(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】公表特許公報(A)
(11)【公表番号】
(43)【公表日】2024-11-08
(54)【発明の名称】新しい透析液
(51)【国際特許分類】
A61M 1/16 20060101AFI20241031BHJP
【ＦＩ】
A61M1/16 160
【審査請求】未請求
【予備審査請求】未請求
(21)【出願番号】P 2024532925
(86)(22)【出願日】2022-11-29
(85)【翻訳文提出日】2024-07-17
(86)【国際出願番号】 EP2022083622
(87)【国際公開番号】W WO2023099452
(87)【国際公開日】2023-06-08
(31)【優先権主張番号】2151464-1
(32)【優先日】2021-12-01
(33)【優先権主張国・地域又は機関】SE
(81)【指定国・地域】
(71)【出願人】
【識別番号】501473877
【氏名又は名称】ガンブロ・ルンディア・エービー
【氏名又は名称原語表記】ＧＡＭＢＲＯ ＬＵＮＤＩＡ ＡＢ
(74)【代理人】
【識別番号】110003281
【氏名又は名称】弁理士法人大塚国際特許事務所
(72)【発明者】
【氏名】ホブロ， ストゥーレ
(72)【発明者】
【氏名】ニルソン， アンデシュ
【テーマコード（参考）】
4C077
【Ｆターム（参考）】
4C077AA05
4C077BB01
4C077CC08
4C077DD01
4C077DD12
4C077DD16
4C077EE01
4C077EE03
4C077EE04
4C077JJ02
4C077JJ05
4C077JJ18
4C077NN03
4C077PP21
(57)【要約】
本開示は、
ａ）アセト酢酸、β－ヒドロキシ酪酸またはその薬学的に許容される誘導体、エステルおよび塩などのケトン体、および、
ｂ）重炭酸イオン、
を含む、がんを処置する血液透析療法に使用するための透析液を提供する。
ａ）アセト酢酸、β－ヒドロキシ酪酸またはその薬学的に許容される誘導体、エステルおよび塩などのケトン体、および、
ｂ）重炭酸イオン、
を含む、がんを処置する血液透析療法に使用するための透析液を提供する。
【特許請求の範囲】
【請求項1】
透析液であって、ａ）アセト酢酸、β－ヒドロキシ酪酸またはその薬学的に許容される誘導体、エステルおよび塩などのケトン体、および、
ｂ）重炭酸イオン、
を含む、がんを処置する血液透析療法に使用するための透析液。
【請求項2】
請求項１に記載の透析液であって、前記ケトン体の濃度は、１～１５ｍＭである、透析液。
【請求項3】
請求項２に記載の透析液であって、前記ケトン体の濃度は、２～１２ｍＭである、透析液。
【請求項4】
請求項１乃至３の何れか１項に記載の透析液であって、前記重炭酸イオンの濃度は、１５～５０ｍＭである、透析液。
【請求項5】
請求項４に記載の透析液であって、前記重炭酸イオンの濃度は、２０～４０ｍＭである、透析液。
【請求項6】
請求項１乃至５の何れか１項に記載の透析液であって、グルコースと、ピルビン酸と、セリン、システイン、グリシン、アラニン、グルタミン酸、グルタミン、プロリン、アスパラギン酸、アスパラギン、トレオニン、および、それらの誘導体のグループから選択されるアミノ酸と、の加水分解当量濃度の合計は、最大３．３ｍＭである、透析液。
【請求項7】
請求項６に記載の透析液であって、前記液は、ピルビン酸、セリン、システイン、グルタミン酸、プロリン、アスパラギン酸、アスパラギン、トレオニン、または、それらの誘導体を含まない、透析液。
【請求項8】
請求項７に記載の透析液であって、前記液は、最大０．３ｍＭのグルタミンまたはその誘導体の加水分解当量濃度を含む、透析液。
【請求項9】
請求項１乃至８の何れか１項に記載の透析液であって、前記液はまた、薬学的に許容される量の薬学的に許容される細胞増殖抑制剤を含む、透析液。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本明細書の開示は、体外血液処置に関する。より具体的には、本開示は、がんの処置における、血液透析、血液透析濾過および血液濾過などの体外血液処置の使用に関する。最も具体的には、本開示は、がんの血液透析治療処置法において使用するための透析液に関する。
【背景技術】
【0002】
ほとんどのヒトのがん細胞は、通常の細胞から区別される変化したエネルギの代謝を示す。正常な細胞は、ミトコンドリアの酸化的リン酸化、すなわち、グルコースがまず解糖によって酸化され、続いてトリカルボン酸（ＴＣＡ）サイクルによってアデノシン三リン酸を生成する好気的プロセスを経て、そのエネルギの大部分を獲得する。逆に、この経路は、がん細胞において二次的なものに過ぎない。これは、Ｗａｒｔｂｕｒｇによって１９２０年代に初めて観察された。彼は、がん細胞が解糖によってグルコースを代謝した後に、ピルビン酸から乳酸が生成されることを指摘した。通常の細胞では、これは嫌気性条件下でのみ起こるが、がん細胞では、この代替経路が、豊富な酸素の存在下でも増加する。この現象は、「好気的解糖」または「Ｗａｒｔｂｕｒｇ効果」と名付けられた（Ｗａｒｂｕｒｇ ｅｔ ａｌ、１９２７、Ｇｅｎ Ｐｈｙｓｉｏｌ ８：５１９－５３０）。がん細胞における特徴的な解糖表現型の存在は、ほとんどのがん細胞における解糖に関与する酵素の過剰発現が観察されている、その後の研究でも確認された。
【0003】
上述の代謝的転換は、がん細胞に選択的な増殖優位性を与え、低酸素およびアポトーシスに抵抗する能力に寄与する。腫瘍細胞増殖の速度は、新しい血管形成の速度を上回るため、多くの腫瘍は、低酸素環境で増殖する。がん細胞において様々な代謝変化が存在し、最も一般的で最もよく知られているのは、好気的解糖によってエネルギを生成する傾向である。さらに、例えば、リボース、グリセロールおよびセリンのような解糖の中間体の多くも、がん細胞の成長および増殖の間に不可欠な生合成および同化経路の中間体である。また、解糖は、ＡＤＰからＡＴＰを産生し、これは、腫瘍における細胞増殖を維持することを可能にする。しかしながら、解糖は、酸化的リン酸化よりもはるかに効率が低く、したがって、十分な量のＡＴＰを産生するために多量のグルコースを必要とする。したがって、この代謝経路は、多量のグルコースを必要とする。多くのがん細胞は、その主なエネルギ供給源としてグルコースに依存するようになる。複数の理由によって、解糖系腫瘍細胞は、そのグルコース供給が標的とされた場合に脆弱になる。
【0004】
さらに、多くのがん細胞は、グルタミンに対する依存も示す。グルタミン依存性細胞によって示されるグルタミン取り込みの高いレートは、ヌクレオチドおよびアミノ酸の生合成における窒素源としての役割からの結果であるだけでなく、グルタミンは、がんにおける主要なミトコンドリア基質であり、酸化還元制御および高分子合成のためのＮＡＤＰＨを産生するために必要とされる。
【0005】
がんには、生存において重要な役割を有する他の代謝変化が存在し、重要なことに、多くのがんは、それらの代謝プロファイルを変化させる驚くほど良好な能力を示す。グルコース、グルタミンまたは酸素が低下するなどの環境的課題に耐えるためのこの可塑性は、がん細胞の生存にとって極めて重要である。
【0006】
多くの代謝変化ががんに存在し、グルタミンなどの様々なアミノ酸は酸化還元バランスを制御し、継続的な増殖のための構成要素を生成するためのがん代謝において重要な役割を有し、さらに、多くのがんは新しい代謝制限を採用する必要があるとき、代謝プロファイルを変化させるために、これらの代替経路を利用する驚くほど良好な能力を示す。この質（能力）は、グルコース、グルタミンまたは酸素などの代謝エネルギ資源が不足した場合に、環境的課題に耐えるがんおよびそれらの能力にとって重要な特徴である。
【0007】
したがって、代謝アプローチを通してがんに効果的に影響を及ぼすためには、１つを超える方向からそれらの代謝系に影響を及ぼすことが重要である。グルコースの低減は、ほとんどのがん細胞によって容易に対処できるが、いくつかの代謝の可能性が同時に影響を受ける（グルコースおよびグルタミンの低減のように）場合、これらの変化の合計は、個々の部分よりもはるかに衝撃的になる。
【0008】
多くのがんのためのグローバルなエネルギ源であるグルコースおよびグルタミンの他に、セリンおよびグリシンは、例えば一炭素代謝を通して、がんにおける細胞成長および増殖を維持するための重要な特定のニーズを満たす。大きなエネルギ要件に加えて、がん細胞は、核酸、タンパク質および脂質を含む新しい細胞コンポーネントの構築のための構成要素、ならびに、それらの細胞の酸化還元状態の維持のための同様に重要な補助因子も蓄積しなければならない（Ａｍｅｌｉｏ ｅｔ ａｌ．：Ｔｒｅｎｄｓ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｓｃｉ．（２０１４），ｖｏｌ．３９（４）：１９１－１９８））。
アルギニンが細胞増殖に必要であり、急速な増殖の状態において制限されうること、および、がん細胞から奪われた場合に生存にも影響しうることを、研究が実証している（Ａｌｂａｕｇｈ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｓｕｒｇ．Ｏｎｃｏｌ．（２０１７），ｖｏｌ．１１５（３），２７３－２８０）。
上述を考慮すると、血糖低下は、広範な解糖依存性腫瘍を標的とする戦略として役立ちうることが示唆されている。低血糖状態において、脂肪、特にケトン体は、通常の細胞の主要な代謝燃料としてグルコースに取って代わることができる。しかしながら、多くの腫瘍は、エネルギのために脂質およびケトン体を代謝するのに必要な遺伝子および酵素に異常を有する。したがって、エネルギの糖質からケトンへの移行は、解糖依存性腫瘍細胞におけるエネルギ代謝を特異的に標的とする（Ｓｅｙｆｒｉｅｄ ｅｔ ａｌ，２０１０，Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ ａｎｄ Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ，７：７）。
アルギニンが細胞増殖に必要であり、急速な増殖の状態において制限されうること、および、がん細胞から奪われた場合に生存にも影響しうることを、研究が実証している（Ａｌｂａｕｇｈ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｓｕｒｇ．Ｏｎｃｏｌ．（２０１７），ｖｏｌ．１１５（３），２７３－２８０）。
上述を考慮すると、血糖低下は、広範な解糖依存性腫瘍を標的とする戦略として役立ちうることが示唆されている。低血糖状態において、脂肪、特にケトン体は、通常の細胞の主要な代謝燃料としてグルコースに取って代わることができる。しかしながら、多くの腫瘍は、エネルギのために脂質およびケトン体を代謝するのに必要な遺伝子および酵素に異常を有する。したがって、エネルギの糖質からケトンへの移行は、解糖依存性腫瘍細胞におけるエネルギ代謝を特異的に標的とする（Ｓｅｙｆｒｉｅｄ ｅｔ ａｌ，２０１０，Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ ａｎｄ Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ，７：７）。
【0009】
このアプローチによれば、例えば、国際公開第２０１１／０７０５２７号は、血液透析装置が血糖濃度を低下させるために使用される、個々におけるがん性または非がん性の増殖性障害の治療方法を開示する。
【0010】
血糖を低減させるための血液透析装置の使用は、食事によるグルコース欠乏と比較して、血中のグルコース濃度を低減させることができ、それによって、より制御された効果的な方法で低減させることができるという利点を有する。しかしながら、国際公開第２０１１／０７０５２７号に開示されている方法および装置は、血液グルコースセンサおよび血液グルタミンセンサを必要とし、これらのセンサはすべて、血液透析マシーンの中央制御ユニットに接続されている血液インテークフロー、血液リターンフローおよび透析液に接続されている。さらに、国際公開第２０１１／０７０５２７号の中央制御ユニットはまた、グルコースおよびグルタミンレベルの上昇を開始するための自発的な脳電気的活動に関する情報を中央ユニットに提供するために、脳波計（ＥＥＧ）に接続される。そのような多数のセンサおよび機器は、高レベルの複雑さおよび関連する高コストにつながる。さらに、この処置を受けている患者は、処置を行う前に、グルコース制限食のみを数日間摂取しなければならない。これは、患者にとって僅かな負担ではない。
【0011】
がんの処置の改善された方法が、常に必要とされている。より具体的には、がんの処置のための血液透析治療処置法において使用することができる透析液が必要とされている。
【発明の概要】
【0012】
本発明は、
ａ）アセト酢酸、β－ヒドロキシ酪酸またはその薬学的に許容される誘導体、エステルおよび塩などのケトン体、および、
ｂ）重炭酸イオン、
を含む、がんを処置する血液透析療法に使用するための透析液を提供する。
ａ）アセト酢酸、β－ヒドロキシ酪酸またはその薬学的に許容される誘導体、エステルおよび塩などのケトン体、および、
ｂ）重炭酸イオン、
を含む、がんを処置する血液透析療法に使用するための透析液を提供する。
【0013】
好ましくは、ケトン体の濃度は、１～１５ｍＭである。
【0014】
より好ましくは、ケトン体の濃度は、２～１２ｍＭである。
【0015】
好ましくは、重炭酸イオンの濃度は、１５～５０ｍＭである。
【0016】
より好ましくは、重炭酸イオンの濃度は、２０～４０ｍＭである。
【0017】
好ましい実施形態において、透析液中のグルコースと、ピルビン酸と、セリン、システイン、グリシン、アラニン、グルタミン酸、グルタミン、プロリン、アスパラギン酸、アスパラギン、トレオニン、および、それらの誘導体のグループから選択されるアミノ酸と、の加水分解当量濃度の合計は、最大３．３ｍＭである。
【0018】
透析液は、グルコースと、ピルビン酸と、セリン、システイン、グリシン、アラニン、グルタミン酸、グルタミン、プロリン、アスパラギン酸、アスパラギン、トレオニン、または、それらの薬学的に許容される誘導体のグループから選択されるアミノ酸と、のグループから選択される１つ以上の化合物を含みうる。そのような誘導体は、塩またはオリゴペプチドでありうる。透析液が特定の濃度のオリゴペプチドを含む場合、ペプチドの加水分解後の関与するアミノ酸の濃度が与えられる（この濃度は、本明細書では「加水分解当量濃度」と称される）。そのようなオリゴペプチド、典型的にはアミノ酸残基の少なくとも１つがグルタミンであるジペプチドの例は、Ｌ－アラニル－Ｌ－グルタミン、および、Ｌ－グリシル－Ｌ－グルタミンである。ジペプチドＬ－アラニル－Ｌ－グルタミンの濃度が１ｍＭである場合、このオリゴペプチドのアラニンおよびグルタミン部分それぞれの加水分解当量濃度は、１ｍＭのアラニンおよび１ｍＭのグルタミンである。オリゴペプチドの一部ではないアミノ酸の加水分解当量濃度は、単にアミノ酸またはアミノ酸誘導体の濃度である。
【0019】
本明細書においてグルタミン含有化合物とも呼ばれるグルタミン含有オリゴペプチドは、安定性および溶解性を促進するために、液体組成物中のグルタミンの代わりに典型的に使用される。
【0020】
好ましくは、透析液は、ピルビン酸、セリン、システイン、グルタミン酸、プロリン、アスパラギン酸、アスパラギン、トレオニン、または、それらの誘導体を含まない。
【0021】
好ましくは、透析液は、最大０．３ｍＭのグルタミンまたはその誘導体の加水分解当量濃度を含む。
【0022】
本開示において、「被検者」という用語は、処置を必要とするヒトまたは動物の患者に関する。
【0023】
「ケトン体」という用語は、脂肪酸から肝臓によって産生されうるケトン基を含む水溶性分子に関する。典型的には、本発明によるケトン体は、β－ヒドロキシ酪酸、または、その薬学的に許容される誘導体、例えば、そのエナンチオマー（Ｒ）－β－ヒドロキシ酪酸、（Ｓ）－β－ヒドロキシ酪酸、または、エナンチオマー混合物、または、その薬学的に許容される塩、または、その薬学的に許容されるエステル、ならびに、アセト酢酸である。中鎖脂肪酸もまた、本発明によるケトン体の誘導体であると考えられる。「中鎖脂肪酸」または「ＭＣＴオイル」という用語は、６～１２個の炭素原子の脂肪族末端を有する２つまたは３つの脂肪酸を有する中性脂肪である。そのような中鎖脂肪酸またはＭＣＴオイルは、ヒトの体内でケトン体に変換されうる。ケトン体またはケトン体誘導体を含む注入液の例は、Ｌｉｐｏｆｕｎｄｉｎ（登録商標）ＭＣＴ／ＬＣＴ２０％（Ｂ．Ｂｒａｕｎ）またはＳＭＯＦｌｉｐｉｄ（登録商標）２０％（Ｆｒｅｓｅｎｉｕｓ Ｋａｂｉ）である。さらなる例は、国際公開第２０１８／１１４３０９号に見出すことができる。
【0024】
好ましくは、がんは、がんをグルコースおよび／またはグルタミンに依存させる代謝変化を有するがんである。典型的には、がんは、ヒト結腸がんおよび神経膠芽腫、ならびに、前立腺がん、乳がんおよび肝臓がんから選択される。
【0025】
１つの実施形態において、透析液は、薬学的に許容される量の薬学的に許容される細胞増殖抑制剤を含む。
【0026】
本開示の上述の発明の概要は、各実施形態またはそのすべての実施を説明することを意図するものではない。利点は、本開示のより完全な理解とともに、添付の図面と併せて以下の詳細な説明および特許請求の範囲を参照することによって明らかになり、認識されるのであろう。
【図面の簡単な説明】
【0027】
【図2A】、
【図2B】、
【図2D】、
【図3a】、
【図3b】、
【図3c】、
【図3d】、
【図3e】、
【図3f】、
【図3g】、
【図3h】、
【図3i】、
【図3j】、
【図4a】、
【図4b】、
【図4c】、
【図6】図６は、酸素２１または５％の培地Ａ～Ｃにおける３日間の培養後の、肺がんＡ５４９、腎がんＲＣＣ４および初代ＲＣＣ細胞の量を示す。星印は、Ｔｕｋｅｙの多重比較検定を用いた２元配置分散分析によって決定された有意に異なる値を示す。
【図7】図７は、８ｍＭのＡｃａｃ、１６ｍＭのＢＯＨＢ、または、４ｍＭのＡｃａｃ／８ｍＭのＢＯＨＢの組合せを添加した培地Ａ～Ｃにおける、酸素正常状態および低酸素状態でのヒト神経膠腫細胞株Ａ１７２の培養の結果を示す。４ｍＭおよび８ｍＭのＬｉＣｌが、Ａｃａｃのコントロール（対照）として使用される。Ｓｉｄａｋの多重比較検定を用いた１元配置分散分析によって決定された有意に異なる値は、星印でマークされる。
【図8】図８は、８ｍＭのＡｃａｃ、１６ｍＭのＢＯＨＢ、または、４ｍＭのＡｃａｃ／８ｍＭのＢＯＨＢの組合せを添加した培地Ａ～Ｃにおける、酸素正常状態および低酸素状態での神経膠腫細胞株Ｕ１１８ＭＧの培養の結果を示す。４ｍＭおよび８ｍＭのＬｉＣｌが、Ａｃａｃのコントロールとして使用される。Ｓｉｄａｋの多重比較検定を用いた１元配置分散分析によって決定された有意に異なる値は、星印でマークされる。
【図9】図９は、８ｍＭのＡｃａｃ、１６ｍＭのＢＯＨＢ、または、４ｍＭのＡｃａｃおよび８ｍＭのＢＯＨＢの組合せを添加した培地Ｂ～Ｃにおける、酸素正常状態および低酸素状態での神経膠腫細胞株Ａ１７２の培養の結果を示す。４ｍＭおよび８ｍＭのＬｉＣｌが、４ｍＭのＡｃａｃ／８ｍＭのＢＯＨＢ、または、８ｍＭのＡｃａｃのそれぞれのコントロールとして使用される。Ｓｉｄａｋの多重比較検定を用いた１元配置分散分析によって決定された有意に異なる値は、星印でマークされる。
【図10】図１０は、８ｍＭのＡｃａｃ、１６ｍＭのＢＯＨＢ、または、４ｍＭのＡｃａｃおよび８ｍＭのＢＯＨＢの組合せを添加した培地Ｂ～Ｃにおける、酸素正常状態および低酸素状態での神経膠腫細胞株Ｕ１１８ＭＧの培養の結果を示す。４ｍＭおよび８ｍＭのＬｉＣｌが、４ｍＭのＡｃａｃ／８ｍＭのＢＯＨＢ、または、８ｍＭのＡｃａｃのそれぞれのコントロールとして使用される。Ｓｉｄａｋの多重比較検定を用いた１元配置分散分析によって決定された有意に異なる値は、星印でマークされる。
【図11】図１１は、８ｍＭのＡｃａｃ、１６ｍＭのＢＯＨＢ、または、４ｍＭのＡｃａｃおよび８ｍＭのＢＯＨＢの組合せを添加した培地Ｂ～Ｃにおける、酸素正常状態および低酸素状態での腎がん細胞株ＲＣＣ４の培養の結果を示す。４ｍＭおよび８ｍＭのＬｉＣｌが、４ｍＭのＡｃａｃ／８ｍＭのＢＯＨＢ、または、８ｍＭのＡｃａｃのそれぞれのコントロールとして使用される。Ｓｉｄａｋの多重比較検定を用いた１元配置分散分析によって決定された有意に異なる値は、星印でマークされる。
【発明を実施するための形態】
【0028】
本発明は、がんを処置する血液透析治療法において使用するための新しい透析液に関する。
【0029】
本明細書に開示される透析液と共に使用されうる体外血液処置のための例示的なシステムは、特許出願ＰＣＴ／ＥＰ２０２１／０６４５９２に記載されている。さらに、体外血液処置を実施するためのシステムおよびデバイスの非限定的な例は、欧州特許第１６６８５５６号明細書、米国特許第５６７９２４５号明細書、米国特許第５７６２８０５号明細書、米国特許第５７７６３４５号明細書および米国特許第５９１０２５２号明細書に見出すことができる。
【0030】
図１の概略図において、例示的な体外血液処置システム５０は、一般に、患者の血管系に接続可能な動脈ライン５２ａおよび静脈ライン５２ｂを含む血液チューブ回路５２を含む。装置は、半透過性濾過膜５９によって分離された一次チャンバ（血液チャンバ）および二次チャンバ（透析液チャンバ）を有する濾過ユニット５８を備える。一次チャンバの入口は、脱血ラインまたは動脈ライン５２ａに接続される。同様に、一次チャンバの出口は、返血ラインまたは静脈ライン５２ｂに接続される。
【0031】
二次チャンバの入口は、未使用の透析液供給ライン５４ｂに接続され、これは未使用の透析溶液を提供するための供給源７４に接続される。濾過ユニット５８の二次チャンバの出口は、透析溶液または使用済み透析液ライン５４ａに接続され、これは使用済み透析溶液を廃液コネクタ７３に運ぶ。
【0032】
本発明において、濾過ユニット５８は、血液チューブ回路１１２内の血液から比較的小さな化合物を除去するように構成されている点で、従来の血液透析濾過膜とは異なる膜５９を備える。膜は、５０ｋＤａ以下またはさらには４０ｋＤａ以下（例えば、３０ｋＤａ以下、１０ｋＤａ以下、５ｋＤａ以下または２ｋＤａ以下）の分画分子量（ＭＷＣＯ）を有するように構成される。
【0033】
血液ライン５２ａ、５２ｂおよび濾過ユニット５８を通る血液の流れは、動脈ライン５２ａ内に位置する血液ポンプ６０によって支配される。同様に、供給源７４からの未使用の透析液の流れは、供給ライン５４ｂ内の透析液ポンプ６８によって濾過ユニット５８を通って廃液コレクタ７３に至り、一方、透析液ライン５４内の圧力は、使用済み透析液ライン５４ａ内の圧力解放バルブによって支配される。代わりに、第２ポンプ６２が、圧力解放バルブの代わりに使用済み透析液ライン５４ａに含められてもよい。
【0034】
血液ライン５２ｂの静脈部に接続された１つ以上の注入ライン６６、８０、８１、８２も存在しうる。いくつかの実施形態において、これらの注入ラインのうちの１つ以上が患者の血管系（図示せず）に直接接続されるように適合される。１つ以上の注入ライン６６、８０、８１、８２のそれぞれは、別個のポンプを備えていてもよい。１つの実施形態において、ケトン体またはケトン体誘導体を含む注入液が、そのような注入ラインによって注入することができる。
【0035】
システム演算ユニット６４は、血液ポンプ６０、透析液ポンプ６８、および、１つ以上の注入ライン６６、８０、８１、８２の１つ以上のポンプ、および、圧力解放バルブまたは追加の透析液ポンプ６８との通信を提供し、使用中のこれらのデバイスに対する制御を提供する。代替の実施形態において、システム演算ユニット６４は、１つ以上の注入ライン６６、８０、８１、８２内のポンプのためのグラフィカルユーザインターフェースを介して、ユーザに適切な設定データを提供する。システム演算ユニットは、システム処理ユニット６４への情報及び命令の提供のための入力手段とも通信する。入力手段は、タッチスクリーンアレンジメントの使用によって制御されうるものなど、グラフィカルユーザインターフェースを備えうる。いくつかの実施形態において、入力手段は、キーボードを備えうる。いくつかの実施形態において、入力手段は、患者の血液および／または使用済みの透析液中の様々な物質または状態の濃度を検出するための１つ以上のセンサを含みうる。
【0036】
既に述べたように、本発明は、血液透析法に使用するための透析液を提供する。透析処置の基本的な考え方は、半透膜と透析液とを使用することによって、体液の組成を変化させることである。「体液」という用語は、典型的には血液に関するが、処置される対象の細胞内流体であってもよい。体液は、膜によって透析液から分離される。膜は、小さな分子に対しては透過性であるが、より大きな分子に対しては不透過性である。したがって、小さな体液成分は、膜を通過することができ、一方、より大きな成分は、膜が存在する場所に保持される。その結果、体液および透析液の濃度が変更する。これらの変化の駆動力は、拡散および浸透圧である。
【0037】
好気的解糖またはＷａｒｔｂｕｒｇ効果は、多くのがん細胞において共通であるので、以下の処置目標が設定されうる：
ａ）体液中のグルコースならびにクエン酸サイクルの成分、および、これらの成分に由来するアミノ酸、例えばピルビン酸、セリン、システイン、グリシン、アラニン、グルタミン酸、グルタミン、プロリン、アスパラギン酸、アスパラギン、トレオニンおよびそれらの誘導体の濃度の低減；
ｂ）好気的解糖中に形成される乳酸が局所的にｐＨを低下させうるため、体液中の生理的ｐＨ（７．２～７．６の範囲内のｐＨ）の維持；および、
ｃ）好気的解糖に依存する腫瘍が依存することができないエネルギ源を提供するためのケトン体の添加。
ａ）体液中のグルコースならびにクエン酸サイクルの成分、および、これらの成分に由来するアミノ酸、例えばピルビン酸、セリン、システイン、グリシン、アラニン、グルタミン酸、グルタミン、プロリン、アスパラギン酸、アスパラギン、トレオニンおよびそれらの誘導体の濃度の低減；
ｂ）好気的解糖中に形成される乳酸が局所的にｐＨを低下させうるため、体液中の生理的ｐＨ（７．２～７．６の範囲内のｐＨ）の維持；および、
ｃ）好気的解糖に依存する腫瘍が依存することができないエネルギ源を提供するためのケトン体の添加。
【0038】
図２Ａ、２Ｂおよび２Ｃは、本発明の処置目標および原理のいくつかの例を示す。各図は、特定の血液成分の濃度に関する通常の状態の例を開示する。図８Ａは、処置開始時の患者が、典型的に、０．２０～０．８ｍＭの範囲内のグルタミンＧＬＮａの実際の血中濃度を有することを示している。グルタミンを含まない、または、グルタミン含有量が非常に少ない透析液を用いる治療の間、グルタミンの実際の血中濃度は、０．１～０．５ｍＭの範囲内、例えば０．１５～０．３ｍＭの範囲内である所望の値ＧＬＮｂに低減される。図２Ｂは、治療開始時の患者が、典型的に、４～８ｍｍｏｌ／ｌの範囲内のグルコースＧＬＵＣＯＳＥａの実際の血中濃度を有することを示している。処置の間、グルコースを含まない、または、少量のグルコースの透析液で、グルコースの実際の血中濃度は、典型的に２～４ｍｍｏｌ／ｌの範囲内である所望の値ＧＬＵＣＯＳＥｂに低減される。最後に、図２Ｃは、血液が最初はβ－ヒドロキシ酪酸または生理学的に許容されるその塩もしくはエステル、例えば、ナトリウム塩などのケトン体をほとんど含まないことを示す。したがって、患者の血中のケトン体の濃度の実際の値ＫＥＴＯＮＥａは約０である。典型的に、最初に使用された未使用の透析液は、ケトン体を含まない、または、ケトン体を少量しか含まない。処置の間、そのようなケトンの血中濃度は、ケトン体を含む第２透析液の使用によって、１～１５ｍｍｏｌ／ｌの範囲内、例えば２～１２ｍＭの範囲内である所望の値ＫＥＴＯＮＥｂまで上昇しうる。透析液は、がん腫瘍の近傍における生理学的ｐＨの維持を容易にするために、重炭酸塩などの緩衝成分を含むべきである。
【0039】
図２Ｄは、通常の健康な細胞および通常の条件下のがん細胞の近傍におけるｐＨを示す。通常の健康な細胞は、中性から弱アルカリ性のｐＨに囲まれるが、がん細胞は、好気的解糖の結果としての乳酸を産生することに起因して、弱酸性のｐＨに囲まれることに留意すべきである。そのようなｐＨは、がん細胞を保護する免疫抑制効果を有しうる。そのようながん酸性度は、Ｈｕｂｅｒ ｅｔ ａｌ、Ｓｅｍｉｎａｒｓ ｉｎ Ｃａｎｃｅｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ、ｖｏｌ．４３（２０１７）、ｐｐ．７４８９に記載されている。
【0040】
図２Ｅは、そのような通常の健康な細胞およびがん細胞に対する、本透析液を使用する透析の可能な効果を示す。どちらの場合も、細胞近傍のｐＨ値は上昇している。この上昇は、２つの異なるメカニズムによって引き起こされる。まず、本透析液は、好気的解糖のための燃料を全く含まないか、または、非常に少ない量を含む。したがって、より少ない乳酸が生成される。次に、本透析液はまた、緩衝作用がある弱アルカリ性の重炭酸イオンを含み、これもｐＨを上昇させる。重炭酸塩は、末期腎疾患の治療のために透析液中で一般的に使用される緩衝物質である。処置の結果として、図２Ｅのがん細胞は、酸性環境に囲まれておらず、したがって、いかなる免疫抑制層によっても保護されていない。
【0041】
好気性解糖のための少量の燃料を含み、非免疫抑制のｐＨを有する環境における特定のがん細胞は、対応するがん細胞が通常の条件下にあるよりも弱いはずである。したがって、本透析液による透析処置は、そのようながん細胞を弱めるはずであり、それに従って処置されるがん細胞は、細胞増殖抑制剤に対してよりセンシティブであるはずであると仮定される。図２Ｆは、この仮定を示す。２つの図は、がん細胞ならびに異なる非がん細胞の死亡率を示す。がん細胞は急速に増殖するため、それらは、典型的な非がん細胞よりも細胞増殖抑制剤に対してよりセンシティブである。左の図は、透析なしの状況を概説し、右の図は、本発明による透析液を使用して透析処置が実行されるときの状況を示すものとする。
【0042】
参照実施例１
がん透析で得られた条件を模倣するために、細胞培養培地のグルコース、グルタミンおよびケトンの存在に対する種々のヒトがん細胞株の感受性を、選択された栄養素の枯渇とともに、試験が行われた。
がん透析で得られた条件を模倣するために、細胞培養培地のグルコース、グルタミンおよびケトンの存在に対する種々のヒトがん細胞株の感受性を、選択された栄養素の枯渇とともに、試験が行われた。
【0043】
試験１は、腎細胞がん、結腸がんおよび神経膠芽腫から確立されたヒトがん細胞株を選択して実施された。最初の試験では、グルコースとグルタミンのレベルの制限を伴い、ケトンおよびβ－ヒドロキシ酪酸の濃度を増加させた存在下における、増殖の細胞生存率に対する効果を調べた。細胞培養培地へのクエン酸塩の添加も試験した。細胞はこれらの条件下で３日間培養された後、細胞生存率が判定された。第１試験において、グルタミンが培養培地から枯渇したときに、細胞生存率に対する主な効果が見出された。
【0044】
材料および方法
細胞培養条件
ヒト結腸がん（ＨＣＴ１５、ＮＣＩ－Ｈ５０８およびＣＯＬＯ２０５）、腎細胞がん（７６９－Ｐ、７８６－ＯおよびＲＣＣ４）および神経膠芽腫（ＬＮ－１８、Ａ－１７２およびＵ－１１８ＭＧ）から確立された細胞株が、解析のために選択された。すべての細胞株は、Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ（Ｍｅｒｃｋ、Ｇｅｒｍａｎｙ）から購入したＲＣＣ４およびＨＣＴ１５を除いて、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ、ＬＧＣ ｓｔａｎｄａｒｄｓ、ＵＫ）から入手した。加えて、患者の腎摘出から単離されたヒトの初代腎細胞がん（ＲＣＣ）細胞が、試験に含まれた。培養条件は、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）によって推奨された通りであり、すなわち、１ｍＭのピルビン酸ナトリウムを添加したＤＭＥＭ培地で細胞を増殖させたが、条件をより類似させるためにＲＰＭＩ－１６４０培地にもピルビン酸ナトリウムを添加した。
細胞培養条件
ヒト結腸がん（ＨＣＴ１５、ＮＣＩ－Ｈ５０８およびＣＯＬＯ２０５）、腎細胞がん（７６９－Ｐ、７８６－ＯおよびＲＣＣ４）および神経膠芽腫（ＬＮ－１８、Ａ－１７２およびＵ－１１８ＭＧ）から確立された細胞株が、解析のために選択された。すべての細胞株は、Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ（Ｍｅｒｃｋ、Ｇｅｒｍａｎｙ）から購入したＲＣＣ４およびＨＣＴ１５を除いて、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ、ＬＧＣ ｓｔａｎｄａｒｄｓ、ＵＫ）から入手した。加えて、患者の腎摘出から単離されたヒトの初代腎細胞がん（ＲＣＣ）細胞が、試験に含まれた。培養条件は、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）によって推奨された通りであり、すなわち、１ｍＭのピルビン酸ナトリウムを添加したＤＭＥＭ培地で細胞を増殖させたが、条件をより類似させるためにＲＰＭＩ－１６４０培地にもピルビン酸ナトリウムを添加した。
【0045】
７６９－Ｐ、ＲＣＣ４、ＬＮ－１８、Ａ－１７２、Ｕ－１１８ＭＧおよび初代ＲＣＣ細胞は、ＤＭＥＭ高グルコース培地で培養し、一方、７８６－Ｏ、ＨＣＴ１５、ＮＣＩ－Ｈ５０８およびＣＯＬＯ２０５は、ＡＴＣＣの推奨に従ってＲＰＭＩ－１６４０培地で培養した。両方の培地に、１％のペニシリン－ストレプトマイシンおよび１０％の仔ウシ血清を添加した。細胞は拡大し、アリコートは、標準的な手順に従って凍結した。
【0046】
最適播種密度は、「対数フェーズ増殖を確実にするための細胞播種密度最適化プロトコル」に従って、９６ウェルプレート中の各細胞株について決定した。このプロトコルは、以下の通りである：
・単細胞懸濁液を調製し、細胞数／生存率を測定する。
・完全培地で細胞を約１６０，０００細胞／ｍＬに希釈する。９６ウェルプレートの上段に２００μＬの細胞を加える。１００μＬの完全培地をすべての他のウェルに分注する。ブランクの役割を果たすために、各プレート上に少数の培地のみのコントロールウェルが必要である。
・１２ウェルチャネルピペットを用いて、細胞調製液を１対２の割合でプレートで繰り返し希釈し、すなわち、１００μＬの細胞を下の行の１００μＬの培地に添加する。次いで、５０μＬの完全培地をすべてのウェルに添加する。プレートにカバーをする。
・３７℃、５％のＣＯ２でプレートを一晩培養する。
・プレートウェルに未使用の培地５０μＬを添加し、最終容量を２００μＬとし、３７℃、５％のＣＯ２で７２時間、培養する。
・製造業者のプロトコルに従って、Ｃｅｌｌ Ｔｉｔｅｒ Ｇｌｏ Ａｓｓａｙを用いて生存率を測定する。
・対数増殖が達成される細胞の濃度を同定するために、発光強度に対して対数細胞数をプロットする。
ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ－Ｇｌｏ Ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ Ｃｅｌｌ Ｖｉａｂｉｌｉｔｙ Ａｓｓａｙ（Ｐｒｏｍｅｇａ）が、生存率の読み出しとして使用された。
・単細胞懸濁液を調製し、細胞数／生存率を測定する。
・完全培地で細胞を約１６０，０００細胞／ｍＬに希釈する。９６ウェルプレートの上段に２００μＬの細胞を加える。１００μＬの完全培地をすべての他のウェルに分注する。ブランクの役割を果たすために、各プレート上に少数の培地のみのコントロールウェルが必要である。
・１２ウェルチャネルピペットを用いて、細胞調製液を１対２の割合でプレートで繰り返し希釈し、すなわち、１００μＬの細胞を下の行の１００μＬの培地に添加する。次いで、５０μＬの完全培地をすべてのウェルに添加する。プレートにカバーをする。
・３７℃、５％のＣＯ２でプレートを一晩培養する。
・プレートウェルに未使用の培地５０μＬを添加し、最終容量を２００μＬとし、３７℃、５％のＣＯ２で７２時間、培養する。
・製造業者のプロトコルに従って、Ｃｅｌｌ Ｔｉｔｅｒ Ｇｌｏ Ａｓｓａｙを用いて生存率を測定する。
・対数増殖が達成される細胞の濃度を同定するために、発光強度に対して対数細胞数をプロットする。
ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ－Ｇｌｏ Ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ Ｃｅｌｌ Ｖｉａｂｉｌｉｔｙ Ａｓｓａｙ（Ｐｒｏｍｅｇａ）が、生存率の読み出しとして使用された。
【0047】
試験１．
各細胞株について、上記で決定した最適な数の細胞を、０日目に９６ウェルプレートに播種した。翌日、細胞はＰＢＳ中で洗浄され、培地は、グルコースまたはＬ－グルタミンを含まないＤＭＥＭ（Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）またはＲＰＭＩ－１６４０培地（Ｓａｖｅｅｎ Ｗｅｒｎｅｒ）に変更され、表３およびファイル「プレート概略」に概説されるように栄養素を添加した。各条件で３つのウェルが処置された。テスト条件培地で３日間培養した後、毎日培地を交換し、ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ－Ｇｌｏ生存率テストを用いて細胞生存率が判定された。各細胞株について、試験が３回繰り返された。
各細胞株について、上記で決定した最適な数の細胞を、０日目に９６ウェルプレートに播種した。翌日、細胞はＰＢＳ中で洗浄され、培地は、グルコースまたはＬ－グルタミンを含まないＤＭＥＭ（Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）またはＲＰＭＩ－１６４０培地（Ｓａｖｅｅｎ Ｗｅｒｎｅｒ）に変更され、表３およびファイル「プレート概略」に概説されるように栄養素を添加した。各条件で３つのウェルが処置された。テスト条件培地で３日間培養した後、毎日培地を交換し、ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ－Ｇｌｏ生存率テストを用いて細胞生存率が判定された。各細胞株について、試験が３回繰り返された。
【0048】
【表1】
【0049】
【表2】
【0050】
【表3】
【0051】
試験１で用いた異なる増殖条件の組み合わせを示すマトリクス。＊グルコースの量は、各細胞株についての標準培養培地に存在する濃度のパーセンテージとして示される。示されている場合、１ｍＭのクエン酸塩が、培地に添加された。示された栄養素が、グルコースまたはＬ－グルタミンを含まないＤＭＥＭ（Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）またはＲＰＭＩ－１６４０培地（Ｓａｖｅｅｎ Ｗｅｒｎｅｒ）に添加された。
【0052】
【表4】
【0053】
試験１の結果が、図６に示すチャートに示される。存在するグルタミンおよび細胞培養培地の減少と、細胞増殖の減少と、の間の明確な関連が示される。
【0054】
試験２．
上述したように、試験１において、ＡＴＣＣから推奨される培養条件に従った。しかしながら、ピルビン酸は、結果に影響を及ぼしうる潜在的なエネルギ源である。したがって、試験２において、試験１と同じ培養条件を、ピルビン酸ナトリウムを添加しないＤＭＥＭ培地の２つの細胞株、Ａ１７２（神経膠芽腫）およびＲＣＣ４（腎細胞がん）で試験した。結果が図７に示される。試験１と同様に、存在するグルタミンおよび細胞培養培地の減少と、細胞増殖の減少と、の間の明確な関連が示される。しかしながら、細胞培養培地にピルビン酸塩が存在しない場合、結果は、はるかに顕著である。また、ＢＯＨＢケトンの濃度の増加は、細胞の増殖も抑制するようである。
上述したように、試験１において、ＡＴＣＣから推奨される培養条件に従った。しかしながら、ピルビン酸は、結果に影響を及ぼしうる潜在的なエネルギ源である。したがって、試験２において、試験１と同じ培養条件を、ピルビン酸ナトリウムを添加しないＤＭＥＭ培地の２つの細胞株、Ａ１７２（神経膠芽腫）およびＲＣＣ４（腎細胞がん）で試験した。結果が図７に示される。試験１と同様に、存在するグルタミンおよび細胞培養培地の減少と、細胞増殖の減少と、の間の明確な関連が示される。しかしながら、細胞培養培地にピルビン酸塩が存在しない場合、結果は、はるかに顕著である。また、ＢＯＨＢケトンの濃度の増加は、細胞の増殖も抑制するようである。
【0055】
本明細書に引用されるすべての特許、特許文献および参考文献は、それぞれが個別に組み込まれるかのように、その全体が組み込まれる。本開示は例示的な実施形態を参照して提供されており、限定的な意味で解釈されることを意味するものではない。前述のように、当業者は、他の様々な例示的な応用が、本明細書で説明される装置および方法の有益な特徴を利用するために、本明細書で説明される技法を使用しうることを認識するのであろう。例示的な実施形態の様々な修正、ならびに、本開示の追加の実施形態は、この説明を参照することによって明らかになるのであろう。
【0056】
実施例２
試験デザイン
試験デザイン
【0057】
増殖培地
栄養制限されたケトン産生環境がｉｎ ｖｉｔｒｏでのがん細胞の増殖に及ぼす効果を調べるため、３つの異なる細胞培養培地が調製された。培地Ａは、細胞株が通常培養される完全なＲＰＭＩ１６４０培地であった。培地Ｂは、通常のヒト血清に見られる条件の近似として使用された。グルコース、グルタミン、セリン、グリシンおよびアルギニンのレベルは、ヒト血清中に見られる通常の生理学的レベルに適合するように調整された。これらの栄養素は、エネルギ源としてのそれらの報告された使用、および、がん細胞の代謝状態に対する効果に基づいて選択された。培地Ｃは、栄養制限されたケトン体を産生するがん透析条件を模倣するために使用された。ここで、選択された栄養素のレベルは、培地Ｂの生理学的レベルの半分に低減され、ケトン体ＢＯＨＢが添加された。
各培地の構成は、材料および方法に記載され、表５～６にリストされている。
栄養制限されたケトン産生環境がｉｎ ｖｉｔｒｏでのがん細胞の増殖に及ぼす効果を調べるため、３つの異なる細胞培養培地が調製された。培地Ａは、細胞株が通常培養される完全なＲＰＭＩ１６４０培地であった。培地Ｂは、通常のヒト血清に見られる条件の近似として使用された。グルコース、グルタミン、セリン、グリシンおよびアルギニンのレベルは、ヒト血清中に見られる通常の生理学的レベルに適合するように調整された。これらの栄養素は、エネルギ源としてのそれらの報告された使用、および、がん細胞の代謝状態に対する効果に基づいて選択された。培地Ｃは、栄養制限されたケトン体を産生するがん透析条件を模倣するために使用された。ここで、選択された栄養素のレベルは、培地Ｂの生理学的レベルの半分に低減され、ケトン体ＢＯＨＢが添加された。
各培地の構成は、材料および方法に記載され、表５～６にリストされている。
【0058】
酸素レベル
ヒトがん細胞株は、通常、大気中の酸素レベル（２１％のＯ２）で確立および培養されるが、組織中の生理的酸素レベルはかなり低く、３～１３％で変動する［Ｗａｒｄ、Ｂｉｏｃｈｉｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａｃｔａ ２００８；１７７７：１－１４］。腫瘍微小環境内では、がん細胞の急速な増殖速度が、しばしば奇形で欠陥のある血管系と組み合わさり、０～５％の範囲の酸素レベルを有する低酸素領域をしばしばもたらす。酸素レベルがエネルギ代謝に及ぼす効果［Ｘｉｅ ｅｔ ａｌ、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２０１７；２９２：１６８２５－１６８３２］を考慮し、さらにｉｎ ｖｉｖｏでの生理学的条件を模倣するために、培地Ａ、ＢおよびＣにおけるがん細胞株の増殖が、環境の２１％のＯ２、および、より生理学的な５％のＯ２の両方で試験された。
ヒトがん細胞株は、通常、大気中の酸素レベル（２１％のＯ２）で確立および培養されるが、組織中の生理的酸素レベルはかなり低く、３～１３％で変動する［Ｗａｒｄ、Ｂｉｏｃｈｉｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａｃｔａ ２００８；１７７７：１－１４］。腫瘍微小環境内では、がん細胞の急速な増殖速度が、しばしば奇形で欠陥のある血管系と組み合わさり、０～５％の範囲の酸素レベルを有する低酸素領域をしばしばもたらす。酸素レベルがエネルギ代謝に及ぼす効果［Ｘｉｅ ｅｔ ａｌ、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２０１７；２９２：１６８２５－１６８３２］を考慮し、さらにｉｎ ｖｉｖｏでの生理学的条件を模倣するために、培地Ａ、ＢおよびＣにおけるがん細胞株の増殖が、環境の２１％のＯ２、および、より生理学的な５％のＯ２の両方で試験された。
【0059】
ケトン
ケトン体のアセト酢酸（Ａｃａｃ）、ＢＯＨＢおよびアセトンは、絶食または飢餓の間に肝臓によって産生される。ＢＯＨＢは哺乳類における主要なケトン体であり、Ａｃａｃは約２０％を占める。がん細胞に対するケトンの効果を研究する公表されたｉｎ ｖｉｔｒｏ研究の大半は、主にＢＯＨＢに焦点を当てているが、ＢＯＨＢと比較してＡｃａｃの添加による異なる効果を示唆する研究がある［Ｖａｌｌｅｊｏ ｅｔ ａｌ、Ｊ Ｎｅｕｒｏｏｎｃｏｌ ２０２０；１４７：３１７－３２６］。両方のケトンが存在するｉｎ ｖｉｖｏケトン産生状況をさらに模倣し、ＢＯＨＢとＡｃａｃとの効果の違いの可能性を調査するために、Ａｃａｃもまた試験に含められた。
ケトン体のアセト酢酸（Ａｃａｃ）、ＢＯＨＢおよびアセトンは、絶食または飢餓の間に肝臓によって産生される。ＢＯＨＢは哺乳類における主要なケトン体であり、Ａｃａｃは約２０％を占める。がん細胞に対するケトンの効果を研究する公表されたｉｎ ｖｉｔｒｏ研究の大半は、主にＢＯＨＢに焦点を当てているが、ＢＯＨＢと比較してＡｃａｃの添加による異なる効果を示唆する研究がある［Ｖａｌｌｅｊｏ ｅｔ ａｌ、Ｊ Ｎｅｕｒｏｏｎｃｏｌ ２０２０；１４７：３１７－３２６］。両方のケトンが存在するｉｎ ｖｉｖｏケトン産生状況をさらに模倣し、ＢＯＨＢとＡｃａｃとの効果の違いの可能性を調査するために、Ａｃａｃもまた試験に含められた。
【0060】
材料および方法
【0061】
細胞株
すべての細胞株は、Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ（Ｍｅｒｃｋ）からのＲＣＣ４を除いて、ＡＴＣＣ（ＡＴＣＣ、ＬＧＣ ｓｔａｎｄａｒｄｓ）から購入した。スウェーデン、イェーテボリにあるＳａｈｌｇｒｅｎｓｋａ大学病院で実施された腎摘出術から、患者のインフォームドコンセントの後、地域の倫理委員会の許可を得て、ヒトの初代腎細胞がん細胞が単離された。最適播種密度は、標準細胞培養培地で３日間培養した９６ウェルプレートにおいて、各細胞株について決定した。
すべての細胞株は、Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ（Ｍｅｒｃｋ）からのＲＣＣ４を除いて、ＡＴＣＣ（ＡＴＣＣ、ＬＧＣ ｓｔａｎｄａｒｄｓ）から購入した。スウェーデン、イェーテボリにあるＳａｈｌｇｒｅｎｓｋａ大学病院で実施された腎摘出術から、患者のインフォームドコンセントの後、地域の倫理委員会の許可を得て、ヒトの初代腎細胞がん細胞が単離された。最適播種密度は、標準細胞培養培地で３日間培養した９６ウェルプレートにおいて、各細胞株について決定した。
【0062】
培養条件および添加物
３７℃および５％のＣＯ２の加湿チャンバ中、１０％の血清、２００ｍＭのＬ－グルタミンおよび１％のペニシリン－ストレプトマイシン（ＰＥＳＴ）を加えたＲＰＭＩ－１６４０培地（３１８７０－０２５ ＧＩＢＣＯ）で、細胞は維持された。低酸素状態（５％のＯ２）のために、細胞は、Ｇａｌａｘｙ １４ Ｓ ＣＯ２ ｉｎｃｕｂａｔｏｒ（Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ）中で維持し、Ｏ２レベルを５％に調整するためにＮ２が使用された。
３７℃および５％のＣＯ２の加湿チャンバ中、１０％の血清、２００ｍＭのＬ－グルタミンおよび１％のペニシリン－ストレプトマイシン（ＰＥＳＴ）を加えたＲＰＭＩ－１６４０培地（３１８７０－０２５ ＧＩＢＣＯ）で、細胞は維持された。低酸素状態（５％のＯ２）のために、細胞は、Ｇａｌａｘｙ １４ Ｓ ＣＯ２ ｉｎｃｕｂａｔｏｒ（Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ）中で維持し、Ｏ２レベルを５％に調整するためにＮ２が使用された。
【0063】
培地Ａ、ＢおよびＣは、以下のように調整された。
【0064】
培地Ａ：１％のＰＥＳＴ、２００ｍＭのＬ－グルタミンおよび１０％の透析血清を添加したＲＰＭＩ１６４０（３１８７０－０２５、ＧＩＢＣＯ）。アミノ酸などの低分子の量を減らすために、透析血清が使用された。
【0065】
培地ＢおよびＣは、Ｌ－グルタミン、グルコースおよびアミノ酸を含まないＲＰＭＩ１６４０修正培地粉末（Ｒ９０１０－０１、ＵＳ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ）から調製した。１Ｌ培地のために、７．４ｇの粉末が９００ｍｌの滅菌水に加熱せずに溶解され、２ｇの重炭酸ナトリウムが添加された。表５にリストされたアミノ酸が、完全なＲＰＭＩ１６４０培地と同じ濃度で添加された（表５）。すべての添加の後、培地は、０．２２ｕｍ膜を通して濾過することによって滅菌され、２つのボトルに分けられた。
Ｂ培地において、生理的状態を模倣するために、Ｍａｙｏ Ｃｌｉｎｉｃ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（ｈｔｔｐｓ：／／ｗｗｗ．ｍａｙｏｃｌｉｎｉｃｌａｂｓ．ｃｏｍ／ｔｅｓｔ－ｃａｔａｌｏｇ／Ｃｌｉｎｉｃａｌ＋ａｎｄ＋Ｉｎｔｅｒｐｒｅｔｉｖｅ／９２６５）からのデータに基づいて、グルタミン、セリン、グリシン、アルギニンおよびグルコースのレベルが、ヒト血清中で測定されたレベルの中央値に設定された。
Ｃ培地におけるがん透析条件をモデル化するために、これらの栄養素のレベルは、生理学的レベルの５０％まで低下させた。培地Ａと同様に、１％のＰＥＳＴおよび１０％の透析血清が、培地ＢおよびＣに添加された。培地Ａ～Ｃ中の選択された栄養素の濃度が表６にまとめられる。ピルビン酸ナトリウム、すなわち、細胞培養培地における一般的な添加物は、使用された培地のいずれにも存在しなかった。
Ｂ培地において、生理的状態を模倣するために、Ｍａｙｏ Ｃｌｉｎｉｃ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（ｈｔｔｐｓ：／／ｗｗｗ．ｍａｙｏｃｌｉｎｉｃｌａｂｓ．ｃｏｍ／ｔｅｓｔ－ｃａｔａｌｏｇ／Ｃｌｉｎｉｃａｌ＋ａｎｄ＋Ｉｎｔｅｒｐｒｅｔｉｖｅ／９２６５）からのデータに基づいて、グルタミン、セリン、グリシン、アルギニンおよびグルコースのレベルが、ヒト血清中で測定されたレベルの中央値に設定された。
Ｃ培地におけるがん透析条件をモデル化するために、これらの栄養素のレベルは、生理学的レベルの５０％まで低下させた。培地Ａと同様に、１％のＰＥＳＴおよび１０％の透析血清が、培地ＢおよびＣに添加された。培地Ａ～Ｃ中の選択された栄養素の濃度が表６にまとめられる。ピルビン酸ナトリウム、すなわち、細胞培養培地における一般的な添加物は、使用された培地のいずれにも存在しなかった。
【0066】
【表5】
【0067】
【表6】
【0068】
アミノ酸および他の添加剤は、Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈから購入した。
すべての栄養素を添加した後、ｐＨが測定された。ｐＨ値は、以下の通りであった：１０％の非透析ＦＢＳ、１％のＰＥＳＴおよび２００ｍＭのＬ－グルタミンを含む完全なＲＰＭＩ１６４０ ｐＨ ７．７８；培地Ａ ｐＨ ７．５６；培地Ｂ ｐＨ ７．６２および培地Ｃ ｐＨ ７．５７。
すべての栄養素を添加した後、ｐＨが測定された。ｐＨ値は、以下の通りであった：１０％の非透析ＦＢＳ、１％のＰＥＳＴおよび２００ｍＭのＬ－グルタミンを含む完全なＲＰＭＩ１６４０ ｐＨ ７．７８；培地Ａ ｐＨ ７．５６；培地Ｂ ｐＨ ７．６２および培地Ｃ ｐＨ ７．５７。
【0069】
ＤＬ－β－ヒドロキシ酪酸ナトリウム塩（Ｈ６５０１、Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ）およびアセト酢酸リチウム（Ａ８５０９、Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ）のストック溶液は、水で調製され、滅菌濾過し、分注し、－２０℃で保存した。Ｌｉ－Ａｃａｃ中のリチウムの添加のためのコントロールとして、塩化リチウム（Ｌ７０２６、Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ）が使用された。
【0070】
生存率アッセイ
ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ－Ｇｌｏ Ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ Ｃｅｌｌ Ｖｉａｂｉｌｉｔｙ Ａｓｓａｙ（Ｐｒｏｍｅｇａ）が、製造者のインストラクションに従って細胞数の読み出しとして使用された。図７～８に示される実験において、２つのプレートが播種され、処理された。１セットのプレートが、乳酸測定（下記参照）およびＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏ－ａｓｓａｙのための培地の収集に使用された。プレートの他のセットは、実験終了時に－８０℃で凍結した。凍結プレートは、ウェルあたりのＤＮＡ量を測定するＣｙＱｕａｎｔ ｃｅｌｌ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ ａｓｓａｙ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ）のために意図された。ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏ ａｓｓａｙおよびＣｙＱｕａｎｔ ａｓｓａｙの両方による細胞の量の分析は、生存率または増殖速度に対する培養条件の効果が細胞あたりのＡＴＰレベルの同時変化によって隠されないことを確実にする。
ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ－Ｇｌｏ Ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ Ｃｅｌｌ Ｖｉａｂｉｌｉｔｙ Ａｓｓａｙ（Ｐｒｏｍｅｇａ）が、製造者のインストラクションに従って細胞数の読み出しとして使用された。図７～８に示される実験において、２つのプレートが播種され、処理された。１セットのプレートが、乳酸測定（下記参照）およびＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏ－ａｓｓａｙのための培地の収集に使用された。プレートの他のセットは、実験終了時に－８０℃で凍結した。凍結プレートは、ウェルあたりのＤＮＡ量を測定するＣｙＱｕａｎｔ ｃｅｌｌ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ ａｓｓａｙ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ）のために意図された。ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏ ａｓｓａｙおよびＣｙＱｕａｎｔ ａｓｓａｙの両方による細胞の量の分析は、生存率または増殖速度に対する培養条件の効果が細胞あたりのＡＴＰレベルの同時変化によって隠されないことを確実にする。
【0071】
乳酸測定のための培地の収集
図７～８に示される実験において、３日目に細胞培養液を収集し、新しい９６ウェルプレートに移し、－８０℃で凍結した。この培地は、代謝状態の測定として、排出された乳酸の量を分析するために使用することができる。乳酸測定のためのいくつかのキットが利用可能であり、例えば、Ｌａｃｔａｔｅ－Ｇｌｏ ａｓｓａｙ（Ｊ５０２１、Ｐｒｏｍｅｇａ）は、血清が存在するアッセイにおいて使用するためにデザインされている。
図７～８に示される実験において、３日目に細胞培養液を収集し、新しい９６ウェルプレートに移し、－８０℃で凍結した。この培地は、代謝状態の測定として、排出された乳酸の量を分析するために使用することができる。乳酸測定のためのいくつかのキットが利用可能であり、例えば、Ｌａｃｔａｔｅ－Ｇｌｏ ａｓｓａｙ（Ｊ５０２１、Ｐｒｏｍｅｇａ）は、血清が存在するアッセイにおいて使用するためにデザインされている。
【0072】
結果
【0073】
試験２は、以下の質問に答えるためにデザインされた：
－選択されたがん細胞株の増殖は、酸素正常状態または低酸素状態での培地Ｃで模倣されたがん透析条件によって影響を受けているか？
－選択されたがん細胞株の増殖は、酸素正常状態または低酸素状態での培地Ｃで模倣されたがん透析条件によって影響を受けているか？
【0074】
培地Ａ、ＢおよびＣでの増殖
第１のステップとして、培地Ａ～Ｃが材料および方法に記載されるように調製され、これらの培地で増殖するがん細胞株の能力が試験された。選択された細胞株について、各培地における経時的な増殖曲線が確立された。細胞の個数は、酸素正常状態（２１％のＯ２）において、培地Ａ～Ｃ中で１、２および３日間培養した後に分析された。
図５に示されるように、培地Ｂのように、選択された栄養素をより生理学的なレベルに減少させると、培地Ａと比較して、Ａ５４９肺がんおよびＲＣＣ４腎がん細胞株の増殖速度が有意に低下した。
第１のステップとして、培地Ａ～Ｃが材料および方法に記載されるように調製され、これらの培地で増殖するがん細胞株の能力が試験された。選択された細胞株について、各培地における経時的な増殖曲線が確立された。細胞の個数は、酸素正常状態（２１％のＯ２）において、培地Ａ～Ｃ中で１、２および３日間培養した後に分析された。
図５に示されるように、培地Ｂのように、選択された栄養素をより生理学的なレベルに減少させると、培地Ａと比較して、Ａ５４９肺がんおよびＲＣＣ４腎がん細胞株の増殖速度が有意に低下した。
【0075】
正常酸素状態および低酸素状態における培地Ａ～Ｃでのがん細胞の増殖
図６において、Ａ５４９肺がんおよびＲＣＣ４腎がん細胞株ならびに初代腎がん（ＲＣＣ）細胞について、酸素正常状態および低酸素状態における培地Ａ～Ｃ中での３日間の培養後の細胞の量が示される。また、酸素正常状態における増殖速度は、培地Ａと比較して、培地Ｂおよび培地Ｃにおいて減少した。同じパターンは、５％のＯ２で培養された細胞において見出された。また、ＲＣＣ４において、培地Ｃの低栄養素レベルおよびＢＯＨＢの添加は、培地Ｂの条件と比較して有意な追加の効果を有さなかった。
Ａ５４９について、培地ＢとＣの間で増殖速度のわずかではあるが有意な減少が認められたが、酸素正常状態でのみであった。
図６において、Ａ５４９肺がんおよびＲＣＣ４腎がん細胞株ならびに初代腎がん（ＲＣＣ）細胞について、酸素正常状態および低酸素状態における培地Ａ～Ｃ中での３日間の培養後の細胞の量が示される。また、酸素正常状態における増殖速度は、培地Ａと比較して、培地Ｂおよび培地Ｃにおいて減少した。同じパターンは、５％のＯ２で培養された細胞において見出された。また、ＲＣＣ４において、培地Ｃの低栄養素レベルおよびＢＯＨＢの添加は、培地Ｂの条件と比較して有意な追加の効果を有さなかった。
Ａ５４９について、培地ＢとＣの間で増殖速度のわずかではあるが有意な減少が認められたが、酸素正常状態でのみであった。
【0076】
３人の患者の初代腎がん細胞が、本試験に含められた。確立された細胞株と同様に、これらの細胞は、培地Ａと比較して、培地ＢおよびＣにおいて、減少した増殖速度を示した。
【0077】
全体として、酸素圧を２１％（正常酸素状態）から５％のＯ２（低酸素状態）に変化させることは、これらの細胞の増殖速度に非常に限られた効果しか及ぼさなかった。
【0078】
次に、試験にＡｃａｃも含めることとし、培地Ａ～ＣにおいてＢＯＨＢおよびＡｃａｃの単独または組み合わせた存在下で培養した細胞の生存率を分析した。実験は、２１％および５％のＯ２において行った。実験は、神経膠腫細胞株Ａ１７２およびＵ１１８ＭＧを用いて行われた。
【0079】
キラル分子であるＢＯＨＢは、２つの光学異性体、Ｄ－およびＬ－ＢＯＨＢとして存在する。Ｄ－ＢＯＨＢは、通常、ヒトにおいて産生され、代謝される。この試験で使用されたＢＯＨＢ塩は、５０：５０のＤ－およびＬ－ＢＯＨＢの混合物を含有する。活性なＤ型の高い存在を確実にするために、添加したＢＯＨＢの総濃度は１６ｍＭに増加させ、８ｍＭのＤ－ＢＯＨＢのレベルを得た。活性なケトンの総濃度を一定に保つために、８ｍＭのＡｃａｃが使用され、両方のケトンの組合せについて、レベルは、４ｍＭのＡｃａｃおよび８ｍＭのＢＯＨＢ（４ｍＭのＤ－ＢＯＨＢを含む）に調整された。
ｉｎ ｖｉｔｒｏで利用可能なＡｃａｃは、リチウム塩の形態である。リチウム自体ががん細胞の生存率に影響を及ぼしうるため［Ｃｏｈｅｎ－Ｈａｒａｚｉ ｅｔ ａｌ、Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ ２０２０；４０：３８３１－３８３７］、８ｍＭのＬｉＣｌが８ｍＭのＡｃａｃデータポイントのコントロールとして使用され、４ｍＭのＬｉＣｌが４ｍＭのＡｃａｃ／８ｍＭのＢＯＨＢデータのコントロールとして使用された。
実験の最後に、代謝状態の測定としての乳酸レベルの後の判定を可能するために、各ウェルからの培養培地が収集され凍結された。さらに、２つの実験が行われ、１つのセットのプレートは、ＣｙＱｕａｎｔ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ ａｓｓａｙを用いた細胞数の後の定量化のために凍結され、他のセットの細胞の量は、ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏ ｖｉａｂｉｌｉｔｙ ａｓｓａｙによって分析された。
ｉｎ ｖｉｔｒｏで利用可能なＡｃａｃは、リチウム塩の形態である。リチウム自体ががん細胞の生存率に影響を及ぼしうるため［Ｃｏｈｅｎ－Ｈａｒａｚｉ ｅｔ ａｌ、Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ ２０２０；４０：３８３１－３８３７］、８ｍＭのＬｉＣｌが８ｍＭのＡｃａｃデータポイントのコントロールとして使用され、４ｍＭのＬｉＣｌが４ｍＭのＡｃａｃ／８ｍＭのＢＯＨＢデータのコントロールとして使用された。
実験の最後に、代謝状態の測定としての乳酸レベルの後の判定を可能するために、各ウェルからの培養培地が収集され凍結された。さらに、２つの実験が行われ、１つのセットのプレートは、ＣｙＱｕａｎｔ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ ａｓｓａｙを用いた細胞数の後の定量化のために凍結され、他のセットの細胞の量は、ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏ ｖｉａｂｉｌｉｔｙ ａｓｓａｙによって分析された。
【0080】
ＢＯＨＢおよびＡｃａｃを単独または組み合わせて添加した場合の効果
図７～８に示されるように、最初の実験は、Ａ１７２およびＵ１１８ＭＧ神経膠腫細胞株の増殖に対する栄養素減少条件における高ケトン濃度の効果に関して有望なデータを与えた。
図７～８に示されるように、最初の実験は、Ａ１７２およびＵ１１８ＭＧ神経膠腫細胞株の増殖に対する栄養素減少条件における高ケトン濃度の効果に関して有望なデータを与えた。
【0081】
培地Ａにおいて、酸素正常状態および低酸素状態の両方において、１６ｍＭのＢＯＨＢ単独の添加は、Ａ１７２またはＵ１１８ＭＧセルにおいて増殖阻害効果を有さず、８ｍＭのＡｃａｃは、８ｍＭのＬｉＣｌコントロールと比較して細胞の数をさらに減少させなかった。
しかしながら、８ｍＭのＢＯＨＢと組み合わせた４ｍＭのＡｃａｃの添加は、４ｍＭのＬｉＣｌコントロールと比較して、酸素正常状態における培地ＡのＡ１７２細胞の個数を有意に減少させた。
しかしながら、８ｍＭのＢＯＨＢと組み合わせた４ｍＭのＡｃａｃの添加は、４ｍＭのＬｉＣｌコントロールと比較して、酸素正常状態における培地ＡのＡ１７２細胞の個数を有意に減少させた。
【0082】
培地Ｂからの結果の解釈は、正常酸素状態のコントロールサンプルにおける技術的エラーによって妨げられた。しかしながら、低酸素状態のＡ１７２細胞において、ＢＯＨＢは、ＢＯＨＢを含まない培地Ｂの量の約７０％まで細胞数を有意に減少させた。同様の減少が低酸素Ｕ１１８ＭＧ細胞でも見られた。
さらに、培地Ｂにおいて、８ｍＭのＡｃａｃは、両方の細胞株において、８ｍＭのＬｉＣｌコントロールと比較して細胞数を有意に減少させたが、２１％のＯ２でのみであった。
さらに、培地Ｂにおいて、８ｍＭのＡｃａｃは、両方の細胞株において、８ｍＭのＬｉＣｌコントロールと比較して細胞数を有意に減少させたが、２１％のＯ２でのみであった。
【0083】
培地Ｃにおいて、８ｍＭのＡｃａｃ単独の添加は、８ｍＭのＬｉＣｌコントロールと比較して細胞の量を有意に減少させなかった。しかしながら、両方の細胞株、および、２１％および５％のＯ２の両方において、１６ｍＭのＢＯＨＢの添加は、ＢＯＨＢを含まないＣ培地と比較して、細胞の数を約３０％に有意に減少させた。
また、ＢＯＨＢとＡｃａｃとの組合せは、４ｍＭのＬｉＣｌコントロールと比較して、両方の細胞株、および、両方の酸素レベルにおいて、培地Ｃにおいて有意に少ない細胞をもたらした。
また、ＢＯＨＢとＡｃａｃとの組合せは、４ｍＭのＬｉＣｌコントロールと比較して、両方の細胞株、および、両方の酸素レベルにおいて、培地Ｃにおいて有意に少ない細胞をもたらした。
【0084】
これらの結果は、高レベルのＢＯＨＢまたはＡｃａｃ単独の添加が、培地Ａのような栄養豊富な環境において神経膠腫細胞の増殖を阻害しないことを示唆する。また、より生理的な栄養レベルを有する培地Ｂにおいて、ケトンを添加した場合にはわずかな差異しか見られなかった。最大の効果は培地Ｃで見出され、１６ｍＭのＢＯＨＢ単独および８ｍＭのＢＯＨＢと４ｍＭのＡｃａｃとの組合せの両方が、低酸素状態および酸素正常状態の両方で、それぞれのコントロールと比較して細胞数を有意に減少させた。これは、８ｍＭのＡｃａｃを単独で添加した場合には見られなかった。
【0085】
しかしながら、酸素正常状態の条件における培地ＢおよびＣに焦点を当てた、これらの実験の繰り返しは、一貫性のない結果を与えた。図９～１１は、神経膠腫細胞株Ａ１７２およびＵ１１８ＭＧ、および、腎がん細胞株ＲＣＣ４についての実験２～６からの組み合わされた結果を示す。ＢＯＨＢまたはＡｃａｃを別々に添加した場合、特にＡ１７２細胞株において、培地Ｃにおいて増殖低下の傾向が見られた。
【0086】
実施例２の第１および第２パートからの結果は、がん細胞株が栄養制限環境においてより遅く増殖することを示した。試験された細胞株は、増殖速度は低下したが、培地ＢおよびＣにおいて生存可能であるように思われた。３日目の細胞の光学的検査は、死細胞の徴候である可能性がある浮遊細胞を明らかにしなかった。
【0087】
本試験の第３パートのデータは、栄養制限培地Ｃの高レベルのＢＯＨＢまたはＢＯＨＢとＡｃａｃとの組合せに対する神経膠腫細胞株の感受性の増加を示している。しかしながら、このような感受性は、腎がん細胞株ＲＣＣ４については見出されなかった。
【0088】
実施例３
この実施例において、ラットは、水およびケトン食を与えられ、その後、透析を受けた。透析が血液中のケトン、乳酸および実際のＨＣＯ３に及ぼす影響が判定された。
この実施例において、ラットは、水およびケトン食を与えられ、その後、透析を受けた。透析が血液中のケトン、乳酸および実際のＨＣＯ３に及ぼす影響が判定された。
【0089】
方法
【0090】
動物
実験は、実験の５日前に水分およびケトン食（Ｋｌｉｂａ－Ｎａｆａｇ ２２０１ Ｋｅｔｏｇｅｎｉｃ ｄｉｅｔ ＸＬ７５：ＸＰ１０）を与えられた３１６ｇ（３０５～３１８）の平均体重を有する６匹の雄のＳｐｒａｇｕｅ－Ｄａｗｌｅｙラットにおいて行った。動物は、米国国立衛生研究所の実験動物の飼育と使用に関するガイドラインに従って処置した。ルンド大学の動物研究倫理委員会は実験を承認した（Ｄｎｒ ５．８．１８－０８３８６／２０２２）。ラットは、空気中に５％のイソフルラン（Ｉｓｏｂａｎ、Ａｂｂｏｔ Ｓｔｏｃｋｈｏｌｍ、Ｓｗｅｄｅｎ）の連続供給が接続されたカバー付きガラス容器に注意深く入れられた。完全に麻酔された後、ラットは、容器から穏やかに持ち上げられた。麻酔は、空気中に１．６～１．８％のイソフルランを用いて、小さなマスクで送達され維持された。気管切開後、ラットは、呼気終末陽圧４ｃｍＨ２Ｏを用いた容量制御型の人工呼吸器（Ｕｇｏ Ｂａｓｉｌｅ；Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ａｐｐａｒａｔｕｓ， Ｃｏｍｅｒｉｏ，Ｉｔａｌｙ）に接続された。体温は、フィードバック制御されたヒーティングパッドを用いて、３７．１℃から３７．３℃に維持された。呼気終末期ｐＣＯ２は、４．８から５．５ｋＰａの間に維持された（Ｃａｐｓｔａｒ－１００、ＣＷＥ、Ａｒｄｍｏｒｅ、Ｐａ）。心拍数および平均動脈圧（ＭＡＰ）の連続的なモニタのために、および、グルコース、尿素、電解質、ヘモグロビンおよびヘマトクリット（Ｉ－ＳＴＡＴ、Ａｂｂｏｔｔ、Ａｂｂｏｔｔ Ｐａｒｋ、ＩＬ）および血中ケトン（ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ Ｐｒｅｃｉｓｉｏｎ Ｎｅｏ、Ａｂｂｏｔｔ、Ａｂｂｏｔｔ Ｐａｒｋ、ＩＬ）を測定するための血液サンプル（９５μＬ）を得るために、右大腿動脈は、カニューレを挿入された。右大腿静脈は、カニューレを挿入され、プラスチックチューブを用いて透析器に接続された。右大腿動脈もまた、カニューレを挿入され、動脈ライン圧を連続的にモニタするための圧力トランスデューサと、プラスチックチューブを介して透析器に接続された血液ポンプ（Ｍａｓｔｅｒｆｌｅｘ Ｉｓｍａｔｅｃ、Ｃｏｌｅ－Ｐａｒｍｅｒ、ＩＬ）と、に接続された。接続前に、ヘパリン５０ ＩＥ（Ｈｅｐａｒｉｎ ＬＥＯ ５０００ ＩＥ／ｍｌ、Ｌｅｏ Ｐｈａｒｍａ ＡＢ、Ｓｗｅｄｅｎ）が添加された４％のアルブミン（Ａｌｂｕｎｏｒｍ、Ｏｃｔａｐｈａｒｍａ Ｎｏｒｄｉｃ ＡＢ、Ｓｗｅｄｅｎ）で血液回路がプライミングされた。透析回路は、以下の組成を有する未使用の透析液（Ｈｅｍｏｓｏｌ Ｂ０、Ｂａｘｔｅｒ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ、ＩＬ）を含むガラスシリンダからの入口でポンプに接続された：
実験は、実験の５日前に水分およびケトン食（Ｋｌｉｂａ－Ｎａｆａｇ ２２０１ Ｋｅｔｏｇｅｎｉｃ ｄｉｅｔ ＸＬ７５：ＸＰ１０）を与えられた３１６ｇ（３０５～３１８）の平均体重を有する６匹の雄のＳｐｒａｇｕｅ－Ｄａｗｌｅｙラットにおいて行った。動物は、米国国立衛生研究所の実験動物の飼育と使用に関するガイドラインに従って処置した。ルンド大学の動物研究倫理委員会は実験を承認した（Ｄｎｒ ５．８．１８－０８３８６／２０２２）。ラットは、空気中に５％のイソフルラン（Ｉｓｏｂａｎ、Ａｂｂｏｔ Ｓｔｏｃｋｈｏｌｍ、Ｓｗｅｄｅｎ）の連続供給が接続されたカバー付きガラス容器に注意深く入れられた。完全に麻酔された後、ラットは、容器から穏やかに持ち上げられた。麻酔は、空気中に１．６～１．８％のイソフルランを用いて、小さなマスクで送達され維持された。気管切開後、ラットは、呼気終末陽圧４ｃｍＨ２Ｏを用いた容量制御型の人工呼吸器（Ｕｇｏ Ｂａｓｉｌｅ；Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ａｐｐａｒａｔｕｓ， Ｃｏｍｅｒｉｏ，Ｉｔａｌｙ）に接続された。体温は、フィードバック制御されたヒーティングパッドを用いて、３７．１℃から３７．３℃に維持された。呼気終末期ｐＣＯ２は、４．８から５．５ｋＰａの間に維持された（Ｃａｐｓｔａｒ－１００、ＣＷＥ、Ａｒｄｍｏｒｅ、Ｐａ）。心拍数および平均動脈圧（ＭＡＰ）の連続的なモニタのために、および、グルコース、尿素、電解質、ヘモグロビンおよびヘマトクリット（Ｉ－ＳＴＡＴ、Ａｂｂｏｔｔ、Ａｂｂｏｔｔ Ｐａｒｋ、ＩＬ）および血中ケトン（ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ Ｐｒｅｃｉｓｉｏｎ Ｎｅｏ、Ａｂｂｏｔｔ、Ａｂｂｏｔｔ Ｐａｒｋ、ＩＬ）を測定するための血液サンプル（９５μＬ）を得るために、右大腿動脈は、カニューレを挿入された。右大腿静脈は、カニューレを挿入され、プラスチックチューブを用いて透析器に接続された。右大腿動脈もまた、カニューレを挿入され、動脈ライン圧を連続的にモニタするための圧力トランスデューサと、プラスチックチューブを介して透析器に接続された血液ポンプ（Ｍａｓｔｅｒｆｌｅｘ Ｉｓｍａｔｅｃ、Ｃｏｌｅ－Ｐａｒｍｅｒ、ＩＬ）と、に接続された。接続前に、ヘパリン５０ ＩＥ（Ｈｅｐａｒｉｎ ＬＥＯ ５０００ ＩＥ／ｍｌ、Ｌｅｏ Ｐｈａｒｍａ ＡＢ、Ｓｗｅｄｅｎ）が添加された４％のアルブミン（Ａｌｂｕｎｏｒｍ、Ｏｃｔａｐｈａｒｍａ Ｎｏｒｄｉｃ ＡＢ、Ｓｗｅｄｅｎ）で血液回路がプライミングされた。透析回路は、以下の組成を有する未使用の透析液（Ｈｅｍｏｓｏｌ Ｂ０、Ｂａｘｔｅｒ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ、ＩＬ）を含むガラスシリンダからの入口でポンプに接続された：
【0091】
透析器からの出口もまた、使用済み透析液をガラスシリンダに圧送する蠕動ポンプに接続された。両方のガラスシリンダは、動物から液体が取り除かれていないことを確実にするために、秤の上に置かれた（図１２）。５１Ｃｒ－ＥＤＴＡを含む維持液の注入のために、右内頚静脈は、カニューレを挿入された。ヘマトクリットは、細いキャピラリガラス管を遠心分離することによって判定した。実験後、動物は、塩化カリウムの静脈内ボーラス注入によって安楽死させた。
【0092】
実験プロトコル
ハイフラックス膜（Ｐｏｌｙｆｌｕｘ Ｒｅｖａｃｌｅａｒ（登録商標）、ＨＦ－Ｒｅｖａｃｌｅａｒ（登録商標））を含むＢａｘｔｅｒ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ（Ｈｅｃｈｉｎｇｅｎ、Ｇｅｒｍａｎｙ）から取得したミニキャピラリ透析器デバイスを用いて、３時間の血液透析セッションが行われた。動脈血液サンプルは、透析前および透析後３０分、および、ＨＤ中の６０分、９０分、１２０分および１８０分に取得した。透析液試料は、透析前および１０分、２０分、４０分、６０分、９０分、１２０分、１５０分および１８０分に取得し、５１Ｃｒ－ＥＤＴＡ活性を判定するために、ガンマカウンタ（Ｗｉｚａｒｄ １４８０， ＬＫＰ Ｗａｌｌａｃ， Ｔｕｒｋｕ， Ｆｉｎｌａｎｄ）で分析した。
ハイフラックス膜（Ｐｏｌｙｆｌｕｘ Ｒｅｖａｃｌｅａｒ（登録商標）、ＨＦ－Ｒｅｖａｃｌｅａｒ（登録商標））を含むＢａｘｔｅｒ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ（Ｈｅｃｈｉｎｇｅｎ、Ｇｅｒｍａｎｙ）から取得したミニキャピラリ透析器デバイスを用いて、３時間の血液透析セッションが行われた。動脈血液サンプルは、透析前および透析後３０分、および、ＨＤ中の６０分、９０分、１２０分および１８０分に取得した。透析液試料は、透析前および１０分、２０分、４０分、６０分、９０分、１２０分、１５０分および１８０分に取得し、５１Ｃｒ－ＥＤＴＡ活性を判定するために、ガンマカウンタ（Ｗｉｚａｒｄ １４８０， ＬＫＰ Ｗａｌｌａｃ， Ｔｕｒｋｕ， Ｆｉｎｌａｎｄ）で分析した。
【0093】
統計方法
データは、特に明記しない限り、中央値（四分位範囲）として示す。有意差は、漸近フリードマンオムニバス検定（コインパッケージ）を用いて評価され、有意である場合、その後にＷｉｌｃｏｘｏｎ－Ｎｅｍｅｎｙｉ－ＭｃＤｏｎａｌｄ－Ｔｈｏｍｐｓｏｎ事後検定が続いた。２つの血中ケトン値は、測定範囲（８．０ｍｍｏｌ／Ｌ）を超えていた。統計解析前に、それらは８．０ｍｍｏｌ／Ｌとされた。それらはデータセットの中で最も高い値であるため、８ｍｍｏｌ／Ｌの値は、（ｉ）中央値（ＩＱＲ）が影響を受けないこと、および、（ｉｉ）データポイントが最も高く同じランクを得ることを確実にする。５％未満のＰ値が、有意とみなされた。計算は、Ｒ ｆｏｒ ｍａｃ ｖｅｒｓｉｏｎ ４．１．１を用いて行った。
データは、特に明記しない限り、中央値（四分位範囲）として示す。有意差は、漸近フリードマンオムニバス検定（コインパッケージ）を用いて評価され、有意である場合、その後にＷｉｌｃｏｘｏｎ－Ｎｅｍｅｎｙｉ－ＭｃＤｏｎａｌｄ－Ｔｈｏｍｐｓｏｎ事後検定が続いた。２つの血中ケトン値は、測定範囲（８．０ｍｍｏｌ／Ｌ）を超えていた。統計解析前に、それらは８．０ｍｍｏｌ／Ｌとされた。それらはデータセットの中で最も高い値であるため、８ｍｍｏｌ／Ｌの値は、（ｉ）中央値（ＩＱＲ）が影響を受けないこと、および、（ｉｉ）データポイントが最も高く同じランクを得ることを確実にする。５％未満のＰ値が、有意とみなされた。計算は、Ｒ ｆｏｒ ｍａｃ ｖｅｒｓｉｏｎ ４．１．１を用いて行った。
【0094】
結果
【0095】
ベースラインパラメータ
６匹のＳｐｒａｇｕｅ－Ｄａｗｌｅｙラットは、ケトン食を５日間与えられ、体重１０から３７ｇ（最小－最大）の間で増加させた。透析前、動脈ｐＨの中央値は７．４３（７．４２から７．４４）、実際の重炭酸塩は２０．４ｍｍｏｌ／Ｌ（１９．８から２１．３）、スタンダード・ベースエクセスは－３．５ｍｍｏｌ／Ｌ（－４．０から－２．２）、ｐＯ２は１２．４ｋＰａ（１２．２から１２．７）、ｐＣＯ２は４．０ｋＰａ（４．０から４．３）であった。透析は３時間行われ、その後、血液は動物に戻され、その後、実験の終了前に３０分間の休憩を行った。処置およびベースラインパラメータは、以下の通りであった：
６匹のＳｐｒａｇｕｅ－Ｄａｗｌｅｙラットは、ケトン食を５日間与えられ、体重１０から３７ｇ（最小－最大）の間で増加させた。透析前、動脈ｐＨの中央値は７．４３（７．４２から７．４４）、実際の重炭酸塩は２０．４ｍｍｏｌ／Ｌ（１９．８から２１．３）、スタンダード・ベースエクセスは－３．５ｍｍｏｌ／Ｌ（－４．０から－２．２）、ｐＯ２は１２．４ｋＰａ（１２．２から１２．７）、ｐＣＯ２は４．０ｋＰａ（４．０から４．３）であった。透析は３時間行われ、その後、血液は動物に戻され、その後、実験の終了前に３０分間の休憩を行った。処置およびベースラインパラメータは、以下の通りであった：
【0096】
血液透析は血中ケトンレベルを有意に低下させない
１８０分の透析の前後の血中ケトンレベルは類似しており、それぞれ３．５ｍｍｏｌ／ｌ（２．２～５．６）および３．８ｍｍｏｌ／ｌ（２．２～５．１）であり（Ｐ＝０．５３）、透析中のケトン濃度に有意差はなかった（図１３Ａ）。データは、以下の表に示される：
１８０分の透析の前後の血中ケトンレベルは類似しており、それぞれ３．５ｍｍｏｌ／ｌ（２．２～５．６）および３．８ｍｍｏｌ／ｌ（２．２～５．１）であり（Ｐ＝０．５３）、透析中のケトン濃度に有意差はなかった（図１３Ａ）。データは、以下の表に示される：
【0097】
【0098】
５１Ｃｒ－ＥＤＴＡの血液から透析液へのクリアランスは、透析セッションの全体で１．０ｍｌ／分（０．７～１．１）と安定であった。ｓｉｎｇｌｅ－ｐｏｏｌ Ｋｔ／Ｖ ｕｒｅａは０．５７（０．５２～０．６３）であり、Ｋｔ／Ｖ＝－ｌｏｇ（１－ＵＲＲ－０．０２４）として計算された。全身の水分を体重の７０％と仮定すると、これは、尿素血漿から透析液へのクリアランスが０．６７ｍｌ／分（０．６２～０．８０）であることを意味する。
【0099】
透析中の酸－塩基および血液化学への影響
血漿ベースエクセスは、透析中に増加した（図１３Ｄ）。これと一致して、１８０分の透析後に動脈ｐＨは、７．４２（７．４２～７．４４）から７．５１（７．４９～７．５２）に増加した（Ｐ＝０．００５）。動脈ｐＣＯ２は、１８０分の血液透析後に有意差はなく、それぞれ、透析前４．０（４．０～４．３）ｋＰａ、および、透析後４．０（３．７～４．２）ｋＰａであった（Ｐ＝０．８１）。血中ヘモグロビンレベルは、透析前と透析後とで有意差はなく、それぞれ、１１３ｇ／Ｌ（１０６～１１８）、および、１１６ｇ／Ｌ（１１１～１１８）であった（Ｐ＝１．００）。血漿カリウムは、透析前の３．８ｍｍｏｌ／ｌ（３．８～３．９）から１８０分後に４．５ｍｍｏｌ／Ｌに増加したが（Ｐ＝０．０３）、血漿ナトリウムに有意差はなかった（表３）。
血漿ベースエクセスは、透析中に増加した（図１３Ｄ）。これと一致して、１８０分の透析後に動脈ｐＨは、７．４２（７．４２～７．４４）から７．５１（７．４９～７．５２）に増加した（Ｐ＝０．００５）。動脈ｐＣＯ２は、１８０分の血液透析後に有意差はなく、それぞれ、透析前４．０（４．０～４．３）ｋＰａ、および、透析後４．０（３．７～４．２）ｋＰａであった（Ｐ＝０．８１）。血中ヘモグロビンレベルは、透析前と透析後とで有意差はなく、それぞれ、１１３ｇ／Ｌ（１０６～１１８）、および、１１６ｇ／Ｌ（１１１～１１８）であった（Ｐ＝１．００）。血漿カリウムは、透析前の３．８ｍｍｏｌ／ｌ（３．８～３．９）から１８０分後に４．５ｍｍｏｌ／Ｌに増加したが（Ｐ＝０．０３）、血漿ナトリウムに有意差はなかった（表３）。
【0100】
ディスカッション
【0101】
本例は、低分子量のケトン（β‐ヒドロキシ酪酸、アセト酢酸、アセトン）が透析によって効率的に除去されることを意味するにもかかわらず、ケトン食を与えられたラットの血中ケトンレベルが血液透析によって比較的影響を受けなかったことを示している。実際に、ケト酸とほぼ同じ大きさの分子（例えば、尿素）が効果的に除去され、５１Ｃｒ－ＥＤＴＡのようなより大きな分子さえも、血液から効果的に除去された。
【0102】
ここで透析液の血流量（Ｑｂ）が１ｍｌ／分に設定され、これはラットにおける血液透析の他の実験モデルと同様である（Ｆｕｋｕｎａｇａ ｅｔ ａｌ、ＰＬｏＳ Ｏｎｅ。２０２０；１５：ｅ０２３３９２５）。フィルタ前動脈圧は、この血流量で安定しポジティブであり、４０～５０ｍｍＨｇが典型的な値であった。この血流量が血液透析を受けているヒトにどのように対応するかを解明するために、それは、分布容積に関連して設定されうる。例えば、尿素の場合、分布容積は、体水分量（ＴＢＷ）にほぼ等しく、ラットでは体重の約７０％である。したがって、３００ｇのラットは２１０ｍｌのＴＢＷを有し、１ｍｌの血流量は尿素から約０．４７％のＴＢＷを除去することを意味する。４２ＬのＴＢＷを有する７０ｋｇの成人の場合、これは、４２×０．４７％＝２００ｍｌ／分の血流に対応する。現在、特に血液透析濾過の処置をされる患者において、血流量は、通常２５０ｍｌ／分以上である。一方、我々は、５ｍｌ／分の透析液の流量を使用し、これは、Ｑｂよりもはるかに高く、溶質の輸送が透析膜または透析液流ではなく血流によって制限されることを意味する。実際、これと一致して、尿素および５１Ｃｒ－ＥＤＴＡ（尿素よりもはるかに大きい分子）の透析液に対する推定血漿クリアランスは、尿素については０．６７ｍｌ／分、５１Ｃｒ－ＥＤＴＡについては０．６６ｍｌ／分であり、ほぼ同一であった。
【0103】
我々はまた、ケトン食がラットにおいて軽度の代謝性アシドーシスをもたらし、また血漿乳酸の増加が非常に軽度であることを見出した。わずかに上昇した乳酸は、ケトン食を与えられたウシにおいて以前に観察されている（Ｚｈａｎｇ ｅｔ ａｌ、Ｒｅｓｅａｒｃｈ ｉｎ Ｖｅｔｒｅｎａｒｙ Ｓｃｉｅｎｃｅ、２０１６、１０７：２４６－２５６）。また、カリウム濃度は透析中に４．５ｍｍｏｌ／ｌにわずかに増加した。これは、カリウム２０ｍｍｏｌが未使用の透析液の５Ｌバッグにマニュアルで添加されたという事実に起因する可能性があり、これはカリウム溶液の体積および組成の公差のために、実際の透析液濃度が４ｍｍｏｌ／Ｌとは異なる可能性がある。最後に、透析前に軽度の高血糖があるが、これはまた、ケトン食後にインスリンレベルが低下することを指摘する、マウスにおける先行研究（Ｍｅｉｄｅｎｂａｕｅｒ ｅｔ ａｌ、Ｆａｓｅｂ Ｊｏｕｒｎａｌ、２０１３、２７）と一致している。
【図1】
【図2A】
【図2B】
【図2C】
【図2D】
【図2E】
【図2F】
【図3a】
【図3b】
【図3c】
【図3d】
【図3e】
【図3f】
【図3g】
【図3h】
【図3i】
【図3j】
【図3k】
【図4a】
【図4b】
【図4c】
【図4d】
【図5】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
【図10】
【図11】
【図12】
【図13】
【国際調査報告】