特許 6854553 粒子の分配方法

(19)【発行国】日本国特許庁(JP)

(12)【公報種別】特許公報(B2)

(11)【特許番号】6854553

(24)【登録日】2021年3月18日

(45)【発行日】2021年4月7日

(54)【発明の名称】粒子の分配方法

(51)【国際特許分類】

   G01N 1/00 20060101AFI20210329BHJP

   G01N 1/28 20060101ALI20210329BHJP

   C12N 1/00 20060101ALI20210329BHJP

   C12M 1/00 20060101ALI20210329BHJP

【ＦＩ】

   G01N1/00 101K

   G01N1/28 J

   C12N1/00 Z

   C12M1/00 Z

【請求項の数】11

【全頁数】16

(21)【出願番号】特願2020-529396(P2020-529396)

(86)(22)【出願日】2019年8月13日

(86)【国際出願番号】JP2019031860

(87)【国際公開番号】WO2020036180

(87)【国際公開日】20200220

【審査請求日】2020年5月27日

(31)【優先権主張番号】特願2018-153635(P2018-153635)

(32)【優先日】2018年8月17日

(33)【優先権主張国】JP

【国等の委託研究の成果に係る記載事項】（出願人による申告）平成２８年度、国立研究開発法人日本医療研究開発機構、「再生医療の産業化に向けた評価基盤技術開発事業」「再生医療の産業化に向けた細胞製造・加工システムの開発／ヒト多能性幹細胞由来の再生医療製品製造システムの開発（網膜色素上皮・肝細胞）」委託研究開発、産業技術力強化法第１７条の適用を受ける特許出願

【早期審査対象出願】

(73)【特許権者】

【識別番号】504176911

【氏名又は名称】国立大学法人大阪大学

(74)【代理人】

【識別番号】110000040

【氏名又は名称】特許業務法人池内アンドパートナーズ

(72)【発明者】

【氏名】紀ノ岡 正博

【審査官】 外川 敬之

(56)【参考文献】

【文献】 特表２０１７−５１５５１０（ＪＰ，Ａ）

【文献】 国際公開第２０１４／０１７５１３（ＷＯ，Ａ１）

【文献】 特開２００３−２０２３３４（ＪＰ，Ａ）

【文献】 国際公開第２０１７／１２６６４７（ＷＯ，Ａ１）

【文献】 米国特許出願公開第２０１４／０１０６３４８（ＵＳ，Ａ１）

【文献】 米国特許出願公開第２０１４／０３６０２６９（ＵＳ，Ａ１）

【文献】 特開２００５−３１２３９８（ＪＰ，Ａ）

【文献】 国際公開第２０１６／１２１８９６（ＷＯ，Ａ１）

(58)【調査した分野】（Int.Cl.，ＤＢ名）

Ｇ０１Ｎ １／００−１／４４

Ｇ０１Ｎ ３５／００−３７／００

Ｃ１２Ｎ １／００−７／０８

(57)【特許請求の範囲】

【請求項1】

細胞と前記細胞の容器とを備える製品の製造方法であって、
酸性多糖類と前記細胞とを含み、前記細胞が分散した塑性流体を調製すること、及び、 前記塑性流体を、複数の容器に分注することを含み、
前記塑性流体中の前記酸性多糖類の濃度が、０．００１％〜０．４％である、製造方法。

【請求項2】

前記塑性流体は、前記酸性多糖類以外の凍結保存液の成分を含有する、請求項１に記載の製造方法。

【請求項3】

前記分注の間、前記塑性流体の攪拌操作は行われない、請求項１又は２に製造方法。

【請求項4】

前記細胞は、多能性幹細胞、又は多分化能幹細胞である、請求項１から３のいずれかに記載の製造方法。

【請求項5】

前記複数の容器の数が５０個以上であり、分注開始から分注されるまでの滞留時間が１時間以上である容器が存在する、請求項１から４のいずれかに記載の製造方法。

【請求項6】

細胞を複数のアリコートに分配する方法であって、
酸性多糖類と前記細胞とを含み、前記細胞が分散した塑性流体を調製すること、及び、 前記塑性流体を複数のアリコートに分注することを含み、
前記塑性流体中の前記酸性多糖類の濃度が、０．００１％〜０．４％である、分配方法。

【請求項7】

前記塑性流体は、前記酸性多糖類以外の凍結保存液の成分を含有する、請求項６に記載の分配方法。

【請求項8】

前記分注の間、前記塑性流体の攪拌操作は行われない、請求項６又は７に記載の分配方法。

【請求項9】

前記細胞は、多能性幹細胞、又は多分化能幹細胞である、請求項６から８のいずれかに記載の分配方法。

【請求項10】

前記複数の容器の数が、５０個以上であり、分注開始から分注されるまでの滞留時間が１時間以上であるアリコートが存在する、請求項６から９のいずれかに記載の分配方法。

【請求項11】

細胞が分散する液体又は細胞を分散させる液体を塑性流体とするための物質と、細胞凍結保存液の成分とを含み、前記塑性流体中の酸性多糖類の濃度が、０．００１％〜０．４％である、請求項１から１０のいずれかに記載の方法に用いるための組成物。

【発明の詳細な説明】

【技術分野】

【0001】

本開示は、粒子の分配、粒子を含む流体の分注、及び粒子を含む製品の製造に関する。

【背景技術】

【0002】

一定量の溶液を吐出する分注操作は、成分分析などサンプリングや、少量の溶液を主成分とする工業製品のバイアル充填工程などで行われる。分注操作を自動で行う自動分析装置の開発も進んでいる（特許文献１及び２）。

【0003】

複数種類の溶液や、微粒子を含む溶液など密度が大きく異なる物質が混合・分散・溶解している液体の場合、該物質の濃度が均一になるように分注するためには、分注される液体内の該物質の濃度を分注の開始前及び分注開始後（分注中）とで一定にする必要がある。この問題を解決するため、貯留部における磁気微粒子や超音波を用いた物理的な撹拌操作が提案されている（特許文献３及び４）。

【先行技術文献】

【特許文献】

【0004】

【特許文献1】特開２００９−０５８２８８号公報

【特許文献2】特開２０１２−５０９４８５号公報

【特許文献3】特開２００８−１０２０５２号公報

【特許文献4】特許第５６６８０２１号公報

【発明の概要】

【発明が解決しようとする課題】

【0005】

しかしながら、前述した物理的に撹拌する分注方法では、サンプルの成分やスケールに応じて撹拌方法や各操作のパラメータを最適化する必要がある。
また、細胞のような生きた成分を含むサンプルでは、撹拌の物理的刺激による活性の低下が懸念される。
そこで、本開示は、一態様において、細胞のような粒子成分を分配可能な、新たな分配方法を提供する。

【課題を解決するための手段】

【0006】

本開示は、一態様において、粒子の分配方法であって、
前記粒子を塑性流体中に分散させること、及び、
前記粒子を含む塑性流体を分注することを含む方法、に関する。

【0007】

本開示は、一態様において、粒子と前記粒子の容器とを備える製品の製造方法であって、
前記粒子を分散させた塑性流体の貯留部から複数の前記容器へ前記塑性流体を分注することを含む製造方法、に関する。
また、本開示は、その他の一態様において、本開示に係る分配方法又は製造方法における分注に使用するための組成物であって、粒子が分散する液体又は粒子を分散させる液体を塑性流体とするための物質を含む組成物に関する。
さらにまた、本開示は、その他の一態様において、細胞凍結保存液と、前記液を塑性流体とするための物質とを含む組成物に関する。

【発明の効果】

【0008】

本開示によれば、一態様において、分配中に貯留部における撹拌がなくても粒子の量（又は密度）の偏りの抑制が可能な分配を提供できる。

【図面の簡単な説明】

【0009】

【図1】図１は、自動分注装置の概略図である。

【図2】図２は、式（Ｉ）を説明する図である。

【図3】図３は、実験スキームの概要を説明する図である。

【図4】図４は、撹拌とバイアル中のビーズ濃度との関係を示すグラフである。

【図5】図５は、撹拌とバイアル中のビーズ濃度との関係を示すグラフである。

【図6】図６は、撹拌とバイアル中の分注量との関係を示すグラフである。

【図7】図７は、培養細胞を用いた実験スキームの概要を説明する図である。

【図8】図８は、撹拌と細胞の生存率（Ｐ／Ｐ₀）との関係を示すグラフである。

【図9】図９は、塑性流体を用いた実験スキームの概要を説明する図である。

【図10】図１０は、塑性流体の使用とビーズ濃度との関係を示すグラフである。

【図11】図１１は、塑性流体が細胞毒性を示さないことを示すグラフである。

【図12】図１２は、塑性流体が細胞毒性を示さないことを示す写真である。

【図13】図１３は、塑性流体が細胞ポテンシャルに与える影響を確認した実験結果の一例を示すグラフである。

【発明を実施するための形態】

【0010】

本開示は、細胞やビーズなどの粒子を分注する場合、塑性流体を利用することで、分注中の撹拌操作がなくても、分注される一定分量中の粒子の濃度や密度の変動を抑制できるという知見に基づく。
本開示は、また、分注中の撹拌操作を使用しない分注が可能になれば、細胞などの生きた粒子成分や壊れやすい粒子成分であっても、撹拌によるダメージを回避しつつ、分注される一定分量中の粒子の濃度や密度の変動を抑制できるという知見に基づく。
本開示は、さらに、分注中の撹拌操作を使用しない分注が可能になれば、貯留部（リザーバー）における気体の混入を抑制でき、分注量の変動を抑制できるという知見に基づく。
本開示は、さらにまた、ポンプと管を用いた分注において塑性流体を利用することで、管内で層流による送液が可能となり、吸入時と同じ粒子の濃度を維持しやすくなるという知見に基づく。また、層流での送液が可能になることで、気相との界面の崩れが抑制され気体を含みにくいという知見に基づく。
但し、本開示はこれらの知見に限定されなくてもよい。

【0011】

［分配方法・分注方法］
本開示は、一態様において、粒子を塑性流体中に分散させること、及び、前記粒子を含む塑性流体を分注することを含む、粒子の分配方法に関する。
本開示に係る粒子の分配方法において、例えば、粒子が細胞である場合、前記塑性流体としては、培地や凍結保存液に後述する特定化合物を混合して塑性流体としたものが挙げられる。
したがって、本開示に係る粒子の分配方法は、以下のように言い換えることができる。すなわち、本開示は、一態様において、粒子を含む液体の液体を塑性流体とすること、及び、前記粒子を含む塑性流体を分注することを含む、分注方法に関する。
本開示の分配及び分注方法によれば、一又は複数の実施形態において、攪拌等の操作を行わなくても、粒子を含む液体（塑性流体）を一定密度かつ一定量で分配又は分注することができる。よって、本開示の分配及び分注方法は、一又は複数の実施形態において、粒子を含む塑性流体を定量に分配又は分注することを含む。
粒子及び塑性流体について以下に説明する。

【0012】

［粒子］
本開示に係る分配・分注方法において、粒子は、液体との混合物として分注できるものをいう。
粒子は、固体であってもよく、液体であってもよい。
粒子の一又は複数の実施形態として、細胞、微生物、リポソーム、薬包粒子、顔料などの化粧成分、ビーズ、コロイドなどが挙げられる。
本開示に係る分配・分注方法は、分配中・分注中の撹拌操作を必須とはしないから、シェアストレス（物理的ストレス）に感受性のある粒子の分配・分注に好適である。但し、粒子はこれらに限定されなくてもよい。
細胞としては、動物由来の細胞及び植物由来の細胞が含まれうる。細胞の一又は複数の実施形態として、培養細胞が挙げられる。培養細胞としては、幹細胞が挙げられ、幹細胞としては、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）及び人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）などのような多能性幹細胞、或いは、間葉系幹細胞、造血幹細胞及び組織幹細胞などのような多分化能幹細胞が挙げられる。
ビーズとしては、ポリマービーズ、セラミックビーズ、金属ビーズ、金属酸化物ビーズが挙げられる。ビーズの形態としては、また、磁性ビーズ、ビーズ担体、砥粒などが挙げられる。
コロイドとしては、エマルション、サスペンションが挙げられる。

【0013】

本開示において、粒子の分配は、粒子と液体との混合物の分注を含む。
本開示において、液体は、塑性流体でない液体及び塑性流体の両方を意味しうる。特に言及のない場合、液体は、塑性流体でない液体を意味する。

【0014】

［塑性流体］
本開示において、塑性流体とは、流動させるために降伏応力が必要な流体、すなわち、降伏値を持つ流体をいう。塑性流体は、ビンガム流体であってもよく、非ビンガム流体であってもよい。本開示において、塑性流体とは、静置状態において、分配（分注）目的の粒子の沈降を抑制できるもの、好ましくは、該粒子を沈降させずに保持できるものをいう。

【0015】

本開示において、塑性流体は、限定されない一又は複数の実施形態において、塑性流体ではない液体と特定化合物とを混合することで得ることができる。
前記特定化合物は、塑性流体ではない液体を塑性流体とすることができる化合物であり、限定されない一又は複数の実施形態において、ＷＯ２０１４／０１７５１３に開示されるものや、下記のものが使用できる。

【0016】

塑性流体ではない液体を塑性流体とするための特定化合物としては、特に制限されるものではないが、高分子化合物が挙げられ、好ましくはアニオン性の官能基を有する高分子化合物が挙げられる。
アニオン性の官能基としては、カルボキシ基、スルホ基、リン酸基及びそれらの塩が挙げられ、カルボキシ基またはその塩が好ましい。
前記高分子化合物は、前記アニオン性の官能基の群より選択される１種又は２種以上を有するものを使用できる。

【0017】

塑性流体ではない液体を塑性流体とするための特定化合物の好ましい具体例としては、特に制限されるものではないが、単糖類（例えば、トリオース、テトロース、ペントース、ヘキソース、ヘプトース等）が１０個以上重合した多糖類が挙げられ、より好ましくは、アニオン性の官能基を有する酸性多糖類が挙げられる。ここにいう酸性多糖類とは、その構造中にアニオン性の官能基を有すれば特に制限されないが、例えば、ウロン酸（例えば、グルクロン酸、イズロン酸、ガラクツロン酸、マンヌロン酸）を有する多糖類、構造中の一部に硫酸基又はリン酸基を有する多糖類、或いはその両方の構造を持つ多糖類であって、天然から得られる多糖類のみならず、微生物により産生された多糖類、遺伝子工学的に産生された多糖類、或いは酵素を用いて人工的に合成された多糖類も含まれる。より具体的には、ヒアルロン酸、ジェランガム、脱アシル化ジェランガム（以下、ＤＡＧという場合もある）、ラムザンガム、ダイユータンガム、キサンタンガム、カラギーナン、ザンタンガム、ヘキスロン酸、フコイダン、ペクチン、ペクチン酸、ペクチニン酸、へパラン硫酸、ヘパリン、へパリチン硫酸、ケラト硫酸、コンドロイチン硫酸、デルタマン硫酸、ラムナン硫酸及びそれらの塩からなる群より１種又は２種以上から構成されるものが例示される。多糖類は、好ましくは、ヒアルロン酸、ＤＡＧ、ダイユータンガム、キサンタンガム、カラギーナン又はそれらの塩であり、低濃度の使用で粒子を浮遊させることができ、かつ粒子の回収のしやすさを考慮すると、より好ましくは、ＤＡＧである。ここでいう塩とは、例えば、リチウム、ナトリウム、カリウムといったアルカリ金属の塩、カルシウム、バリウム、マグネシウムといったアルカリ土類金属の塩又はアルミニウム、亜鉛、鋼、鉄、アンモニウム、有機塩基及びアミノ酸等の塩が挙げられる。

【0018】

これらの高分子化合物（多糖類等）の重量平均分子量は、好ましくは１０，０００〜５０，０００，０００であり、より好ましくは１００，０００〜２０，０００，０００、更に好ましくは１，０００，０００〜１０，０００，０００である。例えば、当該分子量は、ゲル浸透クロマトグラフィー（ＧＰＣ）によるフルラン換算で測定できる。さらに、ＤＡＧはリン酸化したものを使用することもできる。当該リン酸化は公知の手法で行うことができる。

【0019】

前記多糖類は、一又は複数の実施形態において、複数種（好ましくは２種）組み合わせて使用することができる。多糖類の組み合わせの種類は特に限定されないが、好ましくは、当該組合せは少なくともＤＡＧ又はその塩を含む。即ち、好適な多糖類の組合せには、ＤＡＧ又はその塩、及びＤＡＧ又はその塩以外の多糖類（例、キサンタンガム、アルギン酸、カラギ−ナン、ダイユータンガム、メチルセルロース、ローカストビーンガム又はそれらの塩）が含まれる。具体的な多糖類の組み合わせとしては、ＤＡＧとラムザンガム、ＤＡＧとダイユータンガム、ＤＡＧとキサンタンガム、ＤＡＧとカラギーナン、ＤＡＧとザンタンガム、ＤＡＧとローカストビーンガム、ＤＡＧとκ−カラギーナン、ＤＡＧとアルギン酸ナトリウム、ＤＡＧとメチルセルロース等が挙げられるが、これらに限定されない。

【0020】

特定化合物の更に好ましい具体例としては、ヒアルロン酸、脱アシル化ジェランガム、ダイユータンガム、カラギーナン及びキサンタンガム及びそれらの塩が挙げられ、好ましい例としては脱アシル化ジェランガムまたはその塩が挙げられる。本開示において脱アシル化ジェランガムとは、１−３結合したグルコース１−４結合したグルクロン酸、１−４結合したグルコース及び１−４結合したラムノースの４分子の糖を構成単位とする直鎖状の高分子多糖類であり、以下の一般式（Ｉ）において、Ｒ₁、Ｒ₂が共に水素原子であり、ｎは２以上の整数で表わされる多糖類である。ただし、Ｒ₁がグリセリル基を、Ｒ₂がアセチル基を含んでいてもよいが、アセチル基及びグリセリル基の含有量は、好ましくは１０％以下であり、より好ましくは１％以下である。

【0021】

【化1】

【0022】

前記特定化合物により塑性流体となるメカニズムは様々であるが、脱アシル化ジェランガムの場合について記載すると、脱アシル化ジェランガムは、液体と混合した際に、液体中の金属イオン（例えば、カルシウムイオン）を取り込み、当該金属イオンを介した不定形な構造体を形成し、粒子を浮遊させる。脱アシル化ジェランガムから調製される塑性流体である液体の粘度は、一又は複数の実施形態において、８ｍＰａ・ｓ以下であり、好ましくは４ｍＰａ・ｓ以下であり、粒子の回収のしやすさの点を考慮すると、より好ましくは２ｍＰａ・ｓ以下である。しかし、塑性流体である液体の粘度は、特に制限されず、上記値より大きくてもよい。

【0023】

塑性流体とするための前記特定化合物は、化学合成法でも得ることができるが、当該化合物が天然物である場合は、当該化合物を含有している各種植物、各種動物、各種微生物から慣用技術を用いて抽出及び分離精製することにより得るのが好適である。その抽出においては、水や超臨界ガスを用いると当該化合物を効率よく抽出できる。例えば、ジェランガムの製造方法としては、発酵培地で生産微生物を培養し、菌体外に生産された粘膜物を通常の精製方法にて回収し、乾燥、粉砕等の工程後、粉末状にすればよい。また、脱アシル化ジェランガムの場合は、粘膜物を回収する際にアルカリ処理を施し、１−３結合したグルコース残基に結合したグリセリル基とアセチル基を脱アシル化した後に回収すればよい。精製方法としては、例えば、液−液抽出、分別沈澱、結品化、各種のイオン交換クロマトグラフィー、セファデックスＬＨ−２０等を用いたゲル漏過クロマトグラフィー、活性炭、シリカゲル等による吸着クロマトグラフィーもしくは薄層クロマトグラフィーによる活性物質の吸脱着処理、あるいは逆相カラムを用いた高速液体クロマトグラフィー等を単独あるいは任意の順序に組み合わせ、また反復して用いることにより、不純物を除き精製することができる。ジェランガムの生産微生物の例としてはこれに限定されるものではないが、スフィンゴモナス・エロディア（ＳＰｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ ｅｌｏｄｅａ）及び当該微生物の遺伝子を改変した微生物が挙げられる。

【0024】

脱アシル化ジェランガムの場合、市販のもの、例えば、三品株式会社製「ＫＥＬＣＯＧＥＬ（シーピー・ケルコ社の登録商標）ＣＧーＬＡ」、三栄源エフ・エフ・アイ株式会社製「ケルコゲル（シーピー・ケルコ社の登録商標）」等を使用することができる。また、ネイティブ型ジェランガムとして、三栄源エフ・エフ・アイ株式会社製「ケルコゲル（シーピー・ケルコ社の登録商標）ＨＴ」等を使用することができる。

【0025】

［塑性流体における特定化合物の濃度］
塑性流体中の前記特定化合物の濃度（質量／容量％、以下単に％で示す）は、特定化合物の種類に依存し、静置状態において貯留ボトルの細胞を沈降させずに保持できる塑性流体とすることのできる範囲で適宜設定することができるが、通常０．０００５％〜１．０％、好ましくは０．００１％〜０．４％、より好ましくは０．００５％〜０．１％、さらに好ましくは０．００５％〜０．０５％である。例えば、脱アシル化ジェランガムの場合、０．００１％〜１．０％、好ましくは０．００３％〜０．５％、より好ましくは０．００５％〜０．１％、更に好ましくは０．０１％〜０．０５％、更により好ましくは０．０２％〜０．０５％である。キサンタンガムの場合、０．００１％〜５．０％、好ましくは０．０１％〜１．０％、より好ましくは０．０５％〜０．６％、更により好ましくは０．３％〜０．６％である。κ−カラギーナンおよびローカストビーンガム混合系の場合、０．００１％〜５．０％、好ましくは０．００５％〜１．０％、より好ましくは０．０１％〜０．１％、最も好ましくは０．０３％〜０．０５％である。ネイティブ型ジェランガムの場合、０．０５％〜１．０％、好ましくは０．０５％〜０．１％である。

【0026】

上記多糖類を複数種（好ましくは２種）組み合わせて使用する場合、当該多糖類の濃度は、静置状態において液体中の細胞を沈降させずに保持できる塑性流体とすることのできる範囲で適宜設定することができる。例えば、ＤＡＧ又はその塩と、ＤＡＧ又はその塩以外の多糖類との組合せを用いる場合、ＤＡＧ又はその塩の濃度としては０．００５〜０．０２％、好ましくは０．０１〜０．０２％が例示され、ＤＡＧ又はその塩以外の多糖類の濃度としては、０００５〜０．４％、好ましくは０．１〜０．４％が例示される。具体的な濃度範囲の組合せとしては、以下が例示される。
ＤＡＧ又はその塩：０．００５〜０．０２％（好ましくは０．０１〜０．０２％）
ＤＡＧ以外の多糖類
キサンタンガム：０．１〜０．４％
アルギン酸ナトリウム：０．１〜０．４％
ロ一カトビーンガム：０．１〜０．４％
メチルセルロース：０．１〜０．４％（好ましくは０．２〜０．４％）
カラギーナン：０．０５〜０．１％
ダイユータンガム：０．０５〜０．１％
なお該濃度は、以下の式で算出できる。
濃度（％）＝特定化合物の質量（ｇ）／液体の容量（ｍｌ）×１００

【0027】

特定化合物は、化学合成法によってさらに別の誘導体に変えることもでき、そのようにして得た当該誘導体も、本開示にかかる細胞培養方法において有効に使用できる。具体的には、脱アシル化ジェランガムの場合、前記一般式（Ｉ）で表される化合物のＲ₁及び／又はＲ₂に当たる水酸基を、Ｃ１−３アルコキシ基、Ｃ１−３アルキルスルホニル基、グルコースあるいはフルクトースなどの単糖残基、スクロース、ラクトースなどのオリゴ糖残基、グリシン、アルギニンなどのアミノ酸残基などに置換した誘導体も本発明に使用できる。また、１−ｅｔｈｙｌ−３−（３−ｄｉ−ｍｅｔｈｙｌａｍｉｎｏｐｒｏｐｙＩ）ｃａｒｂｏｄｉｉｍｉｄｅ（ＥＤＣ）等のクロスリンカーを用いて当該化合物を架橋することもできる。

【0028】

特定化合物或いはその塩は製造条件により任意の結品形として存在することができ、任意の水和物として存在することができるがこれら結品形や水和物及びそれらの混合物も本発明の範囲に含有される。また、アセトン、エタノール、テトラヒドロフランなどの有機溶媒を含む溶媒和物として存在することもあるが、これらの形態はいずれも本開示の範囲に含有される。

【0029】

特定化合物は、環内或いは環外異性化により生成する互変異性体、幾何異性体、互変異性体若しくは幾何異性体の混合物、又はそれらの混合物の形で存在しもよい。本開示において前記特定化合物は、異性化により生じるか否かに拘わらず、不斉中心を有する場合は、分割された光学異性体或いはそれらを任意の比率で含む混合物の形で存在してよい。

【0030】

塑性流体である液体は、一又は複数の実施形態において、前記特定化合物の溶液又は分散液を液体培地に添加することにより製造できるが、必要に応じて、特定化合物がイオンを介して集合するため、あるいは、特定化合物が三次元のネットワークを形成するため、金属イオンを添加することが好ましい。金属イオンとしては、一又は複数の実施形態において、２価の金属イオンが挙げられる。２価の金属イオンとしては、一又は複数の実施形態において、カルシウムイオン、マグネシウムイオン、亜鉛イオン、鉄イオン及び銅イオン等が挙げられる。金属イオンの濃度は、一又は複数の実施形態において、０．１ｍＭ〜３００ｍＭ、０．５ｍＭ〜１００ｍＭ、又は０．５ｍＭ〜１０ｍＭである。

【0031】

［塑性流体の降伏値］
本開示に用いる塑性流体の降伏値は、静置状態において粒子を沈降させずに保持できる程度であることが好ましい。本開示で使用する塑性流体の降伏値は、粒子を保持する観点から、０．０２Ｐａ以上が好ましく、０．０３Ｐａ以上がより好ましい。本開示で使用する塑性流体の降伏値は、例えば、０．２Ｐａ以下又は０．１Ｐａ以下である。

【0032】

［自動分注装置］
本開示に係る分配・分注方法は、自動分注装置による分注に好ましく適用できる。本開示に係る分配・分注方法によれば、一又は複数の限定されない実施形態において、自動分注装置により分注されるアリコートの分注量の偏り、粒子の密度の偏り、及び粒子が細胞である場合における細胞の生存率の偏りの少なくとも１つを抑制しうる。
本開示において自動分注装置は、特に制限されないが、貯留部（リザーバー）から液管及びポンプを含むポンプユニットにて吸引してバイアルやマルチウェルプレートに吐出するタイプや、吸引・吐出が可能な分注ピペットヘッドによって貯留部からマルチウェルプレートに分注するタイプが挙げられる。
本開示の自動分注装置は、一又は複数の実施形態において、ポンプユニット及び分注ピペットヘッド等を制御する制御部を備える。制御部は、一又は複数の実施形態において、貯留部内に貯留された粒子を分散させた塑性流体を、複数の容器に定量分注するように、ポンプユニット及び分注ピペットヘッド等を制御することを含む。

【0033】

［製造方法］
本開示は、その他の態様として、粒子と前記粒子の容器とを備える製品の製造方法であって、前記粒子を分散させた塑性流体の貯留部から複数の前記容器へ前記塑性流体を分注することを含む、製造方法に関する。
本開示の製造方法は、以下のように言い換えることができる。すなわち、本開示は、その他の態様として、液体と前記液体の容器とを備える製品の製造方法であって、前記液体の貯留部から複数の前記容器へ前記液体を分注することを含み、前記液体は、粒子を含む塑性流体である、製造方法に関する。
本開示の製造方法によれば、一又は複数の実施形態において、粒子の量（又は濃度）及び／又は液体の量が実質的に均一な製品を製造することができる。本開示の製造方法によれば、一又は複数の実施形態において、自動分注装置に配置された貯留部内の前記塑性流体又は液体の残量が、分注開始前の２０％以下、１５％以下、１０％以下、５％以下、４％以下、３％以下、２％以下又は１％以下になった場合であっても、分注開始時に容器に分注した粒子の量（又は濃度）及び／又は液体の量と実質的に同じ量で分注することができる。また、自動分注装置に配置された貯留部内の前記塑性流体又は液体の残量が、分注量以下となった場合は、残りすべてを１つの容器に分注できる。
本開示の製造方法は、一又は複数の実施形態において、複数の容器に、粒子を分散させた塑性流体を定量に分注することを含む。本開示の製造方法における特に限定されない一又は複数の実施形態において、自動分注装置に配置された貯留部内の前記塑性流体又は液体を前記複数の容器に定量に分注することを含む。本開示の製造方法は、一又は複数の実施形態において、定量に分注された前記製品を、自動分注装置を用いて複数製造すること含む。
本開示において「定量に分注」としては、粒子の量（又は濃度）及び／又は液体の量が実質的に同じとなるように、複数の容器に分注することを含む。本開示において「粒子の量（又は濃度）が実質的に同じ」とは、所望の粒子の量（又は濃度）（Ｘ_ｐ）に対する容器に分注された粒子の量（又は濃度）（Ｙ_ｐ）に対する相対誤差（｛（Ｘ_ｐ−Ｙ_ｐ）／Ｘ_ｐ｝×１００）が、±１５％以下、±１４％以下、±１３％以下、±１２％以下、±１１％以下、±１０％以下、±９％以下、±８％以下、±７％以下、±６％以下、±５％以下、±４％以下、±３％以下、±２％以下、±１％以下又は±０．５５％以下であることをいう。本開示において「液体の量が実質的に同じ」とは、所望の量（Ｘ_ｌ）と容器に分注された液体の量（Ｙ）に対する相対誤差（｛（Ｘ_ｌ−Ｙ_ｌ）／Ｘ_ｌ｝×１００）が、±１０％以下、±９％以下、±８％以下、±７％以下、±６％以下、±５％以下、±４％以下、±３％以下、±２％以下、±１％以下又は±０．５５％以下であることをいう。
本開示における「複数の容器（又は製品）」としては、特に限定されるものではないが、５０以上、６０以上、７０以上、８０以上、９０以上又は１００以上である。
本開示の製造方法で製造されうる製品としては、培養細胞、リポソーム、又は薬包粒子などが分注されたバイアル製品が挙げられ、その他、化粧品、及び医薬品などが挙げられる。

【0034】

［組成物］
本開示は、その他の態様として、本開示に係る分配方法又は製造方法における分注に使用するための組成物であって、粒子が分散する液体又は粒子を分散させる液体を塑性流体とするための物質を含む組成物に関する。
本開示に係る組成物は、固体や粉体状であってもよく、液体の状態であってもよい。
前記「塑性流体とするための物質」としては、前述の特定化合物が使用できる。
本開示に係る組成物は、さらに、その他の成分、すなわち、前記物質（特定化合物）以外の成分を含んでいてもよい。
その他の成分としては、粒子が細胞の場合、細胞培養培地成分や細胞凍結保存液の成分が挙げられる。細胞培養培地成分は前記細胞に応じて適宜選択できる。本開示において細胞凍結保存液は、細胞凍結保存用培地であってもよい。凍結保存液の成分としては、細胞凍結防止剤、細胞内凍害防止剤、細胞外凍害防止剤などが含まれうる。
よって、本開示は、その他の態様として、細胞凍結保存液と、前記液体を塑性流体とするための物質とを含む組成物に関する。本開示に係る組成物の一又は複数の実施形態として、細胞凍結保存液に「塑性流体とするための物質」が溶解して塑性流体となった細胞凍結保存液が挙げられる。また、本開示に係る組成物のその他の一又は複数の実施形態として、細胞凍結保存液と「塑性流体とするための物質」とが互いに混ざらないような形態で保持されている、細胞凍結保存液と「塑性流体とするための物質」との組み合わせが挙げられる。

【0035】

その他の成分が、細胞凍結保存液の成分である場合、特定化合物がイオンを介して集合するため、あるいは、特定化合物が三次元のネットワークを形成するため、金属イオンを添加することが好ましい。金属イオンとしては、一又は複数の実施形態において、２価の金属イオンが挙げられる。２価の金属イオンとしては、一又は複数の実施形態において、カルシウムイオン、マグネシウムイオン、亜鉛イオン、鉄イオン及び銅イオン等が挙げられる。金属イオンの濃度は、一又は複数の実施形態において、０．１ｍＭ〜３００ｍＭ、０．５ｍＭ〜１００ｍＭ、又は０．５ｍＭ〜１０ｍＭである。

【0036】

本開示はさらに以下の限定されない一又は複数の実施形態に関する。
〔１〕 粒子の分配方法であって、
前記粒子を塑性流体中に分散させること、及び、
前記粒子を含む塑性流体を分注することを含む、方法。
〔２〕 前記分注は、自動分注装置によって行われる、〔１〕に記載の方法。
〔３〕 前記粒子が細胞である、〔１〕又は〔２〕に記載の方法。
〔４〕 粒子と前記粒子の容器とを備える製品の製造方法であって、
前記粒子を分散させた塑性流体の貯留部から複数の前記容器へ前記塑性流体を分注することを含む、製造方法。
〔５〕 前記分注は、自動分注装置によって行われる、〔４〕に記載の製造方法。
〔６〕 前記粒子が細胞である、〔４〕又は〔５〕に記載の製造方法。
〔７〕 〔１〕から〔３〕のいずれかに記載の方法、又は、〔４〕から〔６〕のいずれかに記載の製造方法における分注に使用するための組成物であって、粒子が分散する液体又は粒子を分散させる液体を塑性流体とするための物質を含む組成物。
〔８〕 細胞凍結保存液と、前記液体を塑性流体とするための物質とを含む組成物。

【0037】

以下、実施例により本開示をさらに詳細に説明するが、これらは例示的なものであって、本開示はこれら実施例に制限されるものではない。

【実施例】

【0038】

貯留部１の液溜ボトル内の液体を管路２及びポンプ３を介して複数のバイアル瓶４に分注する自動分注装置（図１）を準備した。この自動分注装置を用いて、バイアル瓶に分注される粒子（ビーズ又は細胞）を評価した。

【0039】

［評価モデル］
自動分注装置によって分注された製造された培養細胞のバイアル製品の品質を評価するモデルとして下記式（Ｉ）を用いた。下記式（Ｉ）は、１つのバイアル瓶の中の有効な細胞数の指標Ｙを求める式である（図２参照）。
Ｙ＝（Ｖ／Ｖ_ｔ）_{ｔｓ，Ｆｓ}・（Ｄ／Ｄ_０）_{ｔｓ，Ｆｓ}・（Ｐ／Ｐ_０） （Ｉ）

【0040】

式（Ｉ）におけるパラメータは、ｔｓとＦｓである。ｔｓは、貯留部の液溜ボトルにおいて分注開始から吸引されるまでの時間（以下、「滞留時間」ともいう。）（ｈ）を示し、Ｆｓは、液溜ボトルの振とう速度（ｓ^−１）を示す。
（Ｖ／Ｖ_ｔ）_{ｔｓ，Ｆｓ}は、分注量の相対値である。Ｖ_ｔは設定した分注量、Ｖは分注されたアリコートの量である。
（Ｄ／Ｄ_０）_{ｔｓ，Ｆｓ}は、密度の相対値である。Ｄ_０は分注開始時（ｔｓ＝０、分散状態）のアリコートの密度（粒子数（又は細胞数）／ｍｌ）であり、Ｄは分注されたアリコートの密度である。
（Ｐ／Ｐ_０）は、細胞の生存率であって下記式で算出される。
（Ｐ／Ｐ_０）＝α_{ｔｓ，Ｆｓ}ｘβ_{ｔｓ，Ｆｓ}ｘγ_{ｔｓ，Ｆｓ}
γ_{ｔｓ，Ｆｓ}＝ｎ_１／ｎ_０
β_{ｔｓ，Ｆｓ}＝ｎ_２／ｎ_１
α_{ｔｓ，Ｆｓ}＝ｎ_３／ｎ_２
ｎ_０：初期生存細胞数
ｎ_１：分注後の生存細胞数
ｎ_２：凍結・復温（解凍）後の生存細胞数
ｎ_３：播種２４時間後の接着細胞数
γは、撹拌前後での生存率を示す。
βは、凍結・復温（解凍）前後での生存率を示す。
αは、播種前と播種２４時間後とでの接着細胞率を示す。

【0041】

［試験例１：濃度の均一性］
液溜ボトルにビーズと凍結保存液（商品名：ＳＴＥＭ−ＣＥＬＬＢＡＮＫＥＲ^（Ｒ） ＧＭＰ ｇｒａｄｅ、ＺＥＮＯＡＱ製）を入れ、ビーズ濃度１．０×１０^６ビーズ／ｍｌのビーズ懸濁液１００ｍｌを作製した。オートピペッターと５０ｍｌピペットを用いてボトル内を急速で１０回ピペッティングし濃度を均一にした。濃度を均一にしたボトルを図１の自動分注装置の貯留部に設置し、液管の先端をボトルに差し込み、液管の先端の位置を調整した。その後、自動分注装置で凍結バイアル１００本に懸濁液を１ｍｌずつ分注した。オートセルカウンターを用いて分注したバイアル内のビーズ濃度を測定した。図３参照。

【0042】

さまざまな振とう速度（Ｆｓ）と滞留時間（ｔｓ）で液上面から５ｍｍ下の位置でサンプリングした時の（Ｄ／Ｄ₀）を図４に示す。
図４に示すとおり、Ｆｓ＝０すなわち撹拌がないと時間の経過とともに液上面から５ｍｍの位置のサンプルのビーズ密度が低下している。同様の傾向は、Ｆｓ＝０．１及び０．４（ｓ^-1）の振とう速度でも生じた。試験例１の条件では、分注されるバイアルのサンプル密度を一定に維持するためには、振とう速度Ｆｓ＝０．９ｓ^-1以上の撹拌が必要であることが分かった。

【0043】

振とう速度Ｆｓ＝０、０．９、及び１．６ｓ^-1で撹拌して分注した１００本のバイアルについてそれぞれ（Ｄ／Ｄ₀）を算出した。その結果を図５に示す。
図５に示すとおり、Ｆｓ＝０すなわち撹拌がない場合、サンプリングの後半のバイアルでビーズ濃度が著しく低下していた（円囲み部分）。一方、振とう速度Ｆｓ＝０．９ｓ^-1以上の撹拌では、１００本のバイアルでビーズ濃度が一定に維持されていた。

【0044】

［試験例２：分注量の均一性］
液溜ボトルを振とうしながらポンプ吸引できるようにした自動分注装置で１００ｍｌの凍結保存液（商品名：ＳＴＥＭ−ＣＥＬＬＢＡＮＫＥＲ^（Ｒ） ＧＭＰ ｇｒａｄｅ、ＺＥＮＯＡＱ製）を１０２本のバイアルに約３０分かけて分注した。なお、液溜ボトルからの吸引は、液管の先端をボトルの底面から５ｍｍ上の位置に固定して行った。
分注された１０２本のバイアルについて分注量を測定した。その結果を図６に示す。
図６（ＧＧ（−））が示すとおり、振とう速度Ｆｓ＝０、及び０．９ｓ^-1の場合はバイアル中の分注量が最初から最後までほぼ一定だった。しかしながら、振とう速度Ｆｓ＝５．８ｓ^-1の場合はサンプリングの後半でバイアル分注量が著しく低下した（円囲み部分）。
したがって、振とう速度が早すぎると（Ｆｓ＝５．８ｓ^-1）、泡が液管に吸い込まれることにより後半の分注量が低減する可能性が示された。

【0045】

試験例１及び２からは、液体保存液のような通常の液体の場合、ビーズや細胞といった粒子の濃度をバイアル間で一定にさせるためにはある程度以上の速さの撹拌が必要であるが、バイアルに注入される分注量をバイアル間で一定にさせるためには撹拌の速さが速すぎないことが必要であることが確認された。

【0046】

つぎに、液溜ボトルに、化合物Ａ（脱アシル化ジェランガム、日産化学社製）を添加した上記凍結保存液（化合物Ａの濃度：０．０６％）を入れて、振とうなし（Ｆｓ＝０）で行った以外は、上記と同様に分注を行い、分注量を測定した。その結果を図６に示す。
図６（ＧＧ（＋））が示すとおり、化合物Ａを添加した場合には、つまり、塑性流体とした凍結保存液を用いることで最後（１０１本目）まで定量に分注することができた。また、図６が示すとおり、化合物Ａを添加した塑性流体とした凍結保存液を用いることで（ＧＧ（＋））、化合物Ａを添加しない（塑性流体ではない）場合（ＧＧ（−））と比較して、分注時の定量性が向上した。

【0047】

［試験例３：細胞の生存率］
試験例１及び２のビーズに替えて、Ｔ−２２５フラスコで培養したｈｉＰＳ細胞（Ｄ２株、ＳｔｅｍＦｉｔ培地）を使用した（図７参照）。培養後分注前、分注後凍結前、凍結復温後に生細胞をカウントし、凍結復温後の培養２４時間後に接着した細胞をカウントし、生存率（Ｐ／Ｐ₀）を算出した。
所定の滞留時間ｔｓ（１ｈ又は４ｈ）中に受けた振とうの時間が生存率（Ｐ／Ｐ₀）に及ぼす影響を確認した。その結果を図８に示す。

【0048】

本試験例でいうｔｓは、凍結保存液で細胞懸濁液を作製してから凍結するまでの時間をいう。図８において、ｔｓ＝１ｈのグラフで、振とう時間が０ｈ及び０．５ｈとは、振とう無し及び振とう３０分でサンプリング（分注）された、ｔｓ＝１ｈの時点で凍結されたことを意味する。ｔｓ＝４ｈのグラフも同様である。
図８に示すとおり、例えば、分注に４時間かかった場合、最初に分注されたアリコートと１〜４時間後に分注されたアリコートでは細胞の生存率（Ｐ／Ｐ₀）が大きく異なることがわかる。すなわち、同じロットであっても、分注工程で振とうに晒される時間に応じて細胞の生存率が著しく異なるバイアル（製品）が混在することが示された。

【0049】

［塑性流体の作製］
２ｍＭとなるように塩化カルシウムを加えた凍結保存液（商品名：ＳＴＥＭ−ＣＥＬＬＢＡＮＫＥＲ^（Ｒ） ＧＭＰ ｇｒａｄｅ、ＺＥＮＯＡＱ製）９２．５ｍｌを液溜ボトルに入れ、シリンジと注射針を用いて濃度が０．０６％になるように化合物Ａ（脱アシル化ジェランガム、日産化学社製）７．５ｍｌを入れて転倒混和させ、一晩冷蔵庫で保管した。

【0050】

［試験例４：濃度の均一性（塑性流体）］
液溜ボトルにビーズと化合物Ａ入りの凍結保存液を入れ、ビーズ濃度１．０×１０⁶ビーズ／ｍｌのビーズ懸濁液１００ｍｌを作製した。オートピペッターと５０ｍｌピペットを用いてボトル内を急速で１０回ピペッティングし濃度を均一にした。濃度を均一にしたボトルを上記の自動分注装置の貯留部に設置し、液管の先端をボトルに差し込み、液管の先端の位置を液上面から５ｍｍ下の位置に調整した。その後、自動分注装置で凍結バイアル１００本に懸濁液を１ｍｌずつ分注した。オートセルカウンターを用いて分注したバイアル内のビーズ濃度を測定した。図９参照。

【0051】

振とうなし（Ｆｓ＝０）で、凍結保存液に化合物Ａを添加した場合と添加しない場合とで、分注したバイアルについてそれぞれビーズ濃度（Ｄ／Ｄ₀）を算出した。その結果を図１０に示す。
図１０に示すとおり、Ｆｓ＝０すなわち振とうしない、かつ、化合物Ａを添加しない場合、サンプリングの後半のバイアルでビーズ濃度（Ｄ／Ｄ₀）が著しく低下していた。一方、振とうしない場合であっても、化合物Ａを添加した場合には、ビーズ濃度（Ｄ／Ｄ₀）の低下が抑制された。

【0052】

［試験例５：細胞の生存率（塑性流体）］
液溜ボトルの振とうを行わず（Ｆｓ＝０）、ＣａＣｌ_２及び化合物Ａを用いて凍結保存液を塑性流体（ＣａＣｌ_２：２ｍＭ、化合物Ａ：０．０６％）とした他は、試験例３と同様に所定のｔｓ（０〜４ｈ）で分注、凍結、復温（解凍）、培養を行った。撹拌前後での生存率γ（％）、凍結・復温（解凍）前後での生存率β（％）、再培養播種前２４時間後での接着細胞率α（％）を算出し、さらに、再培養時の倍加速度μ（ｈ）を測定した。それらの結果を、化合物Ａを用いない場合（塑性流体としない場合）と比較して図１１に示す。
また、再培養の様子を観察して、化合物Ａを用いて凍結保存液を塑性流体とした場合と、化合物Ａを用いない場合（塑性流体としない場合）とで比較した。その結果を図１２に示す。

【0053】

図１１及び１２に示すとおり、塑性流体とした凍結保存液を用いた場合であっても、上記パラメータ（α、β、γ、μ）は塑性流体としない凍結保存液を用いた場合と同様であり、塑性流体とした場合の細胞毒性は認められなかった。

【0054】

以上のことから、細胞を分散させた凍結保存液を分注する際に塑性流体を用いた場合には、撹拌・振とうを必要とせずに分注されるアリコートの分注量及び細胞密度の偏りを抑制でき、また、細胞の品質（生存率など）を維持しつつ偏りを抑制できる分注が可能となることが認められた。

【0055】

［試験例６：細胞の生存率（塑性流体）］
下記表１に示す凍結保存液、ＣａＣｌ_２及び化合物Ａ（脱アシル化ジェランガム、日産化学社製）を用いて、上記塑性流体の作製と同様の手順で塑性流体（ＳＣＢ−ＧＧ（＋）及びＳＳ−ＧＧ（＋））を作製した。

【表1】

【0056】

ＳＣＢ−ＧＧ（＋）及びＳＳ−ＧＧ（+）にｈｉＰＳ細胞（１３８３Ｄ２株）を分散させ、液溜ボトルの振とうを行わず（Ｆｓ＝０）、所定のｔｓ（０〜４ｈ）で分注、凍結、復温（解凍）、及び培養を行った。分注前後での生存率γ（％）、凍結・復温（解凍）前後での生存率β（％）、再培養播種前２４時間後での接着率α（％）、及び細胞ポテンシャルＰ／Ｐ₀（＝α×β×γ）を算出した。その結果を図１３に示す。
化合物Ａを用いない場合（塑性流体としない場合、ＳＣＢ−ＧＧ（−）及びＳＳ−（ＧＧ（−）））を使用した以外は、上記と同様に行った。その結果を図１３に示す。なお、化合物Ａを用いない場合（ＳＣＢ−ＧＧ（−）及びＳＳ−（ＧＧ（−）））は、細胞の濃度を均一とするために、液溜ボトルの振とうしながら（Ｆｓ＝０．９０ ｓ^−１）分注を行った。

【0057】

図１３に示すとおり、いずれの凍結保存液であっても、塑性流体にしたほうが、分注及び復温等により生じうる細胞ポテンシャルの低下が抑制される傾向が確認された。

【図1】

【図2】

【図3】

【図4】

【図5】

【図6】

【図7】

【図8】

【図9】

【図10】

【図11】

【図12】

【図13】