特表2023-517373肝硬変の治療のための金クラスター（ＡｕＣｓ）及び組成物
(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】公表特許公報(A)
(11)【公表番号】
(43)【公表日】2023-04-25
(54)【発明の名称】肝硬変の治療のための金クラスター（ＡｕＣｓ）及び組成物
(51)【国際特許分類】
A61K 33/242 20190101AFI20230418BHJP
A61P 1/16 20060101ALI20230418BHJP
A61K 47/54 20170101ALI20230418BHJP
A61K 47/62 20170101ALI20230418BHJP
【ＦＩ】
A61K33/242
A61P1/16
A61K47/54
A61K47/62
【審査請求】有
【予備審査請求】未請求
(21)【出願番号】P 2022555677
(86)(22)【出願日】2020-10-28
(85)【翻訳文提出日】2022-11-14
(86)【国際出願番号】 CN2020124285
(87)【国際公開番号】W WO2021184762
(87)【国際公開日】2021-09-23
(31)【優先権主張番号】PCT/CN2020/079499
(32)【優先日】2020-03-16
(33)【優先権主張国・地域又は機関】CN
(81)【指定国・地域】
(71)【出願人】
【識別番号】521313935
【氏名又は名称】武漢広行科学研究有限公司
【氏名又は名称原語表記】ＷＵＨＡＮ ＶＡＳＴ ＣＯＮＤＵＣＴ ＳＣＩＥＮＣＥ ＦＯＵＮＤＡＴＩＯＮ ＣＯ．， ＬＴＤ．
【住所又は居所原語表記】Ｒｏｏｍ ５０６， Ｂｕｉｌｄｉｎｇ １， Ｏｐｔｉｃｓ Ｖａｌｌｅｙ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ Ｅｎｔｅｒｐｒｉｓｅ Ａｃｃｅｌｅｒａｔｏｒ， Ｎｏ． ３８８ Ｇａｏｘｉｎ ２ｎｄ Ｒｏａｄ， Ｄｏｎｇｈｕ Ｎｅｗ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ Ｚｏｎｅ Ｗｕｈａｎ， Ｈｕｂｅｉ ４３００７０ （ＣＮ）
(74)【代理人】
【識別番号】110001139
【氏名又は名称】ＳＫ弁理士法人
(74)【代理人】
【識別番号】100130328
【弁理士】
【氏名又は名称】奥野 彰彦
(74)【代理人】
【識別番号】100130672
【弁理士】
【氏名又は名称】伊藤 寛之
(72)【発明者】
【氏名】スゥン、タオレイ
【テーマコード（参考）】
4C076
4C086
【Ｆターム（参考）】
4C076AA11
4C076AA16
4C076BB11
4C076CC16
4C076CC41
4C076DD56
4C076EE41
4C076EE59
4C086AA01
4C086AA02
4C086HA09
4C086MA02
4C086MA05
4C086MA16
4C086MA66
4C086NA14
4C086ZA75
(57)【要約】
本発明に係るリガンド結合金クラスターおよび前記リガンド結合金クラスターを含む組成物は、肝硬変を治療するために、および肝硬変を治療するための医薬を製造するために使用した。肝硬変の治療方法を提供する。
【選択図】図１０（Ａ）
【選択図】図１０（Ａ）
【特許請求の範囲】
【請求項1】
対象における肝硬変を治療するためのリガンド結合金クラスターの使用であって、前記リガンド結合金クラスターが、金コアと、
金コアに結合したリガンドと
を含む、使用。
【請求項2】
前記金コアは、直径が０．５～３ｎｍである、請求項１に記載の使用。
【請求項3】
前記金コアは、直径が０．５～２．６ｎｍである、請求項１に記載の使用。
【請求項4】
前記リガンドが、Ｌ－システインとその誘導体、Ｄ－システインとその誘導体、システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体、およびその他のチオール含有化合物からなる群より選ばれる一つである、請求項１に記載の使用。
【請求項5】
前記Ｌ－システインとその誘導体は、Ｌ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれ、そして前記Ｄ－システインとその誘導体は、Ｄ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれる、請求項４に記載の使用。
【請求項6】
前記システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体は、システイン含有ジペプチド、システイン含有トリペプチドまたはシステイン含有テトラペプチドである、請求項４に記載の使用。
【請求項7】
前記システイン含有ジペプチドは、Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、Ｌ（Ｄ）－ヒスチジン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＨＣ）、およびＬ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－ヒスチジンジペプチド（ＣＨ）からなる群より選ばれる、請求項６に記載の使用。
【請求項8】
前記システイン含有トリペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－リシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－プロリントリペプチド（ＫＣＰ）、およびＬ（Ｄ）－グルタチオン（ＧＳＨ）からなる群より選ばれる、請求項６に記載の使用。
【請求項9】
前記システイン含有テトラペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）、およびグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）からなる群より選ばれる、請求項６に記載の使用。
【請求項10】
前記その他のチオール含有化合物は、１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ（Ｄ）－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン、Ｎ－（２ーメルカプトプロピオニル）－グリシン、およびドデシルメルカプタンからなる群より選ばれる、請求項４に記載の使用。
【請求項11】
対象における肝硬変を治療するための医薬の製造におけるリガンド結合金クラスター（ＡｕＣ）の使用であって、前記リガンド結合金クラスターが、金コアと、
金コアに結合したリガンドと
を含む、使用。
【請求項12】
前記金コアは、直径が０．５～３ｎｍである、請求項１１に記載の使用。
【請求項13】
前記金コアは、直径が０．５～２．６ｎｍである、請求項１１に記載の使用。
【請求項14】
前記リガンドは、Ｌ－システインとその誘導体、Ｄ－システインとその誘導体、システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体、およびその他のチオール含有化合物からなる群より選ばれる一つである、請求項１１に記載の使用。
【請求項15】
前記Ｌ－システインとその誘導体は、Ｌ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれ、そして前記Ｄ－システインとその誘導体が、Ｄ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれる、請求項１４に記載の使用。
【請求項16】
前記システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体は、システイン含有ジペプチド、システイン含有トリペプチドまたはシステイン含有テトラペプチドである、請求項１４に記載の使用。
【請求項17】
前記システイン含有ジペプチドは、Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、Ｌ（Ｄ）－ヒスチジン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＨＣ）、およびＬ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－ヒスチジンジペプチド（ＣＨ）からなる群より選ばれる、請求項１６に記載の使用。
【請求項18】
前記システイン含有トリペプチドは、グリシン－（Ｄ）Ｌ－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－リシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－プロリントリペプチド（ＫＣＰ）、およびＬ（Ｄ）－グルタチオン（ＧＳＨ）からなる群より選ばれる、請求項１６に記載の使用。
【請求項19】
前記システイン含有テトラペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）、およびグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）からなる群より選ばれる、請求項１６に記載の使用。
【請求項20】
前記その他のチオール含有化合物が、１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ（Ｄ）－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン、Ｎ－（２ーメルカプトプロピオニル）－グリシン、およびドデシルメルカプタンからなる群より選ばれる、請求項１４に記載の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、肝硬変の治療の技術分野に関し、特に肝硬変の治療のためのリガンド結合金クラスター（ＡｕＣｓ）、前記リガンド結合ＡｕＣｓを含む組成物、およびリガンド結合ＡｕＣｓを利用する方法に関する。
【背景技術】
【0002】
肝臓は、ヒト体内の最大の固形臓器であり、凝固、酸素輸送、および免疫系を補助する血液タンパク質の製造、過剰の栄養素の貯蔵および一部の栄養素の血流への返送、食品を消化するための胆汁の製造、グリコーゲンとしての糖（グルコース）の体における蓄積の補助、薬物およびアルコールを含む血流中の有害物質からの生体保護、および飽和脂肪の分解とコレステロールの生成、を含む多くの重要な機能を実行する。
【0003】
肝硬変は、肝臓に対する長期間の連続的損傷により長年にわたって進行していく、緩徐進行性疾患である。肝硬変の進行と共に、健康な肝臓組織は徐々に破壊され、瘢痕組織に置き換われる。瘢痕組織は、肝臓を通過する血液の流れを遮断し、栄養、ホルモン、薬物および天然毒素を処理する肝臓の能力を低下させる。また、肝臓によって作られたタンパク質および他の物質の生成を減少させる。肝硬変は、最終的に、肝臓移植が必要とする肝不全および／または肝臓癌につながる可能性がある。
【0004】
肝硬変の初期段階では、肝臓補償機能が強いため、明らかな症状はない。後期において、症状は、肝臓機能障害、門脈圧亢進、上部消化管出血、肝性脳症、二次感染、脾臓機能亢進、腹水、癌化および他の合併症を含む。肝硬変は、漸進的な肝臓の変形および硬化から生じる。組織病理学的には、肝硬変は、広範な肝細胞壊死、残留肝細胞の結節状再生、結合組織の過形成および線維性中隔の生成を特徴とし、肝小葉構造の破壊および偽小葉の形成をもたらす。
【0005】
肝硬変にはさまざまな原因がある。肝硬変を有する一部の人々の肝臓損傷は１つ以上の原因によるものである。肝硬変の一般的な原因は、長期間のアルコール乱用、Ｂ型肝炎ウイルスとＣ型肝炎ウイルスの重複感染、脂肪性肝疾患、毒性金属、遺伝子疾患、栄養障害、工業性毒物、麻薬、循環障害、代謝障害、胆汁うつ滞、住血吸虫症などを含む。
【0006】
肝硬変は、多くの検査／技術により診断することができる。例えば、血液検査において、アラニントランスアミナーゼ（ＡＬＴ）、アスパラギン酸トランスアミナーゼ（ＡＳＴ）およびアルカリホスファターゼ（ＡＬＰ）を含む肝臓酵素及びビリルビンのレベルが増加し、血液タンパク質のレベルが減少する場合、肝硬変を示唆し得る。
【0007】
現在、治療は、その原因に対処することによって肝硬変の進行を遅延させることができるが、肝硬変のための特定の処置は存在しない。
【発明の概要】
【0008】
本発明は、対象における肝硬変を治療するためのリガンド結合金クラスターの使用、リガンド結合金クラスターで対象における肝硬変を治療する方法、および対象における肝硬変を治療する医薬の製造のためのリガンド結合金クラスターの使用を提供する。
【0009】
本発明の対象における肝硬変を治療するためのリガンド結合金クラスターの使用の特定の実施形態では、前記リガンド結合金クラスターは、金コアと、前記金コアに結合したリガンドとを含む。
【0010】
前記治療用途の特定の実施形態では、前記金コアは、直径が０．５～３ｎｍである。特定の実施形態では、前記金コアは、直径が０．５～２．６ｎｍである。
【0011】
前記治療用途の特定の実施形態では、前記リガンドは、Ｌ－システインとその誘導体、Ｄ－システインとその誘導体、システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体、およびその他のチオール含有化合物からなる群より選ばれる一つである。
【0012】
前記治療用途の特定の実施形態では、前記Ｌ－システインとその誘導体は、Ｌ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれ、そしてＤ－システインとその誘導体が、Ｄ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれる。
【0013】
前記治療用途の特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体は、システイン含有ジペプチド、システイン含有トリペプチドまたはシステイン含有テトラペプチドである。
【0014】
前記治療用途の特定の実施形態では、前記システイン含有ジペプチドは、Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、Ｌ（Ｄ）－ヒスチジン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＨＣ）、およびＬ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－ヒスチジンジペプチド（ＣＨ）からなる群より選ばれる。
【0015】
前記治療用途の特定の実施形態では、前記システイン含有トリペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－リシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－プロリントリペプチド（ＫＣＰ）、およびＬ（Ｄ）－グルタチオン（ＧＳＨ）からなる群より選ばれる。
【0016】
前記治療用途の特定の実施形態では、前記システイン含有テトラペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）、およびグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）からなる群より選ばれる。
【0017】
前記治療用途の特定の実施形態では、前記その他のチオール含有化合物は、１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ（Ｄ）－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン、Ｎ－（２ーメルカプトプロピオニル）－グリシン、およびドデシルメルカプタンからなる群より選ばれる。
【0018】
本発明の対象における肝硬変を治療する医薬の製造のためのリガンド結合金クラスターの使用の特定の実施形態では、前記リガンド結合金クラスターが、金コアと、前記金コアに結合したリガンドとを含む。
【0019】
前記製造用途の特定の実施形態では、前記金コアは、直径が０．５～３ｎｍである。特定の実施形態では、前記金コアは、直径が０．５～２．６ｎｍである。
【0020】
前記製造用途の特定の実施形態では、前記リガンドは、 Ｌ－システインとその誘導体、Ｄ－システインとその誘導体、システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体、およびその他のチオール含有化合物からなる群より選ばれる一つである。
【0021】
前記製造用途の特定の実施形態では、前記Ｌ－システインとその誘導体は、Ｌ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれ、そしてＤ－システインとその誘導体が、Ｄ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれる。
【0022】
前記製造用途の特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体は、システイン含有ジペプチド、システイン含有トリペプチドまたはシステイン含有テトラペプチドである。
【0023】
前記製造用途の特定の実施形態では、前記システイン含有ジペプチドは、Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、Ｌ（Ｄ）－ヒスチジン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＨＣ）、およびＬ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－ヒスチジンジペプチド（ＣＨ）からなる群より選ばれる。
【0024】
前記製造用途の特定の実施形態では、前記システイン含有トリペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－リシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－プロリントリペプチド（ＫＣＰ）、およびＬ（Ｄ）－グルタチオン（ＧＳＨ）からなる群より選ばれる。
【0025】
前記製造用途の特定の実施形態では、前記システイン含有テトラペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）、およびグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）からなる群より選ばれる。
【0026】
前記製造用途の特定の実施形態では、前記その他のチオール含有化合物は、１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ（Ｄ）－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン、Ｎ－（２ーメルカプトプロピオニル）－グリシン、およびドデシルメルカプタンからなる群より選ばれる。
【0027】
本発明の目的および利点は、添付の図面に関連するその好ましい実施形態の以下の詳細な説明から明らかになる。
【図面の簡単な説明】
【0028】
次に、本発明による好ましい実施形態を、同様の参照番号が同様の要素を示す図を参照して説明する。
【0029】
【図1】様々な粒子サイズのリガンドＬ－ＮＩＢＣで修飾された金ナノ粒子（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓ）の紫外線可視（ＵＶ）スペクトル、透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）画像および粒子サイズ分布図を示す。
【0030】
【図2】様々な粒子サイズのリガンドＬ－ＮＩＢＣ結合金クラスター（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）の紫外線可視（ＵＶ）スペクトル、ＴＥＭ画像および粒子サイズ分布図を示す。
【0031】
【図3】様々な粒子サイズのＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの赤外線スペクトルを示す。
【0032】
【図4】リガンドＣＲ結合金クラスター（ＣＲ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
【0033】
【図5】リガンドＲＣ結合金クラスター（ＲＣ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
【0034】
【図6】リガンド１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ－プロリン（即ち、Ｃａｐ）結合金クラスター（Ｃａｐ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
【0035】
【図7】リガンドＧＳＨ結合金クラスター（ＧＳＨ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
【0036】
【図8】リガンドＤ－ＮＩＢＣ結合金クラスター（Ｄ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
【0037】
【図9】リガンドＬ－システイン結合金クラスター（Ｌ－Ｃｙｓ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
【0038】
【図10】１）空白対照群、２）モデル群、３）ソラフェニブで治療した陽性群、４）Ａ－０１低用量群、５）Ａ－０１高用量群、６）Ａ－０２低用量群、および７）Ａ－０２高用量群を示す、肝硬変モデルマウスにおける血清中の（Ａ）ＡＬＴ、（Ｂ）ＡＳＴ、（Ｃ）ＴＢＩＬ、（Ｄ）ＭＡＯおよび（Ｅ）ＡＬＢのレベルに対する様々な用量のＡ－０１およびＡ－０２の効果を示す棒グラフである。
【0039】
【図11】１）空白対照群、２）モデル群、３）ソラフェニブで治療した陽性群、４）Ｂ－０１低用量群、５）Ｂ－０１高用量群、６）Ｂ－０２低用量群、および７）Ｂ－０２高用量群を示す、肝硬変モデルマウスにおける血清中の（Ａ）ＡＬＴ、（Ｂ）ＡＳＴ、（Ｃ）ＴＢＩＬ、（Ｄ）ＭＡＯおよび（Ｅ）ＡＬＢのレベルに対する様々な用量のＢ－０１およびＢ－０２の効果を示す棒グラフである。
【0040】
【図12】１）空白対照群、２）モデル群、３）ソラフェニブで治療した陽性群、４）薬物Ｃ高用量群を示す、肝硬変モデルマウスにおける血清中の（Ａ）ＡＬＴ、（Ｂ）ＡＳＴ、（Ｃ）ＴＢＩＬ、（Ｄ）ＭＡＯおよび（Ｅ）ＡＬＢレベルに対する高用量のＣの効果を示す棒グラフである。
【0041】
【図13】（Ａ）空白対照群；（Ｂ）モデル群；（Ｃ）陽性対照群；（Ｄ）Ａ－０１低用量群；（Ｅ）Ａ－０１高用量群のＨＥ染色画像を示す。
【0042】
【図14】１）空白対照群、２）モデル群、３）Ｄ薬物群、４）Ｅ薬物群、および５）Ｆ薬物群を示す、肝硬変モデルマウスにおける血清中の（Ａ）ＡＬＴ、（Ｂ）ＡＳＴ、（Ｃ）ＴＢＩＬ、（Ｄ）ＭＡＯおよび（Ｅ）ＡＬＢのレベルに対するＤ、ＥおよびＦ薬物の効果を示す棒グラフである。
【発明を実施するための形態】
【0043】
本発明は、以下の本発明の特定の実施形態に対する詳細な説明を参照することによって、より容易に理解することができる。
【0044】
本出願全体において、刊行物が参照される。これらの刊行物の開示は、本発明が属する技術の現状をより十分に説明するために、参照によりその全体が本出願に組み込まれる。
【0045】
金クラスター（ＡｕＣｓ）は、金原子と金ナノ粒子の間にある特殊な形態の金である。ＡｕＣｓは、サイズが３ｎｍ未満であり、数個から数百個の金原子で構成されているため、金ナノ粒子の面心立方積層構造が崩壊する。その結果、ＡｕＣｓは、金ナノ粒子の連続又は準連続エネルギー準位とは異なり、違うＨＯＭＯ－ＬＵＭＯギャップを持つ分子のような離散化した電子構造を示す。これにより、従来の金ナノ粒子が持つ表面プラズモン共鳴効果と、ｕｖ－ｖｉｓスペクトルでの対応するプラズモン共鳴吸収帯（５２０±２０ｎｍ）が消失する。
【0046】
本発明は、リガンド結合ＡｕＣを提供する。
【0047】
特定の実施形態では、前記リガンド結合ＡｕＣは、リガンドと、金コアとを含み、前記リガンドが前記金コアに結合している。前記リガンドと金コアとの結合とは、リガンドが、共有結合、水素結合、静電気力、疎水性力（hydrophobic force）、ファンデルワールス力等を介して金コアと溶液中で安定している複合体を形成することを意味する。特定の実施形態では、前記金コアの直径が、０．５～３ｎｍの範囲にある。特定の実施形態では、前記金コアの直径が０．５～２．６ｎｍの範囲にある。
【0048】
特定の実施形態では、前記リガンド結合ＡｕＣの前記リガンドが、チオール含有化合物またはオリゴペプチドである。特定の実施形態では、前記リガンドが、Ａｕ－Ｓ結合を介して金コアに結合してリガンド結合ＡｕＣを形成する。
【0049】
特定の実施形態では、前記リガンドが、Ｌ－システイン、Ｄ－システイン、またはシステイン誘導体であるが、これらに限定されない。特定の実施形態では、前記システイン誘導体が、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、Ｎ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）、またはＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）である。
【0050】
特定の実施形態では、前記リガンドが、システイン含有オリゴペプチドとその誘導体であるが、これらに限定されない。特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドが、システイン含有ジペプチドである。特定の実施形態では、前記システイン含有ジペプチドが、Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、またはＬ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－ヒスチジンジペプチド（ＣＨ）である。特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドが、システイン含有トリペプチドである。特定の実施形態では、前記システイン含有トリペプチドが、グリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、またはＬ－グルタチオン（ＧＳＨ）である。特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドが、システイン含有テトラペプチドである。特定の実施形態では、前記システイン含有テトラペプチドが、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）またはグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）である。
【0051】
特定の実施形態では、前記リガンドが、チオール含有化合物である。特定の実施形態では、チオール含有化合物が、１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン、またはドデシルメルカプタンである。
【0052】
本発明は、対象における肝硬変の治療のための医薬組成物を提供する。特定の実施形態では、前記対象が、人である。特定の実施形態では、前記対象が、犬のようなペット動物である。
【0053】
特定の実施形態では、前記医薬組成物が、上文で開示されたリガンド結合ＡｕＣと、薬理学的に許容される賦形剤とを含む。特定の実施形態では、前記賦形剤が、リン酸緩衝液、または生理食塩水である。
【0054】
本発明は、対象における肝硬変の治療のための医薬の製造における上文で開示されたリガンド結合ＡｕＣの使用を提供する。
【0055】
本発明は、対象における肝硬変の治療のための上文で開示されたリガンド結合ＡｕＣｓの使用、または上文で開示されたリガンド結合ＡｕＣｓを使用して対象における肝硬変を治療する方法を提供する。特定の実施形態では、前記治療方法は、前記対象に薬学的に有効な量のリガンド結合ＡｕＣｓを投与することを含む。前記薬学的に有効な量は、通常の体内研究によって確認することができる。
【0056】
以下の実施例は、本発明の原理を説明することのみを目的として提供されている。それらは、決して本発明の範囲を制限することを意図するものではない。
【0057】
実施形態
【0058】
実施形態１． リガンド結合ＡｕＣｓの製造
【0059】
１．１ ＨＡｕＣｌ４をメタノール、水、エタノール、ｎ－プロパノール、又は酢酸エチルに溶解して、ＨＡｕＣｌ４濃度０．０１～０．０３Ｍの溶液Ａが得られた。
【0060】
１．２ リガンドを溶媒に溶解して、リガンド濃度０．０１～０．１８Ｍの溶液Ｂが得られた。前記リガンドは、Ｌ－システイン、Ｄ－システイン、及び、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、Ｎ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）、及びＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）等のその他のシステイン誘導体；システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体（Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－ヒスチジン（ＣＨ）、グリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－グルタチオン（ＧＳＨ）、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）及びグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）等の、ジペプチド、トリペプチド、テトラペプチド及びその他のシステイン含有ペプチドを含むが、これらに限定されない）；及び１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ（Ｄ）－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン及びドデシルメルカプタンのうちの一つ又は複数等のその他のチオール含有化合物を含むが、これらに限定されない。前記溶媒は、メタノール、酢酸エチル、水、エタノール、ｎ－プロパノール、ペンタン、ギ酸、酢酸、ジエチルエーテル、アセトン、アニソール、１－プロパノール、２－プロパノール、１－ブタノール、２－ブタノール、ペンタノール、酢酸ブチル、ｔ－ブチルメチルエーテル、酢酸イソプロピル、ジメチルスルホキシド、ギ酸エチル、酢酸イソブチル、酢酸メチル、２－メチル－１－プロパノール及び酢酸プロピルのうちの一つ又は複数であった。
【0061】
１．３ ＨＡｕＣｌ４とリガンドとのモル比が１：（０．０１～１００）となるように、溶液Ａと溶液Ｂを混合して、氷浴において０．１～４８時間撹拌し、０．０２５～０．８Ｍ ＮａＢＨ４の水、エタノール又はメタノール溶液を加えて、氷水浴において引き続き撹拌し、そして０．１～１２時間反応させた。ＮａＢＨ４とリガンドとのモル比は、１：（０．０１～１００）であった。
【0062】
１．４ 反応終了した後、ＭＷＣＯが３Ｋ～３０Ｋの限外ろ過チューブを使用して、８０００～１７５００ｒ／分の勾配で反応溶液を１０～１００分間遠心することにより、異なる平均粒子サイズを有するリガンド結合ＡｕＣ沈殿を得た。異なるＭＷＣＯの限外ろ過チューブのろ過メンブレンの開きは、直接的に、前記メンブレンを通過できるリガンド結合ＡｕＣｓのサイズを決定した。当該ステップは、任意に省略されてもよい。
【0063】
１．５ ステップ（１．４）で得られた異なる平均粒子サイズを有するリガンド結合ＡｕＣｓ沈殿を水に溶解し、透析バッグに投入し、そして水において室温で１～７日間透析した。
【0064】
１．６ 透析後、リガンド結合ＡｕＣｓを１２～２４時間凍結乾燥して、粉末状又は凝集状物質であるリガンド結合ＡｕＣｓを得た。
【0065】
測定からわかるように、前記方法により得られた粉末状又は凝集状物質の粒子サイズは、３ｎｍ未満であった（全体的に、０．５～２．６ｎｍにわたって分布した）。５２０ｎｍで明らかな吸収ピークがなかった。得られた粉末又は凝集体がリガンド結合ＡｕＣｓであったことが特定された。
【0066】
実施形態２． 異なるリガンドが結合されたＡｕＣｓの製造及び同定
【0067】
２．１ Ｌ－ＮＩＢＣ結合ＡｕＣｓ、即ち、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの製造
【0068】
リガンドであるＬ－ＮＩＢＣを例とし、Ｌ－ＮＩＢＣが結合したＡｕＣｓの製造及び確認について以下で詳細に説明する。
【0069】
２．１．１ １．００ｇのＨＡｕＣｌ４を量り、そして１００ｍＬのメタノールに溶解して、０．０３Ｍの溶液Ａを得た。
【0070】
２．１．２ ０．５７ｇのＬ－ＮＩＢＣを量り、そして１００ｍＬの氷酢酸（酢酸）に溶解して、０．０３Ｍの溶液Ｂを得た。
【0071】
２．１．３ １ｍＬの溶液Ａを量り、０．５ｍＬ、１ｍＬ、２ｍＬ、３ｍＬ、４ｍＬ、又は５ｍＬの溶液Ｂとそれぞれ混合し（すなわち、ＨＡｕＣｌ４とＬ－ＮＩＢＣとのモル比が、それぞれ、１：０．５、１：１、１：２、１：３、１：４、１：５であった。）、氷浴において撹拌しながら２時間反応させ、溶液が明るい黄色から無色になると、速やかに１ｍＬの新たに製造された０．０３Ｍ（１１．３ｍｇのＮａＢＨ４を量り、そして１０ｍＬのエタノールに溶解することにより製造された。）のＮａＢＨ４エタノール溶液を加えて、溶液が濃褐色になった後、引き続き３０分間反応し、そして１０ｍＬのアセトンを加えて反応を停止した。
【0072】
２．１．４ 反応後、反応溶液に対して勾配遠心を行い、異なる粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ粉末を得た。具体的な方法は以下のとおりである。即ち、反応完了後、反応溶液を３０ＫのＭＷＣＯ及び５０ｍＬの体積を有する限外ろ過チューブに転移し、１００００ｒ／分で２０分間遠心し、そして内チューブ中の保持液（ｒｅｔｅｎｔａｔｅ）を超純水に溶解して、約２．６ｎｍの粒子サイズを有する粉末を得た。その後、外チューブ中の混合液を５０ｍＬの体積及び１０ＫのＭＷＣＯを有する限外ろ過チューブに転移し、１３,０００ｒ／分で３０分間遠心した。内チューブ中の保持液を超純水に溶解して、約１．８ｎｍの粒子サイズを有する粉末を得た。その後、外チューブ中の混合液を５０ｍＬの体積及び３ＫのＭＷＣＯを有する限外ろ過チューブに転移し、１７,５００ｒ／分で４０分間遠心した。内チューブ中の保持液を超純水に溶解して、約１．１ｎｍの粒子サイズを有する粉末を得た。
【0073】
２．１．５ 勾配遠心により得られた３つの異なる粒子サイズでの粉末を沈殿させ、それぞれ溶媒を除去し、粗生成物をＮ２でブロー乾燥させ、５ｍＬの超純水に溶解し、透析バッグ（ＭＷＣＯが３ＫＤａ）に置き、透析バッグを２Ｌの超純水に置き、一日おきに水を交換し、７日間透析し、凍結乾燥し、そして将来の使用のために保持した。
【0074】
２．２ Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの同定
【0075】
上記で得られた粉末（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）に対して同定実験は行われた。同時に、リガンドであるＬ－ＮＩＢＣにより修飾した金ナノ粒子（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓ）は、対照として使用された。前記リガンドがＬ－ＮＩＢＣである金ナノ粒子の製造方法は、参考文献（Ｗ．Ｙａｎ、Ｌ．Ｘｕ、Ｃ．Ｘｕ、Ｗ．Ｍａ、Ｈ．Ｋｕａｎｇ、Ｌ．Ｗａｎｇ及びＮ．Ａ．Ｋｏｔｏｖ、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ２０１２、１３４、１５１１４；Ｘ．Ｙｕａｎ、Ｂ．Ｚｈａｎｇ、Ｚ．Ｌｕｏ、Ｑ．Ｙａｏ、Ｄ．Ｔ．Ｌｅｏｎｇ、Ｎ．Ｙａｎ及びＪ．Ｘｉｅ、Ａｎｇｅｗａｎｄｔｅ Ｃｈｅｍｉｅ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｅｄｉｔｉｏｎ ２０１４、５３、４６２３）に参照する。
【0076】
２．２．１ 透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）によるモーフォロジーの観察
【0077】
試験粉末（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプル及びＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓサンプル）を超純水に２ｍｇ／Ｌになるまで溶解してサンプルとし、そして懸滴法により試験サンプルを製造した。より具体的に、５μＬのサンプルを超薄型カーボンフィルムに滴下し、水滴がなくなるまで自然蒸発させ、そしてＪＥＭ－２１００Ｆ ＳＴＥＭ／ＥＤＳ電界放出形高分解能ＴＥＭによりサンプルのモーフォロジーを観察した。
【0078】
【0079】
図２中の画像で示されるように、各Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプルは、均一な粒子サイズ及び良好な分散性を有し、かつ、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの平均直径（金コアの直径と指す）がそれぞれ１．１ｎｍ、１．８ｎｍ及び２．６ｎｍであり、図２のパネルＣ、Ｆ及びＩ中の結果とよく一致した。これに対して、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓサンプルは、より大きい粒子サイズを有した。これらの平均直径（金コアの直径と指す）がそれぞれ３．６ｎｍ、６．０ｎｍ、１０．１ｎｍ及び１８．２ｎｍであり、図１のパネルＣ、Ｆ、Ｉ及びＬ中の結果とよく一致した。
【0080】
２．２．２ 紫外線（ＵＶ）－可視光（ｖｉｓ）吸収スペクトル
【0081】
試験粉末（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプル及びＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓサンプル）を超純水に濃度が１０ｍｇ・Ｌ－１になるまで溶解し、室温でＵＶ－ｖｉｓ吸収スペクトルが測定された。走査範囲が１９０～１１００ｎｍであり、サンプルセルが光路長１ｃｍの標準石英キュベットであり、参照セルが超純水により充填された。
【0082】
異なるサイズを有する４つのＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓサンプルのＵＶ－ｖｉｓ吸収スペクトルは、図１のパネルＡ、Ｄ、Ｇ及びＪに示され、粒子サイズの統計学的分布は、図１のパネルＣ、Ｆ、Ｉ及びＬに示され、異なるサイズを有する３つのＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプルのＵＶ－ｖｉｓ吸収スペクトルは、図２のパネルＡ、Ｄ及びＧに示され、粒子サイズの統計学的分布は、図２のパネルＣ、Ｆ及びＩに示される。
【0083】
図１で示されるように、表面プラズモン作用により、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓは、約５２０ｎｍで吸収ピークを有した。吸収ピークの位置は、粒子サイズに関連した。粒子サイズが３．６ｎｍである場合、ＵＶ吸収ピークが５１６ｎｍで現れ、粒子サイズが６．０ｎｍである場合、ＵＶ吸収ピークが５１７ｎｍで現れ、粒子サイズが１０．１ｎｍである場合、ＵＶ吸収ピークが５２０ｎｍで現れ、粒子サイズが１８．２ｎｍである場合、吸収ピークが５２３ｎｍで現れた。４つのサンプルは、いずれも５６０ｎｍ以上で吸収ピークを有しなかった。
【0084】
図２で示されるように、異なる粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプルのＵＶ吸収スペクトルでは、５２０ｎｍでの表面プラズモン作用による吸収ピークがなくなり、５６０ｎｍ以上で２つの明らかな吸収ピークが現れ、吸収ピークの位置がＡｕＣｓの粒子径により僅かな相違があった。これは、ＡｕＣｓが面心立方構造の崩壊により分子のような特性を示し、ＡｕＣｓの状態密度の不連続性、エネルギー準位の分裂、プラズモン共鳴効果の消失、及び長波方向の新しい吸収ピークに繋がったためである。上記で得られた異なる粒子サイズでの３つの粉末サンプルは、いずれもリガンド結合ＡｕＣｓであったと結論付けることができる。
【0085】
２．２．３ フーリエ変換赤外線分光法
【0086】
赤外線スペクトルは、Ｂｒｕｋｅｒ製のＶＥＲＴＥＸ８０Ｖフーリエ変換赤外線分光計を利用して固体粉末高真空全反射モードで測定された。走査範囲は、４０００～４００ ｃｍ－１であり、走査回数が６４であった。Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプルを例とし、試験サンプルは、異なる３つの粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ乾燥粉末であり、対照サンプルは、純粋なＬ－ＮＩＢＣ粉末であった。結果は、図３に示した。
【0087】
図３は、異なる粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの赤外線スペクトルを示す。純粋なＬ－ＮＩＢＣ（下部の曲線）と比較すると、異なる粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓのＳＨ伸縮振動は、全て、２５００～２６００ｃｍ－１で完全に消失したが、Ｌ－ＮＩＢＣの他の特徴的なピークは、依然として残っていて、Ｌ－ＮＩＢＣ分子がＡｕ－Ｓ結合を介してＡｕＣの表面に成功に固定されていたことが証明された。この図は、リガンド結合ＡｕＣｓの赤外スペクトルがそのサイズとは無関係であることも示した。
【0088】
溶液Ｂの溶媒、ＨＡｕＣｌ４とリガンドとの仕込み比、反応時間及び添加されたＮａＢＨ４の量をわずかに調整した以外、上記方法と同様な方法で、その他のリガンドが結合したＡｕＣｓを製造した。例えば、Ｌ－システイン、Ｄ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）又はＮ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）がリガンドとして使用される場合、溶媒として酢酸が選択され、ジペプチドＣＲ、ジペプチドＲＣ又は１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ－プロリンがリガンドとして使用される場合、溶媒として水が選択されることなど、その他のステップについても同じようにするため、更なる詳細はここで省略する。
【0089】
本発明は、前述の方法により、一連のリガンド結合ＡｕＣｓを製造した。リガンドと製造プロセスのパラメーターを表１に示す。
【0090】
【0091】
表１に挙げられたサンプルは、前記方法により確認された。６つの異なるリガンド結合ＡｕＣｓの特性を図４（ＣＲ－ＡｕＣ）、図５（ＲＣ－ＡｕＣ）、図６（Ｃａｐ－ＡｕＣ）（Ｃａｐは１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ－プロリンである）、図７（ＧＳＨ－ＡｕＣｓ）、及び図８（Ｄ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）に示す。図４～図８は、ＵＶスペクトル（パネルＡ）、赤外線スペクトル（パネルＢ）、ＴＥＭ画像（パネルＣ）、及び粒子サイズ分布（パネルＤ）を示す。
【0092】
その結果、表１から得られた異なるリガンドが結合したＡｕＣｓの直径は、いずれも、３ｎｍ未満であることがわかった。紫外線スペクトルは、５２０±２０ｎｍでのピークの消失、及び他の位置での吸収ピークの出現も示した。この吸収ピークの位置は、リガンド、粒子サイズ、及び構造によって異なった。特定の状況で、特殊な吸収ピークが形成されないが、主な原因は、粒子径や構造の異なるＡｕＣｓの混合物が形成されたこと、または、ある特殊なＡｕＣｓにより吸収ピークの位置が紫外線可視スペクトルの範囲外に移動されたことである。一方、フーリエ変換赤外スペクトルでは、リガンドのチオールの赤外吸収ピーク（図４～８のパネルＢの点線の間）が消失したが、他の赤外特性ピークはいずれも保持されていることから、全てのリガンド分子がＡｕＣｓの表面に成功に固定されており、本発明が表１に記載されたリガンドの結合したＡｕＣｓを取得することに成功したことを示した。
【0093】
実施形態３
【0094】
３．１ 材料および動物
【0095】
３．１．１ 試験サンプル
【0096】
Ａ－０１：リガンドＬ－ＮＩＢＣ結合金クラスター（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）、０．９±０．２ｎｍである。
【0097】
Ａ－０２：リガンドＬ－ＮＩＢＣ結合金クラスター（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）、１．９±０．５ｎｍである。
【0098】
Ｂ－０１：リガンドＬ－Ｃｙｓ結合金クラスター（Ｌ－Ｃｙｓ－ＡｕＣｓ）、１．０±０．２ｎｍである。
【0099】
Ｂ－０２：リガンドＬ－Ｃｙｓ結合金クラスター（Ｌ－Ｃｙｓ－ＡｕＣｓ）、１．７±０．３ｎｍである。
【0100】
Ｃ：Ｌ－ＮＩＢＣ修飾ナノ粒子（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓ）、６．３±１．５ｎｍ
【0101】
全ての試験サンプルは、上記の方法に従って調製されたがわずかな変更を加えた。それらの品質は上記の方法を使用して特徴づけられた。
【0102】
３．１．２ 陽性対照サンプル
【0103】
ソラフェニブ（Sorafenib）。
【0104】
３．１．３ 実験用動物および群分け
【0105】
１２０匹の、６～８週齢で、体重１６～２０ｇのＳＰＦ雄Ｃ５７ＢＬ／６Ｎマウスは、Ｂｅｉｊｉｎｇ Ｈｕａｆｕｋａｎｇ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ａｎｉｍａｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社（生産ライセンス番号：ＳＣＸＫ（Ｊｉｎｇ）２０１９～０００８）から購入された。体重によって、それらを１２の群（ｎ＝１０）（空白対照群、モデル群、陽性対照群、Ａ－０１低用量群、Ａ－０１高用量群、Ａ－０２低用量群、Ａ－０２高用量群、Ｂ－０１低用量群、Ｂ－０１高用量群、Ｂ－０２低用量群、Ｂ－０２高用量群、およびＣ高用量群）にランダムに分けた。
【0106】
３．２ モデリング・プロトコル
【0107】
空白対照群を除いて、その他の群におけるマウスの肝硬変モデルは、四塩化炭素（ＣＣｌ４）誘導処理の方法により製造された。モデリング・プロトコルは、以下の通りであった。（１）各マウスは、週２回、合計８週間で、体重１ｇあたり７μＬの１０％ ＣＣｌ４（オリーブ油で希釈したもの）を腹腔内注射し、空白対照群のマウスは、同じ量のオリーブ油溶媒を腹腔内注射した。（２）６週目から、２匹のマウスを選択し、そして毎週の最後の注射４８時間後に処刑した。肝臓の外観を観察した。外観が肝硬変の特性と一致した後（８週目）、肝臓組織をホルマリンで固定した。ＨＥ染色およびマッソン染色（Masson staining）を利用して、肝硬変のモデルを評価した。
【0108】
３．３ 投与
【0109】
モデリングが成功した後、陽性対照群におけるマウスに、胃内で２５ｍｇ／ｋｇソラフェニブを投与した。低用量または高用量の群のＡ－０１、Ａ－０２、Ｂ－０１およびＢ－０２におけるマウスに、腹腔内注射により、それぞれ、２．５または１０ｍｇ／ｋｇの対応する試験材を投与した。Ｃ高用量群におけるマウスに、腹腔内注射により、４０ｍｇ／ｋｇの用量のＣを投与した。そして、空白対照群およびモデル群におけるマウスに、腹腔内注射により、１０ｍＬ／ｋｇで生理食塩水を投与した。前記投与は、１日１回、２０日間連続した。
【0110】
３．４ 生化学的検査
【0111】
投与が完了した後、血液をマウスの眼窩から採取し、そして、Ｚｈｏｎｇｓｈｅｎｇ Ｂｅｉｋｏｎｇキットおよび生化学分析装置（Ｓｉｅｍｅｎｓ）を用いて、アルブミン（ＡＬｂｕｍｉｎ、ＡＬＢ）、全ビリルビン（ＴＢｉｌ）、アラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（ＡＳＴ）およびモノアミンオキシダーゼ（ＭＡＯ）の生化学的検査のために、血清を得た。検出方法は、キットの指示に従って厳密に行った。
【0112】
【0113】
３．５ 病理学的検査
【0114】
３．５．１ ＨＥ染色
【0115】
安楽死後、マウス肝臓組織サンプルを４％パラホルムアルデヒド固定剤で４８時間以上固定した。固定後、肝臓サンプルをアルコール系列で脱水し、キシレンおよびエタノールで処理した。次いで、肝臓組織をワックス中に浸漬し、包埋した。包埋した材料がトリミング、付着、修復された後、パラフィンミクロトームで肝臓組織を４μｍの厚さで薄切した。ＨＥ染色の主な過程は以下の通りであった。オーブン中で６５℃でベーキングした後、切片をキシレンで処理し、アルコール系列で脱水した。切片をヘマトキシリン、青色発色性溶液（blue color-enhancing solution）および０.５％エオシンで順次染色し、次いでアルコール系列およびキシレンで処理し、中性ガムで密封した。顕微鏡で肝臓組織の線維症を観察した。
【0116】
３．５．２ マッソン染色
【0117】
ベーキング後、マウス肝臓組織切片を脱ロウし、脱水した。染色後、核をＲｅｇａｕｄ氏ヘマトキシリン染色溶液で染色した。水で洗浄した後、切片をＭａｓｓｏｎ氏ポンソー赤色酸性フクシン（Masson's Ponceau Red Acidic Fuchsin）で染色し、切片を２％氷酢酸水溶液に浸漬し、１％ホスホモリブデン酸溶液で分化させた。アニリンブルーまたは淡緑色溶液で直接染色した後、切片を０．２％氷酢酸水溶液に少し浸漬し、その後９５％アルコール、無水アルコールおよびキシレンで透明化させ、次いで中性ガムで密封した。顕微鏡で肝臓組織を観察した。
【0118】
３．６ 結果
【0119】
３．６．１ 成功したモデリング
【0120】
モデル群におけるマウスの肝臓は、増殖した繊維性隔壁により、異なるサイズの丸形または楕円形の塊に分割された。血清中のＡＬＴ、ＴＢｉｌ、およびＡＳＴ指数は空白対照群のものと比較して有意に増加し、血清中のＡＬＢは空白対照群と比較して有意に減少し、ＭＡＯ指数は対照群と有意差はなかったが、その値も増加した。上記のすべての結果は、この実験モデルが成功したことを示唆している。
【0121】
３．６．２ アラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）、全ビリルビン（ＴＢｉｌ）、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（ＡＳＴ）、モノアミンオキシダーゼ（ＭＡＯ）およびアルブミン（ＡＬＢ）に対する試験薬物の効果
【0122】
３．６．２．１ 試験薬物 Ａ－０１およびＡ－０２
【0123】
図１０Ａに示すように、モデル群のＡＬＴ活性は、空白対照群よりも極めて有意に高くなり（４３．５±８．１Ｕ／Ｌから１８８．５±４．９Ｕ／Ｌに増加した；Ｐ＜０．０１）、肝硬変モデルマウスの肝臓機能が病理学的変化を有していることを示す。高用量および低用量でＡ－０１およびＡ－０２を投与した後、全ての処理群のＡＬＴ活性は、有意に減少し（最高値はＡ－０２低用量群の４１．５±５．４Ｕ／Ｌ、最低値はＡ－０１高用量群の３０．０±５．９Ｕ／Ｌ、陽性対照群は４２．８±５．４Ｕ／Ｌであった）、空白対照群と同様またはそれ以下のレベルに戻り、モデル群と有意に異なった（Ｐ＜０．０１）。
【0124】
図１０Ｂに示すように、モデル群のＡＳＴ活性は、空白対照群よりも有意に高くなった（１４１．９±１３．５Ｕ／Ｌから１９２．０±１１．３Ｕ／Ｌに増加した；Ｐ＜０．０５）。Ａ－０１およびＡ－０２を投与した後、全ての処理群のＡＳＴ活性は、減少し、そして高用量のＡ－０１およびＡ－０２投与は、ＡＳＴ活性を有意に減少し（Ａ－０１高用量群は１３０±１２．８Ｕ／Ｌ、Ａ－０２高用量群は１３１．３±９．９Ｕ／Ｌであった。いずれもＰ＜０．０１）、陽性対照群（１６５．５±１１．６Ｕ／Ｌ）よりも明らかに優れた。
【0125】
図１０Ｃに示すように、モデル群のＴｂｉｌの濃度は、空白対照群よりも有意に高くなり（１．０２±０．２０μｍｏｌ／Ｌから２．９１±０．３９μｍｏｌ／Ｌに増加した）、そして空白対照群と有意に異なった（Ｐ＜０．０１）。高用量および低用量でＡ－０１およびＡ－０２を投与した後、ＴＢｉｌの濃度は、いずれも有意に減少し（最高値は０．９１±０．１３μｍｏｌ／Ｌ、最低値は０．７８±０．２５μｍｏｌ／Ｌであった）、空白対照群と同様のレベルにあるが、モデル群と極めて有意に異なった（Ｐ＜０．０１）。
【0126】
図１０Ｄに示すように、モデル群のＭＡＯ活性は、空白対照群と比較して増加したが（空白対照群は１８．８±２．９Ｕ／Ｌ、モデル群は２１．５±０．７Ｕ／Ｌであった）、統計学的な差がなく、四塩化炭素により誘導された肝硬変マウスにおけるＭＡＯ活性の変化が有意でなかったと示唆している。Ａ－０１およびＡ－０２の投与は、全ての処理群のＭＡＯ活性に有意な影響を与えていないが、全ての処理群のＭＡＯ活性が減少し（最高値は１９．３±１．５Ｕ／Ｌおよび最低値は１８．５±１．９Ｕ／Ｌであった）、空白対照群と同様のレベルになった。それに対して、陽性対照群のＭＡＯ活性が減少しなかった（２１．３±２．１Ｕ／Ｌ）。この結果は、Ａ－０１およびＡ－０２が、ＭＡＯ活性を空白対照群のレベルに調整することができ、肝硬変マウスにおける肝臓機能の回復に役立つことを示唆している。
【0127】
図１０Ｅに示すように、モデル群のＡＬＢレベルは、空白対照群と比較して有意に減少し（２４．２±０．６ ｇ／Ｌから２２．１±１．３ ｇ／Ｌに減少した）、そして空白対照群と有意に異なり（Ｐ＜０．０５）、四塩化炭素投与が血清中のＡＬＢレベルを有意に減少させることができることを示した。異なる用量のＡ－０１とＡ－０２、および陽性対照群の投与は、血清中のＡＬＢレベルに有意な影響を与えなかった。
【0128】
陽性薬物ソラフェニブは、ＡＬＴ、ＡＳＴ、およびＴＢＩＬのレベルを有意に減少したが、ＭＡＯ指数については肝硬変マウスに寛解効果がなかった。この結果は、Ａ－０１およびＡ－０２が肝硬変マウスにおける肝臓機能に回復効果があり、そして陽性対照薬よりも優れる効果を持つことを示唆している。
【0129】
３．６．２．２ 試験薬物Ｂ－０１およびＢ－０２
【0130】
図１１Ａに示すように、低用量および高用量のＢ－０１およびＢ－０２は、ＡＬＴ活性を有意に減少させることができ（最高値は４６．３±７．４Ｕ／Ｌ、最低値は３３．０±７．１Ｕ／Ｌであった）、空白対照群と同様のレベルにあるが、モデル群と有意に異なった（１８８．５±４．９Ｕ／Ｌ、Ｐ＜０．０１）。
【0131】
図１１Ｂに示すように、モデル群（１９２．０±１１．３Ｕ／Ｌ）と比較して、Ｂ－０１の低用量および高用量投与は、ＡＳＴ活性を正常レベルに有意に減少させることができ（それぞれ、１３２．３±１０．０Ｕ／Ｌおよび１２９．７±２６．６Ｕ／Ｌであった。Ｐ＜０．０１）、そして、Ｂ－０２の低用量投与は、ＡＳＴ活性を有意に減少させることができ（１４９．６±２１．８Ｕ／Ｌ、Ｐ＜０．０５）、空白対照群と同様のレベルにあった。ただし、Ｂ－０２の高用量投与は、ある程度ＡＳＴ活性を減少したが、有意な差がなかった（Ｐ＞０．０５）。それに対して、陽性薬物ソラフェニブも、ＡＳＴ活性を１６５．５±１１．６Ｕ／Ｌに減少することができるが（Ｐ＜０．０５）、その効果は、Ｂ－０１の低用量および高用量やＢ－０２の低用量の投与の場合ほど優れたわけでない。
【0132】
図１１Ｃに示すように、低用量および高用量のＢ－０１およびＢ－０２は、いずれもＴＢｉｌを有意に減少し（最高値は１．２８±０．１２μｍｏｌ／Ｌ、最低値は０．９６±０．１５μｍｏｌ／Ｌであった）、空白対照群と同様のレベルにあったが（１．０２±０．２０μｍｏｌ／Ｌ）、モデル群と有意に異なった（２．９１±０．３９μｍｏｌ／Ｌ、Ｐ＜０．０１）。
【0133】
図１１Ｄに示すように、モデル群（２１．５±０．７Ｕ／Ｌ）と比較して、低用量のＢ－０１（１７．３±１．３Ｕ／Ｌ、Ｐ＜０．０１）および高用量のＢ－０２（１８．３±０．６Ｕ／Ｌ、Ｐ＜０．０５）は、空白対照群（１８．８±２．９Ｕ／Ｌ）よりも血清中のＭＡＯレベルを有意に減少したが、陽性対照薬物は、ＭＡＯの血清中のレベルに効果がなかった（２１．３±２．１Ｕ／Ｌ）。
【0134】
図１１Ｅに示すように、試験薬物および陽性対照薬物の投与は、ＡＬＢレベルに有意な影響がなかった。
【0135】
上記結果は、Ｂ－０１およびＢ－０２が、ＡＬＴ、ＡＳＴ、ＴＢＩＬおよびＭＡＯのレベルを有意に減少し、肝硬変マウスの肝臓機能回復に一定の用量依存性効果があり、そしてそれらの効果が少なくとも一部の指標において陽性対照薬物よりも良いことを示した。
【0136】
３．６．２．３ 試験薬物Ｃ
【0137】
図１２に示すように、モデル群と比較して、高用量の薬物Ｃの投与は、（Ａ）ＡＬＴ、（Ｂ）ＡＳＴ、（Ｃ）ＴＢＩＬ、（Ｄ）ＭＡＯ、および（Ｅ）ＡＬＢのレベルに対して有意な改善がなく、ひいては一定的な劣化の傾向を示し、薬物Ｃが肝硬変マウスの肝臓機能の改善に効果がなく、毒性を持つことを示唆している。
【0138】
３．６．３ 病理学的分析
【0139】
肝硬変は、肝臓組織の線維症および偽小葉の形成を病理学的な特徴とする。ＨＥ染色病理学的分析の結果は、図１３Ａに示すように、空白対照群のマウスからの正常な肝臓組織が、明瞭な構造を有し、肝小葉が完全で、肝細胞がきれいに配列され、中心静脈を中心として放射状に配列され、肝細胞の核が正常で、門脈域（catchment area）中の少量の繊維状組織のみを有していたことを示した。図１３Ｂに示すように、モデル群の肝臓組織では、肝細胞が乱れ、バルーン状の構造が現れ、肝小葉がほとんど消失し、偽小葉（図１３Ｂには右向きの矢印で示す）が多く生成され、肝組織に多くの増殖した原線維が存在し、丸型または楕円形の繊維性隔壁（図１３Ｂには左向きの矢印で示す）が形成された。図１３Ｃに示すように、モデル対照群と比較して、陽性対照群は肝臓損傷の有意な減少を示し、肝細胞は明らかに整然な配列を有し、線維過形成は明らかに減少し、繊維性隔壁を形成することなく、偽小葉が消失したが、正常な肝臓組織と比較して、陽性対照群の肝臓組織は細胞間ギャップの明らかな増加を示した（下向きの矢印によって示されている）。モデル対照群と比較して、金クラスター薬物（Ａ－０１、Ａ－０２、Ｂ－０１およびＢ－０２）を投与した４つの群は、線維過形成および偽小葉の明らかな減少により証明されているように、肝細胞が肝臓損傷から有意に回復したこと、および回復がある程度の用量依存性を示すことを示した。
【0140】
図１３Ｄおよび図１３Ｅは、肝臓損傷の回復について、例示的なＡ－０１の低用量および高用量薬物投与の効果をそれぞれ示したＨＥ画像を示す。図１３Ｄに示すように、Ａ－０１低用量薬物投与群では、肝細胞が比較的に整然に配列され、偽小葉がほとんど消失し、線維過形成が明らかに減少したが、正常な肝臓組織と比較して、ある程度の肝細胞間ギャップの増加を示した（図１３Ｄの下向きの矢印で示す）。図１３Ｅに示されるように、Ａ－０１の低用量薬物投与群と比較して、Ａ－０１の高用量薬物投与群では、肝臓損傷が減少し、偽小葉が完全に消失し、線維過形成が確認されることなく、肝細胞間ギャップの識別可能な増加がなく、正常な肝臓組織と明らかな差異がないという点においてより良い効果を示した。結論として、Ａ－０１薬物は、陽性対照薬物よりも肝臓損傷の回復に優れた効果を示した。
【0141】
マッソン染色の結果は、ＨＥ染色の結果と同じ結論を提供した。
【0142】
その他の３種の薬物もＡ－０１薬物と同様の効果を示し、詳細な説明は必要ではない。
【0143】
以上をまとめると、４つの試験薬物Ａ－０１、Ａ－０２、Ｂ－０１およびＢ－０２は、肝臓の繊維過形成および肝臓の偽小葉を有意に減少させた。肝臓機能指標の試験結果はまた、肝臓機能の回復を示した。アラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）および全ビリルビン（ＴＢｉｌ）の変化は最も明らかであった。アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（ＡＳＴ）およびモノアミノオキシダーゼ（ＭＡＯ）も有意に回復され、一方、アルブミン（ＡＬＢ）は有意に変化しなかった。４つの金クラスター薬物は、肝硬変マウスにおいて肝臓機能および肝臓の病理学的構造の一部を有意に改善することができ、そして全体的な効果は、陽性対照薬物ソラフェニブよりも優れて、将来のさらなる適用のための実験的根拠を提供する。しかし、薬物Ｃは明らかな治療効果を有しておらず、肝硬変の治療には使用できない。
【0144】
実施形態 ４
【0145】
４．１ 材料および動物
【0146】
４．１．１ 試験サンプル
【0147】
Ｄ：リガンドＬ－ＮＡＣ結合金クラスター（Ｌ－ＮＡＣ－ＡｕＣｓ）、０．５～３ｎｍである。
【0148】
Ｅ：リガンドＣＲ結合金クラスター（ＣＲ－ＡｕＣｓ）、０．５～３ｎｍである。
【0149】
Ｆ：リガンドＲＣ結合金クラスター（ＲＣ－ＡｕＣｓ）、０．～３ｎｍである。
【0150】
全ての試験サンプルは、上記の方法に従って調製されたがわずかな変更を加えた。それらの品質は上記の方法を使用して特徴づけられた。
【0151】
４．１．２ 実験用動物および群分け
【0152】
５０匹の、６～８週齢で、体重１６～２０ｇのＳＰＦ雄Ｃ５７ＢＬ／６Ｎマウスは、Ｂｅｉｊｉｎｇ Ｈｕａｆｕｋａｎｇ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ａｎｉｍａｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社（生産ライセンス番号：ＳＣＸＫ（Ｊｉｎｇ）２０１９～０００８）から購入された。体重によって、それらを５の群（ｎ＝１０）（空白対照群、モデル群、Ｄ薬物投与群、Ｅ薬物投与群、およびＦ薬物投与群）にランダムに分けた。
【0153】
４．２ モデリング・プロトコル
【0154】
空白対照群を除いて、その他の群におけるマウスの肝硬変モデルは、四塩化炭素（ＣＣｌ４）誘導処理の方法により製造された。モデリング・プロトコルは、以下の通りであった。（１）それぞれのマウスは、体重１ｇあたり７μＬで、週２回、合計８週間で１０％ ＣＣｌ４（オリーブ油で希釈したもの）を腹腔内注射し、空白対照群のマウスは、同じ量のオリーブ油溶媒を腹腔内注射した。（２）６週目から、２匹のマウスを選択し、そして毎週の最後の注射４８時間後に処刑した。肝臓の外観を観察した。外観が肝硬変の特性と一致した後（８週目）、肝臓組織をホルマリンで固定した。ＨＥ染色およびマッソン染色を使用して、肝硬変のモデルを評価した。
【0155】
４．３ 投与
【0156】
モデリングが成功した後、３つの薬物投与群におけるマウスに、腹腔内注射により、それぞれ、４０ｍｇ／ｋｇの対応の金クラスター薬物を投与し、そして、空白対照群およびモデル群におけるマウスに、腹腔内注射により、１０ｍＬ／ｋｇで生理食塩水を投与した。前記投与は、１日１回、２０日間連続した。
【0157】
４．４ 生化学的検査
【0158】
試薬およびプロトコルは、３．４部分の記載と同じであった。
【0159】
４．５ 結果
【0160】
４．５．１ 成功したモデリング
【0161】
モデル群におけるマウスの肝臓は、増殖した繊維性隔壁により、異なるサイズの丸形または楕円形の塊に分割された。血清中のＡＬＴ、ＴＢｉｌ、およびＡＳＴ指数は空白対照群のものと比較して有意に増加し、血清中のＡＬＢは空白対照群と比較して有意に減少し、ＭＡＯ指数は対照群と有意差はなかったが、その値も増加した。上記すべての結果は、この実験モデルが成功したことを示唆している。
【0162】
４．５．２ アラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）、全ビリルビン（ＴＢｉｌ）、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（ＡＳＴ）、モノアミンオキシダーゼ（ＭＡＯ）およびアルブミン（ＡＬＢ）に対する試験薬物の効果
【0163】
図１４Ａに示すように、モデル群のＡＬＴ活性は、空白対照群よりも極めて有意に高くなり（Ｐ＜０．０１、**）、肝硬変モデルマウスの肝臓機能が病理学的変化を有していることを示した。Ｄ、ＥまたはＦ薬物を投与した後、全ての処理群のＡＬＴ活性は、有意に減少し、空白対照群と同様のレベルに戻り、モデル群と有意に異なった（Ｐ＜０．０１）。
【0164】
図１４Ｂに示すように、モデル群のＡＳＴ活性は、空白対照群よりも有意に高かった（Ｐ＜０．０５、*）。Ｄ、ＥまたはＦ薬物を投与した後、全ての処理群のＡＳＴ活性は、有意に減少した（Ｐ＜０．０５、*）。
【0165】
図１４Ｃに示すように、モデル群のＴＢｉｌ濃度は、空白対照群よりも有意に高かった（Ｐ＜０．０１、**）。Ｄ、ＥまたはＦ薬物を投与した後、全ての処理群のＴＢｉｌ濃度は、空白対照群のレベルに有意に減少したが、モデル群と有意に異なった（Ｐ＜０．０１、**）。
【0166】
図１４Ｄに示すように、モデル群のＭＡＯ活性は、空白対照群と比較して増加したが、統計学的な差がなく（Ｐ＞０．５）、四塩化炭素により誘導された肝硬変マウスにおけるＭＡＯ活性の変化が有意でなかったと示唆している。Ｄ、ＥまたはＦ薬物の投与は、ＭＡＯ活性に有意な影響を与えることなく、全ての薬物投与群のＭＡＯ活性は、空白対照群のレベルに減少した。
【0167】
図１４Ｅに示すように、モデル群のＡＬＢ濃度は、空白対照群と比較して減少したが、有意な差がなかった（Ｐ＞０．０５）。一方、Ｄ、ＥまたはＦ薬物の投与は、血清中のＡＬＢ濃度を増加したが、有意な差がなかった（Ｐ＞０．０５）。
【0168】
以上をまとめると、３つの金クラスター薬物Ｄ、ＥおよびＦは、肝臓機能を有意に改善した。アラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）および全ビリルビン（ＴＢｉｌ）は、最も有意な変化を示し、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（ＡＳＴ）およびモノアミノオキシダーゼ（ＭＡＯ）は明らかな回復を示し、そしてアルブミン（ＡＬＢ）もまた改善されたが、有意な改善ではなかった。これらの結果は、将来の更なる適用のための実験的根拠を提供する。
【0169】
その他のサイズのＬ－Ｃｙｓ－ＡｕＣｓ、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ、Ｌ－ＮＡＣ－ＡｕＣｓ、ＣＲ－ＡｕＣｓ、ＲＣ－ＡｕＣｓ、および異なるサイズのその他のリガンド結合ＡｕＣｓも同様の効果を有し、一方、それらの効果はある程度異なる。ここでは詳細に説明しない。
【0170】
本発明を特定の実施形態を参照して説明したが、実施形態は例示であり、本発明の範囲はそのように限定されないことが理解されるであろう。本発明の別の実施形態は、本発明が関係する当業者には明らかになるであろう。このような代替実施形態は、本発明の範囲内に包含されると考えられる。従って、本発明の範囲は、添付の特許請求の範囲によって規定され、前述の説明によって支持される。
【図1】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
【図10】
【図11】
【図12】
【図13】
【図14】
【手続補正書】
【提出日】2022-11-14
【手続補正1】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項1】
肝硬変を治療するための医薬組成物であって、前記医薬組成物は、リガンド結合金クラスターを含み、前記リガンド結合金クラスターが、金コアと、
金コアに結合したリガンドと、
を含む、医薬組成物。
【請求項2】
前記金コアは、直径が０．５～３ｎｍである、請求項１に記載の医薬組成物。
【請求項3】
前記金コアは、直径が０．５～２．６ｎｍである、請求項１に記載の医薬組成物。
【請求項4】
前記リガンドが、Ｌ－システインとその誘導体、Ｄ－システインとその誘導体、システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体、およびその他のチオール含有化合物からなる群より選ばれる一つである、請求項１に記載の医薬組成物。
【請求項5】
前記Ｌ－システインとその誘導体は、Ｌ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれ、そして前記Ｄ－システインとその誘導体は、Ｄ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれる、請求項４に記載の医薬組成物。
【請求項6】
前記システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体は、システイン含有ジペプチド、システイン含有トリペプチドまたはシステイン含有テトラペプチドである、請求項４に記載の医薬組成物。
【請求項7】
前記システイン含有ジペプチドは、Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、Ｌ（Ｄ）－ヒスチジン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＨＣ）、およびＬ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－ヒスチジンジペプチド（ＣＨ）からなる群より選ばれる、請求項６に記載の医薬組成物。
【請求項8】
前記システイン含有トリペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－リシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－プロリントリペプチド（ＫＣＰ）、およびＬ（Ｄ）－グルタチオン（ＧＳＨ）からなる群より選ばれる、請求項６に記載の医薬組成物。
【請求項9】
前記システイン含有テトラペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）、およびグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）からなる群より選ばれる、請求項６に記載の医薬組成物。
【請求項10】
前記その他のチオール含有化合物は、１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ（Ｄ）－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン、Ｎ－（２ーメルカプトプロピオニル）－グリシン、およびドデシルメルカプタンからなる群より選ばれる、請求項４に記載の医薬組成物。
【手続補正2】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、肝硬変の治療の技術分野に関し、特に肝硬変の治療のためのリガンド結合金クラスター（ＡｕＣｓ）及び前記リガンド結合ＡｕＣｓを含む組成物に関する。
【背景技術】
【0002】
肝臓は、ヒト体内の最大の固形臓器であり、凝固、酸素輸送、および免疫系を補助する血液タンパク質の製造、過剰の栄養素の貯蔵および一部の栄養素の血流への返送、食品を消化するための胆汁の製造、グリコーゲンとしての糖（グルコース）の体における蓄積の補助、薬物およびアルコールを含む血流中の有害物質からの生体保護、および飽和脂肪の分解とコレステロールの生成、を含む多くの重要な機能を実行する。
【0003】
肝硬変は、肝臓に対する長期間の連続的損傷により長年にわたって進行していく、緩徐進行性疾患である。肝硬変の進行と共に、健康な肝臓組織は徐々に破壊され、瘢痕組織に置き換われる。瘢痕組織は、肝臓を通過する血液の流れを遮断し、栄養、ホルモン、薬物および天然毒素を処理する肝臓の能力を低下させる。また、肝臓によって作られたタンパク質および他の物質の生成を減少させる。肝硬変は、最終的に、肝臓移植が必要とする肝不全および／または肝臓癌につながる可能性がある。
【0004】
肝硬変の初期段階では、肝臓補償機能が強いため、明らかな症状はない。後期において、症状は、肝臓機能障害、門脈圧亢進、上部消化管出血、肝性脳症、二次感染、脾臓機能亢進、腹水、癌化および他の合併症を含む。肝硬変は、漸進的な肝臓の変形および硬化から生じる。組織病理学的には、肝硬変は、広範な肝細胞壊死、残留肝細胞の結節状再生、結合組織の過形成および線維性中隔の生成を特徴とし、肝小葉構造の破壊および偽小葉の形成をもたらす。
【0005】
肝硬変にはさまざまな原因がある。肝硬変を有する一部の人々の肝臓損傷は１つ以上の原因によるものである。肝硬変の一般的な原因は、長期間のアルコール乱用、Ｂ型肝炎ウイルスとＣ型肝炎ウイルスの重複感染、脂肪性肝疾患、毒性金属、遺伝子疾患、栄養障害、工業性毒物、麻薬、循環障害、代謝障害、胆汁うつ滞、住血吸虫症などを含む。
【0006】
肝硬変は、多くの検査／技術により診断することができる。例えば、血液検査において、アラニントランスアミナーゼ（ＡＬＴ）、アスパラギン酸トランスアミナーゼ（ＡＳＴ）およびアルカリホスファターゼ（ＡＬＰ）を含む肝臓酵素及びビリルビンのレベルが増加し、血液タンパク質のレベルが減少する場合、肝硬変を示唆し得る。
【0007】
現在、治療は、その原因に対処することによって肝硬変の進行を遅延させることができるが、肝硬変のための特定の処置は存在しない。
【発明の概要】
【0008】
本発明は、対象における肝硬変を治療するためのリガンド結合金クラスターを提供する。
【0009】
本発明の肝硬変を治療するための医薬組成物を提供する特定の実施形態では、前記医薬組成物は、リガンド結合金クラスターを含み、前記リガンド結合金クラスターは、金コアと、前記金コアに結合したリガンドとを含む。
【0010】
前記医薬組成物の特定の実施形態では、前記金コアは、直径が０．５～３ｎｍである。特定の実施形態では、前記金コアは、直径が０．５～２．６ｎｍである。
【0011】
前記医薬組成物の特定の実施形態では、前記リガンドは、Ｌ－システインとその誘導体、Ｄ－システインとその誘導体、システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体、およびその他のチオール含有化合物からなる群より選ばれる一つである。
【0012】
前記医薬組成物の特定の実施形態では、前記Ｌ－システインとその誘導体は、Ｌ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれ、そしてＤ－システインとその誘導体が、Ｄ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれる。
【0013】
前記医薬組成物の特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体は、システイン含有ジペプチド、システイン含有トリペプチドまたはシステイン含有テトラペプチドである。
【0014】
前記医薬組成物の特定の実施形態では、前記システイン含有ジペプチドは、Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、Ｌ（Ｄ）－ヒスチジン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＨＣ）、およびＬ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－ヒスチジンジペプチド（ＣＨ）からなる群より選ばれる。
【0015】
前記医薬組成物の特定の実施形態では、前記システイン含有トリペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－リシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－プロリントリペプチド（ＫＣＰ）、およびＬ（Ｄ）－グルタチオン（ＧＳＨ）からなる群より選ばれる。
【0016】
前記医薬組成物の特定の実施形態では、前記システイン含有テトラペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）、およびグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）からなる群より選ばれる。
【0017】
前記医薬組成物の特定の実施形態では、前記その他のチオール含有化合物は、１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ（Ｄ）－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン、Ｎ－（２ーメルカプトプロピオニル）－グリシン、およびドデシルメルカプタンからなる群より選ばれる。
【0018】
本発明の目的および利点は、添付の図面に関連するその好ましい実施形態の以下の詳細な説明から明らかになる。
【図面の簡単な説明】
【0019】
次に、本発明による好ましい実施形態を、同様の参照番号が同様の要素を示す図を参照して説明する。
【0020】
【図1】様々な粒子サイズのリガンドＬ－ＮＩＢＣで修飾された金ナノ粒子（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓ）の紫外線可視（ＵＶ）スペクトル、透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）画像および粒子サイズ分布図を示す。
【0021】
【図2】様々な粒子サイズのリガンドＬ－ＮＩＢＣ結合金クラスター（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）の紫外線可視（ＵＶ）スペクトル、ＴＥＭ画像および粒子サイズ分布図を示す。
【0022】
【図3】様々な粒子サイズのＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの赤外線スペクトルを示す。
【0023】
【図4】リガンドＣＲ結合金クラスター（ＣＲ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
【0024】
【図5】リガンドＲＣ結合金クラスター（ＲＣ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
【0025】
【図6】リガンド１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ－プロリン（即ち、Ｃａｐ）結合金クラスター（Ｃａｐ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
【0026】
【図7】リガンドＧＳＨ結合金クラスター（ＧＳＨ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
【0027】
【図8】リガンドＤ－ＮＩＢＣ結合金クラスター（Ｄ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
【0028】
【図9】リガンドＬ－システイン結合金クラスター（Ｌ－Ｃｙｓ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
【0029】
【図10】１）空白対照群、２）モデル群、３）ソラフェニブで治療した陽性群、４）Ａ－０１低用量群、５）Ａ－０１高用量群、６）Ａ－０２低用量群、および７）Ａ－０２高用量群を示す、肝硬変モデルマウスにおける血清中の（Ａ）ＡＬＴ、（Ｂ）ＡＳＴ、（Ｃ）ＴＢＩＬ、（Ｄ）ＭＡＯおよび（Ｅ）ＡＬＢのレベルに対する様々な用量のＡ－０１およびＡ－０２の効果を示す棒グラフである。
【0030】
【図11】１）空白対照群、２）モデル群、３）ソラフェニブで治療した陽性群、４）Ｂ－０１低用量群、５）Ｂ－０１高用量群、６）Ｂ－０２低用量群、および７）Ｂ－０２高用量群を示す、肝硬変モデルマウスにおける血清中の（Ａ）ＡＬＴ、（Ｂ）ＡＳＴ、（Ｃ）ＴＢＩＬ、（Ｄ）ＭＡＯおよび（Ｅ）ＡＬＢのレベルに対する様々な用量のＢ－０１およびＢ－０２の効果を示す棒グラフである。
【0031】
【図12】１）空白対照群、２）モデル群、３）ソラフェニブで治療した陽性群、４）薬物Ｃ高用量群を示す、肝硬変モデルマウスにおける血清中の（Ａ）ＡＬＴ、（Ｂ）ＡＳＴ、（Ｃ）ＴＢＩＬ、（Ｄ）ＭＡＯおよび（Ｅ）ＡＬＢレベルに対する高用量のＣの効果を示す棒グラフである。
【0032】
【図13】（Ａ）空白対照群；（Ｂ）モデル群；（Ｃ）陽性対照群；（Ｄ）Ａ－０１低用量群；（Ｅ）Ａ－０１高用量群のＨＥ染色画像を示す。
【0033】
【図14】１）空白対照群、２）モデル群、３）Ｄ薬物群、４）Ｅ薬物群、および５）Ｆ薬物群を示す、肝硬変モデルマウスにおける血清中の（Ａ）ＡＬＴ、（Ｂ）ＡＳＴ、（Ｃ）ＴＢＩＬ、（Ｄ）ＭＡＯおよび（Ｅ）ＡＬＢのレベルに対するＤ、ＥおよびＦ薬物の効果を示す棒グラフである。
【発明を実施するための形態】
【0034】
本発明は、以下の本発明の特定の実施形態に対する詳細な説明を参照することによって、より容易に理解することができる。
【0035】
本出願全体において、刊行物が参照される。これらの刊行物の開示は、本発明が属する技術の現状をより十分に説明するために、参照によりその全体が本出願に組み込まれる。
【0036】
金クラスター（ＡｕＣｓ）は、金原子と金ナノ粒子の間にある特殊な形態の金である。ＡｕＣｓは、サイズが３ｎｍ未満であり、数個から数百個の金原子で構成されているため、金ナノ粒子の面心立方積層構造が崩壊する。その結果、ＡｕＣｓは、金ナノ粒子の連続又は準連続エネルギー準位とは異なり、違うＨＯＭＯ－ＬＵＭＯギャップを持つ分子のような離散化した電子構造を示す。これにより、従来の金ナノ粒子が持つ表面プラズモン共鳴効果と、ｕｖ－ｖｉｓスペクトルでの対応するプラズモン共鳴吸収帯（５２０±２０ｎｍ）が消失する。
【0037】
本発明は、リガンド結合ＡｕＣを提供する。
【0038】
特定の実施形態では、前記リガンド結合ＡｕＣは、リガンドと、金コアとを含み、前記リガンドが前記金コアに結合している。前記リガンドと金コアとの結合とは、リガンドが、共有結合、水素結合、静電気力、疎水性力（hydrophobic force）、ファンデルワールス力等を介して金コアと溶液中で安定している複合体を形成することを意味する。特定の実施形態では、前記金コアの直径が、０．５～３ｎｍの範囲にある。特定の実施形態では、前記金コアの直径が０．５～２．６ｎｍの範囲にある。
【0039】
特定の実施形態では、前記リガンド結合ＡｕＣの前記リガンドが、チオール含有化合物またはオリゴペプチドである。特定の実施形態では、前記リガンドが、Ａｕ－Ｓ結合を介して金コアに結合してリガンド結合ＡｕＣを形成する。
【0040】
特定の実施形態では、前記リガンドが、Ｌ－システイン、Ｄ－システイン、またはシステイン誘導体であるが、これらに限定されない。特定の実施形態では、前記システイン誘導体が、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、Ｎ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）、またはＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）である。
【0041】
特定の実施形態では、前記リガンドが、システイン含有オリゴペプチドとその誘導体であるが、これらに限定されない。特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドが、システイン含有ジペプチドである。特定の実施形態では、前記システイン含有ジペプチドが、Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、またはＬ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－ヒスチジンジペプチド（ＣＨ）である。特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドが、システイン含有トリペプチドである。特定の実施形態では、前記システイン含有トリペプチドが、グリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、またはＬ－グルタチオン（ＧＳＨ）である。特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドが、システイン含有テトラペプチドである。特定の実施形態では、前記システイン含有テトラペプチドが、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）またはグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）である。
【0042】
特定の実施形態では、前記リガンドが、チオール含有化合物である。特定の実施形態では、チオール含有化合物が、１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン、またはドデシルメルカプタンである。
【0043】
本発明は、対象における肝硬変の治療のための医薬組成物を提供する。特定の実施形態では、前記対象が、人である。特定の実施形態では、前記対象が、犬のようなペット動物である。
【0044】
特定の実施形態では、前記医薬組成物が、上文で開示されたリガンド結合ＡｕＣと、薬理学的に許容される賦形剤とを含む。特定の実施形態では、前記賦形剤が、リン酸緩衝液、または生理食塩水である。
【0045】
本発明は、対象における肝硬変の治療のための医薬の製造における上文で開示されたリガンド結合ＡｕＣの使用を提供する。
【0046】
本発明は、対象における肝硬変の治療のための上文で開示されたリガンド結合ＡｕＣｓの使用、または上文で開示されたリガンド結合ＡｕＣｓを使用して対象における肝硬変を治療する方法を提供する。特定の実施形態では、前記治療方法は、前記対象に薬学的に有効な量のリガンド結合ＡｕＣｓを投与することを含む。前記薬学的に有効な量は、通常の体内研究によって確認することができる。
【0047】
以下の実施例は、本発明の原理を説明することのみを目的として提供されている。それらは、決して本発明の範囲を制限することを意図するものではない。
【0048】
実施形態
【0049】
実施形態１． リガンド結合ＡｕＣｓの製造
【0050】
１．１ ＨＡｕＣｌ４をメタノール、水、エタノール、ｎ－プロパノール、又は酢酸エチルに溶解して、ＨＡｕＣｌ４濃度０．０１～０．０３Ｍの溶液Ａが得られた。
【0051】
１．２ リガンドを溶媒に溶解して、リガンド濃度０．０１～０．１８Ｍの溶液Ｂが得られた。前記リガンドは、Ｌ－システイン、Ｄ－システイン、及び、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、Ｎ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）、及びＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）等のその他のシステイン誘導体；システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体（Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－ヒスチジン（ＣＨ）、グリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－グルタチオン（ＧＳＨ）、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）及びグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）等の、ジペプチド、トリペプチド、テトラペプチド及びその他のシステイン含有ペプチドを含むが、これらに限定されない）；及び１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ（Ｄ）－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン及びドデシルメルカプタンのうちの一つ又は複数等のその他のチオール含有化合物を含むが、これらに限定されない。前記溶媒は、メタノール、酢酸エチル、水、エタノール、ｎ－プロパノール、ペンタン、ギ酸、酢酸、ジエチルエーテル、アセトン、アニソール、１－プロパノール、２－プロパノール、１－ブタノール、２－ブタノール、ペンタノール、酢酸ブチル、ｔ－ブチルメチルエーテル、酢酸イソプロピル、ジメチルスルホキシド、ギ酸エチル、酢酸イソブチル、酢酸メチル、２－メチル－１－プロパノール及び酢酸プロピルのうちの一つ又は複数であった。
【0052】
１．３ ＨＡｕＣｌ４とリガンドとのモル比が１：（０．０１～１００）となるように、溶液Ａと溶液Ｂを混合して、氷浴において０．１～４８時間撹拌し、０．０２５～０．８Ｍ ＮａＢＨ４の水、エタノール又はメタノール溶液を加えて、氷水浴において引き続き撹拌し、そして０．１～１２時間反応させた。ＮａＢＨ４とリガンドとのモル比は、１：（０．０１～１００）であった。
【0053】
１．４ 反応終了した後、ＭＷＣＯが３Ｋ～３０Ｋの限外ろ過チューブを使用して、８０００～１７５００ｒ／分の勾配で反応溶液を１０～１００分間遠心することにより、異なる平均粒子サイズを有するリガンド結合ＡｕＣ沈殿を得た。異なるＭＷＣＯの限外ろ過チューブのろ過メンブレンの開きは、直接的に、前記メンブレンを通過できるリガンド結合ＡｕＣｓのサイズを決定した。当該ステップは、任意に省略されてもよい。
【0054】
１．５ ステップ（１．４）で得られた異なる平均粒子サイズを有するリガンド結合ＡｕＣｓ沈殿を水に溶解し、透析バッグに投入し、そして水において室温で１～７日間透析した。
【0055】
１．６ 透析後、リガンド結合ＡｕＣｓを１２～２４時間凍結乾燥して、粉末状又は凝集状物質であるリガンド結合ＡｕＣｓを得た。
【0056】
測定からわかるように、前記方法により得られた粉末状又は凝集状物質の粒子サイズは、３ｎｍ未満であった（全体的に、０．５～２．６ｎｍにわたって分布した）。５２０ｎｍで明らかな吸収ピークがなかった。得られた粉末又は凝集体がリガンド結合ＡｕＣｓであったことが特定された。
【0057】
実施形態２． 異なるリガンドが結合されたＡｕＣｓの製造及び同定
【0058】
２．１ Ｌ－ＮＩＢＣ結合ＡｕＣｓ、即ち、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの製造
【0059】
リガンドであるＬ－ＮＩＢＣを例とし、Ｌ－ＮＩＢＣが結合したＡｕＣｓの製造及び確認について以下で詳細に説明する。
【0060】
２．１．１ １．００ｇのＨＡｕＣｌ４を量り、そして１００ｍＬのメタノールに溶解して、０．０３Ｍの溶液Ａを得た。
【0061】
２．１．２ ０．５７ｇのＬ－ＮＩＢＣを量り、そして１００ｍＬの氷酢酸（酢酸）に溶解して、０．０３Ｍの溶液Ｂを得た。
【0062】
２．１．３ １ｍＬの溶液Ａを量り、０．５ｍＬ、１ｍＬ、２ｍＬ、３ｍＬ、４ｍＬ、又は５ｍＬの溶液Ｂとそれぞれ混合し（すなわち、ＨＡｕＣｌ４とＬ－ＮＩＢＣとのモル比が、それぞれ、１：０．５、１：１、１：２、１：３、１：４、１：５であった。）、氷浴において撹拌しながら２時間反応させ、溶液が明るい黄色から無色になると、速やかに１ｍＬの新たに製造された０．０３Ｍ（１１．３ｍｇのＮａＢＨ４を量り、そして１０ｍＬのエタノールに溶解することにより製造された。）のＮａＢＨ４エタノール溶液を加えて、溶液が濃褐色になった後、引き続き３０分間反応し、そして１０ｍＬのアセトンを加えて反応を停止した。
【0063】
２．１．４ 反応後、反応溶液に対して勾配遠心を行い、異なる粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ粉末を得た。具体的な方法は以下のとおりである。即ち、反応完了後、反応溶液を３０ＫのＭＷＣＯ及び５０ｍＬの体積を有する限外ろ過チューブに転移し、１００００ｒ／分で２０分間遠心し、そして内チューブ中の保持液（ｒｅｔｅｎｔａｔｅ）を超純水に溶解して、約２．６ｎｍの粒子サイズを有する粉末を得た。その後、外チューブ中の混合液を５０ｍＬの体積及び１０ＫのＭＷＣＯを有する限外ろ過チューブに転移し、１３,０００ｒ／分で３０分間遠心した。内チューブ中の保持液を超純水に溶解して、約１．８ｎｍの粒子サイズを有する粉末を得た。その後、外チューブ中の混合液を５０ｍＬの体積及び３ＫのＭＷＣＯを有する限外ろ過チューブに転移し、１７,５００ｒ／分で４０分間遠心した。内チューブ中の保持液を超純水に溶解して、約１．１ｎｍの粒子サイズを有する粉末を得た。
【0064】
２．１．５ 勾配遠心により得られた３つの異なる粒子サイズでの粉末を沈殿させ、それぞれ溶媒を除去し、粗生成物をＮ２でブロー乾燥させ、５ｍＬの超純水に溶解し、透析バッグ（ＭＷＣＯが３ＫＤａ）に置き、透析バッグを２Ｌの超純水に置き、一日おきに水を交換し、７日間透析し、凍結乾燥し、そして将来の使用のために保持した。
【0065】
２．２ Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの同定
【0066】
上記で得られた粉末（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）に対して同定実験は行われた。同時に、リガンドであるＬ－ＮＩＢＣにより修飾した金ナノ粒子（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓ）は、対照として使用された。前記リガンドがＬ－ＮＩＢＣである金ナノ粒子の製造方法は、参考文献（Ｗ．Ｙａｎ、Ｌ．Ｘｕ、Ｃ．Ｘｕ、Ｗ．Ｍａ、Ｈ．Ｋｕａｎｇ、Ｌ．Ｗａｎｇ及びＮ．Ａ．Ｋｏｔｏｖ、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ２０１２、１３４、１５１１４；Ｘ．Ｙｕａｎ、Ｂ．Ｚｈａｎｇ、Ｚ．Ｌｕｏ、Ｑ．Ｙａｏ、Ｄ．Ｔ．Ｌｅｏｎｇ、Ｎ．Ｙａｎ及びＪ．Ｘｉｅ、Ａｎｇｅｗａｎｄｔｅ Ｃｈｅｍｉｅ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｅｄｉｔｉｏｎ ２０１４、５３、４６２３）に参照する。
【0067】
２．２．１ 透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）によるモーフォロジーの観察
【0068】
試験粉末（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプル及びＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓサンプル）を超純水に２ｍｇ／Ｌになるまで溶解してサンプルとし、そして懸滴法により試験サンプルを製造した。より具体的に、５μＬのサンプルを超薄型カーボンフィルムに滴下し、水滴がなくなるまで自然蒸発させ、そしてＪＥＭ－２１００Ｆ ＳＴＥＭ／ＥＤＳ電界放出形高分解能ＴＥＭによりサンプルのモーフォロジーを観察した。
【0069】
【0070】
図２中の画像で示されるように、各Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプルは、均一な粒子サイズ及び良好な分散性を有し、かつ、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの平均直径（金コアの直径と指す）がそれぞれ１．１ｎｍ、１．８ｎｍ及び２．６ｎｍであり、図２のパネルＣ、Ｆ及びＩ中の結果とよく一致した。これに対して、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓサンプルは、より大きい粒子サイズを有した。これらの平均直径（金コアの直径と指す）がそれぞれ３．６ｎｍ、６．０ｎｍ、１０．１ｎｍ及び１８．２ｎｍであり、図１のパネルＣ、Ｆ、Ｉ及びＬ中の結果とよく一致した。
【0071】
２．２．２ 紫外線（ＵＶ）－可視光（ｖｉｓ）吸収スペクトル
【0072】
試験粉末（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプル及びＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓサンプル）を超純水に濃度が１０ｍｇ・Ｌ－１になるまで溶解し、室温でＵＶ－ｖｉｓ吸収スペクトルが測定された。走査範囲が１９０～１１００ｎｍであり、サンプルセルが光路長１ｃｍの標準石英キュベットであり、参照セルが超純水により充填された。
【0073】
異なるサイズを有する４つのＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓサンプルのＵＶ－ｖｉｓ吸収スペクトルは、図１のパネルＡ、Ｄ、Ｇ及びＪに示され、粒子サイズの統計学的分布は、図１のパネルＣ、Ｆ、Ｉ及びＬに示され、異なるサイズを有する３つのＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプルのＵＶ－ｖｉｓ吸収スペクトルは、図２のパネルＡ、Ｄ及びＧに示され、粒子サイズの統計学的分布は、図２のパネルＣ、Ｆ及びＩに示される。
【0074】
図１で示されるように、表面プラズモン作用により、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓは、約５２０ｎｍで吸収ピークを有した。吸収ピークの位置は、粒子サイズに関連した。粒子サイズが３．６ｎｍである場合、ＵＶ吸収ピークが５１６ｎｍで現れ、粒子サイズが６．０ｎｍである場合、ＵＶ吸収ピークが５１７ｎｍで現れ、粒子サイズが１０．１ｎｍである場合、ＵＶ吸収ピークが５２０ｎｍで現れ、粒子サイズが１８．２ｎｍである場合、吸収ピークが５２３ｎｍで現れた。４つのサンプルは、いずれも５６０ｎｍ以上で吸収ピークを有しなかった。
【0075】
図２で示されるように、異なる粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプルのＵＶ吸収スペクトルでは、５２０ｎｍでの表面プラズモン作用による吸収ピークがなくなり、５６０ｎｍ以上で２つの明らかな吸収ピークが現れ、吸収ピークの位置がＡｕＣｓの粒子径により僅かな相違があった。これは、ＡｕＣｓが面心立方構造の崩壊により分子のような特性を示し、ＡｕＣｓの状態密度の不連続性、エネルギー準位の分裂、プラズモン共鳴効果の消失、及び長波方向の新しい吸収ピークに繋がったためである。上記で得られた異なる粒子サイズでの３つの粉末サンプルは、いずれもリガンド結合ＡｕＣｓであったと結論付けることができる。
【0076】
２．２．３ フーリエ変換赤外線分光法
【0077】
赤外線スペクトルは、Ｂｒｕｋｅｒ製のＶＥＲＴＥＸ８０Ｖフーリエ変換赤外線分光計を利用して固体粉末高真空全反射モードで測定された。走査範囲は、４０００～４００ ｃｍ－１であり、走査回数が６４であった。Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプルを例とし、試験サンプルは、異なる３つの粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ乾燥粉末であり、対照サンプルは、純粋なＬ－ＮＩＢＣ粉末であった。結果は、図３に示した。
【0078】
図３は、異なる粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの赤外線スペクトルを示す。純粋なＬ－ＮＩＢＣ（下部の曲線）と比較すると、異なる粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓのＳＨ伸縮振動は、全て、２５００～２６００ｃｍ－１で完全に消失したが、Ｌ－ＮＩＢＣの他の特徴的なピークは、依然として残っていて、Ｌ－ＮＩＢＣ分子がＡｕ－Ｓ結合を介してＡｕＣの表面に成功に固定されていたことが証明された。この図は、リガンド結合ＡｕＣｓの赤外スペクトルがそのサイズとは無関係であることも示した。
【0079】
溶液Ｂの溶媒、ＨＡｕＣｌ４とリガンドとの仕込み比、反応時間及び添加されたＮａＢＨ４の量をわずかに調整した以外、上記方法と同様な方法で、その他のリガンドが結合したＡｕＣｓを製造した。例えば、Ｌ－システイン、Ｄ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）又はＮ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）がリガンドとして使用される場合、溶媒として酢酸が選択され、ジペプチドＣＲ、ジペプチドＲＣ又は１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ－プロリンがリガンドとして使用される場合、溶媒として水が選択されることなど、その他のステップについても同じようにするため、更なる詳細はここで省略する。
【0080】
本発明は、前述の方法により、一連のリガンド結合ＡｕＣｓを製造した。リガンドと製造プロセスのパラメーターを表１に示す。
【0081】
【0082】
表１に挙げられたサンプルは、前記方法により確認された。６つの異なるリガンド結合ＡｕＣｓの特性を図４（ＣＲ－ＡｕＣ）、図５（ＲＣ－ＡｕＣ）、図６（Ｃａｐ－ＡｕＣ）（Ｃａｐは１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ－プロリンである）、図７（ＧＳＨ－ＡｕＣｓ）、及び図８（Ｄ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）に示す。図４～図８は、ＵＶスペクトル（パネルＡ）、赤外線スペクトル（パネルＢ）、ＴＥＭ画像（パネルＣ）、及び粒子サイズ分布（パネルＤ）を示す。
【0083】
その結果、表１から得られた異なるリガンドが結合したＡｕＣｓの直径は、いずれも、３ｎｍ未満であることがわかった。紫外線スペクトルは、５２０±２０ｎｍでのピークの消失、及び他の位置での吸収ピークの出現も示した。この吸収ピークの位置は、リガンド、粒子サイズ、及び構造によって異なった。特定の状況で、特殊な吸収ピークが形成されないが、主な原因は、粒子径や構造の異なるＡｕＣｓの混合物が形成されたこと、または、ある特殊なＡｕＣｓにより吸収ピークの位置が紫外線可視スペクトルの範囲外に移動されたことである。一方、フーリエ変換赤外スペクトルでは、リガンドのチオールの赤外吸収ピーク（図４～８のパネルＢの点線の間）が消失したが、他の赤外特性ピークはいずれも保持されていることから、全てのリガンド分子がＡｕＣｓの表面に成功に固定されており、本発明が表１に記載されたリガンドの結合したＡｕＣｓを取得することに成功したことを示した。
【0084】
実施形態３
【0085】
３．１ 材料および動物
【0086】
３．１．１ 試験サンプル
【0087】
Ａ－０１：リガンドＬ－ＮＩＢＣ結合金クラスター（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）、０．９±０．２ｎｍである。
【0088】
Ａ－０２：リガンドＬ－ＮＩＢＣ結合金クラスター（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）、１．９±０．５ｎｍである。
【0089】
Ｂ－０１：リガンドＬ－Ｃｙｓ結合金クラスター（Ｌ－Ｃｙｓ－ＡｕＣｓ）、１．０±０．２ｎｍである。
【0090】
Ｂ－０２：リガンドＬ－Ｃｙｓ結合金クラスター（Ｌ－Ｃｙｓ－ＡｕＣｓ）、１．７±０．３ｎｍである。
【0091】
Ｃ：Ｌ－ＮＩＢＣ修飾ナノ粒子（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓ）、６．３±１．５ｎｍ
【0092】
全ての試験サンプルは、上記の方法に従って調製されたがわずかな変更を加えた。それらの品質は上記の方法を使用して特徴づけられた。
【0093】
３．１．２ 陽性対照サンプル
【0094】
ソラフェニブ（Sorafenib）。
【0095】
３．１．３ 実験用動物および群分け
【0096】
１２０匹の、６～８週齢で、体重１６～２０ｇのＳＰＦ雄Ｃ５７ＢＬ／６Ｎマウスは、Ｂｅｉｊｉｎｇ Ｈｕａｆｕｋａｎｇ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ａｎｉｍａｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社（生産ライセンス番号：ＳＣＸＫ（Ｊｉｎｇ）２０１９～０００８）から購入された。体重によって、それらを１２の群（ｎ＝１０）（空白対照群、モデル群、陽性対照群、Ａ－０１低用量群、Ａ－０１高用量群、Ａ－０２低用量群、Ａ－０２高用量群、Ｂ－０１低用量群、Ｂ－０１高用量群、Ｂ－０２低用量群、Ｂ－０２高用量群、およびＣ高用量群）にランダムに分けた。
【0097】
３．２ モデリング・プロトコル
【0098】
空白対照群を除いて、その他の群におけるマウスの肝硬変モデルは、四塩化炭素（ＣＣｌ４）誘導処理の方法により製造された。モデリング・プロトコルは、以下の通りであった。（１）各マウスは、週２回、合計８週間で、体重１ｇあたり７μＬの１０％ ＣＣｌ４（オリーブ油で希釈したもの）を腹腔内注射し、空白対照群のマウスは、同じ量のオリーブ油溶媒を腹腔内注射した。（２）６週目から、２匹のマウスを選択し、そして毎週の最後の注射４８時間後に処刑した。肝臓の外観を観察した。外観が肝硬変の特性と一致した後（８週目）、肝臓組織をホルマリンで固定した。ＨＥ染色およびマッソン染色（Masson staining）を利用して、肝硬変のモデルを評価した。
【0099】
３．３ 投与
【0100】
モデリングが成功した後、陽性対照群におけるマウスに、胃内で２５ｍｇ／ｋｇソラフェニブを投与した。低用量または高用量の群のＡ－０１、Ａ－０２、Ｂ－０１およびＢ－０２におけるマウスに、腹腔内注射により、それぞれ、２．５または１０ｍｇ／ｋｇの対応する試験材を投与した。Ｃ高用量群におけるマウスに、腹腔内注射により、４０ｍｇ／ｋｇの用量のＣを投与した。そして、空白対照群およびモデル群におけるマウスに、腹腔内注射により、１０ｍＬ／ｋｇで生理食塩水を投与した。前記投与は、１日１回、２０日間連続した。
【0101】
３．４ 生化学的検査
【0102】
投与が完了した後、血液をマウスの眼窩から採取し、そして、Ｚｈｏｎｇｓｈｅｎｇ Ｂｅｉｋｏｎｇキットおよび生化学分析装置（Ｓｉｅｍｅｎｓ）を用いて、アルブミン（ＡＬｂｕｍｉｎ、ＡＬＢ）、全ビリルビン（ＴＢｉｌ）、アラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（ＡＳＴ）およびモノアミンオキシダーゼ（ＭＡＯ）の生化学的検査のために、血清を得た。検出方法は、キットの指示に従って厳密に行った。
【0103】
【0104】
３．５ 病理学的検査
【0105】
３．５．１ ＨＥ染色
【0106】
安楽死後、マウス肝臓組織サンプルを４％パラホルムアルデヒド固定剤で４８時間以上固定した。固定後、肝臓サンプルをアルコール系列で脱水し、キシレンおよびエタノールで処理した。次いで、肝臓組織をワックス中に浸漬し、包埋した。包埋した材料がトリミング、付着、修復された後、パラフィンミクロトームで肝臓組織を４μｍの厚さで薄切した。ＨＥ染色の主な過程は以下の通りであった。オーブン中で６５℃でベーキングした後、切片をキシレンで処理し、アルコール系列で脱水した。切片をヘマトキシリン、青色発色性溶液（blue color-enhancing solution）および０.５％エオシンで順次染色し、次いでアルコール系列およびキシレンで処理し、中性ガムで密封した。顕微鏡で肝臓組織の線維症を観察した。
【0107】
３．５．２ マッソン染色
【0108】
ベーキング後、マウス肝臓組織切片を脱ロウし、脱水した。染色後、核をＲｅｇａｕｄ氏ヘマトキシリン染色溶液で染色した。水で洗浄した後、切片をＭａｓｓｏｎ氏ポンソー赤色酸性フクシン（Masson's Ponceau Red Acidic Fuchsin）で染色し、切片を２％氷酢酸水溶液に浸漬し、１％ホスホモリブデン酸溶液で分化させた。アニリンブルーまたは淡緑色溶液で直接染色した後、切片を０．２％氷酢酸水溶液に少し浸漬し、その後９５％アルコール、無水アルコールおよびキシレンで透明化させ、次いで中性ガムで密封した。顕微鏡で肝臓組織を観察した。
【0109】
３．６ 結果
【0110】
３．６．１ 成功したモデリング
【0111】
モデル群におけるマウスの肝臓は、増殖した繊維性隔壁により、異なるサイズの丸形または楕円形の塊に分割された。血清中のＡＬＴ、ＴＢｉｌ、およびＡＳＴ指数は空白対照群のものと比較して有意に増加し、血清中のＡＬＢは空白対照群と比較して有意に減少し、ＭＡＯ指数は対照群と有意差はなかったが、その値も増加した。上記のすべての結果は、この実験モデルが成功したことを示唆している。
【0112】
３．６．２ アラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）、全ビリルビン（ＴＢｉｌ）、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（ＡＳＴ）、モノアミンオキシダーゼ（ＭＡＯ）およびアルブミン（ＡＬＢ）に対する試験薬物の効果
【0113】
３．６．２．１ 試験薬物 Ａ－０１およびＡ－０２
【0114】
図１０Ａに示すように、モデル群のＡＬＴ活性は、空白対照群よりも極めて有意に高くなり（４３．５±８．１Ｕ／Ｌから１８８．５±４．９Ｕ／Ｌに増加した；Ｐ＜０．０１）、肝硬変モデルマウスの肝臓機能が病理学的変化を有していることを示す。高用量および低用量でＡ－０１およびＡ－０２を投与した後、全ての処理群のＡＬＴ活性は、有意に減少し（最高値はＡ－０２低用量群の４１．５±５．４Ｕ／Ｌ、最低値はＡ－０１高用量群の３０．０±５．９Ｕ／Ｌ、陽性対照群は４２．８±５．４Ｕ／Ｌであった）、空白対照群と同様またはそれ以下のレベルに戻り、モデル群と有意に異なった（Ｐ＜０．０１）。
【0115】
図１０Ｂに示すように、モデル群のＡＳＴ活性は、空白対照群よりも有意に高くなった（１４１．９±１３．５Ｕ／Ｌから１９２．０±１１．３Ｕ／Ｌに増加した；Ｐ＜０．０５）。Ａ－０１およびＡ－０２を投与した後、全ての処理群のＡＳＴ活性は、減少し、そして高用量のＡ－０１およびＡ－０２投与は、ＡＳＴ活性を有意に減少し（Ａ－０１高用量群は１３０±１２．８Ｕ／Ｌ、Ａ－０２高用量群は１３１．３±９．９Ｕ／Ｌであった。いずれもＰ＜０．０１）、陽性対照群（１６５．５±１１．６Ｕ／Ｌ）よりも明らかに優れた。
【0116】
図１０Ｃに示すように、モデル群のＴｂｉｌの濃度は、空白対照群よりも有意に高くなり（１．０２±０．２０μｍｏｌ／Ｌから２．９１±０．３９μｍｏｌ／Ｌに増加した）、そして空白対照群と有意に異なった（Ｐ＜０．０１）。高用量および低用量でＡ－０１およびＡ－０２を投与した後、ＴＢｉｌの濃度は、いずれも有意に減少し（最高値は０．９１±０．１３μｍｏｌ／Ｌ、最低値は０．７８±０．２５μｍｏｌ／Ｌであった）、空白対照群と同様のレベルにあるが、モデル群と極めて有意に異なった（Ｐ＜０．０１）。
【0117】
図１０Ｄに示すように、モデル群のＭＡＯ活性は、空白対照群と比較して増加したが（空白対照群は１８．８±２．９Ｕ／Ｌ、モデル群は２１．５±０．７Ｕ／Ｌであった）、統計学的な差がなく、四塩化炭素により誘導された肝硬変マウスにおけるＭＡＯ活性の変化が有意でなかったと示唆している。Ａ－０１およびＡ－０２の投与は、全ての処理群のＭＡＯ活性に有意な影響を与えていないが、全ての処理群のＭＡＯ活性が減少し（最高値は１９．３±１．５Ｕ／Ｌおよび最低値は１８．５±１．９Ｕ／Ｌであった）、空白対照群と同様のレベルになった。それに対して、陽性対照群のＭＡＯ活性が減少しなかった（２１．３±２．１Ｕ／Ｌ）。この結果は、Ａ－０１およびＡ－０２が、ＭＡＯ活性を空白対照群のレベルに調整することができ、肝硬変マウスにおける肝臓機能の回復に役立つことを示唆している。
【0118】
図１０Ｅに示すように、モデル群のＡＬＢレベルは、空白対照群と比較して有意に減少し（２４．２±０．６ ｇ／Ｌから２２．１±１．３ ｇ／Ｌに減少した）、そして空白対照群と有意に異なり（Ｐ＜０．０５）、四塩化炭素投与が血清中のＡＬＢレベルを有意に減少させることができることを示した。異なる用量のＡ－０１とＡ－０２、および陽性対照群の投与は、血清中のＡＬＢレベルに有意な影響を与えなかった。
【0119】
陽性薬物ソラフェニブは、ＡＬＴ、ＡＳＴ、およびＴＢＩＬのレベルを有意に減少したが、ＭＡＯ指数については肝硬変マウスに寛解効果がなかった。この結果は、Ａ－０１およびＡ－０２が肝硬変マウスにおける肝臓機能に回復効果があり、そして陽性対照薬よりも優れる効果を持つことを示唆している。
【0120】
３．６．２．２ 試験薬物Ｂ－０１およびＢ－０２
【0121】
図１１Ａに示すように、低用量および高用量のＢ－０１およびＢ－０２は、ＡＬＴ活性を有意に減少させることができ（最高値は４６．３±７．４Ｕ／Ｌ、最低値は３３．０±７．１Ｕ／Ｌであった）、空白対照群と同様のレベルにあるが、モデル群と有意に異なった（１８８．５±４．９Ｕ／Ｌ、Ｐ＜０．０１）。
【0122】
図１１Ｂに示すように、モデル群（１９２．０±１１．３Ｕ／Ｌ）と比較して、Ｂ－０１の低用量および高用量投与は、ＡＳＴ活性を正常レベルに有意に減少させることができ（それぞれ、１３２．３±１０．０Ｕ／Ｌおよび１２９．７±２６．６Ｕ／Ｌであった。Ｐ＜０．０１）、そして、Ｂ－０２の低用量投与は、ＡＳＴ活性を有意に減少させることができ（１４９．６±２１．８Ｕ／Ｌ、Ｐ＜０．０５）、空白対照群と同様のレベルにあった。ただし、Ｂ－０２の高用量投与は、ある程度ＡＳＴ活性を減少したが、有意な差がなかった（Ｐ＞０．０５）。それに対して、陽性薬物ソラフェニブも、ＡＳＴ活性を１６５．５±１１．６Ｕ／Ｌに減少することができるが（Ｐ＜０．０５）、その効果は、Ｂ－０１の低用量および高用量やＢ－０２の低用量の投与の場合ほど優れたわけでない。
【0123】
図１１Ｃに示すように、低用量および高用量のＢ－０１およびＢ－０２は、いずれもＴＢｉｌを有意に減少し（最高値は１．２８±０．１２μｍｏｌ／Ｌ、最低値は０．９６±０．１５μｍｏｌ／Ｌであった）、空白対照群と同様のレベルにあったが（１．０２±０．２０μｍｏｌ／Ｌ）、モデル群と有意に異なった（２．９１±０．３９μｍｏｌ／Ｌ、Ｐ＜０．０１）。
【0124】
図１１Ｄに示すように、モデル群（２１．５±０．７Ｕ／Ｌ）と比較して、低用量のＢ－０１（１７．３±１．３Ｕ／Ｌ、Ｐ＜０．０１）および高用量のＢ－０２（１８．３±０．６Ｕ／Ｌ、Ｐ＜０．０５）は、空白対照群（１８．８±２．９Ｕ／Ｌ）よりも血清中のＭＡＯレベルを有意に減少したが、陽性対照薬物は、ＭＡＯの血清中のレベルに効果がなかった（２１．３±２．１Ｕ／Ｌ）。
【0125】
図１１Ｅに示すように、試験薬物および陽性対照薬物の投与は、ＡＬＢレベルに有意な影響がなかった。
【0126】
上記結果は、Ｂ－０１およびＢ－０２が、ＡＬＴ、ＡＳＴ、ＴＢＩＬおよびＭＡＯのレベルを有意に減少し、肝硬変マウスの肝臓機能回復に一定の用量依存性効果があり、そしてそれらの効果が少なくとも一部の指標において陽性対照薬物よりも良いことを示した。
【0127】
３．６．２．３ 試験薬物Ｃ
【0128】
図１２に示すように、モデル群と比較して、高用量の薬物Ｃの投与は、（Ａ）ＡＬＴ、（Ｂ）ＡＳＴ、（Ｃ）ＴＢＩＬ、（Ｄ）ＭＡＯ、および（Ｅ）ＡＬＢのレベルに対して有意な改善がなく、ひいては一定的な劣化の傾向を示し、薬物Ｃが肝硬変マウスの肝臓機能の改善に効果がなく、毒性を持つことを示唆している。
【0129】
３．６．３ 病理学的分析
【0130】
肝硬変は、肝臓組織の線維症および偽小葉の形成を病理学的な特徴とする。ＨＥ染色病理学的分析の結果は、図１３Ａに示すように、空白対照群のマウスからの正常な肝臓組織が、明瞭な構造を有し、肝小葉が完全で、肝細胞がきれいに配列され、中心静脈を中心として放射状に配列され、肝細胞の核が正常で、門脈域（catchment area）中の少量の繊維状組織のみを有していたことを示した。図１３Ｂに示すように、モデル群の肝臓組織では、肝細胞が乱れ、バルーン状の構造が現れ、肝小葉がほとんど消失し、偽小葉（図１３Ｂには右向きの矢印で示す）が多く生成され、肝組織に多くの増殖した原線維が存在し、丸型または楕円形の繊維性隔壁（図１３Ｂには左向きの矢印で示す）が形成された。図１３Ｃに示すように、モデル対照群と比較して、陽性対照群は肝臓損傷の有意な減少を示し、肝細胞は明らかに整然な配列を有し、線維過形成は明らかに減少し、繊維性隔壁を形成することなく、偽小葉が消失したが、正常な肝臓組織と比較して、陽性対照群の肝臓組織は細胞間ギャップの明らかな増加を示した（下向きの矢印によって示されている）。モデル対照群と比較して、金クラスター薬物（Ａ－０１、Ａ－０２、Ｂ－０１およびＢ－０２）を投与した４つの群は、線維過形成および偽小葉の明らかな減少により証明されているように、肝細胞が肝臓損傷から有意に回復したこと、および回復がある程度の用量依存性を示すことを示した。
【0131】
図１３Ｄおよび図１３Ｅは、肝臓損傷の回復について、例示的なＡ－０１の低用量および高用量薬物投与の効果をそれぞれ示したＨＥ画像を示す。図１３Ｄに示すように、Ａ－０１低用量薬物投与群では、肝細胞が比較的に整然に配列され、偽小葉がほとんど消失し、線維過形成が明らかに減少したが、正常な肝臓組織と比較して、ある程度の肝細胞間ギャップの増加を示した（図１３Ｄの下向きの矢印で示す）。図１３Ｅに示されるように、Ａ－０１の低用量薬物投与群と比較して、Ａ－０１の高用量薬物投与群では、肝臓損傷が減少し、偽小葉が完全に消失し、線維過形成が確認されることなく、肝細胞間ギャップの識別可能な増加がなく、正常な肝臓組織と明らかな差異がないという点においてより良い効果を示した。結論として、Ａ－０１薬物は、陽性対照薬物よりも肝臓損傷の回復に優れた効果を示した。
【0132】
マッソン染色の結果は、ＨＥ染色の結果と同じ結論を提供した。
【0133】
その他の３種の薬物もＡ－０１薬物と同様の効果を示し、詳細な説明は必要ではない。
【0134】
以上をまとめると、４つの試験薬物Ａ－０１、Ａ－０２、Ｂ－０１およびＢ－０２は、肝臓の繊維過形成および肝臓の偽小葉を有意に減少させた。肝臓機能指標の試験結果はまた、肝臓機能の回復を示した。アラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）および全ビリルビン（ＴＢｉｌ）の変化は最も明らかであった。アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（ＡＳＴ）およびモノアミノオキシダーゼ（ＭＡＯ）も有意に回復され、一方、アルブミン（ＡＬＢ）は有意に変化しなかった。４つの金クラスター薬物は、肝硬変マウスにおいて肝臓機能および肝臓の病理学的構造の一部を有意に改善することができ、そして全体的な効果は、陽性対照薬物ソラフェニブよりも優れて、将来のさらなる適用のための実験的根拠を提供する。しかし、薬物Ｃは明らかな治療効果を有しておらず、肝硬変の治療には使用できない。
【0135】
実施形態 ４
【0136】
４．１ 材料および動物
【0137】
４．１．１ 試験サンプル
【0138】
Ｄ：リガンドＬ－ＮＡＣ結合金クラスター（Ｌ－ＮＡＣ－ＡｕＣｓ）、０．５～３ｎｍである。
【0139】
Ｅ：リガンドＣＲ結合金クラスター（ＣＲ－ＡｕＣｓ）、０．５～３ｎｍである。
【0140】
Ｆ：リガンドＲＣ結合金クラスター（ＲＣ－ＡｕＣｓ）、０．～３ｎｍである。
【0141】
全ての試験サンプルは、上記の方法に従って調製されたがわずかな変更を加えた。それらの品質は上記の方法を使用して特徴づけられた。
【0142】
４．１．２ 実験用動物および群分け
【0143】
５０匹の、６～８週齢で、体重１６～２０ｇのＳＰＦ雄Ｃ５７ＢＬ／６Ｎマウスは、Ｂｅｉｊｉｎｇ Ｈｕａｆｕｋａｎｇ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ａｎｉｍａｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社（生産ライセンス番号：ＳＣＸＫ（Ｊｉｎｇ）２０１９～０００８）から購入された。体重によって、それらを５の群（ｎ＝１０）（空白対照群、モデル群、Ｄ薬物投与群、Ｅ薬物投与群、およびＦ薬物投与群）にランダムに分けた。
【0144】
４．２ モデリング・プロトコル
【0145】
空白対照群を除いて、その他の群におけるマウスの肝硬変モデルは、四塩化炭素（ＣＣｌ４）誘導処理の方法により製造された。モデリング・プロトコルは、以下の通りであった。（１）それぞれのマウスは、体重１ｇあたり７μＬで、週２回、合計８週間で１０％ ＣＣｌ４（オリーブ油で希釈したもの）を腹腔内注射し、空白対照群のマウスは、同じ量のオリーブ油溶媒を腹腔内注射した。（２）６週目から、２匹のマウスを選択し、そして毎週の最後の注射４８時間後に処刑した。肝臓の外観を観察した。外観が肝硬変の特性と一致した後（８週目）、肝臓組織をホルマリンで固定した。ＨＥ染色およびマッソン染色を使用して、肝硬変のモデルを評価した。
【0146】
４．３ 投与
【0147】
モデリングが成功した後、３つの薬物投与群におけるマウスに、腹腔内注射により、それぞれ、４０ｍｇ／ｋｇの対応の金クラスター薬物を投与し、そして、空白対照群およびモデル群におけるマウスに、腹腔内注射により、１０ｍＬ／ｋｇで生理食塩水を投与した。前記投与は、１日１回、２０日間連続した。
【0148】
４．４ 生化学的検査
【0149】
試薬およびプロトコルは、３．４部分の記載と同じであった。
【0150】
４．５ 結果
【0151】
４．５．１ 成功したモデリング
【0152】
モデル群におけるマウスの肝臓は、増殖した繊維性隔壁により、異なるサイズの丸形または楕円形の塊に分割された。血清中のＡＬＴ、ＴＢｉｌ、およびＡＳＴ指数は空白対照群のものと比較して有意に増加し、血清中のＡＬＢは空白対照群と比較して有意に減少し、ＭＡＯ指数は対照群と有意差はなかったが、その値も増加した。上記すべての結果は、この実験モデルが成功したことを示唆している。
【0153】
４．５．２ アラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）、全ビリルビン（ＴＢｉｌ）、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（ＡＳＴ）、モノアミンオキシダーゼ（ＭＡＯ）およびアルブミン（ＡＬＢ）に対する試験薬物の効果
【0154】
図１４Ａに示すように、モデル群のＡＬＴ活性は、空白対照群よりも極めて有意に高くなり（Ｐ＜０．０１、**）、肝硬変モデルマウスの肝臓機能が病理学的変化を有していることを示した。Ｄ、ＥまたはＦ薬物を投与した後、全ての処理群のＡＬＴ活性は、有意に減少し、空白対照群と同様のレベルに戻り、モデル群と有意に異なった（Ｐ＜０．０１）。
【0155】
図１４Ｂに示すように、モデル群のＡＳＴ活性は、空白対照群よりも有意に高かった（Ｐ＜０．０５、*）。Ｄ、ＥまたはＦ薬物を投与した後、全ての処理群のＡＳＴ活性は、有意に減少した（Ｐ＜０．０５、*）。
【0156】
図１４Ｃに示すように、モデル群のＴＢｉｌ濃度は、空白対照群よりも有意に高かった（Ｐ＜０．０１、**）。Ｄ、ＥまたはＦ薬物を投与した後、全ての処理群のＴＢｉｌ濃度は、空白対照群のレベルに有意に減少したが、モデル群と有意に異なった（Ｐ＜０．０１、**）。
【0157】
図１４Ｄに示すように、モデル群のＭＡＯ活性は、空白対照群と比較して増加したが、統計学的な差がなく（Ｐ＞０．５）、四塩化炭素により誘導された肝硬変マウスにおけるＭＡＯ活性の変化が有意でなかったと示唆している。Ｄ、ＥまたはＦ薬物の投与は、ＭＡＯ活性に有意な影響を与えることなく、全ての薬物投与群のＭＡＯ活性は、空白対照群のレベルに減少した。
【0158】
図１４Ｅに示すように、モデル群のＡＬＢ濃度は、空白対照群と比較して減少したが、有意な差がなかった（Ｐ＞０．０５）。一方、Ｄ、ＥまたはＦ薬物の投与は、血清中のＡＬＢ濃度を増加したが、有意な差がなかった（Ｐ＞０．０５）。
【0159】
以上をまとめると、３つの金クラスター薬物Ｄ、ＥおよびＦは、肝臓機能を有意に改善した。アラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）および全ビリルビン（ＴＢｉｌ）は、最も有意な変化を示し、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（ＡＳＴ）およびモノアミノオキシダーゼ（ＭＡＯ）は明らかな回復を示し、そしてアルブミン（ＡＬＢ）もまた改善されたが、有意な改善ではなかった。これらの結果は、将来の更なる適用のための実験的根拠を提供する。
【0160】
その他のサイズのＬ－Ｃｙｓ－ＡｕＣｓ、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ、Ｌ－ＮＡＣ－ＡｕＣｓ、ＣＲ－ＡｕＣｓ、ＲＣ－ＡｕＣｓ、および異なるサイズのその他のリガンド結合ＡｕＣｓも同様の効果を有し、一方、それらの効果はある程度異なる。ここでは詳細に説明しない。
【0161】
本発明を特定の実施形態を参照して説明したが、実施形態は例示であり、本発明の範囲はそのように限定されないことが理解されるであろう。本発明の別の実施形態は、本発明が関係する当業者には明らかになるであろう。このような代替実施形態は、本発明の範囲内に包含されると考えられる。従って、本発明の範囲は、添付の特許請求の範囲によって規定され、前述の説明によって支持される。
【国際調査報告】