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特表2022-538598プレｍＲＮＡのトランススプライシングに基づく合成転写用論理「ＡＮＤ」ゲートを作製するためのシステムおよびその使用
(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】公表特許公報(A)
(11)【公表番号】
(43)【公表日】2022-09-05
(54)【発明の名称】プレｍＲＮＡのトランススプライシングに基づく合成転写用論理「ＡＮＤ」ゲートを作製するためのシステムおよびその使用
(51)【国際特許分類】
C12N 15/63 20060101AFI20220829BHJP
C12N 15/113 20100101ALI20220829BHJP
C12N 15/19 20060101ALI20220829BHJP
C12N 15/12 20060101ALI20220829BHJP
C12N 15/52 20060101ALI20220829BHJP
C12N 5/10 20060101ALI20220829BHJP
C12P 21/02 20060101ALI20220829BHJP
A61P 35/00 20060101ALI20220829BHJP
A61K 48/00 20060101ALI20220829BHJP
【ＦＩ】
C12N15/63 Z ZNA
C12N15/113 Z
C12N15/19
C12N15/12
C12N15/52 Z
C12N5/10
C12P21/02 C
A61P35/00
A61K48/00
【審査請求】未請求
【予備審査請求】未請求
(21)【出願番号】P 2021577255
(86)(22)【出願日】2020-06-25
(85)【翻訳文提出日】2022-02-22
(86)【国際出願番号】 IL2020050713
(87)【国際公開番号】W WO2020261277
(87)【国際公開日】2020-12-30
(31)【優先権主張番号】62/866,229
(32)【優先日】2019-06-25
(33)【優先権主張国・地域又は機関】US
(81)【指定国・地域】
(71)【出願人】
【識別番号】521550714
【氏名又は名称】ミガル ガリラヤ リサーチ インスティテュート リミテッド
(71)【出願人】
【識別番号】517272482
【氏名又は名称】イッスム リサーチ デヴェロップメント カンパニー オブ ザ ヘブライ ユニヴァーシティー オブ エルサレム，リミテッド
【氏名又は名称原語表記】ＹＩＳＳＵＭ ＲＥＳＥＡＲＣＨ ＤＥＶＥＬＯＰＭＥＮＴ ＣＯＭＰＡＮＹ ＯＦ ＴＨＥ ＨＥＢＲＥＷ ＵＮＩＶＥＲＳＩＴＹ ＯＦ ＪＥＲＵＳＡＬＥＭ， ＬＴＤ．
【住所又は居所原語表記】Ｈｉ－Ｔｅｃｈ Ｐａｒｋ， Ｅｄｍｏｎｄ Ｊ．Ｓａｆｒａ Ｃａｍｐｕｓ Ｇｉｖａｔ－Ｒａｍ， Ｐ．Ｏ．Ｂｏｘ ３９１３５，Ｊｅｒｕｓａｌｅｍ ９１３９０，Ｉｓｒａｅｌ
(74)【代理人】
【識別番号】110000729
【氏名又は名称】特許業務法人 ユニアス国際特許事務所
(72)【発明者】
【氏名】ニッシム、リオル
(72)【発明者】
【氏名】グロス、ギデオン
(72)【発明者】
【氏名】ワインスタイン－マロム、ハダス
(72)【発明者】
【氏名】ロアス、ケレン
【テーマコード（参考）】
4B064
4B065
4C084
【Ｆターム（参考）】
4B064AG01
4B064AG02
4B064CA10
4B064CA19
4B064DA01
4B065AA90X
4B065AB01
4B065AC14
4B065BA02
4B065CA24
4B065CA27
4B065CA44
4C084AA13
4C084MA66
4C084NA14
4C084ZB261
4C084ZB262
(57)【要約】
目的とする転写物を所定の細胞状態において生じさせるための合成核酸発現システムが提供され、前記システムは、（ａ）目的とする前記転写物の５’側フラグメントをコードする少なくとも１つのエクソンと、スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される第１のＲＮＡ配列とを含む第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列をコードする核酸配列に対して作動可能に連結される第１のプロモーターを含む第１の核酸配列、および（ｂ）目的とする前記転写物の３’側フラグメントをコードする少なくとも１つのエクソンと、スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される第２のＲＮＡ配列とを含む第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列をコードする核酸配列に対して作動可能に連結される第２のプロモーターを含む第２の核酸配列を含み、前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターが異なっており、各々が前記所定の細胞状態によって特異的に調節される。
【選択図】図１
【選択図】図１
【特許請求の範囲】
【請求項1】
目的とする転写物を所定の細胞状態において生じさせるための合成核酸発現システムであって、（ａ）目的とする前記転写物の５’側フラグメントをコードする少なくとも１つのエクソンと、スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される第１のＲＮＡ配列とを含む第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列をコードする核酸配列に対して作動可能に連結される第１のプロモーターを含む第１の核酸配列、および
（ｂ）目的とする前記転写物の３’側フラグメントをコードする少なくとも１つのエクソンと、スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される第２のＲＮＡ配列とを含む第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列をコードする核酸配列に対して作動可能に連結される第２のプロモーターを含む第２の核酸配列を含み、
前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターが異なっており、各々が前記所定の細胞状態によって特異的に調節され、
スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される前記第１のＲＮＡ配列が標的配列を含み、スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される前記第２のＲＮＡ配列がガイド配列を含み、前記標的配列は前記ガイド配列に対して相補的であり、前記標的配列の前記ガイド配列へのハイブリダイゼーションがトランススプライシングを促進させ、かつ、前記標的配列および前記ガイド配列は前記所定の細胞状態の生来的トランスクリプトームのそれぞれの転写物との塩基相補性を欠き、したがって前記それぞれの転写物とのトランススプライシングを妨げ、
かつ、前記少なくとも１つのエクソンの各々が、不完全な目的とする転写物をコードし、前記第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列および第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列の前記組み合わされた少なくとも１つのエクソンを含むメッセンジャーＲＮＡが、完全な目的とする転写物をコードする、合成核酸発現システム。
【請求項2】
前記第１の核酸配列と、前記第２の核酸配列とが、同じ核酸分子に存在する、請求項１に記載の合成発現システム。
【請求項3】
前記第１の核酸配列および第２の核酸配列が別々の核酸分子に存在する、請求項１に記載の合成発現システム。
【請求項4】
下記の特徴：（ｉ）スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される前記第１のＲＮＡ配列は前記第１の核酸配列の３’末端またはその近くに位置し、スプライシングのためのドナー部位を含み、しかし、スプライシングのためのアクセプター部位を欠き、かつ、スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される前記第２のＲＮＡ配列は前記第２の核酸の５’末端またはその近くに位置し、スプライシングのためのアクセプター部位を含み、しかし、スプライシングのためのドナー部位を欠くこと；
（ｉｉ）前記ガイド配列および前記標的配列の各々が、ヌクレオチド長さで約１０～約５００以上の間である結合部位配列を含むこと；
（ｉｉｉ）スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される前記第１および前記第２のＲＮＡ配列は、前記ガイド配列および前記標的配列のハイブリダイゼーションを介して構造的に相互作用すること；
（ｉｖ）前記第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列および前記第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列の各々が、内部結合配列および／または自己相補的配列を何ら有しない非構造化ヌクレオチドを含み、したがって、機能的リボザイムを形成するために要求される配列を欠くこと；または
（ｖ）前記ガイド配列および前記標的配列の各々が結合部位配列を含み、前記ガイド配列の前記結合部位は前記標的配列の前記結合部位に関して少なくとも１つまたは複数のミスマッチヌクレオチドを有すること
の少なくとも１つによって特徴づけられる、あるいは
（ｉ）～（ｖ）のうちの２つ以上の組み合わせによって特徴づけられる、請求項１に記載の合成発現システム。
【請求項5】
前記所定の細胞状態が、所定の細胞タイプ、組織タイプ、細胞周期時期、代謝状態および病理学的状態から選択される、請求項１に記載の合成発現システム。
【請求項6】
前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が独立して前記事前に定められた細胞状態によって特異的に誘導される、または活性化される、請求項５に記載の合成発現システム。
【請求項7】
前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が独立して、細胞タイプ特異的プロモーター、組織特異的プロモーター、疾患特異的プロモーターおよび細胞周期応答性プロモーターから選択される、請求項５に記載の合成発現システム。
【請求項8】
前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が独立して疾患特異的プロモーターであり、例えば、腫瘍特異的プロモーターなどである、請求項７に記載の合成発現システム。
【請求項9】
前記不完全な目的とする転写物が非機能的な転写物である、または非機能的なタンパク質をコードする、請求項１に記載の合成発現システム。
【請求項10】
目的とする前記転写物が、転写因子（例えば、合成転写因子）、生来的転写因子、細胞表面タンパク質、ケモカイン、サイトカイン、チェックポイント阻害剤、酵素、増殖因子、レポーター遺伝子、短いヘアピンＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）、およびマイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）から選択される転写物産物をコードする、請求項１に記載の合成発現システム。
【請求項11】
請求項１～１０のいずれか一項に記載の合成発現システムの前記第１の核酸配列（ａ）および／または前記第２の核酸配列（ｂ）を含む組成物。
【請求項12】
請求項１～１０のいずれか一項に記載の合成発現システムの前記第１の核酸配列（ａ）および／または前記第２の核酸配列（ｂ）を含むベクター。
【請求項13】
前記第１の核酸配列（ａ）または前記第２の核酸配列（ｂ）を含み、しかし、前記第１の核酸配列（ａ）および前記第２の核酸配列（ｂ）の両方を含まない、請求項１２に記載のベクター。
【請求項14】
ＤＮＡベクター、例えば、プラスミドベクターまたはウイルスベクターなど、あるいは非ウイルス性ベクター、例えば、ポリマーナノ粒子、脂質、リン酸カルシウム、ＤＮＡ被覆微小粒子またはトランスポゾンなどである、請求項１２または１３に記載のベクター。
【請求項15】
請求項１～１０のいずれか一項に記載の合成発現システムまたは請求項１２～１４のいずれか一項に記載のベクターを含む真核生物細胞。
【請求項16】
目的とする転写物を真核生物細胞において発現させる方法であって、前記真核生物細胞に請求項１～１０のいずれか一項に記載の合成発現システムの前記第１の核酸配列（ａ）および前記第２の核酸配列（ｂ）を導入すること、または前記真核生物細胞に請求項１２～１４のいずれか一項に記載の少なくとも１つのベクターを導入することを含む方法。
【請求項17】
前記導入することが、インビトロ、インビボまたはエクスビボで実施される、請求項１６に記載の方法。
【請求項18】
細胞状態に伴う、または該細胞状態によって引き起こされる疾患に罹患する患者、または前記患者から得られる細胞を処置する際における使用のための請求項１２～１４のいずれか一項に記載のベクターであって、前記使用は前記患者の細胞を前記ベクターの少なくとも１つと接触させることを含み、前記第１のプロモーターおよび第２のプロモーターの各々が独立して前記細胞状態によって特異的に調節され、かつ、目的とする前記転写物が、前記疾患の処置を容易にする転写物産物をコードし、それにより、目的とする前記転写物を前記細胞状態においてだけで発現させ、前記疾患を処置する、使用のためのベクター。
【請求項19】
前記細胞を２つの異なるベクターと接触させることを含み、前記２つのベクターの一方が前記第１の核酸配列（ａ）を含み、しかし前記第２の核酸配列（ｂ）を含まず、前記２つのベクターの他方が前記第２の核酸配列（ｂ）を含み、しかし前記第１の核酸配列（ａ）を含まない、請求項１８に記載の使用のためのベクター。
【請求項20】
前記接触させることが、インビトロ、インビボまたはエクスビボで実施される、請求項１８に記載の使用のためのベクター。
【請求項21】
前記細胞状態が、細胞タイプ、組織タイプ、細胞周期時期、代謝状態、病理学的状態、分化状態、エピジェネティック状態および活性化状態から選択される、請求項１８に記載の使用のためのベクター。
【請求項22】
前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が独立して前記事前に定められた細胞状態によって特異的に誘導される、または活性化される、請求項２１に記載の使用のためのベクター。
【請求項23】
前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が独立して、細胞タイプ特異的プロモーター、組織特異的プロモーター、疾患特異的プロモーター、分化状態特異的プロモーター、エピジェネティック状態特異的プロモーター、活性化状態特異的プロモーターおよび細胞周期応答性プロモーターから選択される、請求項２１に記載の使用のためのベクター。
【請求項24】
前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が疾患特異的プロモーターであり、例えば、腫瘍特異的プロモーターなどである、請求項２３に記載の使用のためのベクター。
【請求項25】
前記患者がヒト患者である、請求項２３に記載の使用のためのベクター。
【請求項26】
前記疾患ががんであり、前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が腫瘍特異的プロモーターである、請求項２４に記載の使用のためのベクター。
【請求項27】
前記疾患の処置を容易にする前記転写物産物が、転写因子（例えば、合成転写因子）、ケモカイン、サイトカイン、チェックポイント阻害剤、栄養要求性マーカー、酵素、増殖因子、短いヘアピンＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）、またはマイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）である、請求項１８に記載の使用のためのベクター。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は一般には、目的とする転写物の真核生物細胞における発現に関する。具体的には、本発明は、ｍＲＮＡのトランススプライシングに基づくブールＡＮＤ論理ゲートによって調節される転写物を発現させるためのシステムを提供する：すなわち、前記転写物の発現が、２つの異なる入力シグナルが同時に存在する場合でのみ生じる。
【背景技術】
【0002】
論理ゲートは、どのようなタイプの装置であれ、１つまたは複数のバイナリー入力またはアナログ入力に対する論理演算を実施して、ただ１つのバイナリー出力をもたらすことができる装置である。論理ＡＮＤゲートは、すべてのその指定された入力が存在する場合に出力をもたらすだけであろう。医学において、論理ＡＮＤゲートの細心な実行は、治療遺伝子またはレポーター遺伝子を事前に定められた細胞条件において発現させようと試みる現在の戦略の選択性、安全性および効力を高める可能性がある。例えば、ベクター媒介のインビボ遺伝子送達において、潜在的な入力には、標的組織またはその脈管構造の表面における異なった分子構造、特異的な環境条件（例えば、ｐＨ、酸素濃度、サイトカイン、ケモカイン、タンパク質分解酵素または代謝産物の存在）、活発に発現した遺伝子のパターンおよびそれらのプロモーターの状態、またはどのような組み合わせであれそのような事象の組み合わせが含まれる。遺伝子に基づく論理ゲートを実行するための特に興味深いツールが「転写ターゲティング」であり、これは、（１）において定義されるように、「．．．、特定の細胞集団における治療遺伝子の発現が、遺伝子を標的細胞の状態に特異的なプロモーターの下流側に配置することによって調節されるアプローチの使用を伴う」。
【0003】
最近の研究において、Ｎｉｓｓｉｍら（２）は、転写ターゲティングの潜在的可能性を、論理ＡＮＤゲートとして働くＲＮＡ型遺伝子回路を作製するための２つの合成プロモーターを考案することによって明らかにしている。２つのプロモーター（Ｐ１およびＰ２）を慎重に選択することによって、著者らはその後、このシステムを、Ｐ１およびＰ２の両プロモーターが活性である体内の唯一の細胞としてのがん細胞に４成分の免疫調節カセットの発現を限定するために用いた。このシステムでは、その４つの遺伝子の発現を制御するマスター転写因子（ＴＦ、出力、すなわち、目的とする遺伝子（ＧＯＩ））の発現が、その２つの合成プロモーターの一方によってそれぞれが駆動される２つの別々のモジュールの協調した活性によって支配される。
【0004】
しかしながら、このタイプの回路において用いられる戦略は、その２つのプロモーターの一方のみが活性であるときにおけるＧＯＩのかなりの基礎的発現を必然的に許しており、そのような発現は様々な臨床応用においては、望まれない潜在的に有害な結果を引き起こす可能性がある。
【発明の概要】
【0005】
１つの態様において、本発明は、目的とする転写物を所定の細胞状態において生じさせるための合成核酸発現システムであって、（ａ）目的とする前記転写物の５’側フラグメントをコードする少なくとも１つのエクソンと、スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される第１のＲＮＡ配列とを含む第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列をコードする核酸配列に対して作動可能に連結される第１のプロモーターを含む第１の核酸配列、および（ｂ）目的とする前記転写物の３’側フラグメントをコードする少なくとも１つのエクソンと、スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される第２のＲＮＡ配列とを含む第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列をコードする核酸配列に対して作動可能に連結される第２のプロモーターを含む第２の核酸配列を含み、前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターが異なっており、各々が前記所定の細胞状態によって、または前記所定の細胞状態を特徴づける因子によって特異的に調節され、
スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される前記第１のＲＮＡ配列が標的配列を含み、スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される前記第２のＲＮＡ配列がガイド配列を含み、標的配列がガイド配列に対して相補的であり、標的配列のガイド配列へのハイブリダイゼーションがトランススプライシングを促進させ、かつ、標的配列およびガイド配列は前記所定の細胞状態の生来的トランスクリプトームのそれぞれの転写物との十分な塩基相補性を欠き、したがって前記所定の細胞状態の生来的トランスクリプトームの前記それぞれの転写物とのトランススプライシングを妨げ、
かつ、前記少なくとも１つのエクソンの各々が、不完全な目的とする転写物をコードし、前記第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列および第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列の組み合わされた／トランススプライシングされた少なくとも１つのエクソンを含むメッセンジャーＲＮＡが、完全な目的とする転写物をコードする、合成核酸発現システムを提供する。
スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される前記第１のＲＮＡ配列が標的配列を含み、スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される前記第２のＲＮＡ配列がガイド配列を含み、標的配列がガイド配列に対して相補的であり、標的配列のガイド配列へのハイブリダイゼーションがトランススプライシングを促進させ、かつ、標的配列およびガイド配列は前記所定の細胞状態の生来的トランスクリプトームのそれぞれの転写物との十分な塩基相補性を欠き、したがって前記所定の細胞状態の生来的トランスクリプトームの前記それぞれの転写物とのトランススプライシングを妨げ、
かつ、前記少なくとも１つのエクソンの各々が、不完全な目的とする転写物をコードし、前記第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列および第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列の組み合わされた／トランススプライシングされた少なくとも１つのエクソンを含むメッセンジャーＲＮＡが、完全な目的とする転写物をコードする、合成核酸発現システムを提供する。
【0006】
別の態様において、本発明は、目的とする転写物を生じさせるための合成核酸発現システムであって、（ａ）目的とする前記転写物の５’側フラグメントをコードする少なくとも１つのエクソンを含む第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列に対して作動可能に連結される第１のプロモーターを含む第１の核酸配列、および（ｂ）目的とする前記転写物の３’側フラグメントをコードする少なくとも１つのエクソンを含む第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列に対して作動可能に連結される第２のプロモーターを含む第２の核酸配列を含み、前記少なくとも１つのエクソンの各々が、不完全な目的とする転写物をコードし、かつ、前記第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列および第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列の組み合わされた／トランススプライシングされた少なくとも１つのエクソンが、完全な目的とする転写物をコードする、合成核酸発現システムを提供する。
【0007】
さらに別の態様において、本発明は、上記実施形態のいずれか１つに記載の合成発現システムの第１の核酸配列（ａ）および／または第２の核酸配列（ｂ）を含む組成物またはキットを提供する。
【0008】
なおも別の態様において、本発明は、上記実施形態のいずれか１つに記載の合成発現システムの第１の核酸配列（ａ）および／または第２の核酸配列（ｂ）を含むベクターを提供する。すなわち、組成物またはベクターは（ａ）を単独で含む、または（ｂ）を単独で含む、または（ａ）および（ｂ）の両方を含む。
【0009】
さらなる態様において、本発明は、上記実施形態のいずれか１つに記載の合成発現システムを含む真核生物細胞を提供する。
【0010】
さらにさらなる態様において、本発明は、目的とする転写物を真核生物細胞において発現させる方法であって、前記真核生物細胞に上記実施形態のいずれか１つに記載の合成発現システムの第１の核酸配列（ａ）および第２の核酸配列（ｂ）を導入すること、または前記真核生物細胞に上記実施形態のいずれか１つに記載の少なくとも１つのベクターを導入することを含む方法を提供する。
【0011】
なおもさらなる態様において、本発明は、細胞状態に伴う、または該細胞状態によって引き起こされる疾患に罹患する患者を処置するための方法であって、前記患者の細胞を前記患者に対する上記実施形態に記載の少なくとも１つのベクターと接触させることを含み、前記第１のプロモーターおよび第２のプロモーターの各々が独立して前記細胞状態によって特異的に調節され、かつ、目的とする前記転写物が、前記疾患の処置を容易にする転写物産物をコードし、それにより、目的とする前記転写物を前記細胞状態においてだけで発現させ、前記疾患を処置する、方法を提供する。
【0012】
さらなる態様において、本発明は、２つ以上のベクターがインビトロで導入される真核生物細胞を選択するための方法であって、上記実施形態のいずれか１つに記載の２つの異なるベクターを施すことを含み、前記２つのベクターの一方が第１の核酸配列（ａ）を含み、しかし第２の核酸配列（ｂ）を含まず、前記２つのベクターの他方が第２の核酸配列（ｂ）を含み、しかし第１の核酸配列（ａ）を含まず、目的とする前記転写物が、細胞生存のために必須である転写物産物、または検出可能な遺伝子産物をコードする、方法を提供する。
【図面の簡単な説明】
【0013】
特許ファイルまたは出願ファイルには、着色して作成された図面が少なくとも１つ含まれる。着色図面と一緒での本特許公報または本特許出願公開公報の複写物が請求および必要な手数料の支払いにより当局によって提供される。
【0014】
【図1】（２）に基づく、提案されたトランススプライシング支配回路の概要を示す。ＧＯＩ、目的とする遺伝子；Ｅｘ、エクソン。
【図2】典型的なイントロンの概略図を示す（ｈｔｔｐｓ：／／ｂｉｏｌｏｇｙｄｉｃｔｉｏｎａｒｙ．ｎｅｔ／ｉｎｔｒｏｎ／からの引用）。
【図3A】ＳｎａｐＧｅｎｅソフトウェアを用いて描かれるような実施例で使用されるモジュール（ＴＳ１）のマップを示す。ＳＳＸ１Ｐ、ＳＳＸ１Ｐプロモーター（２）；ＫＯＺＡＫ、最適化翻訳開始コドンおよび周囲ヌクレオチド；ｍＫ－Ｅｘ１、ｍＫａｔｅ２遺伝子のエクソン１；ｍｉＲ１型Ｍｖ３イントロン、モジュールＴＳ２に対するＴＳ誘導配列として役立たせるための５’側基礎ステムを含む、Ｎｉｓｓｉｍら（２）によって用いられる人工イントロン。この配列の後には、（２）における第１モジュールの３４ｂｐのリンカーと、ＨＳＶ１－ｐＡ、すなわち、単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）１型のポリＡ部位とが続く。
【図3B】ＳｎａｐＧｅｎｅソフトウェアを用いて描かれるような実施例で使用されるモジュール（ＴＳ２）のマップを示す。このモジュールは、モジュールＴＳ１の転写物との最適な標的化されたＴＳを容易にして、無傷のｍＫａｔｅ２コード配列を生成させるために設計される。Ｈ２Ａ１ｐ、Ｈ２Ａ１ｐプロモーター（２）；ｍｉＲ１ ＡＳ鎖、ＴＳ１ＴＳ結合ドメイン（ＢＤ）としての３’側基礎ステムと、完全なアクセプタースプライス部位とを含む２１９ｂｐのｍｉＲ１イントロン；ｍＫ－Ｅｘ２、ｍＫａｔｅ２のエクソン２。
【図3C】ＳｎａｐＧｅｎｅソフトウェアを用いて描かれるような実施例で使用されるモジュール（ＴＳ１１）のマップを示す。ＡＦＰ、アルファ－フェトプロテイン；ＢＤ、結合ドメイン。
【図3D】ＳｎａｐＧｅｎｅソフトウェアを用いて描かれるような実施例で使用されるモジュール（ＴＳ１２）のマップを示す。このモジュールは、モジュールＴＳ１１の転写物との最適な標的化されたＴＳを容易にして、無傷のｍＫａｔｅ２コード配列を生成させるために設計される。ＢＰ、分岐点；Ａｃｃ ＳＳ、アクセプタースプライス部位。
【図4】新しい２モジュール型回路の機能を確認する実験の結果を示す。ＨＥＫ２９３Ｔ細胞（１０５個）を、ＦｕＧＥＮＥ ＨＤ試薬を使用して、モジュールＴＳ１プラスミド、モジュールＴＳ２プラスミド、モジュールＴＳ１１プラスミドまたはモジュールＴＳ１２プラスミドのいずれか単独によりそれぞれを１μｇで、あるいは各対の両方のプラスミド（ＴＳ１＋ＴＳ２、またはＴＳ１１＋ＴＳ１２）によりトランスフェクションした。無関係なＤＮＡを使用して、ＤＮＡの総量をそれぞれ１回のトランスフェクションにおいて２μｇに整えた。無関係なＤＮＡ（模擬）を陰性コントロールとして使用し、ｍＫａｔｅ２をコードするプラスミドｐＬＮ７４を、トランスフェクション収率を評価するために使用した。２つの独立した実験の結果が、ｍＫａｔｅ２蛍光についてのフローサイトメトリー分析によって求められるようなｍＫａｔｅ２陽性細胞の％として、それぞれのドットプロットに従って示される。トランスフェクション細胞をトランスフェクション後４８時間で調製し、ＦＡＣＳ（Ａｔｔｕｎｅ ＮｘＴ、Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）によって分析した。
【図5】トランススプライシングＡＮＤゲート効率の分析を示す。元となる構築物－サンプル１（左から２番目）に対する、異なる３’側のアクセプター部位（サンプル２～４）または結合ドメイン配列（サンプル５～２３）を有するトランススプライシングＡＮＤゲートの新しい構造の活性。陰性コントロール；ＮＴ、サンプル２３～２４。値は３回の反復実験からの平均加重メジアンｍＫＡｔｅ２（ＣＰＳ）±ｓ．ｄである。ＣＰＳ、カウント数／秒、ＮＴ、非処理。
【発明の詳細な説明】
【0015】
電子回路とは異なり、生物学的システムでは、バイナリー出力をもたらすことができるバイナリー入力は、Ｎｉｓｓｉｍら（上掲）によって明らかにされるように、生じさせることが困難である：これは、モジュール１のデフォルト状態が実際には所望されるような「０」ではなく、むしろ減衰した「１」であるからである。課題は、この戦略の安全性を最適化し、その結果、モジュール１のデフォルト状態が実際に０であるようにすることである。
【0016】
本発明は、ｍＲＮＡのトランススプライシング（ＴＳ）の現象を利用することによって、すなわち、異なるｍＲＮＡ種からのエクソンの二分子結合を利用することによってこの課題に対処する。なお、この現象は数多くの生物において十分に裏づけされており、現在、遺伝性または後天性の遺伝子障害を処置するために欠陥エクソンを取り換えるために詳しく研究されている（３）。ＴＳを、トランススプライシングされることになるエクソンに隣接する対応イントロンの間での塩基対形成を促進させることによって、事前に選択された転写物に対して標的化することができる（これは「標的化ＴＳ」として示される）（例えば、（４～６）および本発明者自身の以前の成果（７）を参照のこと）。
【0017】
本発明によって対処される別の課題が、二重トランスフェクション細胞についての選択を行うために一般に使用される抗生物質の不安定性などの難題に悩む、２つの異なるＤＮＡ発現ベクターが導入された真核生物細胞の選択である。
【0018】
Ｎｉｓｓｉｍらと同様に、本発明は２モジュール型システムを提供する（図１）。モジュール１は、プロモーターＰ１によって駆動されるものであり、翻訳開始コドンを含むＴＦ（または任意のＧＯＩ）の５’末端（これはエクソン１として示される）と、その後にＴＳ「標的」イントロンとをコードする。極めて重要なことに、所望の「０」状態を保証すると、成熟型の潜在的に有害なタンパク質がこのモジュールから全く翻訳され得ない。モジュール２は、プロモーターＰ２によって駆動されるものであり、ＴＳ「ガイド」イントロンと、それに続く、タンパク質の残り部分をコードするエクソン２とを含む。同様に、モジュール２は機能的タンパク質を何ら産生させることができず、単独であるとき、モジュール２もまた、永続的に状態「０」である。モジュール２は、利益をもたらすＴＳ事象についての可能性を増大させるようにＴＳガイド配列の縦列反復を有することができる。この設計を使用すると、システムは、Ｐ１およびＰ２の両プロモーターの同時機能に完全に依存するようになる：すなわち、無傷なＴＦまたはどのようなＧＯＩであれそのポリペプチド産物が、プロモーターＰ１のみまたはプロモーターＰ２のみが活性である細胞において翻訳されることの危険性が完全に回避される。
【0019】
標的細胞における標的配列が、矯正されるべき内因性遺伝子の転写物であるとき、トランススプライシングの「従来」使用に直面する主要な技術的課題は、どのようにしてシススプライシングとうまく競合させるかである（８）。ここで提案されるようなトランススプライシングを適用するとき、標的転写物が外因性遺伝子によってコードされる場合、シススプライシングを完全に回避することができる。これを、効率的なスプライシングプロセスを完了させるために必須である３つの基本的なイントロンエレメント、すなわち、アクセプタースプライス部位、ポリピリミジン域および分岐点を標的遺伝子からなくすことによって達成することができる（図２を参照のこと）。
【0020】
本発明の合成核酸発現システムは、目的とする転写物の制御された発現を、異なるプレｍＲＮＡ配列に分けられる２つ以上の不完全な部分にその配列を分割することによって可能にする基盤技術である。したがって、二重モジュールシステムに関して上記で説明されるように、それぞれのプレｍＲＮＡ配列が別個のプロモーターの制御を受けることによって、２つのプレｍＲＮＡ配列の発現を、２つ以上のプロモーターの２つ以上の異なる入力が同時に存在する場合でのみ保証することができる；その後、トランススプライシングにより、これら２つ以上の配列が所望の転写物に結合される。
【0021】
この概念を、両方の入力が存在する細胞のみにおける目的とする転写物の特異的な発現のために、例えば、がん細胞の死を特異的に引き起こすタンパク質をがん患者におけるがん細胞において発現させるために、あるいは培養物における特異的な部分集団についての選択、例えば、骨髄から単離される集団における幹細胞または特異的免疫細胞などについての選択を行うために利用することができる。
【0022】
実際、論理ＡＮＤゲートにより制御されたトランススプライシングが、両方の入力が存在する細胞のみにおける目的とする転写物（この場合、（２）において使用される蛍光タンパク質ｍＫａｔｅ２）の完全に特異的な発現のために利用できることが本発明に従って見出されている。ＴＳを誘導するために使用されるイントロン配列のまさにその性質は重要でないことがさらに見出された。これは、本明細書中における首尾よく試験された多くの回路の各々が完全に異なるからである；試験された第１の回路の２つのモジュール（これらはＴＳ１およびＴＳ２と称される）において、これらのイントロン配列は、２つのｍＫａｔｅ２エクソンを隔てる元のイントロンに基づいており、「基本的」ＴＳ設計を表している。これとは異なって、試験された第２の回路を構成する２つのモジュール（ＴＳ１１およびＴＳ１２）におけるイントロン配列は、がん治療のための標的化ＴＳの効力を最大化することを目指した研究（８）においてＶｏｌｋｅｒらのグループによって行われる徹底的な分析に基づいている。さらに、従来の技術を使用して、本システムが、結合ドメインおよびスプライシングドメインのわずかな変化によって非常に効率的であるように調整できることが本明細書中に示されている。このことは、本発明の合成核酸発現システムが万能的であることを明らかにする。両方のモジュールにおけるＴＳ誘導エレメントおよびスプライシングエレメントの最適な構成が決定されると、この構成は、実際の治療用ＧＯＩ、所与の臨床応用のために選定されるプロモーターまたは標的細胞の正体にかかわらず、すべての可能な回路において役立たせるために好適である。
【0023】
上記を考慮すると、１つの態様において、本発明は、目的とする転写物を所定の細胞状態において生じさせるための合成核酸発現システムであって、（ａ）目的とする前記転写物の５’側フラグメントをコードする少なくとも１つのエクソンと、スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される第１のＲＮＡ配列とを含む第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列をコードする核酸配列に対して作動可能に連結される第１のプロモーターを含む第１の核酸配列、および（ｂ）目的とする前記転写物の３’側フラグメントをコードする少なくとも１つのエクソンと、スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される第２のＲＮＡ配列とを含む第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列をコードする核酸配列に対して作動可能に連結される第２のプロモーターを含む第２の核酸配列を含み、前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターが異なっており、各々が前記所定の細胞状態によって、または前記所定の細胞状態を特徴づける因子によって特異的に調節され、
スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される前記第１のＲＮＡ配列が標的配列を含み、スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される前記第２のＲＮＡ配列がガイド配列を含み、標的配列がガイド配列に対して相補的であり、標的配列のガイド配列へのハイブリダイゼーションがトランススプライシングを促進させ、かつ、標的配列およびガイド配列は前記所定の細胞状態の生来的トランスクリプトームのそれぞれの転写物との十分な塩基相補性を欠き、したがって前記所定の細胞状態の生来的トランスクリプトームの前記それぞれの転写物とのトランススプライシングを妨げ、
かつ、前記少なくとも１つのエクソンの各々が、不完全な目的とする転写物をコードし、前記第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列および第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列の組み合わされた／トランススプライシングされた少なくとも１つのエクソンを含むメッセンジャーＲＮＡが、完全な目的とする転写物をコードする、合成核酸発現システムを提供する。
スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される前記第１のＲＮＡ配列が標的配列を含み、スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される前記第２のＲＮＡ配列がガイド配列を含み、標的配列がガイド配列に対して相補的であり、標的配列のガイド配列へのハイブリダイゼーションがトランススプライシングを促進させ、かつ、標的配列およびガイド配列は前記所定の細胞状態の生来的トランスクリプトームのそれぞれの転写物との十分な塩基相補性を欠き、したがって前記所定の細胞状態の生来的トランスクリプトームの前記それぞれの転写物とのトランススプライシングを妨げ、
かつ、前記少なくとも１つのエクソンの各々が、不完全な目的とする転写物をコードし、前記第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列および第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列の組み合わされた／トランススプライシングされた少なくとも１つのエクソンを含むメッセンジャーＲＮＡが、完全な目的とする転写物をコードする、合成核酸発現システムを提供する。
【0024】
ある特定の実施形態において、前記少なくとも１つのエクソンの各々が、目的とする転写物をコードしない、または目的とする転写物を産生させることができない。
【0025】
ある特定の実施形態において、第１の核酸配列と、第２の核酸配列とが、同じ核酸分子に存在する。
【0026】
ある特定の実施形態において、第１の核酸配列および第２の核酸配列が別々の核酸分子に存在する。
【0027】
ある特定の実施形態において、上記実施形態のいずれか１つに記載の合成核酸発現システムは、プロモーターと、目的とする転写物の異なる不完全な転写物をそれぞれのエクソンがコードする少なくとも１つのエクソンを含むトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列とを各々が含む３つ、４つ、５つまたは６つの核酸配列あるいはそれよりも多い核酸配列を含む。前記３つ、４つ、５つ、６つの核酸配列またはより多いトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列の組み合わされた／トランススプライシングされた少なくとも１つのエクソンが、完全な目的とする転写物をコードする。
【0028】
代替において、２つのトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列は、それぞれのトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列における二次構造または三次構造が引き寄せるために互いに結合することができるであろう。
【0029】
ある特定の実施形態において、上記実施形態のいずれか１つに記載の合成発現システムは以下の少なくとも１つによって特徴づけられる：（ｉ）スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される第１のＲＮＡ配列は第１の核酸配列の３’末端またはその近くに位置し、スプライシングのためのドナー部位を含み、しかし、スプライシングのためのアクセプター部位を欠き、かつ、スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される第２のＲＮＡ配列は第２の核酸の５’末端またはその近くに位置し、スプライシングのためのアクセプター部位を含み、しかし、スプライシングのためのドナー部位を欠く；（ｉｉ）前記ガイド配列および前記標的配列の各々が、ヌクレオチド長さで約１０～約５００以上の間である結合部位配列を含む；（ｉｉｉ）スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される第１および第２のＲＮＡ配列は、前記ガイド配列および前記標的配列のハイブリダイゼーションを介して構造的に相互作用し、かつ、例えば、リボザイム機能などによって機能的に相互作用しない；（ｉｖ）前記第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列および前記第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列の各々が、内部結合配列および／または自己相補的配列を何ら有しない非構造化ヌクレオチドを含み、したがって、機能的リボザイムを形成するための正しい折り畳みのために要求される配列を欠く；または（ｖ）前記ガイド配列および前記標的配列の各々が結合部位配列を含み、前記ガイド配列の結合部位は前記標的配列の結合部位に関して少なくとも１つまたは複数のミスマッチヌクレオチドを有する：あるいは本発明の合成発現システムは（ｉ）～（ｖ）のうちの２つ以上の組み合わせによって特徴づけられる。
【0030】
上記実施形態のいずれか１つに記載の合成核酸発現システムは、第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列および第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列の両方が、第１のプロモーターおよび第２のプロモーターの各々の２つの異なる入力が同時に存在する場合でのみ転写されるという意味で、ブールＡＮＤゲートを提供する操作された遺伝子回路として働くことができる。
【0031】
ある特定の実施形態において、上記実施形態のいずれか１つに記載の第１の核酸配列の３’末端はスプライシングのためのドナー部位を含み、しかし、スプライシングのためのアクセプター部位を欠き、かつ、第２の核酸の５’末端はスプライシングのためのアクセプター部位を含み、しかし、スプライシングのためのドナー部位を欠き、ただし、この場合、分岐点および／またはポリピリミジン域が第１または第２の核酸配列の少なくとも１つに存在する。上記で指摘されるように、数個のイントロンが第１または第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列に存在するならば、トランススプライシングを促進させないイントロンが、効率的なスプライシングプロセスを完了させるために必須である機能的なイントロンエレメントを含む。
【0032】
上記実施形態のいずれか１つに記載の第１または第２の核酸配列の結合ドメインは、互いに完全にまたは部分的に相補的である標的配列またはガイド配列を含み、その結果として、それらの各々が結合部位配列を含み、この場合、結合部位配列はヌクレオチド長さで約１０～約１００、１０～約２００、１０～約３００、１０～約４００、または１０～約５００以上の間であり、例えば、ヌクレオチド長さで１０～２０、１０～３０、１０～４０、１０～５０、１０～６０、１０～６０、１０～７０、１０～８０、１０～９０、１０～１００、１０～１１０、１０～１２０、１０～１３０、１０～１４０、１０～１５０、１０～１６０、１０～１７０、１０～１８０、１０～１９０、１０～２００、１０～２１０、１０～２２０、１０～２３０、１０～２４０、１０～２５０、１０～２６０、１０～２７０、１０～２８０、１０～２９０、１０～３００、２０～３０、２０～４０、２０～５０、２０～６０、２０～６０、２０～７０、２０～８０、２０～９０、２０～１００、２０～１１０、２０～１２０、２０～１３０、２０～１４０、２０～１５０、２０～１６０、２０～１７０、２０～１８０、２０～１９０、２０～２００、２０～２１０、２０～２２０、２０～２３０、２０～２４０、２０～２５０、２０～２６０、２０～２７０、２０～２８０、２０～２９０、２０～３００、３０～４０、３０～５０、３０～６０、３０～６０、３０～７０、３０～８０、３０～９０、３０～１００、３０～１１０、３０～１２０、３０～１３０、３０～１４０、３０～１５０、３０～１６０、３０～１７０、３０～１８０、３０～１９０、３０～２００、３０～２１０、３０～２２０、３０～２３０、３０～２４０、３０～２５０、３０～２６０、３０～２７０、３０～２８０、３０～２９０、３０～３００、４０～５０、４０～６０、４０～６０、４０～７０、４０～８０、４０～９０、４０～１００、４０～１１０、４０～１２０、４０～１３０、４０～１４０、４０～１５０、４０～１６０、４０～１７０、４０～１８０、４０～１９０、４０～２００、４０～２１０、４０～２２０、４０～２３０、４０～２４０、４０～２５０、４０～２６０、４０～２７０、４０～２８０、４０～２９０、４０～３００、５０～６０、５０～６０、５０～７０、５０～８０、５０～９０、５０～１００、５０～１１０、５０～１２０、５０～１３０、５０～１４０、５０～１５０、５０～１６０、５０～１７０、５０～１８０、５０～１９０、５０～２００、５０～２１０、５０～２２０、５０～２３０、５０～２４０、５０～２５０、５０～２６０、５０～２７０、５０～２８０、５０～２９０、５０～３００、６０～７０、６０～８０、６０～９０、６０～１００、６０～１１０、６０～１２０、６０～１３０、６０～１４０、６０～１５０、６０～１６０、６０～１７０、６０～１８０、６０～１９０、６０～２００、６０～２１０、６０～２２０、６０～２３０、６０～２４０、６０～２５０、６０～２６０、６０～２７０、６０～２８０、６０～２９０、６０～３００、７０～８０、７０～９０、７０～１００、７０～１１０、７０～１２０、７０～１３０、７０～１４０、７０～１５０、７０～１６０、７０～１７０、７０～１８０、７０～１９０、７０～２００、７０～２１０、７０～２２０、７０～２３０、７０～２４０、７０～２５０、７０～２６０、７０～２７０、７０～２８０、７０～２９０、７０～３００、８０～９０、８０～１００、８０～１１０、８０～１２０、８０～１３０、８０～１４０、８０～１５０、８０～１６０、８０～１７０、８０～１８０、８０～１９０、８０～２００、８０～２１０、８０～２２０、８０～２３０、８０～２４０、８０～２５０、８０～２６０、８０～２７０、８０～２８０、８０～２９０、８０～３００、９０～１００、９０～１１０、９０～１２０、９０～１３０、９０～１４０、９０～１５０、９０～１６０、９０～１７０、９０～１８０、９０～１９０、９０～２００、９０～２１０、９０～２２０、９０～２３０、９０～２４０、９０～２５０、９０～２６０、９０～２７０、９０～２８０、９０～２９０、９０～３００、１００～１１０、１００～１２０、１００～１３０、１００～１４０、１００～１５０、１００～１６０、１００～１７０、１００～１８０、１００～１９０、１００～２００、１００～２１０、１００～２２０、１００～２３０、１００～２４０、１００～２５０、１００～２６０、１００～２７０、１００～２８０、１００～２９０、１００～３００、１１０～１２０、１１０～１３０、１１０～１４０、１１０～１５０、１１０～１６０、１１０～１７０、１１０～１８０、１１０～１９０、１１０～２００、１１０～２１０、１１０～２２０、１１０～２３０、１１０～２４０、１１０～２５０、１１０～２６０、１１０～２７０、１１０～２８０、１１０～２９０、１１０～３００、１２０～１３０、１２０～１４０、１２０～１５０、１２０～１６０、１２０～１７０、１２０～１８０、１２０～１９０、１２０～２００、１２０～２１０、１２０～２２０、１２０～２３０、１２０～２４０、１２０～２５０、１２０～２６０、１２０～２７０、１２０～２８０、１２０～２９０、１２０～３００、１３０～１４０、１３０～１５０、１３０～１６０、１３０～１７０、１３０～１８０、１３０～１９０、１３０～２００、１３０～２１０、１３０～２２０、１３０～２３０、１３０～２４０、１３０～２５０、１３０～２６０、１３０～２７０、１３０～２８０、１３０～２９０、１３０～３００、１４０～１５０、１４０～１６０、１４０～１７０、１４０～１８０、１４０～１９０、１４０～２００、１４０～２１０、１４０～２２０、１４０～２３０、１４０～２４０、１４０～２５０、１４０～２６０、１４０～２７０、１４０～２８０、１４０～２９０、１４０～３００、１５０～１６０、１５０～１７０、１５０～１８０、１５０～１９０、１５０～２００、１５０～２１０、１５０～２２０、１５０～２３０、１５０～２４０、１５０～２５０、１５０～２６０、１５０～２７０、１５０～２８０、１５０～２９０、１５０～３００、１６０～１７０、１６０～１８０、１６０～１９０、１６０～２００、１６０～２１０、１６０～２２０、１６０～２３０、１６０～２４０、１６０～２５０、１６０～２６０、１６０～２７０、１６０～２８０、１６０～２９０、１６０～３００、１７０～１８０、１７０～１９０、１７０～２００、１７０～２１０、１７０～２２０、１７０～２３０、１７０～２４０、１７０～２５０、１７０～２６０、１７０～２７０、１７０～２８０、１７０～２９０、１７０～３００、１８０～１９０、１８０～２００、１８０～２１０、１８０～２２０、１８０～２３０、１８０～２４０、１８０～２５０、１８０～２６０、１８０～２７０、１８０～２８０、１８０～２９０、１８０～３００、１９０～２００、１９０～２１０、１９０～２２０、１９０～２３０、１９０～２４０、１９０～２５０、１９０～２６０、１９０～２７０、１９０～２８０、１９０～２９０、１９０～３００、２００～２１０、２００～２２０、２００～２３０、２００～２４０、２００～２５０、２００～２６０、２００～２７０、２００～２８０、２００～２９０、２００～３００、２１０～２２０、２１０～２３０、２１０～２４０、２１０～２５０、２１０～２６０、２１０～２７０、２１０～２８０、２１０～２９０、２１０～３００、２２０～２３０、２２０～２４０、２２０～２５０、２２０～２６０、２２０～２７０、２２０～２８０、２２０～２９０、２２０～３００、２３０～２１０、２３０～２２０、２３０～２３０、２３０～２４０、２３０～２５０、２３０～２６０、２３０～２７０、２３０～２８０、２３０～２９０、２４０～２５０、２４０～２６０、２４０～２７０、２４０～２８０、２４０～２９０、２４０～３００、２５０～２６０、２５０～２７０、２５０～２８０、２５０～２９０、２５０～３００、２６０～２７０、２６０～２８０、２６０～２９０、２６０～３００、２７０～２８０、２７０～２９０、２７０～３００、２８０～２９０、２８０～３００、２９０～３００などである。ある特定の実施形態において、結合部位配列は長さが約２０～３０、２０～４０、２０～５０、２０～６０である。
【0033】
ある特定の実施形態において、結合部位は長さが約１０ヌクレオチド、２０ヌクレオチド、３０ヌクレオチド、４０ヌクレオチド、５０ヌクレオチド、６０ヌクレオチド、７０ヌクレオチド、８０ヌクレオチド、９０ヌクレオチド、１００ヌクレオチド、１１０ヌクレオチド、１２０ヌクレオチド、１３０ヌクレオチド、１４０ヌクレオチド、１５０ヌクレオチド、１６０ヌクレオチド、１７０ヌクレオチド、１８０ヌクレオチド、１９０ヌクレオチド、２００ヌクレオチド、２１０ヌクレオチド、２２０ヌクレオチド、２３０ヌクレオチド、２４０ヌクレオチド、２５０ヌクレオチド、２６０ヌクレオチド、２７０ヌクレオチド、２８０ヌクレオチド、２９０ヌクレオチド、または３００ヌクレオチドである。ある特定の実施形態において、結合部位配列はヌクレオチド長さで約５０である。
【0034】
結合ドメイン／部位のまさにその長さは、本発明のヌクレオチド配列の働きを左右するものではなく、例えば、下記の実施例において記載されるように、この技術分野において周知の方法を使用して容易に調整され得ることは強調されなければならない。さらに、結合ドメインに結合することができる転写物を標的細胞または細胞状態のゲノムがコードしないという意味で、結合ドメインは完全に合成であってもよいことに留意することは重要である。したがって、内因性転写物とのトランススプライシングの危険性が何ら存在しない。
【0035】
ある特定の実施形態において、また、Ｐｏｄｄａｒら（８）によれば、中央の２ヌクレオチドの標的ミスマッチが、上記実施形態のいずれか１つに記載の選択された結合ドメイン（ＢＤ）の中に実行され、これにより、ミスマッチが存在するＢＤ（ｍＢＤ）を生じさせている。これは、ＲＮＡに作用するアデノシンデアミナーゼ（ＡＤＡＲ）によるアデノシンのイノシンへの編集（Ａ→Ｉ編集）を含めてアンチセンス効果のきっかけとなり得るであろう長い核二本鎖ＲＮＡ の形成を防止するためである。
【0036】
ある特定の実施形態において、上記実施形態のいずれか１つに記載の（結合ドメインの）標的配列は、ガイド配列に対して、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０、３１、３２、３３、３４、３５、３６、３７、３８、３９、４０、４１、４２、４３、４４、４５、４６、４７、４８、４９、５０、５１、５２、５３、５４、５５、５６、５７、５８、５９、６０、６１、６２、６３、６４、６５、６６、６７、６８、６９、７０、７１、７２、７３、７４、７５、７６、７７、７８、７９、８０、８１、８２、８３、８４、８５、８６、８７、８８、８９、９０、９１、９２、９３、９４、９５、９６、９７、９８、９９、１００、１０１、１０２、１０３、１０４、１０５、１０６、１０７、１０８、１０９、１１０、１１１、１１２、１１３、１１４、１１５、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２１、１２２、１２３、１２４、１２５、１２６、１２７、１２８、１２９、１３０、１３１、１３２、１３３、１３４、１３５、１３６、１３７、１３８、１３９、１４０、１４１、１４２、１４３、１４４、１４５、１４６、１４７、１４８、１４９、または１５０のミスマッチを含む。
【0037】
ある特定の実施形態において、標的配列は、ガイド配列に対して、少なくとも１％、２％、３％、４％、５％、６％、７％、８％、９％、１０％、１５％、２０％、２５％、３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、または１００％相補的であるヌクレオチド配列を含む。
【0038】
ある特定の実施形態において、上記実施形態のいずれか１つに記載のスプライシング部位は、この技術分野では周知の、５’側スプライスドナー部位および３’側スプライス領域についてのコンセンサス配列の近くに設計される（Ｍｏｏｒｅ他、１９９３、Ｔｈｅ ＲＮＡ Ｗｏｒｌｄ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、ｐ．３０３－３５８；および（８）を参照のこと）。加えて、５’側ドナースプライス部位および３’側スプライス領域として機能する能力を維持する改変されたコンセンサス配列が本発明の実施において使用される場合がある。簡単に記載すると、５’側スプライス部位のコンセンサス配列は、ＡＧ／ＧＵＲＡＧＵ（式中、Ａ＝アデノシン、Ｕ＝ウラシル、Ｇ＝グアニン、Ｃ＝シトシン、Ｒ＝プリン、／＝スプライス部位）である。３’側スプライス部位は、３つの別個の配列エレメント、すなわち、分岐点または分岐部位、ポリピリミジン域、および３’側コンセンサス配列（ＹＡＧ）からなる。哺乳動物における分岐点のコンセンサス配列がＹＮＹＵＲＡＣ（Ｙ＝ピリミジン；Ｎ＝任意のヌクレオチド）である。下線が引かれたＡが分岐形成部位である。ポリピリミジン域は、分岐点とスプライス部位アクセプターとの間に位置し、異なる分岐点の利用および３’側スプライス部位の認識のために重要である。最近では、Ｕ１２依存性イントロンと呼ばれるプレｍＲＮＡイントロン（その多くがジヌクレオチドＡＵで始まり、ジヌクレオチドＡＣで終わる）が記載されている。Ｕ１２依存性イントロン配列、同様にまた、スプライスアクセプター／ドナー配列として機能するどのような配列もまた、本発明のプレｍＲＮＡトランススプライシング分子（ＲＴＭ）を生成させるために使用される場合がある。
【0039】
用語「プレｍＲＮＡトランススプライシング分子」（ＲＴＭ）は、本明細書中では用語「合成核酸発現システム」およびその核酸配列成分と交換可能に使用される。
【0040】
イントロンスプライスエンハンサー、分岐点またはポリピリミジン域がさらに、必要に応じてＲＴＭに導入される場合がある。
【0041】
アクセプタースプライス部位を標的結合ドメインから隔てるためのスペーサー／リンカー領域もまた、ＲＴＭに含まれる場合がある。スペーサー／リンカー領域は、例えば、（ｉ）スプライシングされなかったＲＴＭの翻訳をどのようなものであれ阻止するために機能するであろう終止コドン、および／または（ｉｉ）標的プレｍＲＮＡに対するトランススプライシングを増強する配列などの特徴を含むように設計される場合がある。
【0042】
適切な３’側アクセプター部位の選定は簡単明瞭であり、適切な３’側アクセプター部位は、この技術分野において周知の方法を使用して、例えば、下記の実施例１および実施例２において例示される方法などを使用して、最適な産出をもたらすように容易に調整することができる。手短に言えば、検出可能なタンパク質、例えば、蛍光タンパク質などが、本発明の２つの組み合わされた核酸配列によってコードされ、選ばれた宿主細胞において発現させられる。蛍光強度はトランススプライシングの効率を反映しており、例えば、蛍光活性化細胞選別（ＦＡＣＳ）装置で測定される。この方法は、以下の限定されない３’側アクセプター部位が使用された下記の実施例において示されるようなスプライス部位および結合ドメインにおける変化体の膨大な量の分析を容易にする：（１）アルファ－フェトプロテイン（ＡＦＰ；配列番号１７）；（２）コンセンサス（配列番号１８）；（３）単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ－Ｉ、配列番号１９）；および（４）ｐＨＡ１６（変異型コンセンサス配列、配列番号２０）。３’側アクセプター部位配列と結合ドメイン配列／立体配置とのある特定の組み合わせがトランススプライシング効率における最大で４倍の増大をもたらし得ることが見出された（実施例２）。
【0043】
ある特定の実施形態において、上記実施形態のいずれか１つに記載の所定の細胞状態が、所定の細胞タイプ、組織タイプ、細胞周期時期、代謝状態および病理学的状態から選択される。
【0044】
非常に多数の転写因子が病理学的状態および代謝状態の期間中に調節され、本発明は、そのような転写因子と結合することができるすべての転写調節配列に関連する細胞状態を意図することに留意しなければならない。既知の疾患調節された転写調節配列に関連する細胞状態の限定されない例には、がん、神経変性疾患、代謝疾患および炎症が含まれる。既知の疾患調節された転写調節配列を有する代謝状態の例には、高グルコース濃度または低グルコース濃度、あるいは増殖および／またはは老化の状態がある。
【0045】
プロモーターは一般には、単一ＲＮＡの転写をその下流側のＤＮＡから開始させるタンパク質が結合するＤＮＡの配列として既知である。この用語には、本明細書中で使用される場合、古典的プロモーターの上流側または下流側の配列、例えば、転写の調節に寄与するエンハンサーなどが含まれる場合がある。
【0046】
ある特定の実施形態において、上記実施形態のいずれか１つに記載の前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が独立して前記事前に定められた細胞状態によって特異的に誘導され、活性化され、または抑制される。
【0047】
用語「誘導されるプロモーター」または用語「誘導性プロモーター」は、本明細書中で使用される場合、合成因子などの特異的な外的シグナルが結合した後でＲＮＡ分子の転写を開始させるプロモーターを示す。
【0048】
用語「活性化されるプロモーター」または用語「活性化可能なプロモーター」は、本明細書中で使用される場合、内因性因子などの特異的な内因性シグナルが結合した後でＲＮＡ分子の転写を開始させるプロモーターを示す。
【0049】
用語「抑制されるプロモーター」または用語「抑制性プロモーター」は、本明細書中で使用される場合、ＲＮＡ分子の転写を特定の細胞状態においてダウンレギュレーションするプロモーターを示す。
【0050】
ある特定の実施形態において、前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が誘導性プロモーターまたは活性化可能なプロモーターである。
【0051】
用語「に対して作動可能に連結されるプロモーター」は、本明細書中で使用される場合、下流側遺伝子の発現を促進させること／調節すること／開始させることができるプロモーターを示す。
【0052】
ある特定の実施形態において、上記実施形態のいずれか１つに記載の前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が、細胞タイプ特異的プロモーター、組織特異的プロモーター、疾患特異的プロモーター、または細胞周期応答性プロモーターである。
【0053】
ある特定の実施形態において、前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が疾患特異的プロモーターであり、例えば、腫瘍特異的プロモーター（例えば、良性腫瘍特異的プロモーターまたは悪性腫瘍特異的プロモーター）などである。
【0054】
ある特定の実施形態において、上記実施形態のいずれか１つに記載のプロモーターが生来的／内因性プロモーターである。
【0055】
特定の所望された結果のために選定される適切なプロモーターは本発明の具体的な応用を容易にしており、しかし、本発明の論理ＡＮＤゲートによってもたらされる安全な特異的発現、または結合ドメインおよびスプライシング部位によってもたらされる効率的なトランススプライシングのどちらにも影響を及ぼさない。代謝状態または病理学的状態によって調節されるプロモーターがこの技術分野では周知であり、また、細胞状態を特定のプロモーターの活性に基づいて検出するための方法が疾患について、例えば、がんなどについて開発されているので（９～１１）、プロモーターの選定は簡単明瞭である。
【0056】
組織特異的または細胞特異的なプロモーターの例が、例えば、組織特異的プロモーターが、Ｂ細胞、単球性細胞、白血球、マクロファージ、筋肉、膵腺房細胞、内皮細胞、星状膠細胞および肺などの具体的なタイプの細胞または組織において活性であることを教示するＩｎｖｉｖｏＧｅｎｅウェブサイトにおいて見出される場合がある。したがって、限定されない例として、以下の組織特異的プロモーターが本発明との関連で使用される場合がある：Ｂ２９プロモーター（Ｂ細胞）、ＣＤ１４プロモーター（単球性細胞）、ＣＤ４３プロモーター（白血球＆血小板）、ＣＤ４５プロモーター（造血細胞）、ＣＤ６８プロモーター（マクロファージ）、デスミンプロモーター（筋肉）、エラスターゼ－１プロモーター（膵腺房細胞）、エンドグリンプロモーター（内皮細胞）、フィブロネクチンプロモーター（分化中の細胞、治癒中の組織）、Ｆｌｔ－１プロモーター（内皮細胞）、ＧＦＡＰプロモーター（星状膠細胞）、ＧＰＩＩｂプロモーター（巨核球）、ＩＣＡＭ－２プロモーター（内皮細胞）、ＩＮＦ－βプロモーター（造血細胞）、Ｍｂプロモーター（筋肉）、ＮｐｈｓＩプロモーター（有足細胞）、ＯＧ－２プロモーター（骨芽細胞、オドンブラスト（ｏｄｏｎｂｌａｓｔ））、ＳＰ－Ｂプロモーター（肺）、ＳＹＮ１プロモーター（ニューロン）、ＷＡＳＰプロモーター（造血細胞）。
【0057】
疾患特異的プロモーターの一例が腫瘍特異的プロモーターであり、例えば、黒色腫特異的プロモーター（例えば、Ｐｌｅｓｈｋａｎら（１２）によって教示されるような黒色腫特異的プロモーター）などである。具体的な例には、ヒトチロシナーゼ遺伝子、黒色腫阻害活性（ＭＩＡ）遺伝子およびメラコルチン受容体遺伝子のプロモーターが含まれる。
【0058】
がんの遺伝子治療において使用される組織特異的プロモーターで、本発明の発現システムにおいて使用することができる組織特異的プロモーターの他の例は、前立腺特異的抗原（ＰＳＡ；前立腺）、前立腺特異的膜抗原（ＰＳＭＡ；前立腺および他の腫瘍の血管内皮）、プロバシン（前立腺）、ヒト腺性カリクレイン（ｈＫ２；前立腺）、グリア線維酸性タンパク質（ＧＦＡＰ；グリア由来／神経膠腫）、ミエリン塩基性タンパク質（ＭＢＰ；グリア由来およびアスクロサイト（ａｓｃｒｏｃｙｔｅ）／神経膠腫）、ミエリンプロテオリピドタンパク質（グリア由来／神経膠腫）、神経特異的エノラーゼ（ニューロン由来／ＳＣＬＣ）、ニューロンの特異的シナプシン１（ニューロン由来）、Ｎｃｘ／Ｈｏｘ１１Ｌ．１（神経堤由来細胞／神経芽細胞腫、アルブミン（肝臓／肝細胞癌）、サーファクタントタンパク質Ｂ（ＩＩ型肺胞細胞および気管支細胞／肺がん）、チログロブリン（甲状腺／甲状腺癌）、および卵巣特異的プロモーター（卵巣由来）（１３）である。
【0059】
上記実施形態のいずれか１つに記載の第１の核酸配列および第２の核酸配列において使用されることがある細胞周期転写調節配列の例示的な対が国際公開ＷＯ２００９／００７９８０において、また、１４～１７において見出される。
【0060】
疾患および組織特異的プロモーターを教示する上記参考文献の各々が、本明細書中に完全に開示されるかのように組み込まれる。
【0061】
効率的発現システムの設計はこの技術分野では周知である。例えば、本発明の発現システムは、転写が開始される速度を決定するＴＡＴＡボックスおよび他の上流側エレメント、同様にまた、最適な転写にそれらの組み合わせが寄与する種々のタイプのプロモーター、エンハンサーおよびポリアデニル化配列を含む場合がある（例えば、国際公開ＷＯ２００９／００７９８０を参照のこと）。
【0062】
ある特定の実施形態において、上記実施形態のいずれか１つに記載のプロモーターは合成プロモーターである。
【0063】
合成プロモーターを設計する技術は周知であり、例えば、（１８）およびそれに引用される刊行物に従って、本発明の第１の核酸配列および第２の核酸配列において使用することができる。手短に言えば、プロモーターは、転写因子のための結合部位であるシス作用エレメントの組み合わせからなるモジュール式であり、遺伝子の発現パターンを主として決定するのが、このプロモーター構造である。シス作用エレメントがその生来的なプロモーター状況から取り出され、合成プロモーターにおける基本的構成要素として使用されるとき、多くのシス作用エレメントがその活性を保持しているという観察によって、プロモーターのモジュール性が裏づけられる。したがって、本発明者らは、合成プロモーターを構築する際に使用するためのシス作用エレメントと、合成プロモーターをそれに基づいて構築するための多くの最小プロモーターとの大きいコレクションを有する。上記実施形態のいずれか１つに記載の核酸分子において使用され得るであろうさらなる合成プロモーターの例が、本明細書中に完全に開示されるかのように参照によって組み込まれる米国特許出願公開第２０１７０００２３７８号（Ａ１）に開示される。
【0064】
ある特定の実施形態において、上記実施形態のいずれか１つに記載のプロモーターの各々は、本発明の合成核酸発現システムに含まれるどのような他のプロモーターとも異なっており、異なる入力シグナル／条件によって調節される。
【0065】
ある特定の実施形態において、上記実施形態のいずれか１つに記載の第１のプロモーターは第２のプロモーターと異なっており、第１のプロモーターおよび第２のプロモーターは、異なる入力シグナル／条件によって調節される／活性化される／誘導される。
【0066】
ある特定の実施形態において、上記実施形態のいずれか１つに記載の第２の核酸配列は１つのガイド配列の縦列反復を含む。
【0067】
どのような場合でも、上記実施形態のいずれか１つに記載の第１または第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列におけるエクソン（１つまたは複数）は、目的とする転写物とは異なる不完全な転写物をコードする。ある特定の実施形態において、不完全な目的とする転写物は非機能的な転写物である、または非機能的なタンパク質をコードする。
【0068】
ある特定の態様において、上記実施形態のいずれか１つに記載の目的とする転写物は、転写因子（例えば、合成転写因子）、ケモカイン、サイトカイン、チェックポイント阻害剤、栄養要求性マーカー、酵素、増殖因子、レポーター遺伝子、短いヘアピンＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）、またはマイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）をコードする。それぞれの可能性により、別個の実施形態が表される。合成転写因子の限定されない一例がＧＡＤであり、これは、酵母のＧＡＬ４ ＤＮＡ結合ドメインがウイルスのＶＰ１６転写活性化ドメインに融合されたものである。
【0069】
ある特定の実施形態において、前記第１の核酸配列および前記第２の核酸配列は同じ核酸分子に存在し、または前記第１の核酸配列および第２の核酸配列は別個の核酸分子に存在する；本発明の合成発現システムは以下の少なくとも１つによって特徴づけられる：（ｉ）スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される第１のＲＮＡ配列は第１の核酸配列の３’末端またはその近くに位置し、スプライシングのためのドナー部位を含み、しかし、スプライシングのためのアクセプター部位を欠き、かつ、スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される第２のＲＮＡ配列は第２の核酸の５’末端またはその近くに位置し、スプライシングのためのアクセプター部位を含み、しかし、スプライシングのためのドナー部位を欠く；（ｉｉ）前記ガイド配列および前記標的配列の各々が、ヌクレオチド長さで約１０～約５００以上の間である結合部位配列を含む；（ｉｉｉ）スプライセオソーム依存的トランススプライシングのために要求される第１および第２のＲＮＡ配列は、前記ガイド配列および前記標的配列のハイブリダイゼーションを介して構造的に相互作用し、かつ、例えば、リボザイム機能などによって機能的に相互作用しない；（ｉｖ）前記第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列および前記第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列の各々が、内部結合配列および／または自己相補的配列を何ら有しない非構造化ヌクレオチドを含み、したがって、機能的リボザイムを形成するための正しい折り畳みのために要求される配列を欠く；または（ｖ）前記ガイド配列および前記標的配列の各々が結合部位配列を含み、前記ガイド配列の結合部位は前記標的配列の結合部位に関して少なくとも１つまたは複数のミスマッチヌクレオチドを有する：あるいは、合成発現システムは（ｉ）～（ｖ）のうちの２つ以上の組み合わせによって特徴づけられる；前記所定の細胞状態が、所定の細胞タイプ、組織タイプ、細胞周期時期、代謝状態および病理学的状態から選択される；前記不完全な目的とする転写物は非機能的な転写物であり、または非機能的なタンパク質をコードする；かつ、目的とする前記転写物は、転写因子（例えば、合成転写因子）、ケモカイン、サイトカイン、チェックポイント阻害剤、栄養要求性マーカー、酵素、増殖因子、レポーター遺伝子、短いヘアピンＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）、またはマイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）をコードする。
【0070】
特定の実施形態において、前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々は独立して前記事前に定められた細胞状態によって特異的に誘導され、または活性化され、かつ、前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が、細胞タイプ特異的プロモーター、組織特異的プロモーター、疾患特異的プロモーター、または細胞周期応答性プロモーターである。
【0071】
特定の実施形態において、前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々は疾患特異的プロモーターであり、例えば、腫瘍特異的プロモーターなどである。
【0072】
本明細書中に開示される基盤技術は、特定の条件のもとにおけるインビトロでの転写物の制御された発現のために利用される場合がある。限定されない例において、本開示は、多数の抗生物質マーカーを必要とすることなく、真核生物細胞における多数のプラスミドの選択のために利用される場合がある。限定されない一例において、本発明は、例えば、６つの同時トランスフェクションされたプラスミドの選択を、わずか３つの抗生物質マーカーを使用して行うことを提供する。多数のトランスフェクション細胞の選択が、別個のプレｍＲＮＡ配列を別個のＤＮＡ分子にコードさせることによって達成される場合がある。別の一例において、その生存のために不可欠な要素の非存在下で成長する栄養要求性細胞培養を、両方のＤＮＡ分子が存在する場合にだけ発現される、成長を可能にする遺伝子産物をコードする多数のＤＮＡ分子によりトランスフェクションされる細胞について選択するために使用することができる。両方の場合において、これら多数の別個の不完全な転写物の転写を制御するプロモーターは、同一であり、かつ構成的でさえあることが可能である。
【0073】
したがって、別の態様において、本発明は、目的とする転写物を生じさせるための第２の合成核酸発現システムであって、（ａ）目的とする前記転写物の５’側フラグメントをコードする少なくとも１つのエクソンを含む第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列に対して作動可能に連結される第１のプロモーターを含む第１の核酸配列、および（ｂ）目的とする前記転写物の３’側フラグメントをコードする少なくとも１つのエクソンを含む第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列に対して作動可能に連結される第２のプロモーターを含む第２の核酸配列を含み、前記少なくとも１つのエクソンの各々が、不完全な目的とする転写物をコードし、かつ、前記第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列および第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列の組み合わされた／トランススプライシングされた少なくとも１つのエクソンが、完全な目的とする転写物をコードする、第２の合成核酸発現システムを提供する。
【0074】
したがって、上記第２の発現システムは、完全な目的とする転写物の産生を、目的とする前記転写物の５’側フラグメントをコードする前記少なくとも１つのエクソンと、目的とする前記転写物の３’側フラグメントをコードする前記少なくとも１つのエクソンとのトランススプライシングによって可能にする。
【0075】
ある特定の実施形態において、第２の合成核酸発現システムは、プロモーターと、目的とする転写物の異なる不完全な転写物をそれぞれのエクソンがコードする少なくとも１つのエクソンを含むトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列とを各々が含む３つ、４つ、５つまたは６つの核酸配列あるいはそれ以上の核酸配列を含む。前記３つ、４つ、５つ、６つまたはそれ以上のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列の組み合わされた／トランススプライシングされた少なくとも１つのエクソンが、完全な目的とする転写物をコードする。
【0076】
ある特定の実施形態において、上記実施形態のいずれか１つに記載のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列はさらに、１つのトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列が別のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列に結合することを可能にする、したがってトランススプライシングを容易にする核酸配列を含む。
【0077】
特に、前記第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列および第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列の各々がさらに、前記第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列が前記第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列に結合することを可能にする、したがってトランススプライシングを容易にする核酸配列を含む。
【0078】
本発明の合成核酸発現システムのいずれか１つに含まれるトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列のいずれか１つが２つ以上のエクソンを含むとき、これらのエクソンの間にはイントロンが点在しており、したがって、どのような構成であれ、効率的なシススプライシングプロセスを完了させるために必須である機能的なイントロンエレメント（アクセプタースプライス部位およびドナースプライス部位、ポリピリミジン域および分岐点）が、イントロンの切り取りを容易にするこれらのイントロンに常に存在するであろうことが理解されなければならない。しかしながら、第１または第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列の内部におけるシススプライシングは、完全な目的とする転写物を含むＲＮＡ、または完全な目的とする転写物をコードするＲＮＡをもたらすことができないこともまた明らかになっている。さらに、下記において説明されるように、第１または第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列は、トランススプライシングのために必要なイントロンのシススプライシングを防止するように設計される。
【0079】
上記実施形態のいずれか１つに記載の核酸構築物は、例えば、適切な配列のクローニングおよび制限、または、Ｎａｒａｎｇ他（１９７９）、Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．６８：９０－９９のホスホトリエステル法、Ｂｒｏｗｎ他（１９７９）、Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．６８：１０９－１５１のホスホジエステル法、Ｂｅａｕｃａｇｅ他（１９８１）、Ｔｅｔｒａ．Ｌｅｔｔ．、２２：１８５９－１８６２のジエチルホスホルアミダイト法による直接科学的合成、および米国特許第４，４５８，０６６号の固体支持体法を含めてどのような方法であれ好適な方法によって調製される場合がある。
【0080】
さらに別の態様において、本発明は、上記実施形態のいずれか１つに記載の合成発現システムの第１の核酸配列（ａ）および／または第２の核酸配列（ｂ）を含む組成物またはキットを提供する。
【0081】
ＭａｔｕｓｋｏｖａおよびＤｕｒｉｎｉｋｏｖａ（１９）は、導入遺伝子の細胞内への送達のために、ウイルス性および非ウイルス性の２つのシステムがあることを教示する。非ウイルス性手法が、ポリマーナノ粒子、脂質、リン酸カルシウム、ＤＮＡ被覆微小粒子またはｍＲＮＡのエレクトロポレーション／ヌクレオフェクションまたはバイオリスティック送達によって表される。非ウイルス性手法はまた、トランスポゾンシステム、例えば、’’Ｓｌｅｅｐｉｎｇ Ｂｅａｕｔｙ’’として一般に既知のトランスポゾンシステムなどを提供する（Ｓｌｅｅｐｉｎｇ Ｂｅａｕｔｙトランスポゾンを使用するプロトコルについては、例えば、（２０）を参照のこと）。
【0082】
ウイルス性手法は、ＤＮＡが宿主細胞のクロマチンに組み込まれるか否かに依存して本発明に従って使用することができる２つの主要なタイプのベクターを提供する。レトロウイルスベクター、例えば、ガンマレトロウイルスまたはレンチウイルスに由来するレトロウイルスベクターなどは、組み込まれたプロウイルスとして核に存続し、細胞分裂とともに複製する。他のタイプのベクター（例えば、ヘルペスウイルスまたはアデノウイルスに由来するベクター）はエピソーム形態で細胞に留まる。
【0083】
なおも別の態様において、本発明は、上記実施形態のいずれか１つに記載の合成発現システムの第１の核酸配列（ａ）および／または第２の核酸配列（ｂ）を含むベクターを提供する。すなわち、組成物またはベクターは（ａ）を単独で含む、または（ｂ）を単独で含む、または（ａ）および（ｂ）の両方を含む。
【0084】
ある特定の実施形態において、ベクターは上記実施形態のいずれか１つに記載の合成発現システムの第１の核酸配列（ａ）または第２の核酸配列（ｂ）を含み、しかし第１の核酸配列（ａ）および第２の核酸配列（ｂ）の両方を含まない。
【0085】
ある特定の実施形態において、上記実施形態のいずれか１つに記載のベクターは、ＤＮＡベクター、例えば、プラスミドベクターまたはウイルスベクターなど、あるいは非ウイルス性ベクター、例えば、ポリマーナノ粒子、脂質、リン酸カルシウム、ＤＮＡ被覆微小粒子またはトランスポゾンなどである。
【0086】
ある特定の実施形態において、ＤＮＡベクターは、レトロウイルス、レンチウイルス、ガンマウイルス、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、ポックスウイルス、アルファウイルスおよびヘルペスウイルスからなる群から選択されるウイルスに由来する改変ウイルスから選択されるウイルスベクターである。
【0087】
さらなる態様において、本発明は、上記実施形態のいずれか１つに記載の合成発現システムを含む真核生物細胞を提供する。
【0088】
さらにさらなる態様において、本発明は、目的とする転写物を真核生物細胞において発現させる方法であって、前記真核生物細胞に上記実施形態のいずれか１つに記載の合成発現システムの第１の核酸配列（ａ）および第２の核酸配列（ｂ）を導入すること、または前記真核生物細胞に上記実施形態のいずれか１つに記載の少なくとも１つのベクターを導入することを含む方法を提供する。
【0089】
ある特定の実施形態において、上記実施形態のいずれか１つに記載の合成発現システムの第１の核酸配列（ａ）または第２の核酸配列（ｂ）、あるいは上記実施形態のいずれか１つに記載のベクターを含む組成物は、医薬的に許容され得るキャリアをさらに含む医薬組成物である。
【0090】
ある特定の実施形態において、前記導入することが、インビトロ、インビボまたはエクスビボで実施される。
【0091】
なおもさらなる態様において、本発明は、細胞状態に伴う、または該細胞状態によって引き起こされる疾患に罹患する患者、または前記患者から得られる細胞を処置する際における使用のための上記実施形態のいずれか１つに記載の少なくとも１つのベクターであって、前記使用が、前記患者の細胞を前記ベクターの少なくとも１つと接触させることを含み、前記第１のプロモーターおよび第２のプロモーターの各々が独立して前記細胞状態によって特異的に調節され、かつ、目的とする前記転写物が、前記疾患の処置を容易にする転写物産物をコードし、それにより、目的とする前記転写物を前記細胞状態においてだけで発現させ、前記疾患を処置する、ベクターを提供する。
【0092】
類似する態様において、本発明は、細胞状態に伴う、または該細胞状態によって引き起こされる疾患に罹患する患者を処置するための方法であって、前記患者の細胞を前記患者に対する上記実施形態のいずれか１つに記載の少なくとも１つのベクターと接触させることを含み、前記第１のプロモーターおよび第２のプロモーターの各々が独立して前記細胞状態によって特異的に調節され、かつ、目的とする前記転写物が、前記疾患の処置を容易にする転写物産物をコードし、それにより、目的とする前記転写物を前記細胞状態においてだけで発現させ、前記疾患を処置する、方法を提供する。
【0093】
別の類似する態様において、本発明は、細胞状態に伴う、または該細胞状態によって引き起こされる疾患に罹患する患者、または前記患者から得られる細胞を処置するための医薬品の製造における上記実施形態のいずれか１つに記載の少なくとも１つのベクターの使用であって、前記患者の細胞を前記ベクターの少なくとも１つと接触させることを含み、前記第１のプロモーターおよび第２のプロモーターの各々が独立して前記細胞状態によって特異的に調節され、かつ、目的とする前記転写物が、前記疾患の処置を容易にする転写物産物をコードし、それにより、目的とする前記転写物を前記細胞状態においてだけで発現させ、前記疾患を処置する、使用を提供する。
【0094】
ある特定の実施形態において、上記の使用または方法は、前記細胞を２つの異なるベクターと接触させることを含み、この場合、前記２つのベクターの一方が第１の核酸配列（ａ）を含み、しかし第２の核酸配列（ｂ）を含まず、前記２つのベクターの他方が第２の核酸配列（ｂ）を含み、しかし第１の核酸配列（ａ）を含まない。
【0095】
ある特定の実施形態において、前記接触させることが、インビトロ、インビボまたはエクスビボで実施される。
【0096】
接触させることがインビトロまたはエクスビボで実施される場合には、患者からの細胞または他の対象からの細胞が得られ、前記少なくとも１つのベクターと接触させられ、その後、患者に戻される（例えば、養子細胞移入療法）。したがって、少なくとも１つのベクターにより形質導入される細胞は、疾患を処置する際における使用のためのものであり、または疾患を処置するための医薬品の製造における使用のためのものである。
【0097】
接触させることがインビボで実施されることになった場合には、治療効果的な量の前記少なくとも１つのベクターが患者に投与され、ベクターがその部位で標的細胞と接触する。
【0098】
ある特定の実施形態において、細胞状態が、細胞タイプ、組織タイプ、細胞周期時期、代謝状態、病理学的状態、分化状態、エピジェネティック状態および活性化状態から選択される。
【0099】
ある特定の実施形態において、前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が独立して前記事前に定められた細胞状態によって特異的に誘導され、または活性化される。
【0100】
ある特定の実施形態において、前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が独立して、細胞タイプ特異的プロモーター、組織特異的プロモーター、疾患特異的プロモーター、分化状態特異的プロモーター、エピジェネティック状態特異的プロモーター、活性化状態特異的プロモーターおよび細胞周期応答性プロモーターから選択される。
【0101】
ある特定の実施形態において、第１のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列および第２のトランススプライシング可能なプレｍＲＮＡ配列におけるエクソン（１つまたは複数）は、目的とする転写物とは異なる不完全な転写物をコードし、この不完全な目的とする転写物は非機能的な転写物であり、または非機能的なタンパク質をコードする。
【0102】
ある特定の実施形態において、前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が疾患特異的プロモーターであり、例えば、腫瘍特異的プロモーターなどである。
【0103】
ある特定の実施形態において、患者はヒト患者である。
【0104】
ある特定の実施形態において、疾患はがんであり、前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が腫瘍特異的プロモーターである。
【0105】
ある特定の態様において、前記疾患の処置を容易にする転写物産物は、転写因子（例えば、合成転写因子）、ケモカイン、サイトカイン、チェックポイント阻害剤、酵素、増殖因子、レポーター遺伝子、短いヘアピンＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）、またはマイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）である。
【0106】
ある特定の実施形態において、上記方法は、前記細胞を２つの異なるベクターと接触させることを含み、この場合、前記２つのベクターの一方が第１の核酸配列（ａ）を含み、しかし第２の核酸配列（ｂ）を含まず、前記２つのベクターの他方が第２の核酸配列（ｂ）を含み、しかし第１の核酸配列（ａ）を含まず、前記接触させることが、インビトロ、インビボまたはエクスビボで実施され、前記細胞状態が、細胞タイプ、組織タイプ、細胞周期時期、代謝状態、病理学的状態、分化状態、エピジェネティック状態および活性化状態から選択され、前記疾患の処置を容易にする前記転写物産物が、転写因子（例えば、合成転写因子）、ケモカイン、サイトカイン、チェックポイント阻害剤、酵素、増殖因子、レポーター遺伝子、短いヘアピンＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）、またはマイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）である。
【0107】
ある特定の実施形態において、前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が独立して、前記事前に定められた細胞状態によって特異的に誘導され、または活性化され、あるいは前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が独立して、細胞タイプ特異的プロモーター、組織特異的プロモーター、疾患特異的プロモーター、分化状態特異的プロモーター、エピジェネティック状態特異的プロモーター、活性化状態特異的プロモーターまたは細胞周期応答性プロモーターから選択される。
【0108】
ある特定の実施形態において、前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が疾患特異的プロモーターであり、例えば、腫瘍特異的プロモーターなどであり、前記患者がヒト患者である。
【0109】
ある特定の実施形態において、疾患はがんであり、前記真核生物細胞が腫瘍細胞であり、前記第１のプロモーターおよび前記第２のプロモーターの各々が腫瘍特異的プロモーターである。
【0110】
さらなる態様において、本発明は、２つ以上のベクターがインビトロで導入される真核生物細胞を選択するための方法であって、上記実施形態のいずれか１つに記載の２つの異なるベクターを施すことを含み、前記２つのベクターの一方が第１の核酸配列（ａ）を含み、しかし第２の核酸配列（ｂ）を含まず、前記２つのベクターの他方が第２の核酸配列（ｂ）を含み、しかし第１の核酸配列（ａ）を含まず、目的とする前記転写物が、細胞生存のために必須である転写物産物、または検出可能な遺伝子産物をコードする、方法を提供する。
【0111】
ある特定の実施形態において、選択するための上記方法は、上記実施形態のいずれか１つに記載の３つ以上の異なるベクターを施すことを含み、この場合、それぞれのベクターが、他のベクターによって運ばれるどのような他の核酸配列とも異なるエクソンをコードする核酸配列を運び、それぞれのエクソンが、目的とする異なる不完全な転写物を含み、または目的とする異なる不完全な転写物をコードする。
【0112】
ある特定の実施形態において、選択するための上記方法において使用される前記第１のプロモーターおよび第２のプロモーターの各々が構成的プロモーターである。
【0113】
ある特定の実施形態において、前記第１のプロモーターおよび第２のプロモーターの各々が誘導性プロモーターまたは活性化可能なプロモーターである。誘導性プロモーターまたは活性化可能なプロモーターは同一である場合があり、または異なる場合があり、同一の入力または異なる入力によって調節される／誘導される／活性化される場合がある。
【0114】
ある特定の実施形態において、真核生物細胞は栄養要求体であり、細胞の生存のために必須である要素を欠く成長培地において成長し、細胞生存のために必須である前記遺伝子産物は栄養要求性マーカー（例えば、「一般に使用される栄養要求性マーカー」のもとでＷｉｋｉｐｅｄｉａにおいて教示されるようなもの）である。
【0115】
ある特定の実施形態において、検出可能な遺伝子産物は、酵素、例えば、ルシフェラーゼなど、または蛍光タンパク質、例えば、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）などである。
【0116】
ある特定の実施形態において、真核生物細胞は、酵母、マウス、ラット、昆虫、魚類、鳥類またはヒトの細胞である。
【0117】
（定義）
用語「核酸配列」は、本明細書中で使用される場合、当該配列それ自体を示し、また同様に、核酸配列を含む核酸分子を示す。例えば、核酸配列を含む合成核酸発現システムは、核酸配列を含む核酸分子を含む合成核酸発現システムと同義である。
用語「核酸配列」は、本明細書中で使用される場合、当該配列それ自体を示し、また同様に、核酸配列を含む核酸分子を示す。例えば、核酸配列を含む合成核酸発現システムは、核酸配列を含む核酸分子を含む合成核酸発現システムと同義である。
【0118】
本出願から成熟する特許の存続期間中には、多くの関連したプロモーター／発現産物／結合ドメイン／スプライス部位が発見されるであろうことが予想され、そして、用語「転写調節配列」、用語「結合ドメイン」、用語「スプライシング部位」、用語「アクセプター部位」、用語「ドナー部位」など、および用語「発現産物」の範囲は、すべてのそのような新しい配列およびポリペプチドを含むことが意図される。
【0119】
本明細書中で使用される場合、用語「対象」または用語「個体」または用語「動物」または用語「患者」または用語「哺乳動物」は、診断、予後診断または治療が所望される対象を何であれ示し、特に哺乳動物対象を示し、例えば、ヒトを示す。
【0120】
用語「処置する」は、本明細書中で使用される場合、所望の生理学的効果を得る手段を示す。効果は、疾患および／または該疾患に起因すると考えられる症状を部分的または完全に治癒させるという点で治療的である場合がある。この用語は、疾患を抑制すること、すなわち、その発症を停止させること、または疾患を改善すること、すなわち、疾患の退行を引き起こすことを示す。
【0121】
本発明による使用のための医薬組成物は、１つまたは複数の生理学的に許容され得るキャリアまたは賦形剤を使用して従来の様式で配合される場合がある。キャリア（１つまたは複数）は、組成物のそれ以外の成分との適合性があり、かつ、その受容者に対して有害ではないという意味で「許容され得る」ものでなければならない。
【0122】
投与方法には、非経口経路、例えば、静脈内経路、腹腔内経路、筋肉内経路、皮下経路、粘膜（例えば、経口、鼻腔内、口腔、膣、直腸、眼内）経路、クモ膜下腔内経路、局所経路および皮内経路が含まれるが、これらに限定されない。投与は全身的または局所的であることが可能である。ある特定の実施形態において、医薬組成物は経口投与のために適合化される。
【0123】
用語「キャリア」は、活性な薬剤が一緒に投与される希釈剤、補助剤、賦形剤またはビヒクルを示す。医薬組成物におけるキャリアは、結合剤、例えば、微結晶セルロース、ポリビニルピロリドン（ポリビドンまたはポビドン）、トラガカントゴム、ゼラチン、デンプン、ラクトースまたはラクトース一水和物など、崩壊剤、例えば、アルギン酸、トウモロコシデンプンおよび類似物など、滑剤または界面活性剤、例えば、ステアリン酸マグネシウムまたはラウリル硫酸ナトリウムなど、ならびに流動促進剤、例えば、コロイド状二酸化ケイ素などを含む場合がある。
【0124】
キャリア、投与様式、投薬形態物などの以下の例示は、キャリア、投与様式、投薬形態物などが本発明と一緒での使用のために選択されることがある既知の可能性として列挙される。しかしながら、当業者は、選択される所与の配合物および投与様式がどれも、所望の結果を達成することを判定するために最初に試験されなければならないことを理解するであろう。
【0125】
用語「治療効果的な量」は、本明細書中で使用される場合、組織、系、動物またはヒトの求められている生物学的応答または医学的応答、すなわち、細胞状態に伴う、または該細胞状態によって引き起こされる疾患（例えば、がんなど）の処置を誘発することになる核酸配列／分子またはベクターの量を意味する。この量は、とりわけ、処置されるべき状態のタイプおよび重篤度、ならびに治療計画に依存して、上記で記載されるような所望の治療効果を達成するために効果的でなければならない。治療効果的な量は典型的には、適切に設計された臨床試験（用量範囲研究）において決定され、当業者は、効果的な量を決定するためにそのような試験をいかにして適切に行うかを理解しているであろう。一般に知られているように、効果的な量は、受容体に対するリガンドの親和性、体内におけるその分布プロフィル、様々な薬理学的パラメーター（例えば、体内における半減期など）を含めて様々な要因に、また、もしあれば、望まれていない副作用に、ならびに年齢および性別その他などの要因に依存する。
【0126】
別途示されている場合を除き、本明細書において使用されるすべての数字は、すべての場合において用語「約」によって修飾されるとして理解されるものとする。したがって、反することが示されている場合を除き、本明細書において示される数値パラメーターは、本発明によって得られることになる所望の特性に依存して最大でプラス１０％またはマイナス１０％まで変化することがある近似値である。
【0127】
次に、本発明が以下の限定されない実施例によって例示される。
【実施例】
【0128】
実施例１．目的とする遺伝子の特異的かつ効率的な発現
全般的考慮事項。このプロジェクトにおける本発明者らの主な目的は、ＴＳに基づく本発明者らの新しい回路の概念実証を実際に示すこと、すなわち、生細胞の内部において以下のことを示すことであった：
全般的考慮事項。このプロジェクトにおける本発明者らの主な目的は、ＴＳに基づく本発明者らの新しい回路の概念実証を実際に示すこと、すなわち、生細胞の内部において以下のことを示すことであった：
【0129】
２モジュール型回路の成熟タンパク質産物が、モジュール１（これはプロモーターＰ１によって駆動される）およびモジュール２（これはプロモーターＰ２によって駆動される）の両方が共発現されるときに合成されるだけであり、しかし、２つのモジュールのそれぞれが単独で発現されるときには全く存在しない。
【0130】
ゼロのバックグラウンドが本発明者らの設計に対しては固有であるが、その実際の産出を最大化すること、すなわち、両方のモジュールが完全に活性であるときに合成される成熟タンパク質産物のレベルを最大化することは、入念な最適化ステップが要求されるであろう（例えば、元のＮｉｓｓｉｍ論文（２）、とりわけ、補足資料を参照のこと）。これらは当然のことながら、本発明者らの現在のｉＧＥＭ努力の範囲を超えるものであるが、それらは間違いなく、本発明者らの将来の計画の中心にある。このシステムは万能的であることを忘れてはならない。両方のモジュールにおけるＴＳ誘導エレメントの最適な構成が決定されると、この構成は、実際の治療用ＧＯＩ、所与の臨床応用のために選定されるプロモーターまたは標的細胞の正体にかかわらず、すべての可能な回路において役立たせることができるであろう。
【0131】
実験設計。この目標を達成するために、以下の構成要素を含む実験的な細胞内システムが組み立てられている：
【0132】
細胞：増殖およびトランスフェクションが容易であるヒトＨＥＫ２９３Ｔ細胞（２９３Ｔ ＡＴＣＣ（登録商標）；ＣＲＬ－３２１６（商標）ヒト胚性腎臓）が選ばれている。
【0133】
遺伝子送達：本発明者らの予備実験では、改良された脂質試薬（例えば、ＦｕＧＥＮＥ ＨＤトランスフェクション試薬（Ｐｒｏｍｅｇａ）など）を使用するＨＥＫ２９３Ｔ細胞におけるプラスミドＤＮＡの一過性発現は、細胞死を実質的に全く伴うことなく１００％の効力に近づくことができることが見出されている（図示されず）。
【0134】
目的とする遺伝子：概念実証を実際に示すために、フローサイトメトリーによって検出することが容易であるＮｉｓｓｉｍらによって使用される同じｍＫａｔｅ２レポーター遺伝子が使用されている（（２）および図１を参照のこと）。（２）でのような２つのエクソンへの遺伝子の元の分割は保たれている。
【0135】
回路：本研究において、２つのモジュールをそれぞれが含む２つの異なる回路が組み立てられ、分析されている（詳細については下記を参照のこと）。プロモーター、ポリＡ部位、その他などのエレメントを共有するが、ＴＳをこれら２つの回路のそれぞれにおいて誘導するために選択されるイントロン配列は完全に異なる。第１の回路の２つのモジュール（これらはＴＳ１およびＴＳ２と称される）において、これらのイントロン配列は、（２）において使用される２つのｍＫａｔｅ２エクソンを隔てる元のイントロンに基づいており、「基本的」ＴＳ設計を表している。これとは異なって、第２の回路を構成する２つのモジュール（ＴＳ１１およびＴＳ１２）におけるイントロン配列は、がん治療のための標的化ＴＳの効力を最大化することを目指した研究（８）においてＶｏｌｋｅｒ Ｐａｔｚｅｌ（シンガポール国立大学、ｍＲＮＡ ＴＳにおける世界的リーダー）のグループによって行われる徹底的な分析に基づいている。
【0136】
ベクター：モジュール１をそれぞれの回路において発現させるために、発現ベクターｐＬＮ１９３が使用され、モジュール２についてはｐＬＮ７５が使用されている。これらのベクターに組み込まれる種々の構成要素の説明がそれらの完全なＤＮＡ配列を含めて、（２）の補足資料において得ることができる。
【0137】
２つの回路の遺伝子組成：
モジュールＴＳ１：モジュールＴＳ１の発現がＳＳＸ１ｐプロモーターによって駆動され、このプロモーターは、Ｎｉｓｓｉｍらによって使用されたものであり、ＨＥＫ２９３細胞において活性である（２）。上記で論じられるように、本発明者らの回路は、２つの外部導入モジュールの転写物の間で起こるように設計されるＴＳ事象に基づいており、したがって、最適な誘導配列を選択する際における完全な自由度を可能にしている。ここでは、ｍＫａｔｅ２のエクソン１の下流側において、モジュールＴＳ２に対するＴＳ誘導配列として役立たせるための５’側基礎ステムを含む、Ｎｉｓｓｉｍら（２）によって用いられるｍｉＲ１イントロンの最初の１９８ｂｐが導入されている。この配列の後には、（２）における第１モジュールの３４ｂｐのリンカーと、ＨＳＶ１ｐＡポリＡ部位とが続く。
モジュールＴＳ１：モジュールＴＳ１の発現がＳＳＸ１ｐプロモーターによって駆動され、このプロモーターは、Ｎｉｓｓｉｍらによって使用されたものであり、ＨＥＫ２９３細胞において活性である（２）。上記で論じられるように、本発明者らの回路は、２つの外部導入モジュールの転写物の間で起こるように設計されるＴＳ事象に基づいており、したがって、最適な誘導配列を選択する際における完全な自由度を可能にしている。ここでは、ｍＫａｔｅ２のエクソン１の下流側において、モジュールＴＳ２に対するＴＳ誘導配列として役立たせるための５’側基礎ステムを含む、Ｎｉｓｓｉｍら（２）によって用いられるｍｉＲ１イントロンの最初の１９８ｂｐが導入されている。この配列の後には、（２）における第１モジュールの３４ｂｐのリンカーと、ＨＳＶ１ｐＡポリＡ部位とが続く。
【0138】
モジュールＴＳ２：このモジュールは、モジュールＴＳ１の転写物との最適な標的化されたＴＳを容易にして、無傷のｍＫａｔｅ２コード配列を生成させるために設計される。その発現がＨ２Ａ１ｐプロモーターによって駆動され（２）、この後には、４０ｂｐのリンカー（プラスミドｐＴＢ９１３から得られる好熱性桿菌のカナマイシン耐性遺伝子（ＧｅｎＢａｎｋアクセションＫ０２５５１．１）における４２１位～４６０位）と、ＴＳ１のＴＳ結合ドメイン（ＢＤ）としての３’側基礎ステム、および完全なアクセプタースプライス部位を含むｍｉＲ１イントロンの残り２１９ｂｐとが続き、その後に、ｍＫａｔｅ２のエクソン２、４０ｂｐのリンカー（カナマイシン耐性遺伝子の３６１位～４００位）、ＢａｍＨＩおよびＨｉｎｄＩＩＩの制限部位、ならびにＨＳＶ１ｐＡポリＡ部位が続く。
【0139】
モジュールＴＳ１１：ＴＳ１に類似して、このモジュールのプロモーターはＳＳＸ１ｐである。モジュールＴＳ１１では、ｍＫａｔｅ２のエクソン１のすぐ３’側において、強力なドナースプライス部位を完全に保存するために、かつ、ＴＳ誘導配列に先行するリンカーを提供するために、ｍＫａｔｅ２イントロンの最初の５０ｂｐが挿入された（２）。ここでは、（８）において最近報告されている最適化されたＴＳエレメントを適合させることが選ばれている。この論文には、がんの自殺遺伝子療法としての、内因性のα－フェトプロテイン（ＡＦＰ）転写物に対する単純ヘルペスウイルスのチミジンキナーゼをコードする配列のＴＳ媒介ターゲティングの活性および特異性の両方を改善するＲＮＡ構造の設計が十分に詳しく記載されている。特に、ＡＦＰのイントロン５（ＮＣＢＩ参照配列：ＮＧ＿０２３０２８．１）に由来する最適化された５０ｂｐの配列が選ばれている。それにもかかわらず、（８）での場合と全く同じ配列を適合化することは、ＡＦＰ遺伝子が（（８）において図Ｓ１Ｃに示されるように）ＨＥＫ２９３細胞で発現され、予想されたＴＳが内因性転写物への結合によって弱まることがあるとして問題を引き起こしている。そのような望まれていない結果を回避し、それにもかかわらず、選択された区間の好都合な特性を保持するために、イントロン５からの５０ｂｐの配列を反転させることが単に選ばれている。この反転配列はまた、「アンチセンス効果のきっかけとなり得るであろう長い核二本鎖ＲＮＡの形成を防止するために」Ｐａｔｚｅｌのグループによって導入される人為的な２塩基ミスマッチを保持する（８）。モジュール１における最終的なＴＳ誘導配列は下記の通りである（ミスマッチが太字で表される）：
【0140】
このＴＳ誘導配列の後には、（２）での場合のように、３４ｂｐのリンカーと、ＨＳＶ１ｐＡポリＡ部位とが続く。
【0141】
モジュールＴＳ１２：発現がＨ２Ａ１ｐプロモーターによって駆動される。プロモーター配列の後には、カナマイシン耐性遺伝子の４０ｂｐのリンカー（４２１位～４６０位）が続く。モジュールＴＳ１２におけるＴＳ結合ドメイン（ＢＤ）は、２ヌクレオチドのミスマッチ（太字）を有する、ＡＦＰに基づいたモジュール１のＴＳ誘導配列の逆相補体である。
【0142】
このＴＳ ＢＤの後には、ＨＳＶ１ｐＡポリＡに先行する３４ｂｐのリンカー（２）、ならびにイントロンスプライスエンハンサー、分岐点、ポリピリミジン域およびアクセプタースプライス部位（すべてが（８）から得られる）、続いてｍＫａｔｅ２のエクソン２、４０ｂｐのリンカー（カナマイシン耐性遺伝子の３６１位～４００位）およびＨＳＶ１ｐＡポリＡ部位が続く。
【0143】
【0144】
結果。概念実証を得るために、ＨＥＫ２９３細胞における同時トランスフェクション実験が設計されている。最初に、本発明者らのシステムのために選択されている２つのプロモーター、すなわち、ＳＳＸ１ｐ（モジュールＴＳ１およびモジュールＴＳ１１）およびＨ２Ａ１ｐ（モジュールＴＳ２およびモジュールＴＳ１２）が実際にＨＥＫ２９３Ｔ細胞において活性であることが確認された。この目的のために、ＨＥＫ２９３細胞が、無傷のｍＫａｔｅ２タンパク質をＳＳＸ１ｐプロモーターのもとでコードするプラスミドｐＬＮ７４、またはＥＣＦＰがＨ２Ａ１ｐプロモーターによって駆動されるプラスミドｐＬＮ７５のどちらかにより一過性にトランスフェクションされている（２）。実際、無関係なＤＮＡではなく、どちらのプラスミドでもそのトランスフェクションにより、それぞれのタンパク質の強い蛍光がもたらされた（図示されず）。
【0145】
その後、引き続いて、本発明者らの２つの新しい回路の機能を評価した。本発明者らの設計では、２つのモジュールのそれぞれが単独で導入されたときの完全なＧＯＩ（本発明者らの場合はｍＫａｔｅ２フルオロフォア）の発現が何ら保証されていない。ＧＯＩの発現を可能にする唯一のシナリオが、２つのモジュールの転写物の間における成功したＴＳである。したがって、ＨＥＫ２９３Ｔ細胞が、すべてのトランスフェクションにおけるＤＮＡの最終量を一定に保つために無関係なＤＮＡを使用して、２つの回路のモジュール１プラスミドまたはモジュール２プラスミドのどちらかにより単独で、あるいはこれら２つの１：１混合物により一過性にトランスフェクションされている。ｍＫａｔｅ２をコードするプラスミドｐＬＮ７４は、トランスフェクション効力を評価するために役立った。同じスキームに沿って行われる２つの独立した実験の結果が図４に示される。
【0146】
実際、予想通り、細胞がそれぞれのモジュールにより別個にトランスフェクションされたときには、ｍＫａｔｅ２の蛍光が全く検出できず、それにもかかわらず、２つのモジュールによる細胞の同時トランスフェクションの後では、明瞭なシグナルが明白であった。
【0147】
結論。
これらの実験は、本発明者らの手法の概念実証を明確に実際に示すものである：
― 両方の回路において、それぞれのモジュールの単独でのトランスフェクションは、（閉じた回路をそのような状況のもとではどのような状況であれ簡単にはもたらすことができないため、予想の通り）ゼロの蛍光を生じさせた：したがって、ＴＳに基づいた本発明者らの概念は、安全性の課題に対する解決策を提供するものである。
－ ２つのモジュールの同時トランスフェクションは回路を閉じさせ、これにより、明瞭なｍＫａｔｅ２蛍光をもたらした。
－ ＴＳを（（８）に基づいて）改善するために設計されていたいくつかの構成要素を含む第２の回路は実際に、「基本的」ＴＳを導くだけであった第１の回路よりも大きい効力を示した。
これらの実験は、本発明者らの手法の概念実証を明確に実際に示すものである：
― 両方の回路において、それぞれのモジュールの単独でのトランスフェクションは、（閉じた回路をそのような状況のもとではどのような状況であれ簡単にはもたらすことができないため、予想の通り）ゼロの蛍光を生じさせた：したがって、ＴＳに基づいた本発明者らの概念は、安全性の課題に対する解決策を提供するものである。
－ ２つのモジュールの同時トランスフェクションは回路を閉じさせ、これにより、明瞭なｍＫａｔｅ２蛍光をもたらした。
－ ＴＳを（（８）に基づいて）改善するために設計されていたいくつかの構成要素を含む第２の回路は実際に、「基本的」ＴＳを導くだけであった第１の回路よりも大きい効力を示した。
【0148】
実施例２．スプライシング部位または結合ドメインを調整することによるＴＳ効率の改善
実施例１で使用される論理ＡＮＤゲートを、トランススプライシング効率を改善することを目指す以下の実験において使用した。ＳＳＸ１ｐ－を、ドナー部位を含む第１の構築物にクローン化した。Ｈ２Ａ１ｐ－を、３’側アクセプター部位を含む第２の構築物にクローン化した。すべての構築物が、結合ドメイン（ＢＤ）、レポーター遺伝子（ｍＫＡｔｅ２）の半分の配列、すなわち、第１の構築物および第２の構築物と合致する前半分および後半分、ならびにイントロン配列、すなわち、ｍｉＲＶ３（５０ｂｐ）を含む。
実施例１で使用される論理ＡＮＤゲートを、トランススプライシング効率を改善することを目指す以下の実験において使用した。ＳＳＸ１ｐ－を、ドナー部位を含む第１の構築物にクローン化した。Ｈ２Ａ１ｐ－を、３’側アクセプター部位を含む第２の構築物にクローン化した。すべての構築物が、結合ドメイン（ＢＤ）、レポーター遺伝子（ｍＫＡｔｅ２）の半分の配列、すなわち、第１の構築物および第２の構築物と合致する前半分および後半分、ならびにイントロン配列、すなわち、ｍｉＲＶ３（５０ｂｐ）を含む。
【0149】
本発明者らのＡＮＤゲートにおけるトランススプライシングを強化するために、改変が、実施例１に記載される当初構築物の３’側アクセプター部位に対して、またはＢＤ部位に対して行われている（ＴＳ１１およびＴＳ１２がここではｐＫＲ３およびｐＫＲ４ａとしてそれぞれ示され、これらをサンプル１において試験し、再評価した）。ＨＥＫ２９３Ｔ細胞が本発明者らの設計の様々な組み合わせによりトランスフェクションされた。
【0150】
サンプル２～４では、様々な３’側アクセプター部位配列が調べられ、サンプル６～１９では、様々な結合ドメイン配列および構成が調べられる（表１および表２を参照のこと）。
【0151】
【表1】
コンセンサス－「コンセンサス」なアクセプター配列、ドナー配列および分岐配列。（Ｓｍｉｔｈ，Ｃ．Ｗ．Ｊ．、Ｐｏｒｒｏ，Ｅ．Ｂ．、Ｐａｔｔｏｎ，Ｊ．Ｇ．およびＮａｄａｌ－Ｇｉｎａｒｄ，Ｂ．（１９８９）．Ｓｃａｎｎｉｎｇ ｆｒｏｍ ａｎ ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔｌｙ ｓｐｅｃｉｆｉｅｄ ｂｒａｎｃｈ ｐｏｉｎｔ ｄｅｆｉｎｅｓ ｔｈｅ ３［ｐｒｉｍｅ］ ｓｐｌｉｃｅ ｓｉｔｅ ｏｆ ｍａｍｍａｌｉａｎ ｉｎｔｒｏｎｓ．Ｎａｔｕｒｅ ３４２、２４３－２４７）；Ｔａｇｇａｒｔ，Ａ．Ｊ．、ＤｅＳｉｍｏｎｅ，Ａ．Ｍ．、Ｓｈｉｈ，Ｊ．Ｓ．、Ｆｉｌｌｏｕｘ，Ｍ．Ｅ．およびＦａｉｒｂｒｏｔｈｅｒ，Ｗ．Ｇ．（２０１２）．Ｌａｒｇｅｓｃａｌｅ ｍａｐｐｉｎｇ ｏｆ ｂｒａｎｃｈｐｏｉｎｔｓ ｉｎ ｈｕｍａｎ ｐｒｅ－ｍＲＮＡ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｓ ｉｎ ｖｉｖｏ．Ｎａｔｕｒｅ ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ＆ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｉｏｌｏｇｙ １９、７１９－７２１）。
ＨＳＶ－単純ヘルペスウイルスのアクセプター配列、ドナー配列および分岐配列。
ｐＨＡ１６－Ｎｉｓｓｉｍ研究室で開発された変異型「コンセンサス」配列。
【0152】
【表2】
Ｓ＃、サンプル番号
【0153】
結果
元のＡＦＰ結合配列およびスプライシング配列、同様にまた他の設計を調べた。図５において認められ得るように、本発明者らの設計物のいくつかが当初のＡＦＰ結合配列およびスプライシング配列よりも良好に機能した。例えば、元のＡＦＰ設計は比較的良好に機能する（サンプル１および実施例１）が、スプライシングアクセプター配列をＡＦＰからコンセンサスに切り替えることにより、出力レベルの約４倍の増大がもたらされ（サンプル２）、当初設計におけるミスマッチを、マッチするコドンに変更することによってもまた、出力レベルの約４倍の増大がもたらされ（サンプル５）、そして、当初のＢＤをほんの３０ｂｐに短くすることにより、出力レベルの約３倍の増大がもたらされた（サンプル９）。したがって、元のＡＦＰ結合配列およびスプライシング配列よりも優れている構築物が設計されている。
元のＡＦＰ結合配列およびスプライシング配列、同様にまた他の設計を調べた。図５において認められ得るように、本発明者らの設計物のいくつかが当初のＡＦＰ結合配列およびスプライシング配列よりも良好に機能した。例えば、元のＡＦＰ設計は比較的良好に機能する（サンプル１および実施例１）が、スプライシングアクセプター配列をＡＦＰからコンセンサスに切り替えることにより、出力レベルの約４倍の増大がもたらされ（サンプル２）、当初設計におけるミスマッチを、マッチするコドンに変更することによってもまた、出力レベルの約４倍の増大がもたらされ（サンプル５）、そして、当初のＢＤをほんの３０ｂｐに短くすることにより、出力レベルの約３倍の増大がもたらされた（サンプル９）。したがって、元のＡＦＰ結合配列およびスプライシング配列よりも優れている構築物が設計されている。
【0154】
材料＆方法。
【表3】
【0155】
実験モデルおよび実験対象の詳細
細胞培養および細胞株
ＨＥＫ２９３Ｔ、細胞を、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ）から得た（ＨＥＫ２９３Ｔ、カタログ＃ＣＲＬ－１５７３）。ＨＥＫ２９３Ｔ細胞を、１０％のウシ胎児血清（ＦＢＳ；Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ；カタログ＃０４－００７－１Ａ）、１％の非必須アミノ酸（ＭＥＭ／ＮＥＡＡ；Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ；カタログ＃０１－３４０－１Ｂ）および１％のＰｅｎ／Ｓｔｒｅｐ（Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ、＃０３－０３１－１Ｂ）が補充されるＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ）において、５％のＣＯ２とともに３７℃で培養した。すべての細胞株を、供給者から購入した後直ちに貯蔵し、少ない継代数で使用した。
細胞培養および細胞株
ＨＥＫ２９３Ｔ、細胞を、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ）から得た（ＨＥＫ２９３Ｔ、カタログ＃ＣＲＬ－１５７３）。ＨＥＫ２９３Ｔ細胞を、１０％のウシ胎児血清（ＦＢＳ；Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ；カタログ＃０４－００７－１Ａ）、１％の非必須アミノ酸（ＭＥＭ／ＮＥＡＡ；Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ；カタログ＃０１－３４０－１Ｂ）および１％のＰｅｎ／Ｓｔｒｅｐ（Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ、＃０３－０３１－１Ｂ）が補充されるＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ）において、５％のＣＯ２とともに３７℃で培養した。すべての細胞株を、供給者から購入した後直ちに貯蔵し、少ない継代数で使用した。
【0156】
プラスミド構築
上記の様々な構築物を、従来の制限酵素クローニングおよびＧｉｂｓｏｎアセンブリーを使用して構築した。すべてのＤＮＡを、ＱＩＡＧＥＮ Ｐｌａｓｍｉｄ Ｐｌｕｓ Ｍｉｄｉ Ｋｉｔ（Ｐｌａｓｍｉｄ Ｐｌｕｓ Ｍｉｄｉ Ｋｉｔ；ＱＩＡＧＥＮ；カタログ＃２０－１２９４５）によって精製した。
上記の様々な構築物を、従来の制限酵素クローニングおよびＧｉｂｓｏｎアセンブリーを使用して構築した。すべてのＤＮＡを、ＱＩＡＧＥＮ Ｐｌａｓｍｉｄ Ｐｌｕｓ Ｍｉｄｉ Ｋｉｔ（Ｐｌａｓｍｉｄ Ｐｌｕｓ Ｍｉｄｉ Ｋｉｔ；ＱＩＡＧＥＮ；カタログ＃２０－１２９４５）によって精製した。
【0157】
トランスフェクション
本研究において、２つのプラスミドの異なる組み合わせを調べた：構築物１のバリアントは前半部のｍＫａｔｅ２ ＲＮＡ転写物を発現し、構築物２のバリアントは後半部のｍＫａｔｅ２転写物を発現した。ｍＫａｔｅ２により、トランススプライシング発現を評価することが可能である。簡単に記載すると、１００μＬのＯｐｔｉＭＥＭ培地（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、カタログ＃３１９８５）と混合される８μＬのＦｕＧＥＮＥ ＨＤトランスフェクション試薬（Ｐｒｏｍｅｇａ、Ｍａｄｉｓｏｎ、ＷＩ；カタログ＃Ｅ２３１１）を２つのプラスミド（それぞれ１μｇ）の混合物に加えた。ＦｕＧＥＮＥ ＨＤ／ＤＮＡ複合体を室温で２０分間インキュベーションしている間に、ＨＥＫ２９３Ｔ懸濁細胞を調製し、培養培地において１．２×１０６細胞／ｍＬに希釈した。０．５ｍＬの希釈された細胞（０．６×１０６細胞）を、ＦｕＧＥＮＥ ＨＤ／ＤＮＡ複合体の各チューブに加え、よく混合し、２ｍＬの細胞培養培地を含有する６ウエルプレートにおける指定のウエルに移し、続いて５％のＣＯ２とともに３７℃でインキュベーションした。トランスフェクション細胞をトランスフェクション後４８時間でＦＡＣＳ分析のために調製した。
本研究において、２つのプラスミドの異なる組み合わせを調べた：構築物１のバリアントは前半部のｍＫａｔｅ２ ＲＮＡ転写物を発現し、構築物２のバリアントは後半部のｍＫａｔｅ２転写物を発現した。ｍＫａｔｅ２により、トランススプライシング発現を評価することが可能である。簡単に記載すると、１００μＬのＯｐｔｉＭＥＭ培地（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、カタログ＃３１９８５）と混合される８μＬのＦｕＧＥＮＥ ＨＤトランスフェクション試薬（Ｐｒｏｍｅｇａ、Ｍａｄｉｓｏｎ、ＷＩ；カタログ＃Ｅ２３１１）を２つのプラスミド（それぞれ１μｇ）の混合物に加えた。ＦｕＧＥＮＥ ＨＤ／ＤＮＡ複合体を室温で２０分間インキュベーションしている間に、ＨＥＫ２９３Ｔ懸濁細胞を調製し、培養培地において１．２×１０６細胞／ｍＬに希釈した。０．５ｍＬの希釈された細胞（０．６×１０６細胞）を、ＦｕＧＥＮＥ ＨＤ／ＤＮＡ複合体の各チューブに加え、よく混合し、２ｍＬの細胞培養培地を含有する６ウエルプレートにおける指定のウエルに移し、続いて５％のＣＯ２とともに３７℃でインキュベーションした。トランスフェクション細胞をトランスフェクション後４８時間でＦＡＣＳ分析のために調製した。
【0158】
実施例３．コンビナトリアル免疫調節のための多出力ＡＮＤゲート
コンビナトリアル免疫調節因子（免疫原性細胞表面抗原）、ケモカイン、サイトカインおよび免疫チェックポイント阻害剤の、本発明者らの回路からの発現を容易にするために、モジュール１およびモジュール２におけるｍＫａｔｅ２がＮｉｓｓｉｍら（上掲）に従って、その同族の合成プロモーターに結合し、下流側遺伝子の発現を活性化する合成転写因子ＧＡＤにより置き換えられる。このＧＡＤは、酵母のＧＡＬ４ ＤＮＡ結合ドメインをウイルスのＶＰ１６転写活性化ドメインに融合することによって以前に作製されたものであり、例えば、Ｐｒｏｍｅｇａによって販売される哺乳動物用の２ハイブリッド型システム構築物（カタログ番号Ｅ２４４０）からクローン化することができる。モジュール１は、ＧＡＤの１つの不完全なフラグメントをコードするものであり、腫瘍特異的プロモーター１によって調節される場合があり、モジュール２は、ＧＡＤの相補する不完全なフラグメントをコードするものであり、腫瘍特異的プロモーター２によって調節される場合がある。トランススプライシングにより、完全なＧＡＤ転写因子をコードするｍＲＮＡがもたらされることになる。したがって、免疫調節因子の特異的発現が、両方の入力プロモーターが標的細胞において相互に活性であるときに予想される。
コンビナトリアル免疫調節因子（免疫原性細胞表面抗原）、ケモカイン、サイトカインおよび免疫チェックポイント阻害剤の、本発明者らの回路からの発現を容易にするために、モジュール１およびモジュール２におけるｍＫａｔｅ２がＮｉｓｓｉｍら（上掲）に従って、その同族の合成プロモーターに結合し、下流側遺伝子の発現を活性化する合成転写因子ＧＡＤにより置き換えられる。このＧＡＤは、酵母のＧＡＬ４ ＤＮＡ結合ドメインをウイルスのＶＰ１６転写活性化ドメインに融合することによって以前に作製されたものであり、例えば、Ｐｒｏｍｅｇａによって販売される哺乳動物用の２ハイブリッド型システム構築物（カタログ番号Ｅ２４４０）からクローン化することができる。モジュール１は、ＧＡＤの１つの不完全なフラグメントをコードするものであり、腫瘍特異的プロモーター１によって調節される場合があり、モジュール２は、ＧＡＤの相補する不完全なフラグメントをコードするものであり、腫瘍特異的プロモーター２によって調節される場合がある。トランススプライシングにより、完全なＧＡＤ転写因子をコードするｍＲＮＡがもたらされることになる。したがって、免疫調節因子の特異的発現が、両方の入力プロモーターが標的細胞において相互に活性であるときに予想される。
【0159】
実施例４．がんの処置
Ｎｉｓｓｉｍら（上掲）に基づいて、本発明の合成発現が、適切な数のレンチウイルスに編成される。ｉ．ｐ．播種されたＯＶ８腫瘍を有するマウスに、モジュール１、モジュール２および陰性コントロール出力を含有するコントロールレンチウイルス混合物、またはモジュール１、モジュール２およびＳＣＩＰ出力を含有する治療用ウイルス混合物のどちらかがｉ．ｐ．注入される。ヒトＴ細胞もまた、定期的にｉ．ｐ．注入される。これらの設定のもとでは、コントロールユニットに対して、ＳＣＩＰ回路により処置されるマウスにおける有意に低下した腫瘍負荷量および高まった生存率が予想される。
Ｎｉｓｓｉｍら（上掲）に基づいて、本発明の合成発現が、適切な数のレンチウイルスに編成される。ｉ．ｐ．播種されたＯＶ８腫瘍を有するマウスに、モジュール１、モジュール２および陰性コントロール出力を含有するコントロールレンチウイルス混合物、またはモジュール１、モジュール２およびＳＣＩＰ出力を含有する治療用ウイルス混合物のどちらかがｉ．ｐ．注入される。ヒトＴ細胞もまた、定期的にｉ．ｐ．注入される。これらの設定のもとでは、コントロールユニットに対して、ＳＣＩＰ回路により処置されるマウスにおける有意に低下した腫瘍負荷量および高まった生存率が予想される。
【0160】
参考文献
【図1】
【図2】
【図3A】
【図3B】
【図3C】
【図3D】
【図4】
【図5】
【配列表】
【国際調査報告】