ホーム > 特許ランキング > 国立大学法人岩手大学
知財求人 - 知財ポータルサイト「IP Force」
(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】公開特許公報(A)
(11)【公開番号】P2024032794
(43)【公開日】2024-03-12
(54)【発明の名称】網膜の神経細胞の保護剤
(51)【国際特許分類】
C07C 323/25 20060101AFI20240305BHJP
A61K 31/131 20060101ALI20240305BHJP
A61P 27/02 20060101ALI20240305BHJP
A61P 25/00 20060101ALI20240305BHJP
A61P 27/06 20060101ALI20240305BHJP
A61K 31/16 20060101ALI20240305BHJP
【ＦＩ】
C07C323/25 CSP
A61K31/131
A61P27/02
A61P25/00
A61P27/06
A61K31/16
【審査請求】未請求
【請求項の数】6
【出願形態】ＯＬ
(21)【出願番号】P 2024004935
(22)【出願日】2024-01-17
(62)【分割の表示】P 2023523431の分割
【原出願日】2022-05-18
(31)【優先権主張番号】P 2021086920
(32)【優先日】2021-05-24
(33)【優先権主張国・地域又は機関】JP
(31)【優先権主張番号】P 2021172191
(32)【優先日】2021-10-21
(33)【優先権主張国・地域又は機関】JP
(71)【出願人】
【識別番号】504165591
【氏名又は名称】国立大学法人岩手大学
(74)【代理人】
【識別番号】100106611
【弁理士】
【氏名又は名称】辻田 幸史
(72)【発明者】
【氏名】山下 哲郎
(72)【発明者】
【氏名】尾▲崎▼ 拓
(57)【要約】
【課題】 網膜神経節細胞や網膜視細胞に例示される網膜の神経細胞の保護剤を提供すること。
【解決手段】 一般式：Ｒ１－（ＣＨ２）ｍ－ＳＲ２で表される化合物またはその薬学的に許容される塩を有効成分とする（式中、Ｒ１は－ＮＲ３Ｒ４または炭素数１～６のアルキル基を示す。Ｒ２は水素原子または－Ｓ－（ＣＨ２）ｎ－ＮＲ５Ｒ６を示す。Ｒ３～Ｒ６は同一または異なって水素原子またはアセチル基を示す。ｍとｎは同一または異なって２～４の整数を示す。）。
【選択図】 図１
【解決手段】 一般式：Ｒ１－（ＣＨ２）ｍ－ＳＲ２で表される化合物またはその薬学的に許容される塩を有効成分とする（式中、Ｒ１は－ＮＲ３Ｒ４または炭素数１～６のアルキル基を示す。Ｒ２は水素原子または－Ｓ－（ＣＨ２）ｎ－ＮＲ５Ｒ６を示す。Ｒ３～Ｒ６は同一または異なって水素原子またはアセチル基を示す。ｍとｎは同一または異なって２～４の整数を示す。）。
【選択図】 図１
【特許請求の範囲】
【請求項1】
一般式：Ｒ１－（ＣＨ２）ｍ－ＳＲ２で表される化合物またはその薬学的に許容される塩を有効成分とする網膜の神経細胞の保護剤（式中、Ｒ１は－ＮＲ３Ｒ４または炭素数１～６のアルキル基を示す。Ｒ２は水素原子または－Ｓ－（ＣＨ２）ｎ－ＮＲ５Ｒ６を示す。Ｒ３～Ｒ６は同一または異なって水素原子またはアセチル基を示す。ｍとｎは同一または異なって２～４の整数を示す。）。
【請求項2】
化合物が、
（ａ）Ｒ１が－ＮＨ２でＲ２が－Ｓ－（ＣＨ２）２－ＮＨ２でｍが２であるシスタミン
（ｂ）Ｒ１が－ＮＨ２でＲ２が水素原子でｍが２であるシステアミン
（ｃ）Ｒ１が－ＮＨＡｃ（Ａｃ：アセチル基）でＲ２が水素原子でｍが２であるＮ－アセチルシステアミン
のいずれかである、請求項１記載の網膜の神経細胞の保護剤。
（ａ）Ｒ１が－ＮＨ２でＲ２が－Ｓ－（ＣＨ２）２－ＮＨ２でｍが２であるシスタミン
（ｂ）Ｒ１が－ＮＨ２でＲ２が水素原子でｍが２であるシステアミン
（ｃ）Ｒ１が－ＮＨＡｃ（Ａｃ：アセチル基）でＲ２が水素原子でｍが２であるＮ－アセチルシステアミン
のいずれかである、請求項１記載の網膜の神経細胞の保護剤。
【請求項3】
網膜の神経細胞が、網膜神経節細胞および／または網膜視細胞である請求項１記載の網膜の神経細胞の保護剤。
【請求項4】
一般式：Ｒ１－（ＣＨ２）ｍ－ＳＲ２で表される化合物またはその薬学的に許容される塩を有効成分とする網膜神経変性疾患の予防および／または治療剤（式中、Ｒ１は－ＮＲ３Ｒ４または炭素数１～６のアルキル基を示す。Ｒ２は水素原子または－Ｓ－（ＣＨ２）ｎ－ＮＲ５Ｒ６を示す。Ｒ３～Ｒ６は同一または異なって水素原子またはアセチル基を示す。ｍとｎは同一または異なって２～４の整数を示す。）。
【請求項5】
網膜神経変性疾患が、緑内障、網膜色素変性、加齢黄斑変性の少なくとも１つである請求項４記載の網膜神経変性疾患の予防および／または治療剤。
【請求項6】
一般式：Ｒ１－（ＣＨ２）ｍ－ＳＲ２で表される化合物またはその薬学的に許容される塩を有効成分とする転写因子Ｃ／ＥＢＰ相同タンパク質（ＣＨＯＰ）発現抑制剤（式中、Ｒ１は－ＮＲ３Ｒ４または炭素数１～６のアルキル基を示す。Ｒ２は水素原子または－Ｓ－（ＣＨ２）ｎ－ＮＲ５Ｒ６を示す。Ｒ３～Ｒ６は同一または異なって水素原子またはアセチル基を示す。ｍとｎは同一または異なって２～４の整数を示す。）。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、網膜神経節細胞や網膜視細胞に例示される網膜の神経細胞の保護剤に関する。
【背景技術】
【0002】
日本における中途失明原因第１位は緑内障である。４０歳以上の２０人に１人が緑内障に罹患しているとの報告もあり、高齢化社会の進行とともに今後も緑内障患者は増加することが予想されている。緑内障は、眼圧が上昇（２１ｍｍＨｇ以上）することにより、網膜神経節細胞（Ｒｅｔｉｎａｌ Ｇａｎｇｌｉｏｎ Ｃｅｌｌ：ＲＧＣ）の死を引き起こすなどして視神経に異常をきたすことで、視力低下や視野狭窄を招き、最終的に失明に至る疾患である。従って、緑内障に対する治療には、眼圧降下薬を点眼して眼圧を降下させる方法が主として採用される。しかしながら、正常範囲の眼圧（２１ｍｍＨｇ未満）であっても緑内障を発症する患者が存在することが知られており、緑内障患者の全体のおよそ７割がこうした正常眼圧緑内障（Ｎｏｒｍａｌ Ｔｅｎｓｉｏｎ Ｇｌａｕｃｏｍａ：ＮＴＧ）であるとされている。正常眼圧緑内障では眼圧が正常範囲である。よって、正常眼圧緑内障に対して眼圧を降下させる治療を行っても、その効果は必ずしも十分でない。こうした臨床的背景から、緑内障に対する治療方法として、網膜神経節細胞を保護することによる方法が着目されており、例えば特許文献１では、ピロロキノリンキノンが網膜神経節細胞の保護作用を有することが報告されている。しかしながら、網膜神経節細胞を保護することによる緑内障の治療方法は、今なお確立されるには至っていない。また、網膜色素変性や加齢黄斑変性は、網膜視細胞を原発とする網膜神経変性疾患であるが、網膜視細胞を保護することによるこれらの治療方法についても同様の状況にある。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0003】
【特許文献1】特開２０１８－０３５０７６号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0004】
そこで本発明は、網膜神経節細胞や網膜視細胞に例示される網膜の神経細胞の保護剤を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【0005】
本発明者らは上記の点に鑑みて鋭意検討を行った結果、シスタミンやシステアミンが、網膜の神経細胞の保護作用を有し、網膜神経節細胞を原発とする緑内障、網膜視細胞を原発とする網膜色素変性や加齢黄斑変性などの、網膜神経変性疾患に対する予防や治療に有効であることを見出した。
【0006】
上記の知見に基づいてなされた本発明の網膜の神経細胞の保護剤は、請求項１記載の通り、一般式：Ｒ１－（ＣＨ２）ｍ－ＳＲ２で表される化合物またはその薬学的に許容される塩を有効成分とする（式中、Ｒ１は－ＮＲ３Ｒ４または炭素数１～６のアルキル基を示す。Ｒ２は水素原子または－Ｓ－（ＣＨ２）ｎ－ＮＲ５Ｒ６を示す。Ｒ３～Ｒ６は同一または異なって水素原子またはアセチル基を示す。ｍとｎは同一または異なって２～４の整数を示す。）。
また、請求項２記載の網膜の神経細胞の保護剤は、請求項１記載の網膜の神経細胞の保護剤において、化合物が、
（ａ）Ｒ１が－ＮＨ２でＲ２が－Ｓ－（ＣＨ２）２－ＮＨ２でｍが２であるシスタミン
（ｂ）Ｒ１が－ＮＨ２でＲ２が水素原子でｍが２であるシステアミン
（ｃ）Ｒ１が－ＮＨＡｃ（Ａｃ：アセチル基）でＲ２が水素原子でｍが２であるＮ－アセチルシステアミン
のいずれかである。
また、請求項３記載の網膜の神経細胞の保護剤は、請求項１記載の網膜の神経細胞の保護剤において、網膜の神経細胞が、網膜神経節細胞および／または網膜視細胞である。
また、本発明の網膜神経変性疾患の予防および／または治療剤は、請求項４記載の通り、一般式：Ｒ１－（ＣＨ２）ｍ－ＳＲ２で表される化合物またはその薬学的に許容される塩を有効成分とする（式中、Ｒ１は－ＮＲ３Ｒ４または炭素数１～６のアルキル基を示す。Ｒ２は水素原子または－Ｓ－（ＣＨ２）ｎ－ＮＲ５Ｒ６を示す。Ｒ３～Ｒ６は同一または異なって水素原子またはアセチル基を示す。ｍとｎは同一または異なって２～４の整数を示す。）。
また、請求項５記載の網膜神経変性疾患の予防および／または治療剤は、請求項４記載の網膜神経変性疾患の予防および／または治療剤において、網膜神経変性疾患が、緑内障、網膜色素変性、加齢黄斑変性の少なくとも１つである。
また、本発明の転写因子Ｃ／ＥＢＰ相同タンパク質（ＣＨＯＰ）発現抑制剤は、請求項６記載の通り、一般式：Ｒ１－（ＣＨ２）ｍ－ＳＲ２で表される化合物またはその薬学的に許容される塩を有効成分とする（式中、Ｒ１は－ＮＲ３Ｒ４または炭素数１～６のアルキル基を示す。Ｒ２は水素原子または－Ｓ－（ＣＨ２）ｎ－ＮＲ５Ｒ６を示す。Ｒ３～Ｒ６は同一または異なって水素原子またはアセチル基を示す。ｍとｎは同一または異なって２～４の整数を示す。）。
また、請求項２記載の網膜の神経細胞の保護剤は、請求項１記載の網膜の神経細胞の保護剤において、化合物が、
（ａ）Ｒ１が－ＮＨ２でＲ２が－Ｓ－（ＣＨ２）２－ＮＨ２でｍが２であるシスタミン
（ｂ）Ｒ１が－ＮＨ２でＲ２が水素原子でｍが２であるシステアミン
（ｃ）Ｒ１が－ＮＨＡｃ（Ａｃ：アセチル基）でＲ２が水素原子でｍが２であるＮ－アセチルシステアミン
のいずれかである。
また、請求項３記載の網膜の神経細胞の保護剤は、請求項１記載の網膜の神経細胞の保護剤において、網膜の神経細胞が、網膜神経節細胞および／または網膜視細胞である。
また、本発明の網膜神経変性疾患の予防および／または治療剤は、請求項４記載の通り、一般式：Ｒ１－（ＣＨ２）ｍ－ＳＲ２で表される化合物またはその薬学的に許容される塩を有効成分とする（式中、Ｒ１は－ＮＲ３Ｒ４または炭素数１～６のアルキル基を示す。Ｒ２は水素原子または－Ｓ－（ＣＨ２）ｎ－ＮＲ５Ｒ６を示す。Ｒ３～Ｒ６は同一または異なって水素原子またはアセチル基を示す。ｍとｎは同一または異なって２～４の整数を示す。）。
また、請求項５記載の網膜神経変性疾患の予防および／または治療剤は、請求項４記載の網膜神経変性疾患の予防および／または治療剤において、網膜神経変性疾患が、緑内障、網膜色素変性、加齢黄斑変性の少なくとも１つである。
また、本発明の転写因子Ｃ／ＥＢＰ相同タンパク質（ＣＨＯＰ）発現抑制剤は、請求項６記載の通り、一般式：Ｒ１－（ＣＨ２）ｍ－ＳＲ２で表される化合物またはその薬学的に許容される塩を有効成分とする（式中、Ｒ１は－ＮＲ３Ｒ４または炭素数１～６のアルキル基を示す。Ｒ２は水素原子または－Ｓ－（ＣＨ２）ｎ－ＮＲ５Ｒ６を示す。Ｒ３～Ｒ６は同一または異なって水素原子またはアセチル基を示す。ｍとｎは同一または異なって２～４の整数を示す。）。
【発明の効果】
【0007】
本発明によれば、網膜神経節細胞や網膜視細胞に例示される網膜の神経細胞の保護剤を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【0008】
【図1】実施例１における、シスタミンの神経細胞（マウス海馬由来の神経細胞株であるＨＴ２２細胞）に対する保護作用を示すグラフである。
【図2】実施例４における、正常眼圧緑内障モデルマウスにシスタミンを点眼することで網膜神経節細胞が保護されることを示すグラフである。
【図3】同、内網状層の菲薄化が抑制されることを示すグラフである。
【図4】同、網膜の菲薄化が抑制されることを示すグラフである。
【図5】実施例５における、正常眼圧緑内障モデルマウスにシステアミンを点眼することで網膜神経節細胞が保護されることを示すグラフである。
【図6】同、内網状層の菲薄化が抑制されることを示すグラフである。
【図7】同、網膜の菲薄化が抑制されることを示すグラフである。
【図8】実施例６における、網膜色素変性モデルマウスにシスタミンを点眼することで網膜外顆粒層の菲薄化が抑制されることを示すグラフである。
【図9】実施例７における、加齢黄斑変性モデルマウスにシスタミンを点眼することで網膜色素上皮細胞層由来の沈着物数の増加が抑制されることを示すグラフである。
【図10】同、網膜の菲薄化が抑制されることを示すグラフである。
【図11】実施例８における、加齢黄斑変性モデルマウスにシスタミンを点眼することで網膜色素上皮細胞層由来の沈着物数の増加が抑制されることを示すグラフである。
【図12】実施例９における、加齢黄斑変性モデルマウスにシステアミンを点眼することで網膜色素上皮細胞層由来の沈着物数の増加が抑制されることを示すグラフである。
【図13】実施例１０における、正常眼圧緑内障モデルマウスに長期保存したシスタミンまたはシステアミンの溶液を点眼することで網膜神経節細胞が保護されることを示すグラフである。
【図14】同、内網状層の菲薄化が抑制されることを示すグラフである。
【図15】実施例１１における、正常眼圧緑内障モデルマウスにシスタミンを点眼することでＣＨＯＰの発現が抑制されることを示す蛍光免疫組織像である。
【図16】実施例１２における、タプシガルギンによって誘導される神経細胞におけるＣＨＯＰの発現をシスタミンが抑制することを示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【0009】
本発明の網膜の神経細胞の保護剤は、一般式：Ｒ１－（ＣＨ２）ｍ－ＳＲ２で表される化合物またはその薬学的に許容される塩を有効成分とする（式中、Ｒ１は－ＮＲ３Ｒ４または炭素数１～６のアルキル基を示す。Ｒ２は水素原子または－Ｓ－（ＣＨ２）ｎ－ＮＲ５Ｒ６を示す。Ｒ３～Ｒ６は同一または異なって水素原子またはアセチル基を示す。ｍとｎは同一または異なって２～４の整数を示す。）。
【0010】
ここで、炭素数１～６のアルキル基は、直鎖状であってもよいし分岐鎖状であってもよく、具体的には、メチル基、エチル基、ｎ－プロピル基、イソプロピル基、ｎ－ブチル基、イソブチル基、ｓｅｃ－ブチル基、ｔｅｒｔ－ブチル基、ｎ－ペンチル基、イソペンチル基、ｎ－ヘキシル基などが挙げられる。
【0011】
また、薬学的に許容される塩としては、化合物が酸性である場合、アンモニウム塩、ナトリウム塩やカリウム塩などのアルカリ金属塩、カルシウム塩やマグネシウム塩などのアルカリ土類金属塩、アルギニン塩やリジン塩などのアミノ酸塩などが挙げられる。化合物が塩基性である場合、無機酸塩（塩酸塩、硫酸塩、硝酸塩、リン酸塩など）、有機酸塩（酢酸塩、乳酸塩、クエン酸塩、酒石酸塩、マレイン酸塩、フマル酸塩、シユウ酸塩など）などが挙げられる。
【0012】
上記の一般式で表される化合物の具体例としては、Ｒ１が－ＮＨ２でＲ２が－Ｓ－（ＣＨ２）２－ＮＨ２でｍが２であるシスタミン、Ｒ１が－ＮＨ２でＲ２が水素原子でｍが２であるシステアミン、Ｒ１が－ＮＨＡｃ（Ａｃ：アセチル基）でＲ２が水素原子でｍが２であるＮ－アセチルシステアミンが挙げられる。また、Ｒ１が－ＮＨ２でＲ２が水素原子でｍが３である３－アミノ－１－プロパンチオールなどであってもよい。
【0013】
本発明の網膜の神経細胞の保護剤の保護対象は、視覚信号の脳への伝達に関与する網膜の神経細胞、具体的には網膜神経節細胞や網膜視細胞などである。従って、本発明の網膜の神経細胞の保護剤は、こうした網膜の神経細胞を原発とする網膜神経変性疾患の予防および／または治療剤として用いることができる。網膜神経変性疾患の具体例としては、網膜神経節細胞を原発とする緑内障、網膜視細胞を原発とする網膜色素変性や加齢黄斑変性が挙げられる。本発明の網膜の神経細胞の保護剤のヒトやヒト以外の動物への投与は、非経口的であってもよいし経口的であってもよく、投与方法に適した形態に自体公知の方法で製剤化して行うことができるが、製剤形態は点眼剤であることが望ましい。
【0014】
点眼剤は、有効成分である上記の一般式で表される化合物またはその薬学的に許容される塩とともに、緩衝剤、溶解補助剤、等張化剤、安定化剤、保存剤、粘稠剤、キレート剤、ｐＨ調整剤、清涼化剤などの各種の添加剤を、溶剤に配合し、無菌環境下で無菌ろ過して適当な滅菌容器に充填することで調製することができる。緩衝剤の具体例としては、ホウ酸やその塩（ホウ砂など）、クエン酸やその塩（クエン酸ナトリウムなど）、リン酸やその塩（リン酸一水素ナトリウムなど）、酒石酸やその塩（酒石酸ナトリウムなど）、グルコン酸やその塩（グルコン酸ナトリウムなど）、酢酸やその塩（酢酸ナトリウムなど）、各種のアミノ酸、これらの組み合わせが挙げられる。溶解補助剤の具体例としては、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油（ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油６０など）、ポリエチレングリコール（マクロゴール４０００など）、ポリオキシエチレンソルビタン高級脂肪酸エステル（ポリソルベート８０など）、ポリオキシエチレン（ＰＯＥ）－ポリオキシプロピレン（ＰＯＰ）ブロックコポリマー（ポロクサマー４０７など）、プロピレングリコールが挙げられる。等張化剤の具体例としては、無機塩類（塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウムなど）、糖類（マンニトール、グルコースなど）、多価アルコール（グリセリン、プロピレングリコールなど）が挙げられる。安定化剤の具体例としては、エデト酸ナトリウム、シクロデキストリン、亜硫酸塩、クエン酸やその塩、ブチルヒドロキシトルエンが挙げられる。保存剤の具体例としては、塩化ベンザルコニウム、塩化ベンゼトニウム、グルコン酸クロルヘキシジン、クロロブタノール、ソルビン酸、ソルビン酸カリウム、パラオキシ安息香酸メチル、パラオキシ安息香酸エチル、パラオキシ安息香酸プロピル、パラオキシ安息香酸ブチル、ｐｏｌｙｑｕａｒｔｅｎｉｕｍ－１、ｐｏｌｙａｍｉｎｏｐｒｏｐｙｌｂｉｇｕａｎｉｄｅ、塩酸アルキルアミノエチルグリシン、塩化セチルピリジニウム、チメロサールが挙げられる。粘稠剤の具体例としては、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、メチルセルロース、コンドロイチン硫酸ナトリウム、ヒアルロン酸ナトリウム、カルボキシメチルセルロース、カルボキシビニルポリマーが挙げられる。キレート剤の具体例としては、エデト酸ナトリウム、クエン酸ナトリウムが挙げられる。ｐＨ調整剤の具体例としては、塩酸、クエン酸やその塩、ホウ酸やその塩、リン酸やその塩、酢酸やその塩、酒石酸やその塩、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、炭酸ナトリウム、炭酸水素ナトリウムが挙げられる。清涼化剤の具体例としては、メントール、ボルネオール、カンフル、ゲラニオール、リモネン、オイゲノール、ハッカ油、ユーカリ油、ウイキョウ油、ベルガモット油が挙げられる。溶剤の具体例としては、滅菌精製水、精製水、生理食塩液が挙げられる。点眼剤のｐＨは眼科的に許容される範囲であれば特に制限はなく、通常ｐＨ４～９の範囲であり、望ましくはｐＨ５～８の範囲である。
【0015】
有効成分である上記の一般式で表される化合物またはその薬学的に許容される塩は、点眼剤１ｍＬあたり０．００００１～１００ｍｇ配合され、１回あたり１～数滴を１日あたり１～数回点眼することで、網膜の神経細胞を保護することにより、緑内障、網膜色素変性、加齢黄斑変性などの網膜神経変性疾患に対する予防効果や治療効果を発揮する。
【0016】
なお、点眼剤には、他の薬学的成分、例えば、ラタノプロストやトラボプロストなどのプロスタグランジン製剤、マレイン酸チモロールや塩酸カルテオロールなどのβ遮断薬、塩酸ドルゾラミドやブリンゾラミドなどの炭酸脱水酵素阻害薬といった点眼用眼圧降下薬などを配合してもよい。
【実施例0017】
以下、本発明を実施例によって詳細に説明するが、本発明は以下の記載に限定して解釈されるものではない。
【0018】
実施例１：シスタミンの神経細胞に対する保護作用
（実験方法）
グルタミン酸によってアポトーシス（細胞死）が誘発されるマウス海馬由来の神経細胞株であるＨＴ２２細胞を用いて、シスタミンの神経細胞に対する保護作用を評価した。具体的には、９６ウェルプレートに播種したＨＴ２２細胞（１ウェルあたり１．２×１０３ｃｅｌｌｓ）に対し、最終濃度が１０μＭ，５μＭ，２μＭ，１μＭになるようにシスタミンを１０％ＦＢＳ添加ＤＭＥＭ培地に添加した。４時間後、最終濃度が４ｍＭになるようにグルタミン酸を添加し、２０時間、３７℃、５％ＣＯ２インキュベータ内で培養した。次いで、それぞれのウェルに細胞毒性アッセイ試薬（Ｃｅｌｌ Ｃｏｕｎｔｉｎｇ Ｋｉｔ－８，Ｄｏｊｉｎｄｏ）を１０μＬ添加し、呈色反応を生じさせて３時間後に吸光度（４９０ｎｍ）を測定し、グルタミン酸を添加しないコントロール細胞の生存率を１００％として細胞生存率（％）を算出した。
（実験方法）
グルタミン酸によってアポトーシス（細胞死）が誘発されるマウス海馬由来の神経細胞株であるＨＴ２２細胞を用いて、シスタミンの神経細胞に対する保護作用を評価した。具体的には、９６ウェルプレートに播種したＨＴ２２細胞（１ウェルあたり１．２×１０３ｃｅｌｌｓ）に対し、最終濃度が１０μＭ，５μＭ，２μＭ，１μＭになるようにシスタミンを１０％ＦＢＳ添加ＤＭＥＭ培地に添加した。４時間後、最終濃度が４ｍＭになるようにグルタミン酸を添加し、２０時間、３７℃、５％ＣＯ２インキュベータ内で培養した。次いで、それぞれのウェルに細胞毒性アッセイ試薬（Ｃｅｌｌ Ｃｏｕｎｔｉｎｇ Ｋｉｔ－８，Ｄｏｊｉｎｄｏ）を１０μＬ添加し、呈色反応を生じさせて３時間後に吸光度（４９０ｎｍ）を測定し、グルタミン酸を添加しないコントロール細胞の生存率を１００％として細胞生存率（％）を算出した。
【0019】
（実験結果）
図１に示す。図１から明らかなように、シスタミンは、ＨＴ２２細胞のアポトーシスを濃度依存的に抑制したことから、神経細胞に対する保護作用を有することがわかった。また、別途の実験により、シスタミンは、グルタミン酸によって誘導されるアポトーシス誘導因子（Ａｐｏｐｔｏｓｉｓ－ｉｎｄｕｃｉｎｇ Ｆａｃｔｏ：ＡＩＦ）の核への移行を阻害することが確認できたことから、ＨＴ２２細胞のアポトーシスをシスタミンが抑制する作用機序の１つとして、アポトーシス誘導因子の核への移行を阻害することが推察された。
図１に示す。図１から明らかなように、シスタミンは、ＨＴ２２細胞のアポトーシスを濃度依存的に抑制したことから、神経細胞に対する保護作用を有することがわかった。また、別途の実験により、シスタミンは、グルタミン酸によって誘導されるアポトーシス誘導因子（Ａｐｏｐｔｏｓｉｓ－ｉｎｄｕｃｉｎｇ Ｆａｃｔｏ：ＡＩＦ）の核への移行を阻害することが確認できたことから、ＨＴ２２細胞のアポトーシスをシスタミンが抑制する作用機序の１つとして、アポトーシス誘導因子の核への移行を阻害することが推察された。
【0020】
実施例２：システアミンの神経細胞に対する保護作用
実施例１と同様の実験を行って評価した。結果は以下の通りであり、システアミンもまたＨＴ２２細胞のアポトーシスを濃度依存的に抑制したことから、システアミンの神経細胞に対する保護作用を確認することができた。
細胞生存率（％）
システアミン ２μＭ ８２．７６＊
システアミン ５μＭ １０４．１７＊
システアミン １０μＭ １１０．３０＊
ＰＢＳ（－） ６５．０１
※ Ｗｉｌｃｏｘｏｎ－ｔｅｓｔ ＊Ｐ＜０．０１，ｎ＝１２
実施例１と同様の実験を行って評価した。結果は以下の通りであり、システアミンもまたＨＴ２２細胞のアポトーシスを濃度依存的に抑制したことから、システアミンの神経細胞に対する保護作用を確認することができた。
細胞生存率（％）
システアミン ２μＭ ８２．７６＊
システアミン ５μＭ １０４．１７＊
システアミン １０μＭ １１０．３０＊
ＰＢＳ（－） ６５．０１
※ Ｗｉｌｃｏｘｏｎ－ｔｅｓｔ ＊Ｐ＜０．０１，ｎ＝１２
【0021】
実施例３：Ｎ－アセチルシステアミンの神経細胞に対する保護作用
実施例１と同様の実験を行って評価した。結果は以下の通りであり、Ｎ－アセチルシステアミンもまたＨＴ２２細胞のアポトーシスを抑制したことから、Ｎ－アセチルシステアミンの神経細胞に対する保護作用を確認することができた（ｎ数不足のため有意差検定は行っていない）。
細胞生存率（％）
Ｎ－アセチルシステアミン １０μＭ ９４．５１
ＰＢＳ（－） ３５．２４
実施例１と同様の実験を行って評価した。結果は以下の通りであり、Ｎ－アセチルシステアミンもまたＨＴ２２細胞のアポトーシスを抑制したことから、Ｎ－アセチルシステアミンの神経細胞に対する保護作用を確認することができた（ｎ数不足のため有意差検定は行っていない）。
細胞生存率（％）
Ｎ－アセチルシステアミン １０μＭ ９４．５１
ＰＢＳ（－） ３５．２４
【0022】
実施例４：正常眼圧緑内障モデルマウスにシスタミンを点眼することによる効果
（実験方法）
正常眼圧緑内障のモデル実験系として広く用いられているＮ－メチル－Ｄ－アスパラギン酸（ＮＭＤＡ）投与マウス（Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｖｅ Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌｏｇｙ ＆ Ｖｉｓｕａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ，４０，１００４－１００８，１９９９）を用いて、シスタミンの点眼効果を評価した。具体的には、４０ｍＭになるように生理食塩水にＮＭＤＡを溶解してろ過滅菌した溶液を、マウス（Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ，７週齢）の両眼の硝子体内に２μＬずつ投与し、正常眼圧緑内障モデルマウスを作製した。ＮＭＤＡ溶液の硝子体内への投与は、嶋澤らの方法（日薬理誌，１２９，４４５－４５０，２００７）に従って、マウスにイソフルランを用いて麻酔を導入し、カテーテルを介して歯科用注射針（３３Ｇ）を連結させた１０μＬマイクロシリンジを用いて角膜輪部の強膜より行った。抜針後は、抗炎症剤のクラビット点眼薬を点眼した。ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した直後から、１０ｍＭになるように生理食塩水にシスタミンを溶解してろ過滅菌した溶液を、両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した。７日後、マウスを安楽死させ、両眼球を摘出し、４％パラホルムアルデヒドで固定し、前眼部および水晶体を切除した。次いで、組織の凍結切片スライドを作製し、ヘマトキシリン・エオシン染色を行い、位相差顕微鏡にて観察し、網膜神経節細胞層に存在する細胞数の計測、内網状層の厚さの測定、網膜の厚さの測定を行った。
（実験方法）
正常眼圧緑内障のモデル実験系として広く用いられているＮ－メチル－Ｄ－アスパラギン酸（ＮＭＤＡ）投与マウス（Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｖｅ Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌｏｇｙ ＆ Ｖｉｓｕａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ，４０，１００４－１００８，１９９９）を用いて、シスタミンの点眼効果を評価した。具体的には、４０ｍＭになるように生理食塩水にＮＭＤＡを溶解してろ過滅菌した溶液を、マウス（Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ，７週齢）の両眼の硝子体内に２μＬずつ投与し、正常眼圧緑内障モデルマウスを作製した。ＮＭＤＡ溶液の硝子体内への投与は、嶋澤らの方法（日薬理誌，１２９，４４５－４５０，２００７）に従って、マウスにイソフルランを用いて麻酔を導入し、カテーテルを介して歯科用注射針（３３Ｇ）を連結させた１０μＬマイクロシリンジを用いて角膜輪部の強膜より行った。抜針後は、抗炎症剤のクラビット点眼薬を点眼した。ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した直後から、１０ｍＭになるように生理食塩水にシスタミンを溶解してろ過滅菌した溶液を、両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した。７日後、マウスを安楽死させ、両眼球を摘出し、４％パラホルムアルデヒドで固定し、前眼部および水晶体を切除した。次いで、組織の凍結切片スライドを作製し、ヘマトキシリン・エオシン染色を行い、位相差顕微鏡にて観察し、網膜神経節細胞層に存在する細胞数の計測、内網状層の厚さの測定、網膜の厚さの測定を行った。
【0023】
（実験結果）
図２に網膜神経節細胞層（ＧＣＬ）に存在する細胞数の計測結果を、図３に内網状層（ＩＰＬ）の厚さの測定結果を、図４に網膜（Ｒｅｔｉｎａ）の厚さの測定結果を、それぞれ示す（ｃｙｓｔａｍｉｎｅ／ＮＭＤＡ）。図２～４には、ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した直後から、ろ過滅菌した生理食塩水を、両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した場合の結果（ｓａｌｉｎｅ／ＮＭＤＡ）と、ろ過滅菌した生理食塩水を、健常マウスの両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した場合の結果（ｃｏｎｔｒｏｌ）をあわせて示す（いずれの結果も３匹のマウスの両眼からの検体（ｎ＝６）の平均値）。図２から明らかなように、シスタミンは、網膜神経節細胞層に存在する細胞数の減少を効果的に抑制したことから、網膜神経節細胞に対する保護作用を有することがわかった。また、図３と図４から明らかなように、シスタミンは、内網状層の菲薄化を抑制する作用を有し、網膜の菲薄化を抑制した。以上の結果から、正常眼圧緑内障の予防や治療にシスタミンの点眼が有効であることを確認することができた。
図２に網膜神経節細胞層（ＧＣＬ）に存在する細胞数の計測結果を、図３に内網状層（ＩＰＬ）の厚さの測定結果を、図４に網膜（Ｒｅｔｉｎａ）の厚さの測定結果を、それぞれ示す（ｃｙｓｔａｍｉｎｅ／ＮＭＤＡ）。図２～４には、ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した直後から、ろ過滅菌した生理食塩水を、両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した場合の結果（ｓａｌｉｎｅ／ＮＭＤＡ）と、ろ過滅菌した生理食塩水を、健常マウスの両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した場合の結果（ｃｏｎｔｒｏｌ）をあわせて示す（いずれの結果も３匹のマウスの両眼からの検体（ｎ＝６）の平均値）。図２から明らかなように、シスタミンは、網膜神経節細胞層に存在する細胞数の減少を効果的に抑制したことから、網膜神経節細胞に対する保護作用を有することがわかった。また、図３と図４から明らかなように、シスタミンは、内網状層の菲薄化を抑制する作用を有し、網膜の菲薄化を抑制した。以上の結果から、正常眼圧緑内障の予防や治療にシスタミンの点眼が有効であることを確認することができた。
【0024】
実施例５：正常眼圧緑内障モデルマウスにシステアミンを点眼することによる効果
実施例４と同様の実験を行って評価した。図５に網膜神経節細胞層に存在する細胞数の計測結果を、図６に内網状層の厚さの測定結果を、図７に網膜の厚さの測定結果を、それぞれ示す。図５から明らかなように、システアミンもまた、網膜神経節細胞層に存在する細胞数の減少を効果的に抑制したことから、網膜神経節細胞に対する保護作用を有することがわかった。また、図６と図７から明らかなように、システアミンもまた、内網状層の菲薄化を抑制する作用を有し、網膜の菲薄化を抑制した。以上の結果から、正常眼圧緑内障の予防や治療にシステアミンの点眼も有効であることを確認することができた。
実施例４と同様の実験を行って評価した。図５に網膜神経節細胞層に存在する細胞数の計測結果を、図６に内網状層の厚さの測定結果を、図７に網膜の厚さの測定結果を、それぞれ示す。図５から明らかなように、システアミンもまた、網膜神経節細胞層に存在する細胞数の減少を効果的に抑制したことから、網膜神経節細胞に対する保護作用を有することがわかった。また、図６と図７から明らかなように、システアミンもまた、内網状層の菲薄化を抑制する作用を有し、網膜の菲薄化を抑制した。以上の結果から、正常眼圧緑内障の予防や治療にシステアミンの点眼も有効であることを確認することができた。
【0025】
実施例６：網膜色素変性モデルマウスにシスタミンを点眼することによる効果
（実験方法）
網膜色素変性のモデル実験系として広く用いられているメチルニトロソ尿素（ＭＮＵ）投与マウス（Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｅｙｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，１６７，１４５－１５１，２０１８）を用いて、シスタミンの点眼効果を評価した。具体的には、マウス（Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ，７週齢）に、生理食塩水にＭＮＵを溶解してろ過滅菌した溶液を腹腔内に投与することで、ＭＮＵを６０ｍｇ／ｋｇ投与し、網膜色素変性モデルマウスを作製した。ＭＮＵを投与した直後から、４０ｍＭになるように生理食塩水にシスタミンを溶解してろ過滅菌した溶液を、両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した。７日後、マウスを安楽死させ、実施例４と同様の方法で網膜組織の凍結切片スライドを作製し、ヘマトキシリン・エオシン染色を行い、位相差顕微鏡にて観察し、網膜視細胞が存在する網膜外顆粒層の厚さの測定を行った。
（実験方法）
網膜色素変性のモデル実験系として広く用いられているメチルニトロソ尿素（ＭＮＵ）投与マウス（Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｅｙｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，１６７，１４５－１５１，２０１８）を用いて、シスタミンの点眼効果を評価した。具体的には、マウス（Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ，７週齢）に、生理食塩水にＭＮＵを溶解してろ過滅菌した溶液を腹腔内に投与することで、ＭＮＵを６０ｍｇ／ｋｇ投与し、網膜色素変性モデルマウスを作製した。ＭＮＵを投与した直後から、４０ｍＭになるように生理食塩水にシスタミンを溶解してろ過滅菌した溶液を、両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した。７日後、マウスを安楽死させ、実施例４と同様の方法で網膜組織の凍結切片スライドを作製し、ヘマトキシリン・エオシン染色を行い、位相差顕微鏡にて観察し、網膜視細胞が存在する網膜外顆粒層の厚さの測定を行った。
【0026】
（実験結果）
図８に網膜外顆粒層（ＯＮＬ）の厚さの測定結果を示す（ｃｙｓｔａｍｉｎｅ／ＭＮＵ）。図８には、ＭＮＵを投与した直後から、ろ過滅菌した生理食塩水を、両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した場合の結果（ｓａｌｉｎｅ／ＭＮＵ）と、ろ過滅菌した生理食塩水を、健常マウスの両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した場合の結果（ｃｏｎｔｒｏｌ）をあわせて示す（いずれの結果も６匹のマウスの両眼からの検体（ｎ＝１２）の平均値）。図８から明らかなように、シスタミンは、ＭＮＵの投与によって網膜視細胞が変性することによる網膜外顆粒層の菲薄化を抑制した。以上の結果から、網膜色素変性の予防や治療にシスタミンの点眼が有効であることを確認することができた。
図８に網膜外顆粒層（ＯＮＬ）の厚さの測定結果を示す（ｃｙｓｔａｍｉｎｅ／ＭＮＵ）。図８には、ＭＮＵを投与した直後から、ろ過滅菌した生理食塩水を、両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した場合の結果（ｓａｌｉｎｅ／ＭＮＵ）と、ろ過滅菌した生理食塩水を、健常マウスの両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した場合の結果（ｃｏｎｔｒｏｌ）をあわせて示す（いずれの結果も６匹のマウスの両眼からの検体（ｎ＝１２）の平均値）。図８から明らかなように、シスタミンは、ＭＮＵの投与によって網膜視細胞が変性することによる網膜外顆粒層の菲薄化を抑制した。以上の結果から、網膜色素変性の予防や治療にシスタミンの点眼が有効であることを確認することができた。
【0027】
実施例７：加齢黄斑変性モデルマウスにシスタミンを点眼することによる効果（その１）
（実験方法）
萎縮型加齢黄斑変性のモデル実験系として広く用いられているヨウ素酸ナトリウム（ＳＩ）投与マウス（Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｖｅ Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌｏｇｙ ＆ Ｖｉｓｕａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ，５８，２２３９－２２４９，２０１７）を用いて、シスタミンの点眼効果を評価した。具体的には、１ｍＭになるように生理食塩水にシスタミンを溶解してろ過滅菌した溶液を、マウス（Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ，８週齢）の両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間前点眼した。前点眼後、生理食塩水にＳＩを溶解してろ過滅菌した溶液を腹腔内に投与することで、ＳＩを２５ｍｇ／ｋｇ投与し、さらに、１ｍＭになるように生理食塩水にシスタミンを溶解してろ過滅菌した溶液を、両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した。７日後、マウスを安楽死させ、実施例４と同様の方法で網膜組織の凍結切片スライドを作製し、ヘマトキシリン・エオシン染色を行い、位相差顕微鏡にて観察し、網膜色素上皮細胞層由来の沈着物（変性した網膜色素上皮細胞が集まって色素沈着として現れるもの）数の計測を行った。また、視神経乳頭中心部から鼻側および耳側それぞれ約３００，６００，９００，１２００，１５００μｍの位置における画像を取得し、網膜の厚さの測定を行った。
（実験方法）
萎縮型加齢黄斑変性のモデル実験系として広く用いられているヨウ素酸ナトリウム（ＳＩ）投与マウス（Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｖｅ Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌｏｇｙ ＆ Ｖｉｓｕａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ，５８，２２３９－２２４９，２０１７）を用いて、シスタミンの点眼効果を評価した。具体的には、１ｍＭになるように生理食塩水にシスタミンを溶解してろ過滅菌した溶液を、マウス（Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ，８週齢）の両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間前点眼した。前点眼後、生理食塩水にＳＩを溶解してろ過滅菌した溶液を腹腔内に投与することで、ＳＩを２５ｍｇ／ｋｇ投与し、さらに、１ｍＭになるように生理食塩水にシスタミンを溶解してろ過滅菌した溶液を、両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した。７日後、マウスを安楽死させ、実施例４と同様の方法で網膜組織の凍結切片スライドを作製し、ヘマトキシリン・エオシン染色を行い、位相差顕微鏡にて観察し、網膜色素上皮細胞層由来の沈着物（変性した網膜色素上皮細胞が集まって色素沈着として現れるもの）数の計測を行った。また、視神経乳頭中心部から鼻側および耳側それぞれ約３００，６００，９００，１２００，１５００μｍの位置における画像を取得し、網膜の厚さの測定を行った。
【0028】
（実験結果）
図９に網膜色素上皮細胞層由来の沈着物数の計測結果を示す（１ｍＭシスタミン／ＳＩ処理）。図９には、ＳＩを投与する前後に、ろ過滅菌した生理食塩水を、両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した場合の結果（生理食塩水／ＳＩ処理）と、ろ過滅菌した生理食塩水を、健常マウスの両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した場合の結果（無処置）をあわせて示す（いずれの結果も５匹のマウスの両眼からの検体（ｎ＝１０）の平均値）。図９から明らかなように、シスタミンは、加齢黄斑変性の特徴的な所見である網膜色素上皮細胞層由来の沈着物数の増加を効果的に抑制したことから、網膜色素上皮細胞を保護することによる網膜視細胞に対する保護作用を有することがわかった。また、図１０に視神経乳頭中心部から鼻側および耳側それぞれ約３００，６００，９００，１２００，１５００μｍの位置における網膜の厚さの測定結果を示す（１ｍＭシスタミン）。図１０には、ＳＩを投与する前後に、ろ過滅菌した生理食塩水を、両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した場合の結果（生理食塩水）と、ろ過滅菌した生理食塩水を、健常マウスの両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した場合の結果（無処置）をあわせて示す（いずれの結果も５匹のマウスの両眼からの検体（ｎ＝１０）の平均値）。図１０から明らかなように、シスタミンは、網膜の菲薄化を抑制した。以上の結果から、加齢黄斑変性の予防や治療にシスタミンの点眼が有効であることを確認することができた。
図９に網膜色素上皮細胞層由来の沈着物数の計測結果を示す（１ｍＭシスタミン／ＳＩ処理）。図９には、ＳＩを投与する前後に、ろ過滅菌した生理食塩水を、両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した場合の結果（生理食塩水／ＳＩ処理）と、ろ過滅菌した生理食塩水を、健常マウスの両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した場合の結果（無処置）をあわせて示す（いずれの結果も５匹のマウスの両眼からの検体（ｎ＝１０）の平均値）。図９から明らかなように、シスタミンは、加齢黄斑変性の特徴的な所見である網膜色素上皮細胞層由来の沈着物数の増加を効果的に抑制したことから、網膜色素上皮細胞を保護することによる網膜視細胞に対する保護作用を有することがわかった。また、図１０に視神経乳頭中心部から鼻側および耳側それぞれ約３００，６００，９００，１２００，１５００μｍの位置における網膜の厚さの測定結果を示す（１ｍＭシスタミン）。図１０には、ＳＩを投与する前後に、ろ過滅菌した生理食塩水を、両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した場合の結果（生理食塩水）と、ろ過滅菌した生理食塩水を、健常マウスの両眼に、１日３回、２μＬずつ７日間点眼した場合の結果（無処置）をあわせて示す（いずれの結果も５匹のマウスの両眼からの検体（ｎ＝１０）の平均値）。図１０から明らかなように、シスタミンは、網膜の菲薄化を抑制した。以上の結果から、加齢黄斑変性の予防や治療にシスタミンの点眼が有効であることを確認することができた。
【0029】
実施例８：加齢黄斑変性モデルマウスにシスタミンを点眼することによる効果（その２）
マウスへのＳＩの投与量を１２．５ｍｇ／ｋｇとすること以外は実施例７と同様の実験を行って評価した。図１１に網膜色素上皮細胞層由来の沈着物数の計測結果を示す。図１１から明らかなように、マウスへのＳＩの投与量が実施例７における投与量の１／２でも、シスタミンは、加齢黄斑変性の特徴的な所見である網膜色素上皮細胞層由来の沈着物数の増加を効果的に抑制した。
マウスへのＳＩの投与量を１２．５ｍｇ／ｋｇとすること以外は実施例７と同様の実験を行って評価した。図１１に網膜色素上皮細胞層由来の沈着物数の計測結果を示す。図１１から明らかなように、マウスへのＳＩの投与量が実施例７における投与量の１／２でも、シスタミンは、加齢黄斑変性の特徴的な所見である網膜色素上皮細胞層由来の沈着物数の増加を効果的に抑制した。
【0030】
実施例９：加齢黄斑変性モデルマウスにシステアミンを点眼することによる効果
実施例８と同様の実験を行って評価した。図１２に網膜色素上皮細胞層由来の沈着物数の計測結果を示す。図１２から明らかなように、システアミンもまた、加齢黄斑変性の特徴的な所見である網膜色素上皮細胞層由来の沈着物数の増加を効果的に抑制したことから、網膜色素上皮細胞を保護することによる網膜視細胞に対する保護作用を有することがわかった。以上の結果から、加齢黄斑変性の予防や治療にシステアミンの点眼も有効であることを確認することができた。
実施例８と同様の実験を行って評価した。図１２に網膜色素上皮細胞層由来の沈着物数の計測結果を示す。図１２から明らかなように、システアミンもまた、加齢黄斑変性の特徴的な所見である網膜色素上皮細胞層由来の沈着物数の増加を効果的に抑制したことから、網膜色素上皮細胞を保護することによる網膜視細胞に対する保護作用を有することがわかった。以上の結果から、加齢黄斑変性の予防や治療にシステアミンの点眼も有効であることを確認することができた。
【0031】
実施例１０：正常眼圧緑内障モデルマウスに長期保存したシスタミンまたはシステアミンの溶液を点眼することによる効果
１０ｍＭになるように生理食塩水にシスタミンまたはシステアミンを溶解してろ過滅菌した溶液を、ポリプロピレン製の１．５ｍＬマイクロチューブに入れ、ふたをしてパラフィルムを巻いて密封し、室温で６か月間保存した溶液を、マウスに点眼すること以外は実施例４と同様の実験を行って評価した。図１３に網膜神経節細胞層に存在する細胞数の計測結果を、図１４に内網状層の厚さの測定結果を、それぞれ示す。図１３と図１４から明らかなように、長期保存したシスタミンとシステアミンのどちらの溶液も、網膜神経節細胞層に存在する細胞数の減少を効果的に抑制するとともに、内網状層の菲薄化を抑制する作用を有していた。以上の結果から、正常眼圧緑内障の予防や治療におけるシスタミンとシステアミンの点眼薬の利便性を確認することができた。
１０ｍＭになるように生理食塩水にシスタミンまたはシステアミンを溶解してろ過滅菌した溶液を、ポリプロピレン製の１．５ｍＬマイクロチューブに入れ、ふたをしてパラフィルムを巻いて密封し、室温で６か月間保存した溶液を、マウスに点眼すること以外は実施例４と同様の実験を行って評価した。図１３に網膜神経節細胞層に存在する細胞数の計測結果を、図１４に内網状層の厚さの測定結果を、それぞれ示す。図１３と図１４から明らかなように、長期保存したシスタミンとシステアミンのどちらの溶液も、網膜神経節細胞層に存在する細胞数の減少を効果的に抑制するとともに、内網状層の菲薄化を抑制する作用を有していた。以上の結果から、正常眼圧緑内障の予防や治療におけるシスタミンとシステアミンの点眼薬の利便性を確認することができた。
【0032】
実施例１１：正常眼圧緑内障モデルマウスにおけるシスタミンの網膜神経節細胞に対する保護効果の作用機序の検討
（実験方法）
ＮＭＤＡ投与マウスにおいて誘発される網膜神経節細胞死では、小胞体ストレス関連タンパク質である転写因子Ｃ／ＥＢＰ相同タンパク質（ＣＨＯＰ）が発現すること、ＣＨＯＰの発現を抑制することで網膜神経節細胞死が抑制されることが知られている（Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，９６，４３－５２，２００６）。そこで、ＮＭＤＡ投与マウスにおいて誘発される網膜神経節細胞死を、シスタミンがＣＨＯＰの発現を抑制することで抑制するかどうかを確認するための免疫組織化学実験を行った。具体的には、実施例４と同様の方法で作製した正常眼圧緑内障モデルマウスの両眼に、１０ｍＭになるように生理食塩水にシスタミンを溶解してろ過滅菌した溶液を、ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した直後、ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した４時間後、ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した８時間後の合計３回、２μＬずつ点眼した。ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した１２時間後、マウスを安楽死させ、実施例４と同様の方法で網膜組織の凍結切片スライドを作製した。作製した凍結切片スライドに対し、細胞膜透過処理を行った後、一次抗体として抗ＣＨＯＰ抗体であるＡｎｔｉ－ＣＨＯＰ／ＧＡＤＤ１５３ ｐｏｌｙｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｙ １５２０４－１－ＡＰ（Ｔｈｅｒｍｏ）と、二次抗体としてＰｏｌｙｃｌｏｎａｌ Ｇｏａｔ Ａｎｔｉ－Ｒａｂｂｉｔ ａｎｔｉｂｏｄｙ Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ５４６ Ａ１１０３５（Ｔｈｅｒｍｏ）を反応させ、蛍光顕微鏡にて観察した。
（実験方法）
ＮＭＤＡ投与マウスにおいて誘発される網膜神経節細胞死では、小胞体ストレス関連タンパク質である転写因子Ｃ／ＥＢＰ相同タンパク質（ＣＨＯＰ）が発現すること、ＣＨＯＰの発現を抑制することで網膜神経節細胞死が抑制されることが知られている（Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，９６，４３－５２，２００６）。そこで、ＮＭＤＡ投与マウスにおいて誘発される網膜神経節細胞死を、シスタミンがＣＨＯＰの発現を抑制することで抑制するかどうかを確認するための免疫組織化学実験を行った。具体的には、実施例４と同様の方法で作製した正常眼圧緑内障モデルマウスの両眼に、１０ｍＭになるように生理食塩水にシスタミンを溶解してろ過滅菌した溶液を、ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した直後、ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した４時間後、ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した８時間後の合計３回、２μＬずつ点眼した。ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した１２時間後、マウスを安楽死させ、実施例４と同様の方法で網膜組織の凍結切片スライドを作製した。作製した凍結切片スライドに対し、細胞膜透過処理を行った後、一次抗体として抗ＣＨＯＰ抗体であるＡｎｔｉ－ＣＨＯＰ／ＧＡＤＤ１５３ ｐｏｌｙｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｙ １５２０４－１－ＡＰ（Ｔｈｅｒｍｏ）と、二次抗体としてＰｏｌｙｃｌｏｎａｌ Ｇｏａｔ Ａｎｔｉ－Ｒａｂｂｉｔ ａｎｔｉｂｏｄｙ Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ５４６ Ａ１１０３５（Ｔｈｅｒｍｏ）を反応させ、蛍光顕微鏡にて観察した。
【0033】
（実験結果）
図１５に蛍光免疫組織像を示す（Ｃｙｓｔａｍｉｎｅ１０ｍＭ／ＮＭＤＡ）。図１５には、ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した直後、ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した４時間後、ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した８時間後の合計３回、ろ過滅菌した生理食塩水を、両眼に、２μＬずつ点眼した場合の結果（ｓａｌｉｎｅ／ＮＭＤＡ）と、ろ過滅菌した生理食塩水を、健常マウスの両眼に、マウスを安楽死させる１２時間前、８時間前、４時間前の合計３回、２μＬずつ点眼した場合の結果（ｃｏｎｔｒｏｌ）をあわせて示す。図１５から明らかなように、シスタミンを点眼した場合、生理食塩水を点眼した場合に観察される網膜神経節細胞層におけるＣＨＯＰの発現による蛍光が観察されなかった。以上の結果から、シスタミンの網膜神経節細胞に対する保護効果の作用機序として、ＣＨＯＰの発現抑制作用を明らかにすることができた。
図１５に蛍光免疫組織像を示す（Ｃｙｓｔａｍｉｎｅ１０ｍＭ／ＮＭＤＡ）。図１５には、ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した直後、ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した４時間後、ＮＭＤＡ溶液を硝子体内に投与した８時間後の合計３回、ろ過滅菌した生理食塩水を、両眼に、２μＬずつ点眼した場合の結果（ｓａｌｉｎｅ／ＮＭＤＡ）と、ろ過滅菌した生理食塩水を、健常マウスの両眼に、マウスを安楽死させる１２時間前、８時間前、４時間前の合計３回、２μＬずつ点眼した場合の結果（ｃｏｎｔｒｏｌ）をあわせて示す。図１５から明らかなように、シスタミンを点眼した場合、生理食塩水を点眼した場合に観察される網膜神経節細胞層におけるＣＨＯＰの発現による蛍光が観察されなかった。以上の結果から、シスタミンの網膜神経節細胞に対する保護効果の作用機序として、ＣＨＯＰの発現抑制作用を明らかにすることができた。
【0034】
実施例１２：神経細胞におけるシスタミンのＣＨＯＰの発現抑制作用の確認
（実験方法）
マウス海馬由来の神経細胞株であるＨＴ２２細胞を用いて、シスタミンのＣＨＯＰの発現抑制作用を確認した。具体的には、１００ｍｍディッシュに播種したＨＴ２２細胞（８．０×１０５ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）を、１０％ＦＢＳ添加ＤＭＥＭ培地にて、２４時間、３７℃、５％ＣＯ２インキュベータ内で培養した後、最終濃度が５μＭになるようにシスタミンを添加した培地と交換し、さらに２４時間培養した。次いで、小胞体ストレス誘導物質であるタプシガルギンを最終濃度が０．１μＭになるように培地に添加し、６時間培養した後、細胞を回収した。回収した細胞に対してタンパク質可溶化のためのソニケーションを行った後、遠心分離することで得られた遠心上清（可溶化タンパク質）２０μｇのウエスタンブロッティングを、抗ＣＨＯＰ抗体であるＡｎｔｉ－ＣＨＯＰ／ＧＡＤＤ１５３ ｐｏｌｙｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｙ １５２０４－１－ＡＰ（Ｔｈｅｒｍｏ）を用いて行い、得られたシグナルの画像解析によりＣＨＯＰの発現量を調べた。
（実験方法）
マウス海馬由来の神経細胞株であるＨＴ２２細胞を用いて、シスタミンのＣＨＯＰの発現抑制作用を確認した。具体的には、１００ｍｍディッシュに播種したＨＴ２２細胞（８．０×１０５ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）を、１０％ＦＢＳ添加ＤＭＥＭ培地にて、２４時間、３７℃、５％ＣＯ２インキュベータ内で培養した後、最終濃度が５μＭになるようにシスタミンを添加した培地と交換し、さらに２４時間培養した。次いで、小胞体ストレス誘導物質であるタプシガルギンを最終濃度が０．１μＭになるように培地に添加し、６時間培養した後、細胞を回収した。回収した細胞に対してタンパク質可溶化のためのソニケーションを行った後、遠心分離することで得られた遠心上清（可溶化タンパク質）２０μｇのウエスタンブロッティングを、抗ＣＨＯＰ抗体であるＡｎｔｉ－ＣＨＯＰ／ＧＡＤＤ１５３ ｐｏｌｙｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｙ １５２０４－１－ＡＰ（Ｔｈｅｒｍｏ）を用いて行い、得られたシグナルの画像解析によりＣＨＯＰの発現量を調べた。
【0035】
【産業上の利用可能性】
【0036】
本発明は、網膜神経節細胞や網膜視細胞に例示される網膜の神経細胞の保護剤を提供することができる点において産業上の利用可能性を有する。
【図1】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
【図10】
【図11】
【図12】
【図13】
【図14】
【図15】
【図16】