非自己由来細胞と総称することもある。本開示の一態様において、細胞は自家細胞または他家細胞である。本開示の一態様において、細胞は自家細胞である。本開示の別の態様において、細胞は他家細胞である。
【0023】
シート状細胞培養物は、既知の任意の方法（例えば、特許文献１、特許文献２、特開２０１０－０８１８２９、特開２０１１－１１０３６８など参照）で製造することができる。シート状細胞培養物の製造方法は、典型的には、細胞を培養基材上に播種するステップ、播種した細胞をシート化するステップ、形成されたシート状細胞培養物を培養基材から剥離するステップを含むが、これに限定されない。細胞を培養基材上に播種するステップの前に、細胞を凍結するステップおよび細胞を解凍するステップを行ってもよい。さらに、細胞を解凍するステップの後に細胞を洗浄するステップを行ってもよい。これら各ステップは、シート状細胞培養物の製造に適した既知の任意の手法で行うことができる。本開示の製造方法は、シート状細胞培養物を製造するステップを含んでもよく、その場合、シート状細胞培養物を製造するステップは、サブステップとして上記シート状細胞培養物の製造方法に係るステップの１または２以上を含んでもよい。ある一態様において、細胞を解凍するステップの後、細胞を培養基材上に播種するステップの前に細胞を増殖させるステップを含まない。
【0024】
培養基材は、細胞がその上で細胞培養物を形成し得るものであれば特に限定されず、例えば、種々の材質の容器、容器中の固形もしくは半固形の表面などを含む。容器は、培養液などの液体を透過させない構造・材料が好ましい。かかる材料としては、限定することなく、例えば、ポリエチレン、ポリプロピレン、テフロン（登録商標）、ポリエチレンテレフタレート、ポリメチルメタクリレート、ナイロン６，６、ポリビニルアルコール、セルロース、シリコン、ポリスチレン、ガラス、ポリアクリルアミド、ポリジメチルアクリルアミド、金属（例えば、鉄、ステンレス、アルミニウム、銅、真鍮）等が挙げられる。また、容器は、少なくとも１つの平坦な面を有することが好ましい。かかる容器の例としては、限定することなく、例えば、細胞培養物の形成が可能な培養基材で構成された底面と、液体不透過性の側面とを備えた培養容器が挙げられる。かかる培養容器の特定の例としては、限定されずに、細胞培養皿、細胞培養ボトルなどが挙げられる。容器の底面は透明であっても不透明であってもよい。容器の底面が透明であると、容器の裏側から細胞の観察、計数などが可能となる。また、容器は、その内部に固形もしくは半固形の表面を有してもよい。固形の表面としては、上記のごとき種々の材料のプレートや容器などが、半固形の表面としては、ゲル、軟質のポリマーマトリックスなどが挙げられる。培養基材は、上記材料を用いて作製してもよいし、市販のものを利用してもよい。好ましい培養基材としては、限定することなく、例えば、シート状細胞培養物の形成に適した、接着性の表面を有する基材が挙げられる。具体的には、親水性の表面を有する基材、例えば、コロナ放電処理したポリスチレン、コラーゲンゲルや親水性ポリマーなどの親水性化合物を該表面にコーティングした基材、さらには、コラーゲン、フィブロネクチン、ラミニン、ビトロネクチン、プロテオグリカン、グリコサミノグリカンなどの細胞外マトリックスや、カドヘリンファミリー、セレクチンファミリー、インテグリンファミリーなどの細胞接着因子などを表面にコーティングした基材などが挙げられる。また、かかる基材は市販されている（例えば、Corning(R)TC-Treated Culture Dish、Corningなど）。培養基材は全体または部分が透明であっても不透明であってもよい。
【0025】
培養基材は、刺激、例えば、温度や光に応答して物性が変化する材料で表面が被覆されていてもよい。かかる材料としては、限定されずに、例えば、（メタ）アクリルアミド化合物、Ｎ－アルキル置換（メタ）アクリルアミド誘導体（例えば、Ｎ－エチルアクリルアミド、Ｎ－ｎ－プロピルアクリルアミド、Ｎ－ｎ－プロピルメタクリルアミド、Ｎ－イソプロピルアクリルアミド、Ｎ－イソプロピルメタクリルアミド、Ｎ－シクロプロピルアクリルアミド、Ｎ－シクロプロピルメタクリルアミド、Ｎ－エトキシエチルアクリルアミド、Ｎ－エトキシエチルメタクリルアミド、Ｎ－テトラヒドロフルフリルアクリルアミド、Ｎ－テトラヒドロフルフリルメタクリルアミド等）、Ｎ，Ｎ－ジアルキル置換（メタ）アクリルアミド誘導体（例えば、Ｎ，Ｎ－ジメチル（メタ）アクリルアミド、Ｎ，Ｎ－エチルメチルアクリルアミド、Ｎ，Ｎ－ジエチルアクリルアミド等）、環状基を有する（メタ）アクリルアミド誘導体（例えば、１－（１－オキソ－２－プロペニル）－ピロリジン、１－（１－オキソ－２－プロペニル）－ピペリジン、４－（１－オキソ－２－プロペニル）－モルホリン、１－（１－オキソ－２－メチル－２－プロペニル）－ピロリジン、１－（１－オキソ－２－メチル－２－プロペニル）－ピペリジン、４－（１－オキソ－２－メチル－２－プロペニル）－モルホリン等）、またはビニルエーテル誘導体（例えば、メチルビニルエーテル）のホモポリマーまたはコポリマーからなる温度応答性材料、アゾベンゼン基を有する光吸収性高分子、トリフェニルメタンロイコハイドロオキシドのビニル誘導体とアクリルアミド系単量体との共重合体、および、スピロベンゾピランを含むＮ－イソプロピルアクリルアミドゲル等の光応答性材料などの公知のものを用いることができる（例えば、特開平２－２１１８６５、特開２００３－３３１７７参照）。これらの材料に所定の刺激を与えることによりその物性、例えば、親水性や疎水性を変化させ、同材料上に付着した細胞培養物の剥離を促進することができる。温度応答性材料で被覆された培養皿は市販されており（例えば、CellSeed Inc.のUpCell(R)）、これらを本開示の製造方法に使用することができる。
【0026】
培養基材は、種々の形状であってもよいが、平坦であることが好ましい。また、その面積は特に限定されないが、例えば、約１ｃｍ２～約２００ｃｍ２、約２ｃｍ２～約１００ｃｍ２、約３ｃｍ２～約５０ｃｍ２などであってよい。例えば、培養基材として直径１０ｃｍの円形の培養皿が挙げられる。この場合、面積は５６．７ｃｍ２となる。
培養基材は血清でコート（被覆またはコーティング）されていてもよい。血清でコートされた培養基材を用いることにより、より高密度のシート状細胞培養物を形成することができる。「血清でコートされている」とは、培養基材の表面に血清成分が付着している状態を意味する。かかる状態は、限定されずに、例えば、培養基材を血清で処理することにより得ることができる。血清による処理は、血清を培養基材に接触させること、および、必要に応じて所定期間インキュベートすることを含む。
培養基材は血清でコート（被覆またはコーティング）されていてもよい。血清でコートされた培養基材を用いることにより、より高密度のシート状細胞培養物を形成することができる。「血清でコートされている」とは、培養基材の表面に血清成分が付着している状態を意味する。かかる状態は、限定されずに、例えば、培養基材を血清で処理することにより得ることができる。血清による処理は、血清を培養基材に接触させること、および、必要に応じて所定期間インキュベートすることを含む。
【0027】
血清としては、異種血清および／または同種血清を用いることができる。異種血清は、シート状細胞培養物を移植に用いる場合、そのレシピエントとは異なる種の生物に由来する血清を意味する。例えば、レシピエントがヒトである場合、ウシやウマに由来する血清、例えば、ウシ胎仔血清（ＦＢＳ、ＦＣＳ）、仔ウシ血清（ＣＳ）、ウマ血清（ＨＳ）などが異種血清に該当する。また、「同種血清」は、レシピエントと同一の種の生物に由来する血清を意味する。例えば、レシピエントがヒトである場合、ヒト血清が同種血清に該当する。同種血清は、自己血清（自家血清ともいう）、すなわち、レシピエントに由来する血清、およびレシピエント以外の同種個体に由来する同種他家血清を含む。なお、本明細書中で、自己血清以外の血清、すなわち、異種血清と同種他家血清を非自己血清と総称することもある。
培養基材をコートするための血清は、市販されているか、または、所望の生物から採取した血液から定法により調製することができる。具体的には、例えば、採取した血液を室温で約２０分～約６０分程度放置して凝固させ、これを約１０００×ｇ～約１２００×ｇ程度で遠心分離し、上清を採取する方法などが挙げられる。
培養基材をコートするための血清は、市販されているか、または、所望の生物から採取した血液から定法により調製することができる。具体的には、例えば、採取した血液を室温で約２０分～約６０分程度放置して凝固させ、これを約１０００×ｇ～約１２００×ｇ程度で遠心分離し、上清を採取する方法などが挙げられる。
【0028】
培養基材上でインキュベートする場合、血清は原液で用いても、希釈して用いてもよい。希釈は、任意の媒体、例えば、限定することなく、水、生理食塩水、種々の緩衝液（例えば、ＰＢＳ、ＨＢＳＳなど）、種々の液体培地（例えば、ＤＭＥＭ、ＭＥＭ、Ｆ１２、ＤＭＥＭ／Ｆ１２、ＤＭＥ、ＲＰＭＩ１６４０、ＭＣＤＢ（ＭＣＤＢ１０２、１０４、１０７、１２０、１３１、１５３、１９９など）、Ｌ１５、ＳｋＢＭ、ＲＩＴＣ８０－７など）等で行うことができる。希釈濃度は、血清成分が培養基材上に付着することができれば特に限定されず、例えば、約０．５％～約１００％（ｖ／ｖ）、好ましくは約１％～約６０％（ｖ／ｖ）、より好ましくは約５％～約４０％（ｖ／ｖ）である。
【0029】
インキュベート時間も、血清成分が培養基材上に付着することができれば特に限定されず、例えば、約１時間～約７２時間、好ましくは約２時間～約４８時間、より好ましくは約２時間～約２４時間、さらに好ましくは約２時間～約１２時間である。インキュベート温度も、血清成分が培養基材上に付着することができれば特に限定されず、例えば、約０℃～約６０℃、好ましくは約４℃～約４５℃、より好ましくは室温～約４０℃である。
【0030】
インキュベート後に血清を廃棄してもよい。血清の廃棄手法としては、ピペットなどによる吸引や、デカンテーションなどの慣用の液体廃棄手法を用いることができる。本開示の好ましい態様においては、血清廃棄後に、培養基材を無血清洗浄液で洗浄してもよい。無血清洗浄液としては、血清を含まず、培養基材に付着した血清成分に悪影響を与えない液体媒体であれば特に限定されず、例えば、限定することなく、水、生理食塩水、種々の緩衝液（例えば、ＰＢＳ、ＨＢＳＳなど）、種々の液体培地（例えば、ＤＭＥＭ、ＭＥＭ、Ｆ１２、ＤＭＥＭ／Ｆ１２、ＤＭＥ、ＲＰＭＩ１６４０、ＭＣＤＢ（ＭＣＤＢ１０２、１０４、１０７、１２０、１３１、１５３、１９９など）、Ｌ１５、ＳｋＢＭ、ＲＩＴＣ８０－７など）等で行うことができる。洗浄手法としては、慣用の培養基材洗浄手法、例えば、限定することなく、培養基材上に無血清洗浄液を加えて所定時間（例えば、約５秒～約６０秒間）撹拌後、廃棄する手法などを用いることができる。
【0031】
本開示において、培養基材を、成長因子でコートしてもよい。ここで、「成長因子」は、細胞の増殖を、それがない場合に比べて促進する任意の物質を意味し、例えば、上皮細胞成長因子（ＥＧＦ）、血管内皮成長因子（ＶＥＧＦ）、線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）などを含む。成長因子による培養基材のコート手法、廃棄手法および洗浄手法は、インキュベーション時の希釈濃度が、例えば、約０．０００１μｇ／ｍＬ～約１μｇ／ｍＬ、好ましくは約０．０００５μｇ／ｍＬ～約０．０５μｇ／ｍＬ、より好ましくは約０．００１μｇ／ｍＬ～約０．０１μｇ／ｍＬである以外は、基本的に血清と同じである。
【0032】
本開示において、培養基材を、ステロイド剤でコートしてもよい。ここで「ステロイド剤」は、ステロイド核を有する化合物のうち、生体に、副腎皮質機能不全、クッシング症候群などの悪影響を及ぼし得るものをいう。かかる化合物としては、限定されずに、例えば、コルチゾール、プレドニゾロン、トリアムシノロン、デキサメタゾン、ベタメタゾン等が含まれる。ステロイド剤による培養基材のコート手法、廃棄手法および洗浄手法は、インキュベーション時の希釈濃度が、デキサメタゾンとして、例えば、約０．１μｇ／ｍＬ～約１００μｇ／ｍＬ、好ましくは約０．４μｇ／ｍＬ～約４０μｇ／ｍＬ、より好ましくは約１μｇ／ｍＬ～約１０μｇ／ｍＬである以外は、基本的に血清と同じである。
【0033】
培養基材は、血清、成長因子およびステロイド剤のいずれか１つでコートしても、これらの任意の組合わせ、すなわち、血清と成長因子、血清とステロイド剤、血清と成長因子とステロイド剤、または、成長因子とステロイド剤の組合わせでコートしてもよい。複数の成分でコートする場合、これらの成分を混合して同時にコートしてもよいし、別々のステップでコートしてもよい。
【0034】
培養基材は、血清等でコートした後直ちに細胞を播種してもよいし、コートした後に保存しておき、その後細胞を播種することもできる。コートした基材は、例えば約４℃以下、好ましくは約－２０℃以下、より好ましくは約－８０℃以下に保つことにより長期間保存することができる。
培養基材への細胞の播種は、既知の任意の手法および条件で行うことができる。培養基材への細胞の播種は、例えば、細胞を培養液に懸濁した細胞懸濁液を培養基材（培養容器）に注入することにより行ってもよい。細胞懸濁液の注入には、スポイトやピペットなど、細胞懸濁液の注入操作に適した器具を用いることができる。
培養基材への細胞の播種は、既知の任意の手法および条件で行うことができる。培養基材への細胞の播種は、例えば、細胞を培養液に懸濁した細胞懸濁液を培養基材（培養容器）に注入することにより行ってもよい。細胞懸濁液の注入には、スポイトやピペットなど、細胞懸濁液の注入操作に適した器具を用いることができる。
【0035】
本開示においてシート状細胞培養物を「剥離する」とは、培養基材からシート状細胞培養物を剥がすこと、または、シート状細胞培養物が剥がれることを意味する。すなわち、シート状細胞培養物を培養基材から能動的に剥がすことのほかに、例えばシート状細胞培養物の細胞間結合力が、シート状細胞培養物と培養表面との結合力を上回り、自然と剥がれることもまた「剥離する」に含まれる。
【0036】
本開示において「浸漬」とは、シート状細胞培養物が、低栄養等張液に浸かっている状態をいう。すなわち、シート状細胞培養物が液体に覆われた状態であれば「浸漬」された状態であり、静置状態でシートの一部が液体の外部に露出したとしとしても、例えば振盪により液体に覆われた状態になれば、一部が露出した状態もまた「浸漬」された状態である。
【0037】
本開示において、シート状細胞培養物が「収縮する」とは、培養基材に接着したシート状細胞培養物を基材から剥離した時、剥離後にシート状細胞培養物の面積が小さくなることを意味する。
また本開示において、シート状細胞培養物が「縮む」とは、シート状細胞培養物の外縁部が丸まったり撚れたりすることを意味する。かかる縮みは、細胞間接着力の作用によるものであり、剥離作業や移送作業により物理的に生ずる皺や折れ重なりとは異なるものである。縮んだ状態のまま放置すると、丸まったり撚れたりした部分からシート状細胞培養物が癒着やひっつきを生じてしまう。
また本開示において、シート状細胞培養物が「縮む」とは、シート状細胞培養物の外縁部が丸まったり撚れたりすることを意味する。かかる縮みは、細胞間接着力の作用によるものであり、剥離作業や移送作業により物理的に生ずる皺や折れ重なりとは異なるものである。縮んだ状態のまま放置すると、丸まったり撚れたりした部分からシート状細胞培養物が癒着やひっつきを生じてしまう。
【0038】
本開示において「伸展」とは、シート状細胞培養物に生じた皺、折れ重なり、縮みまたは撚れなどを伸ばして解消することを意味する。
【0039】
本開示において、「等張」という語は、二種の液体の浸透圧が同等である状態を意味するが、本開示においては別段の記載のない限り「生理的等張」を意味し、細胞内液や血液などの生理的液体と同等の浸透圧を有することをいう。したがって本開示において、「等張液」は別段の記載のない限り「生理的等張液」と同義であり、細胞内液や血液などの生理的液体と同等の浸透圧を有する液体を意味する。等張液としては、これに限定するものではないが、例えばハンクス平衡塩液、生理食塩水、リン酸緩衝生理食塩水、リンゲル液、基礎培地などが挙げられる。
【0040】
本開示において、「低栄養」または「低栄養状態」とは、その条件下におかれた細胞集団の細胞数が、所定の期間増殖も死滅もせず維持される条件であること、すなわち所定の期間細胞数が実質的に変化しない条件であることを意味する。「細胞数が実質的に変化しない」とは、ある時点における細胞数Ａと、所定の期間経過後の別の時点における細胞数Ｂに実質的な差がないことを意味し、具体的には、例えば細胞数Ａが細胞数Ｂの約７０％、約８０％、約９０％、約９５％、約１００％、約１０５％、約１１０％、約１２０％、約１３０％などである場合が挙げられる。２つの時点は任意に選択されてよいが、通常の培養条件下で培養した場合には細胞の増殖が確認できる程度の間隔が空いていることが好ましい。かかる間隔としては、例えば３日、４日、５日、６日、７日などである。
【0041】
低栄養状態は、様々な条件により達成でき、当業者であれば対象の細胞に合わせて適宜低栄養状態を作り出すことができる。低栄養状態の要件としては、典型的には例えば、細胞の生命維持に必要なエネルギーは供給可能であること、および／または細胞の分裂に必要な要素に欠けていること、などが挙げられる。具体的には例えば、代謝に必要な糖分などのエネルギーが供給可能である環境、および／または細胞分裂に必要な必須アミノ酸が供給不可能である環境などが挙げられる。
一態様において、低栄養は、低糖である。「低糖」とは糖が含まれてはいるがその割合が低い状態を意味し、したがって低糖には糖フリー状態は含まれない。かかる態様の例としては、具体的には例えば、低糖は低グルコースであり、低グルコースはグルコースフリーではない。低糖としては、典型的には例えば、糖が１０００ｍｇ／Ｌ未満含まれる組成などが挙げられる。別の低糖条件の液としては、例えば、追加の糖類を含まない一般的な培養液における糖類の条件と比較して含有される糖類を１％未満まで低下させた条件などが含まれる。低糖状態の液に含まれる糖の量としては、具体的には例えば１０００ｍｇ／Ｌ未満であり、好ましくは５００ｍｇ／Ｌ未満であり、より好ましくは２００ｍｇ／Ｌ未満であり、さらに好ましくは１００ｍｇ／ｍＬ未満である。
別の一態様において、低栄養は、アミノ酸フリー状態、すなわちアミノ酸を含まない。かかる態様の例としては、具体的には例えば、必須アミノ酸を含まない。
一態様において、低栄養は、低糖である。「低糖」とは糖が含まれてはいるがその割合が低い状態を意味し、したがって低糖には糖フリー状態は含まれない。かかる態様の例としては、具体的には例えば、低糖は低グルコースであり、低グルコースはグルコースフリーではない。低糖としては、典型的には例えば、糖が１０００ｍｇ／Ｌ未満含まれる組成などが挙げられる。別の低糖条件の液としては、例えば、追加の糖類を含まない一般的な培養液における糖類の条件と比較して含有される糖類を１％未満まで低下させた条件などが含まれる。低糖状態の液に含まれる糖の量としては、具体的には例えば１０００ｍｇ／Ｌ未満であり、好ましくは５００ｍｇ／Ｌ未満であり、より好ましくは２００ｍｇ／Ｌ未満であり、さらに好ましくは１００ｍｇ／ｍＬ未満である。
別の一態様において、低栄養は、アミノ酸フリー状態、すなわちアミノ酸を含まない。かかる態様の例としては、具体的には例えば、必須アミノ酸を含まない。
【0042】
本開示において「低栄養等張液」とは、等張液のうち低栄養のものを意味する。典型的には例えば、所定量の炭水化物を含む等張液および／または必須アミノ酸を供給できない等張液であり、具体的には例えば、所定量の糖を含むがアミノ酸（とくに必須アミノ酸）を含まない等張液、所定量の糖および必須アミノ酸の合成阻害剤を含む等張液などが挙げられる。低栄養等張液に含まれ得る炭水化物は、典型的には糖であり、これに限定するものではないが、例えばグルコース、ショ糖、マルトース、フルクトース、ガラクトースなどが挙げられ、対象の細胞種などに応じて適宜選択することができる。糖の所定含有量は、含まれる糖の種類や細胞の必要維持期間（浸漬時間）により異なり得る。例えばグルコースの場合、細胞の生命維持の必要量という観点から、例えば約１００ｍｇ／Ｌ以上、約５００ｍｇ／Ｌ以上、約１０００ｍｇ／Ｌ以上、約１５００ｍｇ／Ｌ以上、約２０００ｍｇ／Ｌ以上などが挙げられる。また、等張性の維持という観点から、例えば約５００００ｍｇ／Ｌ以下、約４００００ｍｇ／Ｌ以下、約３００００ｍｇ／Ｌ以下、約２５０００ｍｇ／Ｌ以下、約２００００ｍｇ／Ｌ以下、約１５０００ｍｇ／Ｌ以下、約１００００ｍｇ／Ｌ以下、約５０００ｍｇ／Ｌ以下、約４５００ｍｇ／Ｌ以下などが挙げられる。したがってグルコースの含有量の範囲としては、これら上限値および下限値の任意の組み合わせであってよく、これに限定するものではないが、例えば約１００～５０００００ｍｇ／Ｌ、約５００～２５０００ｍｇ／Ｌ、約５００～４５００ｍｇ／Ｌ、約１５００～４５００ｍｇ／Ｌ、約５００～１５００ｍｇ／Ｌの範囲などが挙げられる。当業者であれば、含まれる糖の種類に従って所定の含有量を算出可能である。
【0043】
低栄養等張液としては、例えばハンクス平衡塩液、アール平衡塩液、ブドウ糖等張液など、所定量の糖を含み、かつアミノ酸を含まない組成として知られる等張液の他、例えば生理食塩水、リン酸緩衝生理食塩水、リンゲル液などの、炭水化物およびアミノ酸を含まない組成として知られる等張液に、所定量の炭水化物を入れしたものであってもよい。所定量の炭水化物としては、例えばハンクス平衡塩液やアール平衡塩液であれば一般的に１０００～４５００ｍｇ／Ｌのグルコースを含有し、ブドウ糖等張液であれば約５００００ｍｇ／Ｌのグルコースを含有する。一態様において、低栄養等張液には、ＵＷ液、Euro-Collins液、Hypothermosol（登録商標）など、従来臓器の冷蔵保存用溶液として知られた保存液は含まない。
【0044】
本開示の低栄養等張液は、乳酸を含んでもよい。したがって本開示の一態様において、低栄養等張液は、乳酸を含まない。また、本開示の低栄養等張液は、ピルビン酸を含んでもよい。したがって本開示の一態様において、低栄養等張液は、ピルビン酸を含まない。また、本開示の低栄養等張液は、アスコルビン酸を含んでもよい。したがって本開示の一態様において、低栄養等張液は、アスコルビン酸を含む。また、本開示の低栄養等張液は、脂肪酸を含んでもよい。したがって本開示の一態様において、低栄養等張液は、脂肪酸を含まない。また、本開示の低栄養等張液は、カルシウムを含んでもよい。したがって本開示の一態様において、低栄養等張液は、カルシウムを含み、好ましくは約１～２ｍＭ、より好ましくは約１．２～１．８ｍＭの濃度のカルシウムを含む。また、本開示の低栄養等張液は、コレステロールを含んでもよい。したがって本開示の一態様において、低栄養等張液は、コレステロールを含まない。好ましい一態様において、低栄養等張液は、乳酸、ピルビン酸、脂肪酸およびコレステロールを含まず、アスコルビン酸を含み、カルシウムを約１～２ｍＭ、好ましくは約１．２～１．８ｍＭの濃度で含む。
【0045】
本開示において、「炭水化物」とは、単糖を構成単位とする有機化合物の総称であり、単糖類、少糖類、多糖類のほか、糖誘導体なども包含する。本明細書において「糖」または「糖分」という語は、炭水化物のうち、細胞により代謝されてエネルギーに変換されるものまたは成分をいい、典型的には単糖類を表すが、系中で分解されて細胞に代謝され得るものも含まれる。
本開示において、「常温」とは、１５℃～２５℃である。
本開示において、「常温」とは、１５℃～２５℃である。
【0046】
＜１＞本開示の縮み抑制方法
本開示の一側面は、培養基材上に形成されたシート状細胞培養物を剥離する際にシート状細胞培養物の縮みを抑制する方法（以下、本開示の剥離方法と記載）が提供される。
本開示のシート状細胞培養物の剥離方法は以下の工程を含む：
（ａ）少なくとも一部が培養基材に接着したシート状細胞培養物の上面を、低栄養等張液で浸漬すること。
本開示の一側面は、培養基材上に形成されたシート状細胞培養物を剥離する際にシート状細胞培養物の縮みを抑制する方法（以下、本開示の剥離方法と記載）が提供される。
本開示のシート状細胞培養物の剥離方法は以下の工程を含む：
（ａ）少なくとも一部が培養基材に接着したシート状細胞培養物の上面を、低栄養等張液で浸漬すること。
【0047】
工程（ａ）において、少なくとも一部が培養基材に接着したシート状細胞培養物の上面の低栄養等張液への浸漬は、典型的には培養容器に低栄養等張液を入れることにより達成される。浸漬されるシート状細胞培養物は、少なくとも一部が培養基材に接着した状態であればよいが、好ましくは培養基材に全体が接着した状態である。一態様において、シート状細胞培養物の低栄養等張液への浸漬は、シート状細胞培養物の形成のために用いていた培地を除去し、低栄養等張液を入れる、すなわち培地を低栄養等張液に置換することにより達成される。
【0048】
本開示の剥離方法の一態様において、上記工程（ａ）に続いて、任意に以下の工程（ｂ）を含む：
（ｂ）低栄養等張液中でシート状細胞培養物を剥離すること。
工程（ｂ）において、低栄養等張液に浸漬された、培養基材に接着したシート状細胞培養物は、低栄養等張液中に浸漬した状態で静置しておくことにより自然に剥離させてもよいし、低栄養等張液中で培養基材から能動的に剥離してもよい。好ましい一態様において、シート状細胞培養物を能動的に剥離する。能動的な剥離の方法は、シート状細胞培養物を損傷させるものでなければ特に限定されず、例えば基材ごと低栄養等張液を振盪させる方法、低栄養等張液を（例えばピペッティングなどにより）基材に接着したシート状細胞培養物の接着縁に噴出することで剥離する方法などが挙げられる。
（ｂ）低栄養等張液中でシート状細胞培養物を剥離すること。
工程（ｂ）において、低栄養等張液に浸漬された、培養基材に接着したシート状細胞培養物は、低栄養等張液中に浸漬した状態で静置しておくことにより自然に剥離させてもよいし、低栄養等張液中で培養基材から能動的に剥離してもよい。好ましい一態様において、シート状細胞培養物を能動的に剥離する。能動的な剥離の方法は、シート状細胞培養物を損傷させるものでなければ特に限定されず、例えば基材ごと低栄養等張液を振盪させる方法、低栄養等張液を（例えばピペッティングなどにより）基材に接着したシート状細胞培養物の接着縁に噴出することで剥離する方法などが挙げられる。
【0049】
本開示の剥離方法によれば、シート状細胞培養物を剥離する際、基材から剥離されたシート状細胞培養物が、剥離中に剥離済みの端部が撚れたり縮んだりし、そのままひっつき、癒着してしまうのを回避できる。これは、低栄養等張液に浸漬することにより、シート状細胞培養物を構成する細胞の生理活動が低下することにより、細胞間接着力が弱まるためと考えられる。
【0050】
本開示の剥離方法の一態様において、浸漬は、上述のとおりシート状細胞培養物の形成のために用いていた培地を除去し、低栄養等張液に置換することにより行われる。かかる態様においては、浸漬を行うことにより、シート状細胞培養物に残存する製造工程由来不純物を除去することができる。本開示において「製造工程由来不純物」とは、典型的には、シート状細胞培養物の製造段階での各工程に由来する以下に列挙するものが含まれる。すなわち、細胞基材に由来するもの（例えば、宿主細胞由来蛋白質、宿主細胞由来ＤＮＡなど）、細胞培養液に由来するもの（例えば、インデューサー、抗生物質、培地成分、異種血清など）、あるいは細胞培養以降の工程である目的物質の抽出、分離、加工、精製工程に由来するものなどである（例えば、医薬審発第５７１号参照）。
【0051】
本開示の剥離方法において、任意にさらに以下の工程（ｃ）を含んでもよい：
（ｃ）シート状細胞培養物を伸展させる工程。
工程（ｃ）は、撚れたり折れ曲がったりしたシート状細胞培養物を伸展させる工程である。伸展工程（ｃ）は、剥離工程（ｂ）の後に行うことができる。伸展工程（ｃ）は低栄養等張液中で行ってもよいし、低栄養等張液を除去した後に行い、その後低栄養等張液を再度加えてもよい。低栄養等張液除去後に伸展工程（ｃ）を行う場合、例えば低栄養等張液をシート状細胞培養物が重なっている部分に滴下し、必要に応じて振盪させる、などの手法により行うことができる。低栄養等張液中で伸展工程（ｃ）を行う場合、低栄養等張液中に浸漬したシート状細胞培養物を、容器ごと振盪させる、などの手法により行うことができる。簡便性などの観点から、伸展工程は、好ましくは低栄養等張液中で、シート状細胞培養物が浸漬された低栄養等張液入りの容器を振盪することにより行われる。
（ｃ）シート状細胞培養物を伸展させる工程。
工程（ｃ）は、撚れたり折れ曲がったりしたシート状細胞培養物を伸展させる工程である。伸展工程（ｃ）は、剥離工程（ｂ）の後に行うことができる。伸展工程（ｃ）は低栄養等張液中で行ってもよいし、低栄養等張液を除去した後に行い、その後低栄養等張液を再度加えてもよい。低栄養等張液除去後に伸展工程（ｃ）を行う場合、例えば低栄養等張液をシート状細胞培養物が重なっている部分に滴下し、必要に応じて振盪させる、などの手法により行うことができる。低栄養等張液中で伸展工程（ｃ）を行う場合、低栄養等張液中に浸漬したシート状細胞培養物を、容器ごと振盪させる、などの手法により行うことができる。簡便性などの観点から、伸展工程は、好ましくは低栄養等張液中で、シート状細胞培養物が浸漬された低栄養等張液入りの容器を振盪することにより行われる。
【0052】
本開示の伸展方法は、シート状細胞培養物が伸展可能であれば限定されず、例えば、偏りなく伸展可能な観点から回転振盪が好ましい。回転振盪は、シート状細胞培養物を浸漬した液体を容器内で回転させることにより、液体中に遠心力を生じさせ、かかる遠心力およびシート状細胞培養物と液体との間の摩擦力によりシート状細胞培養物が外側に牽引され、結果として伸展できるものと考えられる。したがって回転振盪は、容器内の液体は、容器の中央を中心として回転することが好ましい。
【0053】
振盪において液体を回転させる方法としては、液体中に存在するシート状細胞培養物を破損させない限りにおいて、当該技術分野において知られたあらゆる方法を用いることができる。具体的には、これに限定するものではないが、例えば液体の入った容器を回転または回転振盪させる、攪拌子などを液体中で回転させる、などの方法が挙げられる。シート状細胞培養物に直接的にダメージを与えるリスクが少ない、コンタミネーションのリスクが少ない、などの観点から、液体に直接触れずに容器を回転または回転振盪させることにより、内部の液体を回転させる方法が好ましい。力の伝達効率を考えると、容器を回転振盪させるのが最も好ましい。なお、本発明において、容器を「回転」させるとは、容器自体を自転させることをいい、容器を回転振盪させるとは、容器を円運動させて振盪することをいう。
【0054】
本開示の回転振盪は、シート状細胞培養物を浸漬した液体を回転させた際に生じる遠心力および、該液体とシート状細胞培養物との間の摩擦力を伸展させる力とするものであるため、力が極端に強くなることやシート状細胞培養物に偏って負荷がかかることがない。したがって、とくにシート状細胞培養物が脆弱なシート状細胞培養物である場合に好適に用いることができる。
【0055】
振盪力や振盪時間は、例えば振盪と振幅により決定するが、振盪力が大きすぎる場合や、振盪時間が長すぎる場合は、シート状細胞培養物を破損するリスクを高めることとなるが、用いる容器の形状や種類、シート状細胞培養物の脆弱さ、液体の量や種類などにより変化し得、当業者であれば適切な数値を適宜決定できる。シート状細胞培養物が骨格筋芽細胞である場合、およそ５ｒｐｍ～３００ｒｐｍ程度が適切である。例えば、剥離の際にシート状細胞培養物の辺縁に生じたごく一部の折れ曲りや皺を解消するには３０ｒｐｍ～５０ｒｐｍ程度の伸展が好ましく、撚れや縮みが生じている場合には、容器内部の液体が十分に回転しつつ、シート状細胞培養物が破損しない３０ｒｐｍ～９０ｒｐｍ程度の伸展が好ましく、癒着やひっつきを伸展可能な範囲としてはやや強めの９０ｒｐｍ～１３０ｒｐｍ程度が好ましい。振盪時間としては、例として３０ｒｐｍ～５０ｒｐｍの場合、１～１５分程度、３０ｒｐｍ～９０ｒｐｍの場合、１～１０分程度、９０ｒｐｍ～１３０ｒｐｍの場合、１～８分程度が好ましい。
【0056】
伸展工程は（ｃ）は、常温下で行ってもよいし、冷蔵条件下、例えば例えば０～１０℃または２～８℃など、で行ってもよい。また伸展に低栄養等張液を用いる場合、かかる低栄養等張液もまた、常温であってもよいし冷蔵条件、例えば０～１０℃または２～８℃であってもよい。細胞の生理活動を低下させる観点からは、０～１０℃が好ましい。
【0057】
本開示の剥離方法に用いられる培養基材としては、上述した培養基材を用いることができる。好ましい一態様において、培養基材は、血清で被覆されている。別の好ましい一態様において、培養基材は、温度応答性材料で被覆されている。より好ましい一態様において、培養基材は、温度応答性材料および血清で被覆されている。
【0058】
本開示の剥離方法で剥離されるシート状細胞培養物に用いられる細胞としては、上述した細胞を用いることができる。好ましい一態様においてシート状細胞培養物は、筋芽細胞を含む。別の好ましい一態様において、シート状細胞培養物は、心筋細胞を含む。より好ましい一態様において、シート状細胞培養物に含まれる心筋細胞は、ｉＰＳ細胞由来の心筋細胞である。
【0059】
本開示の剥離方法に用いられる低栄養等張液としては、上述した低栄養等張液を用いることができる。好ましい一態様において、低栄養等張液は、ハンクス平衡塩液（ＨＢＳＳ）であり、特に好ましくはＨＢＳＳ（＋）である。
また、シート状細胞培養物を構成する細胞の生理活動を低下させるという観点から、低栄養等張液は、好ましくは室温以下である。また、細胞へのダメージを極力小さくするという観点から、低栄養等張液は、好ましくは０℃以上である。好ましい一態様において、低栄養等張液は、０～１０℃であり、より好ましくは２～８℃である。
また、シート状細胞培養物を構成する細胞の生理活動を低下させるという観点から、低栄養等張液は、好ましくは室温以下である。また、細胞へのダメージを極力小さくするという観点から、低栄養等張液は、好ましくは０℃以上である。好ましい一態様において、低栄養等張液は、０～１０℃であり、より好ましくは２～８℃である。
【0060】
本開示の一側面において、培養基材から剥離されたシート状細胞培養物を灌流することにより、シート状細胞培養物の縮みを抑制する方法（以下、本開示の灌流方法と記載）が提供される。
本開示のシート状細胞培養物の灌流方法は以下の工程を含む：
（Ａ）剥離されたシート状細胞培養物を低栄養等張液により灌流すること。
本開示において、「灌流」とは、組織や移植片などの表面や内部に液体を流し血清や培地成分などを除去することをいう。
工程（Ａ）は、少なくとも１回行われるが、複数回繰り返してよく、例えば１回、２回、３回、４回、５回、６回繰り返されてよい。好ましい一態様において、灌流は３回行われる。
本開示のシート状細胞培養物の灌流方法は以下の工程を含む：
（Ａ）剥離されたシート状細胞培養物を低栄養等張液により灌流すること。
本開示において、「灌流」とは、組織や移植片などの表面や内部に液体を流し血清や培地成分などを除去することをいう。
工程（Ａ）は、少なくとも１回行われるが、複数回繰り返してよく、例えば１回、２回、３回、４回、５回、６回繰り返されてよい。好ましい一態様において、灌流は３回行われる。
【0061】
本開示の灌流方法は、剥離後のシート状細胞培養物を低栄養等張液により灌流することにより、基材から剥離されたシート状細胞培養物の縮みを抑制するものである。通常シート状細胞培養物を培養基材から剥離した後、遊離状態のシート状細胞培養物は構成する細胞同士の細胞間接着力により引っ張られているため収縮が生じており、その過程において撚れや縮みが生じやすい。しかしながら本開示の方法によれば、低栄養等張液で灌流することで細胞の生理活動が低下することにより、細胞間接着力が弱まるため、撚れや縮みを効果的に抑制することができる。また、低栄養等張液中により灌流することにより、撚れや折れ曲がりなどによりシート状細胞培養物に重なりが生じても、当該箇所が癒着、ひっつきを起こすのを妨げることができるため、高品質のシート状細胞培養物を提供することができる。
【0062】
本開示のシート状細胞培養物の灌流は、剥離されたシート状細胞培養物の表面に低栄養等張液を接触させることにより行われる。かかる灌流は、剥離されたシート状細胞培養物の表面に低栄養等張液を流し続けることによって行われてもよいし、剥離されたシート状細胞培養物を低栄養等張液に浸漬することにより行われてもよい。好ましい一態様において、灌流は剥離されたシート状細胞培養物の両面、例えば上面と下面に対して行われる。また灌流は剥離されたシート状細胞培養物の上面と下面を交互に行なってもよい。 別の好ましい一態様において、灌流は、剥離されたシート状細胞培養物を低栄養等張液に浸漬させることにより行われる。シート状細胞培養物の低栄養等張液への浸漬は、剥離されたシート状細胞培養物を低栄養等張液中に導入することにより実施してもよいし、剥離されたシート状細胞培養物が入っている容器に低栄養等張液を入れることにより実施してもよい。シート状細胞培養物を直接操作することによる撚れや破損などのリスクを低減するという観点から、灌流は、好ましくは剥離されたシート状細胞培養物が入っている容器に低栄養等張液を入れてシート状細胞培養物を浸漬させることにより実施する。
【0063】
剥離されたシート状細胞培養物が入っている容器に低栄養等張液を入れることにより、シート状細胞培養物を低栄養等張液に浸漬させる場合、好ましくはシート状細胞培養物を形成した培養容器に低栄養等張液を入れる。すなわちシート状細胞培養物を培養容器中の培養基材上で形成後、該シート状細胞培養物を剥離し、その後剥離されたシート状細胞培養物を移動することなく、前記培養容器中に低栄養等張液を入れる。シート状細胞培養物の培養基材からの剥離を液体中で実施した場合、好ましくは剥離に用いた液体を除去した後、低栄養等張液を入れる。
【0064】
本開示の灌流方法の一態様において、上記（Ａ）に続いて、任意に以下の工程（Ｂ）を含む：
（Ｂ）低栄養等張液を除去し、新たな低栄養等張液を入れて再度シート状細胞培養物を浸漬させること。
低栄養等張液への浸漬は、複数回行ってよい。複数回行う場合、例えば複数の低栄養等張液入り容器に、シート状細胞培養物を順番に導入することにより行ってもよいし、シート状細胞培養物の入った容器に低栄養等張液を入れて浸漬した後、低栄養等張液を除去し、新たな低栄養等張液を入れることを複数回繰り返してもよい。
工程（Ｂ）は、少なくとも１回行われるが、複数回繰り返してよく、例えば１回、２回、３回、４回、５回、６回繰り返されてよい。好ましい一態様において、再浸漬は３回行われる。
（Ｂ）低栄養等張液を除去し、新たな低栄養等張液を入れて再度シート状細胞培養物を浸漬させること。
低栄養等張液への浸漬は、複数回行ってよい。複数回行う場合、例えば複数の低栄養等張液入り容器に、シート状細胞培養物を順番に導入することにより行ってもよいし、シート状細胞培養物の入った容器に低栄養等張液を入れて浸漬した後、低栄養等張液を除去し、新たな低栄養等張液を入れることを複数回繰り返してもよい。
工程（Ｂ）は、少なくとも１回行われるが、複数回繰り返してよく、例えば１回、２回、３回、４回、５回、６回繰り返されてよい。好ましい一態様において、再浸漬は３回行われる。
【0065】
一般にシート状細胞培養物は、培養基材上で形成された後、細胞間接着力が強く作用することにより収縮力が生じる。かかる収縮力が培養基材とシート状細胞培養物との間の接着力を上回った場合、シート状細胞培養物は自然に剥離することとなる。本発明者らにより、かかる収縮力は、シート形成開始から約１２時間程度までの間は強く作用していることがわかっている。したがって、シート形成開始後１２時間までにシート状細胞培養物を培養基材から剥離した場合は、強い収縮力が作用し、シート状細胞培養物の面積は小さくなる（すなわち、シート状細胞培養物が収縮する）。また、シート形成開始後１２時間以降に剥離した場合でも、収縮力の作用は弱くなるためシート状細胞培養物の面積の変化はシート形成開始１２時間までと比較すると大きくはないが、やはりシート状細胞培養物はある程度収縮する。かかる収縮によりシート状細胞培養物は撚れや縮みを生じる。本開示の灌流方法により、かかる収縮力により生じる撚れや縮み、およびその結果生じる癒着などを抑制することができる。したがって本開示の灌流方法は、好ましい一態様において、シート形成開始１２時間までに実施される。別の好ましい一態様において、本開示の灌流方法はシート状細胞培養物の培養基材からの剥離直後から剥離後６時間までの間に行われる。
【0066】
本開示の灌流方法の一態様において、任意にさらに以下の工程（Ｃ）を含んでもよい：
（Ｃ）シート状細胞培養物を伸展させること。
工程（Ｃ）は、剥離や液体の除去の工程中に撚れたり折れ曲がったりしたシート状細胞培養物を伸展させる工程を意味する。伸展工程（Ｃ）は、灌流工程（Ａ）または再灌流工程（Ｂ）の前、灌流工程（Ａ）または再灌流工程（Ｂ）の後あるいは灌流工程（Ａ）と再灌流工程（Ｂ）の間または再灌流工程（Ｂ）が複数回ある場合は各工程（Ｂ）の間に行うことができる。伸展工程（Ｃ）は低栄養等張液中で行ってもよいし、低栄養等張液を除去した後に行い、その後低栄養等張液を再度加えてもよい。低栄養等張液除去後に伸展工程（Ｃ）を行う場合、例えば低栄養等張液をシート状細胞培養物が重なっている部分に滴下し、必要に応じて振動させる、などの手法により行うことができる。低栄養等張液中で伸展工程（Ｃ）を行う場合、低栄養等張液中に浸漬したシート状細胞培養物を、容器ごと振盪させる、などの手法により行うことができる。簡便性などの観点から、伸展工程（Ｃ）は、好ましくはシート状細胞培養物が浸漬された低栄養等張液入りの容器を振盪することにより行われる。
伸展工程は（Ｃ）は、常温下で行ってもよいし、冷蔵条件下、例えば０～１０℃または２～８℃など、で行ってもよい。また伸展に低栄養等張液を用いる場合、かかる低栄養等張液もまた、常温であってもよいし冷蔵条件、例えば０～１０℃または２℃～８℃であってもよい。
（Ｃ）シート状細胞培養物を伸展させること。
工程（Ｃ）は、剥離や液体の除去の工程中に撚れたり折れ曲がったりしたシート状細胞培養物を伸展させる工程を意味する。伸展工程（Ｃ）は、灌流工程（Ａ）または再灌流工程（Ｂ）の前、灌流工程（Ａ）または再灌流工程（Ｂ）の後あるいは灌流工程（Ａ）と再灌流工程（Ｂ）の間または再灌流工程（Ｂ）が複数回ある場合は各工程（Ｂ）の間に行うことができる。伸展工程（Ｃ）は低栄養等張液中で行ってもよいし、低栄養等張液を除去した後に行い、その後低栄養等張液を再度加えてもよい。低栄養等張液除去後に伸展工程（Ｃ）を行う場合、例えば低栄養等張液をシート状細胞培養物が重なっている部分に滴下し、必要に応じて振動させる、などの手法により行うことができる。低栄養等張液中で伸展工程（Ｃ）を行う場合、低栄養等張液中に浸漬したシート状細胞培養物を、容器ごと振盪させる、などの手法により行うことができる。簡便性などの観点から、伸展工程（Ｃ）は、好ましくはシート状細胞培養物が浸漬された低栄養等張液入りの容器を振盪することにより行われる。
伸展工程は（Ｃ）は、常温下で行ってもよいし、冷蔵条件下、例えば０～１０℃または２～８℃など、で行ってもよい。また伸展に低栄養等張液を用いる場合、かかる低栄養等張液もまた、常温であってもよいし冷蔵条件、例えば０～１０℃または２℃～８℃であってもよい。
【0067】
本開示の灌流方法の一態様において、任意にさらに以下の工程（Ｄ）を含んでもよい：
（Ｄ）シート状細胞培養物を低栄養等張液に浸漬させ、そのまま保存すること。
工程（Ｄ）は、工程（Ａ）の後であればいつ行ってもよいが、好ましくは他の工程が終わった後、最後に行われる。
（Ｄ）シート状細胞培養物を低栄養等張液に浸漬させ、そのまま保存すること。
工程（Ｄ）は、工程（Ａ）の後であればいつ行ってもよいが、好ましくは他の工程が終わった後、最後に行われる。
【0068】
本開示の灌流方法に供されるシート状細胞培養物に用いられる細胞としては、上述した細胞を用いることができる。好ましい一態様においてシート状細胞培養物は、筋芽細胞を含む。別の好ましい一態様において、シート状細胞培養物は、心筋細胞を含む。より好ましい一態様において、シート状細胞培養物に含まれる心筋細胞は、ｉＰＳ細胞由来の心筋細胞である。
【0069】
本開示の灌流方法に用いられる低栄養等張液としては、上述した低栄養等張液を用いることができる。好ましい一態様において、低栄養等張液は、好ましくは緩衝液、より好ましくはハンクス平衡塩液（ＨＢＳＳ）であり、特に好ましくはＨＢＳＳ（＋）である。
また、シート状細胞培養物を構成する細胞の生理活動を低下させるという観点から、低栄養等張液は、好ましくは室温以下である。また、細胞へのダメージを極力小さくするという観点から、低栄養等張液は、好ましくは０℃以上である。好ましい一態様において、低栄養等張液は、０～１０℃であり、より好ましくは２～８℃である。
本開示の一側面において、工程（Ａ）、（Ｂ）、（Ｄ）のみから構成されてもよい。
また、シート状細胞培養物を構成する細胞の生理活動を低下させるという観点から、低栄養等張液は、好ましくは室温以下である。また、細胞へのダメージを極力小さくするという観点から、低栄養等張液は、好ましくは０℃以上である。好ましい一態様において、低栄養等張液は、０～１０℃であり、より好ましくは２～８℃である。
本開示の一側面において、工程（Ａ）、（Ｂ）、（Ｄ）のみから構成されてもよい。
【0070】
本開示の一側面において、培養基材から剥離されたシート状細胞培養物を保存する際に縮みを抑制する方法（以下、本開示の保存方法と記載）が提供される。
本開示のシート状細胞培養物の保存方法は以下の工程を含む：
（ｉ）低栄養等張液に、剥離されたシート状細胞培養物を浸漬すること。 浸漬工程は（ｉ）は、常温下で行ってもよいし、冷蔵条件下、例えば０～１０℃または２～８℃など、で行ってもよい。また浸漬に用いる低栄養等張液の温度は、シート状細胞培養物を構成する細胞にダメージがない限り特に制限されず、常温であってもよいし冷蔵条件、例えば０～１０℃または２～８℃、などであってもよい。好ましい一態様において、低栄養等張液は、浸漬開始時において冷蔵条件、例えば０～１０℃または２～８℃、である。別の好ましい一態様において、低栄養等張液は、浸漬開始時において常温である。また、保存の間に低栄養等張液の温度が変化してもよい。
本開示のシート状細胞培養物の保存方法は以下の工程を含む：
（ｉ）低栄養等張液に、剥離されたシート状細胞培養物を浸漬すること。 浸漬工程は（ｉ）は、常温下で行ってもよいし、冷蔵条件下、例えば０～１０℃または２～８℃など、で行ってもよい。また浸漬に用いる低栄養等張液の温度は、シート状細胞培養物を構成する細胞にダメージがない限り特に制限されず、常温であってもよいし冷蔵条件、例えば０～１０℃または２～８℃、などであってもよい。好ましい一態様において、低栄養等張液は、浸漬開始時において冷蔵条件、例えば０～１０℃または２～８℃、である。別の好ましい一態様において、低栄養等張液は、浸漬開始時において常温である。また、保存の間に低栄養等張液の温度が変化してもよい。
【0071】
シート状細胞培養物を再生医療等に用いる場合は、時間の経過とともにシート状細胞培養物の品質が低下するため、シート状細胞培養物を培養基材から剥離した後速やかに使用することが好ましいが、実際には適用までにある程度の時間保存しておく必要がある。本開示の保存方法は、剥離後のシート状細胞培養物を低栄養等張液に浸漬することにより、シート状細胞培養物の品質を低下させずにある程度の時間保存することを可能にするものである。品質低下の要因としては、シート状細胞培養物を構成する細胞の活性の低下やシート状細胞培養物の物理的特性の変化などが挙げられる。例えば、シート状細胞培養物は基材から剥離後、構成細胞同士の細胞間接着力により引っ張られ、縮みが生じやすい。本開示の保存方法によれば、低栄養等張液に浸漬したまま保存することで細胞の生理活動が適度に低下し、細胞間接着力が弱まるため、縮みを低減させることができる。また、低栄養等張液中に浸漬することにより、仮に撚れや折れ曲がりなどによりシート状細胞培養物に重なりが生じても、当該箇所が癒着、ひっつきを起こすのを妨げることができるため、高品質のシート状細胞培養物を提供することができる。
【0072】
本開示において「浸漬」とは、シート状細胞培養物が、低栄養等張液に浸かっている状態をいう。すなわち、シート状細胞培養物が液体に覆われた状態であれば「浸漬」された状態であり、静置状態でシートの一部が液体の外部に露出したとしとしても、例えば振盪により液体に覆われた状態であれば、一部が露出した状態もまた「浸漬」された状態である。
【0073】
シート状細胞培養物の浸漬は、剥離されたシート状細胞培養物を保存用容器に入った低栄養等張液中に導入することにより実施してもよいし、剥離されたシート状細胞培養物が入っている保存用容器に低栄養等張液を入れることにより実施してもよいが、シート状細胞培養物を直接操作することによる撚れや破損などのリスクを低減するという観点から、好ましくは剥離されたシート状細胞培養物が入っている保存用容器に低栄養等張液を入れることにより実施する。
【0074】
保存用容器は、培養容器とは別に保存のために用意された容器であってもよいし、培養容器をそのまま保存用として用いてもよい。シート状細胞培養物を直接操作することによる撚れや破損などのリスクを低減するという観点から、好ましくは培養容器をそのまま保存用として用いる。すなわちシート状細胞培養物を培養容器中の培養基材上で形成後、該シート状細胞培養物を剥離および洗浄し、その後剥離されたシート状細胞培養物を移動することなく、前記培養容器中に低栄養等張液を入れる。
【0075】
本開示の保存方法の一態様において、任意にさらに以下の工程（ｉｉ）を含んでもよい：
（ｉｉ）シート状細胞培養物を伸展させること。
工程（ｉｉ）は、剥離や洗浄の工程中に撚れたり折れ曲がったりしたシート状細胞培養物を伸展させる工程を意味する。伸展工程（ｉｉ）は、浸漬工程（ｉ）の前、浸漬工程（ｉ）の後または浸漬中に行うことができる。伸展工程（ｉｉ）は低栄養等張液中で行ってもよいし、低栄養等張液を除去した後に行い、その後低栄養等張液を再度加えてもよい。低栄養等張液除去後に伸展工程を行う場合、例えば低栄養等張液をシート状細胞培養物が重なっている部分に滴下し、必要に応じて振盪させる、などの手法により行うことができる。低栄養等張液中で伸展工程（ｉｉ）を行う場合、低栄養等張液中に浸漬したシート状細胞培養物を、容器ごと振盪させる、などの手法により行うことができる。簡便性などの観点から、伸展工程（ｉｉ）は、好ましくはシート状細胞培養物が浸漬された低栄養等張液入りの容器を振盪することにより行われる。
伸展工程は（ｉｉ）は、常温下で行ってもよいし、冷蔵条件下、例えば０～１０℃または２～８℃など、で行ってもよい。また伸展に低栄養等張液を用いる場合、かかる低栄養等張液もまた、常温であってもよいし冷蔵条件、例えば０～１０℃または２～８℃であってもよい。好ましくは常温下である。
（ｉｉ）シート状細胞培養物を伸展させること。
工程（ｉｉ）は、剥離や洗浄の工程中に撚れたり折れ曲がったりしたシート状細胞培養物を伸展させる工程を意味する。伸展工程（ｉｉ）は、浸漬工程（ｉ）の前、浸漬工程（ｉ）の後または浸漬中に行うことができる。伸展工程（ｉｉ）は低栄養等張液中で行ってもよいし、低栄養等張液を除去した後に行い、その後低栄養等張液を再度加えてもよい。低栄養等張液除去後に伸展工程を行う場合、例えば低栄養等張液をシート状細胞培養物が重なっている部分に滴下し、必要に応じて振盪させる、などの手法により行うことができる。低栄養等張液中で伸展工程（ｉｉ）を行う場合、低栄養等張液中に浸漬したシート状細胞培養物を、容器ごと振盪させる、などの手法により行うことができる。簡便性などの観点から、伸展工程（ｉｉ）は、好ましくはシート状細胞培養物が浸漬された低栄養等張液入りの容器を振盪することにより行われる。
伸展工程は（ｉｉ）は、常温下で行ってもよいし、冷蔵条件下、例えば０～１０℃または２～８℃など、で行ってもよい。また伸展に低栄養等張液を用いる場合、かかる低栄養等張液もまた、常温であってもよいし冷蔵条件、例えば０～１０℃または２～８℃であってもよい。好ましくは常温下である。
【0076】
本開示の保存方法で保存されるシート状細胞培養物に用いられる細胞としては、上述した細胞を用いることができる。好ましい一態様においてシート状細胞培養物は、筋芽細胞を含む。別の好ましい一態様において、シート状細胞培養物は、心筋細胞を含む。より好ましい一態様において、シート状細胞培養物に含まれる心筋細胞は、ｉＰＳ細胞由来の心筋細胞である。
【0077】
本開示の保存方法に用いられる低栄養等張液としては、上述した低栄養等張液を用いることができる。好ましい一態様において、低栄養等張液は、ハンクス平衡塩液（ＨＢＳＳ）であり、特に好ましくはＨＢＳＳ（＋）である。
本開示の保存方法において、保存温度は、シート状細胞培養物を構成する細胞にダメージがない限り特に制限されないが、保存後のシート状細胞培養物の使用時の簡便性の観点から、好ましくは冷凍条件（低栄養等張液が凍結する温度）ではない。保存操作そのものの簡便性の観点から、好ましくは常温である。
本開示の保存方法において、保存温度は、シート状細胞培養物を構成する細胞にダメージがない限り特に制限されないが、保存後のシート状細胞培養物の使用時の簡便性の観点から、好ましくは冷凍条件（低栄養等張液が凍結する温度）ではない。保存操作そのものの簡便性の観点から、好ましくは常温である。
【0078】
＜２＞本開示の製造方法
本開示の一側面において、上記本開示の剥離方法、灌流方法および保存方法をすべて含むシート状細胞培養物の製造方法もまた提供される。
本開示のシート状細胞培養物の製造方法は以下の工程（Ｉ）～（Ｖ）を含む：
（Ｉ）培養基材上にシート状細胞培養物を構成する細胞を、実質的に増殖することなくシート状細胞培養物を形成し得る密度で播種すること；
（ＩＩ）（Ｉ）で播種された細胞を細胞培養液中でシート化し、シート状細胞培養物を形成すること；
（ＩＩＩ）（ＩＩ）で得られたシート状細胞培養物を、低栄養等張液に浸漬し、剥離すること
（ＩＶ）剥離されたシート状細胞培養物が浸漬されている低栄養等張液を除去し、新たな低栄養等張液を入れること
（Ｖ）低栄養等張液浸漬されたシート状細胞培養物を保存すること
本開示の一側面において、上記本開示の剥離方法、灌流方法および保存方法をすべて含むシート状細胞培養物の製造方法もまた提供される。
本開示のシート状細胞培養物の製造方法は以下の工程（Ｉ）～（Ｖ）を含む：
（Ｉ）培養基材上にシート状細胞培養物を構成する細胞を、実質的に増殖することなくシート状細胞培養物を形成し得る密度で播種すること；
（ＩＩ）（Ｉ）で播種された細胞を細胞培養液中でシート化し、シート状細胞培養物を形成すること；
（ＩＩＩ）（ＩＩ）で得られたシート状細胞培養物を、低栄養等張液に浸漬し、剥離すること
（ＩＶ）剥離されたシート状細胞培養物が浸漬されている低栄養等張液を除去し、新たな低栄養等張液を入れること
（Ｖ）低栄養等張液浸漬されたシート状細胞培養物を保存すること
【0079】
本開示の製造方法の培養基材、細胞および低栄養等張液としては、上述したものを用いることができる。
工程（Ｉ）において、培養基材への細胞の播種は、既知の任意の手法および条件で行うことができる。培養基材への細胞の播種は、例えば、細胞を培養液に懸濁した細胞懸濁液を培養基材（培養容器）に注入することにより行ってもよい。細胞懸濁液の注入には、スポイトやピペットなど、細胞懸濁液の注入操作に適した器具を用いることができる。
工程（Ｉ）において、培養基材への細胞の播種は、既知の任意の手法および条件で行うことができる。培養基材への細胞の播種は、例えば、細胞を培養液に懸濁した細胞懸濁液を培養基材（培養容器）に注入することにより行ってもよい。細胞懸濁液の注入には、スポイトやピペットなど、細胞懸濁液の注入操作に適した器具を用いることができる。
【0080】
一態様において、播種される細胞集団には、上記シート状細胞培養物を構成する細胞から選択される１種以上の細胞が含まれ、好ましくは上記シート状細胞
培養物を形成する細胞から選択される２種以上の細胞からなる。シート状細胞培養物を形成する２種類以上の細胞のうち、最も多い細胞の含有比率（純度）は、シート状細胞培養物の形成終了時において、５０％以上、好ましくは６０％以上、より好ましくは７０％以上、さらに好ましくは７５％以上である。一態様において、本発明の製造方法は、細胞を播種する前に、細胞集団を凍結する工程および該凍結細胞集団を解凍する工程を含む。前記態様において、解凍して得られた細胞集団は、その後細胞を増殖させたうえで播種してもよいが、好ましい一態様において、凍結細胞集団を解凍する工程と工程（Ｉ）との間に細胞を増殖させる工程を含まない。かかる態様で製造されたシート状細胞培養物は、凍結細胞集団を解凍する工程と工程（Ｉ）との間に細胞を増殖させる工程を含む態様で製造されたシート状細胞培養物より、例えば、サイトカイン産生能、生着能、血管誘導能および組織再生能などの活性が高い。ここで、活性が高いとは、比較対象のシート状細胞培養物の活性を基準として、限定されずに、例えば、５％以上、１０％以上、２０％以上、３０％以上、４０％以上、５０％以上、６０％以上、７０％以上、８０％以上、９０％以上または１００％以上、活性が高いことを意味する。好ましい一態様において、本発明の骨格筋芽細胞を含むシート状細胞培養物は、骨格筋芽細胞を６０％～９９％含む。別の好ましい一態様において、本発明の心筋細胞を含むシート状細胞培養物は、５０％～７０％の心筋細胞を含む。
培養物を形成する細胞から選択される２種以上の細胞からなる。シート状細胞培養物を形成する２種類以上の細胞のうち、最も多い細胞の含有比率（純度）は、シート状細胞培養物の形成終了時において、５０％以上、好ましくは６０％以上、より好ましくは７０％以上、さらに好ましくは７５％以上である。一態様において、本発明の製造方法は、細胞を播種する前に、細胞集団を凍結する工程および該凍結細胞集団を解凍する工程を含む。前記態様において、解凍して得られた細胞集団は、その後細胞を増殖させたうえで播種してもよいが、好ましい一態様において、凍結細胞集団を解凍する工程と工程（Ｉ）との間に細胞を増殖させる工程を含まない。かかる態様で製造されたシート状細胞培養物は、凍結細胞集団を解凍する工程と工程（Ｉ）との間に細胞を増殖させる工程を含む態様で製造されたシート状細胞培養物より、例えば、サイトカイン産生能、生着能、血管誘導能および組織再生能などの活性が高い。ここで、活性が高いとは、比較対象のシート状細胞培養物の活性を基準として、限定されずに、例えば、５％以上、１０％以上、２０％以上、３０％以上、４０％以上、５０％以上、６０％以上、７０％以上、８０％以上、９０％以上または１００％以上、活性が高いことを意味する。好ましい一態様において、本発明の骨格筋芽細胞を含むシート状細胞培養物は、骨格筋芽細胞を６０％～９９％含む。別の好ましい一態様において、本発明の心筋細胞を含むシート状細胞培養物は、５０％～７０％の心筋細胞を含む。
【0081】
本発明の製造方法により製造されるシート状細胞培養物は、好ましくは心疾患の処置のために用いられるシート状細胞培養物である。したがって、本発明の好ましい一態様において、播種される細胞集団は、骨格筋芽細胞および線維芽細胞を含む。本発明の別の好ましい一態様において、播種される細胞集団は、心筋細胞および血管内皮細胞を含む。本発明の別の好ましい一態様において、播種される細胞集団は、骨格筋芽細胞、線維芽細胞および血管内皮細胞を含む。
【0082】
「実質的に増殖することなくシート状細胞培養物を形成し得る密度」とは、成長因子を実質的に含まない非増殖系の培養液で培養した場合に、シート状細胞培養物を形成することができる細胞密度を意味する。この播種密度は、成長因子を含む培養液を用いる手法におけるものよりも高いものであり、細胞がコンフルエントに達する密度以上であってもよい。かかる密度としては、これに限定するものではないが、例えば、１．０×１０５個／ｃｍ２以上である。播種密度の上限は、細胞培養物の形成が損なわれず、細胞が分化に移行しなければ特に制限されないが、例えば、３．４×１０６個／ｃｍ２未満であってもよい。一態様において、「細胞が実質的に増殖することなくシート状細胞培養物を形成し得る密度」は、細胞がコンフルエントに達する密度もしくはそれ以上、または、コンフルエント密度以上である。
【0083】
「細胞が実質的に増殖することなくシート状細胞培養物を形成し得る密度」は、ある態様では１．０×１０５～３．４×１０６個／ｃｍ２、別の態様では３．０×１０５～３．４×１０６個／ｃｍ２、さらに別の態様では３．５×１０５～３．４×１０６個／ｃｍ２、さらに別の態様では１．０×１０６～３．４×１０６個／ｃｍ２、さらに別の態様では３．０×１０５～１．７×１０６個／ｃｍ２、別の態様では３．５×１０５～１．７×１０６個／ｃｍ２、さらに別の態様では１．０×１０６～１．７×１０６個／ｃｍ２である。上記範囲は、上限が３．４×１０６個／ｃｍ２未満である限り、上限および下限の両方、または、そのいずれか一方を含んでもよい。したがって、上記密度は、例えば、３．０×１０５個／ｃｍ２以上３．４×１０６個／ｃｍ２未満（下限を含み、上限は含まない）、３．５×１０５個／ｃｍ２以上３．４×１０６個／ｃｍ２未満（下限を含み、上限は含まない）、１．０×１０６個／ｃｍ２以上３．４×１０６個／ｃｍ２未満（下限を含み、上限は含まない）、１．０×１０６個／ｃｍ２超３．４×１０６個／ｃｍ２未満（下限も上限も含まない）、１．０×１０６個／ｃｍ２超１．７×１０６個／ｃｍ２以下（下限は含まないが、上限は含む）であってもよい。
【0084】
工程（ＩＩ）において、播種した細胞をシート化するステップは、既知の任意の手法および条件で行うことができる。かかる手法の非限定例は、例えば、特許文献１、WO 2014/185517などに記載されている。細胞のシート化は、細胞同士が接着分子や、細胞外マトリックスなどの細胞間接着機構を介して互いに接着することにより達成されると考えられている。したがって、播種した細胞をシート化するステップは、例えば、細胞を、細胞間接着を形成する条件下で培養することにより達成することができる。かかる条件は、細胞間接着を形成することができればいかなるものであってもよいが、通常は一般的な細胞培養条件と同様の条件であれば細胞間接着を形成することができる。かかる条件としては、例えば、約３７℃、５％ＣＯ２での培養が挙げられる。また、培養は通常の圧力下（大気圧下、非加圧下）で行うことができる。培養は任意の大きさおよび形状の容器で行うことができる。シート状細胞培養物の大きさや形状は、培養容器の細胞付着面の大きさ・形状を調整すること、または、培養容器の細胞付着面に、所望の大きさ・形状の型枠を設置し、その内部で細胞を培養することなどにより任意に調節することができる。本開示において、播種した細胞をシート化するための培養を、「シート化培養」と称することもある。
【0085】
本開示の一態様において、播種細胞中に筋芽細胞を含む場合、細胞の培養は、所定の期間内、好ましくは、筋芽細胞が分化に移行しない期間内に行われる。したがって、この態様において、筋芽細胞は、培養期間中、未分化の状態に維持される。筋芽細胞の分化への移行は、当業者に知られた任意の方法で評価することができる。例えば、骨格筋芽細胞の場合は、ＭＨＣの発現、クレアチンキナーゼ（ＣＫ）活性、細胞の多核化、筋管の形成などを分化の指標とすることができる。培養期間は、例えば、約４８時間以内、約４０時間以内、約３６時間以内、約３０時間以内、約２６時間以内、約１２時間以内とすることができる。特定の態様において、培養期間は約２時間～約３６時間、約２時間～約３０時間、約２時間～約２６時間、約２時間～約１２時間などであってよい。
【0086】
工程（ＩＩＩ）については、上記の本開示の剥離方法を用いることができる。
工程（ＩＶ）については、上記の本開示の洗浄方法を用いることができる。
工程（Ｖ）については、上記の本開示の保存方法を用いることができる。
工程（ＶI）については、上記の本開示の振盪方法を用いることができる。
工程（ＩＶ）については、上記の本開示の洗浄方法を用いることができる。
工程（Ｖ）については、上記の本開示の保存方法を用いることができる。
工程（ＶI）については、上記の本開示の振盪方法を用いることができる。
【実施例】
【0087】
本開示を以下の例を参照してより詳細に説明するが、これは本開示の特定の具体例を示すものであり、本開示はこれらに限定されるものではない。
【0088】
＜シート状細胞培養物の製造＞
例１ 培地の切り替え
ヒト骨格筋から定法により調製した骨格筋芽細胞（線維芽細胞を含む）を用いてシート状細胞培養物を調製した。温度応答性培養皿（UpCell(R)１２穴マルチウェル、セルシード）に、２０％ヒト血清含有ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地（Thermo Fisher Scientific Inc.）に懸濁したヒト骨格筋芽細胞およびヒト線維芽細胞の細胞混合物を、３．７×１０６個／ウェルとなるように播種し、３７℃、５％ＣＯ２下で２～１２時間シート化培養を行った。シート化培養後、培養皿から培地を除去し、７００μＬの冷却したＨＢＳＳ（＋）（Thermo Fisher Scientific Inc.）を添加し、除去した。これを繰り返し１または２回目の緩衝液添加後１０分静置し、その後静かにピペッティングして培養皿からシート状細胞培養物を完全に剥離させた。
剥離したシート状細胞培養物に撚れや重なりがあった場合、振盪操作を行い伸展して撚れや重なりを除去した。その結果、縮みや癒着がないシート状細胞培養物が得られた。培地を除去してＨＢＳＳ（＋）と置換することおよび振盪操作により、新たな細胞間接着の進行が抑制できた。培地を除去しなかった場合やシート状細胞培養物の撚れや重なりをそのままにした場合（振盪操作がない場合）、シート状細胞培養物に撚れや縮み、それに起因する癒着やひっつきが発生した。結果を図１に示した。
例１ 培地の切り替え
ヒト骨格筋から定法により調製した骨格筋芽細胞（線維芽細胞を含む）を用いてシート状細胞培養物を調製した。温度応答性培養皿（UpCell(R)１２穴マルチウェル、セルシード）に、２０％ヒト血清含有ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地（Thermo Fisher Scientific Inc.）に懸濁したヒト骨格筋芽細胞およびヒト線維芽細胞の細胞混合物を、３．７×１０６個／ウェルとなるように播種し、３７℃、５％ＣＯ２下で２～１２時間シート化培養を行った。シート化培養後、培養皿から培地を除去し、７００μＬの冷却したＨＢＳＳ（＋）（Thermo Fisher Scientific Inc.）を添加し、除去した。これを繰り返し１または２回目の緩衝液添加後１０分静置し、その後静かにピペッティングして培養皿からシート状細胞培養物を完全に剥離させた。
剥離したシート状細胞培養物に撚れや重なりがあった場合、振盪操作を行い伸展して撚れや重なりを除去した。その結果、縮みや癒着がないシート状細胞培養物が得られた。培地を除去してＨＢＳＳ（＋）と置換することおよび振盪操作により、新たな細胞間接着の進行が抑制できた。培地を除去しなかった場合やシート状細胞培養物の撚れや重なりをそのままにした場合（振盪操作がない場合）、シート状細胞培養物に撚れや縮み、それに起因する癒着やひっつきが発生した。結果を図１に示した。
【0089】
例２ 両面の灌流
例１で得られた剥離したシート状細胞培養物を含む培養皿からＨＢＳＳ（＋）を除去し、新たに常温のＨＢＳＳ（＋）を加えてシート状細胞培養物を浸漬させることにより、両面（上面および下面）を灌流した。かかる除去と添加の工程をもう１回行った。ＨＢＳＳ（＋）を除去した後、新たなＨＢＳＳ（＋）を１ｍＬ加え（合計３回除去と添加を繰り返し）た後、室温で静置した。
剥離したシート状細胞培養物に撚れや重なりがあった場合、振盪操作を行い伸展して撚れや重なりを除去した。その結果、縮みや癒着がないシート状細胞培養物が得られた。シート状細胞培養物の両面を灌流することにより、新たな細胞間接着の進行が抑制できた。シート状細胞培養物の撚れや重なりをそのままにした場合（灌流操作がない場合）、シート状細胞培養物に縮みや癒着が発生した。結果を図２に示した。
例１で得られた剥離したシート状細胞培養物を含む培養皿からＨＢＳＳ（＋）を除去し、新たに常温のＨＢＳＳ（＋）を加えてシート状細胞培養物を浸漬させることにより、両面（上面および下面）を灌流した。かかる除去と添加の工程をもう１回行った。ＨＢＳＳ（＋）を除去した後、新たなＨＢＳＳ（＋）を１ｍＬ加え（合計３回除去と添加を繰り返し）た後、室温で静置した。
剥離したシート状細胞培養物に撚れや重なりがあった場合、振盪操作を行い伸展して撚れや重なりを除去した。その結果、縮みや癒着がないシート状細胞培養物が得られた。シート状細胞培養物の両面を灌流することにより、新たな細胞間接着の進行が抑制できた。シート状細胞培養物の撚れや重なりをそのままにした場合（灌流操作がない場合）、シート状細胞培養物に縮みや癒着が発生した。結果を図２に示した。
【0090】
例３ シート状細胞培養物の保存
例２で得られたシート状細胞培養物を引き続き常温のＨＢＳＳ（＋）中で１０時間～５日間シート状細胞培養物を保存した。培養皿中でシート状細胞培養物が十分に浸漬する程度のＨＢＳＳ（＋）を使用した。
保存したシート状細胞培養物に撚れや重なりがあった場合、振盪操作を行い伸展して撚れや重なりを除去した。その結果、縮みや癒着がないシート状細胞培養物が得られた。シート状細胞培養物を常温で保存することにより、新たな細胞間接着の進行が抑制できた。シート状細胞培養物の撚れや重なりをそのままにした場合（振盪操作がない場合）、シート状細胞培養物に縮みや癒着が発生した。結果を図３に示した。
例２で得られたシート状細胞培養物を引き続き常温のＨＢＳＳ（＋）中で１０時間～５日間シート状細胞培養物を保存した。培養皿中でシート状細胞培養物が十分に浸漬する程度のＨＢＳＳ（＋）を使用した。
保存したシート状細胞培養物に撚れや重なりがあった場合、振盪操作を行い伸展して撚れや重なりを除去した。その結果、縮みや癒着がないシート状細胞培養物が得られた。シート状細胞培養物を常温で保存することにより、新たな細胞間接着の進行が抑制できた。シート状細胞培養物の撚れや重なりをそのままにした場合（振盪操作がない場合）、シート状細胞培養物に縮みや癒着が発生した。結果を図３に示した。
【図1】
【図2】
【図3】
