【実施例】
【0049】
[0061]配列Lys−Pro−Leu−Lys−Pro−Trp;Lys−3Hyp−Leu−Lys−Pro−Trp;Lys−4Hyp−Leu−Lys−Pro−Trp;Lys−Pro−Ile−Lys−Pro−Trp;Lys−3Hyp−Ile−Lys−Pro−Trp;Lys−4Hyp−Ile−Lys−Pro−Trp;Lys−Pro−Leu−Lys−3Hyp−Trp;Lys−3Hyp−Leu−Lys−3Hyp−Trp;Lys−4Hyp−Leu−Lys−3Hyp−Trp;Lys−Pro−Ile−Lys−3Hyp−Trp;Lys−3Hyp−Ile−Lys−3Hyp−Trp;Lys−4Hyp−Ile−Lys−3Hyp−Trp;Lys−Pro−Leu−Lys−4Hyp−Trp;Lys−3Hyp−Leu−Lys−4Hyp−Trp;Lys−4Hyp−Leu−Lys−4Hyp−Trp;Lys−Pro−Ile−Lys−4Hyp−Trp;Lys−3Hyp−Ile−Lys−4Hyp−Trp;およびLys−4Hyp−Ile−Lys−4Hyp−Trpを含むか、該配列から成るか、または該配列から本質的に成るポリペプチドを包含する本発明のNP−6AKアゴニストを、さまざまな細胞に基づく系で試験して、AT2Rアゴニスト活性および本明細書に記載の方法の有用性を実証した。
【0050】
[0062]したがって、配列Lys−Pro−Leu−Lys−Pro−Trpを含むNP−6AKアゴニストは、AT2R活性化を介して作用することにより、マウスHL−1心筋細胞およびヒト血管平滑筋細胞の全体にわたり細胞生存を促進させた。細胞生存は、細胞の生存、接着、および増殖に対するさまざまな処理の効果を定量的に決定するためにXcelligence
TM リアルタイム細胞アナライザー(Westburg BV、ルースデン、オランダ)を用いて、細胞指数(CI)を測定することにより評価した。NP−6AKアゴニスト(300nM)で処理した細胞株は、AT2Rの部分的アゴニストであるCGP42112A(300nM)(シグマ−アルドリッチCo.LLC、ミズーリ州セントルイス)で処理したものに比べ、著しく良好な生存および多くの増殖を実証した。CGP42112AおよびNP−6AKアゴニスト(300nM)は、血清飢餓HL−1細胞のCIを、CGP42112A(≧14%)、NP−6AK(≧25%)の順で増大させた。CIの増大は、AT2R活性化の直接的効果である。これは、AT2RアンタゴニストであるPD123319(シグマ−アルドリッチCo.LLC、ミズーリ州セントルイス)の添加により確認された。このアンタゴニストの存在下では、NP−6AKアゴニストを用いて通常なら観察される細胞生存が存在しなかった。
【0051】
[0063]NP−6AKアゴニストは、いくつかの細胞株の全体にわたりAT2Rを選択的に活性化することにより、MCL−1を上方制御した。この効果は、血清飢餓および/または毒性条件下の心筋細胞、ヒト血管平滑筋細胞、SH−SY5Y細胞(ATCC、バージニア州マナサス)、およびPC−12神経細胞(ATCC、バージニア州マナサス)で観察された。濃度300nMのNP−6AKアゴニストと一緒にインキュベートすると、心筋細胞は45%高いMCL−1発現を示し、ヒト血管平滑筋細胞は22%高いMCL−1発現を示した(
図1)。これらの細胞株のいずれかをPD123319などのAT2Rアンタゴニストで前処理すると、MCL−1の上方制御は観察されず、MCL−1の上方制御にはAT2RのNP−6AK活性化が必要であることを示唆していた。NP−6AKアゴニストで処理した細胞は、CGP42112Aなどの部分的アゴニストで処理したものと比較して、より高いMCL−1上方制御をもたらした。
【0052】
[0064]SH−SY5Y細胞株は、ドーパミン作動性およびアドレナリン作動性受容体の両方を有する神経細胞株である。この細胞株をラパマイシンで処理すると、MCL−1発現は低減した。ラパマイシンによる処理後にこの細胞株にNP−6AKアゴニストを加えると、MCL−1発現を回復させることができた。NP−6AKアゴニストのみを300nMの濃度で加えると、これらの細胞はMCL−1発現において2倍の増大を示した。
図2参照。
【0053】
[0065]血清飢餓は、SH−SY5Y細胞およびPC−12細胞の生存を低下させた。これらの細胞株をNP−6AKアゴニストで処理すると、それらはより高い生存率を有し、増大したMCL−1発現および神経突起伸長を示した。
図3参照。PC−12細胞をAT2RアンタゴニストのPD123319で処理すると、NP−6AKアゴニストの保護効果が失われ、NP−6AKアゴニストの直接的作用がAT2R活性化を介していることを示していた。この細胞株を300nMのNP−6AKアゴニストで処理すると、AT2R AngIIの天然リガンド(300nM)での処理と比較して、30%を超える細胞生存度の増大がもたらされた。300nMのCGP42112Aでの処理と比較して、NP−6AKアゴニストで処理した細胞は、70%をこえる生存の増大を示した。AngIIまたはCGP42112Aでの処理は、細胞をAT2RアンタゴニストのPD123319で処理したときに得られた結果と比較して、より有害であった。NP−6AKアゴニストによるAT2R活性化は細胞生存を促進するが、他のリガンドによるAT2R活性化は細胞生存に有害である。これらの結果は、MTS細胞増殖アッセイ(Biovision Inc.、カリフォルニア州ミルピタス)を用いて評価した。
【0054】
[0066]ex vivoのニューロンを得て、さまざまな条件にてNP−6AKアゴニストで処理して神経保護特性を評価した。培養液中の正常なマウス1次胚皮質ニューロン(14日間in vitro培養)を、グルコース不含ロック培地で培養することにより、栄養枯渇で試験した(Schnapfら(1990))。その後、これらの培養物に300nMのNP−6AKアゴニストを添加するかまたはNP−6AKアゴニストを添加しなかった。300nMのNP−6AKアゴニストを添加した培養物は、陰性対照と比較して、60%増大した活性(p<0.05)を示した。
図4参照。
【0055】
[0067]心血管疾患の徴候を示す糖尿病動物モデルであるZucker Obese(ZO)ラット(Charles River Laboratories,Inc.、マサチューセッツ州ウィルミントン)を、NP−6AKアゴニストの皮下注射により2週間処置し(0.9mg/kg/日の用量)、血液マーカーおよび心臓の構造的パラメーターなど心血管の健康に関するいくつかのマーカーについて評価した。対照は、生理食塩水を与えられたZOラットであった。空腹時の血漿および尿の分析結果は、NP−6AKアゴニストを与えられた動物が、低減したトリグリセリド(約50%)、尿タンパク(約68%)、低減した尿N−アセチル−β−A−グルコサミニダーゼ(約60%)、および平均で12%増大したHDLを有することを実証した。Vevo(登録商標)2100プラットフォーム(VisualSonics、オンタリオ州トロント、カナダ)を用いて実施した心エコー検査は、NP−6AKアゴニストで処置した動物では、心内膜の円周方向ストレイン(短軸図)を包含する構造的心臓パラメーター、心筋性能指数(MPI)(p≦0.005)、および主要な心臓現象の有力な予測因子であるE/E’比(p≦0.002)が改善されていたことを示した。表1参照。
【0056】
【表1】
【0057】
[0068]本発明を、特にこれらの好ましい態様に関連して詳細に記載してきたが、他の態様でも同じ結果を得ることができる。本発明の変動および修正は当業者には明らかであり、そのような修正および等価物は添付の特許請求の範囲内にあることを意図している。本明細書で引用するすべての文献、明細書、特許、および公表物の開示内容全体を、本明細書に援用する。
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