特表 2023-546530 線維症の処置および創傷治癒の方法

(19)【発行国】日本国特許庁(JP)

(12)【公報種別】公表特許公報(A)

(11)【公表番号】

(43)【公表日】2023-11-02

(54)【発明の名称】線維症の処置および創傷治癒の方法

(51)【国際特許分類】

   A61K 38/16 20060101AFI20231026BHJP

   A61P 11/00 20060101ALI20231026BHJP

   A61K 47/68 20170101ALI20231026BHJP

   A61K 39/395 20060101ALI20231026BHJP

   A61P 1/16 20060101ALI20231026BHJP

   A61P 17/00 20060101ALI20231026BHJP

   A61P 17/02 20060101ALI20231026BHJP

   A61Q 19/08 20060101ALI20231026BHJP

   A61K 8/64 20060101ALI20231026BHJP

   A61P 3/06 20060101ALI20231026BHJP

   C07K 19/00 20060101ALI20231026BHJP

   C12N 15/62 20060101ALI20231026BHJP

   C07K 14/715 20060101ALN20231026BHJP

   C07K 16/00 20060101ALN20231026BHJP

   C12N 15/13 20060101ALN20231026BHJP

   C12N 15/12 20060101ALN20231026BHJP

【ＦＩ】

A61K38/16

A61P11/00

A61K47/68

A61K39/395 Y

A61P1/16

A61P17/00

A61P17/02

A61Q19/08

A61K8/64

A61P3/06

C07K19/00

C12N15/62 Z

C07K14/715 ZNA

C07K16/00

C12N15/13

C12N15/12

【審査請求】未請求

【予備審査請求】未請求

(21)【出願番号】P 2023545891

(86)(22)【出願日】2021-10-04

(85)【翻訳文提出日】2023-06-02

(86)【国際出願番号】 US2021053297

(87)【国際公開番号】W WO2022076272

(87)【国際公開日】2022-04-14

(31)【優先権主張番号】63/087,375

(32)【優先日】2020-10-05

(33)【優先権主張国・地域又は機関】US

(81)【指定国・地域】

(71)【出願人】

【識別番号】519456538

【氏名又は名称】コンセホ、ナシオナル、デ、インベスティガシオネス、シエンティフィカス、イェ、テクニカス

【氏名又は名称原語表記】ＣＯＮＳＥＪＯ ＮＡＣＩＯＮＡＬ ＤＥ ＩＮＶＥＳＴＩＧＡＣＩＯＮＥＳ ＣＩＥＮＴＩＦＩＣＡＳ Ｙ ＴＥＣＮＩＣＡＳ

(71)【出願人】

【識別番号】523123499

【氏名又は名称】ラドバイオ ユーエスエー，インコーポレーテッド

(74)【代理人】

【識別番号】100092783

【弁理士】

【氏名又は名称】小林 浩

(74)【代理人】

【識別番号】100120134

【弁理士】

【氏名又は名称】大森 規雄

(74)【代理人】

【識別番号】100135943

【弁理士】

【氏名又は名称】三橋 規樹

(74)【代理人】

【識別番号】100186897

【弁理士】

【氏名又は名称】平川 さやか

(72)【発明者】

【氏名】ロモ，アナ

(72)【発明者】

【氏名】デュウェイ，リカルド，アルフレド

【テーマコード（参考）】

4C076

4C083

4C084

4C085

4H045

【Ｆターム（参考）】

4C076CC15

4C076CC16

4C076CC18

4C076CC41

4C076EE41

4C076EE59

4C076FF65

4C083AD411

4C083CC03

4C083EE12

4C083EE13

4C084AA02

4C084BA01

4C084BA20

4C084BA41

4C084DA39

4C084MA63

4C084NA03

4C084NA14

4C084ZA59

4C084ZA75

4C084ZA89

4C084ZC33

4C085AA25

4C085BB11

4C085BB42

4C085EE01

4H045AA10

4H045AA11

4H045AA20

4H045AA30

4H045BA10

4H045BA41

4H045CA40

4H045DA51

4H045DA76

4H045EA20

4H045FA74

(57)【要約】

安定剤に結合された可溶性ＩＩ型ＴＧＦ受容体を含む融合タンパク質を投与することによって、肝臓線維症、肺線維症または皮膚線維症などの異なる線維症、創傷治癒および皮膚の若返りを処置する方法が、開示される。

【特許請求の範囲】

【請求項1】

必要とする哺乳動物において線維症を処置する方法であって、安定剤に結合された可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型受容体を含む融合タンパク質の治療有効量を前記哺乳動物に投与する工程を含む、方法。

【請求項2】

前記可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型受容体が、配列番号１に示される前記アミノ酸配列と少なくとも８５％の配列同一性を有する、請求項１に記載の方法。

【請求項3】

前記安定剤が、ヒト免疫グロブリンのＦｃドメインを含む、請求項１に記載の方法。

【請求項4】

前記線維症が、肝臓線維症、肺線維症および皮膚線維症からなる群から選択される、請求項１に記載の方法。

【請求項5】

前記哺乳動物がヒトである、請求項１に記載の方法。

【請求項6】

前記ヒトが、非アルコール性脂肪性肝炎（ＮＡＳＨ）、強皮症／全身性硬化症（ＳＳｃ）、特発性肺性線維症、および原発性胆汁胆管炎（ＰＢＣ）の選択された障害または疾患を有する、請求項５に記載の方法。

【請求項7】

前記融合タンパク質の前記アミノ酸配列が、配列番号２に示される配列と少なくとも８５％の同一性を有する、請求項１に記載の方法。

【請求項8】

線維症を処置するための組成物であって、前記組成物が、安定剤に連結された可溶性ＩＩ型ＴＧＦ－β受容体および薬学的に許容可能な賦形剤を含み、線維症が、肝臓線維症、肺線維症および皮膚線維症からなる群から選択される、組成物。

【請求項9】

必要とする哺乳動物において創傷を治癒する方法であって、安定剤に結合された可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型受容体を含む融合タンパク質の治療有効量を前記哺乳動物に投与する工程を含む、方法。

【請求項10】

前記可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型受容体が、配列番号１に示される前記アミノ酸配列と少なくとも８５％の配列同一性を有する、請求項９に記載の方法。

【請求項11】

前記安定剤が、ヒト免疫グロブリンのＦｃドメインを含む、請求項９に記載の方法。

【請求項12】

前記融合タンパク質の前記アミノ酸配列が、配列番号２に示される配列と少なくとも８５％の同一性を有する、請求項９に記載の方法。

【請求項13】

前記哺乳動物が、ヒトである、請求項９に記載の方法。

【請求項14】

創傷治癒のための組成物であって、安定剤に結合された可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型受容体；および薬学的に許容可能な賦形剤を含む、組成物。

【請求項15】

ヒトの皮膚の老化を減速させる方法であって、安定剤に結合された可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型受容体を含む融合タンパク質の有効量を前記ヒトに投与する工程を含む、方法。

【請求項16】

前記可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型受容体アミノ酸配列が、配列番号１に示されるアミノ酸配列と少なくとも８５％の配列同一性を有する、請求項１５に記載の方法。

【請求項17】

前記安定剤が、免疫グロブリンのＦｃドメインを含む、請求項１５に記載の方法。

【請求項18】

前記融合タンパク質のアミノ酸配列が、配列番号２に示される配列と少なくとも８５％の同一性を有する、請求項１５に記載の方法。

【請求項19】

ヒトの皮膚の老化を低下させるための化粧用組成物であって、安定剤に連結された可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型受容体；および許容可能な賦形剤を含む、化粧用組成物。

【請求項20】

安定剤に連結された可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型受容体を含む融合タンパク質の、線維症を処置する医薬を調製するための使用。

【請求項21】

安定剤に連結された可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型受容体を含む融合タンパク質の、創傷を治癒する医薬を調製するための使用。

【請求項22】

安定剤に連結された可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型受容体を含む融合タンパク質の、ヒト皮膚の老化を低下させる化粧用組成物を調製するための使用。

【発明の詳細な説明】

【背景技術】

【0001】

線維症とは、組織構造のひずみおよび器官機能の喪失を引き起こす可能性がある細胞外基質（ＥＣＭ）の過度の蓄積である。この病変は、根底にある病因に関係なく、慢性もしくは反復的な組織損傷または傷害によって生じる創傷治癒応答に一般に起因し、あらゆる器官または固形組織において実質的に起こりうる。糖尿病、高血圧、ウイルス性および非ウイルス性肝炎、心不全および心筋症、特発性肺疾患、強皮症、ならびにがんを含む多様で一般的な慢性疾患が、線維症を招く場合がある。過度のＥＣＭは、実質組織を置きかえ、破壊するので、これらおよび他の疾患に起因する線維症は、肝臓、肺、腎臓、心臓または他の重要器官の不全を招く場合がある。結果的に、重度の線維症は、先進国世界における全ての死の最大４５％を占めると推定されている。線維症に対する療法は現在ほとんどなく、有効性が限られたものである。したがって、線維症がどのように退縮しうるか理解し、潜在的な新たな治療的手法を特定することが急務である（Jun JI, Lau LF. J Clin Invest. 2018; 128 (1): 97-107）。

【0002】

皮膚は、身体で最大の器官系である。したがって、皮膚は、機械的力および感染、体液不均衡、ならびに熱の異常調節に対する保護に重要な役割を果たしている。同時に、皮膚は、身体の一部領域における関節機能を可能にする柔軟性および掌または足の裏の位置をずれにくくするより柔軟性のない固定を可能にする。多くの症例では、医学的介入を必要とする不十分な創傷治癒を起こす。真性糖尿病または末梢血管疾患などの慢性状態は、創傷治癒不良にする場合がある。皮膚裂傷または大規模熱傷などの急性外傷は、皮膚器官の機能の喪失を伴い、身体を感染症、熱の異常調節および体液喪失に対して脆弱にする（Sorg H, et al. Eur Surg Res. 2017;58(1-2):81-94）。

【0003】

創傷治癒療法は、伝統的療法と近代的療法に大きく分類できるが、有効性のレベル、臨床的容認および副作用は様々である。伝統的療法は、発展途上国の農村住民によって数世紀にわたり主に使用されてきた。これら療法は、薬草および動物に由来する化合物、生物体、銀ならびに伝統的ドレッシング材の使用を一般に含む。他方、近代的療法は、移植片、近代的ドレッシング材、生物工学的代替皮膚、および細胞ドレッシング材／成長因子療法の使用を含む。しかしながら、健康で機能的な皮膚の再生は、その多層構造と、細胞外基質内に異なる細胞型の組織的様式での存在のために、依然として大きな課題である（Pereira RF, Bartolo PJ. Adv Wound Care (New Rochelle). 2016;5(5):208-229）。

【0004】

皮膚老化には、２つの主要な過程：内因性および外因性が存在する。個々の遺伝的背景の変動は、老化を内因性に支配し、時間経過につれて起こる。定義によると、この形態の老化は不回避であり、したがって、明らかに、ヒトの行動の変化による操作の対象ではない。これに反して、外因性老化は、喫煙、過度のアルコール消費、栄養不足および日光への慢性曝露など、人体に導入される外部起源の因子によって生成される。これら外部因子の中でも、日光曝露は、皮膚に最も著しい損傷を与えると思われている。実際に、顔の老化の８０％は、日光への慢性曝露によると考えられている。内因性と外因性両方の老化過程は、活性酸素種としても公知のフリーラジカルの形成に影響されるとも考えられている。コラーゲンの喪失は、老化皮膚の特徴的な組織学的所見と考えられている。しわおよび色素変化は、光線老化と直接関連しており、最も顕著な皮膚症状と考えられる。そのような光線損傷は、早期老化の皮膚徴候を表す。さらに、慢性日光曝露の有害な帰結、特に様々な形態の光誘導性皮膚がんは、急性および慢性日光曝露とも関連がある。光線老化を防止することを意図する唯一の公知の戦略は、日光を回避すること、日焼け止めを使用して紫外線照射への皮膚曝露を遮断または減少させること、レチノイドを使用してコラゲナーゼ合成を阻害し、コラーゲン産生を促進すること、ならびに酸化防止剤を、特に組み合わせて使用してフリーラジカルを減少させ、中和することを含む（Bauman L. J Pathol 2007; 211: 241-251）。

【0005】

線維症を防止または処置するための異なる試みが存在し、例えば：欧州特許第２５６６９６７号明細書は、カドヘリン１１活性を呈する線維症を処置するためのカドヘリン１１アンタゴニストを開示している。欧州特許第２０１０５５１号明細書には、ＧＢＡ２阻害剤の使用が開示され、阻害剤は、Ｎ－［５’－（アダマンタン－１’－イル－メトキシ）－ペンタン］－１－デオキシノジリマイシン、Ｎ－［５’－（アダマンタン－１’－イル－メトキシ）－ペンタン］－Ｌ－イド－１－デオキシノジリマイシン、Ｎ－［５’－ネオペンチルオキシ－ペンタン］－１－デオキシノジリマイシンおよびＮ－［５’－ネオペンチルオキシ－ペンタン］－Ｌ－イド－１－デオキシノジリマイシンでありえ、前記阻害剤を使用して、嚢胞性線維症の処置のための薬物が調製される。特許文献の欧州特許出願公開第１９９７５０７号明細書において、血管新生因子およびトランスポーターを含む、線維輪欠損を処置するための組成物が、開示される。組成物は、血管新生および血管再生を刺激する。米国特許第９，９３７，１３３（Ｂ２）号明細書は、線維症の処置のためのアルデヒドデヒドロゲナーゼ阻害剤を開示する。米国特許第１０，１０６，６０３（Ｂ２）号明細書は、インターロイキン１１の作用を阻害する薬剤の使用を開示している。

【発明の概要】

【0006】

必要とする哺乳動物において線維症を処置する方法が提供され、方法は、安定剤に結合された可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型受容体（ＴＢＲＩＩ－ＳＥ）を含む融合タンパク質の治療有効量を前記哺乳動物に投与する工程を含む。可溶性受容体は、配列番号１の可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型または配列番号１と８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、もしくは９９％の配列同一性を有するペプチドでもよい。安定剤は、融合タンパク質を安定化する任意のペプチドでもよい。好ましい実施形態において、安定剤は、免疫グロブリン（Ｉｇ）のＦｃドメインである。別のより好ましい実施形態において、安定剤は、ヒト免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）のＦｃドメインである。線維症は、いずれの起源のいずれの線維症でもよく、好ましい実施形態において、線維症は、肝臓線維症、肺線維症または皮膚線維症である。哺乳動物がヒトである場合、線維症は、それだけには限らないが、以下の障害および／または疾患、非アルコール性脂肪性肝炎（ＮＡＳＨ）、強皮症／全身性硬化症（ＳＳｃ）、特発性肺性線維症、ならびに原発性胆汁胆管炎（ＰＢＣ）による場合がある。

【0007】

安定剤に連結された可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型受容体融合タンパク質（配列番号１）；および薬学的に許容可能な賦形剤を含む線維症を処置するための組成物も提供される。好ましい実施形態において、安定剤は、免疫グロブリンＦｃドメイン、例えばヒトＩｇＧのＦｃドメインである。好ましい実施形態において、融合タンパク質は、配列番号２に示される配列と８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、または９９％の同一性があるアミノ酸配列を含む。

【0008】

必要とする哺乳動物において創傷を治癒する方法が提供され、方法は、安定剤に結合された可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型受容体を含む融合タンパク質の治療有効量を前記哺乳動物に投与する工程を含む。可溶性受容体は、配列番号１の可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型または配列番号１と８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、もしくは９９％の配列同一性を有するペプチドでもよい。安定剤は、融合タンパク質を安定化する任意のペプチドでもよい。好ましい実施形態において、安定剤は、免疫グロブリン（Ｉｇ）のＦｃドメインであり、例えば、限定するものではないが、安定剤は、ヒトＩｇＧのＦｃドメインである。

【0009】

安定剤に結合された内因性可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型受容体（ＴβＲＩＩ－ＳＥ）を有する融合タンパク質；および薬学的に許容可能な賦形剤を含む創傷治癒用組成物が、提供される。

【0010】

ヒトの皮膚の老化を低下させる方法が提供され、方法は、安定剤に結合された可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型受容体を含む融合タンパク質の有効量を前記ヒトに投与する工程を含む。好ましい実施形態において、安定剤は、免疫グロブリンのＦｃドメイン、例えばヒトＩｇＧのＦｃドメインである。好ましい実施形態において、融合タンパク質は、配列番号２に示される配列と８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、または９９％の同一性があるアミノ酸配列を含む。

【0011】

安定剤に連結された可溶性ＴＧＦ－βＩＩ型受容体を含む融合タンパク質；および許容可能な賦形剤を含む、ヒト皮膚の老化を低下させる化粧用組成物が提供される。

【0012】

本発明の組成物は、公知の経路のいずれか、例えば真皮内、皮下、静脈内、筋肉内、ｉｎ ｓｉｔｕ、真皮、表面、例えば皮膚に沈着させることによって適用されうる。本発明の組成物は、クリーム剤、ゲル剤、液剤、丸剤、カプセル剤、注射剤、ローション剤、制御放出組成物、パッチ剤または他の公知の形態として処方されうる。

【図面の簡単な説明】

【0013】

【図1】ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質、ニンテダニブおよび媒体（対照）で処置したマウスの毎日の体重決定を示す図である。ニンテダニブ対媒体＊Ｐ＜０．０５；＊＊Ｐ＜０．０１；＊＊＊Ｐ＜０．００１。

【図2】ブレオマイシン誘導された皮膚線維症マウスにおける真皮厚（白矢印）および真皮白色脂肪組織（ｄＷＡＴ）（黒矢印）に対する融合タンパク質ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃおよびニンテダニブによる処置の効果を示す、Ｈ＆Ｅで染色した皮膚組織の代表的な顕微鏡写真である（Ａ）。真皮厚（Ｂ）およびｄＷＡＴ厚（Ｃ）の定量化を示す図である。＃Ｐ＜０．１；＊＊Ｐ＜０．０１。

【図3】ブレオマイシン誘導された皮膚線維症マウスにおけるＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質およびニンテダニブによる処置の抗線維化効果を示す、マッソントリクローム染色した皮膚組織の代表的な顕微鏡写真である（Ａ）。線維性領域の定量化を示す図である（Ｂ）。＃Ｐ＜０．１；ｎ．ｓ．：有意でない。

【図4】媒体、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質、およびニンテダニブで処置した動物におけるブレオマイシン誘導された肺線維症を示す、マッソントリクローム染色した肺組織の代表的な顕微鏡写真である（Ａ）。ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質およびニンテダニブによる処置が、媒体群（対照）と比較して線維症を減少させる傾向があることを示す、Ａｓｈｃｒｏｆｔ指数として評価した肺性線維症の定量化を示す図である（Ｂ）。＃Ｐ＜０．１。

【図5】ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質による処置２週間後の、ＣＣｌ４誘導された肝臓線維症ラットにおけるトランスアミナーゼレベルを示す図である；ＡＬＴ（Ａ）およびＡＳＴ（Ｂ）。＊Ｐ＜０．０５；＊＊Ｐ＜０．０１。

【図6-1】ラットにおいてＣＣｌ４誘導された肝臓線維症モデルにおけるＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質による４週間の処置の組織学的効果を示す図である。ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃによる処置は、線維症指数（Ａ）および非アルコール性脂肪肝疾患の活性指数（ＮＡＦＬＤ）（Ｂ）を減少させ、肝臓炎症（Ｃ）および卵形細胞数（Ｄ）を低下させ、肝臓構造の改善に対して正の効果を示した。＃Ｐ＜０．１；＊Ｐ＜０．０５；＊＊Ｐ＜０．０１。

【図6-2】図６－１と同じである。

【図7-1】ヒト皮膚外植片における創傷修復に対するＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質の効果を示す図である。処置４日後にマッソントリクローム溶液で染色した代表的な切片である。矢印は、新しい表皮の長さを示す（Ａ）。新しい表皮の成長に対する処置４日後のＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃの効果を示す図である（Ｂ）。処置８日目に創傷の完全な閉鎖を示した外植片の定量化を示す図である（Ｃ）。傷害のある皮膚外植片における新しい表皮の分化に対するＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質の効果を示す図である（Ｄ）。＊Ｐ＜０．０５。

【図7-2】図７－１と同じである。

【図7-3】図７－１と同じである。

【図8-1】ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質の抗老化効果が、ヒト皮膚外植片におけるＩ型コラーゲン産生の増大によって示される。ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質による処置４日後の免疫蛍光によって証明されるＩ型コラーゲン発現の増大の代表的な顕微鏡写真を示す図である（Ａ）。媒体（対照）またはＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃにより４および８日間処置した外植片におけるコラーゲンの存在による蛍光の定量化を示す図である（Ｂ）。＊＊＊Ｐ＜０．００１。

【図8-2】図８－１と同じである。

【図9】肺性線維症モデルにおける肺のサンプリングの代表的な線図である。

【図10】直径３．５ｍｍの生検パンチを使用した矩形ヒト皮膚外植片に対する機械的病変の具現化の代表的な線図である。

【発明を実施するための形態】

【0014】

用語「ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ」および「ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質」は、同じ意味を有し、交換可能である。好ましいが、限定された実施形態において、融合タンパク質は、配列番号１に示される配列と８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、または９９％の同一性があるアミノ酸配列を有する。

【0015】

一実施形態において、ヒト免疫グロブリンのＦｃドメインは、ヒトＩｇＧのＦｃドメインである。別の好ましい実施形態において、ヒトＩｇＧのＦｃドメインは、Ｎ－グリコシル化部位を除去するための点突然変異、例えばＩｇＧ１重鎖におけるＡｓｎ２９７Ｇｌｙ変化を有してもよく、それによって脱グリコシル化されたＦｃドメインを得ることができる。

【0016】

創傷は、限定することなしに、出血する場合もしない場合もある傷害と理解され、切傷、注射、圧力、摩擦、手術、糖尿病等の結果として身体の外側組織に生じる。

【0017】

治癒は、組織修復の生物学的過程と理解される。

【0018】

皮膚の老化には、２つの過程：時間経過とともにその中で起こる内因性過程、または喫煙、過度のアルコール消費、質の悪い食生活および日光への慢性曝露など、人体に導入される外部起源の因子によってもたらされる外因性過程、があると理解されている。内因性と外因性両方の老化過程は、活性酸素種としても公知のフリーラジカルの形成に影響される。コラーゲンの喪失は、老化皮膚の特徴的な組織学的所見と考えられていられる。しわおよび色素変化は、光線老化と直接関連し、その最も顕著な皮膚症状と考えられる。そのような光線損傷は、早期老化の皮膚徴候を表す。加えて、慢性日光曝露の有害な帰結、特に様々な形態の光誘導性皮膚がんは、急性および慢性日光曝露とも関連がある。それは、皮膚の老化を減速することによってこれらの皮膚症状を後退させると理解されている。

【0019】

安定剤は、融合タンパク質の受容体媒介リサイクルを増大させ、腎クリアランスを防止し、酵素的分解を低下させることによってｉｎ ｖｉｖｏでの融合タンパク質の半減期を増大させる任意の安定剤でもよい。

【0020】

融合タンパク質は、両方の部分のリガンドを含むことができる。

【0021】

皮膚線維症の場合、ニンテダニブ群の平均体重は、１８～２２日目ならびに２６日目および２８日目において媒体群（対照）の体重より有意に低かった（図１）。研究期間中のどの日においても、媒体群とＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質で処置した群との間で平均体重に有意な差異は存在しなかった。全群において飼育期間中に死んだ動物はなかった。どの動物も、その全身状態の悪化を示さなかった。

【0022】

定量化されたＨ＆Ｅ染色した皮膚切片の代表的な顕微鏡写真（図２）は、媒体群と比較して、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合のタンパク質で処置した群における真皮厚の統計的に有意な低下、加えて真皮白色脂肪組織（ｄＷＡＴ）層の顕著な拡大を示した。

【0023】

マッソントリクローム染色した皮膚の代表的な顕微鏡写真および定量化（図３）は、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質で処置した群において線維症の領域が、媒体群と比較して低下する傾向があることを示した。媒体群とニンテダニブ処置群の間で線維症の領域に有意な差異は存在しなかった。

【0024】

肺性線維症の場合、マッソントリクローム染色した肺切片を表す顕微鏡写真は、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質で処置した動物において肺性線維症の低下を示した（図４）。ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃおよびニンテダニブ群におけるＡｓｈｃｒｏｆｔスコアは、媒体群と比較して低下する傾向があった（図４）。

【0025】

Ｈ＆Ｅ染色およびマッソントリクローム染色によって証明された通り、媒体処置群において表皮性肥大および皮膚線維症が、確立された。

【0026】

ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃによる処置は、媒体処置群（対照群）と比較して真皮厚の有意な低下および線維症領域が低下する傾向を示した。さらに、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ処置は、ｄＷＡＴ層の有意な増大を示した。

【0027】

結論として、これら結果は、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質が、皮膚線維症を抑制し、ｄＷＡＴ層を再生する潜在性を有することを示唆した。

【0028】

マッソントリクローム染色試験およびＡｓｈｃｒｏｆｔスコアによって実証された通り、媒体群（対照群）において肺性線維症の確立が観察された。

【0029】

ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃおよびニンテダニブによる処置は、媒体群と比較してＡｓｈｃｒｏｆｔスコアの低下傾向を示した。

【0030】

結論として、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃによる処置は、媒体群と比較してＡｓｈｃｒｏｆｔスコアの低下傾向を示し、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃが、肺性線維症において抗線維化効果を有することを示唆した。

【0031】

肝臓線維症モデルで実施した試験において、ＣＣｌ４による処置でラット血清中のＡＬＴおよびＡＳＴのレベルが劇的に増大したことが示された（図５）。ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質による処置のわずか２週間後（ＣＣｌ４処置の４週間後）に、５ｍｇ／ｋｇまたは１ｍｇ／ｋｇを受けた動物は、モデル群または対照群と比較して、双方向ＡＮＯＶＡによって分析されたＡＬＴ／ＡＳＴにおいて統計的に有意な差異を示した（図５）。試料は、ＣＣｌ４の最後の用量の２４時間後に取られた。

【0032】

線維症スコア、非脂肪肝疾患指数（ＮＡＦＬＤ）、炎症細胞浸潤および卵形細胞過形成における統計的に有意な差異（＃Ｐ＜０．１、＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１）（図６）。

【0033】

Ｈ＆Ｅ染色した肝臓切片の分析は、様々な組織学的パラメータの評価を可能にした。クラスカルワリス分析それに続くダン検定は、線維症スコア、炎症細胞浸潤、および卵形細胞過形成において統計的に有意な差異を示した（＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１）（図６）。

【0034】

ＣＣｌ４による処置は、ＡＬＴ／ＡＳＴレベルを劇的に上昇させ、肝臓線維症を促進した。ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃによる処置は、１週間に２用量の処置の２週間後（４用量）にＡＬＴ／ＡＳＴレベルを有意に減少させた。

【0035】

ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃによる処置は、線維症スコア、炎症細胞浸潤および卵形細胞過形成を有意に減少させ、肝臓線維症の改善および肝臓構成の部分的回復を示した。

【0036】

ヒト生皮膚外植片における創傷修復および抗老化モデルに対する試験の結果が、分析された。結果は、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃが、５ならびに２００μｇ／ｍＬでの処置の４および８日後にヒト皮膚外植片による耐容性が良いことを示した。

【0037】

他方、４日目に、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質は、創傷治癒を３１％（５μｇ／ｍｌ）および４４％（２００μｇ／ｍｌ）有意に増大させた（図７Ａ）。８日目に、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ（５または２００μｇ／ｍｌのいずれか）で処置した６つの外植片のうちの５つが、完全な創傷治癒を示し、一方６つの対照外植片のうちの２つだけが創傷を塞いだ（図７）。さらに、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃは、８日目に新しい表皮の分化に対して顕著な効果を示した（図７）。

【0038】

処置の４および８日後にＩ型コラーゲンの産生を刺激した場合、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ融合タンパク質は、統計的に有意な抗老化活性も呈した（ｐ＜０．００１）（図８）。

【0039】

ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃは、損傷を受けた皮膚外植片において新しい表皮の形態構造、移動、増殖、細胞接着および分化の有意な増大を誘導した。

【0040】

ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃは、真皮におけるＩ型コラーゲン産生の有意な増大も誘導した。

【実施例】

【0041】

[実施例１]
皮膚および肺性線維症を処置するためのＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ産生およびＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃの使用。Marcela Bertolio, et., al., Frontiers in Cell and Developmental Biology. 9:690397.doi: 10.3389/fcell.2021.690397 (2021)に記載される方法にしたがって、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃを産生した。

【0042】

ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ（５．２ｍｇ／ｍｌ）を、研究プロトコールにしたがってＰＢＳ ｐＨ７．４中に希釈した。ニンテダニブを、Ｃｈｅｍｅｘｐｒｅｓｓ Co．，Ｌｔｄ．（中国）から購入した。投薬溶液を調製するために、ニンテダニブを秤量し、１％メチルセルロース中に再懸濁した。

【0043】

組成物の投与の経路および用量：ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃを、週２回、肺性線維症モデルにおいて７～２０日目（７、１０、１４および１７日目）（４用量）および皮膚線維症モデルにおいて２８日目まで（６用量）、容積５ｍｌ／ｋｇ（５ｍｇ／ｋｇ）で静脈内投与した。ニンテダニブを、肺性線維症モデルにおいて７～２０日目および皮膚線維症モデルにおいて２８日目まで１日１回、容積１０ｍｌ／ｋｇ（１００ｍｇ／ｋｇ）で経口投与した。

【0044】

動物：６週齢の雌Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウス３０匹を、日本エスエルシー株式会社（日本）から入手した。これらマウスを、制御された条件下で飼育し、通常食（ＣＥ－２；日本クレア）を給餌した。この研究に使用した動物は全て、以下のガイドライン：１）動物愛護および管理に関する法律（日本の環境省法律第１０５号、昭和４８年１０月１日）；２）実験動物の飼養および保管ならびに苦痛の軽減に関する基準（日本の環境省告示第８８号、平成１８年４月２８日）；３）動物実験の適正な実施に向けたガイドライン（日本学術会議、２００６年６月１日）に沿って飼養された。

【0045】

動物を、温度（２３±３℃）、湿度（５０±２０％）、照明（１２時間の人工明暗サイクル；８：００～２０：００照明）および換気を制御した条件下で、ＳＰＦ施設内で飼った。施設の汚染を回避するために実験室内を高圧に維持した。

【0046】

動物を、ケージ当たり最高５匹のマウスでＴＰＸケージ（日本クレア）内で飼育した。清潔な無菌化した紙（日本エスエルシー）を、動物の床敷きに使用し、１週間に１回取り替えた。マウスを、耳穿刺によって識別した。また、各ケージには、特定の識別コードも与えた。

【0047】

無菌化した通常の食餌を、ケージ上部の金属製の蓋に入れて不断に提供した。またＲＯ水を、ゴム栓とストロー管を取り付けた水差しから不断に供給した。水差しを、週１回取り替え、掃除し、加圧殺菌し、再使用した。

【0048】

ＢＬＭ誘導された肺線維症マウスモデルの誘導：０日目に、マウス３０匹における肺線維症の発症を、Ｍｉｃｒｏｓｐｒａｙｅｒ（Ｐｅｎｎ－Ｃｅｎｔｕｒｙ、米国）を使用して生理食塩水中の塩酸ブレオマイシン（ＢＬＭ、日本化薬、日本）を用量３．０ｍｇ／ｋｇで、動物当たり容積５０μＬで１回気管内投与することによって誘導した。

【0049】

ＢＬＭ誘導された皮膚線維症モデルの誘導：ＢＬＭ投与の前日に、マウスを、その体重に基づいてマウス１０匹の３つの群にランダム化した。０日目に、マウス３０匹に、生理食塩水中のＢＬＭ（ロット番号３９１８７０、日本化薬、日本）を用量５０μｇ／マウス、容積５０μｌで１日おき（０、２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４および２６日目）に皮下投与した。

【0050】

動物の監視および屠殺：生存率、臨床的徴候および挙動を毎日監視した。体重を、０日目から毎日記録した。投薬容積を、最終体重に基づいて調整した。マウスを、各投与のおよそ６０分後に毒性、罹患率および死亡率の有意な臨床的徴候について観察した。動物を、２１日目（肺性線維症モデル）および２８日目（皮膚線維症のモデル）にメデトミジン（０．７５ｍｇ／ｋｇ）、ミダゾラム（４ｍｇ／ｋｇ）およびブトルファノール（５ｍｇ／ｋｇ）の混合麻酔下で腹部大静脈を通じた放血によって屠殺した。投薬および終了のタイミングを、記録した。全マウスの左葉および下大静脈葉の質量を記録した。

【0051】

試料の採集：固定液の漏出を回避するために左葉の気管支と下大静脈を結紮した。留置針を気管に挿入し、注射器の点滴路に接続した。注射器に、１０％中性緩衝ホルマリンをロードし、高さ２０ｃｍで保持した。上葉（ａ）、中間葉（ｂ）および下葉（ｃ）を、１０％中性緩衝ホルマリンでその後点滴し、膨張後に結紮した。固定した３つの葉、無固定の左肺（ｅ）および無固定の下大静脈葉（ｄ）を採取した。無固定の２つの葉を冷生理食塩水で洗浄し、質量を測定した。

【0052】

３つの葉を、１０％中性緩衝ホルマリン中で２４時間固定した。固定化後、これら試料を、マッソントリクローム染色用としてパラフィン包埋した。下大静脈葉（Ｄ）を、液体窒素中で急速冷凍し、さらなる分析用として－８０℃で貯蔵した。左肺（Ｅ）を、液体窒素中で直ちに冷凍し、さらなる分析用として－８０℃で貯蔵した（図９を参照のこと）。

【0053】

皮膚試料の場合、事前に剃毛した背部試料を採集し、１０％中性緩衝ホルマリン中で２４時間固定した。固定化後、これら試料を、組織病理学的分析用にパラフィン包埋した。

【0054】

組織病理学的分析：１０％中性緩衝ホルマリンに予め固定した皮膚および右肺組織由来のパラフィンブロック切片を、回転式ミクロトーム（Ｌｅｉｃａ Ｍｉｃｒｏｓｙｓｔｅｍｓ）を使用して４μｍに切断した。

【0055】

Ｈ＆Ｅ染色の場合、予め固定した皮膚組織パラフィンブロックの切片を、１０％中性緩衝ホルマリン中で切断し、Ｌｉｌｌｉｅ－Ｍａｙｅｒのヘマトキシリン（武藤化学株式会社、日本）およびエオジン溶液（富士フイルム和光純薬株式会社、日本）で染色した。真皮厚を定量分析するために、ＨＥ染色した切片の明視野像を、倍率１００倍でデジタルカメラ（ＤＦＣ２９５；Ｌｅｉｃａ、ドイツ）で取り込み、真皮厚を、ＩｍａｇｅＪソフトウェア（アメリカ国立衛生研究所、米国）を使用して５視野／切片で測定した。

【0056】

皮膚と肺両方のマッソントリクローム染色のために、切片を脱パラフィンし、再水和し、続いてブアン液で１５分間再固定化した。切片を、ワイゲルト鉄ヘマトキシリン作業溶液（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）、ビーブリッヒスカーレット酸性フクシン溶液（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）、リンタングステン酸／リンモリブデン酸溶液、アニリンブルー溶液および酢酸溶液ａｌ １％（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）中で染色した。肺性線維症の領域の定量分析のために、マッソントリクローム染色した切片の明視野像を、倍率１００倍でデジタルカメラ（ＤＦＣ２９５）を使用して無作為に取り込み、２０個の視野／マウスで胸膜下領域を取り込み、肺性線維症の分類基準にしたがって評価した（Aschcroft T. et al., J Clin Pathol, 1988; 41: 467-70）。全ての切片を、実験者が盲検的に分析した。

【0057】

肺性線維症のグレード（Ａｓｃｈｃｒｏｆｔスコア）：
正常肺または肺胞もしくは細気管支壁の極めて小さい線維性肥厚。
２－３ 肺構成に明らかな損傷のない壁の中等度の肥厚。
４－５ 肺構造に明確な損傷を伴う線維症の増大および線維性バンドまたは小さい線維性塊の形成。
６－７ 構造の重度のひずみおよび大きな線維性領域；「ハニカム」の肺
８ 視野の全線維性の消滅。

【0058】

Ａｓｈｃｒｏｆｔスコアの場合、生データを整数として算出した。各切片（葉、上葉、中間葉および下葉）における２０個の視野の平均値を、各個々の動物のＡｓｈｃｒｏｆｔスコアとみなし、小数点以下第１位まで算出した。各群の平均値および標準偏差を、小数点以下第２位を四捨五入し、小数点以下第１位まで算出した。

【0059】

統計分析を、ＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍ ７（ＧｒａｐｈＰａｄ Ｓｏｆｔｗａｒｅ社、米国）でＡＮＯＶＡ法またはボンフェローニ多重比較検定を使用して実行した。モデル群を、多重比較の対照群として使用した（ダネット検定）。ｐ＜０．０５の値を、統計的に有意とみなした。Ｐ値が、＜０．１の場合に、傾向を仮定した。結果を、平均±ＳＤとして表した。

【0060】

設計および処置の概要
皮膚線維症モデル：
群１：媒体
ＢＬＭ誘導された皮膚線維症マウス１０匹に、リン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）ｐＨ７．４媒体を容積５ｍｌ／ｋｇで０～２７日目に１週間に２回（月曜日および金曜日）（合計８用量）静脈内投与した。

【0061】

群２：ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ
ＢＬＭ誘導された皮膚線維症のマウス１０匹に、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃで補充した媒体を用量５．０ｍｇ／ｋｇ、容積５ｍｌ／ｋｇで０～２７日目に１週間に２回（月曜日および金曜日）（合計８用量）静脈内投与した。

【0062】

群３：ニンテダニブ
ＢＬＭ誘導された皮膚線維症のマウス１０匹に、ニンテダニブで補充した１％メチルセルロースを用量１００ｍｇ／ｋｇ、容積１０ｍｌ／ｋｇで０～２７日目に１日１回経口投与した。

【0063】

肺性線維症モデル：ブレオマイシン（ＢＬＭ）投与の１週後、動物を、体重変化にしたがって３つの実験群にランダム化した：

【0064】

群１：媒体
ＢＬＭ誘導された肺性線維症マウス１０匹に、リン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）媒体ｐＨ７．４を容積５ｍｌ／ｋｇで０～２０日目に毎週２回（４用量）静脈内投与した。

【0065】

群２：ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃ
ＢＬＭ誘導された肺性線維症マウス１０匹に、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃで補充した媒体を用量５．０ｍｇ／ｋｇ、容積５ｍｌ／ｋｇで７～２０日目に１週間に２回（４用量）静脈内投与した。

【0066】

群３：ニンテダニブ
ＢＬＭ誘導された肺性線維症マウス１０匹に、ニンテダニブで補充した１％メチルセルロースを用量１００ｍｇ／ｋｇ、容積１０ｍｌ／ｋｇで７～２０日目に１日１回経口投与した。

【0067】

[実施例２]
肝臓線維症の処置に対するＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃの使用
ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃを、１および５ｍｇ／ｋｇで試験した。－８０℃で貯蔵された５．２ｍｇ／ｍｌ保存溶液を氷上で解凍し、４℃に保った。投薬前に、保存溶液を、無菌ＰＢＳを用いて１ｍｇ／ｍｌまたは０．２ｍｇ／ｍｌ作業溶液に希釈した。

【0068】

組成物の投与の経路および用量：ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃを、１および５ｍｇ／ｋｇで、容積５ｍｌ／ｋｇで、３～６週目に週２回（８用量）静脈内投与した。

【0069】

動物：中国科学院の上海実験動物中心（ＳＬＡＣ）からの、体重１８０～２００グラムの雄スプラーグドーリーラット、ＳＰＦグレード４２匹。通常飼料を研究の全体を通じて不断に提供し、動物には、飲料水を自由に摂取させた。

【0070】

到着後、動物を、特定病原体未感染（ＳＰＦ）施設内で、順化のために飼育した。飼育条件は、温度２０～２６℃、湿度４０～７０％、および１２時間照明／１２時間暗所のサイクルであった。７日後、血液を採集し、血清を、５，０００ｒｐｍで１０分間の遠心分離によって調製し、ＡＬＴ／ＡＳＴ測定にその後使用した。

【0071】

ラットにおけるＣＣｌ４による肝線維症の誘導：肝線維症を、経口胃管栄養法によってオリーブ油中の２５％四塩化炭素（ＣＣｌ４）を週３回（ＴＩＷ）投与することによって誘導した。順化後、ラット３２匹は、ＣＣｌ４を経口胃管栄養法によって容積１ｍｌで、用量０．５ｍｌ／ｋｇ（７９５ｍｇ／ｋｇ）で週に３回（ＴＩＷ）２週間受けた。その代わりに、ラット１０匹は、媒体（オリーブ油）（対照群）を受けた。処置２週間後に、対照動物２匹を屠殺し、線維症を、シリウスレッド染色によって確認した。

【0072】

動物の監視および屠殺：生存率、臨床的徴候および挙動は、毎日監視した。体重を、毎週記録した。動物を、研究６週後に屠殺した。

【0073】

標本の採集：血液を、ＡＬＴ／ＡＳＴ測定のために０および２週目に採集した。血清試料を、５，０００ｒｐｍで１０分間の遠心分離によって調製した。

【0074】

完了したら、血液を、心穿刺によって採血し、血清を従来通り調製した。肝臓を、解剖し、秤量した。撮影後、左葉を、ホルマリン中に固定し、次いでＨ＆Ｅ染色のために組織病理実験室へ移した。

【0075】

ＡＬＴ／ＡＳＴ測定：血清ＡＬＴおよびＡＳＴを、自動化した生化学分析装置（ＭＩＮＤＲＡＹ ＢＳ－３８０）で測定した。

【0076】

組織病理学的分析：１０％中性緩衝ホルマリンに予め固定した肝臓組織由来のパラフィンブロック切片を、回転式ミクロトーム（Ｌｅｉｃａ Ｍｉｃｒｏｓｙｓｔｅｍｓ）を使用して４μｍに切断した。

【0077】

Ｈ＆Ｅ染色の場合、切片を、脱パラフィン化し、再水和し、その後ヘマトキシリン液で染色し、０．２５％ ＨＣｌアルコール中に置き、エオシン中で対比染色し、脱水し、カバーグラス上に搭載した。専門家が、スライドの切片を線維症の程度、炎症細胞浸潤、脂肪症、肝細胞の変性／壊死について盲検的に分析した。

【0078】

スコアリングを、以下の通りに行った：
線維化の程度：
０－線維化なし
１－短い線維中隔を伴う線維性拡大。
２－短い線維中隔を伴うまたは伴わない、殆どの小葉中心域の線維性拡大。
３－小葉中心および／または門脈域の間に副次的架橋線維化を伴う線維性拡大。
４－小葉中心および／または門脈域の間に架橋線維化を伴う線維性拡大。
５－副次的小結節（不完全肝硬変）を伴う、小葉中心および／または門脈域の間の架橋線維化。
６－肝硬変（推定または確定）、小結節を伴う重度の架橋線維化。

【0079】

全般的な組織病理分類の概要：
０－顕著な所見なし；１－最小；２－軽度；３－中等度；４－印；５－重度；

【0080】

統計分析を、ＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍ７ソフトウェア（ＧｒａｐｈＰａｄ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｉｎｃ．、米国）を使用して、必要に応じてＡＮＯＶＡ（パラメトリック）またはクラスカルワリス（ノンパラメトリック）検定を使用して実行した。モデル群を、多重比較の対照群として使用した（ダネットまたはダン検定）。ｐ＜０．０５の値を、統計的に有意とみなした。Ｐ値が、＜０．１の場合に、傾向を仮定した。結果を、平均±ＳＤとして表した。

【0081】

設計および処置の概要：ＣＣｌ４処置２週間後に、ラット３０匹を、血清ＡＬＴ／ＡＳＴレベルに基づいて３群に無作為に割り当てた。ＣＣｌ４または媒体を、６週目まで連続的に投与した。ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃを、５ｍｌ／ｋｇで週２回（ＢＩＷ）のＣＣｌ４による処置の２時間前に以下の通り静脈内注射によって投与した：

【0082】

群１（媒体）：媒体（ＰＢＳ ｐＨ７．４）を、健康な動物１０匹に対し３～６週目に容積５ｍｌ／ｋｇ ＢＩＷで静脈内投与した（８用量）。オリーブ油を、完了までＴＩＷで経口胃管栄養法によって連続的に投与した。

【0083】

群２（ＣＣｌ４モデル）：ＣＣｌ４誘導された肝臓線維症ラット１０匹は、媒体（ＰＢＳ ｐＨ７．４）を容積５ｍｌ／ｋｇで、３～６週目にＢＩＷで静脈内に受けた（８用量）。ＣＣｌ４ ７９５ｍｇ／ｋｇを、完了までＴＩＷで経口胃管栄養法によって連続的に投与した。

【0084】

群３（高用量）：ＣＣｌ４誘導された肝臓線維症のラット１０匹に、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃを用量５ｍｇ／ｋｇ、容積５ｍｌ／ｋｇで、３～６週目にＢＩＷで静脈内投与した（８用量）。ＣＣｌ４ ７９５ｍｇ／ｋｇを、完了までＴＩＷで経口胃管栄養法によって連続的に投与した。

【0085】

群４（低用量）：ＣＣｌ４誘導された肝臓線維症のラット１０匹に、ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃを用量１ｍｇ／ｋｇ、容積５ｍｌ／ｋｇで、３～６週目にＢＩＷで静脈内投与した（８用量）。ＣＣｌ４ ７９５ｍｇ／ｋｇを、完了までＴＩＷで経口胃管栄養法によって連続的に投与した。

【0086】

[実施例３]
創傷の処置および修復のため；および生きたヒト皮膚外植片において老化を減少させるためのＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃの使用
本研究の目的は、生きたヒト皮膚外植片を使用して創傷治癒および皮膚老化に対する２濃度のＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃの効果を評価することであった。

【0087】

創傷治癒効果を、以下によって評価した：創傷領域と無創傷領域の成長芽に焦点を合わせた全般的な形態構造の分析、成長芽の長さの分析。

【0088】

抗老化効果を、Ｉ型コラーゲン免疫染色によって評価した。

【0089】

ＴβＲＩＩ－ＳＥ／Ｆｃを、５（Ｐ１）および２００（Ｐ２）μｇ／ｋｇでアッセイした。－８０℃で貯蔵された５．２ｍｇ／ｍｌ保存溶液を氷上で解凍し、４℃に保った。投薬前に、保存溶液を、培養培地に希釈した。処置を更新するたびに、全ての希釈を即時調製した。

【0090】

外植片の調製：５５歳白色人種の女性（参照：Ｐ２４２２－ＡＢ５５）からの腹壁形成外科手術において、２１個の円形皮膚外植片（直径１２ｍｍ）および２１個の矩形皮膚外植片（１０×１５ｍｍ）を調製した。外植片を、５％ ＣＯ２の湿潤雰囲気中で、３７℃で、ＢＥＭ培養培地（ＢＩＯ－ＥＣ外植片培地）中で生存を保った。

【0091】

外植片の分布：外植片を、以下の表１の通りに８ロットに分配した。

【0092】

機械的病変の実行：各矩形外植片において、バッチＢ０、Ｂ、ＢＰ１およびＢＰ２に対して、２つの機械的病変を、直径３．５ｍｍの生検パンチを用いて０日目に実行した（図１０を参照のこと）。

【0093】

【表1】

【0094】

処置：産物Ｐ１およびＰ２を、０日目（Ｄ０）、Ｄ２、Ｄ４およびＤ６に当該バッチの培養培地に組み込んだ。培養培地の半分（１ｍｌ）を、Ｄ２、Ｄ４およびＤ６に更新した。対照外植片は、処置を受けなかった。

【0095】

抗老化活性のサンプリングおよび測定：Ｄ０に、Ｔ０ロット由来の３つの外植片を採集し、２つの部分に切り分けた。半分を、緩衝ホルマリン中に固定し、他の半分を、－８０℃で冷凍した。Ｄ４およびＤ８に、ロットＴ、Ｐ１およびＰ２由来の３つの外植片を採集し、同じ方法で処理した。

【0096】

傷の修復活性の評価：Ｄ０に、バッチＢ０由来の３つの外植片を採取し、３つの部分に切り分けた。第１の部分を、緩衝ホルマリン中に固定し、第２の部分を、－８０℃で冷凍し、第３の部分を、最終的な後のトランスクリプトーム分析用にＲＮＡとして貯蔵した。Ｄ４およびＤ８に、ロットＢ、ＢＰ１およびＢＰ２由来の３つの外植片を採集し、同じ方法で処理した。

【0097】

組織学的検査：緩衝ホルマリン中で２４時間固定した後、Ｌｅｉｃａ ＴＰ １０１０自動脱水装置を使用して試料を脱水し、パラフィン包埋した。試料を、Ｌｅｉｃａ包埋ステーションＥＧ １１６０を使用して、その後含めた。厚さ５μｍの切片を、Ｌｅｉｃａ ＲＭ ２１２５ Ｍｉｎｏｔ型ミクロトームを使用して作製し、Ｓｕｐｅｒｆｒｏｓｔ（登録商標）組織学的スライドガラス上にその後封入した。顕微鏡観察を、Ｌｅｉｃａ ＤＭＬＢまたはオリンパスＢＸ４３顕微鏡を使用して行った。画像を、ＣｅｌｌＤ記憶ソフトウェアを用いてオリンパスＤＰ７２デジタルカメラでデジタル化した。

【0098】

全般的な形態構造：表皮および真皮の構造ならびに成長芽の全般的な形態構造の観察を、マッソントリクローム、Ｇｏｌｄｎｅｒ変形にしたがってパラフィン切片を染色した後に実施した。

【0099】

Ｉ型コラーゲン免疫染色：Ｉ型コラーゲン免疫染色を、ＰＢＳ－０．３％ ＢＳＡ中に１：５０希釈した抗Ｉ型コラーゲンポリクローナル抗体（Ｍｏｎｏｓａｎ社、参照番号ＰＳ０４７）を用いて凍結皮膚切片において実行し、室温で１時間インキュベートした。染色を、ＡｌｅｘａＦｌｕｏｒ ４８８（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社、参照番号Ａ１１００８）によって明らかにした。核を、ヨウ化プロピジウムでその後染色した。染色を手動で行い、顕微鏡観察によって評価した。

【図1】

【図2】

【図3】

【図4】

【図5】

【図6-1】

【図6-2】

【図7-1】

【図7-2】

【図7-3】

【図8-1】

【図8-2】

【図9】

【図10】

【配列表】

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【国際調査報告】