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(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B2)
(11)【特許番号】6236864
(24)【登録日】2017年11月10日
(45)【発行日】2017年11月29日
(54)【発明の名称】癌の検出方法及び膵臓特異的リボヌクレアーゼ１を認識する抗体
(51)【国際特許分類】
G01N 33/574 20060101AFI20171120BHJP
G01N 33/573 20060101ALI20171120BHJP
G01N 27/62 20060101ALI20171120BHJP
C07K 16/40 20060101ALI20171120BHJP
C12P 21/08 20060101ALI20171120BHJP
【ＦＩ】
G01N33/574 BZNA
G01N33/573 A
G01N27/62 V
C07K16/40
C12P21/08
【請求項の数】11
【全頁数】21
(21)【出願番号】特願2013-101986(P2013-101986)
(22)【出願日】2013年5月14日
(65)【公開番号】特開2014-134529(P2014-134529A)
(43)【公開日】2014年7月24日
【審査請求日】2016年4月15日
(31)【優先権主張番号】特願2012-131970(P2012-131970)
(32)【優先日】2012年6月11日
(33)【優先権主張国】JP
(31)【優先権主張番号】特願2012-272285(P2012-272285)
(32)【優先日】2012年12月13日
(33)【優先権主張国】JP
(73)【特許権者】
【識別番号】000003300
【氏名又は名称】東ソー株式会社
(72)【発明者】
【氏名】仲田 大輔
【審査官】
柴原 直司
(56)【参考文献】
【文献】
特開２０１０−１８０１７４（ＪＰ，Ａ）
【文献】
Glycobiology, (2007), 17, [4], p.388-400
【文献】
Biochem. Biophys. Res. Commun., (1995), 216, [1], p.406-413
【文献】
Int. J. Cancer, (2008), 122, [10], p.2301-2309
(58)【調査した分野】（Int.Cl.，ＤＢ名）
Ｇ０１Ｎ ３３／５７４
Ｃ０７Ｋ １６／００−１６／４６
ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩＩ）
ＭＥＤＬＩＮＥ／ＢＩＯＳＩＳ（ＳＴＮ）
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
膵臓特異的リボヌクレアーゼ１の配列番号２に示された配列の８８番目のアスパラギン残基であって、Ｎ型糖鎖が結合している部位又は結合していない部位の量を測定し、膵臓癌患者では健常人に比べてＮ型糖鎖が結合している部位の量が増加することを特徴とする、膵臓癌の検出方法。
【請求項2】
下記Ａ，Ｂにおいて、ＡとＢとの比を求め、
Ａ＝膵臓特異的リボヌクレアーゼ１の配列番号２に示された配列の８８番目のアスパラギン残基であって、Ｎ型糖鎖が結合していない部位の量
Ｂ＝膵臓特異的リボヌクレアーゼ１の配列番号２に示された配列の８８番目のアスパラギン残基の量
膵臓癌患者では、健常人と比べて、Ａ／Ｂの値が小さくなることを特徴とする、膵臓癌の検出方法。
Ａ＝膵臓特異的リボヌクレアーゼ１の配列番号２に示された配列の８８番目のアスパラギン残基であって、Ｎ型糖鎖が結合していない部位の量
Ｂ＝膵臓特異的リボヌクレアーゼ１の配列番号２に示された配列の８８番目のアスパラギン残基の量
膵臓癌患者では、健常人と比べて、Ａ／Ｂの値が小さくなることを特徴とする、膵臓癌の検出方法。
【請求項3】
下記Ａ，Ｂにおいて、ＡとＢとの比を求め、
Ａ＝膵臓特異的リボヌクレアーゼ１の配列番号２に示された配列の８８番目のアスパラギン残基であって、Ｎ型糖鎖が結合している部位の量
Ｂ＝膵臓特異的リボヌクレアーゼ１の配列番号２に示された配列の８８番目のアスパラギン残基の量
膵臓癌患者では、健常人と比べて、Ａ／Ｂの値が大きくなることを特徴とする、膵臓癌の検出方法。
Ａ＝膵臓特異的リボヌクレアーゼ１の配列番号２に示された配列の８８番目のアスパラギン残基であって、Ｎ型糖鎖が結合している部位の量
Ｂ＝膵臓特異的リボヌクレアーゼ１の配列番号２に示された配列の８８番目のアスパラギン残基の量
膵臓癌患者では、健常人と比べて、Ａ／Ｂの値が大きくなることを特徴とする、膵臓癌の検出方法。
【請求項4】
請求項２又は３に記載の方法において、膵臓特異的リボヌクレアーゼ１の量を求め、その値を換算してＢの値とする方法。
【請求項5】
膵臓特異的リボヌクレアーゼ１の配列番号２に示された配列の８８番目のアスパラギン残基を含む領域を特異的な抗原認識部位の一部とし、当該アスパラギン残基にＮ型糖鎖が結合していない場合に特異的に結合し、Ｎ型糖鎖が結合している場合に特異的な結合が阻害されるモノクローナル抗体またはその抗原結合断片。
【請求項6】
（ａ）請求項５に記載のモノクローナル抗体またはその抗原結合断片、及び試料、を接触させ、（ａ）のモノクローナル抗体またはその抗原結合断片と複合体を形成した膵臓特異的リボヌクレアーゼ１を測定する、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項7】
請求項６に記載の方法において、さらに（ｂ）請求項５に記載されたモノクローナル抗体またはその抗原結合断片と同時に膵臓特異的リボヌクレアーゼ１に特異的に結合できるモノクローナル抗体またはその抗原結合断片、を試料と接触させ、（ａ）及び（ｂ）の２つのモノクローナル抗体またはその抗原結合断片と複合体を形成した膵臓特異的リボヌクレアーゼ１を測定する工程を含む方法。
【請求項8】
請求項７に記載の方法において、試料を、（ａ）又は（ｂ）の一方と接触させる第一の接触工程と、第一の接触工程で得られたものに（ａ）又は（ｂ）の他方を接触させる第二の接触工程を含む方法。
【請求項9】
請求項５に記載のモノクローナル抗体またはその抗原結合断片を含有し、請求項１〜４、６〜８のいずれかに記載の方法に用いられることを特徴とする膵臓癌の検出試薬。
【請求項10】
膵臓特異的リボヌクレアーゼ１の配列番号２に示された配列の８８番目のアスパラギン残基であって、Ｎ型糖鎖が結合している部位又は結合していない部位の量を質量分析法によって求める、請求項１〜４いずれか１項に記載の方法。
【請求項11】
請求項１０に記載の方法において、膵臓特異的リボヌクレアーゼ１のペプチド断片および／または糖ペプチド断片の質量を質量分析法によって測定する方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、癌の検出方法及び膵臓特異的リボヌクレアーゼ１を認識する抗体に関する。より詳しくは、糖タンパク質のＮ型糖鎖修飾可能部位における糖鎖の結合の有無を測定することによる癌の検出方法に関する。
【背景技術】
【0002】
診断初期段階での癌の検出方法としては、非侵襲的な生体由来の試料、例えば血液や尿などの比較的採取が容易な体液を被検体とすることが好ましい。現在の膵臓癌の診断の際に使用される血清マーカーとしてＣＡ１９−９、ＤＵＰＡＮ−２などがある。しかしながら、これらのマーカーは臓器特異性が低いことや、遺伝的理由から当該マーカーに反応しない場合があるなど、決定的な確定診断にはならないという欠点がある。
【0003】
リボヌクレアーゼファミリーの１つである膵臓特異的リボヌクレアーゼ１（以下、リボヌクレアーゼ１を「ＲＮａｓｅ １」と称する）は膵臓特異的に発現し、細胞外の体液中に分泌される糖タンパク質である。このタンパク質は、１５６アミノ酸からなるペプチド（配列番号１）として翻訳され、分泌シグナルの除去、糖鎖修飾を受けた後、１２８アミノ酸のペプチド配列（配列番号２）を持つ成熟糖タンパク質として細胞外に分泌される。Ｎ型糖鎖修飾可能部位、即ちＮ型糖鎖修飾を受ける可能性があるアミノ酸残基は、配列番号２における３４番目、７６番目、８８番目アスパラギン残基である。
【0004】
膵臓特異的ＲＮａｓｅ １は古くから研究され、癌における発現や活性の変化などが報告されているが、実際に臨床応用されている例はない。１９８０年にＤｏｒａｎらは、血清中のリボヌクレアーゼ活性が、膵臓癌患者で増加すると報告しているが（非特許文献１）、活性のみの記載であり、リボヌクレアーゼの分子種に関しては特定されていない。膵臓特異的ＲＮａｓｅ １の糖鎖修飾に関しては、１９９４年に健常人から得たリボヌクレアーゼに関して報告され、３カ所ある糖鎖修飾可能部位のそれぞれの糖鎖付加の程度について報告が有るが、膵臓癌との関連性に付いては報告されていない（非特許文献２）。２０００年に、Ｆｅｒｎａｎｄｅｚ−Ｓａｌａｓらは膵臓癌由来培養細胞から分泌された膵臓特異的ＲＮａｓｅ １の分子量が、正常の膵臓から得られたものと比べて大きくなることを報告し、その理由の１つとして糖鎖修飾量の増加を指摘した（非特許文献３）。さらに同研究グループは、２００３年と２００７年に、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １の糖鎖修飾に関する報告を発表し、その中で膵癌患者の血清から得られた膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖構造が変化していることを指摘し、特にコアフコシル化された２本分岐複合型糖鎖が増加することを明らかにし、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １の分子量増加は付加している糖鎖構造自体の分子量増加に起因しているとした（非特許文献４、５）。しかしながら、糖タンパク質のＮ型糖鎖修飾可能部位における糖鎖結合の有無と癌とを関連付ける報告はこれまでになかった。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【0005】
【非特許文献1】Ｊ． Ｃｌｉｎ． Ｐａｔｈｏｌ． ３３， １２１２−１３ （１９８０）
【非特許文献2】Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． Ｈｏｐｐｅ Ｓｅｙｌｅｒ ３７５， ３５７−６３ （１９９４）
【非特許文献3】Ｅｕｒ Ｊ Ｂｉｏｃｈｅｍ． ２６７， １４８４−１４９４ （２０００）
【非特許文献4】Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ １３， ２２７−２４４ （２００３）
【非特許文献5】Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ １７， ３８８−４００ （２００７）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0006】
本発明は、糖タンパク質のＮ型糖鎖修飾可能部位に着目し、癌の検出方法及び膵臓特異的ＲＮａｓｅ １を認識する抗体を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【0007】
本発明者は上記課題を解決するために鋭意検討した結果、癌患者では膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖修飾可能部位において糖鎖が結合している場合が健常人と比べて増加していることを見いだし、本発明を完成するに至った。また本発明者は膵臓特異的ＲＮａｓｅ １に対して特異的に結合する抗体であって、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖修飾可能部位を抗原認識部位の一部とし、Ｎ型糖鎖修飾可能部位に糖鎖が結合している場合には膵臓特異的ＲＮａｓｅ １に対する結合が阻害される抗体を見出し、本発明を完成するに至った。
【0008】
即ち本発明は、以下のとおりである。（１）糖タンパク質のＮ型糖鎖修飾可能部位であって、Ｎ型糖鎖が結合している部位又は結合していない部位の量を測定することを特徴とする癌の検出方法。
（２）癌が膵臓癌である、（１）に記載の方法。
（３）糖タンパク質が膵臓特異的ＲＮａｓｅ １である（１）又は（２）に記載の方法。
（４）膵臓癌患者では健常人に比べてＮ型糖鎖が結合している部位の量が増加する、（２）又は（３）に記載の方法。
（５）下記Ａ，Ｂにおいて、ＡとＢとの比を求めることを特徴とする、癌の検出方法。
Ａ＝糖タンパク質のＮ型糖鎖修飾可能部位であって、Ｎ型糖鎖が結合している部位又は結合していない部位の量
Ｂ＝糖タンパク質のＮ型糖鎖修飾可能部位の量
（６）癌が膵臓癌である、（５）に記載の方法。
（７）糖タンパク質が膵臓特異的ＲＮａｓｅ １である（５）又は（６）に記載の方法。
（８）上述の（６）又は（７）に記載の方法において、Ａ＝Ｎ型糖鎖が結合していない部位の量、であり、膵臓癌患者では、健常人と比べて、Ａ／Ｂの値が小さくなる方法。
（９）上述の（６）又は（７）に記載の方法において、Ａ＝Ｎ型糖鎖が結合している部位の量、であり、膵臓癌患者では、健常人と比べて、Ａ／Ｂの値が大きくなる方法。
（１０）上述の（７）〜（９）いずれかに記載の方法において、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １の量を求め、その値を換算してＢの値とする方法。
（１１）Ｎ型糖鎖修飾可能部位が、配列番号２に示された配列の３４番目、７６番目及び８８番目から選ばれる１つ以上のアスパラギン残基である、（１）〜（１０）いずれか１項に記載の方法。
（１２）Ｎ型糖鎖修飾可能部位が、配列番号２に示された配列の８８番目のアスパラギン残基である、（１１）に記載の方法。
（１３）Ｎ型糖鎖修飾可能部位が、配列番号２に示された配列の７６番目のアスパラギン残基である、（１１）に記載の方法。
（１４）Ｎ型糖鎖修飾可能部位が、配列番号２に示された配列の３４番目のアスパラギン残基である、（１１）に記載の方法。
（１５）膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖修飾可能部位を抗原認識部位の一部とするモノクローナル抗体またはその断片。
（１６）膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖修飾可能部位に、糖鎖が結合していない場合に結合し、Ｎ型糖鎖が結合している場合に結合が阻害される、（１５）に記載のモノクローナル抗体またはその断片。
（１７）抗原認識部位が、配列番号２に示された配列の８８番目のアスパラギン残基を含む領域である（１５）又は（１６）に記載のモノクローナル抗体またはその断片。
（１８）上述の（１５）〜（１７）のいずれか１項に記載されたモノクローナル抗体またはその断片と同時に膵臓特異的ＲＮａｓｅ １に結合できることを特徴とする、モノクローナル抗体またはその断片。
（１９）（ａ）上述の（１５）〜（１７）のいずれか１項に記載のモノクローナル抗体またはその断片、及び試料、を接触させ、（ａ）のモノクローナル抗体またはその断片と複合体を形成した膵臓特異的ＲＮａｓｅ １を測定する、（１）〜（１４）のいずれか１項に記載の方法。
（２０）上述の（１９）において、さらに（ｂ）上述の（１８）に記載のモノクローナル抗体またはその断片、を試料と接触させ、（ａ）及び（ｂ）の２つのモノクローナル抗体または抗体断片と複合体を形成した膵臓特異的ＲＮａｓｅ １を測定する方法。
（２１）上述の（２０）に記載の方法において、試料を、（ａ）又は（ｂ）の一方と接触させる第一の接触工程と、第一の接触工程で得られたものに（ａ）又は（ｂ）の他方を接触させる第二の接触工程を含む方法。
（２２）上述の（１５）〜（１７）のいずれか１項に記載のモノクローナル抗体またはその断片を含有することを特徴とする医薬品。
（２３）糖タンパク質のＮ型糖鎖修飾可能部位であって、Ｎ型糖鎖が結合している部位又は結合していない部位の量を質量分析法によって求める、（１）〜（１４）いずれか１項に記載の方法。
（２４）上述の（２３）に記載の方法において、糖タンパク質のペプチド断片および／または糖ペプチド断片の質量を質量分析法によって測定する方法。
【0009】
以下に本発明を更に詳細に説明する。本発明は、糖タンパク質のＮ型糖鎖修飾可能部位であって、Ｎ型糖鎖が結合している部位又は結合していない部位の量を測定することにより、癌を検出するものである。このとき、糖タンパク質のＮ型糖鎖修飾可能部位であって、Ｎ型糖鎖が結合している「部位」の量、またはＮ型糖鎖が結合していない「部位」の量を測定するものであって、Ｎ型糖鎖修飾可能部位に対して結合している「糖鎖」の量を測定するものではない。癌としては特に限定されるものではないが、特に膵臓癌を検出することができる。
【0010】
測定対象となる糖タンパク質としては、特に限定はされないが、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １が好ましい。またそれはヒト生体試料由来であることが好ましい。これらを測定対象とすることにより、とりわけヒトの膵臓癌を検出することができる。このとき、膵臓癌患者では、健常人と比べてＮ型糖鎖修飾可能部位にＮ型糖鎖が結合している場合が多く、Ｎ型糖鎖修飾可能部位の中でＮ型糖鎖が結合している部位が増加するため、これを指標として膵臓癌を検出することができる。
【0011】
また本発明は、下記Ａ，Ｂにおいて、ＡとＢとの比を求めることを特徴とする、癌の検出方法である。Ａ＝糖タンパク質のＮ型糖鎖修飾可能部位であって、Ｎ型糖鎖が結合している部位又は結合していない部位の量
Ｂ＝糖タンパク質のＮ型糖鎖修飾可能部位の量
癌としては特に限定されるものではないが、特に膵臓癌を検出することができる。測定対象となる糖タンパク質としては、特に限定はされないが、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １が好ましい。
【0012】
また、Ａ＝Ｎ型糖鎖が結合していない部位の量、であり、膵臓癌患者では、健常人と比べて、Ａ／Ｂの値が小さくなる方法であることが好ましい。またＡ＝Ｎ型糖鎖が結合している部位の量、であり、膵臓癌患者では、健常人と比べて、Ａ／Ｂの値が大きくなる方法であることも好ましい。
【0013】
Ｂ＝膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖修飾可能部位の量、の場合、その求め方には特に限定はなく、例えば膵臓特異的ＲＮａｓｅ １の量を求め、その値を換算してＢの値とすることができる。具体的には、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １は前述のように３つのＮ型糖鎖修飾可能部位（配列番号２の３４，７６，８８番目のアスパラギン残基）を有するので、測定対象としてそのいずれか１つ、もしく２つの部位、またはすべての部位の量としたときには、それに応じてＢ＝膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖修飾可能部位の量も、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １の量のそれぞれ１倍、２倍または３倍と換算することができる。なお、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １の量は、例えば免疫学的測定法や質量分析を使用した方法により求めることができる。
【0014】
なお、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １は、前述のように３つのＮ型糖鎖修飾可能部位（配列番号２の３４，７６，８８番目のアスパラギン残基）を有する。そのいずれか１つもしくは２つの部位またはすべての部位において、Ｎ型糖鎖が結合している部位の量または結合していない部位の量を測定することにより、又はその量と膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖修飾可能部位の量との比を求めることにより、癌を検出することができる。特にＮ型糖鎖修飾可能部位として、配列番号２の８８番目のアスパラギン残基に対して上述の量を測定すると、癌患者と健常人とではその値に顕著な差がみられるため、癌の検出方法として好ましいものである。同様に、配列番号２の７６番目又は３４番目のアスパラギン残基に対して上述の量を測定することも好ましい。
【0015】
また本発明は、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖修飾可能部位を抗原認識部位の一部とするモノクローナル抗体またはその断片である。このようなモノクローナル抗体は、例えば膵臓特異的ＲＮａｓｅ １またはそのＮ型糖鎖修飾可能部位を含む近傍のペプチド配列を免疫原とし、常法に従い作製することができる。また抗体の抗原特異性は、その抗原決定基への抗体の結合を標準アッセイ、たとえばＥＬＩＳＡまたはＦＡＣＳ分析を用いて決定することができる。またモノクローナル抗体の断片としては、様々な酵素で全抗体を消化して得られるＦａｂまたはＦ（ａｂ’）２フラグメント等があげられる。このようなモノクローナル抗体又はその断片の中で、本発明においては、特に膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖修飾可能部位に、糖鎖が結合していない場合に結合し、Ｎ型糖鎖が結合している場合に結合が阻害されるものが好ましい。
【0016】
さらに、このようなモノクローナル抗体またはその断片の中でも、本発明においては、抗原認識部位が、配列番号２に示された配列の８８番目のアスパラギン残基を含む領域であるものが好ましい。とりわけ、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １の糖鎖修飾可能部位のうち最もカルボキシル末端側に位置する部位の近傍のアミノ酸配列（配列番号３）を認識部位の一部に含むモノクローナル抗体またその断片であることが好ましい。このようなモノクローナル抗体として、本発明で作製した抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １モノクローナル抗体ＲｒｈＲＮ０７２３をあげることができる。このモノクローナル抗体ＲｒｈＲＮ０７２３は、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖修飾可能部位のうち、配列番号２の８８番目のアスパラギン残基にＮ型糖鎖が結合している場合には、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １への結合が阻害されるものである。
【0017】
また本発明は、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖修飾可能部位を抗原認識部位の一部とするモノクローナル抗体またはその断片と同時に膵臓特異的ＲＮａｓｅ １に結合できることを特徴とする、モノクローナル抗体またはその断片である。このようなモノクローナル抗体は、例えば膵臓特異的ＲＮａｓｅ １を免疫原とし、常法に従い作製し、上述の膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖修飾可能部位を認識するモノクローナル抗体またはその断片と同時に膵臓特異的ＲＮａｓｅに結合することができるものをスクリーニングすればよい。またモノクローナル抗体の断片は、例えば様々な酵素で全抗体を消化して得られるＦａｂまたはＦ（ａｂ’）２フラグメントなどがあげられる。このようなモノクローナル抗体として、本発明で作製した抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １モノクローナル抗体ＭｒｈＲＮ０６１４をあげることができる。このモノクローナル抗体ＭｒｈＲＮ０６１４は、前述のモノクローナル抗体ＲｒｈＲＮ０７２３と同時に膵臓特異的ＲＮａｓｅ １に結合することができる。
【0018】
本発明においては、このようなモノクローナル抗体またはその断片は、アルカリフォスファターゼ、ペルオキシダーゼ、ビオチン、フルオレセインイソチオシアネート等で標識されていてもよい。
【0019】
また本発明は、（ａ）膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖修飾可能部位を抗原認識部位の一部とするモノクローナル抗体またはその断片、及び試料、を接触させ、（ａ）のモノクローナル抗体またはその断片と複合体を形成した膵臓特異的ＲＮａｓｅ １を測定する、癌の検出方法である。このような方法としては、例えば競合法や抗体アレイ法をあげることができる。
【0020】
また本発明は、上述の（ａ）のモノクローナル抗体又はその断片に加えて、さらに（ｂ）として（ａ）と同時に膵臓特異的ＲＮａｓｅ １に結合できるモノクローナル抗体またはその断片を試料と接触させ、（ａ）及び（ｂ）の２つのモノクローナル抗体または抗体断片と複合体を形成した膵臓特異的ＲＮａｓｅ １の糖鎖修飾可能部位であってＮ型糖鎖が結合している部位又は結合していない部位の量を測定する癌の検出方法である。このとき、（ａ）および（ｂ）のモノクローナル抗体又はその断片は、試料に対して同時に接触させてもよいが、順次接触させる方が好ましい。順次接触させる場合、試料と（ａ）または（ｂ）の一方と接触させる第一の接触工程と、次いで第一の接触工程で得られたものに（ａ）又は（ｂ）の他方を接触させる第二の接触工程とを含む。このとき、第一の接触工程では試料と（ｂ）とを接触させ、次いで第二の接触工程で（ａ）と接触させることが好ましい。（ａ）、（ｂ）としては、前述の本発明のモノクローナル抗体又はその断片を用いることができ、特に（ａ）としてはモノクローナル抗体ＲｒｈＲＮ０７２３またはその断片、（ｂ）としてはモノクローナル抗体ＭｒｈＲＮ０６１４またはその断片を用いることが更に好ましい。このような方法としては、たとえばＥＬＩＳＡ法やＥＩＡ法のほか、液体クロマトグラフィー法、高速液体クロマトグラフィー法、イムノクロマト法等により、形成された免疫複合体を分離し測定してもよい。
【0021】
このように膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖修飾可能部位を抗原認識部位の一部とするモノクローナル抗体またはその断片は、診断薬等の医薬品として使用することができる。
【0022】
本発明において、糖タンパク質のＮ型糖鎖修飾可能部位であって、Ｎ型糖鎖が結合している部位又は結合していない部位の量を求める方法としては、特に限定はなく、上述のようなイムノアッセイを用いた方法でもよく、また質量分析法によって求めてもよい。質量分析法によって求める場合、例えば糖タンパク質を酵素等で分解し、得られたペプチド断片及び／又は糖ペプチド断片の質量を質量分析器等で測定することにより、糖タンパク質のＮ型糖鎖修飾可能部位であって、Ｎ型糖鎖が結合している部位又は結合していない部位の量を求めることができる。質量分析器を使用する方法において、糖タンパク質からペプチド断片を得る方法としては、例えばＪ． Ｐｒｏｔｅｏｍｅ Ｒｅｓ．３，５５６−５６６ （２００４）に報告されているように、糖鎖分解酵素による一連の糖鎖除去処理とエンド型ペプチダーゼによるタンパク質のペプチド骨格の断片化が挙げられる。糖鎖分解酵素による一連の糖鎖除去処理の一例を挙げると、エキソ型糖鎖分解酵素であるシアリダーゼ、ガラクトシダーゼ、ヘキソサミニダーゼ、マンノシダーゼ、フコシダーゼの中から選ばれる１つ以上の酵素と、Ｎ型糖鎖の基幹構造部分のキトビオース構造に作用するエンド型グリコシダーゼ、例えばエンドグリコシダーゼＨなどを使用して、Ｎ−アセチルグルコサミンの単糖構造をＮ型糖鎖修飾可能部位のアスパラギン残基上に残す方法がある。この方法では、Ｎ−アセチルグルコサミンの単糖構造がタンパク質のペプチド骨格上に残るため、任意のエンド型ペプチダーゼ処理によって得られた断片のうち、アミノ酸配列から計算上求められる推定分子量からＮ−アセチルグルコサミンの分子量だけ質量が増加した糖ペプチド断片を検出することで、特定のＮ型糖鎖修飾可能部位における糖鎖の付加状態が判別可能となる。以上に挙げた方法によって膵臓特異的ＲＮａｓｅ １を分析することで、質量分析法によって糖鎖付加状態の有無を確認することができる。
【発明の効果】
【0023】
本発明により、癌の検出、特に膵臓癌の検出を行うことができる。また本発明により、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖修飾可能部位を抗原認識部位の一部とするモノクローナル抗体、及びそのモノクローナル抗体と同時に膵臓特異的ＲＮａｓｅ １に結合することができるモノクローナル抗体が提供される。この２つの抗体を使用し、前述の癌の検出を行うことができる。
【図面の簡単な説明】
【0024】
【図1】実施例２で、抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体の糖鎖修飾欠損変異導入抗原に対する結合性を測定した結果を示す図である。
【図2】実施例２で、抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体のアミノ酸置換変異導入抗原に対する結合性を測定した結果を示す図である。
【図3】実施例２で、糖鎖修飾欠損変異導入抗原ｍ００１の糖鎖結合状態を分析した結果を示す図である。
【図4】実施例２で、各フラクションにおけるアルファーメチルマンノシドの濃度と、抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体の結合性を測定した結果を示す図である。
【図5】実施例３で、検体中の糖鎖修飾膵臓特異的ＲＮａｓｅ １を測定した結果を示す図である。
【図6】実施例３で、膵臓癌と非膵臓癌の測定値の分布と２群間での有意差を示す図である。
【図7】実施例３で、膵臓癌と非膵臓癌のＲＯＣ統計解析の結果を示す図である。
【図8】実施例４で、ウェスタンブロット法により抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １ペプチド抗体の抗原認識性能を検討した結果を示す図である。
【図9】実施例４で、抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １ペプチド抗体を使用したウェスタンブロット法により、健常人血清および膵臓癌患者血清中の膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＡｓｎ８８における糖鎖結合の有無を調べた結果を示す図である。
【図10】実施例５で、抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体ＲｒｈＲＮ１１１１の糖鎖修飾欠損変異導入抗原に対する結合性を測定した結果を示す図である。
【図11】実施例５で、健常人と膵臓癌のＲＮａｓｅ １の測定値から、Ｆ３／ｔ値およびＧ３／ｔ値を求めた結果を示す図である。
【図12】実施例６で、ＲｒｈＲＮ０７２３抗体を用いた抗原固相競合法により、競合抗原の希釈系列を測定した結果を示す図である。
【実施例】
【0025】
実施例１ 抗体の作製免疫原の調製
ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １全長を含むポリペプチドを取得するために、昆虫細胞で発現可能なプラスミドベクターに成熟型ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １（配列番号２）をコードする遺伝子配列を挿入した発現プラスミドを作製した。詳しく説明すると、昆虫細胞組換えタンパク質発現用プラスミドであるｐＩＺ／Ｖ５Ｈｉｓ ｖｅｃｔｏｒ（ライフテクノロジー社）のマルチクローニングサイトに、５’上流側からヒトイムノグロブリンカッパー鎖をコードする遺伝子配列、Ｈｉｓタグをコードする遺伝子配列、ＦＬＡＧタグをコードする遺伝子配列、ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １をコードする遺伝子配列（配列番号１）からシグナルペプチドであるアミノ酸１番から２８番までに相当する８４核酸残基の遺伝子を除いた領域（配列番号２）を挿入した。作製された発現プラスミドｐＩＺ−ＫＦＨ−ｈＲＮａｓｅ１は、昆虫細胞株Ｓｆ９にＣｅｌｌｆｅｃｔｉｎ ＩＩ （ライフテクノロジー社）を用いて遺伝子導入を実施したことにより、Ｎ末端側にヒトイムノグロブリンカッパー鎖が付加した組換え体ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １が培地中に分泌されることを確認した。培地中に分泌されたタンパク質は、培養上清から抗ヒトイムノグロブリンカッパー軽鎖抗体を用いたアフィニティー精製により濃縮精製して免疫原とした。
【0026】
免疫動物への免疫上述の免疫原を用いてマウスおよびラットに免疫を実施した。詳しくは、マウスへの免疫の場合、１００μｇの免疫原をフロイント完全アジュバンドと共に、６週齢Ｂａｌｂ／ｃ雌マウス腹腔に投与し初回免疫とした。その後、７日後、１４日後、２１日後、２８日後、３５日後に免疫原１００μｇをフロイント不完全アジュバンドと共に腹腔投与し、追加免疫とした。さらに、４２日後に免疫原１００μｇを生理食塩水と共に腹腔投与し、最終免疫とした。ラットへの免疫の場合は、１００μｇの免疫原をフロイント完全アジュバンドと共に、６週齢ＷＨＹ雌ラット両後肢フットパッドへ投与し初回免疫とした。その後、２８日後に免疫原１００μｇを生理食塩水と共に後肢フットパッドへ投与し、最終免疫とした。
【0027】
抗体産生ハイブリドーマの作製最終免疫の３日後に、マウスから脾臓を摘出し、脾臓細胞を回収した。ラットからは、腸骨リンパ節と鼠蹊リンパ節を摘出し、リンパ節細胞を得た。マウス脾臓細胞およびラットリンパ節細胞は、それぞれマウスミエローマ細胞株と電気細胞融合法により融合させた後、ヒポキサンチン、アミノプテリン、およびチミジンを添加したＧＩＴ培地（和光純薬工業株式会社）で細胞培養用９６ウェルプレートに播種することにより、融合細胞を選択した。
【0028】
マウス抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体産生融合細胞株の選定マウス抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体産生融合細胞株は、融合細胞が培地中に分泌する抗体の、組換え体ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １に対する反応性を指標にしたＥＬＩＳＡ法によるスクリーニングにより選択した。スクリーニングに用いたＥＬＩＳＡは以下の通りである。９６穴マイクロタイタープレート（グライナー社製）の各ウェルに２５ｎｇのヤギ抗ヒトイムノグロブリンカッパー鎖抗体（シグマアルドリッチ社製）を含むリン酸緩衝液（５０ｍＭ リン酸ナトリウム、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．４）を５０μｌ加えて４℃１６時間固定した。これらのウェルを３００μｌの洗浄液（２０ ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ， １５０ ｍＭ ＮａＣｌ，ｐＨ７．４）で３回洗浄した後、３％ＢＳＡを含むブロッキング溶液（３％ＢＳＡ，２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ，ｐＨ７．４）を２００μｌ加えて室温で２時間放置してブロッキングを行った（抗ヒトイムノグロブリンカッパー鎖抗体固相化プレート）。各ウェルを３００μｌの洗浄液で３回洗浄した後、０．５μｇ／ｍｌとなるように希釈液（１％ＢＳＡ、２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．０５％Ｔｗｅｅｎ−２０、ｐＨ７．４）で希釈した組換え体ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １を加え、室温で１時間放置した。各ウェルを３００μｌの界面活性剤を含む洗浄液（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０、ｐＨ７．４）で３回洗浄した後、５０μｌの融合細胞培養上清を加えて室温で１時間放置した。次に、各ウェルを３００μｌの界面活性剤を含む洗浄液で３回洗浄した後、０．０１μｇのホースラディッシュペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）標識された抗マウスＩｇＧ抗体（Ｒｏｃｋｌａｎｄ社製）を含む希釈液を５０μｌ加えて、室温で１時間放置した。最後に、各ウェルを３００μｌの界面活性剤を含む洗浄液で３回洗浄した後、５０μｌのテトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）溶液（ＫＰＬ社製）を添加して１５分間発色させた後に、１Ｍのリン酸溶液を添加することで反応を停止し、４５０ｎｍにおける吸光度を測定した。スクリーニングの結果から、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １に強い親和性を示す抗体を産生する融合細胞を得た。得られた融合細胞は、限界希釈法によりモノクローン化され、モノクローナル抗体ＭｒｈＲＮ０６１４を得た。
【0029】
ラット抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体産生融合細胞株の選定ラット抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体産生融合細胞株は、融合細胞が培地中に分泌する抗体の、ヒト膵臓癌細胞（Ｃａｐａｎ１）由来の膵臓特異的ＲＮａｓｅ １に対する反応性を指標にしたＥＬＩＳＡ法によるスクリーニングにより選択した。スクリーニングに用いたＥＬＩＳＡは以下の通りである。９６穴マイクロタイタープレート（グライナー社製）の各ウェルに２５ｎｇのマウス抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体（ＭｒｈＲＮ０６１４）を含むリン酸緩衝液（５０ｍＭ リン酸ナトリウム、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．４）を５０μｌ加えて４℃、１６時間固定した。これらのウェルを３００μｌの洗浄液（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ，ｐＨ７．４）で３回洗浄した後、３％ＢＳＡを含むブロッキング溶液（３％ＢＳＡ，２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ，ｐＨ７．４）を２００μｌ加えて室温で２時間放置してブロッキングを行った（抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体固相化プレート）。各ウェルを３００μｌの洗浄液（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ，ｐＨ７．４）で３回洗浄した後、希釈液（１％ＢＳＡ、２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０、ｐＨ７．４）で２倍に希釈したヒト膵臓癌細胞（Ｃａｐａｎ１）の培養上清を加え、室温で１時間放置した。各ウェルを３００μｌの界面活性剤を含む洗浄液（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０、ｐＨ７．４）で３回洗浄した後、５０μｌの融合細胞培養上清を加えて室温で１時間放置した。次に、各ウェルを３００μｌの界面活性剤を含む洗浄液で３回洗浄した後、０．０１μｇのＨＲＰ標識された抗ラットＩｇＧ抗体（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｑｕａｌｅｘ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ社製）を含む希釈液を５０μｌ加えて、室温で１時間放置した。最後に、各ウェルを３００μｌの界面活性剤を含む洗浄液で３回洗浄した後、５０μｌのＴＭＢ溶液を添加して１５分間発色させた後に、１Ｍのリン酸溶液を添加することで反応を停止し、４５０ｎｍにおける吸光度を測定した。スクリーニングの結果から、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １に強い親和性を示す抗体を産生する融合細胞を得た。得られた融合細胞は、限界希釈法によりモノクローン化され、モノクローナル抗体ＲｒｈＲＮ０７２３を得た。
【0030】
実施例２ 抗体の特異性測定哺乳動物発現系による組換え体ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １の調製
哺乳動物細胞でヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １全長を含むポリペプチドを取得するために、ｐｃＤＮＡ３．１−ｍｙｃＨｉｓベクター（ライフテクノロジー社）にヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １をコードする遺伝子配列（配列番号２）を挿入した発現ベクターを作製した。より詳しくは、免疫原の調製のために作製した昆虫細胞発現用プラスミド（ｐＩＺ−ＫＦＨ−ｈＲＮａｓｅ１）の組換え体タンパク質をコードする遺伝子配列部分を分子生物学的手法によりｐｃＤＮＡ３．１−ｍｙｃＨｉｓベクター（ライフテクノロジー社）に挿入してｐｃＤＮＡ−ＫＦＨ−ｈＲＮａｓｅ１を作製した。作製した哺乳動物細胞用発現プラスミドは、チャイニーズハムスター卵巣由来培養細胞株（以下、ＣＨＯ−Ｋ１株）にＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ ２０００（ライフテクノロジー社）を用いて遺伝子導入を実施したことにより、Ｎ末端側にヒトイムノグロブリンカッパー鎖が付加した組換え体ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １が培地中に分泌されることを確認した。培地中に分泌されたタンパク質は、培養上清から抗ヒトイムノグロブリンカッパー軽鎖抗体を用いたアフィニティー精製により濃縮精製して組換え体ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １を取得した。精製された組換え体ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １は、抗体の特異性を明らかにする実験に供された。
【0031】
糖鎖修飾欠損変異抗原の調製前項で作製した発現ベクター（ｐｃＤＮＡ−ＫＦＨ−ｈＲＮａｓｅ１）を鋳型として、ＲＣＲ変異導入法によってアミノ酸置換変異を繰り返し導入することで、糖鎖修飾欠損変異導入抗原を発現するプラスミドを作製した。ＰＣＲ変異導入法には、ＰｒｉｍｅＳＴＡＲ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｂａｓａｌ Ｋｉｔ（タカラバイオ株式会社）を使用し、添付の説明書に従って実施した。詳しくは、Ｎ型糖鎖修飾可能部位のコンセンサス配列（Ａｓｎ−Ｘａａ−Ｓｅｒ／Ｔｈｒ、Ｘａａはプロリン以外のアミノ酸残基を指す）の３番目のアミノ酸残基をセリン残基もしくはスレオニン残基以外のアミノ酸に置換することで、糖鎖修飾欠損変異組換え体ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １を発現するプラスミドを作製した（表１）。作製した糖鎖修飾欠損変異導入発現プラスミドは、ＣＨＯ−Ｋ１株にＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ ２０００（ライフテクノロジー社）を用いて遺伝子導入を実施したことにより、Ｎ末端側にヒトイムノグロブリンカッパー鎖が付加した糖鎖修飾欠損変異組換え体ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １が培地中に分泌されることを確認した。培地中に分泌された糖鎖修飾欠損変異組換え体ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １は、抗体の特異性を明らかにする実験に供された。
【0032】
【表1】
糖鎖修飾欠損変異組換え体ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １に対する抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体の反応性は、以下に記載するサンドイッチＥＬＩＳＡ法により測定した。９６穴マイクロタイタープレート（グライナー社製）の各ウェルに２５ｎｇのヤギ抗ヒトイムノグロブリンカッパー鎖抗体（シグマアルドリッチ社製）を含むリン酸緩衝液（５０ｍＭリン酸ナトリウム、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．４）を５０μｌ加えて４℃１６時間固定した。これらのウェルを３００μｌの洗浄液（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ，ｐＨ７．４）で３回洗浄した後、３％ＢＳＡを含むＴＢＳ溶液を２００μｌ加えて室温で２時間放置してブロッキングを行った（抗ヒトイムノグロブリンカッパー鎖抗体固相化プレート）。各ウェルを３００μｌの洗浄液で３回洗浄した後、前述の糖鎖修飾欠損変異導入発現プラスミドが遺伝子導入されたＣＨＯ−ＫＩ細胞の培養上清を加え、室温で１時間放置した。各ウェルを３００μｌの界面活性剤を含む洗浄液（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０、ｐＨ７．４）で３回洗浄した後、２５ｎｇのＨＲＰ標識マウス抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体（ＭｒｈＲＮ０６１４）または、２５ｎｇのＨＲＰ標識ラット抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体（ＲｒｈＲＮ０７２３）を含む希釈液を５０μｌ加え、室温で１時間放置した。最後に、各ウェルを３００μｌの界面活性剤を含む洗浄液で３回洗浄した後、５０μｌのＴＭＢ溶液を添加して１０分間発色させた後に、１Ｍのリン酸溶液を添加することで反応を停止し、４５０ｎｍにおける吸光度を測定した。
【0033】
図１に測定した結果を示す。横軸は、各抗体が変異未導入組換え抗原ＷＴに対する結合量を１．０とした時の相対値を示す。縦軸は、各糖鎖修飾欠損変異導入抗原を示す。塗りつぶしの横棒はＲｒｈＲＮ０７２３抗体の結合量、白抜きの横棒はＭｒｈＲＮ０６１４抗体の結合量を示す。９０番目のセリン残基をアラニン残基に置換することにより、８８番目アスパラギン残基が糖鎖修飾されなくなった変異体（ｍ１１０，ｍ０１０，ｍ１００，ｍ０００）に対してのＲｒｈＲＮ０７２３抗体の反応性が、ＭｒｈＲＮ０６１４抗体の反応性に対して低下していることから、ラット抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体（ＲｒｈＲＮ０７２３）が、８８番目のアスパラギン残基の糖鎖修飾可能部位周辺を認識していることが明らかとなった。また、マウス抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体（ＭｒｈＲＮ０６１４）は、どの糖鎖修飾欠損変異抗原に対しても変異未導入組換え抗原ＷＴと同等に反応性を維持していることから、糖鎖修飾可能部位に依存せずに膵臓特異的ＲＮａｓｅ １を認識する抗体であることが明らかとなった。
【0034】
アミノ酸置換変異抗原の調製前述の発現ベクター（ｐｃＤＮＡ−ＫＦＨ−ｈＲＮａｓｅ１）を鋳型として、ＲＣＲ変異導入法によってアミノ酸置換変異を導入することで、アミノ酸置換変異導入抗原を発現するプラスミドを作製した。ＰＣＲ変異導入法には、ＰｒｉｍｅＳＴＡＲ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｂａｓａｌ Ｋｉｔ（タカラバイオ株式会社）を使用し、添付の説明書に従って実施した。詳しくは、配列番号２において８５番目のアミノ酸から９２番目のアミノ酸残基をそれぞれ別のアミノ酸残基に置換することで、アミノ酸置換変異組換え体ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １を発現するプラスミドを作製した（表２）。作製したアミノ酸置換変異導入発現プラスミドは、ＣＨＯ−Ｋ１株にＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ ２０００（ライフテクノロジー社）を用いて遺伝子導入を実施したことにより、Ｎ末端側にヒトイムノグロブリンカッパー鎖が付加したアミノ酸置換変異導入組換え体ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １が培地中に分泌されることを確認した。培地中に分泌されたアミノ酸置換変異導入組換え体ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １は、抗体の特異性を明らかにする実験に供された。
【0035】
【表2】
アミノ酸置換変異導入抗原に対する抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体の反応性は、以下に記載するサンドイッチＥＬＩＳＡ法により測定した。９６穴マイクロタイタープレート（グライナー社製）の各ウェルに２５ｎｇのヤギ抗ヒトイムノグロブリンカッパー鎖抗体（シグマアルドリッチ社製）を含むリン酸緩衝液（５０ｍＭ リン酸ナトリウム、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．４）を５０μｌ加えて４℃１６時間固定した。これらのウェルを３００μｌの洗浄液（２０ ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ，ｐＨ７．４）で３回洗浄した後、３％ＢＳＡを含むＴＢＳ溶液を２００μｌ加えて室温で２時間放置してブロッキングを行った（抗ヒトイムノグロブリンカッパー鎖抗体固相化プレート）。各ウェルを３００μｌの洗浄液で３回洗浄した後、アミノ酸置換変異導入抗原を発現するプラスミドが遺伝子導入されたＣＨＯ−ＫＩ細胞の培養上清を加え、室温で１時間放置した。各ウェルを３００μｌの界面活性剤を含む洗浄液（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０、ｐＨ７．４）で３回洗浄した後、２５ｎｇのＨＲＰ標識マウス抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体（ＭｒｈＲＮ０６１４）または、２５ｎｇのＨＲＰ標識ラット抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体（ＲｒｈＲＮ０７２３）を含む希釈液を５０μｌ加え、室温で１時間放置した。最後に、各ウェルを３００μｌの界面活性剤を含む洗浄液で３回洗浄した後、５０μｌのＴＭＢ溶液を添加して１０分間発色させた後に、１Ｍのリン酸溶液を添加することで反応を停止し、４５０ｎｍにおける吸光度を測定した。
【0036】
図２にその結果を示す。横軸は、各抗体が変異未導入組換え抗原ＷＴに対する結合量を１．０とした時の相対値を示す。縦軸は、各アミノ酸置換変異導入抗原を示す。塗りつぶしの横棒はＲｒｈＲＮ０７２３抗体の結合量、白抜きの横棒はＭｒｈＲＮ０６１４抗体の結合量を示す。変異体Ｒ８５Ｋ，Ｌ８６Ｉ，Ｎ８８Ｄ，Ｇ８９Ｓ，Ｓ９０Ａに対するＲｒｈＲＮ０７２３の反応性が、ＭｒｈＲＮ０６１４に対する反応性に比べ極端に低下していることから、抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体ＲｒｈＲＮ０７２３が、糖鎖修飾可能部位である８８番目アスパラギン残基の周辺のアミノ酸残基、特に８５番目のアルギニン残基から、９０番目のセリン残基までを認識していることが確認された。
【0037】
Ａｓｎ８８糖鎖修飾可能部位における糖鎖修飾抗原に対する抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体の反応性ＣＨＯ−Ｋ１細胞で発現させた８８番目アスパラギン残基のみが糖鎖修飾を受ける糖鎖修飾欠損変異導入ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １（ｍ００１）をウエスタンブロット法により分析した。即ち、変異未導入組換え抗原ＷＴと糖鎖修飾欠損変異導入抗原ｍ００１を、抗ヒトイムノグロブリンカッパー軽鎖抗体を使用して免疫沈降後にＳＤＳ−ＰＡＧＥ法により分離した。分離されたタンパク質は、ＰＶＤＦ膜に転写した後に膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ末端側１４アミノ酸配列を認識する抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体（ＲＮ１５０１３）と反応させて検出した。発現した組換え体タンパク質のうち、ＷＴでは糖鎖が付加していない分子から糖鎖が１、２、３箇所に付加した分子まで検出され糖鎖付加量にばらつきがあり、ｍ００１では糖鎖が一箇所付加した分子と糖鎖が付加していない分子の２種類が含まれることが明らかとなった（図３）。
【0038】
次に、８８番目アスパラギン残基が糖鎖修飾を受けた糖鎖修飾欠損変異導入抗原ｍ００１に対する抗体の反応性を検討した。即ち、糖タンパク質のＮ型糖鎖を認識して結合するコンカナバリンＡレクチンを固定化したレクチンカラムを使用して、８８番目アスパラギン残基が糖鎖修飾を受けた糖鎖修飾欠損変異導入抗原ｍ００１を分画した。具体的には、レクチンカラム結合緩衝液（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＣａＣｌ２、０．５ｍＭ ＭｇＣｌ２、ｐＨ７．４）で平衡化したコンカナバリンＡレクチン結合カラム（ＨｉＴｒａｐ−ＣｏｎＡ、ＧＥヘルスケア社製）に、糖鎖修飾欠損変異導入ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １（ｍ００１）を発現させたＣＨＯ−Ｋ１培養細胞上清を流して、糖鎖修飾欠損変異導入ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １（ｍ００１）を結合させた。コンカナバリンＡレクチン結合カラムは、レクチンカラム結合緩衝液で充分に洗浄した後、アルファーメチルマンノシド（シグマアルドリッチ社製）を含むレクチンカラム結合緩衝液を使用して、結合した糖鎖修飾欠損変異導入ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １（ｍ００１）を溶出した。サンプル注入からすべての溶出画分をフラクションコレクターで回収して、分画した各画分に含まれる組換え体抗原の量をサンドイッチＥＬＩＳＡ法により測定した。検出には、糖鎖修飾の影響を受けない抗体ＭｒｈＲＮ０６１４と、Ａｓｎ８８糖鎖修飾可能部位近傍を認識する抗体ＲｒｈＲＮ０７２３を使用した。
【0039】
結果を図４に示す。横軸は、カラム分離での各画分を示し、第一縦軸はＥＬＩＳＡ分析の測定値を示し、第二縦軸はアルファーメチルマンノシドの濃度を示している。破線はＭｒｈＲＮ０６１４抗体の結合量の変化を示し、実線はＲｒｈＲＮ０７２３抗体の結合量を示す。点線は、溶出糖であるアルファーメチルマンノシドの各フラクションでの濃度を示す。図４に示した通り、ＭｒｈＲＮ０６１４では、コンカナバリンＡ結合画分（アルファーメチルマンノシド溶出画分）に抗原が溶出されてきていることが明らかとなったが、同じ画分に対してＲｒｈＲＮ０７２３は反応性を示さないことが明らかとなった。一方、コンカナバリンＡに結合しない画分（素通り画分）は、両抗体とも反応性を示すことが明らかとなった。コンカナバリンＡ結合画分に含まれる抗原をウエスタンブロット法により解析すると、この画分には糖鎖修飾された抗原のみが含まれることが示された。以上の結果から、新たに取得した抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体（ＲｒｈＲＮ０７２３）は、８８番目アスパラギン残基が糖鎖修飾を受けた膵臓特異的ＲＮａｓｅ １には反応せず、当該残基が糖鎖修飾を受けていない場合にのみ結合する抗体であることが示された。すなわち、抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １抗体（ＲｒｈＲＮ０７２３）を使用した免疫学的測定系においては、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １の８８番目アスパラギン残基に糖鎖が結合していない場合の量を測定していることが明らかとなった。
【0040】
実施例３ サンドイッチＥＬＩＳＡによるヒト血清検体の測定生体試料を被検体として以下のサンドイッチＥＬＩＳＡによって測定した。
【0041】
膵臓癌患者由来生体試料中の膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖修飾可能部位のうち、Ｎ型糖鎖が結合していない部位の測定ヒト生体試料中の膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ型糖鎖修飾可能部位のうち、Ｎ型糖鎖が結合していない部位を測定するために、健常人血清（４０検体）、膵臓癌患者血清（５０検体、ＢｉｏＴｈｅｍｅ社）、膵臓疾患患者血清（非癌、１２検体、ＢｉｏＴｈｅｍｅ社）、乳癌患者血清（２０検体 ＢｉｏＴｈｅｍｅ社）、良性乳腺腫瘍患者血清（１８検体）、前立腺癌患者血清（２４検体、ＳＬＲ社）、前立腺肥大症患者血清（２４検体、ＳＬＲ社）を用意した（表３）。
【0042】
【表3】
【0043】
図５にその結果を示す。横軸は癌の種類を示し、縦軸はＥＬＩＳＡ測定の測定値を示す。黒丸は各検体の測定値を示し、その統計的分布をボックスプロットで示す。膵臓癌以外はある特定の値以上を示すのに対して、膵臓癌は他の群と比べて有意に低値を示している。即ち、膵臓癌患者では、健常人に比べて、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＲｒｈＲＮ０７２３が認識するＮ型糖鎖修飾可能部位にＮ型糖鎖が結合していない場合が少ないことを示している。これは裏返して言えば、膵臓癌患者では、健常人に比べて、このＮ型糖鎖修飾可能部位にＮ型糖鎖が結合している場合が多いことを示すものである。また膵臓癌以外の６つの群をあわせたもの（非膵臓癌群）と膵臓癌群に分けた場合の有意差検定の結果、ｐ値は７．３×１０−１５という非常に低い値となり、明らかに有意差が認められた（図６）。
【0044】
この測定結果をもとに、膵臓癌の判別精度解析結果を図７と表４に示す。ＲＯＣ統計解析は、統計解析ソフトウェアであるＲを使用して実施した。最適化されたカットオフ値（ＡＢＳ４５０ｎｍ＝０．８１１）での特異性は９６％、感度は７８％であり、診断性能の１つの指標となるＡＵＣは０．９３３と充分に高い値を示した。
【0045】
【表4】
以下の手順に従って、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １の糖鎖修飾可能部位Ａｓｎ８８を認識して結合する抗体を作製し、ウェスタンブロット法の１次抗体として使用した。
【0046】
免疫動物への免疫配列番号２のアミノ酸配列８５〜９５に相当する部分を化学合成したペプチド（配列番号４）をＫＬＨに縮合して免疫原とし、それを用いてラットに免疫を実施した。詳しくは、１００μｇの免疫原をフロイント完全アジュバンドと共に、６週齢ＷＨＹ雌ラット両後肢フットパッドへ投与し初回免疫とした。その後、２８日後に免疫原１００μｇを生理食塩水と共に後肢フットパッドへ投与し、最終免疫とした。
【0047】
抗体産生ハイブリドーマの作製最終免疫の３日後に、免疫したラットの腸骨リンパ節と鼠蹊リンパ節を摘出し、リンパ節細胞を得た。ラットリンパ節細胞は、マウスミエローマ細胞株と電気細胞融合法により融合させた後、ヒポキサンチン、アミノプテリン、およびチミジンを添加したＧＩＴ培地（和光純薬工業株式会社）で細胞培養用９６ウェルプレートに播種することにより、融合細胞を選択した。
【0048】
ラット抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １ペプチド抗体産生融合細胞株の選定前述の融合細胞が培地中に分泌する抗体について、スクリーニング用ペプチド（配列番号５又は６）をＢＳＡに縮合させたスクリーニング抗原を用いたＥＬＩＳＡ法によりスクリーニングを行い、ラット抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １ペプチド抗体産生融合細胞株を選択した。スクリーニングに用いたＥＬＩＳＡは以下の通りである。９６穴マイクロタイタープレート（グライナー社製）の各ウェルに、２５ｎｇのスクリーニング用ペプチド縮合ＢＳＡを含むリン酸緩衝液（５０ｍＭリン酸ナトリウム、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．４）をそれぞれ５０μｌ加えて４℃、１６時間固定した。これらのウェルを３００μｌの洗浄液（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．４）で３回洗浄した後、３％ＢＳＡを含むブロッキング溶液（３％ＢＳＡ，２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．４）を２００μｌ加えて室温で２時間放置してブロッキングを行った（スクリーニング用ペプチド縮合ＢＳＡ固相化プレート）。各ウェルを３００μｌの洗浄液で３回洗浄した後、５０μｌの融合細胞培養上清をそれぞれのウェルに加えて室温で１時間放置した。次に、各ウェルを３００μｌの界面活性剤を含む洗浄液で３回洗浄した後、０．０１μｇのＨＲＰ標識された抗ラットＩｇＧ抗体（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｑｕａｌｅｘ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ社製）を含む希釈液を５０μｌ加えて、室温で１時間放置した。最後に、各ウェルを３００μｌの界面活性剤を含む洗浄液で３回洗浄した後、５０μｌのＴＭＢ溶液を添加して１５分間発色させた。その後、１Ｍのリン酸溶液を添加することで反応を停止し、４５０ｎｍにおける吸光度を測定した。抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １ペプチド抗体産生融合細胞株の選定基準は、前述のスクリーニング用ペプチドのうち、配列番号５のペプチドに反応し、かつ配列番号６のペプチドには反応しない抗体を産生する融合細胞とした。なお、配列番号５のペプチドは、天然型の膵臓特異的ＲＮａｓｅ １（配列番号２）の８５〜９５番目に相当する配列を含むものである。また配列番号６のペプチドは、配列番号５のペプチドにおいて５番目のＡｓｎ残基をＡｓｐ残基に置換した配列に相当し、当該置換箇所は配列番号２の８８番目Ａｓｎ残基に相当するものである。
【0049】
選択された融合細胞株の上清は、さらにウェスタンブロット法によるスクリーニングを実施し、ウェスタンブロットのＰＶＤＦ膜上で変異導入無しの組換え体抗原ＷＴに対して結合することが確認できた抗体を生産する融合細胞株を最終的に選択した。
【0050】
スクリーニングの結果から、ウェスタンブロット法の一次抗体として膵臓特異的ＲＮａｓｅ １特異的に検出することが可能な抗体を産生する融合細胞を得た。得られた融合細胞は、限界希釈法によりモノクローン化され、モノクローナル抗体ＲＮ３Ｆ３４を得た。
【0051】
ラット抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １ペプチド抗体の抗原認識特異性の確認得られたラット抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １ペプチド抗体（ＲＮ３Ｆ３４）の抗原認識特異性を確認する為に、Ａｓｎ８８の糖鎖修飾可能部位のみが残された糖鎖修飾欠損変異導入ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １（ｍ００１）に対する反応性を、ウェスタンブロット法により確認した。図８に示すように膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ末端側１４アミノ酸配列に結合する抗体ＲＮ１５０１３では、ｍ００１に糖鎖が結合した高分子量側の分子と、糖鎖が結合していない低分子量側の分子の両方が検出された。これに対して、ＲＮ３Ｆ３４抗体では、糖鎖が結合していない低分子量側の分子のみが検出された。以上の結果から、作製したラット抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １ペプチド抗体（ＲＮ３Ｆ３４）は、Ａｓｎ８８に糖鎖が結合した構造の膵臓特異的ＲＮａｓｅ １には結合しない抗体であることが確認された。
【0052】
前述の発現ベクター（ｐｃＤＮＡ−ＫＦＨ−ｈＲＮａｓｅ１ ｍ００１）を鋳型としたＲＣＲ変異導入法によって、変異体ｍ００１の８８番目のＡｓｎをアスパラギン酸に置換させた変異体発現ベクター（ｐｃＤＮＡ−ＫＦＨ−ｈＲＮａｓｅ１ ｍ０００−Ｎ８８Ｄ）を作製して、ＣＨＯ−Ｋ１細胞株に発現させた変異導入抗原（ｍ０００−Ｎ８８Ｄ、表１）に対する反応性も、同様に確認した。図８に示すように膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ末端側１４アミノ酸配列に結合する抗体ＲＮ１５０１３によって、ｍ０００−Ｎ８８Ｄが検出されたのに対して、ラット抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １ペプチド抗体（ＲＮ３Ｆ３４）はｍ０００−Ｎ８８Ｄを検出できないことが確認できた。このようにＡｓｎ８８がアスパラギン酸に置換したものには、ＲＮ３Ｆ３４抗体が結合しないことが確認された。これは即ち、ＰＮＧａｓｅＦ等によりＡｓｎ８８に結合している糖鎖の脱糖鎖処理を行った場合に、それに伴ってアスパラギンからアスパラギン酸へアミノ酸変換された膵臓特異的ＲＮａｓｅ １には、ＲＮ３Ｆ３４抗体が結合しないことを意味する。したがって、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＡｓｎ８８に糖鎖が結合していてＰＮＧａｓｅＦによる脱糖鎖に伴いアスパラギン酸へアミノ酸変換された部位には、ラット抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １ペプチド抗体（ＲＮ３Ｆ３４）は結合せず、Ａｓｎ８８に糖鎖が結合しておらず脱糖鎖処理によってもアミノ酸変換を起こさなかった部位に結合する。このようにＰＮＧａｓｅＦ等による脱糖鎖処理後の反応性を見た場合に、ＲＮ３Ｆ３４抗体は、配列番号２のアミノ酸配列の８８番目のＡｓｎが糖鎖結合していなかった場合に結合し、糖鎖結合していた場合には結合しないという意味において、ＲｒｈＲＮ０７２３と同等の性能を持つものである。
【0053】
ヒト血清中の膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＡｓｎ８８の糖鎖結合の変化の確認ラット抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １ペプチド抗体（ＲＮ３Ｆ３４）を使用して、ＰＮＧａｓｅＦによる脱糖鎖処理をしたヒト血清中の膵臓特異的ＲＮａｓｅ １をウェスタンブロット法で検出し、ヒト血清中の膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＡｓｎ８８における糖鎖結合の有無を測定した。即ち、健常人血清５検体と膵臓癌患者血清６検体から、ＭｒｈＲＮ０６１４抗体を使用して免疫沈降法により膵臓特異的ＲＮａｓｅ １を抽出し、可溶化変性バッファーで膵臓特異的ＲＮａｓｅ １を変性した後に、ＰＮＧａｓｅＦによって脱糖鎖処理を行った。処理された試料は、ウェスタンブロット法によって解析した。検出には、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＮ末端側１４アミノ酸配列を認識するＲＮ１５０１３と、抗ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １ペプチド抗体ＲＮ３Ｆ３４を使用した。図９に示したように、ＲＮ１５０１３では健常人血清、膵臓癌患者血清ともに一定量の膵臓特異的ＲＮａｓｅ １が検出され、両者の間に著しい差は認められなかった。一方、ＲＮ３Ｆ３４による検出では、健常人血清では膵臓特異的ＲＮａｓｅ １が検出されたのに対し、膵臓癌患者血清では検出されない、または検出量が健常人血清と比べて著しく低いという結果となった。この結果から、膵臓癌患者血清中の膵臓特異的ＲＮａｓｅ １は、健常人血清に比べて、Ａｓｎ８８にＮ型糖鎖が結合している場合が多いことが確認できた。
【0054】
実施例５ ＲＮａｓｅ １のＡｓｎ８８の糖鎖修飾可能部位において糖鎖が結合していない部位の量と、Ａｓｎ８８の糖鎖修飾可能部位の量との比を求めることによる膵癌の検出ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １を特異的に認識し、かつ３つの糖鎖修飾可能部位における糖鎖の有無に拘らず結合可能な２つの抗体を使用した免疫測定試薬と、Ａｓｎ８８に糖鎖が結合していないＲＮａｓｅ １を特異的に測定する免疫測定試薬を作製して、それぞれの試薬で血清試料中のＲＮａｓｅ １を測定した。具体的には、ヒト膵臓特異的ＲＮａｓｅ １を特異的に認識し、かつ３つの糖鎖修飾可能部位における糖鎖の有無に拘らず結合可能な２つの抗体としては、前述のＭｒｈＲＮ０６１４とＲｒｈＲＮ１１１１を用いた。ＲｒｈＲＮ１１１１は、ＲｒｈＲＮ０７２３を取得した際に、３つの糖鎖修飾可能部位における糖鎖の有無に拘らず結合可能な抗体として単離されたものである。ＲｒｈＲＮ１１１１の抗原認識特異性は、実施例２で抗体の特異性の測定に使用した、糖鎖修飾欠損変異抗原を用いたＥＬＩＳＡ法と同じ方法で検討した。結果を図１０に示す。横軸は、各抗体が変異未導入組換え抗原ＷＴに対する結合量を１．０とした時の相対値を示す。縦軸は、各糖鎖修飾欠損変異導入抗原を示す。塗りつぶしの横棒はＲｒｈＲＮ０７２３抗体の結合量、白抜きの横棒はＲｒｈＲＮ１１１１抗体の結合量を示す。図１０に示した通り、ＲｒｈＲＮ０７２３は、糖鎖修飾可能部位全てに変異を入れ糖鎖修飾を全く受けない変異体ｍ０００に対して反応性がないのに対して、ＲｒｈＲＮ１１１１のｍ０００に対する反応性は、変異未導入組換え抗原ＷＴと比べて約９０％の反応性を保持している。よって、ＲｒｈＲＮ１１１１は３つの糖鎖修飾可能部位における糖鎖の有無に拘らず結合可能な抗体であると確認された。
【0055】
以下に、これらの抗体を用いて構築した免疫測定系の測定試薬の調製法、評価方法を示す。水不溶性担体（内部にフェライトを練り込んだ粒子径約１．５ｍｍのＥＶＡ製）にＭｒｈＲＮ０６１４を９０ｎｇ／担体となるよう物理的に吸着させ、吸着後ＢＳＡを用いてブロッキング処理を行った。水不溶性担体については、１個当たり約１００ｎｇの蛋白質を物理的に吸着可能である。磁力透過性の容器（容量１．２ｍｌ）に１２個の担体を入れた後、０．５μｇ／ｍＬのアルカリ性フォスファターゼ標識を施した抗体ＲｒｈＲＮ０７２３または０．５μｇ／ｍＬのアルカリ性フォスファターゼ標識を施した抗体ＲｒｈＲＮ１１１１を含む緩衝液（１％ ＢＳＡ、２．５％デキストラン、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．０５％Ｔｗｅｅｎ−２０，２０ｍＭトリス緩衝液、ｐＨ７．４）を加え、凍結乾燥した。この試薬を市販の全自動免疫測定装置（東ソー（株）製、商品名ＡＩＡ−６００ＩＩ）を用いて全自動での測定を行った。その測定原理は以下の通りである。即ち、測定サンプルを１５０μＬ加え、水不溶性担体を３７℃で１０分間磁石を用いて運動させ、混合液を攪拌した状態で免疫反応させた。反応後、Ｂ／Ｆ分離操作を行って遊離の標識抗体を分離除去し、アルカリ性フォスファターゼの基質である４−メチルウンベリフェリルリン酸を加え、該基質添加後２０秒から２９５秒までの酵素反応分解物（４メチルウンベリフェロン）の単位時間あたりの生成速度（ｎＭ／秒）を測定した。前述の標識化抗体ＲｒｈＲＮ０７２３を含む凍結乾燥試薬を用いてサンプルの測定を行い、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １の８８番目の糖鎖修飾可能部位において糖鎖が結合していない部位の量（以下、Ｆ３値という）を求めた。また前述の標識化抗体ＲｒｈＲＮ１１１１を含む凍結乾燥試薬を用いてサンプルの測定を行い、膵臓特異的ＲＮａｓｅ１の量（以下、トータル値という）を求めた。そしてその比（Ｆ３／ｔ）を以下の式（１）によって求めた。Ｆ３／ｔ＝Ｆ３値／トータル値 （１）
図１１にその結果を示す。健常人から得られた血清検体中のＦ３／ｔ値は、０．８−１．０前後であるのに対して、膵臓癌患者検体から得られた検体においては、０．１−０．７前後に幅広く分布しており、健常人検体と有意に差があることが確認できた。
【0056】
また以下の式（２）の値を求めることにより、膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のトータル値と、８８番目の糖鎖修飾可能部位において糖鎖が結合している部位の量との比（Ｇ３／ｔ）を求めた。その結果を図１１に示す。膵臓癌患者検体から得られた検体においては、健常人検体と有意に差があることが確認できた。Ｇ３／ｔ＝１−（Ｆ３／ｔ） （２）
実施例６ 抗原固相競合法による測定
膵臓特異的ＲＮａｓｅ １のＡｓｎ８８糖鎖修飾可能部位において糖鎖が結合していない部位の量を、抗原固相競合法により測定する方法を構築した。即ち、膵臓癌由来培養細胞株Ｃａｐａｎ １の培養上清から、ＲｒｈＲＮ０７２３固定化カラムを使用してＲｒｈＲＮ０７２３抗体に反応するＲＮａｓｅ １を精製した。この抗原を濃縮後、タンパク質測定キットにより抗原溶液のタンパク質濃度を決定した。精製したＲＮａｓｅ １は、ビオチン導入試薬 （ｓｕｌｆｏＮＨＳ−ＬＣＬＣ−ｂｉｏｔｉｎ、Ｔｈｅｒｍｏ ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）を用いてビオチン化し、固相用抗原とした。ストレプトアビジン固定化ダイナビーズ（Ｄｙｎａｌ社）に対して、１００μｌビーズ懸濁液に対して約２．５μｇの上述のＲＮａｓｅ １を固定化して抗原固相化ビーズを作製した。
【0057】
この抗原固相化ビーズ（４μｌ）、ＨＲＰ標識ＲｒｈＲＮ０７２３抗体（１０ｎｇ）、連続希釈した競合抗原（０ｎｇ−１００ｎｇ）を混合した後、１時間反応させた。反応後の溶液から、磁石を使用して磁性ビーズのみを回収し、洗浄液（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０、ｐＨ７．４）で３回洗浄した後、ビーズをＴＭＢ溶液を添加して１０分間発色させた。発色した溶液に、１Ｍリン酸を添加することで反応を停止させて、４５０ｎｍにおける吸光度を測定することで、ビーズに結合したＨＲＰ標識ＲｒｈＲＮ０７２３抗体量を測定した。図１２に、抗原固相化競合法による前述の精製ＲＮａｓｅ １の測定結果を示す。実線（第１軸）は測定値を示し、破線（第２軸）は抗原濃度が０の時の測定値を各濃度における測定値で除した値である。競合抗原として反応に持ち込んだＲＮａｓｅ１の量に依存して測定値が変化していることが分かる。以上の結果から、ＲｒｈＲＮ０７２３抗体を使用した抗原固相化競合法により、Ａｓｎ８８に糖鎖が結合していないＲＮａｓｅ １量の測定が可能であることが示された。
【配列表】
[この文献には参照ファイルがあります.J-PlatPatにて入手可能です(IP Forceでは現在のところ参照ファイルは掲載していません)]