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(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】公開特許公報(A)
(11)【公開番号】P2023064788
(43)【公開日】2023-05-12
(54)【発明の名称】Ｔ細胞の評価方法及びＴ細胞評価用の組成物
(51)【国際特許分類】
C12Q 1/02 20060101AFI20230502BHJP
C12N 5/0783 20100101ALI20230502BHJP
C12Q 1/6813 20180101ALI20230502BHJP
C12N 15/12 20060101ALI20230502BHJP
C12M 1/00 20060101ALI20230502BHJP
C12M 1/34 20060101ALI20230502BHJP
G01N 33/53 20060101ALI20230502BHJP
C12N 15/115 20100101ALN20230502BHJP
C07K 16/18 20060101ALN20230502BHJP
C12N 15/13 20060101ALN20230502BHJP
【ＦＩ】
C12Q1/02
C12N5/0783 ZNA
C12Q1/6813 Z
C12N15/12
C12M1/00 A
C12M1/34 F
C12M1/34 Z
G01N33/53 M
C12N15/115 Z
C07K16/18
C12N15/13
【審査請求】未請求
【請求項の数】10
【出願形態】ＯＬ
(21)【出願番号】P 2021175126
(22)【出願日】2021-10-27
(71)【出願人】
【識別番号】504132272
【氏名又は名称】国立大学法人京都大学
(71)【出願人】
【識別番号】000003300
【氏名又は名称】東ソー株式会社
(74)【代理人】
【識別番号】110001047
【氏名又は名称】弁理士法人セントクレスト国際特許事務所
(72)【発明者】
【氏名】金子 新
(72)【発明者】
【氏名】河合 洋平
(72)【発明者】
【氏名】山口 佳奈
(72)【発明者】
【氏名】熊木 勇一
(72)【発明者】
【氏名】二見 達
【テーマコード（参考）】
4B029
4B063
4B065
4H045
【Ｆターム（参考）】
4B029AA23
4B029BB11
4B029CC01
4B029FA15
4B029GA03
4B029GA08
4B029GB06
4B063QA20
4B063QQ08
4B063QQ28
4B063QQ52
4B063QQ62
4B063QQ79
4B063QQ96
4B063QR08
4B063QR35
4B063QR42
4B063QR48
4B063QR55
4B063QR77
4B063QS03
4B063QS25
4B063QS34
4B063QS36
4B063QS39
4B063QX02
4B065AA94X
4B065AC20
4B065CA46
4H045AA11
4H045AA20
4H045AA30
4H045BA10
4H045CA40
4H045DA76
4H045EA65
4H045FA74
(57)【要約】 （修正有）
【課題】新たな指標によってＴ細胞の品質を評価できるＴ細胞の評価方法を提供すること。
【解決手段】Ｔ細胞における、下記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子の発現を検出する検出工程と、前記遺伝子の発現を指標としてＴ細胞の品質を評価する評価工程と、を含む、Ｔ細胞の評価方法。（Ｉ）特定の７７種の配列のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子、（ＩＩ）特定の７７種の配列のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子、（ＩＩＩ）特定の７７種の配列のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
【選択図】なし
【解決手段】Ｔ細胞における、下記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子の発現を検出する検出工程と、前記遺伝子の発現を指標としてＴ細胞の品質を評価する評価工程と、を含む、Ｔ細胞の評価方法。（Ｉ）特定の７７種の配列のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子、（ＩＩ）特定の７７種の配列のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子、（ＩＩＩ）特定の７７種の配列のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
【選択図】なし
【特許請求の範囲】
【請求項1】
Ｔ細胞における、下記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子の発現を検出する検出工程と、
前記遺伝子の発現を指標としてＴ細胞の品質を評価する評価工程と、
を含む、Ｔ細胞の評価方法。
（Ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
前記遺伝子の発現を指標としてＴ細胞の品質を評価する評価工程と、
を含む、Ｔ細胞の評価方法。
（Ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
【請求項2】
前記検出工程が、前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子の発現産物に特異的に結合するプローブ分子を用いて前記発現産物を検出する工程である、請求項１に記載の方法。
【請求項3】
前記発現産物が、前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子のうちのいずれか１つにコードされるポリペプチドであり、かつ、前記プローブ分子が、前記ポリペプチドに特異的に結合する抗体及び／又はアプタマーである、請求項２に記載の方法。
【請求項4】
前記評価工程が、前記遺伝子の発現を指標としてＴ細胞の増殖能を評価する工程である、請求項１～３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項5】
前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子が、下記（Ｉ’）～（ＩＩＩ’）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子である、請求項１～４のいずれか一項に記載の方法。
（Ｉ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
（Ｉ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
【請求項6】
前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子が、下記（Ｉ’）～（ＩＩＩ’）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子である、請求項１～５のいずれか一項に記載の方法。
（Ｉ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
（Ｉ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
【請求項7】
請求項２～６のいずれか一項に記載の方法に用いるための試薬であり、下記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子の発現産物に特異的に結合するプローブ分子を含有する、Ｔ細胞評価用試薬。
（Ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
（Ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
【請求項8】
前記発現産物が、前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子のうちのいずれか１つにコードされるポリペプチドであり、かつ、前記プローブ分子が、前記ポリペプチドに特異的に結合する抗体及び／又はアプタマーである、請求項７に記載の試薬。
【請求項9】
前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子が、下記（Ｉ’）～（ＩＩＩ’）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子である、請求項７又は８に記載の試薬。
（Ｉ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
（Ｉ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
【請求項10】
前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子が、下記（Ｉ’）～（ＩＩＩ’）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子である、請求項７～９のいずれか一項に記載の試薬。
（Ｉ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
（Ｉ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、Ｔ細胞の評価方法及びＴ細胞評価用の組成物に関する。
【背景技術】
【0002】
悪性腫瘍等のがんや慢性難治性感染症などの疾患に対する新しい治療方法として、当該疾患に関連する抗原特異的な細胞傷害性Ｔ細胞（ＣＴＬ：Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ Ｔ Ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ）を用いた細胞免疫療法が知られている。近年では、がん治療に有効な手段として、患者からＴ細胞（未改変Ｔ細胞）を採取し、がん攻撃能力が高まるように遺伝子改変して遺伝子改変Ｔ細胞とした後、当該遺伝子改変Ｔ細胞を元の患者に戻してがんを治療するがん免疫療法が期待を集めている。
【0003】
また、患者から採取したＴ細胞では、細胞疲弊が起こりやすかったり、増殖培養（又は拡大培養）が困難であるといった課題を有していることから、用いることができる細胞数に制限のないｉＰＳ細胞に由来するＴ細胞を利用した、がん免疫療法の開発も進められている。例えば、特許文献１には、ＣＤ４＋ＣＤ８＋Ｔ細胞を、インターロイキン７及びＴＣＲ（Ｔ細胞受容体）活性化剤を含む培地で培養し、ＣＤ８α＋β＋ＣＴＬを誘導する方法が記載されている。
【0004】
ｉＰＳ細胞に由来するＴ細胞では、ｉＰＳ細胞株や培養条件等によって品質が異なるため、得られたＴ細胞においては、その品質を評価して前記がん免疫療法に適したものを選択する必要がある。また、得られた遺伝子改変Ｔ細胞についても、その品質を評価して目的の遺伝子改変Ｔ細胞として適したものを選択する必要がある。このようなＴ細胞の品質評価項目としては、具体的に、例えば、Ｔ細胞の各段階で発現する分化マーカーの分析、ＴＣＲ刺激後に産生されるサイトカインの分析、増殖能、細胞傷害活性、動物実験でのがん細胞抑制活性等が挙げられる。Ｔ細胞の品質は、これらの項目によって総合的に評価されるが、かかる評価は、煩雑であったり長期間を要する場合が多い。さらに、評価にかかるコストも高額なことから、より簡便かつ短期間でＴ細胞の品質を評価できる方法が求められている。
【0005】
このようなＴ細胞の品質評価方法としては、例えば、ＰＤ－１やｌａｇ３等の発現量とＴ細胞の疲弊化との間に関係があることが見出されているため（非特許文献１）、これらのタンパク質をＴ細胞の疲弊化マーカーとして、その発現量によってＴ細胞の疲弊化を評価する方法が挙げられる。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0006】
【特許文献1】国際公開第２０１８／１３５６４６号
【非特許文献】
【0007】
【非特許文献1】Ｄａｎｉｅｌ Ｌ．Ｂａｒｂｅｒら，Ｎａｔｕｒｅ，４３９，２００６年，ｐ．６８２－６８７
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0008】
ｉｎ ｖｉｔｒｏにおいて、上記の疲弊化マーカーは、長期間培養によりかなりＴ細胞の疲弊化が進んでから発現する。そのため、ｉＰＳ細胞から分化誘導した直後のＴ細胞等、比較的若いＴ細胞の品質を評価するためには不向きであることを本発明者らは見出した。従来、このように比較的若いＴ細胞の品質も評価できるマーカーは特定されていない。
【0009】
本発明は、前記従来技術の有する課題に鑑みてなされたものであり、新たな指標によって比較的若いＴ細胞の品質も評価できるＴ細胞の評価方法、及びそれに用いるＴ細胞評価用試薬を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【0010】
本発明者らは前記課題を解決すべく鋭意検討を重ねた結果、増殖能が高いＴ細胞（高品質Ｔ細胞）及び増殖能が比較的低いＴ細胞（低品質Ｔ細胞）についてセクレトーム（ｓｅｃｒｅｔｏｍｅ）解析及びトランスクリプトーム（ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｏｍｅ）解析を行なった。これらの解析で得られたデータについて、前記高品質Ｔ細胞及び前記低品質Ｔ細胞における主成分解析（ＰＣＡ）を行なったところ、Ｔ細胞の品質（増殖能）と、Ｔ細胞のＴＣＲ刺激後の各経過日数における特定の遺伝子の発現量との間に、特定の関係があることを見出した。より具体的には、Ｔ細胞の増殖倍率の順位と第一主成分（ＰＣ１）スコアの順位との間には高い相関が認められ、高品質Ｔ細胞でＰＣ１スコアが高く、低品質Ｔ細胞ではＰＣ１スコアが低くなった。そのため、第一主成分の主成分負荷量の値が高い遺伝子は、ＰＣ１スコアが高い細胞、すなわち、高品質Ｔ細胞で発現し、第一主成分の主成分負荷量が低い遺伝子は、ＰＣ１スコアが低い細胞、すなわち、低品質Ｔ細胞で発現することを見出した。
【0011】
これらの知見から、本発明者らは、第一主成分に対する主成分負荷量の絶対値が大きい遺伝子をＴ細胞の品質評価用のマーカーとし、これらの発現を指標とすることによって、Ｔ細胞の品質を評価できることを見出した。さらに、これら遺伝子は、Ｔ細胞のＴＣＲ刺激後の比較的初期に発現する遺伝子であることから、その発現を指標とすることによって、比較的若いＴ細胞の品質も評価できることを見出し、本発明を完成させるに至った。
【0012】
すなわち、本発明の態様は以下のとおりである。
【0013】
［１］ Ｔ細胞における、下記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子の発現を検出する検出工程と、
前記遺伝子の発現を指標としてＴ細胞の品質を評価する評価工程と、
を含む、Ｔ細胞の評価方法。
（Ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
前記遺伝子の発現を指標としてＴ細胞の品質を評価する評価工程と、
を含む、Ｔ細胞の評価方法。
（Ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
【0014】
［２］ 前記検出工程が、前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子の発現産物に特異的に結合するプローブ分子を用いて前記発現産物を検出する工程である、［１］に記載の方法。
【0015】
［３］ 前記発現産物が、前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子のうちのいずれか１つにコードされるポリペプチドであり、かつ、前記プローブ分子が、前記ポリペプチドに特異的に結合する抗体及び／又はアプタマーである、［２］に記載の方法。
【0016】
［４］ 前記評価工程が、前記遺伝子の発現を指標としてＴ細胞の増殖能を評価する工程である、［１］～［３］のいずれか一項に記載の方法。
【0017】
［５］ 前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子が、下記（Ｉ’）～（ＩＩＩ’）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子である、［１］～［４］のいずれか一項に記載の方法。
（Ｉ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
（Ｉ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
【0018】
［６］ 前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子が、下記（Ｉ’）～（ＩＩＩ’）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子である、［１］～［５］のいずれか一項に記載の方法。
（Ｉ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
（Ｉ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
【0019】
［７］ ［２］～［６］のいずれか一項に記載の方法に用いるための試薬であり、下記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子の発現産物に特異的に結合するプローブ分子を含有する、Ｔ細胞評価用試薬。
（Ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
（Ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
【0020】
［８］ 前記発現産物が、前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子のうちのいずれか１つにコードされるポリペプチドであり、かつ、前記プローブ分子が、前記ポリペプチドに特異的に結合する抗体及び／又はアプタマーである、［６］に記載の試薬。
【0021】
［９］ 前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子が、下記（Ｉ’）～（ＩＩＩ’）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子である、［７］又は［８］に記載の試薬。
（Ｉ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
（Ｉ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
【0022】
［１０］ 前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子が、下記（Ｉ’）～（ＩＩＩ’）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子である［７］～［９］のいずれか一項に記載の試薬。
（Ｉ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
（Ｉ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、１５、及び２７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
【発明の効果】
【0023】
本発明によれば、新たな指標によってＴ細胞の品質を評価できるＴ細胞の評価方法、及びそれに用いるＴ細胞評価用試薬を提供することが可能となる。
【図面の簡単な説明】
【0024】
【図1】Ｔ細胞株２３種類における、全３７，９１２遺伝子のデータについて主成分分析（ＰＣＡ）を行なって得られた散布図である。
【図2】Ｔ細胞株２３種類の増殖倍率の順位（増殖順位）とＰＣ１スコアの順位（ＰＣ１順位）との関係を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【0025】
以下、本発明をその好適な実施形態に即して詳細に説明する。
【0026】
＜Ｔ細胞の評価方法＞
本発明のＴ細胞の評価方法は、
Ｔ細胞における、下記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子の発現を検出する検出工程と、
前記遺伝子の発現を指標としてＴ細胞の品質を評価する評価工程と、
を含む方法（以下、場合により、単に「本発明の方法」という）である。
（Ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
本発明のＴ細胞の評価方法は、
Ｔ細胞における、下記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子の発現を検出する検出工程と、
前記遺伝子の発現を指標としてＴ細胞の品質を評価する評価工程と、
を含む方法（以下、場合により、単に「本発明の方法」という）である。
（Ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
【0027】
［Ｔ細胞］
本発明において、Ｔ細胞の由来としては特に制限はなく、動物由来であっても、人由来であってもよく、健常者由来のＴ細胞であってもよいし、患者（例えば、免疫機能が低下している人又は動物や、悪性腫瘍、感染症又は自己免疫疾患を患っている人又は動物）由来のＴ細胞であってもよい。さらには、人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）等の多能性幹細胞から分化誘導したＴ細胞；造血幹細胞等の体性幹細胞から分化誘導したＴ細胞；株化したＴ細胞であってもよい。
本発明において、Ｔ細胞の由来としては特に制限はなく、動物由来であっても、人由来であってもよく、健常者由来のＴ細胞であってもよいし、患者（例えば、免疫機能が低下している人又は動物や、悪性腫瘍、感染症又は自己免疫疾患を患っている人又は動物）由来のＴ細胞であってもよい。さらには、人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）等の多能性幹細胞から分化誘導したＴ細胞；造血幹細胞等の体性幹細胞から分化誘導したＴ細胞；株化したＴ細胞であってもよい。
【0028】
人から採取されたＴ細胞の場合には、例えば、抹消血から分離された抹消血単核細胞（ＰＢＭＣ：Ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ Ｂｌｏｏｄ Ｍｏｎｏｎｕｃｌｅａｒ Ｃｅｌｌｓ）より、従来公知の方法や市販のキット等を用いてＴ細胞を単離することができる。また、本発明に係るＴ細胞としては、ナイーブ（ｎａｉｖｅ）Ｔ細胞であってもよく、抗原刺激されたメモリーＴ細胞やエフェクターＴ細胞であってもよい。エフェクターＴ細胞としては、ヘルパーＴ細胞、キラーＴ細胞、制御性Ｔ細胞、ナチュラルキラーＴ（ＮＫ／Ｔ）細胞のいずれであってもよい。
【0029】
また、本発明において、「Ｔ細胞」には、人為的な遺伝子改変がなされていないＴ細胞（以下、場合により「未改変Ｔ細胞」という）の他、前記未改変Ｔ細胞に人為的な遺伝子改変がなされた「遺伝子改変Ｔ細胞」も含む。なお、本発明において、「人為的な遺伝子改変」には、Ｔ細胞への遺伝子導入又はＴ細胞の遺伝子編集によりＴ細胞の機能を改変することを含む。前記人為的な遺伝子改変としては、Ｔ細胞が有する遺伝子そのものの改変であっても、Ｔ細胞が有する遺伝子そのものの欠損であっても、外来の遺伝子が導入された改変であっても、これらの２種以上を組み合わせたものであってもよい。
【0030】
前記人為的な遺伝子改変の方法としては、従来公知の方法やそれに準じた方法が挙げられ、特に限定されない。Ｔ細胞への遺伝子導入としては、例えば、Ｔ細胞の機能を改変させる遺伝子そのもの（ＤＮＡ、ｍＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、アンタゴｍｉｒ、ＯＤＮ（オリゴデオキシリボヌクレオチド）等）、又は当該遺伝子を挿入したベクター（レンチウイルスベクター、γ－又はα－レトロウイルスベクター、アデノウイルスベクター、アデノ随伴ウイルスベクター、ヘルペスウイルスベクター、ウマ脳炎ウイルスベクター等）のＴ細胞への導入が挙げられ、Ｔ細胞の遺伝子編集としては、例えば、部位特異的ヌクレアーゼ（メガヌクレアーゼ、ジンクフィンガーヌクレアーゼ、ＴＡＬＥＮ、ＰＰＲ（Ｐｅｎｔａｔｒｉｃｏｐｅｐｔｉｄｅ ｒｅｐｅａｔ）、ＣＲＩＳＰＲ－Ｃａｓ等）を用いたＴ細胞の遺伝子の編集（ゲノム編集）が挙げられる。本発明において、前記人為的な遺伝子改変の方法としては、これらの１種を単独であっても２種以上を組み合わせたものであってもよい。
【0031】
前記Ｔ細胞の機能を改変させる遺伝子としては、例えば、Ｔ細胞より分泌されるタンパク質；Ｔ細胞表面に発現するタンパク質及び少なくとも１つの細胞内シグナリングドメインを含む融合タンパク質；Ｔ細胞表面に発現するタンパク質、少なくとも１つの共刺激ドメイン、及び少なくとも１つの細胞内シグナリングドメインを含む融合タンパク質が挙げられ、より具体的には、細胞表面酵素、細胞接着因子、受容体（例えば、キメラ抗原受容体）、及びこれらを構成するサブユニットが挙げられる。
【0032】
［検出工程］
（標的遺伝子）
本発明の方法に係る検出工程においては、Ｔ細胞における、下記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子の発現を検出する。
（Ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
（標的遺伝子）
本発明の方法に係る検出工程においては、Ｔ細胞における、下記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子の発現を検出する。
（Ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
【0033】
ここで、前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群において、（Ｉ）の遺伝子、（ＩＩ）の遺伝子、及び（ＩＩＩ）の遺伝子としては、それぞれ独立に、１種を単独であっても２種以上であってもよい。
【0034】
前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子のうちのいずれか１つにコードされるポリペプチドは、Ｔ細胞由来のセクレトーム（ｓｅｃｒｅｔｏｍｅ）に含まれることが好ましい。本発明において、「セクレトーム」とは、細胞から分泌される又は細胞膜の中から細胞外に露出されるタンパク質を示し、これらタンパク質の全部又は一部が細胞に内在する態様も含む。
【0035】
本発明において、発現が検出される遺伝子（以下、場合により「標的遺伝子」という）は、ヒト由来のものであれば、典型的には、「（Ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子」である。下記の表１～５に、配列番号１～７７に記載のアミノ酸配列について、各アミノ酸配列の配列番号及びＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．（ＧｅｎＢａｎｋ Ｎｏ．）；各アミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子の典型的なヌクレオチド配列の配列番号とそのオープンリーディングフレーム（ＯＲＦ位置）、及びＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．（ＧｅｎＢａｎｋ Ｎｏ．）；各アミノ酸配列からなるポリペプチドが対応するタンパク質の略称（タンパク質略称）を示す。また、下記の表６～１０に、表１～５に記載の各タンパク質略称について、正式名（フルネーム）及び存在する場合には別名を示す。
【0036】
表１～５には、下記の実施例において各遺伝子が得られた由来、すなわち、次の（ａ）～（ｄ）：
（ａ）ｄａｙ０の試料においてトランスクリプトーム解析によりマップされた遺伝子（トランスクリプトームｄａｙ０）
（ｂ）ｄａｙ６の試料においてトランスクリプトーム解析によりマップされた遺伝子（トランスクリプトームｄａｙ６）、
（ｃ）ｄａｙ１４の試料においてトランスクリプトーム解析によりマップされた遺伝子（トランスクリプトームｄａｙ１４）、
（ｄ）セクレトーム解析により同定されたタンパク質をコードする遺伝子（セクレトーム）
を「由来データ」欄に合わせて示す。さらに、下記の実施例の主成分分析（ＰＣＡ）により前記（ａ）～（ｄ）で得られた各遺伝子の発現量の、第一主成分の主成分負荷量（ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ｌｏａｄｉｎｇ）も合わせて示す。
（ａ）ｄａｙ０の試料においてトランスクリプトーム解析によりマップされた遺伝子（トランスクリプトームｄａｙ０）
（ｂ）ｄａｙ６の試料においてトランスクリプトーム解析によりマップされた遺伝子（トランスクリプトームｄａｙ６）、
（ｃ）ｄａｙ１４の試料においてトランスクリプトーム解析によりマップされた遺伝子（トランスクリプトームｄａｙ１４）、
（ｄ）セクレトーム解析により同定されたタンパク質をコードする遺伝子（セクレトーム）
を「由来データ」欄に合わせて示す。さらに、下記の実施例の主成分分析（ＰＣＡ）により前記（ａ）～（ｄ）で得られた各遺伝子の発現量の、第一主成分の主成分負荷量（ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ｌｏａｄｉｎｇ）も合わせて示す。
【0037】
【表1】
【0038】
【表2】
【0039】
【表3】
【0040】
【表4】
【0041】
【表5】
【0042】
【表6】
【0043】
【表7】
【0044】
【表8】
【0045】
【表9】
【0046】
【表10】
【0047】
本発明者らは、高品質Ｔ細胞及び低品質Ｔ細胞において、遺伝子の発現量についての主成分解析（ＰＣＡ）によって得られるＰＣ１スコアとＴ細胞の品質との間には高い相関があり、第一主成分の主成分負荷量の値が高い遺伝子は、ＰＣ１スコアが高い細胞、すなわち高品質Ｔ細胞で発現し、第一主成分の主成分負荷量が低い遺伝子は、ＰＣ１スコアが低い細胞、すなわち低品質Ｔ細胞で発現することを見出した。表１～２に記載の、配列番号１～２５で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子は、ＴＣＲ刺激後のＴ細胞において発現する遺伝子のうち、前記第一主成分への寄与率が高く（具体的には、遺伝子の発現量の第一主成分に対する主成分負荷量の絶対値が０．９以上）、かつ、膜貫通型タンパク質をコードする遺伝子であり、表３～５に記載の、配列番号２６～７７で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子は、第一主成分への寄与率が高く（具体的には、遺伝子の発現量の第一主成分に対する主成分負荷量の絶対値が０．９以上）、かつ、膜貫通型タンパク質以外のタンパク質をコードする遺伝子である。よって、これらの前記第一主成分への寄与率が高い（具体的には、遺伝子の発現量の第一主成分に対する主成分負荷量の絶対値が０．９以上）、配列番号１～７７のいずれか１つで示されるアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子の発現は、Ｔ細胞の品質評価の指標とすることができる。
【0048】
本発明においては、前記「（Ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子」の相同遺伝子（例えば、ヒト以外の生物におけるカウンターパート遺伝子）を前記標的遺伝子とすることもできる。また、遺伝子のヌクレオチド配列は、その変異などにより、自然界において（すなわち、非人工的に）変異し得ることから、本発明においては、このような天然の変異体も、前記標的遺伝子とすることができる。さらに、現在の技術水準においては、当業者であれば、例えば、前記（Ｉ）の遺伝子情報が得られた場合、そのヌクレオチド配列を改変し、そのコードするアミノ酸配列とは異なるが、機能改変したタンパク質を調製することもできるため、このような改変体も、前記標的遺伝子としてよい。
【0049】
したがって、本発明に係る標的遺伝子の態様には、「（ＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が、置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子」も含まれる。ここで、「アミノ酸残基が、置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列」とは、アミノ酸残基が、置換、欠失、挿入、若しくは付加されたアミノ酸配列、又は、これらの２種以上の組み合わせがなされたアミノ酸配列であることを示す。また、「複数個」とは、例えば、２０、１９、１８、１７、１６、１５、１４、１３、１２、１１、１０、９、８、７、６、５、４、３、又は２個の整数であることが好ましいが、これに制限されない。１若しくは複数個のアミノ酸残基とは、好ましくはアミノ酸残基が１個以上１０個以下、より好ましくは１個以上５個以下、さらに好ましくは１個以上３個以下、特に好ましくは２個以下である。
【0050】
さらに、現在の技術水準においては、当業者であれば、例えば、前記（Ｉ）の遺伝子情報が得られた場合、そのヌクレオチド配列に基づいて、ハイブリダイゼーション技術（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ，Ｅ．Ｍ．，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，９８：５０３－５１７，１９７５）や、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）技術（Ｓａｉｋｉ，Ｒ．Ｋ．，ｅｔ ａｌ．Ｓｃｉｅｎｃｅ，２３０：１３５０－１３５４，１９８５、Ｓａｉｋｉ，Ｒ．Ｋ．ｅｔ ａｌ．Ｓｃｉｅｎｃｅ，２３９：４８７－４９１，１９８８）等により、他の生物や細胞から相同遺伝子を取得可能である。
【0051】
したがって、本発明に係る標的遺伝子の態様には、「（ＩＶ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列の相補鎖とストリンジェントな条件下でハイブリダイズするヌクレオチド配列」も含まれる。相同遺伝子を単離するためには、通常、ストリンジェントな条件下でハイブリダイゼーション反応を行う。「ストリンジェントな条件」とは、ハイブリダイゼーション後のメンブレンの洗浄操作を、高温下、低塩濃度溶液中で行うことを示し、かかる条件としては、例えば、３０ｍＭクエン酸三ナトリウム及び３００ｍＭ塩化ナトリウム（２×ＳＳＣ）を含有する、０．５％（ｗ／ｖ）ＳＤＳ溶液中で６０℃、２０分間の洗浄条件が挙げられる。また、ハイブリダイゼーションは、例えば、公知であるＥＣＬダイレクトＤＮＡ／ＲＮＡラベリング・検出システム（ＧＥヘルスケア バイオサイエンス株式会社製）に添付の使用説明書に記載の方法にしたがって実施することができる。ハイブリダイゼーションの条件が厳しくなるほど、高い相同性を有するＤＮＡの単離を期待し得る。ただし、これらの条件は例示であり、ＤＮＡの濃度、ＤＮＡの長さ、ハイブリダイゼーションの反応時間等を適宜組み合わせることにより、必要な厳密性（ストリンジェンシー）を実現可能である。
【0052】
さらに、例えばこのような方法にて取得された相同遺伝子がコードするタンパク質は、通常、配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と高い同一性を有する。したがって、本発明に係る標的遺伝子の態様には、「（ＩＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子」も含まれる。アミノ酸配列の同一性は、例えば、ＢＬＡＳＴＰのプログラム（Ａｌｔｓｃｈｕｌら，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，２１５，１９９０年、ｐ．４０３－４１０）を用いて決定することができる。また、配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列との同一性は、典型的には、７０％以上であることが好ましく、より好ましくは、７５％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上（例えば、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上）である。
【0053】
本発明においては、好ましくは、標的遺伝子は、表１～５に記載の遺伝子のうち、下記（Ｉ’）～（ＩＩＩ’）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子である。これらの遺伝子から発現されるタンパク質は、Ｔ細胞の膜タンパク質として膜外に露出して発現されるため、これを検出後、当該膜タンパク質を利用して高品質（又は低品質）のＴ細胞の捕捉、分離、又は精製も可能となるためである。
（Ｉ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４（より好ましくは配列番号５、１５、及び２７）のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４（より好ましくは配列番号５、１５、及び２７）のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４（より好ましくは配列番号５、１５、及び２７）のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
ここで、前記（Ｉ’）～（ＩＩＩ’）の遺伝子からなる群において、（Ｉ’）の遺伝子、（ＩＩ’）の遺伝子、及び（ＩＩＩ’）の遺伝子としては、それぞれ独立に、１種を単独であっても２種以上であってもよい。
（Ｉ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４（より好ましくは配列番号５、１５、及び２７）のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４（より好ましくは配列番号５、１５、及び２７）のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４（より好ましくは配列番号５、１５、及び２７）のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
ここで、前記（Ｉ’）～（ＩＩＩ’）の遺伝子からなる群において、（Ｉ’）の遺伝子、（ＩＩ’）の遺伝子、及び（ＩＩＩ’）の遺伝子としては、それぞれ独立に、１種を単独であっても２種以上であってもよい。
【0054】
また、本発明に係る標的遺伝子としては、より若い（ＴＣＲ刺激後の経過日数が少ない）Ｔ細胞の品質も評価できる観点から、上記の表１～５に示した遺伝子の中でも、「由来データ」欄が「トランスクリプトームｄａｙ０」である遺伝子が好ましい。
【0055】
（遺伝子の発現の検出）
本発明において、「遺伝子の発現を検出する」とは、遺伝子の発現の有無の検出及び発現の程度の検出の双方を含む意であり、本発明においては、前記標的遺伝子の発現を検出する。遺伝子の発現量は、絶対量として又は相対量として把握することができる。相対量を把握する場合には、例えば、用意した標準試料の遺伝子の発現量と比較して判断することができる。「標準試料」とは、標的遺伝子を発現しているか否か、又は発現している場合にはその量が事前に特定されている試料を示す。例えば、品質が良い又は悪いことが事前に特定されているＴ細胞を前記標準試料とすることができる。
本発明において、「遺伝子の発現を検出する」とは、遺伝子の発現の有無の検出及び発現の程度の検出の双方を含む意であり、本発明においては、前記標的遺伝子の発現を検出する。遺伝子の発現量は、絶対量として又は相対量として把握することができる。相対量を把握する場合には、例えば、用意した標準試料の遺伝子の発現量と比較して判断することができる。「標準試料」とは、標的遺伝子を発現しているか否か、又は発現している場合にはその量が事前に特定されている試料を示す。例えば、品質が良い又は悪いことが事前に特定されているＴ細胞を前記標準試料とすることができる。
【0056】
本発明において、「遺伝子の発現」とは、遺伝子の転写及び翻訳の双方を含む意である。したがって、本発明における「遺伝子の発現の検出」には、転写レベル（ｍＲＮＡレベル）での検出、及び翻訳レベル（タンパク質レベル）での検出（すなわち、前記遺伝子にコードされるポリペプチドの検出）の双方が含まれる。
【0057】
また、真核細胞では、遺伝子の転写過程で、ｍＲＮＡ前駆体中のイントロンを除去し、前後のエキソンを再結合する反応（スプライシング（ｓｐｌｉｃｉｎｇ））が生じるが、エキソンの再結合に多様性が生じる場合があり、これにより様々な成熟ｍＲＮＡが生産される。ひいては、それにより様々なタンパク質が翻訳される。このようなスプライシングの違いにより生じる多様なｍＲＮＡやタンパク質を「スプライシングバリアント（ｓｐｌｉｃｉｎｇ ｖａｒｉａｎｔ）」という。したがって、本発明における遺伝子の発現の検出には、下記のプローブ分子に特異的に認識される限り、当該スプライシングバリアントの検出も含まれる。
【0058】
本発明における遺伝子の発現の検出には、適宜公知の手法又はそれに準じた手法を用いることができる。中でも、本発明の方法に係る検出工程としては、前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子（好ましくは前記（Ｉ’）～（ＩＩＩ’）の遺伝子）からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子（すなわち、前記標的遺伝子）の発現産物に特異的に結合するプローブ分子を用いて前記発現産物を検出することが好ましい。
【0059】
〔転写レベルでの検出（標的ポリヌクレオチドの検出）〕
転写レベルでの検出において、前記標的遺伝子の発現産物は、当該標的遺伝子から転写されたｍＲＮＡ（以下、場合により「標的ポリヌクレオチド」という）である。前記標的ポリヌクレオチドには、前記ｍＲＮＡを鋳型とするｃＤＮＡも含む。この場合の検出方法としては、例えば、前記プローブ分子として、前記標的ポリヌクレオチドの塩基配列中の適切な位置にハイブリダイズするように設計したオリゴヌクレオチドプローブを用い、ノーザンブロッティング、ドットブロット、ＲＮａｓｅプロテクションアッセイ、ＤＮＡマイクロアレイ解析法、ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション法等によって、前記標的ポリヌクレオチドを検出する方法が挙げられる。
転写レベルでの検出において、前記標的遺伝子の発現産物は、当該標的遺伝子から転写されたｍＲＮＡ（以下、場合により「標的ポリヌクレオチド」という）である。前記標的ポリヌクレオチドには、前記ｍＲＮＡを鋳型とするｃＤＮＡも含む。この場合の検出方法としては、例えば、前記プローブ分子として、前記標的ポリヌクレオチドの塩基配列中の適切な位置にハイブリダイズするように設計したオリゴヌクレオチドプローブを用い、ノーザンブロッティング、ドットブロット、ＲＮａｓｅプロテクションアッセイ、ＤＮＡマイクロアレイ解析法、ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション法等によって、前記標的ポリヌクレオチドを検出する方法が挙げられる。
【0060】
この場合には、例えば、前記オリゴヌクレオチドプローブとして、標識物質によって標識されたものを用い、当該標識物質に応じたシグナルを検出して、検出されたシグナル量を前記標的ポリヌクレオチドの量（すなわち、標的遺伝子の発現量）とすることができる。このときの標識物質としては、例えば、ＦＩＴＣ（フルオレセインイソチオシアネート）、ＦＡＭ（フルオレセインアミダイト）、ＤＥＡＣ（７－（ジエチルアミノ）クマリン）、Ｒ６Ｇ（ローダミン６Ｇ）、Ｔｅｘａｓ Ｒｅｄ、Ｃｙ５、ＢＯＤＩＰＹ ＦＬ（商品名）等の蛍光物質；β－Ｄ－グルコシダ―ゼ、ルシフェラーゼ、ＨＲＰ（ホースラディッシュペルオキシダーゼ）等の酵素；３Ｈ、１４Ｃ、３２Ｐ、３５Ｓ、１２３Ｉ等の放射性同位体；ビオチン、ストレプトアビジン等の親和性物質；ルミノール、ルシフェリン、ルシゲニン等の発光物質が挙げられる。
【0061】
なお、本発明において、「シグナル」には、呈色（発色）、反射光、発光、消光、蛍光、放射性同位体による放射線等が含まれ、肉眼で確認できるものの他、シグナルの種類に応じた測定方法・装置によって確認できるものも含まれる。
【0062】
また、例えば、前記プローブ分子として、前記標的ポリヌクレオチド中の適切な位置を挟み込むように設計したオリゴヌクレオチドプライマーを用い、ＰＣＲ法、ＲＴ－ＰＣＲ法、ＴＲＣ（Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ Ｒｅｖｅｒｓｅ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ Ｃｏｎｃｅｒｔｅｄ）法、ＮＡＳＢＡ（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ－Ｂａｓｅｄ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ）法、ＴＭＡ（Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ－Ｍｅｄｉａｔｅｄ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ）法等によって、前記標的ポリヌクレオチドを増幅して検出する方法も挙げられる。
【0063】
この場合には、例えば、得られた増幅産物に蛍光色素（例えば、エチジウムブロマイド、ＳＹＢＲ Ｇｒｅｅｎ（商品名）、ＳＹＴＯ６３（商品名）等）をインターカレートして得られたシグナル（蛍光）を検出して、検出されたシグナル量（蛍光強度）を、前記標的ポリヌクレオチドの量（すなわち、標的遺伝子の発現量）とすることができる。また、前記オリゴヌクレオチドプローブと組み合わせて検出してもよい（ダブルダイプローブ法等）。さらに、前記標的ポリヌクレオチドを含む試料を直接シーケンサーに供して解析することにより、前記標的ポリヌクレオチドの量としてもよい。
【0064】
このようなオリゴヌクレオチドプローブ及びオリゴヌクレオチドプライマーは、当業者であれば、前記標的ポリヌクレオチドの配列に基づいて、公知の方法又はそれに準じた方法で設計することができる。また、前記オリゴヌクレオチドプローブ及びオリゴヌクレオチドプライマーの長さは、それぞれ独立に、少なくとも１５塩基であることが好ましく、通常は、１５～１００塩基であり、好ましくは１７～３０塩基であり、より好ましくは２０～２５塩基である。前記オリゴヌクレオチドプローブ及びオリゴヌクレオチドプライマーは、例えば、市販のオリゴヌクレオチド合成機により合成することができる。また、天然のヌクレオチド（デオキシリボヌクレオチド及び／又はリボヌクレオチド）のみから構成されていなくともよく、例えば、ＰＮＡ（ｐｏｌｙａｍｉｄｅ ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ）、ＬＮＡ（登録商標、ｌｏｃｋｅｄ ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ）、ＥＮＡ（登録商標、２’－Ｏ，４’－Ｃ－Ｅｔｈｙｌｅｎｅ－ｂｒｉｄｇｅｄ ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄｓ）等の非天然型のヌクレオチドにてその一部又は全部が構成されていてもよい。
【0065】
〔翻訳レベルでの検出（標的ポリペプチドの検出）〕
翻訳レベルでの検出において、前記標的遺伝子の発現産物は、当該標的遺伝子にコードされるポリペプチド（以下、場合により「標的ポリペプチド」という）である。より具体的には、前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子のうちのいずれか１つにコードされるポリペプチドであり、すなわち、下記（ｉ）～（ｉｉｉ）のポリペプチドからなる群から選択されるポリペプチドである。
（ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチド
（ｉｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチド
（ｉｉｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチド。
翻訳レベルでの検出において、前記標的遺伝子の発現産物は、当該標的遺伝子にコードされるポリペプチド（以下、場合により「標的ポリペプチド」という）である。より具体的には、前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子のうちのいずれか１つにコードされるポリペプチドであり、すなわち、下記（ｉ）～（ｉｉｉ）のポリペプチドからなる群から選択されるポリペプチドである。
（ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチド
（ｉｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチド
（ｉｉｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチド。
【0066】
前記（ｉ）～（ｉｉｉ）のポリペプチドからなる群において、（ｉ）のポリペプチド、（ｉｉ）のポリペプチド、及び（ｉｉｉ）のポリペプチドとしては、それぞれ独立に、１種を単独であっても２種以上であってもよい。
【0067】
これらの中でも、前記（ｉ）～（ｉｉｉ）のポリペプチドとしては、前記（Ｉ’）～（ＩＩＩ’）の遺伝子のうちのいずれか１つにコードされるポリペプチド、すなわち、下記（ｉ’）～（ｉｉｉ’）のポリペプチドからなる群から選択されるポリペプチドであることが好ましい。
（ｉ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４（より好ましくは配列番号５、１５、及び２７）のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチド
（ｉｉ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４（より好ましくは配列番号５、１５、及び２７）のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチド
（ｉｉｉ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４（より好ましくは配列番号５、１５、及び２７）のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチド。
（ｉ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４（より好ましくは配列番号５、１５、及び２７）のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチド
（ｉｉ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４（より好ましくは配列番号５、１５、及び２７）のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチド
（ｉｉｉ’）配列番号５、７、１５、２７、及び４４（より好ましくは配列番号５、１５、及び２７）のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチド。
【0068】
前記（ｉ’）～（ｉｉｉ’）のポリペプチドからなる群においても、（ｉ’）のポリペプチド、（ｉｉ’）のポリペプチド、及び（ｉｉｉ’）のポリペプチドとしては、それぞれ独立に、１種を単独であっても２種以上であってもよい。
【0069】
また、本発明において、検出対象となるこれらの標的ポリペプチドとしては、上記のセクレトーム（Ｔ細胞由来セクレトーム）であることが好ましい。
【0070】
翻訳レベルでの検出の場合の検出方法の一例としては、抗ポリペプチド抗体及び／又はアプタマーによる検出や、標識アミノ酸による検出が挙げられる。
【0071】
〈抗ポリペプチド抗体及び／又はアプタマーによる検出〉
翻訳レベルでの検出の場合の検出方法としては、例えば、前記プローブ分子として、前記標的ポリペプチドに特異的に結合する抗体（以下、場合により「抗ポリペプチド抗体」という）及び／又はアプタマー（以下、場合により、単に「アプタマー」という）を用い、免疫細胞染色法、イメージングサイトメトリー、フローサイトメトリー、ＥＬＩＳＡ（Ｅｎｚｙｍｅ－Ｌｉｎｋｅｄ Ｉｍｍｕｎｏ Ｓｏｒｂｅｎｔ Ａｓｓａｙ）法、ラジオイムノアッセイ、免疫沈降法、イムノブロッティング（ウェスタンブロット法等）、抗体アレイ、ｉｎ ｖｉｖｏ イメージング等の抗体を用いて検出する方法（免疫学的手法）；前記抗体に代えてアプタマーを用いて検出する方法が挙げられる。また、前記免疫学的手法は、必要な試薬を調製した上で、ＡＩＡ－９００（東ソー社製）等のエンザイムイムノアッセイ装置やＡＩＡ－ＣＬ２４００（東ソー社製）等の化学発光酵素免疫測定装置を用いて自動的に行なってもよい。
翻訳レベルでの検出の場合の検出方法としては、例えば、前記プローブ分子として、前記標的ポリペプチドに特異的に結合する抗体（以下、場合により「抗ポリペプチド抗体」という）及び／又はアプタマー（以下、場合により、単に「アプタマー」という）を用い、免疫細胞染色法、イメージングサイトメトリー、フローサイトメトリー、ＥＬＩＳＡ（Ｅｎｚｙｍｅ－Ｌｉｎｋｅｄ Ｉｍｍｕｎｏ Ｓｏｒｂｅｎｔ Ａｓｓａｙ）法、ラジオイムノアッセイ、免疫沈降法、イムノブロッティング（ウェスタンブロット法等）、抗体アレイ、ｉｎ ｖｉｖｏ イメージング等の抗体を用いて検出する方法（免疫学的手法）；前記抗体に代えてアプタマーを用いて検出する方法が挙げられる。また、前記免疫学的手法は、必要な試薬を調製した上で、ＡＩＡ－９００（東ソー社製）等のエンザイムイムノアッセイ装置やＡＩＡ－ＣＬ２４００（東ソー社製）等の化学発光酵素免疫測定装置を用いて自動的に行なってもよい。
【0072】
本発明において、「抗体」は、ポリクローナル抗体であっても、モノクローナル抗体であってもよく、また、抗体の機能的断片であってもよい。また、「抗体」には、免疫グロブリンの全てのクラス及びサブクラスが含まれる。抗体の「機能的断片」とは、抗体の一部分（部分断片）であって、本発明においては、前記標的遺伝子にコードされるポリペプチドを特異的に認識するものを示す。具体的には、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、可変領域断片（Ｆｖ）、ジスルフィド結合Ｆｖ、一本鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）、ｓｃ（Ｆｖ）２、ダイアボディー（Ｄｉａｂｏｄｙ）、多特異性抗体、短鎖抗体、及びこれらの重合体等が挙げられる。
【0073】
本発明に係る抗ポリペプチド抗体は、ポリクローナル抗体であれば、抗原（標的ポリペプチド、その部分ペプチド、又はこれらを発現する細胞等）で免疫動物を免疫し、その抗血清から、従来の手段（塩析、遠心分離、透析、カラムクロマトグラフィー等）によって、適宜精製して取得することができる。また、モノクローナル抗体は、ハイブリドーマ法や組換えＤＮＡ法によって作製することができる。ハイブリドーマ法としては、例えば、コーラー及びミルスタインの方法（Ｋｏｈｌｅｒ＆Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｎａｔｕｒｅ，２５６：４９５（１９７５））が挙げられ、組換えＤＮＡ法としては、例えば、前記抗ポリペプチド抗体をコードするＤＮＡをハイブリドーマやＢ細胞等からクローニングし、適当なベクターに組み込んで、これを宿主細胞（哺乳類細胞株、大腸菌、酵母細胞、昆虫細胞、植物細胞等）に導入し、前記抗ポリペプチド抗体を組換え抗体として産生させる手法が挙げられる（例えば、Ｐ．Ｊ．Ｄｅｌｖｅｓ，Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ：Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，１９９７ ＷＩＬＥＹ；Ｐ．Ｓｈｅｐｈｅｒｄ ａｎｄ Ｃ．Ｄｅａｎ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，２０００ ＯＸＦＯＲＤ ＵＮＩＶＥＲＳＩＴＹ ＰＲＥＳＳ；Ｖａｎｄａｍｍｅ Ａ．Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１９２：７６７－７７５（１９９０））。
【0074】
この場合には、前記抗ポリペプチド抗体及びアプタマーとして、それぞれ、標識物質によって標識されたものを用い、当該標識物質に応じたシグナルを検出して、検出されたシグナル量を前記標的ポリペプチドの量（すなわち、標的遺伝子の発現量）とすることができる。このときの標識物質としては、前記抗ポリペプチド抗体又はアプタマーに結合することができ、化学的又は光学的方法で検出できるものであれば特に制限されることはなく、例えば、フィコエリスリン（ＰＥ）、フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）、ローダミンイソチオシアネート（ＲＩＴＣ）等の蛍光物質や、ペルオキシダーゼ、β－Ｄ－ガラクトシダーゼ、マイクロペルオキシダーゼ、ホースラディッシュペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）、アルカリホスファターゼ等の酵素、放射性物質が挙げられる。
【0075】
また、前記抗ポリペプチド抗体及び／又はアプタマーを用いる場合には、前記標識物質を結合させた二次抗体を利用する方法や、二次抗体と前記標識物質とを結合させたポリマーを利用する方法などの間接的検出方法を利用することもできる。ここで、「二次抗体」とは、前記抗ポリペプチド抗体及び／又はアプタマーに特異的な結合性を示す抗体である。例えば、前記抗ポリペプチド抗体をウサギ抗体として調製した場合には、二次抗体として抗ウサギＩｇＧ抗体を使用することができる。ウサギ、ヤギ、マウスなどの様々な生物種に由来する抗体に対して、使用可能な標識二次抗体が市販されており、用いる抗ポリペプチド抗体の由来する生物種に応じて、適切な二次抗体を選択し、使用することができる。また、二次抗体に代えて、標識物質を結合させたプロテインＧ（例えば、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ属菌由来）、プロテインＡ（例えば、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ由来）、プロテインＬ（Ｐｅｐｔｏｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｍａｇｎｕｓ由来）等を用いることも可能である。
【0076】
〈標識アミノ酸による検出〉
翻訳レベルでの検出の場合の検出方法としては、他にも例えば、標識アミノ酸を添加した培地でＴ細胞を培養し、前記標識アミノ酸で標識された標的ポリペプチドを検出する方法が挙げられる。このような方法としては、
少なくとも１種のＴ細胞増殖用必須アミノ酸に代えてそのアミノ酸が標識された標識アミノ酸を含有し、かつ、共通γ鎖ファミリーサイトカインを含有するＴ細胞標識用培地でＴ細胞を培養する標識工程と、
前記標識アミノ酸で標識されたＴ細胞由来ポリペプチドを検出する検出工程（以下、場合により「検出工程Ａ」ともいう）と、
を含む方法が好ましい。
翻訳レベルでの検出の場合の検出方法としては、他にも例えば、標識アミノ酸を添加した培地でＴ細胞を培養し、前記標識アミノ酸で標識された標的ポリペプチドを検出する方法が挙げられる。このような方法としては、
少なくとも１種のＴ細胞増殖用必須アミノ酸に代えてそのアミノ酸が標識された標識アミノ酸を含有し、かつ、共通γ鎖ファミリーサイトカインを含有するＴ細胞標識用培地でＴ細胞を培養する標識工程と、
前記標識アミノ酸で標識されたＴ細胞由来ポリペプチドを検出する検出工程（以下、場合により「検出工程Ａ」ともいう）と、
を含む方法が好ましい。
【0077】
ここで、「Ｔ細胞標識用培地」とは、Ｔ細胞を培養して標識するための標識アミノ酸を少なくとも含有する培地のことを示す。また、「Ｔ細胞増殖用必須アミノ酸（以下、場合により単に「必須アミノ酸」という）」とは、Ｔ細胞が増殖するために必須のアミノ酸を示し、より具体的には、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、リジン、フェニルアラニン、トリプトファン、スレオニン、ヒスチジンである。
【0078】
前記Ｔ細胞標識用培地は、前記必須アミノ酸の少なくとも１種に代えてそのアミノ酸が標識された標識アミノ酸を含有する、すなわち、前記必須アミノ酸の少なくとも１種を含有せず、かつ、当該含有されない必須アミノ酸が標識されたアミノ酸である標識アミノ酸を含有する。「必須アミノ酸を含有しない」とは、前記Ｔ細胞標識用培地中に前記必須アミノ酸を実質的に含有しないことをいい、より具体的には、当該必須アミノ酸の含有量がＴ細胞標識用培地中に１×１０－３ｍｍｏｌ／Ｌ以下であることをいい、１×１０－４ｍｍｏｌ／Ｌ未満であることが好ましい。前記Ｔ細胞標識用培地から除かれる（すなわち、前記Ｔ細胞標識用培地に実質的に含有されない）必須アミノ酸としては、前記のいずれか１種であっても、２種以上の組み合わせであってもよいが、中でも、タンパク質合成経路への効率的な取り込みの観点から、メチオニンが好ましい。
【0079】
前記「標識アミノ酸」とは、前記必須アミノ酸の構造を維持したままでその一部が修飾され、その修飾に基づいて検出可能であるものを示す。前記「検出可能」には、呈色（発色）、消光、反射光、発光、蛍光等の目視で直接的に確認できるものの他、特定の測定方法や測定装置によって確認できることを含む。
【0080】
このような標識アミノ酸としては、例えば、アミノ酸の原子の一部をパルス安定同位体（例えば、２Ｈ、１３Ｃ、１５Ｎ）に置換した同位体標識アミノ酸；アミノ酸の一部がアジド基、アルキン基等の修飾基によって修飾されたアミノ酸の構造的類似体（ａｎａｌｏｇ）が挙げられ、前記必須アミノ酸に対応して、これらのいずれか１種であっても、２種以上の組み合わせであってもよい。
【0081】
例えば、前記Ｔ細胞標識用培地が、前記必須アミノ酸のうちのメチオニンを含有しない場合、メチオニンに代えて前記Ｔ細胞標識用培地に含有される標識アミノ酸としては、例えば、メチオニンを構成する原子の一部を前記安定同位体に置換した同位体標識メチオニンである２Ｈ標識メチオニン、１３Ｃ標識メチオニン、１５Ｎ標識メチオニン；メチオニンの構造的類似体であるＬ－アジドホモアラニン（ＡＨＡ：Ｌ－Ａｚｉｄｏｈｏｍｏａｌａｎｉｎｅ）、Ｌ－ホモプロパルギルグリシン（ＨＰＧ：Ｌ－Ｈｏｍｏｐｒｏｐａｒｇｙｌｇｌｙｃｉｎｅ）、Ｌ－ホモアリルグリシン（ＨＡＧ：Ｌ－Ｈｏｍｏａｌｌｙｌｇｌｙｃｉｎｅ）が挙げられ、これらのいずれか１種であっても、２種以上の組み合わせであってもよい。
【0082】
前記Ｔ細胞標識用培地において、前記標識アミノ酸の含有量（標識アミノ酸が２種以上である場合にはそれらの合計含有量、以下同じ）としては、Ｔ細胞の取り込み効率や培養効率、同Ｔ細胞への毒性等を考慮して適宜決定することができ、特に制限されないが、例えば、０．０００１～０．１ｍｍｏｌ／Ｌの範囲が挙げられ、０．００１～０．０５ｍｍｏｌ／Ｌであることが好ましく、０．００１～０．０２ｍｍｏｌ／Ｌであることがより好ましい。より具体的に、例えば、前記標識アミノ酸がＡＨＡである場合には、０．０００５～０．０３ｍｍｏｌ／Ｌであることが好ましく、０．００１～０．０３ｍｍｏｌ／Ｌであることがより好ましく、０．００２～０．０３ｍｍｏｌ／Ｌであることがさらに好ましく、０．００５～０．０２ｍｍｏｌ／Ｌであることがさらにより好ましい。前記標識アミノ酸の含有量が前記上限を超えると、細胞が弱ったり死滅し易くなる傾向にあり、他方、前記下限未満であると、前記標識アミノ酸で標識されたポリペプチドを分泌又は細胞外に露出する細胞数が少なくなり、ポリペプチドの検出精度が低下する傾向にある。
【0083】
前記Ｔ細胞標識用培地は、共通γ鎖ファミリーサイトカインをさらに含有する。これを含有することにより、前記標識アミノ酸で標識されたポリペプチドを発現する細胞を高効率で得ることが可能となる。「共通γ鎖ファミリーサイトカイン」とは、共通のγ鎖（ｃｏｍｍｏｎ γ ｃｈａｉｎ：γサブユニット）を含む受容体を介して作用するサイトカインを示す。より具体的には、インターロイキン２（ＩＬ－２）、インターロイキン４（ＩＬ－４）、インターロイキン７（ＩＬ－７）、インターロイキン９（ＩＬ－９）、インターロイキン１５（ＩＬ－１５）、及びインターロイキン２１（ＩＬ－２１）が挙げられ、これらのいずれか１種であっても、２種以上の組み合わせであってもよい。中でも、細胞の生存及び増殖をより維持する観点からは、インターロイキン７、インターロイキン１５、インターロイキン２１、及びこれらの２種以上の組み合わせがより好ましい。
【0084】
前記Ｔ細胞標識用培地において、前記共通γ鎖ファミリーサイトカインの含有量（共通γ鎖ファミリーサイトカインが２種以上である場合にはそれらの合計含有量、以下同じ）としては、Ｔ細胞の性状等を考慮して適宜決定することができるため、これに限定されるものではないが、１～１０００ｎｇ／ｍＬであることが好ましく、５～１００ｎｇ／ｍＬであることがより好ましく、５～２０ｎｇ／ｍＬであることがさらに好ましい。前記共通γ鎖ファミリーサイトカインの含有量が前記上限を超えると、共通γ鎖ファミリーサイトカインを含有させることの効果が低下したり細胞増殖を阻害する傾向にあり、他方、前記下限未満であると、前記標識アミノ酸で標識されたポリペプチドを分泌又は細胞外に露出する細胞数が少なくなり、ポリペプチドの検出精度が低下する傾向にある。
【0085】
前記Ｔ細胞標識用培地としては、前記必須アミノ酸を除くため、血清を含有しないか、含有する場合には前記必須アミノ酸が除かれた透析血清であることが好ましい。また、前記Ｔ細胞標識用培地としては、他に、血清アルブミンやＩＴＳ（インスリン－トランスフェリン－亜セレン酸ナトリウム）などの細胞保護添加剤；ＥＣＭ（細胞外基質）成分等の足場剤等を含有していてもよい。これらのＴ細胞標識用培地又はその基礎培地としては、目的の必須アミノ酸を含有しない限り特に制限されず、ＤＭＥＭ（ダルベッコ改変イーグル培地）、ＲＰＭＩ（ロズウェルパーク記念研究所培地）、αＭＥＭ（α改変型イーグル最小必須培地）等の基礎培地；Ｔ細胞専用の無血清培地であるＡＩＭ ＶＴＭ培地（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）；ＰＲＩＭＥ－ＸＶ Ｔ ｃｅｌｌ Ｅｘｐａｎｓｉｏｎ ＸＳＦＭ（富士フイルム和光純薬社製）等の公知や市販のＴ細胞用の培地を適宜採用することができる。
【0086】
前記標識工程では、前記Ｔ細胞標識用培地でＴ細胞を培養する。これにより、前記標識アミノ酸をＴ細胞に取り込ませ、Ｔ細胞から前記標識アミノ酸で標識されたポリペプチド（Ｔ細胞由来ポリペプチド）を分泌又は細胞外に露出させる。前記標識工程における培養方法としては、特に制限されず、公知のＴ細胞の増殖培養条件を適宜採用することができ、また、Ｔ細胞の性状や濃度等を考慮して適宜調整することができるが、例えば、培養温度３５～３７．５℃、好ましくは３６～３７℃において、培養時間２～４８時間、好ましくは８～２４時間の条件が挙げられる。前記標識工程の培養装置としては、特に制限されず、例えば、プレート、ディッシュ、カラム、フラスコ、培養バッグ等が挙げられ、前記Ｔ細胞標識用培地等を供給するための供給手段や排出するための排出手段（センサ、バルブ、ポンプ、タンク等）をさらに備えていてもよい。
【0087】
前記検出工程Ａでは、前記標識アミノ酸で標識され、分泌又は細胞外に露出されたＴ細胞由来ポリペプチドを検出する。前記検出工程Ａとしては、前記標識工程と同時（リアルタイム）で行なってもよい。前記検出工程Ａにおける検出方法としては、前記標識アミノ酸の種類に応じた検出方法を適宜採用することができる。このような検出方法としては、特に制限されず、適宜公知の方法又はそれに準じた方法を適宜採用することができる。前記標識アミノ酸が同位体標識アミノ酸又はアミノ酸の構造的類似体である場合には、例えば、前記標識工程後又は標識工程中（すなわち培養途中）の培地について、ガス同位体比質量分析、同位体比赤外分光、液体クロマトグラフ質量分析（ＬＣ－ＭＳ／ＭＳ）等の質量分析を行うことによって、前記標識アミノ酸に応じたシグナルを検出し、検出されたシグナル量を前記標的ポリペプチドの量（すなわち、標的遺伝子の発現量）とすることができる。
【0088】
また、前記標識アミノ酸がアミノ酸の構造的類似体である場合には、前記修飾基に特異的な染色をすることによって検出することができる。例えば、前記修飾基がアジド基である場合（ＡＨＡ等）には、当該アジド基をＣｌｉｃｋ－ｉＴＴＭ Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ４８８ ｓＤＩＢＯ Ａｌｋｙｎｅ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）等の蛍光試薬によって染色することができるため、蛍光顕微鏡、フローサイトメトリー、イメージングサイトメトリー等を用いて、前記標識アミノ酸に応じたシグナル（発色、蛍光等）を検出し、検出されたシグナル量を前記標的ポリペプチドの量（すなわち、標的遺伝子の発現量）とすることができる。
【0089】
また、翻訳レベルでの検出の場合の検出方法としては、他にも例えば、標的ポリペプチドの糖鎖を認識して検出する方法も挙げられる。このような方法としては、例えば、Ｃｌｉｃｋ－ｉＴＴＭ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）等の市販の試薬を用いる方法が挙げられる。前記翻訳レベルでの検出の場合の検出方法は、適宜他の方法と組み合わせて用いてもよい。
【0090】
本発明において、前記遺伝子の発現の検出としては、簡便性の観点から、翻訳レベルでの検出（前記標的ポリペプチドの検出）であることが好ましく、特に、前記抗ポリペプチド抗体を用いて前記標的ポリペプチドを検出する方法が好ましい。
【0091】
［評価工程］
本発明の方法に係る評価工程においては、前記検出工程で検出された標的遺伝子の発現の有無又はその発現量を指標として、Ｔ細胞の品質を評価する。本発明において評価されるＴ細胞の品質としては、増殖能、がん細胞傷害活性が挙げられ、中でも、本発明の方法は、Ｔ細胞の増殖能を評価する方法として好ましい。「増殖能」とは、より具体的には、Ｉｎ ｖｉｔｒｏ又はＩｎ ｖｉｖｏにおいて、ＴＣＲ刺激又は抗原刺激によってＴ細胞が活性化し、細胞傷害活性を有する細胞が増加する能力を示す。Ｔ細胞の増殖能は、例えば、下記の実施例に示す方法でＴ細胞のＴＣＲをＴＣＲ刺激磁性ビーズで刺激し、刺激前の細胞数と刺激から１４日後の細胞数との比で確認することができるが、これに制限されない。
本発明の方法に係る評価工程においては、前記検出工程で検出された標的遺伝子の発現の有無又はその発現量を指標として、Ｔ細胞の品質を評価する。本発明において評価されるＴ細胞の品質としては、増殖能、がん細胞傷害活性が挙げられ、中でも、本発明の方法は、Ｔ細胞の増殖能を評価する方法として好ましい。「増殖能」とは、より具体的には、Ｉｎ ｖｉｔｒｏ又はＩｎ ｖｉｖｏにおいて、ＴＣＲ刺激又は抗原刺激によってＴ細胞が活性化し、細胞傷害活性を有する細胞が増加する能力を示す。Ｔ細胞の増殖能は、例えば、下記の実施例に示す方法でＴ細胞のＴＣＲをＴＣＲ刺激磁性ビーズで刺激し、刺激前の細胞数と刺激から１４日後の細胞数との比で確認することができるが、これに制限されない。
【0092】
本発明においては、前記検出工程で検出された、表１～５に示す標的遺伝子のうち、主成分負荷量の値が正の遺伝子は、当該遺伝子の発現量が多いほど、増殖能が高い、すなわち品質が良いと評価することができる。他方、主成分負荷量の値が負の遺伝子は、当該遺伝子の発現量が多いほど、増殖能が低い、すなわち品質が悪いと評価することができる。前記Ｔ細胞の品質の評価基準としては、目的に応じて適宜設定すればよく、特に限定されるものではない。例えば、前記検出工程で、前記標的遺伝子の発現レベル（標的遺伝子の転写レベルや翻訳レベル）に応じた標的遺伝子の発現が少しでも検出されれば、すなわち、前記標的ポリヌクレオチドや前記標的ポリペプチドが少しでも検出されれば、Ｔ細胞の増殖能が高い（又は低い）と評価してもよく、一定の閾値以上の標的遺伝子の発現量が検出されれば、Ｔ細胞の増殖能が高い（又は低い）と評価してもよい。また前記標的遺伝子の発現量に応じて、Ｔ細胞の増殖能の度合いを評価してもよい。例えば、増殖能が高い（又は低い）ことが事前に特定されているＴ細胞等の標準試料で検出される前記標的遺伝子の発現量に対して、一定の値以上、又は当該標的遺伝子の発現量の平均値の４ＳＤ以上、３ＳＤ以上、若しくは２ＳＤ以上のシグナル量であれば、増殖能が高い（又は低い）、すなわち品質が良い（又は悪い）と評価してもよい。
【0093】
＜Ｔ細胞評価用試薬、Ｔ細胞評価用キット＞
本発明のＴ細胞評価用試薬は、前記本発明のＴ細胞の評価方法に用いるための試薬（組成物）であり、下記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子の発現産物に特異的に結合するプローブ分子を含有する試薬（以下、場合により、単に「本発明の試薬」という）である。
（Ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
本発明のＴ細胞評価用試薬は、前記本発明のＴ細胞の評価方法に用いるための試薬（組成物）であり、下記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子の発現産物に特異的に結合するプローブ分子を含有する試薬（以下、場合により、単に「本発明の試薬」という）である。
（Ｉ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列において、１若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
（ＩＩＩ）配列番号１～７７のいずれか１つに記載のアミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
【0094】
本発明の試薬において、前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子、及び前記遺伝子の発現産物としては、その好ましい態様も含めて、上記の本発明の方法において述べたとおりである。本発明の試薬に係るプローブ分子としては、上記の本発明の方法において挙げた、オリゴヌクレオチドプローブ、オリゴヌクレオチドプライマー、抗ポリペプチド抗体、及びアプタマーが挙げられ、それぞれ、その好ましい態様も含めて、上記の本発明の方法において述べたとおりである。前記プローブ分子としては、これらのいずれか１種であっても２種以上の組み合わせであってもよい。中でも、前記抗ポリペプチド抗体及び／又は前記アプタマーが好ましく、前記抗ポリペプチド抗体がより好ましい。
【0095】
本発明の試薬は、液体であっても粉末状等の固体であってもよく、前記プローブ分子に加えて、緩衝液、生理食塩水、安定剤、保存剤、防腐剤、培地等の他の成分がさらに含有されていてもよい。
【0096】
本発明のＴ細胞評価用キットは、前記本発明のＴ細胞の評価方法に用いるためのキットであり、前記（Ｉ）～（ＩＩＩ）の遺伝子からなる群から選択される少なくとも１種の遺伝子の発現産物に特異的に結合するプローブ分子を備えるキット（以下、場合により、単に「本発明のキット」という）である。
【0097】
本発明のキットに係るプローブ分子としては、前記本発明の試薬であることが好ましい。また、本発明のキットは、前記プローブ分子に加えて、緩衝液、生理食塩水等の希釈又は懸濁用液；ＤＮＡ又はタンパク質を抽出及び／又は精製するための試薬；ブロッキング剤；キレート剤；前記標識物質；前記蛍光色素；前記検出工程に必要な試薬；ｐＨ調整剤等の試薬；標準試料；使用説明書；安全データシート（Ｓａｆｅｔｙ Ｄａｔａ Ｓｈｅｅｔ）等をさらに備えていてもよい。
【実施例0098】
以下、実施例に基づいて本発明をより具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
【0099】
１．Ｔ細胞の品質（増殖能）評価
（１）下記の表１１に示すＴ細胞株２４種類を解凍し、９６ｗｅｌｌプレートの培地Ａ（１５％（ｗ／ｖ）ウシ胎児血清（ＦＢＳ、ＢｉｏＷｅｓｔ社製）、５ｎｇ／ｍＬインターロイキン７（ＩＬ－７）、及び５ｎｇ／ｍＬインターロイキン１５（ＩＬ－１５）を添加したαＭＥＭ（α改変型イーグル最小必須培地））に、それぞれ１×１０６ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで播種した。
（１）下記の表１１に示すＴ細胞株２４種類を解凍し、９６ｗｅｌｌプレートの培地Ａ（１５％（ｗ／ｖ）ウシ胎児血清（ＦＢＳ、ＢｉｏＷｅｓｔ社製）、５ｎｇ／ｍＬインターロイキン７（ＩＬ－７）、及び５ｎｇ／ｍＬインターロイキン１５（ＩＬ－１５）を添加したαＭＥＭ（α改変型イーグル最小必須培地））に、それぞれ１×１０６ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで播種した。
【0100】
（２）Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）刺激磁性ビーズ（Ｄｙｎａｂｅａｄｓ Ｈｕｍａｎ Ｔ－Ａｃｔｉｖａｔｏｒ ＣＤ３／ＣＤ２８ ｆｏｒ Ｔ Ｃｅｌｌ Ｅｘｐａｎｓｉｏｎ ａｎｄ Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製））を用いて、播種したＴ細胞のＴＣＲをそれぞれ刺激後、培地Ａで適宜培地交換しながら、５％ＣＯ２、３７℃の条件下で１４日間培養した。
【0101】
（３）培養１４日目の刺激後の各Ｔ細胞を血球算定盤を用いて計数し、次式：
増殖倍率＝ＴＣＲ刺激後の１４日間培養後のＴ細胞数／ＴＣＲ刺激前のＴ細胞数
により、各Ｔ細胞における増殖倍率（Ｆｏｌｄ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ）を算出した。結果を下記の表１１に合わせて示す。増殖倍率の値より、同増殖倍率が２０以上となったＴ細胞（表１１の細胞Ｎｏ．１～１２のＴ細胞）を「高品質Ｔ細胞」に、同増殖倍率が２０未満となったＴ細胞（表１１の細胞Ｎｏ．１３～２４のＴ細胞）を「低品質Ｔ細胞」に、それぞれ分類した。
増殖倍率＝ＴＣＲ刺激後の１４日間培養後のＴ細胞数／ＴＣＲ刺激前のＴ細胞数
により、各Ｔ細胞における増殖倍率（Ｆｏｌｄ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ）を算出した。結果を下記の表１１に合わせて示す。増殖倍率の値より、同増殖倍率が２０以上となったＴ細胞（表１１の細胞Ｎｏ．１～１２のＴ細胞）を「高品質Ｔ細胞」に、同増殖倍率が２０未満となったＴ細胞（表１１の細胞Ｎｏ．１３～２４のＴ細胞）を「低品質Ｔ細胞」に、それぞれ分類した。
【0102】
【表11】
【0103】
２．Ｔ細胞のトランスクリプトーム解析
（１）上記１の（３）で高品質Ｔ細胞（１２種類）及び低品質Ｔ細胞（１２種類）に分類したＴ細胞と同じ株のＴ細胞（ＴＣＲ未刺激）について、それぞれ、上記１の（１）～（２）と同様にしてＴＣＲ刺激磁性ビーズを用いてＴＣＲを刺激し、培地Ａで適宜培地交換しながら、５％ＣＯ２、３７℃の条件下で培養した。
（１）上記１の（３）で高品質Ｔ細胞（１２種類）及び低品質Ｔ細胞（１２種類）に分類したＴ細胞と同じ株のＴ細胞（ＴＣＲ未刺激）について、それぞれ、上記１の（１）～（２）と同様にしてＴＣＲ刺激磁性ビーズを用いてＴＣＲを刺激し、培地Ａで適宜培地交換しながら、５％ＣＯ２、３７℃の条件下で培養した。
【0104】
（２）ＴＣＲ刺激後０日目（ｄａｙ０）、６日目（ｄａｙ６）及び１４日目（ｄａｙ１４）の細胞をそれぞれ回収し、先ず、ＲＮｅａｓｙ Ｍｉｃｒｏ Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社製）を用いて、Ｔｏｔａｌ ＲＮＡを抽出した。次いで、抽出したＴｏｔａｌ ＲＮＡ １０ｎｇから、ＳＭＡＲＴ－Ｓｅｑ ｖ４ Ｕｌｔｒａ Ｌｏｗ Ｉｎｐｕｔ ＲＮＡ Ｋｉｔ ｆｏｒ Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社製）を用いて、ｃＤＮＡを合成・増幅した。
【0105】
（３）（２）で得られたｃＤＮＡ １ｎｇ分を使用して、Ｎｅｘｔｅｒａ ＸＴ ＤＮＡ Ｌｉｂｒａｒｙ Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｉｌｌｕｍｉｎａ社製）及びＮｅｘｔｅｒａ ＸＴ ｖ２ Ｉｎｄｅｘ Ｋｉｔ Ｓｅｔ Ａ（Ｉｌｌｕｍｉｎａ社製）を用いてライブラリー調製を行ない、Ｎｅｘｔ－ｓｅｑ５００（ｉｌｌｕｍｉｎａ社製）を用いて、リード長：７５ｂｐ、ｓｉｎｇｌｅ ｅｎｄ ｒｅａｄの条件でシークエンス解析を行うことにより、１試料あたり５００万リード以上の遺伝子を解読した。
【0106】
（４）（３）で解読した遺伝子（シークエンスデータ）をＴｏｐＨａｔ２（ＪＯＨＮＳ ＨＯＰＫＩＮＳ大学）及びＢｏｗｔｉｅ２（ＪＯＨＮＳ ＨＯＰＫＩＮＳ大学）を用いて、ヒトゲノム配列にマップした。なお、ヒトゲノム配列情報及びヒト遺伝子情報には、ＮＣＢＩ（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ）より公開されているＢＵＩＬＤ ＧＲＣｈ３８を使用した。マップした遺伝子について、Ｃｕｆｆｌｉｎｋｓ（Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ大学）によって、解読した各遺伝子のリード数から、ＦＰＫＭ（Ｆｒａｇｍｅｎｔｓ Ｐｅｒ Ｋｉｌｏｂａｓｅ ｏｆ ｅｘｏｎ ｐｅｒ Ｍｉｌｌｉｏｎ ｒｅａｄｓ ｍａｐｐｅｄ）を単位とする遺伝子ごとの発現量を求めた。
【0107】
３．Ｔ細胞のセクレトーム解析
（１）上記１の（３）で高品質Ｔ細胞（１２種類）及び低品質Ｔ細胞（１２種類）に分類したＴ細胞と同じ株のＴ細胞（ＴＣＲ未刺激）について、それぞれ、上記１の（１）～（２）と同様にしてＴＣＲ刺激磁性ビーズを用いてＴＣＲを刺激し、培地Ａで適宜培地交換しながら、５％ＣＯ２、３７℃の条件下で培養した。
（１）上記１の（３）で高品質Ｔ細胞（１２種類）及び低品質Ｔ細胞（１２種類）に分類したＴ細胞と同じ株のＴ細胞（ＴＣＲ未刺激）について、それぞれ、上記１の（１）～（２）と同様にしてＴＣＲ刺激磁性ビーズを用いてＴＣＲを刺激し、培地Ａで適宜培地交換しながら、５％ＣＯ２、３７℃の条件下で培養した。
【0108】
（２）ＴＣＲ刺激後６日目の細胞をそれぞれ１×１０６ｃｅｌｌｓ回収し、１５％（ｗ／ｖ）透析ＦＢＳ、４ｍｍｏｌ／Ｌ Ｌ－グルタミン、ＩＴＳ（インシュリン－トランスフェリン－亜セレン酸ナトリウム）サプリメント（×１）、５０μｇ／ｍＬアスコルビン酸、５ｎｇ／ｍＬ ＩＬ－７、及び５ｎｇ／ｍＬ ＩＬ－１５を添加したαＭＥＭ（－Ｍｅｔ）培地（α改変型イーグル最小必須培地、メチオニン不含有）で懸濁して、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で１時間培養後、０．００６２５ｍｍｏｌ／Ｌ Ｌ－アジドホモアラニン（ＡＨＡ）、１５％（ｗ／ｖ）透析ＦＢＳ、４ｍｍｏｌ／Ｌ Ｌ－グルタミン、ＩＴＳ（インシュリン－トランスフェリン－亜セレン酸ナトリウム）サプリメント（×１）、５０μｇ／ｍＬアスコルビン酸、５ｎｇ／ｍＬ ＩＬ－７、及び５ｎｇ／ｍＬ ＩＬ－１５を添加したαＭＥＭ（－Ｍｅｔ）培地を用いて、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で２４時間培養した。
【0109】
（３）培養後、培養上清０．４ｍＬを回収し、培養上清に分泌された、ＡＨＡで標識されたタンパク質（セクレトーム）を、Ｃｌｉｃｋ－ｉＴＴＭ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｒｉｃｈｍｅｎｔ Ｋｉｔ，ｆｏｒ ｃｌｉｃｋ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ｃａｐｔｕｒｅ ｏｆ ａｚｉｄｅ－ｍｏｄｉｆｉｅｄ ｐｒｏｔｅｉｎ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）を用いて、前記ＡＨＡのアジド基をアルキンアガロース樹脂に捕捉させることで抽出した。
【0110】
（４）（３）で抽出したタンパク質をＬＣ－ＭＳ／ＭＳ（Ｕｌｔｉｍａｔｅ ３０００ ＲＳＬＣｎａｎｏ及びＱ Ｅｘａｃｔｉｖｅ、いずれもＴｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）で解析した。解析データから、Ｐｒｏｔｅｏｍｅ Ｄｉｓｃｏｖｅｒｅｒソフトウェア（ｖｅｒ．２．２、Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）を用いて、抽出したタンパク質のアミノ酸配列を抽出した。
【0111】
（５）Ｍａｓｃｏｔソフトウェア（ｖｅｒ．２．５、Ｍａｔｒｉｘ Ｓｃｉｅｎｃｅ 社製）を用い、下記（Ａ）～（Ｃ）に記載のアミノ酸配列を組み合わせて構築したデータベースと照合することで、決定したアミノ酸配列からタンパク質を同定した。なお、有意なタンパク質の同定は、同定のスコア閾値を、Ｆａｌｓｅ ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ ｒａｔｅ（ＦＤＲ）が１％になるように調整して行なった。同定したタンパク質は、Ｐｒｏｔｅｏｍｅ Ｄｉｓｃｏｖｅｒｅｒ ２．２のＬａｂｅｌ Ｆｒｅｅ Ｑｕａｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ（ＬＦＱ）を用いて定量した。
（Ａ）ＳｗｉｓｓＰｒｏｔ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｕｎｉｐｒｏｔ．ｏｒｇ／）２０１８＿１１版に登録されているヒト（Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ）由来のタンパク質エントリー（計２０４１３件）；
（Ｂ）ＳｗｉｓｓＰｒｏｔ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｕｎｉｐｒｏｔ．ｏｒｇ／）２０１８＿１１版に登録されているウシ（Ｂｏｓ ｔａｕｒｕｓ）由来のタンパク質エントリー（計５９９２件）；
（Ｃ）Ｔｈｅ Ｇｌｏｂａｌ Ｐｒｏｔｅｏｍｅ Ｍａｃｈｉｎｅ Ｏｒｇａｎｉｚａｔｉｏｎ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｔｈｅｇｐｍ．ｏｒｇ／ｃｒａｐ／ｉｎｄｅｘ．ｈｔｍｌ）から取得した、ヒト由来及びウシ由来以外のタンパク質汚染物のアミノ酸配列（計４６件）。
（Ａ）ＳｗｉｓｓＰｒｏｔ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｕｎｉｐｒｏｔ．ｏｒｇ／）２０１８＿１１版に登録されているヒト（Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ）由来のタンパク質エントリー（計２０４１３件）；
（Ｂ）ＳｗｉｓｓＰｒｏｔ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｕｎｉｐｒｏｔ．ｏｒｇ／）２０１８＿１１版に登録されているウシ（Ｂｏｓ ｔａｕｒｕｓ）由来のタンパク質エントリー（計５９９２件）；
（Ｃ）Ｔｈｅ Ｇｌｏｂａｌ Ｐｒｏｔｅｏｍｅ Ｍａｃｈｉｎｅ Ｏｒｇａｎｉｚａｔｉｏｎ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｔｈｅｇｐｍ．ｏｒｇ／ｃｒａｐ／ｉｎｄｅｘ．ｈｔｍｌ）から取得した、ヒト由来及びウシ由来以外のタンパク質汚染物のアミノ酸配列（計４６件）。
【0112】
４．主成分分析（ＰＣＡ）
上記２のトランスクリプトーム解析の（４）及び上記３のセクレトーム解析の（５）より、以下の（ａ）～（ｄ）：
（ａ）ｄａｙ０の試料においてトランスクリプトーム解析によりマップされた１２，８２９遺伝子（トランスクリプトームｄａｙ０）及びそれらの発現量、
（ｂ）ｄａｙ６の試料においてトランスクリプトーム解析によりマップされた１２，２７０遺伝子（トランスクリプトームｄａｙ６）及びそれらの発現量、
（ｃ）ｄａｙ１４の試料においてトランスクリプトーム解析によりマップされた１２，０１３遺伝子（トランスクリプトームｄａｙ１４）及びそれらの発現量、
（ｄ）セクレトーム解析により同定されたタンパク質をコードする８００遺伝子（セクレトーム）及びそれらの発現量
のデータが得られた。ただし、（ａ）～（ｄ）の各遺伝子数には、低発現又は無発現の遺伝子を含めていない。各Ｔ細胞（２３種類：細胞Ｎｏ．１～２１、２３、２４）における、これら（ａ）～（ｄ）を結合した全３７，９１２遺伝子のデータについて、主成分分析（ＰＣＡ）を行なった。なお、細胞Ｎｏ．２２のＴ細胞は、上記２のトランスクリプトーム解析におけるｄａｙ１４の細胞が得られなかったため、結果に含めていない。
上記２のトランスクリプトーム解析の（４）及び上記３のセクレトーム解析の（５）より、以下の（ａ）～（ｄ）：
（ａ）ｄａｙ０の試料においてトランスクリプトーム解析によりマップされた１２，８２９遺伝子（トランスクリプトームｄａｙ０）及びそれらの発現量、
（ｂ）ｄａｙ６の試料においてトランスクリプトーム解析によりマップされた１２，２７０遺伝子（トランスクリプトームｄａｙ６）及びそれらの発現量、
（ｃ）ｄａｙ１４の試料においてトランスクリプトーム解析によりマップされた１２，０１３遺伝子（トランスクリプトームｄａｙ１４）及びそれらの発現量、
（ｄ）セクレトーム解析により同定されたタンパク質をコードする８００遺伝子（セクレトーム）及びそれらの発現量
のデータが得られた。ただし、（ａ）～（ｄ）の各遺伝子数には、低発現又は無発現の遺伝子を含めていない。各Ｔ細胞（２３種類：細胞Ｎｏ．１～２１、２３、２４）における、これら（ａ）～（ｄ）を結合した全３７，９１２遺伝子のデータについて、主成分分析（ＰＣＡ）を行なった。なお、細胞Ｎｏ．２２のＴ細胞は、上記２のトランスクリプトーム解析におけるｄａｙ１４の細胞が得られなかったため、結果に含めていない。
【0113】
前記ＰＣＡで得られた散布図を図１に示す。図１より、高品質Ｔ細胞（細胞Ｎｏ．１～１２）では第一主成分（ＰＣ１）スコアが高く、低品質Ｔ細胞（細胞Ｎｏ．１３～２１、２３、２４）ではＰＣ１スコアが低かった。２３種類の増殖倍率の降順（増殖順位）とＰＣ１スコア（ＰＣ１）及びその降順（ＰＣ１順位）との関係を下記の表１２及び図２に示す。
【0114】
【表12】
【0115】
表１２及び図２より、Ｔ細胞の増殖順位とＰＣ１順位との間の相関係数（Ｒ）は０．９６１５となり、細胞の品質（この場合、増殖能）とＰＣ１スコアとの間に高い相関が認められた。ＰＣＡでは、主成分スコアの係数と主成分負荷量の値とはほぼ比例するため、第一主成分の主成分負荷量の値が高い変数（この場合、変数は各遺伝子の発現量）は、第一主成分の正方向に寄与し、第一主成分の主成分負荷量の値が低い（負値の）変数は、第一主成分の負方向に寄与する。そのため、第一主成分の主成分負荷量の値が高い遺伝子は、ＰＣ１スコアが高い細胞、すなわち、高品質Ｔ細胞で発現し、第一主成分の主成分負荷量が低い遺伝子は、ＰＣ１スコアが低い細胞、すなわち、低品質Ｔ細胞で発現することがわかった。
【0116】
そこで、前記ＰＣＡより、上記（ａ）～（ｄ）で得られた各遺伝子の発現量について、第一主成分の主成分負荷量（ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ｌｏａｄｉｎｇ）をそれぞれ求めた。上記（ａ）～（ｄ）の全３７，９１２遺伝子のうち、第一主成分への寄与率が高く（具体的には、遺伝子の発現量の第一主成分に対する主成分負荷量の絶対値が０．９以上）、かつ、膜貫通型タンパク質をコードする遺伝子は、上記の表１～２に示した遺伝子である。また、第一主成分への寄与率が高く（具体的には、遺伝子の発現量の第一主成分に対する主成分負荷量の絶対値が０．９以上）、かつ、膜貫通型タンパク質以外のタンパク質をコードする遺伝子は、上記の表３～５に示した遺伝子である。表１～５には、各遺伝子について、「由来データ」の欄に上記（ａ）～（ｄ）の別をそれぞれ示し、また、上記で得られた第一主成分に対する主成分負荷量も合わせて示した。
【0117】
５．Ｔ細胞の品質（増殖能）とマーカータンパク質の発現との相関性（その１）
「４．主成分分析」の結果、第一主成分への寄与率が高い遺伝子の中から、ＩＴＧＢ７（ヌクレオチド配列番号８４）、ＢＭＰＲ２（ヌクレオチド配列番号９２）、ＴＰ５３Ｉ３（ヌクレオチド配列番号１０４）、及びＬＧＡＬＳ８（ヌクレオチド配列番号１２１）を選択し、これら遺伝子から翻訳されるタンパク質の発現量とＴ細胞の品質との相関性を確認した。
「４．主成分分析」の結果、第一主成分への寄与率が高い遺伝子の中から、ＩＴＧＢ７（ヌクレオチド配列番号８４）、ＢＭＰＲ２（ヌクレオチド配列番号９２）、ＴＰ５３Ｉ３（ヌクレオチド配列番号１０４）、及びＬＧＡＬＳ８（ヌクレオチド配列番号１２１）を選択し、これら遺伝子から翻訳されるタンパク質の発現量とＴ細胞の品質との相関性を確認した。
【0118】
（１）ＴＣＲ刺激前の細胞（ｄａｙ０）試料調製
（１－１）１０種類のＴ細胞株(表１１に示す細胞Ｎｏ.５、１０、１１、１３、１５、１６、１８、１９、２２、２４)を解凍し、９６ｗｅｌｌプレートの培地Ａ（１５％（ｗ／ｖ）ＦＢＳ（ＢｉｏＷｅｓｔ社製）、５ｎｇ／ｍＬ ＩＬ－７、及び５ｎｇ／ｍＬ ＩＬ－１５を添加したαＭＥＭ）に、それぞれ１×１０６ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで播種した。
（１－２）播種した細胞を、Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ Ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ（ＰＢＳ）（－）１ｍＬに懸濁し凍結融解を３回繰り返す操作、又はＬｙｓｉｓ ｂｕｆｆｅｒ ３（Ｍｙｂｉｏｓｏｕｒｃｅ社製）１ｍＬ添加する操作により、溶解し、これを「刺激前細胞試料（ｄａｙ０）」とした。
（１－１）１０種類のＴ細胞株(表１１に示す細胞Ｎｏ.５、１０、１１、１３、１５、１６、１８、１９、２２、２４)を解凍し、９６ｗｅｌｌプレートの培地Ａ（１５％（ｗ／ｖ）ＦＢＳ（ＢｉｏＷｅｓｔ社製）、５ｎｇ／ｍＬ ＩＬ－７、及び５ｎｇ／ｍＬ ＩＬ－１５を添加したαＭＥＭ）に、それぞれ１×１０６ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで播種した。
（１－２）播種した細胞を、Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ Ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ（ＰＢＳ）（－）１ｍＬに懸濁し凍結融解を３回繰り返す操作、又はＬｙｓｉｓ ｂｕｆｆｅｒ ３（Ｍｙｂｉｏｓｏｕｒｃｅ社製）１ｍＬ添加する操作により、溶解し、これを「刺激前細胞試料（ｄａｙ０）」とした。
【0119】
（２）ＴＣＲ刺激後の細胞（ｄａｙ２）試料調製
（２－１）１１種類のｉＰＳ－Ｔ細胞株（表１１に示す細胞Ｎｏ.５、１０、１１、１３、１６、１８～２０、２２～２４）を解凍し、９６ｗｅｌｌプレートの培地Ａに、それぞれ１×１０６ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで播種した。
（２－２）Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）刺激磁性ビーズ（Ｄｙｎａｂｅａｄｓ Ｈｕｍａｎ Ｔ－Ａｃｔｉｖａｔｏｒ ＣＤ３／ＣＤ２８ ｆｏｒ Ｔ Ｃｅｌｌ Ｅｘｐａｎｓｉｏｎ ａｎｄ Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製））を用いて、播種したＴ細胞のＴＣＲをそれぞれ刺激後、培地Ａで適宜培地交換しながら、５％ＣＯ２、３７℃の条件下で２日間培養した。
（２－３）培養後のｉＰＳ－Ｔ細胞を回収した（回収量：０．７×１０７～１×１０７ｃｅｌｌｓ）。
（２－４）回収した細胞を、（１－２）に記載の方法で溶解し、これを「刺激後細胞試料（ｄａｙ２）」とした。
（２－１）１１種類のｉＰＳ－Ｔ細胞株（表１１に示す細胞Ｎｏ.５、１０、１１、１３、１６、１８～２０、２２～２４）を解凍し、９６ｗｅｌｌプレートの培地Ａに、それぞれ１×１０６ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで播種した。
（２－２）Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）刺激磁性ビーズ（Ｄｙｎａｂｅａｄｓ Ｈｕｍａｎ Ｔ－Ａｃｔｉｖａｔｏｒ ＣＤ３／ＣＤ２８ ｆｏｒ Ｔ Ｃｅｌｌ Ｅｘｐａｎｓｉｏｎ ａｎｄ Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製））を用いて、播種したＴ細胞のＴＣＲをそれぞれ刺激後、培地Ａで適宜培地交換しながら、５％ＣＯ２、３７℃の条件下で２日間培養した。
（２－３）培養後のｉＰＳ－Ｔ細胞を回収した（回収量：０．７×１０７～１×１０７ｃｅｌｌｓ）。
（２－４）回収した細胞を、（１－２）に記載の方法で溶解し、これを「刺激後細胞試料（ｄａｙ２）」とした。
【0120】
（３）タンパク質発現量測定
（１）で調製した刺激前細胞試料（ｄａｙ０）、及び（２）で調製した刺激後細胞試料（ｄａｙ２）について、下記の市販のキットを用いて、ＥＬＩＳＡ法による各タンパク質発現量測定を行なった。
ＩＴＧＢ７（アミノ酸配列番号７）：Ｅｎｚｙｍｅ－ｌｉｎｋｅｄ Ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ Ａｓｓａｙ Ｋｉｔ Ｆｏｒ Ｉｎｔｅｇｒｉｎ Ｂｅｔａ ７（ＩＴＧｂ７）（Ｍｙｂｉｏｓｏｕｒｃｅ社製）
ＢＭＰＲ２（アミノ酸配列番号１５）：Ｈｕｍａｎ Ｂｏｎｅ Ｍｏｒｐｈｏｇｅｎｅｔｉｃ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｒｅｃｅｐｔｏｒ ＩＩ（ＢＭＰＲ－ＩＩ） ＥＬＩＳＡ Ｋｉｔ（Ｍｙｂｉｏｓｏｕｒｃｅ社製）
ＴＰ５３Ｉ３（アミノ酸配列番号２７）：ＴＰ５３Ｉ３ ｅｌｉｓａ ｋｉｔ（Ｍｙｂｉｏｓｏｕｒｃｅ社製）
ＬＧＡＬＳ８（アミノ酸配列番号４４）：Ｈｕｍａｎ Ｇａｌｅｃｔｉｎ ８ ＥＬＩＳＡ Ｋｉｔ（Ｍｙｂｉｏｓｏｕｒｃｅ社製）。
（１）で調製した刺激前細胞試料（ｄａｙ０）、及び（２）で調製した刺激後細胞試料（ｄａｙ２）について、下記の市販のキットを用いて、ＥＬＩＳＡ法による各タンパク質発現量測定を行なった。
ＩＴＧＢ７（アミノ酸配列番号７）：Ｅｎｚｙｍｅ－ｌｉｎｋｅｄ Ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ Ａｓｓａｙ Ｋｉｔ Ｆｏｒ Ｉｎｔｅｇｒｉｎ Ｂｅｔａ ７（ＩＴＧｂ７）（Ｍｙｂｉｏｓｏｕｒｃｅ社製）
ＢＭＰＲ２（アミノ酸配列番号１５）：Ｈｕｍａｎ Ｂｏｎｅ Ｍｏｒｐｈｏｇｅｎｅｔｉｃ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｒｅｃｅｐｔｏｒ ＩＩ（ＢＭＰＲ－ＩＩ） ＥＬＩＳＡ Ｋｉｔ（Ｍｙｂｉｏｓｏｕｒｃｅ社製）
ＴＰ５３Ｉ３（アミノ酸配列番号２７）：ＴＰ５３Ｉ３ ｅｌｉｓａ ｋｉｔ（Ｍｙｂｉｏｓｏｕｒｃｅ社製）
ＬＧＡＬＳ８（アミノ酸配列番号４４）：Ｈｕｍａｎ Ｇａｌｅｃｔｉｎ ８ ＥＬＩＳＡ Ｋｉｔ（Ｍｙｂｉｏｓｏｕｒｃｅ社製）。
【0121】
（４）相関係数算出
前記４つのタンパク質（ＩＴＧＢ７、ＢＭＰＲ２、ＴＰ５３Ｉ３、及びＬＧＡＬＳ８）について、増殖能（対数値）と前記タンパク質発現量（対数値）との相関係数を算出した。結果を下記の表１３に示す。
前記４つのタンパク質（ＩＴＧＢ７、ＢＭＰＲ２、ＴＰ５３Ｉ３、及びＬＧＡＬＳ８）について、増殖能（対数値）と前記タンパク質発現量（対数値）との相関係数を算出した。結果を下記の表１３に示す。
【0122】
【表13】
【0123】
６．Ｔ細胞の品質（増殖能）とマーカータンパク質の発現との相関性（その２）
「４．主成分分析」の結果、第一主成分への寄与率が高い遺伝子の中から、ＡＬＣＡＭ（ヌクレオチド配列番号８２）を選択し、当該遺伝子から翻訳されるタンパク質の発現量とＴ細胞の品質との相関性を確認した。
「４．主成分分析」の結果、第一主成分への寄与率が高い遺伝子の中から、ＡＬＣＡＭ（ヌクレオチド配列番号８２）を選択し、当該遺伝子から翻訳されるタンパク質の発現量とＴ細胞の品質との相関性を確認した。
【0124】
（１）１８種類のＴ細胞株（表１１に示す細胞Ｎｏ.５、８～２４）を０．５×１０７～１×１０７ｃｅｌｌｓ取得し、５．（１－２）に記載の方法で細胞を溶解して「刺激前細胞試料（ｄａｙ０）」とした。
【0125】
（２）（１）で調製した刺激前細胞試料（ｄａｙ０）をタンパク質量が３０μｇとなるようにそろえた後、抗体アレイ（Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ Ｅｘｐｌｏｒｅｒ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ａｒｒａｙ、Ｆｕｌｌ Ｍｏｏｎ ＢｉｏＳｙｓｔｅｍｓ社製）に添加し、付属のプロトコールにしたがってＡＬＣＡＭタンパク質発現量測定を行なった。
【0126】
（３）５．（４）と同様の方法で相関係数を算出した。結果を下記の表１４に示す。
【0127】
【表14】
【0128】
表１３及び表１４では、相関係数の絶対値が０．５以上であれば「相関性あり」と判断した。表１３及び表１４に示したように、刺激前細胞試料（ｄａｙ０）では、ＡＬＣＡＭ（アミノ酸配列番号５）及びＴＰ５３Ｉ３（アミノ酸配列番号２７）で増殖能とタンパク質の発現量との相関を確認した。このことから、ＡＬＣＡＭ及びＴＰ５３Ｉ３は、定常状態のときにＴ細胞の品質を評価できるマーカーといえる。一方、刺激後細胞試料（ｄａｙ２）では、ＩＴＧＢ７（アミノ酸配列番号７）、ＢＭＰＲ２（アミノ酸配列番号１５）、及びＬＧＡＬＳ８（アミノ酸配列番号４４）で増殖能とタンパク質の発現量との相関を確認した。このことから、ＩＴＧＢ７、ＢＭＰＲ２、及びＬＧＡＬＳ８は、ＴＣＲによる細胞刺激後の状態のときにＴ細胞の品質を評価できるマーカーといえる。また、これらの中でも、ＡＬＣＡＭ、ＢＭＰＲ２、及びＴＰ５３Ｉ３では、相関係数の絶対値が０．６以上であり、これら３つのタンパク質は、Ｔ細胞の品質を評価できるマーカーの特に好ましい態様といえる。
【産業上の利用可能性】
【0129】
本発明によれば、新たな指標によってＴ細胞の品質を評価できるＴ細胞の評価方法、及びそれに用いるＴ細胞評価用試薬を提供することが可能となる。
【図1】
【図2】
【配列表】