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特表2023-501814ＡＭＰＫ抑制機能と亜鉛恒常性調節機能に基づく多発性硬化症治療用の薬学的組成物
(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】公表特許公報(A)
(11)【公表番号】
(43)【公表日】2023-01-19
(54)【発明の名称】ＡＭＰＫ抑制機能と亜鉛恒常性調節機能に基づく多発性硬化症治療用の薬学的組成物
(51)【国際特許分類】
A61K 31/427 20060101AFI20230112BHJP
A61P 25/00 20060101ALI20230112BHJP
C07D 417/06 20060101ALI20230112BHJP
C07D 417/14 20060101ALI20230112BHJP
A61P 29/00 20060101ALI20230112BHJP
【ＦＩ】
A61K31/427
A61P25/00
C07D417/06 CSP
C07D417/14
A61P29/00
【審査請求】有
【予備審査請求】未請求
(21)【出願番号】P 2022528544
(86)(22)【出願日】2020-11-12
(85)【翻訳文提出日】2022-07-08
(86)【国際出願番号】 KR2020015932
(87)【国際公開番号】W WO2021096270
(87)【国際公開日】2021-05-20
(31)【優先権主張番号】10-2019-0145709
(32)【優先日】2019-11-14
(33)【優先権主張国・地域又は機関】KR
(81)【指定国・地域】
(71)【出願人】
【識別番号】522190959
【氏名又は名称】ジンキュア・コーポレイション
【氏名又は名称原語表記】ＺＩＮＣＵＲＥ ＣＯＲＰ．
(74)【代理人】
【識別番号】100145403
【弁理士】
【氏名又は名称】山尾 憲人
(74)【代理人】
【識別番号】100150500
【弁理士】
【氏名又は名称】森本 靖
(74)【代理人】
【識別番号】100176474
【弁理士】
【氏名又は名称】秋山 信彦
(72)【発明者】
【氏名】キム，ヤンヒ
(72)【発明者】
【氏名】オム，ジェウォン
(72)【発明者】
【氏名】ソ，サンウォン
(72)【発明者】
【氏名】チェ，ボヨン
【テーマコード（参考）】
4C063
4C086
【Ｆターム（参考）】
4C063AA01
4C063AA03
4C063BB03
4C063CC62
4C063CC81
4C063DD06
4C063DD62
4C063EE01
4C086AA01
4C086AA02
4C086AA03
4C086BC82
4C086GA02
4C086GA07
4C086GA10
4C086MA01
4C086MA04
4C086NA14
4C086ZA01
4C086ZB11
(57)【要約】
本発明は、副作用のない優れた神経保護効果によって多発性硬化症を効果的に治療するＡＭＰＫ抑制機能と亜鉛恒常性調節機能に基づく多発性硬化症治療用の薬学的組成物を提供する。
【特許請求の範囲】
【請求項1】
下記化学式１の構造を有する化合物を有効成分として含有する、多発性硬化症または脳脊髄炎治療用の薬学的組成物：【化1】
【化2】
【請求項2】
前記置換されていないアルキル基はメチル、エチル、プロピル、またはブチルである請求項１に記載の組成物。
【請求項3】
前記置換されたアルキル基はフルオロメチル、ジフルオロメチル、トリフルオロメチル基、クロロメチル、ジクロロメチル、トリクロロメチル、またはヨードメチル、ジヨードメチル、またはトリヨードメチルである請求項１に記載の組成物。
【請求項4】
前記ハロゲンはフッ素（Ｆ）、塩素（Ｃｌ）、臭素（Ｂｒ）、またはヨード（Ｉ）である請求項１に記載の組成物。
【請求項5】
前記化合物は、（５Ｚ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－２－｛［２－トリフルオロメチル）フェニル］アミノ｝－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－２－｛［３－トリフルオロメチル）フェニル］アミノ｝－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－［（３－ブロモフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－２－［４－（メチルフェニル）アミノ］－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－２－［３－（メチルフェニル）アミノ］－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－アニリノ－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－［（２，４－ジメチルフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－［（２－クロロフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－［（３，４－ジメチルフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－［（４－ヒドロキシフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－２－［（２－メチルフェニル）アミノ］－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－［（２，３－ジメチルフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｅ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－２－（１－ナフチルアミノ）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－［（３－クロロフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｅ）－２－アニリノ－５－［（５－ブロモ－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン］－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｅ）－２－［（４－ブチルフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－［（４－ブチルフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－２－［（３－メトキシフェニル）アミノ］－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－５－［（２－メチル－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン］－２－［（４－メチルフェニル）アミノ］－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｅ）－５－［（２－メチル－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン］－２－［（４－メチルフェニル）アミノ］－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、３－｛［（５Ｚ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－４－オキソ－４，５－ジヒドロ－１，３－チアゾール－２－イル］アミノ｝安息香酸、２－｛［（５Ｅ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－４－オキソ－４，５－ジヒドロ－１，３－チアゾール－２－イル］アミノ｝安息香酸、（５Ｚ）－２－［（２－クロロフェニル）アミノ］－５－［（２－メチル－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン］－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、２－ヒドロキシ－５－｛［（５Ｚ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－４－オキソ－４，５－ジヒドロ－１，３－チアゾール－２－イル］アミノ｝安息香酸、（２Ｅ，５Ｅ）－５－（（５－ブロモ－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（フェニルイミノ）チアゾリジン－４－オン、（２Ｚ，５Ｅ）－５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（（４－ブチルフェニル）イミノ）チアゾリジン－４－オン、（Ｚ）－５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（（４－ブチルフェニル）アミノ）チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（Ｚ）－５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（（３－メトキシフェニル）アミノ）チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（２Ｅ，５Ｚ）－５－（（２－メチル－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（ｐ－トリルイミノ）チアゾリジン－４－オン、（２Ｚ，５Ｅ）－５－（（２－メチル－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（ｐ－トリルイミノ）チアゾリジン－４－オン、（Ｚ）－３－（（５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－４－オキソ－４，５－ジヒドロチアゾール－２－イル）アミノ）安息香酸、（Ｅ）－２－（（５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－４－オキソ－４，５－ジヒドロチアゾール－２－イル）アミノ）安息香酸、（２Ｚ，５Ｚ）－２－（（２－クロロフェニル）イミノ）－５－（（２－メチル－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）チアゾリジン－４－オン、（Ｚ）－５－（（５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－４－オキソ－４，５－ジヒドロチアゾール－２－イル）アミノ）－２－ヒドロキシ安息香酸、または（Ｚ）－５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－Ｎ－（ベンゾ［ｄ］［１，３］ジオキソ－５－イル）－４－メチレン－４，５－ジヒドロチアゾール－２－アミンである請求項１に記載の組成物。
【請求項6】
前記化合物は、（Ｚ）－５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（（３，４－ジメチルフェニル）アミノ）チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（２Ｚ，５Ｅ）－５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（（４－ブチルフェニル）イミノ）チアゾリジン－４－オン、（Ｚ）－５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（（４－ブチルフェニル）アミノ）チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（２Ｅ，５Ｚ）－５－（（２－メチル－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（ｐ－トリルイミノ）チアゾリジン－４－オン、（２Ｚ，５Ｅ）－５－（（２－メチル－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（ｐ－トリルイミノ）チアゾリジン－４－オン、（Ｚ）－５－（（５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－４－オキソ－４，５－ジヒドロチアゾール－２－イル）アミノ）－２－ヒドロキシ安息香酸、または（Ｚ）－５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（（３－ヒドロキシフェニル）アミノ）チアゾール－４（５Ｈ）－オンである請求項１に記載の組成物。
【請求項7】
前記化合物は、脱髄（ｄｅｍｙｅｌｉｎａｔｉｏｎ）防止、神経保護効果（ｎｅｕｒｏｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ ｅｆｆｅｃｔ）、組織損傷の減少、アポトーシス（ａｐｏｐｔｏｓｉｓ）防止、または炎症性浸潤（Ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ ｉｎｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ）の抑制効果を有する請求項１に記載の組成物。
【請求項8】
治療的に有効な量の下記化学式１の構造を有する化合物を多発性硬化症にかかった個体に投与するステップを含む前記個体の多発性硬化症の治療方法：【化3】
【化4】
【請求項9】
治療的に有効な量の下記化学式１の構造を有する化合物を脳脊髄炎にかかった個体に投与するステップを含む前記個体の脳脊髄炎の治療方法：【化5】
【化6】
【請求項10】
多発性硬化症の治療に使用される下記化学式１の構造を有する化合物：【化7】
【化8】
【請求項11】
脳脊髄炎の治療に使用される下記化学式１の構造を有する化合物：【化9】
【化10】
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は多発性硬化症治療用の薬学的組成物に関し、より詳しくは、ＡＭＰＫ抑制機能と亜鉛恒常性調節機能に基づく多発性硬化症治療用の薬学的組成物に関する。
【背景技術】
【0002】
多発性硬化症（ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｓｃｌｅｒｏｓｉｓ、ＭＳ）は、人体内免疫系の制御異常と神経細胞の軸索（Ａｘｏｎ）を包んでいるミエリン鞘（Ｍｙｅｌｉｎ ｓｈｅａｔｈ）の破壊によって発生する中枢神経系の自己免疫炎症性疾患であり、多様な形態の神経毒性機序が関連している。このような多発性硬化症の治療には従来主にステロイドと免疫抑制剤が使用されてきたが、これは多発性硬化症の主な機序が自己免疫機序である事実に基づくことであって、身体の免疫機能を弱化することで疾患を調節しようとする試みである。しかし、最近までの研究によると、前記治療が疾患の急性期には著しい効果を有するが、長期的には疾患の再発を抑制するか減少する役割をすることができないと示されている。よって、効果が認められたのは、急性期に大量のステロイド製剤や免疫抑制剤などを一定間隔に数日にわたって注入する方法である。最近は再発を防止することで慢性的な退行を軽減するためにβ－グロブリン（ｂｅｔａ－ｇｌｏｂｕｌｉｎ）を脊髄液や皮膚を介して注入する治療が多く試みられており、現在までは大きな副作用なしに効果があると認められているが、前記治療は持続的に受けなければならないという短所がある。
【0003】
一方、体内の亜鉛（Ｚｉｎｃ）の過度な蓄積或いは深刻な欠乏は神経細胞に毒性を示すが、亜鉛の恒常性消失は多発性硬化症の原因になり得ると報告されている。最近、多様な研究チームが多発性硬化症における亜鉛の恒常性に関する研究を行っており、それによって多様な結果物が発表されているが、現在までその殆どが亜鉛の恒常性消失に対する現象変化に関する結果に過ぎず、それに関する正確な機序の研究は足りない実情である。また、その測定法とサンプルの多様性などのため、多発性硬化症における亜鉛に関する研究はより綿密に行われる必要がある。それに関し、特許文献１は多発性神経硬化症の治療または予防用組成物及びそのスクリーニング方法について開示している。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0004】
【特許文献1】韓国登録特許 第１３２４６４７号
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0005】
しかし、前記先行技術の場合、ＬｅｕＳＨ（Ｌ－Ｌｅｕｃｉｎｅｔｈｉｏｌ）を利用してＮＡＤＰＨ酸化酵素及び／またはＭＭＰの活性を抑制するものであって、ＡＭＰＫ抑制機能及び亜鉛の神経毒性制御に基づく多発性硬化症治療用物質に関する技術はまだ未開拓の分野である。
本発明は前記のような問題点を含む様々な問題点を解決するためのものであって、副作用のない神経保護効果によって多発性硬化症を効果的に治療するＡＭＰＫ抑制機能と、亜鉛恒常性の調節機能に基づく多発性硬化症治療用の薬学的組成物を提供することを目的とする。しかし、このような課題は例示的なものであって、これによって本発明の範囲は制限されない。
本発明は前記のような問題点を含む様々な問題点を解決するためのものであって、副作用のない神経保護効果によって多発性硬化症を効果的に治療するＡＭＰＫ抑制機能と、亜鉛恒常性の調節機能に基づく多発性硬化症治療用の薬学的組成物を提供することを目的とする。しかし、このような課題は例示的なものであって、これによって本発明の範囲は制限されない。
【課題を解決するための手段】
【0006】
本発明の一観点によると、下記化学式１の構造を有する化合物を有効成分として含有する、多発性硬化症または脳脊髄炎治療用の薬学的組成物が提供される：
（前記式において、Ｒ１乃至Ｒ５はそれぞれ独立して水素、ヒドロキシ基、ハロゲン、炭素数１乃至７の置換されたアルキル基または置換されていないアルキル基、炭素数１乃至７の置換されたアルコキシ基または置換されていないアルコキシ基、アミン基、カルボキシル基であるか、Ｒ２及びＲ３は共に－Ｏ－（ＣＨ２）ｎ－Ｏ－環または置換または非置換のベンゼン環を形成し（ｎは１乃至３の整数）、Ｒ６は水素またはメチル基であり、Ｒ７は水素またはハロゲンであり、前記化学式において
は単一結合または二重結合である。）
本発明の他の一観点によると、治療的に有効な量の下記化学式１の構造を有する化合物を多発性硬化症にかかった個体に投与するステップを含む前記個体の多発性硬化症の治療方法が提供される：
（前記式において、Ｒ１乃至Ｒ５はそれぞれ独立して水素、ヒドロキシ基、ハロゲン、炭素数１乃至７の置換されたアルキル基または置換されていないアルキル基、炭素数１乃至７の置換されたアルコキシ基または置換されていないアルコキシ基、アミン基、カルボキシル基であるか、Ｒ２及びＲ３は共に－Ｏ－（ＣＨ２）ｎ－Ｏ－環または置換または非置換のベンゼン環を形成し（ｎは１乃至３の整数）、Ｒ６は水素またはメチル基であり、Ｒ７は水素またはハロゲンであり、前記化学式において
は単一結合または二重結合である。）
【化1】
【化2】
本発明の他の一観点によると、治療的に有効な量の下記化学式１の構造を有する化合物を多発性硬化症にかかった個体に投与するステップを含む前記個体の多発性硬化症の治療方法が提供される：
【化3】
【化4】
【0007】
本発明のまた他の一観点によると、治療的に有効な量の下記化学式１の構造を有する化合物を脳脊髄炎にかかった個体に投与するステップを含む前記個体の脳脊髄炎の治療方法が提供される：
（前記式において、Ｒ１乃至Ｒ５はそれぞれ独立して水素、ヒドロキシ基、ハロゲン、炭素数１乃至７の置換されたアルキル基または置換されていないアルキル基、炭素数１乃至７の置換されたアルコキシ基または置換されていないアルコキシ基、アミン基、カルボキシル基であるか、Ｒ２及びＲ３は共に－Ｏ－（ＣＨ２）ｎ－Ｏ－環または置換または非置換のベンゼン環を形成し（ｎは１乃至３の整数）、Ｒ６は水素またはメチル基であり、Ｒ７は水素またはハロゲンであり、前記化学式において
は単一結合または二重結合である。）
【化5】
【化6】
【0008】
本発明の更に他の一観点によると、多発性硬化症の治療に使用される下記化学式１の構造を有する化合物が提供される：
（前記式において、Ｒ１乃至Ｒ５はそれぞれ独立して水素、ヒドロキシ基、ハロゲン、炭素数１乃至７の置換されたアルキル基または置換されていないアルキル基、炭素数１乃至７の置換されたアルコキシ基または置換されていないアルコキシ基、アミン基、カルボキシル基であるか、Ｒ２及びＲ３は共に－Ｏ－（ＣＨ２）ｎ－Ｏ－環または置換または非置換のベンゼン環を形成し（ｎは１乃至３の整数）、Ｒ６は水素またはメチル基であり、Ｒ７は水素またはハロゲンであり、前記化学式において
は単一結合または二重結合である。）
【化7】
【化8】
【0009】
本発明の更に他の一観点によると、脳脊髄炎の治療に使用される下記化学式１の構造を有する化合物が提供される：
（前記式において、Ｒ１乃至Ｒ５はそれぞれ独立して水素、ヒドロキシ基、ハロゲン、炭素数１乃至７の置換されたアルキル基または置換されていないアルキル基、炭素数１乃至７の置換されたアルコキシ基または置換されていないアルコキシ基、アミン基、カルボキシル基であるか、Ｒ２及びＲ３は共に－Ｏ－（ＣＨ２）ｎ－Ｏ－環または置換または非置換のベンゼン環を形成し（ｎは１乃至３の整数）、Ｒ６は水素またはメチル基であり、Ｒ７は水素またはハロゲンであり、前記化学式において
は単一結合または二重結合である。）
【化9】
【化10】
【発明の効果】
【0010】
前記のようになされる本発明のＡＭＰＫ抑制機能と亜鉛恒常性調節機能に基づく多発性硬化症治療用の薬学的組成物は、ＡＭＰＫ活性抑制機能と亜鉛恒常性調節機能を有する新規化合物であって、これを処理して多発性硬化症による脊髄の損傷と行動障害を克服することができる新しい治療剤の開発に活用することができる。もちろん、このような効果によって本発明の範囲は限られない。
【図面の簡単な説明】
【0011】
【図1a】本発明の一実施例による実験設計に対するタイムラインを示す図である。全体の実験過程に対し、１Ｈ１０を１日１回腹腔内投与しており、免疫化後２１日目にマウスを犠牲させた。
【図1b】ビークル投与群に対するＥＡＥ臨床点数を分析したグラフである。
【図1c】１Ｈ１０投与群に対するＥＡＥ臨床点数を分析したグラフである。
【図1d】ビークルまたは１Ｈ１０－処理された免疫化マウスの百分率の疾患発生率を分析したグラフである。データは平均±ＳＥＭである（実験群当たりｎ＝７－８）。＊ｐ＜０．０５。
【図2a】偽手術（ｓｈａｍ－ｏｐｅｒａｔｅｄ）及びＭＯＧ３５－５５免疫化マウス（ビークルまたは１Ｈ１０）の脊髄における代表的な微細グリア細胞／マクロファージ活性化を観察した顕微鏡写真である。Ｆ４／８０（赤色）、ＤＡＰＩで染色された核（青色）、脱髄領域は減少されたＭＢＰ染色で確認した（緑色）。スケールバー、５０μｍ。
【図2b】同じ脊髄（ｓｐｉｎａｌ ｃｏｒｄ）領域（平均±ＳＥＭ；グループ当たりｎ＝３－５）で測定されたＭＢＰ免疫反応性パーセント領域を分析したグラフである。
【図2c】同じ脊髄領域（平均±ＳＥＭ；グループ当たりｎ＝３－５）で測定された微細グリア細胞／マクロファージ活性化等級を分析したグラフである。
【図2d】ビークル－及び１Ｈ１０－処理されたＥＡＥマウスに併合された画像としてのＩｂａ－１－（緑色）及びＣＤ６８－（赤色）免疫陽性細胞の代表的な画像を示す図である。ＤＡＰＩ（青色）で染色された核。スケールバー、５０μｍ。
【図2e】同じ脊髄領域で決定されたＩｂａ－１の免疫蛍光強度の定量化（平均±ＳＥＭ；グループ当たりｎ＝３－５）を分析したグラフである。＊ｐ＜０．０５。
【図2f】同じ脊髄領域で決定されたＣＤ６８（Ｆ）の免疫蛍光強度の定量化（平均±ＳＥＭ；グループ当たりｎ＝３－５）を分析したグラフである。＊ｐ＜０．０５。
【図2g】ＣＤ６８でＩｂａ－１の共局在散点図（Ｃｏｌｏｃａｌｉｚａｔｉｏｎ ｓｃａｔｔｅｒｐｌｏｔｓ）を分析したグラフである。
【図2h】Ｍａｎｄｅｒ’ｓオーバーラップ係数及びＰｅａｒｓｏｎの相関係数（平均±ＳＥＭ；グループ当たりｎ＝４）を測定し、ＣＤ６８を使用したＩｂａ－１の定量的共局在化パラメータを分析したグラフである。＊ｐ＜０．０５。
【図3a】ＳＭＳ単核細胞の浸潤を検出するためにクレシルバイオレット（ｃｒｅｓｙｌ ｖｉｏｌｅｔ）に対して染色された脊髄セクションを示す顕微鏡写真である。スケールバー、１００μｍ。
【図3b】初期免疫化後３週目にビークルまたは１Ｈ１０で処理されたマウスにおける脊髄から浸潤された単核細胞の定量化（平均±ＳＥＭ；グループ当たりｎ＝５）を分析したグラフである。＊ｐ＜０．０５。
【図3c】ＣＤ４、ＣＤ８、及びＣＤ２０のような細胞表面分子に対する抗体で染色されたＴ及びＢ細胞の発現を示す顕微鏡写真である。
【図3d】偽手術またはＥＡＥマウスで１Ｈ１０処理または無処理された胸部脊髄におけるＣＤ４、ＣＤ８、及びＣＤ２０免疫反応の強度を分析したグラフである。
【図3e】偽手術またはＥＡＥマウスで１Ｈ１０処理または無処理された胸部脊髄におけるＣＤ４、ＣＤ８、及びＣＤ２０免疫反応のパーセント面積を分析したグラフである。
【図3f】ビークル－及び１Ｈ１０－処理されたＥＡＥマウスから脊髄におけるｐｈｏｓｐｈｏ－ＡＭＰＫα １／２と共同－標識されたＣＤ８＋Ｔ細胞を示す代表的な免疫蛍光画像である。
【図3g】ｐｈｏｓｐｈｏ－ＡＭＰＫα １／２とＣＤ８の共局在散点図を分析したグラフである。
【図3h】Ｍａｎｄｅｒ’ｓオーバーラップ係数及びＰｅａｒｓｏｎの相関係数（平均±ＳＥＭ；グループ当たりｎ＝４）を測定することでｐｈｏｓｐｈｏ－ＡＭＰＫα １／２を有するＣＤ８の定量的共局在化パラメータを分析したグラフである。＊ｐ＜０．０５。
【図4a】亜鉛の蓄積を探知するためにＴＳＱで染色された脊髄部分を示す顕微鏡写真である。スケールバー、１００μｍ。
【図4b】内因性ＩｇＧを検出するために抗－マウス免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）に対して染色された脊髄部分を示す顕微鏡写真である。スケールバー、１００μｍ。
【図4c】初期免疫化後３週目にビークルまたは１Ｈ１０で処理されたマウスにおける脊髄からのＩｇＧの漏出強度（平均±ＳＥＭ；グループ当たりｎ＝３－５）を分析したグラフである。＊ｐ＜０．０５。
【図4d】初期免疫化後３週目にビークルまたは１Ｈ１０で処理されたマウスにおける脊髄からのＩｇＧ漏出のパーセント面積（平均±ＳＥＭ；グループ当たりｎ＝３－５）を分析したグラフである。＊ｐ＜０．０５。
【図4e】ビークル－及び１Ｈ１０－処理されたＥＡＥマウスで脊髄の白質におけるＣＤ３１＋内皮細胞（赤色）及び内因性マウスＩｇＧ分子（緑色）の二重標識共焦点顕微鏡写真である。スケールバー、２０μｍ。
【図4f】脊髄の白質におけるＭＭＰ－９の発現を示す免疫蛍光画像である。スケールバー、５０μｍ。
【図4g】偽手術及びＥＡＥマウスで１Ｈ１０処理または無処理された胸部脊髄におけるＭＭＰ－９免疫反応性のパーセント面積（平均±ＳＥＭ；グループ当たりｎ＝３－５）を示すグラフである。＊ｐ＜０．０５。
【図5a】本発明の１Ｈ１０処理による亜鉛の恒常性調節を検証したものであって、蛍光物質であるＦｌｕｏＺｉｎ－３の発現を分析したグラフである。
【図5b】本発明の１Ｈ１０処理による亜鉛の恒常性調節を検証したものであって、自由亜鉛蛍光標識薬物（ＦｌｕｏＺｉｎ－３）の発現を分析したグラフである。
【図6a】ＥＡＥ誘導後の１Ｈ１０の長期保護効果を分析したものであって、実験設計を示すタイムラインである。１Ｈ１０を全体期間中１日１回腹腔内投与した後、最初免疫化後４５日目にマウスを犠牲させた。
【図6b】ＥＡＥ誘導後の１Ｈ１０の長期保護効果を分析したものであって、ビークルに対するＥＡＥ臨床点数を分析したグラフである。
【図6c】ＥＡＥ誘導後の１Ｈ１０の長期保護効果を分析したものであって、１Ｈ１０投与群に対するＥＡＥ臨床点数を分析したグラフである。
【図6d】ＥＡＥ誘導後の１Ｈ１０の長期保護効果を分析したものであって、ビークルまたは１Ｈ１０－処理された免疫化されたマウスの百分率の疾患発生率を分析したグラフである。データは平均±ＳＥＭ（グループ当たりｎ＝６－８）。＊ｐ＜０．０５。
【図7】亜鉛の恒常性消失は多発性硬化症の原因になり得ることを示す研究結果に対する図である。
【図8】多発性硬化症（ＭＳ）の病因と亜鉛の可能な連関性を概略的に示す図である。
【図9】本発明の１Ｈ１０の構造類似性に基づき、これと類似した構造を有する類似化合物２５個の神経保護効果を分析したグラフである。
【図10】２５個の新規化合物及び１Ｈ１０処理による酸化ストレス（ｏｘｉｄａｔｉｖｅ ｓｔｒｅｓｓ）の抑制効果を分析したグラフである。
【図11】８つの新規化合物及び１Ｈ１０処理による酸化ストレスの抑制効果を分析したグラフである。
【図12】８つの新規化合物及び１Ｈ１０処理による興奮毒性（ｅｘｃｉｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ）の抑制効果を分析したグラフである。
【図13】８つの新規化合物及び１Ｈ１０処理によるアポトーシス（ａｐｏｐｔｏｓｉｓ）の抑制効果を分析したグラフである。
【図14】２５個の新規化合物及び１Ｈ１０処理による亜鉛結合分析（Ｚｉｎｃ ｂｉｎｄｉｎｇ ａｓｓａｙ）の結果を示すグラフである。
【図15】２５個の新規化合物及び１Ｈ１０処理によるＡＭＰＫα２の抑制活性を分析したグラフである。
【図16】４つの新規化合物及び１Ｈ１０処理による自体毒性分析結果を分析したグラフである。
【図17】本発明の１Ｈ１０処理による脊髄組織のアストロサイトの活性を分析したものであって、ＧＦＡＰ（緑色）に対する免疫蛍光写真である。２１日目に偽手術群及びＭＯＧ３５－５５免疫化されたマウス（ビークルまたは１Ｈ１０）の脊髄の代表的なアストロサイトの異常な増加（ａｓｔｒｏｇｌｉｏｓｉｓ）を観察した。スケールバー、５０μ
【図18】本発明の１Ｈ１０処理による脊髄組織のアストロサイトの活性を分析したものであって、同じ脊髄領域で決定されたＧＦＡＰの免疫蛍光強度の定量化されたグラフである（平均±ＳＥＭ；グループ当たりｎ＝４）。＊ｐ＜０．０５対ビークル処理されたＥＡＥマウス；＃ｐ＜０．０５ｖｓ．偽手術マウス（Ｋｒｕｓｋａｌ－Ｗａｌｌｉｓテストに続いてＢｏｎｆｅｒｒｏｎｉ ｐｏｓｔ－ｈｏｃテスト：Ｃｈｉ ｓｑｕａｒｅ＝１１．５１４、ｄｆ＝３，ｐ＝０．００９）
【図19】ＥＡＥマウス誘導後２１日目の日にマウスの脊髄におけるサイトカインのうちＩＦＮ ｇａｍｍａとＴＮＦ ａｌｐｈａの発現を免疫蛍光染色によって観察したものであって（ＡＪ）、ビークルで脊髄の白質でインターフェロンガンマ（ＩＦＮ－γ、緑色）（Ｃ、Ｈ）及び腫瘍怪死因子アルファ（ＴＮＦ－α、赤色）（Ｄ、Ｉ）の二重標識共焦点顕微鏡写真（ＡＥ）及び１Ｈ１０処理されたＥＡＥマウス（ＦＪ）。ＤＡＰＩ（青色）（Ｂ、Ｇ）で染色された核。スケールバー、２０μ
【図20】ＥＡＥマウス誘導後２１日目の日にマウスの脊髄におけるサイトカインのうちＩＦＮ ｇａｍｍａとＴＮＦ ａｌｐｈａの発現を免疫蛍光染色によって観察したものであって、同じ脊髄領域で決定されたＩＦＮ－γ及びＴＮＦ－αの免疫蛍光強度の定量化されたグラフである（平均±ＳＥＭ；グループ当たりｎ＝３－４）。＊ｐ＜０．０５対ビークル処理されたＥＡＥマウス（ペアリングされていないＳｔｕｄｅｎｔ‘ｓ ｔ－ｔｅｓｔ）。
【発明を実施するための形態】
【0012】
用語の定義：
本文書で使用される「ＡＭＰＫ（ＡＭＰ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｐｒｏｔｅｉｎ ｋｉｎａｓｅ）」は、触媒αサブユニット（α１またはα２）、及び２つの調節サブユニット（β及びγ）からなる異形三量体タンパク質（ｈｅｔｅｒｏｌｏｇｏｕｓ ｔｒｉｍｅｒ ｐｒｏｔｅｉｎ）である。ＡＭＰＫは、細胞エネルギーレベルが低ければリン酸化されて活性化され、更に細胞代謝作用を調節して遺伝子発現を長期間にわたって調節してＡＴＰのレベルを回復する。ＡＭＰ／ＡＴＰ比の増加、細胞ｐＨ及び酸化還元状態の変化、及びクレアチン／ホスホクレアチン比の増加がＡＭＰＫを活性化すると公知されている。
本文書で使用される「ＡＭＰＫ（ＡＭＰ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｐｒｏｔｅｉｎ ｋｉｎａｓｅ）」は、触媒αサブユニット（α１またはα２）、及び２つの調節サブユニット（β及びγ）からなる異形三量体タンパク質（ｈｅｔｅｒｏｌｏｇｏｕｓ ｔｒｉｍｅｒ ｐｒｏｔｅｉｎ）である。ＡＭＰＫは、細胞エネルギーレベルが低ければリン酸化されて活性化され、更に細胞代謝作用を調節して遺伝子発現を長期間にわたって調節してＡＴＰのレベルを回復する。ＡＭＰ／ＡＴＰ比の増加、細胞ｐＨ及び酸化還元状態の変化、及びクレアチン／ホスホクレアチン比の増加がＡＭＰＫを活性化すると公知されている。
【0013】
本文書で使用される「亜鉛（Ｚｉｎｃ）」は中枢神経系を含む体全体に豊富に存在する物質であって、神経細胞のシナプス可塑性や学習に非常に重要な役割を担う。しかし、亜鉛の過度な蓄積或いは深刻な欠乏は神経細胞に毒性を示す。亜鉛の細胞内蓄積は急性神経疾患である脳卒中（Ｓｔｒｏｋｅ）、癲癇（ｅｐｉｌｅｐｓｙ）、外傷性脳損傷（ｔｒａｕｍａｔｉｃ ｂｒａｉｎ ｉｎｊｕｒｙ）、低血糖症（ｈｙｐｏｇｌｙｃｅｍｉａ）の後に発生する神経損傷を起こす主な要因であり、慢性疾患であるアルツハイマー病で発生するプラークの生成を起こすことはすでによく知られている。
【0014】
発明の概要：
本発明の一観点によると、下記化学式１の構造を有する化合物を有効成分として含有する、多発性硬化症または脳脊髄炎治療用の薬学的組成物が提供される：
（前記式において、Ｒ１乃至Ｒ５はそれぞれ独立して水素、ヒドロキシ基、ハロゲン、炭素数１乃至７の置換されたアルキル基または置換されていないアルキル基、炭素数１乃至７の置換されたアルコキシ基または置換されていないアルコキシ基、アミン基、カルボキシル基であるか、Ｒ２及びＲ３は共に－Ｏ－（ＣＨ２）ｎ－Ｏ－環または置換または非置換のベンゼン環を形成し（ｎは１乃至３の整数）、Ｒ６は水素またはメチル基であり、Ｒ７は水素またはハロゲンであり、前記化学式において
は単一結合または二重結合である）。
本発明の一観点によると、下記化学式１の構造を有する化合物を有効成分として含有する、多発性硬化症または脳脊髄炎治療用の薬学的組成物が提供される：
【化11】
【化12】
【0015】
前記組成物において、前記置換されていないアルキル基はメチル、エチル、プロピル、またはブチルであり、前記置換されたアルキル基はフルオロメチル、ジフルオロメチル、トリフルオロメチル基、クロロメチル、ジクロロメチル、トリクロロメチル、またはヨードメチル、ジヨードメチル、またはトリヨードメチルであり、前記ハロゲンはフッ素（Ｆ）、塩素（Ｃｌ）、臭素（Ｂｒ）、またはヨード（Ｉ）である。
【0016】
前記組成物において、前記化合物は、（５Ｚ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－２－｛［２－トリフルオロメチル）フェニル］アミノ｝－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－２－｛［３－トリフルオロメチル）フェニル］アミノ｝－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－［（３－ブロモフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－２－［４－（メチルフェニル）アミノ］－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－２－［３－（メチルフェニル）アミノ］－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－アニリノ－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－［（２，４－ジメチルフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－［（２－クロロフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－［（３，４－ジメチルフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－［（４－ヒドロキシフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－２－［（２－メチルフェニル）アミノ］－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－［（２，３－ジメチルフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｅ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－２－（１－ナフチルアミノ）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－［（３－クロロフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｅ）－２－アニリノ－５－［（５－ブロモ－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン］－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｅ）－２－［（４－ブチルフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－２－［（４－ブチルフェニル）アミノ］－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－２－［（３－メトキシフェニル）アミノ］－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｚ）－５－［（２－メチル－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン］－２－［（４－メチルフェニル）アミノ］－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（５Ｅ）－５－［（２－メチル－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン］－２－［（４－メチルフェニル）アミノ］－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、３－［（５Ｚ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－４－オキソ－４，５－ジヒドロ－１，３－チアゾール－２－イル］アミノ安息香酸、２－［（５Ｅ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－４－オキソ－４，５－ジヒドロ－１，３－チアゾール－２－イル］アミノ安息香酸、（５Ｚ）－２－［（２－クロロフェニル）アミノ］－５－［（２－メチル－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン］－１，３－チアゾール－４（５Ｈ）－オン、２－ヒドロキシ－５－［（５Ｚ）－５－（１Ｈ－インドール－３－イルメチレン）－４－オキソ－４，５－ジヒドロ－１，３－チアゾール－２－イル］アミノ安息香酸、（２Ｅ，５Ｅ）－５－（（５－ブロモ－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（フェニルイミノ）チアゾリジン－４－オン、（２Ｚ，５Ｅ）－５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（（４－ブチルフェニル）イミノ）チアゾリジン－４－オン、（Ｚ）－５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（（４－ブチルフェニル）アミノ）チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（Ｚ）－５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（（３－メトキシフェニル）アミノ）チアゾール－４（５Ｈ）－オン、（２Ｅ，５Ｚ）－５－（（２－メチル－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（ｐ－トリルイミノ）チアゾリジン－４－オン、（２Ｚ，５Ｅ）－５－（（２－メチル－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（ｐ－トリルイミノ）チアゾリジン－４－オン、（Ｚ）－３－（（５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－４－オキソ－４，５－ジヒドロチアゾール－２－イル）アミノ）安息香酸、（Ｅ）－２－（（５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－４－オキソ－４，５－ジヒドロチアゾール－２－イル）アミノ）安息香酸、（２Ｚ，５Ｚ）－２－（（２－クロロフェニル）イミノ）－５－（（２－メチル－１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）チアゾリジン－４－オン、（Ｚ）－５－（（５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－４－オキソ－４，５－ジヒドロチアゾール－２－イル）アミノ）－２－ヒドロキシ安息香酸、または（Ｚ）－５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－Ｎ－（ベンゾ［ｄ］［１，３］ジオキソ－５－イル）－４－メチレン－４，５－ジヒドロチアゾール－２－アミンである。前記組成物において、前記化合物は脱髄（ｄｅｍｙｅｌｉｎａｔｉｏｎ）防止、神経保護効果（ｎｅｕｒｏｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ ｅｆｆｅｃｔ）、組織損傷の減少、アポトーシス（ａｐｏｐｔｏｓｉｓ）防止、または炎症性浸潤（Ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ ｉｎｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ）の抑制効果を有する。
【0017】
本発明の他の一観点によると、治療的に有効な量の下記化学式１の構造を有する化合物を多発性硬化症にかかった個体に投与するステップを含む前記個体の多発性硬化症の治療方法が提供される：
（前記式において、Ｒ１乃至Ｒ５はそれぞれ独立して水素、ヒドロキシ基、ハロゲン、炭素数１乃至７の置換されたアルキル基または置換されていないアルキル基、炭素数１乃至７の置換されたアルコキシ基または置換されていないアルコキシ基、アミン基、カルボキシル基であるか、Ｒ２及びＲ３は共に－Ｏ－（ＣＨ２）ｎ－Ｏ－環または置換または非置換のベンゼン環を形成し（ｎは１乃至３の整数）、Ｒ６は水素またはメチル基であり、Ｒ７は水素またはハロゲンであり、前記化学式において
は単一結合または二重結合である。）
【化13】
【化14】
【0018】
本発明のまた他の一観点によると、治療的に有効な量の下記化学式１の構造を有する化合物を脳脊髄炎にかかった個体に投与するステップを含む前記個体の脳脊髄炎の治療方法が提供される：
（前記式において、Ｒ１乃至Ｒ５はそれぞれ独立して水素、ヒドロキシ基、ハロゲン、炭素数１乃至７の置換されたアルキル基または置換されていないアルキル基、炭素数１乃至７の置換されたアルコキシ基または置換されていないアルコキシ基、アミン基、カルボキシル基であるか、Ｒ２及びＲ３は共に－Ｏ－（ＣＨ２）ｎ－Ｏ－環または置換または非置換のベンゼン環を形成し（ｎは１乃至３の整数）、Ｒ６は水素またはメチル基であり、Ｒ７は水素またはハロゲンであり、前記化学式において
は単一結合または二重結合である。）
【化15】
【化16】
【0019】
本発明の更に他の一観点によると、多発性硬化症の治療に使用される下記化学式１の構造を有する化合物が提供される：
（前記式において、Ｒ１乃至Ｒ５はそれぞれ独立して水素、ヒドロキシ基、ハロゲン、炭素数１乃至７の置換されたアルキル基または置換されていないアルキル基、炭素数１乃至７の置換されたアルコキシ基または置換されていないアルコキシ基、アミン基、カルボキシル基であるか、Ｒ２及びＲ３は共に－Ｏ－（ＣＨ２）ｎ－Ｏ－環または置換または非置換のベンゼン環を形成し（ｎは１乃至３の整数）、Ｒ６は水素またはメチル基であり、Ｒ７は水素またはハロゲンであり、前記化学式において
は単一結合または二重結合である。）
【化17】
【化18】
【0020】
本発明の更に他の一観点によると、脳脊髄炎の治療に使用される下記化学式１の構造を有する化合物が提供される：
（前記式において、Ｒ１乃至Ｒ５はそれぞれ独立して水素、ヒドロキシ基、ハロゲン、炭素数１乃至７の置換されたアルキル基または置換されていないアルキル基、炭素数１乃至７の置換されたアルコキシ基または置換されていないアルコキシ基、アミン基、カルボキシル基であるか、Ｒ２及びＲ３は共に－Ｏ－（ＣＨ２）ｎ－Ｏ－環または置換または非置換のベンゼン環を形成し（ｎは１乃至３の整数）、Ｒ６は水素またはメチル基であり、Ｒ７は水素またはハロゲンであり、前記化学式において
は単一結合または二重結合である。）
【化19】
【化20】
【0021】
本発明の薬学的組成物において、前記化合物の有効量は患者の患部の種類、適用部位、処理回数、処理時間、剤形、患者の状態、補助剤の種類などによって変わり得る。使用料は特に限らないが、０．０１μｇ／ｋｇ／ｄａｙ乃至１０ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙである。前記一日量は一日に１回、または適当な間隔をおいて一日２～３回に分けて投与してもよく、数日間隔で間欠投与してもよい。
【0022】
本発明の薬学的組成物において、前記化合物は、組成物の総重量に対して０．１－１００重量％で含有される。本発明の薬学的組成物は、薬学的組成物の製造に通常に使用する適切な担体、賦形剤、及び希釈剤を更に含む。また、薬学的組成物の製造には固体または液体の製剤用添加物を使用してもよい。製剤用添加物は有機または無機いずれであってもよい。
【0023】
賦形剤としては、例えば、乳糖、ショ糖、白糖、ブドウ糖、コーンスターチ（ｃｏｒｎｓｔａｒｃｈ）、デンプン、タルク、ソルビット、結晶セルロース、デキストリン、カオリン、炭酸カルシウム、及びに酸化ケイ素などが挙げられる。結合剤としては、例えば、ポリビニルアルコール、ポリビニールエーテル、エチルセルロース、メチルセルロース、アラビアゴム、トラガカント（ｔｒａｇａｃａｎｔｈ）、ゼラチン、シェラック（ｓｈｅｌｌａｃ）、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、クエン酸カルシウム、デキストリン、及びペクチン（ｐｅｃｔｉｎ）などが挙げられる。滑沢剤としては、例えば、ステアリン酸マグネシウム、タルク、ポリエチレングリコール、シリカ、硬化植物油などが挙げられる。着色剤としては、通常医薬品に添加することが許可されているものであればいずれを使用してもよい。これらの錠剤、顆粒剤には糖衣、ゼラチンコーティング、その他必要に応じて適切にコーティングを実施してもよい。また、必要に応じて防腐剤、抗酸化剤などを添加してもよい。
【0024】
本発明の薬学的組成物は、当業界で通常に製造されるいかなる剤形に製造されてもよく（例：文献［Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ、最新版；Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ、Ｅａｓｔｏｎ ＰＡ）、製剤の形態は特に限らない。これらの剤形は全ての製薬化学に一般に公知の処方箋である文献［Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ、１５ｔｈ Ｅｄｉｔｉｏｎ、１９７５、Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ、Ｅａｓｔｏｎ、Ｐｅｎｎｓｙｌｖａｎｉａ １８０４２（Ｃｈａｐｔｅｒ ８７：Ｂｌａｕｇ、Ｓｅｙｍｏｕｒ）に記載されている。
【0025】
本発明の薬学的組成物において、前記化合物は経口または非経口に投与されるが、好ましくは、非経口投与で静脈内注入、皮下注入、脳室内注入（ｉｎｔｒａｃｅｒｅｂｒｏｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ）、脳脊髄液内注入（ｉｎｔｒａｃｅｒｅｂｒｏｓｐｉｎａｌ ｆｌｕｉｄ ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ）、筋肉内注入、及び腹腔注入などで投与される。
【0026】
退行性神経系疾患である多発性硬化症を治療するためにこれまで多くの薬と治療法が開発されてきたが、未だに特に効果がない実情であって、多発性硬化症で最近現れている現象のように、有害な免疫細胞が脳に侵入することを防ぐために多数の研究者が研究を行っている。本発明者らは、亜鉛のキレート投与及び神経末端に位置して亜鉛のシナプス小胞（ｓｙｎａｐｔｉｃ ｖｅｓｉｃｌｅ）への移動を調節するＺｉｎｃ Ｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｒ ３（ＺｎＴ３）を遺伝的に除去したマウスにおいて多発性硬化症の症状と脊髄白質の組織損傷が抑制されたという結果を次々と発表しており、亜鉛と多発性硬化症への関心が高まっている実情である。また、このような過程でＮＡＤＰＨ ｏｘｉｄａｓｅの活性化による活性酸素の生成が多発性硬化症で発生するミエリン鞘の２次的な損傷に関わることが報告されている。よって、最近発表された様々な研究結果によると、亜鉛が細胞末端から分泌された後、細胞質内に蓄積され、それによってタンパク質からの遊離による亜鉛の毒性のためミエリン鞘が損傷することが知られている（図７）。本発明の先行研究では亜鉛除去剤（Ｃｌｉｏｑｕｉｎｏ、ＣＱ）の投与及び亜鉛のシナプス小胞への移動に関わるｚｉｎｃ ｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｒ ３（ＺｎＴ３）の遺伝子を除去した動物で脱髄と微細グリア細胞の活性を減少させ、脳炎を誘発するＴ細胞の浸透抑制などを伴うＥＡＥの症状を改善したことを報告しており、このような過程にＮＡＤＰＨ ｏｘｉｄａｓｅの活性化による活性酸素の生成などが多発性硬化症で発生するミエリン鞘の２次的な損傷に関わるという事実を報告したる。前記先行研究はそれぞれ以下のようである：（Ｃｈｏｉ ＢＹ ｅｔ ａｌ．，Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ Ｄｉｓ．Ｊｕｎ；５４：３８２－９１．Ｊ Ｎｅｕｒｏｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ．Ｍａｙ ２８；１２：１０４．２０１５，Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ Ｄｉｓ．Ｏｃｔ；９４：２０５－１２．２０１６）。
【0027】
また、亜鉛神経毒性、興奮毒性などの神経細胞損傷の過程はＡＴＰの減少とＡＭＰの増加現象が伴ってＡＭＰによって活性化されるＡＭＰＫ活性が著しく示されるが、この際、増加されたＡＭＰＫ活性を下げたら神経細胞の損傷が減ることが分かった（Ｅｏｍ ＪＷ ｅｔ ａｌ，Ｍｏｌ Ｂｒａｉｎ．Ｆｅｂ ９；９：１４，２０１６）。本発明者らは脳神経細胞損傷の過程でＡＭＰＫに関する細胞死の機序を究明する研究を行い、関連機序を２０１６年Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｒａｉｎ（ＩＦ：３．４１０）に報告している。また、最近発表された様々な研究結果によると、認知性、パーキンソン病、ハンチントン舞踏病、多発性硬化症などの神経退行性疾患において、ＡＭＰＫの活性が中枢神経系の損傷及び病的関与と関わっていると報告されている。そこで、本発明者らは代謝調節に最も核心的なＡＭＰＫ中心の神経毒性機序の研究を行い、前記先行研究に基づいて新規のＡＭＰＫ抑制剤に対する研究開発を行って、新しい化合物をスクリーニングしてＡＭＰＫ抑制剤（（Ｚ）－５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（（３－ヒドロキシフェニル）アミノ）チアゾール－４（５Ｈ）－オン、「１Ｈ１０」と命名する、化学式２）を発掘したが、次にこの薬物の作用機序（Ｍｅｃｈａｎｉｓｍ ｏｆ ａｃｔｉｏｎ、ＭＯＡ）の研究過程で有効物質が細胞内で自由状態の亜鉛の濃度を調節することで、脳卒中によって発生する亜鉛毒性、興奮毒性、酸化ストレスなどの多様な原因によって発生する神経細胞死を減少することを報告している（Ｅｏｍ ＪＷ ｅｔ ａｌ．， ＡＣＳ Ｃｈｅｍ Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．Ｍａｙ １５；１０（５）：２３４５－２３５４， ２０１９）（図８）。
【0028】
【化21】
【0029】
本発明は、多発性硬化症の動物モデルである自己免疫性脳脊髄炎（ＥＡＥ）を誘導した後、前記１Ｈ１０が多様なレベルで疾患の発病を抑制できることを示す。詳しくは、１Ｈ１０の処理によって行動実験で優れた症状の緩和効果を示しており、発病率も抑制された。また、脊髄の脱髄現象、免疫細胞の活性が減少されており、脱髄が進行された部位に免疫細胞が浸潤することを防止したことを確認した。これは前記１Ｈ１０薬物のＡＭＰＫ活性の抑制機序と関わっていることを示唆している。併せて、脊髄の白質内への亜鉛の蓄積も１Ｈ１０処理によって減少されて、ＭＭＰ－９の抑制とそれによって免疫細胞が蓄積されることを防止することを確認しており、１Ｈ１０が亜鉛に直接作用してキレート化することを観察した。最後に、４５日まで投与された長期的なＥＡＥモデルでも１Ｈ１０の効果が卓越であることを立証した。
【0030】
よって、本発明のＡＭＰＫ抑制機能と亜鉛恒常性調節機能に基づく多発性硬化症治療用の薬学的組成物は、ＡＭＰＫ活性抑制機能と亜鉛恒常性調節機能を有する新規化合物を処理して多発性硬化症による脊髄の損傷と行動障害を克服することができる新しい治療剤を提供する。前記新規薬物は神経細胞の損傷過程で亜鉛キレート（ｃｈｅｌａｔｏｒ）として作用するが、特に１Ｈ１０の場合、キレート化だけでなく亜鉛イオノフォアとしても作用するため、積極的な亜鉛恒常性調節物質として開発することができる。
【0031】
以下、実施例によって本発明をより詳細に説明する。しかし、本発明は以下に開示される実施例に限らず、互いに異なる様々な形態に具現されるものであって、以下の実施例は本発明の開示を完全にし、通常の知識を有する者に発明の範疇を完全に知らせるために提供されるものである。
【0032】
一般的方法
公示の材料
本発明で使用した実験動物は、ＤＢＬ Ｃｏ．， Ｌｔｄ．から供給された８週齢のＣ５７ＢＬ／６系統の雌マウスである。このようなマウスは温度と湿度が調節される環境で飼育されており、飼料と水は自由に供給した。
公示の材料
本発明で使用した実験動物は、ＤＢＬ Ｃｏ．， Ｌｔｄ．から供給された８週齢のＣ５７ＢＬ／６系統の雌マウスである。このようなマウスは温度と湿度が調節される環境で飼育されており、飼料と水は自由に供給した。
【0033】
大脳皮質神経細胞（Ｃｅｒｅｂｒａｌ Ｃｏｒｔｅｘ Ｎｅｕｒｏｎｓ）の培養
本発明で使用したマウス大脳皮質神経細胞は、マウス胚の脳から抽出培養して５％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）と５％ウマ血清（ＨＳ）を添加したＤｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ’ｓ ｍｅｄｉｕｍ（ＤＭＥＭ，Ｇｉｂｃｏ，Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ，ＮＹ，ＵＳ）を利用し、９５％湿度、５％ＣＯ２、及び３７℃温度条件で培養した。前記細胞の活性化と分化のために２４－ｗｅｌｌの組織培養プレートで２×１０４細胞の密度で増殖しており、亜鉛及び化合物を処理する前にはＦＢＳとＨＳのないＭＥＭ培地で培養した。
本発明で使用したマウス大脳皮質神経細胞は、マウス胚の脳から抽出培養して５％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）と５％ウマ血清（ＨＳ）を添加したＤｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ’ｓ ｍｅｄｉｕｍ（ＤＭＥＭ，Ｇｉｂｃｏ，Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ，ＮＹ，ＵＳ）を利用し、９５％湿度、５％ＣＯ２、及び３７℃温度条件で培養した。前記細胞の活性化と分化のために２４－ｗｅｌｌの組織培養プレートで２×１０４細胞の密度で増殖しており、亜鉛及び化合物を処理する前にはＦＢＳとＨＳのないＭＥＭ培地で培養した。
【0034】
多発性硬化症の動物モデルの製造
本発明者らは、Ｃ５７ＢＬ／６雌マウスにＭｙｅｌｉｎ ｏｌｉｇｏｄｅｎｄｒｏｃｙｔｅ ｇｌｙｃｏｐｒｏｔｅｉｎ ３５－５５（ＭＯＧ３５－５５）ペプチド抗原を皮下注射して、多発性硬化症の動物モデルである自己免疫性脳脊髄炎（ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ ａｕｔｏｉｍｍｕｎｅ ｅｎｃｅｐｈａｌｏｍｙｅｌｉｔｉｓ，ＥＡＥ）を誘導した（図１ａ）。そのために、まずＭＯＧ３５－５５（Ａｎａ ｓｐｅｃ，ＵＳＡ）とＣｏｍｐｌｅｔｅ ｆｒｅｕｎｄ’ｓ ａｄｊｕｖａｎｔ（ＣＦＡ）を用意し、ＭＯＧ３５－５５（２ｍｇ／ｍｌ）はＰｈｏｓｐｈａｔｅ ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ（１×ＰＢＳ，Ｓｉｇｍａ）を入れて溶かした後、前記ＣＦＡは２５ｍｌ Ｉｎｃｏｍｐｌｅｔｅ ｆｒｅｕｎｄ’ｓ ａｄｊｕｖａｎｔ（ＩＦＡ．Ｓｉｇｍａ）を５０ｍｌ ｃｏｎｉｃａｌ ｔｕｂｅに入れた。次に、フードでＭｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ Ｈ３７Ｒａ（１００ｍｇ；Ｄｉｆｃｏ，ＵＳＡ）アンプルを用心に割って加えた後、ボルテックスして冷蔵保管した。次に、マウスの両脇にＭＯＧ３５－５５及びＭｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ Ｈ３７Ｒａを含有するＣＦＡを同じ量で混合し注射した。そして、Ｐｅｒｔｕｓｓｉｓ ｔｏｘｉｎ（４μｇ／ｍｌ，Ｌｉｓｔ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，ＵＳＡ）を免疫当日と免疫後２日目に腹腔に注射した。前記免疫後、毎日マウスの体重と臨床症状を測定しており、ＥＡＥの進行程度は特定の臨床症状を基準に評価した。それに関する詳細な内容は以下に記載されている。
本発明者らは、Ｃ５７ＢＬ／６雌マウスにＭｙｅｌｉｎ ｏｌｉｇｏｄｅｎｄｒｏｃｙｔｅ ｇｌｙｃｏｐｒｏｔｅｉｎ ３５－５５（ＭＯＧ３５－５５）ペプチド抗原を皮下注射して、多発性硬化症の動物モデルである自己免疫性脳脊髄炎（ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ ａｕｔｏｉｍｍｕｎｅ ｅｎｃｅｐｈａｌｏｍｙｅｌｉｔｉｓ，ＥＡＥ）を誘導した（図１ａ）。そのために、まずＭＯＧ３５－５５（Ａｎａ ｓｐｅｃ，ＵＳＡ）とＣｏｍｐｌｅｔｅ ｆｒｅｕｎｄ’ｓ ａｄｊｕｖａｎｔ（ＣＦＡ）を用意し、ＭＯＧ３５－５５（２ｍｇ／ｍｌ）はＰｈｏｓｐｈａｔｅ ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ（１×ＰＢＳ，Ｓｉｇｍａ）を入れて溶かした後、前記ＣＦＡは２５ｍｌ Ｉｎｃｏｍｐｌｅｔｅ ｆｒｅｕｎｄ’ｓ ａｄｊｕｖａｎｔ（ＩＦＡ．Ｓｉｇｍａ）を５０ｍｌ ｃｏｎｉｃａｌ ｔｕｂｅに入れた。次に、フードでＭｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ Ｈ３７Ｒａ（１００ｍｇ；Ｄｉｆｃｏ，ＵＳＡ）アンプルを用心に割って加えた後、ボルテックスして冷蔵保管した。次に、マウスの両脇にＭＯＧ３５－５５及びＭｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ Ｈ３７Ｒａを含有するＣＦＡを同じ量で混合し注射した。そして、Ｐｅｒｔｕｓｓｉｓ ｔｏｘｉｎ（４μｇ／ｍｌ，Ｌｉｓｔ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，ＵＳＡ）を免疫当日と免疫後２日目に腹腔に注射した。前記免疫後、毎日マウスの体重と臨床症状を測定しており、ＥＡＥの進行程度は特定の臨床症状を基準に評価した。それに関する詳細な内容は以下に記載されている。
【0035】
ＥＡＥの臨床的症状評価
本発明で使用したＥＡＥの臨床的症状評価は、先行研究（Ｊｏｎｅｓ ｅｔ ａｌ． Ｊ Ｎｅｕｒｏｉｍｍｕｎｏｌ．Ａｕｇ １３；１９９（１－２）：８３－９３．２００８）に基づいて評価した。詳しくは、ＥＡＥの臨床的症状評価のために、マウスの動作は下記基準によって毎日評価された。ｓｃｏｒｅ ０、症状なし；ｓｃｏｒｅ ０．５、尻尾が部分的に麻痺する、または歩きが若干異常になる；ｓｃｏｒｅ １．０、尻尾が完全に麻痺する、または尻尾が部分的に麻痺する、並びに後足が若干弱くなる；ｓｃｏｒｅ １．５、尻尾が完全に麻痺する、並びに後足が若干弱くなる；ｓｃｏｒｅ ２．０、尻尾が麻痺する、並びに後足が普通に弱くなる（ケージの上で歩くときに足がよくはまり込むことで証明する）；ｓｃｏｒｅ ２．５、後足に重さは感じられないが若干の動きがある；ｓｃｏｒｅ ３．０、後足が完全に麻痺する；ｓｃｏｒｅ ３．５、後足が麻痺する、並びに前足が若干弱くなる；ｓｃｏｒｅ ４．０、四肢が完全に麻痺したが頭は動く；ｓｃｏｒｅ ４．５、瀕死状態、ｓｃｏｒｅ ５．０、死亡。
本発明で使用したＥＡＥの臨床的症状評価は、先行研究（Ｊｏｎｅｓ ｅｔ ａｌ． Ｊ Ｎｅｕｒｏｉｍｍｕｎｏｌ．Ａｕｇ １３；１９９（１－２）：８３－９３．２００８）に基づいて評価した。詳しくは、ＥＡＥの臨床的症状評価のために、マウスの動作は下記基準によって毎日評価された。ｓｃｏｒｅ ０、症状なし；ｓｃｏｒｅ ０．５、尻尾が部分的に麻痺する、または歩きが若干異常になる；ｓｃｏｒｅ １．０、尻尾が完全に麻痺する、または尻尾が部分的に麻痺する、並びに後足が若干弱くなる；ｓｃｏｒｅ １．５、尻尾が完全に麻痺する、並びに後足が若干弱くなる；ｓｃｏｒｅ ２．０、尻尾が麻痺する、並びに後足が普通に弱くなる（ケージの上で歩くときに足がよくはまり込むことで証明する）；ｓｃｏｒｅ ２．５、後足に重さは感じられないが若干の動きがある；ｓｃｏｒｅ ３．０、後足が完全に麻痺する；ｓｃｏｒｅ ３．５、後足が麻痺する、並びに前足が若干弱くなる；ｓｃｏｒｅ ４．０、四肢が完全に麻痺したが頭は動く；ｓｃｏｒｅ ４．５、瀕死状態、ｓｃｏｒｅ ５．０、死亡。
【0036】
クレシルバイオレット染色
本発明らは、ＥＡＥ誘導後２１日目の日にマウスをウレタンで麻酔した後、４％パラホルムアルデヒドを心臓に灌流して脊髄を固定し、前記脊髄を摘出した後、脊髄における単核細胞（ｍｏｎｏｎｕｃｌｅａｒ ｃｅｌｌ）の浸潤をクレシルバイオレット染色によって観察した。そのために、まず脊髄をクリオスタットで厚さ３０ｕｍで薄切りして切片を得た後、ゼラチンでコーティングされたスライドに載せ、３０分間室温で乾燥させた。１００％、７０％エタノール溶液に順番にそれぞれ３分間浸した後、０．１％クレシルバイオレット溶液に１５分間染色した。次に、過度に染色された部分を除去するために流水に水洗し、５０％、７０％、８０％、９０％、１００％エタノール溶液にそれぞれ３－５分間脱水過程、キシレンに１５分間２回ずつ透明化過程を経た後、封入し光学顕微鏡で観察した。
本発明らは、ＥＡＥ誘導後２１日目の日にマウスをウレタンで麻酔した後、４％パラホルムアルデヒドを心臓に灌流して脊髄を固定し、前記脊髄を摘出した後、脊髄における単核細胞（ｍｏｎｏｎｕｃｌｅａｒ ｃｅｌｌ）の浸潤をクレシルバイオレット染色によって観察した。そのために、まず脊髄をクリオスタットで厚さ３０ｕｍで薄切りして切片を得た後、ゼラチンでコーティングされたスライドに載せ、３０分間室温で乾燥させた。１００％、７０％エタノール溶液に順番にそれぞれ３分間浸した後、０．１％クレシルバイオレット溶液に１５分間染色した。次に、過度に染色された部分を除去するために流水に水洗し、５０％、７０％、８０％、９０％、１００％エタノール溶液にそれぞれ３－５分間脱水過程、キシレンに１５分間２回ずつ透明化過程を経た後、封入し光学顕微鏡で観察した。
【0037】
免疫組織化学法
本発明者らは、ＥＡＥを誘導後２１日目の日にマウスをウレタンで麻酔した後、４％パラホルムアルデヒドを心臓に灌流して脊髄を固定し、前記脊髄を摘出した後、脊髄内の免疫細胞の浸潤を観察するためにＴ細胞のマーカーとして使用されるＣＤ４、ＣＤ８、及びＢ細胞のマーカーとして使用されるＣＤ２０の抗体を使用して免疫組織化学法を行った。凍結切片は、内因性ペルオキシダーゼを除去するために３％過酸化水素に１５分間常温で反応させた後、１次抗体であるｒａｔ ａｎｔｉ－ＣＤ４（１：５０，ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ，ＣＡ，ＵＳＡ），ＣＤ８（１：５０，ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ），ｇｏａｔ ａｎｔｉ－ＣＤ２０（１：５０，ＳａｎｔａＣｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，ＵＳＡ）を４℃冷蔵で１５時間反応させた。次に、ｂｉｏｔｉｎｙｌａｔｅｄ ａｎｔｉ－ｒａｔ ＩｇＧまたはａｎｔｉ－ｇｏａｔ ＩｇＧ（１：２５０，Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，ＵＳＡ）を室温で２時間反応させた。次に、ａｖｉｄｉｎ－ｂｉｏｔｉｎ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ｃｏｎｊｕｇａｔｅ（ＡＢＣ ｒｅｇｅｎｔ，Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）で２時間室温で反応させており、免疫反応が終わった組織は３，３’－ジアミノベンジジン（ＤＡＢ，Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）溶液で発色させた。また、ＥＡＥによって発生する血液脳関門の損傷を測定するために、血清内の免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）の漏出を確認した。前記ＩｇＧは血漿に最も豊富な免疫グロブリンであって、それに確認することが容易なため脊髄内のＩｇＧの存在は血液脳関門の損傷及びタンパク質の血管外漏出を監視するのに使用される（Ｒｕｔｈ ａｎｄ Ｆｅｉｎｅｒｍａｎ，Ａｃｔａ Ｎｅｕｒｏｐａｔｈｏｌ．７６（４）：３８０－７．１９８８）。次に、凍結切片は室温で２時間ｂｉｏｔｉｎｙｌａｔｅｄ ｈｏｒｓｅ ａｎｔｉ－ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ（１：２５０，Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，ＵＳＡ）を反応させた後、前記と同じ方法でＡＢＣ ｒｅｇｅｎｔに反応させてから、ＤＡＢ溶液で発色させた。各ステップの間はＰＢＳで十分に洗浄し、エタノールとキシレンの脱水及び透明化過程を経た後、封入し光学顕微鏡で観察したが、マウス１匹当たり３～５個以上の視野でＩｍａｇｅ Ｊプログラム（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ（ＮＩＨ），ＵＳＡ）を利用して分析した。
本発明者らは、ＥＡＥを誘導後２１日目の日にマウスをウレタンで麻酔した後、４％パラホルムアルデヒドを心臓に灌流して脊髄を固定し、前記脊髄を摘出した後、脊髄内の免疫細胞の浸潤を観察するためにＴ細胞のマーカーとして使用されるＣＤ４、ＣＤ８、及びＢ細胞のマーカーとして使用されるＣＤ２０の抗体を使用して免疫組織化学法を行った。凍結切片は、内因性ペルオキシダーゼを除去するために３％過酸化水素に１５分間常温で反応させた後、１次抗体であるｒａｔ ａｎｔｉ－ＣＤ４（１：５０，ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ，ＣＡ，ＵＳＡ），ＣＤ８（１：５０，ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ），ｇｏａｔ ａｎｔｉ－ＣＤ２０（１：５０，ＳａｎｔａＣｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，ＵＳＡ）を４℃冷蔵で１５時間反応させた。次に、ｂｉｏｔｉｎｙｌａｔｅｄ ａｎｔｉ－ｒａｔ ＩｇＧまたはａｎｔｉ－ｇｏａｔ ＩｇＧ（１：２５０，Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，ＵＳＡ）を室温で２時間反応させた。次に、ａｖｉｄｉｎ－ｂｉｏｔｉｎ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ｃｏｎｊｕｇａｔｅ（ＡＢＣ ｒｅｇｅｎｔ，Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）で２時間室温で反応させており、免疫反応が終わった組織は３，３’－ジアミノベンジジン（ＤＡＢ，Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）溶液で発色させた。また、ＥＡＥによって発生する血液脳関門の損傷を測定するために、血清内の免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）の漏出を確認した。前記ＩｇＧは血漿に最も豊富な免疫グロブリンであって、それに確認することが容易なため脊髄内のＩｇＧの存在は血液脳関門の損傷及びタンパク質の血管外漏出を監視するのに使用される（Ｒｕｔｈ ａｎｄ Ｆｅｉｎｅｒｍａｎ，Ａｃｔａ Ｎｅｕｒｏｐａｔｈｏｌ．７６（４）：３８０－７．１９８８）。次に、凍結切片は室温で２時間ｂｉｏｔｉｎｙｌａｔｅｄ ｈｏｒｓｅ ａｎｔｉ－ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ（１：２５０，Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，ＵＳＡ）を反応させた後、前記と同じ方法でＡＢＣ ｒｅｇｅｎｔに反応させてから、ＤＡＢ溶液で発色させた。各ステップの間はＰＢＳで十分に洗浄し、エタノールとキシレンの脱水及び透明化過程を経た後、封入し光学顕微鏡で観察したが、マウス１匹当たり３～５個以上の視野でＩｍａｇｅ Ｊプログラム（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ（ＮＩＨ），ＵＳＡ）を利用して分析した。
【0038】
免疫蛍光染色
本発明者らは、ＥＡＥを誘導後２１日目の日にマウスをウレタンで麻酔した後、４％パラホルムアルデヒドを心臓に灌流して脊髄を固定し、前記脊髄を摘出した後、組織の脱髄現象及び微細グリア細胞／マクロファージの活性を検査するために、ｍｙｅｌｉｎ ｂａｓｉｃ ｐｒｏｔｅｉｎ（ＭＢＰ）及びＦ４／８０（Ｍｉｃｒｏｇｌｉａ／Ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ）抗体で免疫蛍光染色を実施した。また、損傷した脊髄の白質部分に強く活性化された微細グリア細胞／マクロファージの表現型（ｐｈｅｎｏｔｙｐｅ）を分析するために、微細グリア細胞／マクロファージのマーカーとして使用されるＩｂａ－１（Ｉｏｎｉｚｅｄ ｃａｌｃｉｕｍ ｂｉｎｄｉｎｇ ａｄａｐｔｏｒ ｍｏｌｅｃｕｌｅ－１）及びＣＤ６８（Ｃｌｕｓｔｅｒ ｏｆ Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ６８）抗体を利用して二重免疫蛍光染色を行った。併せて、脊髄内に浸潤するＴ細胞において、ＡＭＰ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｐｒｏｔｅｉｎ ｋｉｎａｓｅ（ＡＭＰＫ）の活性がこのような細胞の生存にいかなる影響を及ぼすのかを調べるためにＣＤ８とｐｈｏｓｐｈｏ－ＡＭＰＫ抗体を利用して二重免疫蛍光染色を行っており、Ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｅｐｔｉｄａｓｅ ９（ＭＭＰ－９）の活性を比較分析するためにＭＭＰ－９の抗体を利用して免疫蛍光染色を実施した。脊髄内アストロサイトの活性を検査するためにｇｌｉａｌ ｆｉｂｒｉｌｌａｒｙ ａｃｉｄｉｃ ｐｒｏｔｅｉｎ（ＧＦＡＰ）抗体を利用して免疫蛍光染色を行っており、ｔｕｍｏｒ ｎｅｃｒｏｓｉｓ ｆａｃｔｏｒ（ＴＮＦ） ａｌｐｈａ、Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ（ＩＦＮ） ｇａｍｍａなどのサイトカインの発現を比較分析するためにＴＮＦ－αとＩＦＮ ｇａｍｍａ抗体を利用して二重免疫蛍光染色を行った。上述した免疫組織化学法と同じ方法で、凍結切片は内因性ペルオキシダーゼを除去するために３％過酸化水素に１５分間常温で反応させた後、１次抗体であるｒａｔ ａｎｔｉ－ＭＢＰ（１：２００，Ａｂｃａｍ，ＵＫ），Ｆ４／８０（１：１００，ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ，ＵＳＡ），ｇｏａｔ ａｎｔｉ－Ｉｂａ１（１：５００，Ａｂｃａｍ），ＣＤ６８（１：１００，Ｂｉｏ－Ｒａｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，ＵＳＡ），ＣＤ８（１：５０，ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ），ｐＡＭＰＫ（１：１００，Ａｂｃａｍ），ＭＭＰ－９（１：１００，Ａｂｃａｍ）を４℃冷蔵で１５時間反応させた。次に、それぞれの１次抗体のホストに合うＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ４８８－，５９４－，６４７－ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ ｓｅｃｏｎｄａｒｙ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ （１：２５０，Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，ＵＳＡ）を室温で２時間反応させた。各ステップの間はＰＢＳで十分に洗浄し、キシレンの透明化過程を経た後、ＤＰＸで封入し共焦点レーザー走査型顕微鏡（Ｃｏｎｆｏｃａｌ Ｌａｓｅｒ Ｓｃａｎｎｉｎｇ Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ，Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ ＬＳＭ７１０， Ｇｅｒｍａｎｙ）で観察したが、マウス１匹当たり３～５個以上の視野でＩｍａｇｅ Ｊプログラム（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ（ＮＩＨ），ＵＳＡ）を利用して分析した。
本発明者らは、ＥＡＥを誘導後２１日目の日にマウスをウレタンで麻酔した後、４％パラホルムアルデヒドを心臓に灌流して脊髄を固定し、前記脊髄を摘出した後、組織の脱髄現象及び微細グリア細胞／マクロファージの活性を検査するために、ｍｙｅｌｉｎ ｂａｓｉｃ ｐｒｏｔｅｉｎ（ＭＢＰ）及びＦ４／８０（Ｍｉｃｒｏｇｌｉａ／Ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ）抗体で免疫蛍光染色を実施した。また、損傷した脊髄の白質部分に強く活性化された微細グリア細胞／マクロファージの表現型（ｐｈｅｎｏｔｙｐｅ）を分析するために、微細グリア細胞／マクロファージのマーカーとして使用されるＩｂａ－１（Ｉｏｎｉｚｅｄ ｃａｌｃｉｕｍ ｂｉｎｄｉｎｇ ａｄａｐｔｏｒ ｍｏｌｅｃｕｌｅ－１）及びＣＤ６８（Ｃｌｕｓｔｅｒ ｏｆ Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ６８）抗体を利用して二重免疫蛍光染色を行った。併せて、脊髄内に浸潤するＴ細胞において、ＡＭＰ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｐｒｏｔｅｉｎ ｋｉｎａｓｅ（ＡＭＰＫ）の活性がこのような細胞の生存にいかなる影響を及ぼすのかを調べるためにＣＤ８とｐｈｏｓｐｈｏ－ＡＭＰＫ抗体を利用して二重免疫蛍光染色を行っており、Ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｅｐｔｉｄａｓｅ ９（ＭＭＰ－９）の活性を比較分析するためにＭＭＰ－９の抗体を利用して免疫蛍光染色を実施した。脊髄内アストロサイトの活性を検査するためにｇｌｉａｌ ｆｉｂｒｉｌｌａｒｙ ａｃｉｄｉｃ ｐｒｏｔｅｉｎ（ＧＦＡＰ）抗体を利用して免疫蛍光染色を行っており、ｔｕｍｏｒ ｎｅｃｒｏｓｉｓ ｆａｃｔｏｒ（ＴＮＦ） ａｌｐｈａ、Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ（ＩＦＮ） ｇａｍｍａなどのサイトカインの発現を比較分析するためにＴＮＦ－αとＩＦＮ ｇａｍｍａ抗体を利用して二重免疫蛍光染色を行った。上述した免疫組織化学法と同じ方法で、凍結切片は内因性ペルオキシダーゼを除去するために３％過酸化水素に１５分間常温で反応させた後、１次抗体であるｒａｔ ａｎｔｉ－ＭＢＰ（１：２００，Ａｂｃａｍ，ＵＫ），Ｆ４／８０（１：１００，ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ，ＵＳＡ），ｇｏａｔ ａｎｔｉ－Ｉｂａ１（１：５００，Ａｂｃａｍ），ＣＤ６８（１：１００，Ｂｉｏ－Ｒａｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，ＵＳＡ），ＣＤ８（１：５０，ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ），ｐＡＭＰＫ（１：１００，Ａｂｃａｍ），ＭＭＰ－９（１：１００，Ａｂｃａｍ）を４℃冷蔵で１５時間反応させた。次に、それぞれの１次抗体のホストに合うＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ４８８－，５９４－，６４７－ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ ｓｅｃｏｎｄａｒｙ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ （１：２５０，Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，ＵＳＡ）を室温で２時間反応させた。各ステップの間はＰＢＳで十分に洗浄し、キシレンの透明化過程を経た後、ＤＰＸで封入し共焦点レーザー走査型顕微鏡（Ｃｏｎｆｏｃａｌ Ｌａｓｅｒ Ｓｃａｎｎｉｎｇ Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ，Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ ＬＳＭ７１０， Ｇｅｒｍａｎｙ）で観察したが、マウス１匹当たり３～５個以上の視野でＩｍａｇｅ Ｊプログラム（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ（ＮＩＨ），ＵＳＡ）を利用して分析した。
【0039】
亜鉛染色法（ＴＳＱ）
本発明者らは、ＥＡＥ誘導マウスの臨床的症状評価が終わった後、脊髄組織を亜鉛染色法であるＮ－（６メトキシ８キノリル）パラトルエンスルホンアミド（ＴＳＱ）組織化学法によって検査した。正常の脊髄において、亜鉛は灰白質（ｇｒａｙ ｍａｔｔｅｒ）の神経軸索の末端に存在し、白質では極少量のみ観察される。ＥＡＥ誘導後２１日目の日にマウスを５％イソフルランで麻酔した後、灌流せずに脊髄を摘出して、ドライアイスで急速冷却した。固定されていない凍結組織は－１５℃クライオスタットで厚さ２０μｍで薄切りして切片を得た。凍結切片を直ちにゼラチンでコーティングされたスライドに載せ、３０分間室温で乾燥させた後、ＴＳＱ溶液に６０秒間浸した後、０．９％生理食塩水で６０秒間洗浄する。ＴＳＱ蛍光度は３６０ｎｍ／４９０ｎｍの波長を有するＯＬＹＭＰＵＳ ＩＸ７０蛍光顕微鏡を使用して監察しており、ＩＮＦＩＮＩＴＹ３－１ ＣＣＤ冷却カラーデジタルカメラ（Ｌｕｍｅｎｅｒａ Ｃｏ．，Ｃａｎａｄａ）とＩＮＦＩＮＩＴＹ分析ソフトウエアを使用して評価した。
本発明者らは、ＥＡＥ誘導マウスの臨床的症状評価が終わった後、脊髄組織を亜鉛染色法であるＮ－（６メトキシ８キノリル）パラトルエンスルホンアミド（ＴＳＱ）組織化学法によって検査した。正常の脊髄において、亜鉛は灰白質（ｇｒａｙ ｍａｔｔｅｒ）の神経軸索の末端に存在し、白質では極少量のみ観察される。ＥＡＥ誘導後２１日目の日にマウスを５％イソフルランで麻酔した後、灌流せずに脊髄を摘出して、ドライアイスで急速冷却した。固定されていない凍結組織は－１５℃クライオスタットで厚さ２０μｍで薄切りして切片を得た。凍結切片を直ちにゼラチンでコーティングされたスライドに載せ、３０分間室温で乾燥させた後、ＴＳＱ溶液に６０秒間浸した後、０．９％生理食塩水で６０秒間洗浄する。ＴＳＱ蛍光度は３６０ｎｍ／４９０ｎｍの波長を有するＯＬＹＭＰＵＳ ＩＸ７０蛍光顕微鏡を使用して監察しており、ＩＮＦＩＮＩＴＹ３－１ ＣＣＤ冷却カラーデジタルカメラ（Ｌｕｍｅｎｅｒａ Ｃｏ．，Ｃａｎａｄａ）とＩＮＦＩＮＩＴＹ分析ソフトウエアを使用して評価した。
【0040】
亜鉛キレート化
本発明者らは、本発明の一実施例による１Ｈ１０（（Ｚ）－５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（（３－ヒドロキシフェニル）アミノ）チアゾール－４（５Ｈ）－オン）の処理による亜鉛キレート化の可能性を検証するために、自由亜鉛に結合したら蛍光を示す物質であるＦｌｕｏＺｉｎ－３を培養されたラットの神経細胞に処理し、亜鉛（３００μＭ）に１５分間露出させ、前記亜鉛を除去した後、６０分間神経細胞内の亜鉛濃度を測定した。または、試験管に２０μＭの亜鉛（ＺｎＣｌ２）及び亜鉛と結合したら蛍光を示すＮｅｗＰｏｒｔ Ｇｒｅｅｎ ＤＣＦ蛍光物質を加えた後、本発明の１Ｈ１０を濃度別に処理し、亜鉛キレートであるクリオキノール（ｃｌｉｏｑｕｉｎｏｌ）とカルシウムイオノフォアであるイオノマイシンを対照群として使用した。
本発明者らは、本発明の一実施例による１Ｈ１０（（Ｚ）－５－（（１Ｈ－インドール－３－イル）メチレン）－２－（（３－ヒドロキシフェニル）アミノ）チアゾール－４（５Ｈ）－オン）の処理による亜鉛キレート化の可能性を検証するために、自由亜鉛に結合したら蛍光を示す物質であるＦｌｕｏＺｉｎ－３を培養されたラットの神経細胞に処理し、亜鉛（３００μＭ）に１５分間露出させ、前記亜鉛を除去した後、６０分間神経細胞内の亜鉛濃度を測定した。または、試験管に２０μＭの亜鉛（ＺｎＣｌ２）及び亜鉛と結合したら蛍光を示すＮｅｗＰｏｒｔ Ｇｒｅｅｎ ＤＣＦ蛍光物質を加えた後、本発明の１Ｈ１０を濃度別に処理し、亜鉛キレートであるクリオキノール（ｃｌｉｏｑｕｉｎｏｌ）とカルシウムイオノフォアであるイオノマイシンを対照群として使用した。
【0041】
実験例１：動物モデルの臨床的症候及び発病率
本発明の一実施例によって多発性硬化症の動物モデルである自己免疫性脳脊髄炎を誘導した結果、マウスに深刻な行動障害が発生したが、本発明の１Ｈ１０を投与した実験群では前記行動障害が著しく抑制されると示された（図１ｂ及び図１ｃ）。また、ＥＡＥマウスの臨床的症状を評価した結果、１Ｈ１０を投与した実験群では臨床的症状だけでなく発病率も抑制されることが観察された（図１ｃ）。
前記結果は、本発明の１Ｈ１０がミエリン乏突起膠細胞（ｏｌｉｇｏｄｅｎｄｒｏｃｙｔｅ）糖タンパク質３５－５５（ＭＯＧ３５－５５）－誘導されたＥＡＥの臨床的症候及び疾病の進行を改善することを示唆している（図１ｄ）。
本発明の一実施例によって多発性硬化症の動物モデルである自己免疫性脳脊髄炎を誘導した結果、マウスに深刻な行動障害が発生したが、本発明の１Ｈ１０を投与した実験群では前記行動障害が著しく抑制されると示された（図１ｂ及び図１ｃ）。また、ＥＡＥマウスの臨床的症状を評価した結果、１Ｈ１０を投与した実験群では臨床的症状だけでなく発病率も抑制されることが観察された（図１ｃ）。
前記結果は、本発明の１Ｈ１０がミエリン乏突起膠細胞（ｏｌｉｇｏｄｅｎｄｒｏｃｙｔｅ）糖タンパク質３５－５５（ＭＯＧ３５－５５）－誘導されたＥＡＥの臨床的症候及び疾病の進行を改善することを示唆している（図１ｄ）。
【0042】
実験例２：微細グリア細胞／マクロファージの活性
本発明者らは、脊髄組織の脱髄現象及び微細グリア細胞／マクロファージの活性を免疫蛍光染色によって観察した。その結果、正常組織の場合、緑色に染色されているはずの脊髄の白質がＥＡＥマウス組織では緑色の染色が低下しており、微細グリア細胞／マクロファージの活性を示す赤色が強く示されていることを確認した（図２ａ）。前記ＭＢＰの減少は、神経の軸索を覆っているミエリンが損傷したことを意味する（図２ｂ）。しかし、１Ｈ１０を持続的に投与した動物の脊髄では前記ＥＡＥ－誘導脱髄及び微細グリア細胞／マクロファージの活性が著しく減少すると示された（図２ｃ）。
本発明者らは、脊髄組織の脱髄現象及び微細グリア細胞／マクロファージの活性を免疫蛍光染色によって観察した。その結果、正常組織の場合、緑色に染色されているはずの脊髄の白質がＥＡＥマウス組織では緑色の染色が低下しており、微細グリア細胞／マクロファージの活性を示す赤色が強く示されていることを確認した（図２ａ）。前記ＭＢＰの減少は、神経の軸索を覆っているミエリンが損傷したことを意味する（図２ｂ）。しかし、１Ｈ１０を持続的に投与した動物の脊髄では前記ＥＡＥ－誘導脱髄及び微細グリア細胞／マクロファージの活性が著しく減少すると示された（図２ｃ）。
【0043】
また、微細グリア細胞／マクロファージの表現型を分析するために二重免疫蛍光染色を行った結果、Ｉｂａ－１とＣＤ６８が同時に発現したら活性化されたＭ１ ｔｙｐｅの微細グリア細胞／マクロファージを意味するが（図２ｄ）、ＥＡＥ誘導後１Ｈ１投与群で活性化されたＭ１ ｔｙｐｅの微細グリア細胞／マクロファージが著しく減少したことを確認した（図２ｅ乃至図２ｈ）。
【0044】
実験例３：アストロサイトの活性
本発明者らは、脊髄組織のアストロサイトの活性を免疫蛍光染色によって観察した。その結果、ＥＡＥを誘導した実験群の脊髄白質（ｗｈｉｔｅ ｍａｔｔｅｒ）でアストロサイトの活性を示す緑色が強く分布されているのに対し、１Ｈ１０を投与した実験群ではアストロサイトの活性が著しく抑制されていることを確認した（図１７及び図１８）。
本発明者らは、脊髄組織のアストロサイトの活性を免疫蛍光染色によって観察した。その結果、ＥＡＥを誘導した実験群の脊髄白質（ｗｈｉｔｅ ｍａｔｔｅｒ）でアストロサイトの活性を示す緑色が強く分布されているのに対し、１Ｈ１０を投与した実験群ではアストロサイトの活性が著しく抑制されていることを確認した（図１７及び図１８）。
【0045】
実験例４：ＡＭＰＫのリン酸化及びＥＡＥ－誘導免疫細胞の浸潤
本発明者らは、ＥＡＥマウス誘導後２１日目の日に、前記マウスの脊髄における単核細胞の浸潤をクレシルバイオレット染色方法で観察した。
その結果、単核細胞がＥＡＥを誘導した実験群の脊髄白質で単核細胞が多く分布されているのに対し、１Ｈ１０を投与した実験群では単核細胞の浸潤が著しく抑制されていることを確認した（図３ａ及び図３ｂ）。また、前記脊髄内に浸潤された単核細胞が免疫細胞であろうという仮説を確認するために、ＣＤ４、ＣＤ８、及びＣＤ２０抗体を使用して免疫組織化学法を行った結果、ＥＡＥ誘導後、多くのＣＤ４、ＣＤ８、及びＣＤ２０（＋）細胞が脊髄白質の周辺に分布されているのに対し、１Ｈ１０を投与した実験群では前記Ｔ、Ｂ細胞の浸潤が著しく抑制されていることを観察した（図３ｃ及び図３ｅ）。併せて、最近の報告によると、ＡＭＰＫ活性がＴ細胞の生存（ｓｕｒｖｉｖａｌ）を増進すると知られており、ＡＭＰＫの活性を観察した結果、ＥＡＥ誘導後脊髄内に浸潤されたＣＤ８（＋）Ｔ細胞においてＡＭＰＫのリン酸化（ｐｈｏｓｐｈｏｒｙｌａｔｉｏｎ）が増加されたが、１Ｈ１０を投与した実験群では著しく減少されていることを確認した（図３ｆ乃至図３ｈ）。前記結果は、本発明の１Ｈ１０によるＡＭＰＫの抑制が脊髄内に浸潤された自己反応性（ａｕｔｏｒｅａｃｔｉｖｅ）Ｔ細胞の生存を減少させてＥＡＥの症状を緩和するということを示唆している。
本発明者らは、ＥＡＥマウス誘導後２１日目の日に、前記マウスの脊髄における単核細胞の浸潤をクレシルバイオレット染色方法で観察した。
その結果、単核細胞がＥＡＥを誘導した実験群の脊髄白質で単核細胞が多く分布されているのに対し、１Ｈ１０を投与した実験群では単核細胞の浸潤が著しく抑制されていることを確認した（図３ａ及び図３ｂ）。また、前記脊髄内に浸潤された単核細胞が免疫細胞であろうという仮説を確認するために、ＣＤ４、ＣＤ８、及びＣＤ２０抗体を使用して免疫組織化学法を行った結果、ＥＡＥ誘導後、多くのＣＤ４、ＣＤ８、及びＣＤ２０（＋）細胞が脊髄白質の周辺に分布されているのに対し、１Ｈ１０を投与した実験群では前記Ｔ、Ｂ細胞の浸潤が著しく抑制されていることを観察した（図３ｃ及び図３ｅ）。併せて、最近の報告によると、ＡＭＰＫ活性がＴ細胞の生存（ｓｕｒｖｉｖａｌ）を増進すると知られており、ＡＭＰＫの活性を観察した結果、ＥＡＥ誘導後脊髄内に浸潤されたＣＤ８（＋）Ｔ細胞においてＡＭＰＫのリン酸化（ｐｈｏｓｐｈｏｒｙｌａｔｉｏｎ）が増加されたが、１Ｈ１０を投与した実験群では著しく減少されていることを確認した（図３ｆ乃至図３ｈ）。前記結果は、本発明の１Ｈ１０によるＡＭＰＫの抑制が脊髄内に浸潤された自己反応性（ａｕｔｏｒｅａｃｔｉｖｅ）Ｔ細胞の生存を減少させてＥＡＥの症状を緩和するということを示唆している。
【0046】
実験例５：サイトカインの発現
本発明者らは、ＥＡＥマウス誘導後２１日目の日に前記マウスの脊髄におけるサイトカインのうちＩＦＮ ｇａｍｍａとＴＮＦ ａｌｐｈａの発現を免疫蛍光染色によって観察した。その結果、ＥＡＥ誘導後１Ｈ１０を投与した実験群はビークル群に比べ脊髄白質内にＩＦＮ ｇａｍｍａの発現は増加されたのに対し、ＴＮＦ ａｌｐｈａの発現は減少されたことを観察した（図１９及び２０）。
本発明者らは、ＥＡＥマウス誘導後２１日目の日に前記マウスの脊髄におけるサイトカインのうちＩＦＮ ｇａｍｍａとＴＮＦ ａｌｐｈａの発現を免疫蛍光染色によって観察した。その結果、ＥＡＥ誘導後１Ｈ１０を投与した実験群はビークル群に比べ脊髄白質内にＩＦＮ ｇａｍｍａの発現は増加されたのに対し、ＴＮＦ ａｌｐｈａの発現は減少されたことを観察した（図１９及び２０）。
【0047】
実験例６：亜鉛の異常な蓄積、ＢＢＢの損傷、及びＭＭＰ－９の活性
本発明者らは、１Ｈ１０の投与によるＥＡＥ－誘導脊髄白質内の亜鉛の異常な蓄積、血液脳関門（ＢＢＢ）の損傷、及びＭＭＰ－９の活性を観察した。
その結果、正常組織の白質からはＴＳＱ染色による信号が観察されなかったが、ＥＡＥ－誘導後２１日目の日にＴＳＱ染色を行った結果、脊髄の白質部位で異常な「パッチ様」の蛍光が観察された。前記のような様相は正常動物やビークルを投与した動物の脊髄では観察されておらず、パッチのような模様のＴＳＱ異常染色現象は１Ｈ１０の投与によって著しく減少されることを確認した（図４ａ及び図４ｂ）。また、ＥＡＥ－誘導後ＭＭＰ－９の活性が増加され、それによってＢＢＢが損傷することでＴ細胞やＢ細胞、及びその他の免疫細胞が中枢神経系に浸透するようになるが、免疫細胞の浸透が中枢神経系の免疫系を撹乱することでミエリン鞘（ｍｙｅｌｉｎ ｓｈｅａｔｈ）を破壊する恐れがあるという研究結果に基づいて、本発明者らはＢＢＢの損傷を観察するために免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）噴出の組織学的分析とＭＭＰ－９の活性度を測定した。その結果、ビークルを投与したマウスや１Ｈ１０のみを投与したマウス（偽群）ではＢＢＢＢの損傷によるＩｇＧの染色が白質や灰白質で発見されなかった。しかし、ＭＯＧを注入してから３週が過ぎたマウスではＩｇＧの浸潤が白質や灰白質の両方で著しく増加しており、前記現象は１Ｈ１０のとうよによって著しく減少すると示された（図４ｃ乃至図４ｅ）。併せて、ＭＭＰ－９は亜鉛によって活性が増加するため、前記観察した白質内増加とＭＭＰ－９の活性増加が互いに密接な関係があると考えられてＭＭＰ－９の活性を比較した結果、ＥＡＥ誘導後１Ｈ１０を投与した実験群はビークル群に比べ脊髄白質内でＭＭＰ－９の活性が抑制されることを確認した（図４ｆ及び図４ｇ）。
本発明者らは、１Ｈ１０の投与によるＥＡＥ－誘導脊髄白質内の亜鉛の異常な蓄積、血液脳関門（ＢＢＢ）の損傷、及びＭＭＰ－９の活性を観察した。
その結果、正常組織の白質からはＴＳＱ染色による信号が観察されなかったが、ＥＡＥ－誘導後２１日目の日にＴＳＱ染色を行った結果、脊髄の白質部位で異常な「パッチ様」の蛍光が観察された。前記のような様相は正常動物やビークルを投与した動物の脊髄では観察されておらず、パッチのような模様のＴＳＱ異常染色現象は１Ｈ１０の投与によって著しく減少されることを確認した（図４ａ及び図４ｂ）。また、ＥＡＥ－誘導後ＭＭＰ－９の活性が増加され、それによってＢＢＢが損傷することでＴ細胞やＢ細胞、及びその他の免疫細胞が中枢神経系に浸透するようになるが、免疫細胞の浸透が中枢神経系の免疫系を撹乱することでミエリン鞘（ｍｙｅｌｉｎ ｓｈｅａｔｈ）を破壊する恐れがあるという研究結果に基づいて、本発明者らはＢＢＢの損傷を観察するために免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）噴出の組織学的分析とＭＭＰ－９の活性度を測定した。その結果、ビークルを投与したマウスや１Ｈ１０のみを投与したマウス（偽群）ではＢＢＢＢの損傷によるＩｇＧの染色が白質や灰白質で発見されなかった。しかし、ＭＯＧを注入してから３週が過ぎたマウスではＩｇＧの浸潤が白質や灰白質の両方で著しく増加しており、前記現象は１Ｈ１０のとうよによって著しく減少すると示された（図４ｃ乃至図４ｅ）。併せて、ＭＭＰ－９は亜鉛によって活性が増加するため、前記観察した白質内増加とＭＭＰ－９の活性増加が互いに密接な関係があると考えられてＭＭＰ－９の活性を比較した結果、ＥＡＥ誘導後１Ｈ１０を投与した実験群はビークル群に比べ脊髄白質内でＭＭＰ－９の活性が抑制されることを確認した（図４ｆ及び図４ｇ）。
【0048】
実験例７：亜鉛の恒常性調節の検証
自由亜鉛に結合したら蛍光を示す物質であるＦｌｕｏＺｉｎ－３を利用して１Ｈ１０処理による亜鉛キレート化の可能性を検証した結果、１Ｈ１０処理した実験群で細胞内亜鉛の増加が著しく減少することを確認した（図５ａ）。また、テストチューブで１μＭ亜鉛、５μＭ自由亜鉛蛍光標識薬物（ＦｌｕｏＺｉｎ－３）と共に多様な濃度（０、０．５、１、２、５、１０、２０、４０μＭ）の１Ｈ１０またはクリオキノールを反応させた後、蛍光値を測定した結果、各薬物のＩＣ５０値は４．２３４μＭ、１０．０６μＭと推定されたが、最終ＦｌｕｏＺｉｎ－３の蛍光数値はクリオキノールの方が低かった。本発明の１Ｈ１０はクリオキノールより更に低い濃度でも亜鉛と結合するが、高濃度では亜鉛結合強度がクリオキノールより低いと考えられる（図５ｂ）前記結果は、本発明の１Ｈ１０がＡＭＰＫ抑制機能だけでなく、亜鉛に直接結合して神経細胞内の亜鉛の恒常性を調節し得ることを示唆している。
自由亜鉛に結合したら蛍光を示す物質であるＦｌｕｏＺｉｎ－３を利用して１Ｈ１０処理による亜鉛キレート化の可能性を検証した結果、１Ｈ１０処理した実験群で細胞内亜鉛の増加が著しく減少することを確認した（図５ａ）。また、テストチューブで１μＭ亜鉛、５μＭ自由亜鉛蛍光標識薬物（ＦｌｕｏＺｉｎ－３）と共に多様な濃度（０、０．５、１、２、５、１０、２０、４０μＭ）の１Ｈ１０またはクリオキノールを反応させた後、蛍光値を測定した結果、各薬物のＩＣ５０値は４．２３４μＭ、１０．０６μＭと推定されたが、最終ＦｌｕｏＺｉｎ－３の蛍光数値はクリオキノールの方が低かった。本発明の１Ｈ１０はクリオキノールより更に低い濃度でも亜鉛と結合するが、高濃度では亜鉛結合強度がクリオキノールより低いと考えられる（図５ｂ）前記結果は、本発明の１Ｈ１０がＡＭＰＫ抑制機能だけでなく、亜鉛に直接結合して神経細胞内の亜鉛の恒常性を調節し得ることを示唆している。
【0049】
実験例８：長期保護効果
本発明者らは、マウスＥＡＥ誘導後１Ｈ１０を全体期間中一日１回腹腔内投与し、最初免疫化後４５日目にマウスを犠牲させて臨床的症状及び発病率を観察した結果（図６ａ）、１Ｈ１０を投与した実験群で臨床的症状及び発病率が著しく減少することを観察した（図６ｂ乃至図６ｄ）。これは、１Ｈ１０の投与が急性期（２１日）だけでなく慢性期（４５日）までの長期間にわたってＥＡＥの症状を緩和するのに効果があることを証明している。
本発明者らは、マウスＥＡＥ誘導後１Ｈ１０を全体期間中一日１回腹腔内投与し、最初免疫化後４５日目にマウスを犠牲させて臨床的症状及び発病率を観察した結果（図６ａ）、１Ｈ１０を投与した実験群で臨床的症状及び発病率が著しく減少することを観察した（図６ｂ乃至図６ｄ）。これは、１Ｈ１０の投与が急性期（２１日）だけでなく慢性期（４５日）までの長期間にわたってＥＡＥの症状を緩和するのに効果があることを証明している。
【0050】
実験例９：類似化合物の検索及び亜鉛毒性抑制効果の観察
本発明の一実施例によって、本発明の１Ｈ１０の構造類似性に基づいてこれと類似した構造を有する２５個の類似化合物を化合物ライブラリー製造会社（ＩｎｔｅｒＢｉｏＳｃｒｅｅｎ，Ｒｕｓｓｉａ；Ａｋｏｓ，Ｇｅｒｍａｎｙ）から購入した。次に、前記培養されたラットの大脳皮質神経細胞に亜鉛毒性を誘発するためにＺｎＣｌ２（４００μＭ）を１０分間処理し、１２．５時間経過してから、前記選別された２５個の化合物及び予め選別された薬物である１Ｈ１０を処理（２０μＭ）して、細胞生存アッセイ（ｃｅｌｌ ｖｉａｂｉｌｉｔｙ ａｓｓａｙ，Ｃｅｌｌ Ｃｏｕｎｔｉｎｇ Ｋｉｔ－８，Ｄｏｊｉｎｄｏ）によって細胞死（ｃｅｌｌ ｄｅａｔｈ）の抑制可否を観察した。
本発明の一実施例によって、本発明の１Ｈ１０の構造類似性に基づいてこれと類似した構造を有する２５個の類似化合物を化合物ライブラリー製造会社（ＩｎｔｅｒＢｉｏＳｃｒｅｅｎ，Ｒｕｓｓｉａ；Ａｋｏｓ，Ｇｅｒｍａｎｙ）から購入した。次に、前記培養されたラットの大脳皮質神経細胞に亜鉛毒性を誘発するためにＺｎＣｌ２（４００μＭ）を１０分間処理し、１２．５時間経過してから、前記選別された２５個の化合物及び予め選別された薬物である１Ｈ１０を処理（２０μＭ）して、細胞生存アッセイ（ｃｅｌｌ ｖｉａｂｉｌｉｔｙ ａｓｓａｙ，Ｃｅｌｌ Ｃｏｕｎｔｉｎｇ Ｋｉｔ－８，Ｄｏｊｉｎｄｏ）によって細胞死（ｃｅｌｌ ｄｅａｔｈ）の抑制可否を観察した。
【0051】
その結果、前記処理した２５個の新しい化合物のうち８つの薬物（４Ｂ０１、４Ｂ０４、４Ｂ０８、４Ｃ０１、４Ｃ０３、４Ｃ０４、４Ｃ０６、４Ｃ０８）が神経保護効果を示した（図９）。前記選別された化合物２５個の名称と構造を下記表１に示した。
【表1】
【表2】
【表3】
【表4】
【表5】
【表6】
【表7】
【0052】
実験例１０：酸化ストレスの分析
本発明者らは、前記実施例の８つの薬物及び１Ｈ１０を対象に亜鉛毒性の他、酸化ストレスの抑制効果を観察した。詳しくは、酸化ストレスは、Ｈ２Ｏ２（１００μＭ）、ＦｅＣｌ２（１００μＭ）をマウスの大脳皮質神経細胞にそれぞれ約４時間、２０時間処理して神経毒性を誘発し、前記選別された８つの薬物及び１Ｈ１０を処理（２０μＭ）した。次に、ＬＤＨ（Ｌａｃｔａｔｅ Ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ）分析によって細胞毒性を観察した。
その結果、４Ｃ０６、４Ｃ０８を除く６つの薬物（４Ｂ０１、４Ｂ０４、４Ｂ０８、４Ｃ０１、４Ｃ０３、４Ｃ０４）はＨ２Ｏ２毒性を有意に抑制すると示された（図１０）。また、更に４Ｃ０６と４Ｃ０８に対してＨ２Ｏ２以外にも鉄（ｉｒｏｎ）によって誘発される酸化ストレスを確認した結果、前記４Ｃ０８が鉄による酸化ストレスを抑制すると示された（図１１）。
本発明者らは、前記実施例の８つの薬物及び１Ｈ１０を対象に亜鉛毒性の他、酸化ストレスの抑制効果を観察した。詳しくは、酸化ストレスは、Ｈ２Ｏ２（１００μＭ）、ＦｅＣｌ２（１００μＭ）をマウスの大脳皮質神経細胞にそれぞれ約４時間、２０時間処理して神経毒性を誘発し、前記選別された８つの薬物及び１Ｈ１０を処理（２０μＭ）した。次に、ＬＤＨ（Ｌａｃｔａｔｅ Ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ）分析によって細胞毒性を観察した。
その結果、４Ｃ０６、４Ｃ０８を除く６つの薬物（４Ｂ０１、４Ｂ０４、４Ｂ０８、４Ｃ０１、４Ｃ０３、４Ｃ０４）はＨ２Ｏ２毒性を有意に抑制すると示された（図１０）。また、更に４Ｃ０６と４Ｃ０８に対してＨ２Ｏ２以外にも鉄（ｉｒｏｎ）によって誘発される酸化ストレスを確認した結果、前記４Ｃ０８が鉄による酸化ストレスを抑制すると示された（図１１）。
【0053】
実験例１１：興奮毒性の分析
本発明者らは、前記実施例の８つの薬物及び１Ｈ１０を対象に興奮毒性の抑制効果を観察した。詳しくは、興奮毒性はＮＭＤＡ（Ｎ－メチル－Ｄ－アスパラギン酸、５０μＭ）をマウスの大脳皮質神経細胞に３時間処理して誘発し、前記選別された８つの薬物及び１Ｈ１０を処理（２０μＭ）してＬＤＨ細胞毒性を観察した結果、４Ｂ０４、４Ｃ０６を除く６つの薬物（４Ｂ０１、４Ｂ０８、４Ｃ０１、４Ｃ０３、４Ｃ０４、４Ｃ０８）はＮＭＤＡによる興奮毒性を有意に抑制すると示された（図１２）。
本発明者らは、前記実施例の８つの薬物及び１Ｈ１０を対象に興奮毒性の抑制効果を観察した。詳しくは、興奮毒性はＮＭＤＡ（Ｎ－メチル－Ｄ－アスパラギン酸、５０μＭ）をマウスの大脳皮質神経細胞に３時間処理して誘発し、前記選別された８つの薬物及び１Ｈ１０を処理（２０μＭ）してＬＤＨ細胞毒性を観察した結果、４Ｂ０４、４Ｃ０６を除く６つの薬物（４Ｂ０１、４Ｂ０８、４Ｃ０１、４Ｃ０３、４Ｃ０４、４Ｃ０８）はＮＭＤＡによる興奮毒性を有意に抑制すると示された（図１２）。
【0054】
実験例１２：アポトーシスの分析
本発明者らは、前記実施例の８つの薬物及び１Ｈ１０を対象にアポトーシスの抑制効果を観察した。詳しくは、アポトーシスによる神経毒性はエトポシド（ＥＴＰＳ、１０μＭ）をマウスの大脳皮質神経細胞に２０時間処理して誘発した。次に、前記選別された８つの薬物及び１Ｈ１０を処理（２０μＭ）してＬＤＨ細胞毒性を観察した結果、４Ｂ０４、４Ｃ０３、４Ｃ０４を除く５つの薬物（４Ｂ０１、４Ｂ０８、４Ｃ０１、４Ｃ０６、４Ｃ０８）がＥＴＰＳ毒性を有意に抑制すると示された（図１３）。
本発明者らは、前記実施例の８つの薬物及び１Ｈ１０を対象にアポトーシスの抑制効果を観察した。詳しくは、アポトーシスによる神経毒性はエトポシド（ＥＴＰＳ、１０μＭ）をマウスの大脳皮質神経細胞に２０時間処理して誘発した。次に、前記選別された８つの薬物及び１Ｈ１０を処理（２０μＭ）してＬＤＨ細胞毒性を観察した結果、４Ｂ０４、４Ｃ０３、４Ｃ０４を除く５つの薬物（４Ｂ０１、４Ｂ０８、４Ｃ０１、４Ｃ０６、４Ｃ０８）がＥＴＰＳ毒性を有意に抑制すると示された（図１３）。
【0055】
実験例１３：亜鉛結合の分析
本発明者らは、前記実施例の２５個の化合物及び１Ｈ１０を対象に亜鉛結合分析を行った。詳しくは、テストチューブ上で１Ｈ１０と２５個の化合物（それぞれ２０μＭ）と共に、亜鉛（２０μＭ）及び亜鉛蛍光染色物質であるＮｅｗｐｏｒｔ ｇｒｅｅｎ ＤＣＦ（０．１μＭ、Ｋｄ（Ｚｎ）＝１μＭ）を利用して自由結合可否を測定した。この際、亜鉛キレートであるクリオキノールとカルシウムイオノフォアであるイオノマイシンを対照群として使用した（それぞれ２０μＭ）。その結果、イオノマイシンを除く全ての薬物が亜鉛と結合可能であることを確認した（図１４）。
本発明者らは、前記実施例の２５個の化合物及び１Ｈ１０を対象に亜鉛結合分析を行った。詳しくは、テストチューブ上で１Ｈ１０と２５個の化合物（それぞれ２０μＭ）と共に、亜鉛（２０μＭ）及び亜鉛蛍光染色物質であるＮｅｗｐｏｒｔ ｇｒｅｅｎ ＤＣＦ（０．１μＭ、Ｋｄ（Ｚｎ）＝１μＭ）を利用して自由結合可否を測定した。この際、亜鉛キレートであるクリオキノールとカルシウムイオノフォアであるイオノマイシンを対照群として使用した（それぞれ２０μＭ）。その結果、イオノマイシンを除く全ての薬物が亜鉛と結合可能であることを確認した（図１４）。
【0056】
実験例１４：ＡＭＰＫα２抑制活性
本発明者らは、１Ｈ１０と２５個の化合物（それぞれ１０μＭ）と共に従来よく知られているＡＭＰＫ抑制剤ｃｏｍｐｏｕｎｄ Ｃ（ＣＣ、１０μＭ）の処理によるｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ＡＭＰＫα２酵素活性をＫｉｎａｓｅＰｒｏｆｉｌｅｒＴＭ Ｓｅｒｖｉｃｅ（Ｅｕｒｏｆｉｎｓ，ＵＫ）によって測定した。その結果、４Ａ０６、４Ｂ０２、４Ｃ０４、４Ｃ０５、４Ｃ０６、４Ｃ０８、４Ｄ０１で１Ｈ１０と類似したＡＭＰＫ抑制効果が示された（図１５）。
本発明者らは、１Ｈ１０と２５個の化合物（それぞれ１０μＭ）と共に従来よく知られているＡＭＰＫ抑制剤ｃｏｍｐｏｕｎｄ Ｃ（ＣＣ、１０μＭ）の処理によるｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ＡＭＰＫα２酵素活性をＫｉｎａｓｅＰｒｏｆｉｌｅｒＴＭ Ｓｅｒｖｉｃｅ（Ｅｕｒｏｆｉｎｓ，ＵＫ）によって測定した。その結果、４Ａ０６、４Ｂ０２、４Ｃ０４、４Ｃ０５、４Ｃ０６、４Ｃ０８、４Ｄ０１で１Ｈ１０と類似したＡＭＰＫ抑制効果が示された（図１５）。
【0057】
実験例１５：自体毒性の分析
本発明者らは、全ての細胞毒性（亜鉛毒性、酸化ストレス、興奮毒性、アポトーシス）に対して共通に保護効果を示す４つの薬物（４Ｂ０１、４Ｂ０８、４Ｃ０１、４Ｃ０８）に対する自体毒性（ｓｅｌｆ－ｔｏｘｉｃｉｔｙ）を１Ｈ１０と比較した。詳しくは、マウスの大脳皮質神経細胞の培養体で前記薬物をそれぞれ４０μＭ処理し、２４時間または４８時間後ＬＤＨ細胞毒性を観察した。
本発明者らは、全ての細胞毒性（亜鉛毒性、酸化ストレス、興奮毒性、アポトーシス）に対して共通に保護効果を示す４つの薬物（４Ｂ０１、４Ｂ０８、４Ｃ０１、４Ｃ０８）に対する自体毒性（ｓｅｌｆ－ｔｏｘｉｃｉｔｙ）を１Ｈ１０と比較した。詳しくは、マウスの大脳皮質神経細胞の培養体で前記薬物をそれぞれ４０μＭ処理し、２４時間または４８時間後ＬＤＨ細胞毒性を観察した。
【0058】
その結果、１Ｈ１０は薬物処理２４時間後７．８１±２．７７％、４８時間後６０．７２±８．２８％の自体毒性が観察されたが、４Ｂ０１は薬物処理４８時間後、１Ｈ１０より強い自体毒性があることを確認した。また、４Ｂ０８、４Ｃ０１は１Ｈ１０と無意味な差の自体毒性を示したが、４Ｃ０８は薬物処理４８時間まで自体毒性を示さなかった（図１６）。
結論的に、本発明の一実施例による化合物は、従来多発性硬化症に関連する興奮毒性、酸化ストレス、アポトーシス、亜鉛毒性などの多様な毒性機序に保護効果を示し、併せて亜鉛キレート化によってＭＭＰ－９の活性を減少させて免疫細胞の脊髄白質内透過及び蓄積を防止し自己免疫反応を減少させることで、多発性硬化症疾患の発生を抑制することを証明した。よって、本発明の１Ｈ１０は、長期投与による副作用が深刻なステロイド製剤と免疫抑制剤を代替し、根本的な問題を制御する薬物の開発に活用されることができる。
結論的に、本発明の一実施例による化合物は、従来多発性硬化症に関連する興奮毒性、酸化ストレス、アポトーシス、亜鉛毒性などの多様な毒性機序に保護効果を示し、併せて亜鉛キレート化によってＭＭＰ－９の活性を減少させて免疫細胞の脊髄白質内透過及び蓄積を防止し自己免疫反応を減少させることで、多発性硬化症疾患の発生を抑制することを証明した。よって、本発明の１Ｈ１０は、長期投与による副作用が深刻なステロイド製剤と免疫抑制剤を代替し、根本的な問題を制御する薬物の開発に活用されることができる。
【0059】
本発明上述した実施例及び実験例を参考に説明されたがこれは例示に過ぎず、該当技術分野の通常の知識を有する者であれば、これから多様な変形及び均等な他の実施例及び実験例が可能であることを理解できるはずである。よって、本発明の真の技術的保護範囲は、添付した特許請求の範囲の技術的思想によって決められるべきである。
【図1a】
【図1b】
【図1c】
【図1d】
【図2a】
【図2b】
【図2c】
【図2d】
【図2e】
【図2f】
【図2g】
【図2h】
【図3a】
【図3b】
【図3c】
【図3d】
【図3e】
【図3f】
【図3g】
【図3h】
【図4a】
【図4b】
【図4c】
【図4d】
【図4e】
【図4f】
【図4g】
【図5a】
【図5b】
【図】
【図6a】
【図6b】
【図6c】
【図6d】
【図7】
【図8】
【図9】
【図10】
【図11】
【図12】
【図13】
【図14】
【図15】
【図16】
【図17】
【図18】
【図19】
【図20】
【国際調査報告】