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特許7636022低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤、移植用細胞保護剤、及び生体保存剤
(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B2)
(11)【特許番号】
(24)【登録日】2025-02-17
(45)【発行日】2025-02-26
(54)【発明の名称】低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤、移植用細胞保護剤、及び生体保存剤
(51)【国際特許分類】
A61K 31/426 20060101AFI20250218BHJP
A61P 9/00 20060101ALI20250218BHJP
A61P 9/10 20060101ALI20250218BHJP
【ＦＩ】
A61K31/426
A61P9/00
A61P9/10
【請求項の数】
4
(21)【出願番号】P 2023117860
(22)【出願日】2023-07-19
(62)【分割の表示】P 2020506669の分割
【原出願日】2019-03-15
(65)【公開番号】P2023133390
(43)【公開日】2023-09-22
【審査請求日】2023-08-16
(31)【優先権主張番号】P 2018049761
(32)【優先日】2018-03-16
(33)【優先権主張国・地域又は機関】JP
(73)【特許権者】
【識別番号】511032291
【氏名又は名称】脳科学香料株式会社
(74)【代理人】
【識別番号】100136629
【弁理士】
【氏名又は名称】鎌田 光宜
(74)【代理人】
【識別番号】100080791
【弁理士】
【氏名又は名称】高島 一
(74)【代理人】
【識別番号】100125070
【弁理士】
【氏名又は名称】土井 京子
(74)【代理人】
【識別番号】100121212
【弁理士】
【氏名又は名称】田村 弥栄子
(74)【代理人】
【識別番号】100174296
【弁理士】
【氏名又は名称】當麻 博文
(74)【代理人】
【識別番号】100137729
【弁理士】
【氏名又は名称】赤井 厚子
(74)【代理人】
【識別番号】100151301
【弁理士】
【氏名又は名称】戸崎 富哉
(72)【発明者】
【氏名】小早川 高
(72)【発明者】
【氏名】小早川 令子
【審査官】池田 百合香
(56)【参考文献】
【文献】国際公開第２００８／０７０７４１（ＷＯ，Ａ１）
【文献】国際公開第９６／０１４８４２（ＷＯ，Ａ１）
【文献】桂巻正 ほか，札幌医学雑誌，2003年，Vol.72，p.31-36
(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)
Ａ６１Ｋ ３１／００ ～ ３３／４４
ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩＩ）
ＣＡｐｌｕｓ／ＲＥＧＩＳＴＲＹ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＥＭＢＡＳＥ／ＢＩＯＳＩＳ（ＳＴＮ）
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
式（Ｉ）【化1】
（式中、
環Ａは、２－チアゾリンであり；
Ｒ１、Ｒ２、Ｒ３及びＲ４は、それぞれ独立して、水素原子、Ｃ１－６アルキル基、Ｃ １－６アルキルチオ基、又はＣ２－６アルケニルチオ基であり；
ｎは０である）
で示される複素環化合物又はその塩を有効成分として含有する、虚血再灌流障害の予防又は治療剤。
【請求項2】
式（Ｉ）で示される複素環化合物が
２－メチル－２－チアゾリン、
２－（メチルチオ）－２－チアゾリン、
２－ｓｅｃ－ブチル－２－チアゾリン、
４－エチル－２－メチル－２－チアゾリン、
２－（アリルチオ）－２－チアゾリン、
２，５－ジメチル－２－チアゾリン、及び
２－エチル－２－チアゾリン
から選択される、請求項１に記載の剤。
【請求項3】
式（Ｉ）で示される複素環化合物が２－メチル－２－チアゾリンである、請求項１又は２に記載の剤。
【請求項4】
鼻腔投与用の請求項１～３のいずれか１項に記載の剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤、移植用細胞保護剤、及び生体保存剤に関する。
【背景技術】
【0002】
ヒトや動物は進化の過程で危機に瀕した際に生存確率を高める能力を獲得してきたと考えられる。雪山などで遭難したヒトが低体温状態で発見され心停止後数時間以上経過したにもかかわらず回復したという例が数多く知られている。このような例では潜在的な内在性の個体保護作用が何らかの刺激により誘発された可能性が考えられる。クマやリスなどの哺乳類の一部は冬眠する能力を持っている。これらの動物では冬眠時には体温や酸素消費量が低下した状態で生命を維持することができる。心停止により酸素供給が停止すると脳などの酸素要求性の高い組織の細胞が不可逆的なダメージを受ける。一方で、心停止後の血流再開は活性酸素などの発生を引き起こし、組織に大きなダメージを与える。このような低酸素障害や虚血再灌流障害は、人為的に個体を低体温に誘導する低体温療法により緩和される。また、冬眠状態の動物では炎症や虚血再灌流障害などに対する抵抗性も上昇することが知られる（非特許文献１－３）。
【0003】
恐怖は危険が身に迫っていることを脳が判断した際に誘発される情動で、逃避行動や天敵に発見される確率を低下させるFreezing行動(すくみ行動)などを引き起こすと共に、さまざまな種類の生理応答を誘発する。恐怖症の患者が恐怖刺激を提示されて失神する際には心拍数が50%近く低下する(非特許文献４)。このように恐怖情動はヒトにおいても強力な生理応答の誘発と結びついている。危機に陥ったヒトや動物が低体温や低代謝に加え抗炎症や免疫制御応答を誘発することで、組織や個体の保護作用を高めることができれば、生存確率を高めることが可能となる。しかし、恐怖情動性や潜在的な内在性の個体保護作用を誘発する技術は開発されていない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0004】
【文献】日本特許第５３５０４９６号明細書
【非特許文献】
【0005】
【文献】N Engl J Med 346:612-613, 2002
【文献】Lancet Neurol 2: 410-416, 2003
【文献】Nat Rev Neurosci 13: 267-278, 2012
【文献】Psychosom Med 23: 493-507, 1961
【文献】Nature 450: 503-508, 2007
【文献】Cell 163: 1153-1164, 2015
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0006】
本発明は、恐怖情動性や潜在的な内在性の個体保護作用を誘発する技術を提供し、低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤、移植用細胞保護剤、及び生体保存剤を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【0007】
恐怖情動は先天的と後天的なメカニズムで制御される。本発明者らは、鼻腔内で先天的と後天的な匂い情報が分離した神経回路により脳へ伝達され行動を制御することを解明した(非特許文献５)。この発見により、匂いに対する先天的な行動制御を担う神経回路の存在が証明され、その結果、匂いに対する行動は後天的な学習や経験により決定されるという従来の常識は覆された。匂いに対する応答が先天的に制御されるのであれば、この遺伝的なメカニズムに働きかける匂い分子を開発することで、行動を望ましく制御する技術が開発できる可能性がある。実際に本発明者らは、極めて強力な先天的恐怖情動を誘発する人工匂い分子である「チアゾリン類恐怖臭: thiazoline-related fear odors(tFOs)」の開発に世界で初めて成功した(特許文献１、非特許文献６)。tFOsの開発により、これまで解明が困難であった先天的な恐怖情動の制御メカニズムや、先天的恐怖情動により誘発される生理応答の詳細な解明が可能となった。
【0008】
嗅覚による先天的と後天的な恐怖刺激は共に同等レベルのFreezing行動を誘発した。しかし、生理応答を指標にすると、先天的な恐怖刺激のみが体温や心拍数の低下を誘発することが明らかになった。さらに、本発明の下記一般式で示される先天的恐怖や潜在的な内在性の個体保護作用の誘発に関与する化合物群（複素環化合物及びイソチオシアネート化合物）を嗅がせる、或いは、腹腔内に投与することで、低酸素障害や虚血再灌流障害や炎症が抑制できることが明らかになった。一方で、本発明者らは、恐怖情動性や潜在的な内在性の個体保護作用を誘発する化合物はTRPA1(transient receptor potential ankyrin 1)を活性化する性質があり、また、TRPA1ノックアウトマウスでは恐怖情動性や潜在的な内在性の個体保護作用が部分的に抑制されることを解明した。これらの結果は、恐怖情動性や潜在的な内在性の個体保護作用の一部がTRPA1遺伝子を介して制御されることを示す。TRPA1遺伝子は本発明の技術による低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤と移植用細胞保護剤を利用する対象となるヒトや家畜などの哺乳類から鳥類、魚類、昆虫に至るまで広範な生物で存在する。
【0009】
すなわち、本発明は以下に関する。
［１］ 式（Ｉ）
［１］ 式（Ｉ）
【0010】
【化1】
【0011】
（式中、
環Ａは、窒素原子、酸化されていてもよい硫黄原子及び酸素原子から選択される１又は２個のヘテロ原子を含む５から７員の複素環であり；
Ｒ１、Ｒ２、Ｒ３及びＲ４は、それぞれ独立して、水素原子、Ｃ１－６アルキル基、ハロゲン原子、アミノ基、－ＳＨ、Ｃ１－６アルキルチオ基、Ｃ２－６アルケニルチオ基、Ｃ１－６アルキル－カルボニル基、ホルミル基、Ｃ６－１０アリール基、Ｃ１－６アルコキシカルボニル基、５又は６員ヘテロアリール基、又はオキソ基であり；
Ｒ１及びＲ２は、互いに結合して、置換されていてもよい５又は６員環を形成してもよく；
ｎは０、１、又は２である）
で示される複素環化合物又はその塩、及び
式（ＩＩ）
Ｓ＝Ｃ＝Ｎ－Ｒ５ （ＩＩ）
（式中、Ｒ５は、Ｃ１－６アルキル基、Ｃ１－６ハロアルキル基、Ｃ２－６アルケニル基、Ｃ６－１０アリール基、又は５又は６員ヘテロアリール基である）
で示されるイソチオシアネート化合物から選択される少なくとも１種を有効成分として含有する、低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤、移植用細胞保護剤、又は生体保存剤。
［２］ 環Ａが、チアゾリン、チアゾール、チアゾリジン、チオモルホリン、チオフェン、ピロール、モルホリン、アゼパン、ピリジン、ピラジン、フラン、２，３－ジヒドロ－４Ｈ－１，４－チアジン、又はイミダゾールである、［１］に記載の剤。
［３］ 有効成分が式（Ｉ）で示される複素環化合物又はその塩である、［１］又は［２］に記載の剤。
［４］ 有効成分が式（ＩＩ）で示されるイソチオシアネート化合物である、［１］に記載の剤。
［５］ 低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤である、［１］～［４］のいずれか１項に記載の剤。
［６］ 移植用細胞保護剤である、［１］～［４］のいずれか１項に記載の剤。
［７］ 生体保存剤である、［１］～［４］のいずれか１項に記載の剤。
［８］ 鼻腔投与用の［１］～［７］のいずれか１項に記載の剤。
［９］ TRPA1作動薬を有効成分として含有する低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤。
［１０］ TRPA1作動薬を有効成分として含有する移植用細胞保護剤。
［１１］ TRPA1作動薬を有効成分として含有する生体保存剤。
［１２］ 鼻腔投与用の［９］～［１１］のいずれか１項に記載の剤。
［１３］ 低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療に使用するための、前記式（Ｉ）で示される複素環化合物又はその塩、及び前記式（ＩＩ）で示されるイソチオシアネート化合物から選択される少なくとも１種の化合物。
［１４］ 前記式（Ｉ）で示される複素環化合物又はその塩、及び前記式（ＩＩ）で示されるイソチオシアネート化合物から選択される少なくとも１種の化合物の移植用細胞保護剤又は生体保存剤としての使用。
［１５］ 低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療に使用するための、TRPA1作動薬。
［１６］ TRPA1作動薬の移植用細胞保護剤又は生体保存剤としての使用。
［１７］ 低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤、移植用細胞保護剤、又は生体保存剤を製造するための、前記式（Ｉ）で示される複素環化合物又はその塩、及び前記式（ＩＩ）で示されるイソチオシアネート化合物から選択される少なくとも１種の化合物の使用。
［１８］ 低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤、移植用細胞保護剤、又は生体保存剤を製造するための、TRPA1作動薬の使用。
［１９］ 有効量の、前記式（Ｉ）で示される複素環化合物又はその塩、及び前記式（ＩＩ）で示されるイソチオシアネート化合物から選択される少なくとも１種の化合物を哺乳動物に投与することを含む、哺乳動物における低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療方法。
［２０］ 移植用細胞を、前記式（Ｉ）で示される複素環化合物又はその塩、及び前記式（ＩＩ）で示されるイソチオシアネート化合物から選択される少なくとも１種の化合物と接触させることを含む、移植用細胞の保護方法。
［２１］ 生体を、前記式（Ｉ）で示される複素環化合物又はその塩、及び前記式（ＩＩ）で示されるイソチオシアネート化合物から選択される少なくとも１種の化合物と接触させることを含む、生体の保存方法。
［２２］ 有効量のTRPA1作動薬を哺乳動物に投与することを含む、哺乳動物における低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療方法。
［２３］ 移植用細胞を、TRPA1作動薬と接触させることを含む、移植用細胞の保護方法。
［２４］ 生体を、TRPA1作動薬と接触させることを含む、生体の保存方法。
環Ａは、窒素原子、酸化されていてもよい硫黄原子及び酸素原子から選択される１又は２個のヘテロ原子を含む５から７員の複素環であり；
Ｒ１、Ｒ２、Ｒ３及びＲ４は、それぞれ独立して、水素原子、Ｃ１－６アルキル基、ハロゲン原子、アミノ基、－ＳＨ、Ｃ１－６アルキルチオ基、Ｃ２－６アルケニルチオ基、Ｃ１－６アルキル－カルボニル基、ホルミル基、Ｃ６－１０アリール基、Ｃ１－６アルコキシカルボニル基、５又は６員ヘテロアリール基、又はオキソ基であり；
Ｒ１及びＲ２は、互いに結合して、置換されていてもよい５又は６員環を形成してもよく；
ｎは０、１、又は２である）
で示される複素環化合物又はその塩、及び
式（ＩＩ）
Ｓ＝Ｃ＝Ｎ－Ｒ５ （ＩＩ）
（式中、Ｒ５は、Ｃ１－６アルキル基、Ｃ１－６ハロアルキル基、Ｃ２－６アルケニル基、Ｃ６－１０アリール基、又は５又は６員ヘテロアリール基である）
で示されるイソチオシアネート化合物から選択される少なくとも１種を有効成分として含有する、低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤、移植用細胞保護剤、又は生体保存剤。
［２］ 環Ａが、チアゾリン、チアゾール、チアゾリジン、チオモルホリン、チオフェン、ピロール、モルホリン、アゼパン、ピリジン、ピラジン、フラン、２，３－ジヒドロ－４Ｈ－１，４－チアジン、又はイミダゾールである、［１］に記載の剤。
［３］ 有効成分が式（Ｉ）で示される複素環化合物又はその塩である、［１］又は［２］に記載の剤。
［４］ 有効成分が式（ＩＩ）で示されるイソチオシアネート化合物である、［１］に記載の剤。
［５］ 低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤である、［１］～［４］のいずれか１項に記載の剤。
［６］ 移植用細胞保護剤である、［１］～［４］のいずれか１項に記載の剤。
［７］ 生体保存剤である、［１］～［４］のいずれか１項に記載の剤。
［８］ 鼻腔投与用の［１］～［７］のいずれか１項に記載の剤。
［９］ TRPA1作動薬を有効成分として含有する低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤。
［１０］ TRPA1作動薬を有効成分として含有する移植用細胞保護剤。
［１１］ TRPA1作動薬を有効成分として含有する生体保存剤。
［１２］ 鼻腔投与用の［９］～［１１］のいずれか１項に記載の剤。
［１３］ 低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療に使用するための、前記式（Ｉ）で示される複素環化合物又はその塩、及び前記式（ＩＩ）で示されるイソチオシアネート化合物から選択される少なくとも１種の化合物。
［１４］ 前記式（Ｉ）で示される複素環化合物又はその塩、及び前記式（ＩＩ）で示されるイソチオシアネート化合物から選択される少なくとも１種の化合物の移植用細胞保護剤又は生体保存剤としての使用。
［１５］ 低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療に使用するための、TRPA1作動薬。
［１６］ TRPA1作動薬の移植用細胞保護剤又は生体保存剤としての使用。
［１７］ 低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤、移植用細胞保護剤、又は生体保存剤を製造するための、前記式（Ｉ）で示される複素環化合物又はその塩、及び前記式（ＩＩ）で示されるイソチオシアネート化合物から選択される少なくとも１種の化合物の使用。
［１８］ 低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤、移植用細胞保護剤、又は生体保存剤を製造するための、TRPA1作動薬の使用。
［１９］ 有効量の、前記式（Ｉ）で示される複素環化合物又はその塩、及び前記式（ＩＩ）で示されるイソチオシアネート化合物から選択される少なくとも１種の化合物を哺乳動物に投与することを含む、哺乳動物における低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療方法。
［２０］ 移植用細胞を、前記式（Ｉ）で示される複素環化合物又はその塩、及び前記式（ＩＩ）で示されるイソチオシアネート化合物から選択される少なくとも１種の化合物と接触させることを含む、移植用細胞の保護方法。
［２１］ 生体を、前記式（Ｉ）で示される複素環化合物又はその塩、及び前記式（ＩＩ）で示されるイソチオシアネート化合物から選択される少なくとも１種の化合物と接触させることを含む、生体の保存方法。
［２２］ 有効量のTRPA1作動薬を哺乳動物に投与することを含む、哺乳動物における低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療方法。
［２３］ 移植用細胞を、TRPA1作動薬と接触させることを含む、移植用細胞の保護方法。
［２４］ 生体を、TRPA1作動薬と接触させることを含む、生体の保存方法。
【発明の効果】
【0012】
恐怖は危険な状況を察知した脳により誘発される情動で、危機に瀕したヒトや動物の生存確率を上昇させる行動や生理応答を誘発する。人為的に体温や代謝を低下させる低体温療法は緊急患者の予後を改善する効果を持つ。従って、恐怖や危機シグナルを感知した脳や神経系などが全身の体温や代謝の低下を誘導したり、炎症や免疫反応を制御したりすることで、組織や個体保護作用を獲得するという機能は合目的である。しかし、このような恐怖情動性や潜在的な内在性の個体保護作用を制御するメカニズムは未解明であった。本発明の技術は、特定の化学構造ルールを満たす化合物の投与により、先天的恐怖や潜在的な内在性の個体保護作用を特徴づける行動と低体温や低代謝などの生理応答を誘発したり、炎症や免疫反応を抑制したりすると同時に、低酸素障害や虚血再灌流障害や炎症に対する強力な抵抗性を与えるものである。本発明の技術で利用する化合物は、揮発した匂い分子として受容体を活性化したり体内に取り込ませたりする方法や、注射などの方法で直接体内に投与する方法で効果を発揮する。その効果は、低体温、低代謝、酸素消費量の抑制、低心拍数、抗炎症反応の誘導、低酸素条件での組織や個体の保護作用、虚血再灌流障害に対する保護作用、炎症に対する保護作用などである。この技術により、個体に対する低酸素障害と虚血再灌流障害と炎症に対する治療薬、移植用臓器の保護剤、ならびに生体保存剤が提供可能である。
【図面の簡単な説明】
【0013】
【図1】Ａ：2MT(2-methyl-2-thiazoline)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を嗅がせた際の体表面温度の経時的な変化(平均±標準誤差)を示す図である。Ｂ：2MTまたは後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を提示している20分間の体表面温度の平均変化を示す図である。
【図2】様々な種類のチアゾリン類縁化合物または後天的恐怖を誘発する匂い分子(Anis-FS+)を提示した際の体表面温度の平均変化を示す図である。
【図3】Ａ：様々な種類のチアゾリン類縁化合物を腹腔内注射した際の不動行動（すくみ行動）の平均±標準誤差を示す図である。Ｂ：様々な種類のチアゾリン類縁化合物を腹腔内注射した際の体表面温度の変化の平均±標準誤差を示す図である。
【図4】Ａ：2MTまたは後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を嗅がせた際の体深部温度の経時的な変化(平均±標準誤差)を示す図である。Ｂ：2MTまたは後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を提示している20分間の体深部温度の平均変化を示す図である。
【図5】Ａ：2MTまたは後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を嗅がせた際の心拍数の経時的な変化(平均±標準誤差)を示す図である。Ｂ：2MTまたは後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を提示している20分間の心拍数の平均変化を示す図である。
【図6】Ａ：2MTまたは後天的恐怖を誘発する匂い分子(Anis-FS+)を嗅がせた際の血流量の経時的な変化(平均±標準誤差)を示す図である。Ｂ：匂い無しおよび2MTまたは後天的恐怖を誘発する匂い分子(Anis-FS+)を提示した際の平均の皮膚血流量を示す図である。
【図7】Ａ：2MTまたはスパイスの匂い(Eug)を嗅がせた際の呼吸数の経時的な変化(平均±標準誤差)を示す図である。Ｂ：匂い無しおよび2MTまたはスパイスの匂い(Eug)を提示した際の平均の呼吸数を示す図である。
【図8】Ａ：2MTを提示した際と匂い無し(Saline)の際のマウスの体重当たりの酸素消費量の経時的な変化(平均±標準誤差)を示す図である。Ｂ：2MTを提示した際と匂い無しの際のマウスの体重当たりの平均酸素消費量を示す図である。
【図9】Ａ：2MTを提示した際と匂い無し(no odor)の際のマウスの4%酸素中での生存時間を、カプランマイヤー曲線を用いて示す図である。Ｂ：Ａの実施例と同じ条件で匂い提示を行った際の体深部温度の経時変化(平均±標準誤差)を示す図である。
【図10A】それぞれの複素環化合物を腹腔内注射した際のマウスの4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を示す図である。
【図11A】それぞれのイソチオシアネート化合物を腹腔内注射した際のマウスの4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を示す図である。
【図12】チオモルホリンと生理食塩水を投与したマウスの4%酸素中での生存時間を、カプランマイヤー曲線を用いて示す図である。
【図13】図中に示されたそれぞれの溶液を腹腔内注射したマウスの生存時間を各個体ごとにプロットした図である。
【図14】Ａ：匂い無しの条件での創傷部の変化を個体ごとに毎日観察した結果を示す写真である。Ｂ：2MTを提示した条件での創傷部の変化を個体ごとに毎日観察した結果を示す写真である。Ｃ：ＡおよびＢで観察された創傷部の面積を定量化した図である。Ｄ：Ａ－Ｃの実施例と同じ条件で匂い提示を行った際の体深部温度の経時変化(平均±標準誤差)を示す図である。
【図15】コントロールマウス(trpa1+/-; n=5)およびTrpa1ノックアウトマウス(trpa1-/-; n=8)に2MTを提示した際の体表面温度の変化の平均を示す図である。
【図16】Ａ：コントロールマウス(trpa1+/-; n=7)およびTrpa1ノックアウトマウス (trpa1-/-; n=7)に2MTを提示した際の体深部温度の経時的な変化を示す図である。Ｂ：コントロールマウス(trpa1+/-)およびTrpa1ノックアウトマウス(trpa1-/-)に2MTを提示した際の体深部温度の変化の平均を示す図である。
【図17】コントロールマウス(Hetero)およびTrpa1ノックアウトマウス(KO)に生理食塩水または2MTを提示した際の4%酸素中での生存時間の平均を示す図である。
【図18】それぞれの複素環化合物あるいはイソチオシアネート化合物を敗血症モデルマウスに腹腔内注射した際の血中のTNF-α量（平均±標準誤差）を示す図である。
【図19】Ａ：敗血症モデルマウスに2MTを腹腔内注射した際の血中のIL-1β量（平均±標準誤差）を示す図である。Ｂ：敗血症モデルマウスに2MTを腹腔内注射した際の血中のIL-10量（平均±標準誤差）を示す図である。
【図20】敗血症モデルマウスに2MTを腹腔内注射した際の血中のHMGB1量（平均±標準誤差）を示す図である。
【図21】敗血症モデルマウスに2MTを腹腔内注射した際の生存時間をカプランマイヤー曲線および棒グラフ（平均±標準誤差）で示す図である。
【図22】脳虚血再灌流障害モデルマウスにおける脳の組織染色および障害された領域の面積を定量化した図である。
【図23】それぞれの複素環化合物をコントロールマウス(Trpa1+/+)およびTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1-/-)に腹腔内投与した際の4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を示した図である。
【図24】コントロールマウス(Trpa1+/+)およびTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1-/-)にThiomorpholineを腹腔内投与した際の4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を示した図である。
【図25】コントロールマウス(Trpa1+/-)およびTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1-/-)に2MTを提示した際の酸素消費量の経時的な変化（平均±標準誤差）を示す図である。
【図26】Ａ：それぞれのTrpa1作動薬を投与した際の4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を示した図である。Ｂ：コントロールマウス(Trpa1+/+、Trpa1+/-)およびTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1-/-)にアセトアミノフェンを投与した際の4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を示した図である。
【図27】Ａ：コントロールマウス(Trpa1+/-)およびTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1-/-)に4E2MT(4-Ethyl-2-methyl-2-thiazoline)を腹腔内注射した際の体表面温度の経時変化（平均±標準誤差）を示した図である。Ｂ：コントロールマウス(Trpa1+/-)およびTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1-/-)に4E2MTを腹腔内注射した際の4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を示した図である。Ｃ：コントロールマウス(Trpa1+/+、Trpa1+/-)およびTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1-/-)にLPS(Lipopolysaccharide)と4E2MTを投与した際の血中のTNFα量（平均±標準誤差）を示した図である。
【図28】チオモルホリン(TMO)および2MTを腹腔内投与した際の酸素消費量の経時変化（平均±標準誤差）を示した図である。
【発明を実施するための形態】
【0014】
式（Ｉ）の環Ａは、窒素原子、酸化されていてもよい硫黄原子及び酸素原子から選択される１又は２個のヘテロ原子を含む５から７員の複素環を示す。環Ａは、窒素原子及び酸化されていてもよい硫黄原子から選択される１又は２個のヘテロ原子を含む５から７員の複素環が好ましい。環Ａは、窒素原子及び酸化されていてもよい硫黄原子を含む５から７員の複素環がさらに好ましい。環Ａの員数は、５又は６がさらに好ましい。
【0015】
前記複素環の例としては、限定されないが、例えば、ピロール、ピリジン、ピリダジン、ピリミジン、ピラジン、ピペラジン、ピロリジン、ヘキサヒドロピリダジン、イミダゾール、イミダゾリジン、ピペリジン、チオフェン、チオラン、テトラヒドロ－２Ｈ－チオピラン、チアゾリン（例、２－チアゾリン、３－チアゾリン、４－チアゾリン）、チアゾール、チアゾリジン、イソチアゾール、イソチアゾリン、チオモルホリン、チアジアゾリン、チアジアゾール、チアジアゾリジン、１，３－チアジナン、５，６－ジヒドロ－４Ｈ－１，３－チアジン、２，３－ジヒドロ－４Ｈ－１，４－チアジン、フラン、２Ｈ－ピラン、４Ｈ－ピラン、オキサゾール、イソオキサゾール、モルホリン、オキサゾリン、アゼパンなどが挙げられる。好ましくは、チアゾリン（例、２－チアゾリン、３－チアゾリン、４－チアゾリン）、チアゾール、チアゾリジン、チオモルホリン、チオフェン、ピロール、モルホリン、アゼパン、ピリジン、ピラジン、フラン、２，３－ジヒドロ－４Ｈ－１，４－チアジン、又はイミダゾールであり、さらに好ましくは、チアゾリン（例、２－チアゾリン）、チアゾール、チアゾリジン、チオモルホリン、チオフェン、又は２，３－ジヒドロ－４Ｈ－１，４－チアジンである。
【0016】
ここで用いられる「ハロゲン原子」は、好ましくは、フッ素原子、塩素原子、臭素原子及びヨウ素原子から選択される。
【0017】
ここで用いられる「Ｃ１－６アルキル基」（基又は基の一部として用いられる場合）は、１～６個の炭素原子を有する直鎖又は分岐鎖のアルキル基を意味する。Ｃ１－６アルキル基としては、メチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ブチル基、１－メチルプロピル基（ｓｅｃ－ブチル基）、２－メチルプロピル基（イソブチル基）、ｔｅｒｔ－ブチル基、ペンチル基、１－メチルブチル基、２－メチルブチル基、３－メチルブチル基、１，１－ジメチルプロピル基、２，２－ジメチルプロピル基、１，２－ジメチルプロピル基、１－エチルプロピル基、ヘキシル基、１－メチルペンチル基、２－メチルペンチル基、３－メチルペンチル基、４－メチルペンチル基、１，１－ジメチルブチル基、２，２－ジメチルブチル基、３，３－ジメチルブチル基、１，２－ジメチルブチル基、１，３－ジメチルブチル基、２，３－ジメチルブチル基、１－エチルブチル基、２－エチルブチル基、１－エチル－２－メチルプロピル基などが挙げられるが、これらに限定されない。好ましいＣ１－６アルキル基としては、例えば、Ｃ１－４アルキル基（１～４個の炭素原子を有する直鎖又は分岐鎖のアルキル基）が挙げられ、メチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ブチル基、イソブチル基、ｓｅｃ－ブチル基がさらに好ましく、メチル基が特に好ましい。
【0018】
ここで用いられる「Ｃ１－６ハロアルキル基」は、１～５個のハロゲノ基で置換されたＣ１－６アルキル基を意味し、ハロゲノ基が２個以上である場合の各ハロゲノ基の種類は、同一又は異なっていてもよい。ハロゲノ基としては、フルオロ基、クロロ基、ブロモ基などが挙げられる。Ｃ１－６ハロアルキル基としては、例えば、フルオロメチル基、ジフルオロメチル基、トリフルオロメチル基、クロロジフルオロメチル基、１－フルオロエチル基、２－フルオロエチル基、２－クロロエチル基、２－ブロモエチル基、１，１－ジフルオロエチル基、１，２－ジフルオロエチル基、２，２，２－トリフルオロエチル基、１，１，２，２－テトラフルオロエチル基、１，１，２，２，２－ペンタフルオロエチル基、１－フルオロプロピル基、１，１－ジフルオロプロピル基、２，２－ジフルオロプロピル基、３－フルオロプロピル基、３，３，３－トリフルオロプロピル基、４－フルオロブチル基、４，４，４－トリフルオロブチル基、５－フルオロペンチル基、５，５，５－トリフルオロペンチル基、６－フルオロヘキシル基、６，６，６－トリフルオロヘキシル基などが挙げられるが、これに限定されない。
【0019】
ここで用いられる「Ｃ２－６アルケニル基」（基又は基の一部として用いられる場合）は、２～６個の炭素原子を有する直鎖又は分岐鎖のアルケニル基を意味する。Ｃ２－６アルケニル基としては、ビニル基、アリル基、プロパ－１－エニル基、ブタ－１－エン－１－イル基、ブタ－２－エン－１－イル基、ペンタ－４－エン－１－イル基、２－メチルアリル基などが挙げられるが、これらに限定されない。
【0020】
ここで用いられる「Ｃ１－６アルコキシ基」（基又は基の一部として用いられる場合）は、１～６個の炭素原子を有する直鎖又は分岐鎖のアルコキシ基を意味する。Ｃ１－６アルコキシ基としては、メトキシ基、エトキシ基、プロポキシ基、イソプロポキシ基、ブトキシ基、１－メチルプロポキシ基、２－メチルプロポキシ基、ｔｅｒｔ－ブトキシ基、ペンチルオキシ基、１－メチルブトキシ基、２－メチルブトキシ基、３－メチルブトキシ基、１，１－ジメチルプロポキシ基、２，２－ジメチルプロポキシ基、１，２－ジメチルプロポキシ基、１－エチルプロポキシ基、ヘキシルオキシ基などが挙げられるが、これらに限定されない。
【0021】
ここで用いられる「Ｃ１－６アルキルチオ基」は、Ｃ１－６アルキル基で置換された－ＳＨ基を意味する。Ｃ１－６アルキルチオ基としては、メチルチオ基、エチルチオ基、プロピルチオ基、ブチルチオ基などが挙げられるが、これらに限定されない。
【0022】
ここで用いられる「Ｃ２－６アルケニルチオ基」は、Ｃ２－６アルケニルで置換された－ＳＨ基を意味する。Ｃ２－６アルケニルチオ基としては、ビニルチオ基、アリルチオ基、プロパ－１－エニルチオ基、ブタ－１－エン－１－イルチオ基、ブタ－２－エン－１－ イルチオ基、ペンタ－４－エン－１－イルチオ基、２－メチルアリルチオ基などが挙げられるが、これらに限定されない。
【0023】
ここで用いられる「Ｃ１－６アルキル－カルボニル基」は、Ｃ１－６アルキル基が結合したカルボニル基を意味する。Ｃ１－６アルキル－カルボニル基としては、例えば、アセチル基、プロピオニル基、ブチリル基、イソブチリル基、バレリル基、ヘキサノイル基などが挙げられるが、これらに限定されない。
【0024】
ここで用いられる「Ｃ１－６アルコキシカルボニル基」は、Ｃ１－６アルコキシ基が結合したカルボニル基を意味する。Ｃ１－６アルコキシカルボニル基としては、例えば、メトキシカルボニル基、エトキシカルボニル基、プロポキシカルボニル基、イソプロポキシカルボニル基、ブトキシカルボニル基などが挙げられるが、これらに限定されない。
【0025】
ここで用いられる「Ｃ６－１０アリール基」は、６～１０個の炭素原子を有する芳香族炭化水素基を意味する。Ｃ６－１０アリール基としては、例えば、フェニル基、ナフチル基（１－ナフチル基、２－ナフチル基）などが挙げられるが、これらに限定されない。
【0026】
ここで用いられる「５又は６員ヘテロアリール基」は、窒素原子、酸化されていてもよい硫黄原子及び酸素原子から選択される少なくとも１個（好ましくは１～３個、より好ましくは１又は２個）のヘテロ原子を含む５又は６員ヘテロアリール基を意味する。５又は６員ヘテロアリール基としては、窒素原子及び酸化されていてもよい硫黄原子から選択される１又は２個のヘテロ原子を含む５又は６員ヘテロアリール基が好ましい。
【0027】
５又は６員ヘテロアリール基の例としては、ピロリル基、ピリジル基、ピリダジニル基、ピリミジニル基、ピラジニル基、イミダゾリル基、チエニル基、チアゾリル基、イソチアゾリル基、チアジアゾリル基、フリル基、オキサゾリル基、イソオキサゾリル基などが挙げられるが、これらに限定されない。好ましくは、ピリジル基、チエニル基などである。
【0028】
ここで用いられる「オキソ基」なる語（基又は基の一部として用いられる場合）は、＝Ｏ基を示す。
【0029】
ここで用いられる「酸化されていてもよい硫黄原子」は、Ｓ、ＳＯ、又はＳＯ２を意味する。
【0030】
Ｒ１及びＲ２が、互いに結合して形成する、「置換されていてもよい５又は６員環」の「５又は６員環」は、窒素原子、酸化されていてもよい硫黄原子及び酸素原子から選択される少なくとも１個（好ましくは１～３個、より好ましくは１又は２個）のヘテロ原子を含む５又は６員環を意味する。前記５又は６員環の例としては、ベンゼン環、テトラヒドロピリミジン環などが挙げられる。前記５又は６員環は置換されていてもよく、置換基としては、例えば、Ｃ１－６アルキル基、ハロゲン原子、アミノ基、－ＳＨ、Ｃ１－６アルキルチオ基、Ｃ２－６アルケニルチオ基、Ｃ１－６アルキル－カルボニル基、ホルミル基、Ｃ１－６アルコキシカルボニル基、オキソ基などから選択される１から４個（好ましくは１又は２個）の置換基が挙げられる。置換基としては、好ましくは、Ｃ１－６アルキル基（例、メチル）及びオキソ基から選択される１から４個の置換基である。
【0031】
式（Ｉ）において、好ましくは、Ｒ１、Ｒ２、Ｒ３及びＲ４は、それぞれ独立して、水素原子、Ｃ１－６アルキル基（例、メチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ブチル、イソブチル、ｓｅｃ－ブチル）、ハロゲン原子（例、塩素原子）、アミノ基、－ＳＨ、Ｃ１－６アルキルチオ基（例、メチルチオ）、Ｃ２－６アルケニルチオ基（例、アリルチオ）、Ｃ１－６アルキル－カルボニル基（例、アセチル）、ホルミル基、Ｃ６－１０アリール基（例、フェニル）、５又は６員ヘテロアリール基（例、チエニル）、又はオキソ基であり；Ｒ１及びＲ２は、互いに結合して、置換されていてもよい５又は６員環（例、ベンゼン環、テトラヒドロピリミジン環）を形成してもよい。
【0032】
式（Ｉ）において、ｎ＝１又は２の場合、Ｒ１、Ｒ２、Ｒ３及びＲ４のうち少なくとも１個は水素原子でないことが好ましい。式（Ｉ）において、ｎ＝０の場合、Ｒ１、Ｒ２及びＲ３のうち少なくとも１個は水素原子でないことが好ましい。
【0033】
本発明において、有効成分として用いられる好適な式（Ｉ）の複素環化合物としては、例えば、
２－メチル－２－チアゾリン（２ＭＴ）、
２，４，５－トリメチルチアゾール、
２－アミノチアゾール、
チオモルホリン、
２－エチルピロール、
２－アセチルチオフェン、
３－クロロチオフェン、
２，３－ジメチルチオモルホリン、
２，６－ジメチルチオモルホリン、
２－メチルチオモルホリン、
２－（メチルチオ）－２－チアゾリン、
２－メチルチオフェン、
２－ｓｅｃ－ブチル－２－チアゾリン（ＳＢＴ）、
４－エチル－２－メチル－２－チアゾリン（４Ｅ２ＭＴ）、
２－アミノ－２－チアゾリン、
２－エチルチオフェン、
２，４，５－トリメチル－３－チアゾリン（ＴＭＴ）、
２－メチルチアゾール、
３－メチルピロール、
チオモルホリン １，１－ジオキシド、
２－イソプロピル－４－メチルチアゾール、
アゼパン、
２，６－ジメチルピリジン（２，６－ルチジン）、
２－エチル－４－メチルチアゾール、
２－メルカプトチアゾール、
チアゾール、
２，４－ジメチルピリジン、
２－プロピルチアゾール、
４－フェニルチオモルホリン １，１－ジオキシド、
２－（アリルチオ）－２－チアゾリン、
５－メチルチアゾール、
チアゾリジン、
２－メチルベンゾ［ｄ］チアゾール、
２－クロロチアゾール、
２，４－ジメチル－１Ｈ－ピロール、
カフェイン、
２－アセチルチアゾール、
２，３－ジエチルピラジン、
２－イソブチルチアゾール、
２－（２－チエニル）ベンゾチアゾール、
３，４－ジメチルピリジン、
２－エチルフラン、
３－メチルチオフェン、
２Ｈ－１，４－ベンゾチアジン－３（４Ｈ）－オン、
５－チアゾールカルボキシアルデヒド（５－ホルミルチアゾール）、
２，６－ジメチルピラジン、
２，２－ジメチルチアゾリジン、
２，３－ジメチルピリジン、
３－メチルピリジン、
モルホリン、
２－チオフェンカルボキシアルデヒド、
２，５－ジメチル－２－チアゾリン、
２－エチル－２－チアゾリン
２－エチル－３，５－ジメチルピラジン
などが挙げられるが、これらに限定されない。
２－メチル－２－チアゾリン（２ＭＴ）、
２，４，５－トリメチルチアゾール、
２－アミノチアゾール、
チオモルホリン、
２－エチルピロール、
２－アセチルチオフェン、
３－クロロチオフェン、
２，３－ジメチルチオモルホリン、
２，６－ジメチルチオモルホリン、
２－メチルチオモルホリン、
２－（メチルチオ）－２－チアゾリン、
２－メチルチオフェン、
２－ｓｅｃ－ブチル－２－チアゾリン（ＳＢＴ）、
４－エチル－２－メチル－２－チアゾリン（４Ｅ２ＭＴ）、
２－アミノ－２－チアゾリン、
２－エチルチオフェン、
２，４，５－トリメチル－３－チアゾリン（ＴＭＴ）、
２－メチルチアゾール、
３－メチルピロール、
チオモルホリン １，１－ジオキシド、
２－イソプロピル－４－メチルチアゾール、
アゼパン、
２，６－ジメチルピリジン（２，６－ルチジン）、
２－エチル－４－メチルチアゾール、
２－メルカプトチアゾール、
チアゾール、
２，４－ジメチルピリジン、
２－プロピルチアゾール、
４－フェニルチオモルホリン １，１－ジオキシド、
２－（アリルチオ）－２－チアゾリン、
５－メチルチアゾール、
チアゾリジン、
２－メチルベンゾ［ｄ］チアゾール、
２－クロロチアゾール、
２，４－ジメチル－１Ｈ－ピロール、
カフェイン、
２－アセチルチアゾール、
２，３－ジエチルピラジン、
２－イソブチルチアゾール、
２－（２－チエニル）ベンゾチアゾール、
３，４－ジメチルピリジン、
２－エチルフラン、
３－メチルチオフェン、
２Ｈ－１，４－ベンゾチアジン－３（４Ｈ）－オン、
５－チアゾールカルボキシアルデヒド（５－ホルミルチアゾール）、
２，６－ジメチルピラジン、
２，２－ジメチルチアゾリジン、
２，３－ジメチルピリジン、
３－メチルピリジン、
モルホリン、
２－チオフェンカルボキシアルデヒド、
２，５－ジメチル－２－チアゾリン、
２－エチル－２－チアゾリン
２－エチル－３，５－ジメチルピラジン
などが挙げられるが、これらに限定されない。
【0034】
本発明において、有効成分として用いられる好適な式（ＩＩ）のイソチオシアネート化合物としては、例えば、
メタリル イソチオシアネート、
アリル イソチオシアネート、
エチル イソチオシアネート、
２－クロロエチル イソチオシアネート、
３－ピリジル イソチオシアネート、
フェニル イソチオシアネート、
４－ペンテン－１－イル イソチオシアネート、
ブチル イソチオシアネート、
プロピル イソチオシアネート
などが挙げられるが、これらに限定されない。
メタリル イソチオシアネート、
アリル イソチオシアネート、
エチル イソチオシアネート、
２－クロロエチル イソチオシアネート、
３－ピリジル イソチオシアネート、
フェニル イソチオシアネート、
４－ペンテン－１－イル イソチオシアネート、
ブチル イソチオシアネート、
プロピル イソチオシアネート
などが挙げられるが、これらに限定されない。
【0035】
本発明において、TRPA1作動薬とは、TRPA1を活性化する物質をいう。本発明において、有効成分として用いられる好適なTRPA1作動薬としては、例えば、
５－メチルチアゾール、
２－エチルフラン、
４－エチル－２－メチル－２－チアゾリン、
２－メチルチオフェン、
２，３－ジエチルピラジン、
２－エチル－３，５－ジメチルピラジン、
２－アセチルチオフェン、
２，６－ルチジン（２，６－ジメチルピリジン）、
チオモルホリン、
アセトアミノフェン、
アリル イソチオシアネート、
デルタ９－テトラヒドロカンナビノール
などが挙げられるが、これらに限定されない。
５－メチルチアゾール、
２－エチルフラン、
４－エチル－２－メチル－２－チアゾリン、
２－メチルチオフェン、
２，３－ジエチルピラジン、
２－エチル－３，５－ジメチルピラジン、
２－アセチルチオフェン、
２，６－ルチジン（２，６－ジメチルピリジン）、
チオモルホリン、
アセトアミノフェン、
アリル イソチオシアネート、
デルタ９－テトラヒドロカンナビノール
などが挙げられるが、これらに限定されない。
【0036】
本発明において、有効成分として用いられる式（Ｉ）の複素環化合物及び式（ＩＩ）のイソチオシアネート化合物は、試薬として一般的に知られた物質が含まれ、市販のものを利用でき、また自体公知の方法により得ることができる。式（Ｉ）の複素環化合物及び式（ＩＩ）のイソチオシアネート化合物を、低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤、移植用細胞保護剤、又は生体保存剤として使用することはこれまで開示も示唆もされていない。
【0037】
式（Ｉ）で示される複素環化合物の好ましい例としては、下記式（Ａ）～（Ｄ）で示される化合物又はその塩が挙げられる。
【0038】
【化2】
【0039】
（式中、
Ｘ１は、Ｓ、Ｏ、又はＮ（Ｒ１６）であり；
Ｘ２は、Ｎ又はＣＲ１２であり；
Ｘ３は、Ｓ、ＳＯ２、Ｏ、又は－（ＣＨ２）２－であり；
Ｘ４は、Ｎ又はＣＲ１５であり；
Ｘ１は、Ｓ、Ｏ、又はＮ（Ｒ１６）であり；
Ｘ２は、Ｎ又はＣＲ１２であり；
Ｘ３は、Ｓ、ＳＯ２、Ｏ、又は－（ＣＨ２）２－であり；
Ｘ４は、Ｎ又はＣＲ１５であり；
【0040】
【化3】
【0041】
は、単結合又は二重結合を示し；
Ｒ１１、Ｒ１２、Ｒ１３、Ｒ１４、Ｒ１５及びＲ１６は、それぞれ独立して、水素原子、Ｃ１－６アルキル基、ハロゲン原子、アミノ基、－ＳＨ、Ｃ１－６アルキルチオ基、Ｃ２－６アルケニルチオ基、Ｃ１－６アルキル－カルボニル基、ホルミル基、Ｃ６－１０アリール基、Ｃ１－６アルコキシカルボニル基、５又は６員ヘテロアリール基、又はオキソ基であり；Ｒ１３及びＲ１４は、互いに結合して、ベンゼン環、又はＣ１－６アルキル基及びオキソ基から選択される１から４個の置換基で置換されていてもよいテトラヒドロピリミジン環を形成してもよい；ただし、式（Ａ）において、Ｒ１１及びＲ１２はオキソ基ではなく；式（Ａ）において、
Ｒ１１、Ｒ１２、Ｒ１３、Ｒ１４、Ｒ１５及びＲ１６は、それぞれ独立して、水素原子、Ｃ１－６アルキル基、ハロゲン原子、アミノ基、－ＳＨ、Ｃ１－６アルキルチオ基、Ｃ２－６アルケニルチオ基、Ｃ１－６アルキル－カルボニル基、ホルミル基、Ｃ６－１０アリール基、Ｃ１－６アルコキシカルボニル基、５又は６員ヘテロアリール基、又はオキソ基であり；Ｒ１３及びＲ１４は、互いに結合して、ベンゼン環、又はＣ１－６アルキル基及びオキソ基から選択される１から４個の置換基で置換されていてもよいテトラヒドロピリミジン環を形成してもよい；ただし、式（Ａ）において、Ｒ１１及びＲ１２はオキソ基ではなく；式（Ａ）において、
【0042】
【化4】
【0043】
が二重結合を示すとき、Ｒ１３及びＲ１４はオキソ基ではなく；
式（Ｄ）において、Ｒ１１、Ｒ１２、Ｒ１３、Ｒ１４及びＲ１５はオキソ基ではなく、式（Ｂ）において、Ｒ１１とＲ１２が一緒になって、オキソ基を形成してもよい）
式（Ｄ）において、Ｒ１１、Ｒ１２、Ｒ１３、Ｒ１４及びＲ１５はオキソ基ではなく、式（Ｂ）において、Ｒ１１とＲ１２が一緒になって、オキソ基を形成してもよい）
【0044】
式（Ａ）から（Ｄ）において、好ましくは、Ｒ１１、Ｒ１２、Ｒ１３、Ｒ１４、Ｒ１５及びＲ１６は、それぞれ独立して、水素原子、Ｃ１－６アルキル基（例、メチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ブチル、イソブチル、ｓｅｃ－ブチル）、ハロゲン原子（例、塩素原子）、アミノ基、－ＳＨ、Ｃ１－６アルキルチオ基（例、メチルチオ）、Ｃ２－６アルケニルチオ基（例、アリルチオ）、Ｃ１－６アルキル－カルボニル基（例、アセチル）、ホルミル基、Ｃ６－１０アリール基（例、フェニル）、５又は６員ヘテロアリール基（例、チエニル）、又はオキソ基であり；
Ｒ１３及びＲ１４は、互いに結合して、ベンゼン環、又はＣ１－６アルキル基及びオキソ基から選択される１から４個の置換基で置換されていてもよいテトラヒドロピリミジン環を形成してもよい。
Ｒ１３及びＲ１４は、互いに結合して、ベンゼン環、又はＣ１－６アルキル基及びオキソ基から選択される１から４個の置換基で置換されていてもよいテトラヒドロピリミジン環を形成してもよい。
【0045】
本発明に係る化合物の塩としては、医薬的に許容される塩であればよく、例えば、ナトリウム塩、カリウム塩のようなアルカリ金属塩；マグネシウム塩、カルシウム塩のようなアルカリ土類金属塩；ジメチルアンモニウム塩、トリエチルアンモニウム塩のようなアンモニウム塩；塩酸塩、過塩素酸塩、硫酸塩、硝酸塩のような無機酸塩；酢酸塩、メタンスルホン酸塩のような有機酸塩などが挙げられる。
【0046】
本発明において、低酸素障害とは、低酸素に起因する疾患をいう。例えば、低酸素症、低酸素脳症、新生児低酸素症、低酸素性虚血性脳症、低酸素性低酸素症、虚血性低酸素症、うっ血性低酸素症、高山病、脳梗塞、心筋梗塞、腎不全、心不全、糖尿病性血管障害、閉塞性動脈硬化症、潰瘍、脊髄障害、視神経障害、視細胞障害、神経障害などが挙げられる。
【0047】
本発明において、虚血再灌流障害とは、虚血状態にある臓器への血流再開に伴う再灌流によって虚血臓器の細胞や組織に生じる障害をいう。例えば、心筋梗塞、脳梗塞、腸間膜血管閉塞症などに対する再灌流療法後や臓器移植後の虚血再灌流障害、褥瘡などが挙げられる。
【0048】
本発明において、炎症とは、外傷、病原体侵入、化学物質刺激、放射線障害などが原因となり誘発される全身や組織での病的な炎症状態を示す。例えば、敗血症、脳炎、髄膜炎、動脈炎、副鼻腔炎、鼻炎、肺炎、気管支炎、口内炎、食道炎、胃炎、腸炎、肝炎、筋炎、皮膚炎、関節炎、腎炎、副腎炎、リンパ管炎、関節リウマチ、乾癬、骨粗鬆症、クローン病などが挙げられる。
【0049】
本発明において、移植用細胞保護剤とは、移植用細胞（臓器、組織を含む）を保護するために使用する薬剤をいう。細胞は、心臓、肺、腎臓、肝臓、骨髄、膵臓、皮膚、骨、静脈、動脈、角膜、血管、小腸、大腸、脳、脊髄、平滑筋、骨格筋、卵巣、精巣、子宮、臍帯などの臓器、組織、及びそれに由来する細胞が挙げられる。
【0050】
本発明において、生体保存剤とは、生物を食料として貯蔵または輸送する際に、生物の全身又は一部を保存したり鮮度を維持するために用いることができる。そのような生物は、食品として利用する動植物や魚介類などの生物が挙げられる。本発明において、生体とは、食品として利用する動植物や魚介類などの生物（例えば、魚類、貝類、畜産動物、野菜、果物など）の全体又は一部をいう。
【0051】
前記式（Ｉ）で示される複素環化合物又はその塩、又は前記式（ＩＩ）で示されるイソチオシアネート化合物（以下、本発明の化合物ともいう）を気化させて吸引させる、又は、体内に投与することで、低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤として利用することができる。あるいは、移植用の臓器を摘出するドナーに本発明の化合物を投与するか、摘出した移植用臓器（組織、細胞を含む）の保存液に添加することで移植用細胞保護剤として利用することができる。又、食料として供される動植物や魚介類などの保存液に添加することで生体保存剤として利用することができる。
【0052】
投与方法
低酸素障害や虚血再灌流障害や炎症を発症した、或いは、発症する可能性があるヒトを含む動物に対して障害発生の予防や症状の緩和を目的として本発明の化合物を投与することができる。また、臓器移植ドナーの体内に組織保護を目的として本発明の化合物を投与することができる。本発明の化合物に由来する0.1から100,000 ppm（又は10から100,000 ppm）の濃度で発生させた気体ガスをガスマスクや類似した機能を持つ装置を用いて鼻腔や肺を経由して吸引させることができる。あるいは、本発明の化合物を1 μg/kgから5,000 mg/kgの投与量で経口投与することができる。あるいは、皮内注射、皮下注射、筋肉内注射、静脈内注射、動脈内注射、脊髄腔内注射、腹腔内注射などの方法で1 μg/kgから5,000 mg/kgの投与量の本発明の化合物を体内に注射することができる。投与の頻度は、単回投与、あるいは、一定時間毎の継続投与や、異なる時間間隔での継続投与とすることができる。本発明の移植用細胞保護剤を移植用臓器（組織、細胞を含む）の保存液に添加する場合、保存液中の本発明の化合物の濃度は、好ましくは1 μg/lから5,000 mg/lである。投与対象又は臓器移植ドナーである動物としては、哺乳類（ヒト、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、ネコ、イヌ、ウシ、ヒツジ、ブタ、ウマ、サルなど）が挙げられる。本発明の生体保護剤を食料の貯蔵や輸送の際の保存液に添加する場合、保存液中の本発明の化合物の濃度は、好ましくは1 μg/lから5,000 mg/lである。投与対象となる生物としては、哺乳類、魚類、鳥類、昆虫が挙げられる。
低酸素障害や虚血再灌流障害や炎症を発症した、或いは、発症する可能性があるヒトを含む動物に対して障害発生の予防や症状の緩和を目的として本発明の化合物を投与することができる。また、臓器移植ドナーの体内に組織保護を目的として本発明の化合物を投与することができる。本発明の化合物に由来する0.1から100,000 ppm（又は10から100,000 ppm）の濃度で発生させた気体ガスをガスマスクや類似した機能を持つ装置を用いて鼻腔や肺を経由して吸引させることができる。あるいは、本発明の化合物を1 μg/kgから5,000 mg/kgの投与量で経口投与することができる。あるいは、皮内注射、皮下注射、筋肉内注射、静脈内注射、動脈内注射、脊髄腔内注射、腹腔内注射などの方法で1 μg/kgから5,000 mg/kgの投与量の本発明の化合物を体内に注射することができる。投与の頻度は、単回投与、あるいは、一定時間毎の継続投与や、異なる時間間隔での継続投与とすることができる。本発明の移植用細胞保護剤を移植用臓器（組織、細胞を含む）の保存液に添加する場合、保存液中の本発明の化合物の濃度は、好ましくは1 μg/lから5,000 mg/lである。投与対象又は臓器移植ドナーである動物としては、哺乳類（ヒト、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、ネコ、イヌ、ウシ、ヒツジ、ブタ、ウマ、サルなど）が挙げられる。本発明の生体保護剤を食料の貯蔵や輸送の際の保存液に添加する場合、保存液中の本発明の化合物の濃度は、好ましくは1 μg/lから5,000 mg/lである。投与対象となる生物としては、哺乳類、魚類、鳥類、昆虫が挙げられる。
【0053】
本発明の化合物を低酸素障害又は虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤、移植用細胞保護剤、又は生体保存剤（以下、本発明の剤ともいう）として使用する場合、必要に応じて医薬的に許容可能な添加剤を配合することができる。すなわち、本発明の剤は、本発明の化合物及び医薬的に許容可能な添加剤を含有する組成物（医薬組成物）として使用することができる。
【0054】
医薬的に許容可能な添加剤の具体例としては、抗酸化剤、保存剤、着色料、風味料、および希釈剤、乳化剤、懸濁化剤、溶媒、フィラー、増量剤、緩衝剤、送達ビヒクル、希釈剤、キャリア、賦形剤および／または医薬的アジュバントなどが挙げられるが、これらに限定されない。
【0055】
本発明の剤の製剤形態は特に限定されないが、例えば、液剤、注射剤、徐放剤、噴霧剤などが挙げられる。本発明の剤を上記製剤として処方するために使用される溶媒としては、水性または非水性のいずれでもよい。
【0056】
注射剤は当該分野において周知の方法により調製することができる。例えば、適切な溶剤（生理食塩水、ＰＢＳのような緩衝液、滅菌水など）に溶解した後、フィルターなどで濾過滅菌し、次いで無菌容器（例えば、アンプルなど）に充填することにより注射剤を調製することができる。この注射剤には、必要に応じて、慣用の薬学的キャリアを含めてもよい。非侵襲的なカテーテルを用いる投与方法も使用され得る。本発明で用いることができるキャリアとしては、中性緩衝化生理食塩水、または血清アルブミンを含む生理食塩水などが挙げられる。
【0057】
以下に実施例、実験例を示して本発明をさらに詳細かつ具体的に説明するが、実施例、実験例は本発明を限定するものではない。
【実施例】
【0058】
実施例１：チアゾリン類縁化合物によって誘発される体表面温度低下
実験方法
チアゾリン類縁化合物および後天的恐怖を誘発する匂い分子の体表面温度に与える影響を解析した。約3か月齢のC57/BL6N雄マウスをテストの2-3日前にペントバルビタール(50m g/kg, i.p.)を用いて麻酔し、背中の毛を脱毛クリームで脱毛した。テスト当日にはマウスを1匹ずつテストケージに入れ、10分間馴化後に、チアゾリン類縁化合物(2-methyl-2-thiazoline; 2MT)又は後天的恐怖を誘発する匂い分子(anisole)をそれぞれ271 μmol浸み込ませたろ紙をテストケージに提示した際の背中の体表面温度の変化を、サーモグラフィーカメラ(NEC Avio)を用いて解析した。体表面温度変化の値は水を提示した10分間の体表面温度の平均とそれぞれの匂い分子を提示した20分間の体表面温度の平均の差分として計算し、匂いなしの時の体表面温度の変化を０とした。後天的な恐怖を誘発する匂いを嗅がせたマウスに関しては、計測の1日前に電気ショックとanisoleの匂いの関連学習を行い、マウスがanisoleの匂いに対して後天的な恐怖を感じるように学習させた。
実験方法
チアゾリン類縁化合物および後天的恐怖を誘発する匂い分子の体表面温度に与える影響を解析した。約3か月齢のC57/BL6N雄マウスをテストの2-3日前にペントバルビタール(50m g/kg, i.p.)を用いて麻酔し、背中の毛を脱毛クリームで脱毛した。テスト当日にはマウスを1匹ずつテストケージに入れ、10分間馴化後に、チアゾリン類縁化合物(2-methyl-2-thiazoline; 2MT)又は後天的恐怖を誘発する匂い分子(anisole)をそれぞれ271 μmol浸み込ませたろ紙をテストケージに提示した際の背中の体表面温度の変化を、サーモグラフィーカメラ(NEC Avio)を用いて解析した。体表面温度変化の値は水を提示した10分間の体表面温度の平均とそれぞれの匂い分子を提示した20分間の体表面温度の平均の差分として計算し、匂いなしの時の体表面温度の変化を０とした。後天的な恐怖を誘発する匂いを嗅がせたマウスに関しては、計測の1日前に電気ショックとanisoleの匂いの関連学習を行い、マウスがanisoleの匂いに対して後天的な恐怖を感じるように学習させた。
【0059】
結果
結果を図１に示す。
図１Ａ：チアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を嗅がせた際の体表面温度の経時的な変化(平均±標準誤差)を示した(n≧8)。
図１Ｂ：チアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を提示している20分間の体表面温度の平均変化を示した。グラフは平均値±標準誤差の値を示し、匂いがない場合と匂いを提示した場合の体表面温度の変化に関してStudentのt検定を行った。***はp<0.001で有意差があることを表す。
先天的恐怖を誘発するチアゾリン類縁化合物(2MT)は体表面温度の明確な低下を引き起こした。これに対し、後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)は体表面温度に有意な影響を与えなかった。
結果を図１に示す。
図１Ａ：チアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を嗅がせた際の体表面温度の経時的な変化(平均±標準誤差)を示した(n≧8)。
図１Ｂ：チアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を提示している20分間の体表面温度の平均変化を示した。グラフは平均値±標準誤差の値を示し、匂いがない場合と匂いを提示した場合の体表面温度の変化に関してStudentのt検定を行った。***はp<0.001で有意差があることを表す。
先天的恐怖を誘発するチアゾリン類縁化合物(2MT)は体表面温度の明確な低下を引き起こした。これに対し、後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)は体表面温度に有意な影響を与えなかった。
【0060】
実施例２：様々なチアゾリン類縁化合物によって誘発される体表面温度低下
実験方法
様々なチアゾリン類縁化合物の体表面温度に与える影響を実施例１と同様の方法で解析した。コントロールとして、後天的恐怖を誘発する匂い分子の影響も解析した。
実験化合物（括弧内は図２中の表記を示す）
２－メチル－２－チアゾリン(2-methylthiazoline)
２，５－ジメチル－２－チアゾリン(2,5-dimethylthiazoline)
２，２－ジメチルチアゾリジン(2,2-dimethylthiazolidine)
２，４，５－トリメチル－３－チアゾリン(TMT)
チアゾール(Thiazole)
２－エチル－２－チアゾリン(2-ethylthiazoline)
チオモルホリン(thiomorpholine)
実験方法
様々なチアゾリン類縁化合物の体表面温度に与える影響を実施例１と同様の方法で解析した。コントロールとして、後天的恐怖を誘発する匂い分子の影響も解析した。
実験化合物（括弧内は図２中の表記を示す）
２－メチル－２－チアゾリン(2-methylthiazoline)
２，５－ジメチル－２－チアゾリン(2,5-dimethylthiazoline)
２，２－ジメチルチアゾリジン(2,2-dimethylthiazolidine)
２，４，５－トリメチル－３－チアゾリン(TMT)
チアゾール(Thiazole)
２－エチル－２－チアゾリン(2-ethylthiazoline)
チオモルホリン(thiomorpholine)
【0061】
結果
結果を図２に示す。
図２：様々な種類のチアゾリン類縁化合物または後天的恐怖を誘発する匂い分子(Anis-FS+)を提示した際の体表面温度の平均変化を示した。グラフは平均±標準誤差の値を示し、後天的恐怖を誘発する匂い分子とチアゾリン類縁化合物を提示した際の体表面温度の変化に関してStudentのt検定を行った。***はp<0.001で有意差があることを示す(各n≧8)。
様々な種類のチアゾリン類縁化合物は体表面温度を有意に低下させる効果を持つことが示された。
結果を図２に示す。
図２：様々な種類のチアゾリン類縁化合物または後天的恐怖を誘発する匂い分子(Anis-FS+)を提示した際の体表面温度の平均変化を示した。グラフは平均±標準誤差の値を示し、後天的恐怖を誘発する匂い分子とチアゾリン類縁化合物を提示した際の体表面温度の変化に関してStudentのt検定を行った。***はp<0.001で有意差があることを示す(各n≧8)。
様々な種類のチアゾリン類縁化合物は体表面温度を有意に低下させる効果を持つことが示された。
【0062】
実施例３：様々なチアゾリン類縁化合物を腹腔内投与した場合に誘発されるすくみ行動および体表面温度低下
実験方法
様々な種類のチアゾリン類縁化合物を腹腔内投与した際のマウスのすくみ行動（不動時間）と体表面温度への影響を解析した。匂い分子の投与は、生理食塩水で100倍希釈した溶液100 μl(約40 mg/kg, i.p.)を腹腔内注射する方法で行い、体表面温度の計測は実施例１と同様の方法で行った。すくみ行動の計測は、すくみ行動解析ソフトウェア(Freeze Frame2)を用いて、匂い分子投与後20分間の不動時間の割合(%)として算出した。コントロールとして生理食塩水(saline)と先天的恐怖を誘発しない匂い分子(thiophene)を腹腔内投与した際のすくみ行動と体表面温度の変化も解析した。
実験化合物（括弧内は図３中の表記を示す）
チオフェン(thiophene)
５－メチルチアゾール(5-methylthiazole)
２－ｓｅｃ－ブチル－２－チアゾリン(SBT)
２，４，５－トリメチル－３－チアゾリン(TMT)
２－メチル－２－チアゾリン(2-methylthiazoline)
チオモルホリン(thiomorpholine)
２，２－ジメチルチアゾリジン(2,2-dimethylthiazolidine)
２－メチル－４－エチル－２－チアゾリン(2-methyl-4-ethylthiazoline)
２－エチルチオフェン(2-ethylthiophene)
実験方法
様々な種類のチアゾリン類縁化合物を腹腔内投与した際のマウスのすくみ行動（不動時間）と体表面温度への影響を解析した。匂い分子の投与は、生理食塩水で100倍希釈した溶液100 μl(約40 mg/kg, i.p.)を腹腔内注射する方法で行い、体表面温度の計測は実施例１と同様の方法で行った。すくみ行動の計測は、すくみ行動解析ソフトウェア(Freeze Frame2)を用いて、匂い分子投与後20分間の不動時間の割合(%)として算出した。コントロールとして生理食塩水(saline)と先天的恐怖を誘発しない匂い分子(thiophene)を腹腔内投与した際のすくみ行動と体表面温度の変化も解析した。
実験化合物（括弧内は図３中の表記を示す）
チオフェン(thiophene)
５－メチルチアゾール(5-methylthiazole)
２－ｓｅｃ－ブチル－２－チアゾリン(SBT)
２，４，５－トリメチル－３－チアゾリン(TMT)
２－メチル－２－チアゾリン(2-methylthiazoline)
チオモルホリン(thiomorpholine)
２，２－ジメチルチアゾリジン(2,2-dimethylthiazolidine)
２－メチル－４－エチル－２－チアゾリン(2-methyl-4-ethylthiazoline)
２－エチルチオフェン(2-ethylthiophene)
【0063】
結果
結果を図３に示す。
図３Ａ：様々な種類のチアゾリン類縁化合物を腹腔内注射した際の不動行動（すくみ行動）の平均±標準誤差を示した。コントロールとして匂いなし(saline)の際の不動行動を解析し、匂い無しの場合と匂いありの場合の不動行動に関してStudentのt検定を行った。**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを、nsはp>0.05で有意差がないことを示す。
図３Ｂ：様々な種類のチアゾリン類縁化合物を腹腔内注射した際の体表面温度の変化の平均±標準誤差を示した。コントロールとして匂いなし(saline)の際の体表面温度の変化を解析し、匂い無しの場合と匂いありの場合の体表面温度の変化に関してStudentのt検定を行った。**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを、nsはp>0.05で有意差がないことを示す。
チアゾリン類縁化合物は腹腔内投与によってすくみ行動を引き起こした。また、チアゾリン類縁化合物の多くの化合物で腹腔内投与によって体表面温度の低下が観察された。
結果を図３に示す。
図３Ａ：様々な種類のチアゾリン類縁化合物を腹腔内注射した際の不動行動（すくみ行動）の平均±標準誤差を示した。コントロールとして匂いなし(saline)の際の不動行動を解析し、匂い無しの場合と匂いありの場合の不動行動に関してStudentのt検定を行った。**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを、nsはp>0.05で有意差がないことを示す。
図３Ｂ：様々な種類のチアゾリン類縁化合物を腹腔内注射した際の体表面温度の変化の平均±標準誤差を示した。コントロールとして匂いなし(saline)の際の体表面温度の変化を解析し、匂い無しの場合と匂いありの場合の体表面温度の変化に関してStudentのt検定を行った。**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを、nsはp>0.05で有意差がないことを示す。
チアゾリン類縁化合物は腹腔内投与によってすくみ行動を引き起こした。また、チアゾリン類縁化合物の多くの化合物で腹腔内投与によって体表面温度の低下が観察された。
【0064】
実施例４：チアゾリン類縁化合物によって誘発される体深部温度低下
実験方法
チアゾリン類縁化合物および後天的恐怖を誘発する匂い分子の体深部温度に与える影響を解析した。約3か月齢のC57/BL6Nの雄マウスの腹部に無線式の生体パラメーター計測装置(Physiotel社製)を埋め込んだ。マウスは術後約10日間の回復期間後に以下の実験を行った。マウスは1匹ずつテストケージに入れ、10分間馴化後に、水を浸み込ませたろ紙を10分間提示し、その後チアゾリン類縁化合物(2-methyl-2-thiazoline; 2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(anisole)をそれぞれ271 μmol浸み込ませたろ紙を20分間提示し、その間の体温の情報をDataquest A.R.T.ソフトウェア(DataScience international)を用いて10秒ごとに記録した。体深部温度変化の値は水を提示した10分間の体深部温度の平均とそれぞれの匂い分子を提示した20分間の体深部温度の平均の差分として計算し、匂いなしの時の体深部温度の変化を０とした。後天的な恐怖を誘発する匂いを嗅がせたマウスに関しては、計測の1日前に電気ショックとanisoleの匂いの関連学習を行い、マウスがanisoleの匂いに対して後天的な恐怖を感じるように学習させた。
実験方法
チアゾリン類縁化合物および後天的恐怖を誘発する匂い分子の体深部温度に与える影響を解析した。約3か月齢のC57/BL6Nの雄マウスの腹部に無線式の生体パラメーター計測装置(Physiotel社製)を埋め込んだ。マウスは術後約10日間の回復期間後に以下の実験を行った。マウスは1匹ずつテストケージに入れ、10分間馴化後に、水を浸み込ませたろ紙を10分間提示し、その後チアゾリン類縁化合物(2-methyl-2-thiazoline; 2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(anisole)をそれぞれ271 μmol浸み込ませたろ紙を20分間提示し、その間の体温の情報をDataquest A.R.T.ソフトウェア(DataScience international)を用いて10秒ごとに記録した。体深部温度変化の値は水を提示した10分間の体深部温度の平均とそれぞれの匂い分子を提示した20分間の体深部温度の平均の差分として計算し、匂いなしの時の体深部温度の変化を０とした。後天的な恐怖を誘発する匂いを嗅がせたマウスに関しては、計測の1日前に電気ショックとanisoleの匂いの関連学習を行い、マウスがanisoleの匂いに対して後天的な恐怖を感じるように学習させた。
【0065】
結果
結果を図４に示す。
図４Ａ：チアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を嗅がせた際の体深部温度の経時的な変化(平均±標準誤差)を示した(n≧8)。
図４Ｂ：チアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を提示している20分間の体深部温度の平均変化を示した。グラフは平均値±標準誤差の値を示し、匂いがない場合(control)と匂いを提示した場合の体表面温度の変化に関してStudentのt検定を行った。***はp<0.001で有意差があることを表す。
チアゾリン類縁化合物(2MT)は体深部温度の明確な低下を引き起こした。これに対し、後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)は体表面温度を有意に上昇させた。
結果を図４に示す。
図４Ａ：チアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を嗅がせた際の体深部温度の経時的な変化(平均±標準誤差)を示した(n≧8)。
図４Ｂ：チアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を提示している20分間の体深部温度の平均変化を示した。グラフは平均値±標準誤差の値を示し、匂いがない場合(control)と匂いを提示した場合の体表面温度の変化に関してStudentのt検定を行った。***はp<0.001で有意差があることを表す。
チアゾリン類縁化合物(2MT)は体深部温度の明確な低下を引き起こした。これに対し、後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)は体表面温度を有意に上昇させた。
【0066】
実施例５：チアゾリン類縁化合物によって誘発される心拍数低下
実験方法
チアゾリン類縁化合物および後天的恐怖を誘発する匂い分子の心拍数に与える影響を解析した。約3か月齢のC57/BL6Nの雄マウスの腹部に無線式の生体パラメーター計測装置(Physiotel社製)を埋め込んだ。マウスは術後約10日間の回復期間後に以下の実験を行った。マウスは1匹ずつテストケージに入れ、10分間馴化後に、水を浸み込ませたろ紙を10分間提示し、その後、チアゾリン類縁化合物(2-methyl-2-thiazoline; 2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(anisole)をそれぞれ271 μmol浸み込ませたろ紙を20分間提示し、その間の心拍数の情報をDataquest A.R.T.ソフトウェア(DataScience international)を用いて10秒ごとに記録した。心拍数変化の値は水を提示した10分間の心拍数とそれぞれの匂い分子を提示した20分間の平均心拍数の差分として計算し、匂いなしの時の心拍数の変化を０とした。後天的な恐怖を誘発する匂いを嗅がせたマウスに関しては、計測の1日前に電気ショックとanisoleの匂いの関連学習を行い、マウスがanisoleの匂いに対して後天的な恐怖を感じるように学習させた。
実験方法
チアゾリン類縁化合物および後天的恐怖を誘発する匂い分子の心拍数に与える影響を解析した。約3か月齢のC57/BL6Nの雄マウスの腹部に無線式の生体パラメーター計測装置(Physiotel社製)を埋め込んだ。マウスは術後約10日間の回復期間後に以下の実験を行った。マウスは1匹ずつテストケージに入れ、10分間馴化後に、水を浸み込ませたろ紙を10分間提示し、その後、チアゾリン類縁化合物(2-methyl-2-thiazoline; 2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(anisole)をそれぞれ271 μmol浸み込ませたろ紙を20分間提示し、その間の心拍数の情報をDataquest A.R.T.ソフトウェア(DataScience international)を用いて10秒ごとに記録した。心拍数変化の値は水を提示した10分間の心拍数とそれぞれの匂い分子を提示した20分間の平均心拍数の差分として計算し、匂いなしの時の心拍数の変化を０とした。後天的な恐怖を誘発する匂いを嗅がせたマウスに関しては、計測の1日前に電気ショックとanisoleの匂いの関連学習を行い、マウスがanisoleの匂いに対して後天的な恐怖を感じるように学習させた。
【0067】
結果
結果を図５に示す。
図５Ａ：チアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を嗅がせた際の心拍数の経時的な変化(平均±標準誤差)を示した(n≧8)。
図５Ｂ：チアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を提示している20分間の心拍数の平均変化を示した。グラフは平均値±標準誤差の値を示し、匂いがない場合(control)と匂いを提示した場合の体表面温度の変化に関してStudentのt検定を行った。***はp<0.001で有意差があることを表す。
チアゾリン類縁化合物(2MT)は心拍数を3分以内に半減させるなどの明確な低下を引き起こした。これに対し、後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)は心拍数に有意な影響を与えなかった。
結果を図５に示す。
図５Ａ：チアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を嗅がせた際の心拍数の経時的な変化(平均±標準誤差)を示した(n≧8)。
図５Ｂ：チアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)を提示している20分間の心拍数の平均変化を示した。グラフは平均値±標準誤差の値を示し、匂いがない場合(control)と匂いを提示した場合の体表面温度の変化に関してStudentのt検定を行った。***はp<0.001で有意差があることを表す。
チアゾリン類縁化合物(2MT)は心拍数を3分以内に半減させるなどの明確な低下を引き起こした。これに対し、後天的恐怖を誘発する匂い分子(anis-FS+)は心拍数に有意な影響を与えなかった。
【0068】
実施例６：チアゾリン類縁化合物によって誘発される皮膚血流量の低下
実験方法
チアゾリン類縁化合物および後天的恐怖を誘発する匂い分子の皮膚血流量に与える影響を解析した。約3か月齢のC57/BL6N雄マウスをテストの約５日前にペントバルビタール(50 mg/kg, i.p.)を用いて麻酔し、背中の毛を脱毛クリームで脱毛した。50 mlチューブに観察窓を開けたマウス保定装置を作成し、除毛した次の日からマウスを保定装置に入れる訓練を行い、この操作をテストの前日まで行い馴化した。テスト当日にはマウスを1匹ずつ保定装置に入れ、粘着テープでレーザードップラープローブをマウスの除毛した背中に張り付けた。血流シグナルが安定したのを確認後、(1) 匂い無し10分、(2) Eugenolの匂いを10分間提示、(3) チアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い(Anis-FS+)を20分間提示し、血流量の変化を計測した。匂いの提示はそれぞれ271 μmolの匂い分子を浸み込ませたろ紙をマウスの鼻先に近づけることで行った。血流量はレーザードップラー血流計(ADVANCE社ALF21D)を用いて10秒ごとに計測した。平均の皮膚血流量は匂い無し(10分)とチアゾリン類縁化合物または後天的恐怖を誘発する匂いの提示中(20分)の血流量の平均値を計算し、匂いなしの平均皮膚血流量を100%として、その相対値として示した。
実験方法
チアゾリン類縁化合物および後天的恐怖を誘発する匂い分子の皮膚血流量に与える影響を解析した。約3か月齢のC57/BL6N雄マウスをテストの約５日前にペントバルビタール(50 mg/kg, i.p.)を用いて麻酔し、背中の毛を脱毛クリームで脱毛した。50 mlチューブに観察窓を開けたマウス保定装置を作成し、除毛した次の日からマウスを保定装置に入れる訓練を行い、この操作をテストの前日まで行い馴化した。テスト当日にはマウスを1匹ずつ保定装置に入れ、粘着テープでレーザードップラープローブをマウスの除毛した背中に張り付けた。血流シグナルが安定したのを確認後、(1) 匂い無し10分、(2) Eugenolの匂いを10分間提示、(3) チアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い(Anis-FS+)を20分間提示し、血流量の変化を計測した。匂いの提示はそれぞれ271 μmolの匂い分子を浸み込ませたろ紙をマウスの鼻先に近づけることで行った。血流量はレーザードップラー血流計(ADVANCE社ALF21D)を用いて10秒ごとに計測した。平均の皮膚血流量は匂い無し(10分)とチアゾリン類縁化合物または後天的恐怖を誘発する匂いの提示中(20分)の血流量の平均値を計算し、匂いなしの平均皮膚血流量を100%として、その相対値として示した。
【0069】
結果
結果を図６に示す。
図６Ａ：チアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(Anis-FS+)を嗅がせた際の血流量の経時的な変化(平均±標準誤差)を示した(n≧8)。
図６Ｂ：匂い無しおよびチアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(Anis-FS+)を提示した際の平均の皮膚血流量を棒グラフで示した。グラフは平均値±標準誤差の値を示し、匂いがない場合と匂いを提示した場合の血流量に関してStudentのt検定を行った。**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを表す。チアゾリン類縁化合物および後天的恐怖を誘発する匂い分子は共に皮膚血流量を低下させた。
チアゾリン類縁化合物によって体温低下が誘発されるメカニズムとしては皮膚血流量を増加させることによる熱交換の促進と熱産生の減少の２つのメカニズムが考えられたが、本結果はチアゾリン類縁化合物が熱交換の促進ではなく熱産生の減少を誘発している可能性を示唆している。
結果を図６に示す。
図６Ａ：チアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(Anis-FS+)を嗅がせた際の血流量の経時的な変化(平均±標準誤差)を示した(n≧8)。
図６Ｂ：匂い無しおよびチアゾリン類縁化合物(2MT)または後天的恐怖を誘発する匂い分子(Anis-FS+)を提示した際の平均の皮膚血流量を棒グラフで示した。グラフは平均値±標準誤差の値を示し、匂いがない場合と匂いを提示した場合の血流量に関してStudentのt検定を行った。**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを表す。チアゾリン類縁化合物および後天的恐怖を誘発する匂い分子は共に皮膚血流量を低下させた。
チアゾリン類縁化合物によって体温低下が誘発されるメカニズムとしては皮膚血流量を増加させることによる熱交換の促進と熱産生の減少の２つのメカニズムが考えられたが、本結果はチアゾリン類縁化合物が熱交換の促進ではなく熱産生の減少を誘発している可能性を示唆している。
【0070】
実施例７：チアゾリン類縁化合物によって誘発される呼吸数の減少
実験方法
チアゾリン類縁化合物および後天的恐怖を誘発する匂い分子の呼吸数に与える影響を解析した。呼吸数はパルスオキシメーター(Mouse Oxplus; STARR Life Science)を用いて解析した。約3か月齢のC57/BL6N雄マウスをテストの約1週間前からオキシメータープローブを首に貼りつける操作を繰り返し行い馴化させた。テストの2日前にマウスをペントバルビタール(50 mg/kg, i.p.)を用いて麻酔し、首の毛を脱毛クリームで脱毛した。テスト当日にはマウスの除毛した首にオキシメータープローブを貼りつけ、シグナルが安定したのを確認後、匂い無しのベースラインを10分間測定した後に、チアゾリン類縁化合物(2MT)または中立の匂い(Eugenol; Eug)を提示した際の呼吸数の変化を20分間計測した(各n=6)。それぞれの匂いは271 μmolの匂いを浸み込ませたろ紙をテストケージに入れることで提示した。オキシメーターのシグナルは1Hzで取得した。平均呼吸数は匂い無し10分間と匂い提示後20分間の呼吸数の平均を示した。
実験方法
チアゾリン類縁化合物および後天的恐怖を誘発する匂い分子の呼吸数に与える影響を解析した。呼吸数はパルスオキシメーター(Mouse Oxplus; STARR Life Science)を用いて解析した。約3か月齢のC57/BL6N雄マウスをテストの約1週間前からオキシメータープローブを首に貼りつける操作を繰り返し行い馴化させた。テストの2日前にマウスをペントバルビタール(50 mg/kg, i.p.)を用いて麻酔し、首の毛を脱毛クリームで脱毛した。テスト当日にはマウスの除毛した首にオキシメータープローブを貼りつけ、シグナルが安定したのを確認後、匂い無しのベースラインを10分間測定した後に、チアゾリン類縁化合物(2MT)または中立の匂い(Eugenol; Eug)を提示した際の呼吸数の変化を20分間計測した(各n=6)。それぞれの匂いは271 μmolの匂いを浸み込ませたろ紙をテストケージに入れることで提示した。オキシメーターのシグナルは1Hzで取得した。平均呼吸数は匂い無し10分間と匂い提示後20分間の呼吸数の平均を示した。
【0071】
結果
結果を図７に示す。
図７Ａ：チアゾリン類縁化合物(2MT)またはスパイスの匂い(Eug)を嗅がせた際の呼吸数の経時的な変化(平均±標準誤差)を示した(n=6)。
図７Ｂ：スパイスの匂い(Eug)を提示した群とチアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した群について、匂い無しのベースラインの平均呼吸数(ctrl)と匂い(Eug又は2MT)を提示した際の平均呼吸数を棒グラフで示した。グラフは平均値±標準誤差の値を示し、2MTを提示した群とEugを提示した群の呼吸数に関してStudentのt検定を行った。**はp<0.01で有意差があることを、nsはp>0.05で有意差がないことを表す。
チアゾリン類縁化合物によって呼吸数が約半分に低下することが明らかになった。体温低下や代謝量の低下は冬眠時の動物によって観察されるが、冬眠時の動物では呼吸数が低下することがよく知られている。チアゾリン類縁化合物によっても冬眠時と同様に呼吸数低下が引き起こされることが明らかになった。
結果を図７に示す。
図７Ａ：チアゾリン類縁化合物(2MT)またはスパイスの匂い(Eug)を嗅がせた際の呼吸数の経時的な変化(平均±標準誤差)を示した(n=6)。
図７Ｂ：スパイスの匂い(Eug)を提示した群とチアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した群について、匂い無しのベースラインの平均呼吸数(ctrl)と匂い(Eug又は2MT)を提示した際の平均呼吸数を棒グラフで示した。グラフは平均値±標準誤差の値を示し、2MTを提示した群とEugを提示した群の呼吸数に関してStudentのt検定を行った。**はp<0.01で有意差があることを、nsはp>0.05で有意差がないことを表す。
チアゾリン類縁化合物によって呼吸数が約半分に低下することが明らかになった。体温低下や代謝量の低下は冬眠時の動物によって観察されるが、冬眠時の動物では呼吸数が低下することがよく知られている。チアゾリン類縁化合物によっても冬眠時と同様に呼吸数低下が引き起こされることが明らかになった。
【0072】
実施例８：チアゾリン類縁化合物によって誘発される酸素消費量の低下
実験方法
チアゾリン類縁化合物の酸素消費量に与える影響を解析した。酸素消費量は小動物用エネルギー代謝測定装置(ARCO-2000; アルコシステム)を用いて解析した。約3か月齢のC57/BL6N雄マウスを1匹ずつ計測チャンバーに入れ、約2時間馴化後、チアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した。匂いの提示は100 μl(104 mmol)の匂い分子を浸み込ませたろ紙を計測チャンバーに入れる事で行った。コントロールとして生理食塩水(Saline)を浸み込ませたろ紙をマウスに提示する実験も行った。酸素消費量の計測は1分毎に行った。平均酸素消費量は匂い提示前の10分間と匂い提示後の20分間の平均として算出した。
実験方法
チアゾリン類縁化合物の酸素消費量に与える影響を解析した。酸素消費量は小動物用エネルギー代謝測定装置(ARCO-2000; アルコシステム)を用いて解析した。約3か月齢のC57/BL6N雄マウスを1匹ずつ計測チャンバーに入れ、約2時間馴化後、チアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した。匂いの提示は100 μl(104 mmol)の匂い分子を浸み込ませたろ紙を計測チャンバーに入れる事で行った。コントロールとして生理食塩水(Saline)を浸み込ませたろ紙をマウスに提示する実験も行った。酸素消費量の計測は1分毎に行った。平均酸素消費量は匂い提示前の10分間と匂い提示後の20分間の平均として算出した。
【0073】
結果
結果を図８に示す。
図８Ａ：チアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した際と匂い無し(Saline)の際のマウスの体重当たりの酸素消費量の経時的な変化(平均±標準誤差)を示した(n=8)。
図８Ｂ：チアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した際と匂い無しの際のマウスの体重当たりの平均酸素消費量を棒グラフで示した。グラフは平均値±標準誤差の値を示し、2MTを提示した場合とSalineを提示した場合の酸素消費量に関してStudentのt検定を行った。***はp<0.001で有意差があることを、nsはp>0.05で有意差がないことを表す。
コントロール(saline)の条件では新規物質（ろ紙）を提示することで酸素消費量が上昇した。それに対してチアゾリン類縁化合物(2MT)を提示すると酸素消費量が顕著に減少した。冬眠時の動物では代謝量が減少するのに伴い酸素消費量が減少することが知られているが、同様の変化がチアゾリン類縁化合物によっても引き起こされることが示された。
結果を図８に示す。
図８Ａ：チアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した際と匂い無し(Saline)の際のマウスの体重当たりの酸素消費量の経時的な変化(平均±標準誤差)を示した(n=8)。
図８Ｂ：チアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した際と匂い無しの際のマウスの体重当たりの平均酸素消費量を棒グラフで示した。グラフは平均値±標準誤差の値を示し、2MTを提示した場合とSalineを提示した場合の酸素消費量に関してStudentのt検定を行った。***はp<0.001で有意差があることを、nsはp>0.05で有意差がないことを表す。
コントロール(saline)の条件では新規物質（ろ紙）を提示することで酸素消費量が上昇した。それに対してチアゾリン類縁化合物(2MT)を提示すると酸素消費量が顕著に減少した。冬眠時の動物では代謝量が減少するのに伴い酸素消費量が減少することが知られているが、同様の変化がチアゾリン類縁化合物によっても引き起こされることが示された。
【0074】
実施例９：チアゾリン類縁化合物によって誘発される低酸素抵抗性
実験方法
約3か月齢のC57/BL6N雄マウスを1匹ずつ密封性の高い飼育ケージに入れ、飼育ケージ内にチアゾリン類縁化合物(2MT)を計100 μl(104 mmol)浸み込ませたろ紙を入れ、50分間匂いを提示した。匂い提示後、酸素濃度を4%に調整したタイトボックス内にマウスを入れ、マウスの生存時間を最大30分まで計測した。コントロールとして水を浸み込ませたろ紙を提示したマウスの生存時間も計測した(no odor)。また、本実施例と同じ条件で匂いを提示した際の体深部温度の変化を実施例４と同様の実験方法で計測した。
実験方法
約3か月齢のC57/BL6N雄マウスを1匹ずつ密封性の高い飼育ケージに入れ、飼育ケージ内にチアゾリン類縁化合物(2MT)を計100 μl(104 mmol)浸み込ませたろ紙を入れ、50分間匂いを提示した。匂い提示後、酸素濃度を4%に調整したタイトボックス内にマウスを入れ、マウスの生存時間を最大30分まで計測した。コントロールとして水を浸み込ませたろ紙を提示したマウスの生存時間も計測した(no odor)。また、本実施例と同じ条件で匂いを提示した際の体深部温度の変化を実施例４と同様の実験方法で計測した。
【0075】
結果
結果を図９に示す。
図９Ａ：チアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した際と匂い無し(no odor)の際のマウスの4%酸素中での生存時間を、カプランマイヤー曲線を用いて示した(各n=6)。
図９Ｂ：図９Ａの実施例と同じ条件で匂い提示を行った際の体深部温度の経時変化(平均±標準誤差)を示した(2MT, n=8; no odor, n=6)。
匂い無しのコントロールの条件では4%酸素中では20分以内に全ての個体が死亡するのに対し、チアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した条件では30分後でも多くの個体が生存した。本実施例で採用した匂いの提示条件でも体深部温度の顕著な低下が認められた。チアゾリン類縁化合物によって低酸素抵抗性が生じることが示された。
結果を図９に示す。
図９Ａ：チアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した際と匂い無し(no odor)の際のマウスの4%酸素中での生存時間を、カプランマイヤー曲線を用いて示した(各n=6)。
図９Ｂ：図９Ａの実施例と同じ条件で匂い提示を行った際の体深部温度の経時変化(平均±標準誤差)を示した(2MT, n=8; no odor, n=6)。
匂い無しのコントロールの条件では4%酸素中では20分以内に全ての個体が死亡するのに対し、チアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した条件では30分後でも多くの個体が生存した。本実施例で採用した匂いの提示条件でも体深部温度の顕著な低下が認められた。チアゾリン類縁化合物によって低酸素抵抗性が生じることが示された。
【0076】
実施例１０：様々な複素環化合物によって誘発される低酸素抵抗性
実験方法
様々な種類の複素環化合物を腹腔内投与した際のマウスの低酸素環境下での生存時間への影響を解析した。匂い分子の投与は、生理食塩水で100倍希釈した溶液200 μl(約80 mg/k g, i.p.)を腹腔内注射し、30分後に酸素濃度を4%に調整したタイトボックス内にマウスを入れ、マウスの生存時間を最大30分まで計測した。コントロールとして、生理食塩水を腹腔内注射したマウス（コントロール）の生存時間を計測した。
実験方法
様々な種類の複素環化合物を腹腔内投与した際のマウスの低酸素環境下での生存時間への影響を解析した。匂い分子の投与は、生理食塩水で100倍希釈した溶液200 μl(約80 mg/k g, i.p.)を腹腔内注射し、30分後に酸素濃度を4%に調整したタイトボックス内にマウスを入れ、マウスの生存時間を最大30分まで計測した。コントロールとして、生理食塩水を腹腔内注射したマウス（コントロール）の生存時間を計測した。
【0077】
結果
結果を図１０Ａに示す。
図１０Ａ：それぞれの複素環化合物を腹腔内注射した際のマウスの4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を棒グラフで示した。生存時間は、生理食塩水を腹腔内注射したコントロールの平均生存時間を100%とし、その相対値（％）で示した(n=4)。コントロール群と各化合物投与群との間で生存時間に関してStudentのt検定を行った。*はp<0.05、**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを表す。
図１０Ｂ：実施例１０で使用した化合物の構造式をグラフの順に示した。
様々な種類の複素環化合物によって低酸素抵抗性が生じることが示された。
結果を図１０Ａに示す。
図１０Ａ：それぞれの複素環化合物を腹腔内注射した際のマウスの4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を棒グラフで示した。生存時間は、生理食塩水を腹腔内注射したコントロールの平均生存時間を100%とし、その相対値（％）で示した(n=4)。コントロール群と各化合物投与群との間で生存時間に関してStudentのt検定を行った。*はp<0.05、**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを表す。
図１０Ｂ：実施例１０で使用した化合物の構造式をグラフの順に示した。
様々な種類の複素環化合物によって低酸素抵抗性が生じることが示された。
【0078】
実施例１１：イソチオシアネート化合物によって誘発される低酸素抵抗性
実験方法
実施例１０と同様の方法で、各種イソチオシアネート化合物を腹腔内投与(約80 mg/kg, i.p.)した際のマウスの低酸素環境下での生存時間への影響を解析した。
実験方法
実施例１０と同様の方法で、各種イソチオシアネート化合物を腹腔内投与(約80 mg/kg, i.p.)した際のマウスの低酸素環境下での生存時間への影響を解析した。
【0079】
結果
結果を図１１Ａに示す。
図１１Ａ：それぞれの化合物を腹腔内注射した際のマウスの4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を棒グラフで示した。生存時間は、生理食塩水を腹腔内注射したコントロールの平均生存時間を100%とし、その相対値（％）で示した(n=4)。コントロール群と各化合物投与群との間で生存時間に関してStudentのt検定を行った。*はp<0.05、**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを表す。
図１１Ｂ：実施例１１で使用した化合物の構造式をグラフの順に示した。
各種イソチオシアネート化合物によって低酸素抵抗性が生じることが示された。
結果を図１１Ａに示す。
図１１Ａ：それぞれの化合物を腹腔内注射した際のマウスの4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を棒グラフで示した。生存時間は、生理食塩水を腹腔内注射したコントロールの平均生存時間を100%とし、その相対値（％）で示した(n=4)。コントロール群と各化合物投与群との間で生存時間に関してStudentのt検定を行った。*はp<0.05、**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを表す。
図１１Ｂ：実施例１１で使用した化合物の構造式をグラフの順に示した。
各種イソチオシアネート化合物によって低酸素抵抗性が生じることが示された。
【0080】
実施例１２：チオモルホリン(thiomorpholine)腹腔内投与によって誘発される低酸素抵抗性
実験方法
約3か月齢のC57/BL6N雄マウスに生理食塩水で100倍希釈したチオモルホリン溶液200 μl(約80 mg/kg, i.p.)を腹腔内注射し、30分後に酸素濃度を4%に調整したタイトボックス内にマウスを入れ、マウスの生存時間を計測した。コントロールとして生理食塩水を腹腔内注射したマウスの生存時間を計測した。
実験方法
約3か月齢のC57/BL6N雄マウスに生理食塩水で100倍希釈したチオモルホリン溶液200 μl(約80 mg/kg, i.p.)を腹腔内注射し、30分後に酸素濃度を4%に調整したタイトボックス内にマウスを入れ、マウスの生存時間を計測した。コントロールとして生理食塩水を腹腔内注射したマウスの生存時間を計測した。
【0081】
結果
結果を図１２に示す。
図１２：チオモルホリンと生理食塩水を投与したマウスの4%酸素中での生存時間を、カプランマイヤー曲線を用いて示した(n=6)。
チオモルホリンによって低酸素抵抗性が生じることが示された。
結果を図１２に示す。
図１２：チオモルホリンと生理食塩水を投与したマウスの4%酸素中での生存時間を、カプランマイヤー曲線を用いて示した(n=6)。
チオモルホリンによって低酸素抵抗性が生じることが示された。
【0082】
実施例１３：NaHS腹腔内投与による4%酸素条件下での生存時間への影響
実験方法
約3か月齢のC57/BL6N雄マウスにNaHS溶液200 μlを腹腔内注射し、30分後に酸素濃度を4%に調整したタイトボックス内にマウスを入れ、マウスの生存時間を最大30分間計測した。NaHSは0.1%、0.125%、0.05%、0.0125%の4種類の濃度の溶液を用いた。このうち、0.1%溶液を腹腔内注射した場合には数分以内にマウスが死亡してしまったことから残りの３つの濃度で生存時間の計測を行った。コントロールとして生理食塩水(saline)、２－メチルチオフェン(2-methylthiophene)(1%溶液)を腹腔内注射した際の4%酸素中での生存時間を解析した。
実験方法
約3か月齢のC57/BL6N雄マウスにNaHS溶液200 μlを腹腔内注射し、30分後に酸素濃度を4%に調整したタイトボックス内にマウスを入れ、マウスの生存時間を最大30分間計測した。NaHSは0.1%、0.125%、0.05%、0.0125%の4種類の濃度の溶液を用いた。このうち、0.1%溶液を腹腔内注射した場合には数分以内にマウスが死亡してしまったことから残りの３つの濃度で生存時間の計測を行った。コントロールとして生理食塩水(saline)、２－メチルチオフェン(2-methylthiophene)(1%溶液)を腹腔内注射した際の4%酸素中での生存時間を解析した。
【0083】
結果
結果を図１３に示す。
図１３：図１３に示されたそれぞれの溶液を腹腔内注射したマウスの生存時間を各個体ごとにプロットした。点線で示された２つの群の間で生存時間の比較をStudentのt検定を用いて行った。***はp<0.001で有意差があることを、nsはp>0.05で有意差がないことを示す。
H2Sの供与体であるNaHSは虚血再灌流障害の防止効果を持つことが報告されている（Yu et al., Cell Physiol Biochem 36: 1539-1551, 2015）。しかしながら、NaHSは濃い濃度では注射後速やかにマウスが死亡してしまい、薄い濃度では低酸素抵抗性は認められなかった。これに対し、チアゾリン類縁化合物の1種である２－メチルチオフェンを投与したマウスでは、全ての個体において30分間の観察時間の間4%酸素中での生存が認められた。
結果を図１３に示す。
図１３：図１３に示されたそれぞれの溶液を腹腔内注射したマウスの生存時間を各個体ごとにプロットした。点線で示された２つの群の間で生存時間の比較をStudentのt検定を用いて行った。***はp<0.001で有意差があることを、nsはp>0.05で有意差がないことを示す。
H2Sの供与体であるNaHSは虚血再灌流障害の防止効果を持つことが報告されている（Yu et al., Cell Physiol Biochem 36: 1539-1551, 2015）。しかしながら、NaHSは濃い濃度では注射後速やかにマウスが死亡してしまい、薄い濃度では低酸素抵抗性は認められなかった。これに対し、チアゾリン類縁化合物の1種である２－メチルチオフェンを投与したマウスでは、全ての個体において30分間の観察時間の間4%酸素中での生存が認められた。
【0084】
実施例１４：チアゾリン類縁化合物による虚血再灌流障害の軽減効果
実験方法
皮膚の虚血再灌流障害モデルマウスはUchiyamaらの方法に従って以下の通り作成した(Uchiyama et al., Sci Rep 5: 9072, 2015)。約3か月齢のC57/BL6N雄マウスはテストの2-3日前に実施例１と同様の方法により背中の毛を除毛した。テスト当日にマウスは1匹ずつ密封性の高いケージに入れ、飼育ケージ内にチアゾリン類縁化合物(2MT)を計100 μl(104 mmol)浸み込ませたろ紙を入れ、30分間匂いを提示した。コントロールとしては水を浸み込ませたろ紙を30分間提示した(no odor)。30分後にマウスをケージから取り出し、背中の皮膚を２つの円形の磁石ではさみ、密封ケージに戻した。密封ケージ内にさらに100 μl(104 mmol)の2MTまたは水を浸み込ませたろ紙を入れ、12時間マウスを放置した。12時間後にマウスを密封ケージから取り出し、磁石を外し、匂い無しの通常の飼育ケージに移した。磁石ではさんでいた背中の皮膚の状態を毎日写真撮影することで記録した。取得した画像を元に創傷の面積を画像解析ソフト(Photoshop, Adobe)で定量化した。また、本実施例と同じ条件で匂いを提示した際の体深部温度の変化を実施例２と同様の実験方法で計測した。
実験方法
皮膚の虚血再灌流障害モデルマウスはUchiyamaらの方法に従って以下の通り作成した(Uchiyama et al., Sci Rep 5: 9072, 2015)。約3か月齢のC57/BL6N雄マウスはテストの2-3日前に実施例１と同様の方法により背中の毛を除毛した。テスト当日にマウスは1匹ずつ密封性の高いケージに入れ、飼育ケージ内にチアゾリン類縁化合物(2MT)を計100 μl(104 mmol)浸み込ませたろ紙を入れ、30分間匂いを提示した。コントロールとしては水を浸み込ませたろ紙を30分間提示した(no odor)。30分後にマウスをケージから取り出し、背中の皮膚を２つの円形の磁石ではさみ、密封ケージに戻した。密封ケージ内にさらに100 μl(104 mmol)の2MTまたは水を浸み込ませたろ紙を入れ、12時間マウスを放置した。12時間後にマウスを密封ケージから取り出し、磁石を外し、匂い無しの通常の飼育ケージに移した。磁石ではさんでいた背中の皮膚の状態を毎日写真撮影することで記録した。取得した画像を元に創傷の面積を画像解析ソフト(Photoshop, Adobe)で定量化した。また、本実施例と同じ条件で匂いを提示した際の体深部温度の変化を実施例２と同様の実験方法で計測した。
【0085】
結果
結果を図１４に示す。
図１４Ａ：匂い無しの条件での創傷部の変化を個体ごとに毎日観察した結果を示した(n=5)。
図１４Ｂ：2MTを提示した条件での創傷部の変化を個体ごとに毎日観察した結果を示した(n=5)。
図１４Ｃ：ＡおよびＢで観察された創傷部の面積を定量化した。グラフは創傷部の面積の経時変化(平均±標準誤差)を、3日後の匂い無しの条件での創傷部の面積の平均を100％とした相対値で示した。同じ日に観察された2MTを提示した場合と匂い無しの場合の創傷部の面積に関してStudentのt検定を行った。**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを表す。
図１４Ｄ：Ａ－Ｃの実施例と同じ条件で匂い提示を行った際の体深部温度の経時変化(平均±標準誤差)を示した(各n=6)。
匂い無しのコントロールでは、皮膚を磁石で12時間はさむことで褥瘡ができるのに対し、2MTを嗅がせた条件では褥瘡の形成が有意に減少した。本実施例で採用した匂いの提示条件でも体深部温度の顕著な低下が認められた。褥瘡は持続的な圧迫によって虚血状態になることで引き起こされる。チアゾリン類縁化合物が虚血再灌流障害の軽減・防止効果を持つことが示された。
結果を図１４に示す。
図１４Ａ：匂い無しの条件での創傷部の変化を個体ごとに毎日観察した結果を示した(n=5)。
図１４Ｂ：2MTを提示した条件での創傷部の変化を個体ごとに毎日観察した結果を示した(n=5)。
図１４Ｃ：ＡおよびＢで観察された創傷部の面積を定量化した。グラフは創傷部の面積の経時変化(平均±標準誤差)を、3日後の匂い無しの条件での創傷部の面積の平均を100％とした相対値で示した。同じ日に観察された2MTを提示した場合と匂い無しの場合の創傷部の面積に関してStudentのt検定を行った。**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを表す。
図１４Ｄ：Ａ－Ｃの実施例と同じ条件で匂い提示を行った際の体深部温度の経時変化(平均±標準誤差)を示した(各n=6)。
匂い無しのコントロールでは、皮膚を磁石で12時間はさむことで褥瘡ができるのに対し、2MTを嗅がせた条件では褥瘡の形成が有意に減少した。本実施例で採用した匂いの提示条件でも体深部温度の顕著な低下が認められた。褥瘡は持続的な圧迫によって虚血状態になることで引き起こされる。チアゾリン類縁化合物が虚血再灌流障害の軽減・防止効果を持つことが示された。
【0086】
実施例１５：Trpa1ノックアウトマウスのチアゾリン類縁化合物に対する体表面温度の変化
実験方法
約3か月齢の雄のTrpa1ノックアウトマウスとその同腹のヘテロマウスを用いて、実施例１と同様の方法でチアゾリン類縁化合物(2MT)によって誘発される体表面温度の変化を解析した。体表面温度の変化は、2MT提示中の20分間の体表面温度の平均から、匂い無しで馴化中の体表面温度の平均を引いた差分として計算した。
実験方法
約3か月齢の雄のTrpa1ノックアウトマウスとその同腹のヘテロマウスを用いて、実施例１と同様の方法でチアゾリン類縁化合物(2MT)によって誘発される体表面温度の変化を解析した。体表面温度の変化は、2MT提示中の20分間の体表面温度の平均から、匂い無しで馴化中の体表面温度の平均を引いた差分として計算した。
【0087】
結果
結果を図１５に示す。
図１５：コントロールマウス(trpa1+/-; n=5)およびTrpa1ノックアウトマウス(trpa1-/-; n=8)にチアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した際の体表面温度の変化の平均を示した。コントロールマウスとノックアウトマウスの体表面温度の変化に関してStudentのt検定を行った。**はp<0.01で有意差があることを示す。
Trpa1ノックアウトマウスではチアゾリン類縁化合物(2MT)によって誘発される体表面温度の減少が観察されなかった。2MTによる体表面温度の減少はTrpa1によって誘発されていることが示唆された。
結果を図１５に示す。
図１５：コントロールマウス(trpa1+/-; n=5)およびTrpa1ノックアウトマウス(trpa1-/-; n=8)にチアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した際の体表面温度の変化の平均を示した。コントロールマウスとノックアウトマウスの体表面温度の変化に関してStudentのt検定を行った。**はp<0.01で有意差があることを示す。
Trpa1ノックアウトマウスではチアゾリン類縁化合物(2MT)によって誘発される体表面温度の減少が観察されなかった。2MTによる体表面温度の減少はTrpa1によって誘発されていることが示唆された。
【0088】
実施例１６：Trpa1ノックアウトマウスのチアゾリン類縁化合物に対する体深部温度の変化
実験方法
約3か月齢の雄のTrpa1ノックアウトマウスとその同腹のヘテロマウスを用いて、実施例２と同様の方法でチアゾリン類縁化合物(2MT)によって誘発される体深部温度の変化を解析した。体深部温度の変化は、2MT提示中の20分間の体深部温度の平均から、匂い無しで馴化中の体深部温度の平均を引いた差分として計算した。
実験方法
約3か月齢の雄のTrpa1ノックアウトマウスとその同腹のヘテロマウスを用いて、実施例２と同様の方法でチアゾリン類縁化合物(2MT)によって誘発される体深部温度の変化を解析した。体深部温度の変化は、2MT提示中の20分間の体深部温度の平均から、匂い無しで馴化中の体深部温度の平均を引いた差分として計算した。
【0089】
結果
結果を図１６に示す。
図１６Ａ：コントロールマウス(trpa1+/-; n=7)およびTrpa1ノックアウトマウス(trpa1-/-; n=7)に2MTを提示した際の体深部温度の経時的な変化を示した。
図１６Ｂ：コントロールマウス(trpa1+/-)およびTrpa1ノックアウトマウス(trpa1-/-)に2MTを提示した際の体深部温度の変化の平均を示した。コントロールマウスとノックアウトマウスの体深部温度の変化に関してStudentのt検定を行った。***はp<0.001で有意差があることを示す。
Trpa1ノックアウトマウスではチアゾリン類縁化合物(2MT)によって誘発される体深部温度の減少が観察されなかった。2MTによる体深部温度の減少はTrpa1によって誘発されていることが示唆された。
結果を図１６に示す。
図１６Ａ：コントロールマウス(trpa1+/-; n=7)およびTrpa1ノックアウトマウス(trpa1-/-; n=7)に2MTを提示した際の体深部温度の経時的な変化を示した。
図１６Ｂ：コントロールマウス(trpa1+/-)およびTrpa1ノックアウトマウス(trpa1-/-)に2MTを提示した際の体深部温度の変化の平均を示した。コントロールマウスとノックアウトマウスの体深部温度の変化に関してStudentのt検定を行った。***はp<0.001で有意差があることを示す。
Trpa1ノックアウトマウスではチアゾリン類縁化合物(2MT)によって誘発される体深部温度の減少が観察されなかった。2MTによる体深部温度の減少はTrpa1によって誘発されていることが示唆された。
【0090】
実施例１７：Trpa1 ノックアウトマウスのチアゾリン類縁化合物によって誘発される低酸素抵抗性
実験方法
約3か月齢の雄のTrpa1ノックアウトマウスとその同腹のヘテロマウスに対してチアゾリン類縁化合物(2MT)を10分間提示し、その後、酸素濃度を4%に調整したタイトボックス内にマウスを入れ、マウスの生存時間を最大30分まで計測した。匂いの提示は、271 μmolの2MTを浸み込ませたろ紙を飼育ケージ内に入れる方法で行った。コントロールとして、生理食塩水を浸み込ませたろ紙を提示する実験も行った(no odor)。
実験方法
約3か月齢の雄のTrpa1ノックアウトマウスとその同腹のヘテロマウスに対してチアゾリン類縁化合物(2MT)を10分間提示し、その後、酸素濃度を4%に調整したタイトボックス内にマウスを入れ、マウスの生存時間を最大30分まで計測した。匂いの提示は、271 μmolの2MTを浸み込ませたろ紙を飼育ケージ内に入れる方法で行った。コントロールとして、生理食塩水を浸み込ませたろ紙を提示する実験も行った(no odor)。
【0091】
結果
結果を図１７に示す。
図１７：コントロールマウス (Hetero) およびTrpa1ノックアウトマウス (KO)に生理食塩水または2MTを提示した際の4%酸素中での生存時間の平均を示した（heteroのno odorはn=6、それ以外はn=7）。それぞれのマウスについて、生理食塩水と2MTを提示した際の生存時間に関してStudentのt検定を行った。*はp<0.05で有意差があることを、nsはp>0.05で有意差がないことを示す。
コントロールマウスとは異なり、Trpa1ノックアウトマウスではチアゾリン類縁化合物(2MT)を提示しても4%酸素中での生存時間が有意に増加しなかった。チアゾリン類縁化合物によって誘発される低酸素抵抗性はTrpa1を介することが示唆された。
結果を図１７に示す。
図１７：コントロールマウス (Hetero) およびTrpa1ノックアウトマウス (KO)に生理食塩水または2MTを提示した際の4%酸素中での生存時間の平均を示した（heteroのno odorはn=6、それ以外はn=7）。それぞれのマウスについて、生理食塩水と2MTを提示した際の生存時間に関してStudentのt検定を行った。*はp<0.05で有意差があることを、nsはp>0.05で有意差がないことを示す。
コントロールマウスとは異なり、Trpa1ノックアウトマウスではチアゾリン類縁化合物(2MT)を提示しても4%酸素中での生存時間が有意に増加しなかった。チアゾリン類縁化合物によって誘発される低酸素抵抗性はTrpa1を介することが示唆された。
【0092】
実施例１８：敗血症モデルにおける様々な複素環化合物およびイソチオシアネート化合物の血中TNF-α抑制効果
実験方法
約２-３ヶ月齢の雄のBalb/cマウスにlipopolysaccharide (LPS) (0.6 mg/kg)を腹腔内投与し、敗血症モデルを作成した。LPS投与直後に様々な複素環化合物およびイソチオシアネート化合物を生理食塩水で100倍希釈した溶液200 μl（約80 mg/kg）を腹腔内投与した。LPSおよび化合物投与60分後に採血を行い、EDTA血漿を調製し、炎症性サイトカインであるTNF-αの血中量をELISA法により計測した。
実験方法
約２-３ヶ月齢の雄のBalb/cマウスにlipopolysaccharide (LPS) (0.6 mg/kg)を腹腔内投与し、敗血症モデルを作成した。LPS投与直後に様々な複素環化合物およびイソチオシアネート化合物を生理食塩水で100倍希釈した溶液200 μl（約80 mg/kg）を腹腔内投与した。LPSおよび化合物投与60分後に採血を行い、EDTA血漿を調製し、炎症性サイトカインであるTNF-αの血中量をELISA法により計測した。
【0093】
結果
結果を図１８に示す。図１８中の"4-Ethyl-2-methyl-thiazoline"は、4-エチル-2-メチル-2-チアゾリンを意味する。
それぞれの化合物を投与した際の血中のTNF-α量（平均±標準誤差）を棒グラフで示した。TNF-α量は、LPSのみを投与し、化合物を投与しなかった場合(saline)の平均TNF-α量を100%とし、その相対値(%)で示した(n≧4)。コントロール群(saline)と各化合物投与群との間でTNF-α量に関してStudentのt検定を行なった。*はp<0.5、**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを表す。様々な種類の複素環化合物およびイソチオシアネート化合物の投与によって炎症性サイトカインであるTNF-α量の血中濃度が減少することから、これらの化合物は敗血症モデル動物において抗炎症効果を持つことが示された。
結果を図１８に示す。図１８中の"4-Ethyl-2-methyl-thiazoline"は、4-エチル-2-メチル-2-チアゾリンを意味する。
それぞれの化合物を投与した際の血中のTNF-α量（平均±標準誤差）を棒グラフで示した。TNF-α量は、LPSのみを投与し、化合物を投与しなかった場合(saline)の平均TNF-α量を100%とし、その相対値(%)で示した(n≧4)。コントロール群(saline)と各化合物投与群との間でTNF-α量に関してStudentのt検定を行なった。*はp<0.5、**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを表す。様々な種類の複素環化合物およびイソチオシアネート化合物の投与によって炎症性サイトカインであるTNF-α量の血中濃度が減少することから、これらの化合物は敗血症モデル動物において抗炎症効果を持つことが示された。
【0094】
実施例１９：敗血症モデルにおける炎症性サイトカイン・抗炎症性サイトカイン産生に対するチアゾリン類縁化合物の効果
実験方法
実施例１８と同じ方法で敗血症モデルマウスを作成した。LPS投与直後に生理食塩水で100倍希釈したチアゾリン類縁化合物(2MT)溶液200 μl (約80 mg/kg)を腹腔内投与した。LPSおよびチアゾリン類縁化合物(2MT)を投与して1時間後および4時間後に採血を行い、EDTA血漿を調製し、炎症性サイトカインであるInterleukin-1β (IL-1β)、および抗炎症性サイトカインであるInterleukin-10 (IL-10)の血中量をELISA法により計測した。
実験方法
実施例１８と同じ方法で敗血症モデルマウスを作成した。LPS投与直後に生理食塩水で100倍希釈したチアゾリン類縁化合物(2MT)溶液200 μl (約80 mg/kg)を腹腔内投与した。LPSおよびチアゾリン類縁化合物(2MT)を投与して1時間後および4時間後に採血を行い、EDTA血漿を調製し、炎症性サイトカインであるInterleukin-1β (IL-1β)、および抗炎症性サイトカインであるInterleukin-10 (IL-10)の血中量をELISA法により計測した。
【0095】
結果
結果を図１９に示す。
チアゾリン類縁化合物(2MT)を投与した際とコントロールとしてsalineを投与した際のIL-1β量（図１９Ａ）、IL-10量（図１９Ｂ）(全て平均±標準誤差）を棒グラフで示した(n=6)。コントロール群(saline)とチアゾリン類縁化合物(2MT)投与群との間でそれぞれの条件でStudentのt検定を行なった。*はp<0.05、**はp<0.01で有意差があることを表す。チアゾリン類縁化合物の投与によって炎症性サイトカインであるIL-1βの血中濃度が減少し、逆に抗炎症性サイトカインであるIL-10の血中濃度が増加することから、チアゾリン類縁化合物は敗血症モデル動物において抗炎症効果を持つことが示された。
結果を図１９に示す。
チアゾリン類縁化合物(2MT)を投与した際とコントロールとしてsalineを投与した際のIL-1β量（図１９Ａ）、IL-10量（図１９Ｂ）(全て平均±標準誤差）を棒グラフで示した(n=6)。コントロール群(saline)とチアゾリン類縁化合物(2MT)投与群との間でそれぞれの条件でStudentのt検定を行なった。*はp<0.05、**はp<0.01で有意差があることを表す。チアゾリン類縁化合物の投与によって炎症性サイトカインであるIL-1βの血中濃度が減少し、逆に抗炎症性サイトカインであるIL-10の血中濃度が増加することから、チアゾリン類縁化合物は敗血症モデル動物において抗炎症効果を持つことが示された。
【0096】
実施例２０：敗血症モデルにおけるチアゾリン類縁化合物の炎症性メディエーターHMGB1抑制効果
実験方法
実施例１８と同じ方法で敗血症モデルマウスを作成した。LPS投与直後に生理食塩水で100倍希釈したチアゾリン類縁化合物(2MT)溶液200 μl(約80 mg/kg)を腹腔内投与した。LPSおよびチアゾリン類縁化合物(2MT)を投与して16時間後に採血を行い、EDTA血漿を調製し、炎症性メディエーターであるHigh Mobility Group Box 1 (HMGB1)の血中量をELISA法により計測した。
実験方法
実施例１８と同じ方法で敗血症モデルマウスを作成した。LPS投与直後に生理食塩水で100倍希釈したチアゾリン類縁化合物(2MT)溶液200 μl(約80 mg/kg)を腹腔内投与した。LPSおよびチアゾリン類縁化合物(2MT)を投与して16時間後に採血を行い、EDTA血漿を調製し、炎症性メディエーターであるHigh Mobility Group Box 1 (HMGB1)の血中量をELISA法により計測した。
【0097】
結果
結果を図２０に示す。
チアゾリン類縁化合物(2MT)を投与した際とコントロールとしてsalineを投与した際の血中のHMGB1量 (平均±標準誤差）を棒グラフで示した(n=6)。コントロール群(saline)とチアゾリン類縁化合物(2MT)投与群との間でStudentのt検定を行なった。***はp<0.001で有意差があることを表す。チアゾリン類縁化合物の投与によって炎症性メディエーターあるHMGB1の血中濃度が減少することから、チアゾリン類縁化合物は敗血症モデル動物において抗炎症効果を持つことが示された。
結果を図２０に示す。
チアゾリン類縁化合物(2MT)を投与した際とコントロールとしてsalineを投与した際の血中のHMGB1量 (平均±標準誤差）を棒グラフで示した(n=6)。コントロール群(saline)とチアゾリン類縁化合物(2MT)投与群との間でStudentのt検定を行なった。***はp<0.001で有意差があることを表す。チアゾリン類縁化合物の投与によって炎症性メディエーターあるHMGB1の血中濃度が減少することから、チアゾリン類縁化合物は敗血症モデル動物において抗炎症効果を持つことが示された。
【0098】
実施例２１：チアゾリン類縁化合物腹腔内投与による敗血症モデル動物の生存時間の延長効果
実験方法
実施例１８と同じ方法で敗血症モデルマウスを作成した。LPS投与直後に生理食塩水で100倍希釈したチアゾリン類縁化合物(2MT)溶液200 μl(約80 mg/kg)を腹腔内投与した。チアゾリン類縁化合物(2MT)を投与した場合とコントロールとして生理食塩水を投与した場合(saline)でマウスの生存時間を計測した。
実験方法
実施例１８と同じ方法で敗血症モデルマウスを作成した。LPS投与直後に生理食塩水で100倍希釈したチアゾリン類縁化合物(2MT)溶液200 μl(約80 mg/kg)を腹腔内投与した。チアゾリン類縁化合物(2MT)を投与した場合とコントロールとして生理食塩水を投与した場合(saline)でマウスの生存時間を計測した。
【0099】
結果
結果を図２１に示す。
コントロール群(saline)とチアゾリン類縁化合物(2MT)を投与した群に関して生存曲線を示した(左図)。また、それぞれの群に関して平均生存時間（平均±標準誤差）を棒グラフで示した(n=10; 右図)。コントロール群とチアゾリン類縁化合物(2MT)投与群との間でStudentのt検定を行なった。**はp<0.01で有意差があることを表す。チアゾリン類縁化合物投与は敗血症モデル動物の生存時間を延長する効果があることが示された。
結果を図２１に示す。
コントロール群(saline)とチアゾリン類縁化合物(2MT)を投与した群に関して生存曲線を示した(左図)。また、それぞれの群に関して平均生存時間（平均±標準誤差）を棒グラフで示した(n=10; 右図)。コントロール群とチアゾリン類縁化合物(2MT)投与群との間でStudentのt検定を行なった。**はp<0.01で有意差があることを表す。チアゾリン類縁化合物投与は敗血症モデル動物の生存時間を延長する効果があることが示された。
【0100】
実施例２２：チアゾリン類縁化合物による脳虚血再灌流障害の軽減効果
実験方法
約３ヶ月齢のC57/BL6マウスの両側の総頚動脈をクリップで縛り、脳虚血障害を誘発した、さらに30分後にクリップを取り除くことで血液を再灌流させた。再灌流の際にチアゾリン類縁化合物(2MT)溶液200 μl(約80 mg/kg)、またはコントロールとして生理食塩水(saline)を腹腔内投与した。再灌流の２日後にマウスの脳組織を取り出し、脳の切片を作成して、障害の起きた領域をMicrotubule-associated protein 2 (MAP2)の抗体染色によって解析した。
実験方法
約３ヶ月齢のC57/BL6マウスの両側の総頚動脈をクリップで縛り、脳虚血障害を誘発した、さらに30分後にクリップを取り除くことで血液を再灌流させた。再灌流の際にチアゾリン類縁化合物(2MT)溶液200 μl(約80 mg/kg)、またはコントロールとして生理食塩水(saline)を腹腔内投与した。再灌流の２日後にマウスの脳組織を取り出し、脳の切片を作成して、障害の起きた領域をMicrotubule-associated protein 2 (MAP2)の抗体染色によって解析した。
【0101】
結果
結果を図２２に示す。
実験のプロトコールを図の一番上に示した。コントロールとチアゾリン類縁化合物(2MT)投与動物の脳の切片をMAP2抗体染色した代表例を図の左に示した。図中、脳のダメージを受けた領域はMAP2で染色されない領域（黒）として観察された。また、図の右にコントロール群およびチアゾリン類縁化合物(2MT)投与群におけるMAP2で染色されない領域の面積、すなわち障害を受けた領域の面積（平均±標準誤差）を棒グラフで示した(salineはn=9、2MTはn=8)。コントロール群とチアゾリン類縁化合物(2MT)投与群との間でStudentのt検定を行なった。*はp<0.05で有意差があることを表す。再灌流時にチアゾリン類縁化合物を投与することで脳虚血再灌流障害を軽減する効果があることが示された。
結果を図２２に示す。
実験のプロトコールを図の一番上に示した。コントロールとチアゾリン類縁化合物(2MT)投与動物の脳の切片をMAP2抗体染色した代表例を図の左に示した。図中、脳のダメージを受けた領域はMAP2で染色されない領域（黒）として観察された。また、図の右にコントロール群およびチアゾリン類縁化合物(2MT)投与群におけるMAP2で染色されない領域の面積、すなわち障害を受けた領域の面積（平均±標準誤差）を棒グラフで示した(salineはn=9、2MTはn=8)。コントロール群とチアゾリン類縁化合物(2MT)投与群との間でStudentのt検定を行なった。*はp<0.05で有意差があることを表す。再灌流時にチアゾリン類縁化合物を投与することで脳虚血再灌流障害を軽減する効果があることが示された。
【0102】
実施例２３：Trpa1による複素環化合物投与に対する低酸素抵抗性の誘発効果
実験方法
約３ヶ月から６ヶ月齢の雄のTrpa1ノックアウトマウスと野生型マウスに対して、生理食塩水で100倍希釈した様々な複素環化合物溶液200 μl(約80 mg/kg)を腹腔内注射し、30分後に、酸素濃度を4%に調整したタイトボックス内にマウスを入れ、マウスの生存時間を最大30分まで計測した。
実験方法
約３ヶ月から６ヶ月齢の雄のTrpa1ノックアウトマウスと野生型マウスに対して、生理食塩水で100倍希釈した様々な複素環化合物溶液200 μl(約80 mg/kg)を腹腔内注射し、30分後に、酸素濃度を4%に調整したタイトボックス内にマウスを入れ、マウスの生存時間を最大30分まで計測した。
【0103】
結果
結果を図２３に示す。図２３中の"4-Ethyl-2-methyl-thiazoline"は、4-エチル-2-メチル-2-チアゾリンを意味する。
図２３：野生型マウス(Trpa1+/+)およびTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1-/-)に生理食塩水(saline)または各複素環化合物を投与した際の4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を棒グラフで示した(n=4)。各条件についてコントロール群(saline)と化合物投与群との間でStudentのt検定を行なった。**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを、nsはp>0.05で有意差がないことを表す。様々な種類の複素環化合物は野生型マウスに投与した際には低酸素条件下での生存時間を有意に増加させる効果を持つが、このような効果はTrpa1ノックアウトマウスでは見られなかった。従って、これらの複素環化合物による低酸素抵抗性はTrpa1により誘発されることが示唆された。
結果を図２３に示す。図２３中の"4-Ethyl-2-methyl-thiazoline"は、4-エチル-2-メチル-2-チアゾリンを意味する。
図２３：野生型マウス(Trpa1+/+)およびTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1-/-)に生理食塩水(saline)または各複素環化合物を投与した際の4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を棒グラフで示した(n=4)。各条件についてコントロール群(saline)と化合物投与群との間でStudentのt検定を行なった。**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを、nsはp>0.05で有意差がないことを表す。様々な種類の複素環化合物は野生型マウスに投与した際には低酸素条件下での生存時間を有意に増加させる効果を持つが、このような効果はTrpa1ノックアウトマウスでは見られなかった。従って、これらの複素環化合物による低酸素抵抗性はTrpa1により誘発されることが示唆された。
【0104】
実施例２４：Trpa1によるチオモルホリン投与に対する低酸素抵抗性の誘発効果
実験方法
約３ヶ月から６ヶ月齢の雄の野生型マウスとTrpa1ノックアウトマウスに対して、生理食塩水で100倍希釈した複素環化合物(チオモルホリン) 200 μl(約80 mg/kg)を腹腔内注射し、30分後に、酸素濃度を4%に調整したタイトボックス内にマウスを入れ、マウスの生存時間を計測した。
実験方法
約３ヶ月から６ヶ月齢の雄の野生型マウスとTrpa1ノックアウトマウスに対して、生理食塩水で100倍希釈した複素環化合物(チオモルホリン) 200 μl(約80 mg/kg)を腹腔内注射し、30分後に、酸素濃度を4%に調整したタイトボックス内にマウスを入れ、マウスの生存時間を計測した。
【0105】
結果
結果を図２４に示す。
図２４：野生型マウス(Trpa1+/+)およびTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1-/-)にチオモルホリンを投与した際の4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を棒グラフで示した(n=6)。コントロール群(saline)と化合物投与群との間でStudentのt検定を行なった。***はp<0.001で有意差があることを表す。複素環化合物(Thiomorpholine)を野生型マウスに投与した際には低酸素条件下での生存時間を大きく延長させる効果を持つが、Trpa1ノックアウトマウスでは野生型マウスと比較すると生存時間が有意に減少した。従って、チオモルホリンによる低酸素抵抗性はTrpa1により誘発されることが示された。
結果を図２４に示す。
図２４：野生型マウス(Trpa1+/+)およびTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1-/-)にチオモルホリンを投与した際の4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を棒グラフで示した(n=6)。コントロール群(saline)と化合物投与群との間でStudentのt検定を行なった。***はp<0.001で有意差があることを表す。複素環化合物(Thiomorpholine)を野生型マウスに投与した際には低酸素条件下での生存時間を大きく延長させる効果を持つが、Trpa1ノックアウトマウスでは野生型マウスと比較すると生存時間が有意に減少した。従って、チオモルホリンによる低酸素抵抗性はTrpa1により誘発されることが示された。
【0106】
実施例２５：Trpa1によるチアゾリン類縁化合物投与に対する酸素消費量抑制の誘発効果
実験方法
酸素消費量の計測は実施例８と同様に小動物エネルギー代謝測定装置を用いて行った。約３ヶ月から６ヶ月齢のTrpa1ノックアウトマウスとその同腹のヘテロマウスを１匹ずつ小動物エネルギー代謝測定装置の計測チャンバーに入れ、約２時間馴化後、チアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した。匂いの提示は271 μmolのチアゾリン類縁化合物(2MT)を染み込ませたろ紙２枚を計測チャンバーに入れることで行った。
実験方法
酸素消費量の計測は実施例８と同様に小動物エネルギー代謝測定装置を用いて行った。約３ヶ月から６ヶ月齢のTrpa1ノックアウトマウスとその同腹のヘテロマウスを１匹ずつ小動物エネルギー代謝測定装置の計測チャンバーに入れ、約２時間馴化後、チアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した。匂いの提示は271 μmolのチアゾリン類縁化合物(2MT)を染み込ませたろ紙２枚を計測チャンバーに入れることで行った。
【0107】
結果
結果を図２５に示す。
図２５：チアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した際のコントロールマウス(Trpa1+/-; n=9)とTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1-/-; n=7)の体重あたりの酸素消費量の経時的な変化（平均±標準誤差）を示した。匂いは図中の10分の時点で提示した。コントロールマウスではチアゾリン類縁化合物(2MT)の提示により酸素消費量が低下するのに対し、Trpa1ノックアウトマウスでは酸素消費量の低下は認められなかった。従って、チアゾリン類縁化合物による酸素消費量の低下はTrpa1を介することが示された。
結果を図２５に示す。
図２５：チアゾリン類縁化合物(2MT)を提示した際のコントロールマウス(Trpa1+/-; n=9)とTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1-/-; n=7)の体重あたりの酸素消費量の経時的な変化（平均±標準誤差）を示した。匂いは図中の10分の時点で提示した。コントロールマウスではチアゾリン類縁化合物(2MT)の提示により酸素消費量が低下するのに対し、Trpa1ノックアウトマウスでは酸素消費量の低下は認められなかった。従って、チアゾリン類縁化合物による酸素消費量の低下はTrpa1を介することが示された。
【0108】
実施例２６：Trpa1作動薬投与による低酸素抵抗性の誘発効果
実験方法
約３ヶ月齢の雄のC57/BL6Nマウスに生理食塩水または既知のTrpa1作動薬であるデルタ9-テトラヒドロカンナビノール(Δ9-THC; 10 mg/kg)、アリル イソチオシアネート (AITC; 40 mg/kg)、アセトアミノフェン(APAP; 300 mg/kg)を腹腔内投与し、30分後に酸素濃度を4%に調整したタイトボックス内にマウスを入れ、マウスの生存時間を最大30分まで計測した。APAPに関しては約３ヶ月から６ヶ月齢の雄のTrpa1ノックアウトマウスとその同腹のヘテロマウスに対しても同様に4%酸素環境下での生存時間を計測した。
実験方法
約３ヶ月齢の雄のC57/BL6Nマウスに生理食塩水または既知のTrpa1作動薬であるデルタ9-テトラヒドロカンナビノール(Δ9-THC; 10 mg/kg)、アリル イソチオシアネート (AITC; 40 mg/kg)、アセトアミノフェン(APAP; 300 mg/kg)を腹腔内投与し、30分後に酸素濃度を4%に調整したタイトボックス内にマウスを入れ、マウスの生存時間を最大30分まで計測した。APAPに関しては約３ヶ月から６ヶ月齢の雄のTrpa1ノックアウトマウスとその同腹のヘテロマウスに対しても同様に4%酸素環境下での生存時間を計測した。
【0109】
結果
結果を図２６に示す。
図２６Ａ：野生型マウスに生理食塩水(saline)または各種Trpa1作動薬を投与した際の4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を棒グラフで示した(salineはn=22、Δ9-THC, AITCはn=8、APAPはn=7)。コントロール群とTrpa1作動薬投与群との間でStudentのt検定を行なった。**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを表す。Trpa1作動薬の投与によって低酸素環境下での生存時間が延長する効果が認められた。
図２６Ｂ：Trpa1作動薬(APAP)を腹腔投与した際のコントロールマウス(Trpa1+/-)とTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1-/-)の4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を棒グラフで示した(n=8)。コントロール群(saline)とTrpa1作動薬投与群(APAP)との間でStudentのt検定を行なった。**はp<0.01で有意差があることを、nsはp>0.05で有意差がないことを表す。Trpa1作動薬(APAP)はコントロールマウスでは低酸素環境下での生存時間を延長する効果があるのに対して、Trpa1ノックアウトマウスではそのような効果が認められなかった。Trpa1作動薬による低酸素抵抗性の誘発はTrpa1を介することが示された。
結果を図２６に示す。
図２６Ａ：野生型マウスに生理食塩水(saline)または各種Trpa1作動薬を投与した際の4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を棒グラフで示した(salineはn=22、Δ9-THC, AITCはn=8、APAPはn=7)。コントロール群とTrpa1作動薬投与群との間でStudentのt検定を行なった。**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを表す。Trpa1作動薬の投与によって低酸素環境下での生存時間が延長する効果が認められた。
図２６Ｂ：Trpa1作動薬(APAP)を腹腔投与した際のコントロールマウス(Trpa1+/-)とTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1-/-)の4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を棒グラフで示した(n=8)。コントロール群(saline)とTrpa1作動薬投与群(APAP)との間でStudentのt検定を行なった。**はp<0.01で有意差があることを、nsはp>0.05で有意差がないことを表す。Trpa1作動薬(APAP)はコントロールマウスでは低酸素環境下での生存時間を延長する効果があるのに対して、Trpa1ノックアウトマウスではそのような効果が認められなかった。Trpa1作動薬による低酸素抵抗性の誘発はTrpa1を介することが示された。
【0110】
実施例２７：チアゾリン類縁化合物によって誘発される体表面度変化、低酸素抵抗性および抗炎症作用に対するTrpa1ノックアウトマウスの効果
実験方法
約３ヶ月から６ヶ月齢の雄のTrpa1ノックアウトマウスとその同腹のヘテロマウスに対してチアゾリン類縁化合物(4-エチル-2-メチル-2-チアゾリン; 4E2MT)を腹腔投与した際の体表面温度の変化、低酸素環境下における生存時間、LPS投与時の血中のTNF-α産生をそれぞれ実施例３、実施例１０、実施例１８と同様の方法で計測した。
実験方法
約３ヶ月から６ヶ月齢の雄のTrpa1ノックアウトマウスとその同腹のヘテロマウスに対してチアゾリン類縁化合物(4-エチル-2-メチル-2-チアゾリン; 4E2MT)を腹腔投与した際の体表面温度の変化、低酸素環境下における生存時間、LPS投与時の血中のTNF-α産生をそれぞれ実施例３、実施例１０、実施例１８と同様の方法で計測した。
【0111】
結果
結果を図２７に示す。
図２７Ａ：チアゾリン類縁化合物(4E2MT)を腹腔内注射した際のコントロールマウス(Trpa1＋/‐)とTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1‐/‐)の体表面温度の経時変化（平均±標準誤差）を示した。チアゾリン類縁化合物(4E2MT)の投与は１０分の時点で行った。チアゾリン類縁化合物(4E2MT)投与後３０分間の平均表面温度に関し、コントロールマウスとTrpa1ノックアウトマウスの間でStudentのt検定を行なった結果を図中に示した。***はp<0.001で有意差があることを示す。チアゾリン類縁化合物を腹腔内に投与した際の体表面温度低下はTrpa1ノックアウトマウスでは見られなくなることが明らかになった。
図２７Ｂ：チアゾリン類縁化合物(4E2MT)を腹腔内注射した際のコントロールマウス(Trpa1＋/‐)とTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1‐/‐)の4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を棒グラフで示した。コントロールマウスとTrpa1ノックアウトマウスの間でStudentのt検定を行なった。**はp<0.01で有意差があることを示す。チアゾリン類縁化合物を腹腔内注射した際の低酸素環境下での生存時間の延長効果はTrpa1ノックアウトマウスでは抑制されることが明らかになった。
図２７Ｃ：LPSの腹腔内投与と同時にチアゾリン類縁化合物(4E2MT)を腹腔内注射した際のコントロールマウス(Trpa1＋/＋、Trpa1＋/‐)とTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1‐/‐)の投与後１時間の血中のTNF-α量（平均±標準誤差）を棒グラフで示した。コントロールとして、コントールマウス(Trpa1＋/＋)にLPSと生理食塩水(saline)を投与した際の血中のTNF-α量の計測も行った。**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを表す。敗血症モデルマウスにチアゾリン類縁化合物(4E2MT)を投与することで、炎症性サイトカインであるTNF-αの血中量が低下するが、この効果はTrpa1ノックアウトマウスでは抑制されることが示された。
図２７Ａ－Ｃの結果より、チアゾリン類縁化合物によって誘発される体表面温度低下、低酸素抵抗性、抗炎症効果はTrpa1を介することが示された。
結果を図２７に示す。
図２７Ａ：チアゾリン類縁化合物(4E2MT)を腹腔内注射した際のコントロールマウス(Trpa1＋/‐)とTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1‐/‐)の体表面温度の経時変化（平均±標準誤差）を示した。チアゾリン類縁化合物(4E2MT)の投与は１０分の時点で行った。チアゾリン類縁化合物(4E2MT)投与後３０分間の平均表面温度に関し、コントロールマウスとTrpa1ノックアウトマウスの間でStudentのt検定を行なった結果を図中に示した。***はp<0.001で有意差があることを示す。チアゾリン類縁化合物を腹腔内に投与した際の体表面温度低下はTrpa1ノックアウトマウスでは見られなくなることが明らかになった。
図２７Ｂ：チアゾリン類縁化合物(4E2MT)を腹腔内注射した際のコントロールマウス(Trpa1＋/‐)とTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1‐/‐)の4%酸素中での生存時間（平均±標準誤差）を棒グラフで示した。コントロールマウスとTrpa1ノックアウトマウスの間でStudentのt検定を行なった。**はp<0.01で有意差があることを示す。チアゾリン類縁化合物を腹腔内注射した際の低酸素環境下での生存時間の延長効果はTrpa1ノックアウトマウスでは抑制されることが明らかになった。
図２７Ｃ：LPSの腹腔内投与と同時にチアゾリン類縁化合物(4E2MT)を腹腔内注射した際のコントロールマウス(Trpa1＋/＋、Trpa1＋/‐)とTrpa1ノックアウトマウス(Trpa1‐/‐)の投与後１時間の血中のTNF-α量（平均±標準誤差）を棒グラフで示した。コントロールとして、コントールマウス(Trpa1＋/＋)にLPSと生理食塩水(saline)を投与した際の血中のTNF-α量の計測も行った。**はp<0.01、***はp<0.001で有意差があることを表す。敗血症モデルマウスにチアゾリン類縁化合物(4E2MT)を投与することで、炎症性サイトカインであるTNF-αの血中量が低下するが、この効果はTrpa1ノックアウトマウスでは抑制されることが示された。
図２７Ａ－Ｃの結果より、チアゾリン類縁化合物によって誘発される体表面温度低下、低酸素抵抗性、抗炎症効果はTrpa1を介することが示された。
【0112】
実施例２８：複素環化合物によって誘発される酸素消費量抑制効果
実験方法
約３ヶ月齢のC57/BL6Nマウスに対して、複素環化合物(2MTおよびThiomorpholine(TMO))を腹腔内注射した際の酸素消費量の変化を実施例８に記載した方法と同様の方法で計測した。
実験方法
約３ヶ月齢のC57/BL6Nマウスに対して、複素環化合物(2MTおよびThiomorpholine(TMO))を腹腔内注射した際の酸素消費量の変化を実施例８に記載した方法と同様の方法で計測した。
【0113】
結果
結果を図２８に示す。
図２８：複素環化合物(2MT, TMO)および生理食塩水(saline)を投与した際の酸素消費量の経時変化（平均±標準誤差）を示した(n=4)。複素環化合物(2MT, TMO)および生理食塩水(saline)の投与は図中の矢印で示した時点で行った。複素環化合物の投与は酸素消費量を減少させる効果があることが示された。
結果を図２８に示す。
図２８：複素環化合物(2MT, TMO)および生理食塩水(saline)を投与した際の酸素消費量の経時変化（平均±標準誤差）を示した(n=4)。複素環化合物(2MT, TMO)および生理食塩水(saline)の投与は図中の矢印で示した時点で行った。複素環化合物の投与は酸素消費量を減少させる効果があることが示された。
【産業上の利用可能性】
【0114】
本発明の化合物は、低体温、低代謝、酸素消費量の抑制、低心拍数、抗炎症反応を誘導し、低酸素条件での組織や個体の保護作用、虚血再灌流障害に対する保護作用、炎症に対する保護作用を示すので、低酸素障害、虚血再灌流障害又は炎症の予防又は治療剤、移植用細胞保護剤、及び生体保存剤として有用である。
【0115】
本出願は、日本で出願された特願２０１８－０４９７６１を基礎としており、その内容は本明細書にすべて包含される。
【図1】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
【図10A】
【図10B】
【図11A】
【図11B】
【図12】
【図13】
【図14】
【図15】
【図16】
【図17】
【図18】
【図19】
【図20】
【図21】
【図22】
【図23】
【図24】
【図25】
【図26】
【図27】
【図28】
