特許 6086494 アスベスト検出方法

(19)【発行国】日本国特許庁(JP)

(12)【公報種別】特許公報(B2)

(11)【特許番号】6086494

(24)【登録日】2017年2月10日

(45)【発行日】2017年3月1日

(54)【発明の名称】アスベスト検出方法

(51)【国際特許分類】

   G01N 21/64 20060101AFI20170220BHJP

【ＦＩ】

   G01N21/64 E

   G01N21/64 F

【請求項の数】8

【全頁数】28

(21)【出願番号】特願2013-529030(P2013-529030)

(86)(22)【出願日】2012年8月9日

(86)【国際出願番号】JP2012070783

(87)【国際公開番号】WO2013024881

(87)【国際公開日】20130221

【審査請求日】2015年4月16日

(31)【優先権主張番号】特願2011-177254(P2011-177254)

(32)【優先日】2011年8月12日

(33)【優先権主張国】JP

(73)【特許権者】

【識別番号】504136568

【氏名又は名称】国立大学法人広島大学

(74)【代理人】

【識別番号】110000338

【氏名又は名称】特許業務法人ＨＡＲＡＫＥＮＺＯ ＷＯＲＬＤ ＰＡＴＥＮＴ ＆ ＴＲＡＤＥＭＡＲＫ

(72)【発明者】

【氏名】黒田 章夫

(72)【発明者】

【氏名】石田 丈典

(72)【発明者】

【氏名】西村 智基

【審査官】 伊藤 裕美

(56)【参考文献】

【文献】 特開２０１０−０３２２７１（ＪＰ，Ａ）

【文献】 国際公開第２００７／０５５２４３（ＷＯ，Ａ１）

【文献】 特開２０１０−２５６０１０（ＪＰ，Ａ）

【文献】 特開２０１０−１３１５８７（ＪＰ，Ａ）

【文献】 アスベストモニタリングマニュアル（第4.0版），日本，環境省 水・大気環境局 大気環境課，２０１０年 ６月，Pages 1-78

(58)【調査した分野】（Int.Cl.，ＤＢ名）

Ｇ０１Ｎ ２１／００−２１／０１

Ｇ０１Ｎ ２１／１７−２１／８３

ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩＩ）

(57)【特許請求の範囲】

【請求項1】

被検物に、蛍光標識を有するアスベスト結合タンパク質を接触させる、接触工程と、
上記接触工程を経た後に、上記被検物中に含まれている長さ５μｍ以上、幅３μｍ未満、かつ長さと幅との比が３：１以上の繊維状の物質を、位相差顕微鏡を用いて検出し、当該繊維状の物質を第２検出工程における検出対象物とする、第１検出工程と、
上記第１検出工程において検出対象物とされた上記繊維状の物質と結合した上記アスベスト結合タンパク質を、蛍光顕微鏡を用いて検出し、上記アスベスト結合タンパク質が結合している上記繊維状の物質をアスベストであると判断する、第２検出工程と、
を含み、
上記第１検出工程と上記第２検出工程とは、同一視野において行なわれることを特徴とするアスベスト検出方法。

【請求項2】

上記被検物はフィルターに捕集されており、
上記接触工程を経た後の上記フィルターを透明化する、透明化工程をさらに含み、
上記第１検出工程を、上記透明化工程を経た後に行うことを特徴とする、請求項１に記載のアスベスト検出方法。

【請求項3】

上記第１検出工程および上記第２検出工程を少なくとも１度繰り返し行うことを特徴とする、請求項１または２に記載のアスベスト検出方法。

【請求項4】

上記アスベスト結合タンパク質は、上記透明化工程を経た後にアスベストに対する結合が維持されるタンパク質であり、
上記蛍光標識は、上記透明化工程を経た後に蛍光顕微鏡によって蛍光が検出できるものであることを特徴とする、請求項２に記載のアスベスト検出方法。

【請求項5】

上記アスベスト結合タンパク質は、Ｈ−ＮＳタンパク質であることを特徴とする、請求項４に記載のアスベスト検出方法。

【請求項6】

上記蛍光標識は、Ｃｙ３、ＤｙＬｉｇｈｔ４８８、フルオロセイン、Ａｌｅｘａ４８８、ＡＴＴＯ４８８、ＣＦ４８８Ａ、ＤｙＬｉｇｈｔ５５０およびＣＦ５５５からなる群より選択される１以上の蛍光物質であることを特徴とする、請求項４または５に記載のアスベスト検出方法。

【請求項7】

上記アスベスト結合タンパク質は、Ｈ−ＮＳタンパク質の多量体であることを特徴とする、請求項５に記載のアスベスト検出方法。

【請求項8】

上記接触工程では、上記アスベスト結合タンパク質として、２種類以上の異なるアスベスト結合タンパク質を、被検物と接触させ、
上記２種類以上の異なるアスベスト結合タンパク質は、互いに異なる種類のアスベストと特異的に結合するタンパク質であり、且つ互いに異なる波長の蛍光を発する蛍光標識を有していることを特徴とする、請求項１から３、４、６の何れか１項に記載のアスベスト検出方法。

【発明の詳細な説明】

【技術分野】

【0001】

本発明は、アスベスト検出方法に関する。

【背景技術】

【0002】

昨今、アスベスト（繊維状ケイ酸塩、「石綿」ともいう）が人体に悪影響を及ぼすことが問題となっている。すなわち、過去にアスベストを製造し、または取扱う業務に従事していた人々に、肺がん、中皮腫等の健康被害が多発していることが企業から公表され、アスベスト粉じんを吸入することにより、主に石綿肺、肺がん、悪性中皮腫等の健康障害を生じるおそれがあることが報告されている。
石綿肺は、肺が線維化してしまう肺線維症（じん肺）という病気の一つである。肺の線維化を起こすものは他の鉱物性粉じん等多くの原因があるが、石綿の曝露によって起きた肺線維症を特に石綿肺として区別している。肺がんは、肺胞内に取り込まれた石綿繊維の主に物理的刺激により発生するとされている。発がん性の強さは、石綿の種類により異なる他、石綿の太さ、長さも関与する。悪性中皮腫は、肺を取り囲む胸膜や、肝臓や胃等の臓器を囲む腹膜等にできる悪性の腫瘍である。
アスベストには、クリソタイル（白石綿）、クロシドライト（青石綿）、アモサイト（茶石綿）、アンソフィライト、トレモライト、アクチノライト等が含まれる。アスベストの用途としては、９割以上が建材に使用されており、残り１割は化学プラント設備用のシール材、摩擦材等の工業製品等に使用されている。なお、平成１６（２００４）年１０月１日よりアスベストを原料とした建材、摩擦材、接着剤の製造等は禁止されているが、過去に大量にアスベストが使われた経緯があるため、多くの建物に取り残されているのが現状である。
アスベストの検出方法としては、例えば、大気中のアスベストを検査する場合、ポンプで大気を吸い込む際にフィルターにアスベストを捕集し、そのフィルターをアセトン等を用いて無色化（透明化）した後で、位相差顕微鏡を用いて観察し、大気中の総繊維濃度を計測する。総繊維濃度が１本／Ｌ以上である場合は、位相差顕微鏡によって観察された繊維が実際にアスベストであるか否かを電子顕微鏡を用いて判定する（非特許文献１を参照）。
しかし、位相差顕微鏡での観察には熟練した技能が必要であり、また相当の時間を要するため、同時に多数の処理を行なうことは困難である。また、電子顕微鏡は非常に高価な機械であるため、誰でも簡便に実施できるものではない。さらには、電子顕微鏡による判定は、試料の煩雑な前処理等が必要であるばかりか、位相差顕微鏡によって観察された繊維を、エネルギー分散型Ｘ線分析装置によって分析するという非常に時間と根気とを要する作業である。
このため、従来の位相差顕微鏡と電子顕微鏡とを用いる方法（以下、「位相差顕微鏡・電子顕微鏡法」と称する。）では、アスベストを迅速に検出することができない。よって、迅速性が必要な解体現場でのアスベストリスクに対応することができない。解体現場では、早い場合には２〜３日で解体が終了するので、検査結果が出たときには、既にアスベストが周囲にまき散らされた後であるという場合も少なくない。このように、もはや日本におけるアスベスト発生源は、工場よりもむしろ短期的に場所が移動する解体現場へと移行していることから、アスベストを迅速に検出できる方法の開発が急務である。
ところで、本発明者らは、アスベストに特異的に結合するタンパク質（「アスベスト結合タンパク質」と称する。）を独自に発見し、かかるタンパク質を利用したアスベストのバイオアッセイ系（「バイオ蛍光法」と称する。）を提唱している（例えば特許文献１を参照）。バイオ蛍光法は、アスベスト結合タンパク質を蛍光物質で修飾することによりバイオプローブを作成し、かかるバイオプローブを用いて、蛍光顕微鏡下でアスベストを検出する方法である。バイオ蛍光法では、位相差顕微鏡では非常に見え難い、より微細なアスベスト繊維までをも感度よく検出することができる。具体的には、バイオ蛍光法では、幅（直径）が３０ナノメートルの微細なクリソタイル単繊維までをも検出できることがわかっている。さらには、バイオ蛍光法では、アスベスト繊維の物性および形状の両方を確認することができる。このため、バイオ蛍光法は、効率的で、簡便で、且つ精度の高いアスベストの検出方法として注目されている。
また、本発明者らは、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ由来のＤｋｓＡタンパク質が、アスベストのなかでも特にクリソタイル（白石綿）に強く結合することを報告している（非特許文献２）。
さらに、本発明者らは、アスベスト結合タンパク質のスクリーニング方法、および当該スクリーニング方法によって得られたアスベスト結合タンパク質を用いて、バイオ蛍光法により様々な試料に含まれるアスベストを検出する方法について開示している（特許文献２）。

【先行技術文献】

【特許文献】

【0003】

【特許文献1】国際公開第２００７／０５５２４３号パンフレット（国際公開日：２００７年５月１８日）

【特許文献2】日本国公開特許公報「特開２０１０−３２２７１号（２０１０年２月１２日公開）」

【非特許文献】

【0004】

【非特許文献1】「アスベストモニタリングマニュアル（第４．０版）」環境省 水・大気環境局 大気環境課、平成２２年６月

【非特許文献2】″Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｃｈｒｙｓｏｔｉｌｅ Ａｓｂｅｓｔｏｓ ｂｙ Ｕｓｉｎｇ ａ Ｃｈｒｙｓｏｔｉｌｅ−Ｂｉｎｄｉｎｇ Ｐｒｏｔｅｉｎ″，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｂｉｏｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，Ｖｏｌ．９９，Ｎｏ．２，Ｆｅｂｒｕａｒｙ １，２００８，ｐ．２８５−２８９．

【発明の概要】

【発明が解決しようとする課題】

【0005】

上述したように、バイオ蛍光法は、位相差顕微鏡では検出できない微細なアスベスト繊維も検出できる。すなわち、バイオ蛍光法によって検出されるアスベストの総数は、位相差顕微鏡によって検出される総数よりも多くなるおそれがある。従って「従来の位相差顕微鏡・電子顕微鏡法によって取得された過去のデータと連続性がないのではなのか」、「アスベストの検出基準が変わるのではないか」といった懸念が、従来技術の計測者に存在する。このため、バイオ蛍光法では、如何に従来の位相差顕微鏡・電子顕微鏡法の基準を変えないようにアスベストを計測するかという技術的課題を有している。
ここで、非特許文献１によれば、従来法の基準とは、まず位相差顕微鏡で、長さ５μｍ以上、幅（直径）３μｍ未満、かつ長さと幅との比（アスペクト比）が３：１以上の繊維状の物質を計測し、総繊維数を算出する。さらには、その総繊維数のうち何％がアスベストであるかを、何らかの方法で判定することである。このアスベストの判定（同定）方法としては、例えば、電子顕微鏡（分析走査電子顕微鏡または分析透過電子顕微鏡）を用いた方法が位相差顕微鏡・電子顕微鏡法である。この方法では、位相差顕微鏡で計測された繊維について電子顕微鏡下でのＸ線スペクトルによる判定を行い、アスベストを判定する。
一方、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法は、上述したように、簡便、且つ迅速にアスベストを検出することができないという課題を有している。
本発明は、上記の問題点に鑑みてなされたものであり、その目的は、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法によるアスベストの検出基準を変えることなく、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法と比較して、より効率的で、簡便で、且つ精度高くアスベストを検出し得る方法を提供することにある。

【課題を解決するための手段】

【0006】

本発明者らは、上記目的を達成するために鋭意検討を重ねた結果、従来の基準に従って位相差顕微鏡下で検出対象物を絞り込んだ上で、かかる検出対象物の物性を、バイオ蛍光法によって確認することによって、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法によるアスベストの検出基準を変えることなく、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法と比較して、より効率的で、簡便で、且つ精度高くアスベストを検出し得ることを見出し、本発明を完成させるに至った。
位相差顕微鏡・電子顕微鏡法の検出基準に従って位相差顕微鏡下で検出対象物を絞り込んだ上で、かかる検出対象物の物性（すなわち、アスベストであるか否か）をバイオ蛍光法によって決定することによってアスベストを検出するという発想自体はこれまでになく、本発明者らが初めてここに開示するものである。
すなわち、本発明に係るアスベスト検出方法は、被検物に、蛍光標識を有するアスベスト結合タンパク質を接触させる、接触工程と、上記接触工程を経た後に、上記被検物中に含まれている繊維状の物質を、位相差顕微鏡を用いて検出する、第１検出工程と、上記第１検出工程において検出した上記繊維状の物質と結合した上記アスベスト結合タンパク質を、蛍光顕微鏡を用いて検出する、第２検出工程とを含み、上記第１検出工程と上記第２検出工程とは、同一視野において行なわれることを特徴としている。
本発明に係るアスベスト検出方法では、まず、第１検出工程において、被検物の中から位相差顕微鏡下で繊維状の物質を検出し、第１検出工程において検出されたそれぞれの繊維状の物質について、続くバイオ蛍光法を用いる第２検出工程において、アスベストであるか否かを判定する。もちろん位相差顕微鏡では検出できない微細なアスベスト繊維が第２検出工程において観察されるが、このような微細なアスベスト繊維は第１検出工程において除外されている。すなわち、本発明に係るアスベスト検出方法によって最終的に検出されるアスベストの総数は、同一試料を、位相差顕微鏡によって検出した場合に検出されるアスベストの総数よりも多くなるおそれがない。よって、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法によるアスベストの検出基準を変えることなくアスベストを検出することができる。このように、本発明に係るアスベスト検出方法では、アスベストを検出するために位相差顕微鏡と蛍光顕微鏡とを組み合わせて使用することが特徴である。
また、第１検出工程において、位相差顕微鏡下で絞り込んだ検出対象物の物性（すなわち、アスベストであるか否か）を、第２検出工程においてバイオ蛍光法によって決定する、すなわち、上記検出対象物に蛍光標識を有しているアスベスト結合タンパク質が結合するかどうかを蛍光の有無によって判定するので、非常に簡便に、且つ精度高くアスベストを検出し得る。
さらには、従来の電子顕微鏡法による物性の決定と比較して、極めて短時間で、簡便に検出対象物の物性を決定し得る。具体的には、電子顕微鏡法では、試料の前処理も含めると、検出対象物の物性を決定するまでに、およそ１５時間かかっていた（例えば、山田真里ら，“環境中の石綿粉じん濃度測定における分析方法の検討”，栃木県保険環境センター年報、第１２号（２００６年度版）、掲載ページ６２〜６８を参照）のに対し、本発明に係るアスベスト検出方法では、およそ１時間で、接触工程〜第２検出工程までを終了することができる。
また、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法では、電子顕微鏡によって被検物中にアスベストが含有されていることを確認できるものの、２種類の顕微鏡間でステージを移動させるため、同一視野の観察が非常に困難になる。すなわち、位相差顕微鏡下で検出されたどの繊維がアスベストであるかを個々の繊維ごとに判別することはほぼ不可能になるので、統計的に有為な数を電子顕微鏡で判定し、その割合を位相差顕微鏡による総繊維数に乗することによってアスベスト数を推定している。
これに対して、本発明に係るアスベスト検出方法では、顕微鏡として、位相差顕微鏡用コンデンサおよび落射蛍光装置を備えた顕微鏡（「位相差／蛍光顕微鏡」と称する。）または両者を備えた偏光顕微鏡を用いることによって、位相差観察用の透通光から落射蛍光へと光路を切り換えるだけで、視野を変えることなく第１検出工程と第２検出工程とを行なうことができる。従って、第１検出工程において、位相差顕微鏡下で検出対象物を絞り込んだ後に、そのままの状態で、顕微鏡の光路を位相差モードから蛍光モードに切り換えるだけで、同一視野において第２検出工程を行なうことが可能となる。これにより、第１検出工程において検出した繊維状の物質がアスベストであるか否かを、個々の繊維状の物質ごとに即座に判別することができる。
よって、本発明に係るアスベスト検出方法によれば、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法によるアスベストの検出基準を変えることなく、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法と比較して、より効率的で、簡便で、且つ精度高くアスベストを検出することが可能となる。
なお、上記非特許文献２では、ＧＦＰ標識したＤｋｓＡタンパク質を接触させたクリソタイル（白石綿）の位相差顕微鏡像と蛍光顕微鏡像とに基づいて、上記ＧＦＰから発せられる蛍光がクリソタイル（白石綿）の繊維上で観察されることを確認しているに過ぎない。すなわち、ＤｋｓＡタンパク質が確かにクリソタイル（白石綿）に結合していることを確認するために、位相差顕微鏡による観察と蛍光顕微鏡像による観察とを行っているに過ぎない。
同様に、上記特許文献２にも、位相差顕微鏡による観察および蛍光顕微鏡による観察の両方を行うことが記載されているが、この特許文献でも、これら両方の観察を行っていることが記載されているに過ぎない。
このように、非特許文献２および特許文献２に記載された方法では、被検物に対して位相差顕微鏡による観察および蛍光顕微鏡による観察の両方を行っているものの、アスベストの検出基準は、従来のバイオ蛍光法と同じである。すなわち、非特許文献２および特許文献２に記載された方法では、蛍光が観察された物質は全てアスベストであると判断するので、従来の検出基準を適用してアスベストを正確に検出することができなかった。
また、特許文献２には、蛍光標識されたアスベスト結合タンパク質とアスベストとの結合体をフィルター上で観察する場合に、フィルターを無色化（透明化）することが記載されているが、これは単に、位相差顕微鏡による観察および蛍光顕微鏡による観察の両方を行うことができるようにするためのものであり、前述した理由により、単にフィルターを透明化しただけでは、従来の検出基準を適用してアスベストを正確に検出することができなかった。
具体的に、特許文献２の実施例（例えば、実施例３）では、アスベストに結合したアスベスト結合タンパク質を、位相差顕微鏡による観察と蛍光顕微鏡による観察との両方に基づいて識別している。しかしながら、上述した技術では、位相差顕微鏡による観察を行う時に注目すべき繊維（具体的には、所定の大きさを有する繊維）を選別していないので、蛍光顕微鏡によって観察される全ての蛍光シグナル（大きなものから小さなものまで全ての蛍光シグナル）を、アスベストとしてカウントしてしまう。その結果、上述した技術によってもたらされる判定結果は、従来のアスベストの検出基準に基づく判定結果からは、大きく逸脱したものになる。
また、特許文献２の実施例（例えば、実施例４、５、７、８、９、１０）では、液体中に分散された状態にて、アスベストとアスベスト結合タンパク質とを結合させるとともに、液体中に分散された状態にて、アスベスト結合タンパク質に連結された標識の酵素活性を検出している。つまり、上述した技術は、位相差顕微鏡による観察と蛍光顕微鏡による観察との両方に基づいてアスベストを識別する技術ではない。
また、特許文献２の実施例（例えば、実施例６）では、メンブレンフィルターにアスベストをトラップし、当該アスベストに対してアスベスト結合タンパク質を結合させた後に、メンブレンフィルターに対して透明化処理を施している（例えば、特許文献２の実施例６参照）。そして、その後、位相差顕微鏡による観察と蛍光顕微鏡による観察との両方に基づいてアスベストを識別している。しかしながら、当該技術も上述した実施例３と同様に、位相差顕微鏡による観察を行う時に注目すべき繊維（具体的には、所定の大きさを有する繊維）を選別していないので、蛍光顕微鏡によって観察される全ての蛍光シグナル（大きなものから小さなものまで全ての蛍光シグナル）を、アスベストとしてカウントしてしまう。その結果、上述した技術によってもたらされる判定結果は、従来のアスベストの検出基準に基づく判定結果からは、大きく逸脱したものになる。
上述したように、特許文献２の実施例などに記載の技術によってもたらされる判定結果は、従来のアスベストの検出基準に基づく判定結果からは、大きく逸脱したものになる。この点について、更に詳細に説明する。
蛍光顕微鏡では、非常に細い繊維（例えば、３０ｎｍの直径のクリソタイル繊維）も検出できる。つまり、蛍光顕微鏡では、暗視野を背景として観察対象が光って見えるため、非常に細い繊維も観察できる。蛍光顕微鏡もあくまで光学顕微鏡の１種であるので、光の解像度に限界（２５０ｎｍ〜３００ｎｍ）がある。しかしながら、蛍光顕微鏡では、例えば３０ｎｍの繊維であっても、実際の大きさよりも大きく３００ｎｍ程度に太くぼやけて観察されることになる。
すなわち、蛍光顕微鏡では、光の解像度の限界以下の繊維も見えてしまうので、位相差顕微鏡よりも多くの繊維を数えてしまう危険性が高い。また、光の解像度の限界付近の測定値は、その測定値以下のものを含んでいる危険性があり、信頼性に欠ける。
本発明に係るアスベスト検出方法は、上記の問題点をまさしく解決する方法を提供するものである。
具体的には、本発明では、位相差顕微鏡で、従来のアスベストのサイズ条件を満たす繊維を最初に検出し、その条件にあう繊維のみを蛍光画像に基づいてアスベストか否かを判定することで、上記の問題点を解決することができる。

【発明の効果】

【0007】

本発明に係るアスベスト検出方法によれば、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法によるアスベストの検出基準を変えることなく、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法と比較して、より効率的で、簡便で、且つ精度高くアスベストを検出することができるという効果を奏する。

【図面の簡単な説明】

【0008】

図１は、位相差蛍光法によるアスベストの顕微鏡観察の結果を示す図である。
図２は、位相差蛍光法によるアスベストの顕微鏡観察の結果を示す図である。
図３は、位相差蛍光法によるアスベストの顕微鏡観察の結果を示す図である。

【発明を実施するための形態】

【0009】

以下、本発明の実施の形態について、詳細に説明する。ただし、本発明はこれに限定されるものではなく、記述した範囲内で種々の変形を加えた態様で実施できるものである。また、本明細書中に記載された学術文献および特許文献の全てが、本明細書中において参考として援用される。なお、本明細書において特記しない限り、数値範囲を表す「Ａ〜Ｂ」は、「Ａ以上、Ｂ以下」を意味する。
本発明にかかるアスベスト検出方法は、被検物に、蛍光標識を有するアスベスト結合タンパク質を接触させる、接触工程と、
上記接触工程を経た後に、上記被検物中に含まれている繊維状の物質を、位相差顕微鏡を用いて検出する、第１検出工程と、
上記第１検出工程において検出した上記繊維状の物質と結合した上記アスベスト結合タンパク質を、蛍光顕微鏡を用いて検出する、第２検出工程とを含み、
上記第１検出工程と上記第２検出工程とは、同一視野において行なわれる構成である。
上記「被検物」は、アスベストが含まれているか否かを検出する対象物を意味する。被検物としては、モルタル、ロックウールなどの建材、蛇紋石などの鉱石、アスベストを検出しようとする環境中の空気をサンプリングしたもの等が挙げられる。
空気（大気）中の被検物は、測定環境中の空気をフィルターでろ過することによって捕集することができる。被検物をフィルターに捕集する方法は、測定環境中の空気をフィルターでろ過して被検物を捕集することができる限り特に限定されない。例えば、「アスベストモニタリングマニュアル（第４．０版）」（非特許文献１）に記載された方法に従って、被検物の捕集を行なうことができる。上記「フィルター」としては、特に限定されないが、通常、セルロースエステル製メンブランフィルターやポリカーボネートフィルター等が用いられる。
このように、上記被検物はフィルターに捕集されたものであってもよい。この場合は、接触工程を経た後の上記フィルターを透明化する、透明化工程をさらに含み、第１検出工程を、上記透明化工程を経た後に行うことが好ましい。
すなわち、フィルターに捕集された被検物についてアスベストを検出する場合、本発明に係るアスベスト検出方法は、フィルターに捕集された被検物に、蛍光標識を有するアスベスト結合タンパク質を接触させる、接触工程と、
上記接触工程を経た後の上記フィルターを透明化する、透明化工程と、
上記透明化工程を経た後に、上記被検物中に含まれている繊維状の物質を、位相差顕微鏡を用いて検出する、第１検出工程と、
上記第１検出工程において検出した上記繊維状の物質と結合した上記アスベスト結合タンパク質を、蛍光顕微鏡を用いて検出する、第２検出工程とを含み、
上記第１検出工程と上記第２検出工程とは、同一視野において行なわれる構成であるといえる。
なお、本明細書において使用される「アスベスト」は「石綿」と同義である。
この新規のアスベスト検出方法を、本発明者らは、「位相差蛍光法」と命名した。
〔１．接触工程〕
「接触工程」は、被検物（またはフィルターに捕集された被検物）に、蛍光標識を有するアスベスト結合タンパク質を接触させる工程である。
上記「蛍光標識を有するアスベスト結合タンパク質」は、蛍光物質によって修飾されたアスベスト結合タンパク質であってもよく、蛍光タンパク質とアスベスト結合タンパク質との融合タンパク質であってもよい。なお、本明細書では、上記「蛍光標識を有するアスベスト結合タンパク質」を、単に「アスベスト結合タンパク質」と称する場合がある。「蛍光標識」および「アスベスト結合タンパク質」については、後述する。
アスベスト結合タンパク質と被検物とを接触させる方法は特に限定されるものではないが、両者を効率よく接触させることができることから液体中でアスベスト結合タンパク質と被検物とを接触させることが好ましい。例えば、アスベスト結合タンパク質を含む溶液に被検物を添加し、それを十分に混和してもよいし、逆に被検物を含む懸濁液にアスベスト結合タンパク質を添加し、それを十分に混和してもよい。また、アスベスト結合タンパク質を含む溶液と被検物を含む懸濁液とを混合し、それを十分に混和してもよい。被検物がフィルターに捕集されている場合は、アスベスト結合タンパク質を含む溶液を、フィルターの被検物を捕集した面（捕捉面）に滴下することによって、被検物とアスベスト結合タンパク質とを液体中で接触させることができる。なお、アスベスト結合タンパク質と被検物とを接触させる条件（例えば、温度、時間等）については、両者が充分に接触できる条件であれば特に限定されるものではなく、適宜検討の上、好ましい条件を採用すればよい。
被検物に接触させるアスベスト結合タンパク質の量は特に限定されるものではないが、被検物の量に対してアスベスト結合タンパク質の量が少なすぎると、被検物中に含まれているアスベストを十分に検出できないおそれがある。一方、被検物の量に対してアスベスト結合タンパク質の量が過剰であると、アスベスト以外の物質とアスベスト結合タンパク質との非特異的な結合が生じ、精度が低下するおそれがある。従って、アスベスト以外の物質と非特異的な結合を生じ難く、且つ被検物に対して十分に接触し得る量のアスベスト結合タンパク質を、被検物に対して接触させることが好ましい。例えば、アスベスト結合タンパク質を含む溶液を、フィルターの捕集面に滴下する場合、アスベスト結合タンパク質を０．５ｎＭ〜５μＭ、好ましくは５ｎＭ〜５００ｎＭの濃度で含有している溶液を、フィルターの捕集面に対して３３〜９８μｌ／ｃｍ^２、好ましくは３３〜４９μｌ／ｃｍ^２となるように滴下することが好ましい。
上記「液体」としては、アスベスト結合タンパク質と被検物との結合を阻害または低下させたり、アスベスト結合タンパク質の被検物に対する結合の特異性を低下させたりするものでない限り、特に限定されない。このような液体としては、例えば、リン酸緩衝液、炭酸緩衝液、トリス緩衝液等を挙げることができる。
また、接触工程において、アスベスト結合タンパク質と被検物とを液体中で接触させる場合、非特異的な結合を回避するために、当該液体に界面活性剤（Ｔｗｅｅｎ２０（登録商標）、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００等）が含まれていてもよい。後述する実施例においては、液体として、０．３Ｍ リン酸緩衝液（ｐＨ８．０）、０．３Ｍ ＮａＣｌ、０．５％ Ｔｗｅｅｎ８０（登録商標）の組成の緩衝液を用いて接触工程を行っている。
本発明に係るアスベスト検出方法では、接触工程では、アスベスト結合タンパク質として、２種類以上の異なるアスベスト結合タンパク質を、被検物と接触させてもよい。この場合、上記２種類以上の異なるアスベスト結合タンパク質は、互いに異なる種類のアスベストと特異的に結合するタンパク質であり、且つ互いに異なる波長の蛍光を発する蛍光標識を有していることが好ましい。かかる構成であれば、続く第２検出工程において、異なる種類のアスベストを、蛍光の色の違いに基づいて容易に判別することが可能となる。
具体的に説明すると、アスベスト結合タンパク質として、例えば、クリソタイルに特異的に結合するタンパク質（例えば、ＤｋｓＡタンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７３２５６））と、角閃石系アスベストに特異的に結合するタンパク質（例えば、Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}タンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７４３１９））とを組み合わせて用い、且つそれぞれのアスベスト結合タンパク質に、互いに異なる波長の蛍光を発する蛍光標識を有させる（例えば、一方のアスベスト結合タンパク質をＣｙ３で標識し、他方のアスベスト結合タンパク質をＤｙＬｉｇｈｔ４８８で標識する）ことによって、続く第２検出工程において、クリソタイルと角閃石系アスベストとを、蛍光色の違いに基づいて別々に検出することができる。なお、２種類以上の異なるアスベスト結合タンパク質の組合せ、および互いに異なる波長の蛍光を発する蛍光標識の組合せは上記に限定されず、検出したいアスベストの種類等に応じて、あらゆるアスベスト結合タンパク質および蛍光標識の中から適切な組合せを選択することができる。
例えば、一方のアスベスト結合タンパク質を緑色蛍光色素で標識し、他方のアスベスト結合タンパク質を赤色蛍光色素で標識すれば、クリソタイルと角閃石系アスベストとを、蛍光色の違いに基づいて別々に検出することができる。上記「緑色蛍光色素」として、例えば、フルオロセイン、ＤｙＬｉｇｈｔ４８８、Ａｌｅｘａ４８８、ＡＴＴＯ４８８、ＣＦ４８８Ａ等を挙げることができる。また、上記「赤色蛍光色素」として、例えば、Ｃｙ３、ＤｙＬｉｇｈｔ５５０、ＣＦ５５５等を挙げることができる。こららの「緑色蛍光色素」と「赤色蛍光色素」との中からそれぞれ一種類ずつ選択して組み合わせればよい。
ここで、「アスベスト結合タンパク質」および「蛍光標識」について以下に具体的に説明する。
（１−１．アスベスト結合タンパク質）
本明細書において、「アスベスト結合タンパク質」とは、アスベストと特異的に結合する性質を有しているタンパク質を意味する。タンパク質がアスベストと特異的に結合しているか否かについては、少なくとも０．１Ｍ以上の塩化ナトリウムを含む溶液中で、検討対象のタンパク質とアスベストとが結合するか否かを検討することによって判断することができる。つまり、０．１Ｍ以上の塩化ナトリウムを含む溶液中でタンパク質とアスベストとを混合し、アスベストに結合したタンパク質を溶出した後に、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ等の方法でタンパク質を検出する。もし、タンパク質が検出されれば、そのタンパク質はアスベストと特異的に結合するタンパク質（アスベスト結合タンパク質）であるといえる（具体的には、特許文献１を参照）。なお、少なくとも０．１Ｍ以上の塩化ナトリウムを含む溶液中でアスベストと結合すれば、アスベストに特異的に結合するタンパク質であるといえるが、０．３Ｍ以上の塩化ナトリウムを含む溶液中では、タンパク質がアスベストと結合することが難しくなるため、０．１Ｍ〜０．３Ｍ、好ましくは０．２Ｍ〜０．３Ｍの塩化ナトリウムを含む溶液中で、検討対象のタンパク質とアスベストとが結合するか否かを検討することが好ましい。勿論、０．３Ｍ以上の塩化ナトリウム（例えば、０．３Ｍ〜０．５Ｍ、０．３Ｍ〜１Ｍ、０．５Ｍ〜１Ｍ、または、１Ｍ以上）を含む溶液中で、検討対象のタンパク質とアスベストとが結合するか否かを検討することも可能である。塩化ナトリウムの濃度が高ければ高いほど、アスベストに対するタンパク質の結合特異性は高いといえる。
このようなアスベスト結合タンパク質としては、例えば、Ｈ−ＮＳタンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７４３１９）、ＤｋｓＡタンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７３２５６）、ＧａｔＺタンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮＯ．：ＡＡＣ７５１５６）、ＤｎａＫタンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７３１２５）、ＨｌｐＡタンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７３２８９）、ＹｇｉＷタンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７６０６０）、ＣｓｐＡタンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＡＡＮ６８０７５）、Ｃｇｌ０９７４タンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＢＡＢ９８３６７）、ＯｍｐＣタンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７５２７５）、ＯｍｐＡタンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７４０４３）、Ｓ１タンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７３９９７）、Ｓ４タンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７６３２１）、Ｌ１タンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７６９５８）、Ｌ５タンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７６３３３）
Ｌ７タンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７６９６０）、ＴＴＣ０９８４タンパク質（データベース名：ＮＣＢＩ、アクセッションＮｏ．：ＹＰ＿００４９５３）等を挙げることができるが、本発明はこれらに限定されない。これらのアスベスト結合タンパク質は、１種を単独で用いてもよく、複数種を組み合わせて用いてもよい。
上記「Ｈ−ＮＳタンパク質」の第１番目〜第５７番目のアミノ酸領域（配列番号７）は、アスベストの中でもクリソタイル（白石綿）に特異的に結合し得る。また、第６０番目〜第９０番目のアミノ酸領域（配列番号８）は、アスベストの中でもアモサイト（茶石綿）、クロシドライト（青石綿）、アンソフィライト、トレモライト、アクチノライトに特異的に結合し得る。
上記「ＤｋｓＡタンパク質」は、アスベストの中でも、クリソタイル（白石綿）に特異的に結合し得る。
上記「ＧａｔＺタンパク質」は、アスベストの中でもアモサイト（茶石綿）、クロシドライト（青石綿）、アンソフィライト、トレモライト、アクチノライトに特異的に結合し得る。
上記「ＤｎａＫタンパク質」は、アスベストの中でもクリソタイル（白石綿）に特異的に結合し得る。
上記「ＨｌｐＡタンパク質」は、アスベストの中でもクリソタイル（白石綿）に特異的に結合し得る。
上記「ＹｇｉＷタンパク質」は、アスベストの中でもクリソタイル（白石綿）に特異的に結合し得る。
上記「ＣｓｐＡタンパク質」は、アスベストの中でもクリソタイル（白石綿）に特異的に結合し得る。
上記「Ｃｇｌ０９７４タンパク質」は、アスベストの中でもクリソタイル（白石綿）に特異的に結合し得る。
上記「Ｓ４タンパク質」は、アスベストの中でもアモサイト（茶石綿）、クロシドライト（青石綿）に特異的に結合し得る。
上記「Ｌ１タンパク質」は、アスベストの中でもアモサイト（茶石綿）、クロシドライト（青石綿）に特異的に結合し得る。
上記「Ｌ５タンパク質」は、アスベストの中でもアモサイト（茶石綿）、クロシドライト（青石綿）に特異的に結合し得る。
上記「Ｌ７タンパク質」は、アスベストの中でもアモサイト（茶石綿）、クロシドライト（青石綿）に特異的に結合し得る。
上記「ＯｍｐＣタンパク質」は、アスベストの中でもクリソタイル（白石綿）、アモサイト（茶石綿）、クロシドライト（青石綿）に特異的に結合し得る。
上記「ＯｍｐＡタンパク質」は、アスベストの中でもクリソタイル（白石綿）、アモサイト（茶石綿）、クロシドライト（青石綿）に特異的に結合し得る。
上記「Ｓ１タンパク質」は、アスベストの中でもクリソタイル（白石綿）、アモサイト（茶石綿）、クロシドライト（青石綿）に特異的に結合し得る。
上記「ＴＴＣ０９８４タンパク質」は、アスベストの中でもアモサイト（茶石綿）、クロシドライト（青石綿）に結合し得る。
フィルターに捕集された被検物についてアスベストを検出する場合、フィルターを透明化する必要があるので、この場合に用いられるアスベスト結合タンパク質は、後述する透明化工程を経た後にアスベストに対する結合が維持されるタンパク質であることが好ましい。アスベスト結合タンパク質がかかる性質を有することによって、透明化工程を経た後であってもアスベストを検出することができる。ここで、上記「透明化工程を経た後にアスベストに対する結合が維持される」とは、透明化工程前後におけるアスベスト結合タンパク質のアスベスト上における結合量の変化を検討することによって判断することができる。例えば、アスベストに結合している蛍光標識タンパク質（蛍光標識を有するアスベスト結合タンパク質）の蛍光の強度（蛍光強度）を基準として、透明化工程前の蛍光強度を１００％とした場合に、透明化工程を経た後の蛍光強度が、好ましくは２０％以上、より好ましくは５０％以上、さらに好ましくは８０％以上維持されていれば、透明化工程を経た後にアスベストに対する結合が維持されていると言える。蛍光強度は、蛍光顕微鏡等を用いて、公知の方法によって測定することができる。
なお、後述するように、蛍光標識の種類によっては、透明化工程を経ることによって蛍光強度に影響を受ける場合があるので、アスベスト結合タンパク質のアスベストに対する結合量を検討するために用いる蛍光標識は、透明化工程を経た後に蛍光顕微鏡によって蛍光が検出できるものを用いればよい。そして、蛍光標識の蛍光強度が透明化工程を経ることによってどの程度影響を受けるのかを勘案して、アスベスト結合タンパク質のアスベストに対する結合量を最終的に判断すればよい。
透明化工程を経た後にアスベストに対する結合が維持されるアスベスト結合タンパク質としては、例えば、Ｈ−ＮＳタンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７４３１９）、ＤｋｓＡタンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７３２５６）、ＧａｔＺタンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ、アクセッションＮＯ．：ＡＡＣ７５１５６）等を挙げることができるが、本発明はこれらに限定されない。これらのアスベスト結合タンパク質は、１種を単独で用いてもよく、複数種を組み合わせて用いてもよい。
アスベスト結合タンパク質の由来は、特に限定されず、細菌、酵母、植物、動物等、いずれの生物に由来するタンパク質であってもよい。
なお、本明細書において、用語「タンパク質」は、「ポリペプチド」または「ペプチド」と交換可能に使用される。「タンパク質」には、タンパク質の部分断片（フラグメント）が含まれるものとする。また、「タンパク質」には、融合タンパク質が含まれるものとする。「融合タンパク質」は、２つ以上の異種タンパク質の一部（フラグメント）または全部が結合したタンパク質である。
また、本発明に用いられるアスベスト結合タンパク質としては、上記に例示したタンパク質のアミノ酸配列において、１または数個のアミノ酸が欠失、置換および／または付加されたアミノ酸配列からなり、且つアスベストと結合し得るタンパク質も利用可能である。
ここで、上記「１または数個のアミノ酸が欠失、置換および／または付加された」とは、部位特異的突然変異誘発法等の公知の変異ペプチド作製法により欠失、置換および／または付加できる程度の数（例えば、総アミノ酸数の５％以下）のアミノ酸が欠失、置換および／または付加されることを意味する。１または数個のアミノ酸が欠失、置換および／または付加される数は、総アミノ酸数の５％以下であって、且つアミノ酸が欠失、置換および／または付加された後のタンパク質が、アスベストと結合する活性を有している限り、いくつであってもよい。
１または数個のアミノ酸が欠失、置換および／または付加される部位は、アミノ酸が欠失、置換および／または付加された後のタンパク質が、アスベストと結合する活性を有していれば、当該アミノ酸配列中のどの部位であってもよい。
このような変異ポリペプチドは、公知の変異ポリペプチド作製法により人為的に導入された変異を有するポリペプチドに限定されるものではなく、天然に存在する同様の変異ポリペプチドを単離精製したものであってもよい。
タンパク質のアミノ酸配列中のいくつかのアミノ酸が、このタンパク質の構造または機能に有意に影響することなく容易に改変され得ることは、当該分野において周知である。さらに、人為的に改変させるだけでなく、天然のタンパク質において、当該タンパク質の構造または機能を有意に変化させない変異体が存在することもまた周知である。
好ましい変異体は、保存性もしくは非保存性アミノ酸置換、欠失、または付加を有する。好ましくは、サイレント置換、付加、および欠失であり、特に好ましくは、保存性置換である。これらは、本発明に係るポリペプチド活性を変化させない。
代表的に保存性置換と見られるのは、脂肪族アミノ酸Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、およびＩｌｅの中での１つのアミノ酸の別のアミノ酸への置換、ヒドロキシル残基ＳｅｒおよびＴｈｒの交換、酸性残基ＡｓｐおよびＧｌｕの交換、アミド残基ＡｓｎおよびＧｌｎの間の置換、塩基性残基ＬｙｓおよびＡｒｇの交換、ならびに芳香族残基Ｐｈｅ、Ｔｙｒの間の置換である。
また、本発明に用いられるアスベスト結合タンパク質は、付加的なペプチドを含むものであってもよい。付加的なペプチドとしては、例えば、ポリアルギニンタグ（Ａｒｇ−ｔａｇ）やポリヒスチジンタグ（Ｈｉｓ−ｔａｇ）やＭｙｃ、Ｆｌａｇ等のエピトープ標識ペプチドが挙げられる。
本発明において用いられるアスベスト結合タンパク質としては、アスベストに対して特異的に結合し得るものであればよいので、上記例示した以外のタンパク質であっても、当業者であれば、アスベストに対して特異的に結合し得るか否かを確認することによって、そのタンパク質が本発明において用いられるものであるか否かを容易に理解することができる。
同様に、透明化工程を経た後にアスベストに対する結合が維持されるタンパク質についても、上記例示した以外のタンパク質であっても、当業者であれば、透明化工程を経た後にアスベストに対する結合が維持され得るか否かを確認することによって、その透明化工程を経た後にアスベストに対する結合が維持されるタンパク質であるか否かを容易に理解することができる。
本発明に用いられるアスベスト結合タンパク質は、アスベスト結合タンパク質のアミノ酸配列全長の内、アスベストとの結合に寄与する部分のアミノ酸配列を含む部分ペプチドであってもよい。例えば、後述する実施例では、Ｈ−ＮＳタンパク質の第６０番目〜９０番目のアミノ酸領域の部分ペプチドを用いている。このような部分ペプチドを用いることによって、アスベスト（特にアモサイト（茶石綿）、クロシドライト（青石綿）、アンソフィライト、トレモライト、アクチノライト）に対するアスベスト結合タンパク質の結合の特異性を向上させることができる。
また、本発明に用いられるアスベスト結合タンパク質は、アスベストとアスベスト結合タンパク質との結合をより強くする観点から、多量体化されたものであることが好ましい。すなわち、本発明に用いられるアスベスト結合タンパク質は、多量体タンパク質であることが好ましい。
ここで、上記「多量体タンパク質」とは、２以上のタンパク質（ポリペプチド）が、ジスルフィド結合等の共有結合、または非共有結合によって結合しているタンパク質をいう。タンパク質が２量体以上の多量体であることによって、複数のタンパク質を介してアスベストに結合することができるので、１つのタンパク質を介してアスベストに結合する場合と比較して、アスベスト結合タンパク質とアスベストとの間の結合力が高くなる。
多量体タンパク質の作製方法は特に限定されず、公知の方法を用いることができる。例えば、後述する実施例では、Ｈ−ＮＳタンパク質の第６０番目〜９０番目のアミノ酸領域の部分ペプチドとストレプトアビジンとの融合タンパク質を作製し、ストレプトアビジンが４量体を形成する性質を利用して、これらの融合タンパク質を４量体化している。
本発明に用いられるアスベスト結合タンパク質は、その供給源となる細胞を培養し、単離、精製することにより生産することができる。また、公知の遺伝子工学的手法により組み換え発現ベクター構築し、これを適当な宿主細胞に導入して組み換えタンパク質として発現させることにより生産することができる。また、アミノ酸合成機などを用いて化学合成することもできる。
（１−２．蛍光標識）
本明細書において「蛍光標識」とは、アスベスト結合タンパク質を用いてアスベストを検出する際に、アスベストに結合したタンパク質を、蛍光を指標として検出するための物質のことを意味する。蛍光標識は、それが存在することで蛍光を示すので、蛍光顕微鏡下で観察することによって簡単にアスベスト結合タンパク質の有無を判定することができる。よって、簡単にアスベストを検出することができる。
上記「蛍光標識」は、蛍光顕微鏡によって蛍光が検出できるものであれば特に限定されなく、既存の蛍光物質、蛍光タンパク質等の中から適宜選択することができる。
本明細書において、上記「蛍光物質」とは、特に、非タンパク質の低分子の蛍光化合物を意味する。蛍光顕微鏡によって蛍光が検出できるものであれば、蛍光物質の種類は特に限定されるものではなく、例えば、Ｃｙ３、ＤｙＬｉｇｈｔ４８８、フルオロセイン、Ａｌｅｘａ４８８、ＡＴＴＯ４８８、ＣＦ４８８Ａ、ＤｙＬｉｇｈｔ５５０、ＣＦ５５５、等を挙げることができる。これらの他にも、緑色蛍光色素（例えば、Ｃｙ２、ローダミングリーン）、赤色蛍光色素（例えば、ローダミン、Ｃｙ５、Ａｌｅｘａ５４６、Ａｌｅｘａ５５５、Ａｌｅｘａ５６８、Ａｌｅｘａ５９４、ＣＦ５６８、ＣＦ５９４、ＤＹ５４７）等を挙げることができるが、本発明はこれらに限定されない。これらの蛍光物質は、１種を単独で用いてもよく、複数種を組み合わせて用いてもよい。
また、上記「蛍光タンパク質」としては、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）等を挙げることができる。なお、上記「蛍光タンパク質」の由来は特に限定されない。
フィルターに捕集された被検物についてアスベストを検出する場合、フィルターを透明化する必要があるので、この場合に用いられる「蛍光標識」は、後述する透明化工程を経た後に蛍光顕微鏡によって蛍光が検出できるものであれば特に限定されない。アスベストの検出感度を向上させる観点から、透明化工程前の蛍光標識が発する蛍光の強度（蛍光強度）を１００％とした場合に、透明化工程を経た後の蛍光標識が発する蛍光強度が、好ましくは２０％以上、より好ましくは５０％以上、さらに好ましくは８０％以上維持されるものを用いることが好ましい。
蛍光標識の蛍光強度は、公知の方法を用いて測定することができる。例えば、輝度を測定することで、蛍光強度を評価することができる。具体的には、画像解析ソフトＶＨ Ａｎａｌｙｚｅｒ（ＫＥＹＥＮＣＥ）を用いて輝度を測定し、蛍光強度の維持率を算出することができる。かかる蛍光強度を有する蛍光標識を用いることによって透明化工程を経た後であっても精度高くアスベストを検出することが可能となる。
透明化工程を経た後に蛍光顕微鏡によって蛍光が検出できる蛍光標識は、既存の蛍光物質、蛍光タンパク質等の中から適宜選択することができる。例えば、Ｃｙ３、ＤｙＬｉｇｈｔ４８８、フルオロセイン、Ａｌｅｘａ４８８、ＡＴＴＯ４８８、ＣＦ４８８Ａ、ＤｙＬｉｇｈｔ５５０、ＣＦ５５５等を挙げることができるが、本発明はこれらに限定されない。これらの蛍光物質は、１種を単独で用いてもよく、複数種を組み合わせて用いてもよい。
上記例示した以外の蛍光標識であっても、当業者であれば、透明化工程を経た後に蛍光顕微鏡によって蛍光を検出できるか否かを確認することによって、その蛍光標識が透明化工程を経た後に蛍光顕微鏡によって蛍光が検出できる蛍光標識であるか否かを容易に理解することができる。
上記蛍光標識は、その物質に応じた標識方法でアスベスト結合タンパクに結合させればよい。例えば、タンパク質を標識するための市販キット等を用いて、アスベスト結合タンパク質を標識することができる。
アスベスト結合タンパク質を蛍光物質で標識する場合は、化学結合を利用してアスベスト結合タンパク質に蛍光物質を標識してもよい。
アスベスト結合タンパク質を蛍光タンパク質で標識する場合は、公知の遺伝子工学的手法を用いることにより蛍光タンパク質とアスベスト結合タンパク質との融合タンパク質を組み換えタンパク質として発現させてもよい。この場合、アスベスト結合タンパク質をコードする遺伝子と蛍光タンパク質をコードする遺伝子とを人工的に連結した融合遺伝子を作製し、当該融合遺伝子を、発現ベクターのプロモーターの下流に挿入し、大腸菌などの宿主細胞に導入して発現させる方法が適用され得る。
アスベスト結合タンパク質によっては、蛍光標識されたアスベスト結合タンパク質が不溶性になってしまう場合がある。これはおそらく分子量が大きくなりすぎることがその原因の一つとして考えられる。この場合には、蛍光標識として分子量の比較的小さい蛍光物質を用いることが有効である。
アスベストの検出感度をより向上させるために、蛍光標識としては、蛍光強度が強く、安定性の高い物質が好ましい。このような蛍光標識を利用することによって、アスベストの検出感度を向上させることができるので、被検物中に含まれているアスベストの量が少ない場合であってもアスベストの検出を行なうことができる。
〔２．検出工程〕
本発明に係るアスベストの検出方法では、検出工程として、
（ｉ）接触工程を経た後に（場合によっては、透明化工程を経た後に）、被検物中に含まれている繊維状の物質を、位相差顕微鏡を用いて検出する第１検出工程、および、
（ｉｉ）第１検出工程において検出した繊維状の物質と結合したアスベスト結合タンパク質を、蛍光顕微鏡を用いて検出する第２検出工程
を含む構成である。
本明細書では、これら、第１検出工程および第２検出工程をまとめて「検出工程」と称する。本発明に係るアスベスト検出方法は、位相差顕微鏡と蛍光顕微鏡とを必要に応じて何度でも切り換えて検出対象を確認することができるものである。このため、本発明に係るアスベスト検出方法では、第１検出工程および第２検出工程を少なくとも１度繰り返し行なってもよい。すなわち、第１検出工程の後に第２検出工程を行ない、再び第１検出工程を行ってもよい。
具体的には、例えば、第２検出工程の後に、第１検出工程をもう一度行ない、蛍光顕微鏡によってアスベスト結合タンパク質の結合が検出された繊維状の物質の形状（長さ、幅、および長さと幅との比）を再度確認してもよい。このように、第１検出工程および第２検出工程を少なくとも１度繰り返し行なうことによって、より確実にアスベストを検出することができる。
また、例えば、被検物に含まれている繊維状の物質を１つ検出する毎に第２検出工程を行ない、その繊維状の物質と結合したアスベスト結合タンパク質を検出し、再び第１検出工程に戻って、被検物に含まれている別の繊維状の物質を検出してもよい。このように、第１検出工程において繊維状の物質を１つ検出する毎に第２検出工程を行なうことによって、同一視野においてアスベストを効率よく検出することができる。
当然のことながら、第１検出工程において、被検物に含まれている繊維状の物質を一通り検出し終わった後で、検出された繊維状の物質について第２検出工程を行ってもよい。
このように、本発明に係るアスベスト検出方法では、蛍光顕微鏡下での検出の後に、もう一度位相差顕微鏡下で検出するというように、位相差顕微鏡と蛍光顕微鏡とを必要に応じて何度でも切り換えて検出対象を確認できるので、より確実にアスベストを検出することができる。
但し、第２検出工程は、必ず第１検出工程の後に行う必要がある。第１検出工程の後に第２検出工程を行うことによって、位相差顕微鏡では検出できない微細なアスベスト繊維は第１検出工程においてまず除外されるため、このようなアスベスト繊維が第２検出工程においてアスベストとして観察されるおそれがない。すなわち、本発明に係るアスベスト検出方法によって最終的に検出されるアスベストの総数は、同一試料を、位相差顕微鏡によって検出した場合に検出されるアスベストの総数よりも多くなるおそれがない。
また、本発明に係るアスベスト検出方法では、上記第１検出工程と上記第２検出工程とは、同一視野において行なわれる。
本発明に係るアスベスト検出方法では、顕微鏡として、位相差／蛍光顕微鏡等を用いることによって、位相差観察用の透通光から落射蛍光へと光路を切り換えるだけで、視野を変えることなく第１検出工程と第２検出工程とを行なうことができる。従って、第１検出工程と第２検出工程とを、同一視野において行なうことによって、すなわち、第１検出工程において、位相差顕微鏡下で検出対象物を絞り込んだ後に、そのままの状態で、顕微鏡の光路を位相差モードから蛍光モードに切り換えるだけで、視野を変えずに第２検出工程を行なうことが可能となる。これにより、第１検出工程において検出した繊維状の物質がアスベストであるか否かを、個々の繊維状の物質ごとに即座に判別することができる。
ここで、「第１検出工程」および「第２検出工程」について、以下に説明する。
（２−１．第１検出工程）
「第１検出工程」は、接触工程を経た後に（場合によっては、透明化工程を経た後に）、被検物中に含まれている繊維状の物質を、位相差顕微鏡を用いて検出する工程である。
ここで、上記「繊維状の物質」とは、繊維状の部分を有する物質であればよく、繊維状の部分が枝分かれしているものであってもよく、繊維状の部分に粒子が付着していているものであってもよい。上記「繊維状の物質」の判断基準の詳細は、「アスベストモニタリングマニュアル（第４．０版）」（非特許文献１）に記載されている。
第１検出工程では、上記「繊維状の物質」を、位相差顕微鏡法における繊維状の物質の検出基準に基づいて検出すればよい。位相差顕微鏡法における検出基準に一致する繊維状の物質とは、例えば、長さ５μｍ以上、幅３μｍ未満、かつ長さと幅との比が３：１以上の条件を満たす繊維状の物質である（「アスベストモニタリングマニュアル（第４．０版）」（非特許文献１）を参照）。すなわち、本発明に係るアスベストの検出方法では、現行の位相差顕微鏡法における検出基準に準拠して、第１検出工程では、長さ５μｍ以上、幅３μｍ未満、かつ長さと幅との比が３：１以上の繊維状の物質を検出することが好ましい。
ここで、繊維状の物質の「長さ」は、例えば、接眼レンズに装着されたアイピースグレイティクルの目盛を利用すれば比較的容易に判断できるが、繊維状の物質の「長さ」の判定方法はこれに限定されない。
繊維状の物質の「幅」は、繊維状の物質の「直径」とも言い換えることができる。上記「直径」とは、繊維状の物質が内接する円の直径をいう。繊維状の物質の「幅」は、例えば、接眼レンズに装着されたアイピースグレイティクルの目盛を利用すれば比較的容易に判断できるが、繊維状の物質の「幅」の判定方法はこれに限定されない。
繊維状の物質の「長さと幅との比」は、繊維状の物質の「アスペクト比」とも言い換えることができる。
繊維状の物質の「長さ」、「幅」および「長さと幅との比」については、「アスベストモニタリングマニュアル（第４．０版）」（非特許文献１）に詳細に規定されており、当該文献において規定された方法に従って、繊維状の物質の「長さ」、「幅」および「長さと幅との比」の判定を行なうことができる。
但し、本発明に係るアスベストの検出方法における繊維状の物質の検出基準は上記の基準に限定されるものではない。位相差顕微鏡法における繊維状の物質の検出基準が変更された場合は、本発明に係るアスベストの検出方法においても、変更後の位相差顕微鏡法における繊維状の物質の検出基準に基づいて繊維状の物質を検出すればよい。このように、本発明に係るアスベストの検出方法では、第１検出工程において、位相差顕微鏡法における繊維状の物質の検出基準に基づいて繊維状の物質を検出するので、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法によるアスベストの検出基準を変えることなくアスベストを検出することができる。
本発明に係るアスベスト検出方法では、まず、第１検出工程において、フィルターに捕集された被検物の中から位相差顕微鏡下で所定の繊維状の物質を検出することによって、続く第２検出工程で検出する対象物を絞り込むので、バイオ蛍光法を用いる第２検出工程において、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法では検出できない微細なアスベスト繊維を検出するおそれがない。すなわち、本発明に係るアスベスト検出方法によって最終的に検出されるアスベストの総数は、同一試料を、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法によって検出した場合に検出されるアスベストの総数よりも多くなるおそれがない。よって、従来法によるアスベストの検出基準を変えることなくアスベストを検出することができる。
（２−２．第２検出工程）
「第２検出工程」は、第１検出工程において検出した繊維状の物質と結合したアスベスト結合タンパク質を、蛍光顕微鏡を用いて検出する工程である。
第２検出工程では、アスベスト結合タンパク質が有している蛍光標識を、蛍光顕微鏡を用いて検出することによって、第１検出工程において検出した繊維状の物質と結合したアスベスト結合タンパク質を容易に検出することができる。すなわち、第１検出工程において検出した繊維状の物質において、蛍光顕微鏡下で蛍光が確認できれば、その繊維状の物質にはアスベスト結合タンパク質が結合していると判断でき、蛍光が確認できなければ、その繊維状の物質にはアスベスト結合タンパク質が結合していないと判断できる。そして、アスベスト結合タンパク質が結合している繊維状の物質は、アスベストであると判断でき、アスベスト結合タンパク質が結合していない繊維状の物質は、アスベストではないと判断できる。
蛍光顕微鏡を用いた蛍光標識の検出方法については、特に限定されるものではなく、その蛍光標識に応じた検出方法（励起波長等）を適宜検討の上、好ましい条件を採用すればよい。
各検出工程を行なうために用いられる位相差顕微鏡および蛍光顕微鏡の構成は特に制限されないが、例えば、顕微鏡として、位相差顕微鏡用コンデンサおよび落射蛍光装置を備えた顕微鏡（位相差／蛍光顕微鏡）または両者を備えた偏光顕微鏡を用いることによって、位相差観察用の透通光から落射蛍光へと光路を切り換えるだけで、視野を変えることなく各検出工程を行なうことができる。すなわち、位相差／蛍光顕微鏡のような顕微鏡を用いることによって、第１検出工程において、位相差顕微鏡下で検出対象物を絞り込んだ後に、そのままの状態で、顕微鏡の光路を位相差モードから蛍光モードに切り換えるだけで、第２検出工程を行なうことが可能となる。これにより、第１検出工程において検出した繊維状の物質がアスベストであるか否かを、第２検出工程において、個々の繊維状の物質ごとに即座に判別することができる。
〔３．透明化工程〕
「透明化工程」は、接触工程を経た後のフィルターを透明化する工程である。透明化工程においてフィルターを透明化することによって、被検物がフィルターに捕集されている場合に、続く第１検出工程において、位相差顕微鏡下で被検物中に含まれている繊維状の物質を検出することが可能となる。よって、フィルターの透明化（無色化）の方法は、続く第１検出工程において、位相差顕微鏡下において繊維状の物質を検出可能な程度にフィルターを透明化し得る方法である限り特に限定されるものではない。例えば、フィルターが透明になるまでアセトン蒸気をフィルターに噴霧する方法を挙げることができる。この方法は、「アスベストモニタリングマニュアル（第４．０版）」（非特許文献１）に具体的に記載されている。その他の透明化方法としては、ＤＭＦ溶液［ＤＭＦ（Ｄｉｍｅｔｈｙｌ ｆｏｒｍａｍｉｄｅ）３５％、水５０％、酢酸１５％］を用いる方法を挙げることができる。この方法は、「アスベストモニタリングマニュアル（第４．０版）」（非特許文献１）に具体的に記載されている。
なお、透明化工程を経た後には、フィルターに捕集された被検物が、アスベスト結合タンパク質と接触できない状態になるため、透明化工程を行う場合には、必ず接触工程の後に透明化工程が行なわれる。
〔４．その他〕
本発明に係るアスベストの検出方法は、上記の工程以外の工程を含んでいてもよい。例えば、接触工程の前に、測定環境中の空気をフィルターでろ過して被検物を捕集する捕集工程を含んでいてもよい。また、一連の検出工程によって得られた結果に基づいて、被検物中のアスベスト濃度を算出する工程または測定環境中のアスベスト濃度を算出する工程を含んでいてもよい。
以上のように、本発明に係るアスベストの検出方法によれば、従来法によるアスベストの検出基準を変えることなく、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法と比較して、より効率的で、簡便で、且つ精度高くアスベストを検出することができる。
本発明は、以下のように構成することも可能である。
本発明に係るアスベスト検出方法では、上記被検物はフィルターに捕集されており、上記接触工程を経た後の上記フィルターを透明化する、透明化工程をさらに含み、上記第１検出工程を、上記透明化工程を経た後に行うことが好ましい。
上述したように、本発明に係るアスベスト検出方法では、アスベストを検出するために位相差顕微鏡と蛍光顕微鏡とを組み合わせて使用することであり、より具体的には、第１検出工程において、まず、位相差顕微鏡下で所定の繊維状の物質を検出した上で、かかる繊維状の物質について第２検出工程においてバイオ蛍光法を行うことが特徴であるが、大気中のアスベストを検出する場合等、被検物がフィルターに捕集されている場合は、透明化工程において被検物が捕集されたフィルターを透明化することによって、位相差顕微鏡と蛍光顕微鏡とを組み合わせて使用することが可能となる。かかる透明化工程は、上記接触工程の後に行なう必要がある。これは、透明化工程を経た後のフィルターは溶液を通過させることができなくなり、フィルターの洗浄を行うことができなくなるため、接触工程を十分に行えなくなるためである。
よって、上記構成であれば、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法によるアスベストの検出基準を変えることなく、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法と比較して、より効率的で、簡便で、且つ精度高く大気中のアスベストを検出することが可能となる。
本発明に係るアスベスト検出方法では、上記第１検出工程および上記第２検出工程を少なくとも１度繰り返し行うことが好ましい。
本発明に係るアスベスト検出方法では、位相差顕微鏡と蛍光顕微鏡とを必要に応じて何度でも切り換えて検出対象を確認することができる。このため、蛍光顕微鏡下での検出の後に、もう一度位相差顕微鏡下で検出するというように、位相差顕微鏡と蛍光顕微鏡とを必要に応じて何度でも切り換えて検出対象を確認することができる。その結果、より確実にアスベストを検出することができる。
本発明に係るアスベスト検出方法では、上記第１検出工程では、長さ５μｍ以上、幅３μｍ未満、かつ長さと幅との比が３：１以上の繊維状の物質を検出することが好ましい。
上記構成であれば、現行の位相差顕微鏡法の基準に従って、長さ５μｍ以上、幅３μｍ未満、かつ長さと幅との比が３：１以上の繊維状の物質を第１検出工程において検出するので、本発明に係るアスベスト検出方法によって最終的に検出されるアスベストの総数は、同一試料を、位相差顕微鏡によって検出した場合に検出されるアスベストの総数よりも多くなるおそれがない。よって、現行の位相差顕微鏡・電子顕微鏡法によるアスベストの検出基準を変えることなくアスベストを検出することができる。
本発明に係るアスベスト検出方法では、上記アスベスト結合タンパク質は、上記透明化工程を経た後にアスベストに対する結合が維持されるタンパク質であり、上記蛍光標識は、上記透明化工程を経た後に蛍光顕微鏡によって蛍光が検出できるものであることが好ましい。
上記構成であれば、透明化工程を経た後であっても精度高くアスベストを検出することが可能となる。
本発明に係るアスベスト検出方法では、上記アスベスト結合タンパク質は、Ｈ−ＮＳタンパク質、ＤｋｓＡタンパク質およびＧａｔＺタンパク質からなる群より選択される１以上のタンパク質であり得る。
上記構成であれば、透明化工程を経た後であっても精度高くアスベストを検出することが可能となる。
本発明に係るアスベスト検出方法では、上記蛍光標識は、Ｃｙ３、ＤｙＬｉｇｈｔ４８８、フルオロセイン、Ａｌｅｘａ４８８、ＡＴＴＯ４８８、ＣＦ４８８Ａ、ＤｙＬｉｇｈｔ５５０、ＣＦ５５５からなる群より選択される１以上の蛍光物質であり得る。
上記構成であれば、透明化工程を経た後であっても精度高くアスベストを検出することが可能となる。
本発明に係るアスベスト検出方法では、上記アスベスト結合タンパク質は、Ｈ−ＮＳタンパク質、ＤｋｓＡタンパク質およびＧａｔＺタンパク質からなる群より選択される１以上のタンパク質の多量体であることが好ましい。
アスベスト結合タンパク質が、多量体タンパク質であることにより、１つのタンパク質を介してアスベストに結合する場合と比較して、アスベストとアスベスト結合タンパク質との結合力をより強くすることが可能となる。よって、上記構成であれば、透明化工程を経た後であっても高感度にてアスベストを検出することが可能となる。
本発明に係るアスベスト検出方法では、上記接触工程では、上記アスベスト結合タンパク質として、２種類以上の異なるアスベスト結合タンパク質を、被検物とを接触させ、上記２種類以上の異なるアスベスト結合タンパク質は、互いに異なる種類のアスベストと特異的に結合するタンパク質であり、且つ互いに異なる波長の蛍光を発する蛍光標識を有している構成であってもよい。
上記構成であれば、異なる種類のアスベストを、蛍光の色の違いに基づいて容易に判別することが可能となる。
本発明は上述した各実施形態に限定されるものではなく、請求項に示した範囲で種々の変更が可能であり、異なる実施形態にそれぞれ開示された技術的手段を適宜組み合わせて得られる実施形態についても本発明の技術的範囲に含まれる。

【実施例】

【0010】

以下、本発明を実施例により具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。
〔実施例１：アスベスト結合タンパク質Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}の調製と蛍光標識〕
ビオチン−ストレプトアビジン相互作用を用いて、ビオチン修飾したアスベスト結合タンパク質を、蛍光標識したストレプトアビジンに結合させて、蛍光標識したアスベスト結合タンパク質を作製した。
まず、ビオチン化したアスベスト結合タンパク質を作製した。タンパク質発現ベクターｐＥＴ２１−ｂ（Ｎｏｖａｇｅｎ社）を鋳型として、オリゴヌクレオチドプライマーＰ１（ＧＣＴＣＡＧＡＡＡＡＴＣＧＡＡＴＧＧＣＡＣＧＡＡＣＡＣＣＡＣＣＡＣＣＡＣＣＡＣＣＡＣＴＧＡＡＣＴＡ：配列番号１）およびオリゴヌクレオチドプライマーＰ２（ＣＴＣＧＡＡＧＡＴＧＴＣＧＴＴＣＡＧＡＣＣＧＣＣＡＣＣＣＴＣＧＡＧＴＧＣＧＧＣＣＧＣＡＡＧＣＴＴＧＴＣ：配列番号２）を用いてインバースＰＣＲを行なうことで、ｐＥＴ２１−ｂのＨｉｓＴａｇの前にビオチン化Ｔａｇを挿入した。インバースＰＣＲ反応は、ＫＯＤ−ｐｌｕｓ−Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｋｉｔ（ＴＯＹＯＢＯ社）を用い、同社のプロトコールに従って行なった。このビオチン化タンパク質発現ベクターを「ｐＥＴ２１−ＡｖｉＴａｇ−Ｃ」と命名した。
次いで、大腸菌Ｋ−１２株（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ Ｋ１２，ＡＴＣＣ ７００９２６）のゲノムＤＮＡを鋳型として、オリゴヌクレオチドプライマーＰ３（ＣＡＴＡＴＧＣＡＡＴＡＴＣＧＣＧＡＡＡＴＧＣＴＧＡＴＣ：配列番号３）およびオリゴヌクレオチドプライマーＰ４（ＧＧＡＴＣＣＡＡＡＣＡＡＣＧＴＴＴＡＧＣＴＴＴＧＧＴＧＣＣ：配列番号４）を用いてＰＣＲを行なうことによって、アスベスト結合タンパク質であるＨ−ＮＳタンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ， アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７４３１９）の第６０番目〜９０番目のアミノ酸領域（配列番号８）をコードする遺伝子を増幅した。ＰＣＲ反応は、ＫＯＤ−ｐｌｕｓ Ｎｅｏ ＤＮＡポリメラーゼ（ＴＯＹＯＢＯ社）を用い、同社のプロトコールに従って行った。
ＰＣＲ増幅産物およびビオチン化タンパク質発現ベクターｐＥＴ２１−ＡｖｉＴａｇ−Ｃを、制限酵素ＮｄｅＩおよびＢａｍＨＩにより３７℃で１時間処理した後、アガロースゲル電気泳動を行なった。ゲルから切り出されたＤＮＡ断片を、Ｌｉｇａｔｉｏｎ Ｈｉｇｈ（ＴＯＹＯＢＯ社）を用い、１６℃、３０分間ライゲーションし、大腸菌ＪＭ１０９株に形質転換した。得られたコロニーから目的のＤＮＡ断片が挿入されたプラスミドを抽出し、これを「ｐＥＴ−Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−ＡｖｉＴａｇ−Ｃ」と命名した。
ｐＥＴ−Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−ＡｖｉＴａｇ−Ｃプラスミドを用いて形質転換した大腸菌ＢＬ２１（ＤＥ３）ｐＢｉｒＡ（Ｎｏｖａｇｅｎ社）を、２×ＹＴ培地を用いて３７℃にて一晩培養し、２００ｍｌのＴＹＨ培地［２０ｇ／ｌ トリプトン、１０ｇ／ｌ 酵母エキス、１１ｇ／ｌ ＨＥＰＥＳ、５ｇ／ｌ ＮａＣｌ、１ｇ／ｌ 硫酸マグネシウム、０．５％ グルコース、水酸化カリウムでｐＨ７．２〜７．４に調整］に１％（ｖ／ｖ）植菌した。ＯＤ_６００が０．６になるまで３７℃で培養後、ＩＰＴＧ（ｉｓｏｐｒｏｐｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ）（終濃度０．５ｍＭ）とＤ−ビオチン（終濃度１００μＭ）とを添加し、２８℃で４時間培養を行なった。培養液を遠心分離することで集菌した。
得られた菌体ペレットに１０ｍｌの緩衝液Ａ［０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．３）、０．０５Ｍ ＮａＣｌ、１０％ グリセロール］を加えて懸濁し、超音波により破砕した。得られた細胞破砕液をＨｉｓｔｒａｐ ＦＦ ｃｏｌｕｍｎ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社）に供し、Ｃ末端にヒスチジンを有するビオチン化Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}タンパク質を当該カラムに吸着させ、緩衝液Ｂ［０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．３）、０．０５Ｍ ＮａＣｌ、１０％ グリセロール、０．５Ｍ イミダゾール］を用いて溶出させた。取得したビオチン化Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}タンパク質について、ポリアクリルアミド電気泳動により精製度を確認したところ、精製度は９５％以上であった。
次に、アスベスト結合タンパク質（Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}タンパク質）の蛍光標識を行なった。蛍光修飾には、ビオチン−ストレプトアビジンの相互作用を用いて、ビオチン修飾したアスベスト結合タンパク質に蛍光標識したストレプトアビジンを結合させた。２．７μｌのビオチン化Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}タンパク質（４９５μＭ）と４μｌの蛍光修飾ストレプトアビジン溶液（１ｍｇ／ｍｌ）とを混合し、室温で１時間インキュベートして結合させ、Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}タンパク質を蛍光標識した。この操作によりＨ−ＮＳ_{６０−９０}タンパク質と蛍光標識ストレプトアビジンとの複合体を得た。蛍光色素Ｃｙ３で標識したストレプトアビジン（ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を使用して蛍光修飾したＨ−ＮＳ_{６０−９０}タンパク質を、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−Ｃｙ３」と命名し、蛍光色素ＤｙＬｉｇｈｔ４８８で標識したストレプトアビジン（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）を使用して蛍光修飾したＨ−ＮＳ_{６０−９０}タンパク質を、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＤｙＬｉｇｈｔ４８８」と命名し、蛍光色素ＤｙＬｉｇｈｔ５５０で標識したストレプトアビジン（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）を使用して蛍光修飾したＨ−ＮＳ_{６０−９０}タンパク質を、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＤｙＬｉｇｈｔ５５０」と命名し、蛍光色素ＣＦ５５５で標識したストレプトアビジン（Ｂｉｏｔｉｕｍ社）を使用して蛍光修飾したＨ−ＮＳ_{６０−９０}タンパク質を、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＣＦ５５５」と命名し、蛍光色素ＣＦ４８８Ａで標識したストレプトアビジン（Ｂｉｏｔｉｕｍ社）を使用して蛍光修飾したＨ−ＮＳ_{６０−９０}タンパク質を、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＣＦ４８８Ａ」と命名した。
なお、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−Ｃｙ３」、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＤｙＬｉｇｈｔ４８８」、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＤｙＬｉｇｈｔ５５０」、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＣＦ５５５」および「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＣＦ４８８Ａ」は、ストレプトアビジンとアスベスト結合タンパク質との融合タンパク質を利用しているので、ストレプトアビジンの働きにより４量体となっている。すなわち、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−Ｃｙ３」、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＤｙＬｉｇｈｔ４８８」、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＤｙＬｉｇｈｔ５５０」、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＣＦ５５５」および「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＣＦ４８８Ａ」は、４つのＨ−ＮＳ_{６０−９０}タンパク質が重合した４量体タンパク質が、蛍光色素によって標識されている。
〔実施例２：位相差蛍光法によるアスベストの顕微鏡観察（１）〕
被検物としてのアモサイト（茶石綿）（ＪＡＷＥ２３１）を捕集したメンブレンフィルターを、１／８片に切り取り、捕集面を上に向けて、２０μｌの緩衝液Ｃ［０．３Ｍ リン酸緩衝液（ｐＨ８．０）、０．３Ｍ ＮａＣｌ、０．５％ Ｔｗｅｅｎ８０（登録商標）］を３回滴下した。
次いで、蛍光タンパク質として、Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−Ｃｙ３（１２．５ｎＭ）、Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＤｙＬｉｇｈｔ４８８（５０ｎＭ）、Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＤｙＬｉｇｈｔ５５０（１２．５ｎＭ）、Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＣＦ５５５（１２．５ｎＭ）またはＨ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＣＦ４８８Ａ（５０ｎＭ）を含んだ緩衝液Ｃ（２０μｌ）を５回滴下して、アモサイトに蛍光タンパク質を結合させた。その後、２０μｌの緩衝液Ｃを３回滴下して未結合の蛍光タンパク質を取り除いた。最後に、２０μｌの水を３回滴下して緩衝液由来の界面活性剤や塩を取り除いた。
次いで、フィルターを、捕集面を上にしてスライドグラス（ＭＡＴＳＵＮＡＭＩ製、ＭＩＣＲＯ ＳＬＩＤＥ ＧＬＡＳＳ 白縁磨 １ｍｍ厚）の上に乗せ、よく乾燥させた。乾燥後に、捕集面を上にしてアセトン蒸気をあててフィルターを透明化した後、封入液をカバーガラス（ＭＡＴＳＵＮＡＭＩ製、１８×１８ｍｍ）とフィルターとの間に挟み込んで、観察用のプラパラートを得た。
得られたプレパラートを、位相差／蛍光顕微鏡（落射蛍光顕微鏡ＢＸ−６０、オリンパス社製）にて観察した。まず、位相差顕微鏡で観察を行ない、アモサイト繊維を確認した後に、光路を蛍光モードに切り換えて同じ視野を観察した。
図１は、位相差蛍光法によるアスベストの顕微鏡観察の結果を示す図である。図１の（Ａ）は、蛍光タンパク質として「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−Ｃｙ３」を用いた場合の結果を表し、図１の（Ｂ）は、蛍光タンパク質として「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＤｙＬｉｇｈｔ４８８」を用いた場合の結果を表し、図１の（Ｃ）は、蛍光タンパク質として「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＤｙＬｉｇｈｔ５５０」を用いた場合の結果を表し、図１の（Ｄ）は、蛍光タンパク質として「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＣＦ５５５」を用いた場合の結果を表し、図１の（Ｅ）は、蛍光タンパク質として「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＣＦ４８８Ａ」を用いた場合の結果を表している。図１の（Ａ）〜（Ｅ）では、それぞれ、左図が位相差顕微鏡画像を表し、右図が位相差顕微鏡画像と同一視野における蛍光顕微鏡画像を表している。図１に示すように、位相差顕微鏡下で観察したアモサイト繊維において、蛍光顕微鏡下で蛍光タンパク質の結合を確認することができた。
なお、蛍光色素Ｃｙ３、ＤｙＬｉｇｈｔ５５０およびＣＦ５５５の観察にはＵ−ＭＮＧキューブ（ダイクロイックミラー：ＤＭ５７０、励起フィルター：ＢＰ５３０−５５０、吸収フィルター：ＢＡ５９０）を用い、蛍光色素ＤｙＬｉｇｈｔ４８８およびＣＦ４８８Ａの観察には、Ｕ−ＮＩＢＡキューブ（ダイクロイックミラー：ＤＭ５０５、励起フィルター：ＢＰ４７０−４９０、吸収フィルター：ＢＡ５１５−５５０）を用いた。画像の取り込みには、顕微鏡デジタルカメラＤＰ−７０（オリンパス社製）を使用した。
なお、透明化工程前後の繊維の蛍光強度（＝タンパク質結合量＋蛍光物質強度）は、輝度を測定することで評価した。具体的には、透明化工程の前後で画像中の繊維の輝度を画像解析ソフトＶＨ Ａｎａｌｙｚｅｒ（ＫＥＹＥＮＣＥ）を用いて測定し、蛍光強度の維持率を算出した。その結果、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−Ｃｙ３」は、透明化工程前の蛍光強度を１００％とした場合に、透明化工程を経た後の蛍光強度が９０％維持されていた。また、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＤｙＬｉｇｈｔ４８８」は、透明化工程前の蛍光強度を１００％とした場合に、透明化工程を経た後の蛍光強度が９０％維持されていた。また、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｎｅｕｔｒａｖｉｄｉｎ−ＤｙＬｉｇｈｔ５５０」は、透明化工程前の蛍光強度を１００％とした場合に、透明化工程を経た後の蛍光強度が８０％維持されていた。また、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＣＦ５５５」は、透明化工程前の蛍光強度を１００％とした場合に、透明化工程を経た後の蛍光強度が８０％維持されていた。また、「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ＣＦ４８８Ａ」は、透明化工程前の蛍光強度を１００％とした場合に、透明化工程を経た後の蛍光強度が９０％維持されていた。
以上のことから、アスベスト結合タンパク質として、Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}タンパク質を用い、蛍光標識としてＣｙ３、ＤｙＬｉｇｈｔ４８８、ＤｙＬｉｇｈｔ５５０、ＣＦ５５５またはＣＦ４８８Ａを用いることによって、位相差蛍光法においてアモサイトを検出し得ることが確認された。
〔実施例３：位相差蛍光法によるアスベストの顕微鏡観察（２）〕
被検物としてのアモサイト（茶石綿）（ＪＡＷＥ２３１）とロックウール（ＪＦＭ標準繊維試料）とを捕集したメンブレンフィルターを用い、蛍光法タンパク質として「Ｈ−ＮＳ_{６０−９０}−Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−Ｃｙ３」のみを用いた以外は、実施例２と同じ方法でプレパラートを作製した。
得られたプレパラートを、位相差／蛍光顕微鏡（落射蛍光顕微鏡ＢＸ−６０、オリンパス社製）にて観察した。まず、位相差顕微鏡で観察を行ない、繊維状の物質を確認した後に、光路を蛍光モードに切り換えて同じ視野を観察した。
図２は、位相差蛍光法によるアスベストの顕微鏡観察の結果を示す図である。図２の（Ａ）は位相差顕微鏡画像を表し、（Ｂ）は（Ａ）の位相差顕微鏡画像と同一視野における蛍光顕微鏡画像を表し、（Ｃ）は（Ａ）の位相差顕微鏡画像と（Ｂ）の蛍光顕微鏡画像とを重ね合わせた図である。図２に示すように、位相差顕微鏡下で観察した繊維状の物質２および３において、蛍光顕微鏡下で蛍光タンパク質の結合を確認することができた。一方、位相差顕微鏡下で観察した繊維状の物質１および４においては、蛍光顕微鏡下で蛍光タンパク質の結合を確認することができなかった。この結果、繊維状の物質２および３は、アスベストであると判定し、繊維状の物質１および４は、アスベストではないと判定した。
以上のことから、位相差蛍光法を用いれば、位相差顕微鏡下で観察した繊維状の物質がアスベストであるか否かを、非常に効率よく、簡便に、且つ精度高く判定し得ることが確認された。
〔実施例４：アスベスト結合タンパク質ＤｋｓＡの調製と蛍光標識〕
次いで、大腸菌Ｋ−１２株（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ Ｋ１２，ＡＴＣＣ ７００９２６）のゲノムＤＮＡを鋳型として、オリゴヌクレオチドプライマーＰ５（ＧＧＡＡＴＴＣＧＣＴＡＧＣＡＴＧＣＡＡＧＡＡＧＧＧＣＡＡＡＡＣＣＧ：配列番号５）およびオリゴヌクレオチドプライマーＰ６（ＧＴＴＧＧＡＴＣＣＣＣＧＣＡＧＣＣＡＧＣＣＡＴＣＴＧＴＴＴＴＴＣＧＣ：配列番号６）を用いてＰＣＲを行なうことによって、アスベスト結合タンパク質であるＤｋｓＡタンパク質（データベース名：ＧｅｎＢａｎｋ， アクセッションＮｏ．：ＡＡＣ７３２５６）をコードする遺伝子を増幅した。ＰＣＲ反応は、ＫＯＤ−ｐｌｕｓ ＤＮＡポリメラーゼ（ＴＯＹＯＢＯ社）を用い、同社のプロトコールに従って行った。
ＰＣＲ増幅産物およびタンパク質発現ベクターｐＥＴ２１−ｂを制限酵素ＮｈｅＩとＢａｍＨＩにより３７℃で１時間処理した後、アガロースゲル電気泳動を行なった。ゲルから切り出されたＤＮＡ断片をＬｉｇａｔｉｏｎ Ｈｉｇｈを用い、１６℃、３０分間ライゲーションし、大腸菌ＪＭ１０９株に形質転換した。得られたコロニーから目的のＤＮＡ断片が挿入されたプラスミドを抽出し、これを「ｐＥＴ−ＤｋｓＡ」と命名した。
ｐＥＴ−ＤｋｓＡで形質転換したＲｏｓｅｔｔａ^ＴＭ（ＤＥ３）ｐＬｙｓＳ（Ｎｏｖａｇｅｎ社）を２×ＹＴ培地で３７℃一晩培養し、２００ｍｌのＬＢ培地［１０ｇ／ｌ トリプトン、５ｇ／ｌ 酵母エキス、５ｇ／ｌ ＮａＣｌ］に１％（ｖ／ｖ）植菌した。ＯＤ_６００が０．６になるまで３７℃で培養後、終濃度が０．５ｍＭになるようにＩＰＴＧ（ｉｓｏｐｒｏｐｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ）を添加し、２８℃で４時間培養を行なった。培養液を遠心分離することで集菌した。得られた菌体ペレットに１０ｍｌの緩衝液Ａ［０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．３）、０．０５Ｍ ＮａＣｌ、１０％ ｇｌｙｃｅｒｏｌ］を加えて懸濁し、超音波により破砕した。
得られた細胞破砕液をＨｉｓｔｒａｐ ＦＦ ｃｏｌｕｍｎに供し、Ｃ末端にヒスチジンを有するＤｋｓＡタンパク質を当該カラムに吸着させ、緩衝液Ｂ［０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．３）、０．０５Ｍ ＮａＣｌ、１０％ ｇｌｙｃｅｒｏｌ、 ０．５Ｍ イミダゾール］で溶出させた。取得したＤｋｓＡタンパク質についてポリアクリルアミド電気泳動により精製度を確認したところ、９５％以上であった。
次に、ＤｋｓＡタンパク質の蛍光標識を行なった。まず、ＤｋｓＡタンパク質をフルオロセインで標識をした。５ｎｍｏｌのＤｋｓＡタンパク質を４００μｌの５０ｍＭ ＮａＣｌおよび１０％グリセロールを含む２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ−ＮａＯＨ緩衝液（ｐＨ７．４）に溶解した。４．３μｌの１０ｍｇ／ｍｌのフルオロセイン−５−マレイイミド（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｆｉｃ社）／ジメチルホルムアミドを前記溶液に添加後、暗所、室温で２時間静置した。前記の反応溶液はゲル濾過にて未結合のフルオロセインを除去する事によって精製された。このフルオロセインで標識されたＤｋｓＡを「ＤｋｓＡ−Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ」と命名した。
次に、ＤｋｓＡをＡｌｅｘａ４８８で標識をした。５ｎｍｏｌのＤｋｓＡタンパク質を４００μｌの５０ｍＭ ＮａＣｌおよび１０％グリセロールを含む２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ−ＮａＯＨ緩衝液（ｐＨ７．４）に溶解した。６．４μｌの１０ｍｇ／ｍｌのＡｌｅｘａ４８８−５−マレイイミド（ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）／ジメチルホルムアミドを前記溶液に添加後、暗所、室温で２時間静置した。前記の反応溶液はゲル濾過にて未結合のＡｌｅｘａ４８８を除去する事によって精製された。このＡｌｅｘａ４８８で標識されたＤｋｓＡタンパク質を「ＤｋｓＡ−Ａｌｅｘａ４８８」と命名した。
〔実施例５：位相差蛍光法によるアスベストの顕微鏡観察（３）〕
被検物としてのクリソタイル（白石綿）（ＪＡＷＥ１１１）を捕集したメンブレンフィルターを用い、蛍光法タンパク質としてＤｋｓＡ−Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ（３５０ｎＭ）またはＤｋｓＡ−Ａｌｅｘａ４８８（２００ｎＭ）を用い、緩衝液として緩衝液Ｄ［０．１Ｍ 炭酸緩衝液（ｐＨ９．４）、１．０％ Ｔｗｅｅｎ８０（登録商標）］を用いた以外は、実施例２と同じ方法でプレパラートを作製した。
得られたプレパラートを、位相差／蛍光顕微鏡（落射蛍光顕微鏡ＢＸ−６０、オリンパス社製）にて観察した。まず、位相差顕微鏡で観察を行ない、クリソタイル繊維を確認した後に、光路を蛍光モードに切り換えて同じ視野を観察した。
図３は、位相差蛍光法によるアスベストの顕微鏡観察の結果を示す図である。図３の（Ａ）は、蛍光タンパク質として「ＤｋｓＡ−Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ」を用いた場合の結果を表し、図３の（Ｂ）は、蛍光タンパク質として「ＤｋｓＡ−Ａｌｅｘａ４８８」を用いた場合の結果を表している。図３の（Ａ）および（Ｂ）では、それぞれ、左図が位相差顕微鏡画像を表し、右図が位相差顕微鏡画像と同一視野における蛍光顕微鏡画像を表している。図３に示すように、位相差顕微鏡下で観察したクリソタイル繊維において、蛍光顕微鏡下で蛍光タンパク質の結合を確認することができた。
物質１については、図３の（Ａ）に示すように、位相差顕微鏡下で繊維が確認でき、さらに蛍光顕微鏡下で蛍光タンパク質の結合が確認できる。一方、物質２については、図３の（Ａ）に示すように、蛍光顕微鏡下で蛍光タンパク質の結合が確認できるが、幅（直径）が０．２５μｍ未満の微細な繊維であるため、通常、位相差顕微鏡ではアスベストとして検出されない。位相差蛍光法では、このような微細なアスベスト繊維を、位相差顕微鏡下で所定の繊維状の物質を検出する第１検出工程において除外するため、物質２のような位相差顕微鏡でアスベストとして検出されない繊維が最終的に検出されるアスベストの総数に含められるおそれがない。
なお、蛍光色素フルオロセインと蛍光色素Ａｌｅｘａ４８８の観察には、Ｕ−ＮＩＢＡキューブ（ダイクロイックミラー：ＤＭ５０５、励起フィルター：ＢＰ４７０−４９０、吸収フィルター：ＢＡ５１５−５５０）を用いた。画像の取り込みには、顕微鏡デジタルカメラＤＰ−７０（オリンパス社製）を使用した。
なお、実施例２と同様の方法によって透明化工程前後の繊維の蛍光強度（＝タンパク質結合量＋蛍光物質強度）を評価したところ、「ＤｋｓＡ−Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ」では、透明化工程前の蛍光強度を１００％とした場合に、透明化工程を経た後の蛍光強度が８０％維持されていた。また、「ＤｋｓＡ−Ａｌｅｘａ４８８」では、透明化工程前の蛍光強度を１００％とした場合に、透明化工程を経た後の蛍光強度が８０％維持されていた。
以上のことから、アスベスト結合タンパク質として、ＤｋｓＡタンパク質を用い、蛍光標識としてフルオロセインとＡｌｅｘａ４８８を用いることによって、位相差蛍光法においてクリソタイルを検出し得ることが確認された。

【産業上の利用可能性】

【0011】

上記説示したように、本発明に係るアスベストの検出方法によれば、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法などの従来法によるアスベストの検出基準を変えることなく、位相差顕微鏡・電子顕微鏡法と比較して、より効率的で、簡便で、且つ精度高くアスベストを検出することができる。よって、本発明は、アスベストの検出に迅速性が求められる解体現場等におけるアスベストリスクに対応する手段として極めて重要である。
したがって、本発明は、アスベストを取り扱う産業、アスベストの検出を行なう産業等の種々広範な産業において利用可能である。
［配列表］
ＨＵ１２３５ 配列表

【図1】

【図2】

【図3】