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(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B2)
(11)【特許番号】
(24)【登録日】2024-09-18
(45)【発行日】2024-09-27
(54)【発明の名称】糖吸収促進用組成物
(51)【国際特許分類】
A61K 35/744 20150101AFI20240919BHJP
A61K 35/74 20150101ALI20240919BHJP
A61P 3/08 20060101ALI20240919BHJP
A23L 33/135 20160101ALI20240919BHJP
A23K 10/16 20160101ALI20240919BHJP
【ＦＩ】
A61K35/744
A61K35/74 A
A61P3/08
A23L33/135
A23K10/16 ZNA
【請求項の数】
3
(21)【出願番号】P 2022208706
(22)【出願日】2022-12-26
(62)【分割の表示】P 2019027010の分割
【原出願日】2019-02-19
(65)【公開番号】P2023033337
(43)【公開日】2023-03-10
【審査請求日】2023-01-04
(73)【特許権者】
【識別番号】711002926
【氏名又は名称】雪印メグミルク株式会社
(74)【代理人】
【識別番号】110000774
【氏名又は名称】弁理士法人 もえぎ特許事務所
(72)【発明者】
【氏名】宮崎 忠昭
(72)【発明者】
【氏名】河野 通生
(72)【発明者】
【氏名】三好 雅也
【審査官】伊藤 基章
(56)【参考文献】
【文献】特表２００５－５２９６２２（ＪＰ，Ａ）
【文献】特開２０１６－０７３３１４（ＪＰ，Ａ）
【文献】特開２０１６－００５４５２（ＪＰ，Ａ）
【文献】特開２０１８－２０１４８７（ＪＰ，Ａ）
【文献】System.Appl.Microbiol.,6,183-195(1985)
【文献】BARRENETXE, J. et al.，FASEB J，2006年，Vol. 20, No. 5，p. A1018
【文献】XU, S. et al.，J Appl Microbiol，2015年，Vol. 119，pp. 225-235
(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)
Ａ６１Ｋ ３５／００
Ａ２３Ｌ ３３／００
Ａ２３Ｋ １０／００
ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩＩ）
ＣＡｐｌｕｓ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＥＭＢＡＳＥ／ＢＩＯＳＩＳ（ＳＴＮ）
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
ラクトコッカス（Lactococcus）属に属する菌（ただし、ＥＧＦ産生遺伝子導入組換え乳酸菌を除く）の菌体を有効成分とする腸管における糖吸収促進用組成物であって、ラクトコッカス（Lactococcus）属に属する菌が、ラクトコッカス ラクティス サブスピーシーズ クレモリス（Lactococcus lactis subsp. cremoris）及びラクトコッカス ラクティス サブスピーシーズ ラクティス（ Lactococcus lactis subsp.lactis）から選択されるひとつ以上であることを特徴とする前記組成物。
【請求項2】
ラクトコッカス（Lactococcus）属に属する菌が、ラクトコッカス ラクティス サブスピーシーズ クレモリス（Lactococcus lactis subsp.cremoris）JCM 16167及びラクトコッカス ラクティス サブスピーシーズ ラクティス（Lactococcus lactis subsp.lactis）JCM5805から選択されるひとつ以上であることを特徴とする請求項１に記載の腸管における糖吸収促進用組成物。
【請求項3】
請求項１又は請求項２に記載の糖吸収促進用組成物を含む、糖吸収促進用飼料組成物、糖吸収促進用医薬組成物、又は糖吸収促進用食品組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、乳酸菌および/またはビフィズス菌の菌体を有効成分とする腸管における糖
吸収促進組成物に関する。
吸収促進組成物に関する。
【背景技術】
【0002】
糖質は消化吸収されて血中を巡り、全身の組織のエネルギー源となる。特に脳において
は、血液中のグルコースが主なエネルギー源となるため、極端な糖質不足は、めまいやふ
らつき、集中力の欠如につながり、重篤な場合には意識障害を引き起こすこともある。
は、血液中のグルコースが主なエネルギー源となるため、極端な糖質不足は、めまいやふ
らつき、集中力の欠如につながり、重篤な場合には意識障害を引き起こすこともある。
【0003】
血中の糖質不足は、例えば極端なダイエットや摂食障害等によって、糖質摂取量が恒常
的に不足している場合、あるいは空腹時の運動等によって糖質消費過多になった場合に起
こりうる。また、糖尿病患者が使用するインスリン製剤や経口血糖低下薬の副作用として
も報告されている。
的に不足している場合、あるいは空腹時の運動等によって糖質消費過多になった場合に起
こりうる。また、糖尿病患者が使用するインスリン製剤や経口血糖低下薬の副作用として
も報告されている。
【0004】
腸管における糖の吸収不良もまた、糖質不足の原因となりうる。腸管での糖の取り込み
は、主に腸上皮細胞に発現する単糖トランスポーターを介して行われる。小腸には、ナト
リウム依存性の一方向性輸送体であるＳＧＬＴ１と、促進性の双方向輸送体であるＧＬＵ
Ｔ２およびＧＬＵＴ５の３つの単糖トランスポーターが発現しており、腸管管腔側から体
内への糖の取り込みに寄与している。これらの単糖トランスポーターの発現が阻害される
と腸管からの糖の取り込みが抑制される。例えばトマト種子由来サポニンであるトマトシ
ドＡは、腸上皮細胞のＳＧＬＴ１の発現を抑制することで糖の取り込みを抑制することが
報告されている（特許文献１）。また、リンゴや玉ねぎに含まれるケルセチン、セロリや
パセリに含まれるアピゲニンは、いずれもＧＬＵＴ２とＧＬＵＴ５の遺伝子発現を著しく
低下させる作用を持ち、糖の取り込みを抑制することが報告されている（非特許文献１）
。
は、主に腸上皮細胞に発現する単糖トランスポーターを介して行われる。小腸には、ナト
リウム依存性の一方向性輸送体であるＳＧＬＴ１と、促進性の双方向輸送体であるＧＬＵ
Ｔ２およびＧＬＵＴ５の３つの単糖トランスポーターが発現しており、腸管管腔側から体
内への糖の取り込みに寄与している。これらの単糖トランスポーターの発現が阻害される
と腸管からの糖の取り込みが抑制される。例えばトマト種子由来サポニンであるトマトシ
ドＡは、腸上皮細胞のＳＧＬＴ１の発現を抑制することで糖の取り込みを抑制することが
報告されている（特許文献１）。また、リンゴや玉ねぎに含まれるケルセチン、セロリや
パセリに含まれるアピゲニンは、いずれもＧＬＵＴ２とＧＬＵＴ５の遺伝子発現を著しく
低下させる作用を持ち、糖の取り込みを抑制することが報告されている（非特許文献１）
。
【0005】
腸管における糖の取り込みを促進することは、糖質不足を改善するための手段の一つで
あると考えられる。しかしながら、糖の取り込み抑制効果を示す食品や医薬組成物が数多
く報告されている一方、糖の取り込みを促進する食品や医薬組成物はほとんど報告されて
いない。
あると考えられる。しかしながら、糖の取り込み抑制効果を示す食品や医薬組成物が数多
く報告されている一方、糖の取り込みを促進する食品や医薬組成物はほとんど報告されて
いない。
【0006】
ところで、乳酸菌およびビフィズス菌は、古来より発酵食品の製造に使用される細菌で
あるが、近年の研究で様々な健康機能の増進に寄与することが明らかとなりつつある。乳
酸菌培養物は、糖の吸収にも影響することが示唆されている。特許文献２では、乳酸菌を
含む様々な微生物を用いて作る発酵乳ケフィアの抽出物（分子量１０００以下）が、筋管
細胞への糖の取り込み促進に寄与することが示されている。しかしながら、乳酸菌やビフ
ィズス菌の菌体そのものが腸管での糖の取り込み促進に関与するか否かは、いずれの文献
にも開示も示唆もされていない。
あるが、近年の研究で様々な健康機能の増進に寄与することが明らかとなりつつある。乳
酸菌培養物は、糖の吸収にも影響することが示唆されている。特許文献２では、乳酸菌を
含む様々な微生物を用いて作る発酵乳ケフィアの抽出物（分子量１０００以下）が、筋管
細胞への糖の取り込み促進に寄与することが示されている。しかしながら、乳酸菌やビフ
ィズス菌の菌体そのものが腸管での糖の取り込み促進に関与するか否かは、いずれの文献
にも開示も示唆もされていない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0007】
【文献】特開２０１７－１９２３１２号
【文献】特許３８１３８０８号
【非特許文献】
【0008】
【文献】Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ Ｆｏｏｄｓ（２０１７）、３６、４２９－４３９
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0009】
本発明は、新規な腸管における糖吸収促進用組成物を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【0010】
本発明は、以下の新たな糖吸収促進用組成物を提供するものである。
＜１＞ラクトバチルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属、ラクトコッカス（Ｌａｃｔｏ
ｃｏｃｃｕｓ）属、リューコノストック（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ）属またはビフィドバ
クテリウム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属に属する菌の菌体を有効成分とする腸
管における糖吸収促進用組成物。
＜２＞Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ属、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ属、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔ
ｏｃ属またはＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ属に属する菌が、ラクトバチルス アシド
フィルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ）、ラクトバチルス
アミロボラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｖｏｒｕｓ）、ラクトバチルス
デルブルッキー サブスピーシーズ ブルガリクス （Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ
ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ． ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ）、ラクトバチルス デ
ルブルッキー サブスピーシーズ ラクティス （Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｄｅｌ
ｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ）、ラクトバチルス ヘルベティカス（
Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｈｅｌｖｅｔｉｃｕｓ）、ラクトバチルス ジョンソニー
（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｊｏｈｎｓｏｎｉｉ）、ラクトバチルス パラカゼイ
サブスピーシーズ パラカゼイ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｐａｒａｃａｓｅｉ ｓ
ｕｂｓｐ． ｐａｒａｃａｓｅｉ）、ラクトバチルス プランタラム（Ｌａｃｔｏｂａｃ
ｉｌｌｕｓ ｐｌａｎｔａｒｕｍ）、ラクトバチルス ロイテリ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌ
ｌｕｓ ｒｅｕｔｅｒｉ）、ラクトバチルス ラムノーサス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕ
ｓ ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）、ラクトコッカス ラクティス サブスピーシーズ クレモリ
ス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ ｓｕｂｓｐ． ｃｒｅｍｏｒｉｓ）、ラク
トコッカス ラクティス サブスピーシーズ ラクティス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌ
ａｃｔｉｓ ｓｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ）、リューコノストック メセンテロイデス
サブスピーシーズ メセンテロイデス（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉ
ｄｅｓ ｓｕｂｓｐ． ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ）、リューコノストック シュード
メセンテロイデス（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｐｓｅｕｄｏｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ
）、ビフィドバクテリウム ロンガム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｏｎｇｕｍ
）、ビフィドバクテリウム アドレセンティス（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｄ
ｏｌｅｓｃｅｎｔｉｓ）、ビフィドバクテリウム ビフィダム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅ
ｒｉｕｍ ｂｉｆｉｄｕｍ）、ビフィドバクテリウム ブレーベ（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔ
ｅｒｉｕｍ ｂｒｅｖｅ）、ビフィドバクテリウム カテニュラタム（Ｂｉｆｉｄｏｂａ
ｃｔｅｒｉｕｍ ｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ）、ビフィドバクテリウム シュードカテニュ
ラタム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ）、ビ
フィドバクテリウム シュードロンガム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄ
ｏｌｏｎｇｕｍ）から選択されるひとつ以上であることを特徴とする＜１＞に記載の腸管
における糖吸収促進用組成物。
＜３＞Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ属、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ属、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔ
ｏｃ属またはＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ属に属する菌が、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌ
ｕｓ ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ ＪＣＭ１１３２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙ
ｌｏｖｏｒｕｓ ＪＣＭ１１２６、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉ
ｉ ｓｕｂｓｐ． ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ ＪＣＭ１００２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕ
ｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ ＪＣＭ１０１２、Ｌａｃｔ
ｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｈｅｌｖｅｔｉｃｕｓ ＪＣＭ１１２０、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌ
ｕｓ ｊｏｈｎｓｏｎｉｉ ＪＣＭ２０１２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｐａｒａｃ
ａｓｅｉ ｓｕｂｓｐ． ｐａｒａｃａｓｅｉ ＪＣＭ８１３０、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌ
ｌｕｓ ｐｌａｎｔａｒｕｍ ＪＣＭ１１４９、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｒｅｕｔ
ｅｒｉ ＪＣＭ１１１２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｒｈａｍｎｏｓｕｓ ＪＣＭ１
１３６、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ ｓｕｂｓｐ． ｃｒｅｍｏｒｉｓ Ｊ
ＣＭ１６１６７、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ ｓｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ
ＪＣＭ５８０５、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ｓｕｂｓｐ
． ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ＪＣＭ６１２４、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｐｓｅｕ
ｄｏｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ＪＣＭ９６９６、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ
ｌｏｎｇｕｍ ＪＣＭ１２１７、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｄｏｌｅｓｃｅｎ
ｔｉｓ ＪＣＭ１２７５、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｉｆｉｄｕｍ ＪＣＭ１
２５５、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｒｅｖｅ ＪＣＭ１１９２、Ｂｉｆｉｄｏ
ｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ ＪＣＭ１１９４、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔ
ｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ ＪＣＭ１２００、Ｂｉｆｉｄｏｂａ
ｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｌｏｎｇｕｍ ＪＣＭ１２０５から選択されるひとつ以上
であることを特徴とする＜２＞に記載の腸管における糖吸収促進用組成物。
＜４＞ ＜１＞～＜３＞のいずれか一つに記載の糖吸収促進用組成物を含む、糖吸収促進
用飼料組成物、糖吸収促進用医薬組成物、又は糖吸収促進用食品組成物。
＜１＞ラクトバチルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属、ラクトコッカス（Ｌａｃｔｏ
ｃｏｃｃｕｓ）属、リューコノストック（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ）属またはビフィドバ
クテリウム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属に属する菌の菌体を有効成分とする腸
管における糖吸収促進用組成物。
＜２＞Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ属、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ属、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔ
ｏｃ属またはＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ属に属する菌が、ラクトバチルス アシド
フィルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ）、ラクトバチルス
アミロボラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｖｏｒｕｓ）、ラクトバチルス
デルブルッキー サブスピーシーズ ブルガリクス （Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ
ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ． ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ）、ラクトバチルス デ
ルブルッキー サブスピーシーズ ラクティス （Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｄｅｌ
ｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ）、ラクトバチルス ヘルベティカス（
Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｈｅｌｖｅｔｉｃｕｓ）、ラクトバチルス ジョンソニー
（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｊｏｈｎｓｏｎｉｉ）、ラクトバチルス パラカゼイ
サブスピーシーズ パラカゼイ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｐａｒａｃａｓｅｉ ｓ
ｕｂｓｐ． ｐａｒａｃａｓｅｉ）、ラクトバチルス プランタラム（Ｌａｃｔｏｂａｃ
ｉｌｌｕｓ ｐｌａｎｔａｒｕｍ）、ラクトバチルス ロイテリ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌ
ｌｕｓ ｒｅｕｔｅｒｉ）、ラクトバチルス ラムノーサス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕ
ｓ ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）、ラクトコッカス ラクティス サブスピーシーズ クレモリ
ス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ ｓｕｂｓｐ． ｃｒｅｍｏｒｉｓ）、ラク
トコッカス ラクティス サブスピーシーズ ラクティス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌ
ａｃｔｉｓ ｓｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ）、リューコノストック メセンテロイデス
サブスピーシーズ メセンテロイデス（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉ
ｄｅｓ ｓｕｂｓｐ． ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ）、リューコノストック シュード
メセンテロイデス（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｐｓｅｕｄｏｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ
）、ビフィドバクテリウム ロンガム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｏｎｇｕｍ
）、ビフィドバクテリウム アドレセンティス（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｄ
ｏｌｅｓｃｅｎｔｉｓ）、ビフィドバクテリウム ビフィダム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅ
ｒｉｕｍ ｂｉｆｉｄｕｍ）、ビフィドバクテリウム ブレーベ（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔ
ｅｒｉｕｍ ｂｒｅｖｅ）、ビフィドバクテリウム カテニュラタム（Ｂｉｆｉｄｏｂａ
ｃｔｅｒｉｕｍ ｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ）、ビフィドバクテリウム シュードカテニュ
ラタム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ）、ビ
フィドバクテリウム シュードロンガム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄ
ｏｌｏｎｇｕｍ）から選択されるひとつ以上であることを特徴とする＜１＞に記載の腸管
における糖吸収促進用組成物。
＜３＞Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ属、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ属、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔ
ｏｃ属またはＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ属に属する菌が、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌ
ｕｓ ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ ＪＣＭ１１３２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙ
ｌｏｖｏｒｕｓ ＪＣＭ１１２６、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉ
ｉ ｓｕｂｓｐ． ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ ＪＣＭ１００２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕ
ｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ ＪＣＭ１０１２、Ｌａｃｔ
ｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｈｅｌｖｅｔｉｃｕｓ ＪＣＭ１１２０、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌ
ｕｓ ｊｏｈｎｓｏｎｉｉ ＪＣＭ２０１２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｐａｒａｃ
ａｓｅｉ ｓｕｂｓｐ． ｐａｒａｃａｓｅｉ ＪＣＭ８１３０、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌ
ｌｕｓ ｐｌａｎｔａｒｕｍ ＪＣＭ１１４９、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｒｅｕｔ
ｅｒｉ ＪＣＭ１１１２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｒｈａｍｎｏｓｕｓ ＪＣＭ１
１３６、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ ｓｕｂｓｐ． ｃｒｅｍｏｒｉｓ Ｊ
ＣＭ１６１６７、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ ｓｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ
ＪＣＭ５８０５、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ｓｕｂｓｐ
． ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ＪＣＭ６１２４、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｐｓｅｕ
ｄｏｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ＪＣＭ９６９６、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ
ｌｏｎｇｕｍ ＪＣＭ１２１７、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｄｏｌｅｓｃｅｎ
ｔｉｓ ＪＣＭ１２７５、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｉｆｉｄｕｍ ＪＣＭ１
２５５、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｒｅｖｅ ＪＣＭ１１９２、Ｂｉｆｉｄｏ
ｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ ＪＣＭ１１９４、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔ
ｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ ＪＣＭ１２００、Ｂｉｆｉｄｏｂａ
ｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｌｏｎｇｕｍ ＪＣＭ１２０５から選択されるひとつ以上
であることを特徴とする＜２＞に記載の腸管における糖吸収促進用組成物。
＜４＞ ＜１＞～＜３＞のいずれか一つに記載の糖吸収促進用組成物を含む、糖吸収促進
用飼料組成物、糖吸収促進用医薬組成物、又は糖吸収促進用食品組成物。
【発明の効果】
【0011】
本発明によれば、ラクトバチルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属、ラクトコッカス
（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ）属およびリューコノストック（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ）属
に属する乳酸菌およびビフィドバクテリウム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属に属
するビフィズス菌の菌体を有効成分とする腸管における糖吸収促進用組成物を提供するこ
とができる。
（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ）属およびリューコノストック（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ）属
に属する乳酸菌およびビフィドバクテリウム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属に属
するビフィズス菌の菌体を有効成分とする腸管における糖吸収促進用組成物を提供するこ
とができる。
【図面の簡単な説明】
【0012】
【図1】腸管上皮様に培養したヒト結腸癌由来細胞株Ｃａｃｏ－２に、様々な乳酸菌またはビフィズス菌加熱死菌体を添加して、２４時間培養後に各種グルコーストランスポーター（ＳＧＬＴ１、ＧＬＵＴ２、ＧＬＵＴ５）の遺伝子発現量を比較したグラフである。
【発明を実施するための形態】
【0013】
（乳酸菌およびビフィズス菌）
本発明の乳酸菌およびビフィズス菌は、ラクトバチルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ
）属、ラクトコッカス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ）属およびリューコノストック（Ｌｅｕ
ｃｏｎｏｓｔｏｃ）属に分類される乳酸菌およびビフィドバクテリウム（Ｂｉｆｉｄｏｂ
ａｃｔｅｒｉｕｍ）属に分類されるビフィズス菌であればどのようなものでも用いること
ができる。
具体的には、ラクトバチルス アシドフィルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｃｉ
ｄｏｐｈｉｌｕｓ）、ラクトバチルス アミロボラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａ
ｍｙｌｏｖｏｒｕｓ）、ラクトバチルス デルブルッキー サブスピーシーズ ブルガリ
クス （Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ． ｂｕｌ
ｇａｒｉｃｕｓ）、ラクトバチルス デルブルッキー サブスピーシーズ ラクティス
（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ
）、ラクトバチルス ヘルベティカス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｈｅｌｖｅｔｉｃ
ｕｓ）、ラクトバチルス ジョンソニー（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｊｏｈｎｓｏｎ
ｉｉ）、ラクトバチルス パラカゼイ サブスピーシーズ パラカゼイ（Ｌａｃｔｏｂａ
ｃｉｌｌｕｓ ｐａｒａｃａｓｅｉ ｓｕｂｓｐ． ｐａｒａｃａｓｅｉ）、ラクトバチ
ルス プランタラム（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｐｌａｎｔａｒｕｍ）、ラクトバチ
ルス ロイテリ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｒｅｕｔｅｒｉ）、ラクトバチルス ラ
ムノーサス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）、ラクトコッカス ラ
クティス サブスピーシーズ クレモリス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ ｓ
ｕｂｓｐ． ｃｒｅｍｏｒｉｓ）、ラクトコッカス ラクティス サブスピーシーズ ラ
クティス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ ｓｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ）、リ
ューコノストック メセンテロイデス サブスピーシーズ メセンテロイデス（Ｌｅｕｃ
ｏｎｏｓｔｏｃ ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ｓｕｂｓｐ． ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄ
ｅｓ）、リューコノストック シュードメセンテロイデス（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｐ
ｓｅｕｄｏｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ）、ビフィドバクテリウム ロンガム（Ｂｉｆｉ
ｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｏｎｇｕｍ）、ビフィドバクテリウム アドレセンティス（
Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｄｏｌｅｓｃｅｎｔｉｓ）、ビフィドバクテリウム
ビフィダム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｉｆｉｄｕｍ）、ビフィドバクテリ
ウム ブレーベ（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｒｅｖｅ）、ビフィドバクテリウ
ム カテニュラタム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ）、ビ
フィドバクテリウム シュードカテニュラタム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓ
ｅｕｄｏｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ）、ビフィドバクテリウム シュードロンガム（Ｂｉｆ
ｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｌｏｎｇｕｍ）等を例示できるが、これらに限
定されるものではない。
本発明の乳酸菌およびビフィズス菌は、ラクトバチルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ
）属、ラクトコッカス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ）属およびリューコノストック（Ｌｅｕ
ｃｏｎｏｓｔｏｃ）属に分類される乳酸菌およびビフィドバクテリウム（Ｂｉｆｉｄｏｂ
ａｃｔｅｒｉｕｍ）属に分類されるビフィズス菌であればどのようなものでも用いること
ができる。
具体的には、ラクトバチルス アシドフィルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｃｉ
ｄｏｐｈｉｌｕｓ）、ラクトバチルス アミロボラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａ
ｍｙｌｏｖｏｒｕｓ）、ラクトバチルス デルブルッキー サブスピーシーズ ブルガリ
クス （Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ． ｂｕｌ
ｇａｒｉｃｕｓ）、ラクトバチルス デルブルッキー サブスピーシーズ ラクティス
（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ
）、ラクトバチルス ヘルベティカス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｈｅｌｖｅｔｉｃ
ｕｓ）、ラクトバチルス ジョンソニー（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｊｏｈｎｓｏｎ
ｉｉ）、ラクトバチルス パラカゼイ サブスピーシーズ パラカゼイ（Ｌａｃｔｏｂａ
ｃｉｌｌｕｓ ｐａｒａｃａｓｅｉ ｓｕｂｓｐ． ｐａｒａｃａｓｅｉ）、ラクトバチ
ルス プランタラム（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｐｌａｎｔａｒｕｍ）、ラクトバチ
ルス ロイテリ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｒｅｕｔｅｒｉ）、ラクトバチルス ラ
ムノーサス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）、ラクトコッカス ラ
クティス サブスピーシーズ クレモリス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ ｓ
ｕｂｓｐ． ｃｒｅｍｏｒｉｓ）、ラクトコッカス ラクティス サブスピーシーズ ラ
クティス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ ｓｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ）、リ
ューコノストック メセンテロイデス サブスピーシーズ メセンテロイデス（Ｌｅｕｃ
ｏｎｏｓｔｏｃ ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ｓｕｂｓｐ． ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄ
ｅｓ）、リューコノストック シュードメセンテロイデス（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｐ
ｓｅｕｄｏｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ）、ビフィドバクテリウム ロンガム（Ｂｉｆｉ
ｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｏｎｇｕｍ）、ビフィドバクテリウム アドレセンティス（
Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｄｏｌｅｓｃｅｎｔｉｓ）、ビフィドバクテリウム
ビフィダム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｉｆｉｄｕｍ）、ビフィドバクテリ
ウム ブレーベ（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｒｅｖｅ）、ビフィドバクテリウ
ム カテニュラタム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ）、ビ
フィドバクテリウム シュードカテニュラタム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓ
ｅｕｄｏｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ）、ビフィドバクテリウム シュードロンガム（Ｂｉｆ
ｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｌｏｎｇｕｍ）等を例示できるが、これらに限
定されるものではない。
【0014】
本発明の乳酸菌は、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ ＪＣＭ１
１３２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｖｏｒｕｓ ＪＣＭ１１２６、Ｌａｃ
ｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ． ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ
ＪＣＭ１００２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ
． ｌａｃｔｉｓ ＪＣＭ１０１２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｈｅｌｖｅｔｉｃｕ
ｓ ＪＣＭ１１２０、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｊｏｈｎｓｏｎｉｉ ＪＣＭ２０１
２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｐａｒａｃａｓｅｉ ｓｕｂｓｐ． ｐａｒａｃａｓ
ｅｉ ＪＣＭ８１３０、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｐｌａｎｔａｒｕｍ ＪＣＭ１１
４９、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｒｅｕｔｅｒｉ ＪＣＭ１１１２、Ｌａｃｔｏｂａ
ｃｉｌｌｕｓ ｒｈａｍｎｏｓｕｓ ＪＣＭ１１３６、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃ
ｔｉｓ ｓｕｂｓｐ． ｃｒｅｍｏｒｉｓ ＪＣＭ１６１６７、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ
ｌａｃｔｉｓ ｓｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ ＪＣＭ５８０５、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏ
ｃ ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ｓｕｂｓｐ． ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ＪＣＭ
６１２４、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｐｓｅｕｄｏｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ＪＣＭ
９６９６、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｏｎｇｕｍ ＪＣＭ１２１７、Ｂｉｆｉ
ｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｄｏｌｅｓｃｅｎｔｉｓ ＪＣＭ１２７５、Ｂｉｆｉｄｏｂ
ａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｉｆｉｄｕｍ ＪＣＭ１２５５、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ
ｂｒｅｖｅ ＪＣＭ１１９２、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｃａｔｅｎｕｌａｔ
ｕｍ ＪＣＭ１１９４、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｃａｔｅｎｕｌ
ａｔｕｍ ＪＣＭ１２００、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｌｏｎｇｕ
ｍ ＪＣＭ１２０５であることが好ましい。
上記の菌株は、理化学研究所 バイオリソースセンター（日本、茨城県、つくば市）等
から入手することができる。
１３２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｖｏｒｕｓ ＪＣＭ１１２６、Ｌａｃ
ｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ． ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ
ＪＣＭ１００２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ
． ｌａｃｔｉｓ ＪＣＭ１０１２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｈｅｌｖｅｔｉｃｕ
ｓ ＪＣＭ１１２０、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｊｏｈｎｓｏｎｉｉ ＪＣＭ２０１
２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｐａｒａｃａｓｅｉ ｓｕｂｓｐ． ｐａｒａｃａｓ
ｅｉ ＪＣＭ８１３０、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｐｌａｎｔａｒｕｍ ＪＣＭ１１
４９、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｒｅｕｔｅｒｉ ＪＣＭ１１１２、Ｌａｃｔｏｂａ
ｃｉｌｌｕｓ ｒｈａｍｎｏｓｕｓ ＪＣＭ１１３６、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃ
ｔｉｓ ｓｕｂｓｐ． ｃｒｅｍｏｒｉｓ ＪＣＭ１６１６７、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ
ｌａｃｔｉｓ ｓｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ ＪＣＭ５８０５、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏ
ｃ ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ｓｕｂｓｐ． ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ＪＣＭ
６１２４、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｐｓｅｕｄｏｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ＪＣＭ
９６９６、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｏｎｇｕｍ ＪＣＭ１２１７、Ｂｉｆｉ
ｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｄｏｌｅｓｃｅｎｔｉｓ ＪＣＭ１２７５、Ｂｉｆｉｄｏｂ
ａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｉｆｉｄｕｍ ＪＣＭ１２５５、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ
ｂｒｅｖｅ ＪＣＭ１１９２、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｃａｔｅｎｕｌａｔ
ｕｍ ＪＣＭ１１９４、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｃａｔｅｎｕｌ
ａｔｕｍ ＪＣＭ１２００、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｌｏｎｇｕ
ｍ ＪＣＭ１２０５であることが好ましい。
上記の菌株は、理化学研究所 バイオリソースセンター（日本、茨城県、つくば市）等
から入手することができる。
【0015】
（乳酸菌およびビフィズス菌の調製）
乳酸菌およびビフィズス菌は、各菌の培養の常法に従って培養し、所望の量を調製すれ
ばよい。調製の一例を以下に示す。ラクトバチルス属に属する乳酸菌はＭＲＳ培地（Ｄｉ
ｆｃｏ）を用いて、ラクトコッカス属に属する乳酸菌はＭ１７培地（Ｄｉｆｃｏ）を用い
て、リューコノストック属に属する乳酸菌およびビフィドバクテリウム属に属するビフィ
ズス菌は、１％グルコース含有ＧＡＭブイヨン（日水）を用いてそれぞれ培養し、得られ
た培養物を遠心分離により集菌することにより菌体を得る。得られた菌体をそのまま用い
てもよいし、濃縮、乾燥、凍結乾燥処理に供した菌体を用いることもできる。菌体は加熱
乾燥などにより死菌体にしたものを用いることもできる。
乳酸菌およびビフィズス菌は、各菌の培養の常法に従って培養し、所望の量を調製すれ
ばよい。調製の一例を以下に示す。ラクトバチルス属に属する乳酸菌はＭＲＳ培地（Ｄｉ
ｆｃｏ）を用いて、ラクトコッカス属に属する乳酸菌はＭ１７培地（Ｄｉｆｃｏ）を用い
て、リューコノストック属に属する乳酸菌およびビフィドバクテリウム属に属するビフィ
ズス菌は、１％グルコース含有ＧＡＭブイヨン（日水）を用いてそれぞれ培養し、得られ
た培養物を遠心分離により集菌することにより菌体を得る。得られた菌体をそのまま用い
てもよいし、濃縮、乾燥、凍結乾燥処理に供した菌体を用いることもできる。菌体は加熱
乾燥などにより死菌体にしたものを用いることもできる。
【0016】
（利用方法）
上記したとおり、本発明の組成物は濃縮、乾燥、凍結乾燥処理に供した菌体、加熱乾燥
などにより得られる死菌体も有効成分とすることができることから、製剤、飲食品、飼料
の原料として広く用いることができる。製剤、飲食品、又は飼料を培地として菌体を培養
して、当該培地をそのまま製剤、飲食品、又は飼料として用いてもよく、または、他の培
地で培養した菌体を製剤、飲食品、又は飼料に添加してもよい。
上記したとおり、本発明の組成物は濃縮、乾燥、凍結乾燥処理に供した菌体、加熱乾燥
などにより得られる死菌体も有効成分とすることができることから、製剤、飲食品、飼料
の原料として広く用いることができる。製剤、飲食品、又は飼料を培地として菌体を培養
して、当該培地をそのまま製剤、飲食品、又は飼料として用いてもよく、または、他の培
地で培養した菌体を製剤、飲食品、又は飼料に添加してもよい。
【0017】
本発明の組成物の投与対象は特に限定されず、ヒトに対して投与することができるが、
投与対象はヒト以外の動物（例えば、イヌ、ネコ、ウマ又はウサギ等）であることもでき
る。投与対象がヒトである場合は、２０歳未満の未成年、成人、又は６５歳以上の高齢者
などに投与することができる。
本発明の組成物の摂取量は、投与対象者の症状、年齢などを考慮してそれぞれ個別に決
定されるが、通常成人の場合、一日あたり１－５０００ｍｇ程度摂取すればよい。
投与対象はヒト以外の動物（例えば、イヌ、ネコ、ウマ又はウサギ等）であることもでき
る。投与対象がヒトである場合は、２０歳未満の未成年、成人、又は６５歳以上の高齢者
などに投与することができる。
本発明の組成物の摂取量は、投与対象者の症状、年齢などを考慮してそれぞれ個別に決
定されるが、通常成人の場合、一日あたり１－５０００ｍｇ程度摂取すればよい。
【0018】
（糖吸収促進能の評価方法）
実施例に記載の方法で評価が可能である。
実施例に記載の方法で評価が可能である。
【0019】
以下、本発明の実施例をもとにさらに詳細に説明するが、本発明は係る実施例に限定し
て解釈されるものではない。
て解釈されるものではない。
【実施例】
【0020】
（実施例品１）乳酸菌およびビフィズス菌加熱死菌体
下記（１）の各供試菌を、ラクトバチルス属はＭＲＳ培地（Ｄｉｆｃｏ）、ラクトコッ
カス属はＭ１７培地（Ｄｉｆｃｏ）、リューコノストック属およびビフィドバクテリウム
属は１％グルコース含有ＧＡＭブイヨン（日水）にそれぞれ植菌し、３７℃にて１６時間
静置培養を行った。培養物を、生理食塩水にて２回、滅菌水にて１回洗浄し、洗浄菌体を
得た。この洗浄菌体を凍結乾燥処理して菌体粉末を得た。菌体粉末を１０ｍｇ/ｍｌにな
るように滅菌ＰＢＳ（－）で希釈し、８０℃にて３０分間加熱して加熱死菌体を得た。加
熱死菌体は１００μｇ/ｍｌとなるように１０％ＦＢＳ（Ｇｉｂｃｏ）、１×Ｎｏｎ－ｅ
ｓｓｅｎｔｉａｌ Ａｍｉｎｏ Ａｃｉｄｓ（Ｇｉｂｃｏ）、１％ペニシリン－ストレプ
トマイシン（Ｓｉｇｍａ）を含むＤＭＥＭ（Ｓｉｇｍａ）で希釈した。
下記（１）の各供試菌を、ラクトバチルス属はＭＲＳ培地（Ｄｉｆｃｏ）、ラクトコッ
カス属はＭ１７培地（Ｄｉｆｃｏ）、リューコノストック属およびビフィドバクテリウム
属は１％グルコース含有ＧＡＭブイヨン（日水）にそれぞれ植菌し、３７℃にて１６時間
静置培養を行った。培養物を、生理食塩水にて２回、滅菌水にて１回洗浄し、洗浄菌体を
得た。この洗浄菌体を凍結乾燥処理して菌体粉末を得た。菌体粉末を１０ｍｇ/ｍｌにな
るように滅菌ＰＢＳ（－）で希釈し、８０℃にて３０分間加熱して加熱死菌体を得た。加
熱死菌体は１００μｇ/ｍｌとなるように１０％ＦＢＳ（Ｇｉｂｃｏ）、１×Ｎｏｎ－ｅ
ｓｓｅｎｔｉａｌ Ａｍｉｎｏ Ａｃｉｄｓ（Ｇｉｂｃｏ）、１％ペニシリン－ストレプ
トマイシン（Ｓｉｇｍａ）を含むＤＭＥＭ（Ｓｉｇｍａ）で希釈した。
【0021】
（１）供試菌
ラクトバチルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属、ラクトコッカス（Ｌａｃｔｏｃｏ
ｃｃｕｓ）属、リューコノストック（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ）属、ビフィドバクテリウ
ム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属の下記２１株を供試菌とした。
Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ ＪＣＭ１１３２、Ｌａｃｔｏ
ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｖｏｒｕｓ ＪＣＭ１１２６、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕ
ｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ． ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ ＪＣＭ１００２、
Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ
ＪＣＭ１０１２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｈｅｌｖｅｔｉｃｕｓ ＪＣＭ１１２０
、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｊｏｈｎｓｏｎｉｉ ＪＣＭ２０１２、Ｌａｃｔｏｂａ
ｃｉｌｌｕｓ ｐａｒａｃａｓｅｉ ｓｕｂｓｐ． ｐａｒａｃａｓｅｉ ＪＣＭ８１３
０、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｐｌａｎｔａｒｕｍ ＪＣＭ１１４９、Ｌａｃｔｏｂ
ａｃｉｌｌｕｓ ｒｅｕｔｅｒｉ ＪＣＭ１１１２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｒｈ
ａｍｎｏｓｕｓ ＪＣＭ１１３６、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ ｓｕｂｓｐ
． ｃｒｅｍｏｒｉｓ ＪＣＭ１６１６７、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ ｓ
ｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ ＪＣＭ５８０５、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｍｅｓｅｎｔｅ
ｒｏｉｄｅｓ ｓｕｂｓｐ． ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ＪＣＭ６１２４、Ｌｅｕｃ
ｏｎｏｓｔｏｃ ｐｓｅｕｄｏｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ＪＣＭ９６９６、Ｂｉｆｉ
ｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｏｎｇｕｍ ＪＣＭ１２１７、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉ
ｕｍ ａｄｏｌｅｓｃｅｎｔｉｓ ＪＣＭ１２７５、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ
ｂｉｆｉｄｕｍ ＪＣＭ１２５５、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｒｅｖｅ ＪＣ
Ｍ１１９２、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ ＪＣＭ１１９
４、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ ＪＣＭ１
２００、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｌｏｎｇｕｍ ＪＣＭ１２０５
上記の菌株は、理化学研究所 バイオリソースセンター（日本、茨城県、つくば市）等
から入手することができる。
ラクトバチルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属、ラクトコッカス（Ｌａｃｔｏｃｏ
ｃｃｕｓ）属、リューコノストック（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ）属、ビフィドバクテリウ
ム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属の下記２１株を供試菌とした。
Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ ＪＣＭ１１３２、Ｌａｃｔｏ
ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｖｏｒｕｓ ＪＣＭ１１２６、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕ
ｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ． ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ ＪＣＭ１００２、
Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ ｓｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ
ＪＣＭ１０１２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｈｅｌｖｅｔｉｃｕｓ ＪＣＭ１１２０
、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｊｏｈｎｓｏｎｉｉ ＪＣＭ２０１２、Ｌａｃｔｏｂａ
ｃｉｌｌｕｓ ｐａｒａｃａｓｅｉ ｓｕｂｓｐ． ｐａｒａｃａｓｅｉ ＪＣＭ８１３
０、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｐｌａｎｔａｒｕｍ ＪＣＭ１１４９、Ｌａｃｔｏｂ
ａｃｉｌｌｕｓ ｒｅｕｔｅｒｉ ＪＣＭ１１１２、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｒｈ
ａｍｎｏｓｕｓ ＪＣＭ１１３６、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ ｓｕｂｓｐ
． ｃｒｅｍｏｒｉｓ ＪＣＭ１６１６７、Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ ｓ
ｕｂｓｐ． ｌａｃｔｉｓ ＪＣＭ５８０５、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｍｅｓｅｎｔｅ
ｒｏｉｄｅｓ ｓｕｂｓｐ． ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ＪＣＭ６１２４、Ｌｅｕｃ
ｏｎｏｓｔｏｃ ｐｓｅｕｄｏｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ ＪＣＭ９６９６、Ｂｉｆｉ
ｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｏｎｇｕｍ ＪＣＭ１２１７、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉ
ｕｍ ａｄｏｌｅｓｃｅｎｔｉｓ ＪＣＭ１２７５、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ
ｂｉｆｉｄｕｍ ＪＣＭ１２５５、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｒｅｖｅ ＪＣ
Ｍ１１９２、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ ＪＣＭ１１９
４、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｃａｔｅｎｕｌａｔｕｍ ＪＣＭ１
２００、Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｌｏｎｇｕｍ ＪＣＭ１２０５
上記の菌株は、理化学研究所 バイオリソースセンター（日本、茨城県、つくば市）等
から入手することができる。
【0022】
[試験例１]乳酸菌およびビフィズス菌によるグルコーストランスポーター発現促進効果
に関する試験
実施例品１を以下の試験に供した。
Ｃｅｌｌ ｍａｔｒｉｘ ｔｙｐｅ Ｉ－Ｃ（新田ゼラチン）でコラーゲンコートした
２４ ｗｅｌｌ ｐｌａｔｅ（ＢＤ）に、ヒト結腸癌由来細胞株Ｃａｃｏ－２を５×１０
４ ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで播種し、１０％ＦＢＳ（Ｇｉｂｃｏ）、１×Ｎｏｎ－ｅｓｓ
ｅｎｔｉａｌ Ａｍｉｎｏ Ａｃｉｄｓ（Ｇｉｂｃｏ）、１％ペニシリン－ストレプトマイ
シン（Ｓｉｇｍａ）を含むＤＭＥＭ（Ｓｉｇｍａ）で培養した。２－３日ごとに培地交換
しながら２４日間培養し、腸上皮様に分化させた。２４日後、細胞をＰＢＳで１回洗浄し
、試験群には各種菌体を１００μｇ／ｍｌで懸濁した培地を、コントロール群には菌体を
含まない培地を添加して、２４時間培養した。２４時間後、細胞を冷ＰＢＳ（－）で１回
洗浄し、洗浄した細胞に、ＴＲＩｚｏｌ Ｒｅａｇｅｎｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）３０
０μｌを入れ、細胞をピペッティングにより溶解した。細胞溶解液を１．５ｍｌチューブ
に回収し、５分以上室温でインキュベートした後、ＲＮＡ抽出操作実施まで－８０℃で保
存した。
に関する試験
実施例品１を以下の試験に供した。
Ｃｅｌｌ ｍａｔｒｉｘ ｔｙｐｅ Ｉ－Ｃ（新田ゼラチン）でコラーゲンコートした
２４ ｗｅｌｌ ｐｌａｔｅ（ＢＤ）に、ヒト結腸癌由来細胞株Ｃａｃｏ－２を５×１０
４ ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで播種し、１０％ＦＢＳ（Ｇｉｂｃｏ）、１×Ｎｏｎ－ｅｓｓ
ｅｎｔｉａｌ Ａｍｉｎｏ Ａｃｉｄｓ（Ｇｉｂｃｏ）、１％ペニシリン－ストレプトマイ
シン（Ｓｉｇｍａ）を含むＤＭＥＭ（Ｓｉｇｍａ）で培養した。２－３日ごとに培地交換
しながら２４日間培養し、腸上皮様に分化させた。２４日後、細胞をＰＢＳで１回洗浄し
、試験群には各種菌体を１００μｇ／ｍｌで懸濁した培地を、コントロール群には菌体を
含まない培地を添加して、２４時間培養した。２４時間後、細胞を冷ＰＢＳ（－）で１回
洗浄し、洗浄した細胞に、ＴＲＩｚｏｌ Ｒｅａｇｅｎｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）３０
０μｌを入れ、細胞をピペッティングにより溶解した。細胞溶解液を１．５ｍｌチューブ
に回収し、５分以上室温でインキュベートした後、ＲＮＡ抽出操作実施まで－８０℃で保
存した。
【0023】
－８０℃で保管しておいた細胞溶解液を室温に戻し、６０μｌ（５分の１量）のクロロ
ホルムを添加した。手で力強く振って撹拌した後、室温で３分間静置した。１２，０００
×ｇ、４℃で１５分間遠心し、上層（水層）を別のチューブに移した。水層と等量のイソ
プロプロパノールを添加してピペッティングにより混合し、室温で１０分間静置した。２
０，０００×ｇ、４℃で１０分間遠心し、ペレットを残して上清を除去した。３００μｌ
の７５％エタノールを添加し、転倒混和によってペレットを洗い、２０，０００×ｇ、４
℃で５分間遠心した。ペレットを残して上清を完全に除去し、３０分間風乾した。３０μ
ｌのＮｕｃｌｅａｓｅ－Ｆｒｅｅ Ｗａｔｅｒでペレットを懸濁し、５５℃で１０分間イ
ンキュベートしてＲＮＡを溶解した。溶解したＲＮＡ溶液を氷冷し、ＢｉｏＳｐｅｃ－ｎ
ａｎｏ（島津製作所）により核酸濃度を測定した。
ホルムを添加した。手で力強く振って撹拌した後、室温で３分間静置した。１２，０００
×ｇ、４℃で１５分間遠心し、上層（水層）を別のチューブに移した。水層と等量のイソ
プロプロパノールを添加してピペッティングにより混合し、室温で１０分間静置した。２
０，０００×ｇ、４℃で１０分間遠心し、ペレットを残して上清を除去した。３００μｌ
の７５％エタノールを添加し、転倒混和によってペレットを洗い、２０，０００×ｇ、４
℃で５分間遠心した。ペレットを残して上清を完全に除去し、３０分間風乾した。３０μ
ｌのＮｕｃｌｅａｓｅ－Ｆｒｅｅ Ｗａｔｅｒでペレットを懸濁し、５５℃で１０分間イ
ンキュベートしてＲＮＡを溶解した。溶解したＲＮＡ溶液を氷冷し、ＢｉｏＳｐｅｃ－ｎ
ａｎｏ（島津製作所）により核酸濃度を測定した。
【0024】
ＲＮＡからのｃＤＮＡ合成は、ＲｅｖｅｒＴｒａＡｃｅ（Ｔｏｙｏｂｏ）のプロトコー
ルをスケールダウンしたものに従って実施した。逆転写に供する総ＲＮＡ量は２５０ｎｇ
／μｌとした。合成したｃＤＮＡは、定量ＰＣＲ（ｑＰＣＲ）に供するまで－２０℃で保
存した。
ルをスケールダウンしたものに従って実施した。逆転写に供する総ＲＮＡ量は２５０ｎｇ
／μｌとした。合成したｃＤＮＡは、定量ＰＣＲ（ｑＰＣＲ）に供するまで－２０℃で保
存した。
【0025】
ｑＰＣＲ反応試薬は、ＫＡＰＡ ＳＹＢＲ ＦＡＳＴ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ（２×）
Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ（Ｋａｐａ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を用いた。ｑＰＣＲ装置はＳｔ
ｅｐＯｎｅＰｌｕｓ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を使用した。ｑＰＣＲ反
応は、ＫＡＰＡ ＳＹＢＲ ＦＡＳＴ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ（２×）Ｕｎｉｖｅｒｓａ
ｌの「ＡＢＩ社製装置用プロトコール（Ｆａｓｔプログラム）」をスケールダウンしたも
のに従って実施した。テンプレートには２０倍希釈したｃＤＮＡを１μｌ／ｗｅｌｌ用い
た。ｑＰＣＲプログラムは、ＳｔｅｐＯｎｅＰｌｕｓシステムのＦａｓｔプログラムを一
部改変して使用した（反応液量：２０μｌ／ｗｅｌｌ→５μｌ／ｗｅｌｌ、Ｄｅｎａｔｕ
ｒｅ Ｓｔｅｐの反応時間：３秒→５秒、Ａｎｎｅａｌｉｎｇ Ｓｔｅｐの反応温度：す
べて６０℃）。
Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ（Ｋａｐａ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を用いた。ｑＰＣＲ装置はＳｔ
ｅｐＯｎｅＰｌｕｓ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を使用した。ｑＰＣＲ反
応は、ＫＡＰＡ ＳＹＢＲ ＦＡＳＴ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ（２×）Ｕｎｉｖｅｒｓａ
ｌの「ＡＢＩ社製装置用プロトコール（Ｆａｓｔプログラム）」をスケールダウンしたも
のに従って実施した。テンプレートには２０倍希釈したｃＤＮＡを１μｌ／ｗｅｌｌ用い
た。ｑＰＣＲプログラムは、ＳｔｅｐＯｎｅＰｌｕｓシステムのＦａｓｔプログラムを一
部改変して使用した（反応液量：２０μｌ／ｗｅｌｌ→５μｌ／ｗｅｌｌ、Ｄｅｎａｔｕ
ｒｅ Ｓｔｅｐの反応時間：３秒→５秒、Ａｎｎｅａｌｉｎｇ Ｓｔｅｐの反応温度：す
べて６０℃）。
【0026】
ＳＧＬＴ１、ＧＬＵＴ２およびＧＬＵＴ５遺伝子の相対発現量は、ΔΔＣＴ法にて算出
した。各遺伝子の相対発現量は、ハウスキーピング遺伝子であるＧＡＰＤＨの相対発現量
にて補正した。試験に使用したプライマーの塩基配列は以下に示す。
した。各遺伝子の相対発現量は、ハウスキーピング遺伝子であるＧＡＰＤＨの相対発現量
にて補正した。試験に使用したプライマーの塩基配列は以下に示す。
【0027】
（試験結果）
腸上皮様に分化させたＣａｃｏ－２細胞に、乳酸菌またはビフィズス菌２１菌種のいず
れかを添加して２４時間培養した時の、グルコーストランスポーターの遺伝子発現量を図
１に示した。ＳＧＬＴ１およびＧＬＵＴ５については、すべての供試菌株が遺伝子発現を
増加させた（Ｃｏｎｔｒｏｌ群と比較して、ＳＧＬＴ１は約１．５－２．５倍、ＧＬＵＴ
５は約１．２－２．７倍）。また、ＧＬＵＴ２についても、ラクトバチルス アミロボラ
ス、ラクトバチルス パラカゼイ サブスピーシーズ パラカゼイ、ラクトバチルス ロ
イテリ、ラクトバチルス ラムノーサスの４菌種は遺伝子発現にほとんど影響を与えなか
ったが、それ以外の１７菌種は遺伝子発現を増加させた（Ｃｏｎｔｒｏｌ群と比較して約
１．２－２．３倍）。したがって、乳酸菌およびビフィズス菌の菌体は、菌種によらず、
単糖トランスポーターの遺伝子発現を増加させ、腸管における糖の取り込みを増加させる
ことが示唆された。
腸上皮様に分化させたＣａｃｏ－２細胞に、乳酸菌またはビフィズス菌２１菌種のいず
れかを添加して２４時間培養した時の、グルコーストランスポーターの遺伝子発現量を図
１に示した。ＳＧＬＴ１およびＧＬＵＴ５については、すべての供試菌株が遺伝子発現を
増加させた（Ｃｏｎｔｒｏｌ群と比較して、ＳＧＬＴ１は約１．５－２．５倍、ＧＬＵＴ
５は約１．２－２．７倍）。また、ＧＬＵＴ２についても、ラクトバチルス アミロボラ
ス、ラクトバチルス パラカゼイ サブスピーシーズ パラカゼイ、ラクトバチルス ロ
イテリ、ラクトバチルス ラムノーサスの４菌種は遺伝子発現にほとんど影響を与えなか
ったが、それ以外の１７菌種は遺伝子発現を増加させた（Ｃｏｎｔｒｏｌ群と比較して約
１．２－２．３倍）。したがって、乳酸菌およびビフィズス菌の菌体は、菌種によらず、
単糖トランスポーターの遺伝子発現を増加させ、腸管における糖の取り込みを増加させる
ことが示唆された。
【産業上の利用可能性】
【0028】
本発明によれば、ラクトバチルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属、ラクトコッカス
（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ）属、リューコノストック（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ）属また
はビフィドバクテリウム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属に属する菌の菌体を有効
成分とする腸管における糖吸収促進用組成物を提供することができる。
（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ）属、リューコノストック（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ）属また
はビフィドバクテリウム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属に属する菌の菌体を有効
成分とする腸管における糖吸収促進用組成物を提供することができる。
【図1】
【配列表】