【図1】 作製した不死化ヒト単球細胞における表面マーカーＣＤ１１およびＣＤ１４の発現をフローサイトメーターにて分析した結果を示すプロット図である。使用抗体：ＦＩＴＣで反応する抗ＣＤ１１抗体，抗ＣＤ１４抗体。

【図2】 不死化ヒト単球細胞をＩＬ４で刺激することにより誘導した樹状細胞様細胞をメイ－ギムザ染色した写真である。

【図3】 デングウイルス感染実験におけるプレートデザイン図である。９６穴プレートの左半分に評価するヒト単球細胞もしくは樹状細胞を入れ，右半分にコントロール細胞であるＫ５６２細胞を播種した。ウェルの各行（１－１２）に異なる希釈倍率のウイルス液を添加した。ウェルの列（Ａ－Ｈ）毎に異なる種類のデングウイルス（ＤＥＮＶ－１：デングウイルス１型，ＤＥＮＶ－２：デングウイルス２型，ＤＥＮＶ－３：デングウイルス３型，及び，ＤＥＮＶ－４：デングウイルス４型を添加した。

【図4】 図３のプレートデザインを用い，実施例１において調整したヒト樹状様細胞と陽性対象であるＫ５６２細胞とを比較した結果を示す写真である。デングウイルス感染実験後に，ウイルス感染を染色により可視化した。

【図5】 図４のプレートの一部のウェルを拡大した写真である。（Ａ）単球様細胞を用いた結果の写真である（ＭＬ：単球様細胞，Ｋ５６２：Ｋ５６２細胞株）。左から順に図４のＡ１，Ｃ１，Ｅ１，Ｇ１ウェル（上段），及び，図４のＡ７，Ｃ７，Ｅ７，Ｇ７ウェル（下段）の拡大写真である。（Ｂ）樹状様細胞を用いた評価結果の写真である（ＤＣ：樹状様細胞，Ｋ５６２：Ｋ５６２細胞株）。左から順に図４のＡ５，Ｃ５，Ｅ５，Ｇ５ウェル（上段），及び，図４のＡ７，Ｃ７，Ｅ７，Ｇ７ウェル（下段）の拡大写真である。なお，Ａ１とは図４のプレートのＡ行１列目を指す。

【図6】 単球様細胞（Ａ）及び樹状細胞様細胞（Ｂ）のウイルス放出量を測定した結果を示すグラフである。縦軸は，培養上清中へのウイルス放出量（ｌｏｇ１０ プラーク形成ユニット（ＰＦＵ）／ｍＬ）を表す。横軸は左から順に，デングウイルス１型（ＤＥＮＶ－１）（Ｄ１），２型（ＤＥＮＶ－２）（Ｄ２），３型（ＤＥＮＶ－３）（Ｄ３），４型（ＤＥＮＶ－４）（Ｄ４）を示す。

【図7】 作成した不死化ヒト単球細胞（末梢血由来単球細胞：ＣＤ１４－ＭＬ， ｉＰＳ細胞由来単球細胞：ｉＰＳ－ＭＬ）における物理的精製及び膜強度を測定するために，フィルター後の細胞をフローサイトメーターにて分析した結果を表すプロット図である。フィルターによる精製を行なっていない群を未フィルター群（Ｎｏｎ ｆｉｌｔｅｒ）および格子穴１２ｕｍのメッシュフィルターにて精製した群（１２ｕｍ）についてフローサイトメーターにて測定した。縦軸は側方散乱光の面積（ＳＳＣ－Ａ），横軸は前方散乱光（ＦＳＣ－Ｈ）の検出結果を示す。精製度合いを可視化するために，便宜的に分割し，エリア１，２，それ以外の存在比について示す。評価における再現性確保のためエリア２の細胞数存在比を一定の範囲にすることで管理を志向する。

【図8】 図３のデングウイルス感染実験より，ウイルス希釈倍率を大きくしウイルス低濃度下での感染評価を行ったプレートデザイン図である。デングウイルス４型（ＤＥＮＶ－４）を用いて行なった実験を元に記載する。各ＷｅｌｌにＡからＤに記載の細胞を１ｘ１０＾５個入れ，感染多重度（ＭＯＩ）に従いウイルスを添加させる。例えば，Ａ１（矢印ストライプ）では1個の末梢血由来不死化単球細胞（ＣＤ１４－ＭＬ）に対し０．３９（粒子）の割合でデングウイルス４型（ＤＥＮＶ－４）を感染させている。

【図9】 プラークデングウイルス感染実験について，ウイルス希釈倍率をより大きくしたプレートデザイン図である。図８において感染評価後，上清中に含まれるウイルス量を可視化するために，Ｖｅｒｏ細胞に上清を播種し培養後，免疫染色させる。数字は図８に該当する。例えば，図８のＡ１の上清を１０倍希釈して播種したのが左上のＷｅｌｌである。

【図10】 プラークデングウイルス感染実験結果について示した図である。末梢血由来樹状様細胞（ＣＤ１４－ＤＣ：白矢印）及びｉＰＳ細胞由来樹状様細胞（ｉＰＳ－ＤＣ：黒矢印）いずれも，ウイルス極めて低い濃度での存在下においてもウイルスを増殖させ放出していることを示す。

【図11】 プラークデングウイルス感染実験結果について示した図である。デングウイルス１型を使用し，ウイルス希釈を行いながら感染した図である。プラークが薄い斑点状（白矢印）のものが大きな斑点（黒矢印）にある濃度で変化しており，両者間ではウイルスが変異している可能性を示す。