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特許7640771う蝕抑制組成物、並びにこれを用いた甘味組成物、食品、サプリメント、歯磨剤組成物、及び洗口液組成物
(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B1)
(11)【特許番号】
(24)【登録日】2025-02-25
(45)【発行日】2025-03-05
(54)【発明の名称】う蝕抑制組成物、並びにこれを用いた甘味組成物、食品、サプリメント、歯磨剤組成物、及び洗口液組成物
(51)【国際特許分類】
A61K 31/721 20060101AFI20250226BHJP
A61P 1/02 20060101ALI20250226BHJP
A61P 31/04 20060101ALI20250226BHJP
A61K 47/26 20060101ALI20250226BHJP
A61K 47/36 20060101ALI20250226BHJP
A61Q 11/00 20060101ALI20250226BHJP
A61K 8/73 20060101ALI20250226BHJP
A23L 33/125 20160101ALI20250226BHJP
【ＦＩ】
A61K31/721
A61P1/02
A61P31/04
A61K47/26
A61K47/36
A61Q11/00
A61K8/73
A23L33/125
【請求項の数】
6
(21)【出願番号】P 2024043788
(22)【出願日】2024-03-19
【審査請求日】2024-05-07
【早期審査対象出願】
(73)【特許権者】
【識別番号】313014608
【氏名又は名称】ウェルネオシュガー株式会社
(74)【代理人】
【識別番号】100173679
【弁理士】
【氏名又は名称】備後 元晴
(72)【発明者】
【氏名】仲野 道代
(72)【発明者】
【氏名】中村 泰之
(72)【発明者】
【氏名】山本 美桜
【審査官】▲高▼ 美葉子
(56)【参考文献】
【文献】国際公開第２００６／０３５７２５（ＷＯ，Ａ１）
【文献】国際公開第２０１０／０２３７４２（ＷＯ，Ａ１）
【文献】国際公開第２０１２／１７２６３５（ＷＯ，Ａ１）
【文献】特開２０１９－０５２１８６（ＪＰ，Ａ）
【文献】CIデキストランシリーズ ナチュラルキッズ バナナ味 歯みがき剤 1本(63g)，Amazon[online],取り扱い開始日2023年4月11日, [検索日2024.05.30]，https://www.amazon.co.jp/
(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)
Ａ２３Ｌ３３／００
Ａ６１Ｋ ８／００－８／９９
Ａ６１Ｑ １／００－９０／００
Ｃ１２Ｐ １９／０８
Ａ６１Ｋ３１／７２１
Ａ６１Ｐ１／０２
Ｃ１３Ｋ
Ｍｉｎｔｅｌ ＧＮＰＤ
ＣＡＰＬＵＳ／ＢＩＯＳＩＳ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＫＯＳＭＥＴ（ＳＴＮ）
ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅｍＩＩＩ）
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
（Ａ）サイクロデキストランと、（Ｂ）スクロースと、を含有し、
前記（Ｂ）成分１００質量部に対する前記（Ａ）成分の割合が１００質量部以下である、う蝕抑制組成物（ホップ抽出物を含有するものを除く）。
【請求項2】
（Ａ）サイクロデキストランと、（Ｂ）スクロースと、を含有し、
前記（Ｂ）成分１００質量部に対する前記（Ａ）成分の割合が１０質量部以下である、甘味組成物（ホップ抽出物を含有するものを除く）。
【請求項3】
（Ａ）サイクロデキストランと、（Ｂ）スクロースと、を含有し、
前記（Ｂ）成分１００質量部に対する前記（Ａ）成分の割合が１０質量部以下である、食品（ホップ抽出物を含有するものを除く）。
【請求項4】
（Ａ）サイクロデキストランと、（Ｂ）スクロースと、を含有し、
前記（Ｂ）成分１００質量部に対する前記（Ａ）成分の割合が１０質量部以下である、サプリメント（ホップ抽出物を含有するものを除く）。
【請求項5】
（Ａ）サイクロデキストランと、（Ｂ）スクロースと、を含有し、
前記（Ｂ）成分１００質量部に対する前記（Ａ）成分の割合が１００質量部以下である、歯磨剤組成物（ホップ抽出物を含有するものを除く）。
【請求項6】
（Ａ）サイクロデキストランと、（Ｂ）スクロースと、を含有し、
前記（Ｂ）成分１００質量部に対する前記（Ａ）成分の割合が１００質量部以下である、洗口液組成物（ホップ抽出物を含有するものを除く）。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、う蝕抑制組成物、並びにこれを用いた甘味組成物、食品、サプリメント、歯磨剤組成物、及び洗口液組成物に関する。
【背景技術】
【0002】
う蝕（うしょく）は、歯の実質欠損のなかで、生物的要因を原因とするものを指し、口腔内の細菌が糖質から作った酸による歯の脱灰等が主な原因であることが知られている。
う蝕の原因菌であるストレプトコッカス・ミュータンス（Streptococcus mutans）は、グラム陽性で通性嫌気性のレンサ球菌の一種である。このストレプトコッカス・ミュータンスは、自ら産生するグルコシルトランスフェラーゼ（ＧＴＦ）により、スクロースを原料として、粘着性の多糖類であるグルカンを合成する。このグルカンは、歯の表面で他の口腔内細菌とともに、プラークと呼ばれる塊を形成してその内部で酸を産生し、これが歯の表面を侵食して、歯を脱灰することにより虫歯が形成される。グルカンが形成されない場合、ストレプトコッカス・ミュータンス等の口腔内細菌が、歯の表面に付着しづらくなるため、う蝕の抑制につながる。
う蝕の原因菌であるストレプトコッカス・ミュータンス（Streptococcus mutans）は、グラム陽性で通性嫌気性のレンサ球菌の一種である。このストレプトコッカス・ミュータンスは、自ら産生するグルコシルトランスフェラーゼ（ＧＴＦ）により、スクロースを原料として、粘着性の多糖類であるグルカンを合成する。このグルカンは、歯の表面で他の口腔内細菌とともに、プラークと呼ばれる塊を形成してその内部で酸を産生し、これが歯の表面を侵食して、歯を脱灰することにより虫歯が形成される。グルカンが形成されない場合、ストレプトコッカス・ミュータンス等の口腔内細菌が、歯の表面に付着しづらくなるため、う蝕の抑制につながる。
【0003】
従来、一部の環状オリゴ糖に、ストレプトコッカス・ミュータンスのＧＴＦの酵素活性を阻害し、う蝕を抑制する作用があることが知られていた。例えば、環状イソマルトオリゴ糖を有効成分として含有する抗う蝕剤が知られていた（特許文献１参照）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0004】
【文献】特許第３４００８６８号
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0005】
一方、近年、う蝕等の口腔内疾患が、口腔内疾患以外の疾患にも影響を及ぼす可能性が指摘されており、う蝕を抑制することの医学的重要性が高まっている。このため、本発明は、従来の抗う蝕剤と比較しても、より高い水準で、う蝕を抑制できるう蝕抑制組成物等を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【0006】
本発明者らは、鋭意研究を重ねた結果、（Ａ）グルコース及び／又はグルコース誘導体を構成単位とする所定の環状構造を有するオリゴ糖と、（Ｂ）（Ａ）成分以外の糖とを含有するう蝕抑制組成物によれば、上記の課題を解決できることを見出し、本発明を完成するに至った。具体的には、本発明は、以下のものを提供する。
【0007】
第１の特徴に係る発明は、（Ａ）グルコース及び／又はグルコース誘導体を構成単位とする環状構造を有するオリゴ糖と、（Ｂ）（Ａ）成分以外の糖と、を含有し、上記（Ａ）成分がサイクロデキストラン及び／又はサイクロデキストラン誘導体であり、上記サイクロデキストラン誘導体は、サイクロデキストランが有するアルコール性水酸基のうちの少なくとも１つが他の極性基に置換されている、う蝕抑制組成物を提供する。
【発明の効果】
【0008】
本発明のう蝕抑制組成物は、（Ａ）グルコースを構成単位とする所定の環状オリゴ糖と、（Ｂ）（Ａ）成分以外の糖とを含有し、これらがう蝕抑制に対して協働して作用するため、従来の抗う蝕剤と比較しても、より高い水準で、う蝕を抑制できる。
【図面の簡単な説明】
【0009】
【発明を実施するための形態】
【0010】
以下、本発明の具体的な実施形態について、図面を参照して詳細に説明するが、本発明は、以下の実施形態に何ら限定されるものではなく、本発明の目的の範囲内において、適宜変更を加えて実施することができる。
【0011】
＜う蝕抑制組成物＞
本実施形態に係るう蝕抑制組成物は、（Ａ）グルコース及び／又はグルコース誘導体を構成単位とする環状構造を有するオリゴ糖と、（Ｂ）（Ａ）成分以外の糖と、を含有する。
本実施形態に係るう蝕抑制組成物は、（Ａ）グルコース及び／又はグルコース誘導体を構成単位とする環状構造を有するオリゴ糖と、（Ｂ）（Ａ）成分以外の糖と、を含有する。
【0012】
上述のとおり、ストレプトコッカス・ミュータンスは、自ら産生するグルコシルトランスフェラーゼ（ＧＴＦ）により、ショ糖を原料として、粘着性の多糖類であるグルカンを合成し、これにより歯の表面にプラークが形成される。本実施形態に係るう蝕抑制組成物は、（Ａ）グルコース及び／又はグルコース誘導体を構成単位とする環状オリゴ糖と、（Ｂ）（Ａ）成分以外の糖と、を含有することにより、（Ａ）グルコース及び／又はグルコース誘導体を構成単位とする環状オリゴ糖のみを含有する組成物よりも、より高いう蝕抑制効果を発揮しうるものである。
【0013】
〔（Ａ）成分；グルコース及び／又はグルコース誘導体を構成単位とする環状オリゴ糖〕
本実施形態に係るう蝕抑制組成物が含有する（Ａ）グルコース及び／又はグルコース誘導体を構成単位とする環状オリゴ糖としては、サイクロデキストラン及び／又はこれらが有するアルコール性水酸基のうちの少なくとも１つが他の極性基に置換されている誘導体（以下、単に「サイクロデキストランの誘導体」とも称する）を挙げることができる。
本実施形態に係るう蝕抑制組成物が含有する（Ａ）グルコース及び／又はグルコース誘導体を構成単位とする環状オリゴ糖としては、サイクロデキストラン及び／又はこれらが有するアルコール性水酸基のうちの少なくとも１つが他の極性基に置換されている誘導体（以下、単に「サイクロデキストランの誘導体」とも称する）を挙げることができる。
【0014】
このうち、サイクロデキストランの誘導体としては、自然界に見いだされる化合物と、人工的に合成される化合物のいずれをも含む。サイクロデキストランが有するアルコール性水酸基を置換していてもよい極性基としては、特に限定されるものでないが、クロロ基、ブロモ基、ヨード基、アルコキシル基、グリコシル基、チオール基、スルフィド基、セレノール基、アミノ基、アミド基、リン酸基を挙げることができる。これらの極性基は、１分子のサイクロデキストランの単一の水酸基を置換していてもよいし、複数の極性基を同じ極性基で置換していてもよいし、複数の極性基を異なる極性基で置換していてもよい。
【0015】
また、グルコース誘導体とは、上記のサイクロデキストランの誘導体を構成する構成単位のうち、グルコース以外のものを指す。ここで、仮に、サイクロデキストラン誘導体に導入された置換基が、グルコースからサイクロデキストランが合成された後に導入されたものである場合においても、サイクロデキストランのグリコシド結合を加水分解して得られうる構成単位のうち、グルコース以外のものについても、「グルコース誘導体」に含めて考えるものする。よって、「グルコース誘導体」の語は、サイクロデキストランの誘導体の合成にあたり、グルコース誘導体が合成原料として用いられることまでを意味するものではない。
【0016】
［サイクロデキストラン及びサイクロデキストランの誘導体］
図１は、サイクロデキストラン（ＣＩ）の構造式の一例である。サイクロデキストランは、４個以上３３個以下のグルコースがα－１，６－グリコシド結合で環状に連結した環状イソマルトオリゴ糖である。本実施形態に係るう蝕抑制組成物において、う蝕の効果的抑制の観点からは、（Ａ）成分としてサイクロデキストランを用いることが好ましい。
図１は、サイクロデキストラン（ＣＩ）の構造式の一例である。サイクロデキストランは、４個以上３３個以下のグルコースがα－１，６－グリコシド結合で環状に連結した環状イソマルトオリゴ糖である。本実施形態に係るう蝕抑制組成物において、う蝕の効果的抑制の観点からは、（Ａ）成分としてサイクロデキストランを用いることが好ましい。
【0017】
サイクロデキストランの誘導体として好ましい化合物の具体例は、サイクロデキストランが、一部のグルコース残基から分岐したサイクロデキストランの分岐体（アルコール性水酸基がグリコシル基に置換されているもの）や、一部のグルコース残基の水酸基がアミノ基に置換されたサイクロデキストランのアミノ置換体が挙げられる。なお、後者に含まれる単糖残基のうち、特に、グルコース残基の２位の水酸基がアミノ基に置換されているものを、一般にグルコサミン残基と称する。
【0018】
一例として、サイクロデキストランは、バチルス属の微生物の培養液や環状イソマルトオリゴ糖合成酵素の反応液から得ることができる（特許第３０７５８７３号、特許第３１１７３２８号参考；なお、参考文献の内容は、参照により本明細書の一部として組み込まれるが、本明細書に特別に記載のある事項は、本明細書の記載事項が優先する）。微生物や酵素を利用してサイクロデキストランを得た場合、サイクロデキストランと、サイクロデキストランの分岐体の混合物として得られる。このサイクロデキストランと、サイクロデキストランの分岐体の混合物は、必要に応じ、従来公知のアフィニティークロマトグラフィーやゲルろ過クロマトグラフィー等を用いることにより、サイクロデキストランの濃度が７５％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは９９％以上となった組成物や、サイクロデキストランの分岐体の濃度が７５％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは９９％以上となった組成物に分離することもできる。本実施形態に係るう蝕抑制組成物は、本発明の目的を損なわない範囲で、サイクロデキストランと、サイクロデキストランとの分岐体の混合物、サイクロデキストランの濃度が７５％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは９９％以上となった組成物や、サイクロデキストランの分岐体の濃度が７５％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは９９％以上となった組成物のいずれを用いてもよい。
【0019】
なお、本明細書において、「サイクロデキストラン」と言及する場合、分岐構造を有さない環状イソマルトオリゴ糖であるサイクロデキストランを指し、分岐構造を有するものは、「サイクロデキストランの分岐体」として「サイクロデキストラン」とは区別するものとする。
【0020】
なお、サイクロデキストラン（ＣＩ）と相互に類似する化合物として、シクロデキストリン（ＣＤ）が知られている。図２は、シクロデキストリン（ＣＤ）の構造式の一例である。
【0021】
ＣＩとＣＤとは、複数個のグルコースが環状に連結した環状オリゴ糖である点で共通するが、両者は以下の点で相違する。第１に、ＣＩは、４個から３３個のグルコースが結合するのに対し、ＣＤは、６個から８個のグルコースが結合する点で異なる。第２に、ＣＩは、グルコースがα－１，６－グリコシド結合で連結するのに対し、ＣＤは、グルコースがα－１，４－グリコシド結合で連結する点で異なる。第３に、ＣＩの分子構造は、口径が大きく浅いのに対し、ＣＤの分子構造は、口径が小さく深い点で異なる。第４に、ＣＩは、水への溶解性が高いのに対し、ＣＤは、水への溶解性が低い点で異なる。
【0022】
〔（Ｂ）成分；（Ａ）成分以外の糖〕
本実施形態に係るう蝕抑制組成物が含有する、（Ａ）成分以外の糖としては、本発明の効果を損なわない範囲で特に限定されず、任意の糖を挙げることができる。しかしながら、（Ｂ）成分は、これらの糖の中でも、アルドース若しくはケトースである単糖、又は加水分解によりアルドース及び／若しくはケトースを含有する混合物を生成しうる、二糖、オリゴ糖、環状オリゴ糖、若しくは多糖であることが好ましい。そのような単糖、二糖、オリゴ糖、環状オリゴ糖、多糖については、以下に代表例を列挙する。
本実施形態に係るう蝕抑制組成物が含有する、（Ａ）成分以外の糖としては、本発明の効果を損なわない範囲で特に限定されず、任意の糖を挙げることができる。しかしながら、（Ｂ）成分は、これらの糖の中でも、アルドース若しくはケトースである単糖、又は加水分解によりアルドース及び／若しくはケトースを含有する混合物を生成しうる、二糖、オリゴ糖、環状オリゴ糖、若しくは多糖であることが好ましい。そのような単糖、二糖、オリゴ糖、環状オリゴ糖、多糖については、以下に代表例を列挙する。
【0023】
［単糖］
本実施形態に係るう蝕抑制組成物が含有していてもよい、アルドース又はケトースである単糖としては、従来公知のアルドース又はケトースである単糖を挙げることができる。
本実施形態に係るう蝕抑制組成物が含有していてもよい、アルドース又はケトースである単糖としては、従来公知のアルドース又はケトースである単糖を挙げることができる。
【0024】
このうち、アルドースとは、ＣｎＨ２ｎＯｎ（但し、ｎは３以上の整数）で表され、且つ、末端にアルデヒド基を１つ有する単糖を意味する。アルドースである単糖としては、より具体的には、グリセルアルデヒド（Ｃ３）、エリトロース（Ｃ４）、トレオース（Ｃ４）、リボース（Ｃ５）、アラビノース（Ｃ５）、キシロース（Ｃ５）、リキソース（Ｃ５）、アロース（Ｃ５）、アルトロース（Ｃ６）、グルコース（Ｃ６）、マンノース（Ｃ６）、グロース（Ｃ６）、イドース（Ｃ６）、ガラクトース（Ｃ６）、タロース（Ｃ６）等を挙げることができる。これらの単糖の中でも特にグルコースが好ましい。
【0025】
ケトースについては、アルドースと同様にＣｎＨ２ｎＯｎ（但し、ｎは３以上の整数）で表されるものの、鎖状構造の内部にケト基（ケトン性カルボニル基）を1つ有する単糖を意味する。ケトースである単糖としては、より具体的には、ジヒドロキシアセトン（Ｃ３）、エリトルロース（Ｃ４）、キシルロース（Ｃ５）、リブロース（Ｃ５）、プシコース（Ｃ６）、フルクトース（Ｃ６）、ソルボース（Ｃ６）、タガトース（Ｃ６）等を挙げることができる。これらの単糖の中でも特にフルクトースが好ましい。
【0026】
［二糖］
加水分解によりアルドース及び／又はケトースを含有する混合物を生成しうる二糖は、構成糖としてアルドース及び／又はケトースである単糖を有する二糖を指し、より具体的には、スクロース、ラクトース、マルトース、トレハロース、セロビオース、イソマルトース、パルチノース、キシロビオース、ラミナリビオース、ゲンチオビオース、ツラノース、マルツロース、パラチノース等を挙げることができる。これらの中でも、上記に二糖として、スクロース、ラクトース、マルトースを採用することが好ましく、スクロースを採用することが好ましい。なお、スクロースは、グルコースとフルクトースがα（１→２）結合した二糖、ラクトースは、グルコースとガラクトースがβ（１→４）結合した二糖、マルトースは、グルコースとグルコースがα（１→４）結合した二糖である。
加水分解によりアルドース及び／又はケトースを含有する混合物を生成しうる二糖は、構成糖としてアルドース及び／又はケトースである単糖を有する二糖を指し、より具体的には、スクロース、ラクトース、マルトース、トレハロース、セロビオース、イソマルトース、パルチノース、キシロビオース、ラミナリビオース、ゲンチオビオース、ツラノース、マルツロース、パラチノース等を挙げることができる。これらの中でも、上記に二糖として、スクロース、ラクトース、マルトースを採用することが好ましく、スクロースを採用することが好ましい。なお、スクロースは、グルコースとフルクトースがα（１→２）結合した二糖、ラクトースは、グルコースとガラクトースがβ（１→４）結合した二糖、マルトースは、グルコースとグルコースがα（１→４）結合した二糖である。
【0027】
特に、（Ｂ）成分は、二糖を含むことが好ましく、二糖の中でも、グルコース及び／又はフルクトースを構成単位とする二糖を含むことが好ましい。う蝕抑制組成物が（Ａ）成分に加えて、グルコース及び／又はフルクトースを構成単位とする二糖を含有することにより、（Ａ）成分とグルコース及び／又はフルクトースを構成単位とする二糖が協働的に作用し、（Ａ）成分単独の場合よりも、う蝕抑制効果が高まる。なお、通常、グルコース及び／又はフルクトースを構成単位とする二糖の一つのスクロースは、ストレプトコッカス・ミュータンス等の口腔内細菌の栄養源として利用されるなど、う蝕の原因となることが知られていた。このため、スクロース自体が（Ａ）成分と協働的に作用し、う蝕抑制効果が高まるという事実は、当業者の予測の範囲を大きく超えたものである。
【0028】
グルコース及び／又はフルクトースを構成単位とする二糖としては、スクロース及びマルトースを挙げることができる。これらのうち、スクロースはグルコース及びフルクトースがα－１，２－グリコシド結合した二糖である。また、マルトースは２つのグルコースがα－１，４－グリコシド結合した二糖である。よって、スクロース及びマルトースは、少なくとも１つの構成単位がグルコースであり、α－グリコシド結合をしている点において、相互に構造的類似性を有している。なお、本実施形態に係るう蝕抑制組物に配合するグルコース及び／又はフルクトースを構成単位とする二糖としては、スクロースを利用することが最も好ましい。
【0029】
［オリゴ糖］
加水分解によりアルドース及び／又はケトースを含有する混合物を生成しうるオリゴ糖は、構成糖としてアルドース及び／又はケトースである単糖を有するオリゴ糖を指し、より具体的には、セロビオース、トレハロース、イソマルトース、パルチノース、キシロビオース、ラミナリビオース、ゲンチオビオース、ツラノース、マルツロース、パラチノース、ガラクトオリゴ糖、フラクトオリゴ糖、ラクトスクロース、イソマルトオリゴ糖、及びケストース等を挙げることができる。
加水分解によりアルドース及び／又はケトースを含有する混合物を生成しうるオリゴ糖は、構成糖としてアルドース及び／又はケトースである単糖を有するオリゴ糖を指し、より具体的には、セロビオース、トレハロース、イソマルトース、パルチノース、キシロビオース、ラミナリビオース、ゲンチオビオース、ツラノース、マルツロース、パラチノース、ガラクトオリゴ糖、フラクトオリゴ糖、ラクトスクロース、イソマルトオリゴ糖、及びケストース等を挙げることができる。
【0030】
［環状オリゴ糖］
加水分解によりアルドース及び／又はケトースを含有する混合物を生成しうる環状オリゴ糖は、構成糖としてアルドース及び／又はケトースである単糖を有する環状オリゴ糖を指す。環状オリゴ糖としては、上述のシクロデキストリンが代表的であり、このうち、グルコースが６個、７個、又は８個結合しているものが知られている。これらのシクロデキストリンについては、場合に応じ、α－シクロデキストリン（シクロヘキサアミロース、α－ＣＤ；グルコースが６個結合しているもの）、β－シクロデキストリン（シクロヘプタアミロース、β－ＣＤ；グルコースが７個結合しているもの）、γ－シクロデキストリン（シクロオクタアミロース、γ－ＣＤ；グルコースが８個結合しているもの）と称することもある。しかしながら、環状オリゴ糖としては、シクロデキストリンのみに限定されず、構成糖としてグルコース以外の単糖を有する環状オリゴ糖であってもよい。
加水分解によりアルドース及び／又はケトースを含有する混合物を生成しうる環状オリゴ糖は、構成糖としてアルドース及び／又はケトースである単糖を有する環状オリゴ糖を指す。環状オリゴ糖としては、上述のシクロデキストリンが代表的であり、このうち、グルコースが６個、７個、又は８個結合しているものが知られている。これらのシクロデキストリンについては、場合に応じ、α－シクロデキストリン（シクロヘキサアミロース、α－ＣＤ；グルコースが６個結合しているもの）、β－シクロデキストリン（シクロヘプタアミロース、β－ＣＤ；グルコースが７個結合しているもの）、γ－シクロデキストリン（シクロオクタアミロース、γ－ＣＤ；グルコースが８個結合しているもの）と称することもある。しかしながら、環状オリゴ糖としては、シクロデキストリンのみに限定されず、構成糖としてグルコース以外の単糖を有する環状オリゴ糖であってもよい。
【0031】
［多糖］
加水分解によりアルドース及び／又はケトースを含有する混合物を生成しうる多糖は、構成糖としてアルドース及び／又はケトースである単糖を有する多糖を指し、より具体的には、アミロース、アミロペクチン、グリコーゲン、ガラクトゲン等を挙げることができる。なお、これらのうち、アミロース、アミロペクチン、グリコーゲンは、いずれもグルコースを構成糖とする多糖であり、分岐構造等が相互に相違する傾向にある。また、ガラクトゲンは、ガラクトースを構成糖とする多糖である。
加水分解によりアルドース及び／又はケトースを含有する混合物を生成しうる多糖は、構成糖としてアルドース及び／又はケトースである単糖を有する多糖を指し、より具体的には、アミロース、アミロペクチン、グリコーゲン、ガラクトゲン等を挙げることができる。なお、これらのうち、アミロース、アミロペクチン、グリコーゲンは、いずれもグルコースを構成糖とする多糖であり、分岐構造等が相互に相違する傾向にある。また、ガラクトゲンは、ガラクトースを構成糖とする多糖である。
【0032】
［その他の糖］
本実施形態に係るう蝕抑制組成物が含有する、（Ａ）成分以外の糖としては、上記の単糖、二糖、オリゴ糖、環状オリゴ糖、及び多糖以外にも、アミノ糖、デオキシ糖、糖アルコール、ラクトン、並びにこれらを構成糖とする二糖、オリゴ糖、環状オリゴ糖、及び多糖を用いてもよい。構成糖としてのアミノ糖、デオキシ糖、糖アルコール、ラクトンとしては、Ｎ－アセチルグルコサミン、Ｎ－アセチルノイラミン酸、Ｎ－グリコリルノイラミン酸、デアミノノイラミン酸、Ｄ－デオキシリボース、Ｌ－フコース、Ｌ－ラムノース、Ｄ－キノボース、ソルビトール、キシリトール、グルコノラクトン、マルチトール、エリスリトール、及びスクラロース等を挙げることができる。本実施形態に係るう蝕抑制組成物が含有する、（Ａ）成分以外の糖が、二糖、オリゴ糖、環状オリゴ糖、及び多糖である場合、これらのアミノ糖、デオキシ糖、糖アルコール、及びラクトンは、上述のアルドース及び／又はケトースとともに、二糖、オリゴ糖、環状オリゴ糖、及び多糖を構成していてもよいし、アミノ糖、デオキシ糖、糖アルコール、及びラクトンのみで二糖、オリゴ糖、環状オリゴ糖、及び多糖を構成していてもよい。
本実施形態に係るう蝕抑制組成物が含有する、（Ａ）成分以外の糖としては、上記の単糖、二糖、オリゴ糖、環状オリゴ糖、及び多糖以外にも、アミノ糖、デオキシ糖、糖アルコール、ラクトン、並びにこれらを構成糖とする二糖、オリゴ糖、環状オリゴ糖、及び多糖を用いてもよい。構成糖としてのアミノ糖、デオキシ糖、糖アルコール、ラクトンとしては、Ｎ－アセチルグルコサミン、Ｎ－アセチルノイラミン酸、Ｎ－グリコリルノイラミン酸、デアミノノイラミン酸、Ｄ－デオキシリボース、Ｌ－フコース、Ｌ－ラムノース、Ｄ－キノボース、ソルビトール、キシリトール、グルコノラクトン、マルチトール、エリスリトール、及びスクラロース等を挙げることができる。本実施形態に係るう蝕抑制組成物が含有する、（Ａ）成分以外の糖が、二糖、オリゴ糖、環状オリゴ糖、及び多糖である場合、これらのアミノ糖、デオキシ糖、糖アルコール、及びラクトンは、上述のアルドース及び／又はケトースとともに、二糖、オリゴ糖、環状オリゴ糖、及び多糖を構成していてもよいし、アミノ糖、デオキシ糖、糖アルコール、及びラクトンのみで二糖、オリゴ糖、環状オリゴ糖、及び多糖を構成していてもよい。
【0033】
〔（Ａ）成分及び（Ｂ）成分の配合割合〕
本実施形態に係るう蝕抑制組成物が含有する、（Ａ）成分及び（Ｂ）成分の配合割合は、（Ｂ）成分１００質量部に対して、（Ａ）成分の配合量の下限値が０．１質量部以上であることが好ましく、０．２質量部以上であることがより好ましい。（Ａ）成分の割合の下限値が上記の条件を満たすことにより、過剰な（Ｂ）成分の存在による、口腔内の酸性化が抑制されやすくなり、本実施形態に係るう蝕抑制組成物のう蝕抑制効果が高まる。
本実施形態に係るう蝕抑制組成物が含有する、（Ａ）成分及び（Ｂ）成分の配合割合は、（Ｂ）成分１００質量部に対して、（Ａ）成分の配合量の下限値が０．１質量部以上であることが好ましく、０．２質量部以上であることがより好ましい。（Ａ）成分の割合の下限値が上記の条件を満たすことにより、過剰な（Ｂ）成分の存在による、口腔内の酸性化が抑制されやすくなり、本実施形態に係るう蝕抑制組成物のう蝕抑制効果が高まる。
【0034】
また、本実施形態に係るう蝕抑制組成物が含有する、（Ａ）成分及び（Ｂ）成分の配合割合は、（Ｂ）成分１００質量部に対して、（Ａ）成分の配合量の上限値が５００質量部以下であることが好ましく、１００質量部以下であることがより好ましく、５０質量部以下であることが更に好ましく、１０質量部以下であることがより更に好ましく、５質量部以下であることが特に好ましい。（Ａ）成分の割合の上限値が上記の条件を満たすことにより、う蝕抑制効果における（Ａ）成分と（Ｂ）成分との協働作用がより高まり、本実施形態に係るう蝕抑制組成物のう蝕抑制効果が高まる。
【0035】
＜う蝕抑制組成物を含有する甘味組成物、食品、サプリメント＞
本実施形態に係るう蝕抑制組成物を、これを、甘味組成物、食品、サプリメントとして構成してもよい。本実施形態に係るう蝕抑制組成物を、甘味組成物、食品、サプリメントとして構成することにより、喫食してもう蝕を起こしにくい、甘味組成物、食品、サプリメントを提供することができる。
本実施形態に係るう蝕抑制組成物を、これを、甘味組成物、食品、サプリメントとして構成してもよい。本実施形態に係るう蝕抑制組成物を、甘味組成物、食品、サプリメントとして構成することにより、喫食してもう蝕を起こしにくい、甘味組成物、食品、サプリメントを提供することができる。
【0036】
このうち、う蝕抑制組成物を含有する食品としては、特に限定されるものではなく、完成品のみならず、半製品も含まれる。例えば、冷凍食品、冷凍生地、缶詰食品、瓶詰食品、チルド食品、加圧加熱殺菌食品、乾燥食品、肉加工品、魚介加工品、野菜加工品、果実加工品、穀類加工品、調味料類、飲料類、焼き菓子類、和菓子類、洋菓子類、チョコレート、準チョコレート、チョコレート菓子、準チョコレート菓子、可食フィルム、キャンディー類（グミ、あめ等）、ガム、タブレット、ゼリー、ヨーグルト、アイスクリーム、アイスミルク、ラクトアイス、氷菓、クリーム、バター、バターオイル、チーズ、濃縮ホエイ、濃縮乳、脱脂濃縮乳、無糖練乳、無糖脱脂練乳、加糖練乳、加糖脱脂練乳、全粉乳、脱脂粉乳、プレミックス製品、クリームパウダー、ホエイパウダー、たんぱく質濃縮ホエイパウダー、バターミルクパウダー、加糖粉乳、調製粉乳、調製液状乳、発酵乳、乳酸菌飲料、ペットフード等を挙げることができる。
【0037】
また、う蝕抑制組成物を含有するサプリメントとしては、ベースサプリメント、ヘルスサプリメント、オプショナルサプリメント等を挙げることができ、それぞれに含有される栄養機能食品成分としては、本発明の効果を損なわない限りにおいて、ビタミン類、ミネラル類、アミノ酸類、酵素類、食物繊維類、コエンザイムＱ１０、プラセンタ、ヒアルロン酸、コラーゲン、コラーゲンペプチド、アスタキサンチン、オメガ３脂肪酸、グルコサミン、コンドロイチン等を挙げることができる。
【0038】
〔甘味組成物、食品、サプリメントが含んでいてもよいその他の成分〕
本実施形態に係るう蝕抑制組成物を含有する甘味組成物、食品、サプリメントは、それぞれ、食品添加物、食品、栄養補助食品に分類されうるものであり、食品添加物、食品、栄養補助食品の分野で一般に使用されうる（Ａ）成分及び（Ｂ）成分以外の添加物を含んでいてもよい。そのような添加物としては、本発明の目的を損なわない限り特に限定されないが、酸味料、酵素、香辛料、色素、保存料、香料、甘味料、調味料、乳化剤、増粘剤、安定剤、発泡剤、膨張剤、着色料、酸化剤、防腐剤、製菓用ゼラチン、製菓用アルブミン、製菓用デンプン、殺菌料、酸化防止剤、防カビ剤等を挙げることができる。また、本実施形態に係るう蝕抑制組成物を含有する甘味組成物、食品、サプリメントは、本発明の目的を阻害しない範囲において、（Ａ）成分と構造の類似した、直鎖、分岐鎖、環状の多糖類を含んでいてもよい。
本実施形態に係るう蝕抑制組成物を含有する甘味組成物、食品、サプリメントは、それぞれ、食品添加物、食品、栄養補助食品に分類されうるものであり、食品添加物、食品、栄養補助食品の分野で一般に使用されうる（Ａ）成分及び（Ｂ）成分以外の添加物を含んでいてもよい。そのような添加物としては、本発明の目的を損なわない限り特に限定されないが、酸味料、酵素、香辛料、色素、保存料、香料、甘味料、調味料、乳化剤、増粘剤、安定剤、発泡剤、膨張剤、着色料、酸化剤、防腐剤、製菓用ゼラチン、製菓用アルブミン、製菓用デンプン、殺菌料、酸化防止剤、防カビ剤等を挙げることができる。また、本実施形態に係るう蝕抑制組成物を含有する甘味組成物、食品、サプリメントは、本発明の目的を阻害しない範囲において、（Ａ）成分と構造の類似した、直鎖、分岐鎖、環状の多糖類を含んでいてもよい。
【0039】
＜う蝕抑制組成物を含有するう蝕抑制剤、歯磨剤組成物、洗口液組成物＞
本実施形態に係るう蝕抑制組成物を、これを、う蝕抑制剤、歯磨剤組成物、洗口液組成物として構成してもよい。本実施形態に係るう蝕抑制組成物を、甘味組成物、食品、サプリメントとして構成することにより、これを使用した使用者がう蝕を効果的に抑制できる。これらのう蝕抑制剤、歯磨剤組成物、洗口液組成物は、医薬品、医薬部外品、化粧品のいずれに分類されるものであってもよく、薬用成分や美容成分を配合されていてもよい。
本実施形態に係るう蝕抑制組成物を、これを、う蝕抑制剤、歯磨剤組成物、洗口液組成物として構成してもよい。本実施形態に係るう蝕抑制組成物を、甘味組成物、食品、サプリメントとして構成することにより、これを使用した使用者がう蝕を効果的に抑制できる。これらのう蝕抑制剤、歯磨剤組成物、洗口液組成物は、医薬品、医薬部外品、化粧品のいずれに分類されるものであってもよく、薬用成分や美容成分を配合されていてもよい。
【0040】
〔う蝕抑制剤、歯磨剤組成物、洗口液組成物が含んでいてもよいその他の成分〕
本実施形態に係るう蝕抑制剤、歯磨剤組成物、洗口液組成物は、必要に応じ他の薬用成分を併用することにより、口臭、歯周病、知覚過敏等の口腔内疾患を治療、抑制、予防するものであってもよいし、歯質を強化できるものであってもよい。本実施形態に係るう蝕抑制剤、歯磨剤組成物、洗口液組成物が含有していてもよい、（Ａ）成分及び（Ｂ）成分以外の薬用成分としては、例えば、フッ素、キシリトール、プロポリス、センブリエキス、ハイドロキシアパタイト等の従来慣用されているものを挙げることができる。歯磨剤組成物、洗口液組成物の具体的態様として、歯磨粉、洗口液、うがい薬、マウススプレー等のオーラルケア用品が挙げられる。
本実施形態に係るう蝕抑制剤、歯磨剤組成物、洗口液組成物は、必要に応じ他の薬用成分を併用することにより、口臭、歯周病、知覚過敏等の口腔内疾患を治療、抑制、予防するものであってもよいし、歯質を強化できるものであってもよい。本実施形態に係るう蝕抑制剤、歯磨剤組成物、洗口液組成物が含有していてもよい、（Ａ）成分及び（Ｂ）成分以外の薬用成分としては、例えば、フッ素、キシリトール、プロポリス、センブリエキス、ハイドロキシアパタイト等の従来慣用されているものを挙げることができる。歯磨剤組成物、洗口液組成物の具体的態様として、歯磨粉、洗口液、うがい薬、マウススプレー等のオーラルケア用品が挙げられる。
【0041】
本実施形態に係るう蝕抑制剤、歯磨剤組成物、洗口液組成物は、その態様に応じ、従来慣用される任意の添加剤を含有していてもよい。そのような添加剤としては、本発明の目的を阻害しない限り、限定されないが、研磨剤、粘結剤、着色剤、香料、甘味剤等を挙げることができる。また、本実施形態に係るう蝕抑制剤、歯磨剤組成物、洗口液組成物は、本発明の目的を阻害しない範囲において、（Ａ）成分と構造の類似した、直鎖、分岐鎖、環状の多糖類を含んでいてもよい。
【実施例】
【0042】
以下、実施例により本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
【0043】
なお、各種試験の実施にあたり、各種の培地・緩衝液・試薬の調製、試験のプロトコルの決定は、Michael R. Greenら著，”Moleclar Cloning”, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2012)の記載を参考に実施した。参考文献の内容は参照により本明細書の一部として組み込まれるが、本明細書に特別に記載のある事項は、本明細書の記載事項が優先する。
【0044】
〔試験１〕サイクロデキストラン存在下／非存在下でのストレプトコッカス・ミュータンスの増殖速度の検討
Todd-Hewitt液体培地（以下、「ＴＨ液体培地」とも称する）を用いて３７℃で１８時間培養した、ストレプトコッカス・ミュータンス ＭＴ８１４８株の供試菌液１００μＬを新鮮なTodd-Hewitt（ＴＨ）液体培地１０ｍＬで継代培養した。最終濃度が０％から１％になるようにCI-Dextran mix（サイクロデキストランを１３％以上含むデキストラン混合物、日新製糖株式会社製、以下同じ）を培地に添加した。可視分光光度計（Novaspec plus、Amersham Biosciences製）を用い、波長５７０ｎｍにて、この菌液の濁度を１時間毎に経時的に測定した。結果を図３に示す。
Todd-Hewitt液体培地（以下、「ＴＨ液体培地」とも称する）を用いて３７℃で１８時間培養した、ストレプトコッカス・ミュータンス ＭＴ８１４８株の供試菌液１００μＬを新鮮なTodd-Hewitt（ＴＨ）液体培地１０ｍＬで継代培養した。最終濃度が０％から１％になるようにCI-Dextran mix（サイクロデキストランを１３％以上含むデキストラン混合物、日新製糖株式会社製、以下同じ）を培地に添加した。可視分光光度計（Novaspec plus、Amersham Biosciences製）を用い、波長５７０ｎｍにて、この菌液の濁度を１時間毎に経時的に測定した。結果を図３に示す。
【0045】
図３より明らかなように、菌の増殖は最終的には、サイクロデキストランを添加した場合も、サイクロデキストランを添加しない場合も、ともに同等の細胞数に収束し、変化は見られなかった。しかしながら、対数増殖期においては、サイクロデキストランを添加した場合に、明らかに、濃度依存的に増殖速度の遅延が認められた。
【0046】
〔試験２〕サイクロデキストラン存在下／非存在下でのストレプトコッカス・ミュータンスによるバイオフィルム形成量の測定
ストレプトコッカス・ミュータンス ＭＴ８１４８株の供試菌を１０ｍＬのＴＨ液体培地にて３７℃で１８時間培養後、培養した供試菌液を０．２５％スクロース添加ＴＨ液体培地に希釈し、FALCON（登録商標）９６穴平底細胞培養用マイクロタイタープレート（Corning社製）の各ウェルに１００μＬずつ分注して、３７℃で２日間嫌気的に培養した。その際、最終濃度が０．１６％から１０％になるようCI-Dextran mix （日新製糖株式会社製）を培地に添加した。各ウェルの浮遊菌液を取り除いた後に、２５μＬの１％Crystal violet溶液（ナカライテスク株式会社製）を加えて１５分間室温に静置することにより付着した菌体を染色し、蒸留水で６回洗浄を行った。その後、９５％エタノール（富士フィルム和光純薬株式会社製）を加えて洗浄し、乾燥後、蒸留水を加えて波長５７０ｎｍにおける吸光度を測定した。結果を図４に示す。
ストレプトコッカス・ミュータンス ＭＴ８１４８株の供試菌を１０ｍＬのＴＨ液体培地にて３７℃で１８時間培養後、培養した供試菌液を０．２５％スクロース添加ＴＨ液体培地に希釈し、FALCON（登録商標）９６穴平底細胞培養用マイクロタイタープレート（Corning社製）の各ウェルに１００μＬずつ分注して、３７℃で２日間嫌気的に培養した。その際、最終濃度が０．１６％から１０％になるようCI-Dextran mix （日新製糖株式会社製）を培地に添加した。各ウェルの浮遊菌液を取り除いた後に、２５μＬの１％Crystal violet溶液（ナカライテスク株式会社製）を加えて１５分間室温に静置することにより付着した菌体を染色し、蒸留水で６回洗浄を行った。その後、９５％エタノール（富士フィルム和光純薬株式会社製）を加えて洗浄し、乾燥後、蒸留水を加えて波長５７０ｎｍにおける吸光度を測定した。結果を図４に示す。
【0047】
図４から明らかなように、バイオフィルム形成量は、濃度依存的に減少した。なお、CI-Dextran mixを添加していない試料と、CI-Dextran mixを所定の濃度で添加した試料との間で有意性検定を行ったところ、CI-Dextran mixを添加していない試料と、CI-Dextran mixを所定の濃度で添加した全ての試料との間の差は統計的に有意となった（p<0.001, Fisher's PLSD）。
【0048】
〔試験３〕ストレプトコッカス・ミュータンスによるバイオフィルム構造の観察
［試験３－１］菌体の染色と顕微鏡観察によるバイオフィルム構造の確認
ストレプトコッカス・ミュータンス ＭＴ８１４８株をＴＨ液体培地で３７℃、１８時間培養後、遠心分離により菌体を回収した。１０ｍＭのヘキシジウムアイオダイド（Invitrogen（商標）、サーモフィッシャーサイエンティフィック社製）で菌体を染色し、０．５％スクロース含有化学合成培地にて、波長６００ｎｍにおける濁度が０．１となるよう調整し生菌試料とした。これらの菌液及び各試料をポリスチレン製８穴Ｌａｂ－Ｔｅｋチャンバースライドシステム（Nunc［商標］、サーモフィッシャーサイエンティフィック社製）に２００μＬずつ播種し、３７℃、２４時間培養した。最終濃度が０％から１０％になるようにCI-Dextran mix（日新製糖株式会社製）を培地に添加した。形成されたバイオフィルムを共焦点走査型レーザー顕微鏡ＬＳＭ７８０（Version 4.2，カールツァイスマイクロイメージング社製）にて観察した。さらにＩｍａｇｅＪ（登録商標）を用いて密度を算定した。共焦点走査型レーザー顕微鏡で観察した顕微鏡像を図５に、ＩｍａｇｅＪを用いて計算したバイオフィルムの密度を図６にそれぞれ示す。
［試験３－１］菌体の染色と顕微鏡観察によるバイオフィルム構造の確認
ストレプトコッカス・ミュータンス ＭＴ８１４８株をＴＨ液体培地で３７℃、１８時間培養後、遠心分離により菌体を回収した。１０ｍＭのヘキシジウムアイオダイド（Invitrogen（商標）、サーモフィッシャーサイエンティフィック社製）で菌体を染色し、０．５％スクロース含有化学合成培地にて、波長６００ｎｍにおける濁度が０．１となるよう調整し生菌試料とした。これらの菌液及び各試料をポリスチレン製８穴Ｌａｂ－Ｔｅｋチャンバースライドシステム（Nunc［商標］、サーモフィッシャーサイエンティフィック社製）に２００μＬずつ播種し、３７℃、２４時間培養した。最終濃度が０％から１０％になるようにCI-Dextran mix（日新製糖株式会社製）を培地に添加した。形成されたバイオフィルムを共焦点走査型レーザー顕微鏡ＬＳＭ７８０（Version 4.2，カールツァイスマイクロイメージング社製）にて観察した。さらにＩｍａｇｅＪ（登録商標）を用いて密度を算定した。共焦点走査型レーザー顕微鏡で観察した顕微鏡像を図５に、ＩｍａｇｅＪを用いて計算したバイオフィルムの密度を図６にそれぞれ示す。
【0049】
図５及び図６から明らかなように、バイオフィルム構造は、CI-Dextran mixの濃度が上昇するにつれ、密度が疎となっており、バイオフィルムの厚みも減少していた。なお、CI-Dextran mixを添加していない試料と、CI-Dextran mixを０．６２５％以上の濃度で添加した試料との間での密度の差は、統計的にも有意であった（Fisher's PLSD）。
【0050】
［試験３－２］バイオフィルム中のグルカン及び菌量の検討
ストレプトコッカス・ミュータンス ＭＴ８１４８株を蛍光核酸染色色素SYTO（登録商標）9 greenで染色した後、１％スクロース含有ＣＤＭ培地にて調整した。Alexa Fluor（登録商標）６４７－標識デキストランを加えた後、チャンバースライドに播種した。培養を開始するタイミングで最終濃度が０％から１０％になるようにＣＩ－Ｄｅｘｔｒａｎ ｍｉｘ（日新製糖株式会社製）を培地に添加し、２４時間３７℃にて嫌気培養した後、形成されたバイオフィルムを共焦点走査型レーザー顕微鏡ＬＳＭ７８０（Version 4.2，カールツァイスマイクロイメージング社製）にて観察した。図７に顕微鏡写真を示す。
ストレプトコッカス・ミュータンス ＭＴ８１４８株を蛍光核酸染色色素SYTO（登録商標）9 greenで染色した後、１％スクロース含有ＣＤＭ培地にて調整した。Alexa Fluor（登録商標）６４７－標識デキストランを加えた後、チャンバースライドに播種した。培養を開始するタイミングで最終濃度が０％から１０％になるようにＣＩ－Ｄｅｘｔｒａｎ ｍｉｘ（日新製糖株式会社製）を培地に添加し、２４時間３７℃にて嫌気培養した後、形成されたバイオフィルムを共焦点走査型レーザー顕微鏡ＬＳＭ７８０（Version 4.2，カールツァイスマイクロイメージング社製）にて観察した。図７に顕微鏡写真を示す。
【0051】
図７から明らかなように、サイクロデキストラン存在下においては、バイオフィルム中におけるグルカン量も菌量も顕著に減少し、サイクロデキストランの添加量が増加する程、グルカン量も菌量もより減少する傾向が見られた。
【0052】
〔試験４〕ストレプトコッカス・ミュータンスのグルカン合成酵素の活性阻害効果の検証
［試験４－１］サイクロデキストランを１３％以上含む市販のデキストラン混合物を用いた検証
１％スクロース含有リン酸緩衝液にCI-Dextran mix（日新製糖株式会社製）を０％から１％の各濃度になるように添加した。ｒＧＴＦＢ（組み換えＧＴＦＢ）を１０μＬ添加し、３７℃で１６時間培養した。培養後、合成された非水溶性グルカンを吸光度５５０ｎｍで測定して、ｒＧＴＦＢの活性阻害効果を検証した。結果を図８に示す。
［試験４－１］サイクロデキストランを１３％以上含む市販のデキストラン混合物を用いた検証
１％スクロース含有リン酸緩衝液にCI-Dextran mix（日新製糖株式会社製）を０％から１％の各濃度になるように添加した。ｒＧＴＦＢ（組み換えＧＴＦＢ）を１０μＬ添加し、３７℃で１６時間培養した。培養後、合成された非水溶性グルカンを吸光度５５０ｎｍで測定して、ｒＧＴＦＢの活性阻害効果を検証した。結果を図８に示す。
【0053】
図８から明らかなように、非水溶性グルカンの合成量はCI-Dextran mix濃度が高まるにつれて減少しており、CI-Dextran mix濃度依存的にｒＧＴＦＢの活性が阻害されることが示された。CI-Dextran mixを添加していない試料と、CI-Dextran mixを添加した試料との間で有意性検定を行ったところ、CI-Dextran mixを添加していない試料と、CI-Dextran mixを所定の濃度で添加した全ての試料との間の差は統計的に有意となった（p<0.001, Fisher's PLSD）。
【0054】
［試験４－２］サイクロデキストランの高純度試料を用いた検証
CI-Dextran mixに代えてサイクロデキストランの高純度試料を用いた点以外は、〔試験４〕と同様にグルカン合成酵素の活性阻害効果を検証した。結果を図９に示す。なお、サイクロデキストランは、上記のCI-Dextran mixをクロマトグラフィーによる分画により得たものであり、図９に記載の試料のうち、ＣＩ７、ＣＩ８、ＣＩ９、Ｃ１０、Ｃ１１と表されるものは、それぞれ、主に、グルコースが７個、８個、９個、１０個、１１個連結した環状構造を有するオリゴ糖が含まれる試料である。
CI-Dextran mixに代えてサイクロデキストランの高純度試料を用いた点以外は、〔試験４〕と同様にグルカン合成酵素の活性阻害効果を検証した。結果を図９に示す。なお、サイクロデキストランは、上記のCI-Dextran mixをクロマトグラフィーによる分画により得たものであり、図９に記載の試料のうち、ＣＩ７、ＣＩ８、ＣＩ９、Ｃ１０、Ｃ１１と表されるものは、それぞれ、主に、グルコースが７個、８個、９個、１０個、１１個連結した環状構造を有するオリゴ糖が含まれる試料である。
【0055】
図９から明らかなように、上記のCI-Dextran mixと同様、サイクロデキストランの高純度試料でも非水溶性グルカンの合成を効果的に抑制したが、特にグルコースが７個連結された、ＣＩ７を主に含むサイクロデキストランの高純度試料の効果が最も優れた効果を発揮した。
【0056】
〔試験５〕サイクロデキストランのＧＴＦ活性阻害様式の検証
［試験５－１］ウエスタンブロッティングによるタンパクの発現量の検討
ストレプトコッカス・ミュータンス ＭＴ８１４８株をCI-Dextran mix（日新製糖株式会社製）及びスクロースを０％から１０％の各濃度になるように添加したＴＨ液体培地にて静止期まで培養した後、遠心分離により菌体を回収した。２倍濃度のＳＤＳ－ＰＡＧＥ用バッファーを等量混合し、加熱してＳＤＳ－ＰＡＧＥ用試料とした。アクリルアミドの濃度は分離ゲル用として１０％、濃縮ゲル用として３％を用いて、電気泳動を行った。泳動後、通電することによりアクリルアミドゲル層から転写膜へ転写し、ウサギ抗ＣＡ－ＧＴＦ抗体と室温で１時間反応させた。反応後洗浄し、アルカリフォスファターゼ標識ヤギ抗ウサギ免疫グロブリンと室温でさらに１時間反応させ、発色基質を加えて発色させて、バンドを視覚化した。結果を図１０に示す。
［試験５－１］ウエスタンブロッティングによるタンパクの発現量の検討
ストレプトコッカス・ミュータンス ＭＴ８１４８株をCI-Dextran mix（日新製糖株式会社製）及びスクロースを０％から１０％の各濃度になるように添加したＴＨ液体培地にて静止期まで培養した後、遠心分離により菌体を回収した。２倍濃度のＳＤＳ－ＰＡＧＥ用バッファーを等量混合し、加熱してＳＤＳ－ＰＡＧＥ用試料とした。アクリルアミドの濃度は分離ゲル用として１０％、濃縮ゲル用として３％を用いて、電気泳動を行った。泳動後、通電することによりアクリルアミドゲル層から転写膜へ転写し、ウサギ抗ＣＡ－ＧＴＦ抗体と室温で１時間反応させた。反応後洗浄し、アルカリフォスファターゼ標識ヤギ抗ウサギ免疫グロブリンと室温でさらに１時間反応させ、発色基質を加えて発色させて、バンドを視覚化した。結果を図１０に示す。
【0057】
図１０から明らかなように、スクロース濃度を１％とし、サイクロデキストランの濃度を変化させた場合では、０．２５％以上でＧＴＦタンパクの分子量である１４５ｋＤａから１５５ｋＤａ付近のバンドの発現が強く認められた。これは、スクロースから生成されたグルカンとCI-Dextran mixに元々含まれるグルカンの存在により、ＧＴＦの発現が上昇した可能性を示唆するものである。一方で、CI-Dextran mix濃度を０．５％とし、スクロースの濃度を変化させた場合では、０．５％以上の濃度になるとＧＴＦタンパクの発現の減少が認められた。
【0058】
［試験５－２］活性染色を利用した酵素活性に対する影響の検証
［試験５－１］と同様にサンプルを作製し、ＳＤＳ－ＰＡＧＥを用いて電気泳動後、ゲルをスクロースとＴｒｉｔｏｎ－Ｘを混和した溶液で、３７℃で１８時間振とうした。ゲル上に存在するＧＴＦＢ及びＧＴＦＣにより生成されたグルカンをパラノースアニリン溶液により染色した。結果を図１１に示す。
［試験５－１］と同様にサンプルを作製し、ＳＤＳ－ＰＡＧＥを用いて電気泳動後、ゲルをスクロースとＴｒｉｔｏｎ－Ｘを混和した溶液で、３７℃で１８時間振とうした。ゲル上に存在するＧＴＦＢ及びＧＴＦＣにより生成されたグルカンをパラノースアニリン溶液により染色した。結果を図１１に示す。
【0059】
図１１から明らかなように、はじめに、スクロースとCI-Dextran mixとのそれぞれ単独でのＧＴＦの活性を調べたところ、スクロース単独では０．１２５％まで強い活性が認められ、０．２５％以上では活性が減少したものの、０．２５％から１．５％までの間で、同程度の活性が認められた。一方、CI-Dextran mix単独では、濃度依存的にＧＴＦ活性の上昇が認められた。CI-Dextran mixを０．５％に固定し、スクロースの濃度を０％から１％まで変動させて試験した場合、スクロース濃度が０．５％以上の場合に、スクロース濃度０．２５％以下の場合と比較して活性の顕著な減少が認められた。
【0060】
［試験５－３］酵素基質反応の観点からの酵素活性に対する影響の検証
CI-Dextran mix（日新製糖株式会社製）を０％（ＣＩ無し）又は０．２５％添加し（ＣＩ有り）、スクロースの濃度を０ｍＭから２５ ｍＭまで段階希釈し添加したリン酸緩衝液に、ｒＧＴＦＢを１０μL添加し、３７℃で１６時間培養後、合成された非水溶性グルカンを吸光度５５０ｎｍで測定した。結果を図１２に示す。
CI-Dextran mix（日新製糖株式会社製）を０％（ＣＩ無し）又は０．２５％添加し（ＣＩ有り）、スクロースの濃度を０ｍＭから２５ ｍＭまで段階希釈し添加したリン酸緩衝液に、ｒＧＴＦＢを１０μL添加し、３７℃で１６時間培養後、合成された非水溶性グルカンを吸光度５５０ｎｍで測定した。結果を図１２に示す。
【0061】
図１２から明らかなように、ＣＩ添加群（ＣＩ有り）では最大速度Ｖｍａｘは約５０％減少した。最終的なグルカンの合成量が低下した。
【0062】
この結果をもとに、Lineweaver-Burk プロットを用いて、ｒＧＴＦＢによるグルカン合成酵素活性阻害効果の酵素反応速度論的解析を行った。結果を図１３に示す。Lineweaver-Burkプロットでは直線がＹ軸と交わる点が１／Ｖｍａｘを表し、傾きがＫｍ／Ｖｍａｘを表すため、ここからＶｍａｘとＫｍ値を求められる。ＣＩ非添加群（ＣＩ無し）では、最大反応速度（Ｖｍａｘ）は０．４４ｎｍｏｌ／ｍｉｎで、ミカエリス定数（Ｋｍ値；反応速度がＶｍａｘの１／２のときの基質濃度）は１．５４ｍＭであった。一方でＣＩ添加群（ＣＩ有り）では、Ｖｍａｘは０．５７ｎｍｏｌ／ｍｉｎで、Ｋｍ値は４．４３ｍＭであった。
【0063】
これらの結果から、サイクロデキストランによる酵素活性の阻害形式を以下のとおりに推測する。酵素活性の阻害様式には、拮抗阻害、非拮抗阻害、及び不拮抗阻害の３種類の形式が存在する。拮抗阻害は、阻害剤が酵素の活性部位に結合し基質の結合を妨げる阻害様式である。基質と阻害剤が競って活性部位に結合するため、Ｋｍ値は大きくなるがＶｍａｘは変化しない。非拮抗阻害は、阻害剤が酵素の活性部位以外に結合し酵素の立体構造を変えることで基質の結合を妨げる阻害様式である。阻害剤は活性部位以外に結合するため、基質の親和性には変化がなくＫｍ値は変わらないが、酵素の立体構造が変化するためＶｍａｘは低下する。不拮抗阻害は酵素基質複合体に阻害剤が結合し反応を妨げる阻害様式である。酵素と基質が結合した後に阻害剤が結合するため、Ｋｍ値とＶｍａｘはともに変化する。試験の結果からは、Ｋｍ値が大きくなり１／Ｖｍａｘに変化がなかったため、サイクロデキストランのＧＴＦＢへの阻害効果は拮抗阻害である可能性が示された。
【0064】
〔試験６〕ラット動物う蝕モデルにおける飼料・飲料水にサイクロデキストランを添加した場合の ストレプトコッカス・ミュータンスによるう蝕の発生に対する阻害効果、及びプラーク沈着抑制効果の検討
実験動物として、生後１５日目に強制離乳させた、特定された微生物や寄生虫が存在しない（ＳＰＦ）のSprague Dawley系ラットの雄を使用し、一群を１０匹として実験に供試した。生後１５日目及び１６日目の２日間、供試菌の定着を容易にするために口腔内の抗生物質処理を行った。その後、生後１８日目から生後２２日目までの５日間、ストレプトコッカス・ミュータンスＭＴ８１４８ Ｒ株をBrain Heart Infusion（ＢＨＩ）液体培地中で３７℃にて１８時間培養後、遠心し、１／１００量の滅菌生理食塩水で懸濁したものを接種菌液として、１００μＬを１日１回、マイクロピペットを用いてラットロ腔内に直接接種し感染させた。供試菌の感染の当日から、スクロース５６％含有う蝕誘発性飼料Ｄｉｅｔ ２０００にCI-Dextran mix（日新製糖株式会社製）を、０．６２５％、１．２５％、２．５％、５％添加したものを与え、実験が終了するまで自由に摂取させた。飲料水としては、蒸留水を自由に摂取させた。生後７２日目にクロロホルム麻酔下でラットを屠殺し、顎骨を無菌的に摘出し、エリスロシンを用いて上顎の歯牙を染色し、プラークをRegoratiとHotzの方法で求めた。さらに上下顎臼歯のう蝕スコアをKeyesの方法をOoshimaらがラット用に改変したもので算出した。同様に、蒸留水にCI-Dextran mix（日新製糖株式会社製）を０．６２５％、１．２５％、２．５％、５％を添加したものを与え、飼料としてはスクロース５６％含有う蝕誘発性飼料Ｄｉｅｔ ２０００を自由に摂取させた試験も行った。結果を図１４から図１７に示す。
実験動物として、生後１５日目に強制離乳させた、特定された微生物や寄生虫が存在しない（ＳＰＦ）のSprague Dawley系ラットの雄を使用し、一群を１０匹として実験に供試した。生後１５日目及び１６日目の２日間、供試菌の定着を容易にするために口腔内の抗生物質処理を行った。その後、生後１８日目から生後２２日目までの５日間、ストレプトコッカス・ミュータンスＭＴ８１４８ Ｒ株をBrain Heart Infusion（ＢＨＩ）液体培地中で３７℃にて１８時間培養後、遠心し、１／１００量の滅菌生理食塩水で懸濁したものを接種菌液として、１００μＬを１日１回、マイクロピペットを用いてラットロ腔内に直接接種し感染させた。供試菌の感染の当日から、スクロース５６％含有う蝕誘発性飼料Ｄｉｅｔ ２０００にCI-Dextran mix（日新製糖株式会社製）を、０．６２５％、１．２５％、２．５％、５％添加したものを与え、実験が終了するまで自由に摂取させた。飲料水としては、蒸留水を自由に摂取させた。生後７２日目にクロロホルム麻酔下でラットを屠殺し、顎骨を無菌的に摘出し、エリスロシンを用いて上顎の歯牙を染色し、プラークをRegoratiとHotzの方法で求めた。さらに上下顎臼歯のう蝕スコアをKeyesの方法をOoshimaらがラット用に改変したもので算出した。同様に、蒸留水にCI-Dextran mix（日新製糖株式会社製）を０．６２５％、１．２５％、２．５％、５％を添加したものを与え、飼料としてはスクロース５６％含有う蝕誘発性飼料Ｄｉｅｔ ２０００を自由に摂取させた試験も行った。結果を図１４から図１７に示す。
【0065】
図１４及び図１７から明らかなように、飼料にCI-Dextran mixを添加した場合、CI-Dextran mixを１．２５％添加したものが最もう蝕抑制効果が高いことが明らかとなった。プラーク沈着の抑制については、CI-Dextran mixを０．６２５％の低濃度で添加した条件でも、有意に低下していることが明らかとなった（p<0.01, Tukey）。これらの結果から、CI-Dextran mixがプラーク沈着を抑制することによりう蝕の発生が抑えることができたものと考えられる。
【0066】
〔試験７〕触媒ドメイン（ＣＡＴ）組み換えタンパク質の作製
ＧＴＦＢにはスクロース結合部位であるＣＡＴと、グルコースを転位させてグルカンを合成するＧＢＤの２つの機能ドメインが存在する。酵素阻害活性様式が拮抗阻害である可能性が示されたことから、ＣＩがＣＡＴに結合し、スクロースがＣＡＴに結合することを阻害している可能性が考えられた。そこで、ＣＡＴの部分タンパクｒＧＴＦＢ（ＣＡＴ）を作製し、スクロースと反応させ、生成したグルコースを、銅試薬を用いた還元糖の定量法であるSomogyi-Nelson法により測定した。
ＧＴＦＢにはスクロース結合部位であるＣＡＴと、グルコースを転位させてグルカンを合成するＧＢＤの２つの機能ドメインが存在する。酵素阻害活性様式が拮抗阻害である可能性が示されたことから、ＣＩがＣＡＴに結合し、スクロースがＣＡＴに結合することを阻害している可能性が考えられた。そこで、ＣＡＴの部分タンパクｒＧＴＦＢ（ＣＡＴ）を作製し、スクロースと反応させ、生成したグルコースを、銅試薬を用いた還元糖の定量法であるSomogyi-Nelson法により測定した。
【0067】
ストレプトコッカス・ミュータンス ＵＡ１５９株のｇｔｆＢ遺伝子の全塩基配列をもとに、ＣＡＴドメイン部分をＰＣＲ法により増幅し、かつその後、このＤＮＡ断片をプラスミドｐＧＥＸ６Ｐ－１に挿入するためのタンパク発現用プライマーｐＧＥＸ６Ｐ－１（ＣＡＴ）－Ｆと、ｐＧＥＸ６Ｐ－１（ＣＡＴ）－Ｒを設計した。このタンパク発現用プライマーを用いてＰＣＲ法で得られたＤＮＡ断片を、PrimeSTAR（登録商標）Max DNA Polymerase（タカラバイオ株式会社製）を用いて、プラスミドｐＧＥＸ６Ｐ－１に挿入したプラスミドｐＧＥＸ６Ｐ－１（ＣＡＴ）を作製した。ｐＧＥＸ６Ｐ－１（ＣＡＴ）をタンパク発現用大腸菌Ｅ．ｃｏｌｉ ＢＬ２１株に形質転換し、大量培養後、遠心分離により得られた菌体をＰＢＳ緩衝液に懸濁した後、超音波処理して大腸菌の細胞壁を破壊した。遠心分離により上清を得た後、グルタチオンセファロース４Ｂ（登録商標）カラム（ＧＥヘルスケア社製）にて精製し、ＧＳＴ－ｒＧＴＦＢ（ＣＡＴ）を以下の実験に供与した。
【0068】
ＧＳＴ－ｒＧＴＦＢ（ＣＡＴ）と１％スクロースを添加した滅菌精製水にCI-Dextran mix（日新製糖株式会社製）を０％から１．２５％になるように段階希釈して添加し、３７℃で１時間酵素反応させた。Somogyi銅液（富士フィルム和光純薬株式会社製）を添加し、２０分煮沸した後、さらにNelson液（富士フィルム和光純薬株式会社製）を添加し、１５分静置した。その後、波長５００ｎｍの吸光度を測定した。結果を図１８及び図１９に示す。
【0069】
図１８から明らかなように、スクロースの分解に伴うグルコース産生による、グルコース産生量は、CI-Dextran mixの添加に伴い統計上有意に減少した（ｐ＜０．０５、Ｐ＜０．０００１）。また、図１９から明らかなように、スクロースの存在下ではCI-Dextran mix ０．２５％で、活性はほぼ消失し、その活性減少効果はスクロース非存在下よりも高かった。このことから、サイクロデキストランはＧＴＦＢのＣＡＴにスクロースと拮抗して結合することで、スクロースのグルコースとフルクトースへの分解を阻害し、その結果、グルカンの合成を抑制していることが明らかとなった。
【0070】
なお、類似の試験を、スクロースに代えてフルクトース及びマルトースをそれぞれ利用して実施した。その結果、フルクトースでは、図１９に見られるような、単糖の存在下でのCI-Dextran mixの併用による活性の消失は見られなかった。一方、マルトースについては、スクロースに比べて程度は劣るものの、二糖の存在下でのCI-Dextran mixの併用による活性の低下が認められた。
【0071】
〔試験８〕バイオフィルム破砕試験による菌体間結合力の検討
ストレプトコッカス・ミュータンス ＭＴ８１４８株を培養後、FALCON(登録商標)６穴細胞培養用マルチウェルプレート（Corning社製）に分注し、CI-Dextran mix（日新製糖株式会社製）を０％から１．２５％の添加量で添加し、嫌気下、３７℃で２４時間培養した。ＰＢＳ緩衝液にて洗浄後、ＰＢＳ緩衝液に再懸濁し、Handy Sonic model UR-21Pで２分間、レベル７で超音波処理した。ＰＢＳ緩衝液で洗浄後、ＰＢＳ緩衝液に再懸濁し、セルスクレーパー「スミロン」（住友ベークライト株式会社製）を使用し、形成されたバイオフィルムを剥離した。剥離したバイオフィルムを滅菌生理食塩水にて段階的に希釈し、Trypticase Soy寒天培地（ベクトン・デッキンソン・アンド・カンパニー社製）に播種し、嫌気下、３７℃で、２日間培養した。対象群には、超音波未処理のバイオフィルムとして、超音波処理をせずに同様に菌体を回収したものをTrypticase Soy寒天培地に播種して用いた。培養後、コロニー数を計測し、菌数に対する超音波処理後の残存菌数の割合をその菌の菌体間結合力を表す指標として算出した。結果を図２０に示す。
ストレプトコッカス・ミュータンス ＭＴ８１４８株を培養後、FALCON(登録商標)６穴細胞培養用マルチウェルプレート（Corning社製）に分注し、CI-Dextran mix（日新製糖株式会社製）を０％から１．２５％の添加量で添加し、嫌気下、３７℃で２４時間培養した。ＰＢＳ緩衝液にて洗浄後、ＰＢＳ緩衝液に再懸濁し、Handy Sonic model UR-21Pで２分間、レベル７で超音波処理した。ＰＢＳ緩衝液で洗浄後、ＰＢＳ緩衝液に再懸濁し、セルスクレーパー「スミロン」（住友ベークライト株式会社製）を使用し、形成されたバイオフィルムを剥離した。剥離したバイオフィルムを滅菌生理食塩水にて段階的に希釈し、Trypticase Soy寒天培地（ベクトン・デッキンソン・アンド・カンパニー社製）に播種し、嫌気下、３７℃で、２日間培養した。対象群には、超音波未処理のバイオフィルムとして、超音波処理をせずに同様に菌体を回収したものをTrypticase Soy寒天培地に播種して用いた。培養後、コロニー数を計測し、菌数に対する超音波処理後の残存菌数の割合をその菌の菌体間結合力を表す指標として算出した。結果を図２０に示す。
【0072】
図２０から明らかなように、CI-Dextran mixの濃度が上昇するにつれ、バイオフィルム中の菌数は減少した。CI-Dextran mixを添加しない場合と１％添加した場合とを比較すると、１％添加した場合ではバイオフィルム中の菌数は約６５％の低下が認められた（p < 0.01, Tukey）。
【0073】
〔試験９〕ヒト試験による口腔プラーク沈着抑制効果の検討
図２１のフローチャートに試験９の研究アウトラインを示す。日常生活において１日３回食事時に水又はサイクロデキストラン溶液（約２００ｍＬ）を飲用し、さらに、間食時と就寝時には１００ｍＬも飲用した。試験期間を７日間とした。試験飲料は１．２％ CI-Dextran mix（日新製糖株式会社製）水溶液、又は水とし、試験前後のプラークスコア及びミュータンスレンサ球菌数を評価した。結果を図２２に示す。
図２１のフローチャートに試験９の研究アウトラインを示す。日常生活において１日３回食事時に水又はサイクロデキストラン溶液（約２００ｍＬ）を飲用し、さらに、間食時と就寝時には１００ｍＬも飲用した。試験期間を７日間とした。試験飲料は１．２％ CI-Dextran mix（日新製糖株式会社製）水溶液、又は水とし、試験前後のプラークスコア及びミュータンスレンサ球菌数を評価した。結果を図２２に示す。
【0074】
被験者は１７名であったが、唾液中のミュータンスレンサ球菌数が、除外基準である唾液中の（総）ミュータンスレンサ球菌数１０３ＣＦＵ／ｍＬ以下であったため、６名を除外した。最終的な試験に参加したボランティアは１１名（３１歳から５９歳：平均４９．１歳）であった。被験者のミュータンスレンサ球菌数は、１．１×１０４～６．４×１０５ＣＦＵ／ｍＬであり、平均は２．９×１０４ＣＦＵ／ｍＬであった。試験終了後の１歯面当たりのプラークスコアは水の場合は１．５５であり、CI-Dextran mix水溶液の場合は０．９７であり、有意差が認められた（p<0.01, Fisher's PLSD）。以上の結果より、CI-Dextran mix水溶液を飲用した場合は、水を飲用した場合より、顕著にプラーク沈着が抑制された。
【要約】
【課題】従来の抗う蝕剤と比較しても、より高い水準でう蝕を抑制できるう蝕抑制組成物等を提供する。
【解決手段】本発明の組成物は、（Ａ）グルコース及び／又はグルコース誘導体を構成単位とする環状構造を有するオリゴ糖と、（Ｂ）（Ａ）成分以外の糖と、を含有し、前記（Ａ）成分がサイクロデキストラン及び／又はサイクロデキストラン誘導体であり、前記サイクロデキストラン誘導体は、サイクロデキストランが有するアルコール性水酸基のうちの少なくとも１つが他の極性基に置換されている、う蝕抑制組成物である。本発明によれば、上記組成物が、（Ａ）グルコース及び／又はグルコース誘導体を構成単位とする所定の環状構造を有するオリゴ糖と、（Ｂ）（Ａ）成分以外の糖とを含有し、これらがう蝕抑制に対して協働して作用するため、従来の抗う蝕剤と比較しても、より高い水準で、う蝕を抑制できる。
【選択図】図１
【解決手段】本発明の組成物は、（Ａ）グルコース及び／又はグルコース誘導体を構成単位とする環状構造を有するオリゴ糖と、（Ｂ）（Ａ）成分以外の糖と、を含有し、前記（Ａ）成分がサイクロデキストラン及び／又はサイクロデキストラン誘導体であり、前記サイクロデキストラン誘導体は、サイクロデキストランが有するアルコール性水酸基のうちの少なくとも１つが他の極性基に置換されている、う蝕抑制組成物である。本発明によれば、上記組成物が、（Ａ）グルコース及び／又はグルコース誘導体を構成単位とする所定の環状構造を有するオリゴ糖と、（Ｂ）（Ａ）成分以外の糖とを含有し、これらがう蝕抑制に対して協働して作用するため、従来の抗う蝕剤と比較しても、より高い水準で、う蝕を抑制できる。
【選択図】図１
【図1】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
【図10】
【図11】
【図12】
【図13】
【図14】
【図15】
【図16】
【図17】
【図18】
【図19】
【図20】
【図21】
【図22】
