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(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】公表特許公報(A)
(11)【公表番号】
(43)【公表日】2024-01-04
(54)【発明の名称】抱合体
(51)【国際特許分類】
C12N 15/113 20100101AFI20231222BHJP
A61K 31/713 20060101ALI20231222BHJP
A61P 1/16 20060101ALI20231222BHJP
A61P 31/12 20060101ALI20231222BHJP
A61P 31/04 20060101ALI20231222BHJP
A61P 31/00 20060101ALI20231222BHJP
【ＦＩ】
C12N15/113 Z ZNA
A61K31/713
A61P1/16
A61P31/12
A61P31/04
A61P31/00
【審査請求】未請求
【予備審査請求】未請求
(21)【出願番号】P 2023533634
(86)(22)【出願日】2021-12-23
(85)【翻訳文提出日】2023-08-01
(86)【国際出願番号】 EP2021087570
(87)【国際公開番号】W WO2022136673
(87)【国際公開日】2022-06-30
(31)【優先権主張番号】2020534.0
(32)【優先日】2020-12-23
(33)【優先権主張国・地域又は機関】GB
(81)【指定国・地域】
(71)【出願人】
【識別番号】521548168
【氏名又は名称】アルゴノート アールエヌエー リミテッド
(74)【代理人】
【識別番号】100149294
【弁理士】
【氏名又は名称】内田 直人
(72)【発明者】
【氏名】カーン，マイケル
(72)【発明者】
【氏名】ミッチェル，ダニエル
(72)【発明者】
【氏名】マトロック，ジョナサン
【テーマコード（参考）】
4C086
【Ｆターム（参考）】
4C086AA01
4C086AA02
4C086AA03
4C086EA16
4C086MA01
4C086MA04
4C086NA14
4C086ZA75
4C086ZC20
4C086ZC41
(57)【要約】
本開示は、センス鎖およびアンチセンス鎖を含み、分子のセンスＲＮＡ部分またはアンチセンスＲＮＡ部分のいずれかの３’末端に共有結合した一本鎖ＤＮＡ分子をさらに含む、二本鎖ＲＮＡ分子を含む核酸に関する。
【選択図】図１（ａ）
【選択図】図１（ａ）
【特許請求の範囲】
【請求項1】
核酸分子であって、サイレンシングされる遺伝子を含むヌクレオチド配列を参照して設計されたセンス鎖とアンチセンス鎖とを含む二本鎖阻害性リボ核酸（ＲＮＡ）分子を含む第一の部分であって、前記サイレンシングされる遺伝子が、アポリポタンパク質Ｂおよびプロタンパク質転換酵素サブチリシンケキシン９型ではない第一の部分と、
一本鎖デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）分子を含む第二の部分と
を含み、前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記センス鎖の前記３’末端に共有結合されているか、または前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記アンチセンス鎖の３’に共有結合されていて、前記一本鎖ＤＮＡ分子が、前記一本鎖ＤＮＡの一部と相補的塩基対合することによってアニールして、ステムドメインおよびループドメインを含む二本鎖ＤＮＡ構造を形成するようにその長さの少なくとも一部にわたって適合されたヌクレオチド配列を含み、前記核酸分子がＮ－アセチルガラクトサミンを含むことと、前記二本鎖阻害性ＲＮＡが天然ヌクレオチドから成ることとを特徴とする、核酸分子。
【請求項2】
前記ループドメインが、前記ヌクレオチド配列ＧＣＧＡＡＧＣを含む、請求項１に記載の核酸分子。
【請求項3】
前記一本鎖ＤＮＡ分子が、前記ヌクレオチド配列ＴＣＡＣＣＴＣＡＴＣＣＣＧＣＧＡＡＧＣ（配列番号１）を含む、請求項１または請求項２に記載の核酸分子。
【請求項4】
前記阻害性ＲＮＡ分子が、２ヌクレオチドオーバーハングを含む、請求項１～３のいずれか一項に記載の核酸分子。
【請求項5】
前記センス鎖および／または前記アンチセンス鎖が、ヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を含む、請求項１～４のいずれか一項に記載の核酸分子。
【請求項6】
前記一本鎖ＤＮＡ分子が、一つ以上のヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を含む、請求項１～５のいずれか一項に記載の核酸分子。
【請求項7】
前記核酸分子がビニルホスホネート修飾を含む、請求項１～６のいずれか一項に記載の核酸分子。
【請求項8】
前記ビニルホスホネート修飾が、前記アンチセンスＲＮＡ鎖の５’末端リン酸塩に対するものである、請求項７に記載の核酸分子。
【請求項9】
前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、長さ１９～２３個の近接しているヌクレオチドを含む、請求項１～８のいずれか一項に記載の核酸分子。
【請求項10】
Ｎ－アセチルガラクトサミンが、一価、二価、または三価である、請求項１～９のいずれか一項に記載の核酸分子。
【請求項11】
Ｎ－アセチルガラクトサミンが、前記阻害性ＲＮＡのアンチセンス部分または前記阻害性ＲＮＡのセンス部分のいずれかに結合されている、請求項１０に記載の核酸分子。
【請求項12】
前記核酸分子が、以下の構造を含むアセチルガラクトサミン分子に共有結合されている、請求項１～１１のいずれか一項に記載の核酸分子。【化1】
【請求項13】
前記核酸分子が、以下の構造を含むアセチルガラクトサミン分子に共有結合されている、請求項１～１１のいずれか一項に記載の核酸分子。【化2】
【請求項14】
前記核酸分子が、以下の構造を含むアセチルガラクトサミン分子に共有結合されている、請求項１～１１のいずれか一項に記載の核酸分子。【化3】
【請求項15】
前記核酸分子が、以下の構造を含むアセチルガラクトサミン分子に共有結合されている、請求項１～１１のいずれか一項に記載の核酸分子。【化4】
【請求項16】
前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、配列番号６７（Ｃ５）に記載されたセンスヌクレオチド配列の１９～２３の近接しているヌクレオチドを含むか、またはそれらから成る、請求項１～１５のいずれか一項に記載の核酸分子。
【請求項17】
二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、配列番号１１９、１２０、１２１、１２２、１２３、１２４、１２５、１２６、１２７、１２８、１２９、１３０、１３１、１３２、１３３、１３４、１３５、１３６、１３７、１３８から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む、請求項１６に記載の核酸分子。
【請求項18】
前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、配列番号１０９、１１０、１１１、１１２、１１３、１１４、１１５、１１６、１１７、１１８から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む、請求項１６に記載の核酸分子。
【請求項19】
前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、配列番号１３９、１４０、１４１、１４２、１４３、１４４、１４５、１４６、１４７、１４８から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む、請求項１６に記載の核酸分子。
【請求項20】
前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、配列番号３１、３２、３３、３４、３５、３６、３７、３８、３９、４０から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む、請求項１６に記載の核酸分子。
【請求項21】
前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、配列番号２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む、請求項１６に記載の核酸分子。
【請求項22】
前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、配列番号１５１～６５０から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む、請求項１６に記載の核酸分子。
【請求項23】
前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、配列番号６６（Ｃ３）に記載されたセンスヌクレオチド配列の１９～２３の近接しているヌクレオチドを含むか、またはそれらから成る、請求項１～１５のいずれか一項に記載の核酸分子。
【請求項24】
前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、配列番号７９、８０、８１、８２、８３、８４、８５、８６、８７、８８、８９、９０、９１、９２、９３、９４、９５、９６、９７、９８、９９から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む、請求項２３に記載の核酸分子。
【請求項25】
前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、配列番号６９、７０、７１、７２、７３、７４、７５、７６、７７、７８から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む、請求項２３に記載の核酸分子。
【請求項26】
前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、配列番号１００、１０１、１０２、１０３、１０４、１０５、１０６、１０７、１０８から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む、請求項２３に記載の核酸分子。
【請求項27】
前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、配列番号１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む、請求項２３に記載の核酸分子。
【請求項28】
前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、６１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む、請求項２３に記載の核酸分子。
【請求項29】
前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、配列番号６５１～１１５０から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む、請求項２３に記載の核酸分子。
【請求項30】
前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、配列番号６８（ＭＡＳＰ２）に記載されたセンスヌクレオチド配列の１９～２３の近接しているヌクレオチドを含むか、またはそれらから成る、請求項１～１５のいずれか一項に記載の核酸分子。
【請求項31】
前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、５１、５２、５３、５４、５５、５６、５７、５８、５９または６０から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む、請求項３０に記載の核酸分子。
【請求項32】
前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子が、配列番号４１、４２、４３、４４、４５、４６、４７、４８、４９、５０から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む、請求項３０に記載の核酸分子。
【請求項33】
請求項１～３２のいずれか一項に記載の少なくとも一つの核酸分子を含む、医薬組成物。
【請求項34】
請求項１～３３のいずれか一項に記載の核酸分子または組成物を対象に投与することを含む、肝細胞内の遺伝子の発現を阻害する方法。
【請求項35】
補体成分５の阻害から利益を得ることになる疾患または病状の治療に使用する、請求項１６～２２のいずれか一項に記載の核酸分子または医薬組成物。
【請求項36】
補体成分３の阻害から利益を得ることになる疾患または病状の治療に使用する、請求項２３～２９のいずれか一項に記載の核酸分子または医薬組成物。
【請求項37】
ＭＡＳＰ２の阻害から利益を得ることになる疾患または病状の治療に使用する、請求項３０～３２のいずれか一項に記載の核酸分子または医薬組成物。
【請求項38】
前記病状が微生物感染である、請求項３７～３９のいずれか一項の使用による核酸分子または医薬組成物。
【請求項39】
前記微生物感染がウイルス感染の結果である、請求項３８の使用による核酸分子または医薬組成物の使用。
【請求項40】
前記微生物感染が細菌感染の結果である、請求項３９の使用による核酸分子または医薬組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本開示は、センス鎖およびアンチセンス鎖を含む二本鎖ＲＮＡ分子を含み、分子のセンスＲＮＡ部分またはアンチセンスＲＮＡ部分のいずれかの３’末端に共有結合した一本鎖ＤＮＡ分子をさらに含む単離核酸分子に関し、前記核酸分子は任意選択的に、Ｎ－アセチルガラクトサミン（「ＧａｌＮＡｃ」とも称される）に直接または間接的に結合されている。
【背景技術】
【0002】
遺伝子機能を特異的にアブレーションする技術は、低分子阻害性または低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）とも呼ばれる二本鎖阻害性ＲＮＡを、ｓｉＲＮＡ分子に含まれる配列に相補的なｍＲＮＡの破壊をもたらす細胞内に導入することによる。ｓｉＲＮＡ分子は、二本鎖ＲＮＡ分子を形成するように互いにアニーリングされたＲＮＡの二つの相補鎖（センス鎖およびアンチセンス鎖）を含む。ｓｉＲＮＡ分子は典型的に（しかし唯一的ではない）、アブレーションされる遺伝子のエクソンに由来する。多くの生物体は、ｓｉＲＮＡの形成につながるカスケードを活性化することによって、二本鎖ＲＮＡの存在に応答する。二本鎖ＲＮＡの存在は、リボ核タンパク質複合体の一部になる、より小さい断片（ｓｉＲＮＡ、長さおよそ２１～２９ヌクレオチド）に二本鎖ＲＮＡを処理するＲＮａｓｅ ＩＩＩを含むタンパク質複合体を活性化する。ｓｉＲＮＡは、ｓｉＲＮＡのアンチセンス鎖に相補的なｍＲＮＡを切断するためのＲＮａｓｅ複合体のガイドとして働き、それによってｍＲＮＡのアブレーションをもたらす。
【0003】
ＲＮＡｉ技術は有望な治療ツールです。しかし、ｓｉＲＮＡは安定性と細胞／組織標的化の欠如という難点がある。安定性を増加させる方法が望ましい。ＵＳ２０１９０８５３２８号明細書は、糖修飾、塩基修飾、および／またはクロスリンカー、デンドリマー、ナノ粒子、ペプチド、有機化合物（例えば、蛍光色素）、および／または光開裂可能化合物を含む骨格修飾などのｓｉＲＮＡの安定性を高める内部修飾を有するｓｉＲＮＡ分子を開示している。ＵＳ２００９１９７３３２は、分解からｓｉＲＮＡを保護する化学修飾ヌクレオチドを含むｓｉＲＮＡ分子を開示している。ＵＳ２０１６１９３３５４は、ｓｉＲＮＡ抱合分子を開示していて、この場合において抱合体は、修飾されたおよび／または天然のオリゴヌクレオチド、リンカー基、硫黄、水素またはチオール保護基のいずれかを含む。しかしながら、修飾ｓｉＲＮＡ分子の安定性は増加するが、合成はしばしば困難かつ高価であり、さらに修飾は、クリニックで使用される場合に制御されなければならない毒性および有害な副作用の増加をもたらす可能性がある。
【0004】
本開示は、細胞および組織へのｓｉＲＮＡの送達に関する。上述の通り、細胞／組織への誤った標的化と標的細胞／組織によるｓｉＲＮＡ取り込みの最大化との望ましくない効果を回避するために、特定の細胞／組織に対してｓｉＲＮＡ治療薬を標的化することが望ましい。ｓｉＲＮＡ分子の送達は、ｓｉＲＮＡを一つ以上の細胞または一つ以上の器官に標的化するｓｉＲＮＡにリガンドを付着させることによって補助されることができる。一例は、肝臓に対してｓｉＲＮＡを標的化するＮ－アセチルガラクトサミンである。
【発明の概要】
【0005】
本開示は、センスまたはアンチセンス阻害性ＲＮＡのいずれかの３’末端に結合された短いＤＮＡ部分の含有によって改変される、かつヘアピン構造（「湾曲（ｃｒｏｏｋ）」）を形成し、Ｎ－アセチルガラクトサミンをさらに任意選択的に含む、二本鎖阻害性ＲＮＡを含む核酸分子に関する。Ｎ－アセチルガラクトサミンの位置は、核酸分子内で変化させることができる。Ｎ－アセチルガラクトサミンは、ＤＮＡ部分またはＲＮＡ部分に直接または間接的に結合されることができる。
【0006】
本発明による核酸分子は、阻害性ＲＮＡを含む修飾塩基および／または糖類を必要とせずに、改善された安定性を有し、主に天然塩基／糖類を使用する。Ｎ－アセチルガラクトサミンは、肝臓に対するｓｉＲＮＡの特異的標的化を可能にし、非常に有効な遺伝子サイレンシングを提供する。
【0007】
本発明の一態様によると、核酸分子であって、
サイレンシングされる遺伝子を含むヌクレオチド配列を参照して設計されたセンス鎖およびアンチセンス鎖を含む二本鎖阻害性リボ核酸（ＲＮＡ）分子を含む第一の部分であって、前記サイレンシングされる遺伝子が、アポリポタンパク質Ｂ（Ａｐｏ Ｂ）およびプロタンパク質転換酵素サブチリシンケキシン９型（ＰＣＳＫ９）ではない、第一の部分と、
一本鎖デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）分子を含む第二の部分と
を含み、前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記センス鎖の前記３’末端に共有結合されているか、または前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記アンチセンス鎖の３’に共有結合されていて、前記一本鎖ＤＮＡ分子が、前記一本鎖ＤＮＡの一部と相補的塩基対合することによってアニールして、ステムドメインおよびループドメインを含む二本鎖ＤＮＡ構造を形成するようにその長さの少なくとも一部にわたって適合されたヌクレオチド配列を含み、前記核酸分子がＮ－アセチルガラクトサミンを含むことと、前記二本鎖阻害性ＲＮＡが天然ヌクレオチドから成ることとを特徴とする、核酸分子が提供されている。
サイレンシングされる遺伝子を含むヌクレオチド配列を参照して設計されたセンス鎖およびアンチセンス鎖を含む二本鎖阻害性リボ核酸（ＲＮＡ）分子を含む第一の部分であって、前記サイレンシングされる遺伝子が、アポリポタンパク質Ｂ（Ａｐｏ Ｂ）およびプロタンパク質転換酵素サブチリシンケキシン９型（ＰＣＳＫ９）ではない、第一の部分と、
一本鎖デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）分子を含む第二の部分と
を含み、前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記センス鎖の前記３’末端に共有結合されているか、または前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記アンチセンス鎖の３’に共有結合されていて、前記一本鎖ＤＮＡ分子が、前記一本鎖ＤＮＡの一部と相補的塩基対合することによってアニールして、ステムドメインおよびループドメインを含む二本鎖ＤＮＡ構造を形成するようにその長さの少なくとも一部にわたって適合されたヌクレオチド配列を含み、前記核酸分子がＮ－アセチルガラクトサミンを含むことと、前記二本鎖阻害性ＲＮＡが天然ヌクレオチドから成ることとを特徴とする、核酸分子が提供されている。
【0008】
当方は現在の出願の主張された主題から、優先出願ＧＢ１９０９５００．９、ＧＢ１９１０５２６．１、ＧＢ２０００９０６．４、ＧＢ２０１０００４．６、ＰＣＴ／ＧＢ２０２０／０５１５７３の内容を放棄する。当方は出願中の各出願において、参照アポリポタンパク質Ｂを用いて設計された本発明による核酸分子を開示し主張する。また、本発明によるプロタンパク質転換酵素サブチリシンケキシン９型（ＰＣＳＫ９）核酸分子を開示する英国特許出願ＧＢ２００３７５６．０、ＧＢ２０１０２７６．０、およびＰＣＴ／ＥＰ２０２１／０５６５４０およびＧＢ２１０３５９４．４の内容も放棄する。
【0009】
本発明の好ましい一実施形態において、前記一本鎖ＤＮＡ分子の５’末端は、二本鎖阻害性ＲＮＡ分子のセンス鎖の３’末端に共有結合されている。
【0010】
本発明の代替的な一実施形態において、前記一本鎖ＤＮＡ分子の５’末端は、二本鎖阻害性ＲＮＡ分子のアンチセンス鎖の３’末端に共有結合されている。
【0011】
本発明の好ましい一実施形態において、前記ループ部分は、ヌクレオチド配列ＧＮＡまたはＧＮＮＡを含む領域を含み、各Ｎは独立してグアニン（Ｇ）、チミジン（Ｔ）、アデニン（Ａ）、またはシトシン（Ｃ）を表す。
【0012】
本発明の好ましい一実施形態において、前記ループドメインは、ＧおよびＣヌクレオチド塩基を含む。
【0013】
本発明の代替的な一実施形態において、前記ループドメインは、ヌクレオチド配列ＧＣＧＡＡＧＣを含む。
【0014】
本発明のさらに好ましい一実施形態において、前記一本鎖ＤＮＡ分子は、ヌクレオチド配列ＴＣＡＣＣＴＣＡＴＣＣＣＧＣＧＡＡＧＣ（配列番号１）を含む。
【0015】
本発明の代替的な好ましい一実施形態において、前記一本鎖ＤＮＡ分子は、ヌクレオチド配列５’ ＣＧＡＡＧＣＧＣＣＣＴＡＣＴＣＣＡＣＴ ３’（配列番号１５０）を含む。
【0016】
本発明の好ましい一実施形態において、前記ステムドメインは、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、または少なくとも１２ヌクレオチド長を含む。
【0017】
阻害性ＲＮＡ分子は、化学修飾を必要としない天然ヌクレオチド塩基を含むか、またはそれらから成る。さらに、本発明の一部の実施形態において、湾曲ＤＮＡ分子は、前記二本鎖阻害性ＲＮＡのセンス鎖の３’末端に結合されていて、アンチセンス鎖には、少なくとも２ヌクレオチド塩基オーバーハング配列が任意選択的に提供されている。２ヌクレオチドオーバーハング配列は、標的によってコードされたヌクレオチドに対応することができるか、または非コードである。２ヌクレオチドオーバーハングは、任意の配列の２つのヌクレオチド、例えばＵＵ、ＡＡ、ＵＡ、ＡＵ、ＧＧ、ＣＣ、ＧＣ、ＣＧ、ＵＧ、ＧＵ、ＵＣ、ＣＵ、ｄＴｄＴなど、任意の順番とすることができる。
【0018】
本発明の好ましい一実施形態において、前記阻害性ＲＮＡ分子は、デオキシチミジンジヌクレオチド（ｄＴｄＴ）を含むか、またはそれから成る２ヌクレオチドオーバーハングを含む。
【0019】
本発明の好ましい一実施形態において、前記ｄＴｄＴオーバーハングは、前記アンチセンス鎖の５’末端に位置付けられている。
【0020】
本発明の代替的な好ましい一実施形態において、前記ｄＴｄＴオーバーハングは、前記アンチセンス鎖の３’末端に位置付けられている。
【0021】
本発明の好ましい一実施形態において、前記ｄＴｄＴオーバーハングは、前記センス鎖の５’末端に位置付けられている。
【0022】
本発明の代替的な好ましい一実施形態において、前記ｄＴｄＴオーバーハングは、前記センス鎖の３’末端に位置付けられている。
【0023】
本発明の好ましい一実施形態において、前記センス鎖および／または前記アンチセンス鎖は、ヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を含む。
【0024】
本発明の好ましい一実施形態において、前記センス鎖は、ヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を含む。
【0025】
好ましくは、前記センス鎖の５’および／または３’末端の２つのヌクレオチドは、２つのヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を含む。
【0026】
本発明の好ましい一実施形態において、前記アンチセンス鎖は、ヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を含む。
【0027】
好ましくは、前記アンチセンス鎖の５’および／または３’末端の２つのヌクレオチドは、２つのヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を含む。
【0028】
本発明の代替的な好ましい一実施形態において、前記一本鎖ＤＮＡ分子は、一つ以上のヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を含む。
【0029】
本発明の好ましい一実施形態において、前記核酸分子は、ビニルホスホネート修飾を含む。
【0030】
本発明の好ましい一実施形態において、前記ビニルホスホネート修飾は、前記センスＲＮＡ鎖の５’末端リン酸塩に対するものである。
【0031】
本発明の好ましい一実施形態において、前記ビニルホスホネート修飾は、前記アンチセンスＲＮＡ鎖の５’末端リン酸塩に対するものである。
【0032】
本発明の好ましい一実施形態において、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、長さが１５～４０個の近接しているヌクレオチドを含む。
【0033】
本発明の好ましい一実施形態において、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、長さが少なくとも１９個の近接しているヌクレオチドを含む。
【0034】
本発明の好ましい一実施形態において、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、長さが少なくとも２１個の近接しているヌクレオチドを含む。
【0035】
本発明の好ましい一実施形態において、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、長さが２１～２３個の近接しているヌクレオチドを含む。
【0036】
本発明の好ましい一実施形態において、前記標的化リガンドは、前記核酸分子のＤＮＡ部分に直接または間接的に結合されている。
【0037】
好ましくは、前記一つ以上の標的化リガンドは、前記核酸分子のＤＮＡループドメインに結合されている。
【0038】
あるいは、前記一つ以上の標的化リガンドは、前記核酸分子のＤＮＡステムドメインに結合されている。
【0039】
本発明のさらなる代替的な一実施形態において、前記一つ以上の標的化リガンドは、相補的塩基対合によって二本鎖化されていない前記ＤＮＡ部分、例えば一本鎖ＤＮＡ部分の一部に結合されている。
【0040】
本発明のさらなる代替的な一実施形態において、前記一つ以上の標的化リガンドは、前記阻害性ＲＮＡのアンチセンス部分または前記阻害性ＲＮＡのセンス部分のいずれかに結合されている。
【0041】
本発明の好ましい一実施形態において、Ｎ－アセチルガラクトサミンは、一価、二価、または三価である。
【0042】
本発明のさらなる一実施形態において、Ｎ－アセチルガラクトサミンは、前記阻害性ＲＮＡのアンチセンス部分または前記阻害性ＲＮＡのセンス部分のいずれかに結合されている。
【0043】
好ましくは、Ｎ－アセチルガラクトサミンは、前記センスＲＮＡの５’末端に結合されている。
【0044】
本発明の代替的な一実施形態において、Ｎ－アセチルガラクトサミンは、前記センスＲＮＡの３’末端に結合されている。
【0045】
本発明の代替的な好ましい一実施形態において、前記Ｎ－アセチルガラクトサミンは、前記アンチセンスＲＮＡの３’末端に結合されている。
【0046】
本発明の好ましい一実施形態において、前記核酸分子は、以下の構造を含む分子に共有結合されている：
【化1】
【0047】
本発明の代替的な一実施形態において、前記核酸分子は、以下の構造を含む分子に共有結合されている：
【化2】
【0048】
本発明の代替的な一実施形態において、前記核酸分子は、以下の構造を含む分子に共有結合されている：
【化3】
【0049】
本発明の代替的な一実施形態において、前記核酸分子は、以下の構造を含む分子に共有結合されている：
【化4】
【0050】
本発明の代替的な好ましい一実施形態において、前記核酸分子は、Ｎ－アセチルガラクトサミン４－硫酸塩を含む分子に共有結合されている。
【0051】
本発明の一態様によると、核酸分子であって、
センス鎖およびアンチセンス鎖を含む二本鎖阻害性リボ核酸（ＲＮＡ）分子を含む第一の部分と、
一本鎖デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）分子を含む第二の部分と
を含み、前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記センス鎖の前記３’末端に共有結合されているか、または前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記アンチセンス鎖の３’に共有結合されていて、二本鎖阻害性ＲＮＡが、ヒト補体成分５またはその多型配列バリアントの一部をコードするセンスヌクレオチド配列を含むことを特徴とし、前記一本鎖ＤＮＡ分子が、前記一本鎖ＤＮＡの一部と相補的塩基対合することによってアニールして、ステムドメインおよびループドメインを含む二本鎖ＤＮＡ構造を形成するようにその長さの少なくとも一部にわたって適合されたヌクレオチド配列を含み、前記核酸分子がＮ－アセチルガラクトサミンを含むことと、前記二本鎖阻害性ＲＮＡが天然ヌクレオチドから成ることとを特徴とする、核酸分子が提供されている。
センス鎖およびアンチセンス鎖を含む二本鎖阻害性リボ核酸（ＲＮＡ）分子を含む第一の部分と、
一本鎖デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）分子を含む第二の部分と
を含み、前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記センス鎖の前記３’末端に共有結合されているか、または前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記アンチセンス鎖の３’に共有結合されていて、二本鎖阻害性ＲＮＡが、ヒト補体成分５またはその多型配列バリアントの一部をコードするセンスヌクレオチド配列を含むことを特徴とし、前記一本鎖ＤＮＡ分子が、前記一本鎖ＤＮＡの一部と相補的塩基対合することによってアニールして、ステムドメインおよびループドメインを含む二本鎖ＤＮＡ構造を形成するようにその長さの少なくとも一部にわたって適合されたヌクレオチド配列を含み、前記核酸分子がＮ－アセチルガラクトサミンを含むことと、前記二本鎖阻害性ＲＮＡが天然ヌクレオチドから成ることとを特徴とする、核酸分子が提供されている。
【0052】
本発明の一態様によると、核酸分子であって、
センス鎖およびアンチセンス鎖を含む二本鎖阻害性リボ核酸（ＲＮＡ）分子を含む第一の部分と、
一本鎖デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）分子を含む第二の部分と
を含み、前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記センス鎖の前記３’末端に共有結合されているか、または前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記アンチセンス鎖の３’に共有結合されていて、二本鎖阻害性ＲＮＡが、ヒト補体成分３またはその多型配列バリアントの一部をコードするセンスヌクレオチド配列を含むことを特徴とし、前記一本鎖ＤＮＡ分子が、前記一本鎖ＤＮＡの一部と相補的塩基対合することによってアニールして、ステムドメインおよびループドメインを含む二本鎖ＤＮＡ構造を形成するようにその長さの少なくとも一部にわたって適合されたヌクレオチド配列を含み、前記核酸分子がＮ－アセチルガラクトサミンを含むことと、前記二本鎖阻害性ＲＮＡが天然ヌクレオチドから成ることとを特徴とする、核酸分子が提供されている。
センス鎖およびアンチセンス鎖を含む二本鎖阻害性リボ核酸（ＲＮＡ）分子を含む第一の部分と、
一本鎖デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）分子を含む第二の部分と
を含み、前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記センス鎖の前記３’末端に共有結合されているか、または前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記アンチセンス鎖の３’に共有結合されていて、二本鎖阻害性ＲＮＡが、ヒト補体成分３またはその多型配列バリアントの一部をコードするセンスヌクレオチド配列を含むことを特徴とし、前記一本鎖ＤＮＡ分子が、前記一本鎖ＤＮＡの一部と相補的塩基対合することによってアニールして、ステムドメインおよびループドメインを含む二本鎖ＤＮＡ構造を形成するようにその長さの少なくとも一部にわたって適合されたヌクレオチド配列を含み、前記核酸分子がＮ－アセチルガラクトサミンを含むことと、前記二本鎖阻害性ＲＮＡが天然ヌクレオチドから成ることとを特徴とする、核酸分子が提供されている。
【0053】
本発明の一態様によると、核酸分子であって、
センス鎖およびアンチセンス鎖を含む二本鎖阻害性リボ核酸（ＲＮＡ）分子を含む第一の部分と、
一本鎖デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）分子を含む第二の部分と
を含み、前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記センス鎖の前記３’末端に共有結合されているか、または前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記アンチセンス鎖の３’に共有結合されていて、二本鎖阻害性ＲＮＡが、ヒトＭＡＳＰ－２遺伝子またはその多型配列バリアントの一部をコードするセンスヌクレオチド配列を含むことを特徴とし、前記一本鎖ＤＮＡ分子が、前記一本鎖ＤＮＡの一部と相補的塩基対合することによってアニールして、ステムドメインおよびループドメインを含む二本鎖ＤＮＡ構造を形成するようにその長さの少なくとも一部にわたって適合されたヌクレオチド配列を含み、前記核酸分子がＮ－アセチルガラクトサミンを含むことと、前記二本鎖阻害性ＲＮＡが天然ヌクレオチドから成ることとを特徴とする、核酸分子が提供されている。
センス鎖およびアンチセンス鎖を含む二本鎖阻害性リボ核酸（ＲＮＡ）分子を含む第一の部分と、
一本鎖デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）分子を含む第二の部分と
を含み、前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記センス鎖の前記３’末端に共有結合されているか、または前記一本鎖ＤＮＡ分子の前記５’末端が、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子の前記アンチセンス鎖の３’に共有結合されていて、二本鎖阻害性ＲＮＡが、ヒトＭＡＳＰ－２遺伝子またはその多型配列バリアントの一部をコードするセンスヌクレオチド配列を含むことを特徴とし、前記一本鎖ＤＮＡ分子が、前記一本鎖ＤＮＡの一部と相補的塩基対合することによってアニールして、ステムドメインおよびループドメインを含む二本鎖ＤＮＡ構造を形成するようにその長さの少なくとも一部にわたって適合されたヌクレオチド配列を含み、前記核酸分子がＮ－アセチルガラクトサミンを含むことと、前記二本鎖阻害性ＲＮＡが天然ヌクレオチドから成ることとを特徴とする、核酸分子が提供されている。
【0054】
多型配列バリアントは、参照配列から１、２または３つ以上のヌクレオチドで変化する。
【0055】
補体系は、動物の自然免疫の一部である。補体タンパク質は、自然免疫応答の一部である。それらは、異なる経路（古典的経路、レクチン経路、代替経路）を活性化することによって、オプソニン化（外来病原体のコーティング）、膜攻撃複合体の開始、および炎症の増強などの様々な生物学的機能を実行する。補体経路は、Ｃ３の分割または活性化を引き起こしてＣ３ａまたはＣ３ｂを産生する共通経路に収束し、結果としてＣ５ａおよびＣ５ｂなどの様々な生理活性分子が形成される。補体系の過剰活性化は、ウイルスまたは病原菌などの病原性微生物に応答して敗血症などにおいて重篤な臨床転帰を有することができる。
【0056】
本発明の好ましい一実施形態において、前記一本鎖ＤＮＡ分子の５’末端は、二本鎖阻害性ＲＮＡ分子のセンス鎖の３’末端に共有結合されている。
【0057】
本発明の代替的な一実施形態において、前記一本鎖ＤＮＡ分子の５’末端は、二本鎖阻害性ＲＮＡ分子のアンチセンス鎖の３’末端に共有結合されている。
【0058】
本発明の好ましい一実施形態において、前記ループ部分は、ヌクレオチド配列ＧＮＡまたはＧＮＮＡを含む領域を含み、各Ｎは独立してグアニン（Ｇ）、チミジン（Ｔ）、アデニン（Ａ）、またはシトシン（Ｃ）を表す。
【0059】
本発明の好ましい一実施形態において、前記ループドメインは、ＧおよびＣヌクレオチド塩基を含む。
【0060】
本発明の代替的な一実施形態において、前記ループドメインは、ヌクレオチド配列ＧＣＧＡＡＧＣを含む。
【0061】
本発明のさらに好ましい一実施形態において、前記一本鎖ＤＮＡ分子は、ヌクレオチド配列ＴＣＡＣＣＴＣＡＴＣＣＣＧＣＧＡＡＧＣ（配列番号１）を含む。
【0062】
本発明の代替的な好ましい一実施形態において、前記一本鎖ＤＮＡ分子は、ヌクレオチド配列５’ ＣＧＡＡＧＣＧＣＣＣＴＡＣＴＣＣＡＣＴ ３’を含む。
【0063】
本発明の好ましい一実施形態において、前記ステムドメインは、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、または少なくとも１２ヌクレオチド長を含む。
【0064】
阻害性ＲＮＡ分子は、化学修飾を必要としない天然ヌクレオチド塩基を含むか、またはそれらから成る。さらに、本発明の一部の実施形態において、湾曲ＤＮＡ分子は、前記二本鎖阻害性ＲＮＡのセンス鎖の３’末端に結合されていて、アンチセンス鎖には、少なくとも２ヌクレオチド塩基オーバーハング配列が任意選択的に提供されている。２ヌクレオチドオーバーハング配列は、標的によってコードされたヌクレオチドに対応することができるか、または非コードである。２ヌクレオチドオーバーハングは、任意の配列の２つのヌクレオチド、例えばＵＵ、ＡＡ、ＵＡ、ＡＵ、ＧＧ、ＣＣ、ＧＣ、ＣＧ、ＵＧ、ＧＵ、ＵＣ、ＣＵ、ｄＴｄＴなど、任意の順番とすることができる。
【0065】
本発明の好ましい一実施形態において、前記阻害性ＲＮＡ分子は、デオキシチミジンジヌクレオチド（ｄＴｄＴ）を含むか、またはそれから成る２ヌクレオチドオーバーハングを含む。
【0066】
本発明の好ましい一実施形態において、前記ｄＴｄＴオーバーハングは、前記アンチセンス鎖の５’末端に位置付けられている。
【0067】
本発明の代替的な好ましい一実施形態において、前記ｄＴｄＴオーバーハングは、前記アンチセンス鎖の３’末端に位置付けられている。
【0068】
本発明の好ましい一実施形態において、前記ｄＴｄＴオーバーハングは、前記センス鎖の５’末端に位置付けられている。
【0069】
本発明の代替的な好ましい一実施形態において、前記ｄＴｄＴオーバーハングは、前記センス鎖の３’末端に位置付けられている。
【0070】
本発明の好ましい一実施形態において、前記センス鎖および／または前記アンチセンス鎖は、ヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を含む。
【0071】
本発明の好ましい一実施形態において、前記センス鎖は、ヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を含む。
【0072】
好ましくは、前記センス鎖の５’および／または３’末端の２つのヌクレオチドは、２つのヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を含む。
【0073】
本発明の好ましい一実施形態において、前記アンチセンス鎖は、ヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を含む。
【0074】
好ましくは、前記アンチセンス鎖の５’および／または３’末端の２つのヌクレオチドは、２つのヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を含む。
【0075】
本発明の代替的な好ましい一実施形態において、前記一本鎖ＤＮＡ分子は、一つ以上のヌクレオチド間ホスホロチオエート結合を含む。
【0076】
本発明の好ましい一実施形態において、前記核酸分子は、ビニルホスホネート修飾を含む。
【0077】
本発明の好ましい一実施形態において、前記ビニルホスホネート修飾は、前記センスＲＮＡ鎖の５’末端リン酸塩に対するものである。
【0078】
本発明の好ましい一実施形態において、前記ビニルホスホネート修飾は、前記アンチセンスＲＮＡ鎖の５’末端リン酸塩に対するものである。
【0079】
本発明の好ましい一実施形態において、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、長さが１５～４０個の近接しているヌクレオチドを含む。
【0080】
本発明の好ましい一実施形態において、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、長さが少なくとも１９個の近接しているヌクレオチドを含む。
【0081】
本発明の好ましい一実施形態において、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、長さが少なくとも２１個の近接しているヌクレオチドを含む。
【0082】
本発明の好ましい一実施形態において、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、長さが２１～２３個の近接しているヌクレオチドを含む。
【0083】
本発明の好ましい一実施形態において、Ｎ－アセチルガラクトサミンは、一価、二価、三価、または四価である。
【0084】
本発明のさらなる一実施形態において、Ｎ－アセチルガラクトサミンは、前記阻害性ＲＮＡのアンチセンス部分または前記阻害性ＲＮＡのセンス部分のいずれかに結合されている。
【0085】
好ましくは、Ｎ－アセチルガラクトサミンは、前記センスＲＮＡの５’末端に結合されている。
【0086】
本発明の代替的な一実施形態において、Ｎ－アセチルガラクトサミンは、前記センスＲＮＡの３’末端に結合されている。
【0087】
本発明の代替的な好ましい一実施形態において、前記Ｎ－アセチルガラクトサミンは、前記アンチセンスＲＮＡの３’末端に結合されている。
【0088】
本発明の好ましい一実施形態において、前記核酸分子は、以下の構造を含む分子に共有結合されている：
【化5】
【0089】
本発明の代替的な一実施形態において、前記核酸分子は、以下の構造を含む分子に共有結合されている：
【化6】
【0090】
本発明の代替的な一実施形態において、前記核酸分子は、以下の構造を含む分子に共有結合されている：
【化7】
【0091】
本発明の代替的な一実施形態において、前記核酸分子は、以下の構造を含む分子に共有結合されている：
【化8】
【0092】
本発明の好ましい一実施形態において、前記Ｃ５二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、配列番号６７に記載されたセンスヌクレオチド配列の１９～２３個の近接しているヌクレオチドを含むか、またはそれらから成る。
【0093】
本発明の一実施形態において、前記Ｃ５二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、配列番号１１９、１２０、１２１、１２２、１２３、１２４、１２５、１２６、１２７、１２８、１２９、１３０、１３１、１３２、１３３、１３４、１３５、１３６、１３７、１３８から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む。
【0094】
本発明の一実施形態において、前記Ｃ５二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、配列番号１０９、１１０、１１１、１１２、１１３、１１４、１１５、１１６、１１７、１１８から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む。
【0095】
本発明の一実施形態において、前記Ｃ５二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、配列番号１３９、１４０、１４１、１４２、１４３、１４４、１４５、１４６、１４７、１４８から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む。
【0096】
本発明の一実施形態において、前記Ｃ５二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、配列番号３１、３２、３３、３４、３５、３６、３７、３８、３９、４０から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む。
【0097】
本発明の代替的な一実施形態において、前記Ｃ５二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、配列番号２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む。
【0098】
本発明の好ましい一実施形態において、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、配列番号１５１～６５０から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む。
【0099】
本発明の好ましい一実施形態において、前記Ｃ３二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、配列番号６６に記載されたセンスヌクレオチド配列の１９～２３個の近接しているヌクレオチドを含むか、またはそれらから成る。
【0100】
本発明の一実施形態において、前記Ｃ３二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、配列番号７９、８０、８１、８２、８３、８４、８５、８６、８７、８８、８９、９０、９１、９２、９３、９４、９５、９６、９７、９８、９９から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む。
【0101】
本発明の一実施形態において、前記Ｃ３二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、配列番号６９、７０、７１、７２、７３、７４、７５、７６、７７、７８から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む。
【0102】
本発明の一実施形態において、前記Ｃ３二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、配列番号１００、１０１、１０２、１０３、１０４、１０５、１０６、１０７、１０８から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む。
【0103】
本発明の一実施形態において、前記Ｃ３二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、配列番号１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む。
【0104】
本発明の代替的な一実施形態において、前記Ｃ３二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、６１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む。
【0105】
本発明の好ましい一実施形態において、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、配列番号６５１～１１５０から成る群から選択されるヌクレオチド配列を含む。
【0106】
本発明の好ましい一実施形態において、前記Ｃ３二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、表１に開示の通り、センス対およびアンチセンス対を含む。
【0107】
本発明の好ましい一実施形態において、前記二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、配列番号６７（ＭＡＳＰ２）に記載されたセンスヌクレオチド配列の１９～２３個の近接しているヌクレオチドを含むか、またはそれらから成る。
【0108】
本発明の一実施形態において、前記ＭＡＳＰ２二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、５１、５２、５３、５４、５５、５６、５７、５８、５９または６０から成る群から選択されるアンチセンスヌクレオチド配列を含む。
【0109】
本発明の代替的な一実施形態において、前記ＭＡＳＰ２二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、配列番号４１、４２、４３、４４、４５、４６、４７、４８、４９、５０から成る群から選択されるセンスヌクレオチド配列を含む。
【0110】
本発明の好ましい一実施形態において、前記ＭＡＳＰ－２二本鎖阻害性ＲＮＡ分子は、表３に開示の通り、センス対およびアンチセンス対を含む。
【0111】
本発明のさらなる一態様によると、本発明による少なくとも一つの核酸分子を含む医薬組成物が提供されている。
【0112】
本発明の好ましい一実施形態において、前記組成物は、薬学的担体および／または賦形剤をさらに含む。
【0113】
投与される時、本発明の組成物は、薬学的に許容可能な調製物で投与される。こうした調製物は、薬学的に許容可能な濃度の塩、緩衝剤、防腐剤、適合する担体、および任意選択でコレステロール降下剤などの他の治療剤を日常的に含有してもよく、これは本発明による核酸分子とは別個に投与されてもよく、または組み合わせが適合する場合、組み合わせた調製物で投与されてもよい。
【0114】
本発明による核酸と、他の異なる治療剤との組み合わせは、同時、連続、または時間的に別個の用量として投与される。
【0115】
本発明の治療薬は、注射を含む任意の従来的経路によって、または経時的な段階的注入によって投与されることができる。投与は、例えば経口投与、静脈内投与、腹腔内投与、筋肉内投与、腔内投与、皮下投与、経皮投与または経上皮投与であってもよい。
【0116】
本発明の組成物は、有効量で投与される。「有効量」は、単独で、またはさらなる用量とともに、所望の応答を生成する発現ベクターの量である。疾患（心臓血管系の疾患または感染など）を治療する場合、所望の応答は、疾患の進行を阻害するか、または反転させることである。これは、疾患の進行を一時的に遅らせることのみを含みうるが、より好ましくは、疾患の進行を永久的に停止することを含む。これはルーチンの方法によって監視されることができる。
【0117】
そのような量は、当然ながら、治療される特定の状態、状態の重症度、年齢、身体状態、サイズ・体重、治療期間、併用療法の性質（存在する場合）、特定の投与経路を含む個々の患者パラメータ、ならびに医療従事者の知識および専門技能内の類似の因子に依存する。これらの因子は当業者に周知であり、ルーチンの実験のみで対処されることができる。個々の成分またはその組み合わせの最大用量、すなわち健全な医学的判断による最大安全用量を使用することが概して好ましい。しかしながら、当業者であれば、医学的理由、心理的理由、または事実上あらゆる他の理由により、患者がより低い用量または耐用量を主張しうることを理解するであろう。
【0118】
前述の方法で使用される医薬組成物は好ましくは、滅菌されていて、患者への投与に好適な重量または体積の単位で所望の応答を生成するための本発明による有効量の核酸分子を含有する。応答は、例えば心血管疾患の退縮および疾患症状の減少などを決定することによって測定されることができる。
【0119】
対象に投与される本発明による核酸分子の用量は、異なるパラメータに従って、特に、使用される投与モードおよび対象の状態に従って選択されることができる。他の因子には、望ましい治療期間が含まれる。対象における応答が、適用される初回用量では不十分である場合、より高い用量（または異なるより局所的な送達経路による効果的により高い用量）が、患者の耐性が許容する範囲で採用されうる。本発明による核酸の検出方法は、治療を必要とする対象に対する適切な用量の決定を容易にすることが明らかであろう。
【0120】
一般に、本明細書に開示の核酸分子の０．１ｍｇ／ｋｇ～２５ｍｇ／ｋｇの用量は概して、標準的な手順に従って製剤化され、投与される。好ましくは、用量は０．１ｍｇ／ｋｇ～５ｍｇ／ｋｇまたは０．５ｍｇ／ｋｇ～５ｍｇ／ｋｇの範囲とすることができる。投与量、注射のスケジュール、注射部位、投与モード、同等物が前述とは異なる、組成物の投与のための他のプロトコルは当業者に周知であろう。ヒト以外の哺乳動物への組成物の投与（例えば、試験目的または獣医学治療目的のための）は、上記と実質的に同じ条件下で実施される。本明細書で使用される対象は、哺乳類、好ましくはヒトであり、非ヒト霊長類、ウシ、ウマ、ブタ、ヒツジ、ヤギ、イヌ、ネコ、または齧歯類を含む。
【0121】
投与される時、本発明の医薬製剤は、薬学的に許容可能な量で、かつ薬学的に許容可能な組成物で適用される。「薬学的に許容可能な」という用語は、活性成分の生物活性の有効性に干渉しない非毒性物質を意味する。こうした調製物は、塩、緩衝剤、防腐剤、適合担体、および任意選択的に他の治療剤（例えば、スタチン）を定常的に含有してもよい。医薬で使用される時、塩は薬学的に許容可能であるべきであるが、薬学的に許容されない塩は好都合なことに、その薬学的に許容可能な塩を調製するために使用されてもよく、本発明の範囲から除外されない。そのような薬理学的および薬学的に許容可能な塩には、限定されないが、以下の酸から調製されるものを含む：塩酸、臭化水素酸、硫酸、硝酸、リン酸、マレイン酸、酢酸、サリチル酸、クエン酸、ギ酸、マロン酸、コハク酸、同等物。また、薬学的に許容可能な塩は、ナトリウム塩、カリウム塩、またはカルシウム塩などのアルカリ金属塩またはアルカリ土類塩として調製されることができる。
【0122】
組成物は、所望により、薬学的に許容可能な担体と組み合わせられてもよい。本明細書で使用される「医薬的に許容可能な担体」という用語は、ヒトへの投与に適している、一つ以上の適合する固体もしくは液体のフィラー、希釈剤、またはカプセル剤を意味する。この文脈における用語「医薬的に許容可能な担体」とは、天然または合成の有機または無機の成分を指し、それと活性成分とを組み合わせて、例えば溶解性および／または安定性を促進する。本医薬組成物の構成要素はまた、所望の医薬的有効性を実質的に損なうものになる相互作用がないような様式で、本発明の分子と、および互いに混ざり合うことができる。
【0123】
医薬組成物は、塩中の酢酸、塩中のクエン酸、塩中のホウ酸、塩中のリン酸を含む、好適な緩衝剤を含有しうる。医薬組成物はまた任意選択的に、適切な防腐剤を含有してもよい。
【0124】
医薬組成物は好都合なことに、単位剤形で供されてもよく、薬学の分野で周知のいずれかの方法によって調製されてもよい。すべての方法は、活性薬剤を一つ以上の副成分を構成する担体と会合させる工程を含む。一般に、本組成物は、活性化合物を液体担体、または微細に分割された固体担体、またはその両方と均一かつ密接に会合させ、その後、必要に応じて生成物を成形することによって調製される。経口投与に適した組成物は、カプセル、錠剤、トローチなどの個別の単位として供され、それぞれが所定量の活性化合物を含有する。
【0125】
非経口投与に適した組成物は、核酸の無菌の水性または非水性調製物を含み、これはレシピエントの血液と等張であることが好ましい。この調製物は、好適な分散剤または湿潤剤および懸濁剤を使用して、周知の方法に従って製剤化されうる。滅菌注射用調製物はまた、例えば１，３－ブタンジオール中の溶液として、非毒性の非経口的に許容可能な希釈剤または溶媒中の滅菌注射用溶液または懸濁液でありうる。採用されうる許容可能な溶媒としては、水、リンゲル溶液、等張性塩化ナトリウム溶液が挙げられる。加えて、滅菌固定油は従来的に、溶媒または懸濁媒体として採用される。この目的のために、合成モノグリセリドまたはジグリセリドを含む、任意の無刺激性固定油が採用されうる。加えて、オレイン酸などの脂肪酸が、注射剤の調製に使用されうる。経口、皮下、静脈内、筋肉内などの投与に好適な担体製剤は、「Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ」（Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏ．、ペンシルベニア州イーストン）において見つけることができる。
【0126】
本発明の一態様によると、本発明による核酸分子または組成物を対象に投与することを含む、肝細胞における遺伝子の発現を阻害する方法が提供されている。
【0127】
本発明のさらなる態様によると、有効量の核酸または核酸を含む組成物を対象に投与することを含む、本発明による核酸分子または組成物を肝細胞に送達する方法が提供されている。
【0128】
本発明の好ましい一方法において、前記対象はヒトの対象である。
【0129】
本発明の好ましい一方法において、前記細胞は肝細胞である。
【0130】
本発明の好ましい一方法において、前記細胞は肝がん細胞である。好ましくは、前記肝がん細胞は、原発性肝がん細胞である。あるいは、前記肝がん細胞は、二次肝がん細胞である。
【0131】
本明細書で使用される「肝がん」という用語は、自律的成長の能力、すなわち急速に増殖する細胞増殖によって特徴付けられる異常な状態または病状を有する細胞を指す。この用語は、転移性肝がんを含む、すべてのタイプの肝がん性増殖または腫瘍形成プロセスを含むことが意図される。
【0132】
本発明の代替的な一方法において、前記細胞はウイルス感染した肝細胞である。
【0133】
本発明の好ましい一方法において、前記ウイルス感染した肝細胞は、Ａ型肝炎、Ｂ型肝炎、Ｃ型肝炎、Ｄ型肝炎、またはＥ型肝炎に感染した肝細胞である。
【0134】
本発明のさらなる一態様によると、補体成分５の阻害から利益を得ることになる疾患または病状の治療において使用する、本発明による核酸分子または医薬組成物の有効量が提供されている。
【0135】
本発明のさらなる一態様によると、補体成分３の阻害から利益を得ることになる疾患または病状の治療において使用する、本発明による核酸分子または医薬組成物の有効量が提供されている。
【0136】
本発明のさらなる一態様によると、ＭＡＳＰ２の阻害から利益を得ることになる疾患または病状の治療において使用する、本発明による核酸分子または医薬組成物の有効量が提供されている。
【0137】
本発明の好ましい一実施形態において、前記病状は微生物感染である。
【0138】
本発明の好ましい一実施形態において、前記微生物感染はウイルス感染の結果である。
【0139】
本発明の代替的な一実施形態において、前記微生物感染は細菌感染の結果である。
【0140】
本発明の好ましい一実施形態において、前記疾患または病状は、炎症性の疾患または病状である。
【0141】
本発明の好ましい一実施形態において、前記炎症性の疾患または病状は、関節炎、腎炎、血管炎から成る群から選択される。
【0142】
本発明の好ましい一実施形態において、前記疾患または病状は、自己免疫性の疾患または症状である。
【0143】
本発明の好ましい一実施形態において、前記疾患または病状は敗血症をもたらす。
【0144】
本発明の好ましい一実施形態において、前記疾患または病状は急性肺損傷である。
【0145】
本発明の好ましい一実施形態において、前記疾患または病状は、急性呼吸促迫症候群である。
【0146】
本明細書の説明および特許請求の範囲全体を通して、「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅ）」および「含有する（ｃｏｎｔａｉｎ）」という単語、ならびに当該単語の変化形、例えば「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」および「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ）」は、「含むが、それらに限定されない」ことを意味し、他の部分、添加剤、成分、整数、または工程を除外することを意図していない（かつ除外しない）。
【0147】
本明細書の説明および特許請求の範囲の全体を通して、文脈によって別段の解釈が要求されない限り、単数形は複数形を包含する。特に、不定冠詞が使用される場合、明細書は、文脈によって別段の解釈を必要としない限り、複数性だけでなく単一性も企図するものとして理解されるべきである。
【0148】
本発明の態様、実施形態、または実施例に関連して説明される特徴、完全体、特性、化合物、化学的部分、または基は、それらと不適合でない限り、本明細書に記載の任意の他の態様、実施形態、または実施例に適用可能であると理解されるべきである。
【0149】
ここで、本発明の一実施形態を、以下の図を参照して、単に例として説明する。
【図面の簡単な説明】
【0150】
【図1(a)】対照のｓｉＲＮＡ構築物と比較したＧａｌＮＡｃ抱合型湾曲抗マウスＡｐｏＢ ｓｉＲＮＡのインビボ活性を示すグラフ。（ａ）５匹の成体オス野生型Ｃ５７ＢＬ／６マウスからの血漿ＡｐｏＢレベル（マイクログラム／ｍｌ）を、ＧａｌＮＡｃ抱合型ＡｐｏＢ湾曲ｓｉＲＮＡ（一つの投与群）の投与後９６時間測定し、生理食塩水を投与した対照投与群と比較した。対応のある両側Ｔ検定アルゴリズムを使用して統計解析を適用した。結果は、ＧａｌＮＡｃ抱合型湾曲ｓｉＲＮＡで処置されたマウスの平均血漿ＡｐｏＢレベルが、対照と比較して実質的に減少したことを示す。しかし、有意性が不足し（ｐ＝０．１１）、最も可能性の高い理由は、サンプルサイズが小さいことと、対照動物間でのＡｐｏＢレベルのばらつきが小さいことである。
【図1(b)】対照のｓｉＲＮＡ構築物と比較したＧａｌＮＡｃ抱合型湾曲抗マウスＡｐｏＢ ｓｉＲＮＡのインビボ活性を示すグラフ。（ｂ）５匹の成体オス野生型Ｃ５７ＢＬ／６マウスからの血漿ＡｐｏＢレベル（マイクログラム／ｍｌ）を、ＧａｌＮＡｃ抱合型ＡｐｏＢ湾曲ｓｉＲＮＡ（一つの投与群）の投与後９６時間測定し、ｓｉＲＮＡ構築物非抱合型（ＧａｌＮＡｃを含まない）ＡｐｏＢ湾曲ｓｉＲＮＡを投与した対照投与群と比較した。対応のある両側Ｔ検定アルゴリズムを使用して統計解析を適用した。結果は、このＧａｌＮＡｃ抱合型湾曲ｓｉＲＮＡ投与群では、湾曲のある対照の非抱合型ｓｉＲＮＡと比較して、血漿ＡｐｏＢレベルの著しい減少を示す（Ｐ＝０．００４３５８３２）。
【発明を実施するための形態】
【0151】
材料および方法
非抱合型および抱合型のＡｐｏＢ湾曲ｓｉＲＮＡを、それぞれ静脈内（ＩＶ）経路および皮下（ＳＣ）経路により投与し、相対的な血漿および組織の曝露を調べた。用量選択の根拠は、科学文献に発表された以下の情報に基づく：
非抱合型および抱合型のＡｐｏＢ湾曲ｓｉＲＮＡを、それぞれ静脈内（ＩＶ）経路および皮下（ＳＣ）経路により投与し、相対的な血漿および組織の曝露を調べた。用量選択の根拠は、科学文献に発表された以下の情報に基づく：
【0152】
ＧａｌＮＡｃ抱合型ｓｉＲＮＡは、５ｍｇ／ｋｇで皮下投与され、これによって必要なレベルの遺伝子サイレンシングが産生されるものと予想され、ここで構造的に関連するｓｉＲＮＡのＥＤ８０が２．５ｍｇ／ｋｇとして報告されている（Ｓｏｕｔｓｃｈｅｋ ｅｔ ａｌ．， ２００４）。これらの構造的に関連するｓｉＲＮＡは、マウスにおいて最大２５ｍｇ／ｋｇの単回投与まで耐容性を示した（Ｓｏｕｔｓｃｈｅｋ ｅｔ ａｌ．， ２００４）。
【0153】
スポンサーのｓｉＲＮＡの非抱合型は、５０ｍｇ／ｋｇで静脈内投与される。ＳＣ用量と比較して１０倍であるＩＶでの増加は、非抱合型ｓｉＲＮＡが肝臓を標的にする際に有効性が低いためである。さらに、Ｓｏｕｔｓｃｈｅｋ ｅｔ ａｌ （２００４）は、ＳＣ投与と比較して、ＩＶ後の肝臓においてより低いレベルのＲＮＡが測定されることを報告している。皮下沈着物からのｓｉＲＮＡの放出が遅いと、長期間の曝露が生じ、受容体とリガンドの相互作用の可能性が増大し、組織への取り込みが増加すると記載されている。類似の関連ｓｉＲＮＡは、３日間連続で最大５０ｍｇ／ｋｇのＩＶ投与を行ったマウスで良好な耐容性が示された（Ｎａｉｒ ｅｔ ａｌ． ２０１４）。念のため、最初の動物ＩＶの投与との間に１５分間の観察期間を設けて、残りの動物に投与する前に、被験物質が何らかの有害作用を引き起こすかどうかを決定する。
【0154】
マウスは、被験物質の安全性試験において毒性学種の一つとして使用されているため、最適な種である。マウスはまた、湾曲ｓｉＲＮＡ調製物（ＡｐｏＢ）の治療標的に関連して、ヒトと非常に類似した代謝生理を有する。かなりの量の利用可能な公表済みデータがあり、それらは、この種で生成されたデータのヒトへの有意性を評価するために規制当局にとって許容可能なデータである。
【0155】
動物
２０匹の健康なオスの動物を提供するのに十分なＣ５７ＢＬ／６マウスを、承認された供給源から取得した（ＡｐｏＢパイロット試験）。動物は、投与時に２０～３０ｇの目標体重範囲内である。マウスは、テールマーキングによって一意に番号付けされる。番号はランダムに割り振られる。ケージは、試験番号および動物番号を含む情報を提供するカードによってコード化される。試験室は、部屋番号および試験番号を含む情報を提供するカードによって識別される。すべての動物は受領時に、不健康の外的兆候がないか調べた。不健康な動物は試験から除外された。動物を最低５日間、環境に順応させた。実施可能な場合、研究の科学的完全性を損ねることなく、可能な限り動物に手を触れた。試験への適合性を確実にするために、投与開始前に保健検査を実施した。
２０匹の健康なオスの動物を提供するのに十分なＣ５７ＢＬ／６マウスを、承認された供給源から取得した（ＡｐｏＢパイロット試験）。動物は、投与時に２０～３０ｇの目標体重範囲内である。マウスは、テールマーキングによって一意に番号付けされる。番号はランダムに割り振られる。ケージは、試験番号および動物番号を含む情報を提供するカードによってコード化される。試験室は、部屋番号および試験番号を含む情報を提供するカードによって識別される。すべての動物は受領時に、不健康の外的兆候がないか調べた。不健康な動物は試験から除外された。動物を最低５日間、環境に順応させた。実施可能な場合、研究の科学的完全性を損ねることなく、可能な限り動物に手を触れた。試験への適合性を確実にするために、投与開始前に保健検査を実施した。
【0156】
マウスは、室温２０～２４℃のサーモスタット制御された部屋で維持され、相対湿度を４５～６５％とし、毎日（公称１２時間）蛍光灯に当てた。温度および相対湿度は、毎日記録される。施設は、１時間に最低１５回の空気交換を行うように設計されている。代謝ケージ内または外科手術からの回復時を除き、１ケージ当たり最大５匹のマウスを性別に応じて、適切な寝具を含む適切な固形床ケージ内に収容した。
【0157】
ケージは、「Ｃｏｄｅ ｏｆ Ｐｒａｃｔｉｃｅ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｈｏｕｓｉｎｇ ａｎｄ Ｃａｒｅ ｏｆ Ａｎｉｍａｌｓ Ｂｒｅｄ， Ｓｕｐｐｌｉｅｄ ｏｒ Ｕｓｅｄ ｆｏｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｕｒｐｏｓｅｓ」（Ｈｏｍｅ Ｏｆｆｉｃｅ， Ｌｏｎｄｏｎ， ２０１４）に適合する。動物の環境と保健の両方を充実させるために、木製（アスペン）のチューブロックとポリカーボネートのトンネルが提供された。サプライヤーは、使用したブロックのバッチごとに分析証明書を提出した。すべての動物は、５ＬＦ２ ＥＵ齧歯類用飼料１４％への自由なアクセスが許可される。飼料サプライヤーは、使用した各バッチについて、特定の汚染物の濃度と一部の栄養素の分析を行った。すべての動物は、ケージに取り付けられたボトルからの水道水に自由にアクセスすることが可能であった。水道水給水の定期的な分析が実施される。
【0158】
本試験の一環として、生きた動物に対して実施されるすべての手順は、英国の国内法、１９８６年動物（科学的手順）法の規定の対象になる。
【0159】
作業日の始めと終わりに、動物が健康であることを確認するために、すべての動物を検査した。不健康の顕著な徴候を示す動物はすべて隔離した。瀕死の動物、または関連する英国内務省のライセンスによって課せられた重症度の限度を超える危険にさらされている動物は殺処分した。
【0160】
インビボＡｐｏＢ ｓｉＲＮＡ構築物
マウスにおけるＡｐｏ Ｂのインビボでのサイレンシングについては、以下の配列を使用した（ＣＡＣＵＧＡＡＵＡＣＣＡＡＵ）。これは、類似の配列が以前にインビボで成功していたためである（Ｓｏｕｔｓｈｅｋ ｅｔ ａｌ Ｎａｔｕｒｅ ２００４； ４３２：１７３－１７８）。
マウスにおけるＡｐｏ Ｂのインビボでのサイレンシングについては、以下の配列を使用した（ＣＡＣＵＧＡＡＵＡＣＣＡＡＵ）。これは、類似の配列が以前にインビボで成功していたためである（Ｓｏｕｔｓｈｅｋ ｅｔ ａｌ Ｎａｔｕｒｅ ２００４； ４３２：１７３－１７８）。
【0161】
湾曲ｓｉＲＮＡ ２１ｍｅｒ－ｄｓＲＮＡ構築物（１）：抗マウスＡｐｏＢ－ＧａｌＮＡｃ
センス鎖：
５’－ＧＵＣＡＵＣＡＣＡＣＵＧＡＡＵＡＣＣＡＡＵ－ｄ（ｔｃａｃｃｔｃａｔｃｃｃｇｃｇａａｇｃ）－３’－［Ｔｒｉ－ＧａｌＮＡｃ］（配列番号６２）
アンチセンス鎖：
５’－ＡＵＵＧＧＵＡＵＵＣＡＧＵＧＵＧＡＵＧＡＣ－３’（配列番号６３）
センス鎖：
５’－ＧＵＣＡＵＣＡＣＡＣＵＧＡＡＵＡＣＣＡＡＵ－ｄ（ｔｃａｃｃｔｃａｔｃｃｃｇｃｇａａｇｃ）－３’－［Ｔｒｉ－ＧａｌＮＡｃ］（配列番号６２）
アンチセンス鎖：
５’－ＡＵＵＧＧＵＡＵＵＣＡＧＵＧＵＧＡＵＧＡＣ－３’（配列番号６３）
【0162】
最終ＧａｌＮＡｃ抱合体の構造：
【化9】
【0163】
湾曲ｓｉＲＮＡ １９ｍｅｒ ｄｓＲＮＡ構築物（２）：非抱合型抗マウスＡｐｏＢ
センス鎖（パッセンジャー）
５’－ＧＵＣＡＵＣＡＣＡＣＵＧＡＡＵＡＣＣＡＡＵ－ｄ（ｔｃａｃｃｔｃａｔｃｃｃｇｃｇａａｇｃ）－３（配列番号６４）
アンチセンス鎖（ガイド）
５’－ＡＵＵＧＧＵＡＵＵＣＡＧＵＧＵＧＡＵＧＡＣ－３（配列番号６５）
センス鎖（パッセンジャー）
５’－ＧＵＣＡＵＣＡＣＡＣＵＧＡＡＵＡＣＣＡＡＵ－ｄ（ｔｃａｃｃｔｃａｔｃｃｃｇｃｇａａｇｃ）－３（配列番号６４）
アンチセンス鎖（ガイド）
５’－ＡＵＵＧＧＵＡＵＵＣＡＧＵＧＵＧＡＵＧＡＣ－３（配列番号６５）
【0164】
製剤の調製
被験物質を０．９％生理食塩水で希釈し、ＡｐｏＢ湾曲ｓｉＲＮＡ ＧａｌＮＡｃ－非抱合型および抱合型の静脈内投与および皮下投与用にそれぞれ２５ｍｇ／ｍＬおよび０．６ｍｇ／ｍＬの濃度にした。被験物質が完全に溶解するまで、製剤を必要に応じて穏やかにボルテックスした。
ＰＣＳＫ９については、凍結乾燥ｓｉＲＮＡ化合物を溶解し、その後、ヌクレアーゼを含まないＰＢＳ（中性ｐＨ）中で希釈した。
被験物質を０．９％生理食塩水で希釈し、ＡｐｏＢ湾曲ｓｉＲＮＡ ＧａｌＮＡｃ－非抱合型および抱合型の静脈内投与および皮下投与用にそれぞれ２５ｍｇ／ｍＬおよび０．６ｍｇ／ｍＬの濃度にした。被験物質が完全に溶解するまで、製剤を必要に応じて穏やかにボルテックスした。
ＰＣＳＫ９については、凍結乾燥ｓｉＲＮＡ化合物を溶解し、その後、ヌクレアーゼを含まないＰＢＳ（中性ｐＨ）中で希釈した。
【0165】
得られた製剤を、目視検査のみによって評価し、それに応じて以下の通り分類した：
（１） 透明な溶液
（２） 濁った懸濁液、粒子は見えない
（３） 可視粒子
（１） 透明な溶液
（２） 濁った懸濁液、粒子は見えない
（３） 可視粒子
【0166】
使用後、製剤を公称で２～８℃で冷蔵保存した。長期保存のために、製剤を－２０℃または－８０℃で保存した。
【0167】
投薬の詳細
各動物は、ＡｐｏＢ湾曲ｓｉＲＮＡ ＧａｌＮＡｃ－非抱合体の単回静脈内投与、またはＡｐｏＢ湾曲ｓｉＲＮＡ ＧａｌＮＡｃ－抱合体の単回皮下投与のいずれかを受けた。静脈内用量は、２ｍＬ／ｋｇの体積で外側尾静脈にボーラスとして投与された。皮下用量は、５ｍＬ／ｋｇの体積で皮下腔に投与された。
ＰＣＳＫ９の被験物質については、各動物は５ｍｌ／ｋｇの投与量で単回皮下注射を受けた。
各動物は、ＡｐｏＢ湾曲ｓｉＲＮＡ ＧａｌＮＡｃ－非抱合体の単回静脈内投与、またはＡｐｏＢ湾曲ｓｉＲＮＡ ＧａｌＮＡｃ－抱合体の単回皮下投与のいずれかを受けた。静脈内用量は、２ｍＬ／ｋｇの体積で外側尾静脈にボーラスとして投与された。皮下用量は、５ｍＬ／ｋｇの体積で皮下腔に投与された。
ＰＣＳＫ９の被験物質については、各動物は５ｍｌ／ｋｇの投与量で単回皮下注射を受けた。
【0168】
体重
少なくとも、体重は到着翌日および用量投与前に記録された。必要に応じて、追加の決定を行った。
少なくとも、体重は到着翌日および用量投与前に記録された。必要に応じて、追加の決定を行った。
【0169】
試料の保存
試料は、必要に応じて試験番号、試料タイプ、用量群、動物番号／Ｄｅｂｒａコード、（公称）サンプリング時間、保存条件を含む情報で一意にラベル付けされた。試料は、－５０℃未満の温度で保存された。
試料は、必要に応じて試験番号、試料タイプ、用量群、動物番号／Ｄｅｂｒａコード、（公称）サンプリング時間、保存条件を含む情報で一意にラベル付けされた。試料は、－５０℃未満の温度で保存された。
【0170】
薬物動態試験
用量群の指定
用量群の指定
【0171】
動物は以下の通りの用量群に割り当てられる。
【0172】
ＰＣＳＫ９
ヌクレアーゼを含まないＰＢＳ（中性ｐＨ）に被験物質を溶解し、０．４ｍｇ／ｍＬまたは２ｍｇ／ｍＬの濃度にして、それぞれ２ｍｇ／ｋｇおよび１０ｍｇ／ｋｇの用量を得て、それらを５ｍＬ／ｋｇの投与量で皮下投与した。
ヌクレアーゼを含まないＰＢＳ（中性ｐＨ）に被験物質を溶解し、０．４ｍｇ／ｍＬまたは２ｍｇ／ｍＬの濃度にして、それぞれ２ｍｇ／ｋｇおよび１０ｍｇ／ｋｇの用量を得て、それらを５ｍＬ／ｋｇの投与量で皮下投与した。
【0173】
ＰＣＳＫ９について、各動物は、ＧａｌＮＡｃ抱合型ＰＣＳＫ９湾曲ｓｉＲＮＡ、または非湾曲ＧａｌＮＡｃ抱合型ＰＣＳＫ９のいずれかを単回皮下投与され、２日目（４８時間）または７日目（１６８時間）のいずれかで犠牲にして、肝臓ＰＣＳＫ９ ｍＲＮＡサイレンシングを決定した。試料は、終結時に尾出血または心臓穿刺のいずれかを介して得られる。
【0174】
ＰＣＳＫ９湾曲ｓｉＲＮＡのそれぞれについて
１０匹のマウス ＳＣ ＧａｌＮＡｃ抱合型ＰＣＳＫ９湾曲ｓｉＲＮＡ、２ｍｇ／ｋｇ
１０匹のマウス ＳＣ ＧａｌＮＡｃ抱合型ＰＣＳＫ９湾曲ｓｉＲＮＡ、１０ｍｇ／ｋｇ
１０匹のマウス ＳＣ ＧａｌＮＡｃ抱合型ＰＣＳＫ９「非湾曲」ｓｉＲＮＡ、２ｍｇ／ｋｇ
１０匹のマウス ＳＣ ＧａｌＮＡｃ抱合型ＰＣＳＫ９「非湾曲」ｓｉＲＮＡ、１０ｍｇ／ｋｇ
１０匹のマウス ＳＣ ＰＢＳ対照
１０匹のマウス ＳＣ ＧａｌＮＡｃ抱合型ＰＣＳＫ９湾曲ｓｉＲＮＡ、２ｍｇ／ｋｇ
１０匹のマウス ＳＣ ＧａｌＮＡｃ抱合型ＰＣＳＫ９湾曲ｓｉＲＮＡ、１０ｍｇ／ｋｇ
１０匹のマウス ＳＣ ＧａｌＮＡｃ抱合型ＰＣＳＫ９「非湾曲」ｓｉＲＮＡ、２ｍｇ／ｋｇ
１０匹のマウス ＳＣ ＧａｌＮＡｃ抱合型ＰＣＳＫ９「非湾曲」ｓｉＲＮＡ、１０ｍｇ／ｋｇ
１０匹のマウス ＳＣ ＰＢＳ対照
【0175】
採血
連続血液サンプル（名目上１００μＬ、体重に依存）を、投与後０、４８、および９６＊時間で尾の切り込みにより収集した。動物にはイソフルランを使用して死なせるように麻酔をかけ、心臓穿刺によって最終試料（名目上０．５ｍＬ）を採取した。
連続血液サンプル（名目上１００μＬ、体重に依存）を、投与後０、４８、および９６＊時間で尾の切り込みにより収集した。動物にはイソフルランを使用して死なせるように麻酔をかけ、心臓穿刺によって最終試料（名目上０．５ｍＬ）を採取した。
【0176】
血液試料をＫ２ＥＤＴＡマイクロキャピラリーチューブ（尾の切り込み）またはＫ２ＥＤＴＡ血液チューブ（心臓穿刺）に採取し、処理されるまで氷上に置かれた。血液を遠心分離（１５００ｇ、１０分、４℃）して、分析用の血漿を生成した。等しい体積の二つのアリコートにバルク血漿を分割した。残留血液細胞は廃棄した。血液試料収集の許容可能な時間範囲を、以下の表に要約する。実際のサンプリング時間を、すべての基質について記録した。
【0177】
予定された採取時間が許容範囲外である場合、実際の採血時間が報告され、その後のＰＫ解析に含められた。
【0178】
血清採取については、血液（＞３００ｕｌ）を周囲温度で血清チューブに入れ、凝固させ、次いで１０，０００ｒｐｍで５分間遠心分離する。
【0179】
動物の運命
動物は最終的な採血の前にペントバルビタールナトリウムの腹腔内注射を介して麻酔をかけ、イソフルラン投与によって死なせた。
動物は最終的な採血の前にペントバルビタールナトリウムの腹腔内注射を介して麻酔をかけ、イソフルラン投与によって死なせた。
【0180】
組織採取
肝臓を全動物（Ａ群～Ｄ群）から除去し、予め秤量された管に入れた。組織試料を、ＵｌｔｒａＴｕｒｒａｘホモジナイゼーションプローブを使用して、５部のＲＮＡｌａｔｅｒを１部の組織にホモジナイズした。以下の組織を、ＡｐｏＢ処置群（Ａ群およびＣ群）の動物から切除し、予め秤量されたポットに入れた：
・脾臓
・脳
・心臓
・肺葉
・皮膚（鼠径部、約２５ｍｍ２）
肝臓を全動物（Ａ群～Ｄ群）から除去し、予め秤量された管に入れた。組織試料を、ＵｌｔｒａＴｕｒｒａｘホモジナイゼーションプローブを使用して、５部のＲＮＡｌａｔｅｒを１部の組織にホモジナイズした。以下の組織を、ＡｐｏＢ処置群（Ａ群およびＣ群）の動物から切除し、予め秤量されたポットに入れた：
・脾臓
・脳
・心臓
・肺葉
・皮膚（鼠径部、約２５ｍｍ２）
【0181】
組織は、ＲＮａｓｅ活性を避けるために、液体窒素中で瞬間凍結させた。組織は、－５０℃未満の温度（公称－８０℃）で保存される。
【0182】
ＰＣＳＫ９インビボ試験：ＲＴ－ｑＰＣＲのための肝臓の処理
動物を犠牲にし、肝臓を採取し、液体窒素中で瞬間凍結させた。以下に記載の通り、全肝臓をすりつぶし、ＲＴ－ｑＰＣＲによるＰＣＳＫ９ ｍＲＮＡ発現の評価のために組織可溶化物を調製した。
・ＧｅｎＥｌｕｔｅ（商標）Ｔｏｔａｌ ＲＮＡ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（ＲＮＢ１００－１００ＲＸＮ）を使用して、すりつぶした１０ｍｇの肝組織から全ＲＮＡを抽出した。
・マウスＧＡＰＤＨ（ＶＩＣ＿ＰＬ）およびＰＣＳＫ９（ＦＡＭ）用のＴａｑＭａｎプローブを用いたＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ ＴａｑＭａｎ Ｆａｓｔ １－Ｓｔｅｐ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘを使用して、二重ＲＴ－ｑＰＣＲを実施した。
・ＰＣＳＫ９ ｍＲＮＡの相対定量（ＲＱ）は、ΔΔＣＴ法を使用して決定され、ここでＧＡＰＤＨは内部対照として使用され、標的遺伝子の発現変化は媒体対照（ＰＢＳ）に対して正規化された。
動物を犠牲にし、肝臓を採取し、液体窒素中で瞬間凍結させた。以下に記載の通り、全肝臓をすりつぶし、ＲＴ－ｑＰＣＲによるＰＣＳＫ９ ｍＲＮＡ発現の評価のために組織可溶化物を調製した。
・ＧｅｎＥｌｕｔｅ（商標）Ｔｏｔａｌ ＲＮＡ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（ＲＮＢ１００－１００ＲＸＮ）を使用して、すりつぶした１０ｍｇの肝組織から全ＲＮＡを抽出した。
・マウスＧＡＰＤＨ（ＶＩＣ＿ＰＬ）およびＰＣＳＫ９（ＦＡＭ）用のＴａｑＭａｎプローブを用いたＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ ＴａｑＭａｎ Ｆａｓｔ １－Ｓｔｅｐ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘを使用して、二重ＲＴ－ｑＰＣＲを実施した。
・ＰＣＳＫ９ ｍＲＮＡの相対定量（ＲＱ）は、ΔΔＣＴ法を使用して決定され、ここでＧＡＰＤＨは内部対照として使用され、標的遺伝子の発現変化は媒体対照（ＰＢＳ）に対して正規化された。
【0183】
Ａｐｏ Ｂに対するイムノアッセイ
血漿Ａｐｏ Ｂレベルは、Ｅｌａｂｓｃｉｅｎｃｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｃ．（カタログ番号Ｅ－ＥＬ－Ｍ０１３２）からの市販マウスＡｐｏ Ｂ検出キットを使用して、酵素結合免疫吸着測定法（ＥＬＩＳＡ）を介して測定された。血漿試料を分析前に－８０℃で保存し、氷上で解凍し、１３，０００ｒｐｍで５分間遠心分離して、アッセイ緩衝液中でアリコートを希釈し、ＥＬＩＳＡプレートに適用した。ＡｐｏＢアッセイキットは、ＯＤ４５０で測定された比色測定値を得るサンドイッチＥＬＩＳＡを使用する。特定の時点（０時間および９６時間）での各動物からの試料は、複製してアッセイされ、測定はキットとともに供給された標準曲線試薬に基づいて、血漿１ｍｌ当たりのマイクログラムＡｐｏＢとして記録された。すべてのデータポイントは、２０％未満の変動係数で測定された。
血漿Ａｐｏ Ｂレベルは、Ｅｌａｂｓｃｉｅｎｃｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｃ．（カタログ番号Ｅ－ＥＬ－Ｍ０１３２）からの市販マウスＡｐｏ Ｂ検出キットを使用して、酵素結合免疫吸着測定法（ＥＬＩＳＡ）を介して測定された。血漿試料を分析前に－８０℃で保存し、氷上で解凍し、１３，０００ｒｐｍで５分間遠心分離して、アッセイ緩衝液中でアリコートを希釈し、ＥＬＩＳＡプレートに適用した。ＡｐｏＢアッセイキットは、ＯＤ４５０で測定された比色測定値を得るサンドイッチＥＬＩＳＡを使用する。特定の時点（０時間および９６時間）での各動物からの試料は、複製してアッセイされ、測定はキットとともに供給された標準曲線試薬に基づいて、血漿１ｍｌ当たりのマイクログラムＡｐｏＢとして記録された。すべてのデータポイントは、２０％未満の変動係数で測定された。
【0184】
各動物のＡｐｏＢレベルの変化は、９６時間値から０時間値を差し引くことによって計算され、パーセンテージとして表された。％変化値の範囲を、各試験群について照合し、対応のある両側Ｔ検定アルゴリズムを使用して統計解析を適用した。
【0185】
ＨｅｐＧ２細胞における湾曲ｓｉＲＮＡ活性のＣ３、Ｃ５およびＭＡＳＰ２インビトロスクリーニング
本試験で評価したＣ３およびＣ５のカスタムライブラリーｓｉＲＮＡの説明を表５に示す。
本試験で評価したＣ３およびＣ５のカスタムライブラリーｓｉＲＮＡの説明を表５に示す。
【0186】
ＨｅｐＧ２逆トランスフェクション
・Ｃ３およびＣ５についてＢｉｏ－Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ（テキサス州ルイスビル）によって合成されたカスタム二本鎖ｓｉＲＮＡを、ＵｌｔｒａＰｕｒｅ ＤＮａｓｅおよびＲＮａｓｅ遊離水に再懸濁し、１０μＭの原液を得た。
・原液のｓｉＲＮＡを、４×３８４ウェルアッセイプレート（Ｇｒｅｉｎｅｒ ＃７８１０９２またはＴｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ（商標）１６４６８８）に分注した。各アッセイプレート上で、各標的に対して１０個のカスタムｓｉＲＮＡを分注し、２５ｎＭのアッセイプレートにおける最高最終濃度から４点４倍希釈系列を生成した。ｓｉＲＮＡ処置を受けていない細胞は、陰性対照として使用した。
・Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ ＲＮＡｉＭＡＸ（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ）をＯｐｔｉｍｅｍ培地中で希釈し、その後、ウェル当たり１０μＬのＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ ＲＮＡｉＭＡＸ：ＯｐｔＩＭＥＭ溶液をアッセイプレートに添加した。ウェル当たりのＲＮＡｉＭＡＸの最終体積は０．０８μＬであった。
・脂質－ｓｉＲＮＡミックスを、室温で３０分間インキュベートした。
・ＨｅｐＧ２細胞をアッセイ培地（ＭＥＭ ＧｌｕｔａＭＡＸ （ＧＩＢＣＯ）１０％ ＦＢＳ １％ Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ）で希釈し、その後、４，０００個のＨｅｐＧ２細胞をアッセイプレートの各ウェルに４０μＬ体積で播種した。アッセイ条件ごとに、三重の技術的複製物を播種した。
・細胞の評価前に、プレートを加湿雰囲気中で、３７℃、５％のＣＯ２で７２時間インキュベートした。
・Ｃ３およびＣ５についてＢｉｏ－Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ（テキサス州ルイスビル）によって合成されたカスタム二本鎖ｓｉＲＮＡを、ＵｌｔｒａＰｕｒｅ ＤＮａｓｅおよびＲＮａｓｅ遊離水に再懸濁し、１０μＭの原液を得た。
・原液のｓｉＲＮＡを、４×３８４ウェルアッセイプレート（Ｇｒｅｉｎｅｒ ＃７８１０９２またはＴｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ（商標）１６４６８８）に分注した。各アッセイプレート上で、各標的に対して１０個のカスタムｓｉＲＮＡを分注し、２５ｎＭのアッセイプレートにおける最高最終濃度から４点４倍希釈系列を生成した。ｓｉＲＮＡ処置を受けていない細胞は、陰性対照として使用した。
・Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ ＲＮＡｉＭＡＸ（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ）をＯｐｔｉｍｅｍ培地中で希釈し、その後、ウェル当たり１０μＬのＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ ＲＮＡｉＭＡＸ：ＯｐｔＩＭＥＭ溶液をアッセイプレートに添加した。ウェル当たりのＲＮＡｉＭＡＸの最終体積は０．０８μＬであった。
・脂質－ｓｉＲＮＡミックスを、室温で３０分間インキュベートした。
・ＨｅｐＧ２細胞をアッセイ培地（ＭＥＭ ＧｌｕｔａＭＡＸ （ＧＩＢＣＯ）１０％ ＦＢＳ １％ Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ）で希釈し、その後、４，０００個のＨｅｐＧ２細胞をアッセイプレートの各ウェルに４０μＬ体積で播種した。アッセイ条件ごとに、三重の技術的複製物を播種した。
・細胞の評価前に、プレートを加湿雰囲気中で、３７℃、５％のＣＯ２で７２時間インキュベートした。
【0187】
二重ＲＴ－ｑＰＣＲ
・トランスフェクションの７２時間後、Ｃｅｌｌｓ－ｔｏ－ＣＴ １－ｓｔｅｐ ＴａｑＭａｎ Ｋｉｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ ４３９１８５１ＣまたはＡ２５６０３）を使用して細胞を処理し、ＲＴ－ｑＰＣＲ測定をした。簡潔に述べると、細胞を５０μｌの氷冷ＰＢＳで洗浄し、次いで、ＤＮａｓｅ Ｉを含有する２０μｌの溶解溶液中で溶解した。５分後、２μｌのＳＴＯＰ溶液を２分間添加することによって溶解を停止させた。
・ＲＴ－ｑＰＣＲ分析のために、ウェル当たり１ｕｌの可溶化物を、２０μｌのＲＴ－ｑＰＣＲ反応体積のテンプレートとして９６ウェルＰＣＲプレートに分注した。
・ＧＡＰＤＨ（ＶＩＣ＿ＰＬ、アッセイＩＤ Ｈｓ００２６６７０５＿ｇ１）、Ｃ３（ＦＡＭ、アッセイＩＤ Ｈｓ００１６３８１１＿ｍ１）、Ｃ５（ＦＡＭ、アッセイＩＤ Ｈｓ０１００４３４２＿ｍ１）用のＴａｑＭａｎプローブを用いて、ＴａｑＭａｎ（登録商標）１－Ｓｔｅｐ ｑＲＴ－ＰＣＲ ＭｉｘおよびＣｅｌｌｓ－ｔｏ－ＣＴ １－ｓｔｅｐ ＴａｑＭａｎ Ｋｉｔを使用して、ＲＴ－ｑＰＣＲを実施した。
・ＱｕａｎｔＳｔｕｄｉｏ ５サーモサイクリング機器（Ａｐｐｌｉｅｄ ＢｉｏＳｙｓｔｅｍｓ）を使用してＲＴ－ｑＰＣＲを実施した。
・相対定量は、??ＣＴ法を使用して決定し、ここでＧＡＰＤＨを内部対照として使用し、発現変化を参照試料（「未処置」細胞）に対して正規化した。
・トランスフェクションの７２時間後、Ｃｅｌｌｓ－ｔｏ－ＣＴ １－ｓｔｅｐ ＴａｑＭａｎ Ｋｉｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ ４３９１８５１ＣまたはＡ２５６０３）を使用して細胞を処理し、ＲＴ－ｑＰＣＲ測定をした。簡潔に述べると、細胞を５０μｌの氷冷ＰＢＳで洗浄し、次いで、ＤＮａｓｅ Ｉを含有する２０μｌの溶解溶液中で溶解した。５分後、２μｌのＳＴＯＰ溶液を２分間添加することによって溶解を停止させた。
・ＲＴ－ｑＰＣＲ分析のために、ウェル当たり１ｕｌの可溶化物を、２０μｌのＲＴ－ｑＰＣＲ反応体積のテンプレートとして９６ウェルＰＣＲプレートに分注した。
・ＧＡＰＤＨ（ＶＩＣ＿ＰＬ、アッセイＩＤ Ｈｓ００２６６７０５＿ｇ１）、Ｃ３（ＦＡＭ、アッセイＩＤ Ｈｓ００１６３８１１＿ｍ１）、Ｃ５（ＦＡＭ、アッセイＩＤ Ｈｓ０１００４３４２＿ｍ１）用のＴａｑＭａｎプローブを用いて、ＴａｑＭａｎ（登録商標）１－Ｓｔｅｐ ｑＲＴ－ＰＣＲ ＭｉｘおよびＣｅｌｌｓ－ｔｏ－ＣＴ １－ｓｔｅｐ ＴａｑＭａｎ Ｋｉｔを使用して、ＲＴ－ｑＰＣＲを実施した。
・ＱｕａｎｔＳｔｕｄｉｏ ５サーモサイクリング機器（Ａｐｐｌｉｅｄ ＢｉｏＳｙｓｔｅｍｓ）を使用してＲＴ－ｑＰＣＲを実施した。
・相対定量は、??ＣＴ法を使用して決定し、ここでＧＡＰＤＨを内部対照として使用し、発現変化を参照試料（「未処置」細胞）に対して正規化した。
【0188】
統計
・本プロジェクトにおけるすべてのアッセイについて、各データ点について３つの技術的複製が得られた。
・平均、および平均値の標準誤差（ＳＥＭ）を、ＥｘｃｅｌまたはＧｒａｐｈｐａｄ Ｐｒｉｓｍを使用して計算した。
・本プロジェクトにおけるすべてのアッセイについて、各データ点について３つの技術的複製が得られた。
・平均、および平均値の標準誤差（ＳＥＭ）を、ＥｘｃｅｌまたはＧｒａｐｈｐａｄ Ｐｒｉｓｍを使用して計算した。
【0189】
すべてのグラフはＧｒａｐｈｐａｄ Ｐｒｉｓｍを使用して生成された。
【0190】
補体成分３、補体成分５、ＭＡＳＰ－２を最適にサイレンシングする可能性があるｓｉＲＮＡ配列の選択
【表1】
【表2】
【表3】
【表4-1】
【表4-2】
【表5-1】
【表5-2】
【実施例】
【0191】
実施例１
パイロットのインビボマウス実験を実施して、ＧａｌＮＡｃ抱合型湾曲抗マウスＡｐｏＢ ｓｉＲＮＡの活性を、対照ｓｉＲＮＡ構築物と比較して評価した。ＡｐｏＢ湾曲ｓｉＲＮＡ（ＧＵＣＡＵＣＡＣＡＣＵＧＡＡＵＡＣＣＡＡＵ、配列番号１４９）の抱合型（ＧａｌＮＡｃ）および非抱合型（ＧａｌＮＡｃを含まない）を、「材料および方法」の項にそれぞれ前述した、皮下（ＳＣ）および静脈内（ＩＶ）の経路によって、成体オス野生型（ＷＴ）Ｃ５７ＢＬ／６マウスに投与した。
パイロットのインビボマウス実験を実施して、ＧａｌＮＡｃ抱合型湾曲抗マウスＡｐｏＢ ｓｉＲＮＡの活性を、対照ｓｉＲＮＡ構築物と比較して評価した。ＡｐｏＢ湾曲ｓｉＲＮＡ（ＧＵＣＡＵＣＡＣＡＣＵＧＡＡＵＡＣＣＡＡＵ、配列番号１４９）の抱合型（ＧａｌＮＡｃ）および非抱合型（ＧａｌＮＡｃを含まない）を、「材料および方法」の項にそれぞれ前述した、皮下（ＳＣ）および静脈内（ＩＶ）の経路によって、成体オス野生型（ＷＴ）Ｃ５７ＢＬ／６マウスに投与した。
【0192】
血漿ＡｐｏＢを、「投与詳細」で上述の通りの４つの処置群（群当たり５匹のマウス）で示される通り、０時間（ｓｉＲＮＡ構築物の投与前）およびｓｉＲＮＡ構築物の投与後９６時間でＥＬＩＳＡ（前述）によって測定した。
【0193】
各治療群の５匹のマウスからの血漿ＡｐｏＢレベル（マイクログラム／ｍｌ）を使用して、平均ＡｐｏＢ値±平均値の標準誤差（ＳＥＭ）を計算した。ＧａｌＮＡｃ抱合型湾曲ｓｉＲＮＡのＳＣ投与後の９６時間後の血漿ＡｐｏＢレベルの変化を、対照（ｉ）媒体生理食塩水、または（ｉｉ）湾曲のある非抱合型ｓｉＲＮＡのいずれかを投与したマウスのレベルと比較した。対応のある両側Ｔ検定アルゴリズムを使用して統計解析を適用した。
【0194】
図１（ａ）を参照すると、ＧａｌＮＡｃ抱合型ＡｐｏＢ湾曲ｓｉＲＮＡを用いた処置の９６時間後のマウスの血漿ＡｐｏＢレベル（マイクログラム／ｍＬ）は、生理食塩水を投与した対照投与群と比較された。対応のある両側Ｔ検定アルゴリズムを使用して統計解析を適用した。結果は、ＧａｌＮＡｃ抱合型湾曲ｓｉＲＮＡで処置されたマウスの平均血漿ＡｐｏＢレベルが、対照と比較して実質的に減少したことを示す。ただし、有意性が不足し（ｐ＝０．１１）、最も可能性の高い理由は、サンプルサイズが小さいことと、対照動物間でのＡｐｏＢレベルのばらつきが小さいことである。
【0195】
図１（ｂ）を参照すると、ＧａｌＮＡｃ抱合型ＡｐｏＢ湾曲ｓｉＲＮＡの投与後９６時間で測定した血漿ＡｐｏＢレベル（マイクログラム／ｍｌ）は、非抱合型（ＧａｌＮＡｃを含まない）ＡｐｏＢ湾曲ｓｉＲＮＡのｓｉＲＮＡ構築物で処置した対照群と比較された。対応のある両側Ｔ検定アルゴリズムを使用して統計解析を適用した。
【0196】
結果は、このＧａｌＮＡｃ抱合型湾曲ｓｉＲＮＡ投与群の血漿ＡｐｏＢレベルが、湾曲のある対照の非抱合型ｓｉＲＮＡと比較して著しく減少したことを示す（Ｐ＝０．００４３５８３２）。
【0197】
実施例２
ＰＣＳＫ９インビボサイレンシング
図２を参照すると、インビボでのマウス試験が実施され、ＧａｌＮＡｃ抱合型湾曲抗マウスＰＣＳＫ９ ｓｉＲＮＡ（化合物Ｈ）のノックダウン活性が、その「非湾曲」ｓｉＲＮＡ対照（化合物Ａ）と比較されて評価された（図３を参照）。成体オス野生型（ＷＴ）Ｃ５７ＢＬ／６マウスに、試験ｓｉＲＮＡ化合物を２ｍｇ／ｋｇまたは１０ｍｇ／ｋｇのいずれかで、皮下（ＳＣ）注射により投与した（投与群当たり５つの複製）。５つの複製物の媒体（ＰＢＳ）群は、陰性対照の役目を果たした。
ＰＣＳＫ９インビボサイレンシング
図２を参照すると、インビボでのマウス試験が実施され、ＧａｌＮＡｃ抱合型湾曲抗マウスＰＣＳＫ９ ｓｉＲＮＡ（化合物Ｈ）のノックダウン活性が、その「非湾曲」ｓｉＲＮＡ対照（化合物Ａ）と比較されて評価された（図３を参照）。成体オス野生型（ＷＴ）Ｃ５７ＢＬ／６マウスに、試験ｓｉＲＮＡ化合物を２ｍｇ／ｋｇまたは１０ｍｇ／ｋｇのいずれかで、皮下（ＳＣ）注射により投与した（投与群当たり５つの複製）。５つの複製物の媒体（ＰＢＳ）群は、陰性対照の役目を果たした。
【0198】
４８時間後、マウスを犠牲にし、「材料および方法」の項に記載の通りに、ＲＴ－ｑＰＣＲによるＰＣＳＫ９ ｍＲＮＡの定量のために肝臓全体を採取した。
【0199】
化合物Ｈ（２ｍｇ／ｋｇ）は、化合物Ａおよび媒体対照と比較して、ＳＣ注射の４８時間後の肝臓ＰＣＳＫ９ ｍＲＮＡのおよそ５０％ノックダウンを示す。対応のある両側Ｔ検定アルゴリズムを使用して統計解析を適用した。
【0200】
結果は、ＧａｌＮＡｃ抱合型ＰＣＳＫ９湾曲ｓｉＲＮＡ投与群（Ｈ）での肝臓ＰＣＳＫ９ ｍＲＮＡ血漿が、ＧａｌＮＡｃ抱合型ＰＣＳＫ９「非湾曲」ｓｉＲＮＡ投与群（Ａ）および媒体（ＰＢＳ）対照と比較して、非常に有意に減少したことを示す（ｐ＜０．００１ 対 対照）。
【0201】
実施例３
Ｃ３インビトロサイレンシング
表６を参照すると、Ｃ３を標的にする１０個の「湾曲」ｓｉＲＮＡ（表５に列挙）のカスタムライブラリーを評価するために、ＨｅｐＧ２細胞におけるＲＮＡｉスクリーニングが実施された。ＨｅｐＧ２細胞は、１０個のｓｉＲＮＡで逆トランスフェクトされた。トランスフェクションの７２時間後に、Ｃ３ ｍＲＮＡレベルを二重ＲＴ－ｑＰＣＲによって定量化し、Ｃ３ ｍＲＮＡレベルをハウスキーピング参照遺伝子ＧＡＰＤＨ ｍＲＮＡのレベルに対して正規化した。
Ｃ３インビトロサイレンシング
表６を参照すると、Ｃ３を標的にする１０個の「湾曲」ｓｉＲＮＡ（表５に列挙）のカスタムライブラリーを評価するために、ＨｅｐＧ２細胞におけるＲＮＡｉスクリーニングが実施された。ＨｅｐＧ２細胞は、１０個のｓｉＲＮＡで逆トランスフェクトされた。トランスフェクションの７２時間後に、Ｃ３ ｍＲＮＡレベルを二重ＲＴ－ｑＰＣＲによって定量化し、Ｃ３ ｍＲＮＡレベルをハウスキーピング参照遺伝子ＧＡＰＤＨ ｍＲＮＡのレベルに対して正規化した。
【0202】
幾つかのｓｉＲＮＡ配列（ＣＯＭＰＣ３－５、ＣＯＭＰＣ３－６， ＣＯＭＰＣ３－８， ＣＯＭＰＣ３－９、ＣＯＭＰＣ３－１０）は、未処置対照と比較して、最高用量（２５ｎＭ）でＣ３ ｍＲＮＡの８０％超のノックダウンを示し、最も性能の高い配列ＣＯＭＰＣ３－０７は９０％ノックダウンを示した。
【表6】
【0203】
実施例５
Ｃ５インビトロサイレンシング
表７を参照すると、Ｃ５を標的にする１０個の「湾曲」ｓｉＲＮＡ（表５に列挙）のカスタムライブラリーを評価するために、ＨｅｐＧ２細胞におけるＲＮＡｉスクリーニングが実施された。ＨｅｐＧ２細胞は、１０個のｓｉＲＮＡで逆トランスフェクトされた。トランスフェクションの７２時間後に、Ｃ５ ｍＲＮＡレベルを二重ＲＴ－ｑＰＣＲによって定量化し、Ｃ５ ｍＲＮＡレベルをハウスキーピング参照遺伝子ＧＡＰＤＨ ｍＲＮＡのレベルに対して正規化した。ｓｉＲＮＡ配列ＣＯＭＰＣ５－０９については、中程度のレベルのＣ５ ｍＲＮＡサイレンシングを示し、未処置対照と比較して、最高用量（２５ｎＭ）でほぼ５０％のノックダウンを示す。ｓｉＲＮＡ配列ＣＯＭＰＣ５－０１は、Ｃ５ ｍＲＮＡのほぼ６０％のノックダウンを示し、最も性能の高い配列ＣＯＭＰＣ５－１０は、ほぼ７０％のノックダウンを示した。
Ｃ５インビトロサイレンシング
表７を参照すると、Ｃ５を標的にする１０個の「湾曲」ｓｉＲＮＡ（表５に列挙）のカスタムライブラリーを評価するために、ＨｅｐＧ２細胞におけるＲＮＡｉスクリーニングが実施された。ＨｅｐＧ２細胞は、１０個のｓｉＲＮＡで逆トランスフェクトされた。トランスフェクションの７２時間後に、Ｃ５ ｍＲＮＡレベルを二重ＲＴ－ｑＰＣＲによって定量化し、Ｃ５ ｍＲＮＡレベルをハウスキーピング参照遺伝子ＧＡＰＤＨ ｍＲＮＡのレベルに対して正規化した。ｓｉＲＮＡ配列ＣＯＭＰＣ５－０９については、中程度のレベルのＣ５ ｍＲＮＡサイレンシングを示し、未処置対照と比較して、最高用量（２５ｎＭ）でほぼ５０％のノックダウンを示す。ｓｉＲＮＡ配列ＣＯＭＰＣ５－０１は、Ｃ５ ｍＲＮＡのほぼ６０％のノックダウンを示し、最も性能の高い配列ＣＯＭＰＣ５－１０は、ほぼ７０％のノックダウンを示した。
【表7】
【0204】
参考文献
Nair, J.K., Willoughby, J.L., Chan, A., Charisse, K., Alam, M.R., Wang, Q., Hoekstra, M., Kandasamy, P., Kel’in, A.V., Milstein, S. and Taneja, N., 2014. Multivalent N-acetylgalactosamine-conjugated siRNA localizes in hepatocytes and elicits robust RNAi-mediated gene silencing. Journal of the American Chemical Society, 136(49), pp.16958-16961.
Soutschek, J., Akinc, A., Bramlage, B., Charisse, K., Constien, R., Donoghue, M., Elbashir, S., Geick, A., Hadwiger, P., Harborth, J. and John, M., 2004. Therapeutic silencing of an endogenous gene by systemic administration of modified siRNAs. Nature, 432(7014), p.173.
Nair, J.K., Willoughby, J.L., Chan, A., Charisse, K., Alam, M.R., Wang, Q., Hoekstra, M., Kandasamy, P., Kel’in, A.V., Milstein, S. and Taneja, N., 2014. Multivalent N-acetylgalactosamine-conjugated siRNA localizes in hepatocytes and elicits robust RNAi-mediated gene silencing. Journal of the American Chemical Society, 136(49), pp.16958-16961.
Soutschek, J., Akinc, A., Bramlage, B., Charisse, K., Constien, R., Donoghue, M., Elbashir, S., Geick, A., Hadwiger, P., Harborth, J. and John, M., 2004. Therapeutic silencing of an endogenous gene by systemic administration of modified siRNAs. Nature, 432(7014), p.173.
【図1(a)】
【図1(b)】
【図2】
【図3】
【配列表】
【国際調査報告】