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特表2022-512928細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法
(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】公表特許公報(A)
(11)【公表番号】
(43)【公表日】2022-02-07
(54)【発明の名称】細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法
(51)【国際特許分類】
C12P 21/08 20060101AFI20220131BHJP
C12N 1/00 20060101ALN20220131BHJP
C12N 5/10 20060101ALN20220131BHJP
【ＦＩ】
C12P21/08
C12N1/00 G
C12N5/10
C12N1/00 B
【審査請求】未請求
【予備審査請求】未請求
(21)【出願番号】P 2021524198
(86)(22)【出願日】2019-11-06
(85)【翻訳文提出日】2021-06-30
(86)【国際出願番号】 EP2019080342
(87)【国際公開番号】W WO2020094694
(87)【国際公開日】2020-05-14
(31)【優先権主張番号】P1800376
(32)【優先日】2018-11-07
(33)【優先権主張国・地域又は機関】HU
(81)【指定国・地域】
(71)【出願人】
【識別番号】310008859
【氏名又は名称】リヒター ゲデオン ニュイルヴァーノシャン ミューコェデー レースヴェーニュタールシャシャーグ
【氏名又は名称原語表記】Ｒｉｃｈｔｅｒ Ｇｅｄｅｏｎ Ｎｙｒｔ．
(74)【代理人】
【識別番号】100105957
【弁理士】
【氏名又は名称】恩田 誠
(74)【代理人】
【識別番号】100068755
【弁理士】
【氏名又は名称】恩田 博宣
(74)【代理人】
【識別番号】100142907
【弁理士】
【氏名又は名称】本田 淳
(74)【代理人】
【識別番号】100152489
【弁理士】
【氏名又は名称】中村 美樹
(72)【発明者】
【氏名】パルタ、ラースロー
(72)【発明者】
【氏名】プーティクス、アーコシュ
(72)【発明者】
【氏名】バログ、ティボール
(72)【発明者】
【氏名】ホルバート、バラージュ
(72)【発明者】
【氏名】ナジ、ガーシュパール
【テーマコード（参考）】
4B064
4B065
【Ｆターム（参考）】
4B064AG26
4B064AG27
4B064CA10
4B064CA19
4B064CC06
4B064CC07
4B064CC08
4B064CC24
4B064DA01
4B065AA90X
4B065AB01
4B065AC14
4B065BB02
4B065BB12
4B065BB15
4B065CA25
4B065CA26
4B065CA44
(57)【要約】
本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法に関し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
【特許請求の範囲】
【請求項1】
細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法であって、前記方法は、細胞培養培地中で前記組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、前記細胞培養培地にはフコース、マンガンおよびタウリンが補給されており、
前記生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、前記補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される、方法。
【請求項2】
変更後の前記グリコシル化プロファイルは、フコシル化プロファイルおよび／またはガラクトシル化プロファイルのうちの１つ以上を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項3】
変更後の前記フコシル化プロファイルは、前記参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、かつ／または、変更後の前記ガラクトシル化プロファイルは、前記参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である、請求項２に記載の方法。
【請求項4】
前記培地中のフコースの濃度は０．４ｍＭ～１．６ｍＭ、好ましくは０．４ｍＭ～１．２ｍＭ、より好ましくは０．６ｍＭ～１ｍＭだけ補給により上昇する、請求項１～３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項5】
前記培地中のマンガンの濃度は０．０２μＭ～０．１μＭ、好ましくは０．０４μＭ～０．０８μＭ、より好ましくは０．０６μＭ～０．０８μＭだけ補給により上昇する、請求項１～４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項6】
補給後の前記培地中のタウリンの最終濃度は１２．５ｍＭ～５０ｍＭ、好ましくは１５ｍＭ～３５ｍＭ、より好ましくは２０ｍＭ～３０ｍＭである、請求項１～５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項7】
前記方法は、前記細胞培養で生産される前記組換え糖タンパク質を単離するステップをさらに含む、請求項１～６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項8】
前記真核細胞はチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞である、請求項１～７のいずれか１項に記載の方法。
【請求項9】
前記組換え糖タンパク質は大規模に生産される、請求項１～８のいずれか１項に記載の方法。
【請求項10】
前記組換え糖タンパク質はＩｇＧ型の免疫グロブリンである、請求項１～９のいずれか１項に記載の方法。
【請求項11】
前記組換え糖タンパク質はモノクローナル抗体であり、オプションで治療用モノクローナル抗体である、請求項１～１０のいずれか１項に記載の方法。
【請求項12】
前記細胞培養は１４日間行われる、請求項１～１１のいずれか１項に記載の方法。
【請求項13】
前記培地の前記補給は培養３日目以降に２日ごとに行われ、オプションで培養１３日目まで行われる、請求項１～１２のいずれか１項に記載の方法。
【請求項14】
前記マンガンは塩化マンガン（ＭｎＣｌ２）として補給され、ＭｎＣｌ２による前記培地の前記補給は培養５日目以降に２日ごとに行われ、オプションで培養９日目まで行われる、請求項１～１３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項15】
前記培地の前記補給は前記細胞培養の生産期に行われる、請求項１～１４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項16】
前記細胞培養は３７℃で行われる、請求項１～１５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項17】
前記細胞培養はｐＨ７．０５±０．０５で行われる、請求項１～１６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項18】
前記細胞培養は流加培養である、請求項１～１７のいずれか１項に記載の方法。
【請求項19】
前記糖タンパク質はＶＥＧＦアンタゴニストであり、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体である、請求項１～１８のいずれか１項に記載の方法。
【請求項20】
変更後のフコシル化プロファイルは、参照ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは前記抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、かつ／または、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは前記抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である、請求項１９に記載の方法。
【請求項21】
前記糖タンパク質は抗ＣＤ２０抗体である、請求項１～１８のいずれか１項に記載の方法。
【請求項22】
変更後のフコシル化プロファイルは、参照抗ＣＤ２０抗体のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、かつ／または、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照抗ＣＤ２０抗体のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である、請求項２１に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法に関し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
【背景技術】
【0002】
糖タンパク質は、自然免疫系および適応免疫系を含む免疫系のすべてのアームの適切な機能に必須である。たとえば、糖タンパク質は、認識、結合、シグナル伝達ならびに、補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）および抗体依存性細胞介在性細胞傷害（ＡＤＣＣ）による脅威の排除に関与する（非特許文献１および非特許文献２）。
【0003】
哺乳動物の発現抗体は、そのＨ鎖（ＨＣ）のＡｓｎ残基上に単一のグリカンを有する。このグリカン構造の存在および組成は、抗体の受容体結合およびエフェクター機能に影響する（非特許文献１および非特許文献２）。たとえば、ＩｇＧ（Ｆｃγ）のＦｃ領域のグリカン組成の変動は、Ｆｃ領域とＦｃ結合受容体（ＦｃＲ）との結合親和性に異なる影響を及ぼす。ＦｃγＲには、３つのクラス、すなわち、ＦｃγＲＩ、ＦｃγＲＩＩおよびγＲＩＩＩがある（非特許文献２、非特許文献３）。抗体とＦｃγ受容体との異なる親和性は、特定の抗原に対する宿主の免疫応答の動態を規定し、さらに、活性化、抑制、抗体の有効性／半減期、耐性および自己免疫応答に関与している可能性がある（非特許文献３）。異なる種類の受容体に対する抗体の親和性は、抗体が有するグリカンの存在と組成とに応じて変化し得るが、このことは、抗体の生物学的機能に関するオリゴ糖／タンパク質相互作用の重要性を浮き彫りにしている（非特許文献４、非特許文献２）。
【0004】
真核宿主細胞（たとえば哺乳動物宿主細胞）内のタンパク質の発現に続いて、タンパク質は、しばしば、一般に「グリコシル化」と呼ばれる糖残基の酵素的付加を含む翻訳後修飾を受ける。ポリペプチドのグリコシル化は、通常、Ｎ‐結合型またはＯ‐結合型のいずれかである。アスパラギン残基の側鎖への炭水化物部分の結合はＮ‐結合型グリコシル化と呼ばれる。トリペプチド配列であるアスパラギン（Ａｓｎ）‐Ｘ‐セリン（Ｓｅｒ）およびアスパラギン（Ａｓｎ）‐Ｘ‐トレオニン（Ｔｈｒ）（式中、Ｘはプロリン以外の任意のアミノ酸である）は、アスパラギン側鎖への炭水化物部分の酵素的結合の認識配列である。最も一般的にはセリンまたはトレオニンであるが、５‐ヒドロキシプロリンまたは５‐ヒドロキシリジンも含めてもよいヒドロキシアミノ酸への、糖であるＮ‐アセチルガラクトサミン、ガラクトース、フコース、Ｎ‐アセチルグルコサミンまたはキシロースのうちの１つの結合は、Ｏ‐結合型グリコシル化と呼ばれる。哺乳動物によって生産されるタンパク質のグリコシル化パターンは、グリコシド結合型オリゴ糖はもちろん複合体構造、高マンノース構造およびハイブリッド構造を含むいくつかのグループに細分化することができる（非特許文献５）。
【0005】
過去数十年にわたり、多くの研究が、モノクローナル抗体などの治療用組換え糖タンパク質の生産に焦点を当ててきた。文献におけるアプローチの１つは、血清または加水分解物を含む培地を使用しているが、問題となる、複合成分のロット間変動を排除するために、化学的に定義された培地も開発された（非特許文献６）。細胞培養の理解の向上によって、増殖、生存能力、力価などを犠牲にすることなく、化学的に定義された培地への移行が可能になった。最適化され、化学的に定義された、７．５～１０ｇ／Ｌまでの力価のプロセスが報告されている（非特許文献７、非特許文献８、非特許文献９）。一般に、化学的に定義された高力価のプロセスは、培養時間１１～１８日の流加プロセスである。
【0006】
組換えタンパク質に関連するＮ‐グリカンのプロセシングは、各哺乳動物細胞に特異的であることが、多くの報告で明らかにされている（非特許文献１０、非特許文献１１）。これらの違いは、組換え糖タンパク質の抗原性、ｉｎ ｖｉｖｏクリアランス速度および安定性に直接影響すること（非特許文献１２）だけでなく、任意の所与の認可された治療用糖タンパク質のために満たす必要がある厳しい規制基準によっても、治療用糖タンパク質の生産に重要である。このように、これは、ｉｎ ｖｉｖｏの安全性と有効性の結果を予測するために、治療用組換え糖タンパク質に結合しているグリカンを同定することができるようにするのに重要なだけでなく、潜在的宿主細胞におけるグリカンプロセシングを支える細胞制御を理解するのにも重要である（非特許文献１３、非特許文献１４）。
【0007】
モノクローナル抗体などの治療用組換え糖タンパク質の生産のために選択された真核細胞の場合と同様に、グリコシル化も、細胞培養培地および他の生産プロセスパラメータに大きく依存している（非特許文献１５）。特に、アンモニア、グルタミン、グルコースおよび金属イオンの濃度を含む増殖培地およびフィード培地の組成は、抗体のグリコシル化に影響を及ぼすことができることが明らかにされた（非特許文献１６）。そのため、増殖培地の補給によって組換え糖タンパク質のグリコシル化パターンおよびプロファイルまたはグリコシル化パターンもしくはプロファイルを制御するための戦略が開発されている。たとえば、特許文献１は、特定のレベルのフコシル化を示す糖タンパク質を生産するために、ＧＤＰ‐ケト‐６‐デオキシマンノース‐３，５‐エピメラーゼ、４‐レダクターゼまたはＧＤＰ‐Ｄ‐マンノース‐４，６‐デヒドラターゼ活性を欠くように操作された細胞の培養物へのフコースなどのフコース源の補給を開示している。フコース補給は、単独で（特許文献２、特許文献３）またはニコチンアミドと組み合わせて（特許文献４）、抗体のアフコシル化グリコフォームを減少させるために、すなわち抗体のフコシル化を増加させるために使用されている。マンガン補給は、単独で（特許文献５、特許文献６、特許文献７）、銅と組み合わせて（特許文献８）、または鉄、銅および亜鉛と組み合わせて（特許文献９）、アフコシル化グリコフォームを増加させるために、すなわちフコシル化を低下させるために使用されている。マンガンは、治療用モノクローナル抗体アダリムマブのガラクトシル化プロファイルの制御のためにも使用されている（特許文献１０）。
【0008】
このように、目的の組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを、すべての安全性、有効性および規制基準を満たす参照組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように、予測可能な方法で変更することができる方法を明らかにすることが当該技術分野で必要とされている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0009】
【特許文献1】国際公開第２０１７／０７９１６５号
【特許文献2】国際公開第２０１７／１２０３５９号
【特許文献3】国際公開第２０１７／１２０３４７号
【特許文献4】国際公開第２０１７／１３４６６７号
【特許文献5】国際公開第２０１７／０２１８７１号
【特許文献6】国際公開第２０１５／０１１６６０号
【特許文献7】国際公開第２０１３／１１４２４５号
【特許文献8】国際公開第２０１６／０８９９１９号
【特許文献9】国際公開第２０１５／１２８３１４号
【特許文献10】国際公開第２０１２／１４９１９７号
【非特許文献】
【0010】
【非特許文献1】ラッド（Ｒｕｄｄ）ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ、第２９１巻、２３７０～２３７６ページ（２００１年）
【非特許文献2】ジェフリース（Ｊｅｆｆｅｒｉｓ）ら、Ｉｍｍｕｎｏｌ Ｒｅｖ、第１６３巻、５９～７６ページ（１９９８年）
【非特許文献3】ラヴェッチ（Ｒａｖｅｔｃｈ）およびボランド（Ｂｏｌｌａｎｄ）、Ａｎｎｕ Ｒｅｖ Ｉｍｍｕｎｏｌ、第１９巻、２７５～２９０ページ（２００１年）
【非特許文献4】ラジュ（Ｒａｊｕ）ら、Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ、第１０巻、４７７～４８６ページ（２０００年）
【非特許文献5】Ｆ．Ｗ．パトナム（Ｐｕｔｎａｍ， Ｆ．Ｗ．）編、「Ｔｈｅ Ｐｌａｓｍａ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ： Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ，Ｆｕｎｃｔｉｏｎ ａｎｄ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｃｏｎｔｒｏｌ」、第２版、第４巻、特に２７１～３１５ページ、アカデミック・プレス（Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ）、ニューヨーク（１９８４年）
【非特許文献6】ルォ（Ｌｕｏ）およびチェン（Ｃｈｅｎ）、Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｂｉｏｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ、第９７巻、第６号、１６５４～１６５９ページ（２００７年）
【非特許文献7】ヒュアン（Ｈｕａｎｇ）ら、Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｐｒｏｇｒｅｓｓ、第２６巻、第５号、１４００～１４１０ページ（２０１０年）
【非特許文献8】マー（Ｍａ）ら、Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｐｒｏｇｒｅｓｓ、第２５巻、第５号、１３５３～１３６３ページ（２００９年）
【非特許文献9】ユー（Ｙｕ）ら、Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｂｉｏｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ、第１０８巻、第５号、１０７８～１０８８ページ（２０１１年）
【非特許文献10】ジェームズ（Ｊａｍｅｓ）ら、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、第１３巻、５９２～５９６ページ（１９９５年）
【非特許文献11】ライフリー（Ｌｉｆｅｌｙ）ら、Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ、第５巻、８１３～８２２ページ（１９９５年）
【非特許文献12】ジェンキンス（Ｊｅｎｋｉｎｓ）ら、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．、第１４巻、９７５～９８１ページ（１９９６年）
【非特許文献13】グラベンホルスト（Ｇｒａｂｅｎｈｏｒｓｔ）ら、Ｇｌｙｃｏｃｏｎｊｕｇ． Ｊ．、第１６巻、８１～９７ページ（１９９９年）
【非特許文献14】ジェームズ（Ｊａｍｅｓ）およびベイカー（Ｂａｋｅｒ）著、「Ｅｎｃｙｃｌｏｐｅｄｉａ ｏｆ ｂｉｏｐｒｏｃｅｓｓ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ： Ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎ， ｂｉｏｃａｔａｌｙｓｉｓ ａｎｄ ｂｉｏｓｅｐａｒａｔｉｏｎ」、ジョン・ワイリー・アンド・サンズ（Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ）、ニューヨーク、１３３６～１３４９ページ（１９９９年）
【非特許文献15】ホー（Ｈｏ）ら、ＢｉｏＰｒｏｃｅｓｓ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ、第１４巻、第４号、３０～８ページ（２０１６年）
【非特許文献16】ホスラー（Ｈｏｓｓｌｅｒ）ら、Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌ．、第１９巻、第９号、９３６～９４６ページ（２００９年）
【発明の概要】
【0011】
本発明者らは、フコース、マンガンおよびタウリンが補給された細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含む方法によって、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更することができることを見出した。本発明の方法によるグリコシル化プロファイルの変更は、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルが、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更されることによって行われる。
【0012】
本発明の目的は独立請求項の主題によって解決される。好ましい実施形態は従属請求項から明らかである。
したがって、一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法であって、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
したがって、一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法であって、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
【0013】
一実施形態において、変更後のグリコシル化プロファイルは、フコシル化プロファイルおよび／またはガラクトシル化プロファイルのうちの１つ以上を含む。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、かつ／または、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0014】
一実施形態において、培地中のフコースの濃度は０．４ｍＭ～１．６ｍＭ、好ましくは０．４ｍＭ～１．２ｍＭ、より好ましくは０．６ｍＭ～１ｍＭだけ補給により上昇し、好ましくは０．８ｍＭだけ上昇する。
【0015】
一実施形態において、培地中のマンガンの濃度は０．０２μＭ～０．１μＭ、好ましくは０．０４μＭ～０．０８μＭ、より好ましくは０．０６μＭ～０．０８μＭだけ補給により上昇し、最も好ましくは０．０６８μＭ±０．０１μＭだけ上昇する。
【0016】
一実施形態において、補給後の培地中のタウリンの最終濃度は、１２．５ｍＭ～５０ｍＭ、好ましくは１５ｍＭ～３５ｍＭ、より好ましくは２０ｍＭ～３０ｍＭであり、好ましくは２５ｍＭである。
【0017】
一実施形態において、その方法は、細胞培養から生産される組換え糖タンパク質を単離するステップをさらに含む。
一実施形態において、真核細胞はチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞である。
一実施形態において、真核細胞はチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞である。
【0018】
一実施形態において、組換え糖タンパク質は大規模に生産される。
一実施形態において、組換え糖タンパク質はＩｇＧ型の免疫グロブリンである。
一実施形態において、組換え糖タンパク質はモノクローナル抗体であり、オプションで治療用モノクローナル抗体である。
一実施形態において、組換え糖タンパク質はＩｇＧ型の免疫グロブリンである。
一実施形態において、組換え糖タンパク質はモノクローナル抗体であり、オプションで治療用モノクローナル抗体である。
【0019】
一実施形態において、細胞培養は１４日間行われる。
一実施形態において、培地の補給は培養３日目以降に２日ごとに行われ、オプションで培養１３日目まで行われる。
一実施形態において、培地の補給は培養３日目以降に２日ごとに行われ、オプションで培養１３日目まで行われる。
【0020】
一実施形態において、マンガンは塩化マンガン（ＭｎＣｌ２）として補給され、ＭｎＣｌ２による培地の補給は、培養５日目以降に２日ごとに行われ、オプションで培養９日目まで行われる。
【0021】
一実施形態において、培地の補給は細胞培養の生産期に行われる。
一実施形態において、細胞培養は３７℃で行われる。
一実施形態において、細胞培養はｐＨ７．０５±０．０５で行われる。
一実施形態において、細胞培養は３７℃で行われる。
一実施形態において、細胞培養はｐＨ７．０５±０．０５で行われる。
【0022】
一実施形態において、細胞培養は流加培養である。
一実施形態において、糖タンパク質はＶＥＧＦアンタゴニストであり、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体である。この実施形態において、変更後のフコシル化プロファイルは、好ましくは、参照ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、かつ／または、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
一実施形態において、糖タンパク質はＶＥＧＦアンタゴニストであり、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体である。この実施形態において、変更後のフコシル化プロファイルは、好ましくは、参照ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、かつ／または、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0023】
一実施形態において、糖タンパク質は抗ＣＤ２０抗体である。この実施形態において、変更後のフコシル化プロファイルは、好ましくは、参照抗ＣＤ２０抗体のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、かつ／または、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照抗ＣＤ２０抗体のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【図面の簡単な説明】
【0024】
【図1】本発明の抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化（ＭＡＦ）グリコフォームに対するグアノシン、フコースおよびマンノースの影響。結果は培養１２日目の結果である。黒いバー：培養培地添加剤を含まない対照バッチ。灰色のバー：２つの異なる濃度（２０ｍＭおよび６０ｍＭ）でグアノシンを補給したフィード培地を供給されたバッチ；ドットバー：２つの異なる濃度（１０ｍＭおよび２０ｍＭ）でフコースを補給したフィード培地を供給されたバッチ；斜めストライプ模様のバー：２つの異なる濃度（２０ｍＭおよび６０ｍＭ）でマンノースを補給したフィード培地を供給されたバッチ。
【図2】本発明の抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化（ＭＡＦ）グリコフォームに対する異なるフコース濃度の影響。結果は、培養１２日目のものである。黒いバー：フィード培地にフコースを補給していない対照バッチ；灰色のバー：１０ｍＭのフコースを補給したフィード培地を供給されたバッチ；ドットバー：２０ｍＭのフコースを補給したフィード培地を供給されたバッチ；斜めストライプ模様のバー：４０ｍＭのフコースを補給したフィード培地を供給されたバッチ。黒い線：本発明の参照抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化（ＭＡＦ）グリコフォームの範囲。
【図3】本発明の抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化（ＭＡＦ）グリコフォームに対する異なるタウリン濃度の影響。結果は、培養１４日目のものである。黒いバー：タウリンを補給した培地を含まない対照バッチ；灰色のバー：１２．５ｍＭのタウリンを補給した培地で培養したバッチ；ドットバー：２５ｍＭのタウリンを補給した培地で培養したバッチ；斜めストライプ模様のバー：５０ｍＭのタウリンを補給した培地で培養したバッチ。黒い線：本発明の参照抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化（ＭＡＦ）グリコフォームの範囲。
【図4】本発明の抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化（ＭＡＦ）グリコフォームに対するタウリン、フコースおよびマンガンの影響。結果は、培養１４日目のものである。黒いバー：１．７μＭの塩化マンガンを補給したが、フコースおよびタウリンを補給していないフィード培地を供給された対照バッチ；灰色のバー：２５ｍＭのタウリンを補給した培地で培養し、１．７μＭの塩化マンガンを補給したフィード培地を供給されたが、フコースを補給したフィード培地を供給されなかったバッチ；ドットバー：２５ｍＭのタウリンを補給した培地で培養され、２０ｍＭのフコースおよび１．７μＭの塩化マンガンを補給したフィード培地を供給されたバッチ。黒い線：本発明の参照抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化（ＭＡＦ）グリコフォームの範囲。
【図5】本発明の、生産される抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化プロファイル（ＭＡＦ）。結果は、それぞれ、培養７日目～１３日目の毎日の試料分析または、培養７日目～１４日目の毎日の試料分析によるものである。黒い線：タウリンおよびフコースを含まないが、マンガンを補給したフィード培地を供給された対照バッチ；点線ストライプの線：フコースおよびマンガンを補給したフィード培地を供給されたバッチ；ストライプの線：タウリンを補給した培地で培養され、マンガンを補給したフィード培地を供給されたバッチ；点線：タウリンを補給した培地で培養され、マンガンおよびフコースを補給したフィード培地を供給されたバッチ。灰色の線：本発明の参照抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化グリコフォームの範囲。
【図6】本発明の、生産される抗ＶＥＧＦ抗体の非ガラクトシル化グリコフォーム（Ｇ０）プロファイル。結果は、それぞれ、培養７日目～培養１３日目の毎日の試料分析または、培養７日目～培養１４日目の毎日の試料分析によるものである。黒い線：タウリンおよびフコースを含まないが、マンガンを補給したフィード培地を供給された対照バッチ；点線ストライプの線：フコースおよびマンガンを補給したフィード培地を供給されたバッチ；ストライプの線：タウリンを補給した培地で培養され、マンガンを補給したフィード培地を供給されたバッチ；点線：タウリンを補給した培地で培養され、マンガンおよびフコースを補給したフィード培地を供給されたバッチ。灰色の線：本発明の参照抗ＶＥＧＦ抗体の非ガラクトシル化（Ｇ０）グリコフォームの範囲。
【発明を実施するための形態】
【0025】
以下に例示的に説明されている本発明は、本明細書で具体的に開示されていない任意の要素または制限の非存在下で適切に実行することができる。
本発明は、特定の実施形態について説明するが、本発明はそれに限定されるものではなく、特許請求の範囲によってのみ限定される。
本発明は、特定の実施形態について説明するが、本発明はそれに限定されるものではなく、特許請求の範囲によってのみ限定される。
【0026】
本説明および特許請求の範囲において、用語「含んでいる（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」を使用する場合、該用語は他の要素を排除しない。本発明において、用語「からなっている（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ ｏｆ）」は、用語「含んでいる（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」の好ましい実施形態であるとみなされる。以下、ある群が少なくとも特定の数の実施形態を含むと定義される場合、これは、好ましくはこれらの実施形態のみからなる群を開示するとも理解されるべきである。
【0027】
単数名詞に言及するときに不定冠詞または定冠詞が使用される場合、たとえば「ある（ａ）」、「ある（ａｎ）」または「この（ｔｈｅ）」は、他の何かが具体的に述べられている場合を除き、これはその名詞の複数形を含む。
【0028】
本明細書で使用される用語「ポリペプチド」または「タンパク質」は、ペプチド結合によって互いに結合されたアミノ酸の連続鎖のことをいう。この用語は、任意の長さのアミノ酸鎖に言及するために使用されるが、この用語が長い鎖に限定されるものではなく、ペプチド結合によって互いに結合された２つのアミノ酸を含む最小限の鎖を意味することができることは、当業者には明らかであろう。１つのポリペプチドが個別の機能単位であり、個別の機能単位を形成するために他のポリペプチドとの恒久的な物理的結合を必要とする場合、本明細書で使用される用語「ポリペプチド」と用語「タンパク質」とは同義で使用される。個別の機能単位が、互いに物理的に結合した２つ以上のポリペプチドを含む場合、本明細書で使用される用語「タンパク質」は、物理的に結合され、個別の単位として一緒に機能する複数のポリペプチドのことをいう。
【0029】
本明細書において、用語「糖タンパク質」は、アミノ酸残基の酸素含有側鎖または窒素含有側鎖（たとえば、セリンもしくはトレオニン残基（「Ｏ‐結合型」）またはアスパラギン残基（「Ｎ‐結合型」））を介してタンパク質に結合される少なくとも１つの炭水化物部分（たとえば多糖またはオリゴ糖）に結合されたポリペプチドまたはタンパク質を意味するために使用される。本明細書において、「糖タンパク質」は、最も広い意味で使用され、完全長糖タンパク質、遺伝子操作された糖タンパク質、組換え糖タンパク質、キメラ糖タンパク質、ヒト化糖タンパク質、完全ヒト糖タンパク質だけでなく、それらが機能を維持し、望ましい生物活性を示す限りは、このような糖タンパク質のフラグメント（たとえばペプチド）も含む。糖タンパク質の「生物活性」とは、ｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｉｎ ｖｉｖｏで測定することができる生物学的反応を誘発する糖タンパク質の能力のことをいう。
【0030】
用語「組換え糖タンパク質」とは、組換え手段によって調製され、発現され、作製され、または単離されたすべての糖タンパク質、たとえば、トランスジェニック宿主細胞（たとえばＮＳ０もしくはＣＨＯ細胞）または糖タンパク質遺伝子トランスジェニック動物から単離された糖タンパク質、または、宿主細胞（たとえばＳＰ２／０マウス骨髄腫細胞）にトランスフェクトされた組換え発現ベクターを用いて発現された糖タンパク質のことをいう。
【0031】
用語「グリカン」とは、多糖またはオリゴ糖（たとえば単糖からなるポリマー）のことをいう。グリカンは、単糖残基のホモポリマーまたはヘテロポリマーの場合があり、また、直鎖または分枝鎖の場合がある。真核細胞（たとえば哺乳動物宿主細胞）におけるタンパク質の発現に続いて、そのタンパク質は、しばしばグリカンなどの糖残基の酵素的付加を含む翻訳後修飾を受ける。糖残基（たとえばグリカン）のこのような付加を、本明細書では「グリコシル化」と称する。「Ｎ‐結合型グリカン」とは、アスパラギン残基の側鎖に結合されるグリカンのことをいう。「Ｏ‐結合型グリカン」とは、通常はセリンまたはトレオニンであるが、５‐ヒドロキシプロリンまたは５‐ヒドロキシリジンも含めてもよいヒドロキシアミノ酸に結合されるグリカンのことをいう。グリコシル化は、たとえば、ガラクトシル化および／またはフコシル化を含む。
【0032】
本明細書で使用される、目的の組換え糖タンパク質の「グリコシル化パターン」とは、糖タンパク質の多糖またはオリゴ糖の様々な物理的特性、たとえば、存在する様々な単糖の量と質、分岐度および／または結合（たとえばＮ‐結合型またはＯ‐結合型）などのことをいう。糖タンパク質の「グリコシル化パターン」は、糖タンパク質のオリゴ糖および多糖によって付与される機能的特徴を意味することもできる。たとえば、糖タンパク質がＦｃγＲＩＩＩａに結合して抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）を誘導することができる程度を意味する。
【0033】
本明細書で使用される場合、目的の組換え糖タンパク質の「グリコシル化プロファイル」または「グリコシル化度」とは、存在する様々な単糖の量のことをいう。グリコシル化プロファイルは、目的の糖タンパク質の別々に生産されたバッチの間で（たとえばバイオシミラー治療用糖タンパク質とその参照製品である糖タンパク質との間で）異なる可能性がある。グリコシル化プロファイルのある程度の変動は、治療用糖タンパク質のバイオシミラーの認可のための新たな臨床試験を必要とすることなく規制基準内であることが認められる可能性はあるが、参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルに可能な限り一致させ、それによって、参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルに可能な限り近いレベルで安全性と有効性も維持することが最も望ましい。組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、たとえば、組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよび／またはガラクトシル化プロファイルを含んでもよい。
【0034】
用語「フコシル化」とは、多糖およびオリゴ糖（たとえばＮ‐グリカン、Ｏ‐グリカンおよび糖脂質）上のフコース残基の程度および分布のことをいう。用語「フコシル化プロファイル」または「フコシル化度」とは、多糖およびオリゴ糖（たとえばＮ‐グリカン、Ｏ‐グリカンおよび糖脂質）上のフコース残基の量のことをいう。治療用糖タンパク質（たとえば、非フコシル化Ｎ‐グリカンまたは「アフコシル化」Ｎ‐グリカンを有する抗体またはＦｃ融合タンパク質）は、補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）または抗原結合能の検出可能な変化なしに、ＦｃγＲＩＩＩａ結合能の増強による劇的に向上した抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）を示す。特定の状況（たとえば癌治療）において、非フコシル化または「アフコシル化」抗体、すなわち低い「フコシル化プロファイル」を有する抗体は、それらが腫瘍細胞に対し高い細胞傷害性を誘発し、ＦｃγＲＩＩＩａとの増強された相互作用を介してナチュラルキラー（ＮＫ）細胞における高いエフェクター機能を引き起こすとともに、低用量で治療効果を実現することができるため好ましい。他の状況、たとえば炎症性疾患または自己免疫疾患の治療において、ＡＤＣＣとＦｃγＲＩＩＩａとの増強された結合は好ましくなく、したがって、それらのＮ‐グリカン中に高レベルのフコース残基、すなわち高フコシル化プロファイルを有する治療用糖タンパク質が好ましい場合がある。フコシル化プロファイルは、目的の糖タンパク質の別々に生産されたバッチの間で（たとえばバイオシミラー治療用糖タンパク質とその参照製品である糖タンパク質との間で）異なる可能性がある。フコシル化プロファイルのある程度の変動は、治療用糖タンパク質のバイオシミラーの認可のための新たな臨床試験を必要とすることなく規制基準内であることが認められる可能性はあるが、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルに可能な限り一致させ、それによって、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルに可能な限り近いレベルの安全性と有効性も維持することが最も望ましい。
【0035】
「ガラクトシル化」とは、多糖およびオリゴ糖（たとえば、Ｎ‐グリカン、Ｏ‐グリカンおよび糖脂質）上のガラクトース残基のタイプおよび分布のことをいう。用語「ガラクトシル化プロファイル」または「ガラクトシル化度」とは、多糖およびオリゴ糖（たとえばＮ‐グリカン、Ｏ‐グリカンおよび糖脂質）上のガラクトース残基の量のことをいう。「ガラクトース」とは、鎖状型および環状型を含む単糖の１グループのことをいう。ガラクトースの重要な二糖型は、ガラクトース‐α‐１，３‐ガラクトース（ａ‐ｇａｌ）である。ガラクトシル化プロファイルは、目的の糖タンパク質の別々に生産されたバッチの間で（たとえばバイオシミラー治療用糖タンパク質とその参照製品である糖タンパク質との間で）異なる可能性がある。ガラクトシル化プロファイルのある程度の変動は、治療用糖タンパク質のバイオシミラーの認可のための新たな臨床試験を必要とすることなく規制基準内であることが認められる可能性はあるが、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルに可能な限り一致させ、それによって、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルに可能な限り近いレベルで安全性と有効性も維持することが最も望ましい。
【0036】
用語「グリコシル化プロファイルを変更する」、「フコシル化プロファイルを変更する」および「ガラクトシル化プロファイルを変更する」は、それぞれ、第２セットの培養条件下で（たとえば細胞培養培地中のフコース、マンガンおよび／またはタウリンの非存在下で）生産されるときの組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイル、フコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルとそれぞれ比較した場合の、第１セットの培養条件下で（たとえば細胞培養培地中のフコース、マンガンおよび／またはタウリンの存在下で）生産されるときの組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイル、フコシル化プロファイル、およびガラクトシル化プロファイルの変更を意味する。第１セットの培養条件下で実現されるグリコシル化プロファイル、フコシル化プロファイルおよび／またはガラクトシル化プロファイルは、第２セットの培養条件下で実現されるプロファイルに対して増減する可能性がある。好ましくは、第１セットの培養条件下で実現されるグリコシル化プロファイル、フコシル化プロファイルおよび／またはガラクトシル化プロファイルは、第２セットの培養条件下でそれぞれ実現されるグリコシル化プロファイル、フコシル化プロファイルおよび／またはガラクトシル化プロファイルよりも、それぞれ、参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイル、フコシル化プロファイルおよび／またはガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。より好ましくは、グリコシル化プロファイル、フコシル化プロファイルおよび／またはガラクトシル化プロファイルは、それぞれ、参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイル、フコシル化プロファイルおよび／またはガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、よりさらに好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、最も好ましくは少なくとも９８％であるように変更される。
【0037】
本明細書で使用される用語「参照糖タンパク質」、「参照ＶＥＧＦアンタゴニスト」、「参照抗ＶＥＧＦ抗体」または「参照抗ＣＤ２０抗体」は、目的の糖タンパク質のグリコシル化プロファイル、フコシル化プロファイルおよび／またはガラクトシル化プロファイルの点で一致しているか、またはより類似することが望ましい、関連する細胞培養で生産される同じ目的の糖タンパク質、アンタゴニストまたは抗体のことをいう。たとえば、参照糖タンパク質、アンタゴニストまたは抗体は、所与の糖タンパク質、アンタゴニストまたは抗体に関連する、安定性、有効性、安全性および／または他の特性などの有用な特性を有していてもよい。参照糖タンパク質、アンタゴニストまたは抗体は、たとえば、対象者（たとえばヒト対象者）における治療用途のために規制当局の認可を得た糖タンパク質、アンタゴニストまたは抗体であってもよい。この場合、グリコシル化プロファイル、フコシル化プロファイルおよび／またはガラクトシル化プロファイルを変更する方法で生産される糖タンパク質は、バイオシミラーであってもよい。
【0038】
本明細書で使用される用語「培養物」、「細胞培養物」および「真核細胞培養物」は、細胞集団の生存および増殖または生存もしくは増殖に適する条件下で細胞培養培地中で維持または増殖される、表面に付着した、または懸濁液中の真核細胞集団を意味する。本明細書で使用されるこれらの用語は、哺乳動物の細胞集団および、その集団が懸濁される細胞培養培地を含む組み合わせを意味することができる。細胞培養物は、たとえば、連続培養物、バッチ培養物、流加培養物または他の培養物タイプであり得る。
【0039】
本明細書で使用される用語「培養液」、「培地」、「細胞培養培地」、「培養培地」、「組織培養培地」、「組織培養液」および「増殖培地」は、培養される真核細胞の増殖を維持する栄養素を含む溶液を意味する。通常、これらの溶液は、必須および非必須アミノ酸、ビタミン、エネルギー源、脂質ならびに、最小限の増殖および生存または増殖もしくは生存のために細胞に必要な微量元素を提供する。溶液は、ホルモンおよび増殖因子を含む、最小限を超える生存および増殖または生存もしくは増殖を促進する成分を含むこともできる。溶液は、細胞の生存および増殖に最適なｐＨおよび塩濃度に調整される。培地は、タンパク質、加水分解物または未知の組成の成分を含まない無血清培地である「合成培地」または「化学的に定義された培地」を含むこともできる。定義された培地は、動物由来成分を含まず、また、すべての成分は公知の化学構造を有する。合成培地は、組換え糖タンパク質またはタンパク質、たとえば、限定するものではないが、ホルモン、サイトカイン、インターロイキンおよび他のシグナル伝達分子を含むことができる。
【0040】
細胞培養培地は、任意の哺乳動物起源の血清またはその画分を本質的に含まない（たとえばウシ胎児血清（ＦＢＳ）を本質的に含まない）場合、一般に「無血清」である。「本質的に含まない」とは、約０～５％の血清、好ましくは約０～１％の血清、最も好ましくは約０～０．１％の血清を含む細胞培養培地を意味する。有利には、培地中の成分のそれぞれの同一性および濃度が公知の（すなわち、真核細胞の抽出物などの不確定な成分が培地中に存在しない）無血清合成培地を使用することができる。
【0041】
本発明の細胞培養は、培養される特定の細胞に適した任意の培地で行われる。いくつかの実施形態において、培地は、たとえば、無機塩、炭水化物（たとえばグルコース、ガラクトース、マルトースまたはフルクトースなどの糖）、アミノ酸、ビタミン（たとえばＢ群ビタミン（たとえばＢ１２）、ビタミンＡ、ビタミンＥ、リボフラビン、チアミンおよびビオチン）、脂肪酸および脂質（たとえばコレステロールおよびステロイド）、タンパク質およびペプチド（たとえばアルブミン、トランスフェリン、フィブロネクチンおよびフェチュイン）、血清（たとえばアルブミン、増殖因子および増殖抑制剤を含む組成、たとえばウシ胎児血清、新生仔ウシ血清およびウマ血清）、微量元素（たとえば亜鉛、銅、セレンおよびトリカルボン酸中間体）、加水分解物（植物源または動物源由来の加水分解されたタンパク質）ならびにそれらの組み合わせを含む。５倍濃縮ＤＭＥＭ／Ｆ１２（インビトロジェン社（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ））、ＣＤ ＯｐｔｉＣＨＯ ｆｅｅｄ（インビトロジェン社）、ＣＤ ＥｆｆｉｃｉｅｎｔＦｅｅｄ（インビトロジェン社）、Ｃｅｌｌ Ｂｏｏｓｔ（ハイクローン社（ＨｙＣｌｏｎｅ））、ＢａｌａｎＣＤ ＣＨＯ Ｆｅｅｄ（アーバイン・サイエンティフィック社（Ｉｒｖｉｎｅ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ））、ＢＤ Ｒｅｃｈａｒｇｅ（ベクトン・ディッキンソン社（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ））、Ｃｅｌｌｖｅｎｔｏ Ｆｅｅｄ（ＥＭＤミリポア社（ＥＭＤ Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ））、Ｅｘ‐ｃｅｌｌ ＣＨＯＺＮ Ｆｅｅｄ（シグマ・アルドリッチ社（Ｓｉｇｍａ‐Ａｌｄｒｉｃｈ））、ＣＨＯ Ｆｅｅｄ Ｂｉｏｒｅａｃｔｏｒ Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ（シグマ・アルドリッチ社）、ＳｈｅｆｆＣＨＯ（ケリー社（Ｋｅｒｒｙ））、Ｚａｐ‐ＣＨＯ（インビトリア社（Ｉｎｖｉｔｒｉａ））、ＡｃｔｉＣＨＯ（ＰＡＡ／ＧＥヘルスケア社（ＰＡＡ／ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ））、Ｈａｍ’ｓ Ｆ１０（シグマ社（Ｓｉｇｍａ））、最小必須培地（［ＭＥＭ］、シグマ社）、ＲＰＭＩ‐１６４０（シグマ社）およびダルベッコ変法イーグル培地（［ＤＭＥＭ］、シグマ社）などの市販培地は、本発明の方法に適した例示的な細胞培養培地である。さらに、ハム（Ｈａｍ）およびウォレス（Ｗａｌｌａｃｅ）、Ｍｅｔｈ． Ｅｎｚ．、第５８巻、４４ページ（１９７９年）、バーンズ（Ｂａｒｎｅｓ）およびサトウ（Ｓａｔｏ）、Ａｎａｌ． Ｂｉｏｃｈｅｍ．、第１０２巻、２５５ページ（１９８０年）、米国特許第４７６７７０４号、米国特許第４６５７８６６号、米国特許第４９２７７６２号、米国特許第５１２２４６９号、または米国特許第４５６０６５５号、国際公開第９０／０３４３０号、および国際公開第８７／００１９５号で述べられている培地のいずれかを培地として使用することができる。これらの培地のいずれも、必要に応じて、ホルモンおよび／または他の増殖因子（インスリン、トランスフェリンまたは上皮成長因子など）、塩（塩化ナトリウム、カルシウム、マグネシウムおよび燐酸塩など）、緩衝液（ＨＥＰＥＳなど）、ヌクレオシド（アデノシンおよびチミジンなど）、抗生物質（ゲンタマイシンなど）、微量元素（通常μＭ域の最終濃度で存在する無機化合物と定義される）、脂質（リノール酸または他の脂肪酸など）ならびにそれらの適切な担体およびグルコースまたは同等のエネルギー源を補給することができる。いくつかの実施形態において、培地は、無血清培地、タンパク質を含まない培地または化学的に定義された培地である。任意の他の必要な添加物を、当業者に公知の適切な濃度で含有することもできる。
【0042】
本明細書で使用される用語「基礎培養培地」、「基礎培地」または「基礎培養液」は、特定の１または複数の成分を補給するか、または選択的に除去することによる変更が行われていない、細胞を培養するために使用される任意の細胞培養培地のことをいう。
【0043】
本明細書で使用される用語「フィード培地」、「フィード培養液」または「フィード」は、細胞培養開始後に添加される任意の細胞培養培地のことをいう。この培地は、細胞培養開始時に使用される細胞培養培地よりもしばしば高濃度であり、使い果たされた栄養素を補充するか、または細胞培養物に添加物または添加剤を供給するのに役立つ。
【0044】
用語「補給」、「補給する」または「補給した」は、細胞培養培地（たとえば基礎培地またはフィード培地）への添加剤または添加物の添加を意味する。本明細書で使用される用語「添加剤」または「添加物」は、本開示で述べられている目標を実現するために基礎培地またはフィード培地に行われる任意の補給を意味する。添加剤または添加物は、１つの物質（タウリン、マンガンまたはフコースなど）を含むこともできるし、複数の物質（フコースおよびタウリン、フコースおよびマンガン、タウリンおよびマンガン、またはフコース、マンガンおよびタウリンなど）を含むこともできる。用語「添加剤」または「添加物」は、添加されるすべての成分を意味するが、同時に添加される必要はなく、また、同様に添加される必要もない。たとえば、添加剤または添加物の１つまたは複数の成分を、原液から１回のボーラス添加または２回以上のボーラス添加で添加することもできるし、同じ添加剤または添加物の他の成分を、フィード培地の一部として添加することもできる。添加物の添加は、継続的または半継続的に行うこともできる。さらに、添加剤または添加物のいずれか１つ以上の成分を、細胞培養開始から基礎培地中に存在させることができる。このように、補給は、培養開始時に行うこともでき、かつ／または、培養開始に続いて、たとえば増殖期および／または生産期において行うこともできる。
【0045】
本明細書で使用される用語「上昇し」または「上昇する」は、前記添加物の補給前の添加剤または添加物の濃度が、補給によって、補給後に、より高いその添加物または添加剤の濃度まで増加されることを意味する。すなわち、補給された細胞培養培地は、補給後に、添加物または添加剤の補給前よりも規定量分だけ高い、添加物または添加剤の濃度を有する。
【0046】
細胞培養の「増殖期」という用語は、細胞が、一般に急速に分裂している指数関数的細胞増殖期（対数増殖期）のことをいう。細胞培養の細胞の増殖サイクルの決定は、過度の実験を要することなく、想定される特定の細胞について決定することができる。増殖期において、細胞は、特定の細胞、たとえばある細胞株の細胞について最適の増殖が実現されるように、制御された雰囲気中で、一般に約２５°～４０℃で、好ましくは３７℃で、必要な添加剤を含む細胞培養培地中で培養される。細胞は、約１～５日間、たとえば２～４日間、たとえば４日間、対数増殖期に維持される。たとえば、増殖期の長さとは、その培養が本発明の／上記で概説した増殖条件下に維持される場合、特定の細胞が、最大限に可能な生細胞密度の約２０％～８０％の範囲内の生細胞密度を再現することを可能にするのに十分な期間である。
【0047】
細胞培養の「生産期」または「タンパク質生産期」は、細胞増殖が定常期に到達する期間のことをいう。生産期では、対数的な細胞増殖は終わり、タンパク質生産が細胞培養における主な活動である。この期間中、培地は、一般に、継続的なタンパク質生産を維持し、望ましい糖タンパク質製品を得るために補給される。生産期は、通常、培養５日目で開始され、培養の終了まで、好ましくは培養１４日目まで継続される。
【0048】
本明細書で使用される用語「細胞生存率」とは、所与の培養条件セットまたは実験変動の下で生存する、培養における細胞の能力のことをいう。本明細書で使用されるこの用語は、また、その時点での培養物中の生細胞と死細胞の総数を比較した、特定の時点で生きている細胞の部分のことをいう。本明細書で使用される用語「細胞密度」または「生細胞密度」とは、所与の量の培地に存在する生細胞の数のことをいう。
【0049】
本明細書で使用される用語「バッチ培養」は、細胞自体はもちろん、培地も含む、細胞の培養に最終的に使用されるすべての成分が培養プロセスの開始時に提供される、細胞の培養方法のことをいう。バッチ培養は、通常ある時点で停止され、培地中の細胞および／または成分が採取され、オプションで精製される。
【0050】
本明細書で使用される用語「流加培養」とは、培養プロセスの開始に続いて、ある時点で培養物に追加の成分が提供される、細胞の培養方法のことをいう。流加培養は、たとえば基礎培地を使用して開始することができる。培養プロセスの開始に続いてある時点で培養物に追加の成分が提供される培地は、「フィード培地」または「フィード溶液」である。流加培養は、通常、ある時点で停止され、培地中の細胞および／または成分が採取され、オプションで精製される。
【0051】
本明細書で使用される用語「連続培養」または「灌流培養」は、培養プロセスの開始に続いて培養物に継続的または半継続的に追加の成分が提供される、細胞の培養方法のことをいう。提供される成分は、通常、培養プロセス中に枯渇した、細胞のための栄養添加物を含む。培地中の細胞および／または成分一部が通常、継続的または半継続的に採取され、オプションで精製される。
【0052】
細胞培養は、通常、バイオリアクター中で行われる。本明細書で使用される用語「バイオリアクター」とは、哺乳動物細胞培養物の増殖に使用される任意の容器のことをいう。哺乳動物細胞の培養に有用である限りは、バイオリアクターは、培養の規模に応じて、任意の寸法にすることができる。通常、バイオリアクターは、少なくとも５００ミリリットルであり、また１、１０、５０、１００、２５０、５００、１，０００、２，０００、２，５００、３，０００、５，０００、８，０００、１０，０００、１２，００００、１５，０００、２０，０００リットルまたはそれ以上にすることもでき、任意の中間の容量にすることもできる。たとえば、バイオリアクターは、１０～５，０００リットル、１０～１０，０００リットル、１０～１５，０００リットル、１０～２０，０００リットル、５０～５，０００リットル、５０～１０，０００リットル、５０～１５，０００リットル、５０～２０，０００リットル、１，０００～５，０００リットルまたは１，０００～３，０００リットルである。バイオリアクターは、撹拌タンクバイオリアクターまたは振盪フラスコにすることができる。たとえばｐＨおよび温度を含むバイオリアクターの内部条件は、通常、培養期間中に厳密に制御される。バイオリアクターは、ガラス、プラスチックまたは金属を含む、本発明の培養条件下で培地中に懸濁される哺乳動物細胞培養物を保持するのに適した任意の材料で構成することができる。本明細書で使用される用語「生産バイオリアクター」は、目的の糖タンパク質または目的のタンパク質の生産に使用される最終的なバイオリアクターのことをいう。
【0053】
本明細書で使用される用語「大規模細胞培養」または「大規模生産」は、一定量の、通常、少なくとも５００または１，０００リットルの、好ましくは少なくとも５，０００または８，０００リットルの、最も好ましくは１０，０００または２０，０００リットルの生産バイオリアクター中の細胞培養のことをいう。
【0054】
用語「抗体」または「免疫グロブリン」は、本明細書において同義であり、最も広い意味で使用され、完全長抗体、遺伝子操作された抗体、組換え抗体、多価抗体、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、二重特異性抗体、多重特異性抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、完全ヒト抗体だけでなく、それらが生物学的な機能を維持し、望ましい生物活性を示す限り、このような抗体のフラグメントも含む。抗体の「生物活性」とは、抗原に結合して、ｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｉｎ ｖｉｖｏで測定することができる生物学的反応をもたらす抗体の能力のことをいう。
【0055】
天然に存在する抗体は、さまざまな構造を有する分子である。たとえば、天然ＩｇＧ抗体は、ジスルフィド結合で連結された２つの同一のＬ鎖および２つの同一のＨ鎖で構成される約１５０，０００ダルトンのヘテロ四量体糖タンパク質である。各Ｈ鎖は、Ｎ末端からＣ末端に向かって、可変ドメイン（ＶＨ）（可変ＨドメインまたはＨ鎖可変ドメインとも呼ばれる）と、それに続く３つまたは４つの定常ドメイン（ＣＨ１、ＣＨ２、ＣＨ３およびオプションでＣＨ４）とを有する。同様に、各Ｌ鎖は、Ｎ末端からＣ末端に向かって、可変ドメイン（ＶＬ）（可変ＬドメインまたはＬ鎖可変ドメインとも呼ばれる）と、それに続く定常Ｌ鎖（ＣＬ）ドメインとを有する。抗体のＬ鎖は、その定常ドメインのアミノ酸配列に基づいてカッパ（κ）およびラムダ（λ）と呼ばれる２つのタイプの１つに帰属してもよい。
【0056】
「完全長抗体」は、Ｌ鎖（ＶＬ）およびＨ鎖（ＶＨ）の抗原結合可変領域、Ｌ鎖定常領域（ＣＬ）ならびにＨ鎖定常ドメインＣＨ１、ＣＨ２およびＣＨ３を含む。
用語「抗体フラグメント」または「抗原結合フラグメント」は、本明細書において最も広い意味で使用され、好ましくはその抗原結合領域または可変領域を含む、完全長抗体の一部を含む。抗体フラグメントは、親免疫グロブリンの元の特異性を保持する。抗体フラグメントの例は、たとえば、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２およびＦｖフラグメント、ダイアボディ、直鎖抗体、一本鎖抗体分子ならびに、抗体フラグメントから作製される多重特異性抗体を含む。好ましくは、抗体フラグメントはＦａｂフラグメントである。
用語「抗体フラグメント」または「抗原結合フラグメント」は、本明細書において最も広い意味で使用され、好ましくはその抗原結合領域または可変領域を含む、完全長抗体の一部を含む。抗体フラグメントは、親免疫グロブリンの元の特異性を保持する。抗体フラグメントの例は、たとえば、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２およびＦｖフラグメント、ダイアボディ、直鎖抗体、一本鎖抗体分子ならびに、抗体フラグメントから作製される多重特異性抗体を含む。好ましくは、抗体フラグメントはＦａｂフラグメントである。
【0057】
「モノクローナル抗体」は、抗原の単一のエピトープに特異的な、すなわち抗原上の単一の決定基を標的とする抗体である。モノクローナル抗体を生産するための方法は、当業者に公知である。
【0058】
用語「組換え抗体」とは、組換え手段によって調製され、発現され、作製され、または単離されたすべての抗体、たとえば、トランスジェニック宿主細胞（たとえばＮＳ０もしくはＣＨＯ細胞）から、または免疫グロブリン遺伝子トランスジェニック動物から単離された抗体、または、宿主細胞（たとえばＳＰ２／０マウス骨髄腫細胞）にトランスフェクトされた組換え発現ベクターを用いて発現された抗体のことをいう。
【0059】
本発明の抗体または免疫グロブリンは、好ましくはＩｇＧ分子（たとえばＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３またはＩｇＧ４分子）である。より好ましくは、免疫グロブリンはＩｇＧｌである。さらにより好ましくは、免疫グロブリンは、少なくともＦｃ部分がヒト型のＩｇＧ１である。
【0060】
「キメラ抗体」（たとえばマウス‐ヒトキメラ抗体）は、Ｆｃ部分がヒト型であり、可変領域がマウス起源である抗体である。
本発明の一実施形態において、キメラ抗体はリツキシマブまたはインフリキシマブである。
本発明の一実施形態において、キメラ抗体はリツキシマブまたはインフリキシマブである。
【0061】
リツキシマブは、たとえば国際公開第９４／１１０２６号で詳細に説明されているキメラ抗ＣＤ２０抗体である。
インフリキシマブは、たとえば国際公開第９２／１６５５３号で詳細に説明されているキメラ抗ＴＮＦａ抗体である。
インフリキシマブは、たとえば国際公開第９２／１６５５３号で詳細に説明されているキメラ抗ＴＮＦａ抗体である。
【0062】
「ヒト化抗体」は、抗原結合部分（相補性決定領域（ＣＤＲ：ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ‐ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎ））が非ヒト種（たとえばマウス）由来のヒト抗体であり、したがって親免疫グロブリンと比較して異なる特異性を有する。ＣＤＲのタンパク質配列は、ヒトで天然に生産される抗体バリアントへのそれらの類似性を高めるように変更することができる。
【0063】
本発明の一実施形態において、ヒト化抗体は、トラスツズマブまたはベバシズマブである。
トラスツズマブは、たとえば国際公開第９２／２２６５３号で詳細に説明されているヒト化抗ＨＥＲ２抗体である。
トラスツズマブは、たとえば国際公開第９２／２２６５３号で詳細に説明されているヒト化抗ＨＥＲ２抗体である。
【0064】
ベバシズマブは、たとえば国際公開第９８／４５３３１号で詳細に説明されているヒト化抗ＶＥＧＦ抗体である。
「完全ヒト抗体」は、すべての部分がヒト起源由来である抗体である。
「完全ヒト抗体」は、すべての部分がヒト起源由来である抗体である。
【0065】
本発明の一実施形態において、ヒト抗体はアダリムマブまたはデノスマブである。
アダリムマブは、たとえば国際公開第９７／２９１３１号で詳細に説明されているヒト抗ＴＮＦａ抗体である。
アダリムマブは、たとえば国際公開第９７／２９１３１号で詳細に説明されているヒト抗ＴＮＦａ抗体である。
【0066】
デノスマブは、たとえば国際公開第０３／００２７１３号で詳細に説明されているヒト抗ＲＡＮＫＬ抗体である。
好ましい実施形態において、抗体はリツキシマブまたはベバシズマブである。
好ましい実施形態において、抗体はリツキシマブまたはベバシズマブである。
【0067】
用語「治療用抗体」とは、疾患の治療に使用される抗体のことをいう。治療用抗体は、様々な作用機序を有していてもよい。治療用抗体は、抗原に関連する標的に結合して、その正常機能を無力化してもよい。たとえば、癌細胞の生存に必要なタンパク質の活性を遮断するモノクローナル抗体は、細胞の死をもたらす。別の治療用モノクローナル抗体は、抗原に関連する標的に結合して、その正常機能を活性化してもよい。たとえば、モノクローナル抗体は、細胞上のタンパク質に結合して、アポトーシスシグナルを引き起こすことができる。さらに別のモノクローナル抗体は、病変組織でのみ発現される標的抗原に結合してもよい。化学療法薬または放射性薬剤などの毒性のペイロード（有効な薬剤）のモノクローナル抗体へのコンジュゲーションによって、病変組織への毒性のペイロードの特異的な（正常組織への傷害を低減する）送達のための薬剤を創出することができる。治療用抗体の「生物学的機能性フラグメント」は、無傷の抗体に起因する生物学的機能であって、少なくとも標的抗原への特異的結合を含む生物学的機能の、いくつかまたは全部でない場合でも少なくとも１つを示す。
【0068】
用語「重量オスモル濃度」は、水溶液中に溶解した溶質粒子の浸透圧の単位である。溶質粒子は、イオンと非イオン化分子の両方を含む。重量オスモル濃度は、水１ｋｇに溶解した浸透活性を有する粒子の濃度（すなわちオスモル）で示す（３７℃で１ｍＯｓｍ／ｋｇＨ２Ｏは、２．５ｋＰＡの浸透圧（１９ｍｍ Ｈｇ）と同等である）。培養物の重量オスモル濃度は、培養物が調節されているとともに安定化処理されている場合または培養物が調節されているかもしくは安定化処理されている場合を除き、細胞培養期間を通じて追加の溶質粒子がたとえば添加物として添加される場合に、または、細胞培養期間中もしくは追加の溶質粒子がたとえば添加物として添加される場合に、上昇する。したがって、細胞培養期間が長いほど、重量オスモル濃度は上昇する。
【0069】
「重量オスモル濃度」とは、溶液１リットルに溶解している溶質粒子の数のことをいう。したがって、培地への添加物（たとえばフコース、マンガンおよび／またはタウリン）などの溶質の添加は、その重量オスモル濃度を上昇させる。通常、所与の細胞培養は、最適の重量オスモル濃度範囲の細胞培養培地を必要とし、したがって、その重量オスモル濃度は、最適の重量オスモル濃度内に安定的に保たれなければならない。本明細書で用いられる場合、略語「ｍＯｓｍ」は「ミリオスモル／ｋｇ Ｈ２Ｏ」を意味する。
【0070】
本明細書で使用される用語「力価」とは、細胞培養によって生産される組換え発現された糖タンパク質の総量を所与量の培地容量で割ったもののことをいう。力価は、通常、培地１ミリリットルあたりの糖タンパク質のミリグラムの単位、または培地１リットル当たりの糖タンパク質のグラムの単位で表現される。
【0071】
本明細書で使用される用語「単離している」、「単離する」、「単離された」、「精製する」、「精製している」および「精製された」は、組換え糖タンパク質が生産された細胞培養物を構成する細胞、細胞破片、細胞培養培地、細胞培養培地成分および他の材料の一部または全部の、組換え糖タンパク質からの除去または分離を意味する。一般に、通常、細胞培養物中に生産される糖タンパク質を単離することが望ましい。糖タンパク質は、たとえば、培地中に分泌されてもよく、それによって、細胞および他の固形物は、単離プロセスの第１ステップで、たとえば遠心分離または濾過によって除去することができる。あるいは、発現された糖タンパク質は、細胞培養物の細胞の表面に結合されていてもよい。この実施形態において、培地は除去され、糖タンパク質を発現している細胞は、精製プロセスの第１ステップで溶解される。哺乳動物細胞の溶解は、ガラスビーズによる物理的破壊および高ｐＨ条件への暴露を含む、当業者に周知の任意の数の手段によって実現することができる。糖タンパク質は、たとえば、クロマトグラフィー（たとえばイオン交換、親和性、サイズ排除、およびヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー）、ゲル濾過、遠心分離、分別溶解法、エタノール沈殿を含む標準法によって、または任意の他の使用可能なタンパク質精製技術によって単離および精製または単離もしくは精製することができる（たとえば、スコープス（Ｓｃｏｐｅｓ）著、「Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ」、第２版、シュプリンガー・フェアラーク（Ｓｐｒｉｎｇｅｒ‐Ｖｅｒｌａｇ）、ニューヨーク（１９８７年）、Ｓ．Ｊ．ヒギンズ（Ｈｉｇｇｉｎｓ， Ｓ．Ｊ．）およびＢ．Ｄ．ヘイムズ（Ｈａｍｅｓ， Ｂ．Ｄ．）編、「Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ： Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ」、オックスフォード大学出版局（Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖ Ｐｒｅｓｓ）（１９９９年）、およびＭ．Ｐ．ドイッチャー（Ｄｅｕｔｓｃｈｅｒ， Ｍ．Ｐ．）、Ｍ．Ｉ．サイモン（Ｓｉｍｏｎ， Ｍ．Ｉ．）、Ｊ．Ｎ．アベルソン（Ａｂｅｌｓｏｎ， Ｊ．Ｎ．）編、「Ｇｕｉｄｅ ｔｏ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ： Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ」（Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ Ｓｅｒｉｅｓ、第１８２巻）、アカデミック・プレス（Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ）（１９９７年）を参照のこと）。特に、イムノアフィニティクロマトグラフィーについては、糖タンパク質は、そのタンパク質に対して生産され、固定担体に固定された抗体を含むアフィニティカラムに対してそれを結合させることによって単離することができる。あるいは、たとえば、インフルエンザコート配列、ポリヒスチジンまたはグルタチオンＳ‐トランスフェラーゼなどのアフィニティタグは、適切なアフィニティカラムを通過させることによる簡単な精製法を可能にする標準的な組換え技術によって糖タンパク質に結合させることができる。単離および精製プロセス中または単離もしくは精製プロセス中の糖タンパク質の分解を減少または排除するために、全部または一部の段階において、フッ化フェニルメチルスルホニル（ＰＭＳＦ）、ロイペプチン、ペプスタチンまたはアプロチニンなどのプロテアーゼインヒビターを添加することができる。発現された糖タンパク質を分離および精製するために細胞が溶解されなければならない場合、プロテアーゼインヒビターは特に望ましい。正確な単離および精製技術または単離もしくは精製技術は、単離および精製または単離もしくは精製される糖タンパク質の性質、糖タンパク質が発現される細胞の性質ならびに、細胞が増殖される培地の組成に応じて変わることは、当業者には明らかであろう。
【0072】
たとえば、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のアフコシル化グリコフォームの量を減少させるために、たとえば糖タンパク質のＡＤＣＣを減少させるために、かつ／または、参照糖タンパク質と類似したフコシル化プロファイルを有する糖タンパク質を生産するために、グリコシル化プロファイルを調節することが望ましい場合、その細胞培養物にフコースを補給してもよい（実施例２参照）。しかしながら、フコースの添加は、生産される糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの減少をもたらす場合があり、その結果、参照糖タンパク質のグリコシル化およびガラクトシル化プロファイルまたはグリコシル化もしくはガラクトシル化プロファイルと類似していないため、かつ／または、生産される糖タンパク質の生物活性、安全性および／または有効性の点で、望ましくないグリコシル化およびガラクトシル化プロファイルまたはグリコシル化もしくはガラクトシル化プロファイルをもたらす可能性がある（ラジュ（Ｒａｊｕ）およびジョーダン（Ｊｏｒｄａｎ）、ＭＡｂｓ、第４巻、第３号、３８５～３９１ページ（２０１２年５月１日）も参照のこと）。
【0073】
ガラクトシル化の減少への対策として、細胞培養中にマンガンをさらに補給してもよい。マンガンのこの追加の補給は、フコースのみの補給で認められた減少が引き起こされないように、すなわち、ガラクトシル化プロファイルが、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルと類似する／より類似するように、生産される糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルを変えると同時に、それは、培養物の重量オスモル濃度の上昇ももたらす／追加する。たとえば１１～１８日の間、たとえば１３～１５日の間、たとえば１４日間の、生産される糖タンパク質の量を増加させるための長期間の細胞培養によって引き起こされる比較的高い重量オスモル濃度に加えて、この重量オスモル濃度の上昇は、一方で、アフコシル化グリコフォームの生成を増加させる。すなわち、それは、糖タンパク質のフコシル化プロファイルの減少をもたらす（実施例３参照）。これは、もちろん、フコースの最初の補給によって実現されるべき効果の正反対であり、原因となる溶質のいかんにかかわらず、より高い重量オスモル濃度は、アフコシル化グリコフォームの減少（すなわちフコシル化されたグリコフォームの増加）をもたらすという、当該技術分野で以前に行われた観察と対照的である（今野（Ｋｏｎｎｏ）ら、Ｃｙｔｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、第６４巻、第３号、２４９～６５ページ（２０１２年））。
【0074】
フコースとマンガンとによる細胞培養物の補給により認められる、アフコシル化グリコフォームのこの望ましくない増加を打ち消すために、浸透圧保護剤としてのタウリンのさらなる補給を試みた（実施例４参照）。驚くべきことに、タウリンは、細胞培養物の重量オスモル濃度を安定化させるのに役立ち得るだけでなく、アフコシル化グリコフォームの生成をさらに減少させるのに、すなわち生産される糖タンパク質のフコシル化プロファイルを増加させるのにも役立ち得ることが判明した（実施例５参照）。これによって、フコース、マンガンおよびタウリンによる細胞培養培地の補給は、細胞培養で生産される糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを、フコシル化およびガラクトシル化プロファイルまたはフコシル化もしくはガラクトシル化プロファイルを含めて、補給が行われない場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変えることができる。ベタインなどの、当該技術分野で広く使用されている浸透圧保護剤とは対照的に、タウリンの使用は、生産力価を上昇させるというさらなる利点も有する（国際公開第２０１７／０２４０６２号）。
【0075】
したがって、一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよび／またはガラクトシル化プロファイルのうちの１つ以上を含むグリコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよび／またはガラクトシル化プロファイルのうちの１つ以上を含むグリコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよび／またはガラクトシル化プロファイルのうちの１つ以上を含むグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
【0076】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９８％である。
【0077】
別の実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0078】
さらに別の好ましい実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0079】
一実施形態において、培地中のフコースの濃度は０．４ｍＭ～１．６ｍＭだけ補給により上昇し、たとえば０．４、０．４４、０．４８、０．５２、０．５６、０．６、０．６４、０．６８、０．７２、０．７６、０．８、０．８４、０．８８、０．９２、０．９６、１、１．０４、１．０８、１．１２、１．１６、１．２、１．２４、１．２８、１．３２、１．３６、１．４、１．４４、１．４８、１．５２、１．５６または１．６ｍＭだけ上昇する。好ましい実施形態において、培地中のフコースの濃度は０．４ｍＭ～１．２ｍＭだけ補給により上昇し、たとえば０．４、０．４４、０．４８、０．５２、０．５６、０．６、０．６４、０．６８、０．７２、０．７６、０．８、０．８４、０．８８、０．９２、０．９６、１、１．０４、１．０８、１．１２、１．１６または１．２ｍＭだけ上昇する。好ましい実施形態において、培地中のフコースの濃度は０．６ｍＭ～１ｍＭだけ補給により上昇し、たとえば０．６、０．６４、０．６８、０．７２、０．７６、０．８、０．８４、０．８８、０．９２、０．９６または１ｍＭだけ上昇する。最も好ましい実施形態において、培地中のフコースの濃度は０．８ｍＭだけ補給により上昇する。
【0080】
好ましくは、前述のように、フコースの補給は、フィード培地の一部としての補給によって実現される。ここで、フィード培地中のフコースの濃度は、１０ｍＭ～４０ｍＭであり、たとえば１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０、３１、３２、３３、３４、３５、３６、３７、３８、３９または４０ｍＭである。好ましい実施形態において、フィード培地中のフコースの濃度は１０ｍＭ～３０ｍＭであり、たとえば１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９または３０ｍＭである。好ましい実施形態において、フィード培地中のフコースの濃度は１５ｍＭ～２５ｍＭであり、たとえば１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４または２５ｍＭである。最も好ましい実施形態において、フィード培地中のフコースの濃度は２０ｍＭである。
【0081】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ、より好ましくは０．４～１．２ｍＭ、よりさらに好ましくは０．６～１ｍＭ、最も好ましくは０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
【0082】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ、より好ましくは０．４～１．２ｍＭ、よりさらに好ましくは０．６～１ｍＭ、最も好ましくは０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルを、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0083】
別の実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ、より好ましくは０．４～１．２ｍＭ、よりさらに好ましくは０．６～１ｍＭ、最も好ましくは０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0084】
さらに別の好ましい実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ、より好ましくは０．４～１．２ｍＭ、よりさらに好ましくは０．６～１ｍＭ、最も好ましくは０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0085】
一実施形態において、培地中のマンガンの濃度は、０．０２μＭ～０．１μＭ、好ましくは０．０４μＭ～０．０８μＭ、より好ましくは０．０６μＭ～０．０８μＭ、最も好ましくは０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇する。
【0086】
前述のように、好ましくは、マンガンの補給は、フィード培地中のマンガンの濃度が０．５μＭ～２．５μＭ、好ましくは１．０μＭ～２．０μＭ、より好ましくは１．５μＭ～２．０μＭ、最も好ましくは１．７μＭ±０．２μＭであるフィード培地の一部として、補給によって実現される。
【0087】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０２μＭ～０．１μＭ、好ましくは０．０４μＭ～０．０８μＭ、より好ましくは０．０６μＭ～０．０８μＭ、最も好ましくは０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
【0088】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０２μＭ～０．１μＭ、好ましくは０．０４μＭ～０．０８μＭ、より好ましくは０．０６μＭ～０．０８μＭ、最も好ましくは０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0089】
別の実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０２μＭ～０．１μＭ、好ましくは０．０４μＭ～０．０８μＭ、より好ましくは０．０６μＭ～０．０８μＭ、最も好ましくは０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0090】
さらに別の好ましい実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０２μＭ～０．１μＭ、好ましくは０．０４μＭ～０．０８μＭ、より好ましくは０．０６μＭ～０．０８μＭ、最も好ましくは０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0091】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０２μＭ～０．１μＭ、好ましくは０．０４μＭ～０．０８μＭ、より好ましくは０．０６μＭ～０．０８μＭ、最も好ましくは０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
【0092】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０２μＭ～０．１μＭ、好ましくは０．０４μＭ～０．０８μＭ、より好ましくは０．０６μＭ～０．０８μＭ、最も好ましくは０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
【0093】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０２μＭ～０．１μＭ、好ましくは０．０４μＭ～０．０８μＭ、より好ましくは０．０６μＭ～０．０８μＭ、最も好ましくは０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0094】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０２μＭ～０．１μＭ、好ましくは０．０４μＭ～０．０８μＭ、より好ましくは０．０６μＭ～０．０８μＭ、最も好ましくは０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0095】
別の実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０２μＭ～０．１μＭ、好ましくは０．０４μＭ～０．０８μＭ、より好ましくは０．０６μＭ～０．０８μＭ、最も好ましくは０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0096】
別の実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０２μＭ～０．１μＭ、好ましくは０．０４μＭ～０．０８μＭ、より好ましくは０．０６μＭ～０．０８μＭ、最も好ましくは０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0097】
さらに別の好ましい実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地に、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０２μＭ～０．１μＭ、好ましくは０．０４μＭ～０．０８μＭ、より好ましくは０．０６μＭ～０．０８μＭ、最も好ましくは０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0098】
さらに別の好ましい実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０２μＭ～０．１μＭ、好ましくは０．０４μＭ～０．０８μＭ、より好ましくは０．０６μＭ～０．０８μＭ、最も好ましくは０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよびタウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0099】
一実施形態において、補給後の培地中のタウリンの濃度は１２．５ｍＭ～５０ｍＭであり、たとえば１２．５、１５、１７．５、２０、２２．５、２５、２７．５、３０、３２．５、３５、３７．５、４０、４２．５または５０ｍＭである。好ましい実施形態において、補給後の培地中のタウリンの最終濃度は１５ｍＭ～３５ｍＭであり、たとえば１５、１７．５、２０、２２．５、２５、２７．５、３０、３２．５または３５ｍＭである。好ましい実施形態において、補給後の培地中のタウリンの最終濃度は２０ｍＭ～３０ｍＭであり、たとえば２０、２２．５、２５、２７．５または３０ｍＭである。最も好ましい実施形態において、補給後の培地中のタウリンの最終濃度は２５ｍＭである。
【0100】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
【0101】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、マンガンおよび、（補給後の培地中の濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0102】
別の実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0103】
さらに別の好ましい実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0104】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるための）フコース、マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
【0105】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
【0106】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるための）フコース、マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0107】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0108】
別の実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるための）フコース、マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0109】
別の実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0110】
さらに別の好ましい実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるための）フコース、マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0111】
さらに別の好ましい実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0112】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６μＭ～０．０８μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
【0113】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にフコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
【0114】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６μＭ～０．０８μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0115】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0116】
別の実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６μＭ～０．０８μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0117】
別の実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0118】
さらに別の好ましい実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６μＭ～０．０８μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0119】
さらに別の好ましい実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地にはフコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0120】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６μＭ～０．０８μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
【0121】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６μＭ～０．０８μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
【0122】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
【0123】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のグリコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のグリコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。
【0124】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６μＭ～０．０８μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0125】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を２０ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６μＭ～０．０８μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0126】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0127】
一実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0128】
別の実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６μＭ～０．０８μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0129】
別の実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６μＭ～０．０８μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0130】
別の実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0131】
別の実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0132】
さらに別の好ましい実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６μＭ～０．０８μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0133】
さらに別の好ましい実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６μＭ～０．０８μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0134】
さらに別の好ましい実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．４ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0135】
さらに別の好ましい実施形態において、本発明は、細胞培養で生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルを変更する方法を提供し、その方法は、細胞培養培地中で組換え糖タンパク質を発現する真核細胞を培養することを含み、細胞培養培地には、（細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるための）フコース、（細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための）マンガンおよび、（補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、より好ましくは１５～３５ｍＭの、よりさらに好ましくは２０～３０ｍＭの、最も好ましくは２５ｍＭの）タウリンが補給されており、生産される組換え糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルは、かかる補給なしに培養した場合よりも参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更される。好ましくは、変更後のフコシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照糖タンパク質のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0136】
一実施形態において、前述の実施形態のいずれか１つに記載の方法は、生産された組換え糖タンパク質を細胞培養物から単離するステップをさらに含む。特定の実施形態において、単離ステップは、プロテインＡ精製を含む。
【0137】
本発明に従って、特に本発明の前述の実施形態のいずれか１つに従って、細胞培養が容易で、かつ組換え糖タンパク質を発現することができる任意の真核細胞または細胞型を使用することができる。たとえば、植物細胞、酵母細胞、動物細胞、昆虫細胞、鳥類細胞または哺乳動物細胞は、本発明に従って使用することができる。本発明に従って使用することができる哺乳動物細胞の例は、ＢＡＬＢ／ｃマウス骨髄腫細胞株（ＮＳＯ／１、ＥＣＡＣＣ Ｎｏ：８５１１０５０３）；ヒト網膜芽細胞（ＰＥＲ．Ｃ６（クルーセル社（ＣｒｕＣｅｌｌ）（オランダ、ライデン）））；ＳＶ４０（ＣＯＳ‐７、ＡＴＣＣ ＣＲＬ １６５１）で形質転換されたサル腎臓ＣＶｌ細胞株；ヒト胎児腎臓細胞株（２９３細胞または、浮遊培養での増殖のためにサブクローニングされた２９３細胞；グラハム（Ｇｒａｈａｍ）ら、Ｊ． Ｇｅｎ Ｖｉｒｏｌ．、第３６巻、５９ページ（１９７７年））；ベビーハムスター腎細胞（ＢＨＫ、ＡＴＣＣ ＣＣＬ １０）；チャイニーズハムスター卵巣細胞±ＤＨＦＲ（ＣＨＯ、ウアラウブ（Ｕｒｌａｕｂ）およびチェイスン（Ｃｈａｓｉｎ）、Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ、第７７巻、４２１６ページ（１９８０年））、たとえば、チャイニーズハムスター卵巣細胞株Ｍ（ＣＨＯ‐Ｍ）；マウスセルトリ細胞（ＴＭ４、メイザー（Ｍａｔｈｅｒ）、Ｂｉｏｌ． Ｒｅｐｒｏｄ．、第２３巻、２４３～２５１ページ（１９８０年））；サル腎細胞（ＣＶｌ ＡＴＣＣ ＣＣＬ ７０）；アフリカミドリザル腎細胞（ＶＥＲＯ‐７６、ＡＴＣＣ ＣＲＬ‐１ ５８７）；ヒト子宮頸癌細胞（ＨｅＬａ、ＡＴＣＣ ＣＣＬ ２）；イヌ腎細胞（ＭＤＣＫ、ＡＴＣＣ ＣＣＬ ３４）；バッファローラット肝細胞（ＢＲＬ ３Ａ、ＡＴＣＣ ＣＲＬ １４４２）；ヒト肺細胞（Ｗ１３８、ＡＴＣＣ ＣＣＬ ７５）；ヒト肝細胞（Ｈｅｐ Ｇ２、ＨＢ ８０６５）；マウス乳腺腫瘍（ＭＭＴ ０６０５６２、ＡＴＣＣ ＣＣＬ５ １）；ＴＲＩ細胞（メイザー（Ｍａｔｈｅｒ）ら、Ａｎｎａｌｓ Ｎ．Ｙ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ．、第３８３巻、４４～６８ページ（１９８２年））；ＭＲＣ５細胞；およびＦＳ４細胞を含む。
【0138】
本発明に適した真核細胞は、高レベルの糖タンパク質を生産するように選択または操作されることができる。しばしば、細胞は、たとえば目的の組換え糖タンパク質をコードする遺伝子の導入および／または目的の組換え糖タンパク質をコードする遺伝子（内在性または外来性を問わず）の発現を制御する調節因子の導入によって、高レベルの糖タンパク質を生産するように遺伝子操作される。
【0139】
真核細胞は、あるいは、または代わりに、無血清培地中での培養を可能にするように選択または操作されることもできる。
一実施形態において、真核細胞は、後にグリコシル化されるタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含むベクターを含む。
一実施形態において、真核細胞は、後にグリコシル化されるタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含むベクターを含む。
【0140】
別の実施形態において、少なくとも１つの糖タンパク質を発現する市販または非市販のハイブリドーマ細胞株を本発明に従って使用することができる。好ましい実施形態において、真核細胞は、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞である。好ましい実施形態において、ＣＨＯ細胞は、後にグリコシル化されるタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含むベクターを含む。たとえば、ＣＨＯ‐Ｋ１（ＡＴＣＣ ＣＣＬ‐６１）、ＣＨＯ‐ＤＵＫＸ（ＡＴＣＣ ＣＲＬ‐９０９６）、Ｌｅｃ１ ＡＴＣＣ ＣＲＬ‐１７３５、ＣＨＯ‐ＤＧ４４（サーモフィッシャー社（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ））、ＣＨＯ‐Ｍ（セレクシス（Ｓｅｌｅｘｉｓ））、ＣＨＯ‐Ｓ（サーモフィッシャー社）またはＣＨＯ Ｐｒｏ‐５（ＡＴＣＣ ＣＲＬ‐１７８１）が適している。
【0141】
特に好ましい実施形態において、真核細胞はＳｅｌｅｘｉｓ ＳＵＲＥ ＣＨＯ‐Ｍ細胞株（ＣＨＯ‐Ｍ）である。好ましい実施形態において、ＣＨＯ‐Ｍ細胞は、後にグリコシル化されるタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含むベクターを含む。
【0142】
一実施形態において、前述の実施形態のいずれか１つに記載の方法によってそのグリコシル化プロファイルが変更される組換え糖タンパク質は、大規模に、つまり、少なくとも５００または１，０００リットル、好ましくは少なくとも５，０００または８，０００リットル、最も好ましくは１０，０００または２０，０００リットルの培養液量中で生産される。
【0143】
一実施形態において、前述の実施形態のいずれか１つに記載の方法でそのグリコシル化プロファイルが変更される組換え糖タンパク質は、小規模または実験室規模で、つまり、１、５、１０または１００リットルの培養液量中で生産される。
【0144】
一実施形態において、前述の実施形態のいずれか１つに記載の方法によってそのグリコシル化プロファイルが変更される組換え糖タンパク質は、ＩｇＧ型の免疫グロブリンである。好ましい実施形態において、組換え糖タンパク質は抗体である。より好ましい実施形態において、組換え糖タンパク質はモノクローナル抗体である。最も好ましい実施形態において、組換え糖タンパク質は治療用モノクローナル抗体である。
【0145】
組換え糖タンパク質が生産される前述の実施形態のいずれか１つに記載の方法の細胞培養は、１～１８日間、たとえば１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７または１８日間行うことができる。一実施形態において、細胞培養は、４～１８日間、たとえば４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７または１８日間行われる。好ましい実施形態において、細胞培養は、８～１６日間、たとえば８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５または１６日間行われる。より好ましい実施形態において、細胞培養は、１０～１４日間、たとえば１０、１１、１２、１３または１４日間行われる。最も好ましい実施形態において、前述の実施形態のいずれか１つに記載の方法の細胞培養は、１４日間行われる。
【0146】
前述の実施形態のいずれか１つに記載の方法における補給は、培養開始から培養の終了まで、継続的または非継続的に行うことができる。たとえば、添加剤または添加物の１つまたは複数の成分を、原液から１回のボーラス添加または２回以上のボーラス添加で添加することもできるし、同じ添加剤または添加物の他の成分を、フィード培地の一部として添加することもできる。さらに、添加剤または添加物のいずれか１つまたは複数の成分を、細胞培養開始から基礎培地中に存在させることができる。このように、補給は、培養開始時に行うこともでき、かつ／または、培養開始に続いて（たとえば増殖期および／または生産期において）行うこともできる。
【0147】
一実施形態において、細胞培養培地の補給は、培養開始から行われる。好ましい実施形態において、培養開始から行われる細胞培養培地の補給はタウリンの補給である。さらに好ましい実施形態において、培養開始から行われる細胞培養培地の補給は、補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭのタウリンの補給である。最も好ましい実施形態において、培養開始から行われる細胞培養培地の補給は、補給後の細胞培養培地の最終濃度が２５ｍＭのタウリンの補給である。
【0148】
一実施形態において、培地の補給は、培養３日目以降に２日ごとに、好ましくはフィードの一部として行われる。好ましい実施形態において、培養３日目に以降に２日ごとに行われる培地の補給は、フコースの補給である。さらに好ましい実施形態において、培養３日目以降に２日ごとに行われる培地の補給は、細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるためのフコースの補給である。よりさらに好ましい実施形態において、培養３日目以降に２日ごとに行われる培地の補給は、細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるためのフコースの補給である。
【0149】
好ましい実施形態において、培地の補給は、培養３日目以降、培養１３日目まで２日ごとに、好ましくはフィードの一部として行われる。より好ましい実施形態において、培養３日目以降、培養１３日目まで２日ごとに行われる培地の補給は、フコースの補給である。より好ましい実施形態において、培養３日目以降、培養１３日目まで２日ごとに行われる培地の補給は、細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるためのフコースの補給である。よりさらに好ましい実施形態において、培養３日目以降、培養１３日目まで２日ごとに行われる培地の補給は、細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるためのフコースの補給である。
【0150】
一実施形態において、前述の実施形態のいずれか１つに記載の方法における培地の補給は、培養５日目以降に２日ごとに、好ましくはフィードの一部として行われる。好ましい実施形態において、培養５日目以降に２日ごとに行われる培地の補給は、マンガンの補給である。さらに好ましい実施形態において、培養５日目以降に２日ごとに行われる培地の補給は、細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０４μＭ～０．０８μＭ上昇させるためのマンガンの補給である。よりさらに好ましい実施形態において、培養５日目以降に２日ごとに行われる培地の補給は、細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるためのマンガンの補給である。
【0151】
好ましい実施形態において、培地の補給は、培養５日目以降に２日ごとに行われ、培養９日目まで、好ましくはフィードの一部として行われる。さらに好ましい実施形態において、培養５日目以降に２日ごとに行われる培地の補給は、マンガンの補給である。より好ましい実施形態において、培養５日目以降に２日ごとに行われる培地の補給は、細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０４μＭ～０．０８μＭ上昇させるためのマンガンの補給である。よりさらに好ましい実施形態において、培養５日目以降に２日ごとに行われる培地の補給は、細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるためのマンガンの補給である。
【0152】
好ましい実施形態において、前述の実施形態のいずれか１つに記載のマンガンによる培地の補給は、塩化マンガン（ＭｎＣｌ２）でのマンガンの補給である。好ましい実施形態において、塩化マンガンでのマンガンの補給は、培養５日目以降に２日ごとに行われ、オプションで培養９日目まで、好ましくはフィードの一部として行われる。より好ましい実施形態において、塩化マンガンでのマンガンの補給は、細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０４μＭ～０．０８μＭ上昇させるために、培養５日目以降に２日ごとに行われ、オプションで培養９日目まで行われる。よりさらに好ましい実施形態において、塩化マンガンでのマンガンの補給は、細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるために、培養５日目以降に２日ごとに行われ、オプションで培養９日目まで行われる。
【0153】
一実施形態において、前述の実施形態のいずれか１つに記載の方法における培地の補給は、培養開始からのタウリン、培養３日目以降に２日ごとのフコースおよび、培養５日目以降に２日ごとの、オプションで塩化マンガンでのマンガンの補給で行われる。好ましい実施形態において、培地の補給は、培養開始からのタウリン、培養３日目以降、培養１３日目まで２日ごとのフコースおよび、培養５日目以降、培養９日目まで２日ごとの、オプションで塩化マンガンでのマンガンの補給で、好ましくはそれぞれフィードの一部として行われる。別の好ましい実施形態において、培地の補給は、補給後の細胞培養培地中の濃度が１２．５～５０ｍＭの、培養開始からのタウリン、細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるための、培養３日目以降に２日ごとのフコースおよび、細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０４μＭ～０．０８μＭ上昇させるための、培養５日目以降に２日ごとの、オプションで塩化マンガンでのマンガンの補給で行われる。より好ましい実施形態において、培地の補給は、補給後の細胞培養培地中の最終濃度が１２．５～５０ｍＭの、培養開始からのタウリン、細胞培養培地中のフコースの濃度を０．４～１．６ｍＭ上昇させるための、培養３日目以降、培養１３日目まで２日ごとのフコースおよび、細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０４μＭ～０．０８μＭ上昇させるための、培養５日目以降、培養９日目まで２日ごとの、オプションで塩化マンガンでのマンガンの補給で行われる。別の好ましい実施形態において、培地の補給は、補給後の細胞培養培地中の最終濃度が２５ｍＭの、培養開始からのタウリン、細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるための、培養３日目以降に２日ごとのフコースおよび、細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための、培養５日目以降に２日ごとの、オプションで塩化マンガンでのマンガンの補給で行われる。最も好ましい実施形態において、培地の補給は、補給後の細胞培養培地中の最終濃度が２５ｍＭの、培養開始からのタウリン、細胞培養培地中のフコースの濃度を０．８ｍＭ上昇させるための、培養３日目以降、培養１３日目まで２日ごとのフコースおよび、細胞培養培地中のマンガンの濃度を０．０６８μＭ±０．０１μＭ上昇させるための、培養５日目以降、培養９日目まで２日ごとの、オプションで塩化マンガンでのマンガンの補給で行われる。
【0154】
一実施形態において、細胞培養培地の補給は、細胞培養の生産期に行われる。
一実施形態において、前述の実施形態のいずれか１つに記載の方法における細胞培養は、３５～４０℃で行われ、たとえば３５、３６、３７、３８、３９もしくは４０℃またはそれらの中間の任意の温度で行われる。好ましい実施形態において、細胞培養は３６～３８℃で行われ、たとえば３６、３７または３８℃またはそれらの中間の任意の温度で行われる。最も好ましい実施形態において、細胞培養は３７℃で行われる。
一実施形態において、前述の実施形態のいずれか１つに記載の方法における細胞培養は、３５～４０℃で行われ、たとえば３５、３６、３７、３８、３９もしくは４０℃またはそれらの中間の任意の温度で行われる。好ましい実施形態において、細胞培養は３６～３８℃で行われ、たとえば３６、３７または３８℃またはそれらの中間の任意の温度で行われる。最も好ましい実施形態において、細胞培養は３７℃で行われる。
【0155】
一実施形態において、前述の実施形態のいずれか１つに記載の方法における細胞培養は、ｐＨ６～９で行われ、たとえば、ｐＨ６、７、８または９で行われる。好ましい実施形態において、細胞培養はｐＨ７．０５±０．０５で行われる。
【0156】
特に好ましい実施形態において、前述の実施形態のいずれか１つに記載の細胞培養は、流加培養である。
一実施形態において、前述の実施形態のいずれか１つに記載の方法における糖タンパク質は、ＶＥＧＦアンタゴニストであり、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体である（実施例１～５参照）。好ましい実施形態において、ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルが変更される。より好ましい実施形態において、変更後のフコシル化プロファイルは、参照ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。別の好ましい実施形態において、ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化プロファイルが変更される。より好ましい実施形態において、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。別のさらにより好ましい実施形態において、ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルが変更される。最も好ましい実施形態において、変更後のフコシル化プロファイルは、参照ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
一実施形態において、前述の実施形態のいずれか１つに記載の方法における糖タンパク質は、ＶＥＧＦアンタゴニストであり、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体である（実施例１～５参照）。好ましい実施形態において、ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルが変更される。より好ましい実施形態において、変更後のフコシル化プロファイルは、参照ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。別の好ましい実施形態において、ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化プロファイルが変更される。より好ましい実施形態において、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。別のさらにより好ましい実施形態において、ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルが変更される。最も好ましい実施形態において、変更後のフコシル化プロファイルは、参照ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照ＶＥＧＦアンタゴニスト、好ましくは抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0157】
一実施形態において、前述の実施形態のいずれか１つに記載の方法における糖タンパク質は、抗ＣＤ２０抗体である（実施例６参照）。好ましい実施形態において、抗ＣＤ２０抗体のフコシル化プロファイルが変更される。より好ましい実施形態において、変更後のフコシル化プロファイルは、参照抗ＣＤ２０抗体のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。別の好ましい実施形態において、抗ＣＤ２０抗体のガラクトシル化プロファイルが変更される。より好ましい実施形態において、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照抗ＣＤ２０抗体のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。別のさらにより好ましい実施形態において、抗ＣＤ２０抗体のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルが変更される。最も好ましい実施形態において、変更後のフコシル化プロファイルは、参照抗ＣＤ２０抗体のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であり、変更後のガラクトシル化プロファイルは、参照抗ＣＤ２０抗体のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である。
【0158】
図面および前述の説明において本発明を詳細に例示し説明してきたが、このような例示および説明は例示または典型例とみなされるべきであって、限定とみなしてはならない。本発明は、開示された実施形態に限定されない。特許請求された発明の実施において、当業者は、図面、開示および従属請求項の検討から、開示された実施形態の他の変形を理解し、達成することができる。
【0159】
発明の詳細な説明は、本質的に単に例示であって、応用および使用を限定するものではない。以下の実施例は、本発明をさらに例示するものであるが、本発明の範囲を限定するものではない。当業者は、発明の詳細な説明に基づいて様々な改変および変更を行うことができ、このような改変および変更も本発明に含まれる。
【0160】
実施例
１．フコシル化プロファイルに対するフコース源の効果
抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルを、ヒトにおける治療用途のために規制当局の認可を得た参照抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように調節するために、この場合、抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルを、培地の補給なしに抗ＶＥＧＦ抗体が生産される場合よりも大きくなるように調節するために、異なる濃度でのグアノシン、フコースおよびマンノースの培地の補給およびフィードの補給の影響を試験するための一連の流加培養実験を行った。マンノースおよびグアノシンは、フコシル化のデノボ経路において重要な役割を果たしており（マンノースは、このプロセスの基質として役立ち、グアノシンは、この酵素プロセスにおける基質活性化に必要なグアノシン三リン酸の成分として役立つ）、フコースは、いわゆるフコシル化のサルベージ経路の基質として役立つ（グラマー（Ｇｒａｍｅｒ）ら、Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ Ｂｉｏｅｎｇ、第１０８巻、１５９１～１６０２ページ（２０１１年））。
１．フコシル化プロファイルに対するフコース源の効果
抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルを、ヒトにおける治療用途のために規制当局の認可を得た参照抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように調節するために、この場合、抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルを、培地の補給なしに抗ＶＥＧＦ抗体が生産される場合よりも大きくなるように調節するために、異なる濃度でのグアノシン、フコースおよびマンノースの培地の補給およびフィードの補給の影響を試験するための一連の流加培養実験を行った。マンノースおよびグアノシンは、フコシル化のデノボ経路において重要な役割を果たしており（マンノースは、このプロセスの基質として役立ち、グアノシンは、この酵素プロセスにおける基質活性化に必要なグアノシン三リン酸の成分として役立つ）、フコースは、いわゆるフコシル化のサルベージ経路の基質として役立つ（グラマー（Ｇｒａｍｅｒ）ら、Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ Ｂｉｏｅｎｇ、第１０８巻、１５９１～１６０２ページ（２０１１年））。
【0161】
細胞培養
細胞
通常のＣＨＯ Ｋ１細胞由来のチャイニーズハムスター卵巣細胞株Ｍ（ＣＨＯ‐Ｍ）は、セレクシスＳＡ社（Ｓｅｌｅｘｉｓ ＳＡ、スイス）から購入した。このＣＨＯ‐Ｍ細胞を、化学的に定義された無血清Ｇ１１．２基礎培地（アーバイン・サイエンティフィック ＵＳ社（Ｉｒｖｉｎｅ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ ＵＳ））中で増殖するように順化させた。抗ＶＥＧＦ抗体を発現させるために、このＣＨＯ‐Ｍ細胞株に、抗ＶＥＧＦ抗体をコードする組換えＤＮＡを導入する遺伝子操作を行った。
細胞
通常のＣＨＯ Ｋ１細胞由来のチャイニーズハムスター卵巣細胞株Ｍ（ＣＨＯ‐Ｍ）は、セレクシスＳＡ社（Ｓｅｌｅｘｉｓ ＳＡ、スイス）から購入した。このＣＨＯ‐Ｍ細胞を、化学的に定義された無血清Ｇ１１．２基礎培地（アーバイン・サイエンティフィック ＵＳ社（Ｉｒｖｉｎｅ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ ＵＳ））中で増殖するように順化させた。抗ＶＥＧＦ抗体を発現させるために、このＣＨＯ‐Ｍ細胞株に、抗ＶＥＧＦ抗体をコードする組換えＤＮＡを導入する遺伝子操作を行った。
【0162】
この実験は、ＡＭＢＲ小規模振盪フラスコ／実験室用ベンチトップ型バイオリアクター（ザルトリウス・ステディム・バイオテック社（Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ Ｓｔｅｄｉｍ Ｂｉｏｔｅｃｈ ＧｍｂＨ）（ドイツ、ゲッティンゲン））中、１～１０Ｌの作業容量で、または１００Ｌプロセスバイオリアクターを用いて、実験室規模で行った。この実施例に使用した生産規模および最大培養液量は５０００Ｌであった。
【0163】
細胞の培養
ＣＨＯ‐Ｍ細胞は、好気性条件下（溶存酸素（ＤＯ）レベルは、４０％に設定し、空気と純酸素ガスの混合物で調節した）で１２日間培養した。ｐＣＯ２レベルは、必要に応じて、通気速度を調節することによって６０ｍｍＨｇ未満に維持した。細胞は３７℃で培養した。全培養期間中、１２．３％（ｗ／ｗ）Ｈ３ＰＯ４溶液または０．５Ｍ ＮａＨＣＯ３塩基溶液で、ｐＨを７．０５±０．０５に維持した。グルコース制限を防止し、グルコース濃度を対象の１０～３０ｍＭの対象範囲に保つために、必要に応じて、培養物に３５％（ｗ／ｗ）グルコース溶液を添加した。発泡が認められる場合は、消泡剤を使用した。関連代謝物を毎日測定した。
ＣＨＯ‐Ｍ細胞は、好気性条件下（溶存酸素（ＤＯ）レベルは、４０％に設定し、空気と純酸素ガスの混合物で調節した）で１２日間培養した。ｐＣＯ２レベルは、必要に応じて、通気速度を調節することによって６０ｍｍＨｇ未満に維持した。細胞は３７℃で培養した。全培養期間中、１２．３％（ｗ／ｗ）Ｈ３ＰＯ４溶液または０．５Ｍ ＮａＨＣＯ３塩基溶液で、ｐＨを７．０５±０．０５に維持した。グルコース制限を防止し、グルコース濃度を対象の１０～３０ｍＭの対象範囲に保つために、必要に応じて、培養物に３５％（ｗ／ｗ）グルコース溶液を添加した。発泡が認められる場合は、消泡剤を使用した。関連代謝物を毎日測定した。
【0164】
流加培養
流加培養は、初めに、化学的に定義された無血清Ｇ１１．２基礎培地（アーバイン・サイエンティフィック ＵＳ社）中で細胞を１２日間増殖させることによって行った。培養（接種後）３日目以降、２日ごとに、ワンショット的に濃フィード溶液（フィードＡおよびフィードＢ）を添加した。
流加培養は、初めに、化学的に定義された無血清Ｇ１１．２基礎培地（アーバイン・サイエンティフィック ＵＳ社）中で細胞を１２日間増殖させることによって行った。培養（接種後）３日目以降、２日ごとに、ワンショット的に濃フィード溶液（フィードＡおよびフィードＢ）を添加した。
【0165】
本実施例で使用した培地および追加添加物の供給者およびカタログ番号を以下に示す。
【0166】
基礎培地およびフィードの詳細な組成は、表１で確認できる。
【0167】
培養３、５、７、９および１１日目に、全培養液量の４％の後添加フィードＡおよび全培養液量の０．４％の後添加フィードＢを細胞培養物に供給したが、フィードＡには、さらに、グアノシン（シグマ・アルドリッチ社、カタログ番号：Ｇ６２６４）、フコース（Ｌ‐（－）‐フコース；シグマ・アルドリッチ社、カタログ番号：Ｆ２２５２）またはマンノース（Ｄ‐（＋）‐マンノース；シグマ・アルドリッチ社、カタログ番号：Ｍ６０２０）のいずれかを、２つの異なる濃度の１つで（グアノシンは２０または６０ｍＭで、フコースは１０または２０ｍＭで、マンノースは２０または６０ｍＭで）添加した。
【0168】
精製
プロテインＡクロマトグラフィー
品質分析のために、得られた抗体を、プロテインＡクロマトグラフィーを用いて発酵液からアフィニティ精製した。この捕捉は、Ｆｃ含有分子に優れた選択性を与え、それによって単一ステップで９９．５％超の不純物が除去される。
プロテインＡクロマトグラフィー
品質分析のために、得られた抗体を、プロテインＡクロマトグラフィーを用いて発酵液からアフィニティ精製した。この捕捉は、Ｆｃ含有分子に優れた選択性を与え、それによって単一ステップで９９．５％超の不純物が除去される。
【0169】
分析
生細胞密度および生存能力
生細胞密度および生存能力は、トリパンブルー染色法を用い、Ｃｏｕｎｔｅｓｓ（商標）自動細胞計数器（インビトロジェン社（カリフォルニア州カールスバッド、２００８））によって測定した。
生細胞密度および生存能力
生細胞密度および生存能力は、トリパンブルー染色法を用い、Ｃｏｕｎｔｅｓｓ（商標）自動細胞計数器（インビトロジェン社（カリフォルニア州カールスバッド、２００８））によって測定した。
【0170】
グルコース
グルコース濃度は、Ｃｅｄｅｘ Ｂｉｏ ＨＴ Ａｎａｌｙｚｅｒ（ロシュ社（Ｒｏｃｈｅ）（ドイツ、マンハイム））によって測定した。
グルコース濃度は、Ｃｅｄｅｘ Ｂｉｏ ＨＴ Ａｎａｌｙｚｅｒ（ロシュ社（Ｒｏｃｈｅ）（ドイツ、マンハイム））によって測定した。
【0171】
ｐＣＯ２
溶存二酸化炭素含量（ｐＣＯ２）は、ＡＢＬ８０血液ガス分析装置（ラジオメーター社（Ｒａｄｉｏｍｅｔｅｒ）（デンマーク、ブレンスホイ））によって測定した。
溶存二酸化炭素含量（ｐＣＯ２）は、ＡＢＬ８０血液ガス分析装置（ラジオメーター社（Ｒａｄｉｏｍｅｔｅｒ）（デンマーク、ブレンスホイ））によって測定した。
【0172】
ｐＨ測定
ｉｎ ｓｉｔｕ ｐＨメータ再校正のためのアットラインｐＨ測定は、Ｓ４７ＳｅｖｅｎＭｕｌｔｉ ｐＨメータ（メトラー・トレド社（Ｍｅｔｔｌｅｒ Ｔｏｌｅｄｏ）（スイス、チューリッヒ））を用いて行った。
ｉｎ ｓｉｔｕ ｐＨメータ再校正のためのアットラインｐＨ測定は、Ｓ４７ＳｅｖｅｎＭｕｌｔｉ ｐＨメータ（メトラー・トレド社（Ｍｅｔｔｌｅｒ Ｔｏｌｅｄｏ）（スイス、チューリッヒ））を用いて行った。
【0173】
重量オスモル濃度
重量オスモル濃度は、Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｍｏｄｅｌ ２０２０ マルチサンプル浸透圧計（アドバンスト・インストルメンツ社（Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）（マサチューセッツ州ノーウッド））によって測定した。
重量オスモル濃度は、Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｍｏｄｅｌ ２０２０ マルチサンプル浸透圧計（アドバンスト・インストルメンツ社（Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）（マサチューセッツ州ノーウッド））によって測定した。
【0174】
力価
タンパク質力価は、プロテインＡアフィニティＨＰＬＣによって測定した。
グリコシル化プロファイル
本発明の抗体のＮ‐グリカンプロファイルは、次のとおりに測定した：ＰＮＧａｓｅ Ｆを用いた、３７℃で３時間のオンカラム消化によるそれぞれの抗体試料の変性および脱グリコシル化の後、Ｎ‐グリカンを蛍光標識試薬（２‐ＡＢ）で標識した。過剰の色素は、クリーンアップカートリッジ（ＨＩＬＩＣ）を用いて、標識されたＮ‐グリカンから分離した。次いで、アミド固定相による親水性相互作用液体クロマトグラフィー（ＨＩＬＩＣ‐ＵＨＰＬＣ）を用いて、標識され精製されたＮ‐グリカンを分離し、蛍光検出を用いて、標識されたグリカンの相対量を測定した。具体的には、抗体（２００ｍｇ、３５０ｍｌ）を、Ｎａｎｏｓｅｐ（登録商標）遠心装置（ポール社（Ｐａｌｌ）、米国）を使ってギ酸アンモニウム緩衝液（１０ｍＭ、ｐＨ８．６）に緩衝液交換した。４８ｍｌの試料を、２ｍｌのＰＮＧａｓｅ Ｆ（５００，０００Ｕ／ｍｌ、ニュー・イングランド・バイオラボ社（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ））で、４５℃で１時間インキュベートすることによってＮ‐グリコシド結合オリゴ糖を放出させた。放出されたグリカンを、６５℃で２時間、２‐ＡＢで標識した（Ｇｌｙｋｏ（登録商標）Ｓｉｇｎａｌ ２‐ＡＢ Ｌａｂｅｌｉｎｇ Ｋｉｔ、プロザイム社（ＰｒｏＺｙｍｅ））。過剰の２‐ＡＢは、真空ステーションを備えたＨｙｐｅｒＳｅｐ‐９６Ｄｉｏｌカートリッジ（サーモ社（Ｔｈｅｒｍｏ））を用いて除去した。標識されたグリカンを９６％アセトニトリルで洗浄し、カートリッジから溶出し、Ｄｉｏｎｅｘ ＲＳＬＣ Ｕｌｔｉｍａｔｅ ３０００ＲＳまたはＷａｔｅｒｓ ＡＣＱＵＩＴＹ ＵＰＬＣ（登録商標）システム上で、Ｗａｔｅｒｓ ＢＥＨ Ｇｌｙｃａｎ Ｓｅｐａｒａｔｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙカラム（２．１×１５０ｍｍ、１．７ｍｍ）を用いてＨＩＬＩＣ‐ＵＨＰＬＣにより分析した。４５分間のアセトニトリル勾配を適用し、蛍光シグナルは４２０ｎｍ（励起：３３０ｎｍ）で検出した。Ｃｈｒｏｍｅｌｅｏｎ（著作権）ソフトウェアを用い、既定のパラメータに従ってピークを自動的に積分し、グリカンの相対組成を算出した。ＨＩＬＩＣおよびＨＩＬＩＣ‐ＵＨＰＬＣについては、ロイシュ（Ｒｅｕｓｃｈ）ら、ｍＡｂｓ、第７巻、１号、１６７～１７９ページ（２０１５年）でより詳細に説明されている。
タンパク質力価は、プロテインＡアフィニティＨＰＬＣによって測定した。
グリコシル化プロファイル
本発明の抗体のＮ‐グリカンプロファイルは、次のとおりに測定した：ＰＮＧａｓｅ Ｆを用いた、３７℃で３時間のオンカラム消化によるそれぞれの抗体試料の変性および脱グリコシル化の後、Ｎ‐グリカンを蛍光標識試薬（２‐ＡＢ）で標識した。過剰の色素は、クリーンアップカートリッジ（ＨＩＬＩＣ）を用いて、標識されたＮ‐グリカンから分離した。次いで、アミド固定相による親水性相互作用液体クロマトグラフィー（ＨＩＬＩＣ‐ＵＨＰＬＣ）を用いて、標識され精製されたＮ‐グリカンを分離し、蛍光検出を用いて、標識されたグリカンの相対量を測定した。具体的には、抗体（２００ｍｇ、３５０ｍｌ）を、Ｎａｎｏｓｅｐ（登録商標）遠心装置（ポール社（Ｐａｌｌ）、米国）を使ってギ酸アンモニウム緩衝液（１０ｍＭ、ｐＨ８．６）に緩衝液交換した。４８ｍｌの試料を、２ｍｌのＰＮＧａｓｅ Ｆ（５００，０００Ｕ／ｍｌ、ニュー・イングランド・バイオラボ社（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ））で、４５℃で１時間インキュベートすることによってＮ‐グリコシド結合オリゴ糖を放出させた。放出されたグリカンを、６５℃で２時間、２‐ＡＢで標識した（Ｇｌｙｋｏ（登録商標）Ｓｉｇｎａｌ ２‐ＡＢ Ｌａｂｅｌｉｎｇ Ｋｉｔ、プロザイム社（ＰｒｏＺｙｍｅ））。過剰の２‐ＡＢは、真空ステーションを備えたＨｙｐｅｒＳｅｐ‐９６Ｄｉｏｌカートリッジ（サーモ社（Ｔｈｅｒｍｏ））を用いて除去した。標識されたグリカンを９６％アセトニトリルで洗浄し、カートリッジから溶出し、Ｄｉｏｎｅｘ ＲＳＬＣ Ｕｌｔｉｍａｔｅ ３０００ＲＳまたはＷａｔｅｒｓ ＡＣＱＵＩＴＹ ＵＰＬＣ（登録商標）システム上で、Ｗａｔｅｒｓ ＢＥＨ Ｇｌｙｃａｎ Ｓｅｐａｒａｔｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙカラム（２．１×１５０ｍｍ、１．７ｍｍ）を用いてＨＩＬＩＣ‐ＵＨＰＬＣにより分析した。４５分間のアセトニトリル勾配を適用し、蛍光シグナルは４２０ｎｍ（励起：３３０ｎｍ）で検出した。Ｃｈｒｏｍｅｌｅｏｎ（著作権）ソフトウェアを用い、既定のパラメータに従ってピークを自動的に積分し、グリカンの相対組成を算出した。ＨＩＬＩＣおよびＨＩＬＩＣ‐ＵＨＰＬＣについては、ロイシュ（Ｒｅｕｓｃｈ）ら、ｍＡｂｓ、第７巻、１号、１６７～１７９ページ（２０１５年）でより詳細に説明されている。
【0175】
放出されたグリカンの量は、対応するピークの面積％値を用いて算出した。本発明の抗体の４つの主要グリカン（Ｇ０Ｆ、Ｇ１Ｆ、Ｇ１’Ｆ、Ｇ２Ｆ）を、それぞれの参照抗体と比較して評価した。抗ＶＥＧＦ抗体の判定基準は、Ｇ０Ｆ：≧７３．４面積％、Ｇ１Ｆ：４～１２．９面積％、Ｇ１’Ｆ：２．３～５．６面積％、Ｇ２Ｆ：０．５～１．７面積％、全主要アフコシル化（ＭＡＦ）：１．９～３．７面積％であった。抗ＣＤ２０抗体の判定基準は、Ｇ０Ｆ：４０～５６面積％；Ｇ１Ｆ：２８～３８面積％；Ｇ１’Ｆ：９～１３面積％およびＧ２Ｆ：５～１２面積％であった。
【0176】
結果
培養１２日後の抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化型に対する異なる添加物の影響を図１に示す。
培養１２日後の抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化型に対する異なる添加物の影響を図１に示す。
【0177】
流加培養実験は、試験したフコースの代替物質であるグアノシンおよびマンノースと比較して、フコースを補給したフィードは、抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化型（ＭＡＦ）の最も顕著な減少をもたらすことを示した。グアノシンを補給したフィードは、６０ｍＭのより高い試験濃度で、全ＭＡＦの減少に２番目によいと思われた。これは、１０ｍＭという、試験した、より低いフコース濃度において全ＭＡＦの減少に最も有効であった、フコースを補給したフィード後の測定結果と対照的であった。マンノースの場合も同様であり、６０ｍＭのマンノース補給フィードと比較して、全主要アフコシル化型の減少に、２０ｍＭの低濃度がより効率的であった。したがって、さらなる実験のためにフコースを選択した。
【0178】
２．フコシル化プロファイルに対するフコースの濃度依存的な影響
抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルに対するフコースの影響をさらに分析するために、さまざまなフコースの濃度でのフィード培地の補給の影響を試験するための一連の流加培養実験を行った。
抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルに対するフコースの影響をさらに分析するために、さまざまなフコースの濃度でのフィード培地の補給の影響を試験するための一連の流加培養実験を行った。
【0179】
特に記載のない限り、細胞培養、単離および分析は、上記実施例と同様に行った。
流加培養は、１２日間行った。培養３、５、７、９および１１日目に、全培養液量の４％の後添加フィードＡおよび全培養液量の０．４％の後添加フィードＢを細胞培養物に供給したが、フィードＡには、さらに、フコース（Ｌ‐（－）‐フコース；シグマ・アルドリッチ社、カタログ番号：Ｆ２２５２）を、１０ｍＭ、２０ｍＭまたは４０ｍＭのいずれかの濃度で添加した。
流加培養は、１２日間行った。培養３、５、７、９および１１日目に、全培養液量の４％の後添加フィードＡおよび全培養液量の０．４％の後添加フィードＢを細胞培養物に供給したが、フィードＡには、さらに、フコース（Ｌ‐（－）‐フコース；シグマ・アルドリッチ社、カタログ番号：Ｆ２２５２）を、１０ｍＭ、２０ｍＭまたは４０ｍＭのいずれかの濃度で添加した。
【0180】
結果
それぞれのフコース含有フィードの添加による抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化型の濃度依存的な減少を図２に示す。
それぞれのフコース含有フィードの添加による抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化型の濃度依存的な減少を図２に示す。
【0181】
前述の参照抗ＶＥＧＦ抗体に対する抗ＶＥＧＦ抗体の生物学的類似性は、全主要アフコシル化型（ＭＡＦ）、すなわちフコシル化プロファイルの点で改善された。この流加培養実験は、培地がフコースを欠く対照実験と比較して、培養１２日目に測定された抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化型が、すべての試験濃度でのフコースのフィードによって減少しており、それは、参照抗ＶＥＧＦ抗体の全ＭＡＦの量に対するよりよい類似をもたらすことを示した。全ＭＡＦのこの減少は、最も顕著な減少が、４０ｍＭの濃度でフコースをフィードしたとき実現されたため、濃度依存的であった。しかしながら、細胞培養の重量オスモル濃度の上昇と、それに伴う望ましくない副次的影響とを防止するために、２０ｍＭの濃度でフコースを添加したフィードをさらなる実験のために選択した。２０ｍＭフコースでのフィードの補給は、参照抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルとよりよく類似した抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルをもたらすが、抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化度は、参照抗ＶＥＧＦ抗体と比較すると許容範囲を下回った。
【0182】
３．グリコシル化プロファイルに対するマンガンの濃度依存的な効果
参照抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化プロファイルを変更するために、様々な時点での、β‐１，４‐ガラクトシルトランスフェラーゼの補因子であるマンガンのさまざまな濃度でのフィードの補給の影響を試験するための一連の流加培養実験を行った。
参照抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化プロファイルを変更するために、様々な時点での、β‐１，４‐ガラクトシルトランスフェラーゼの補因子であるマンガンのさまざまな濃度でのフィードの補給の影響を試験するための一連の流加培養実験を行った。
【0183】
特に記載のない限り、細胞培養、単離および分析は、実施例１と同様に行った。
流加培養は、１１日間行った。培養３、５、７および９日目；５、７および９日目；７および９日目；または９日目に、表２に示した濃度で、塩化マンガン（ＩＩ）四水和物（ＭｎＣｌ２ ＊４Ｈ２Ｏ；シグマ・アルドリッチ社、カタログ番号：Ｍ５００５）の形でフィードＡにマンガンを補給した。
流加培養は、１１日間行った。培養３、５、７および９日目；５、７および９日目；７および９日目；または９日目に、表２に示した濃度で、塩化マンガン（ＩＩ）四水和物（ＭｎＣｌ２ ＊４Ｈ２Ｏ；シグマ・アルドリッチ社、カタログ番号：Ｍ５００５）の形でフィードＡにマンガンを補給した。
【0184】
結果
マンガンのフィードの補給によるグリコシル化プロファイル分析の結果を表２に示す。ガラクトシル化に対するマンガン添加の最も好ましい効果は、細胞を、最も高い特異的生産性で特徴づけることができる期間内の培養５日目～９日目に認めることができる。結果として、フィードＡには、次の流加実験において、培養５、７および９日目に１．７μＭの塩化マンガンを補給した。抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化プロファイルは、マンガンのフィードの補給によって改善することができるであろうが、マンガン添加が、アフコシル化グリコフォームレベルのかなりの上昇をもたらすことも認められる（たとえばＧ０はマンガンによって増加し、Ｇ０Ｆはマンガンによって減少する）。参照抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルを変更するために、さらなる培地の補給を考慮する必要があった。
マンガンのフィードの補給によるグリコシル化プロファイル分析の結果を表２に示す。ガラクトシル化に対するマンガン添加の最も好ましい効果は、細胞を、最も高い特異的生産性で特徴づけることができる期間内の培養５日目～９日目に認めることができる。結果として、フィードＡには、次の流加実験において、培養５、７および９日目に１．７μＭの塩化マンガンを補給した。抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化プロファイルは、マンガンのフィードの補給によって改善することができるであろうが、マンガン添加が、アフコシル化グリコフォームレベルのかなりの上昇をもたらすことも認められる（たとえばＧ０はマンガンによって増加し、Ｇ０Ｆはマンガンによって減少する）。参照抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルとよりよく類似するように抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルを変更するために、さらなる培地の補給を考慮する必要があった。
【0185】
４．フコシル化プロファイルに対するタウリン補給の効果
重量オスモル濃度の望ましくない上昇と、次の実験のために計画された１４日間に向けての細胞培養時間の延長によるさらなるフコシル化の抑制とに対処するために、細胞培養培地に浸透圧保護剤を添加する一連の流加培養実験を行った。タウリン補給は、細胞培養で生産される糖タンパク質の力価を上昇させることもできることは当該技術分野から公知であるため、可能性のある浸透圧保護剤としてタウリンが選択された。
重量オスモル濃度の望ましくない上昇と、次の実験のために計画された１４日間に向けての細胞培養時間の延長によるさらなるフコシル化の抑制とに対処するために、細胞培養培地に浸透圧保護剤を添加する一連の流加培養実験を行った。タウリン補給は、細胞培養で生産される糖タンパク質の力価を上昇させることもできることは当該技術分野から公知であるため、可能性のある浸透圧保護剤としてタウリンが選択された。
【0186】
特に記載のない限り、細胞培養、単離および分析は、実施例１と同様に行った。
流加培養は、１４日間行った。培養開始時（接種後０日目）に１２．５ｍＭ、２５ｍＭまたは５０ｍＭの濃度で培地にタウリン（シグマ・アルドリッチ社、カタログ番号：Ｔ４５７１）を補給した。さらに、培養５、７および９日目に、１．７μＭの濃度で、塩化マンガン（ＩＩ）四水和物（ＭｎＣｌ２ ＊４Ｈ２Ｏ；シグマ・アルドリッチ社、カタログ番号：Ｍ５００５）の形でフィードＡにマンガンを補給した。
流加培養は、１４日間行った。培養開始時（接種後０日目）に１２．５ｍＭ、２５ｍＭまたは５０ｍＭの濃度で培地にタウリン（シグマ・アルドリッチ社、カタログ番号：Ｔ４５７１）を補給した。さらに、培養５、７および９日目に、１．７μＭの濃度で、塩化マンガン（ＩＩ）四水和物（ＭｎＣｌ２ ＊４Ｈ２Ｏ；シグマ・アルドリッチ社、カタログ番号：Ｍ５００５）の形でフィードＡにマンガンを補給した。
【0187】
結果
基礎培地のタウリン補給による抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化型に対する濃度依存的な影響を図３に示す。
基礎培地のタウリン補給による抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化型に対する濃度依存的な影響を図３に示す。
【0188】
驚くべきことに、基礎培地のタウリン補給による抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化型の濃度依存的な減少が認められた。この流加培養実験は、タウリンを欠く基礎培地における培養と比較して、培養１４日後の抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化型（ＭＡＦ）の量が、タウリンを補給したすべての培養物において減少したことを示した。高濃度のタウリン補給（５０ｍＭ）は、参照抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルのそれぞれの範囲に最も近いフコシル化プロファイルを示した。それにもかかわらず、細胞培養の重量オスモル濃度のさらなる上昇を防止し、かつ浸透圧保護剤としてのタウリンの作用を維持するために、次の実験のために、培地の補給のために２５ｍＭの濃度のタウリンを選択した。
【0189】
５．グリコシル化プロファイルに対するフコース、マンガンおよびタウリンの補給の効果
次に、フコースおよびマンガンのフィードの補給に加えた、基礎培地のタウリン補給による抗ＶＥＧＦ抗体のグリコシル化プロファイルの変更可能性を調べた。
次に、フコースおよびマンガンのフィードの補給に加えた、基礎培地のタウリン補給による抗ＶＥＧＦ抗体のグリコシル化プロファイルの変更可能性を調べた。
【0190】
特に記載のない限り、細胞培養、単離および分析は、実施例１と同様に行った。
細胞培養
細胞
通常のＣＨＯ Ｋ１細胞由来のチャイニーズハムスター卵巣細胞株Ｍ（ＣＨＯ‐Ｍ）は、セレクシス社（スイス）から購入した。このＣＨＯ‐Ｍ細胞を、化学的に定義された無血清Ｇ１１．２基礎培地（アーバイン・サイエンティフィック ＵＳ社）中で増殖するように順化させた。抗ＶＥＧＦ抗体を発現させるために、このＣＨＯ‐Ｍ細胞株に、抗ＶＥＧＦ抗体をコードする組換えＤＮＡを導入する遺伝子操作を行った。
細胞培養
細胞
通常のＣＨＯ Ｋ１細胞由来のチャイニーズハムスター卵巣細胞株Ｍ（ＣＨＯ‐Ｍ）は、セレクシス社（スイス）から購入した。このＣＨＯ‐Ｍ細胞を、化学的に定義された無血清Ｇ１１．２基礎培地（アーバイン・サイエンティフィック ＵＳ社）中で増殖するように順化させた。抗ＶＥＧＦ抗体を発現させるために、このＣＨＯ‐Ｍ細胞株に、抗ＶＥＧＦ抗体をコードする組換えＤＮＡを導入する遺伝子操作を行った。
【0191】
流加培養
流加培養は、培養開始時（接種後０日目）に２５ｍＭのタウリン（シグマ・アルドリッチ社、カタログ番号：Ｔ４５７１）を添加した、化学的に定義された無血清基礎培地Ｇ１１．２（アーバイン・サイエンティフィック ＵＳ社）中で細胞を増殖させることによって１４日間行った。
流加培養は、培養開始時（接種後０日目）に２５ｍＭのタウリン（シグマ・アルドリッチ社、カタログ番号：Ｔ４５７１）を添加した、化学的に定義された無血清基礎培地Ｇ１１．２（アーバイン・サイエンティフィック ＵＳ社）中で細胞を増殖させることによって１４日間行った。
【0192】
培養（接種後）３日目以降、２日ごとに、２０ｍＭのフコースを添加した全培養液量の４％の後添加フィードＡおよび、全培養液量の０．４％の後添加フィードＢを、別々にワンショット的に培地に添加した。さらに、培養（接種後）５、７および９日目に、フィードＡ中１．７μＭの濃度で、塩化マンガン（ＩＩ）四水和物（ＭｎＣｌ２
＊４Ｈ２Ｏ；シグマ・アルドリッチ社、カタログ番号：Ｍ５００５）の形でフィードＡにマンガンを補給した。
【0193】
実施例５で使用した培地および追加添加物の供給者およびカタログ番号を以下に示す。
【0194】
実施例５で使用した基礎培地およびフィードの詳細な組成は、表３で確認できる。
【0195】
結果
抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化型に対するタウリン、フコースおよびマンガンの効果を図４に示す。
抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化型に対するタウリン、フコースおよびマンガンの効果を図４に示す。
【0196】
この流加培養実験は、タウリンおよびフコースを欠く基礎培地における培養と比較して、培養１４日後の抗ＶＥＧＦ抗体の全主要アフコシル化型（ＭＡＦ）の量を、基礎培地に２５ｍＭのタウリンを添加することによって減少させることができるであろうことを示した。さらに、抗ＶＥＧＦ抗体の全ＭＡＦの量は、タウリン含有細胞培養物への２０ｍＭのフコースフィードの実施によって減少させることができるであろう。細胞培養物へのタウリンおよびフコースの添加の相乗効果は、参照抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルのそれぞれの範囲内に十分に適合するフコシル化プロファイルをもたらす。
【0197】
図５は、培養（接種後）３日目以降の発酵液試料の毎日の分析によるフコシル化プロファイルを示す。
この分析は、１．７μＭのマンガンのフィードの補給と、１．７μＭのマンガンのフィードの補給と組み合わせた２５ｍＭのタウリンの培地の補給とに組み合わせた、２０ｍＭのフコースのフィードの補給が、単独で、全主要アフコシル化グリコフォーム（ＭＡＦ）を減少させることができるであろうことを示している（図５の点線ストライプの線およびストライプの線）。しかしながら、最も低いＭＡＦプロファイルは、３つすべての成分が一緒に補給されたときにのみ認められた（図５の点線）。このＭＡＦプロファイルは、十分に全ＭＡＦプロファイルの範囲内、すなわち、参照抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であった。
この分析は、１．７μＭのマンガンのフィードの補給と、１．７μＭのマンガンのフィードの補給と組み合わせた２５ｍＭのタウリンの培地の補給とに組み合わせた、２０ｍＭのフコースのフィードの補給が、単独で、全主要アフコシル化グリコフォーム（ＭＡＦ）を減少させることができるであろうことを示している（図５の点線ストライプの線およびストライプの線）。しかしながら、最も低いＭＡＦプロファイルは、３つすべての成分が一緒に補給されたときにのみ認められた（図５の点線）。このＭＡＦプロファイルは、十分に全ＭＡＦプロファイルの範囲内、すなわち、参照抗ＶＥＧＦ抗体のフコシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％であった。
【0198】
同様に、毎日の分析による、それぞれの試料の非ガラクトシル化グリコフォーム（Ｇ０）のプロファイルを図６に示す。
これらの実験は、１．７μＭのマンガンのフィードの補給と、１．７μＭのマンガンのフィードの補給と組み合わせた２５ｍＭのタウリンの培地の補給とに組み合わせた、２０ｍＭのフコースのフィードの補給が、単独で、非ガラクトシル化グリコフォーム（Ｇ０）の量を減少させることができるであろうことを示している（図６中の点線ストライプの線およびストライプの線）。それにもかかわらず、ガラクトシル化プロファイルの範囲内である、すなわち参照抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である最も低いＧ０プロファイルは、３つすべての成分がそれぞれ培地およびフィード中に補給されたときにのみ認められた（図６中の点線）。要するに、タウリン、マンガンおよびフコースによる培養物の併用補給によって、参照抗ＶＥＧＦ抗体への抗ＶＥＧＦ抗体の類似性は、非ガラクトシル化グリコフォーム（Ｇ０）のプロファイル、すなわちガラクトシル化プロファイルの観点から改善されることができるであろう。
これらの実験は、１．７μＭのマンガンのフィードの補給と、１．７μＭのマンガンのフィードの補給と組み合わせた２５ｍＭのタウリンの培地の補給とに組み合わせた、２０ｍＭのフコースのフィードの補給が、単独で、非ガラクトシル化グリコフォーム（Ｇ０）の量を減少させることができるであろうことを示している（図６中の点線ストライプの線およびストライプの線）。それにもかかわらず、ガラクトシル化プロファイルの範囲内である、すなわち参照抗ＶＥＧＦ抗体のガラクトシル化プロファイルの少なくとも９０％、好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９６％、より好ましくは少なくとも９８％である最も低いＧ０プロファイルは、３つすべての成分がそれぞれ培地およびフィード中に補給されたときにのみ認められた（図６中の点線）。要するに、タウリン、マンガンおよびフコースによる培養物の併用補給によって、参照抗ＶＥＧＦ抗体への抗ＶＥＧＦ抗体の類似性は、非ガラクトシル化グリコフォーム（Ｇ０）のプロファイル、すなわちガラクトシル化プロファイルの観点から改善されることができるであろう。
【0199】
６．グリコシル化プロファイルに対するフコース、マンガンおよびタウリンの 補給の効果
抗ＣＤ２０抗体を用いた類似した流加実験において、フコース、マンガンおよびタウリンによる培地の補給によるグリコシル化プロファイルの変更に関して同じ効果を実現することができるであろう。
抗ＣＤ２０抗体を用いた類似した流加実験において、フコース、マンガンおよびタウリンによる培地の補給によるグリコシル化プロファイルの変更に関して同じ効果を実現することができるであろう。
【0200】
特に記載のない限り、細胞培養、フィーディングスキーム、単離および分析は、実施例５と同様に行った。
流加培養は、培養開始時（接種後０日目）に２５ｍＭのタウリン（シグマ・アルドリッチ社、カタログ番号：Ｔ４５７１）を添加した、化学的に定義された無血清基礎培地Ｇ１１．２（アーバイン・サイエンティフィック ＵＳ社）中で細胞を増殖させることによって１２日間行った。
流加培養は、培養開始時（接種後０日目）に２５ｍＭのタウリン（シグマ・アルドリッチ社、カタログ番号：Ｔ４５７１）を添加した、化学的に定義された無血清基礎培地Ｇ１１．２（アーバイン・サイエンティフィック ＵＳ社）中で細胞を増殖させることによって１２日間行った。
【0201】
培養（接種後）３日目以降、２日ごとに、２０ｍＭのフコースを添加した全培養液量の４％の後添加フィードＡおよび、全培養液量の０．４％の後添加フィードＢを、別々にワンショット的に培地に添加した。さらに、培養（接種後）５、７および９日目に、フィードＡ中１．７μＭの濃度で、塩化マンガン（ＩＩ）四水和物（ＭｎＣｌ２
＊４Ｈ２Ｏ；シグマ・アルドリッチ社、カタログ番号：Ｍ５００５）の形でフィードＡにマンガンを補給した。
【0202】
結果
表４は、培養（接種後）３日目以降の発酵液試料の毎日の分析による、抗ＣＤ２０抗体ベースのグリコシル化プロファイルに対する異なるフィードの補給戦略の効果を示す。
表４は、培養（接種後）３日目以降の発酵液試料の毎日の分析による、抗ＣＤ２０抗体ベースのグリコシル化プロファイルに対する異なるフィードの補給戦略の効果を示す。
【0203】
糖分析は、フコースを補給したフィードを供給された、タウリンを補給した培地中での３日または４日の培養は、抗ＣＤ２０抗体のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルに対して効果を示さなかったことを示している。培養５日目以降においてのみ、細胞培養物に、フコースおよびマンガンを補給したフィードが添加された場合に、すなわち、フコース、マンガンおよびタウリンの３つすべての成分が細胞培養物中に存在する場合に、抗ＣＤ２０抗体のフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルを、参照抗ＣＤ２０抗体のそれぞれのフコシル化プロファイルおよびガラクトシル化プロファイルとよりよく類似するように変更することができるであろう。
【図1】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図6】
【国際調査報告】