【実施例】
【0073】
<実施例1:エルロチニブ耐性細胞株の選択>
Engelmanら(前出)に記載されているプロトコルに従って、エルロチニブの獲得耐性を備えるNSCLC株を作成した。簡単に述べると、エルロチニブ(IC
50erlo=0.054μM)に対して高感度の親HCC827細胞を、細胞中のIC90に相当する濃度でのエルロチニブを含む培地中で増殖できるようになるまで、10週間にわたってエルロチニブ濃度を増加させながらインキュベートした。選択を経て、個々の細胞クローンから3細胞株(HCC827
クローン 5、6、7)を得た。加えて、我々は、おそらく複数のクローン(HCC827
res pool図1参照)に由来する異種の大量培養物を得た。
【0074】
表3は、miRNAとEGFR−TKIの組み合わせの効果を評価するために使用される4つのNSCLC細胞のリストを提供する。特定の細胞株を、これらの細胞におけるEGFR−TKIのIC
50値、発ガン特性、およびmiRNAに対する感受性に基づいて選択した。このリストは、エルロチニブに耐性がある細胞株、および感受性である細胞を含む。科学文献に報告されているように、これらの細胞株の各々に対するエルロチニブのIC
50値を示す。これらの例では、>1μΜのIC
50値を有する細胞株は耐性であるとみなされる。
【0075】
【表3】
【0076】
<実施例2:エルロチニブ耐性を制御し示差的に発現するマイクロRNA候補の同定>
すべての4つの細胞株ならびに親HCC827株をRNA抽出のために使用し、mRNA(Affymetrix HG−U133 Plus 2.0)およびmiRNA(Agilent/Sangerl2_0)アレイ解析に供した。予想外に、比較的少数のmRNAのみが、抵抗性株と親株との間で異なって発現していた(データは示さず)。照的に、miRNAの発現レベルは有意に変化した。耐性細胞と親株との間のmiRNA発現の比較は、クローン#7がHCC827に最も密接に関連する(R
2= 0.9347)ことを示し、耐性プールは最も関連していない(R
2= 0.8308)株である。これは、プールが複数のクローンから生じたという仮説と一致する。親株と比較した場合、miRNAの監修なしのクラスタリングは、すべての耐性HCC827細胞にわたって、15のアップレギュレートされたmiRNA及び23のダウンレギュレートされたmiRNAを同定した(
図2A)。遺伝子クラスター中にコード化され、ポリシストニックな転写産物として発現するmiRNA、つまりmiR−106B〜93〜25及びmiR−24〜27B〜23Bはすべて、それぞれアップレギュレート又はダウンレギュレートされていることがわかった。これは、遺伝的メカニズムがエルロチニブ耐性細胞におけるmiRNAの発現差異に寄与することを示唆している。示差的に発現するmiRNAの多くは、以前に他の化学療法に対する抵抗性と関連付けられており−例えば、エルロチニブ耐性HCC827細胞でアップレギュレートされるmiRNAは、従来の抵抗性に寄与し、ダウンレギュレートされるmiRNAは、化学療法抵抗性を抑制する。2つのmiRNA(LET−7bのmiR−486)は、セツキシマブ、つまり抗EGFRモノクローナル抗体に対する抵抗性に関連付けられてきた。エルロチニブ耐性への関与は、すべてのmiRNAについて新規である。これらのmiRNAにより抑制されることが予想される遺伝子産物を検索すると、エルロチニブ耐性細胞においてダウンレギュレートされるmiRNAはRAS、EGFR、METおよびHGFを含む既知のエルロチニブ耐性遺伝子を抑制する傾向が強いことが明らかとなった。定量的逆転写酵素PCR(qRT−PCR)は、METおよびHGFの両方が、すべてのエルロチニブ耐性細胞株で強く過剰発現されたことを示した。このことは、獲得されたエルロチニブ耐性におけるHGF/MET軸の役割を示す以前の報告と一致している。METとHGFの過剰発現は、以前に報告されているように遺伝子増幅の結果である可能性があり、またはその代わりに、我々のデータセット(さらなる調査の対象)によって示唆されるように、これらの遺伝子を抑制するmiRNA発現の喪失の結果であるかもしれない。付録Aは、
図2Aの基礎となる定量的なデータを提供する。
【0077】
<実施例3:エルロチニブとマイクロRNAの組み合わせの効果>
組み合わせの研究において使用される肺癌細胞株は、エルロチニブに対して耐性の細胞株(H1299、H460、HCC827、すべて耐性)、または感受性の細胞株(HCC827親)を含んでいた。組み合わせの主な目的は、エルロチニブの増強された治療効果(IC
50の減少)を達成すること、およびエルロチニブの用量及び毒性を低減することであった。組み合わせの働きの評価を、「固定濃度モデル(Fixed Concentration Model)」(Fiebig、HH、併用試験)に従って実施した。細胞毒性化合物A(エルロチニブ)を7−8の濃度で、および化合物B (miRNA)を弱い濃度で、試験した。細胞増殖に対する薬物またはmiRNAの効果を、AlamarBlueアッセイ(Invitrogen, Carlsbad, CA)を用いて評価した。エルロチニブの単独の及び組み合わせにおけるIC
50値を、GraphPadソフトウェアを用いて計算した。
【0078】
まず、エルロチニブ単独の、又はmiRNA単独のIC
50値を、細胞中で測定した。miRNAは固定の弱い濃度(〜IC
25)でリバーストランスフェクトされた。使用されるマイクロRNAの配列を、表1に示した。スクランブル配列を、陰性対照として使用した。その後、細胞を、連続希釈したエルロチニブで処理した。細胞増殖の阻害を、薬物処理後3日で、AlarmaBlueアッセイによって分析した。miRNAと組み合わせたエルロチニブのIC
50値を、GraphPadソフトウェアを用いて決定した。組み合わせの効果は、用量反応曲線及びIC
50値の変化を目視検査することによって評価した。エルロチニブ単独についての、または6つの試験されたmiRNAそれぞれとの組み合わせのIC
50の結果を、それぞれ表4に報告する。
【0079】
【表4】
【0080】
<実施例4:エルロチニブ及びmiRNAについてのインビボでの有効性評価>
インビボでのエルロチニブ/マイクロRNAの組み合わせの効果を試験するために、例えば、安定的にルシフェラーゼレポーター遺伝子を発現する同所性の異種移植片に基づく腫瘍マウスモデルが使用される 。典型的な有効性研究は、グループあたり8匹の動物を含む。エルロチニブ/miRNAの組み合わせの次に、他の研究グループは、エルロチニブ単独、miRNA単独、並びにエルロチニブ/miR−NC及び無処置の対照が含まれている。肺の腫瘍病変がIVISイメージングを通じて明らかになると、miRNA処置を開始する。miRNAを、ナノ粒子中に組み合わせ、適度に有効な用量で静脈内に一日おきに投与して、エルロチニブ増強の検出(1−10mg/kg)を可能にした。エルロチニブを、マウスにおいて良好な耐用性が示された/日の用量で、胃管栄養により毎日投与される。治療期間は、2−4週間かまたは対照マウスが瀕死になるか、どちらかが最初に来るまでである。動物は、毒性の徴候を検出するために、厳密にモニターされる。屠殺に際し、肺および肺腫瘍組織を収集し、組織病理学的分析(H&E;Ki67およびCASP3 のIHC、正当化される場合)に供した。RNAを、正常肺、肺腫瘍、脾臓、および全血から抽出して、定量RT−PCRによりmiRNA模倣体の濃度を測定する。さらに、腫瘍サンプルは、直接/検証のmiRNAの標的のノックダウンについて、試験する(QRT−PCR)ために使用される。主要器官への転移のレベルは、H&E及びヒト特異的なIHC染色(STEM121、StemCells社)のいずれかによって、評価することができる。
【0081】
エルロチニブ/ miRNAの組み合わせは、腫瘍組織中の既知のmiRNA標的の同時抑制により、エルロチニブ単独よりも優れたインビボでの有効性を示すことが期待される。また、エルロチニブ/miRNAの組み合わせで処置した動物は、転移を発達させ、および改善された生存を示す可能性が低いことも予想される。
【0082】
<実施例5:EGFR−TKIおよびmicroRNAについては生体外の効果評価>
【0083】
導入
本実施例は、プライマリの及び獲得されたエルロチニブ耐性を備えるNSCLC細胞において、miR−34aとエルロチニブの関係性、及び組み合わせの治療活性を調べる。薬物の組み合わせをエルロチニブに対して不応性であることが知られている癌の種類である、肝細胞癌細胞(HCC)のパネルにおいて試験した。複数の分析方法を使用して、癌細胞増殖の薬物誘導性抑制を決定して、相加効果、拮抗作用又は相乗効果を明らかにする。データは、試験した全ての癌細胞におけるエルロチニブ及びmiR−34a模倣体との間で強力な相乗効果を示す。相乗効果は、用量レベルおよび薬物の比率の範囲にわたって観察され、エルロチニブ及びmiR−34AについてのIC
50用量の要件を、それぞれ46倍および13倍まで減少させる。最大の相乗効果は、単一薬物単独でによって誘導され、それ故臨床的に関連があるものよりも高レベルの癌細胞の阻害のを提供する投与量において検出される。。データは、マイクロRNAベースの治療法と組み合わせて使用される場合、以前にEGFR−TKI治療について研究されていないNSCLCおよびその他の癌の大部分は、薬物に対する感受性であると判明する。
【0084】
材料および法
細胞株:ヒト非小細胞肺癌(NSCLC)細胞株A549、H460、H1299、H226を、HCC827親およびHCC827
resは、マイクロRNAおよびEGFR−TKIの組合せの効果を評価するために使用した。特定の細胞株を、これらの細胞におけるEGFR−TKIの高いIC
50値、それらの発癌特性、およびmiRNAに対する感受性に基づいて選択した。これら細胞株は、いずれかの耐性(A549、H460、H1299、H226)または感受性(HCC827)細胞に耐性である。さらに、獲得耐性を有する細胞株を、10週間にわたってエルロチニブの増加した選択圧を適用し、IC10の等量で開始し、IC90等量で終わることによって作成した。 細胞増殖はIC90選択下で通常の二倍の速度を示したので、耐性細胞を低希釈(HCC827
res)または高希釈で播種して、純粋に近い耐性クローン(HCC827
res−#5、6および7)を作成した。肝細胞癌(HCC)細胞における効果を研究するために、Hep3B、Huh7、C3AおよびHepG2を使用した。 Huh7細胞をJapanese Collection of Research Bioresources Cell Bankから取得した。米国培養菌保存施設(ATCC、Manassas、VA)から他のすべての親細胞を購入し、サプライヤーの指示に従って培養した。
【0085】
RNA単離およびqRT−PCR:細胞ペレットからの全RNAを、製造業者の指示に従ってmirVANA PARIS RNA単離キット(Ambion、Austin、TX)を用いて単離した。RNA濃度は、Nanodrop ND−1000(Thermo Scientific, Wilmington, DE)の上の吸光度測定(A260)により決定された。逆転写ポリメラーゼ連鎖反応(qRT−PCR)による、miRNAおよびmRNAの定量化に関しては、我々が市販で入手可能な試薬を使用した。下記条件の下でMMLV−RT(Invitrogen、Carlsbad、CA)を使用して、RNAをcDNAに変換した:4℃15分;16℃30分;42℃30分;85℃5分。cDNA合成に続いて、以下のサイクリング条件の下でPlatinum Taqポリメラーゼ(Invitrogen)を使用して、ABI Prism 7900HT SDS(Applied Biosystems, Life Technologies, Foster City, CA)上の2μLのcDNAでqPCRを実行した:95℃1分間(最初の変性);その後、95℃5秒間、60℃30秒間の50サイクル。TaqMan Gene Expression AssayおよびTaqMan MicroRNA Assayを、すべての肺および肝細胞株中のmRNAおよびmiRNAの発現解析のために使用した。miRNA発現について、メーカーの試薬への付加物は、miRNAアッセイの勾配、直線性、および感度を向上させるために、DMSO(6%の最終濃度)および塩化テトラメチルアンモニウム(TMAC;RTおよびPCRの両方において50 mMの終濃度)を含む。miRNAおよびmRNAの両方の発現レベルを、HCC827親細胞株に対する相対定量によって決定した。miRNAおよびmRNA標的の生のCt値を、選択されたハウスキーピング遺伝子に対して標準化してデルタCt値を作成し、線形空間に変換してパーセンテージ発現として表した。
【0086】
miRNAおよびEGFR−TKIによる処理:エルロチニブ塩酸塩は、LC Laboratories (Woburn, MA)から購入した。 合成のmiR−34aおよびmiRのNC模倣体は、Life Technologies (Ambion, Austin, TX)によって製造された。各薬物単独でのIC
50値を決定するために、ウェル当たり2000−3000細胞を96ウェルプレートフォーマットに播種し、エルロチニブまたはmiR−34Aのいずれかで次のように処理した。(i)InvitrogenからのRNAiMax lipofectamineを使用して、階段希釈(0.03−30 nM)中に3回繰り返してmiR−34a模倣体をリバーストランスフェクトした。対照として、細胞はまた、RNAiMax単独で、又は陰性対照のmiRNA模倣体(miR−NC)と組み合わせてトランスフェクトされた。細胞は、肺または肝臓癌細胞の細胞増殖をそれぞれ判定するために、トランスフェクションの4日または6日後にAlamarBlue(Invitrogen)と共にインキュベートした。増殖データはモックでトランスフェクトされた細胞に対して標準化した。(ii)ジメチルスルホキシド(DMSO)中の10及び20mMストック溶液として調製されたエルロチニブを、一日0.1から100μM.の範囲の終濃度で播種した後、細胞に添加した。溶媒のみ(H226およびHCC827中において最終0.5%DMSO、他のすべての細胞株において最終1%DMSO)を、対照として別々のウェル中に加えた。三日後、細胞増殖をアラマーブルーで測定し、溶媒対照に標準化した。
【0087】
退行趨勢線&IC
50値:線形および非線形回帰傾向線は、それぞれ、CompuSyn (ComboSyn, Inc, Paramus, NJ)およびGraphpad (Prism) ソフトウェアを使用して作成した。両方のソフトウェアプログラムは類似の値を生成したが、非線形傾向線は、実際のデータのためのより良いフィットを提供し、IC
50、IC
25および他の薬物濃度(ICx社)を計算するためにされた。
【0088】
「固定濃度」法で決定された組合せの効果
「固定濃度」法を、獲得された抵抗性を備える細胞株(HCC827
res)について使用した。 細胞を、上記のような固定の弱い濃度(〜IC
25)にて、miR−34aでリバーストランスフェクトした。翌日、階段希釈(0.01−100μM)のエルロチニブで細胞を処理した。細胞増殖の阻害を、3日後にAlarmaBlueによって分析した。単一薬物の効果を測定するために、および潜在的に、脂質担体またはビヒクルが寄与する効果を補正するために、 細胞はまた、モックトランスフェクションと組み合わせて、溶媒(HCC827
resにおいて0.5%DMSO、他のすべての細胞株において1%DMSO)またはエルロチニブとmiR−34Aの組合せで処理した。すべての増殖データは、溶媒(DMSO)で処理したモックトランスフェクト細胞に対して標準化された。組み合わせの効果は、miR−34aの存在下または非存在下での、エルロチニブ用量反応曲線の目視検査およびIC
50値の推移によって評価した(Graphpadを使用してグラフ化及び計算した)。
【0089】
「固定の割合」法で決定された組合せの効果
細胞は、miR34aの7濃度と組み合わせたエルロチニブの7濃度のそれぞれで処理された。各薬物は、IC
50にほぼ等しい濃度、およびその2.5倍(NSCLC)または2倍(HCC)増加した濃度で、上記または下記にて(above or below)使用される。このマトリックスから、13の異なる比率を表す、合計49の異なる組み合わせが得られた。各薬物はまたこれらの濃度で単独で使用された。miR−34aおよびエルロチニブを上に記載されるように加えて、細胞増殖をAlamarBlueにより判定した。各データポイントを3回繰り返して行った。
【0090】
組み合わせインデックス(CI)値の計算
ロエベの加法モデルに基づくCI値は、薬物−薬物相互作用の性質を評価するために決定され、前記相互作用は様々な薬物−薬物濃度および効果のレベルについて相加性(CI=1)、拮抗的(CI>1)、または相乗的(CI<1)であり得る(Fa、影響さらたフラクション;癌細胞増殖の阻害)。CI値を計算し比較するために、線形回帰および非線形の回帰傾向線の両方を使用した。CI値に基づく線形回帰分析は、CompuSynソフトウェア (ComboSyn Inc., Paramus, NJ) を用いてchouらの方法に従って行われ、それによって双曲線、双曲線とシグモイド用量効果曲線は線形形式に変換された(Chou TC (2010) Drug combination studies and their synergy quantification using the Chou−Talalay method. Cancer Res 70: 440−6, instructions also available at ComboSyn, Inc., www.combosyn.com)。非線形回帰傾向線に由来するCI値は、式1を用いて計算され、式中CA,xおよびCB,xは効果 X (Fa)を生成するための組合せ中の薬物Aおよび薬物Bの濃度である。IC
x,AおよびIC
x,Bは、同じ効果を生成するための単一の薬物として用いられる薬物Aおよび薬物Bの濃度である。
【0091】
【数1】
【0092】
薬物濃度を決定するために式1で必要なCI値(CA
,x,C
B,x,IC
x,AおよびICx
,B)は、線形回帰傾向線に由来するHillの式(式2)、IC
50、およびHill勾配(n)を用いて算出する(Graphpad)。
【0093】
【数2】
【0094】
アイソボログラム
エルロチニブおよびmiR−34aの用量依存性の相互作用を記述するために、癌細胞増殖の50%および80%阻害のレベルに影響を及ぼすアイソボログラムを作成する。単一剤−単独または組み合わせ−は通常、50%の癌細胞の阻害に達するので、50%のアイソボログラムは単一の使用対組み合わせの実際の比較を提供した。80%のアイソボログラムは、腫瘍学における実用的な意味を有する高い効果レベルでの組み合わせの有用性を示すために使用された。これらの各々において、相加性は、単一の使用(IC
50、IC
80)から、組み合わせの各薬物に関する用量要件を推定することによって決定された。相加性の線より上または下のデータポイントは、それぞれ拮抗作用または相乗効果を示す。 49の全組み合わせについて、組み合わせで必要な薬物の濃度は、同じ効果に到達するための単一剤のみのものと比較され、倍率変化(用量減少指数、DRI)として表された。
【0095】
曲線推移解析
用量反応曲線の直接の比較を可能にするために、および相乗的な薬物 − 薬物相互作用を同定するために、各薬物単独の、又は組み合わせの非線形回帰傾向線(IC
50:IC
50の比率又は示される他の比率)は、それ自身のIC
50値に対して標準化され、IC
50等量(IC
50 eq)と呼ばれる。組み合わせのIC
50等量は、式3を用いて計算され、Zhao L, Au JL Wientjes MG (2010) Comparison of methods for evaluating drug−drug interaction.Front Biosci (Elite Ed) 2: 241−9.中に記載されている。単一剤および組合せのデータは、単一の薬物に対して任意の所定の効果を達成するのに必要な低い薬物濃度を示すために、同じダイアグラム中でグラフ化された。これは、用量反応曲線の左推移を示し、相上Idを示す。
【0096】
【数3】
【0097】
統計的分析
統計分析は、Excel(マイクロソフト)、CompuSyn及びGraphpad ソフトウェアを用いて行った。平均および標準偏差を、三回の実験から計算した。線形および非線形回帰傾向線のフィットの良さは、R(CompuSyn)とR2(Graphpad)の値でそれぞれ記述され、薬物非感受性の制限により、H226およびHepG2を除くほとんどの細胞株について0.9>であった。
【0098】
結果
miR−34aは、非小細胞肺癌細胞におけるエルロチニブに対する感受性を回復する。
【0099】
獲得耐性を備える細胞の薬剤耐性を研究するために、我々は、活性化型EGFR変異体(アミノ酸745−750の欠失をもたらすエクソン19の欠失)を発現するHCC827細胞を使用した。HCC827は0.022μM(
図4A)のIC
50値でエルロチニブに対し高い感受性を示す。親細胞株のIC90に同等の濃度で培養物が増殖抑制の徴候を示さなくなるまで、10週間にわたって増加するエルロチニブ濃度に対して親HCC827細胞を曝露することによって、エルロチニブ耐性の細胞株を発達させた。このプロセスの間に、個々の細胞クローン(HCC827
res−#5、#6、#7)並びに耐性細胞(HCC827
res)のプールを増殖させた。全RNAを単離し、miR−34ファミリーメンバーおよび抵抗性を誘導することが知られている遺伝子のレベルを定量的PCRにより調べた。エルロチニブに耐性のHCC827細胞は、おそらくEGFRシグナルをバイパスするように機能する、MET及びそのリガンドHGFのmRNAレベルの増加を示した(
図8A−C)。対照的に、AXL、GAS6、KRAS、FGFR1、ERBB3、PIK3CAおよびEGFR自体など、抵抗性に関連する他の遺伝子の発現レベルは上昇しなかった。miR−34b/cファミリーメンバーは、いくつかの耐性HCC827細胞中で減少した(
図8A−C)。興味深いことに、miR−34aエルロチニブ耐性HCC827細胞では減少せず、このことは、MET遺伝子の増幅によってmiR−34が独立して起こり得る、これらの細胞中の耐性の開始において、miR−34aが因果的役割を果たしてはいないことを示唆している。
【0100】
METとAXL両方がmiR−34によって直接抑制され、AXLの阻害がエルロチニブ耐性と拮抗することができるので、合成のmiR−34模倣体の導入は、エルロチニブ感受性を回復し得る。この可能性を探るために、HCC827
res細胞を、固定の弱い濃度(0.3 nM)で使用されるmiR−34aの非存在下または存在下のどちらかで、0.03〜100μMの範囲で増加するエルロチニブ濃度に暴露した。エルロチニブの効果は、miR−34Aと組み合わせたエルロチニブがエルロチニブ単独に対して低いIC
50値を生成するように、濃度依存性であることが予想された。
図4Cに示されるように、エルロチニブはHCC827
res細胞(IC 50=25.2μM)中ではさほど強力ではなかった。しかし、miR−34Aと組み合わせて使用される場合、 エルロチニブのIC
50値は0.094μMまで減少した。この結果は、miR−34aの少量の添加が、親HCC827細胞のものと同様のエルロチニブ感受性を回復させ得ることを示している。 負の陰性対照のmiRNA(miR−NC)の添加はエルロチニブの効力を向上させなかったので、効果はmiR−34A配列に特異的であった(
図4C)。したがって、HCC827
res細胞において生成されたデータは、miR−34aがエルロチニブの獲得耐性を備える癌細胞を感作させ得ることを示している。
【0101】
miRNAが一次性の耐性機構に対抗できるかどうかを判定するために、我々はNRASとTP53遺伝子の変異を有するH1299細胞を使用した。 ここれらの細胞において、エルロチニブは11.0μMのIC
50値を生成しました(
図4D)。0.3 nMでのmiR−34Aとの組み合わせで、エルロチニブ用量反応曲線はx軸に沿って推移し、これは約4倍低いIC
50値(3.0μM)を示した。 この結果は、エルロチニブの効力を変化させなかったmiR−NCとは対照的であり、miR−34aが獲得抵抗ならびに一次性の抵抗の両方を備える非小細胞肺癌細胞を感作させ得ることを示唆している。
【0102】
miR−34aおよびエルロチニブは、非小細胞肺癌細胞において協働する。
【0103】
エルロチニブのIC
50値の推移は、固定のmiR−34a濃度がエルロチニブの有効性を向上させるかどうか示した。 しかし、「固定された濃度モデル」としても知られるこのモデルは、相乗効果を評価することはできない。 両方の薬物が互いに増強できるかどうかを調べるために、我々は、加法のLoeweのコンセプトに基づく「固定比率−モデル」を採用した (Chou TC (2010) Drug combination studies and their synergy quantification using the Chou−Talalay method. Cancer Res 70: 440−6. Tallarida RJ (2001) Drug synergism: its detection and applications. J Pharmacol Exp Ther 298: 865−72. Tallarida RJ (2006) An overview of drug combination analysis with isobolograms. J Pharmacol Exp Ther 319: 1−7.)。このモデルでは、組合せ指数(CI)値は、各用量反応曲線(薬物単独で、または組み合わせで)の傾斜およびIC
50値に基づいて計算され、薬物−薬物相互作用は相加性(CI=1)、拮抗性(CI>1)、または相乗性(CI<1)であるかどうかを定義する。CI値の精度が用量反応曲線傾向線のフィットに依存するので、CI値は、線形または非線形回帰傾向線(材料および方法を参照)の2つの方法 のいずれかを使用して、により算出した。4つのエルロチニブ耐性の細胞株を使用し、それらの全ては遺伝的構成が異なっていた:A549(KRAS、STK11、CDKN2Aの中の変異)、H460(KRAS、STK11、CDKN2A、PIK3CAの中の変異)、H1299(NRAS、TP53の中の変異)およびH226(CDKN2Aの中の変異)[37]。定量RT−PCR分析は、これらの細胞において、エルロチニブ感受性のHCC827細胞と比較して、AXL、GAS6およびFGFR1のmRNAレベルの顕著な増加を示し、エルロチニブ耐性についての説明をさらに提供した(
図8A−C)。miR−34のレベルはH1299およびH460細胞で有意に減少した。 最初のステップにおいて、エルロチニブ又はmiR34aを連続希釈で細胞に添加さして、各薬物単独のIC
50値を決定した。エルロチニブについては、これらは、4.2および>50μMの範囲であった(
図9A−B)。miR34aのIC
50値は0.4乃至15.6nMの範囲であった。どちらの薬物も100%の癌細胞を阻害することできず、いずれの薬物の最大活性も75%を超えなかった。エルロチニブ及びmiR−34aはH226細胞において最も有効でなく、用量−応答曲線の外挿の結果として理論上のIC
50値を得た。第2のステップでは、各薬物を、それ自身のおおよそのIC
50値に等しく、ならびにそれらの上記および下記(固定比率)の倍数での濃度で、混合した。対照として、各薬物単独をこれらの濃度で単独で使用した。両方の線形および非線形回帰モデルは、試験されたすべての細胞株において1.0をよく下回るCI値を生じ、強い相乗効果を示した(
図5A)。我々が適切であると考えたCI値は0.6を下回るものである。ほとんどの細胞系統において、相乗効果は、より高い用量レベルおよび癌細胞抑制のより高い大きさで、観察された。薬物の組み合わせの実用化には最大の癌細胞阻害(75%阻害またはそれ以上)での相乗効果が求められるので、これは重要ある。両方のモデルが同様の結果を生成したが、一般的には、非線形回帰傾向線は、実際のデータについてより良いフィットを提供した。
【0104】
次に我々は、アイソボログラムを生成し、相乗効果のための読み出しとして、50%および80%の癌細胞の阻害における各薬物の用量要件を決定した。薬の効能が頻繁にそのIC
50で評価され、我々の研究では各薬物単独が50%のほとんどの癌細胞を阻害することが可能であって、それにより各薬物単独と組み合わせとの比較が実際のデータの範囲内で可能となったので、50%の効果のレベルが選択された。腫瘍学の適用のための高阻害活性で相乗効果を示すことが重要であるため、80%の効果のレベルが選択された。80%の阻害を達成するような各薬物単独の濃度は、用量−反応曲線の外挿に基づいており、 自然の中では理論的であるが、miR−34A−エルロチニブの組合せは、容易に80%阻害以上を達成し、実際のデータの範囲内である。二つの薬物は、H226細胞中ではあまり有効はなかったので、30%および50%の阻害でのアイソボログラムが、H226データ用に作成された。
図5Bに示されるように、組み合わせのイソボール(isobole)は、すべての細胞株について相乗的イソロ−ブをよく下回り、効果レベルは強い相乗効果を示した。エルロチニブ用量の要件は、50%阻害を達成するために、ほとんどの細胞株において2μMまたはそれ以下にまで減少し。4から46倍だけ投与量を減少させた。同様に、miR−34aの必要な濃度も、miR−34a単独に比べて、組み合わせにおいて実質的に少なく、7から13倍だけその量を減少させた。減少指標(DRI)とも呼ばれるこの用量レベルの減少は、80%阻害で著しく明白であり、用量の要件は28倍(エルロチニブ)および33倍(miR−34a)まで減少したれる
【0105】
第三に、我々は曲線推移解析を行い、それにより各薬物の濃度がそれ自身のIC
50値に対して正規化された(Zhao L, Au JL Wientjes MG (2010) Comparison of methods for evaluating drug−drug interaction. Front Biosci (Elite Ed) 2: 241−9.)。この薬物濃度のIC
50当量(IC
50 eq)への変換により、単一の薬物および組み合わせから、各用量反応曲線を直接比較することが可能となる。傾向線が生成され、0から100%の阻害の効果レベルに及ぶ。趨勢線の傾斜は薬物潜在能力を示し、実際のデータポイントから最大の活性をguagedすることができる。組み合わせのIC
50当量が単一剤Idと比較して任意の効果を達成するには低い場合、相乗効果が同定される。これは、組み合わせ趨勢線の左の変更で視覚的に示される。
図8A−Cに見られるように、組相乗効果を示す単一剤から十分に分離されている。H460およびH226細胞において、組み合わせのIC
50当量は、単一剤のものと比較して、低い効果レベル(0−25%)でより大きくなり、30%以上の効果レベルでより低くなっている。この観察は、これらの細胞における25%を下回る阻害での拮抗作用と、25%を上回る阻害での相乗効果を示す、CIプロットからのデータと一致している(
図4A)。従って、分析は、癌細胞阻害の高いレベルを誘導する薬物濃度について相乗効果を明らかにする。組み合わせの利点は、抑制の実際のレベルが、組み合わせについて単一剤に対して大きく− 単一の薬物の最大活性が75%よりも大きくなく、組み合わせて使用した場合90%を超えて拡張され得る、という事実によってさらに明らかにされる。
【0106】
エルロチニブ及びmiR−34aの様々な割合は、相乗的に協働する。
【0107】
我々の分析では、エルロチニブとmiR−34は、2つの薬物がそれらのIC
50値に由来する比率で組み合わされる場合に協同することを示唆している。薬物 − 薬物相互作用が相対的な量に応じて変化し得るので、我々は、エルロチニブを0.41乃至100μMの濃度で、miR−34aを0.12乃至30nMの濃度で組み合わせることにより、複数のエルロチニブ−miR−34Aの比率の影響を検討した。薬物の用量は、2.5倍増加し、各薬物はまた対照として単独で使用された。このマトリックスから、13の異なる薬物の比を表す49の薬物の組み合わせが得た(
図6A)。癌細胞の阻害のレベル、CIおよびDRI値は、各組み合わせについて同定され、CIプロット、アイソボログラムおよび曲線推移図にグラフ化された。本実施例で我々は、miR−34aとエルロチニブがIC
50:IC
50の比(モル比1:3333)および次のモルベースの比(1:533、1:1333、1:8333および1:208333)で加えられる組み合わせに焦点を当てた。
【0108】
算出されたCI値は、これらの比率の全てで組み合わされるエルロチニブ及びmiR−34aが強い相乗効果を提供すると予測している(
図6B)。75%阻害よりも大きな効果レベルにて、CI値は0.2未満であった。より多くの量のエルロチニブを含む比率は、−75%未満の効果レベルで低い相乗効果を提供し、75%を上回る阻害効果レベルでわずかに優れていた。同様に、アイソボログラムは、様々なエルロチニブ−miR−34Aの比率について、強力な相乗効果を示している(
図6C)。実際のデータ点は、単一剤として用いる場合、−80%の癌細胞の抑制を誘導するために30 nMのmiR−34A又は100μΜのエルロチニブが必要とされることを示している。 対照的に、組み合わせにおいて必要とされるエルロチニブの用量レベルは、miR−34aの量が増加するにつれて実質的に減少した。例えば、12nMのmiR−34aが使用される場合、2.56μΜのエルロチニブは単に−80%の阻害を誘導するのに必要とされ、これにより、−40倍だけエルロチニブの用量の要件を減少させる。これらの比率の相乗効果に関するさらなる証拠は、曲線推移解析から来ており、該解析は、単一剤単独のIC
50値と比較してはるかに低い、組み合わせのIC
50当量を明らかにする(
図6D)。ICso eqデータは、様々な比率間での相乗効果の用量依存度を示すCIデータと相関しており: 低い比率は低効果レベルで低い相乗効果を示し、これは癌細胞の阻害の高レベルでは反転する。
【0109】
49の組合せの完全な範囲はH1299、H460およびH226細胞においても試験され、A549細胞で得られた結果を確認た。(
図10A−D)複数の比率は良好な相乗効果を提供し、より高い効力を有するものがより高い薬物濃度のものにクラスター化された。これらの中では、我々のカットオフを満たし、>75%の癌細胞の抑制を生成し、各薬物についてCI<0.6およびDRI>2であった。
【0110】
エルロチニブおよびmiR−34aは、肝細胞癌の細胞において相乗的に同時に協働する。
【0111】
エルロチニブ及びmiR−34aの協働の活性について他の癌の適応症において有用性があるかどうかを調べるために、我々は、肝細胞癌の細胞モデルにおいてこの組み合わせを調査した。エルロチニブが単一剤としての進行型の肝臓の患者で適度に有効であり、ソラフェニブとの組み合わせにおいて全生存期間および増悪までの時間を延長するのに失敗したため、肝臓癌を試験プラットフォームとして選んだ。(Philip PA, Mahoney MR, Allmer C, Thomas J, Pitot HC, et al. (2005) Phase II study of Erlotinib (OSI−774) in patients with advanced hepatocellular cancer.J Clin Oncol 23: 6657−63. Thomas MB, Chadha R, Glover K, Wang X, Morris J, et al. (2007) Phase 2 study of erlotinib in patients with unresectable hepatocellular carcinoma. Cancer 110: 1059−67. Zhu AX, Rosmorduc O, Evans J, Ross P, Santoro A, et al. (2012) SEARCH: A phase III, randomized, double−blind, placebo−controlled trial of sorafenib plus erlotinib in patients with hepatocellular carcinoma (HCC). 37th Annual European Society for Medical Oncology Congress, Vienna, Austria, September 28−October 2 (abstr 917)).
【0112】
さらに、現在臨床試験中のMRX34、miR−34aのリポソームは、前臨床動物実験で効果的に肝臓腫瘍を除去し、したがってエルロチニブとの組み合わせで魅力的な薬物であり得る。使用された細胞モデルは、Hep3B、C3A、HepG2、およびHuh7を含み、そのうちのいくつかは、エルロチニブ感受性の肺癌株と比較して、エルロチニブ耐性遺伝子AXL、HGF、FGFR1、およびERBB3のアップレギュレーションを示す(
図11)。まとめると、miR−34ファミリーメンバーのレベルは、肝臓癌細胞において低いか又は検出不能であった。我々の予想と一致して、エルロチニブのIC
50値は、これらの4つの細胞株で、25μM以上であった(
図12A−B)。miR−34aのIC
50値は、0.3乃至2.3 nMの範囲であって、ゆえに、肺癌細胞のそれと同様であった。これらの値は、IC
50:IC
50の固定比率でエルロチニブとmiR−34aとを組み合わせるために、およびCI、イソボール、及びIC
50eqの値を生成するために、ガイドとして使用される(
図7)。さらに、各組み合わせは、複数の比率にわたって組み合わせの効果を評価するために、異なる濃度のマトリックスで試験された(
図13A−D)。我々のデータは、試験した全ての細胞株においてエルロチニブとmiR−34aとの間の強力な相乗効果を予測する。相乗効果は癌細胞の阻害の高レベルで観察され、従って、活性の望ましい範囲内で生じた(
図7A)。この結果は、より高い用量および効果レベルでの相乗効果を示す、IC
50eqの曲線推移解析によって確認された。分析はまた、組み合わせの最大の阻害活性が、単一剤のものと比較して実質的に拡大されることを示している(
図7C)。 50%より大きな阻害、例えば80%を誘導するためにmiR34aで使用される場合、アイソボログラムは、エルロチニブ用量の明確な減少を示す(
図7B)。組み合わせにおいて、エルロチニブは、50%の癌細胞を阻害するために、2μMという低濃度で使用され得、それによって、その単独での使用(HepGを参照)と比較して75倍投与量を低下させる。相乗効果は特定の比率に限定されないが、試験されたほとんどの比率にわたって明らかである (
図13A−D)。したがって、データは、肺癌細胞において生成されたものと類似しており、エルロチニブ単独では不十分な癌におけるエルロチニブmiR−34aの組み合わせに関して、増強された有効性を予測する。
【0113】
議論
成果は薬物の比率、薬物濃度および所望の効力に依存するので、薬物−薬物相互作用の正確な評価は複雑である(Chou TC (2010) Drug combination studies and their synergy quantification using the Chou−Talalay method. Cancer Res 70: 440−6)。miR−34a模倣体とエルロチニブとの間の薬理学的関係を調べるために、我々は複数の分析アプローチを使用して、薬物の強化を明らかにし(「固定濃度」モデル)、相加効果、拮抗作用、および相乗効果を区別した(「固定比率」モデル)。我々は、線形または非線形データ回帰に由来する、CI値、アイソボログラムおよびIC
50当量を調べた。miR−34aが、一次性又は二次性/獲得耐性に関連するかどうかについて試験された全ての癌細胞におけるエルロチニブに対する感受性を増強する、ということを我々のデータは示す。もっともらしい説明は、腫瘍抑制miRNAが多数の癌経路を阻害するという事実によって提供される。この仮説を支持して、エルロチニブ耐性に特異的にリンクされる遺伝子産物であるAXLおよびMETは、miR−34Aによって直接抑制される(Kaller M, Liffers ST, Oeljeklaus S, Kuhlmann K, Roh S, et al. (2011) Genome−wide characterization of miR−34a induced changes in protein and mRNA expression by a combined pulsed SILAC and microarray analysis.Mol Cell Proteomics 10: M111 010462. Mudduluru G, Ceppi P, Kumarswamy R, Scagliotti GV, Papotti M, et al. (2011) Regulation of Axl receptor tyrosine kinase expression by miR−34a and miR−199a/b in solid cancer. Oncogene 30: 2888−99. He L, He X, Lim LP, de Stanchina E, Xuan Z, et al. (2007) A microRNA component of the p53 tumour suppressor network. Nature 447: 1130−4.)。
【0114】
意外なことに、EGFR経路を含む複数の発癌性シグナル伝達経路の制御におけるmiR−34aの関与の証拠があるにもかかわらず、エルロチニブはまたmiR−34a模倣体の治療効を増強した (Lal A, Thomas MP, Altschuler G, Navarro F, O’Day E, et al. (2011) Capture of microRNA−bound mRNAs identifies the tumor suppressor miR−34a as a regulator of growth factor signaling. PLoS Genet 7: e1002363.)。 したがって、この結果は、miRNA模倣体が単一の遺伝子指向性療法(gene−directed therapy)と協働できることを示し、他の組み合わせの探索を誘っている。従って、様々な追加の実施形態において、本発明は、ゲフィチニブ、アファチニブ、パニツムマブおよびセツキシマブなどの他のEGFR阻害剤、ならびにラパチニブ、ペルツズマブおよびトラスツズマブなどのHER2阻害剤と、miR−34aとの組み合わせを含む。
【0115】
獲得耐性を備える肺癌細胞(HCC827
res)では、少量のmiR−34aを添加によって、エルロチニブIC
50値を0.1μMより下まで低減することができた。 これは注目すべき結果であり、miR34aが、親HCC827細胞と比較して同等のエルロチニブ感受性を、この細胞株に付与できることを示唆している。一次性の耐性を伴う肺癌細胞では、エルロチニブのIC
50用量要件は4から46倍減少し、約2μMであった。 これは、臨床的有用性を有する濃度の範囲内で有り得る(Sharma SV, Bell DW, Settleman J Haber DA (2007) Epidermal growth factor receptor mutations in lung cancer. Nat Rev Cancer 7: 169−81.)。エルロチニブは、最大150mgの経口投与量として毎日与えらる。MRX34の臨床用量レベルは未だ確立されていないが、臨床で使用されるmiR−34aとエルロチニブとのモル比は、我々の細胞研究で相乗効果を示した比率の範囲内であり得る。
【0116】
エルロチニブは現在、活性EGFR変異を備えるNSCLC患者のための一次治療として使用されている。 少なくとも1つの先の化学療法レジメンで失敗した、局所的に進行したか又は転移したNSCLCについて、化学療法および2次および3次の治療の後の維持療法としても使用される。臨床試験は、従来の化学療法単独と比べて、シスプラチン/ゲムシタビンまたはカルボプラチン/パクリタキセルとの組み合わせでは、エルロチニブの生存利益を示すのを失敗した(Id. Herbst RS, Prager D, Hermann R, Fehrenbacher L, Johnson BE, et al. (2005) TRIBUTE: a phase III trial of erlotinib hydrochloride (OSI−774) combined with carboplatin and paclitaxel chemotherapy in advanced non−small−cell lung cancer. J Clin Oncol 23: 5892−9.)。HCCにおけるエルロチニブ・プラス・ソラフェニブを調査し、最近の第III相試験も、そのエンドポイントを満たさなかった(Zhu AX, Rosmorduc O, Evans J, Ross P, Santoro A, et al. (2012) SEARCH: A phase III, randomized, double−blind, placebo−controlled trial of sorafenib plus erlotinib in patients with hepatocellular carcinoma (HCC). 37th Annual European Society for Medical Oncology Congress, Vienna, Austria,September 28−October 2(abstr 917))。したがって、併用療法の他のアプローチが望まれる。我々のデータは、エルロチニブとmiR−34aとの組み合わせが特に有効であり、エルロチニブで治療できるNSCLC患者集団を実質的に広げ得ることを示す。組み合わせはHCC細胞においても同様に相乗的であり、このことは、相乗的相互作用がそれらの作用分子機構の結果であり、NSCLC以外の癌にも適用可能であることを示唆した。
【0117】
<実施例6:ラパチニブおよびmiR−34模倣体(MIR−Rx34)は乳癌細胞において協働する>
ヒト乳癌細胞株BT−549、T47D、MDA−MD−231、およびMCF−7(ATCCから)は、miR−Rx34及びラパチニブの組み合わせの効果を評価するために使用された。ラパチニブは、LC Laboratories(マサチューセッツ州)から購入した。 合成のmiR−34aおよびmiR−NCの模倣体は、Life Technologies(Ambion, Austin, TX)によって製造された。各薬物単独のIC
50値を決定するために、ウェル当たり2,000−3,500細胞を96ウェルプレートフォーマットに播種し、ラパチニブまたはmiR−34aのいずれかで次のように処理した。(i)miR−34Aの模倣体は、公開されたプロトコルに従って、InvitrogenからのRNAiMAXリポフェクタミンを用いて、連続希釈(0.03−30 nM)中で3組でリバーストランスフェクトした。対照として、細胞はRNAiMAXトランス単独(モック)でトランスフェクトされた。細胞は、細胞増殖を決定するために、トランスフェクションの6日後にAlamarBlue (Invitrogen)でインキュベートした。増殖データは、モックでトランスフェクトされた細胞に対して正規化された。(ii)ラパチニブは、ジメチルスルホキシド(DMSO)中の10mMストック溶液として調製され、0.1から100μMの範囲の最終濃度で播種した一日後、細胞に添加した。溶媒のみ(全細胞株中で1%の最終DMSO)を対照として別々のウェル中の細胞に添加した。三日後、細胞増殖をアラマーブルーで測定し、溶媒対照に対して正規化した。
【0118】
併用の研究を、ラパチニブの〜IC
50比率及びmiR−Rx34(比率= IC
50ラパチニブ/ IC
50miR−Rx34)で行った。 細胞は、上記または下記の2倍の増加内の、対応するIC
50および濃度にほぼ等しい濃度で、miR−Rx34aと組み合わせたラパチニブで処理された。 ラパチニブ/miR−Rx34aの比率はBT−549で4000、MDA−MD−231で3333.3、MCF−7で5000、およびT47Dで6000である。細胞をmiR−Rx34aでリバーストランスフェクトし、ラパチニブをトランスフェクションの3日間後に添加し、細胞増殖をAlamarBlueによってラパチニブ添加の3日後に測定した。
【0119】
CI値は、単一剤の用量反応曲線の非線形回帰に基づいて計算され、および、組み合わせで使用される場合、0(阻害なし)から1(100%阻害)までの軸上ので、癌細胞の阻害のレベルに対して示される。相乗的と考えられ、臨床的価値を有する組み合わせは、最大の癌細胞阻害における低いCI値(<0.6)を有するものである。
図14に示されるようにmiR−Rx34は、すべての4つの乳癌細胞株(BT−549、MCF−7、MDA−MB−231、T47D)にわたってラパチニブと相乗作用する。記号は、実際のデータポイントに由来するCI値を表わす。CI(組み合わせインデックス);Fa、影響された画分、(=増殖の抑制);CI=1、相加性;CI〉1、拮抗性;CI〈1、相乗性。
【0120】
<実施例7:NSCLCにおけるエルロチニブ+ MRX34療法>
非小細胞肺癌を有する患者を治療するために、MRX34+エルロチニブの組合せを次のように使用することができる。患者は毎日150、100、または50mgの経口用量のエルロチニブ、および、50mg/ m
2乃至165mg/m
2の範囲の用量レベルで、MRX34の30分乃至3時間の静脈内への点滴を受ける。特定の状況では、MRX34は、50、70、93、124、または165mg/m
2の用量レベルで与えられる。
【0121】
別の例では、エルロチニブは毎日150、100、または50mgの経口用量として与えられ、および、MRX34は50mg/m
2乃至165mg/m
2の範囲の用量レベルで、30分乃至3時間の点滴の間、1週間に2回(three twice)(例えば月曜日と火曜日)、与えられる。特定の状況では、50、70、93、124または165mg/m
2の用量レベルでMRX34を与える。
【0122】
別の例において、エルロチニブは毎日150、100、または50mgの経口用量として与えられ、および、MRX34は50mg/m
2乃至165mg/m
2の範囲の用量レベルで、30分乃至3時間の点滴によって毎日与えられるが、ただし1週間につき5日間連続で行われ、2日間の休みを設ける。特定の状況では、MRX34は50、70、93、124または165mg/m
2の用量レベルで与えられる。
【0123】
<実施例8:膵臓癌におけるエルロチニブ+MRX34療法>
膵臓癌、例えば膵管腺癌を有する患者を治療するために、MRX34+エルロチニブの組合せを次のように使用することができる。患者は毎日100、または50mgの経口用量のエルロチニブ、および、50mg/m
2乃至165mg/m
2の範囲の用量レベルで、MRX34の30分乃至3時間の静脈内への点滴を受ける。特定の状況では、MRX34は50、70、93、124または165mg/m
2の用量レベルで与えられる。
【0124】
別の例では、エルロチニブは毎日100、または50mgの経口用量として与えられ、および、MRX34は50mg/ m
2乃至165mg/m
2の範囲の用量レベルで、30分乃至3時間の点滴の間、1週間に2回((例えば月曜日と火曜日)、与えられる。特定の状況では、MRX34は50、70、93、124または165mg/m
2の用量レベルで与えられる。
【0125】
別の例において、エルロチニブは毎日100、または50mgの経口用量として与えられ、および、MRX34は50mg/m2乃至165mg/m
2の範囲の用量レベルで、30分乃至3時間の点滴によって毎日、ただし1週間あたり5日間連続と2日間のオフで与えられる。特定の状況では、MRX34は50、70、93、124または165mg/m
2の用量レベルで与えられる。
【0126】
<実施例9:乳癌におけるラパチニブ+MRX34療法>
乳癌、例えば、ホルモン受容体陽性、HER2陽性転移性乳癌を備える患者を試験するために、MRX34+ラパチニブの組み合わせを次のように使用することができる。患者は毎日1500、1250、1000、または750mgの経口用量のラパチニブ、および、50mg/ m
2乃至165mg/m
2の範囲の用量レベルで、MRX34の30分乃至3時間の静脈内への点滴を受ける。特定の状況では、MRX34は50、70、93、124または165mg/m
2の用量レベルで与えられる。
【0127】
別の例では、ラパチニブは毎日1500、1250、1000、または750mgの経口用量として与えられ、および、MRX34は50mg/m
2乃至165mg/m
2の範囲の用量レベルで、30分乃至3時間の点滴の間、1週間に2回(例えば月曜日と火曜日)、与えられる。特定の状況では、MRX34は50、70、93、124または165mg/m
2の用量レベルで与えられる。
【0128】
別の例において、ラパチニブは毎日1500、1250、1000、または750mgの経口用量として与えられ、および、MRX34は50mg/ m
2乃至165mg/m
2の範囲の用量レベルで、30分乃至3時間の点滴によって毎日、ただし1週間あたり5日間連続と2日間のオフで与えられる。特定の状況では、MRX34は50、70、93、124または165mg/m
2の用量レベルで与えられる。
【0129】
別の例において、ラパチニブおよびMRX34は上記のように、及び、21日周期の1−14日目でカペシタビン2000mg/m
2/日(約12時間おきに2つの用量で経口投与される)と組み合わされて、投与される。
【0130】
別の例において、ラパチニブおよびMRX34は、上記のように、および一日一回2.5mgのレトロゾールと組み合われて、投与される。
【0131】
<実施例10:NSCLCにおけるアファチニブ+MRX34療法>
非小細胞肺癌を有する患者を治療するために、MRX34+アファチニブの組合せを次のように使用することができる。患者は毎日40、30、または20mgの経口用量のアファチニブ、および、50mg/ m
2乃至165mg/m
2の範囲の用量レベルで、MRX34の30分乃至3時間の静脈内への点滴を受ける。特定の状況では、MRX34は50、70、93、124または165mg/m
2の用量レベルで与えられる。
【0132】
別の例では、アファチニブは毎日40、30、または20mgの経口用量として与えられ、および、MRX34は50mg/ m
2乃至165mg/m
2の範囲の用量レベルで、30分乃至3時間の点滴の間、1週間に2回(例えば月曜日と火曜日)与えられる。特定の状況では、MRX34は50、70、93、124または165mg/m
2の用量レベルで与えられる。
【0133】
別の例において、アファチニブは毎日40、30、または20mgの経口用量として与えられ、および、MRX34は50mg/ m
2乃至165mg/m
2の範囲の用量レベルで、30分乃至3時間の点滴によって毎日、ただし1週間あたり5日間連続と2日間のオフで与えられる。特定の状況では、MRX34は50、70、93、124または165mg/m
2の用量レベルで与えられる。
【0134】
明細書は、明細中で引用される引用の教えに照らして最も徹底的に理解される。明細書内の実施形態は、発明の実施形態の実例を提供し、発明の範囲を限定するようには解釈されるべきでない。当業者は、他の多くの実施形態が本発明により包含されることを容易に認識する。当業者は、本明細書に記載の本発明の特定の実施形態に対する多くの等価物を認識し、または、ただ日常的な実験のみを用いて確認できよう。こうした等価物は以下の請求項で包含されるように意図される。
【0135】
【表5-1】
【0136】
【表5-2】
【0137】
【表5-3】
【0138】
【表5-4】
【0139】
【表5-5】
【0140】
【表5-6】
【0141】
【表5-7】
【0142】
【表5-8】
【0143】
【表5-9】
【0144】
【表5-10】
【0145】
【表5-11】
【0146】
【表5-12】