ホーム > 特許ランキング > 国立大学法人 筑波大学
(19)【発行国】日本国特許庁(JP)
(12)【公報種別】特許公報(B2)
(11)【特許番号】
(24)【登録日】2024-11-07
(45)【発行日】2024-11-15
(54)【発明の名称】ブドウ果皮抽出物
(51)【国際特許分類】
A23L 33/105 20160101AFI20241108BHJP
A61K 31/05 20060101ALI20241108BHJP
A61K 31/7028 20060101ALI20241108BHJP
A61K 36/87 20060101ALI20241108BHJP
A61P 3/02 20060101ALI20241108BHJP
A61P 25/16 20060101ALI20241108BHJP
A61P 25/18 20060101ALI20241108BHJP
A61P 25/24 20060101ALI20241108BHJP
A61P 25/28 20060101ALI20241108BHJP
【ＦＩ】
A23L33/105
A61K31/05
A61K31/7028
A61K36/87
A61P3/02
A61P25/16
A61P25/18
A61P25/24
A61P25/28
【請求項の数】
16
(21)【出願番号】P 2021524759
(86)(22)【出願日】2020-05-22
(86)【国際出願番号】 JP2020020360
(87)【国際公開番号】W WO2020246272
(87)【国際公開日】2020-12-10
【審査請求日】2023-05-02
(31)【優先権主張番号】P 2019105648
(32)【優先日】2019-06-05
(33)【優先権主張国・地域又は機関】JP
(73)【特許権者】
【識別番号】504171134
【氏名又は名称】国立大学法人 筑波大学
(73)【特許権者】
【識別番号】301021533
【氏名又は名称】国立研究開発法人産業技術総合研究所
(73)【特許権者】
【識別番号】000229117
【氏名又は名称】日本ゼオン株式会社
(74)【代理人】
【識別番号】100147485
【弁理士】
【氏名又は名称】杉村 憲司
(74)【代理人】
【識別番号】230118913
【弁護士】
【氏名又は名称】杉村 光嗣
(74)【代理人】
【識別番号】100150360
【弁理士】
【氏名又は名称】寺嶋 勇太
(74)【代理人】
【識別番号】100119079
【弁理士】
【氏名又は名称】伊藤 佐保子
(72)【発明者】
【氏名】礒田 博子
(72)【発明者】
【氏名】佐々木 一憲
(72)【発明者】
【氏名】佐藤 一彦
(72)【発明者】
【氏名】浅川 真澄
(72)【発明者】
【氏名】富永 健一
(72)【発明者】
【氏名】藤澤 浩
(72)【発明者】
【氏名】腰山 雅巳
【審査官】二星 陽帥
(56)【参考文献】
【文献】中国特許第１０４１７７４６０（ＣＮ，Ｂ）
【文献】OKAMOTO, G. et al.，Juice constituents and skin pigments in Vitis coignetiae Pulliat grapevines，Vitis，2002年，41(3)，pp.161-162
【文献】CRUZ, A. et al.，Anthocyanin Phytochemical Profiles and Anti-Oxidant Activities of Vitis Candicans and Vitis Doaniana，Phytochem Anal.，2013年，24(5)，pp.446-452
【文献】DREISEITEL, A. et al.，Inhibition of Proteasome Activity by Anthocyanins and Anthocyanidins，Biochem Biophys Res Commun.，2008年，372(1)，pp.57-61
【文献】DREISEITEL, A. et al.，Berry Anthocyanins and Their Aglycons Inhibit Monoamine Oxidases A and B，Pharmacol Res.，2009年，59，pp.306-311
【文献】TOMAZ, I.，Solid-liquid Extraction of Phenolics From Red Grape Skins，Acta Chim Slov.，2016年，63(2)，pp.287-297
【文献】CRUZ, A. et al.，Anthocyanin Identification and Composition of Wild Vitis Spp. Accessions by Using LC-MS and LC-NMR，Anal Chim Acta.，2012年，732，pp.145-152
【文献】Ruly Teran Hilares，Ethanol production in a simultaneous saccharification and fermentation process with interconnected r，Bioresource Technology，2017年，Vol. 243，pp. 652-659
(58)【調査した分野】(Int.Cl.，ＤＢ名)
Ａ２３Ｌ ３３／１０５
Ａ６１Ｋ ３１／０５ － ３６／８７
Ａ６１Ｐ ３／０２ － ２５／２８
ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩＩ）
ＣＡｐｌｕｓ／ＲＥＧＩＳＴＲＹ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＥＭＢＡＳＥ／ＢＩＯＳＩＳ／ＦＳＴＡ（ＳＴＮ）
(57)【特許請求の範囲】
【請求項1】
乾燥質量中、マルビジン－３，５－ジグルコシドを２０ｍｇ／ｇ以上含有し、投与対象に、体重１ｋｇ当り０．２ｍｇ／日以上、１００ｍｇ／日以下の投与量で投与する、神経機能調節用ブドウ果皮抽出物であって、ブドウ果皮が、ヤマブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｃｏｉｇｎｅｔｉａｅ）、サンカクヅル（Ｖｉｔｉｓ ｆｌｅｘｕｏｓａ）、ヤマブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｃｏｉｇｎｅｔｉａｅ）とサンカクヅル（Ｖｉｔｉｓ ｆｌｅｘｕｏｓａ）の交配種、ヤマブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｃｏｉｇｎｅｔｉａｅ）とヨーロッパブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｖｉｎｉｆｅｒａ）の交配種及びサンカクヅル（Ｖｉｔｉｓ ｆｌｅｘｕｏｓａ）とヨーロッパブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｖｉｎｉｆｅｒａ）の交配種からなる群より選択される１種以上のブドウの果皮である、神経機能調節用ブドウ果皮抽出物。
【請求項2】
デルフィニジン－３－グルコシドを含有する、請求項１に記載の神経機能調節用ブドウ果皮抽出物。
【請求項3】
デルフィニジン－３－グルコシドを、マルビジン－３，５－ジグルコシド１モルに対して０．０１モル以上１．５モル以下含有する、請求項２に記載の神経機能調節用ブドウ果皮抽出物。
【請求項4】
マルビジン－３－グルコシドを含有する、請求項１～３のいずれか一項に記載の神経機能調節用ブドウ果皮抽出物。
【請求項5】
マルビジン－３－グルコシドを、マルビジン－３，５－ジグルコシド１モルに対して、０．０１モル以上１．５モル以下含有する、請求項４に記載の神経機能調節用ブドウ果皮抽出物。
【請求項6】
マルビジン－３－クマロイルグルコシドを含有する、請求項１～５のいずれか一項に記載の神経機能調節用ブドウ果皮抽出物。
【請求項7】
マルビジン－３－クマロイルグルコシドを、マルビジン－３，５－ジグルコシド１モルに対して、０．０１モル以上２．０モル以下含有する、請求項６に記載の神経機能調節用ブドウ果皮抽出物。
【請求項8】
マルビジン－３－クマロイルグルコシド－５－グルコシドを含有する、請求項１～７のいずれか一項に記載の神経機能調節用ブドウ果皮抽出物。
【請求項9】
マルビジン－３－クマロイルグルコシド－５－グルコシドを、マルビジン－３，５－ジグルコシド１モルに対して、０．０１モル以上２．０モル以下含有する、請求項８に記載の神経機能調節用ブドウ果皮抽出物。
【請求項10】
レスベラトロールを含有する、請求項１～９のいずれか一項に記載の神経機能調節用ブドウ果皮抽出物。
【請求項11】
レスベラトロールを、マルビジン－３，５－ジグルコシド１モルに対して、０．００１モル以上含有する、請求項１０に記載の神経機能調節用ブドウ果皮抽出物。
【請求項12】
請求項１～１１のいずれか一項に記載の神経機能調節用ブドウ果皮抽出物を含有する、食品組成物。
【請求項13】
アルコール度数が３％未満の飲料である、請求項１２記載の神経機能調節用食品組成物。
【請求項14】
請求項１～１１のいずれか一項に記載の神経機能調節用ブドウ果皮抽出物を含有する、医薬組成物。
【請求項15】
ブドウ果皮より、酸を含む有機溶媒又は酸を含む有機溶媒と水の混合溶媒を用いて、マルビジン－３，５－ジグルコシドを含む成分を抽出する、請求項１～１１のいずれか一項に記載のブドウ果皮抽出物の製造方法であって、
前記ブドウ果皮として、ブドウ果皮乾燥物を用い、
前記ブドウ果皮乾燥物が、ヤマブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｃｏｉｇｎｅｔｉａｅ）、サンカクヅル（Ｖｉｔｉｓ ｆｌｅｘｕｏｓａ）、ヤマブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｃｏｉｇｎｅｔｉａｅ）とサンカクヅル（Ｖｉｔｉｓ ｆｌｅｘｕｏｓａ）の交配種、ヤマブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｃｏｉｇｎｅｔｉａｅ）とヨーロッパブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｖｉｎｉｆｅｒａ）の交配種及びサンカクヅル（Ｖｉｔｉｓ ｆｌｅｘｕｏｓａ）とヨーロッパブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｖｉｎｉｆｅｒａ）の交配種からなる群より選択される１種以上のブドウのブドウ果皮乾燥物であり、
前記酸が、ギ酸及び塩酸から選択され、前記有機溶媒が、メタノール及びエタノールから選択される、
ブドウ果皮抽出物の製造方法。
【請求項16】
酸を含むメタノール又は酸を含むメタノールと水の混合溶媒を用いて抽出を行う、請求項１５に記載のブドウ果皮抽出物の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、マルビジン－３，５－ジグルコシドを特定量で含有するブドウ果皮抽出物に関する。
【背景技術】
【0002】
アントシアニンは、視覚障害改善作用、抗酸化作用、血管強化作用、抗炎症作用、抗腫瘍作用など様々な生理活性を示すことが知られており、アントシアニンを含有する生物資源の利用が図られている。
【0003】
例えば、ブルーベリー果実の抽出物については、抗癌剤（特許文献１）や脳機能改善用組成物（特許文献２）としての応用が報告されている。また、ビルベリーに含まれるアントシアニンによってアミロイドβタンパク質の凝集を抑制する試みもなされている（非特許文献１）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【0004】
【文献】特開２００３－２７７２７１号公報
【文献】特開２００７－１４５８２５号公報
【非特許文献】
【0005】
【文献】MY.Yoshida, et al., "Anthocyanin suppresses the toxicity of Aβ deposits through diversion of molecular forms in vitro and in vivo models of Alzheimer's disease" Nutritional Neuroscience, 2016年、Vol.19(1)、p.32-42
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0006】
現在日本では、高齢化の進展による認知症患者数の増加を受け、認知症治療剤市場は大幅に拡大を続けており、市場規模は、２０２２年には２０１３年から比較して１．７５倍まで拡大するとの予想もある。一般に、認知症の内科的な治療法には副作用の問題等があり、患者の負担が大きい。一方、生物資源由来の物質は、副作用が少なく、安全で、日常的又は継続的な摂取に適している。そのため、神経機能調節作用を示す生物資源由来の物質に期待が寄せられている。
【0007】
生物資源に関しては、上記のとおり、アントシアニンについては、これまでブルーベリーやビルベリーが中心に研究が行われており、ブドウやブドウ果皮に関しては十分とはいえなかった。
【0008】
本発明は、神経機能調節作用を示す、ブドウ果皮抽出物を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【0009】
本発明者らは、生物資源としてブドウに注目し、研究を進めたところ、特定のブドウ果皮抽出物が優れた神経機能調節作用を示し得ることを見出した。そして、特定のブドウ果皮抽出物は、マルビジン－３，５－ジグルコシド含有量が高く、アントシアニンの組成において特異的であることを見出した。本発明は、ブドウ果皮を抽出するに当たり、マルビジン－３，５－ジグルコシドの含有量を特定の範囲に制御することにより、優れた神経機能調節作用を有する抽出物が得られるとの知見に基づきなされたものである。
【0010】
本発明によれば、乾燥質量中、マルビジン－３，５－ジグルコシドを１５ｍｇ／ｇ以上含有するブドウ果皮抽出物が提供される。
マルビジン－３，５－ジグルコシドは、下記式（１）で表わされる。
ブドウ果皮抽出物中、マルビジン－３，５－ジグルコシドは、カウンターアニオンを有した形態であってもよく、例えばクロリドが挙げられる。
マルビジン－３，５－ジグルコシドは、下記式（１）で表わされる。
【化1】
【0011】
また、本発明によれば、デルフィニジン－３－グルコシドを含有する、上記のブドウ果皮抽出物が提供され、さらに、デルフィニジン－３－グルコシドを、マルビジン－３，５－ジグルコシド１モルに対して０．０１モル以上１．５モル以下含有する、上記のブドウ果皮抽出物が提供される。
デルフィニジン－３－グルコシドは、下記式（２）で表わされる。
ブドウ果皮抽出物中、デルフィニジン－３－グルコシドは、カウンターアニオンを有した形態であってもよく、例えばクロリドが挙げられる。
デルフィニジン－３－グルコシドは、下記式（２）で表わされる。
【化2】
【0012】
また、本発明によれば、マルビジン－３－グルコシドを含有する、上記のブドウ果皮抽出物が提供され、さらに、マルビジン－３－グルコシドを、マルビジン－３，５－ジグルコシド１モルに対して０．０１モル以上１．５モル以下含有する、上記のブドウ果皮抽出物が提供される。
マルビジン－３－グルコシドは、下記式（３）で表わされる。
ブドウ果皮抽出物中、マルビジン－３－グルコシドは、カウンターアニオンを有した形態であってもよく、例えばクロリドが挙げられる。
マルビジン－３－グルコシドは、下記式（３）で表わされる。
【化3】
【0013】
また、本発明によれば、マルビジン－３－クマロイルグルコシドを含有する上記のブドウ果皮抽出物が提供され、さらに、マルビジン－３－クマロイルグルコシドを、マルビジン－３，５－ジグルコシド１モルに対して、０．０１モル以上２．０モル以下含有する、上記のブドウ果皮抽出物が提供される。
マルビジン－３－クマロイルグルコシドは、下記式（４）で表わされる。
ブドウ果皮抽出物中、マルビジン－３－クマロイルグルコシドは、カウンターアニオンを有した形態であってもよく、例えばクロリドが挙げられる。
マルビジン－３－クマロイルグルコシドは、下記式（４）で表わされる。
【化4】
【0014】
また、本発明によれば、マルビジン－３－クマロイルグルコシド－５－グルコシドを含有する上記のブドウ果皮抽出物が提供され、さらに、マルビジン－３－クマロイルグルコシド－５－グルコシドを、マルビジン－３，５－ジグルコシド１モルに対して、０．０１モル以上２．０モル以下含有する、上記のブドウ果皮抽出物が提供される。
マルビジン－３－クマロイルグルコシド－５－グルコシドは、下記式（５）で表わされる。
ブドウ果皮抽出物中、マルビジン－３－クマロイルグルコシド－５－グルコシドは、カウンターアニオンを有した形態であってもよく、例えばクロリドが挙げられる。
マルビジン－３－クマロイルグルコシド－５－グルコシドは、下記式（５）で表わされる。
【化5】
【0015】
また、本発明によれば、レスベラトロールを含有する、上記のブドウ果皮抽出物が提供され、さらに、レスベラトロールを、マルビジン－３，５－ジグルコシド１モルに対して０．００１モル以上含有する、上記のブドウ果皮抽出物が提供される。
レスベラトロールは、下記式（６）で表わされる。
レスベラトロールは、下記式（６）で表わされる。
【化6】
【0016】
本発明によれば、ブドウ果皮が、ヤマブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｃｏｉｇｎｅｔｉａｅ）、サンカクヅル（Ｖｉｔｉｓ ｆｌｅｘｕｏｓａ）、ヤマブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｃｏｉｇｎｅｔｉａｅ）とサンカクヅル（Ｖｉｔｉｓ ｆｌｅｘｕｏｓａ）の交配種、ヤマブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｃｏｉｇｎｅｔｉａｅ）とヨーロッパブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｖｉｎｉｆｅｒａ）の交配種及びサンカクヅル（Ｖｉｔｉｓ ｆｌｅｘｕｏｓａ）とヨーロッパブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｖｉｎｉｆｅｒａ）の交配種からなる群より選択される１種以上のブドウの果皮である、上記のいずれかのブドウ果皮抽出物が提供される。
【0017】
また、本発明によれば、上記のいずれかのブドウ果皮抽出物を含有する、食品組成物が提供され、さらに、アルコール度数が３％未満の飲料である、上記の食品組成物が提供される。
【0018】
また、本発明によれば、上記のいずれかのブドウ果皮抽出物を含有する、医薬組成物が提供される。
【0019】
また、本発明によれば、ブドウ果皮より、有機溶媒を用いて、マルビジン－３，５－ジグルコシドを含む成分を抽出する、上記のブドウ果皮抽出物の製造方法が提供され、さらに、上記の製造方法であって、ブドウ果皮として、ブドウ果皮乾燥物を用い、酸を含む有機溶媒又は酸を含む有機溶媒と水の混合溶媒を用いて抽出を行う、ブドウ果皮抽出物の製造方法が提供される。
【発明の効果】
【0020】
本発明のブドウ果皮抽出物は、優れた神経機能調節作用を示す。また、本発明によれば、そのようなブドウ果皮抽出物を、簡便な方法で製造することができる。
【図面の簡単な説明】
【0021】
【図1】実施例１の細胞生存実験の結果を示すグラフである。
【図2】実施例２の動物実験（抗炎症作用確認実験。ＴＮＦ－α（腫瘍壊死因子）の発現）の結果を示すグラフである。
【図3】実施例２の動物実験（抗炎症作用確認実験。ＩＬ－６（インターロイキン６）の発現）の結果を示すグラフである。
【図4】実施例３の動物実験（神経伝達物質減少の抑制作用確認実験。ノルアドレナリン量）の結果を示すグラフである。
【図5】実施例３の動物実験（神経伝達物質減少の抑制作用確認実験。ドーパミン量）の結果を示すグラフである。
【図6】実施例４の動物実験におけるプラットフォームテスト（プラットフォームまでの到達時間）の結果を示すグラフである。
【図7】実施例４の動物実験におけるプローブテスト（プラットフォームが設置されていた場所を横切った回数）の結果を示すグラフである。
【図8】実施例４の動物実験におけるプローブテスト（プラットフォームが設置されていた場所の滞在時間）の結果を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【0022】
以下、本発明を詳細に説明する。
【0023】
＜ブドウ果皮抽出物＞
本発明のブドウ果皮抽出物は、乾燥質量中、マルビジン－３，５－ジグルコシドを１５ｍｇ／ｇ以上含有する。
本発明のブドウ果皮抽出物は、乾燥質量中、マルビジン－３，５－ジグルコシドを１５ｍｇ／ｇ以上含有する。
【0024】
（ブドウ果皮）
ブドウ果皮は、マルビジン－３，５－ジグルコシドの含有量の点から、ヤマブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｃｏｉｇｎｅｔｉａｅ）、サンカクヅル（Ｖｉｔｉｓ ｆｌｅｘｕｏｓａ）、ヤマブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｃｏｉｇｎｅｔｉａｅ）とサンカクヅル（Ｖｉｔｉｓ ｆｌｅｘｕｏｓａ）の交配種、ヤマブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｃｏｉｇｎｅｔｉａｅ）とヨーロッパブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｖｉｎｉｆｅｒａ）の交配種又はサンカクヅル（Ｖｉｔｉｓ ｆｌｅｘｕｏｓａ）とヨーロッパブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｖｉｎｉｆｅｒａ）の交配種のブドウの果皮が好ましく、ヤマブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｃｏｉｇｎｅｔｉａｅ）とヨーロッパブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｖｉｎｉｆｅｒａ）の交配種又はサンカクヅル（Ｖｉｔｉｓ ｆｌｅｘｕｏｓａ）とヨーロッパブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｖｉｎｉｆｅｒａ）の交配種であるブドウの果皮がより好ましい。ブドウ果皮は、１種又は２種以上のブドウの果皮であることができる。
ブドウ果皮は、マルビジン－３，５－ジグルコシドの含有量の点から、ヤマブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｃｏｉｇｎｅｔｉａｅ）、サンカクヅル（Ｖｉｔｉｓ ｆｌｅｘｕｏｓａ）、ヤマブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｃｏｉｇｎｅｔｉａｅ）とサンカクヅル（Ｖｉｔｉｓ ｆｌｅｘｕｏｓａ）の交配種、ヤマブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｃｏｉｇｎｅｔｉａｅ）とヨーロッパブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｖｉｎｉｆｅｒａ）の交配種又はサンカクヅル（Ｖｉｔｉｓ ｆｌｅｘｕｏｓａ）とヨーロッパブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｖｉｎｉｆｅｒａ）の交配種のブドウの果皮が好ましく、ヤマブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｃｏｉｇｎｅｔｉａｅ）とヨーロッパブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｖｉｎｉｆｅｒａ）の交配種又はサンカクヅル（Ｖｉｔｉｓ ｆｌｅｘｕｏｓａ）とヨーロッパブドウ（Ｖｉｔｉｓ Ｖｉｎｉｆｅｒａ）の交配種であるブドウの果皮がより好ましい。ブドウ果皮は、１種又は２種以上のブドウの果皮であることができる。
【0025】
（アントシアニンの組成）
ブドウ果皮抽出物は、乾燥質量中、マルビジン－３，５－ジグルコシドを１５ｍｇ／ｇ以上含有する。マルビジン－３，５－ジグルコシドは、神経機能調節の点から、好ましくは２０ｍｇ／ｇ以上、より好ましくは２５ｍｇ／ｇ以上である。上限は、特に限定されず、５００ｍｇ／ｇ以下とすることができ、例えば１００ｍｇ／ｇである。
ブドウ果皮抽出物は、乾燥質量中、マルビジン－３，５－ジグルコシドを１５ｍｇ／ｇ以上含有する。マルビジン－３，５－ジグルコシドは、神経機能調節の点から、好ましくは２０ｍｇ／ｇ以上、より好ましくは２５ｍｇ／ｇ以上である。上限は、特に限定されず、５００ｍｇ／ｇ以下とすることができ、例えば１００ｍｇ／ｇである。
【0026】
ブドウ果皮抽出物は、デルフィニジン－３－グルコシドを含有することが好ましく、デルフィニジン－３－グルコシドの含有量は、マルビジン－３，５－ジグルコシド１モルに対して、神経機能調節作用の相補性の点から、０．０１モル以上が好ましく、より好ましくは０．１モル以上であり、また、神経機能調節作用のバランスの点から、１．５モル以下が好ましく、より好ましくは１．０モル以下である。
【0027】
ブドウ果皮抽出物は、マルビジン－３－グルコシドを含有することが好ましく、マルビジン－３－グルコシドの含有量は、マルビジン－３，５－ジグルコシド１モルに対して、神経機能調節作用の相補性の点から、０．０１モル以上が好ましく、より好ましくは０．０３モル以上であり、また、神経機能調節作用のバランスの点から、１．５モル以下が好ましく、より好ましくは１．０モル以下である。
【0028】
ブドウ果皮抽出物は、マルビジン－３－クマロイルグルコシドを含有することができる。マルビジン－３－クマロイルグルコシドの含有量は、マルビジン－３，５－ジグルコシド１モルに対して、０．０１モル以上２．０モル以下とすることができ、０．０５モル以上１．５モル以下が好ましい。
【0029】
ブドウ果皮抽出物は、マルビジン－３－クマロイルグルコシド－５－グルコシドを含有することができる。マルビジン－３－クマロイルグルコシド－５－グルコシドの含有量は、マルビジン－３，５－ジグルコシド１モルに対して、０．０１モル以上２．０モル以下とすることができ、０．０５モル以上１．５モル以下が好ましい。
【0030】
ブドウ果皮抽出物は、レスベラトロールを含有することができる。レスベラトロールの含有量は、マルビジン－３，５－ジグルコシド１モルに対して、０．００１モル以上とすることができ、例えば０．００３モル以上であり、また、例えば０．１００モル以下とすることができる。
【0031】
（使用）
本発明のブドウ果皮抽出物は、優れた神経機能調節作用を示す。神経機能調節作用は、神経機能の悪化防止、現状維持、回復、改善、予防に関連する作用をいうものとする。後述する実施例においては、本発明のブドウ果皮抽出物は、神経細胞の保護に有効であることが示唆され、さらには、抗炎症作用及び神経伝達物質減少の抑制作用も示すことが示唆されている。このことの詳細なメカニズムは不明であるが、マルビジン－３，５－ジグルコシドをはじめとするブドウ抽出物に含まれる成分の作用と考えられる。
本発明のブドウ果皮抽出物は、優れた神経機能調節作用を示す。神経機能調節作用は、神経機能の悪化防止、現状維持、回復、改善、予防に関連する作用をいうものとする。後述する実施例においては、本発明のブドウ果皮抽出物は、神経細胞の保護に有効であることが示唆され、さらには、抗炎症作用及び神経伝達物質減少の抑制作用も示すことが示唆されている。このことの詳細なメカニズムは不明であるが、マルビジン－３，５－ジグルコシドをはじめとするブドウ抽出物に含まれる成分の作用と考えられる。
【0032】
本発明のブドウ果皮抽出物は、神経細胞の損傷や神経細胞数の減少に関連する神経変性疾患や、種々の症状に有効であり、中でも抗老化が挙げられる。具体的には、本発明のブドウ果皮抽出物は、アルツハイマー病、パーキンソン病、うつ病等の神経変性疾患等の予防、改善、抗ストレス、抗疲労を目的として使用することができる。ただし、本発明のブドウ果皮抽出物は、健常人を対象とすることもでき、例えば、健常人の学習能力、記憶力、反射反応能力等の神経機能の向上を目的として使用することができる。本発明のブドウ果皮抽出物は、抗老化、抗ストレス、抗疲労、学習能力回復・向上、記憶力回復・向上、反射反応能力回復・向上用であることができる。
【0033】
本発明のブドウ果皮抽出物の投与対象としては、哺乳動物が挙げられ、例えば、ヒト、家畜（ウマ、ウシ、ブタ等）、愛玩動物（イヌ、ネコ等）、実験（試験）動物（マウス、ラット等）であり、好ましくはヒトである。
【0034】
本発明のブドウ果皮抽出物の投与量は、投与対象、年齢、体重、症状等を考慮して、適宜設定することができ、例えば、ヒトに投与する場合、投与対象の体重１ｋｇ当たり、０．２ｍｇ／日以上、１００ｍｇ／日以下が挙げられ、好ましくは０．５ｍｇ／日以上、より好ましくは１．０ｍｇ／日以上であり、また、好ましくは４０ｍｇ／日以下、より好ましくは２０ｍｇ／日以下である。投与対象がヒト以外の場合、上記範囲を適宜、増減することにより設定することができる。投与は、１日に１回の投与であっても、複数回に分けた投与であってもよい。投与期間は、投与対象、年齢、体重、症状等を考慮して、適宜設定することができるが、継続的な使用が好ましい。
【0035】
（製造方法）
ブドウ果皮抽出物は、ブドウ果皮より、有機溶媒を用いて、マルビジン－３，５－ジグルコシドを含む成分を抽出することにより得ることができる。
ブドウ果皮抽出物は、ブドウ果皮より、有機溶媒を用いて、マルビジン－３，５－ジグルコシドを含む成分を抽出することにより得ることができる。
【0036】
上記において、ブドウ果皮として、ブドウ果皮乾燥物を用いることができ、例えば、ブドウ果皮を温風もしくは熱風乾燥させた乾燥物、凍結乾燥させた乾燥物が挙げられる。
【0037】
抽出は、酸を含む有機溶媒又は酸を含む有機溶媒と水の混合溶媒を用いて抽出を行うことが好ましい。酸としては、強酸が好ましく、塩酸、硫酸、ギ酸、トリフロロ酢酸等が挙げられ、揮発性の酸である塩酸、ギ酸が好ましい。有機溶媒としては、極性溶媒が好ましく、メタノール、エタノール、アセトン、テトラヒドロフラン等が挙げられ、メタノール、エタノールが好ましい。酸の含有量は適宜、調整することができる。
【0038】
抽出は、ブドウ果皮を含む溶液を、ホモジナイズするか、あるいは高速高圧抽出装置を用いて行うことができる。抽出効率の点から、高圧下（例えば、５ＭＰａ以上１５ＭＰａ以下）で処理し、上記溶液を得ることが好ましい。得られた溶液を、場合により濾過し、濾過液を濃縮し、乾燥（例えば温風もしくは熱風乾燥又は凍結乾燥）させることにより、ブドウ果皮抽出物を得ることができる。あるいは、得られた溶液を遠心分離し、上澄みを回収し、上澄み溶液に分離用溶媒を加えて、ブドウ果皮抽出物を含む水層を分離し、この水層を濃縮し、乾燥（例えば温風もしくは熱風乾燥又は凍結乾燥）させて、ブドウ果皮抽出物を得てもよい。分離用溶媒としては、水と相分離する有機溶媒であれば、特に限定されず、酢酸エチル、トルエン、酢酸ブチル、ヘキサン、ヘプタン、ジクロロメタン、シクロペンチルメチルエーテル等が挙げられる。
【0039】
＜食品組成物＞
本発明によれば、上記ブドウ果皮抽出物を含有する食品組成物が提供される。食品組成物は、機能性食品、栄養補助食品、健康補助食品、栄養強化食品、機能性表示食品、特別用途食品、特定保健用食品又は栄養機能食品であることができる。
本発明によれば、上記ブドウ果皮抽出物を含有する食品組成物が提供される。食品組成物は、機能性食品、栄養補助食品、健康補助食品、栄養強化食品、機能性表示食品、特別用途食品、特定保健用食品又は栄養機能食品であることができる。
【0040】
食品組成物は、食品の製造で許容される成分を含むことができ、例えば、担体、賦形剤（例えば、乳糖、ショ糖、デキストリン、ヒドロキシプロピルセルロース、ポリビニルピロリドン）、崩壊剤、緩衝剤、乳化剤、懸濁剤、安定剤、保存剤、防腐剤、溶剤（水、食塩水、エタノール等の有機溶媒）が挙げられる。食品は、タンパク質、糖質、脂質、ビタミン、ミネラル、有機酸、有機塩基、香料等を含むこともできる。
【0041】
食品組成物の形態は、特に限定されず、固体、液体、混合物、懸濁液、ペースト、ゲル、粉末、カプセルが挙げられ、飲料、菓子、調味料、惣菜、加工食品とすることができる。食品組成物は、サプリメントであってもよい。中でも、飲料が好ましく、アルコール度数が３％未満の飲料とすることがより好ましい。食品組成物は、食品に、上記ブドウ果皮抽出物を配合することにより得ることができる。
【0042】
食品組成物についての使用（対象となる疾患及び症状等、投与方法（投与対象、投与量、期間））は、上記ブドウ果皮抽出物と同様に設定することができる。具体的には、抗老化、抗ストレス、抗疲労、学習能力回復・向上、記憶力回復・向上、反射反応能力回復・向上用の食品組成物が挙げられる。投与量は、ブドウ果皮抽出物の投与量が、ブドウ果皮抽出物について上述された量となるようにすることができる。
【0043】
＜医薬組成物＞
本発明はまた、上記ブドウ果皮抽出物を含有する医薬組成物に関する。医薬組成物は、医薬品又は医薬部外品であることができる。
本発明はまた、上記ブドウ果皮抽出物を含有する医薬組成物に関する。医薬組成物は、医薬品又は医薬部外品であることができる。
【0044】
医薬組成物は、製薬上許容される成分を含むことができ、例えば、担体、賦形剤（例えば、乳糖、ショ糖、デキストリン、ヒドロキシプロピルセルロース、ポリビニルピロリドン）、崩壊剤、緩衝剤、乳化剤、懸濁剤、安定剤、保存剤、防腐剤、溶剤（例えば、水、食塩水、エタノール等の有機溶媒）が挙げられる。他の薬理活性を有する薬理成分を含むこともできる。
【0045】
医薬組成物は、医薬品又は医薬部外品として使用することができる。医薬組成物は、経口投与用であっても、非経口投与であってもよく、好ましくは、経口投与である。経口投与の場合、散剤、錠剤、コーティング錠、糖衣錠、ソフトカプセル又はハードカプセル、液剤、乳濁剤、懸濁剤の形態が挙げられる。非経口投与の場合、坐剤、注射剤、輸液、軟膏、クリーム、ゲル剤の形態が挙げられる。
【0046】
医薬組成物についての使用（対象となる疾患及び症状等、投与方法（投与対象、投与量、期間））は、ブドウ果皮抽出物と同様に設定することができる。具体的には、抗老化、抗ストレス、抗疲労、学習能力回復・向上、記憶力回復・向上、反射反応能力回復・向上用の医薬組成物が挙げられる。投与量は、ブドウ果皮抽出物の投与量が、ブドウ果皮抽出物について上述された量となるようにすることができる。
【実施例】
【0047】
以下、実施例により、本発明をさらに具体的に説明する。ただし、本発明の技術的範囲は、これらの実施例によって制限されない。
【0048】
＜試料の調製＞
試料の調製においては、以下の品種名のブドウを使用した。
・富士の夢（行者の水（サンカクヅル）とメルロー（ヨーロッパブドウ）の交配種）
・エイトゴールド（行者の水（サンカクヅル）とピノ・ノワール（ヨーロッパブドウ）の交配種）
・ピオーネ（雑種）
・甲斐路（雑種）
・マスカットベリーＡ（雑種）
試料の調製においては、以下の品種名のブドウを使用した。
・富士の夢（行者の水（サンカクヅル）とメルロー（ヨーロッパブドウ）の交配種）
・エイトゴールド（行者の水（サンカクヅル）とピノ・ノワール（ヨーロッパブドウ）の交配種）
・ピオーネ（雑種）
・甲斐路（雑種）
・マスカットベリーＡ（雑種）
【0049】
試料の調製においては、以下の抽出法を使用した。
・抽出法１
ブドウの果実を圧搾して果汁を除いた後の果皮を、ステンレス製の網かごの上に互いが触れ合わないように置いて、乾燥機を用いて７０℃の温風をあててブドウ果皮乾燥物を得た。得られたブドウ果皮乾燥物６ｇに、２％ギ酸メタノール水（メタノール：超純水：ギ酸＝７０：２８：２（ｖ／ｖ／ｖ））４０ｍＬを加え、１２時間、室温遮光条件下で撹拌（３６０ｒｐｍ）し、抽出液を得た。得られた抽出液を、濾紙（ＡＤＶＡＮＴＥＣ社製 定量濾紙Ｎｏ．５Ａ、１１０ｍｍ）を用いて濾過し、濾過した抽出溶液を濃縮及び凍結乾燥しブドウ果皮抽出物の粉末を得た。
・抽出法１
ブドウの果実を圧搾して果汁を除いた後の果皮を、ステンレス製の網かごの上に互いが触れ合わないように置いて、乾燥機を用いて７０℃の温風をあててブドウ果皮乾燥物を得た。得られたブドウ果皮乾燥物６ｇに、２％ギ酸メタノール水（メタノール：超純水：ギ酸＝７０：２８：２（ｖ／ｖ／ｖ））４０ｍＬを加え、１２時間、室温遮光条件下で撹拌（３６０ｒｐｍ）し、抽出液を得た。得られた抽出液を、濾紙（ＡＤＶＡＮＴＥＣ社製 定量濾紙Ｎｏ．５Ａ、１１０ｍｍ）を用いて濾過し、濾過した抽出溶液を濃縮及び凍結乾燥しブドウ果皮抽出物の粉末を得た。
【0050】
・抽出法２
ブドウ果皮（６～７粒分）をステンレス製のザルに入れ、皮を潰さないように水道水で洗浄した。洗浄した果皮を厚手のジップ付きのポリ袋に入れ、凍結乾燥を行なった。凍結乾燥した果皮１ｇを、高速高圧抽出装置（日本ビュッヒ社製、Ｅ－９１４)にセットし、１％ギ酸メタノール（メタノール：ギ酸＝９９：１（ｖ／ｖ））にて、１０ＭＰａの高圧下で、３回抽出し、抽出液を得た。得られた抽出液１００ｍＬ程度を、ロータリーエバポレーターを用いて濃縮及び凍結乾燥し、ブドウ果皮抽出物の粉末を得た。
ブドウ果皮（６～７粒分）をステンレス製のザルに入れ、皮を潰さないように水道水で洗浄した。洗浄した果皮を厚手のジップ付きのポリ袋に入れ、凍結乾燥を行なった。凍結乾燥した果皮１ｇを、高速高圧抽出装置（日本ビュッヒ社製、Ｅ－９１４)にセットし、１％ギ酸メタノール（メタノール：ギ酸＝９９：１（ｖ／ｖ））にて、１０ＭＰａの高圧下で、３回抽出し、抽出液を得た。得られた抽出液１００ｍＬ程度を、ロータリーエバポレーターを用いて濃縮及び凍結乾燥し、ブドウ果皮抽出物の粉末を得た。
【0051】
上記により得られたブドウ果皮抽出物の粉末をメタノールに溶解し、高速液体クロマトグラフィー－質量分析（ＨＰＬＣ／ＭＳ）を行い、抽出物粉末１ｇに含まれる、マルビジン－３，５－ジグルコシド、マルビジン－３－グルコシド、デルフィニジン－３－グルコシド、マルビジン－３－クマロイルグルコシド、マルビジン－３－クマロイルグルコシド－５－グルコシド、レスベラトロールの量を確認した。成分の同定及び定量は、ＬＣ－ＭＳ分析のライブラリーで確認するとともに、標準品の測定値との対比により行った。結果は、以下のとおりである。
【0052】
【表1】
【0053】
上記抽出物１、４及び６を用いて、以下の試料１～４を調製した。
試料１：上記抽出物１を７０％エタノール溶液（エタノール：水＝７０：３０（ｖ／ｖ））に溶解し、得られた溶液中の抽出物粉末の濃度が１００μｇ／ｍＬになるように調整した。マルビジン－３，５－ジグルコシドの濃度にすると１２．５６μＭである（クロリドで計算）。
試料２：上記抽出物４を７０％エタノール溶液（エタノール：水＝７０：３０（ｖ／ｖ））に溶解し、得られた溶液中の抽出物粉末の濃度が１００μｇ／ｍＬになるように調整した。マルビジン－３，５－ジグルコシドの濃度にすると１．４３μＭである（クロリドで計算）。
試料３：上記抽出物６を７０％エタノール溶液（エタノール：水＝７０：３０（ｖ／ｖ））に溶解し、得られた溶液中の抽出物粉末の濃度が１００μｇ／ｍＬになるように調整した。マルビジン－３，５－ジグルコシドの濃度にすると０．８０μＭである（クロリドで計算）。
試料４：上記抽出物１を超純水（Milli-Ｑ（登録商標）水）に溶解し、得られた溶液中の抽出物粉末の濃度が７．５ｍｇ／ｍＬになるように調整した。溶液中のマルビジン－３，５－ジグルコシドの濃度は６５１μｇ／ｍＬである（クロリドで計算）。
試料１：上記抽出物１を７０％エタノール溶液（エタノール：水＝７０：３０（ｖ／ｖ））に溶解し、得られた溶液中の抽出物粉末の濃度が１００μｇ／ｍＬになるように調整した。マルビジン－３，５－ジグルコシドの濃度にすると１２．５６μＭである（クロリドで計算）。
試料２：上記抽出物４を７０％エタノール溶液（エタノール：水＝７０：３０（ｖ／ｖ））に溶解し、得られた溶液中の抽出物粉末の濃度が１００μｇ／ｍＬになるように調整した。マルビジン－３，５－ジグルコシドの濃度にすると１．４３μＭである（クロリドで計算）。
試料３：上記抽出物６を７０％エタノール溶液（エタノール：水＝７０：３０（ｖ／ｖ））に溶解し、得られた溶液中の抽出物粉末の濃度が１００μｇ／ｍＬになるように調整した。マルビジン－３，５－ジグルコシドの濃度にすると０．８０μＭである（クロリドで計算）。
試料４：上記抽出物１を超純水（Milli-Ｑ（登録商標）水）に溶解し、得られた溶液中の抽出物粉末の濃度が７．５ｍｇ／ｍＬになるように調整した。溶液中のマルビジン－３，５－ジグルコシドの濃度は６５１μｇ／ｍＬである（クロリドで計算）。
【0054】
＜実施例１：細胞生存実験＞
以下の実験により、ブドウ果皮抽出物の神経細胞死の抑制作用を確認した。
以下の実験により、ブドウ果皮抽出物の神経細胞死の抑制作用を確認した。
【0055】
ウェルプレート（ＢＤ Ｂｉｏｃｏａｔ社製、ウェル数９６）の各ウェルに、ＳＨ－ＳＹ５Ｙ細胞（神経細胞のモデル細胞、ＡＴＣＣ社製）を２×１０５セル／ｍＬの濃度で、１００μＬ／ウェル播種し、２４時間、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で培養した。細胞培養培地は、Ｆ１２／ＤＭＥＭ培地（Ｇｉｂｃｏ社製）に１％非必須アミノ酸（Ｇｉｂｃｏ社製）、１５％ＦＢＳ（Ｂｉｏ Ｗｅｓｔ社製）、１％ペニシリン／ストレプトマイシン（Ｌｏｎｚａ社製）を混合したものを用いた。
２４時間後、培養培地をアスピレーターにより完全に除去し、Ｏｐｔｉ－ＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ社製）の培地を１００μＬ／ウェル添加し、２４時間、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で培養した。
その後、Ｏｐｔｉ－ＭＥＭをアスピレーターにより完全に除去し、ＭＴＴ試薬（３－（４，５－ジメチルチアゾール－２－イル）－２，５－ジフェニルテトラゾリウムブロミド、５ｍｇ／ｍＬ）をＯｐｔｉ－ＭＥＭに混合（ＭＴＴ試薬：Ｏｐｔｉ－ＭＥＭ＝１：１０）したものを、１１０μＬ／ウェル添加し、２４時間、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で培養した。次いで、１０％ＳＤＳ（ドデシル硫酸ナトリウム）水溶液を、１００μＬ／ウェル添加し、２４時間、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で培養した。
その後、マイクロプレートリーダー（大日本住友製薬株式会社製）を用いて、５７０ｎｍにおける吸光度を測定し、ＭＴＴホルマザン産出量を求め、相対細胞生存率を算出した（図１中、「対照」）。
２４時間後、培養培地をアスピレーターにより完全に除去し、Ｏｐｔｉ－ＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ社製）の培地を１００μＬ／ウェル添加し、２４時間、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で培養した。
その後、Ｏｐｔｉ－ＭＥＭをアスピレーターにより完全に除去し、ＭＴＴ試薬（３－（４，５－ジメチルチアゾール－２－イル）－２，５－ジフェニルテトラゾリウムブロミド、５ｍｇ／ｍＬ）をＯｐｔｉ－ＭＥＭに混合（ＭＴＴ試薬：Ｏｐｔｉ－ＭＥＭ＝１：１０）したものを、１１０μＬ／ウェル添加し、２４時間、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で培養した。次いで、１０％ＳＤＳ（ドデシル硫酸ナトリウム）水溶液を、１００μＬ／ウェル添加し、２４時間、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で培養した。
その後、マイクロプレートリーダー（大日本住友製薬株式会社製）を用いて、５７０ｎｍにおける吸光度を測定し、ＭＴＴホルマザン産出量を求め、相対細胞生存率を算出した（図１中、「対照」）。
【0056】
ウェルプレート（ＢＤ Ｂｉｏｃｏａｔ社製、ウェル数９６）へのＳＨ－ＳＹ５Ｙ細胞播種２４時間後、培養培地をアスピレーターにより完全に除去し、アミロイドβタンパク質（Ｂｅｔａ－Ａｍｙｌｏｉｄ １－４２、ＡｎａＳｐｅｃ社製）をＯｐｔｉ－ＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ社製）に最終濃度１５μＭとなるよう混合した混合物を１００μＬ／ウェル添加し、７２時間、３７℃、５％ＣＯ2の条件で培養し、細胞死を誘導したこと以外は、上記と同様にして、ＭＴＴホルマザン産出量を求め、相対細胞生存率を算出した（図１中、「Ａβ」）。
【0057】
ウェルプレート（ＢＤ Ｂｉｏｃｏａｔ社製、ウェル数９６）へのＳＨ－ＳＹ５Ｙ細胞播種２４時間後、培養培地をアスピレーターにより完全に除去し、試料１をＯｐｔｉ－ＭＥＭに最終濃度２００μｇ／mＬとなるよう混合した混合物を９０μＬ／ウェル添加し、１０分間放置し、次いでアミロイドβタンパク質（Ｂｅｔａ－Ａｍｙｌｏｉｄ １－４２、ＡｎａＳｐｅｃ社製）をＯｐｔｉ－ＭＥＭに濃度１５０μＭとなるよう混合した混合物を１０μＬ／ウェル添加し、７２時間、３７℃、５％ＣＯ２の条件で培養し、細胞死を誘導したこと以外は、上記と同様にして、ＭＴＴホルマザン産出量を求め、相対細胞生存率を算出した（図１中、「Ａβ＋抽出物１」）。
【0058】
試料１に代えて試料２を用いた他は、上記と同様にして、相対細胞生存率を算出した（図１中、「Ａβ＋抽出物４」）。
【0059】
試料１に代えて試料３を用いた他は、上記と同様にして、相対細胞生存率を算出した（図１中、「Ａβ＋抽出物６」）。
【0060】
図中の「対照」と「Ａβ」を比較すると、前者に対し後者の相対細胞生存率は顕著に低く、アミロイドβタンパク質による処理によって細胞死が誘導されていることがわかった。
図中の「Ａβ＋抽出物１」は、相対細胞生存率が、「Ａβ」よりも有意に高く、細胞死の抑制作用が得られることがわかった。その相対細胞生存率の高さは、「対照」と同等であり、抽出物１が細胞死の抑制作用のみならず、細胞の増殖作用も有する可能性が示唆される。一方、「Ａβ＋抽出物４」及び「Ａβ＋抽出物６」の相対細胞生存率は、「Ａβ」よりも改善されたが、「Ａβ＋抽出物１」には及ばなかった。
図中の「Ａβ＋抽出物１」は、相対細胞生存率が、「Ａβ」よりも有意に高く、細胞死の抑制作用が得られることがわかった。その相対細胞生存率の高さは、「対照」と同等であり、抽出物１が細胞死の抑制作用のみならず、細胞の増殖作用も有する可能性が示唆される。一方、「Ａβ＋抽出物４」及び「Ａβ＋抽出物６」の相対細胞生存率は、「Ａβ」よりも改善されたが、「Ａβ＋抽出物１」には及ばなかった。
【0061】
＜実施例２：動物実験（抗炎症作用確認実験）＞
以下の実験により、ブドウ果皮抽出物の抗炎症作用を確認した。
以下の実験により、ブドウ果皮抽出物の抗炎症作用を確認した。
【0062】
実験において使用したマウス及び投与内容は、以下のとおりである。投与内容以外の飼育条件は、全部の群で共通である。
抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群：１日当たり、試料４を、マウス体重１ｋｇ当たり３．３４ｍＬ、老化促進マウス（ＳＡＭＰ８）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８～３０ｇ）１０匹に、３８日間経口投与した（図２及び３中、「老化促進マウス＋抽出物１」）。３．３４ｍＬの試料４中、抽出物粉末は２５ｍｇ含まれ、マルビジン‐３，５－ジグルコシドとして２．１７ｍｇ含まれることになる。
マウス体重１ｋｇ当たり抽出物粉末２５ｍｇのヒト等価用量は、ヒト体重１ｋｇ当たり抽出物粉末２．０ｍｇである。
また、マウス体重１ｋｇ当たりマルビジン－３，５－ジグルコシド２．１７ｍｇのヒト等価用量は、ヒト体重１ｋｇ当たりマルビジン－３，５－ジグルコシド０．１８ｍｇである。
水投与（ＳＡＭＰ８）群：抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群に投与した試料４とほぼ同量の超純水（Milli-Ｑ（登録商標）水）を、老化促進マウス（ＳＡＭＰ８）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８～３０ｇ）１０匹に、３８日間経口投与した（図２及び３中、「老化促進マウス」）
水投与（ＳＡＭＲ１）群：抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群に投与した試料４とほぼ同量の超純水（Milli-Ｑ（登録商標）水）を、正常老化マウス（ＳＡＭＲ１）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８．５～３４ｇ）１０匹に、３８日間経口投与した（図２及び３中、「正常老化マウス」）
抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群：１日当たり、試料４を、マウス体重１ｋｇ当たり３．３４ｍＬ、老化促進マウス（ＳＡＭＰ８）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８～３０ｇ）１０匹に、３８日間経口投与した（図２及び３中、「老化促進マウス＋抽出物１」）。３．３４ｍＬの試料４中、抽出物粉末は２５ｍｇ含まれ、マルビジン‐３，５－ジグルコシドとして２．１７ｍｇ含まれることになる。
マウス体重１ｋｇ当たり抽出物粉末２５ｍｇのヒト等価用量は、ヒト体重１ｋｇ当たり抽出物粉末２．０ｍｇである。
また、マウス体重１ｋｇ当たりマルビジン－３，５－ジグルコシド２．１７ｍｇのヒト等価用量は、ヒト体重１ｋｇ当たりマルビジン－３，５－ジグルコシド０．１８ｍｇである。
水投与（ＳＡＭＰ８）群：抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群に投与した試料４とほぼ同量の超純水（Milli-Ｑ（登録商標）水）を、老化促進マウス（ＳＡＭＰ８）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８～３０ｇ）１０匹に、３８日間経口投与した（図２及び３中、「老化促進マウス」）
水投与（ＳＡＭＲ１）群：抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群に投与した試料４とほぼ同量の超純水（Milli-Ｑ（登録商標）水）を、正常老化マウス（ＳＡＭＲ１）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８．５～３４ｇ）１０匹に、３８日間経口投与した（図２及び３中、「正常老化マウス」）
【0063】
動物実験の内容は、以下のとおりである。
経口投与終了の翌日、各群のマウスから大脳皮質を摘出し、ＲＮＡを抽出し、リアルタイムＰＣＲ法を用いて、ＴＮＦ－α（腫瘍壊死因子）及びＩＬ－６（インターロイキン６）の遺伝子発現について解析を行った。
なお、ＲＮＡ抽出に関しては、摘出した大脳皮質にＩＳＯＧＥＮ試薬（ニッポンジーン社製）を加え、ホモジナイザーを用いてホモジナイズした後、ニッポンジーン社推奨プロトコールに準じてＲＮＡ抽出を行なった（URL: https://www.nippongene.com/siyaku/product/extraction/tds/tds_isogen-rna-dna-protein.pdf参照）。
また、リアルタイムＰＣＲ法に関しては、ＴａｑＭａｎ Ｒｅａｌ－ＴｉｍｅＰＣＲ用試薬キット（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）を用いてＴｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社推奨プロトコールに準じて行なった（URL: https://assets.thermofisher.com/TFS-Assets/LSG/manuals/4304449_TaqManPCRMM_UG.pdf参照）。
経口投与終了の翌日、各群のマウスから大脳皮質を摘出し、ＲＮＡを抽出し、リアルタイムＰＣＲ法を用いて、ＴＮＦ－α（腫瘍壊死因子）及びＩＬ－６（インターロイキン６）の遺伝子発現について解析を行った。
なお、ＲＮＡ抽出に関しては、摘出した大脳皮質にＩＳＯＧＥＮ試薬（ニッポンジーン社製）を加え、ホモジナイザーを用いてホモジナイズした後、ニッポンジーン社推奨プロトコールに準じてＲＮＡ抽出を行なった（URL: https://www.nippongene.com/siyaku/product/extraction/tds/tds_isogen-rna-dna-protein.pdf参照）。
また、リアルタイムＰＣＲ法に関しては、ＴａｑＭａｎ Ｒｅａｌ－ＴｉｍｅＰＣＲ用試薬キット（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）を用いてＴｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社推奨プロトコールに準じて行なった（URL: https://assets.thermofisher.com/TFS-Assets/LSG/manuals/4304449_TaqManPCRMM_UG.pdf参照）。
【0064】
図２及び３に示すように、正常老化マウスに対し、老化促進マウスでは、炎症性サイトカインであるＴＮＦ－α及びＩＬ－６の有意な発現増加が確認された。一方、抽出物を投与した老化促進マウスでは、発現が正常老化マウスと同程度に抑制されていた。
【0065】
＜実施例３：動物実験（神経伝達物質減少の抑制作用確認実験）＞
以下の実験により、ブドウ果皮抽出物の神経伝達物質減少の抑制作用を確認した。
以下の実験により、ブドウ果皮抽出物の神経伝達物質減少の抑制作用を確認した。
【0066】
実験において使用したマウス及び投与内容は、以下のとおりである。投与内容以外の飼育条件は、全部の群で共通である。
抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群：１日当たり、試料４を、マウス体重１ｋｇ当たり３．３４ｍＬで、老化促進マウス（ＳＡＭＰ８）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８～３０ｇ）１０匹に、３８日間経口投与した（図４及び５中、「老化促進マウス＋抽出物１」）。
水投与（ＳＡＭＰ８）群：抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群に投与した試料４とほぼ同量の飲料水を、老化促進マウス（ＳＡＭＰ８）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８～３０ｇ）１０匹に、３８日間経口投与した（図４及び５中、「老化促進マウス」）
水投与（ＳＡＭＲ１）群：抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群に投与した試料４とほぼ同量の飲料水を、正常老化マウス（ＳＡＭＲ１）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８．５～３４ｇ）１０匹に、３８日間経口投与した（図４及び５中、「正常老化マウス」）
抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群：１日当たり、試料４を、マウス体重１ｋｇ当たり３．３４ｍＬで、老化促進マウス（ＳＡＭＰ８）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８～３０ｇ）１０匹に、３８日間経口投与した（図４及び５中、「老化促進マウス＋抽出物１」）。
水投与（ＳＡＭＰ８）群：抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群に投与した試料４とほぼ同量の飲料水を、老化促進マウス（ＳＡＭＰ８）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８～３０ｇ）１０匹に、３８日間経口投与した（図４及び５中、「老化促進マウス」）
水投与（ＳＡＭＲ１）群：抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群に投与した試料４とほぼ同量の飲料水を、正常老化マウス（ＳＡＭＲ１）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８．５～３４ｇ）１０匹に、３８日間経口投与した（図４及び５中、「正常老化マウス」）
【0067】
動物実験の内容は、以下のとおりである。
経口投与終了の翌日、各群のマウスから大脳皮質を摘出し、大脳皮質にRIPA Lysis Buffer System（Santa Cruz Biotechnology, Inc.社）を加え、ホモジナイザーを用いてホモジナイズを行い、タンパク質抽出を行った。その後遠心（１００００×g、３０分間）を行い、上清を回収し、ノルアドレナリン及びドーパミンの定量を行なった。
ノルアドレナリンの定量は、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）キット（ＬＤＮ社製、ＢＡＥ－５２００）に従って行った。定量は、４５０ｎｍの吸光度を測定し、濃度が既知のノルアドレナリンを用いた標準曲線より算出した。
ドーパミンの定量は、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）キット（ＬＤＮ社製、ＢＡＥ－５３００）に従って行った。定量は、４５０ｎｍの吸光度を測定し、濃度が既知のドーパミンを用いた標準曲線より算出した。
経口投与終了の翌日、各群のマウスから大脳皮質を摘出し、大脳皮質にRIPA Lysis Buffer System（Santa Cruz Biotechnology, Inc.社）を加え、ホモジナイザーを用いてホモジナイズを行い、タンパク質抽出を行った。その後遠心（１００００×g、３０分間）を行い、上清を回収し、ノルアドレナリン及びドーパミンの定量を行なった。
ノルアドレナリンの定量は、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）キット（ＬＤＮ社製、ＢＡＥ－５２００）に従って行った。定量は、４５０ｎｍの吸光度を測定し、濃度が既知のノルアドレナリンを用いた標準曲線より算出した。
ドーパミンの定量は、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）キット（ＬＤＮ社製、ＢＡＥ－５３００）に従って行った。定量は、４５０ｎｍの吸光度を測定し、濃度が既知のドーパミンを用いた標準曲線より算出した。
【0068】
図４及び５に示すように、正常老化マウスに対し、老化促進マウスでは、神経伝達物質であるノルアドレナリン及びドーパミンの有意な減少が確認された。一方、抽出物を投与した老化促進マウスでは、遺伝子の発現が正常老化マウスと同程度であった。
【0069】
＜実施例４：動物実験（学習記憶能力の改善作用確認実験）＞
以下の実験により、ブドウ果皮抽出物投与による動物における学習記憶能力の改善作用を確認した。
以下の実験により、ブドウ果皮抽出物投与による動物における学習記憶能力の改善作用を確認した。
【0070】
実験において使用したマウス及び投与内容は、以下のとおりである。投与内容以外の飼育条件は、全部の群で共通である。
抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群：１日当たり、試料４を、マウス体重１ｋｇ当たり３．３４ｍＬで、老化促進マウス（ＳＡＭＰ８）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８～３０ｇ）１０匹に、３０日間経口投与した（図６～８中、「老化促進マウス＋抽出物１」）。
水投与（ＳＡＭＰ８）群：抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群に投与した試料４とほぼ同量の飲料水を、老化促進マウス（ＳＡＭＰ８）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８～３０ｇ）１０匹に、３０日間経口投与した（図６～８中、「老化促進マウス」）。
水投与（ＳＡＭＲ１）群：抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群に投与した試料４とほぼ同量の飲料水を、正常老化マウス（ＳＡＭＲ１）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８．５～３４ｇ）１０匹に、３０日間経口投与した（図６～８中、「正常老化マウス」）。
単品（Ｍ３，５Ｇ）投与（ＳＡＭＰ８）群：参考のため、マルビジン－３，５－ジグルコシドクロリド（富士フィルム和光純薬株式会社製）を、１日当たりの投与量が、マウス体重１ｋｇ当たり２．１７ｍｇとなる量で、老化促進マウス（ＳＡＭＰ８）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８～３０ｇ）１０匹に、３０日間経口投与した（図６～８中、「老化促進マウス＋単品（Ｍ３，５Ｇ）」）。
抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群：１日当たり、試料４を、マウス体重１ｋｇ当たり３．３４ｍＬで、老化促進マウス（ＳＡＭＰ８）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８～３０ｇ）１０匹に、３０日間経口投与した（図６～８中、「老化促進マウス＋抽出物１」）。
水投与（ＳＡＭＰ８）群：抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群に投与した試料４とほぼ同量の飲料水を、老化促進マウス（ＳＡＭＰ８）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８～３０ｇ）１０匹に、３０日間経口投与した（図６～８中、「老化促進マウス」）。
水投与（ＳＡＭＲ１）群：抽出物投与（ＳＡＭＰ８）群に投与した試料４とほぼ同量の飲料水を、正常老化マウス（ＳＡＭＲ１）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８．５～３４ｇ）１０匹に、３０日間経口投与した（図６～８中、「正常老化マウス」）。
単品（Ｍ３，５Ｇ）投与（ＳＡＭＰ８）群：参考のため、マルビジン－３，５－ジグルコシドクロリド（富士フィルム和光純薬株式会社製）を、１日当たりの投与量が、マウス体重１ｋｇ当たり２．１７ｍｇとなる量で、老化促進マウス（ＳＡＭＰ８）（日本エスエルシー社より入手。１６週齢、体重２８～３０ｇ）１０匹に、３０日間経口投与した（図６～８中、「老化促進マウス＋単品（Ｍ３，５Ｇ）」）。
【0071】
動物実験の内容は、以下のとおりである。
各群のマウスについて、経口投与終了の翌日より、モリス水迷路試験（プラットフォームテスト、プローブテスト）を行った。モリス水迷路として、直径１２０ｃｍ、深さ４５ｃｍのプールを用意した。プールの水面下に透明の台（プラットフォーム）を設置し、プールの内壁に等間隔で４カ所目印を設置したものを用いた。
各群のマウスについて、経口投与終了の翌日より、モリス水迷路試験（プラットフォームテスト、プローブテスト）を行った。モリス水迷路として、直径１２０ｃｍ、深さ４５ｃｍのプールを用意した。プールの水面下に透明の台（プラットフォーム）を設置し、プールの内壁に等間隔で４カ所目印を設置したものを用いた。
【0072】
プラットフォームテスト：
マウスをプール内に投入し、マウスがプラットフォームに到達するまでにかかる時間を測定した。その際、制限時間を６０秒とし、到達できない場合は６０秒とした。到達後マウスは１５秒間、プラットフォーム上に置かれた。各群の各マウスについて、この実験を１日１回、７日間続けて行った。結果を図６に示す。
マウスをプール内に投入し、マウスがプラットフォームに到達するまでにかかる時間を測定した。その際、制限時間を６０秒とし、到達できない場合は６０秒とした。到達後マウスは１５秒間、プラットフォーム上に置かれた。各群の各マウスについて、この実験を１日１回、７日間続けて行った。結果を図６に示す。
【0073】
プローブテスト：
試験最終日に、プラットフォームを取り除き、同様にマウスをプールに投入し、６０秒の間に、マウスが、プラットフォームが設置されていた場所を横切った回数及び同場所に滞在していた時間を測定した。結果を図７及び８に示す。
試験最終日に、プラットフォームを取り除き、同様にマウスをプールに投入し、６０秒の間に、マウスが、プラットフォームが設置されていた場所を横切った回数及び同場所に滞在していた時間を測定した。結果を図７及び８に示す。
【0074】
プラットフォームテストは、マウスが目印等の視覚刺激を頼りにプラットフォームに到達するまでにかかる時間を指標として空間学習記憶を評価するものである。図６に示されるように、正常老化マウス（水投与）については、到達時間が短縮していったのに対し、老化促進マウス（水投与）については、到達時間の短縮は見られなかった。抽出物を投与した老化促進マウスでは、正常老化マウス（水投与）と同程度の到達時間の短縮が見られた。マルビジン－３，５－ジグルコシドを投与した老化促進マウスと比べた場合、抽出物１を投与した老化促進マウスの方が、到達時間の短縮幅は大きかった。
【0075】
プローブテストは、プラットフォームが設置されていた場所を横切った回数及び同場所の滞在時間により、マウスの記憶保持能力を評価するものである。図７及び８に示されるように、老化促進マウス（水投与）は、正常老化マウス（水投与）に比べて、横切った回数が有意に少なく、また、滞在時間が有意に短かった。抽出物１を投与した老化促進マウスでは、正常老化マウス（水投与）と同程度の横切った回数及び滞在時間が観察された。マルビジン－３，５－ジグルコシドを投与した老化促進マウスと比べた場合、抽出物を投与した老化促進マウスの方が、横切った回数が多く、また、滞在時間は長かった。
【0076】
以上のように、本発明の抽出物の投与による、動物の学習記憶能力の改善が確認された。
【産業上の利用可能性】
【0077】
本発明のブドウ果皮抽出物は、神経細胞保護に有効であり、当該保護を介して神経機能調節作用を発揮するものであり、アルツハイマー病、パーキンソン病、うつ病等の神経変性疾患等の改善、予防が期待でき、健康サプリメント等の食品、医薬品としての展開や関連市場の拡大が期待される。本発明のブドウ果皮抽出物は、天然物に由来するため、安全であり、日常的又は継続的な摂取に適していると考えられる。このように、本発明は、産業上の有用性が高い。
【図1】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図6】
【図7】
【図8】